EL JOCKEY AVISO 2010

Año 9 • Nº 36 • Septiembre de 2011 • Venta por suscripción.
ISSN 1667-1791
R E V I S TA D E L A A S O C I A C I O N A R G E N T I N A D E V E T E R I N A R I A E Q U I N A
Boletín
informativo
El Tattersall del Jockey Club de San Isidro fue testigo
de un nuevo aporte de la Asociación Argentina de
Veterinaria Equina para con los especialistas de esta
actividad. Así, las XXII Conferencias de la AAVE
siguen constituyéndose como cita de capacitación
permanente para los profesionales de todo el país.
Cómo realizar una
ecografía de laringe en
equinos
Cómo anestesiar burros
para la realización de
procedimientos
quirúrgicos a campo
Enfermedades
metabólicas e
infertilidad en la
yegua
Técnica de castración
cerrada y con precinto
Índice Nº 36
Editor propietario
Asociación Argentina de Veterinaria Equina
www.aave.org.ar
Editorial
4
Dirección Ejecutiva
Comisión Directiva AAVE
Boletín Informativo
6
Directores Editorial
Dra. Barbara Murray de Bunge
Dr. Jorge Casim
[email protected]
Cómo realizar una ecografía de
laringe en equinos (AAEP)
Director Comercial
Ing. Agr. Susana Roldán Bonadeo
[email protected]
Cómo anestesiar burros para la
Consejo Editorial
Dra. Silvina Manent
Dra. Luciana Benedetti
Dr. Luis Losinno, MV PhD
Dr. Carlos Espinosa Buschiazzo
Dr. Federico Boffi, MV PhD
Dr. Angel Trioni
realización de procedimientos
Revisores
Dra. Alicia Agüero (UBA); Dr. Javier
Aguilar; Dra. María Barrandeguy
(INTA); Dr. Mariano Cancela; Dra.
Celina Checura (Univ. Wisconsin); Dr.
Eduardo Desmarás (UNLP); Dr. Carlos
Dodera; Dr. Luis Flores; Lic. Oscar
Forchetti, MSc. (UNRC); Dra. Elida
Fumuso (UNCPBA); Dr. Felix Garavelli;
Dr. Guillermo González (UBA); Dr.
Arno Lindner, PhD.; Dra. María Masri
Daba, MSc., Dipl. (DACVIM / UNAM);
Dr. Fernando Marqués, ACVIM (Univ.
Wisconsin); Dr. Santiago Martínez
Zuviría; Dr. Marcelo Miragaya, MSc.,
PhD. (UBA); Dra. Marta Monina (Univ.
La Pampa); Dr. Sergio Sanchez Bruni,
PhD. (UNCPBA); Dr. Alejandro Soraci,
PhD. (UNCPBA); Dr. Marcelo Sperati;
Dr. Ramiro Toribio, MS., PhD.; Dr. José
Tolosa (UNRC); Dr. Ignacio Videla
Dorna (UNCPBA); Dra. Susana
Wacholder MS.; Dr. Diego Benegas; Dr.
Roberto Hector Bruni (UBA).
infertilidad en la yegua
quirúrgicos a campo (AAEP)
12
26
Enfermedades metabólicas e
32
Artículo con revisión.
Técnica de castración cerrada
y con precinto
46
Artículo con revisión.
Novedades de las empresas
56
Agenda
57
Indice de anunciantes
58
RPI #864008
ISSN 1667-1791
Edición Gráfica y Diseño
Asociación de ideas SRL
Nicolás de la Fuente
[email protected]
Publicación trimestral, con revisión.
Editada en Buenos Aires, Argentina.
Domicilio Legal:
Chile 1856 (1227) Capital Federal, Argentina.
Tel/fax: (54 11) 4700 - 1498.
E-mail: [email protected].
Web Site: www.aave.org.ar.
Los artículos firmados no expresan necesariamente la opinión de la revista.
Prohibida su reproducción total o parcial.
¿Cómo asociarse a la
Cuota anual
AAVE?
Profesionales .......................$ 190
A través de nuestra página Web:
Estudiantes...........................$ 95
www.aave.org.ar
Los socios del exterior deben agregar
a estos valores el costo del correo por
el envío de la revista, el cual varía
según el país.
o enviando un mail a
[email protected]
o telefónicamente al
Países limítrofes..................$ 40
(54 11) 4700 1498,
Países del resto de América..$ 80
de 10 a 16 horas, de Argentina.
Países del resto del mundo..$ 100
3
Editorial
Comisión Directiva
Presidente:
Dr. Fernando Ruiz, MV.
Vicepresidente:
Dr. J. A. Rodríguez Portas, MV.
Secretario:
Dr. Jorge Casim, MV.
Tesorero:
Dr. Marcelo Otero, MV.
Prosecretario:
Dr. Carlos Dodera, MV.
Protesorero:
Dr. Ernesto Rendine, MV.
Vocales Titulares:
1º Dr. C. Espinosa Buschiazzo, MV.
2º Dr. Gustavo Gatti, MV.
3º. Dr. Federico Boffi, PhD, MV.
4º Dra. Bárbara M. de Bunge, MV.
5º Dr. Jorge Vasalo, MV.
6º Dra. Silvina Manent, MV.
Vocales Suplentes:
1º Dr. Ángel Trioni, MV.
2º Dr. Fernando Gutierrez, MV.
3º Dr. Ariel Corse, MV.
4º Dra. Luciana Benedetti, MV.
5º Dr. Juan Martín Batistuta, MV.
6º Dr. Carlos Pastoriza, MV.
Comisión Revisora de Cuentas:
1º Dr. Ignacio Pavlovsky, MV.
Estimados especialistas:
Seguimos transitando fechas importantes
para nuestra profesión.
El pasado 6 de agosto se llevaron adelante las carreras en el Hipódromo Argentino de
Palermo en honor a las instituciones veterinarias
y médicos veterinarios destacados. También estuvimos presentes en el "Gran Premio 250 años de
la Veterinaria", que se realizó en el Hipódromo de
San Isidro, con el auspicio del Comité Mundial
de Festejos, representado en Buenos Aires por la
Facultad de Ciencias Veterinarias de la UBA.
Se vivieron momentos intensos de reconocimiento y recuerdos junto a
nuestros colegas, en un marco de camaradería y jerarquización social del evento.
Por estos tiempos, la Comisión Nacional de Sanidad Equina destaca
una nueva etapa en la lucha contra la Anemia Infecciosa Equina. A través de
los representantes de todas las Sociedades Hípicas y en conjunto con el Senasa,
se conformarán comisiones especiales de lucha y seguimiento de la enfermedad,
dándole un nuevo empuje a este problema sanitario, buscando zonificar las
áreas involucradas con el refuerzo del seguimiento epidemiológico.
Nuestra Asociación aportará los especialistas destacados en el tratamiento de esta enfermedad, como brazo profesional del Plan de Lucha.
También la temática del Bienestar Animal nos toca tangencialmente, ya
que en todo el mundo los derechos de los animales están incluidos en las distintas
agendas políticas y económicas. La Argentina está incluida en esta materia.
Si bien, en nuestros caballos, el bienestar es sumamente satisfactorio debido a que la mayoría son deportivos-: los mismos no solamente tienen un
valor económico destacado, sino que también conllevan un componente sentimental importante y hasta de compañía. Más allá de esto, existen equinos de
trabajo que son sometidos a tareas que sobrepasan su capacidad física y a los
cuales tendremos que defender. Tal el caso de algunos utilizados en tareas de
recolección de cartones y reciclables, que no cuentan con un mínimo de
garantías sanitarias ni funcionales para su desempeño.
En la Asociación, se verán cambios en la conducción de la Comisión
Directiva, permitiendo la renovación de sus autoridades para poder -con una
impronta distinta- seguir creciendo como aporte técnico y científico a los especialistas, con su función social de acercamiento y jerarquización, y con la plena convicción del engrandecimiento de nuestra querida AAVE.
Destacados especialistas: les estoy
muy agradecido por su desinteresada colaboración y apoyo durante este tiempo en el cual
ejercí la Presidencia de la Asociación Argentina de Veterinaria Equina.
2º Dr. Alejandro Guglielminetti, MV.
3º Dr. César Valle, MV.
4
Muchas gracias.
Fernando Ruiz M.V.
Presidente.
Boletín informativo
Los especialistas dijeron presentes
en las XXII Conferencias
de Veterinaria Equina
Los pasados 20 y 21 de junio se llevaron adelante, de manera
exitosa, las XXII Conferencias de Veterinaria Equina de la AAVE.
Transcurrieron en el Salón Tattersall del Jockey Club de San Isidro.
Asistieron más de 400 profesionales.
Escribe Jorge Casim MV
Los disertantes internacionales invitados especialmente
fueron, en esta oportunidad, el Dr. Jack Snyder, de UC
Davis School of Veterinary Medicine y veterinario FEI;
y la Dra. Siobhan McAuliffe, autora de tres reconocidos
libros sobre Medicina, Ecografía y Neonatología y, a su
vez, Jefa de Neonatología y Especialista en Medicina
Interna del Hospital Kawell.
En este sentido, los temas desarrollados por los especialistas fueron: "Claudicaciones originadas en miembro
posterior y columna"; "Diagnóstico diferencial con patologías médicas" y "Alteraciones en los potrillos que pueden provocar en el futuro claudicaciones".
Vale remarcar también la solidez académica y práctica
de los disertantes, puestas de manifiesto en sus disertaciones: cumplieron ampliamente con nuestras expectati-
vas y creemos también con las de los asistentes.
Un dato relevante tiene que ver con que este Congreso
se planificó de un manera innovadora: en conjunto con
la Federación Ecuestre Argentina, compartiendo el
disertante y dividiendo un tema tan extenso como el de
Claudicaciones, en dos congresos: uno de la AAVE, los
días 20 y 21 de junio y, otro, de la FEA, el 17 y 18 de
noviembre de este mismo año.
De este modo los colegas tendrán acceso en profundidad a la actualización de un tema tan importante en la
práctica equina diaria, desarrollado por uno de los máximos referentes del tema, a nivel mundial.
La convocatoria
En esta oportunidad, contamos con la asistencia de
aproximadamente 400 personas y nos acompañaron 28
Los disertantes supieron captar la atención de los especialistas que asistieron a las jornadas de capacitación.
6
i
Doctores Jorge Casim y Jack Snyder.
Disertación de la Dra. Sioghan McAuliffe.
empresas del sector, las cuales consideran a los congresos de la AAVE una excelente oportunidad para promocionar sus productos y servicios.
Como todos los años, los integrantes del equipo de nuestra Comisión Directiva -que trabaja en la organización
de los congresos- intentan lograr un equilibrio entre la
calidad de temas y disertantes, el ámbito y servicios del
evento y tarifas accesibles para los profesionales y estudiantes, en general, y los socios, en particular.
En este sentido, destacamos que los socios veterinarios
abonaron $350 y los estudiantes $ 250.
Además, se fijaron tarifas razonables para que todas las
empresas del sector pudieran participar. La mayoría de
ellas son socios institucionales que abonan sus respectivas
cuotas, colaborando con nuestra institución todo el año.
Los asistentes se vieron favorecidos también con una
oportunidad única de tener acceso en un mismo recinto
a información técnica y novedades de la mayoría de las
empresas del medio.
El temario
Además de lo anteriormente mencionado, el miércoles
22 de junio se realizó un Wet-lab sobre "Claudicaciones",
dirigido por el Dr. Jack Snyder en el Centro Kawell.
Allí unos veinte participantes pudieron participar de la
evaluación práctica de Claudicaciones y realizar -con la
asistencia del Dr. Snyder- bloqueos diagnósticos trunculares e intraarticulares.
Agradecemos a los disertantes, asistentes y empresas que
hicieron posible la realización de este congreso; así
como también al Jockey Club y a sus colaboradores,
quienes nos apoyan como todos los años. Por último,
nuestro reconocimiento al grupo que se focalizó intensamente en la organización de la conferencia.
El Congreso contó también con un sector diferenciado en el cual los profesionales pudieron exponer distintos Posters.
7
i
Festejos por el Día del
Médico Veterinario
Autoridades de la Asociación Argentina de Veterinaria Equina
estuvieron presentes en la celebración que tuvo lugar a comienzos
de agosto, en el Hipódromo Argentino de Palermo.
Escribe Bárbara M. de Bunge MV
El Día del Médico Veterinario de este
año no ha sido uno más, debido a que
el mismo formó parte de lo que la
Organización Mundial de la Sanidad
Animal (OIE) ha denominado Calendario Vet 2011, en referencia a la conmemoración de los 250 años de la
profesión en todo el mundo.
En este marco, el pasado lunes 8 de
agosto por la tarde diversos miembros de la Comisión Directiva de la
AAVE y colegas de instituciones y
entidades relacionadas con la actividad hípica, fueron cálidamente recibidos por las autoridades del Hipódromo Argentino de Palermo -en el
Salón Oval de su Tribuna Oficialpara presenciar, compartir y disfrutar
El Dr. Juan Carlos Sosa, acompañado por el Dr. Marcelo Otero, haciendo entrega de la
de otro habitual encuentro turfístico.
"Copa Dr. Juan Carlos Sol" al propietario de Día de España, perteneciente a la caballeriza Los Rolfo.
Esta jornada invernal fue vivida con
entusiasmo, gran camaradería y un
importante espíritu constructivo por todos los presentes.
rinaria equina y el permanente desarrollo de la actividad
Como todos los años, el Hipódromo Argentino de
hípica en nuestro país.
Palermo ha tenido la deferencia de dedicar esta jornada
En esta oportunidad, fueron los Servicios Veterinarios de
a todas aquellas instituciones, organismos y colegas que
los hipódromos de La Punta, Mendoza, Córdoba, Río
mediante su actividad y compromiso contribuyen en el
Cuarto, Santa Fe, Rosario y Tucumán los cuales recibiedía a día a engrandecer el ejercicio de la medicina veteron un gratificante homenaje mediante la premiación
Figura 2: El Dr. Fermando Ruiz hizo entrega de la "Copa AAVE" al colega y entrenador de Grivko, Dr Edgar Chiappero, acompañado de izquierda a
derecha) por: Dr. Ignacio Pavlovsky, Dra. Barbara Bunge, Dr. Miguel Iguacel, Sr. Miguel Angel Summa, Dr. Jorge Vasalo, Dr. Fernando Ruiz, Dr. Edgar
Chiappero, Sr. Carlos Eduardo Grasso, Dr. Marcelo Otero, Dr. Dante Valenti, Dr. Carlos Dodera, Coronel Juan Carlos Maida, Dr Teodoro Dasch.
8
i
Figura 3: Los médicos veterinarios invitados disfrutaron juntos de una agradable reunión hípica en el Hipódromo Argentino de Palermo. Parados (de
izquierda a derecha): Dr. Ignacio Pavlovsky (h), Dra. Barbara M de Bunge, Dr. Mario Casás, Dr. Fernando Ruiz, Dr. Marcelo Otero, Dr. César Valle, Dr. Jorge
Vasalo, Dr. Dante Valenti, Dr. Ricardo Campodónico, Dr. Teodoro Däsch, Dr. Armando Perpere, Dr. Alfredo Montes de Oca, Dr. Carlos Dodera, Cnel. Juan
Carlos Maida Sentados (de izquierda a derecha): Dr. Miguel Iguacel, Dra. Susana Barberis, Gustavo Adaro, Carlos Saint Jean y la Dra. Cristina Cosma.
relativa a varias de las carreras transcurridas.
Vale mencionar aquí que también se corrió -como ya es
habitual- el "Premio Asociación Argentina de Veterinaria Equina", siendo el Handicap "Día del Veterinario Año Veterinario Mundial- FeVA." la carrera más destacada de la reunión propiamente dicha.
Sin embargo, la competencia más emotiva para todos
aquellos que tuvimos el orgullo de haberlo conocido fue,
sin dudas, aquella denominada "Premio Dr. Juan Carlos
Sol", destacado colega recientemente fallecido, quien
logró una vasta trayectoria en las diferentes facetas que
conforman el ejercicio de nuestra profesión.
El premio fue entregado en un sentido y conmovedor
acto por sus amigos personales, el Dr. Juan Carlos Sosa
y el Dr. Marcelo Otero al propietario de Día de España,
caballo ganador perteneciente a la caballeriza Los Rolfo.
Las restantes premiaciones fueron entregadas por autoridades del Hipódromo Argentino de Palermo, junto
con miembros de la Comisión Directiva de la AAVE.
Al término de la carrera ''Asociación Argentina de Veterinaria Equina", el presidente de la Asociación Argentina de Veterinaria Equina, Dr. Fernando Ruiz, hizo entrega de la Copa del Premio AAVE 2011 al colega y
entrenador de Grivko, Dr. Edgard Chiappero.
Aprovechamos esta oportunidad para agradecer, una
vez más, a las autoridades del Hipódromo Argentino
de Palermo y en particular al Dr. Miguel Iguacel, integrante de la Comisión de Carreras, y al Dr. Ricardo
Campodónico, Jefe del Servicio Veterinario de la institución, por la organización del evento y fundamentalmente por la cordial y afable atención dispensada a
todos los invitados.
Existen los que observan la realidad…
y los que tratan de mejorarla.
Participe activamente
del Correo de Lectores
enviándonos su opinión a [email protected]
9
Beneficios para los
socios de la AAVE
Capacitación
y Comunicación
• Acceso a trabajos presentados en
Congresos anteriores de la AAVE.
• Biblioteca de la AAVE
Acceso a los libros y temas de la especialidad de reciente edición y a importante
material en CD de Congresos y otros temas.
• Biblioteca Científica Virtual
Artículos de Internet o información útil de la
AAVE; artículos, abstracts, temas de los
Congresos y otros de interés
• Congresos, Jornadas o Ateneos
organizados por la AAVE
Descuentos en estos eventos y en los
organizados por otras entidades con las
que la AAVE haya hecho algún convenio
en ese sentido.
• Equine Veterinary Journal y Equine
Veterinary Education
Se concretó la suscripción a una edición
electrónica del Equine Veterinary Journal
y Equine Veterinary Education, las mismas se pueden abrir en una de las computadoras de la sede y pueden ser consultadas por los Socios.
• Foro de la AAVE en Internet
Con más de 2000 suscriptores de todo el
mundo de habla hispana, el más importante
del mundo en este idioma.
• Publicación de Curriculum Vitae en la
Biblioteca Científica Virtual de la AAVE
Donde además se publican trabajos de la
especialidad y otros temas de interés.
