La exploración clínica del caballo
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Reservados todos los derechos.
No puede reproducirse ni total ni parcialmente, almacenarse en un sistema de recupe­
ración o transmitirse en forma alguna por medio de cualquier procedimiento, sea éste
mecánico, electrónico, de fotocopia, grabación o cualquier otro sin el previo permiso
escrito del editor.
Cualquier forma de reproducción, distribución, comunicación pública o transformación
de esta obra solo puede ser realizada con la autorización de sus titulares, salvo excep­
ción prevista por la ley. Diríjase a CEDRO (Centro Español de Derechos Reprográficos,
www.cedro.org) si necesita fotocopiar o escanear algún fragmento de esta obra.
Advertencia:
La ciencia veterinaria está sometida a constantes cambios evolutivos. Del mismo
modo que la farmacología y el resto de las ciencias también lo están. Así pues, es
responsabilidad ineludible del veterinario clínico, basándose en su experiencia profe­
sional, la determinación y comprobación de la dosis, el método, el periodo de admi­
nistración y las contraindicaciones de los tratamientos aplicados a cada paciente.
Ni el editor ni el autor asumen responsabilidad alguna por los daños y/o perjuicios que
pudieran generarse a personas, animales o propiedades como consecuencia del uso
o la aplicación incorrecta de los datos que aparecen en esta obra.
© 2011 Grupo Asís Biomedia, S.L.
Centro Empresarial El Trovador, planta 8, oficina I
Plaza Antonio Beltrán Martínez, 1
50002 Zaragoza
Diseño y compaginación:
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ISBN: 978-84-92569-68-7
D.L.: BI-2434/2011
Impreso en España
http://libros-medicina-veterinaria.blogspot.com/
La ©ísploraeSéDU ©Hmfea
del ©afeaDD®
Antonio Fernández Casasnovas
Tomás Conde Ayuda
Javier Fondevila Abenia
SEKyET
El diseño de este libro nace del compendio de la experiencia clínica desarrollada durante años
de ejercicio profesional en la exploración de caballos para el diagnóstico de las patologías más
frecuentes en équidos unido a la capacidad de mostrar académicamente esta experiencia en un
libro atractivo y ameno para las futuras generaciones de veterinarios, herradores, monitores equi­
nos o personal interesado por el mundo equino en general.
La elaboración de este libro no habría sido posible sin la desinteresada colaboración del perso­
nal de la Yeguada Aragón, en donde se encontraban nuestros “pacientes", los caballos, de los
que hemos obtenidos muchas imágenes y donde siempre se nos ha otorgado facilidades para
realizar nuestro trabajo.
No queremos olvidarnos de todos los compañeros de la Facultad de Veterinaria de Zaragoza,
tanto profesores y amigos, como de personal de administración y servicio, que nos han ayudado
y sobre todo animado y asesorado para la preparación y realización de este libro. Somos profeso­
res y veterinarios clínicos, por lo tanto docentes, y esta vocación de formar a nuevos profesionales
veterinarios se la tenemos que agradecer a la Universidad de Zaragoza que nos permite realizar
nuestra labor educadora, clínica e investigadora.
El equipo de edición de Grupo Asís Biomedia ha hecho posible la elaboración de este texto
gracias al impresionante trabajo realizado en diseño y didáctico para que el libro se haga más
comprensible y atractivo.
Licenciado en Veterinaria por la Facultad de Veterinaria de la Univer­
sidad de Zaragoza en 1985 y Doctor en Veterinaria (DVM) por la
misma Universidad en 1992 con sobresaliente cum laude (PhD).
Completó su formación en Medicina Interna de Grandes Animales
con una estancia en 1995 en la Facultad de Veterinaria de la Univer­
sidad de Utrecht (Holanda).
En la actualidad es Profesor titular del Departamento de Patología
Animal de la Facultad de Veterinaria de la Universidad de Zaragoza.
Sus principales líneas de investigación son la inmunología clínica,
la patología ovina y equina, la aplicación clínica de antibióticos y
la transferencia de inmunidad pasiva por el calostro en pequeños
rumiantes.
