ESTUDIOS DE LA INFLUENCIA DE ANTIOXIDANTES EN ACEITES VEGETALES DURANTE LA OXIDACIÓN TÉRMICA FORZADA S. Robledo, J. Bocalón, L. Giacomelli, C. Ceballos, M. Mattea Departamento de Tecnología Química. Facultad de Ingeniería. Universidad Nacional de Río Cuarto. Ruta Nacional 36 - Km. 601 - X5804BYA Río Cuarto (Córdoba) ARGENTINA Tel. 0358 4676587 - Fax: 0358 4676246. email: [email protected] Palabras claves: compuestos lipídicos , aceites vegetales, oxidación, antioxidantes. Resumen Los compuestos lipídicos presentes en alimentos son susceptibles a sufrir deterioros a través de procesos de oxidación perdiendo en general, las características nutricionales deseables debido a la rancidez, formación de productos tóxicos, decoloración de pigmentos, pérdidas de aroma y olor, cambios en la textura y pérdidas del valor nutricional por la destrucción de vitaminas y ácidos grasos esenciales . El mecanismo de oxidación comúnmente aceptado es el de reacciones en cadena y vía radicales libres, en donde la temperatura, aire, luz y metales ejercen una marcada influencia en la reacciones de oxidación. En las actividades industriales relacionadas con la producción de alimentos, de compuestos medicinales o de cosméticos, es sumamente importante asegurar la estabilidad oxidativa de los componentes grasos y por ello se ha incrementado el uso de sustancias con poder antioxidante. Los antioxidantes son sustancias, sintéticas o naturales, usadas para preservar alimentos retardando el deterioro, la rancidez o la decoloración por oxidación. Entre los antioxidantes sintéticos que más se utilizan en alimentos se encuentran: terbutil hidroxianisol (BHA); terbutil hidroxitolueno (BHT); Propilgalato (PG) y terbutil hidroxiquinona (TBHQ), mientras que los naturales son tocoferoles, flavonas y polifenoles entre otros. En este trabajo se comparó el comportamiento al calentamiento de aceite de oliva y distintos aceites vegetales fundamentalmente soja y girasol, crudos y/o refinados. Los aceites fueron calentados en condiciones de oxidación forzada a una temperatura de 120º C ± 5º C con un flujo circulante de aire de 10 L/h. Se tomaron distintas muestras y se determinó: índice de peróxido, acidez libre, composición de ácidos grasos, tocoferoles y color. Los resultados obtenidos fueron analizados junto con la eficacia en el retraso de la deterioración de los aceites sometidos a oxidación durante el calentamiento. Como sustancias con poder antioxidantes se utilizó extractos de hojas de olivo y de tomillo. Se comparó la eficacia y los efectos sinérgicos de los compuestos naturales con los que brinda los antioxidantes BHA y BHT agregados en una proporción variable de hasta 200 ppm. Introducción Los compuestos lipídicos presentes en alimentos son muy susceptibles de sufrir deterioros a través de procesos de oxidación perdiendo en general, las características nutricionales deseables debido a la rancidez, formación de productos tóxicos, decoloración de pigmentos, pérdidas de aroma y olor, cambios en la textura y pérdidas del valor nutricional por la destrucción de vitaminas y ácidos grasos esenciales (1, 2) El mecanismo de oxidación comúnmente aceptado es el de reacciones en cadena y vía radicales libres para la oxidación térmica. Durante el proceso, se consume oxigeno generando α-hidroperóxidos (1,3), los que finalmente se descomponen dando como productos finales aldehídos, cetonas, alcoholes, ácidos orgánicos, etc. Estos compuestos, son los responsables del sabor y olor indeseables propios de la rancidez (esquema 1) (4) Esquema 1: Etapas del mecanismo de autooxidación (4) RH ⎯⎯→ R. + H. Iniciación Propagación R. + O2 ⎯⎯→ ROO. ROO. + RH ⎯⎯→ROOH +R. 2 ROOH ⎯⎯→ RO.+ ROO.