• Revista La Especie Equina
Nuestros socios reciben en forma gratuita
los 4 números anuales de la Revista la
Especie Equina.
• Web-mail de la AAVE
Gratuito, sin límite de capacidad.
10
Productos Bancarios
• Banco Itaú
Convenio con el Banco Itaú, que nos permite acceder a un paquete de productos bancarios, sin costo "de por vida". Cabe destacar
que, las tarjetas de crédito son emitidas con
el logo de la AAVE.
• Acceso a un conjunto Vip Express sin costo de emisión y de mantenimiento mensual,
ni anual, con envío de resumen vía mail
- Caja de Ahorro en $ + Caja de Ahorro
en U$S
- Cuenta Corriente en $
- Tarjeta de Crédito Visa Internacional o
Gold
• Posibilidad de acceso a otros productos del
Banco con condiciones preferenciales, por
ejemplo:
- Prestamos para compra o renovación de
automotor
- Prestamos para compra de instrumental
• Débito automático de la cuota social, evitando quedar en mora
Productos y Servicios
Informáticos
• Globaltech Argentina
Mediante el acuerdo con la empresa Globaltech Argentina los socios tendrán descuentos en los honorarios de servicio técnico y precios preferenciales y ofertas con
descuentos especiales en equipamiento
informático y de comunicaciones:
- Descuento en un 20% de los honorarios de
servicio técnico
- Precios preferenciales y ofertas especiales
de computadoras, componentes y repuestos
para las mismas, equipos de comunicaciones
y equipos de electrónica.
Globaltech Argentina - Adm. & Lab 42097817 4218-5312 - Mail: [email protected] - Cel: 155306-8086 Msn: [email protected] Skype: Diagoras
Alfredo Palacios 4486 V. Alsina - Lanús
Turismo y Recreación
• Agencia de Turismo Interlands Dinámica Tours
La Asociación Argentina de Veterinaria
Equina e Interlands S.R.L. Empresa Mayorista de Viajes y Turismo han firmado un
convenio a través del cual este último
comenzará a ofrecer servicios como la
Agencia de Turismo Oficial de la AAVE, a
través de Dinamica Tour, para la operación
y gestión de las consultas y reservas de los
asociados de forma de poder brindar el
mejor servicio a cada pasajero. A través de
este acuerdo los asociados podrán acceder a
un 5% de descuento en viajes individuales a
cualquier lugar del mundo.
Para consultas de condiciones de esta promoción o cotizaciones referidas a otras propuestas deberán contactarse con:
Contacto: Srta. Cintia Lougedo
Horario: lunes a viernes de 9 30 a 13 y de 14
a 18 30 hs
TE: 54 11 5276-0894
E-mail: [email protected] / [email protected]
• Complejo Social y Deportivo El Cortijo
Gracias a un convenio firmado con la
Mutual José Hernández, tenemos acceso al
predio, que cuenta con instalaciones de
Parrillas, Cancha de Fútbol, Canchas de
Tenis, Canchas de Paddle y Pileta.
• P´Maue Apart Hotel
Apart Hotel y Restoran de Mendoza.
Ofrece a los socios un descuento permanente del 30% sobre la de tarifa mostrador
http://www.maue.com.ar/
Para reserva o consultas:
Tel.: +54 (0261) 4312987
Fax.: +54 (0261) 4321955
Dorrego 93 (5519) - Mendoza - Argentina
Servicios Profesionales
• Análisis Antidopinig para compraventa de caballos
• Asesoramiento Contable
El estudio Cerelli & Asociados ofrece a los
socios la posibilidad de realizar una consulta
de orientación gratuita, y en el caso requerir
sus servicios, los honorarios serán promocionales.
Estudio Contable Cerelli & Asociados: 011
4311-8498 / 5435 Av. Córdoba 373, 7º pisoC.A.B.A.
• Seguros
La empresa RC Brokers Asesores de Seguros S.A., nos ofrece distintos productos que
adjuntamos, con beneficios especiales para
los socios de nuestra institución.
1º) Seguro Automotores
2º) Seguro robo de Instrumental y Equipa-
miento en la Vía Pública
3º) Seguro Accidentes Personales
4º) Seguro de Vivienda
5º) Seguro de Mala Praxis - Plan Especial
para socios de la Asoc. Argentina de Veterinaria Equina.
Contacto: Víctor H. Gurpegui
TE/Fax: 4632-9976 4631-1785 Tel.: (15)
4415-9551
[email protected]
www.rcbrokers.com.ar
Gabriela Rana & Asoc. - Consultores en
Seguros
Empresa, con más de veinticinco años de
experiencia en el mercado asegurador y
estudios específicos en la materia, ofrece a
los socios de la AAVE un plan como grupo
de afinidad con beneficios exclusivos.
Brindará: consultas de orientación sin cargo,
atención personalizada, individualizando los
riesgos de cada uno de los integrantes, tanto
en la contratación como ante la ocurrencia
de un siniestro. Cabe destacar, que habrá un
representante en la Sede de la AAVE los
segundos lunes de cada mes desde las 10.30
hs hasta las 15 hs. (en coincidencia con los
Ateneos o eventos similares).
- Automotores
- Seguros Técnicos para Equipos Veterinarios
- Accidentes Personales para Asistente
Veterinario
- Seguros de Vida y Accidentes Personales
Individual
- Seguro de Asistencia en Viajes
Contacto: Gabriela Rana
Tel.(54-11) 4259-0656
Cel.(54-11) 156-148-0595
E-mail: [email protected]
• Convenio con MEDICUS
La cobertura médica más completa para los
matriculados de la AAVE. Los precios son
especiales y exclusivos, incluye la posibilidad
de utilizar aportes de Obra Social ya sea en
relación de dependencia o como monotributista. Para recibir mayor información
comuníquese al 0800 - 333 - 6334
email : [email protected]
• Estudio Jurídico Empresarial
El Estudio ha acordado con la AAVE el
brindarle un servicio preferencial a sus
asociados. Usted encontrará varias alternativas para consultarnos, previo a ello le
brindaremos un lapso de orientación en
forma gratuita y honorarios profesionales
diferenciales para los asociados a esta
prestigiosa Institución.
Lo invitamos a visitar nuestra web:
www.estudiojuridicoempresarial.com , en
donde podrá ver las diversas actividades
para emprendedores o entidades, conjuntamente con la Consultoría Jurídica.Dr. Juan Carlos Palmigiano
Tel: (+54 11) 4861.2169 Fax: (+54 11)
4862.5467 Cel: (+54 911) 15 4412.0973
www.estudiojuridicoempresarial.com
Convenio AAVE - Kawell
Mediante el cual se desarrollan las siguientes
actividades
• Intercambio de material didáctico y
bibliográfico
• Organización conjunta y/o auspicio de
actividades de postgrado o extensión, conferencias, cursos, ateneos, etc. sobre temas de
interés común.
• Realización conjunta de estudios y proyectos de investigación en temas de interés
común.
Convenio AAVEConsejo Profesional de
Médicos Veterinarios
Por esto acuerdo los socios de la AAVE
tendrán acceso a los mismos beneficios que
hoy cuentan los matriculados en el Consejo
Profesional de Médicos Veterinarios
• Acuerdo con concesionaria permitirá renovar vehículos a profesionales médicos.
La misma efectuará a los profesionales,
significativos descuentos de precio en unidades nuevas y usadas y les proporcionará, también, acceso a créditos.
Los profesionales interesados deben dirigirse a la Secretaría de la Institución teléfonos
11-4322-2494 y 011-4326-7230.
• Baterias para Autos y Camionetas
Permitirá que todos los médicos veterinarios que presenten una certificación de
esta Entidad, se beneficien con un descuento del veinte por ciento (20 %) sobre
los precios.
Las mismas serán remitidas sin gastos de flete a la Capital Federal y Gran Buenos Aires.
Los colegas que no deseen visualizar la mercadería, pueden concretar el pedido via
internet (scaneando el certificado que emite
este Consejo) o remitiendo un fax y haciendo el depósito o la transferencia a la cuenta
bancaria de la Distribuidora.
• Descuentos en Libros y Publicaciones
- Editorial Agropecuaria Hemisferio Sur
S.A. Pasteur 743, Teléf. 4952-9825, Buenos Aires. 20 % de descuento en publicaciones de ese sello.
- Orientación Gráfica Editora S.R.L. General
Rivas 2242, Teléf. 4501-5427 y 4504-4851,
Buenos Aires. 30 % de descuento en publicaciones de ese sello.
- Conrado Libros. Av. San Martín 45045520, Buenos Aires.20 % de descuento no
aplicable a ofertas.
- Librería Dickens. Av. Corrientes 1375,
Teléf. 4375-1702, Buenos Aires.10 % de descuento en libros de línea y 20 % en las ofertas (Saldos).
Para acceder a la bonificación en la caja, los
socios deberán exhibir la credencial de la
AAVE o la del Consejo Profesional.
• Convenio con el CEMIC otorgará
descuentos en sus planes de salud a
Médicos Veterinarios
El Consejo Profesional Médicos Veterinarios ha celebrado con el Centro de Educación Médica e Investigaciones Clínicas
Dr Norberto Quirno CEMIC un convenio que contempla importantes descuentos en los planes de salud, para los médicos veterinarios.
Mayores detalles sobre esta entidad, pueden
encontrarse en la página web del CEMIC
www.cemic.edu.ar
Para adherirse a los planes prepagos consultar al asesor comercial de CEMIC sr. Víctor
MIELI a los teléfonos 4809-1950 y 155864-2246,mencionando el convenio con el
Consejo Profesional.
• Farmacias de la cadena P+P Descuento del 18% para Médicos
Veterinarios
El Consejo Profesional de Médicos Veterinarios de la Capital Federal acordó con la
Cadena de Farmacias P+P que los profesionales veterinarios puedan adquirir en forma
particular productos que comercializa esa
Cadena de Farmacias, con un descuento del
18% del precio de Caja. Del descuento quedan exceptuadas las ofertas, la línea de perfumería y cosmética y los medicamentos
con receta de Obras Sociales y/o Prepagas.
• Matafuegos - Industrias MAS SRL
Hemos firmado un convenio con la empresa MAS SRL para la adquisición de matafuegos, su carga, recarga y complementos
con la correspondiente certificación a precios promocionales
Cañada de Gomez 2232 - Tel 4686-2439 Ciudad Autónoma de Buenos Aires
• Convenio firmado con el Sindicato
de Luz y Fuerza Capital por el que los
matriculados pueden hacer uso de
los siguientes hoteles a precios promocionales:
Córdoba- Villa Giardino Hotel por los Derechos del Trabajador.
Mar del Plata- Hotel por la Justicia Social.
Mar del Plata - Hotel Panorama.
Mendoza- Hotel 1º de Mayo.
Bariloche- Hotel Alum Nehuel.
Salta- Hotel Victoria Plaza
San Bernardo-Hotel por la Liberación
Nacional.
Puerto Iguazú- Hotel El Libertador.
Termas de Río Hondo- Hotel Luis Natalini.
En igual forma el Convenio con las Asociación de Supervisores de la Industria Metalmecánica de la República Argentina, con
los hoteles:
Bariloche- Hotel 17 se octubre.
Salsipuedes (Córdoba)- Hotel El Pueblito.
La Falda ( Córdoba) Hotel 1º de julio.
San Clemente- Hotel 7 de setiembre.
www.sind-luzyfuerza-cap.org.ar
[email protected]
Consultar más beneficios en: http://medvet.elsubte.com/index.php/component/c
ontent/article/276
11
CÓMO REALIZAR UNA
ECOGRAFÍA DE LARINGE
EN EQUINOS
Katherine S. Garrett, Doctora en Medicina Veterinaria.
Dirección del autor: Rood and Riddle Equine Hospital, PO Box 12070, Lexington, Kentucky 405802070;
e-mail: [email protected]. ©2010 AAEP
El objetivo del presente trabajo es brindar al médico veterinario los conocimientos para realizar una exploración
ecográfica de la laringe e incorporar esta herramienta a la evaluación de las vías aéreas superiores.
Las anomalías de las vías aéreas superiores en equinos están muchas veces implicadas como causa de un
bajo rendimiento, intolerancia al ejercicio o ruido respiratorio anormal.1-3
Entre las anomalías que más comúnmente afectan a
los cartílagos aritenoides se incluye la neuropatía laríngea recurrente, condritis del cartílago aritenoides y displasia laríngea.
El desplazamiento dorsal del paladar blando y el
colapso faríngeo afectan a la región faríngea. Las anomalías congénitas y el colapso dinámico de la laringe
asociados con la flexión de la nuca pueden afectar múltiples regiones de la laringe y la faringe.
La endoscopía de las vías aéreas superiores en reposo es una práctica ampliamente difundida y en general
es la primera herramienta diagnóstica utilizada en la
evaluación de anormalidades de las vías aéreas superiores. En muchos casos, el examen endoscópico en reposo es suficiente para llegar a un diagnóstico. Sin embargo, se estima que la evaluación dinámica, ya sea
empleando una cinta ergonométrica o un sistema de
videoendoscopía portátil a campo, ofrece un diagnóstico más preciso que la endoscopía en reposo.4-6 Lamentablemente, la exploración dinámica de las vías aéreas
superiores requiere de un equipamiento especializado
que quizás no esté al alcance en forma local, o resulte
demasiado caro para algunos clientes o inadecuado
para algunos caballos. Además, existen anomalías de las
vías aéreas superiores que no se pueden evaluar plenamente mediante examen endoscópico.
La ecografía laríngea, descripta por primera vez
por Chalmers et ál. en el año 2006,7 es un elemento
relativamente nuevo en el repertorio diagnóstico de las
afecciones de las vías aéreas superiores. Desde el punto de vista clínico, ha sido útil en el diagnóstico de
muchas enfermedades de las vías aéreas superiores,
especialmente aquellas que producen movimientos
anormales de los aritenoides, entre los que se incluye
la neuropatía laríngea recurrente, condritis del cartílago aritenoides y displasia laríngea, una malformación
12
congénita de la laringe.7-10 La ecografía laríngea podría
resultar especialmente útil cuando la exploración dinámica no es factible.
Para comprender los cambios ecográficos que se
presentan en cada enfermedad, resulta útil conocer los
cambios patológicos que ocurren en las enfermedades
de las vías aéreas superiores. La neuropatía laríngea
recurrente produce atrofia por denervación y posterior
pérdida de la función de los músculos laríngeos intrínsecos inervados por el nervio laríngeo recurrente, los
que incluyen los músculos cricoaritenoideo dorsal, cricoaritenoideo lateral, aritenoides transversal, vocal y
ventricular.11,12 Clínicamente, esta enfermedad se manifiesta con una disminución o ausencia de abducción del
aritenoides, afectando al aritenoides izquierdo más que
al derecho.4 El músculo denervado tiene una apariencia ecográfica típica; el músculo se ve más hiperecoico
respecto del músculo normal y tiene una apariencia
más homogénea con pérdida del dibujo estriado normal.13-15 Estos cambios se han observado ecográficamente en los músculos cricoaritenoideo lateral y cricoaritenoideo dorsal en caballos con neuropatía laríngea
recurrente confirmada por endoscopía de las vías aéreas superiores en cinta ergonométrica.8,10
No resulta claro cuál es exactamente la etiología de
la condritis del aritenoides pero es muy probable que se
origine por un trauma local del cartílago aritenoides
con posterior infección bacteriana.16 Algunos caballos
podrían presentar granulomas únicamente en la superficie axial del cartílago aritenoides, mientras que en
otros casos, la patología puede avanzar hasta afectar la
totalidad del cartílago aritenoides. En casos más severos, el aritenoides se engrosa con bordes irregulares y
afectación de la movilidad, lo que es observable
endoscópicamente.17 La presencia de engrosamiento
del cartílago aritenoides con bordes irregulares y ecogenicidad anormal, típicos de esta enfermedad, han
sido observados en imágenes ecográficas.7
El defecto congénito conocido como displasia laríngea (también llamado defecto del IV arco branquióge-
Ecografía de laringe
B
Figura 1. Imagen ecográfica en plano dorsal de la porción lateral de
una laringe normal (A). La posición del transductor se muestra en B.
Nótese la posición del músculo cricoaritenoideo lateral (puntas de flecha pequeñas) entre el cartílago tiroides (flechas pequeñas) y el
cartílago aritenoides (punta de flecha grande). El cartílago cricoides
(flecha grande) se encuentra hacia caudal del cartílago tiroides.
Rostral está a la izquierda de la imagen y caudal hacia la derecha.
A
no) puede provocar movimientos aritenoides anormales tanto del cartílago aritenoides derecho como del
izquierdo.18,19 Los caballos con esta enfermedad también pueden presentar desplazamiento rostral permanente o intermitente del arco palatofaríngeo durante la
endoscopía de las vías aéreas superiores o bien desplazamiento dorsal del paladar blando.9,20 Los caballos con
displasia laríngea tienen anormalidades anatómicas
características, que incluyen ausencia de una articulación cricotiroidea y extensión de la lámina tiroidea
hacia dorsal del proceso muscular del cartílago aritenoides y pueden presentar, además, anormalidades del
músculo faríngeo.19-21 La apariencia ecográfica de estas
características anatómicas ha sido descripta.9
No se explica totalmente cuál es la fisiopatología del
desplazamiento dorsal del paladar blando pero podría
estar relacionada con la incapacidad para mantener la
laringe en posición rostral.22 Resulta interesante que el
cambio en la posición del hueso basihioides luego de
una intervención quirúrgica (desplazamiento laríngeocraneal ["tie-forward"]) se asocia con una mayor probabilidad posoperatoria de participación en carreras.23
Este hallazgo impulsó las primeras investigaciones
relacionadas con un marcador ecográfico del desplazamiento dorsal del paladar blando, las cuales han
demostrado que los caballos con esta condición
tenían una distancia promedio menor entre la piel y el
hueso basihioides que aquellos sin ese desplazamiento.24 No obstante, la diferencia de esta medición entre
caballos con y sin desplazamiento dorsal del paladar
blando fue menos de 2 mm, lo que limitó su uso en
situaciones clínicas.
No está definida la etiología de otras afecciones de
las vías aéreas superiores, que incluyen el colapso faríngeo, ondulación del paladar blando, retroflexión de epiglotis, colapso faríngeo asociado con la cabeza en posición flexionada, y desviación axial de los pliegues
aritenoepiglóticos.16,25 No existe una descripción de los
hallazgos ecográficos típicos de estas afecciones.
El objetivo del presente trabajo es brindar al médico
veterinario los conocimientos para realizar una exploración ecográfica de la laringe e incorporar esta herramienta a la evaluación de las vías aéreas superiores.
