Subido por paulina gomez

Tinción-de-Gram

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Subsecretaria de Educación Media Superior
Unidad de Educación Media Superior Tecnológica industrial y de servicios
Centro de Bachillerato Tecnológico industrial y de servicio No.198
“Tinción de Gram”
SUBMODULO: Identifica Microorganismos con base en
Técnicas Bacteriológicas
DOCENTE: IBQ. Magaly Carranza Jacobo
EQUIPO: no. 6
INTEGRANTES:
 Ayala García Karla Celia
 Ledesma Gómez Nadia Sanjuana
 Ortega Cruz Miriam Paulina
 Rodríguez Chimal Evelyn
 Zarate Cervantes Daniela Michelle
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Manual de Prácticas
Identifica microorganismos con base
en técnicas Bacteriológicas
Elaboro:
IBQ. Guadalupe Isela Sánchez Adame
IBQ. Magaly Carranza Jacobo
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Competencias Genéricas que constituyen el Perfil del Egresado
del Sistema Nacional de Bachillerato
Piensa crítica y reflexivamente
5. Desarrolla innovaciones y propone soluciones a problemas a partir
de métodos establecidos.
Atributos:
❖
Sigue instrucciones y procedimientos de manera reflexiva, comprendiendo como
cada uno de sus pasos contribuye al alcance de un objetivo.
❖
Ordena información de acuerdo a categorías, jerarquías y relaciones.
❖
Identifica los sistemas y reglas o principios medulares que subyacen a una serie
de fenómenos.
❖
Construye hipótesis y diseña y aplica modelos para probar su validez.
❖
Sintetiza evidencias obtenidas mediante la experimentación para producir
conclusiones y formular nuevas preguntas.
Trabaja en forma colaborativa
8. Participa y colabora de manera efectiva en equipos diversos.
Atributos:
❖
Propone maneras de solucionar un problema o desarrollar un proyecto en
equipo, definiendo un curso de acción con pasos específicos.
❖
Aporta puntos de vista con apertura y considera los de otras personas de manera
reflexiva.
❖
Asume una actitud constructiva, congruente con los conocimientos y habilidades
con los que cuenta dentro de distintos equipos de trabajo.
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Competencias profesionales
 Identifica Bacterias
 Identifica Bacilos Ácido Alcohol Resistentes
 Realiza Antibiograma
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Contenido
Práctica No. 7 Tinción de Gram ............................................................................. 6
Competencia profesional ....................................................................................... 6
Material .................................................................................................................. 6
Introducción: .......................................................................................................... 6
Desarrollo: ............................................................................................................. 7
Reporte de lo observado: ..................................................................................... 11
Cuestionario: ........................................................................................................ 12
Conclusiones: ...................................................................................................... 14
Perspectiva: ......................................................................................................... 14
Bibliografía: .......................................................................................................... 15
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Práctica No. 7 Tinción de Gram
Competencia profesional: Realiza la técnica de tinción de Gram para clasificar las
bacterias.
Material:
 Cultivo bacteriano de 24 horas
 Asa bacteriológica
 Portaobjetos
 Colorante cristal violeta o violeta de genciana
 Solución de yodo-lugol o yodo gram
 Alcohol-acetona (1:1)
 Colorante safranina
 Microscopio
 Aceite de inmersión
Introducción:
Esta coloración, ideada por Hans Christian Gram a fines del siglo XIX, permite dividir
a las especies bacterianas en dos grandes grupos: aquellas que toman el colorante
básico, cristal violeta (gram positivas) y aquellas que son decoloradas por el alcoholacetona (gram negativas). El procedimiento clásico de la coloración de Gram incluye
la fijación del material, ya sea por calor en la llama del mechero o por acción del
alcohol.
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Desarrollo:
1. Sobre un portaobjetos limpio y seco, se coloca una gota de solución salina
fisiológica o una gota de agua.
2. Se esteriliza el filamento del asa de siembra a la llama del mechero y se deja
enfriar. Se toma una pequeña cantidad de un cultivo bacteriano y se suspende
en la gota de agua o solución salina del portaobjetos. También puede ser
utilizada una aguja de inoculación estéril para tomar la muestra bacteriana.
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3. Se deja secar al aire y luego se fija a la llama del mechero, pasándolo de 4 a 5
veces sobre esta; teniendo cuidado de no calentar demasiado pues el
portaobjetos puede romperse, ya que no es de vidrio pyrex.