+H2O Terminación R., RO. , ROO. ⎯⎯→ RR, ROR, ROOR, ROOOOR, ROOOR,+O2 (especies estables terminales) La temperatura, aire, luz, y metales (5) son factores que tienen una marcada influencia en la reacciones de oxidación. En todas las actividades industriales relacionadas con la producción de alimentos, de compuestos medicinales o de cosméticos es sumamente importante asegurar la estabilidad oxidativa de los componentes grasos. Por ello se ha incrementado el uso de sustancias con poder antioxidante. Los antioxidantes son sustancias, sintéticas o naturales, usadas para preservar alimentos retardando el deterioro, la rancidez o la decoloración debido a la oxidación (6). Entre los antioxidantes sintéticos que más se utilizan en alimentos se encuentran: terbutil hidroxianisol (BHA); terbutil hidroxitolueno (BHT); Propilgalato (PG) y terbutil hidroxiquinona (TBHQ) (esquema 2). Estos antioxidantes dado su origen sintético, son cuestionados en medicina preventiva. Por esta razón se ha incrementado substancialmente la producción de antioxidantes naturales derivados de vegetales como es el caso de alfa tocoferol (7), flavonoides y de extractos naturales obtenidos de tomillo u hojas o frutos de olivo (8 -10) entre otros. Debido el amplio uso de éstos compuestos con características antioxidantes, es importante conocer la composición y concentración de los mismos, a los fines de caracterizar su acción. Es conocida la influencia que tienen sobre la estabilidad del aceite componentes con características antioxidantes (fenoles o polifenoles), por lo que su cuantificación, tanto en aceites como en extractos naturales presenta un interés particular (11). Los principales métodos analíticos para la cuantificación de antioxidantes son cromatográficos aunque las determinaciones electroanalíticas constituyen una alternativa valedera y equivalente (12,13) para evaluar rápidamente sustancias capaces de oxidarse. Esquema 2: Antioxidantes sintéticos OH OH C (C H 3 )3 C (C H 3 ) (C H 3 )3 C C H3 O C H3 BHA BHT O OH C C (C H 3 )3 OH OH TBHQ O C H2C H2C H3 OH OH PG Materiales y métodos Las experiencias de laboratorio se diseñaron fundamentalmente para semillas de soja y girasol. Los extractos oleosos de productos naturales se obtuvieron a partir de hojas de Olivo y Tomillo con técnicas por arrastre de vapor de agua o por extracción con solvente (14,15) . El fraccionamiento y/o concentración de componentes activos se realizó mediante técnicas de separación sólido-líquido o líquido-líquido. Se evaluaron las condiciones iniciales de los aceites a través de determinaciones espectrofotométricas en la zona UV-visible, además de efectuar determinaciones colorimétricas en escalas CIE utilizándose espectrofotómetro UV-Visible Hewllet Packard 8453 y Colorímetro Lovibond® PFX 190 Se utilizaron antioxidantes sintéticos butilhidroxianisol (BHA) y butilhidroxitolueno (BHT), como modelos de respuesta para las experiencias de estabilidad oxidativa . Los aceites fueron calentados en condiciones de oxidación forzada a una temperatura de 120º C ± 5º C con un flujo circulante de aire de 10 L/h. Las determinaciones analíticas se realizaron de acuerdo a las normas de la AOCS(16) y siguiendo recomendaciones de bibliografía(17). El poder antioxidante se evaluó con técnicas de Estabilidad oxidativa (18) y electroanáliticas (4). Para los análisis estadísticos se utilizó los sofware Statistica y Stata(19-20) Resultados y discusión Se comparó el comportamiento al calentamiento de aceite de oliva y distintos aceites vegetales fundamentalmente soja y girasol, crudos y/o refinados. Los aceites fueron calentados en condiciones de oxidación forzada a una temperatura de 120º C ± 5º C con un flujo circulante de aire de 10 L/h. Bajo tales condiciones tuvo lugar la descomposición térmica y oxidativa de los mismos. Se tomaron distinta muestras y se determinó índice de peróxido, acidez, composición de ácidos grasos, tocoferoles y color (Croma). Se analizaron los resultados obtenidos junto con la eficacia en el retraso de la deterioración de los aceites durante el calentamiento. y se compara la eficacia y los efectos sinérgicos de los compuestos naturales con BHA y BHT agregados en una proporción de variable de hasta 200 ppm. En todos los aceites se observaron disminuciones de croma (C*) en función del tiempo, cuyas pendientes varían de acuerdo a la pendientes al aceite tratado. En la figura 1 se muestran los resultados para aceites de oliva. Figura 1: Gráficos de variaciones cromáticas a*,b* con el tiempo de oxidación para los diferentes aceites de oliva 130 100 70 40 CAB 10 -10 20 50 80 -10 20 50 80 -10 20 Picual Ab Picual CV 50 80 50 80 Lechin 130 100 70 40 10 -10 20 50 Arbequina 1 80 -10 20 50 80 -10 20 Manzanilla Arbequina 2 TIEMPO Con el calentamiento