clart papillomavirus humano

CLART® HPV4
GENOTIPADO DE
PAPILLOMAVIRUS HUMANO
MEDIANTE
IDENTIFICACIÓN GENÓMICA
PARA DIAGNÓSTICO IN VITRO
1
CLART® HPV4
CLART® PAPILLOMAVIRUS HUMANO 4 o CLART® HPV4 está bajo la protección de 2
familias de patentes correspondientes a las solicitudes de Patente Internacional PCT
WO2007017699 y WO2011116797. Dichas familias comprenden miembros que han
entrado en fase nacional y regional en distintos territorios, entre los cuales se incluyen
patentes concedidas en España, Alemania, Dinamarca, Francia, Italia, Suecia, Rusia,
Méjico, China e Israel, y solicitudes de patente en tramitación en Brasil y Canadá.
CLART®, CLART-Strip®, CAR®, SAICLART® y AUTOCLART® son Marcas Registradas por
GENOMICA.
GENOMICA, S.A.U.
Parque Empresarial Alvento, Edificio B
Calle Vía de los Poblados, 1 – 1ª planta
28033 Madrid, España
www.genomica.com
Versión 3
Junio 2015
2
ÍNDICE:
1. GLOSARIO DE TÉRMINOS
2. DESCRIPCIÓN DEL PROTOCOLO
3. COMPONENTES Y CONSERVACIÓN DEL KIT
3.1. Reactivos de amplificación
3.2. Reactivos de visualización
3.3. Otros componentes
4. MATERIAL REQUERIDO Y NO SUMINISTRADO
4.1. Reactivos y material
4.2. Equipos
5. RECOMENDACIONES Y PROCEDIMIENTOS DE MANIPULACIÓN
5.1. Recomendaciones generales
5.2. Precauciones para la visualización
6. TOMA DE MUESTRAS
6.1. Frotis
6.2. Suspensiones celulares
7. PROTOCOLO DE TRABAJO
7.1. Procesamiento de la muestra sin necesidad de extracción del ADN.
7.2. Reacción de amplificación
7.3. Visualización del producto amplificado en CLART-Strip® (CS)
7.3.1. Visualización manual.
7.3.2. Visualización en autoclart®
8. LECTURA DE RESULTADOS
9. INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
10. ESPECIFICACIONES TÉCNICAS Y DE FUNCIONAMIENTO
11. BIBLIOGRAFÍA
12. TABLAS
3
1.
GLOSARIO DE TÉRMINOS
Atención, ver instrucciones de uso
Fecha de caducidad
Producto sanitario para Diagnóstico In Vitro
Lote
25ºC
Conservar a temperatura ambiente
20ºC
8ºC
Conservar entre 4 ºC y 8 ºC
4ºC
-18ºC
Conservar entre –30 ºC y –18 ºC
-30ºC
4
2.
DESCRIPCIÓN DEL PROTOCOLO
El kit está basado en la amplificación de fragmentos específicos del genoma vírico y su
posterior hibridación con sondas específicas para cada tipo de PVH. CLART®
Papillomavirus humano 4 es capaz de detectar infecciones y coinfecciones de hasta 35
genotipos en un único tubo, lo que conlleva un amplio número de ventajas:
 Su alta sensibilidad permite la detección de cantidades mínimas de ADN vírico sin
necesidad de una extracción compleja.
 La elevada especificidad, al utilizar una secuencia correspondiente a una región
altamente conservada dentro del genoma vírico y sondas de captura específicas
para cada tipo de PVH.
 Fácil de estandarizar en un laboratorio hospitalario.
 Rapidez, se obtienen los resultados de los análisis en 4 h.
CLART® Papillomavirus humano 4 detecta la presencia de los 35 virus de PVH (6, 11, 16,
18, 26, 31, 33, 35, 39, 40, 42, 43, 44, 45, 51, 52, 53, 54, 56, 58, 59, 61, 62, 66, 68a y b, 70,
71, 72, 73, 81, 82, 83, 84, 85 y 89) con mayor importancia clínica, en distintos tipos de
muestras humanas (frotis, suspensiones celulares y muestras en medio de captura de
híbridos).
La detección se lleva a cabo mediante la amplificación de un fragmento de unos 450 pb
dentro de la región L1 del virus por tratarse de una secuencia que está altamente
conservada entre los distintos tipos de PVH. Sin embargo, esta región presenta
suficientes variaciones como para poder diferenciar cada tipo de virus con sondas
específicas. De esta manera, se asegura la especificidad de la detección.
La detección del producto amplificado por PCR se lleva a cabo mediante una nueva
plataforma tecnológica basada en microarrays de baja densidad: CLART® (Clinical Arrays
Technology). La plataforma se fundamenta en un principio muy sencillo pero a la vez
muy cómodo y eficaz que consiste en incluir un microarray en el fondo de un pocillo de
placa microtiter, lo que simplifica todo el proceso de hibridación y visualización frente a
los sistemas de arrays clásicos. La Figura 1 muestra un CLART-Strip® o CS de 8 pocillos.
Figura 1. Plataforma CLART-Strip® en forma de tira de 8 pocillos.
5
El sistema de detección con CLART® Papillomavirus humano 4 se basa en la precipitación
de un producto insoluble en aquellas zonas del microarray en las que se produce la
hibridación de los productos amplificados con las sondas específicas. Durante la PCR, los
productos amplificados se marcan con biotina. Después de la amplificación, estos
productos se hibridan con sus respectivas sondas específicas que están inmovilizadas en
zonas concretas y conocidas del microarray, tras lo que se incuba con un conjugado de
estreptavidina-peroxidasa. El conjugado se une a través de la estreptavidina con la
biotina presente en los productos amplificados (que a su vez se encuentran unidos a sus
sondas específicas) y la actividad peroxidasa provoca la aparición de un producto
insoluble en presencia del sustrato o-dianisidina, que precipita sobre las zonas del
microarray en las que ocurre la hibridación (Figura 2).
6
Productos marcados
Sondas en el
array
Biotina
Hibridación
Incubación con
conjugado
Conjugado
Precipitación específica
Reacción de revelado
Figura 2: Esquema del método de visualización. Las sondas, inmovilizadas sobre la superficie, capturan sus
productos amplificados complementarios marcados con biotina. A través de la biotina, se une el conjugado, en
este caso estreptavidina-HRP (peroxidasa de rábano, HorseRadish Peroxidase). El sustrato o-dianisidina por la
acción de la HRP, produce un precipitado sobre la zona en la que se produce la hibridación.
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3. COMPONENTES Y CONSERVACIÓN DEL KIT
El kit CLART® Papillomavirus humano 4 contiene suficientes reactivos para el análisis de
16, 48 ó 96 muestras clínicas. Los reactivos incluidos en el kit se han agrupado en varias
cajas, dependiendo de la temperatura a la que se han de conservar. Todos los reactivos
son estables en las condiciones indicadas de conservación hasta la fecha de caducidad
indicada.
3.1. Reactivos de amplificación
Los reactivos de amplificación se envían a -20 ºC. Son los siguientes:
Tubos de Amplificación contienen 45 µl de mezcla de reacción. Están listos para su uso y
deben mantenerse a -20ºC. Sólo se deben descongelar sobre hielo el número preciso de
tubos de amplificación que se vayan a procesar, conservando el resto de los tubos a la
temperatura indicada.
Nota: En la caja del kit se incluye un indicador adhesivo e irreversible de temperatura;
la aparición de un color rojizo en la ventana de visualización indica que en algún
momento los productos han sobrepasado la temperatura de conservación de –20oC y
no deben utilizarse.
3.2. Reactivos de visualización
El kit de visualización se envía a 4 ºC.
¡ADVERTENCIA!: Una vez recibido el kit, las tiras CLART-Strip® (CS) deben conservarse a
temperatura ambiente.
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