Cuenta con numerosas publicaciones en revistas nacionales e in­
ternacionales y ha colaborado en congresos y en la elaboración de
capítulos de libros. También ha dirigido dos tesis doctorales y varias
tesinas y ha recibido diferentes premios, entre ellos el Premio Ex­
traordinario del Doctorado del área de Biomédicas por acuerdo de la
Junta de Gobierno de la Universidad de Zaragoza en 1993.
Licenciado en Veterinaria por la Facultad de Veterinaria de la Univer­
sidad de Zaragoza (DVM, PhD) (1985-1990), donde realizó la tesis de
licenciatura sobre “Transferencia de Embriones en Yeguas”. Comenzó
su proceso de especialización en reproducción animal en el Tierarliche
Hoschule de Hannover (Alemania).
En el año 1992 se diplomó en Genética y Reproducción equina por
la Universidad de Córdoba y posteriormente completó su título de es­
pecialista en équidos (Máster de Equinotecnia) en 1994.
Desde 1998 es profesor asociado de la Facultad de Veterinaria de
Zaragoza en el departamento de Patología Animal impartiendo clases
de Patología en Équidos.
Desde el año 1990 ha ejercido como veterinario clínico en Aragón
gestionando una amplia cartera de clientes.
Es veterinario nacional de 11 disciplinas deportivas habiendo sido
veterinario del equipo español de salto y volteo en varios campeona­
tos del mundo celebrados en diferentes países.
Participa en más de 45 congresos nacionales e internacionales,
como ponente, conferenciante y con comunicaciones en diferentes
ámbitos relacionados con la clínica equina, e imparte diferentes confe­
rencias en centros universitarios para estudiantes y veterinarios.
En 2005 es seleccionado como veterinario de la Federación Ecuestre
Internacional, participando como FEI en diferente eventos mundiales.
En 2009 realiza el Doctorado en Veterinaria por la Universidad de
Zaragoza, y desarrolla un método único y patentado de extracción
seminal en caballos y en 2011 completa sus estudios de ingeniero
agrónomo por la Universidad de la Almunia (Zaragoza).
Licenciado en Veterinaria por la Facultad de Veterinaria de la Univer­
sidad de Zaragoza (DVM) (1999-2004).
Comenzó su formación en Tierarliche Hoschule de Hannover
(Alemania) y continuó su especialización en The Queen’s Veterinary
School (Inglaterra).
Actualmente es profesor asociado en el Área de Medicina y Ciru­
gía Animal del Departamento de Patología Animal, en la facultad de
Veterinaria de Zaragoza, donde imparte prácticas y pasa consulta de
Reproducción en el Hospital Clínico Veterinario de dicha Universidad.
. Desde el año 2004 desarrolla su trabajo como veterinario clínico
equino en Aragón con una amplia cartera de clientes.
Ejerce como ponente impartiendo diversos cursos destinados
tanto a veterinarios, estudiantes como a ganaderos. Ha participado
como veterinario oficial en numerosos concursos, campeonatos y
pruebas equinas nacionales e internacionales
Participa como veterinario de la Federación Ecuestre Internacional
(FEI) desde el año 2007 en concursos hípicos y a congresos tanto
nacionales como internacionales desde 1999.
La publicación de un libro supone para los autores la culminación de un trabajo, en este caso, el
realizado durante años por tres especialistas en Medicina Equina de la Facultad de Veterinaria de
Zaragoza, escribir el prólogo es un honor que se le concede al que lo redacta.
Durante los últimos años, profesores de la unidad docente de Patología General, Propedéutica
y Patología Médica han elaborado una seria de libros muy interesantes sobre distintas espe­
cialidades de la Patología Veterinaria. El que ahora presentamos está escrito por el Dr. Tomás
Conde Ayuda y por Javier Fondevila Abenia, clínicos libres con aficiones universitarias que llevan
años colaborando con la Facultad de Veterinaria y el Dr. Antonio Fernández Casasnovas que es
un profesor de Universidad con aficiones clínícas. La conjunción de estas formas de entender
la Medicina Veterinaria consigue un resultado final muy interesante, su esfuerzo ha servido para
poner a nuestro alcance un material didáctico-cientíííco muy valioso que responde a las necesi­
dades actuales de los estudiosos en Medicina Equina.