Materiales y métodos
Los caballos son preparados para la exploración
mediante sedación con clorhidrato de xilacina (0,4
mg/kg, EV). En la mayoría de los casos, no se necesita
afeitar la región laríngea antes de la exploración; no
obstante, si el pelaje es áspero o grueso, al pelar la zona
se mejorará la calidad de la imagen. La cabeza se sostiene en posición extendida, ya sea por un asistente o
mediante un soporte, a fin de mover la región laríngea
hacia caudal respecto de la mandíbula. Se puede utilizar un transductor lineal o curvilíneo para la exploración. Una frecuencia de 8 a 10 mHz generalmente proporciona una penetración adecuada, a la vez
conservando la resolución.
La exploración de la porción lateral de la laringe se
puede realizar en los planos dorsal y transversal.
En el plano dorsal, es posible obtener una imagen
inicial del cartílago tiroides posicionado superficialmente, del cartílago cricoides hacia caudal del cartílago tiroides y del cartílago aritenoides hacia profundo
del cartílago tiroides (Fig. 1). La imagen del músculo
cricoaritenoideo lateral se toma entre los cartílagos
13
Ecografía de laringe
Figura 2. Imagen ecográfica en plano dorsal de la porción lateral de una
laringe normal. Esta imagen está levemente dorsal y caudal respecto de la
Figura 1. La articulación cricotiroidea (punta de flecha pequeña) está formada por el asta caudal del cartílago tiroides (flechas pequeñas) y el proceso
articular del cartílago cricoides (flecha grande). El proceso muscular del
cartílago aritenoides también aparece en la imagen (punta de flecha grande). Rostral está a la izquierda de la imagen y caudal hacia la derecha.
tiroides y aritenoides y la imagen del músculo cricotiroideo entre los cartílagos tiroides y cricoides.
Moviendo el transductor levemente hacia dorsal se
logra la imagen de la articulación cricotiroidea, formada por el asta caudal del cartílago tiroides y el proceso
articular del cartílago cricoides (Fig. 2). Si bien no
parece tener relevancia clínica, es común observar la
mineralización del asta caudal del cartílago tiroides.
14
Figura 3. Imagen ecográfica en plano dorsal de la porción dorso-lateral de
una laringe normal. Esta imagen está hacia dorsal respecto de la imagen en
la Figura 1. La articulación cricoaritenoidea (punta de flecha pequeña) está
formada por el proceso muscular del aritenoides (punta de flecha grande) y
el cartílago cricoides dorso-lateral (flecha grande). En la imagen aparece la
porción lateral del músculo cricoaritenoideo dorsal (flechas pequeñas).
Rostral está a la izquierda de la imagen y caudal hacia la derecha.
Desde la articulación cricotiroidea, el transductor se
mueve hacia dorsal con un leve ángulo hacia ventral.
Desde esta ubicación se obtiene la imagen de la articulación cricoaritenoidea entre el proceso muscular
Ecografía de laringe
B
A
Figura 4. Imagen ecográfica en plano transversal de la porción lateral de
una laringe normal (A). La posición del transductor se muestra en B.
Nótese la posición del músculo cricoaritenoideo lateral entre el cartílago
tiroides (flechas) y el cartílago aritenoides (punta de flecha). El cartílago
aritenoides tiene forma de cono de trompeta y el músculo cricoaritenoideo lateral tiene aspecto estriado con ecogenicidad heterogénea. Dorsal
está a la izquierda de la imagen y ventral a la derecha.
del cartílago aritenoides y el cartílago cricoides dorsal.
del cartílago tiroides, se toma la imagen de los pliegues
También se puede evaluar la porción lateral del músvocales observándose sus movimientos (Fig. 6). Luego
culo cricoaritenoideo dorsal (Fig. 3).
aparece el aspecto rostral mineralizado del cartílago
El aspecto lateral de la laringe también se evalúa en
tiroides ventral. Entre el cartílago tiroides y el hueso
el plano transversal. La primera imagen que se obtiene
basihioides se toma la imagen desde lateral de los huees la lámina tiroidea de posición superficial con el cartísos tirohioides. El hueso basihioides aparece como una
lago aritenoides hacia profundo de la lámina tiroidea, y
línea horizontal (Fig. 7) y si desde esta posición se
el músculo cricoaritenoideo lateral y el músculo vocal
cambia el ángulo del transductor hacia rostral, se toma
entre los cartílagos tiroides y cricoides (Fig. 4).
la imagen de los huesos ceratohioides. Moviendo el
En algunos caballos, la imagen del músculo vocal se
transductor hacia rostral, se obtiene la imagen del prodiferencia del músculo cricoaritenoideo lateral, pero en
ceso lingual del hueso basihioides. Es posible medir la
otros casos no es posible establecer la diferencia entre
profundidad del hueso basihioides en la unión entre el
ambos músculos.
proceso lingual y el cuerpo
Moviendo el transducdel hueso basihioides. En el
tor hacia caudal se logra la
plano medio, se evalúa la
imagen del asta caudal del
relación entre el proceso
cartílago tiroides, la articulingual y el aspecto mineralación cricotiroidea y el
lizado rostral del cartílago
cartílago cricoides.
tiroides. También se obtieLa porción ventral de la
ne la imagen del aspecto
laringe se puede explorar
ventral de los anillos cricoien los planos transversal y
deo y traqueal.
medio. En el plano transEn general, se debe evaversal, los anillos traqueales
luar la simetría global de los
pueden servir como punto
cartílagos laríngeos y la
de referencia. Desde los
musculatura asociada. Los
anillos traqueales y a medicartílagos deberían presenda que se mueve el transtar bordes lisos con ecogeductor hacia rostral, se
nicidad homogénea, aunidentifica el aspecto ventral
que es bastante común la
del cartílago cricoides (Fig.
mineralización de los cartíFigura 5. Imagen ecográfica en plano transversal de la porción ventral del
5), seguido del cartílago
lagos tiroides y aritenoides
cartílago cricoides (flechas) de una laringe normal. Izquierda está a la
izquierda de la imagen y derecha hacia la derecha de la imagen.
tiroides. Hacia profundo
(Fig. 8), especialmente en
16
Ecografía de laringe
B
A
Figura 6. Imagen ecográfica en plano transversal (A) de la porción ventral del cartílago tiroides (flechas) de una laringe normal a nivel de los pliegues vocales (puntas de flecha). La posición del transductor se muestra en B. El movimiento de los pliegues vocales pueden observarse durante la respiración.
Izquierda está a la izquierda de la imagen y derecha hacia la
derecha de la imagen.
caballos de edad más avanzada. Los músculos normalmente presentan ecogenicidad heterogénea y un
patrón estriado en la vista longitudinal.
noides sin condritis aritenoidea difusa. EcográficamenLa comparación de la ecogenicidad relativa de los
te, esto se manifiesta como una irregularidad focal del
músculos cricoaritenoideo dorsal y cricoaritenoideo
borde axial, borde abaxial liso y grosor normal del
lateral tanto izquierdos como derechos, permite al
cartílago aritenoides.
médico veterinario evaluar si una estructura tiene la
También se observan las anomalías anatómicas
hiperecogenicidad típica que se observa en la atrofia
características de una displasia laríngea. La mejor imapor denervación de la neuropatía laríngea recurrente.
gen de la extensión del cartílago tiroides hacia dorsal
La configuración del ecógrafo debe mantenerse
del proceso muscular del cartílago aritenoides se logra
constante entre ambos lados, izquierdo y derecho, de
en el plano transversal (Fig. 11), mientras que la mejor
la laringe y las imágenes deben evaluarse en los planos
imagen de la ausencia de una articulación cricotiroidea
dorsal y transversal. La comparación en paralelo
se logra en el plano dorsal (Fig. 12). Estos caballos premuchas veces resulta útil (Fig. 9). Ha de tenerse en
sentan una relación anormal entre el cartílago tiroides,
cuenta que son muchos los factores que contribuyen a
el músculo cricoaritenoideo lateral y el cartílago aritela apariencia ecográfica de los músculos y, por lo tannoides; el músculo cricoaritenoideo lateral con freto, se prefiere la comparación en un mismo caballo a
cuencia se ubica hacia caudal del cartílago tiroides, en
la comparación entre
el espacio entre éste y el
distintos animales.
cartílago cricoides.
El contorno de los
Se analizaron los regiscartílagos
aritenoides
tros médicos de Rood and
debe evaluarse cuidadoRiddle Equine Hospital para
samente. Los cartílagos
identificar los caballos que
aritenoides
deberían
habían sido sometidos a una
tener forma de cono de
endoscopía de las vías áereas
trompeta con bordes
superiores (en reposo y/o
lisos. Los caballos con
dinámica) y a una ecografía
condritis presentan irrelaríngea. Se registraron los
gularidad de los bordes
resultados de la endoscopía
axial y abaxial, con
de las vías aéreas superiores
engrosamiento del cartíy de la ecografía laríngea
lago y ecogenicidad anorcomo así también el diagnósmal dentro del cartílago
tico final.
aritenoides(Fig. 10). Los
caballos pueden presentar
Resultados
Figura 7. Imagen ecográfica en plano transversal del hueso basihioides
un solo granuloma o un
Entre el 2008 y el 2009,
(puntas de flecha) y los huesos ceratohioides (flechas) de una laringe norcondroma en la superficie
330 caballos que se presentamal, obtenida con el transductor en posición ventral. Izquierda está a la
izquierda de la imagen y derecha hacia la derecha de la imagen.
axial del cartílago ariteron en Rood and Riddle
18
Ecografía de laringe
Equine Hospital para una evaluación de las vías aéreas superiores
fueron sometidos a una ecografía
laríngea. Varias razas y usos estaban representados en este grupo.
Todos los caballos fueron sometidos a una endoscopía de las vías
aéreas superiores en reposo y a
un subgrupo (148 caballos) también se les realizó una endoscopía
en cinta ergonométrica.
Ciento treinta y un (131)
caballos fueron diagnosticados
con neuropatía laríngea recurrente izquierda a partir de los resultados obtenidos en una laringoplastía protésica previa, o bien, en
una endoscopía de vías aéreas
superiores en reposo y/o en cinta ergonométrica.
Ciento veinte (120) de estos
caballos (92%) tenían hiperecogenicidad del músculo cricoaritenoideo lateral y/o dorsal, típica
de la denervación muscular. Los
restantes 11 caballos presentaban
ecogenicidad normal de estos
músculos; de estos 11 caballos,
además, cuatro caballos fueron
diagnosticados con desplazamiento dorsal del paladar blando
durante una exploración de las
vías aéreas superiores. Según la
opinión del clínico tratante, el
desplazamiento dorsal del paladar blando parecía ser la principal causa del rendimiento pobre.
Tres de los once caballos no
fueron sometidos a una exploración dinámica y el diagnóstico se
realizó únicamente mediante
endoscopía de las vías aéreas
superiores en reposo.
Por el contrario, 127 caballos
presentaban hiperecogenicidad
de los músculos cricoaritenoideo
lateral y cricoaritenoideo dorsal.
Ciento veintiuno (121 - 96%)
de estos caballos fueron diagnosticados con neuropatía laríngea
recurrente mediante endoscopía
en reposo y/o dinámica de las
vías aéreas superiores. Los restantes cinco caballos fueron diagnosticados con desplazamiento
dorsal del paladar blando (tres
caballos), desviación axial de los
pliegues ariepiglóticos (un caba20
Figura 8. Imagen ecográfica en plano transversal de la
porción lateral de una laringe normal. Obsérvese la mineralización del proceso muscular del cartílago aritenoides
(flecha). Dorsal está a la izquierda de la imagen y ventral
a la derecha.
A
B
C
D
E
F
Figura 9. Comparación de la ecogenicidad de la musculatura cricoaritenoidea lateral (flechas) y cricoaritenoidea dorsal (puntas de flecha). Los caballos con neuropatía laríngea
recurrente tienen ecogenicidad aumentada y mayor ecogenicidad homogénea de los músculos cricoaritenoideo lateral
y cricoaritenoideo dorsal. Imágenes ecográficas en plano
dorsal del músculo cricoaritenoideo lateral de un caballo
con neuropatía laríngea recurrente (A) y de un caballo normal (B). Imágenes ecográficas en plano transversal del
músculo cricoaritenoideo dorsal de un caballo con neuropatía laríngea recurrente (C) y de un caballo normal (D).
Imágenes ecográficas en plano dorsal del músculo cricoaritenoideo lateral de un caballo con neuropatía laríngea
recurrente (E) y de un caballo normal (F). En las imágenes
en plano dorsal, rostral está a la izquierda y caudal a la
derecha y en las imágenes en plano transversal, dorsal está
a la izquierda de la imagen y ventral a la derecha.
llo) y desviación axial de las cuerdas vocales y pliegues ariepiglóticos (un caballo) durante la
endoscopía dinámica de las vías
aéreas superiores.
Veintinueve (29) caballos fueron diagnosticados con condritis
aritenoidea mediante endoscopía
en reposo de las vías aéreas superiores. En tres de estos casos, la
condritis aritenoidea fue diagnosticada inicialmente durante la
endoscopía de las vías aéreas
superiores pero la exploración
ecográfica mostró un contorno
aritenoides normal. Posteriormente, uno de estos tres caballos
fue diagnosticado con desplazamiento dorsal del paladar blando
durante una exploración dinámica en cinta ergonométrica.
Otro caballo presentaba hiperecogenicidad del músculo cricoaritenoideo lateral y fue diagnosticado con neuropatía laríngea
recurrente durante una exploración dinámica en cinta ergonométrica. El tercer caballo no
fue sometido a la exploración
dinámica pero fue diagnosticado
con desplazamiento dorsal del
paladar blando sobre la base de
los resultados surgidos de la
endoscopía en reposo de las vías
aéreas superiores.
Cinco caballos fueron diagnosticados con granulomas aritenoideos o condromas durante la
endoscopía en reposo de las vías
aéreas superiores. En los cinco
casos, la ecografía reveló la masa
en la superficie axial del cartílago
aritenoides y no hubo evidencia
de condritis aritenoidea que afectara la totalidad del cartílago.
Siete caballos fueron diagnosticados con displasia laríngea. En
todos los casos, la ecografía
mostró ausencia de una articulación cricotiroidea y extensión
unilateral o bilateral del cartílago
tiroides hacia dorsal del proceso
muscular del cartílago aritenoides. Las anomalías observadas
durante la endoscopía de las vías
aéreas superiores en estos caballos incluyeron movimientos
anormales del cartílago aritenoi-
Ecografía de laringe
des izquierdo y derecho, desplatromboflebitis y desviación axial
zamiento rostral del arco palatode los pliegues ariepiglóticos.
faríngeo y desplazamiento dorsal
del paladar blando.
Análisis
En casos aislados se han diagLa ecografía de la región
nosticado otras malformaciones
laríngea es fácil de realizar en un
anatómicas poco frecuentes. Un
entorno ambulatorio u hospitalapotrillo con ruido anormal de las
rio; es un método no invasivo y
vías aéreas superiores e intoleranseguro y no requiere de equipacia al ejercicio presentaba estrucmiento especializado más allá de
turas de aspecto quístico en los
un ecógrafo con un transductor
cartílagos tiroides, aritenoides y
lineal o curvilíneo. No es necesacricoides como así también en el
rio afeitar la zona y en general,
primer anillo traqueal. Un caballo
una sedación suave es suficiente
adulto con desplazamiento dorpara garantizar la conformidad
sal del paladar blando presentaba
del paciente y, por lo tanto, el
una malformación del hueso
procedimiento ha tenido una
basihioides. Un caballo pinto
excelente aceptación tanto del
heterocigota (N/H) para parálicliente como del paciente.
sis periódica hipercalémica preEn la actualidad, la ecografía
sentaba hipertrofia del músculo
de laringe constituye una excevocal izquierdo.
lente herramienta para investigar
Figura 10. Imagen ecográfica en plano transversal de la
Setenta y cinco (75) caballos
el origen del movimiento anorporción lateral de la laringe de un caballo con condritis
aritenoidea. El cartílago aritenoides (flechas) está severafueron diagnosticados con desmal del aritenoides porque la
mente engrosado con bordes irregulares y ecogenicidad
plazamiento dorsal del paladar aumentada en su interior. Dorsal está a la izquierda de la causa podría resultar difícil de
blando. Estos caballos no tenían
determinar solamente con una
imagen y ventral a la derecha.
ninguna anormalidad ecográfica
endoscopía en reposo de las vías
característica.
respiratorias superiores. EvidenTodos los caballos con exámenes endoscópicos norcia de hiperecogenicidad de los músculos cricoaritenoimales de las vías aéreas superiores obtuvieron exámedeo lateral y cricoaritenoideo dorsal izquierdos avalaría
nes ecográficos normales. También eran normales los
un diagnóstico de neuropatía laríngea recurrente como
exámenes ecográficos de los caballos con colapso faríncausa de un bajo rendimiento o ruido anormal de las
geo, ondulación del paladar blando, retroflexión de epiglotis, colapso laríngeo asociado con flexión de cabeza,
movimiento anormal del aritenoides secundario a una
Figura 11. Imagen ecográfica en plano transversal de la porción lateral
de la laringe de un caballo con displasia laríngea. La lámina tiroidea
(punta de flecha) se extiende hacia dorsal del proceso muscular del
cartílago de aritenoides (flecha). Dorsal está a la izquierda de la imagen
y ventral a la derecha.
22
Figura 12. Imagen ecográfica en plano dorsal de la porción lateral de la
laringe de un caballo con displasia laríngea. El cartílago tiroides (flecha) y
el cartílago cricoides (pequeña punta de flecha) no se articulan. El músculo cricoaritenoideo lateral (puntas de flecha grandes) se ubica entre el
cartílago tiroides y el cartílago cricoides en el espacio entre ambos cartílagos. Rostral está a la izquierda de la imagen y caudal hacia la derecha.
Ecografía de laringe
vías respiratorias superiores. En los casos de condritis
aritenoidea, la ecografía permite tomar imágenes de
casi la totalidad del cartílago aritenoides. Esto nos ha
permitido evaluar el nivel de enfermedad en el cartílago, diagnosticar cualquier absceso o inflamación perilaringea asociados y hacer un seguimiento de la respuesta al tratamiento. En algunos de los casos mencionados
en este informe, los hallazgos ecográficos no avalaron
el diagnóstico de condritis aritenoidea, por lo que fue
necesario seguir investigando y revisar el diagnóstico.
