PROTEINAS PLASMÁTICAS TOTALES

DETERMINACIÓN DE HEMATOCRITO (Hto), PROTEINAS PLASMÁTICAS
TOTALES (ppt) Y ALBUMINA (Alb) EN CABALLOS DE SALTO ANTES Y
DESPUÉS DE CADA ENTRENAMIENTO EN BOGOTÁ
JUAN NICOLAS USSA USAQUEN
JESUS AURELIO SALGADO FARIAS
UNIVERSIDAD DE LA SALLE
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
PROGRAMA DE MEDICINA VETERINARIA
BOGOTÁ
2009
1
DETERMINACIÓN DE HEMATOCRITO (Hto), PROTEINAS PLASMÁTICAS
TOTÁLES (ppt) Y ALBÚMINA (Alb) EN CABALLOS DE SALTO ANTES Y
DESPUES DE CADA ENTRENAMIENTO EN BOGOTÁ.
JUAN NICOLÁS USSA USAQUEN
JESUS AURELIO SALGADO FARIAS
Trabajo de grado
Director:
DRA. CLAUDIA AIXA MÚTIS
UNIVERSIDAD DE LA SALLE
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
PROGRAMA DE MEDICINA VETERINARIA
BOGOTÁ
2009
2
UNIVERSIDAD DE LA SALLE
DIRECTIVOS
Rector
Hno. Carlos Gabriel Gómez
Restrepo
Vicerrector Académico
Hno. Fabio Humberto Coronado
Padilla
Vicerrector de Promoción y
Desarrollo Humano
Hno. Carlos Pabón Meneses
Vicerrector de Investigación y
Hno. Manuel Cancelado Jiménez
Transferencia
Vicerrector Administrativo
Dr. Mauricio Fernández
Fernández
Decano de la Facultad de
Ciencias agropecuarias
Dr. Luis Carlos Villamil Jiménez
Director Programa
Medicina Veterinaria
Dr. Pedro Pablo Martínez
Méndez
3
Nota de aceptación:
_______________________________
Dra. Claudia Aixa Mutis
Director
_______________________________
Dr. Ernesto A. Dalmau B.
Jurado
_______________________________
Dr. Andrey Galindo
Jurado
Bogotá, marzo de 2009
4
5
TABLA DE CONTENIDO
pág.
INTRODUCCIÓN
133
1.1 COMPOSICIÓN SANGUÍNEA DEL CABALLO ATLETA
14
1.1.1 Eritrocitos:
15
1.1.2 Leucocitos:
15
1.1.3 Plaquetas:
18
1.1.4 Plasma:
18
1.2 VOLUMEN CELULAR AGLOMERADO (VCA) / HEMATOCRITO
19
1.3 PROTEÍNAS PLASMÁTICAS TOTALES
21
1.3.1 Albúmina
22
1.4 PERDIDA DE FLUIDOS V.S TERMOREGULACIÓN
24
2. DISEÑO METODOLÓGICO
27
2.1 LOCALIZACIÓN
27
2.2 POBLACIÓN Y MUESTRA
27
2.3 VARIABLES
27
2.4ANÁLISIS ESTADÍSTICO
28
2.5 MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS
29
3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
31
3.1 HEMATOCRITO
31
3.2 PROTEINAS PLASMÁTICAS TOTALES
33
3.3 ALBÚMINA
35
4. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
37
BIBLIOGRAFÍA
38
6
LISTA DE FIGURAS
pág.
Figura. 1 Diferentes componentes de la sangre.
7
19
LISTA DE TABLAS
pág.
Tabla 1. Porcentajes de referencia de VCA/Hematocrito
20
Tabla 2. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N),
medias (M) y desviaciones estándar (DE) para hematocrito (%).
31
Tabla 3. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del
ejercicio (T2), seis horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos
números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para
hematocrito (%).
32
Tabla 4. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N),
medias (M) y desviaciones estándar (DE) para proteína total (g/dL)
34
Tabla 5. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del
ejercicio (T2), seis horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos
números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para
proteína total (g/dL)
34
Tabla 6. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N),
medias (M) y desviaciones estándar (DE) para albúmina (g/dL)
35
Tabla 7. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del
ejercicio (T2), seis horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos
números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para
albúmina (g/dL).
36
8
GLOSARIO
ALBÚMINA: proteína que se encuentra en gran proporción en el plasma
sanguíneo, siendo la principal proteína de la sangre y a su vez la más
abundante en el ser humano. Es sintetizada en el hígado.
ENTRENAMIENTO: se refiere a la adquisición de conocimiento, habilidades, y
capacidades como resultado de la enseñanza de habilidades.
HEMATOCRITO: es el porcentaje del volumen de la sangre que ocupa la
fracción de los glóbulos rojos.
HÍGADO: es un órgano o víscera del cuerpo y a la vez, la glándula más
voluminosa de la anatomía y una de las más importantes en cuanto a la
actividad metabólica del organismo. Desempeña funciones únicas y vitales
como la síntesis de proteínas plasmáticas, función desintoxicante, almacén de
vitaminas, glucógeno, etc. Además, es el responsable de eliminar de la sangre
las
sustancias
que
pueden
resultar
nocivas
para
el
organismo,
transformándolas en otras innocuas.
PLASMA: es la fracción líquida y acelular de la sangre. Está compuesto por
agua el 90% y múltiples sustancias disueltas en ella. De éstas las más
abundantes son las proteínas. También contiene glúcidos y lípidos, así como
los productos de desecho del metabolismo. Es el componente mayoritario de la
sangre, puesto que representa aproximadamente el 55% del volumen
sanguíneo total. El 45% restante corresponde a los elementos formes (tal
magnitud está relacionada con el hematocrito).
PRESIÓN ONCÓTICA: también conocida como presión coloidosmótica es la
presión hidrostática a consecuencia del efecto osmótico ejercido por las
proteínas dentro de un espacio específico (matriz extracelular, vasos
sanguíneos, etc.) delimitado por una membrana selectivamente permeable
9
.
PROTEÍNAS: son macromoléculas formadas por cadenas lineales de
aminoácidos.
REPOSO: es un estado de movimiento rectilíneo uniforme en el cual la
velocidad es nula.
SUERO: es el remanente del plasma sanguíneo una vez consumidos los
factores hemostáticos por la coagulación de la sangre.