La obra está dedicada a enseñar cómo se hace la exploración clínica de los équidos con
método, es decir de forma ordenada completa y sistemática. A lo largo de 10 capítulos hace un
amplio estudio de cómo debe aprenderse la propedéutica, cómo debe orientarse la iniciación
a la clínica equina. Empieza estudiando de forma correcta cómo se completa la historia clínica,
continúa enseñando cual es el manejo de esta especie y explica con detalle cómo se realiza la
exploración de todos los órganos, aparatos y sistemas en los équidos.
Consideramos la publicación de esta obra como muy oportuna, viene a llenar un hueco exis­
tente en el mercado bibliográfico español ya que son varios los tratados editados sobre Medicina
Equina, pero este es el primero que, redactado por autores españoles, está dedicado exclusiva­
mente a la exploración.
El libro está escrito de forma concisa, el texto utilizado es el imprescindible para comprender el
significado de las imágenes que de forma magistral ilustran la obra. SI debiéramos destacar uno
de los aspectos del libro que estamos presentando, sin lugar a dudas sería el relacionado con la
iconografía, esquemas, fotografías macro y microscópicas, radiografías, ecografías, etc.
Las imágenes en su conjunto son claras, bien ordenadas y sirven para ilustrar todos los aspec­
tos científicos y tecnológicos de la moderna exploración clínica equina.
Este libro, por su contenido y presentación, hace que lo consideremos como una herramienta
útil dentro de las modernas técnicas docentes de enseñanza y aprendizaje.
La obra está orientada a servir de guía a los alumnos de Grado en Veterinaria, a los profesio­
nales interesados en aprender o en recordar cómo se realiza la exploración equina; es también
útil para los especialistas en clínica así como para cualquier veterinario que con conocimientos
generales quiera profundizar en aspectos relacionados con la exploración.
Para finalizar quiero destacar que en las páginas de este libro no solo se plasma la experiencia
clínica y los conocimientos de un grupo de trabajo de profesores y clínicos estudiosos y obser­
vadores de la realidad; también trasciende el entusiasmo que han puesto los autores a la hora
de escribirlo.
Manuel Rodríguez Sánchez.
Catedrático de Medicina Interna Veterinaria.
Facultad de Veterinaria.
Universidad Complutense-Madrid.
En este libro se presenta la exploración clínica fundamental de los caballos. Antes de realizar
cualquier diagnóstico clínico o de recoger las muestras para enviar al laboratorio y que nos sirvan
de apoyo al diagnóstico, es necesario realizar una correcta exploración clínica. En muchas oca­
siones, este paso del diagnóstico se pasa por alto y el clínico pasa directamente al tratamiento o
lleva a cabo una prueba exploratoria, que muchas veces es cara, difícil de realizar, se tiene que
realizar en un hospital o incluso es innecesaria para llegar al diagnóstico.
La exploración clíníca bien hecha es un acto sencillo y, si se realiza de forma exhaustiva, or­
denada y completa, en un lugar tranquilo y sin interferencias, permite reconocer muchos sín­
tomas que nos conducirán al diagnóstico. Afortunadamente, hoy en día y debido al avance de
las ciencias clínicas veterinarias, el veterinario de équidos posee un amplio arsenal de pruebas
diagnósticas que le van a permitir alcanzar un grado de precisión diagnóstica que hasta hace
poco no se podía ni imaginar. Todas las técnicas de imagen como la moderna radiografía digital,
el avance de la ecografía, circunscrita no sólo al ámbito reproductor o del aparato locomotor,
sino a la exploración de otros órganos en especial el corazón (ecocardiografías), escintigrafías o
las modernas técnicas de imagen como el TAC, escapan del objetivo de este libro. Para ello, el
clínico dispone de excelentes manuales con una amplia gama de libros, revistas o páginas web
sobre exploración de équidos y que se puede consultar en el apartado de bibliografía del libro.
El libro está dividido en 10 capítulos siguiendo la exploración de los distintos aparatos y siste­
mas y en ella se incluyen los procedimientos básicos de exploración. También se incluyen otras
técnicas diagnósticas que se hacen a nivel hospitalario pero que no son de aplicación a nivel
de campo, que es lo primero que el veterinario se va a encontrar cuando el propietario llame al
clínico para atender a un caballo enfermo. En el texto también se encuentran algunas tablas con
las principales alteraciones bioquímicas que se producen en las enfermedades de los caballos y
que pueden ser útiles a la hora de interpretar los análisis de laboratorio.