Las anomalías congénitas que afectan los cartílagos
laríngeos se pueden ver directamente en las imágenes
en vez de inferirlas a partir de las anormalidades
endoscópicas de las vías respiratorias superiores.
Si bien un trabajo anterior24 ha demostrado una
pequeña diferencia (<2 mm) en la profundidad del
hueso basihioides entre caballos con y sin desplazamiento dorsal del paladar blando, en nuestra población
no se identificó una diferencia importante entre estos
grupos. No se observaron hallazgos ecográficos
anormales para un conjunto de afecciones de las vías
aéreas superiores (colapso faríngeo, ondulación del
paladar blando, retroflexión de epiglotis y desviación
Referencias y Notas al pié
1. Martin BB, Davidson EJ, Durando MM, et
ál. Clinical exercise testing: overview of causes
of poor performance. In: Hinchcliff KW,
Kaneps AJ, Geor RJ, et ál., eds. Equine sports
medicine and surgery. Edinburgh: Saunders,
2004;32-41.
2. Martin BB Jr., Reef VB, Parente EJ, et ál.
Causes of poor performance of horses during
training, racing, or showing: 348 cases (19921996). J Am Vet Med Assoc 2000;216: 554-558.
3. Morris EA, Seeherman HJ. Clinical evaluation of poor performance in the racehorse: the
results of 275 evaluations. Equine Vet J
1991;23:169-174.
4. Anonymous. Workshop summary consensus statements on equine recurrent laryngeal
neuropathy, in Proceedings. Havemeyer Foundation Workshop on Equine Recurrent Laryngeal Neuropathy 2003;93-97.
5. Desmaizieres LM, Serraud N, Plainfosse B,
et ál. Dynamic respiratory endoscopy without
treadmill in 68 performance Standardbred,
Thoroughbred and saddle horses under natural
training conditions. Equine Vet J 2009;41:347352.
6. Rakestraw PC, Hackett RP, Ducharme NG,
et ál. Arytenoid cartilage movement in resting
and exercising horses. Vet Surg 1991;20:122127.
7. Chalmers HJ, Cheetham J, Yeager AE, et ál.
Ultrasonography of the equine larynx. VetRadiol Ultrasound 2006;47:476-481.
8. Chalmers HJ, Cheetham J, Mohammed HO,
et ál. Ultrasonography as an aid in the diagnosis of recurrent laryngeal neuropathy in horses,
in Proceedings. 16th American College of Veterinary Surgeons Symposium 2006;3-4.
24
axial de los pliegues ariepiglóticos), pero un trabajo
más a fondo podría revelar hallazgos característicos en
estas enfermedades.
Hemos incorporado la ecografía de laringe a nuestra práctica como procedimiento de rutina para la
investigación de afecciones de las vías aéreas superiores porque contribuye a una evaluación más cabal de
este sistema. La endoscopía es una excelente herramienta para evaluar la función laríngea y anormalidades visibles del aspecto luminal de la laringe, pero la
ecografía permite una exploración más completa de
los cartílagos de la laringe y la musculatura asociada,
estructuras que anteriormente resultaban difíciles de
evaluar. Además, la ecografía puede ser de utilidad
para evaluar la causa de un bajo rendimiento o el ruido anormal de las vías aéreas superiores cuando no es
factible realizar una exploración dinámica de las vías
aéreas superiores (debido a falta de disponibilidad,
asuntos financieros o de responsabilidad civil, renguera concomitante, u otros factores).
Esperamos que los trabajos futuros amplíen los usos
de la ecografía de la laringe hacia otras afecciones de
las vías aéreas superiores.
9. Garrett KS, Woodie JB, Embertson RM, et
ál. Diagnosis of laryngeal dysplasia in five horses using magnetic resonance imaging and
ultrasonography. Equine Vet J 2009;41:766-771.
10. Garrett KS, Woodie JB, Embertson RM.
Association of treadmill upper airway endoscopic evaluation of arytenoid movement with
results of laryngeal ultrasonography and resting upper airway endoscopic evaluation for
diagnosis of recurrent laryngeal neuropathy in
Thoroughbred racehorses. Equine Vet J, submitted.
11. Duncan ID, Amundson J, Cuddon PA, et
ál. Preferential denervation of the adductor
muscles of the equine larynx. I. Muscle pathology. Equine Vet J 1991;23:94-98.
12. Duncan ID, Reifenrath P, Jackson KF, et ál.
Preferential denervation of the adductor muscles of the equine larynx. II. Nerve pathology.
Equine Vet J 1991;23:99-103.
13. Gunreben G, Bogdahn U. Real-time sonography of acute and chronic muscle denervation. Muscle Nerve 1991;14: 654-664.
14. Kullmer K, Sievers KW, Reimers CD, et ál.
Changes of sonographic, magnetic resonance
tomographic, electromyographic, and histopathologic findings within a 2-month period of
examinations after experimental muscle denervation. Arch Orthop Trauma Surg
1998;117:228-234.
15. Walker FO. Neuromuscular ultrasound.
Neurol Clin 2004; 22:563-590.
16. Holcombe SJ, Ducharme NG. Abnormalities of the upper airway. In: Hinchcliff KW,
Kaneps AJ, Geor RJ, et ál., eds. Equine sports
medicine and surgery. Endinburgh: Saunders,
2004;559-598.
17. Haynes PF, Snider TG, McClure JR, et ál.
Chronic chondritis of the equine arytenoid cartilage. J Am Vet Med Assoc 1980;177:11351142.
18. Kannegieter NJ, Goulden BE, Anderson
LJ. Right-sided laryngeal dysfunction in a horse. New Zeal Vet J 1986;3 4:66-68.
19. Lane JG. Fourth branchial arch defects in
Thoroughbred horses: areview of 60 cases, in
Proceedings. 2nd World Equine Airways Symposium
2001.
Available
at
http://www.ivis.org/proceedings/weas/2001
/Lane.pdf. Accessed on January 21, 2010.
20. Goulden BE, Anderson LJ, Davies AS, et ál.
Rostral displacement of the palatopharyngeal
arch: a case report. Equine Vet J 1976;8:95-98.
21. Dixon PM, McGorum BC, Else RW. Cricopharyngeal-laryngeal dysplasia in a horse
with sudden clinical onset idiopathic laryngeal
hemiparesis. New Zeal Vet J 1993; 41:134-138.
22. Ducharme NG, Hackett RP, Woodie JB, et
ál. Investigations into the role of the thyrohyoid muscles in the pathogenesis of dorsal displacement of the soft palate in horses. Equine
Vet J 2003;35:258-263.
23. Cheetham J, Pigott JH, Thorson LM, et ál.
Racing performance following the laryngeal
tie-forward procedure: a case-controlled study.
Equine Vet J 2008;40:501-507.
24. Chalmers HJ, Yeager AE, Ducharme N.
Ultrasonographic assessment of laryngohyoid
position as a predictor of dorsal displacement
of the soft palate in horses. Vet Radiol Ultrasound 2009;50:91-96.
25. Strand E, Fjordbakk CT, Holcombe SJ, et
ál. Effect of poll flexion and dynamic laryngeal
collapse on tracheal pressure in Norwegian
Coldblooded Trotter racehorses. Equine Vet J
2009;41:59-64.
Progestal
CÓMO
ANESTESIAR BURROS
PARA LA REALIZACIÓN DE PROCEDIMIENTOS
QUIRÚRGICOS A CAMPO
Lori A. Bidwell, Doctora en Medicina Veterinaria,
Diplomada de la American College f Veterinary Anesthesiologists (ACVA).
Dirección del autor: : Ross University School of Veterinary Medicine, PO Box 334, St. Kitts, West Indies; e-mail: [email protected]. © 2010 AAEP.
Si bien resulta tentador equiparar el tratamiento del burro al de los equinos, existen importantes diferencias con
respecto al manejo y la dosificación de los fármacos.
En muchos lugares del mundo, el
burro representa una de las principales fuerzas de trabajo. Los médicos
veterinarios que trabajan en burros en
los Estados Unidos de América y
aquellos que participan de iniciativas
"equitarianas" (esfuerzos para mejorar el bienestar de los équidos de trabajo del mundo) deben comprender
la diferencia entre el burro y el caballo en lo que a la anestesia se refiere.
Si bien resulta tentador equiparar
el tratamiento del burro al de los
equinos, existen importantes diferencias con respecto al manejo y la dosificación de los fármacos.
Además, dado que al trabajar en
países en vías de desarrollo los médicos veterinarios podrían encontrarse
con limitaciones en la disponibilidad
de fármacos o con fármacos alternativos, es importante también conocer
protocolos alternativos de anestesia.
Figura 1. El burro es un animal inteligente y la tarea de amansarlo y entrenarlo
generalmente lleva poco tiempo.
Conducta y fisiología
Controlar a un burro manso puede
ser tarea fácil, pero en el caso de un
burro salvaje o uno que ha recibido poco manoseo, esto
podría resultar complicado. El burro es un animal inteligente y la tarea de amansarlo y entrenarlo generalmente
lleva poco tiempo. Como su característica general es
ceder ante la presión y oponerse a la fuerza que tira, la
mejor manera para mover a un burro es mediante un
manejo firme pero suave.
Las diferencias anatómicas y fisiológicas complican la
aplicación de inyecciones endovenosas, la colocación de
sondas orotraqueales y la dosificación de fármacos. El
músculo cutáneo del cuello se extiende sobre la gotera
yugular y dificulta la visibilidad al distender la vena, lo
que complica la venipuntura o la colocación del catéter.
26
Antes de colocar el catéter endovenoso, se recomienda emplear un bloqueo local en el sitio donde se
colocará el catéter y realizar una pequeña incisión en la
piel con un bisturí. La intubación es más difícil debido a
la angulación caudal de la laringe, a la presencia de un
divertículo faríngeo, exceso de mucosa faríngea y de
grandes sacos laríngeos apareados. Además, el pasaje
nasal estrecho complica la intubación nasal.1 El burro
tiene un metabolismo farmacológico más elevado que el
caballo, motivo por el cual se utilizan dosis más altas con
intervalos más frecuentes entre dosis.2-6 La única excepción que se conoce es la administración de guaifenesina,
que parece requerir una dosis menor, ya que podría
Cómo anestesiar burros
Tabla 1. Dosis recomendadas para la sedación, inducción, mantenimiento y analgesia en burros
Dosis
Vía de administración
Duración esperada
0,8 mg/kg (0,3?1,0 mg/kg)
0,08 mg/kg (0,05?0,1 mg/kg)
EV, IM
EV, IM
Detomidina
0,01 mg/kg (0,005?0,04 mg/kg)
EV, IM, sublingual
Dexmedetomidina
0,005 mg/kg (0,0025?0,01 mg/kg)
EV, IM
Acepromazina
0,03 mg/kg (0,02?0,05 mg/kg)
EV, IM, sublingual
15-20 min.
30 min. a 2 h
(la duración depende de la dosis)
20-40 min.
(la duración depende de la dosis)
20-30 min.
(la duración depende de la dosis)
30 min. a 2 h
2,5 mg/kg
0,05 mg/kg (0,02?0,08 mg/kg)
2,0 mg/kg
2,0 mg/kg
8,0 mg/kg
1,0 mg/kg
EV
EV
EV
EV
EV
EV
10-15 min.
10-15 min.
10-15 min.
10-15 min.
20 min.
20 min.
12,5 g guaifenesina
500 mg ketamina
150 mg xilacina (combinado en una
bolsa de 500 ml de SRL o 0,9% NaCl)
EV (se requiere catéter EV)
La infusión demora ~45 min.
La administración en bolo con
frecuencia produce apnea
0,03 mg/kg (0,02?0,05 mg/kg)
0,006 mg/kg
0,01 mg/kg
EV, IM
EV, IM, sublingual
EV, IM
Sedación
Xilacina
Romifidina
Inducción
Ketamina
Diazepam/midazolam
Propofol
Alfaxalona
Tiopental
Telazol
Mantenimiento
Triple goteo
Analgésicos
Butorfanol
Buprenorfina
Morfina
inducirse un paro respiratorio si se utilizan dosis equivalentes a las de caballos.7
Sedación y analgesia
Se ha aplicado de forma segura en burros, xilacinaa,
romifidinab, detomidinac y dexmedetomidinad en dosis
similares a las que se aplican en caballos, logrando una
sedación y analgesia de menor o similar duración que en
caballos. A la hora de determinar el protocolo a utilizar, la
personalidad y conducta del animal dictaminan el rango
de dosis que se deberá seleccionar (Tabla 1). En caso de
requerir dosificación intramuscular, se recomienda duplicar la dosis endovenosa para lograr el mismo efecto. En
un burro tranquilo y dócil, se puede aplicar xilacina en
dosis de 0,8 mg/kg (rango: 0,3-1 mg/kg) EV o bien romifidina a 0,08 mg/kg (rango: 0,05-0,1 mg/kg) EV. La detomidina se puede aplicar en dosis de 0,01 mg/kg (rango:
0,005-0,04 mg/kg) EV, y la dexmedetomidina en dosis de
5 μg/kg (rango: 2,5-10 μg/kg) EV, logrando una sedación
de 20 a 30 minutos. Si el burro está alterado o inquieto, se
puede aplicar acepromacinae con un agonista α-2 en dosis
de 0,03 mg/kg (rango: 0,02-0,05 mg/kg) EV o IM.
El agregado de butorfanolf a un agonista α-2 produce
una mayor sedación y analgesia a una dosis de 0,03 mg/kg
(rango: 0,02-0,05 mg/kg) EV o IM. Se puede administrar
buprenorfinag a 0,006 mg/kg EV, IM o sublingual. Este fármaco administrado solo no produce sedación y podría provocar excitación si se aplica en burros sin un agonista α-2.
Desde la experiencia, la analgesia asociada a buprenorfina
tiene una duración de aproximadamente 6 horas. La morfinah también se puede aplicar en burros a 0,01 mg/kg EV
30-50 min.
6h
2-3 h
o IM, con un efecto analgésico que dura aproximadamente 2 a 4 horas. La administración de antiinflamatorios no
esteroides como flunixin meglumine1 y fenilbutazona resultan eficaces para el dolor posoperatorio, aunque se ha
observado en los estudios que el metabolismo es más rápido en burros que en caballos y por lo tanto se debería
aumentar el intervalo entre dosis a tres veces por día en
lugar de dos veces.3,5,6,8 Los anestésicos locales son de aplicación y duración similar en burros y en caballos.
Inducción
Los agentes de inducción que se emplean en caballos
también se pueden aplicar en burros en dosis similares. La
ketaminak debe administrase en dosis de 2,5 mg/kg y
resulta más eficaz cuando se combina con diazepaml o
midazolamm a 0,05 mg/kg (rango: 0,02-0,08 mg/kg) EV.
Propofoln produce una inducción suave y la recuperación
con anestesia dura aproximadamente 10 a 15 minutos
cuando se administra a 2,0 mg/kg EV. El tiopentalo administrado a 8,0 mg/kg EV produce una anestesia que dura
aproximadamente 20 minutos con una recuperación lenta. La alfaxalonap, fármaco actualmente no aprobado para
uso en EE. UU. Pero sí lo está en Europa y en Australia,
se puede administrar a 2,0 mg/kg EV, con una anestesia
que dura 10 a 15 minutos. Desde nuestra experiencia, la
recuperación de alfaxalona en burros es lenta, con fasciculaciones y debilidad. El burro miniatura es similar al
burro estándar, aunque el Telazolq (combinación de tiletamina y zolazepam) se ha utilizado con éxito y se recomienda para inducción a 1,0 mg/kg EV9. La duración de
la anestesia empleando cualquiera de estos protocolos
27
Cómo anestesiar burros
Figura 2. Existen importantes diferencias entre los burros y los equinos con respecto al manejo y la dosificación de los fármacos
anestésicos se puede extender 3 a 5 minutos agregando un
bolo EV del agente de inducción a un tercio de la dosis
inicial. Es importante proteger los ojos del burro cuando
se lo anestesia. La mayoría de las técnicas de inducción
mantienen el reflejo de parpadeo, pero no siempre resulta
suficiente para prevenir una ulceración de córnea. Se debe
aplicar un lubricante oftálmico estéril en los ojos y colocar
una toalla debajo del ojo que apoya en el suelo para evitar su contaminación con pasto, tierra y viruta.
males, y el mantenimiento se hará con isofluranos o
sevofluranot utilizando concentraciones anestésicas similares a las empleadas en caballos.
La intubación resulta más complicada que en caballos, pero es posible lograrlo si se extiende la cabeza en
línea recta siguiendo la línea dorsal del burro. Se puede
colocar un mordillo (generalmente un caño de PVC)
entre los incisivos, pasando la sonda orotraqueal a través
del mordillo hasta el punto de resistencia en la laringe.
La intubación generalmente se logra introduciendo la
sonda con un movimiento suave durante la inhalación.
En caso de resistencia, se debe retraer la sonda hasta la
cavidad oral, girarla 180º y volver a intentarlo.
Mantenimiento
La combinación de guaifenesina,r ketamina y xilacina, conocida como "triple goteo", se puede utilizar como
anestesia de mantenimiento en burros. Debido a la sensibilidad a la guaifenesina, se recomienda el uso de una
Recuperación
solución de 12,5 g de guaifenesina, 500 mg de ketamina
El burro generalmente se recupera de la anestesia en
y 250 mg de xilacina en una bolsa de 500 ml de solución
forma calmada, rodando a la posición decúbito esternal
salina o solución de Ringer Lactato (SRL). Se puede
hasta estar alerto y ser capaz de pararse al primer intenadministrar esta combinación,
to. La mayoría de los burros se
luego de la inducción, a razón
recuperan sin ayuda y sin comde 1 gota por segundo inicialplicaciones pero se los puede
mente y luego se adaptará a la
asistir en la recuperación si fueprofundidad de la anestesia.
ra necesario. Debido a su
Esta combinación alcanzará
pequeño tamaño, es relativapara un procedimiento quirúrmente fácil inmovilizarlos en
gico menor de aproximadadecúbito lateral colocando una
mente 45 minutos de durao ambas rodillas sobre el cuello
ción. Un bolo rápido de esta
desde dorsal y tirando la cabeza hacia uno, evitando así el
combinación provocará apnea
y por lo tanto, se debe tener
impulso que necesitan para
cautela durante su administrapararse. Toleran y resulta eficaz
ción. Se podrá intubar a los
asistirlos sujetando firmemente
burros miniatura y de tamaño
la cola y dándoles un impulso
cuando tratan de pararse, ya
estándar si se dispone de un
Figura 3. Las diferencias anatómicas y fisiológicas complican la
equipo de anestesia portátil aplicación de de inyecciones endovenosas, la colocación de sondas que suelen pararse desde los
orotraqueales y la dosificación de fármacos
para potrillos o pequeños animiembros anteriores.
