Pasantías Virored 2016 - Virored-Cyted

OFERTA DE PASANTÍAS, 2016
De acuerdo con los objetivos de ViroRed se convocan pasantías para investigadores de
laboratorios de los países adheridos.
Las pasantías tienen que realizarse en el presente año, en fechas propuestas por, o
acordadas con, los laboratorios receptores.
Como actividad cofinanciada contemplada como tal en el Convenio de Adhesión de
ViroRed, se establece que CYTED se hará cargo de los gastos de pasajes de avión ida/regreso
para un investigador, así como la cantidad de 250€ (en concepto de gastos de formalización
de visado, transporte de ida y vuelta a los aeropuertos y otros gastos durante el viaje), que se
harán efectivos al término de la estancia. La reserva de los pasajes se realizará desde la
Secretaria General de CYTED. El organismo al que pertenezca el/la pasante garantizará los
gastos de su alojamiento y de su alimentación.
Una vez terminada la estancia, y en un plazo máximo de 30 días, el/la pasante entregará
a CYTED y a ViroRed una memoria (máximo 500 palabras) acerca de la actividad realizada.
La solicitud se hará en el formulario adjunto, a la que se acompañará una carta del
director de la institución en la que presta servicios el/la solicitante, comprometiéndose a
afrontar los gastos que le corresponda.
FECHA LÍMITE DE RECEPCIÓN DE SOLICITUDES: 10 de septiembre de 2016.
Se convocan las siguientes pasantías:
1. IDENTIFICACIÓN DE VIRUS RESPIRATORIOS EMERGENTES CON POTENCIAL
PANDÉMICO, MERSCoV E INFLUENZA A(H7N9).
LABORATORIO RECEPTOR
Servicio Virosis Respiratorias
INEI-ANLIS ”Carlos G. Malbrán”, Buenos Aires, Argentina.
TUTORÍA: Dra. Elsa Baumeister
DURACIÓN: 2 semanas
FECHAS PROPUESTAS: 21 de noviembre a 3 de diciembre de 2016.
OBJETIVOS: Entrenar profesionales de laboratorio en la detección de MERSCoV e influenza
A(H7N9).
ACTIVIDADES ESPECÍFICAS:
21 y 22 de Noviembre
-Métodos de extracción de ácidos nucleicos manuales y automatizados recomendados.
-Introducción a la plataforma de RTPCR en tiempo real.
-Introducción a la secuenciación de ácidos nucleicos.
-Realización del ensayo de RTPCR en tiempo real para screening de MERSCoV.
-Realización del ensayo de RTPCR en tiempo real para confirmación de MERSCoV.
- Análisis de los resultados obtenidos y comparación con resultados esperados.
28 de Noviembre a 2 de Diciembre
-Realización del ensayo de RTPCR en tiempo real para detección de influenza A(H7N9).
- Análisis de los resultados obtenidos y comparación con resultados esperados.
-Secuenciación directa desde la muestra clínica de diferentes fragmentos de genoma de virus
influenza y de MERSCoV.
-Análisis de secuencias obtenidas de coronavirus e influenza utilizando programas de
filogenia.
-Presentación del pasante de la experiencia realizada en el Servicio.
23 a 25 de Noviembre
Participación del Taller de la Red Argentina de Laboratorios de Influenza y Otros Virus
Respiratorios 2016 en el que se inclyuen los siguientes temas:
-Análisis de la temporada 2016 a nivel nacional, regional y mundial.
-Intercambio de experiencias, fortalezas y desafíos de los distintos Laboratorios miembros de
la Red.
-Revisión de la metodología de la vigilancia de influenza y otros virus respiratorios por
laboratorio
-Actualización del diagnóstico de los virus de influenza y otros virus respiratorios.
2. ENTRENAMIENTO
EN
DIAGNÓSTICO
DIFERENCIAL
DE
VIRUS
CHIKUNGUNYA, DENGUE Y ZIKA
LABORATORIO RECEPTOR
Laboratorio de Serología y Arbvirus
Centro Nacional de Microbiología
Instituto de Salud Carlos III
Majadahonda, España
TUTORÍA: Dra. María Paz Sánchez-Seco, Dr. Fernando de Ory
DURACIÓN: 2 semanas
FECHAS: a concretar con los tutores
OBJETIVOS: Formación en técnicas diagnósticas moleculares y mediante serología de las
infecciones por dichos virus
ACTIVIDADES ESPECÍFICAS
- Diagnóstico molecular: métodos específicos de cada virus en formato convencional y tiempo
real
- Determinación de anticuerpos mediante técnicas de ELISA y de inmunofluorescencia
- Técnicas de Neutralización en el laboratorio de riesgo biológico 3
- Interpretación de resultados.
- Análisis de casos seleccionados
3. ENTRENAMIENTO EN DIAGNÓSTICO Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DE
VIRUS ZIKA
LABORATORIO RECEPTOR
Centro de Estudos de Vectores e Doenças Infecciosas
(Laboratório Nacional de Referência de Doenças Infecciosas Transmitidas por Vectores)
Instituto Nacional de Saúde Dr. Ricardo Jorge
Av. Liberdade 5, 2965-575 Águas de Moura, Portugal
TUTORÍA: Dra. Maria João Alves
DURACIÓN: 2 semanas
FECHAS: 7-18 Noviembre de 2016.
OBJETIVOS: Entrenamiento en diagnóstico y caracterización molecular de virus Zika
ACTIVIDADES ESPECÍFICAS
- Formación en epidemiología (Flavivirus, Zika)
- Caracterización clínica de infecciones por virus Zika
- Preparación de material de diagnóstico serológico para inmunofluorescencia
- Preparación de material in house (cultivo de células, inoculación, preparación de láminas).
- Diagnóstico serológico por inmunofluorescencia (determinación de anticuerpos por técnica de
imunofluorescencia indirecta, reacciones cruzadas, interpretación de resultados)
- Diagnóstico molecular específico por RT-PCR y real-time RT-PCR, y genérico por RT-PCR Panflavivirus y secuenciación.
- Interpretación de resultados. Diagnóstico diferencial con otros virus
- Epidemiología molecular
4. CAPACITACIÓN EN ESTUDIOS ECO-EPIDEMIOLÓGICOS DE ARBOVIRUS
LABORATORIO RECEPTOR
Instituto de Virología “Dr. J.M. Vanella”
Facultad de Ciencias Médicas
Universidad Nacional de Córdoba
Argentina
TUTORíA: Dra. Marta Contigiani
DURACIÓN: 2 semanas
FECHAS DISPONIBLES: durante meses de septiembre-octubre. Quincena a combinar con el
pasante.
OBJETIVOS: Formar recursos humanos para realizar estudios relacionados al abordaje de
casos, brotes y vigilancia de arbovirus.
ACTIVIDADES ESPECÍFICAS. Toda actividad práctica tendrá su marco teórico.
- Trabajo de campo para entrenamiento de captura de aves y roedores y colecta de
mosquitos.
- Identificación taxonómica de mosquitos.
- Preparación de homogeneizados de mosquitos
- Mostración de estudios de competencia vectorial y capacidad vectorial
- Mostración de estudios de competencia de hospedador
- Detección de arbovirus a partir de homogeneizado de mosquitos, sueros y/o materiales
de autopsia.
- Métodos moleculares: RT-PCR genéricas; específicas y Real Time PCR
- Métodos clásicos: aislamiento y tipificación.
- Detección de anticuerpos contra arbovirus a partir de sueros de aves, roedores y/o
humanos.
- Técnicas serológicas: ELISA, Neutralización.
- Análisis e interpretación de resultados.