Aunque el libro se titula “Exploración clínica de los caballos", no queremos olvidar a los otros
équidos, y que también son objeto de atención en este manual. Nos referimos a los humildes
asnos y mulos, que antaño ocupaban, con su papel de fuerza de trabajo en las tareas agrícolas,
un importante foco de atención veterinaria a la que los clínicos acudían. Hoy en día, es el caballo
dedicado al ocio y al deporte el que abarca nuestro interés, lo que ha originado la aparición de
nuevas patologías como consecuencia de esa actividad física, afectando en buena medida al
aparato locomotor.
El libro se ha ilustrado con una amplia colección de imágenes para hacerlo más ameno y para
ayudar al que quiere realizar o recordar una determinada exploración clínica. Estas imágenes
han sido obtenidas en los últimos años como consecuencia de nuestra actividad clínica pero
también, muchas otras se han tomado para la elaboración del libro.
Esperamos que este libro sirva de ayuda a aquellos estudiantes o profesionales que quieran
actualizar o recordar sus conocimientos de la propedéutica clínica de équidos. Los autores so­
mos profesores universitarios y clínicos y hemos tratado de imprimir una visión didáctica y útil de
la información facilitada, huyendo deliberadamente de las largas descripciones de las técnicas
de exploración. Si lo hemos logrado y al lector le resultan útiles habremos alcanzado nuestro
objetivo que no es otro que enseñar y transmitir nuestros conocimientos.
Los autores
Agosto de 2011
Historia clínica.................................
1
Anamnesis....................................................... 2
Inspección del medio que rodea al animal..... 3
Exploración en la distancia............................. 4
Constantes vitales........................................... 5
Temperatura..................................................... 5
Frecuencia respiratoria (rpm).............................. 6
Frecuencia cardiaca (ppm)................................. 6
Grado de hidratación......................................... 7
Tiempo de llenado capilar (TRC)......................... 8
Color de las mucosas........................................ 8
Determinación de la edad por la dentición...... 9
Ficha de inspección veterinaria...................... 12
Manejo y comportamiento................. 15
Manejo y bienestar animal.............................. 16
Manejo de los potros {<6 meses).................... 19
Identificación................................................... 20
Destete de ios potros...................................... 21
Métodos de contención
o inmovilización física..................................... 22
Inmovilización farmacológica.......................... 24
Agentes sedativos............................................ 24
Tranquilizantes ............................................. 24
a-2 agonistas................................................ 24
Benzodiacepinas............................................ 24
Opioides....................................................... 24
Agentes anestésicos......................................... 25
Derribo y manejo del animal en decúbito....... 26
Castración....................................................... 27
Posibles complicaciones posoperatorias............ 28
Inflamación.................................................... 28
Infección........................................................ 28
Hemorragias................................................. 28
Eventración................................................... 28
Exploración clínica de la capa,
la piel y el sistema linfático.............. 29
Introducción.................................................... 30
Historia clínica................................................ 31
Valoración de la capa...................................... .33
Cambios de coloración de la piel
y de las mucosas.............................................. .34
Humedad de la piel: glándulas sudoríparas
y sebáceas........................................................34
Elasticidad de la piel.......................................... 35
Temperatura de la piel....................................... 35
Aumento del volumen de la piel.......................... 36
Prurito o picor................................................... 36
Lesiones elementales de la piel.......................... 37
Lesiones primarias......................................... 37
Lesiones secundarias.................................... 38
Toma de muestras.......................................... 40
Raspado de la piel........................................... 40
Cepillado de la piel............................................ 40
Muestra de pelo............................................... 41
Toma de muestras con cinta adhesiva
transparente .................................................... 41
Aspiración con aguja fina................................... 42
Biopsia cutánea............................................... 43
Toma de muestras para hongos
o infecciones bacterianas.................................. 44
Cultivos de hongos........................................ 44
Cultivos bacterianos.......................................... 44
Test intradérmico.............................................. 45
Ficha dermatológica....................................... 47
Exploración del sistema linfático.................... 50
Inspección y palpación...................................... 50
Punción de los nodulos linfáticos........................ 50
Exploración de orejas y ojos.......... 51
Exploración de las orejas............................... 52
Inspección dinámica.......................................... 52
Situaciones................................................... 52
Inspección estática............................................ 52
Alteraciones.................................................. 53
Exploración de los ojos................................... 55
Introducción...................................................... 55
Material............................................................ 56
Exploración....................................................... 58
Sedación...................................................... 58
Anestesia tópica............................................ 58
Bloqueos regionales....................................... 58
Bloqueo del nervio auriculopalpebral............ 58
Bloqueo del nervio supraorbitario................. 59
Exploración con luz........................................... 59
Examen visual............................................... 59
Párpados...................................................... 60
Región conjuntival......................................... 62
Aparato lacrimal............................................. 63
Reflejos sensoriales........................................ .65
Reflejo de amenaza.................................... .65
Reflejo pupilar..............................................66
Exploración en oscuridad.................................. .66
Linterna de bolsillo..........................................66
Córnea.......................................................66
Segmento anterior..................................... .68
Oftalmoscopio directo.................................... .68