28
Cómo anestesiar burros
Figura 4. El burro tiene un metabolismo farmacológico más elevado que el caballo.
Motivo por el cual se utilizan dosis más altas con intervalos más frecuentes entre dosis.
Resultados
Estas técnicas han sido utilizadas con éxito por
estudiantes de veterinaria dentro de un entorno universitario en unos 500 casos de anestesia por año.
Todos los protocolos y procedimientos han sido
aprobados por un Institutional Animal Care and Use
Committee (Comité institucional para el uso y cuidado
de los animales).
Análisis
Resulta fácil trabajar con burros si se conocen los rasgos
de personalidad y se sabe que no responden de la misma
manera que el caballo en lo que a manejo y metabolismo
farmacológico se refiere. La premedicación aplicada en
dosis dependientes del temperamento producirá una sedación adecuada para procedimientos en posición de estación
e inducción de la anestesia. La inducción produce una anes-
Cómo anestesiar burros
tesia que dura 10 a 20 minutos utilizando diferentes agentes
anestésicos para caballos o incluso aquellos que habitualmente se utilizan en pequeños animales. Para mantener la
anestesia en procedimientos más largos se puede utilizar la
combinación de guaifenesina, ketamina y xilacina, o un
anestésico inhalatorio. La recuperación es generalmente
Referencias y Notas al pié
1. Lindsay FE, Clayton HM. An anatomical
and endoscopic study of the nasopharynx and
larynx of the donkey (Equus asinus). J Anat
1986;144:123-132.
2. Peck K, Matthews N, Taylor T, el ál. Pharmacokinetics of sulfamethoxazole and trimethoprim in donkeys, mules and horses. Am J Vet
Res 2002;63:349-353.
3. Coakley M, Peck K, Taylor T, et ál. Pharmacokinetics of flunixin meglumine in donkeys, mules,
and horses. Am J Vet Res 1999;60:1441-1444.
4. Welfare R, Mealey K, Matthews N, et. al.
Pharmacokinetics of gentamicin in donkeys. J
Vet Pharmacol Ther 1996;19: 167-169.
5. Matthews N, Peck K, Taylor T, et ál. Pharmacokinetics of phenylbutazone and its metabolite
oxyphenbutazone in clinically normal horses
and donkeys. Am J Vet Res 1997;58: 53-55.
6. Matthews N, Peck K, Taylor T, et ál. Pharmacokinetics of phenylbutazone and its metabolites in miniature donkeys. Am J Vet Res
2001;62:673-675.
7. Matthews N, Mealey K, Taylor T, et ál. Pharmacokinetics and cardiopulmonary effects of guaifenesin
tranquila y sin complicaciones; no obstante, una simple asistencia podrá evitar intentos prematuros de recuperación.
Dado que son cada vez más los médicos veterinarios
que trabajan en el extranjero en programas "equitarianos", o localmente en burros, es importante que se sientan cómodos al anestesiar a estos pacientes.
in donkeys. J Vet Pharmacol Ther 1997;20:442-446.
8. Matthews N, Taylor TS. Anesthesia of donkeys and mules: how they differ from horses,
in: Proceedings. 56th Annual Meeting of the
American Association of Equine Practioners
2002;110-112.
9. Matthews, N. Anesthesia and Analgesia for
Donkeys and Mules. In: Muir, WW and Hubbell, JAE, ed. Equine Anesthesia: Monitoring
and Emergency Therapy, 2nd ed. St. Louis:
Saunders, Elsevier. 2009:353-357.
a. Rompun, Bayer Animal Health, Shawnee,
KS 66201.
b. Sedivet, Boehringer Ingelheim Vetmedica,
St. Joseph MO 64506
c. Dormosedan, Pfizer Animal Health, Exton,
PA 10017.
d. Dormitor, Pfizer Animal Health, New York,
NY 10017.
e. Promace, Fort Dodge Animal Health, Fort
Dodge, IA 50501.
f. Torbugesic, Fort Dodge Animal Health, Fort
Dodge, IA 50501.
g. Buprenex, Reckitt Benckiser Pharmaceuticals, Richmond, VA 23235.
h. Morphine sulfate solution, Baxter Healthcare, Deerfield, IL 60015.
i. Banamine, Shering?Plough Animal Health,
Summit, NJ 07901.
j. Phenylbutazone Equi?Phar injection, Vedco,
St. Louis, MO 64507
k. Ketaset, Fort Dodge Animal Health, Fort
Dodge, IA 50501.
l. Valium, Abbott Laboratories, Abbott Park,
IL 60064.
m. Versed, Hospira, Lake Forest, IL 60045.
n. Rapinovet, Schering?Plough Animal Health,
Summit, NJ 07901.
o. Sodium pentothal, Abbott Laboratories,
Abbott Park, IL 60064.
p. Alfaxan, Vetoquinol UK Limited, Buckingham MK18 1PA, UK.
q. Telazol, Fort Dodge Animal Health, Fort
Dodge, IA 50501.
r. Guaifenesin, Rood and Riddle Veterinary
Pharmacy, Lexington, KY 40511.
s. Isoflurane USP, Halocarbon Products, River
Edge, NJ 07661.
t. Sevoflo, Abbott Laboratories, Abbott Park,
IL 60064
Enfermedades metabólicas
e infertilidad en la yegua
escribe:
Maria E. Cadario, DVM, MSc, Diplomate ACT
dirección del autor: Práctica privada. Ocala, FL, USA
E - mail: [email protected].
Artículo con revisión.
Los mecanismos por los cuales estas patologías podrían afectar la fertilidad no están completamente esclarecidos pero el aumento de yeguas viejas y/u obesas en la población a reproducir, ha puesto nuevamente la
atención en los mismos.
En los últimos años la población geriátrica equina ha
aumentado significativamente en los sistemas de producción debido a los avances en medicina veterinaria,
nutrición y manejo. En consecuencia, yeguas con historia de buena performance deportiva, entran en programas de reproducción con altas expectativas de producción de embriones para transferencia o preñeces a
término. De allí la importancia de tener en cuenta aquellos problemas asociados a la longevidad y que impactan
la fertilidad en la yegua.
Varias enfermedades metabólicas se asocian empíricamente a la infertilidad equina incluyendo el hipotiroidismo, el Síndrome Metabólico (SM) y Enfermedad de
Cushing o Disfunción de la Parte Intermedia de la Hipófisis (PPID, por sus siglas en inglés).
Los mecanismos por los cuales estas patologías
podrían afectar la fertilidad no están completamente
esclarecidos pero el aumento de yeguas viejas y/u obesas en la población a reproducir, ha puesto nuevamente
la atención en los mismos. El objetivo de este artículo es
ofrecer una revisión crítica de la fisiopatología del SM
y la PPID, su posible efecto en la fertilidad, diagnostico
y tratamientos recomendados.
Durante los meses de otoño, y preparándose para el
invierno, los equinos comienzan a acumular energía en
forma de grasa corporal. Este proceso está controlado
por el eje hipotalámo-hipófisis el cual induce la secreción de péptidos (propiomelanocortina: POMC) que
estimulan el aumento del apetito, la adipogenesis y el
desarrollo del pelo largo y grueso1. Este "mecanismo de
supervivencia" desaparece al final del invierno en caballos sanos pero no en los que padecen SM o PPID. En el
caso de PPID, los signos clínicos (hirsutismo, exceso de
grasa) se deben al exceso y la falta de regulación de las
hormonas hipofisarias y adrenales en circulación.
En el SM el exceso de grasa corporal se produciría
porque se mantiene el mismo nivel de alimentación
durante el invierno, lo cual es percibido por el organismo como un "exceso", especialmente de hidratos de car32
bono, debido a que fisiológicamente debería ser una
época de escasez alimentaria.
La adquisición y permanencia de grasa corporal en
exceso afecta la salud en general y la fertilidad en particular2. Debemos sospechar de la presencia de alguna de
estas dos patologías frente a los siguientes hallazgos clínicos: yeguas generalmente viejas, que están obesas y
que no han perdido completamente su pelo de invierno
o lo hacen más tarde que el resto, laminitis, ciclos estrales anormales, folículos anovulatorios y endometritis frecuentes o persistentes (Fig. 1).
Existen varios test de laboratorio para diagnosticar
estas patologías pero lamentablemente ninguno es concluyente en casos sub-clínicos.
Síndrome metabólico equino (SM)
El SM equino está fuertemente asociado a dos trastornos: obesidad y resistencia a la insulina (IR por sus
siglas en inglés) o intolerancia a la glucosa. Los caballos
con SM están predispuestos a la laminitis y exhiben,
muy frecuentemente, ciclos estrales anormales3.
La obesidad se manifiesta por el depósito regional o
localizado del tejido adiposo subcutáneo (cuello "con
cresta" o "de gallo", base de la cola, paletas y prepucio
en los caballos castrados- Fig.2). Estos caballos parecieran estar genéticamente predispuestos a necesitar menos
calorías para mantener un peso corporal adecuado
("easy keepers" o "mantenidos"). Algunas razas están
más predispuestas que otras como los Ponis, Cuarto de
Milla, Morgan, Árabes y Saddlebreds4.
Fisiopatología
Cuando se produce la ingesta de comidas ricas en
carbohidratos, estos se transforman en glucosa produciendo una hiperglucemia fisiológica que estimula la
liberación de insulina pancreática. La insulina estimula la
absorción de la glucosa por las células. La glucosa intracelular se utiliza inmediatamente o se almacena como
glucógeno o grasa. La cantidad o nivel de insulina nece-
Enfermedades metabólicas
saria para la absorción de la glucosa en las células está
muy regulada y se denomina "sensibilidad a la insulina".
Cuando un caballo desarrolla "resistencia a la insulina"
(IR), se produce una disminución en la absorción de la
glucosa-dependiente de insulina- en el tejido esquelético
y el adiposo creando así un aumento en la glucosa
plasmática (hiperglucemia)2,4.
Esta situación a su vez genera hiperinsulinemia en un
esfuerzo del páncreas por compensar la insensibilidad
celular perpetuando esta condición.
Poco se sabe de los factores predisponentes a IR; sin
embargo, la obesidad parece ser el factor recurrente. Se
ha sugerido que determinados adipocitos se comportan
como tejido endocrino liberando cortisol, adipocitokinas, citokinas pro-inflamatorias (Tumor Necrosis Factor-α, TNF-α ) y leptina los cuales afectarían negativamente la absorción de la glucosa por las células2,
producirían inflamación y compromiso vascular y endotelial. La edad y la dieta son factores contribuyentes al
desarrollo de IR.
La resistencia a la insulina aumenta con la edad y con
las dietas ricas muy ricas en hidratos de carbono.
La obesidad en los caballos, especialmente en ponis,
es un factor de riesgo para el desarrollo de laminitis.
La explicación más simple seria el peso excesivo
sobre el casco y la superficie inter-laminar4 (Figs. 3-4). El
hecho de que los ponis están tan predispuestos siendo
relativamente livianos, sugiere una predisposición genética de esta raza al SM y la IR2,4,5. El mecanismo por el
cual la obesidad e IR producen laminitis no está completamente dilucidado. Una teoría sostiene que debido a
que la glucosa es esencial para la salud y fortaleza del
casco, la IR crea deprivación de glucosa a nivel celular lo
cual aumenta el riesgo de laminitis.
Otra teoría, más reciente, sostiene
que el exceso de insulina estimularía
la liberación laminar de endotelin -I
(ET-1), favoreciendo la vasoconstricción, la activación plaquetaria y la
adhesión de leucocitos a la pared vascular laminar, remedando la fisiopatología propuesta para laminitis cuando se produce una inflamación
sistémica (ej: endotoxemia)6.
Diagnóstico
Existen características en común
en los caballos con SM o IR: edad (820 años), obesidad, distribución
característica de la grasa corporal
(cuello, hombros, base de la cola), no
necesitan mucha comida para mantener su estado corporal o tienen dificultad para perder peso, historia, presencia o predisposición a laminitis y
ciclos estrales anormales.
El valor basal de insulina es un
buen indicador de IR ya que se pro-
Figura 1. Yegua vieja, con tejido adiposo localizado y problemas de fertilidad.
duce hiperinsulinemia compensatoria y en respuesta a la
hiperglucemia persistente.
Las muestras de sangre para enviar al laboratorio
deben tomarse temprano por la mañana después de una
noche en ayuno. Se aconseja sacar a los caballos de las pasturas durante la noche y colocarlos en un box con heno
tratando así de disminuir el estrés (y la consiguiente liberación de cortisol, aumento de la glucosa e insulina).
Valores de insulina basal > 20µU/mL son indicativos
de posible IR y valores > 30µU/mL se consideran confirmatorias4,7. Aunque los valores basales de insulina son
buenos indicadores, no son de mucha ayuda al iniciarse
la patología o cuando esta es sub-clínica ya que el
aumento de insulina podría no alcanzar o superar los
valores de referencia. Recordar que estos últimos varían
según los laboratorios y deben considerarse cuando se
Figura 2. Yegua de 20 años con Síndrome Metabólico. Deposito localizado de tejido adiposo subcutáneo en cuello: “de gallo” o “con cresta”
33
Enfermedades metabólicas
interpretan los resultados (ej: insulina >30µU/mL University of
Tennessee vs. >43µU/mL Michigan State University7).
En caso de evaluar un caballo
que tenga toda o parte de la sintomatología consistente con SM o
IR pero que posee valores normales de insulina basal, debe realizarse un test combinado de glucosainsulina7. Nuevamente, se debe
evitar el stress durante este test
para no causar hiperglucemia
endógena.
El SM posee varios síntomas
en común con PPID. Para diferenciarlos se aconseja llevar a
cabo el test de supresión de Dexametasona que solo va a ser positivo en caso de PPID.
Por esta razón, el SM también
ha sido descripto como IR en
ausencia PPID.
Figura 3. La predisposición a laminitis en SM, esta altamente asociada a las variaciones estacionales de pasturas y su contenido en carbohidratos.
Disfunción de la pars intermedia de la Hipofisis (PPID)
La enfermedad de Cushing o
disfunción de la pars intermedia de
la Hipofisis (PPID) es una alteración metabólica con cierta prevalencia en los caballos debido al
aumento en la población geriátrica10,11. En la mayoría de los casos
se inicia alrededor de los 18-23
años pero ha sido descripta en
caballos de 7 años. Todas las razas
pueden ser afectadas pero es más
prevalente en Ponis y Morgans.
Esta enfermedad se caracteriza
por la hiperplasia adrenocortical y
la secreción excesiva de glucocorticoides, mineralocorticoides y
corticoides sexuales en respuesta a
una excesiva secreción de adrenocorticotrofina (ACTH por siglas
en inglés).
En el caballo, el hiperadrenocorticismo es hipotalámico o
pituitario/hipofisario en origen,
no adrenal. La disfunción puede
deberse a la presencia de adenomas benignos en la parte media de
la hipófisis o a la degeneración de
neuronas dopaminergicas hipotalámicas7, 11, 12.
Tratamiento
Está dirigido a disminuir la grasa corporal y mantener los niveles
de insulina en valores <30µU/mL.
Figura 4. Caballos con predisposición a SM necesitan
Los caballos afectados deben reci- menos calorías para mantener peso corporal adecuado y,
generalmente, son obesos.
bir una dieta baja en carbohidratos
para reducir la ingesta calórica y
deben aumentar la actividad física
para utilizar las calorías y estimular la absorción de glucoFisiopatología
sa. Debe eliminarse el grano de la dieta y limitar el tiemLa hipófisis equina posee tres lóbulos definidos: el
po de alimentación voluntaria en pastura, en especial las
lóbulo anterior o pars distalis (adenohipófisis en humanuevas y de alta calidad con gran concentración de carnos), el posterior o pars nervosa (neurohipófisis en humabohidratos solubles de alta absorción.
nos) y el intermedio o pars intermedia. El lóbulo anterior
Se recomienda la suplementación con levotiroxina
contiene 5 tipos celulares (corticotropos, somatotropos,
sódica (Thyro L1) si el caballo pierde peso muy lentaetc.) los cuales secretan diferentes hormonas. El lóbulo
mente o la hiperinsulinemia persiste aun después de
intermedio posee un solo tipo celular; los melanotropos.
haber alcanzado el peso deseado4.
Las células de estos 2 lóbulos, reciben signos regulatoEsta droga se administra a una dosis de 48 mg/día
rios desde el hipotálamo a través de las terminaciones
vía oral (la dosis es independiente del peso del animal)
nerviosas provenientes de las neuronas dopaminergicas
durante 3 a 6 meses para acelerar la pérdida de peso
del núcleo periventricular hipotalámico. Tanto los melaespecialmente en aquellos que no pueden hacer ejercinotropos del lóbulo intermedio como los corticotropos
cio debido a laminitis8.
del lóbulo anterior secretan un precursor llamado proLa hiperinsulinemia / hiperglucemia persistente se
piomelanocortina (POMC). Este péptido va a ser procetrata utilizando una combinación de levotiroxina sódica
sado en forma diferente según su origen; se va a trans(24 mg/día vía oral) y una biguanida (Metformina2, 15
formar en ACTH en los corticotropos y en distintos
mg/kg PO dos veces al día). No se conoce exactamente
péptidos secretorios en los melanotropos (hormona estiel mecanismo de acción pero se cree que inhibiría la glumuladora de melanocitos alfa (α-MSH), beta-lipoproteínas (ß-LPH), ß-endorfinas) y ACTH. La Hormona libeconeogénesis y aumentaría la absorción de la glucosa4.
radora de Corticotrofina (CRH por siglas en inglés)
Estudios recientes mostraron que esta droga no se absorproveniente del núcleo paraventricular, estimula la trasbe bien en los caballos lo cual genera baja biodisponibicripción de POMC y ACTH. La regulación se produce
lidad y la necesidad de aumentar la frecuencia de admien combinación con la dopamina proveniente de las
nistración9. La administración diaria de 5-25 mg de
neuronas del mismo núcleo que inhibiría la transcripción
cromo aumentaría la eficiencia de la insulina en el trasde las mismas. Estas hormonas comparten, además, la
porte de la glucosa intracelular 4,8.