10
RESUMEN
Esta investigación tuvo como objetivo estudiar la variación en los niveles de
hematocrito (Hto), proteínas plasmáticas totales (ppt) y albúmina (Alb) en
caballos de salto antes y después de cada entrenamiento en la ciudad de
Bogotá D.C., en el que se utilizaron 12 equinos (edad entre 5 y 9 años) de salto
de la Escuela de Equitación del Ejército Nacional de Colombia (EEE), como
metodología se tomaron muestras sanguíneas directamente de la vena yugular
de los equinos, sometidos a ejercicio monitorizado y cronometrado (30 minutos)
en 3 momentos específicos: en reposo (T1), inmediatamente finalizado el
entrenamiento (T2) y a las 6 horas post-entrenamiento (T3), durante un periodo
total de 2 meses. Estas tomas se realizaron en los días 0, día 15, día 30, día 45
y día 60, bajo los parámetros antes mencionados; los resultados obtenidos
fueron depurados y analizados por medio del programa EXCEL y STATISTIX,
haciéndose un análisis de estadística descriptiva y de comparación de medias
por medio del test de Tukey, con un nivel de significancia de p<0.05; lo cual
determinó diferencias estadísticamente significativas entre T1 y T2 y entre T1 y
T3 en el mismo día de muestreo para hematocrito, en contraste con los niveles
séricos de proteínas plasmáticas totales y albúmina que mostraron diferencias
significativas entre los valores obtenidos en los distintos días de muestreo (0,
15, 30, 45, 60); indicando que la síntesis de proteínas séricas puede verse
afectada por factores ambientales, nutricionales, patologías agudas y crónicas,
factores fisiológicos como la edad, cambios hormonales, factores extrínsecos y
por estrés. Se concluyó que las diferencias significativas entre los días de
muestreo para albúmina, puede relacionarse a factores como baja
disponibilidad de agua, aumento de la temperatura ambiental, entre otros.
Palabras clave: Equino, Hematocrito, proteínas plasmáticas totales, albumina
11
ABSTRACT
This research has a study about the variation in the hematocritc (Hto), total
plasmatic proteins (ppt) and albumin (Alb) levels in jump horses before and
after each training in Bogota D.C. They were used 12 equines (with ages
between 5 and 9 years old) of the School of Horsemanship of the National Army
of Colombia (EEE), as a methodology, blood samples were took directly from
the jugular vein of the equines, submitted to exercise monitored and timed (30
minutes) in 3 specific moments: In rest (T1), immediately when the training was
over (T2) and at 6 hours post-training (T3), during a total period of 2 months.
These captures were realized in day 0, day 15, day 30, day 45 and day 60,
under the parameters before mentioned; the results were analyzed using the
program EXCEL and STATISTIX, with an analysis of descriptive statistics and a
significative comparison by Tukey test, with a level of significance of p <0.05;
which determined statistically significant differences between T1 and T2 and
between T1 and T3 in the same day of sampling for hematocritc, In contrast
with the seric levels of total plasmatic proteins and albumin that showed
significant differences between the values obtained in the different days of
sampling (0, 15, 30, 45, 60); indicating that the synthesis of seric proteins can
be affected by environmental factors, nutritional factors, pathology acute and
chronicles, physiological factors as the age, hormonal changes, extrinsic factors
and for stress. By these different samplings we can conclude that the significant
differences between the days of sampling for albumin, this can be related to
factors as low availability of water, increase of the environmental temperature,
among others.
Key words: Equine, hematocritc, total plasmatic proteins, albumin
12
INTRODUCCIÓN
El estudio del hematocrito y de las proteínas plasmáticas del equino (entre
otros parámetros) determina un valor objetivo importante que junto a la
observación clínica del paciente ofrecen una información muy valedera sobre el
estado de hidratación del mismo. Es sabido que un desequilibrio tanto en el
estado hidroeléctrolitico, como en el equilibrio ácido básico del equino es el
responsable de una sucesión de alteraciones que se desencadenan en forma
de cascada que terminan alterando las grandes funciones del caballo atleta, el
rendimiento del mismo y algunas veces responsables de estados irreversibles
que llevan a la muerte del equino.
Hablar sobre entrenamiento siempre requiere de mucho cuidado, debido a que
las personas vinculadas a la preparación atlética siempre están expectantes de
poder encontrar un protocolo de trabajo que les permita tener éxito y
lamentablemente, no es posible dar con una receta mágica que se adapte a
todos los caballos de cada una de las disciplinas hípicas. Esto se debe a que
una gran cantidad de variables como la edad del animal, alimentación y
nutrición, tipo de entrenamiento, temperamento, factores extrínsecos, raza, tipo
de superficie sobre la cual se entrena y disciplina del animal, hacen que los
niveles hematológicos y fisiológicos se modifiquen.
Es por esto que estudiar la variación del hematocrito (Hto), proteínas
plasmáticas totales (ppt) y albúmina (Alb) en caballos de salto antes y después
de cada entrenamiento en Bogotá, se hace indispensable para determinar los
cambios fisiológicos entre estas variables.
13
1. GENERALIDADES DEL CABALLO ATLETA
La evolución del caballo como animal de presa lo ha dotado con un sistema
cardiovascular de funciones muy especializadas. La capacidad que posee este
animal para
correr con
eficacia
a
grandes velocidades eclipsa
las
correspondientes habilidades de los seres humanos y de la mayor parte de las
especies. Esto se debe en gran medida a la capacidad única del caballo para
adaptarse rápidamente a las demandas de las actividades aeróbicas y
anaeróbicas.
Todos los caballos que participan en competencias de alto rendimiento deben
someterse a un plan de entrenamiento; este debe tener como finalidad
desarrollar un atleta que expresa el máximo de su potencial, preservando al
animal para que tenga una campaña o vida deportiva lo más duradera posible y
con el menor numero de lesiones. La especificidad del entrenamiento hace
referencia a dos leyes que siempre deben tenerse en cuenta y dicen:
El plan de entrenamiento debe ser específico para cada caballo
(variación individual)
El plan de entrenamiento debe ser específico para cada disciplina hípica
(el tipo de ejercicio que realiza durante las sesiones de entrenamiento =
al tipo de ejercicio que realizará durante la competencia), (Boffi, 2007).
1.1 COMPOSICIÓN SANGUÍNEA DEL CABALLO ATLETA
La sangre es un tipo de tejido conjuntivo, y obtener una muestra de sangre es
en esencia hacer una biopsia; la sangre está compuesta por diversas células
rodeadas por una sustancia no celular, al igual que ocurre con otro tipo de
tejidos como el tejido fibroso, el hueso o el cartílago. Por supuesto la diferencia
principal es que la substancia extracelular de la sangre es un líquido llamado
plasma; ésta característica, además del hecho de que la mayoría de este “
tejido” se localiza cerca de la superficie del animal permite obtener una muestra
14
de sangre de manera comparativamente más sencilla que obtenerla de
órganos y tejidos más densos (Voigt, 2003).