Oftalmoscopio indirecto................................. .69
Pruebas diagnósticas........................................ .70
Hisopo.......................................................... .70
Raspado-frotis.............................................. .70
Tinciones oftálmicas....................................... .71
Dacriocistorrinografía..................................... .71
Test de Schirmer.............................................72
Tonometría.................................................... .72
Ecografía del globo ocular................................73
Radiología......................................................73
Gonioscopia.................................................. .73
Otras técnicas............................................... .74
Exploración del aparato
respiratorio
75
Anamnesis........................................................76
Valoración del estado general......................... .76
Fosas nasales................................................. .77
Inspección.........................................................77
Palpación......................................................... .77
Examen funcional...............................................77
Senos paranasales...........................................79
Palpación...........................................................79
Percusión...........................................................80
Exploración de laringe y tráquea.................... .81
Palpación...........................................................81
Auscultación de las vías respiratorias altas.......... .82
Métodos complementarios de exploración
de las vías respiratorias altas.......................... .83
Radiografías.......................................................83
Trepanación de los senos.................................. .83
Exploración de las bolsas guturales.................84
Inspección.........................................................84
Palpación......................................................... .85
Percusión...........................................................85
Exploración del tórax respiratorio................... .86
Inspección.........................................................86
Palpación...........................................................87
Percusión...........................................................88
Auscultación..................................................... .89
Modificaciones de los sonidos normales............. .90
Sonidos anormales del pulmón.......................... .90
Toracocentesis................................................. .90
Otras técnicas de diagnóstico........................ .91
Radiografías...................................................... .91
Ecografía.......................................................... .91
Endoscopia de vías respiratorias altas..................91
Aspirado transtraqueal....................................... .92
Exploración del sistema
cardiovascular......................................... 95
Inspección y palpación................................... 96
Percusión cardiaca......................................... 97
Auscultación................................................... 98
Frecuencia cardiaca.......................................... 99
Ritmo............................................................... 99
Soplos cardiacos...............................................101
Soplos sistólicos............................................101
Soplos diastólicos..........................................101
Soplos continuos...........................................101
Sitio de máxima intensidad y radiación del latido.. 101
Frémito............................................................. 101
Electrocardiografía..........................................102
Interpretación del ECG...................................... 102
Análisis de las ondas.........................................102
Onda P .........................................................102
Complejo QRS..............................................103
O ndaT.........................................................103
Pruebas de resistencia................................... 104
Pruebas de resistencia y arritmias...................... 104
Soplos cardiacos y ejercicio...............................104
Recuperación después del ejercicio................... 104
Uso de cintas rodantes...................................... 104
Ecocardiografía.............................................. 105
Valoración del sistema vascular..................... 106
Pulso arterial..................................................... 106
Punción arterial y análisis de gases sanguíneos.... 106
Capilares.......................................................... 107
Venas y pulso venoso........................................107
Punción venosa y análisis de sangre.................. 108
Tipos de muestras sanguíneas....................... 108
Sangre.......................................................108
Suero.........................................................108
Plasma .....................................................109
Análisis hematológico.................................... 110
Serie roja................................................... 110
Serie blanca............................................... 111
Exploración del aparato
digestivo
115
Exploración de la boca................................... 117
Exploración de la faringe................................ 120
Exploración del esófago................................. 121
Exploración del estómago...............................122
Exploración de la cavidad abdominal.............123
Anamnesis........................................................123
Examen clínico.................................................. 123
Inspección........................................................123
Auscultación abdominal.................................... 125
Palpación rectal................................................ 126
Sondaje nasogástrico........................................128
Paracentesis abdominal.................................... 129
Método.........................................................129
Evaluación de la muestra................................130
Alteraciones más comunes.............................130
Exploración del hígado................................... 131
Biopsia hepática............................................... 131
Anamnesis e historia clínica............................133
Exploración del sistema
genitourinario..........................................135
Aparato genital............................................... 136
Macho: el semental...........................................136
Introducción................................................. 136
Historial y anamnesis.........................................137
Exploración directa........................................... 138
Genitales externos.........................................138
Testículos y escroto.................................... 138
Pene y prepucio.........................................138
Genitales internos..........................................138