Tiras CS (incluyendo las sondas específicas). Se suministran en un sobre
termosellado. Conservar siempre cerrado (máx. 25ºC), a temperatura
ambiente y protegido de la luz.
SH (Solución de Hibridación). Conservar a 4ºC
DC (Diluyente de Conjugado). Conservar a 4 ºC.
CJ (Conjugado). Conservar a 4 ºC.
RE (Solución de Revelado). Conservar a 4 ºC y protegido de la luz.
TL (Tampón de Lavado). Conservar a 4 ºC.
Soporte y tapa para tiras de 8 pocillos.
3.3. Otros componentes
Para la captura y posterior procesamiento de la imagen se necesitan los siguientes
componentes:

Lector CAR® (CLINICAL ARRAY READER): permite la lectura e interpretación
automática de hasta 12 tiras de arrays CS, es decir, de hasta un máximo de
96 muestras.
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

SAICLART®: software desarrollado por GENOMICA para el procesamiento de
imágenes.
Software específico del kit CLART® HPV4 diseñado y validado por
GENOMICA.
Figura 3. CAR® (CLINICAL ARRAY READER)
4.
MATERIAL REQUERIDO, NO SUMINISTRADO
4.1. Reactivos y material

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






Agua destilada.
Etanol 96%
Guantes desechables.
Puntas de pipeta con filtro o desplazamiento positivo.
Recipiente con hielo picado.
Tubos tipo Eppendorf de 1,5 ml autoclavados.
Gradillas para tubos de 1,5 ml.
Soporte para tubos de 0,5 ml/0,2 ml.
Suero salino (0.9% NaCl).
4.2. Equipos

autoclart® (figura 4) Este equipo se necesita para la visualización automática El
autoclart® permite el procesado automático de la fase de visualización de hasta
12 tiras de arrays CS, es decir, de hasta un máximo de 96 muestras.
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Figura 4. autoclart®
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