La
sangre
del
caballo
es
un
líquido
que
contiene,
en
volumen
aproximadamente 45% de eritrocitos, glóbulos rojos o hematíes, 1% de células
blancas (leucocitos) y plaquetas, y un 54% de plasma. La sangre puede
separarse en sus componentes celular y líquido mediante centrifugación. La
fase líquida de la sangre es mucho más ligera que las células, este líquido
acelular o extracelular de la sangre se denomina plasma, (Mutis y Ramírez,
2003).
1.1.1 Eritrocitos: Glóbulos rojos sanguíneos o hematíes son el tipo de células
más numerosos del organismo, su producción tiene lugar en la médula ósea,
requiriendo de 6 a 8 días para alcanzar la madurez; si se produce un
incremento de la demanda puede ser liberado a sangre de 3 a 5 días (Voigt,
2003); la vida media de los eritrocitos en el caballo en promedio es de 140-155
días (Schalm´s, 2000), los eritrocitos son esenciales para transportar oxigeno a
los tejidos a través del sistema vascular, los antiguos son extraídos y
eliminados por el bazo, (Boffi, 2007).
La función de los hematíes es transportar el pigmento respiratorio hemoglobina
(Hb) de los pulmones a los tejidos corporales, debido a que la Hb atrae y libera
oxigeno, la función esencial del eritrocito es distribuir dicho elemento por todo
el organismo; el diámetro de los eritrocitos en el equino tiene un tamaño en
promedio de 5,8 micras y un rango de 4,0 – 8,0 micras, (Voigt, 2003).
Cuando el contenido de hemoglobina de la sangre aumenta, también crece la
capacidad de transportar oxígeno. Esto último sucede en muchos mamíferos,
pero especialmente en el caballo atleta cuando se esta ejercitando; ya que, se
produce la contracción del bazo, que libera a la circulación más eritrocitos,
(Funquist, 2001).
1.1.2 Leucocitos: Los leucocitos también llamados glóbulos blancos son un
conjunto heterogéneo de células sanguíneas que son los efectores celulares de
la respuesta inmune, así intervienen en la defensa del organismo contra
15
sustancias extrañas o agentes infecciosos. Se originan en la médula ósea y en
el tejido linfático, (Mutis y Ramírez, 2003).
A diferencia de lo que ocurre con los eritrocitos, no existe diferencia en los
glóbulos blancos de un caballo sedentario en reposo y un caballo atleta. Sin
embargo se presentan alteraciones transitorias durante el ejercicio debido a
una distribución intravascular de granulocitos y linfocitos. Es por esto que tras
un ejercicio extremo podría observarse un leve incremento en los glóbulos
blancos presentando una variación en la relación neutrófilo-linfocito. Esta
condición podría persistir incluso varias horas después de haber finalizado el
ejercicio (Boffi, 2007).
Tipos de leucocitos
Se han identificado varios tipos que incluso tienen funciones diferentes.
Se clasifican en:
1) Granulocitos: Entre los granulocitos existen tres clases: neutrófilos,
eosinófilos y basófilos
Neutrófilos
Son la primera línea de las defensas del organismo. Forman aproximadamente
un 60% del total de glóbulos blancos, o entre 3.500 a 6.000 en número por ml.
Reaccionan rápidamente, en unas cuatro horas, ante cualquier problema. Con
ciertos tipos de infecciones severas pueden aumentar en número, hasta
40.000. Sin embargo, sus números bajan ante problemas relacionados con
estrés fuerte o algún virus. Si se ve un aumento en el número del neutrófilo
segmentado, quiere decir que el animal está experimentando un estrés agudo y
está utilizando incluso los neutrófilos inmaduros producidos recientemente por
la médula ósea. Se pueden ver también bajo un microscopio cambios en la
estructura celular, que pueden indicar un problema de infección o inflamación
(Thrall, 2004).
16
Eosinófilos:
Son células grandes de color rojo, que reaccionan ante problemas relacionados
con alergias o irritaciones en el sistema respiratorio. Una variación por debajo
de lo normal sólo sale al principio de un problema, cuando los eosinófilos han
salido de la sangre para ir al tejido afectado, y no ha pasado suficiente tiempo
para producir más (Thrall, 2004).
Basófilos
Reaccionan ante problemas relacionados con alergias e inflamación de tejidos.
La cantidad de basófilos, normalmente, es de entre un 0 a 1% del total de la
proporción de los glóbulos blancos, así que posibles cambios son difíciles de
notar. Contienen heparina e histamina. Cuando hay inflamación, evita que la
sangre se coagule y ayudan a prevenir respuestas alérgicas. Hay un equilibrio
delicado entre los basófilos y los eosinófilos en casos de inflamación (Thrall,
2004).
2) Agranulocitos: se encuentran los linfocitos, y los monocitos.
Estos se encuentran en distinta proporción y cantidades, y son la base de
elaboración del denominado "recuento leucocitario diferencial" o" fórmula
leucocitaria", la cual es utilizada para establecer el estado fisiológico normal y
otros estados de salud. Un análisis de la cantidad total de glóbulos blancos
está considerado normal si oscila entre 6.000 y 10.000 u/ml (Mutis y Ramírez,
2003).
Linfocitos
Existen varios tipos que funcionan como la segunda línea de defensa, después
de los neutrófilos. Los linfocitos transportan las proteínas del sistema y tienen
un papel en la producción de anti-cuerpos. Su número baja ante problemas
relacionados con estrés crónico, crecimiento, lesiones o un caballo con carácter
nervioso, aumentan ante problemas crónicos, como cáncer o infecciones. Si los
17
linfocitos no se regeneran después de un descanso o cuando se disminuye el
trabajo del caballo, quiere decir que hay un estrés en el organismo, crónico y
persistente. En este estado, el caballo no puede llegar a su máximo nivel de
forma física hasta que se encuentre la causa real del problema (Thrall, 2004;
Boffi, 2007).
Monocitos
Son células de gran importancia, porque su presencia significa que hay un
proceso de reparación. Su función es ayudar a la reparación directa,
dispersando y absorbiendo el tejido dañado después de alguna lesión. Al igual
que los eosinófilos y monocitos, la cantidad de células baja al empezar el
proceso y luego presenta un aumento cuando ya están producidas las células
nuevas que necesita el organismo. Si el caballo ha pasado una temporada
larga de entrenamiento y aumentan los monocitos, puede significar que el
caballo está sobre-entrenado. El caballo necesitará descanso en este caso
(Thrall, 2004; Boffi, 2007).
