Control Biológico y tecnológico de plagas en el

III JORNADAS INTERNACIONALES SOBRE FEROMONAS, ATRAYENTES, TRAMPAS Y CONTROL
BIOLOGICO: HERRAMIENTAS PARA LA GESTIÓN INTEGRADA
MURCIA, 19 Y 20 DE NOVIEMBRE DE 2013
CONTROL BIOLÓGICO Y TECNOLÓGICO DE PLAGAS EN EL CULTIVO
DEL OLIVAR
Manuel José Ruiz Torres
Laboratorio
de
Producción
y
Sanidad
[email protected]
Agencia de Gestión Agraria y Pesquera de Andalucía
Vegetal
de
Jaén.
Introducción.
El cultivo del olivar en España cuenta con pocos métodos de control biológico y
tecnológico, comparado con otros cultivos perennes, como los cítricos y resto
de frutales, pese a contar con una tradición milenaria y 2.584.564 Has en 2012
(según la Encuesta sobre Superficies y Rendimientos de Cultivos, MAGRAMA
2012), y ser el cultivo que tiene más superficie en producción integrada (en
2010 ocupaba el primer lugar, con 290.478 Has frente a las 109.346 Has que
ocupan el resto de frutales).
Las causas pueden estar en dos factores: por un lado una menor incidencia de
problemas fitosanitarios, que redunda en una menor cuota de investigación
más desarrollo, y por otro, una menor profesionalización del sector (buena
parte de la superficie está en manos propietarios cuya actividad principal no es
la agricultura, o bien son agricultores mayores con una escasa actualización
técnica).
No obstante, existen métodos de control biológico y tecnológico (BejaranoAlcázar et al. 2011, Quesada-Moraga et al. 2008) al alcance del sector, que
pueden tener el cultivo sano frente a algunas de las principales plagas del
olivar y que ayudan a cumplir con los principios y requisitos de la gestión
integrada de plagas (Ruiz-Torres, 2013).
Organismos de control biológico.
Podemos diferenciar entre los autóctonos, que pueden verse favorecidos por
determinadas prácticas del cultivo, y aquellos otros que se introducen en el
agrosistema, mediante aplicaciones dirigidas o mediante liberación inundativa.
En relación a estos últimos tenemos los siguientes.
Bacillus thuringiensis. Es el que se empezó a utilizar primero. Se trata de una
bacteria Gram positiva, que vive en el suelo y que tiene poder insecticida, que
actúa por ingestión mediante la endotoxina que produce en el tracto digestivo
del insecto, dando lugar a su parálisis y muerte del individuo por inanición. Los
genes que codifican estas toxinas son los que se utilizan en ingeniería genética
para producir plantas Bt.
Se usa en pulverización de una suspensión de esporas contra la generación
antófaga de la polilla del olivo (Prays oleae, Bern). La variedad más utilizada es
la Kurstakis, con ocho formulaciones diferentes en el Registro de Productos
Fitosanitarios (MAGRAMA 2013), seguida de la variedad Aizawai, con dos
formulaciones. Como suele ocurrir con los métodos de control biológicos,
requiere una supervisión técnica para aplicarse en el momento idóneo, porque
aunque se aplica como un insecticida químico, el tiempo de efectividad es
diferente. En la actualidad su uso es reducido, y se ha podido constatar que
produce un impacto en la entomofauna (Ruiz-Torres y Montiel-Bueno, 2005),
seguramente a causa del efecto ecológico que puede producir al hacer
disminuir las poblaciones numerosas de la polilla del olivo y otros lepidópteros.
Beauveria bassiana. Es un hongo deuteromiceto, que vive en suelos de todo el
mundo y que parasita diferentes especies de insectos, en función de distintos
tipos de variedades y cepas, provocándoles la muerte. Actúa por contacto,
cuando una espora toca la superficie del individuo, desarrolla al hongo, que
invade el organismo y provoca la muerte. Se ha comprobado el efecto mortal
sobre mosca del olivo, Bactrocera oleae Gmel. (Anagnou-Veroniki et al. 2005,
Konstantopoulou y Mazomenos 2005; Mahmoud 2009) y hay registrada una
cepa de Beauveria bassiana (MAGRAMA, 2013) que se puede utilizar contra
mosca del olivo (Bactrocera oleae Gmel.).