34
Enfermedades metabólicas
Figura 5. Yegua de 18 años diagnosticada con PPID. El signo clínico mas clásico de esta enfermedad es el hirsutismo.
misma dinámica secretoria: aumenta en respuesta al
stress e hipoglucemia y disminuye en respuesta a los glucocorticoides11. Cuando existe PPID, desaparece la
retroalimentación negativa fisiológica y la secreción de
la ACTH y las otras hormonas originadas del POMC se
mantienen elevadas13.
La exposición crónica a niveles elevados de estas hormonas resulta en una serie de signos clínicos. El más clásico es el hirsutismo (47-100%) y/o la incapacidad de perder el pelaje de invierno ("cambio de pelo"- Fig. 5). Se
cree que el hirsutismo resulta del aumento en la secreción
de la MSH desde el lóbulo intermedio de la hipófisis o por
el aumento en la secreción de andrógenos por las adrenales. En mujeres con síndrome de ovarios quísticos, el hirsutismo ha sido asociado a hiperandrogenismo14. Esta
enfermedad se presenta además con cambios en el peso,
acumulación de grasa subcutánea en el cuello, grupa,
hombros y base de la cola (29-67% de los afectados).
Otras manifestaciones clínicas son: atrofia muscular
(catabolismo proteico), inmunosupresión (que predispo-
36
ne a retardo en la cicatrización e infecciones: endometritis, abscesos en los cascos), polidipsia y poliuria (25%),
letargia (↑ ß-endorfinas), taquipnea, hiperhidrosis (65%)
y, ocasionalmente, perturbaciones neurológicas7,15 (Fig
6). Se produce laminitis en el 50% de los casos avanzados. Una posible explicación seria que el exceso de corticoides promueve la hiperglucemia e hiperinsulinemia/IR con las consecuencias para el casco previamente
descriptas (ver fisiopatología de SM- Figs. 7-8).
Un alto porcentaje de yeguas muestra lactación persistente (hiperprolactinemia), endometritis (posiblemente debido a la inmunosupresión) y folículos anovulatorios durante la temporada reproductiva8,11 (Fig. 9).
En seres humanos, el 23% de los pacientes con
enfermedad de Cushing se presentan con galactorrea
(↑ prolactina) y amenorrea (inhibición de GnRh por el
↑ de prolactina).
Este aumento en prolactina se debería a una producción excesiva de esta hormona por parte de los adenomas corticotróficos o por una alteración en la regulación
Enfermedades metabólicas
ritmicidad del cortisol y la combinación del DST y el test de estimulación de TRH 12,15,16,17.
La precisión diagnostica de
estas pruebas en comparación
con los hallazgos histológicos
(adenomas) de la parte intermedia de la hipófisis fue de
DST/TRH 81%; DST 71%; TRH
71%. Hirsutismo solo: 86%12.
Las pruebas endocrinológicas
Diagnóstico
estáticas
incluyen la evaluación de
Figura 6. Yegua de 18 años diagnosticada con PPID. El
Los caballos afectados son
la concentración plasmática de
aumento de ß -endorfinas serian responsable de los signos de letargia.
generalmente viejos (8-25 años),
ACTH y de insulina8,12. Estudios
obesos, con la distribución caracrecientes concluyeron que niveles
terística de grasa subcutánea,
elevados de ACTH, una vez elimilaminitis e infertilidad (ciclos estrales anormales, endonados aquellos factores que podrían influir como stress y
metritis)8, 10, 11, 12. La presencia de hirsutismo tiene más
época del año, son confirmatorios de PPID. Cuando la
poder diagnostico que cualquier prueba endocrinológica
presencia de valores normales de ACTH está acomsola o combinada12. Existen pruebas de laboratorio
pañada de signos clínicos/sub-clínicos de PPID, los
endocrinológicas dinámicas, estáticas y combinadas.
autores recomiendan realizar el test de estimulación de
hormona liberadora de Tirotrofina (TRH) midiendo la
Pruebas endocrinológicas
respuesta en niveles de ACTH16.
Dentro de los pruebas endocrinológicas dinámicas
Douglas (2009) propone que la evaluación de casos en
se encuentran: test de supresión de Dexametasona
los que se sospecha PPID y SM debe comenzar con la
(DST por siglas en inglés), el test de estimulación de
colecta de 2 muestras de sangre separadas, la primera por
hormona liberadora de Tirotrofina (TRH), el test de
la mañana y la segunda 8-10 horas más tarde (Tabla 1)8.
de las neuronas dopaminergicas
hipotalámicas7, 11, 13.
Las alteraciones bioquímicas
más comunes en PPID son la
hiperglucemia, la hiperinsulinemia
e IR. Otros cambios incluyen un
aumento de las enzimas hepáticas,
colesterol y triglicéridos. El hemograma puede mostrar anemia,
neutrofilia y linfopenia.
Enfermedades metabólicas
Figura 7 y 8. Laminitis se presenta frecuentemente tanto en SM como en PPID. Estaría relacionada en ambos casos a la presencia
de resistencia a la insulina y la consiguiente hiperinsulinemia.
Se debe eliminar el grano de la dieta por lo menos 4 horas
antes de la toma de muestras y se debe evitar el stress ya
que los parámetros a medir (cortisol, insulina y tiroxina/TT4) pueden resultar en falsos positivos.
Los niveles absolutos de cortisol van desde 20 a 90
ng/ml pero este test mide específicamente la diferencia
entre las 2 muestras (am y pm).
Una diferencia menor al 30% entre el nivel de cortisol am y el pm indica una pérdida del ritmo normal diur-
no lo cual es sugestivo de PPID. Por su parte, un valor
de insulina > 25 a 30 µU/ml seria indicativo de IR y
posiblemente SM.
Los caballos que poseen signos tempranos de
PPID ("Pre-Cushingoide") o de los cuales se sospecha, pero han tenido resultados dentro de rangos normales en las pruebas de labortaorio, deben re-evaluarse cada 4-6 meses evitando los meses de otoño (falsos
positivos). La evaluación debe incluir el examen físico,
Enfermedades metabólicas
hemograma, bioquímica, ACTH, concentración de
insulina y DST12.
Tratamiento
El tratamiento de caballos con PPID no solo comprende aspectos farmacológicos sino también un buen
manejo: pelado corporal frecuente, cuidados de los cascos y dentadura, asegurar buena nutrición y antibióticos
en forma intermitente o permanente si fuera necesario.
La droga de elección es un agonista de la dopamina:
mesilato de pergolide (1-5 mg VO/día/500 Kg) ya que
esta enfermedad está muy frecuentemente asociada a
una pérdida de las inervaciones dopaminergicas provenientes del hipotálamo. El tratamiento con pergolide
debe suspenderse en yeguas preñadas 3 semanas antes
del parto para evitar agalactia debido a la supresión de la
secreción de prolactina. El efecto secundario más común
de esta droga es la disminución del apetito.
Otra droga que se utiliza sola o en combinación con el
pergolide es un antagonista de la serotonina, ciproheptadina (0.25 mg/kg/VO/cada 12 o 24 h ó 200 a 400 mg/500
kg/VO/cada 24 h). La implementación de esta terapia
está basada en el efecto de la serotonina en la secreción de
ACTH por la eminencia media hipofisaria en ratas12, 18. Su
uso es controvertido ya que los resultados son comparables a los obtenidos con buen manejo solamente.
Se ha sugerido que la administración diaria de una
combinación de 1 mg de pergolide + 200 mg de ciproheptadina acelera la respuesta clínica a la medicación,
aumentando las posibilidades de preñez en las yeguas
con historia de folículos anovulatorios o endometritis
persistente8. Estudios recientes evaluaron los resultados
del uso de Trilostane (0.4 - 1.0 mg/kg/cada 24 h en la
comida) en caballos con PPID.
Esta droga es un inhibidor competitivo de la enzima
adrenocortical 3-ß hidroxiesteroide dehidrogenasa necesaria para la síntesis de cortisol. Aunque algunos caballos
mostraron una disminución en los signos clínicos, no es
recomendable ya que solo el 20% de los equinos con
PPID tienen hiperplasia adrenocortical19.
Edad, obesidad, resistencia a la insulina/hiperinsulinemia e infertilidad
Estudios recientes asocian la presencia de obesidad y
resistencia a la insulina / hiperinsulinemia con infertilidad y laminitis20. El SM y la PPID comparten características clínicas y, especialmente, metabólicas las cuales
podrían explicar los trastornos de de fertilidad observados en estos pacientes.
a) Los signos clínicos en común son: edad mayor a 15
anos,obesidad, adiposidad regional, historia, presencia o predisposición a laminitis e infertilidad.
b) Las alteraciones metabólicas que comparten son:
aumento de insulina basal, IR y, no tan consistente-
Enfermedades metabólicas
mente, hiperglucemia. La resisInsulina
Muestra
TT4
Cortisol
Cortisol
tencia a la insulina periférica en
Normal =
(Hora de
Normal = 12.0
Normal =
Normal = >30
los tejidos esquelético y adiposo
25 μU/ml
muestreo)
ng/ml
20-90 ng/ml
% diferencia
resulta en hiperinsulinemia
compensatoria. Existiría tam35 μU/ml
8 to 10 AM
11.9 ng/ml
58 ng/ml
11 %
bién un aumento del nivel de
leptina (modulador del apetito)
55 μU/ml
4 to 6 PM
12.2 ng/ml
65 ng/ml
acompañado de "resistencia a la
leptina", aumento de corticoides
Tabla 1. Perfil típico de caballo con IR y PPID. Adaptado de [8].
y ácidos grasos circulantes.
c) La presencia de tejido adiposo
inicio de una nueva etapa folicular, las células de la graen exceso produce, a nivel celular-molecular, un
nulosa serian condicionadas a desarrollar una respuesta
aumento en "adipocitokinas" como, por ejemplo, la
temprana a la LH, (al ser expuestas a niveles elevados)
citokina pro-inflamatoria TNF-α 20, 21, 22. Niveles
que sumado a los bajos niveles de FSH, tendría un efecelevados de TNF-α inhibirían la función normal
del receptor celular de insulina favoreciendo la IR.
to anti-proliferativo en las células de la granulosa inhiEl aumento de ácidos grasos circulantes también
biendo con ello el crecimiento y desarrollo folicular
afectan negativamente el transporte de glucosa crenormal. La administración de metformina (que aumenando hiperglucemia, hiperinsulinemia e IR.
ta la absorción de glucosa) en mujeres con POS dismiEl síndrome de ovarios poliquístico (POS-por siglas
nuyo los niveles plasmáticos de insulina, LH y andrógeen inglés) en mujeres podría utilizarse como modelo
nos, comprobando así el rol protagónico de la
para entender como la hiperinsulinemia afecta la fertilihiperinsulinemia en esta alteración endocrina14, 25.
A nivel local, en el ovario, el alto nivel de insulina cirdad en yeguas. Algunos de los signos clínicos que el POS
culante, así también como del factor de crecimiento
comparte con PPID y SM son: disfunción ovulatoria,
insulínico tipo 1 (insulin-like growth factor-1/IGF-1),
hirsutismo de grado variable, obesidad e hiperinsulineactúan directamente en las células de la teca en sinergismia/IR. En mujeres, la hiperinsulinemia crónica e IR se
mo con la LH estimulando la producción del citocromo
asocian con un aumento en la duración de la fase folicuP450c17 y testosterona26. Otro de los mecanismos de
lar del ciclo menstrual14. Esto último se debería a la alta
incidencia de quistes (anovulatorios) ováricos y se cree
acción de estas hormonas (insulina e IGF-1) sería el de
que la responsabilidad recae sobre la hiperinsulinemia.
la disminución de la secreción de globulinas transportaNiveles altos de insulina estimularían la liberación selecdoras de hormonas sexuales (SHBG)) y de proteínas
tiva de GnRH/LH y provocarían además hiperplasia de
transportadoras de IGF-1 (IGFBP-1) lo cual agrava el
las células tecales aumentando la secreción de esteroides
hiperandrogenismo, la inhibición de la FSH y, conseováricos14, 23, 24. Se ha demostrado que la IR no afectaría
cuentemente, el desarrollo folicular14, 26. Existen muy
por si la esteroidogenesis ovárica ya que el cultivo de
pocos estudios sobre el efecto de SM, PPID o IR en la
células tecales y de la granulosa mostró una respuesta
función reproductiva de la yegua.
normal a la dosis cuando fueron expuestas a la insulina.
Por ejemplo, se ha comprobado que una gran proSe concluyo que el nivel excesivo de insulina circuporción de yeguas obesas continúan ciclando durante el
lante es la responsable de la hipersecreción androgénica
invierno en comparación con yeguas de peso apropiado
a nivel de la teca.
o delgadas23,27,28. Después de varias investigaciones se
El aumento en la frecuencia de pulsos de GnRH
concluyo que el responsable de la pérdida del estado
estimularía, selectivamente, la
anovulatorio estacional no era el
secreción de LH pero no de FSH.
nivel plasmático de leptina como
La LH estimula la expresión del
se creyó, sino el exceso de balancitocromo P450c17 en las células
ce energético. En las yeguas, sería
de la teca folicular aumentando
más importante el reconocimienasí la producción de 17α-hidroxito de la disponibilidad de sustrato
progesterona y testosterona. El
metabólico para la ciclicidad que
aumento en testosterona va a
la percepción de un cambio en el
afectar negativamente la secrefotoperiodo27,28.
ción de FSH. Este microambienEstudios posteriores reportate
hormonal
(↑LH/↓FSH)
ron aberraciones en la duración
podría disminuir la tasa de crecidel ciclo estral en yeguas obesas
miento o inhibir la maduración
(y con IR/hiperinsulinemia) en
folicular, disminuir el número de
comparación con yeguas normacélulas de la granulosa, la aromales23,29. Este grupo de yeguas mosFigura 9. Folículo anovulatorio en yegua con SM. Esta
tización (↓ estrógenos), y finaltro intervalos inter-ovulatorios
patología, junto con la luteinización folicular, serian responsables del alargamiento del intervalo inter-ovulatorio.
mente, inhibir la ovulación14. Al
más largos (36.72±4.77 vs.
40
Enfermedades metabólicas
Figura 10. Variaciones del ciclo estral: Los intervalos inter-ovulatorios
fueron mas largos (36.72 + 4.77 vs. 26 + 0.5 dias) y la fase luteal fue
mas prolongada (30 + 5.5 vs. 17.6 + 0.18 dias) en yeguas obesas en
comparación con yeguas flacas. Vick et al., Reproduction, Fertility and
Development 2006;18:609-617.
26.00±0.54 días), fases luteales o diestros prolongados
(30.00±5.55 vs. 17.67±0.18 días) y una mayor incidencia
de folículos anovulatorios cuando se compararon con
yeguas delgadas30,31 (Fig. 10). Los niveles de progesterona
se mantuvieron elevados por periodos entre 37 y 78 días
en el 83% de las yeguas obesas mientras que, en las
yeguas delgadas no supero los 22 días30. Se especula que
la persistencia de niveles elevados de progesterona en
yeguas obesas se debería a la presencia de cuerpo lúteo
persistente o luteinización de folículos anovulatorios30,32.
La evaluación ultrasonográfica del tracto reproductivo de esas yeguas demostró la presencia de folículos
anovulatorios persistentes durante los periodos de progesterona elevada30,33.
Aunque los mecanismos por los cuales la hiperinsulinemia e IR afectan la reproducción no son claros,
parecería que, a diferencia de las mujeres con POS, en
la yegua afectarían directamente el ovario y no el eje
hipotalámico-hipofisario-gonadal. Session y col
(2004), demostraron que la inducción transitoria de
hiperinsulinemia en yeguas alarga el intervalo interovulatorio (19.57±2.66 vs. 15.57±0.97 días), aumenta el
nivel del pico de progesterona (12.87±4.04 vs.
8.78±2.23 ng/mL) pero no afecta los niveles de LH
(3.9±0.34 vs. 3.29±0.13 ng/mL) en comparación con
yeguas control29 (Fig.11).
El pico de progesterona fue mayor en estas yeguas
(vs control) sugiriendo un aumento en la síntesis y secreción de esteroides ováricos a pesar de la falta de aumento en los niveles de LH.
Estudiando la repetibilidad de los folículos anovulatorios hemorrágicos en ponis, Ginther (2006) también
alejo el foco del eje hipotalámico-hipofisario-gonadal
como responsable de esta patología en las yegua34. Sus
estudios revelaron que, en las yeguas con folículos anovulatorios, el diámetro folicular, los niveles de LH y de
progesterona fueron similares el día 0 (ovulación) y el
día -1 (anterior o previo) cuando se los comparo con
42
Figura 11. Aberraciones en la duración del ciclo estral. La inducción transitoria de hiperinsulinemia en yeguas produjo niveles mas altos en los
picos de progesterona. Session et al. J Anim.Sci. 2004; 82:2321-2328.
los folículos que ovularon normalmente.
Estos resultados se obtuvieron de yeguas normales
por lo tanto no sabemos si serian aplicables a las yeguas
obesas o con hiperinsulinemia.
Como mencionamos anteriormente, el alargamiento
del intervalo inter-ovulatorio (o inter-estro) de las
yeguas obesas se debería a la persistencia de folículos
anovulatorios (fase folicular alargada) o a luteinización
folicular sin ovulación (extensión de la fase luteal). Una
explicación podría ser la que se utiliza para el POS en
las mujeres: los niveles elevados de insulina en yeguas
con SM o PPID, se unen a receptores en las células
tecales aumentando la producción del citocromo
P450c17 y de testosterona26. El hiperandrogenismo inhibiría la secreción de FSH y este ambiente hormonal
(↑andrógenos/↓FSH) afectaría negativamente el desarrollo y maduración folicular. Habría una disminución
del número de células de la granulosa con la consiguiente disminución en aromatización y el nivel de
estrógenos (↓E2) para finalmente inhibir la ovulación.
Esta posible explicación solo podría confirmarse
midiendo los niveles de andrógenos y FSH en las
yeguas con IR/hiperinsulinemia.
Otra posible explicación de la persistencia folicular o
falla en la ovulación en yeguas con hiperinsulinemia
estaría en el efecto de esta hormona sobre los mecanismos normales de desarrollo y remodelación folicular
necesarios para la ovulación. Los eventos de remodelación folicular locales son llevados a cabo por metaloproteinasas (MMPs) e inhibidores tisulares de metaloproteinasas (TIMPs). Estudios recientes in vitro indican que la
exposición de células de la granulosa equina a niveles
altos de insulina afecta la expresión de MMP y TIMP en
estas células. Específicamente, disminuye la expresión de
TIMP-2 modificando la proporción en la expresión de
MMP/TIMP en las células granulosa.