1.1.3 Plaquetas: Los trombocitos son porciones del citoplasma de una gran
célula que se encuentra en la médula ósea (megacariocito) y presenta una gran
variedad de tamaños y formas; son pequeños, de tinción suave y pueden
contener gránulos. Su función es la de contribuir al proceso de coagulación
cuando se dañan los vasos sanguíneos; hay aproximadamente 400.000
plaquetas/mL de sangre con una vida media de 9 a 11 días. Un ejercicio
extenuante incrementaría la agregabilidad plaquetaria de los equinos; sin
embargo, se ha demostrado una reacción significativamente menor de la
agregabilidad plaquetaria en caballos con una historia clínica de hemorragia
pulmonar inducida por el ejercicio que en aquellos caballos sin esos
antecedentes (Boffi, 2007).
1.1.4 Plasma: está compuesto principalmente por agua (92%), se denomina
plasma gracias a su contenido proteínico (6%), el cual le da el color amarillo
18
pálido característico y por otras sustancias que se disuelven y quedan
suspendidas en el plasma mismo, como glucosa, grasas, aminoácidos,
vitaminas, hormonas, electrolitos y anticuerpos (Mutis y Ramírez, 2003). El
plasma, sin contenido de agentes coagulantes (proteínas) se denomina suero
(Boffi, 2007). De esta forma se distribuyen los componentes de la sangre (Fig.
1)
Fig. 1 Diferentes componentes de la sangre.
Fuente: Boffi, 2007
1.2 VOLUMEN CELULAR AGLOMERADO (VCA) / HEMATOCRITO
Se define el hematocrito (Hto) como la fracción de volumen que los eritrocitos
ocupan en un volumen de sangre (Coby, 2003), según Voigt (2003), el
hematocrito significa “dividir o separar la sangre”. Se utiliza el hematocrito para
estudiar casos de deshidratación y anemia. Según Boffi (2007), los niveles
normales de hematocrito de caballos pura sangre ingles en reposo oscilan
entre 32% y 47%, a diferencia de Shalm´s (2000), donde los denota entre 32%
y 53% en caballos de sangre fría (pony) y sangre caliente (cuarto de milla,
19
árabe) respectivamente. Si los niveles están por debajo o por encima de lo
anterior, indica que hay algún problema.
El objetivo de medir el volumen celular aglomerado es determinar el porcentaje
de eritrocitos que circulan por la sangre periférica en el momento de la
extracción (Tabla 1).
Tabla 1. Porcentajes de referencia de VCA/Hematocrito
Especie
Media %
Perro
45
Rango %
37-55
Caballo
43
32 – 55
35
24 – 44
Bovino
35
24 – 46
Hembra Humana
42
--Varón Humano
47
--Fuente: Voigt Gregg l., Conceptos y técnicas hematológicas para técnicos veterinarios (2003).
Sangre Caliente
Sangre Fría
Cuanto más se haya ejercitado el caballo, mayor será el Hto, hasta un máximo
de aproximadamente 0,65 a 0,70% con relación al valor normal. El Hto
aumenta con el ejercicio como consecuencia de la movilización esplénica de
los hematíes producidos por dicho ejercicio, y hay una menor proporción de
este incremento que es debido a la pérdida de líquidos producto de la
sudoración durante los ejercicios prolongados. En efecto, existe una relación
directa entre el valor de Hto y la velocidad de carrera hasta el máximo del Hto.
Lleva entre 30 y 60 segundos para que se produzca una movilización esplénica
como consecuencia de una mayor concentración de adrenalina circulante. El
bazo secuestra la mayoría de los glóbulos rojos dentro de los primeros 30
minutos, aunque la mayor caída del Hto se observa dentro de los primeros 5
minutos. (Boffi, 2007).
Al interpretar el hemograma completo hay que tener en cuenta un número de
factores que podrían influir en las propiedades normales de los eritrocitos,
incluyendo la edad, raza, tono simpático, condición física, nutrición y variación
individual del animal y el almacenamiento de la muestra de sangre. Los
caballos Sangre Pura de Carrera presentan un Hto con una concentración de
20
hemoglobina y un número de glóbulos rojos más elevado que otras razas, una
vez iniciado el entrenamiento para las carreras. El bazo equino reacciona a las
catecolaminas liberadas durante el ejercicio con la contracción y liberación de
un gran número de eritrocitos, esto causa una policitemia a corto plazo con el
objetivo de satisfacer una mayor demanda de oxigeno requerida por los
músculos activos (Boffi, 2007).
Es obvio que las desviaciones de un hematocrito normal pueden tener grandes
consecuencias en términos de la capacidad de la sangre para transportar
oxígeno. El hematocrito afecta la viscosidad de la sangre, cuando el
hematocrito se eleva por encima del 40% la viscosidad aumenta con rapidez. A
esto se le denomina policitemia (Meyer, 1998).
El problema de un aumento en la viscosidad de la sangre es que ocasiona
viscosidad dificultad del bombeo de la sangre al corazón, la policitemia produce
una sobrecarga fuerte para el corazón y puede ocasionar insuficiencia cardíaca
si el corazón no está sano, en caso de que ocurra lo disímil, es decir, que el
hematocrito sea muy bajo, se denomina Anemia; esta es la condición baja,
anormal de la cantidad de glóbulos rojos en la sangre. Esta alteración conlleva
a un aumento del gasto cardiaco con el fin de proveer la cantidad adecuada de
oxigeno cada minuto a todos los tejidos. Esta necesidad de aumentar el gasto
cardiaco también impone un incremento en la carga de trabajo y puede
producir insuficiencia en un corazón enfermo. De este modo el rango del
hematocrito entre 40 al 50% provee a la sangre la hemoglobina suficiente para
llevar a cabo el transporte de oxigeno (García, 1996).
1.3 PROTEÍNAS PLASMÁTICAS TOTALES
De forma colectiva, las proteínas plasmáticas realizan una función nutritiva,
ejercen presión coloide osmótica y ayudan en el mantenimiento del equilibrio
acido-base. Las proteínas de forma individual sirven como enzimas, factores de
coagulación, hormonas y sustancias de transporte. El principal lugar de síntesis
21
de las proteínas plasmáticas es el hígado y el segundo lugar de síntesis
principal es el sistema inmunitario (Duncan y Prasse´s, 2005).
Las proteínas presentes en el plasma son la albúmina, las globulinas y el
fibrinógeno. Las albúminas generalmente se utilizan para ligar hormonas
esteroideas, mientras que las globulinas en algunos casos forman los
anticuerpos usados en la defensa contra las enfermedades; y el fibrinógeno
que se disuelve en el plasma, es el responsable de la coagulación en presencia
del calcio. (Boffi, 2007). Las proteínas conceden al plasma su color amarillo
pálido característico. Las proteínas plasmáticas se sintetizan en el hígado y se
añaden al torrente sanguíneo cuando éste pasa por los capilares hepáticos
(Mutis y Ramírez, 2003).