Microcentrífuga.
Termociclador.
Cabina de flujo laminar para el laboratorio de extracción- adición de muestra
Tres micropipetas ajustables entre 1-20 µl, 20-200 µl y 200-1000 µl para el
laboratorio de extracción (Pre-PCR)
Tres micropipetas ajustables entre 1-20 µl, 20-200 µl y 200-1000 µl para el
laboratorio de visualización ( Post-PCR)
Termobloque con agitación ajustable a 25°C, 30°C y 65 ºC. Compatible con placas
de 96 pocillos.
Vortex.
Sistema de vacío (opcional).
5. RECOMENDACIONES Y PROCEDIMIENTOS DE MANIPULACIÓN
¡Muy importante para evitar contaminaciones! Leer detenidamente antes de comenzar
la técnica.
5.1. Recomendaciones generales:
1. La técnica se debe realizar en dos áreas separadas físicamente, para evitar la
contaminación de las muestras con el producto amplificado anteriormente. Cada una de
las áreas debe tener su propio material de trabajo identificado (pipetas, puntas, tubos,
gradillas, guantes, etc.) y nunca debe salir de cada una de ellas.
1. Área pre-PCR: En este área se hace la preparación de las muestras y la adición del
material a los tubos de amplificación. Dicha preparación de las muestras debe
realizarse dentro de una cabina adecuada y con las medidas de esterilización más
amplias posibles para evitar contaminaciones.
2. Área post-PCR: En esta área se lleva a cabo la amplificación y la visualización del
producto amplificado. El material de esta área nunca ha de entrar en contacto con
el del área de extracción. Evitar ir al área de pre-PCR después de haber estado
trabajando en el área de visualización.
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2. Utilizar guantes en todo momento. Es recomendable cambiarse de guantes con cierta
frecuencia y obligatoriamente cada vez que se empieza a trabajar en las áreas antes
descritas. Siempre hay que utilizar guantes nuevos cuando se añada el ADN a los tubos
de amplificación.
3. Limpiar las zonas de trabajo (poyatas, campanas, gradillas, pipetas) en profundidad
con lejía diluida al 10% cada vez que se procese una tanda de muestras, y
obligatoriamente después de una contaminación. En el caso de termocicladores y
termomixers, se recomienda limpiarlos antes y después de su uso, en estas mismas
condiciones.
4. Emplear siempre puntas con filtro y pipetas de desplazamiento positivo para evitar
contaminaciones debidas a la micropipeta. Se debe trabajar con un juego de pipetas para
cada área.
5. Emplear material de laboratorio desechable y autoclavado.
6. Nunca mezclar reactivos de dos tubos diferentes, aunque sean del mismo lote.
7. Cerrar los tubos de reactivos inmediatamente después de su uso para evitar
contaminaciones.
8. Desechar la punta de la micropipeta tras cada pipeteo.
9. GENOMICA no se hace responsable de los resultados obtenidos con el kit si se
emplean otras muestras distintas a las indicadas.
5.2. Precauciones para la adición del material al tubo de amplificación.
1. Utilizar guantes en todo momento.
2. Limpiar las superficies de trabajo de la cabina con lejía diluida al 10%.
3. Encender el flujo laminar y la luz UV al menos 20 minutos antes de comenzar la
extracción. Apagar la luz UV cuando se esté trabajando dentro de la cabina.
4. La preparación de las muestras debe hacerse dentro de la cabina.
5.3 Precauciones para la visualización
1. Evite que la punta de la pipeta o del sistema de vacío toque el fondo del pocillo, ya que
podría dañarse el microarray situado en el fondo/pocillo.
2. Se recomienda añadir cada solución sobre la pared del pocillo CS, nunca directamente
sobre el fondo.
3. Es conveniente no añadir la solución SH hasta que se vayan a añadir los productos
desnaturalizados de PCR.
4. El array no debe quedar seco.
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5. Tras la incubación con la solución CJ, es muy importante lavar bien el microarray para
evitar que queden restos de éste y que reaccionen con la solución RE, produciendo un
precipitado inespecífico que pueda dar lugar a interpretaciones erróneas del resultado.
6. Evite burbujas sobre la superficie del microarray al añadir cualquiera de las distintas
soluciones.
7. Al visualizar la imagen en el lector, comprobar que aparezcan los marcadores de
posición y que no haya burbujas o manchas que interfieran en la lectura. En caso
contrario, limpiar el fondo del pocillo con un papel de celulosa impregnado de alcohol.
6. TOMA DE MUESTRAS
6.1. Frotis
Tomar la muestra con una torunda seca y estéril, de algodón o alginato, lo
suficientemente grande como para obtener una buena cantidad de muestra. No utilizar
dispositivos que produzcan el sangrado de la lesión. Volver a introducir la torunda en su
tubo sin ningún tipo de medio. Conservar la muestra a 4ºC si se va a procesar antes de 7
días o a –20ºC si se va procesar después.
6.2. Suspensiones celulares
Estas suspensiones celulares son del tipo de las utilizadas para realizar citologías
cervicovaginales de capa fina por filtración a través de membranas (ThinPrep®). Tomar la
muestra con un cepillo o espátula. Resuspender la muestra agitando el dispositivo
utilizado en un vial con medio de transporte. Desechar el dispositivo utilizado y
conservar la muestra a 4ºC hasta su procesamiento.
7. PROTOCOLO DE TRABAJO
Las muestras pueden ser procesadas directamente. A continuación se muestran los
distintos protocolos.
7.1. Procesamiento de la muestra sin necesidad de extracción de ADN
7.1.1. Torunda seca