Esta alteración seria responsable de la incapacidad de
remodelación de la pared folicular necesaria para el
desarrollo, migración y ovulación35.
Enfermedades metabólicas
Conclusiones
Si bien la fisiopatología de las enfermedades metabólicas como SM, PPID e IR no están completamente
aclaradas, existe un aumento en las evidencias de su
impacto negativo en la fertilidad equina. El veterinario
debería considerar realizar pruebas de diagnostico
específicas para estas patologías cuando se enfrenta a
una yegua vieja, obesa, con historia de folículos anovulatorios frecuentes, endometritis y/o laminitis.
Aunque la precisión de las pruebas diagnósticos disponibles no sea la deseada, la combinación de ellas
sumada a una buena evaluación clínica puede contribuir a una mayor precisión en la detección de las
yeguas afectadas.
Un régimen estricto de ejercicios, la eliminación de la
dieta de alimentos ricos en carbohidratos sumado a la
suplementación con hormona tiroidea y/o pergolide
deberían mejorar los índices de fertilidad.
Bibliografía
1. Donaldson MT, McDonell SM, Schanbaucher BJ, et al. Variation in plasma adrenococorticotropic hormone concentration and Dexametasone suppression tests results with season,
age, and sex in healthy ponies and horses. J Vet
Int Med 2005;19:217-222.
2. Johnson PJ, Ganjam SK, Turk JR, Buff PR.
Obesity paradigm: an introduction to the
emerging discipline of adipobiology. Proc
52nd Annu AAEP Conv 2006;41-50.
3. Johnson PJ. Equine Metabolic Syndorme. J
Eq Vet Sci 2003;23:373-374.
4. Frank N. Managing equine Metabolic Syndrome. Comp Cont Ed 2008;3:348-355.
5. Treiber KH, Kronfeld DS, Hess TM, et al.
Evaluation of genetic and metabolic predisposition and nutritional risk factors for pasture
associated laminitis in ponies. J Am Vet Med
Assoc 2006; 228: 1538-1545.
6. Geor R and Frank N. Metabolic Syndromefrom human organ disease to laminar failure in
equids. Vet Immunol Immunopathol 2009;
15;129(3-4):151-154.
7. Frank N. Insulin resistance in the horse. Proc
52nd Annu AAEP Conv 2006;51-54.
8. Douglas RH. Endocrine assessment and
management of insulin resistance and PPID.
Proc Primer Congreso Argentino de Reproduccion Equina 2009;81-83.
9. Hustance JL, Firshman AM, Mata JE. Pharmacokinetics and bioavailability of metformin
in horses. Am J Vet Res 2009;70(5):665-668.
10. McFarlane D. Diagnosing pituitary pars
intermedia dysfunction. Comp Cont Ed 2007;
2:208-213.
11. McFarlane D. Role of equine hypothalamic-pituitary pars intermedia axis in health and
disease. 52nd Annu AAEP Conv 2006;55-59.
12. Schott HC. Pituitary pars intermedia dysfunction: challenges of diagnosis and treatment. 52nd Annu AAEP Conv 2006;60-73.
13. Feldman and Nelson. Hyperadrenocorticism.
In: Canine and Feline Endocrinology and Reproduction. First Ed. Ed WB Saunders. 1987;137-186.
14. Castro Acuña V, Martinez-Martinez L,
44
María Eugenia Cadario MV.
DVM, recibida en la Universidad Nacional de
Río Cuarto, Córdoba, Argentina, 1988. Residencia en Teriogeneología Large Animal Clinical Sciences College of Vet Medicine.
U. de Florida. Board Certification del American
College of Theriogenology. Certificación ECFVG
del American Veterinary Medical Association. Prof.
Adj. de la U. de Florida en el Depto de Cs. Clínicas de Animales Grandes, Gainesville, Florida. Titular de la "Equine Reproduction Specialty Practice", Florida. Consultora en Reproducción Equina en
"Ferguson and Associates" Equine Hospital. Florida. Autora de publicaciones
y capítulos de libros sobre Reproducción. Miembro de la CD de la Florida Association of Equine Practitioners y socia de la American Association of Equine Practitioners y del Scientific Research Society "Sigma Xi", del American College of Theriogenology, de la Society for Theriogenology del American Veterinary Medical Association y de la AAVE. Revisora del JAVMA.
E - mail: [email protected].
Cravioto MC. Resistencia a la insulin en el syndrome de ovaries poliquisticos. Revista de
Investigacion Clinica 2004;56:763-772.
15. McFarlane D, Dybdal N, Donaldson MT, et
al. Nitration and increase alpha-synuclein expression associated with dopaminergic neurodegeneration in equine pituitary pars intermedia dysfunction. J Neuroendocrinology 2005;17;73-80.
16. Beech J, Garcia M. Hormonal response to
thyrotropin-releasing hormone in healthy horses and in horses with pituitary adenomas. Am
J Vet Res 1985;46:1941-1943.
17. Dybdal NO, Hargreaves KM, Madigan JE,
et al. Diagnostic testing for pituitary pars intermedia dysfunction in the horse. J Am Vet Med
Assoc 1994;204:627-632.
18. Kreiger DT, Amorosa L, Linick F. Cyproheptadine-induced remission of Cushing's
disease. N Engl J Med 1975;293:893-896.
19. McGowan CM, Neiger R. Efficacy of trilostane for the treatment of equines Cushing's
syndrome. Equine Vet J 2003;35:414-418.
20. Vick MM, Adams AA, Murphy BA, Session DR, Horohov DW, Cook RF, Shelton BJ,
Fitzgerald BP. Relationship among inflammatory cytokines, obesity, and insulin sensitivity
in the horse. J Anim Sci 2007;85:1144-1155.
21. Horohov DW. Immunosenescence and
inflamm-aging in the aged horse. In: The chronically infertile mare (Abstract book). The
Havemeyer Foundation 2008; page 21.
22. Adams AA, Katepalli MP, Kohler K, Reedy
SE, Stilz JP, Vick MM, Fitzgerald BP, Lawrence LM, Horohov DW. Effect of body condition, body weight and adiposity on inflammatory cytokines responses in old horses. In: The
chronically infertile mare (Abstract book). The
Havemeyer Foundation 2008; page 22.
23. Diamanti-kandarakis E, Bergiele A. The
influence of obesity on hyperadrenogenism and
infertility in the female. Obese Rev 2001;2:231-238.
24. Nestler JE. Obesity, insulin, sex steroids
and ovulation. Int J Obes Relat Metab Disord
2000;24:S71-S73.
25. Sattar N, Hopkinson ZE, Greer IA. Insulin sensitizing agents in polycystic ovary syn-
drome. Lancet 1998;351:305-306.
26. Poretsky L, Cataldo NA, Rosenwaks, Giudice LC. The insulin-related regulatory system
in health and disease. Endocrine Reviews
1999;20(4):535-582.
27. Fitzgerald BP, Reedy SE, Sessions DR,
Powel DM, McManus. Potential signals mediating the maintenance of reproductive activity
during the non-breeding season of the mare.
Reprod Suppl 2002;63:335-340.
28. Gentry LR, Thompson DL, Gentry GT,
Davis KA, Godke RA, Cartmill JA. The relationship between body condition, leptin, and
reproductive and hormonal characteristics of
mares during the seasonal anovulatory period.
J Anim Sci 2002;80:2695-2703.
29. Session DR, Reedy, Vick MM, Murphy
BA, Fitzgerald BP. Development of a model
for inducing transient insulin resistance in the
mare: preliminary implications regarding the
estrous cycle. J Anim Sci 2004;82:2321-2328.
30. Vick MM, Sessions DR, Murphy BA, Kennedy EL, Reedy SE, Fitzgerald BP. Obesity is
associated with altered metabolic and reproductive activity in the mare: effect of metformin on insulin sensitivity and reproductive
cyclicity. Reprod Fertil Dev 2006;18:609-617.
31. Fitzgerald BP, Sessions DR, Vick MM,
Murphy BA, Horohov DW. Obesity and reproduction in the mare. In: The chronically infertile mare (Abstract book). The Havemeyer
Foundation 2008; page 23.
32. McCue PM, Squires EL. Persistent anovulatory follicles in the mare. Theriogenology
2002;58:541-543.
33. McCue PM. Diagnosis of ovarian abnormalities. In: Recent advances in Equine Reproduction.
Ed Ball BA. 2000; document no. A0210.1000.
34. Ginther OJ, Gastal EL, Gastal MO, Beg
MA. Conversion of a viable preovulatory follicle into a hemorrhagic anovulatory follicle in
mares. Anim Reprod 2006;3:29-40.
35. Session DR, Vick MM, Fitzgerald BP.
Expression of MMP-2 and TIMP in equine
granulosa cells and the impact of elevated insulin in vitro. Biol Reprod 2007;77:156.
Técnica de castración
cerrada y con precinto
escribe:
Duclos, Damián A. M.V. (Técnica quirúrgica) y Rodriguez Fernando M.V. (Anestesia)
direcciónes de los autores: [email protected]; [email protected]
Artículo con revisión.
No se pueden realizar grandes innovaciones al hecho de extirpar los testículos, pero pequeñas variaciones
han ido contribuyendo a que la técnica sea más segura y con menos complicaciones post-quirúrgicas.
Probablemente, la castración en machos sea una de
las prácticas quirúrgicas más antiguas y ha sufrido modificaciones constantes en la forma de realizarla.
No se pueden realizar grandes innovaciones al hecho
de extirpar los testículos, pero pequeñas variaciones han
ido contribuyendo a que la técnica sea más segura y con
menos complicaciones post-quirúrgicas.
Un gran avance en la técnica ha sido la utilización del
emasculador, que contribuyó a minimizar la pérdida de
sangre. Otra variación relevante fue la realización de la
castración con la técnica “cerrada” o a “cubierto” que disminuye la posibilidad de eventración y genera menor
inflamación en la zona. La utilización de ligadura, con
esterilidad y materiales más modernos que no provocan
reacción y posibilidad de fistulizar, han hecho su aporte
a la disminución del sangrado.
La utilización del precinto de nylon es otro pequeño
avance en la mecánica de las técnicas más usadas y seguramente, a mediano plazo, un precinto de algún material
sintético reabsorbible va a ser desarrollado específicamente para esta cirugía.
Breve repaso anatómico:
Desde el exterior hacia el interior se describe: la piel,
el dartos (músculo liso y fibras elásticas), la fascia escrotal
externa adherida al dartos, y fascia escrotal interna adherida a la túnica vaginal parietal, donde se inserta, lateralmente, el músculo cremaster externo; la túnica vaginal visceral, que cubre al cordón espermático (paquete vásculo
nervioso testicular, tejido conectivo, músculo liso y conducto deferente), testículo y epidídimo, donde la cola del
mismo está orientada hacia caudal y se une al testículo
por medio del ligamento propio del testículo y a la túnica
vaginal por el ligamento de la cola del epidídimo.
Técnicas de castración – Orquiectomía
Una de las técnicas más utilizadas es la denominada
“abierta”, en menor medida la “cerrada”, y menos aún la
“cerrada modificada”, ya sea que se realicen en estación,
bajo sedación y analgesia local, o en decúbito lateral o dor46
sal, bajo anestesia general, con o sin analgesia local. Independientemente de la técnica, también se pueden llevar a
cabo distintos abordajes: escrotal, inguinal, para-inguinal,
etc. Si bien hay otras técnicas de castración como laparoscópica; vasectomía; inmunológicas, etc. estas últimas no
son de uso muy frecuente, por lo que sólo se hará un breve repaso de las dos técnicas más utilizadas.
Se describen las técnicas, cerrada y abierta que se utilizan de rutina muy brevemente, sólo para marcar la
diferencia fundamental entre los tejidos a incidir en cada
una de ellas, y describir la técnica cerrada y con precinto en detalle más adelante.
Técnica cerrada
Primero se realiza una asepsia de la piel, como en
cualquier técnica quirúrgica.
Es conveniente infiltrar directamente el parénquima
testicular con Lidocaína (10-20 ml), para obtener buena
relajación testicular. Se realiza una incisión longitudinal
paralela al rafe medio, aproximadamente 1-2 cm del mismo y de aprox. 10 -15 cm de longitud dependiendo del
tamaño de los testículos. Se incide la piel, dartos y fascia
espermática externa, donde ésta es reflejada hacia proximal, quedando el músculo cremaster externo, junto con
la fascia Interna y la túnica vaginal parietal cubriendo al
testículo y cordón espermático (Imagen A). Luego se
coloca la ligadura, el emasculador, o ambos, lo más próximo posible al anillo inguinal superficial, se secciona el
cordón espermático y se retira el testículo.
Técnica abierta
Se realiza de la misma manera y se diferencia de la
técnica anterior en que, la incisión abarca hasta la túnica vaginal parietal (Imagen B y C) y a su vez se secciona el ligamento de la cola del epidídimo (Imagen D).
De esta manera el cordón espermático queda libre,
permitiendo su emasculación cerca del anillo inguinal
superficial. En ésta técnica no va a ser tan necesaria la
analgesia local, ya que la tracción del músculo cremaster es mucho menor una vez seccionada la túnica vagi-
Castración
Imagen A
Imagen B
nal, y desaparece por completo al seccionar el ligamento de la cola del epidídimo.
En ambas técnicas, la incisión se deja que cicatrice
por segunda intensión, y cualquier fascia que protruya
por la herida debe resecarse.
Las complicaciones de las técnicas se encuentran bien
descriptas en una traducción de la American Association
of Equine Practitioners (AAEP) publicada en “La especie
equina” No 30 – Marzo de 2010 – Pág. 30, por lo que se
sugiere remitirse a dicha publicación para este punto.
Consideraciones previas
Durante la descripción serán expresadas opiniones
personales que son exclusiva responsabilidad del cirujano.
En primera instancia debo aclarar que el uso de precinto no es de mi invención. Había escuchado de su uso
en castraciones pero no sabía cómo sería la mejor manera de colocarlo. Comencé a probar y a pulir detalles de
su uso y hoy quiero compartirlo con ustedes, a través de
este artículo, ya que los resultados que he obtenido en
general son superiores a todas las variaciones que he utilizado anteriormente.
La presente técnica será descripta para realizarla bajo
anestesia total, metodología de castración que habitual-
mente utilizo, pero seguramente a quienes les gusta la
castración con el animal en pie, podrán encontrarle la
adaptación de esta cirugía a sus requerimientos.
Durante la descripción se mencionarán algunas
variantes de la forma en que se puede realizar y que
depende de algunas condiciones de trabajo.
Una de ellas es la posibilidad de realizar algunas
maniobras con el animal en pie, con un animal “manso”
y la otra es cuando se trate de un “potro”, con el cual no
se podrá o resultará riesgoso realizar esas prácticas.
Otra de las circunstancias que influye, en el modo de
proceder, es la forma de manejo de la anestesia.
Si se va a realizar con una simple y única dosis de
volteo, o si se va a contar con algún sistema de mantenimiento de anestesia, para tener más tiempo de trabajo,
sea por un ayudante anestesista o que se trabaje solo, con
un triple goteo.
En cada una de estas posibilidades o combinaciones
haré las diferenciaciones en el modo de proceder.
Cabe aclarar que toda la técnica se debe realizar con
material estéril.
Con el fin de ilustrar mejor la técnica, las fotos se
hicieron durante una castración de un animal de 15 años
de edad, con estudiantes de veterinaria como ayudantes
Imagen C
Imagen D
47
Castración
Foto 1
Foto 2
y el Med. Vet. Fernando Rodriguez como anestesista
para contar con más tiempo y poder hacerlo en forma
lenta para realizar la documentación del caso. Sin
embargo he realizado esta técnica solamente con el
peón encargado del animal como ayudante.
El uso de la anestesia intra-testicular es fundamental
para la realización de la técnica cerrada evitando la tracción del cremaster. Esta práctica es perfectamente tolerada por el animal, sin manifestar ningún tipo de molestia al realizarla. Estos pasos, con el animal en pie, ahorra
mucho tiempo muy valioso, fundamentalmente si se va
a realizar la técnica solamente con una dosis de volteo.
Materiales y métodos:
De tratarse de un animal manso, se procede a sedar
al animal con una dosis baja de Xilazina (100 - 150
mg.totales – 500 kg según carácter del animal) (dosis
recomendada Xilazina 0,5-1 mgk), para poder realizar
con tranquilidad algunas maniobras con el animal en pie.
Si se va a trabajar con anestesista o triple goteo se
coloca la vía en la vena yugular para tal fin (Foto 1), paso
que se va a obviar, si solo se va realizar la técnica con la
dosis de volteo.
Seguidamente se procede a realizar la antisepsia del
campo quirúrgico.
Personalmente la realizo con alternación de varios
lavados con iodopovidona jabonosa y alcohol (Foto 2).
Luego de dos o tres lavados de la zona se procede a
la inyección intra-testicular de 10 a 20 ml de xylocaina
(Fotos 3, 4 y 5), para continuar con dos o tres lavados
más de la zona luego de la inyección del anestésico local.
Foto 4
48
Foto 3
Foto 5
Castración
Foto 6
Foto 7
De optar por un sistema de mantenimiento de anestesia, (anestesista o triple goteo), se podría realizar luego
del volteo, pero el tiempo anestésico será más largo.
De tratarse de un “potro”, es obvio que estos procedimientos no podrán ser realizados, por lo que se hacen luego del volteo y se necesitará mantenimiento de anestesia.
A continuación se procede al volteo del animal.
Foto 8
Particularmente readministro xylazina (250 - 300
mg. totales más – 500 Kg. según carácter del animal) y
unos minutos más tarde Ketamina (2,5 - 3 mg/Kg.) y
Diazepam (0.02- 0.04 mg/Kg.), mezclados en la misma
jeringa. (Foto 6).
Una vez producido el derribo del animal, se coloca
en decúbito dorsal (Fotos 7 y 8). De contar con personas
que ayuden, como el caso de la foto, con algunos estudiantes de veterinaria, se sostienen al animal en decúbito desde la zona de los miembros anteriores; sino un
par de bolsas de avena o un par de fardos, colocado
a cada lado, son suficientes para mantener la posición.
No he probado esta técnica en decúbito lateral, creo
que debe ser algo más dificultoso de realizar y con
mayor posibilidades de contaminación, pero seguramente alguien podrá optar por ese decúbito para realizar la
castración con esta metodología.