1.3.1 Albúmina
La albúmina es la proteína de mayor concentración en el plasma y transporta
muchas moléculas pequeñas en la sangre (por ejemplo, bilirrubina, calcio,
progesterona y drogas); representa el 35 – 50% de la concentración total de
proteínas en animales domésticos (equinos, bovinos). También es de vital
importancia para impedir que el líquido de la sangre se filtre hacia los tejidos.
Esto se debe a que, a diferencia de las moléculas pequeñas como el sodio y el
cloro, la concentración de albúmina en la sangre es mucho mayor que en el
líquido por fuera de ésta.
Dado que la albúmina es producida por el hígado, la disminución de esta a
nivel sérico puede ser producto de una enfermedad hepática, pero también
puede ser el resultado de una enfermedad renal que permite que la albúmina
se escape a la orina. La disminución de la albúmina también tiene su
explicación por desnutrición o por una dieta baja en proteínas. Existe una
correlación directa entre el recambio de albumina y el tamaño corporal, la vida
media de la albumina en el caballo es de 19 días. La albúmina tiene carga
negativa; la membrana basal del glomérulo renal, también esta cargada
negativamente, lo que impide la filtración glomerular de la albúmina a la orina.
22
En el síndrome nefrótico, esta propiedad es menor, y se pierde gran cantidad
de albúmina por la orina (Duncan & Prasse´s 2005). .
La función principal de las proteínas en el equilibrio ácido-base es de servir
como buffer intracelular, amortiguando o disminuyendo los cambios de acidez
de una solución cuando a ésta se le añade un ácido o un álcali y conseguir,
por lo tanto, que el pH de la solución cambie lo menos posible; su efecto es
prácticamente inmediato. Lo ideal es que un buffer tenga la misma cantidad de
sus dos componentes (ácido y base), para amortiguar tanto un ácido como una
base (Duncan & Prasse´s 2005).
La mayor parte de la proteína total está compuesta por albúmina y globulina,
con una concentración reducida de fibrinógeno. En caballos sanos y en reposo,
la relación albúmina/globulina es de aproximadamente 0,7:1 a 1:1. En
consecuencia, las proteínas plasmáticas tienden a ejercer un efecto osmótico
sobre los líquidos que rodean a los tejidos. La concentración de proteínas
plasmáticas puede alterarse como consecuencia del entrenamiento y el
ejercicio. Cuando se inicia a un caballo en el entrenamiento, podría observarse
una leve disminución de las proteínas totales durante los 2 primeros meses, y
una elevación subsiguiente con el ejercicio. En caballos de carrera, es común
que se produzca un incremento del 15%, mientras que los caballos de
endurance experimentan un aumento máximo del 25%. El menor volumen
plasmático y la mayor viscosidad sanguínea posiblemente presenten efectos
perjudiciales para el rendimiento deportivo, ya que reducen la perfusión de los
órganos y tejidos
y alteran
el mecanismo de termorregulación.
La
concentración de albúmina aumenta con la deshidratación, pero podría
disminuir como consecuencia de algún estado patológico. Por lo tanto, un
incremento de las proteínas totales con una disminución de la relación
albúmina/globulina indicaría una condición patológica o inflamación más que un
simple estado de deshidratación (Boffi, 2007).
La pérdida del volumen de plasma durante el ejercicio prolongado ha sido
reportado en 1,5% por hora y la perdida de fluidos puede llegar cerca de 5,4%
a 20% del total del volumen corporal en las primeras dos horas de ejercicio, la
perdida de fluidos del fluido extracelular es reemplazada por el volumen del
23
fluido intracelular. Después de este periodo aumentan las proteínas
plasmáticas totales, representado en la perdida continua de agua corporal por
la sudoración y la ventilación, con reducción subsecuente del volumen del
fluido intracelular. El estudio del hematocrito y de las proteínas plasmáticas del
equino (entre otros parámetros) determina un valor objetivo importante que
junto a la observación clínica del paciente ofrecen una información muy
valedera sobre el estado de hidratación del mismo. Es sabido que un
desequilibrio tanto en el estado hidroeléctrolitico, como en el equilibrio ácido
básico del equino es el responsable de una sucesión de alteraciones que se
desencadenan en forma de cascada que terminan alterando las grandes
funciones del caballo atleta, el rendimiento del mismo y algunas veces
responsables de estados irreversibles que llevan a la muerte del equino
(Flaminio and Rush, 1998).
1.4 PERDIDA DE FLUIDOS V.S TERMOREGULACIÓN
El trabajo y movimiento continuo son los responsables de la producción de
calor. El 75 al 80 % de toda la energía producida es eliminada como calor y
puede aumentar la temperatura corporal de 3 a 4 grados del rango normal. El
significado más eficiente de la disipación de calor es por medio de la
evaporación del sudor, lo cual puede comprometer el volumen de fluidos,
aproximadamente 5 al 6 % del peso corporal durante la carrera. La producción
de sudor es proporcional a las condiciones de clima. Otras formas de pérdida
de calor incluyen la convección, disipación y radiación (Carlson, 1983).
Las venas superficiales en el cuerpo del caballo se dilatan con el ejercicio
extendiendo el área de exposición al ambiente lo que facilita la eliminación de
calor. El sudor permite la disipación de calor del cuerpo del caballo lo que lleva
a una excesiva pérdida de fluidos y electrolitos. Los caballos que compiten en
eventos de trabajo pierden entre 10 a 15 litros de fluido por hora, (Carlson,
1983). Si las condiciones ambientales combinan calor y humedad se produce
más sudor en una manera compensatoria pero no eficiente de perdida de calor.
En los aspectos prácticos, cuando la temperatura ambiental y la humedad
24
aumentan más de 110 °F es una indicación de condiciones inapropiadas para
el entrenamiento exponiendo al caballo a un riesgo de cansancio (Ecker Gl,
1996).
La arteria pulmonar y carótida tienen el papel de promover la perdida de calor
desde la circulación pulmonar (Hodgson, 1993). Un 30% del calor corporal se
pueden disipar por mecanismos pulmonares a un 40% del consumo máximo de
oxigeno. Esta ruta de disipación de calor se puede comprometer por la
deshidratación debido al aumento de la viscosidad de la sangre. Una
frecuencia respiratoria aumentada puede ser una línea de defensa secundaria
y costo metabólica contra la hipertermia y también contribuye a la perdida de
fluidos. (Ecker Gl, 1996)
La deshidratación tiene un costo predictivo en un atleta. Durante el ejercicio
grandes volúmenes de sangre son requeridos por los músculos para el
intercambio gaseoso, para la suplencia de energía y la remoción de desperdicio
metabólico. La hipertermia resulta en un gasto cardíaco aumentado por una
frecuencia cardíaca aumentada debido al aumento de la circulación periférica
extra para la disipación de calor. Algunos caballos tienen un patrón de
respiración especial para la humedad y los días calurosos. Estos animales
tienden a actuar con una mayor frecuencia cardíaca, pero muestran una tasa
de recuperación normal a pesar de la inversión (frecuencia respiratoria mayor
que la frecuencia cardíaca) (Naylor, 1993).