Añadir 1.5 ml de Suero Salino. Vortexear bien. Está listo para la reacción
de amplificación.
En el caso de que la torunda haya sido extraída de manera previa, no
añadir nuevamente 1.5ml de suero salino, sino tomar 5 µl de suero
remanente para la PCR.
7.1.2. Medio de Captura de Híbridos
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




Tomar 200 µl de muestra en un tubo de 1.5 ml.
Centrifugar 1 min a 4.000rpm. Tirar el sobrenadante.
Añadir 1 ml de suero salino, vortexear bien y mezclar, centrifugar 1 min a
4.000rpm. Tirar el sobrenadante.
Añadir 1 ml de suero salino, vortexear bien y mezclar, centrifugar 1 min a
4.000rpm. Tirar el sobrenadante.
Resuspender en 50 µl de agua DNAsa free.
7.1.3. Suspension celular_ ThinPrep





Tomar 400 µl de suspensión celular en un tubo de 1.5ml.
Centrifugar 1 min a 13.000rpm. Tirar el sobrenadante.
Resuspender en 400 µl de Suero Salino.
Centrifugar 1 min a 13.000rpm. Tirar el sobrenadante.
Resuspender en 25 µl de agua DNAsa free.
7.2. Reacción de amplificación
Recomendaciones específicas para la amplificación:
 Trabajar en el área pre-PCR, siempre en campana y siguiendo las
recomendaciones del punto 5.1.
 Añadir la muestra directa procesada según el punto 7.1, siempre en campana y
siguiendo las recomendaciones del punto 5.1. Durante el proceso mantener los
tubos separados y en hielo.
1. Descongelar un Tubo de Reacción por cada muestra que se va a estudiar y
mantenerlos en hielo. No usar temperaturas superiores a 37ºC para la
descongelación.
2. Centrifugar unos segundos los Tubos de Reacción en la microcentrífuga para
que quede todo el líquido en el fondo del tubo (si no se dispone de
adaptadores de microcentrífuga para los Tubos de Reacción, se pueden utilizar
en su lugar tubos de un tamaño mayor a los que se les haya cortado la tapa).
3. Añadir 5 µl de las muestras a los Tubos de Reacción y resuspender varias veces
con la micropipeta. Dejar los tubos en el hielo.
4. Programar en el termociclador los siguientes ciclos de temperaturas:
1 ciclo
98ºC 5 min
98ºC 15 seg
55ºC 15 seg
45 ciclos
72ºC 30 seg
13
1 ciclo
72ºC 1 min
4ºC continuo hasta la recogida de tubos
6. Arrancar el programa y colocar los Tubos de Reacción en el termociclador. La
duración de la amplificación es de unas 2 horas, aunque puede variar
ligeramente dependiendo del termociclador. Esta técnica únicamente ha sido
validada en termocicladores con rampas estándar, no rápidas.
7.4. Visualización del producto amplificado en CLART-Strip® (CS)
Recomendaciones específicas antes de comenzar la visualización:
EL PROTOCOLO DESCRITO A CONTINUACIÓN SE DEBE REALIZAR SIEMPRE EN EL
ÁREA POST-PCR. NUNCA LLEVAR EL PRODUCTO AMPLIFICADO AL ÁREA DE PREPCR.
1. Encender el CAR® (CLINICAL ARRAY READER) al comienzo del proceso. La
autocalibración del equipo tarda unos minutos y es necesario además introducir
el nombre de las muestras de cada pocillo en el programa antes de la lectura.
2. Asegurarse, de que antes de comenzar la hibridación el termomixer de placas ha
estado a 65ºC al menos 30 minutos.
3. Atemperar la SH (solución de hibridación) a temperatura ambiente hasta la
desaparición de los cristales. En el caso de que siga habiendo cristales,
introducirlo en el termomixer mientras se calienta para la hibridación.
4. Preparar el tampón de lavado antes de cada ensayo, no reutilizar soluciones o
restos preparadas con anterioridad.
5. Usar una punta con filtro diferente para cada pocillo y cambiarla cada vez que se
añada un reactivo.
6. En el caso de utilizar bombas de vacío equipadas con peines de 8 puntas para
aspirar las soluciones, desechar los peines después de cada uso o
descontaminarlos con una solución de lejía diluida al 10% tras cada ensayo.
Asegurarse de que la bomba aspira adecuadamente y no deja restos en el fondo
del pocillo.
7. Aspirar completamente las diferentes soluciones dentro de los pocillos sin tocar
el array.
7.4.1. Visualización manual.
1. Desnaturalización: utilizar el termociclador para desnaturalizar los productos de
PCR. Para este paso, colocar los tubos amplificados en el termociclador e incubar
14
a 95ºC durante 10 minutos. Programar en el termociclador 15 minutos para que
una vez transcurridos los 10 minutos los amplificados sigan a 95ºC. Sacar los
tubos de la incubación a 95ºC y colocarlos inmediatamente en un recipiente con
hielo.
2. Preparación de la Solución TL diluida:
Por cada tira CS (8 pocillos en total), preparar 10 ml de solución de lavado
diluida, añadiendo 1 ml de Solución TL a 9 ml de agua destilada.
3. Prelavado de los CS: antes de empezar el ensayo es necesario lavar los tubos AT
añadiendo 200 µl de Solución TL diluida a cada pocillo del CS, resuspender de 10
a 15 veces con la pipeta multicanal, teniendo en cuenta que no se debe tocar la
superficie del array. Desechar la Solución TL diluida con pipeta o preferiblemente
con bomba de vacío. El array debe quedar sin restos de solución, aunque nunca
debe permanecer seco durante mucho tiempo. Añadir la siguiente solución
inmediatamente.
4. Hibridación: Antes de usar la Solución SH, ésta debe estar a Tª ambiente. Una vez
desnaturalizados los productos de PCR, añadir 100 µl de solución SH (evitar que
se forme espuma) a cada pocillo de los CS. Añadir 10µl de producto de PCR
desnaturalizado a cada pocillo de los CS, resuspender varias veces para que se
mezcle con la solución de hibridación, con cuidado de no tocar el cristal. Incubar
la tira cubierta con la tapa de plástico transparente en el termomixer de placa
tapado durante 30 minutos a 65º C, agitando a 550 rpm.
Tras esta incubación, sacar la placa y desechar la Solución SH con pipeta o bomba
de vacío. (Dejamos programado el termomixer de placa a 30º C y en movimiento
para su utilización posterior en el paso 6. Podemos quitar la tapa para que baje
antes la temperatura).
5. Doble Lavado: usar puntas diferentes para cada pocillo en ambos lavados. Añadir
200 µl de Solución TL diluida a cada pocillo del CS, resuspender de 10 a15 veces
con la pipeta multicanal. Desechar la Solución TL diluida con pipeta o
preferiblemente con bomba de vacío multicanal. Repetir la operación. Si llegado