4. También se puede realizar el frotis del material directo de las muestras clínicas
(exudados faríngeos, heridas, etc.). Se hace rodar el hisopo con que se tomó la
muestra sobre el portaobjetos limpio y se fija con calor para proceder a la tinción:
a) Cubrir el frotis bacteriano con cristal violeta durante 1 minuto. Enjuagar con agua.
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b) Aplicar el yodo gram o lugol y dejarlo reaccionar durante 1 minuto. Escurrir.
c) Ahora, decolorar con solución de alcohol-acetona, agregando gota a gota en el
portaobjetos inclinado sobre el fregadero o tarja, hasta que deje de salir
colorante, 5-15 segundos. Enjuagar.
d) Finalmente cubrir el frotis son la solución de safranina y dejarla actuar durante
30 segundos. Lavar el exceso de colorante y dejar secar al aire.
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e) Coloca aceite de inmersión al frotis seco y teñido para observarlo al microscopio,
con el objetivo 100X.
f) Realiza esquemas de lo observado e indica la forma, agrupación y característica
tintorial de los microorganismos observados.
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Reporte de lo observado:
Forma
Exudado faríngeo
Coprocultivo
Urocultivo
Exudado faríngeo
Agrupación
Bacilos
Bacilos
Cocos
Bacilos
Estreptobacilos
Estafilococos
Coprocultivo
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Característica
tintorial
Gram +
Gram Gram -
Urocultivo
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Cuestionario:
1. ¿Por qué es necesario fijar el frotis antes de teñirlo?
R= Para poder aplicar los métodos de tinción que permiten la observación al
microscopio de las bacterias sin que la muestra sea arrastrada en los lavados.
Además, la fijación hace que las bacterias queden inactivadas y adheridas al vidrio
alterando lo menos posible la morfología y las posibles agrupaciones de células que
pudiera haber.
2. ¿Puede una bacteria Gram positiva teñirse de Gram negativa? ¿Por qué?
R= En algunas ocasiones, cuando son cultivos viejos de bacterias Gram positivas y
llegan a perder capas de peptidoglicano, (siendo éste el principal componente que
permite diferenciarlas con la pared de las Gram negativas) por lo que su pared llega
a teñirse como Gram negativos
3. ¿Qué otras técnicas de tinción son utilizadas comúnmente en el laboratorio
de bacteriología? ¿En qué casos se utilizan?
Ziehl-Neelsen: Se emplea para poder distinguir aquellos microorganismos cuya
coloración resiste la acción de alcoholes y ácidos suaves (ácido-alcohol resistentes)
de otros que no resisten la decoloración (no ácido-alcohol resistentes).
Tinción de Wright: Es una técnica que se emplea generalmente para la
diferenciación de elementos celulares de la sangre y es clasifi cada como una tinción
policromática, dado que puede teñir compuestos ácidos o básicos presentes en una
célula.
Tinción negativa: Un método sencillo de tinción para bacterias, que además es un
claro caso de cromofobia y que por lo tanto funciona aun cuando los métodos de
tinción positiva fallan.
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Tinción indirecta: Se denomina de este modo a las tinciones que hacen uso de un
mordiente. Un mordiente habitual es el ácido tánico.
Tinción directa: Hablamos de tinción directa cuando el colorante interacciona
directamente con el sustrato, sin otro tratamiento previo.
Tinción rodamina-auramina: Los ácidos micólicos de las paredes celulares de las
micobacterias poseen afinidad para los fluorocromos auramina y rodamina. Estos
colorantes se fijan a las bacterias, que aparecen de color amarillo o naranja brillante
contra un fondo verdoso. El permanganato de potasio, empleado como contraste,
evita la fluorescencia inespecífica. Todos los microorganismos ácido-alcohol
resistentes, incluyendo los esporozoarios parásitos, se tiñen con estos colorantes.
Tinción naranja de acridina: El fluorocromo naranja de acridina se une al ácido
nucleico ya sea en su forma nativa o desnaturalizada. En algunas preparaciones de
naranja de acridina, el color de la fluorescencia puede variar, dependiendo del pH y
de la concentración. El naranja de acridina ha sido empleado como colorante vital,
que da una fluorescencia verde si el microorganismo está vivo y roja si está muerto.