Se recomienda evaluar la temperatura rectal y la habilidad de control de la
hipertermia y deshidratación. La disipación de calor puede ocasionar un fluido
de sangre inadecuado a los sistemas que lo requieren.
El ejercicio puede disminuir el fluido sanguíneo a otras áreas como el tracto
digestivo lo que induciría cólico. Con deshidratación continua la perfusión de
órganos vitales y músculos es reducida por un aumento de la viscosidad
sanguínea lo que disminuiría la actividad de trabajo, energía necesaria y
producción de calor. Si las indicaciones de peligro de fatiga no son
consideradas el cansancio puede ocurrir rápidamente.
El estado de hidratación se puede evaluar por el examen físico, la cantidad de
sudor producido, grave depresión y anorexia.
25
El sudor del caballo es hipertónico al plasma por iones de Na, K, Cl, Ca y Mg
CARLSON (1083), ROSE (1990). Durante el ejercicio prolongado esta
diferencia disminuye como la concentración de electrolitos séricos por la
perdida constante de fluido (Snow, 1991).
Algunos caballos no beben agua en las primeras 20 millas de recorrido por lo
que no es raro encontrar signos clínicos de deshidratación al inicio de la
carrera. (Ecker Gl, 1994, 1996). Interesantemente la ansiedad disminuye con
las millas recorridas y el consumo de agua tiende a aumentar como indicador
de mejor hidratación en los chequeos veterinarios tardíos.
26
2. DISEÑO METODOLÓGICO
2.1
LOCALIZACIÓN
La investigación se llevó a cabo en las instalaciones de la escuela de
equitación del ejercito nacional (EEE) ubicada en la ciudad de Bogotá, donde el
alojamiento de los animales se basa en pesebreras cubiertas con techo de teja
de zinc, paredes en bloque debidamente pañetadas y pintadas, con puertas en
madera con pernos de movilidad y chapas de seguridad.
2.2 POBLACIÓN Y MUESTRA
Se seleccionaron 12 equinos clínicamente sanos, de 5 a 9 años de edad, con
similares condiciones de alimentación, mismas de manejo y entrenamiento. Se
extrajeron muestras de sangre por punción directa de la vena yugular mediante
agujas, la muestra fue recolectada en tubos al vacío BD Vacutainer® (K2 EDTA
7,2 mg) estériles. Las muestras de reposo (T1) fueron extraídas entre las 6:30 y
las 6:45 de la mañana, las muestras inmediatamente después del ejercicio (T2)
entre las 8:00 y las 8:30 de la mañana, y las muestras de las 6 horas postentrenamiento (T3) de acuerdo al tiempo de la última toma. De cada caballo se
extrajeron 5 ml de sangre venosa en cada tiempo de muestreo, para un total de
15 ml por día de muestreo; es decir 75 ml de sangre por animal en el tiempo de
muestreo general (día 0 – 60), y un total de 180 muestras sanguíneas en la
investigación. Posteriormente las muestras se trasladaron al laboratorio para su
correspondiente análisis.
2.3 VARIABLES
Se determinó si existe o no diferencia estadísticamente significativa entre:
reposo v.s post-ejercicio; reposo de los distintos muestreos (día 15 a día
60) v.s reposo del día 0 y post-ejercicio de los distintos muestreos (día 15 a
día 60) v.s post-ejercicio del día 0, como consecuencia del entrenamiento.
27
Además de estimar la correlación existente entre las características
evaluadas.
2.4
ANÁLISIS ESTADÍSTICO
El análisis estadístico, fue realizado por medio de un diseño en bloques con
arreglo factorial AXB, donde A= días de muestreo, B= horario del muestreo. El
diseño se encuentra expresado en el siguiente modelo:
Donde:
Yijk = µ +λK + αi + βj + (αβ) ij + Eijk
Yijk = Es la variable dependiente (respuesta proteína, hematocrito y albúmina)
µ= Es la media general
λK= Efecto del bloque (grupos de edad de los animales)
αi, βj = Efectos principales de α (cinco niveles 0, 15, 30, 45, 60) y β (6am, 8am y
2pm )
(αβ) ij = El efecto de la interacción de los DOS factores
Eijk = Error aleatorio asociado a cada observación
La hipótesis nula afirma que no existe diferencia entre los factores αi, βj, si
esta hipótesis es rechazada con un nivel de significancia de P<0,05 y se
realizarán las pruebas respectivas de comparación de medias, para este caso
Tukey.
La hipótesis alterna afirma que existe diferencia entre los factores αi, βj, si esta
hipótesis es rechazada, no se realizarán las pruebas respectivas de
comparación de medias.
Los resultados obtenidos fueron analizados por medio del programa EXCEL y
STATISTIX, haciéndose un análisis de estadística descriptiva, de correlación y
comparación de medias por medio del test de Tukey, para determinar si existen
diferencias significativas entre las características evaluadas durante: reposo del
día 0 v.s post-ejercicio de los distintos muestreos (día 15 a día 60), reposo v.s
post-ejercicio del mismo día (0, 15, 30, 45, 60), como consecuencia del
entrenamiento teniendo en cuenta la toma de las muestras en tiempo, periodo
entre cada toma e intensidad del ejercicio (30 minutos) de 12 ejemplares de la
28
Escuela de Equitación del Ejército Nacional como continuación
de la
investigación inicial del proyecto POLAR.
2.5 MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS
El estudio se realizó en las instalaciones de la escuela de equitación del
Ejército Nacional (EEE) ubicada en la ciudad de Bogotá, la cuál cuenta con
pista de entrenamiento de piso de arena, con promedios de perímetro de pista
de 25 metros de ancho por 70 de largo, con formas similares a un rectángulo.
Para determinar el esfuerzo físico que realizaron los caballos en los
entrenamientos, se caracterizó la corrida según el tipo de ejercicio. Se
extrajeron muestras de sangre directamente de la vena yugular con el propósito
de determinar el hematocrito, proteínas plasmáticas totales y albúmina antes y
después de cada entrenamiento. Los análisis se determinaron en un laboratorio
privado de la ciudad de Bogotá D.C. Utilizando para hematocrito los tubos de
tapa roja (sin anticoagulante), de estos se sacó en tubos de microhematocrito
la sangre y luego estos tubos fueron sometidos a centrifugación a 12000 RPM
por 2 min., posteriormente se leyó en la tabla de lectura para tubos de
microhematocrito.