Una cepa diferente de este hongo se ha patentado por la Universidad de
Córdoba, y se ha probado con éxito contra el abichado (Euzophera pinguis)
(Quesada el al. 2013), aplicando las conidias en una pasta sobre las heridas de
la corta de varetas (Figura 1), y contra la generación antófaga de la polilla del
olivo, pulverizando una suspensión de sus conidias. Sin embargo, todavía no
está disponible para el sector.
El mismo equipo de la Universidad de Córdoba está investigando con éxito otro
hongo entomopatógeno, una cepa de Metarhizium anisopliae, contra la mosca
del olivo, pero tampoco está disponible para sector.
Figura 1. Aplicación de una pasta con el hongo Beauveria bassiana en un
ensayo contra Euzophera pinguis.
El empleo de depredadores o parasitoides es casi inexistente en el cultivo del
olivo. En la actualidad, sólo se encuentra disponible el depredador neuróptero
Chrysoperla carnea (Figura 2), que se libera en forma de larva recién nacida.
Hay hasta ocho firmas que proporcionan este crisópido (MAGRAMA 2013), y la
empresa Nutesca los cría procedentes de poblaciones autóctonas de la
campiña de Jaén.
Figura 2. Larva de crisopa (Chrysoperla carnea) sobre hoja de olivo.
Se han realizado diferentes ensayos (Ruiz-Torres et al. 2013) de eficacia,
liberando larvas neonatas de crisopa (Figura 3) y el resultado es muy positivo
cuando se liberan en el estado fenológico D1-D2 del olivo, como puede
apreciarse en la Figura 4, con los resultados de uno de los ensayos.
Figura 3. Caja colocada entre las ramas de un olivo, liberando larvas neonatas
de crisopa.
Alcalá la Real (Jaén)
Fecha liberación crisopas: 3/6/11
Fecha muestreo: 14/6/11
16
14
Con crisopas
Sin crisopas
Nº larva s prays
12
10
8
6
4
2
0
Árbol
Figura 4. Resultados de la liberación de larvas de crisopa contra polilla del
olivo, en uno de los ensayos realizados (Ruiz-Torres et al. 2013).
En relación a la fauna autóctona, cuando no hay factores negativos para ella
(como un uso continuado de insecticidas químicos o una excesiva
simplificación del cultivo), puede bajar significativamente las poblaciones de
numerosas especies-plaga (Altieri y Nicholls, 2000). En el olivar, como en
cualquier agrosistema, un incremento de la biodiversidad hace posible una
mayor estabilidad del mismo (Figura 5), y una menor incidencia de plagas al
favorecer la mayor presencia de depredadores y parasitoides (Fernández-Alés
y Leiva-Morales, 2003)
Hay evidencias que demuestran cómo los paisajes heterogéneos, con manchas
de vegetación natural, influyen positivamente en el establecimiento de fauna
auxiliar autóctona contra mosca del olivo (Boccaccio y Petacchi, 2009), el
establecimiento de las cubiertas vegetales con gramíneas entre las hileras de
olivos disminuye el ataque de polilla del olivo (Vargas y Aldebis, 2007), por el
incremento del complejo parasitoide de la polilla del olivo (Bento et al. 2007,
Ruiz-Torres, datos sin publicar), y las poblaciones de ortigas (Urtica sp) o la
presencia de muretes o cúmulos de piedras favorecen la permanencia de
poblaciones de coccinélidos contra la cochinilla de la tizne, Saissetia oleae,
(Santos et al. 2008).
Figura 5. Esquema de funcionamiento de la red trófica de un agrosistema
como el olivar. Cuando más diverso es cada nivel, más estable es el sistema.
(Tomado de Ruiz-Torres, 2012)
Se está avanzando sobre cómo modificar la composición y estructura del
propio agrosistema del olivar para favorecer la consolidación de poblaciones de
fauna auxiliar. Por poner algunos ejemplos, ya es un hecho conocido que si se
implantan suficientes ejemplares de la planta conocida como olivarda (Dittrichia
viscosa) pueden incrementarse las poblaciones de parasitoides de la mosca del
olivo (Franco-Mican el al. 2010) y Gálvez et al. (2011) definen un manejo
concreto de diversidad vegetal del olivar para incrementar las poblaciones de
diferentes depredadores y parasitoides útiles contra diferentes plagas.