a este paso, el termomixer no hubiera llegado a los 30º C, se dejan los pocillos
con esta solución hasta que el termomixer alcance la temperatura.
6. Bloqueo y conjugado: 15 minutos antes de concluir la hibridación, se debe
preparar la solución CJ diluida y mantener en hielo. Se recomienda centrifugar la
solución CJ durante 10 segundos antes de usarla. A continuación, preparar la
solución CJ diluida. Por cada CS, se añade 1 ml de solución DC y 9µl de Solución
CJ. Se debe dar un vórtex a la solución una vez diluida para homogenizar.
Desechar la Solución TL diluida sin dejar seco el array y añadir a cada pocillo del
CS 100 µl de Solución CJ diluida. Incubar durante 15 minutos exactos en el
termomixer de placa a 30º C, agitando a 550 rpm. Tras esta incubación, sacar la
placa y desechar la solución rápidamente con pipeta o bomba de vacío
15
multicanal. (Dejar programado el termomixer de placa a 25º C y en movimiento
para su utilización posterior en el paso 8. Podemos quitar la tapa para que baje
antes la temperatura).
7. Triple Lavado: añadir inmediatamente 200 µl de Solución TL diluida a cada
pocillo del CS, resuspender de 10 a 15 veces con la pipeta multicanal y desechar
la solución con la pipeta o vacío sin dejar seco el array. Repetir la operación dos
veces más.
Es muy importante que no queden restos de Solución CJ ya que ésta reaccionaría
con la Solución RE dando lugar a una señal inespecífica.
8. Revelado con Solución RE: quitar la solución TL diluida sin dejar seco el array,
añadir 100 µl de solución RE a cada pocillo del CS e incubar 10 minutos a 25 º C
en el termomixer de placa sin agitación.
¡Advertencia! Es muy importante utilizar el termomixer sin agitación
9. Desechar la Solución RE completamente con pipeta o vacío. El array debe quedar
seco
10. CAR® (CLINICAL ARRAY READER): Coloque la placa en el CAR® para tomar las
imágenes de todos los pocillos. Posteriormente serán analizadas
automáticamente.
7.4.2. Visualización en autoclart®
1. Desnaturalización: utilizar el termociclador para desnaturalizar los productos de
PCR. Para este paso, colocar los tubos amplificados en el termociclador e incubar
a 95ºC durante 10 minutos. Programar en el termociclador 15 minutos para que
una vez transcurridos los 10 minutos los amplificados sigan a 95ºC. Sacar los
tubos de la incubación a 95ºC y colocarlos inmediatamente en un recipiente con
hielo.
2. Encender el equipo autoclart® y seguir las instrucciones que aparecen en la
pantalla:
3. Cerrar la puerta y pulsar el mando.
4.
Seleccionar Run en el menú de inicio.
5. Seleccionar el tipo de ensayo a realizar: HPV 4.
6. Seleccionar el pocillo de la tira en el que se desea comenzar: A1 o E1, en el caso
de que se reutilice un CS donde se han procesado previamente los 4 primeros
arrays.
16
7. Seleccionar el número de muestras. Con autoclart® se pueden procesar desde 4
a 96 muestras. El número de muestras debe ser un múltiplo de 4.
8. Confirmar que el número de muestras y el pocillo de inicio (A1 o E1) es correcto.
9. Colocar el rack completo de puntas en su posición correspondiente.
10. Chequear que el contenedor de puntas y el contenedor de desecho de reactivos
están vacíos.
11. Llenar la botella de agua destilada con 250 ml de agua destilada.
12. Añadir los volúmenes de reactivos que autoclart® solicita en función del número
de muestras que se quieran procesar:
TL (Tampón de lavado). El volumen que aparece en la pantalla, indica la cantidad
de TL diluido necesaria. Para preparar el TL diluido realizar una dilución 1:10 del
TL en agua destilada.
SH (Solución de Hibridación). Añadir el volumen de solución de hibridación
atemperada que aparece en la pantalla.
CJ (Conjugado). Se recomienda centrifugar el CJ durante 10 segundos antes de
usarse. Cada 1 ml de solución CJ diluida que indique la pantalla se prepara
añadiendo 1 ml de DC (Diluyente de conjugado) y 9µl de Solución CJ. Se debe dar
un vórtex a la solución una vez diluida para homogenizar.
RE (Revelado). Añadir el volumen de revelado indicado en la pantalla.
13. Cerrar la puerta y pulsar el mando para comenzar.
El equipo realizará el pre-lavado de los CS y la adicción de la solución de
hibridación, a continuación emitirá un pitido para indicar que es el momento de
la adicción de las muestras, el pitido cesará cuándo el usuario abra la puerta del
equipo.
14. Para añadir las muestras sacar los CS del autoclart® y adicionar 10µl de producto
de PCR desnaturalizado a cada pocillo de los CS, resuspender varias veces para
que se mezcle con la solución de hibridación, con cuidado de no tocar el fondo
del pocillo. A continuación introducir de nuevo la placa en el autoclart® y pulsar
el mando para que continúe el proceso de visualización.
15. Cuando ha terminado el proceso de visualización, el autoclart® emite un pitido
hasta que el usuario abre la puerta del equipo para sacar los CS y proceder a la
lectura en el CAR®.
16. CAR® (CLINICAL ARRAY READER): Coloque la placa en el CAR® para tomar las
imágenes de todos los pocillos. Posteriormente serán analizadas
automáticamente.
17
8. LECTURA DE RESULTADOS
El procesamiento de los datos obtenidos a partir de cada uno de los análisis, se realiza de
forma automática. El equipo de lectura y análisis presentará un informe en el que se
indican los resultados.
9. INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
Uno de los inconvenientes de la detección por amplificación genómica son los falsos
negativos debidos, bien a una calidad inadecuada del ADN de la muestra (por toma de
cantidad insuficiente de muestra, por degradación del ADN debida a una incorrecta
conservación o por pérdida del ADN de la muestra durante su extracción), o bien a la
presencia de inhibidores de la ADN polimerasa en las muestras en las que se quiere
analizar la presencia del virus (hemoglobina, restos de parafina, sales, etc). Con el kit
CLART® Papillomavirus humano 4 se han eliminado estos falsos negativos gracias a la
introducción de dos controles internos en el mismo tubo de reacción donde se analiza la
muestra.
Cada tubo de amplificación contiene los siguientes oligos:



Un par de oligonucleótidos que amplifican un fragmento del gen CFTR humano.
Éste es el control de extracción de ADN genómico o control del ADN del
paciente.
Un par de oligonucleótidos que amplifican un plásmido modificado incluido en el
tubo de amplificación y que se usa como control de amplificación de la reacción
de PCR.
Oligonucleótidos específicos de PVH.
El tubo de PCR se ha diseñado para favorecer la amplificación de PVH frente a la de los
dos controles. En relación a estos últimos, la amplificación del control de ADN genómico
prima sobre la del control de la reacción de amplificación.
La razón de este diseño es:
El control interno de ADN genómico es necesario para la confirmación de un verdadero
resultado negativo, ya que nos informa de la presencia de ADN del paciente en la
muestra, aunque no haya habido amplificación de ningún tipo de VPH.
El control interno de amplificación nos permitirá distinguir entre los casos de inhibición
de la reacción de PCR y aquéllos en los que no se encontró ADN en la muestra.
En ciertas condiciones (ej. cuando hay un elevado número copias de un virus de PVH o
cuando la muestra presenta varios tipos de PVH a la vez) puede suceder que no se
amplifiquen los dos controles o alguno de ellos y aparezca una lectura de: SIN SEÑAL.
Teniendo en cuenta estas observaciones, podemos considerar las siguientes
interpretaciones de los resultados de lectura:
18
√. POSITIVO
CONTROL
GENÓMICO
√
CONTROL DE
AMPLIFICACIÓN
√
x.NEGATIVO
√
√
RESULTADO para algún genotipo
INTERPRETACIÓN
POSITIVO
NEGATIVO
Otros resultados validos:
RESULTADO
para algún
gentipo
√ POSITIVO
√.POSITIVO
x. NEGATIVO
CONTROL
GENÓMICO
CONTROL DE
AMPLIFICACIÓN
RESULTADO VALIDO
INTERPRETACIÓN
√
SIN SEÑAL
POSITIVO
SIN SEÑAL
SIN SEÑAL
POSITIVO
√
SIN SEÑAL
NEGATIVO
Aunque el control de amplificación se
muestre SIN SEÑAL. Esto se debe al
efecto de la competencia entre los
tres tipos de ADN.
Aunque ambos controles se muestren
SIN SEÑAL. Esto se debe, bien a que
hay una gran cantidad de copias de
virus, o a un elevado número de
genotipos de VPH presentes en la
muestra.
Éste se considera un RESULTADO
VÁLIDO. En este caso podemos decir
que se trata de un verdadero
resultado negativo.
Resultados considerados como un RESULTADO NO VÁLIDO:
RESULTADO
para algún
gentipo
x.NEGATIVO
x. NEGATIVO
CONTROL
GENÓMICO
SIN SEÑAL
SIN SEÑAL
CONTROL DE
AMPLIFICACIÓN
√
SIN SEÑAL
INTERPRETACIÓN
NO HAY ADN
PCR INHIBIDA
RESULTADO
NO VALIDO
SOLUCIÓN
Se debe a que
no hay ADN en
la muestra.
Repita la técnica desde la
extracción o bien pedir al
facultativo una nueva toma
de muestra al paciente.
Verifique que en las
muestras o en el material
genético extraído no hay
presencia de ninguna de
estas sustancias. En la
mayoría de los casos se
recomienda repetir la
extracción o, si esto no es
posible, pedir al facultativo
una nueva toma de
muestra al paciente.
Esto se debe a
que algunas
sustancias
pueden inhibir
la reacción de
PCR al
perjudicar la
actividad de la
enzima ADN
polimerasa.
19
Existen dos posibilidades que dan lugar a un resultado de VIRUS NO CONCLUYENTE:

En aquellos casos en que las tres réplicas de una sonda sean muy distintas
entre sí.

En coinfecciones para aquellos virus que se encuentren en el límite de
detección de la técnica.
10. ESPECIFICACIONES TÉCNICAS Y DE FUNCIONAMIENTO
CONTROL DE INTERFERENCIAS CONOCIDAS:
Existen sustancias que pueden interferir en funcionamiento del kit CLART®
Papillomavirus humano 4. Principalmente, son sustancias que inhiben la ADN polimerasa
y, por tanto, la reacción de amplificación. Las interferencias más conocidas son:
1 Presencia de hemoglobina y exceso de detritos celulares. Al no realizarse una
purificación de la muestra como tal, pueden producirse inhibiciones por exceso de
hemoglobina o detritus que añadidos al tubo de amplificación provoquen una inhibición.
2 Presencia de ácido acético o iodina en la muestra a analizar. Si la toma de muestra
para el análisis con el kit CLART® Papillomavirus humano 4 se realiza después de una
colposcopia, esta muestra puede contener ácido acético o iodina, que inhiben la PCR.
Para evitar esto, realizar la toma de muestra para el análisis con CLART® Papillomavirus
humano 4 previamente a la colposcopia.
3 Utilización de muestras no adecuadas. El análisis de cualquier otro tipo de muestra
clínica distinta a las indicadas en el manual del kit CLART® Papillomavirus humano 4, así
como una toma incorrecta de las muestras, puede conllevar que el resultado del análisis
no sea concluyente. Por ejemplo, si la torunda ha sido incluida en algún tipo de medio, la
PCR puede resultar inhibida.
4 La conservación inadecuada de las muestras puede influir en el resultado del
análisis. Si las muestras se someten a condiciones que puedan provocar una degradación
del ADN que contienen, el resultado del análisis será de muestra inhibida por falta de
amplificación del control del ADN de la muestra.
ESPECIFICACIONES TÉCNICAS:
1. Parámetros Analíticos:
 Sensibilidad analítica. La sensibilidad analítica se determinó mediante la
amplificación de los fragmentos específica de la región L1 para los diferentes genotipos
de VPH clonados en plásmidos recombinantes (columnas 102 copias y 10 copias). La
sensibilidad para los tipos indicados en la tabla en la columna (50 copias) también fue
determinada a partir de la detección de muestras del programa de evaluación de
20
herramientas de laboratorio para el tipado del PVH, de la organización mundial de la
salud OMS (2013 WHO HPV LabNet Proficiency Study of HPV DNA Typing).
GENOTIPO VPH
6
11
16
18
26
31
33
35
39
45
51
52
53
56
58
59
66
68a
68b
82
2
10 copias
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
50 copias
(2013 WHO
HPV)
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
100%
10 copias
100%
80%
80%
80%
100%
100%
80%
60%
80%
80%
80%
100%
100%
80%
60%
80%
100%
80%
100%
N=110
Tabla 1. Sensibilidad analítica del kit CLART® HPV4 kit
Dado el significado clínico de los genotipos de VPH 16 y 18, se han incluido los datos de
sensibilidad para esos tipos obtenidos a partir de la detección de muestras del programa
de evaluación de herramientas de laboratorio para el tipado del VPH de la organización
mundial de la salud OMS, además en la tabla 1 se muestra la sensibilidad de otros tipos
incluidos en dicho panel. Este programa compara y evalúa las diferentes metodologías de
detección de VPH comerciales disponibles para una efectiva implementación y
monitorización de los programas de vacunación para VPH. Basado en este programa, se
considera una herramienta como apta para el diagnóstico si detecta al menos 50
unidades internacionales (equivalentes genómicos o copias) de los tipos de VPH 16 y 18,
hecho demostrado con CLART® Papillomavirus humano 4.
2. Parámetros de utilidad diagnóstica.
Para determinar los parámetros de utilidad diagnóstica del nuevo kit CLART®
Papillomavirus humano 4, se han realizado estudios comparativos frente a la versión
HPV2.
Dichos estudios se realizaron en colaboración con cuatro hospitales españoles.
21