Para determinar la albúmina se utilizó el equipo STATFAX 3000, con reactivo
SPINREACT (verdebromocresol pH 4.2) y ALBUMIN CAL (patrón primario
acuoso de albúmina 5 g/dL), donde la albúmina se combina con el
verdebromocresol a pH ligeramente acido, produciéndose un cambio de color
del indicador, de amarillo verdoso a verde azulado proporcional a la
concentración de albúmina presente en la muestra.
Para determinar las proteínas totales se utilizó el equipo STATFAX 3000, con
reactivo SPINREACT (Biuret) y T PROTEIN CAL (patrón primario) donde en
medio alcalino, las proteínas dan un intenso color violeta azulado en presencia
de sales de cobre; contiene yoduro como oxidante. La intensidad del color
formado es proporcional a la concentración de proteína total en la muestra.
29
Los caballos fueron sometidos (día 0, 15, 30, 45, 60) a los ejercicios de
entrenamiento, en horas de la mañana.
Las muestras se mantuvieron refrigeradas mediante un termo con gel enfriador
hasta el arribo al laboratorio y su posterior procesamiento dentro de las 24
horas de recolectadas.
En el plasma se determinaron las concentraciones de proteínas plasmáticas
totales.
30
3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
3.1 HEMATOCRITO
Los valores del hematocrito presentaron como medias y desviaciones estándar
en los días 0, 15, 30, 45 y 60 variando entre 42.27± 4.58% y 43.61 ± 5.08%
(Tabla 2); estos valores son semejantes a los reportados por PAZ (2007), quien
encontró valores entre 45.50 ± 3.07% y 39.50 ± 3.57%.
Comparando los valores del hematocrito entre los diferentes días de evaluación
no se encontraron diferencias significativas, resultados similares, fueron
reportados por GALINDO-OROZCO (2007), quien trabajando con caballos pura
sangre árabe en el Brasil, sometidos a diferentes días de ejercicio (día 0, 45 y
90), no encontraron diferencias significativas entre los valores de las muestras
tomadas antes del ejercicio con las muestras tomadas una hora después del
ejercicio y seis horas después del ejercicio entre los días de evaluación.
Tabla 2. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y
desviaciones estándar (DE) para hematocrito (%).
DIA
N
M ± DE *
Hematocrito
0
36
42.27± 4.58 A
15
36
43.61± 5.08 A
30
36
42.66± 5.01 A
45
36
42.86± 5.14 A
60
36
42.33± 3.78 A
* Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey
Después de realizar el análisis de los resultados, se encontró que hubo
diferencia estadísticamente significativa entre T1 y T2 y entre T1 y T3 (véase
tabla 3), diferencias también reportadas por (Paz, 2007) en su trabajo
desarrollado con equinos mestizos con edades también variando entre 6 y 9
años de edad, entrenados para competir en pruebas de resistencia. Entre T2 y
T3, a pesar de tener valores diferentes no presentaron diferencias
estadísticamente significativas (P≤0,05) (Tabla 3); estos resultados similares a
31
los obtenidos por (Islas et al,. 2007), los cuales en una evaluación realizada en
caballos mestizos pura sangre ingles, sometidos a entrenamiento de
resistencia, encontraron que existen diferencias significativas (P≤0,05) entre T2
(5 minutos post ejercicio) y T3 (15 minutos post ejercicio) con el tiempo de
reposo. No obstante; también fueron diferentes a los resultados presentados
por (Paz, 2007), quien encontró que entre T2 (5 minutos post ejercicio) y T3 (15
minutos post ejercicio) se dieron diferencias significativas (P ≤ 0,05). Por otro
lado,
(Galindo-Orozco,
2007),
encontró
que
no
hubo
diferencias
estadísticamente significativas entre las muestras tomadas en reposo y las que
se tomaron una y seis horas después del ejercicio.
Tabla 3. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del ejercicio (T2), seis
horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos números de observaciones (N), medias
(M) y desviaciones estándar (DE) para hematocrito (%).
HORA
N
M±DE*
T1
60
41.24 ± 4.14 B
T2
60
43.66 ± 4.59 A
T3
60
43.33 ± 5.09 A
Hematocrito
*Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey
De acuerdo con los datos presentados en la Tabla 3, los valores para el
hematocrito aumentaron comparativamente entre los muestreos realizados
entre el reposo y las muestras tomadas después del ejercicio; los valores
obtenidos de animales en reposo se mostraron dentro de los rangos
presentados por MESSER (1995), quien en su reporte de clínica patológica
muestra rangos variando de 32% a 52% y los resultados que este trabajo arrojo
fueron de 41.24 ± 4.14%.
Las variaciones de hematocrito pueden deberse a las exigencias del organismo
para compensar las necesidades de energía y disponibilidad de oxígeno, ya
que según Hoyos, 2003, las variaciones de un hematocrito en reposo pueden
tener grandes consecuencias en términos de la capacidad de la sangre para
transportar oxígeno, así como de aumentar los niveles de hemoglobina.
Muchos autores coinciden en que el aumento de la masa eritrocitaria en la
32
sangre se da por la contracción esplénica, debido a la respuesta propia del
organismo frente al estrés fisiológico o para este caso el estrés producido por el
ejercicio.
Conforme con Inoue et al, 2005, citado por Galindo-Orozco, 2007, existe una
relación directa entre el valor del hematocrito, la velocidad del entrenamiento y
las distancias recorridas durante las pruebas, llevando aproximadamente entre
30 y 60 segundos para que se liberen catecolaminas y se de la contracción del
bazo, haciendo que se liberen los hematíes a la circulación sanguínea para su
utilización por parte del sistema nervioso central y de la musculatura
esquelética.
3.2 PROTEINAS PLASMÁTICAS TOTALES
Los valores encontrados para proteínas totales (Tabla 4), muestran las
variaciones estadísticamente significativas entre los valores obtenidos en los
diferentes días de muestreo, variando de 4.92± 0.93 g/dL hasta 6.10± 0.83
g/dL. Estos resultados difieren de los encontrados por (Galindo–Orozco, 2007),
quien trabajando caballos Pura Sangre Árabes, realizó tres evaluaciones en
diferentes tiempos, encontró que existió diferencia significativa entre la primera
prueba y la última (día 0 y día 90). Sin embargo entre las dos ultimas pruebas
(día 45 y día 90) no hubo diferencias significativas. Al igual que la albúmina,
estas variaciones pueden deberse más a condiciones de manejo y ambientales
que a las propias del animal. Sin embargo, según Harkins et al., 1993 y
Pellegrini et al., 2000, citados por Galindo-Orozco,
2007, recomiendan
relacionar otros factores que pueden interferir en los resultados hematológicos
como son la conducta y temperamento del animal, edad, tipo de entrenamiento,
nutrición, hora de la toma de la muestra, transporte adecuado hacia el
laboratorio de las muestras, análisis e interpretación laboratorial.