Métodos de control tecnológico.
En el cultivo del olivo se utilizan las feromonas sexuales para el monitoreo de la
mosca del olivo, la polilla del olivo, el abichado y la polilla del jazmín
(Margaronia unionalis).
También se utilizan las feromonas sexuales como método de confusión sexual
contra el taladro amarillo (Zeuzera pyrina).(Durán et al. 2004).
Dentro de estos métodos de control tecnológicos, es necesario hablar del gran
esfuerzo que se está haciendo para el control de mosca del olivo a través del
trampeo masivo.
El trampeo masivo ha sido ampliamente ensayado en nuestro país, con
desarrollo y comparación de diferentes tipos de trampas y atrayentes (Figura
6). Los resultados muestran que formulaciones a base de proteínas pueden ser
más efectivas que los atrayentes basados en sales nitrogenadas (Beitía et al.
2011, Olivero et al. 2004, Ros et al., 2003, 2005, 2009, Ruiz-Torres 2010, Ruiz
Torres et al. 2011).
Figura 6. Trampa modelo Easy trap, cebada con un atrayente a base de
proteína hidrolizada, denominado Tephrilure, que ha demostrado ser muy
efectiva contra Bactrocera oleae.
El trampeo masivo tiene problemas para su utilización generalizada, los cuales
están en relación con su elevado coste (para colocar las trampas y al tener que
recebarlas en el caso de los atrayentes líquidos), que muchas veces resulta
muy poco selectivo para la fauna auxiliar y que la capacidad de atracción de
muchos atrayentes disminuye con el tiempo.
Para solucionar algunos de estos inconvenientes se pusieron en marcha
diferentes variantes del método atracción y muerte (Caleca et al. 2007, Crespo
el al. 2002, Mazomenos et al. 2002, Petacchi et al. 2003, Speranza et al. 2004),
mediante el cual los adultos son atraídos por la feromona (a veces mezclada
con un atrayente alimenticio) y mueren por el contacto con insecticida, que
suele ser un piretroide, que también va en la mezcla.
En la actualidad (septiembre de 2013) el único insecticida autorizado como
componente de una trampa de atracción y muerte, es un formulado de
deltametrín (MAGRAMA, 2013).
Por último, mencionar que la empresa Oxitec ha creado una mosca del olivo
transgénica, denominada OX3097D, que al aparearse con moscas normales no
llega a tener descendencia, como consecuencia del gen introducido (Ant et al.
2012). Esta empresa solicitó hacer experiencias de campo en Tarragona, y aún
no se tienen datos de eficacia.
Bibliografía
- Altieri, M. y C. Nicholls (2000). Agroecología. Teoría y práctica para una
agricultura sustentable. Serie Textos Básicos para la Formación
Ambiental. Programa de Naciones Unidas para el Medio Ambiente.
- Anagnou-Veroniki, M, D.C. Kontodimas, A.D. Adamopoulos, N.D.
Tsimboukis and A. Voulgaropoulou (2005). Effects of two fungal based
biopesticides on Bactrocera (Dacus) oleae (Gmelin) (Diptera:
Tephritidae). Integrated Protection of Olive Crops IOBC/wprs Bull. 28(9):
49-51
- Ant, T., M. Koukidou, P. Rempoulakis, H. Gong, A. Economopoulos, J.
Vontas y L. Alphey (2012). Control of the olive fruit fly using geneticsenhanced sterile insect technique. BMC Biology, 10, 51.
http://www.biomedcentral.com/1741-7007/10/51
- Beitia, F., A. Tortosa, E. Carbonell y P. Ros (2011). A comparison of
several traps and attractants as a first approach to the use of mass
trapping against the olive fruit fly (Diptera, Tephritidae) in the Valencian
Community. Proceedings 8th International Symposium on Fruit Flies of
Economic Importance, 303-308.
- Bejarano‐Alcázar, J. D. Rodríguez‐Jurado, J.M. Durán‐Álvaro, M.