Una vez posicionado el animal, se procede a repasar
el campo quirúrgico una vez más (Foto 9). Colocados
desde caudal del animal, con nuestras piernas, calzadas a
cada lado del cuerpo del caballo podemos ayudamos a
mantener el decúbito de ser nesesario. Se coloca un par
de guantes de cirugía estériles y se extiende un campo
quirúrgico sobre el animal.
Foto 9
Foto 10
50
Castración
Foto 11
Foto 12
Suelo utilizar un campo de nylon esterilizado con
óxido de etileno el cual fenestro y a su vez uso como
“mesa de instrumental” la parte que queda sobre el abdomen del animal (Foto 10).
Se incide la piel y la túnica dartos (Fotos 10, 11 y 12)
de uno de los testículos, y con cuidado de no incidir la
túnica vaginal. Es fundamental tener cuidado con ello, ya
que el corte de la túnica dificultará la realización de la
técnica cerrada y provocará la perdida de la presión
negativa de la cavidad abdominal, circunstancia que con-
sidero de relevancia para minimizar la posibilidad de
evisceración post-castración. Una vez realizada la incisión se separa el testículo con sus envolturas de la piel y
el dartos utilizando para ello una gasa estéril (Foto 13).
Es necesario reflejar muy bien la piel y el dartos en proximal de modo de exponer el saco del testículo lo más
cerca posible de la pared abdominal (Foto 14).
Se puede ver expuesto el testículo con sus envolturas
(túnica vaginal parietal) y el músculo cremaster (Foto
15). Una buena parte de este músculo es removido con
Castración
Foto 13
Foto 14
Foto 15
el testículo y sus envolturas al realizar esta técnica.
Se continúa con la colocación del precinto de nylon
(Foto 16) lo más proximal posible. El precinto que se
utiliza para esta técnica cerrada es el número 150 x 3,5
(m.m.) comprado en ferretería (Imagen E). Es necesario que el mismo sea blanco, ya que los de color, incluso los negros, parecen generar reacciones del organismo aparentemente a los pigmentos que se colocan para
dar color al nylon.
Imagen E
52
Para quienes no tengan conocimiento de cómo colocar un precinto, se sugiere que desperdicien algunos (son
muy baratos y una vez que se enlazan no se pueden destrabar) familiarizándose con la forma de trabar de los
mismos, ya que ésto sucede en un solo sentido, y por
razones obvias no conviene fallar en la colocación
durante la castración.
Al momento de colocarlos hay que tener en cuenta
que si se ciñen demasiado resulta muy difícil desplazarlo
del lugar, por lo que antes de comenzar a apretarlo un
poco tiene que estar colocado a la altura que se quiere
que quede. El ajuste final del mismo se realiza con ayuda del porta-agujas (Fotos 17, 18 y 19). Este es otro punto clave. La tensión a la que se somete el precinto si bien
es bastante no debe ser excesiva.
Resulta difícil describir en un artículo cuanta fuerza
hay que aplicar en este caso, pero a modo de ejemplo diré
que en los primeros que hice, me excedía en la tensión y
he tenido algunos casos en que los rompía o que se soltaba el precinto. Esto último sucede porque en el interior
del extremo cuadrado del precinto hay un pequeño diente que traba en la cremallera. Si nos excedemos en la presión, ese diente se da vuelta 180° y se libera la cremallera.
Si no se ajustan bien, cabe la posibilidad que se deslice o
tener un sangrado por falta de compresión. Tendrán que
experimentar un poco para tomarle la mano a la fuerza
que hay que hacer. Un buen indicio de
que la presión que hemos hecho es
suficiente y correcta se evidencia en
una ruptura de vientre del músculo
cremaster que se desgarra por la tensión. El ajuste del mismo debe ser realizado con el testículo en relajación
para un mejor ajuste.
El paso siguiente es la colocación
del emasculador, perpendicular al
cordón espermático. Previo a cerrar
las ramas del mismo, se verifica que
no haya piel u otro tejido interpuesto
y se evita traccionar en forma excesiva el testículo para liberar tensión en
Castración
Foto 16
Foto 17
el cordón. En este punto hay que prestar atención a otro
detalle. La distancia a la cual se debe colocar la pinza no
debe ser inferior a por lo menos 1 - 2 cm del precinto
(Foto 20). En el caso en el que el paquete sea muy grueso esa distancia debe ser algo mayor. Este detalle se debe
a que al cerrar con precinto el cordón espermático queda con sección redonda, y al colocar la pinza se aplasta el
paquete y se modifica la sección haciéndola plana. Si está
muy cerca, ese aplanamiento nos aumenta la presión del
tejido en el precinto, provocando la ruptura de éste.
Esto que describo es algo que me ha ocurrido en los
primeros casos que realicé, por colocar la pinza pegada
al precinto.
Otro de los motivos para mantener cierta distancia radica en que el cordón espermático puede deslizarse hacia proximal dentro de túnica vaginal si se secciona muy cerca del
precinto (también me ha ocurrido). Es conveniente tratar de
desplazar la sangre, contenida en el cordón espermático,
desde el precinto hacia distal, de modo que al colocar el
emasculador no nos quede sangre entremedio, ya que ésto,
Castración
Foto 18
Foto 19
el caso en que trabajamos solos.
por la presión de la misma, favorece que el tejido emasculaCon el emasculador colocado, se procede a cortar con
do se separe una vez retirada la pinza. En algunos casos de
tijera el extremo sobrante del precinto, luego se liberan las
caballos con tamaño testicular muy grande me he enconramas lentamente para evitar abrir el tejido emasculado y
trado con que el cordón espermático a emascular, al incluir
todo el procedimiento se repite con el otro testículo.
el músculo cremaster, resulta en una cantidad de tejido exceEn realidad, en la práctica, cada paso descripto se va
siva para el tamaño de la “boca” del emasculador, resultanrealizando en simultaneo en ambos testículos. Se descrido en una compresión deficiente del cordón espermático,
bió el procedimiento en uno
por lo que procedo a desgasolo a los fines de simplificar
rrar el músculo cremaster en
la narración.
la zona a emascular para no
En el caso de tratarse de
ser incluido en la pinza. No
un caballo manso que nos
hay inconvenientes de sanpermita realizar la antisepsia
grado al no incluir el músculo
del campo y la inyección
en el emasculador.
intra-testicular de lidocaína
Se procede a cortar y
con el animal en pie, todo el
retirar el testículo (Foto 21).
procedimiento se puede reaAl emasculador lo dejo
lizar solamente con la dosis
aproximadamente 5 - 6
de volteo. El tiempo para
minutos, aunque con el prerealizar el procedimiento en
cinto colocado podría no
los dos testículos, teniendo
ser necesario ese tiempo.
También depende de cómo
dos emasculadores es de
estemos con el tiempo
unos 8 - 10 minutos (apurado
lo he hecho en 6 minutos)
quirúrgico y la anestesia en
Foto 20
Foto 21
54
Foto 22
Castración
para tener colocadas las dos
to de la abierta son: el hecho
pinzas (Foto 22) contando
de tener que trabajar en decúdesde el momento de la aplibito dorsal, realizarla estéril y
cación de la dosis de volteo y
con mayor insumo de tiempo.
apresurando lo más posible
Sin embargo, las ventajas reslas maniobras. A partir de
pecto de las posibles complitener ambas pinzas colocadas,
caciones suelen superar
se lleva al animal al decúbito
ampliamente las desventajas.
lateral con las pinzas puestas
Comparando la técnica
para mantenerlas por 5 minucerrada con ligadura de hilo
tos con ese decúbito. Depencon el uso del precinto,
diendo del plano anestésico y
aprendiendo a colocarlo,
el tiempo empleado podría
considero ventajoso su uso.
ser necesario retirarlas antes si
Es de muy fácil colocación y
el animal comienza a salirse
una vez ajuntado no hay
Foto 23
de plano. (En el presente caso
posibilidades de que se afloje
se mantuvo el decúbito para
(atendiendo a las recomenilustrar mejor la metodología – Foto 23).
daciones anteriores) y posiblemente menor posibilidad de
Si bien se puede realizar esta técnica cerrada y con
contaminarlo al no tener que manipularlo demasiado para
precinto con una sola dosis de volteo, es necesario tener
ajustarlo. El hilo suele ser mucho más difícil de colocar, al
bastante práctica para poder realizarla es ese tiempo. Un
anudar suele aflojarse antes de hacer el segundo nudo y
buen consejo sería realizar las primeras experiencias con
más probable de contaminar con tanta manipulación.
ayudantes y anestesista para mantener el plano quirúrgiPara quienes no quieran realizar la castración a cerraco, hasta tanto se logre la habilidad para trabajar solo y
do, les comento que también he usado precintos a modo
con una sola dosis de volteo.
de ligadura en castraciones abierta, también con muy bueEn realidad el único motivo que lleva a trabajar solo,
nos resultados. En cualquier de los dos casos el uso del
en un caso como éste, es el económico, ya que si llevaprecinto disminuye el sangrado en la mayoría de los casos
mos anestesista o ayudante debemos compartir honoraa cero, y si lo colocamos en forma estéril no provocan
rios. En muchos casos prefiero compartir honorarios y
ningún tipo de reacción. En la técnica cerrada, al elimiganar menos dinero pero trabajar más relajado y sin apunarse la mayor parte de la túnica vaginal, se tiene menor
ro por el plano anestésico.
inflamación y edema en la zona y menos posibilidades de
En los casos de “potros” o caballos no mansos, para reainfección comparando con la técnica abierta.
lizar la antisepsia y la anestesia local, no queda otra opción
No tengo dudas que para quienes realizan las castraque realizarlo luego del derribo y por lo tanto el tiempo
ciones “de parado” el uso del precinto, en comparación
empleado va a ser superior a la duración del volteo debiena la colocación de hilo, si es que lo ligaban, facilitará
do recurrir a una re-administración de anestésicos.
enormemente la tecnica.
Resultado
Cuanto mayor es el número de animales que realizo con
la técnica cerrada, mayor es mi convencimiento respecto del
mejor resultado en comparación con la técnica abierta, y en
este caso, con la utilización del precinto, los tiempos quirúrgicos se disminuyen comparando la técnica tradicional
cerrada donde se realiza la ligadura con hilo, pudiendo realizarse a campo y con una dosis de volteo solamente.
Las principales desventajas de la técnica cerrada respec-
Damián A. Duclos MV.
Médico Veterinario.
Práctica privada en clínica y cirugía Equina
Ex Profesor Adjunto Clínica de Grandes Animales, Fac. Cs. Vet. Univ. Juan A. Mazza, Mendoza.
Jefe Trabajos Prácticos. Unidad Hospitalaria
Centralizada. Área Equinos. U.N.R. Casilda.
E - mail: [email protected]
Conclusión
No es muy grande el número de castraciones cerradas y
con precinto que he realizado hasta ahora, (aproximadamente 35 caballos), pero es notoria la diferencia con la otra
técnica respecto de la inflamación, el sangrado en general
nulo con el precinto, y no he tenido mayores complicaciones en ningún caso por ahora. A mi criterio creo es de elección, y de hecho es lo que hago, para animales adultos y
sobre todo con tamaño testicular importante. En el caso de
los potrillos chicos, creo que la técnica abierta con emasculador sólo resulta de bajo riesgo, y es mucho más fácil de
realizar, por lo tanto es la que utilizo en estos casos.
Fernando M. Rodríguez MV.
Médico Veterinario.
Practica privada en clínica, radiología y ecografía equina
E - mail: [email protected]
55
Novedades
Lanzamiento
Nuevo Kit para el diagnóstico
de la Anemia Infecciosa Equina
Denominado "rp26 IDGA IncuINTA AIE", llega al mercado el nuevo kit para el Diagnóstico de la Anemia Infecciosa Equina, desarrollado por el INTA mediante tecnología recombinante.
El antígeno "rp26" altamente purificado, garantiza lecturas nítidas en la prueba oficial IDGA para la detección de
anticuerpos precipitantes contra el virus de la AIE en sueros de equinos, sin reacciones inespecíficas.
Validado siguiendo normas internacionales OIE e ICH y
aprobado por el Senasa, se ofrece al mercado en presentación para 120 determinaciones.
Laboratorio INCUINTA - Instituto de Virología
Las Cabañas y Los Reseros S/N.
(1686) Hurlingham, provincia de Buenos Aires.
Tel: 011 4481 3006.
E-mail: [email protected]
Laboratorios
GMP para Richmond, División Veterinaria
Laboratorios Richmond División Veterinaria S.A ha cumplimentado con la
aprobación de la Resolución 482/02
del Senasa en referencia a las normas
de Buenas Prácticas de Fabricación
de Productos Veterinarios (BPFPV) o
como su nomenclatura internacional
lo indica; normas GMP (Good Manufacturing Practice).
Esta certificación tiene alcance para procedimientos que incluyan la elaboración
de medicamentos generales, especiales,
manufactura de líquidos, sólidos y
semisólidos estériles y no estériles,
inyectables generales y segregados.
Estas actividades se desarrollan en las
nuevas instalaciones con las que cuenta
la compañía, en Grand Bourg, provincia
de Buenos Aires, ubicadas estratégicamente en un predio de 6.000 metros
cuadrados, con 1.250 metros cuadrados de edificación, más de 230 metros
cuadrados de áreas segregadas y calificadas, tal de cubrir la demanda en cantidad y calidad, especializándose en la
manufactura de medicamentos inyectables a gran escala.
Laboratorios Richmond División Veterinaria S.A, actualmente, cumple con
todos los requisitos de aprobación de
los 24 países a los cuales exporta sus
distintos productos.
La información contenida en esta sección es suministrada por las compañías. La inclusión en esta sección no expresa la opinión de la revista “La Especie Equina”. Para enviar novedades de productos para su posible inclusión en “Novedades” debe remitirse a: [email protected]
56
Agenda
Cursos
Congresos
Seminarios
OCTUBRE
NOVIEMBRE
14 y 15: Jornadas de Podología
Equina.
Organizan: Cátedras del Seminario de
Clínica Equina y Clínica de Grandes
Animales de la Facultad de Ciencias
Agropecuarias de la Universidad
Católica de Córdoba.
Coordinador: Med Vet. Ángel Trioni.
Disertante: Med. Vet. Hugo Funtanillas.
Lugar: Anfiteatro Facultad de Ingeniería. Campus de la Universidad
Católica de Córdoba.
Inscripción: Cupos limitados.
Informes: Secretaria de Investigación
y Posgrado de la Facultad de Ciencias
Agropecuarias.
E - mail: [email protected].
2 al 5: WEVA 12º Congreso de la
Asociación Mundial de Veterinaria
Equina (World Equine Veterinary
Association, WEVA 2011).
Lugar: Hyderabad, India.
Información:
http://www.weva2011india.com.
17 y 18: 2° Congreso FEA de
Veterinaria Equina
Lugar: Dirección de Remonta y Veterinaria. Arévalo 3065. CABA.
Temas: Claudicaciones de miembro
anterior. Examen pre-compra. Control
antidoping. Epidemiología de patologías de resolución quirúrgica. Protección y Comunicación Profesional.
Disertantes: Dr. Jack Snyder, Dr.
Pedro Ive, Lic. Jose L. Barreiro, Lic.
Gabriela Rana
Informes e Inscripción: Federación
Ecuestre Argentina.
Tel/Fax ( 54 11) 4772-0428 / 47754423 / 4778-3232.
Web: http://www.fedecuarg.com.ar.
Contacto: Sra Vilma Tramonte.
[email protected].
18 al 22: AAEP - 57th Annual
Convention.
Lugar: San Antonio, Texas.
Información:
www.aaep.org/convention.htm
57
Índice de Anunciantes
Equipamientos
Arca ............................................................................................. p. 57
Inge Ray ..................................................................... p. 29 y p. 45
Inmed ........................................................................................ p. 35
Productos Agroganaderos ................................................... p. 19
Montanba ................................................................................. p. 14
Mustad ....................................................................................... p. 17
Richmond .................................................................. p. 31 y p. 39
Vetec ........................................................................................... p. 51
Viterra ........................................................................................ p. 60
Laboratorios
Agropharma ............................................................................. p. 21
Boehringer Ingelheim ........................................................... p. 43
Clínica Equina - Pro Ser ........................................................ p. 25
Deltavet ..................................................................................... p. 38
Laboratorio Cimol S.R.L. ....................................................... p. 57
Laboratorios Chinfield S.A. .................................................. p. 41
Mayors ....................................................................................... p. 53
Merial Argentina S.A. ............................................................. p. 23
Veterinarias
Clínica Veterinaria Integral .................................................. p. 37
Veterinaria San Martín .......................................................... p. 36
Veterinaria El Jockey .............................................................. p. 49
Otros
Ekinos ........................................................................................ p. 30
FlatBull ........................................................................................ p. 15
Kawell ........................................................................................ p. 59
Índice de Socios Institucionales AAVE
Empresa
Agropharma
Banco Itaú
Bayer S.A.
Biogénesis Bagó
Caprove
Criadores Argentinos del SPC
Comando de Remonta y Veterinaria
Deltavet S.R.L.
Equi Systems S.R.L.
Establecimiento Calastremé S.A.
Forti S.R.L.
Fridimex
Fundación Hípica Rocha de Plata
Fundación Equina Argentina
Inge Ray
Inter Médica
Kawell
Laboratorio Burnet
Laboratorio Cimol S.R.L.
Laboratorio Pro-Ser S.A.
Laboratorios Chinfield S.A.
Laboratorios Windhoek
LTF
Merial Argentina S.A.
Mustad
Montanba S.R.L.
Pfizer
Productos Agroganaderos
Spraylar Labs
Sport Horse
Syntex S.A.
Vetec S.A.
Viterra
58
Mail
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
Web site
www.agropharma.com.ar
www.itau.com.ar
www.animalhealth.bayerconosur.com
www.biogenesisbago.com
www.caprove.com.ar
www.criadores-spc.com.ar
www.remonta.mil.ar
www.deltavet.com.ar
www.equisystems.com.ar
www.calastreme.com.ar
www.fortisrl.com.ar
www.fridimex.com.ar
www.rochadeplata.com.ar
www.fundacionequina.org.ar
www.ingeray.com.ar
www.inter-medica.com.ar
www.centrokawell.com.ar
www.burnetlab.com.ar
www.cimol.com.ar
www.labproser.com.ar
www.chinfield.com
www.windhoek.com.ar
www.laboratoriofrances.com.ar
www.merial.com
www.mustadargentina.com.ar
www.montanba.com.ar
www.pfizer.com.ar
www.pro-agroganaderos.com.ar
www.spraylar.com
www.sport-horse.com.ar
www.syntexar.com
www.laboratoriovetec.com.ar
www.viterra.com.ar