4.- ¿En que se basa la tinción de Gram? ¿De qué color se tiñen las
bacterias Gram (+) y Gram (-)?
La técnica se basa en aplicar una serie de colorantes a una muestra de cualquier
origen, que contenga bacterias no identificadas. Los colorantes tiñen la pared de las
bacterias y, tras unos minutos, se realiza un lavado del colorante. Después de eso
puede que el colorante permanezca en la pared bacteriana o que se haya ido.
Las bacterias Gram (+) se tiñen de color morado a purpura
Las bacterias Gram (-) se tiñen de color rosa a rojo
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Conclusiones:
En esta práctica obtuvimos un nuevo conocimiento referente a un tema ya visto en
clase (Tinción de Gram). Aprendimos en que aspectos se basaba la tinción y en
base a una breve explicación dada por el docente, de manera autónoma nosotros
aplicamos esos procedimientos captado. Así mismo, volvimos a poner en práctica
el manejo y uso del microscopio, ya que este nos permitía ver las bacterias que
fueron teñidas.
Por último, gracias a esta tinción en el microscopio identificamos las bacterias
claramente, logramos a preciar su forma (cocos, bacilos, espirilos, etc.) de igual
manera logramos ver de qué color se tiño su pared celular, la cual nos permitía
clasificarlas en Gram (+) o Gram (-).
Perspectiva:
Consideramos que aprender a realizar una tinción de Gram, con el procedimiento
adecuado es de suma importancia, en el área que deseamos enfocarnos, ya que
gracias a que la técnica tiñe las bacterias esto nos da la posibilidad de determinar
el tipo de antibiótico, así como su eficacia para contrarrestar dicha bacteria
dependiendo si es Gram positiva o negativa.
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Bibliografía:
❖Brock. (1999). Biología de los microorganismos. 8aEdición. Ed. PRENTICE HALL.
España.
❖Brooks, MD., Geo.F, Butel, PhD Janet S., Morse PhD Stephen A. (2002).
Microbiología Médica de Jawetz, Melnick y Adelberg. Manual Moderno. México D.F.
❖Gamazo, C., López GoñiI, y Díaz, R. (2005) .Manual práctico de microbiología (3ª
ed). España : Masson.
❖González, J. (2003). Técnicas y métodos de Laboratorio Clínico. 2a Edición.
Masson. España.
❖Henry, B. (2007). El laboratorio en el Diagnóstico Clínico. 20aEdición. Marbán.
España.
❖Koneman, Elmer W., Allen, Stephen D., Dowel (h) V.R., Sommers Herbert M.
(1991). Diagnóstico Microbiológico. (3ª. reimp). México D.F. :Médica Panamericana.
❖Levinson, Warren, y Jawetz, E. (2001). Microbiología e inmunología (3ª.reimp).
México D.F.:Manual Moderno.
❖Mac Faddin. (1993). Pruebas Bioquímicas para la identificación de bacterias de
importancia clínica.
❖Morrison, K. (1999). Laboratorio Clínico y pruebas de diagnóstico. México D.F.
❖Prieto, S., Amich, S. y Salve, M. (1993). Laboratorio Clínico Principios Generales.
España.
❖Romero Cabello. (1998). Microbiología y Parasitología humana. 1aEdición. Ed.
Médica Panamericana. México. D.F.
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❖Ruiz, G. (2005). Fundamentos de interpretación clínica de los exámenes de
laboratorio. México: D.F. Médica Panamericana.
❖Tay Zavala, J. et al., (1998). Microbiología y parasitología médica (2ª ed). México.
❖Terrés, A. (2002). Clínica y laboratorio: ciencia y tecnología (2ª ed). México D.F.:
Graphimedic S. A. de C.V.
 Tinción de Gram. (s.f.). Recuperado de https://www.salud.mapfre.es/pruebasdiagnosticas/otras-pruebas-diagnosticas/tincion-de-gram/
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 Las
Bacterias
Gram
Positivas.
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Recuperado
de
https://okdiario.com/curiosidades/bacterias-gram-positivas-697551
 Métodos y Técnicas de Tinción Por Quistián Hylary. (s.f.). Recuperado de
http://microbiologia3bequipo5.blogspot.com/2014/10/metodos-y-tecnicas-detincion.html
 Tinción de Gram. (s.f.). Recuperado de https://www.webconsultas.com/pruebasmedicas/tincion-de-gram-13399
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