Ruiz‐Torres, M. Herrera‐Mármol (2011). Unidad Didáctica 5. Control de
enfermedades y plagas en producción integrada del olivar. En:
Producción Integrada de Olivar, pp 55‐90. Instituto de Investigación y
Formación Agraria y Pesquera. Junta de Andalucía. Sevilla.
- Bento, A., L. Torres, J. Cabanas y J. Pereira (2007). A traça-da-oliveira,
Prays oleae (Bernard). En Manual de Protecção Integrada do Olival, pp
171-196.
- Boccaccio, L. y R. Petacchi (2009). Landscape effects on the complex of
Bactrocera oleae parasitoids and implications for conservation biological
control. Biocontrol, 54: 607-616.
- Caleca, V., Rizzo, R., Battaglia, I. & Palumbo, M. 2007. Tests on the
effectiveness of mass trapping by Eco-trap (Vyoril) in the control of
Bactrocera oleae (Gmelin) in organic farming. IOBC wprs Bulletin, 30(9):
139-146.
- Crespo, J., San Nicolás, M.A., Villa, F., Sasot, J.A. & Betran, J. 2002.
Ensayo de trampeo masivo de la mosca del olivo con Eco-trap. I
Conferencia Mundial de IFOAM sobre olivar ecológico, 425-429.
- Durán, J.M., M. Alvarado, M.I. González, N. Jiménez, A. Sánchez, A.
Serrano. (2004). Control del taladro amarillo, Zeuzera pyrina L.
(Lepidoptera, Cossidae), en olivar mediante confusión sexual. Boletín de
-
Sanidad Vegetal PLAGAS, Vol. 30: 451‐462.
Fernández Alés, R. y Mª.J. Leiva Morales (2003). Ecología para la
agricultura. Ediciones Mundi-Prensa, 223 pp.
Franco-Micán, S., J. Castro y M. Campos (2010). Preliminary study of
the parasitic complex associated with Dittrichia viscosa in Andalusia
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
(Spain). Integrated Protection of Olive Crops, IOBC/wprs Bulletin 53:139143.
Gálvez, C., M. Campos, C. Castillo y J.A. Gómez. (2011) Reflexiones
sobre el uso de la diversidad vegetal en la conversión ecológica del
olivar tradicional mecanizable en Andalucía. XVIII Jornadas Técnicas
Estatales de Producción Ecológica. Manejo agroecológico de suelos.
Granada.
Konstantopoulou, M.A. y B.E. Mazomenos (2005). Evaluation of
Beauveria bassiana and B. brongniartii strains and four wild-type fungal
species against adults of Bactrocera oleae and Ceratitis capitata.
Biocontrol, 50: 293-305.
MAGRAMA (2012). Encuesta sobre superficies y rendimientos de los
cultivos 2012. Ministerio de Agricultura y Medio Ambiente.
http://www.magrama.gob.es/es/estadistica/temas/estadisticasagrarias/00ESPANA_tcm7-234252.PDF
MAGRAMA (2013). Registro de Productos Fitosanitarios. Ministerio de
Agricultura
y
Medio
Ambiente.
http://www.magrama.gob.es/es/agricultura/temas/sanidadvegetal/productos-fitosanitarios/registro/productos/conaplipla.asp
Mahmoud, M.F. (2009). Pathogenicity of three commercial products of
entomopathogenic fungi, Beauveria bassiana, Metarhizum anisopilae
and Lecanicillium lecanii against adults of olive fly, Bactrocera oleae
(Gmelin) (Diptera: Tephritidae) in the laboratory. Plant Protection
Science, 45(3): 98-102.
Mazomenos, B., Pantazi-Mazomenou, A. & Stefanou, D. 2002. Attract
and kill of the olive fruit fly Bactrocera oleae in Greece as a part of an
integrated control system. IOBC wprs Bulletin, 25(9): 137-146.
Olivero, J., García, E.J., Wong, M.E. & Ros, J.P. 2004. Ensayo de
eficacia de diferentes combinaciones soporte-atrayente para el trampeo
de Bactrocera oleae (Gmel.), mosca del olivo. Boletín de Sanidad
Vegetal, PLAGAS, Vol. 30: 439-450.