Glándulas accesorias................................. 138
Ampolla del conducto deferente..................139
Próstata.....................................................139
Glándulas bulbouretrales.............................139
Glándulas vesiculares................................ 139
Anillos inguinales............................................139
Extracción del semen en caballos...................... 140
Vagina artificial............................................... 141
Colector cervical............................................142
Hembra: la yegua............................................. 144
Introducción.................................................. 144
Fisiología....................................................144
Ciclo estral................................................ 144
Historia clínica. Anamnesis................................ 145
Exploración.......................................................145
Directa......................................................... 145
Genitales externos...................................... 145
Vulva y región perianal.............................145
Genitales internos....................................... 145
Vestíbulo................................................ 146
Vagina....................................................146
Útero......................................................146
Ovarios.................................................. 147
Palpación rectal............................................. 147
Pruebas complementarias: ecografía..............148
Diagnóstico de gestación............................148
Patologías más frecuentes
detectadas con ecografía............................149
Ováricas................................................. 149
Uterinas................................................. 149
Vaginales .............................................. 150
Aparato urinario.............................................. 151
Introducción......................................................151
Historia clínica................................................... 152
Exploración.......................................................152
Directa.......................................................... 152
Inspección................................................. 152
Palpación rectal............................................ 152
Pruebas complementarias..............................152
Análisis de orina.........................................153
Perfil bioquímico de la función renal.............153
Ecografía................................................... 155
Biopsia renal.............................................. 155
Exploración del aparato
locomotor.................................................. 157
Exámen general..............................................158
Anamnesis........................................................158
Examen en estación..........................................158
Conformación de los aplomos en estación y
locomoción de los miembros del caballo......... 158
Inspección regional........................................161
Palpación......................................................161
Percusión...................................................... 163
Examen de la marcha....................................... 163
Pruebas diagnósticas complementarias..............166
Bloqueo nervioso diagnóstico......................... 166
Radiología.................................................... 166
Ecografía.......................................................168
Analíticas laboratoriales.................................. 168
Artroscopia de la articulación......................... 168
Termografía................................................... 168
Gammagrafía ósea con tecnecio-99m............168
Resonancia magnética nuclear....................... 168
Tomografía computarizada.............................168
Examen clínico del aparato muscular.............169
Examen............................................................ 169
Inspección.................................................... 169
Palpación y manipulación ..............................169
Pruebas de extensión, flexión y abducción...... 169
Examen de la espalda y el miembro anterior....... 169
Examen del dorso..............................................169
Examen de la grupa...........................................169
Examen clínico del aparato tendinoso............170
Palpación..........................................................170
Ecografía.......................................................... 170
La ecografía de los tendones flexores
en el miembro anterior................................... 171
Examen clínico del aparato podotroclear....... 172
Diagnóstico clínico.............................................172
Observación.....................................................172
Palpación..........................................................172
Prueba de la cuña de Lungwitz.......................... 172
Examen clínico del aparato osteoarticular..... 173
Exploración del
sistema nervioso
175
Historia clínica................................................ 178
Exploración neurológica de la cabeza............ 179
Exploración de pares craneales.......................... 179
N. olfatorio (par I)............................................179
N. óptico (par II).............................................179
N. oculomotor (par III)..................................... 179
N. troclear (par IV) .........................................179
N. trigémino (par V) .......................................180
N. abducens (par VI) ..................................... 180
N. facial (par VII) ............................................180
N. vestibulococlear (par VIII)........................... 181
N. glosofaríngeo (par IX), N. vago (par X),
N. espinal accesorio (par XI)............................181
N. hipogloso (par XII)...................................... 181
Exploración de la postura y la marcha............ 182
Evaluación de la debilidad o paresia....................183
Evaluación de la incoordinación o ataxia.............183
Hipermetría.......................................................183
Hipometría........................................................183
Exploración del cuello
y extremidades anteriores...............................184
Exploración del tronco y
de las extremidades posteriores.................... 184
Exploración de la cola y el ano....................... 185
Exploración de caballos en decúbito..............185
Obtención de líquido cefalorraquídeo............. 186
Otras técnicas exploratorias........................... 187
Ficha de examen neurológico del caballo...... 188
Bibliografía............................................... 191
Historia clínica
Historia clínica
Anamnesis
Inspección del medio que rodea al animal
Exploración en la distancia
Constantes vitales
Determinación de la edad por la dentición
Ficha de inspección veterinaria
Anamnesis
En cada caso clínico se debe de recoger un conjunto
de datos muy valiosos que nos proporcionan infor­
mación de las circunstancias que han llevado al ani­
Las preguntas básicas que se formulan son:
mal hasta esa situación. Muchos de los datos tendrá
• ¿Qué le pasa?