se observa un aumento del índice de peroxido y acidez libre y variaciones en el contenido de ácidos grasos y tocoferoles. Tabla 1: Valores de estabilidad oxidativa Aceite Oliva Lechin Verdial Manzanilla Arbequina Picual Hojiblanca Blanqueta Soja Girasol Estabilidad promedio Temperatura (ºC) 54.6 26.7 99.25 50.4 111.75 52.5 68 3.8 2.37 100 100 100 100 100 100 100 120 120 La tabla 1 muestra los valores de estabilidad oxidativa de diferentes aceites crudos no refinados, en se observa una significativa diferencia entre los valores promedios de aceite de oliva frente a los de soja y girasol. Esta diferencia puede explicarse a través del mayor contenido de componentes antioxidantes naturalmente presentes en el aceite de oliva encuadrados como polifenoles, los que le brindan mayor estabilidad a la oxidación. Esta diferencia de estabilidad en aceites crudos establece como necesario el agregado de antioxidantes en aceites de semillas, fundamentalmente sintéticos, que aumenten la estabilidad oxidativa en especial para aquellos que han sido sometidos a refinación donde ocurre una pérdida de sustancias con poder antioxidante. Figura 2: Variaciones de índice de peróxido para aceite de soja 160 aceite aceite + BHT 140 Indice de peroxido 120 100 80 60 40 20 0 0 50 100 150 200 250 300 t(min) La figura 2 muestra un comportamiento típico del aumento de estabilidad debido al agregado de antioxidantes sintéticos. Un efecto similar se logra al utilizar los extractos naturales de olivo o tomillo solos o en combinación. Conclusiones Puede concluirse que los extractos fenólicos de hojas de olivo y tomillo, son capaces de aumentar la estabilidad oxidativa de aceites de semilla, casi tan eficazmente como lo hacen lo antioxidantes sintéticos, solos o en combinación. El aumento de estabilidad oxidativa aumenta con el aumento de concentración de sustancias antioxidantes, aunque no es posible establecer una variación lineal entre actividad y concentración Bibliografía 1- Coultate, T.P. (1992) “Food - The chemistry of its components”. 2da. Edición. Cap.4. Royal Society of Chemistry. Cambridge, Reino Unido. 2-Cheftel, J.C., Cheftel, H. y Besaçon, P. (1983) “Introducción a la Bioquímica y Tecnología de los alimentos”. Cap. 5. Vol II. Ed. Acribia. España. 3-Gray J.I. J.Am.Oil Chem. Soc., 55 (1978) 539 4-Ceballos, C. “Implementación de técnicas electroquímicas para la detección y cuantificacion de aditivos en alimentos basadas en el uso de ultramicroeolectrodos”. Tésis Doctoral. Universidad Nacional de Río Cuarto (1998) 5- Belitz HD, Grosch W. “Química de los Alimentos” . Ed. Acribia . España. 1997 6- Madhavi, D.L., S.S. Deshpande, D.K.Salunkhe “Food Antioxidants” Marcel Dekker, Inc.New York 1996 7- Inform –vol 9 6 junio de 1998, 553 8- Mou-Tuan Huang et al. Eds. “Phenolic Compounds in Food and Their Effects on Health. Vol I y II- Antioxidant and Cancer Prevention”. ACS Symposium Series 507, American Chemical Society (1992). 9- a) R.M.Duran, R.B.Padilla. Grasas y Aceites, 44, 2 (1993), 101. b) M.A. Gordon. Chem. in Britain, Nov. 1991, 1020. 10-H. Hartzallah, A. Kiritsakis. (1999)Ciencia y Técnica, 77. 11- Carelli, A., Bodnariuk, P., Crapiste, G. (2000), Aceites y Grasas, junio, 227-231. 12 Ceballos, C y Fernandez H. (2000). Food Res. Int..33, 357-365 13 Ceballos, C y Fernandez H. (2000). J. Am. Oil Chem. Soc. 77, 731-735. 14 S.Lanteri, C.Armanino, E. Perri, A. Palopoli. (2002) Food Chemistry, 76, 501-507 14-Kiritsakis,A. (1985) .J.Am.Oil.Chem.Soc, 62,5, 892-896 15-H.Hartzallah, A. Kiritsakis.(1999) Olivae, 77,47-49 16-Official Methods and Recommended Practices of the American Oil Chemist’s Society, 5Th Edn. Edited by D. Firestone, AOCS Press, Champaign, 1998, Methods: Cd 8-53; Ca 5a-40; Ce 1-62; Ce 8-89; Cc 13c-50. 17 M. León Camacho y A. Cert. (1994) Grasas y Aceites, 45,6, 395-401. 18- Official Methods and Recommended Practices of the American Oil Chemist’s Society, 5Th Edn. Edited by D. Firestone, AOCS Press, Champaign, 1998, Methods: Cd 12-57; Cd 12b-92 19- Giacomelli, L. H. Boggetti, R. Cattana, H. Agnelli, J. Silber(1999) Anal. Chim. Acta. 402, 285-295. 20-A. Sacco, M.A.Brescia, V.Liuzzi, F. Reniero, C. Guillou, S. Ghelli, and P. Van der Meer. (2000). J. Am. Oil Chem. Soc. 77 , 619-625.