Técnicas de hibridación Concepto, modalidades y tipos de sondas Aplicaciones principales Federico Rojo Fundación Jiménez Díaz Guión de la presentación • Alteraciones estructurales del DNA y cáncer • Hibridación in situ: concepto y tipos de sondas • Aplicaciones: diagnóstico, pronóstico y predicción • Tres ejemplos de estudio de traslocaciones y de alteraciones numéricas Guión de la presentación • Alteraciones estructurales del DNA y cáncer • Hibridación in situ: concepto y tipos de sondas • Aplicaciones: diagnóstico, pronóstico y predicción • Tres ejemplos de estudio de traslocaciones y de alteraciones numéricas Alteraciones estructurales del DNA en cáncer Cell extrinsic mechanisms: • Radiation • Topoisomerase inhibitors • Oxidative stress • Toxic agents • Viruses Proto-oncogene / Supressor gene Chromosome Cell intrinsic mechanisms: • Aberrant DNA-repair mechanisms • Non-canonical DNA • Fragile sites • Transcriptional stress Unbalanced translocation Point mutation Gene gain, amplification Balanced translocation Chromosomal translocation Proto-oncogene / Supressor gene Chromosome Local rearrangement Deletion Local rearrangement Inversion Isochromosome, ring chromosome Alteraciones estructurales del DNA en cáncer Holland, AJ & Cleveland, DW. Nat Med 2012 Guión de la presentación • Alteraciones estructurales del DNA y cáncer • Hibridación in situ: concepto y tipos de sondas • Aplicaciones: diagnóstico, pronóstico y predicción • Tres ejemplos de estudio de traslocaciones y de alteraciones numéricas Concepto de la hibridación in situ Hibridación con sondas radiactivas (John, 1969) Hibridación fluorescente (Pinkel, 1986) para marcado de cromosomas y de cambios en genes La base de las técnicas de hibridación de DNA Estrategias para el estudio de alteraciones cromosómicas: Hibridación in situ de DNA 1. Desnaturalización de las sondas de DNA 2. Desnaturalización del molde de DNA (cromosoma) 3. Annealing (renaturalización, hibridación de las pruebas) 4. Lavado de posthibridación, astringencia (SCC, formamida) 5. Contratinción de los núcleos (DAPI, PI) Hibridación in situ de fluorescencia Sondas específicas de locus, centroméricas y teloméricas Gene-specific probes Centromeric probes Normal Abnormal Telomeric probes Sondas de fusión (fusion-probes) y de separación (break-apart / split-probes) Estrategias para el estudio de alteraciones cromosómicas: Hibridación in situ FISH Rhodamine / Texas redlabeled DNA probe CISH FITClabeled DNA probe Texas redlabeled DNA probe Anti-Texas red conjugated with AP Chromogenic detection Hoff, K et al. Anat Pathol 2010 SISH FITClabeled DNA probe Anti-FITC conjugated with HRP Chromogenic detection DNPlabeled DNA probe Anti-DNP conjugated with HRP Silver acetate detection DNPlabeled DNA probe Anti-DNP conjugated with AP Chromogenic detection Estrategias para el estudio de alteraciones cromosómicas: Hibridación in situ de DNA Aplicaciones • Detección de aneuploidia • Cromosomas en metafase • Análisis de centrómeros • Núcleos en interfase • Estudio de cromosomas • Tejidos fijados • Análisis de genoma completo (pintado cromosómico) • Células en cultivo • Identificación de traslocaciones • Detección de genes • Estudio de microdeleciones • Determinación de amplificación y deleción génica Estrategias para el estudio de alteraciones cromosómicas: Hibridación in situ de RNA (mRNA y miRNA) Estrategias para el estudio de alteraciones cromosómicas: Cariotipo espectral, m-FISH 5 5 6 