Servicio de Microbiología del Hospital Universitari Germans Trias i Pujol
de Badalona.
Unidad de Virología del Hospital Universitario Virgen de la Arrixaca.
Departamento de Anatomía Patológica del Hospital Universitario Clínico
San Carlos.
Departamento de Anatomía Patológica del Hospital Universitario Marqués
de Valdecilla.
Se analizaron 419 muestras de las cuales 88 fueron torundas secas, 101 muestras en
medio de captura híbrida y 232 citologías líquidas tipo ThinPrep.
En la siguiente tabla se ilustran los datos de sensibilidad y especificidad diagnósticas
para los tipos de VPH detectados por el kit CLART® Papillomavirus humano 4 desde
muestra directa sin necesidad de extracción de ADN:
Tipo
Tipo 6
Tipo 11
Tipo 16
Tipo 18
Tipo 31
Tipo 33
Tipo 35
Tipo 39
Tipo 40
Tipo 42
Tipo 43
Tipo 44
Tipo 45
Tipo 51
Tipo 52
Tipo 53
Tipo 54
Sensibilidad
100,0
83,3
100,0
100,0
93,8
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
92,6
97,1
100,0
Especificidad
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
99,5
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
Tipo
Tipo 56
Tipo 58
Tipo 59
Tipo 61
Tipo 62
Tipo 66
Tipo 68
Tipo 70
Tipo 71
Tipo 72
Tipo 73
Tipo 81
Tipo 82
Tipo 83
Tipo 84
Tipo 89
Sensibilidad
100,0
93,3
95,0
100,0
87,0
100,0
100,0
81,8
100,0
100,0
100,0
100,0
90,0
100,0
100,0
100,0
Especificidad
99,7
100,0
99,7
100,0
100,0
99,8
99,8
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
100,0
99,5
Tabla 2. Parámetros diagnósticos de la técnica CLART® HPV4.
11. BIBLIOGRAFÍA
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23
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Beijing, P.R.China."
Verdasca, N., A. Coelho, F. Ribeira, A. Pista.: “Detection of VPH ADN from cervical
samples in a group of portuguese women: comparison of two VPH genotyping assays”.
23rd International papillomavirus conference and clinical workshop. September 2006.
Praga.
24
12. TABLAS
En la siguiente tabla se indica el riesgo oncogénico de los PVH que se detectan en este kit.
TIPO
RIESGO
ONCOGÉNICO *
TIPO
RIESGO
ONCOGÉNICO *
PVH 6
Bajo Riesgo
PVH 56 Alto Riesgo
PVH 11 Bajo Riesgo
PVH 58 Alto Riesgo
PVH 16 Alto Riesgo
PVH 59 Alto Riesgo
PVH 18 Alto Riesgo
PVH 61 Bajo Riesgo
PVH 26 Alto Riesgo Probable
PVH 31 Alto Riesgo
PVH 62 Bajo Riesgo
PVH 66 Alto Riesgo
PVH 33 Alto Riesgo
PVH 35 Alto Riesgo
PVH 68 Alto Riesgo
PVH 39 Alto Riesgo
PVH 71 Bajo Riesgo
PVH 40 Bajo Riesgo
PVH 72 Bajo Riesgo
PVH 42 Bajo Riesgo
PVH 43 Bajo Riesgo
PVH 73 Alto Riesgo Probable
PVH 81 Bajo Riesgo
PVH 44 Bajo Riesgo
PVH 82 Alto Riesgo Probable
PVH 45 Alto Riesgo
PVH 83 Bajo Riesgo
PVH 51 Alto Riesgo
PVH 84 Bajo Riesgo
PVH 52 Alto Riesgo
PVH 85 Bajo Riesgo
PVH 53 Alto Riesgo Probable
PVH 89 Bajo Riesgo
PVH 70 Bajo Riesgo
PVH 54 Bajo Riesgo
* Clasificación del riesgo oncogénico según:
Bouvar d V, Baan R, Straif K, Grosse Y, Secretan B, El Ghissassi F et al.
A review of human carcinogens -Part B: biological agents. Lancet Oncol 2009:10( 4):321 322
25