Petacchi, R., I. Rizzi y D. Guidotti (2003). The ‘lure and kill’ technique in
Bactrocera oleae (Gmel.) control: effectiveness indices and suitability of
the technique in area-wide experimental trials. International Journal of
Pest Management, 49(4): 305-311.
Quesada-Moraga, E., M. Campos-Aranda y C. Santiago-Álvarez (2008).
Control de plagas. En: Sostenibilidad de la producción del olivar en
Andalucía, pp-189-224. Consejería de Agricultura. Junta de Andalucía.
Quesada-Moraga, E., M. Yousef, A. Ortiz, M. Ruiz-Torres, I. GarridoJurado y A. Estévez (2013). Beauveria bassiana (Ascomycota:
Hypocreales) wound dressing for the control of Euzophera pinguis
(Lepidoptera: Pyralidae). Journal of economic entomology Vol. 106, no.
4: 1602-1607.
Ros, J.P., Castillo, E. & Blas, P. 2003. Estudio de la eficacia de
diferentes sustancias y mosqueros hacia la mosca del olivo, Bactrocera
oleae Gmel. Boletín de Sanidad Vegeta, PLAGAS Vol. 29: 405-411.
Ros, J.P., Wong, E., Olivero, J., Rubio, J.R., Marquez, A.L., Castillo, E. &
Blas, P. 2005. Desarrollo de atrayentes y mosqueros para su integración
en los programas de trampeo masivo contra la mosca de la fruta
-
-
-
-
-
-
-
-
(Ceratitis capitata, Wied.) y la del olivo (Bactrocera oleae Gmel.). Boletín
de Sanidad Vegetal, PLAGAS, Vol. 31: 599-607.
Ros, P., E. Seris, E. Castillo, A. Cobo y M. González-Núñez (2009). Un
paso más en el empleo del “Método de Trampeo Masivo” para el control
de la mosca del olivo Bactrocera oleae. Estudio comparativo de un
nuevo atrayente. Boletín de Sanidad Vegetal, PLAGAS, 35: 391-400.
Ruiz-Torres, M.J. (2010). Effectiveness of two attractive against
Bactrocera oleae (Gmel.) and its impact on the arthropods community.
Integrated Protection of Olive Crop. IOBC/wprs Bulletin, Vol. 59: 139153.
Ruiz-Torres, M.J. (2012). Aspectos fitosanitarios de la biodiversidad en
el olivar. Vida Rural, nº 351: 38-42.
Ruiz-Torres, M.J. (2013). Apuntes sobre la gestión integrada de plagas
en el cultivo del olivar. Vida Rural, nº 365: 50-52.
Ruiz-Torres, M.J. y A. Montiel-Bueno (2005). Efectos de las aplicaciones
de Bacillus thuringiensis var. Kurstaki sobre la entomofauna de olivar de
la provincia de Jaén. Boletín de Sanidad Vegetal, PLAGAS, 31: 87-107.
Ruiz-Torres, M.J., J. Ruiz, E. Alonso y P. Ros (2011). Ammonium
phosphate versus hydrolysate proteína: Which one to be used in mass
trapping against the olive fly Bactrocera oleae (Rossi)?. Proceedings 8th
International Symposium on Fruit Flies of Economic Importance, 298302.
Ruiz-Torres, M.J., A. Tudela-Cárdena y A. Estévez-Alcalde (2013).
Eficacia de la predación de crisopa (Chrysoperla carnea, Stephens
1836) contra la generación antófaga de la polilla del olivo (Prays oleae
Bernard, 1788). En el XVI Simposium Científico-Técnico de Expoliva
2013.
Santos, S., F. Gonçalves, R. Rei, A. Raimundo y L. Torres (2008).
Coccinelideos associados ao olivar portugues. Importancia na protecçao
contra a cochonila-negra. Edita Sector Editorial da U.T.A.D.
Speranza, S., G. Bellocchi y C. Pucci (2004). IPM trials on attract-and-kill
mixtures against the olive fly Bactrocera oleae (Diptera Tephritidae).
Bulletin of Insectology 57 (2): 111-115.
Vargas, E. y H.K. Aldebis (2007) Control de plagas en el olivar. Cambios
inducidos por la cobertura vegetal. En Cubiertas vegetales en olivar pp
115-124. Consejería de Agricultura y Pesca. Junta de Andalucía.