33
Tabla 4. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y
desviaciones estándar (DE) para proteína total (g/dL)
DIA
N
M ± DE*
0
36
6.10± 0.83 A
15
36
5.83± 1.06 A B
30
36
5.61± 0.64 A B
45
36
4.92± 0.93 C
60
36
5.40± 0.91 B C
Proteína total
*Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey
En la tabla 5, se presentan los valores medios encontrados en los diferentes
tiempos de mediciones, en los cuales no se encontró diferencias significativas.
Durante el ejercicio de los equinos, se producen diversos cambios en la
distribución y composición de los líquidos y electrolitos del plasma,
dependiendo de la duración, y la intensidad de los procesos realizados.
Tabla 5. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del ejercicio (T2), seis
horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos números de observaciones (N), medias
(M) y desviaciones estándar (DE) para proteína total (g/dL)
HORA
N
M±DE*
T1
60
5.53 ± 1.02 A
T2
60
5.66 ± 1.09 A
T3
60
5.54 ± 0.98 A
Proteína total
*Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey.
Según Islas et al. 2007, los equinos no presentan cambios significativos en las
proteínas plasmáticas después de los ejercicios realizados, lo que se debe a
que los caballos fueron sometidos a un ejercicio de corta duración y de
intensidad moderada, a diferencia de lo expuesto por Adams and Sojka (1999),
quienes sustentan que en pruebas de resistencia (enduro) de larga duración se
observa un aumento de la concentración de proteínas plasmáticas debido a
deshidratación.
34
De esta manera con el experimento realizado, se pudo comprobar que las
condiciones de manejo pueden influir en el resultado de las proteínas
plasmáticas totales, ya que se observo diferencias significativas entre los días,
pero no entre las tomas de muestras en un mismo día; esto puede estar dado
principalmente por factores externos como la temperatura, la disponibilidad de
agua en las caballerizas, tipo de alimentación, ubicación geográfica entre otras.
3.3 ALBÚMINA
Realizando la comparación de los resultados encontrados para albúmina, entre
las muestras tomadas en los diferentes días de evaluación (Tabla 6), se puede
observar que existieron algunas diferencias estadísticamente significativas
entre casi todas las medias, estas variaciones pueden ser sustentadas con los
reportes presentados por (Schalm et al, 1981) y (Rottshild et al, 1988), los
cuales exponen que la síntesis de proteínas séricas puede verse afectada por
factores ambientales, nutricionales, enfermedades agudas y crónicas, factores
fisiológicos como preñez, lactación, edad, cambios hormonales y por estrés
La albúmina es una proteína plasmática única que contiene una pequeña
cantidad de carbohidratos, la medición de sus niveles permite inferir sobre el
funcionamiento fisiológico del animal, su estado nutricional, su rendimiento,
además de ser un indicador de los niveles de deshidratación que se presentan
en los equinos (Duncan & Prasse´s, 2005). De esta manera se puede concluir
que en los resultados obtenidos de las muestras, las alteraciones pueden estar
dadas por factores extrínsecos como la temperatura (alta o baja), la no
disponibilidad de agua o las variaciones en la alimentación de los animales
estudiados.
Tabla 6. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y
desviaciones estándar (DE) para albúmina (g/dL)
DIA
N
M ± DE*
Albúmina
0
36
3.22± 0.75 A B
15
36
2.88± 0.69 B C
30
36
3.32± 0.64 A
45
36
2.73± 0.55 C
60
36
2.64± 0.52 C
*Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey
35
Al no existir estudios acerca de los parámetros estándar de la concentración
albúmina en la sangre de los equinos, se dificulta realizar una comparación
entre el por qué los valores bajan en los días 45 y 60 con relación a los
iníciales, y así arrojar un resultado más claro; de aquí la importancia de
establecer parámetros y rangos específicos para esta especie, llevando a la
generación de nuevas rutinas de alimentación, entrenamiento y condiciones
ambientales que mejoren la condición de los animales.
Es importante resaltar que durante las pruebas realizadas no se observaron
diferencias estadísticamente significativas entre los valores de albúmina,
tomados en diferentes tiempos en un mismo día (Tabla 7), sin embargo, los
valores fueron menores en el reposo y aumentaron un poco después del
ejercicio. Este aumento puede deberse muy posiblemente a la necesidad del
organismo de reponer la energía utilizada por medio de los ácidos grasos, los
cuales son transportados por la albúmina para ser después degradados en el
tejido muscular, produciendo energía (Duren, 2000)
Tabla 7. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del ejercicio (T2), seis
horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos números de observaciones (N), medias
(M) y desviaciones estándar (DE) para albúmina (g/dL).
HORA
N
M±DE*
Albúmina
T1
60
2.89 ± 0.66A
T2
60
2.92 ± 0.68 A
T3
60
3.07 ± 0.71 A
*Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey
36
4. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
Se determinaron los niveles para hematocrito, proteínas plasmáticas
totales y albúmina en caballos de salto antes y después de cada
entrenamiento, obteniendo similares resultados de estudios realizados
por otros autores.
Se analizó las variables Hto, ppt y Alb, con diferencias estadísticamente
significativas entre T1 y T2 y entre T1 y T3 en el mismo día de la
muestra para hematocrito, sin obtener diferencias significativas entre los
días de muestreo (0, 15, 30, 45, 60); variando la edad (entre 5 y 9 años)
y teniendo en cuenta la ubicación de la Escuela de Equitación del
Ejército Nacional (EEE) en la ciudad de Bogotá D.C. que es de 2600
m.s.n.m.
No se presentaron diferencias significativas entre los días de muestreo
para hematocrito con relación al tiempo de entrenamiento (30 minutos)
A diferencia de los análisis de hematocrito, en las proteínas plasmáticas
los valores encontrados muestran variaciones significativas entre los
diferentes días de muestreo (0, 15, 30, 45, 60), teniendo en cuenta que
la nutrición de los animales es en base a heno, agua y concentrado,
además; del tipo de entrenamiento y temperamentos que proceden de
los ejemplares.
Se concluyó que las diferencias significativas entre los días de muestreo
para albúmina, puede relacionarse a factores como baja disponibilidad
de agua, aumento de la temperatura ambiental, entre otros.
Los valores arrojados
por esta investigación
para hematocrito son
considerados normales por algunos autores.
Se recomienda tener en cuenta para estudios próximos relacionados con
la albúmina, tener en cuenta aspectos como el perfil hepático; ya que la
síntesis de esta proteína se presenta en el hígado.
37
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