6 3 1 9 2 13 X 14 1 der(1)t(1;5) der(2)t(1;2) B6-15 B6-1, B6-15 9 X der(3)t(X;3) HT29, C7-1, C7-15 der(5)t(5;13) der(6)t(6;14) HT29, C7-1, C7-15 HT29, C7-1, C7-15 12 der(6)t(X;6;9) B6-1, B6-15 5 15 9 9 X X 9 ins(X;9) HT29 13 7 14 6 9 der(9)t(X;6;9) C7-15 der(12)t(7;12) B6-15 der(13)t(5;13) HT29, C7-1 der(14)t(6;14) HT29, C7-1, C7-15 dup(19p) C7-1, C7-15 Estrategias para el estudio de alteraciones cromosómicas: Hibridación Genómica Comparada (CGH) - muestra cambios del número de copias de secuencias de DNA (pérdidas, ganancias y amplificaciones), pero no detecta traslocaciones balanceadas. - puede utilizarse tanto tejido fresco como fijado en formol y su sensibilidad es afectada por el porcentaje de células tumorales de la muestra. Estrategias para el estudio de alteraciones cromosómicas: Hibridación Genómica Comparada (CGH) Guión de la presentación • Alteraciones estructurales del DNA y cáncer • Hibridación in situ: concepto y tipos de sondas • Aplicaciones: diagnóstico, pronóstico y predicción • Tres ejemplos de estudio de traslocaciones y de alteraciones numéricas Traslocaciones en procesos linfoproliferativos Traslocaciones en sarcomas Jain, S et al. Int J Clin Exp Pathol 2010 Síndromes hereditarios asociados a sarcomas en edad pediátrica Slater, O & Shipley, J. J Clin Pathol 2007 Guión de la presentación • Alteraciones estructurales del DNA y cáncer • Hibridación in situ: concepto y tipos de sondas • Aplicaciones: diagnóstico, pronóstico y predicción • Tres ejemplos de estudio de traslocaciones y de alteraciones numéricas Sarcoma sinovial: Traslocación (X;18)(p11;q11) Sarcoma sinovial: Traslocación (X;18)(p11;q11) Before translocation Chromosome X Chromosome 18 Jefferson T, D Mol Pathol, 2005 After translocation Sarcoma sinovial: Traslocación (X;18)(p11;q11) Sarcoma sinovial: Traslocación (X;18)(p11;q11) Amary, MFC et al. Mod Pathol 2007 Sarcoma sinovial: Traslocación (X;18)(p11;q11) Normal Abnormal SYT 3’ SYT 5’ Targetable genes in NSCLC Oxnard, GR et al. J Clin Oncol 2013 Traslocación de ALK en cáncer de pulmón Doebele RC et al. Clin Cancer Res 2012 Traslocación de ALK en cáncer de pulmón Doebele RC et al. Clin Cancer Res 2012 Traslocación de ALK en cáncer de pulmón - Evaluación de > 50 células - Separación de señales: la distancia entre ambas equivale al diámetro de una señal o se detecta únicamente la señal 3’ - > 15% de las células con alteración ALK-3’ ALK-5’ Lindeman, NI et al. Arch Pathol Lab Med. 2013 Utilidad del FISH en el diagnóstico diferencial en lesiones melánicas cutáneas Gerami, P et al. Am J Surg Pathol 2009 Bastian, BC et al. Am J Pathol 2003 Bastian, BC et al. Cancer Res 1998 North, JP et al. Am J Surg Pathol 2014 Utilidad del FISH en el diagnóstico diferencial en lesiones melánicas cutáneas Utilidad del FISH en el diagnóstico diferencial en lesiones melánicas cutáneas RREB1 CCND1 MYB CEP6 Utilidad del FISH en el diagnóstico diferencial en lesiones melánicas cutáneas % núcleos con incremento del gen RREB1: 57% (> 29%) 80 % núcleos con ganancia relativa del gen RREB1: 73% (> 55%) % núcleos con incremento del gen CCND1: 6% Número de células 70 (> 38%) % núcleos con pérdida relativa del gen MYB: 55% (> 40%) 60 50 CEP6 40 MYB 30 REBB1 CCDN1 20 10 0 0 1 2 3 Número de señales por núcleo 4 5 Mensajes finales Las técnicas de hibridación in situ permiten determinar alteraciones estructurales del DNA (y el estudio de RNA) Utilidad diagnóstica, pronóstica y predictiva de respuesta