que deducirlos el propio veterinario, pero otros y muy
• ¿Desde cuándo?
importantes nos los aportará el propietario del animal.
• ¿A qué puede ser debido?
A este conjunto de datos lo llamamos anamnesis.
Esta palabra, originaria del griego, significa “traer a
Preguntas secundarias:
la memoria". Por lo tanto, es toda la información que
• ¿Ha cambiado algo en la rutina del animal?
se recoge para incorporarla a la ficha clínica.
• ¿Ha sido transportado o ha habido movi­
Una buena anamnesis consiste en recopilar mu­
miento de caballos en la misma cuadra?
chos datos que le vamos a preguntar al propietario; o
• ¿Cuándo fueron las últimas vacunas y despa-
simplemente en dejarle hablar para que él lo explique
rasitaciones?
a su manera.
• ¿Qué tipo de actividad desarrolla el caballo?
Es importante:
• ¿Se le ha tratado con alguna medicación?
• ¿Qué edad tiene?
• Conocer la esencia de lo que realmente quiere de­
cir el propietario, es decir, eliminar el subjetivismo
• ¿Está gestante?
• Última comida administrada
del mismo.
• Preguntar absolutamente todo lo que se nos ocu­
rra, puesto que hasta la respuesta más simple nos
va a dar una información que puede ser determi­
nante en el diagnóstico del problema.
• No emplear demasiados tecnicismos que el dueño
del animal no pueda entender o sentirse mal al no
hacerlo y que puedan omitir información; y si se
hace, explicarlo para que lo pueda entender.
• El dueño del caballo no tiene por qué saber lo que
le ocurre y hay que dejar que nos explique con
sus palabras lo que él ve y cómo lo ve, para ir in­
terpretando la información.
El veterinario debe conversar con el propietario del caballo
para recoger todos los datos necesarios para la anamnesis.
(Ver ficha inspección veterinaria al final del
capítulo)
Inspección del medio que rodea al animal
Cuando el veterinario llega a una visita, es impres­
Al mismo tiempo que se observa el entorno y el
cindible comprobar y examinar dónde vive habitual­
propietario comienza a relatar lo que ha ido obser­
mente el caballo, puesto que nos va a dar una infor­
vando en el animal, el veterinario realiza un examen
mación muy valiosa a la hora de completar nuestra
general que permitirá hacernos una idea de la grave­
ficha clínica y anamnesis.
dad del problema, de su evolución en el tiempo y en
Hay que fijarse si el animal vive en un box, en un
un posible pronóstico.
campo o en un lugar mixto. Cada uno de estos lu­
gares debería requerir unas condiciones adecuadas
para los caballos, que en muchos sitios no se cum­
plen y esto puede provocar ciertos accidentes que
pueden evitarse cumpliendo unas normas básicas.
Los caballos en libertad pueden permanecer mucho tiempo
tumbados.
Caballo estabulado en un box.
Yeguas gestantes en una corraleta.
Caballos pastando en el Pirineo Aragonés.
Animales en un recinto cercado con alambre de espino.
Exploración en la distancia
Principalmente nos vamos a fijar:
° En la postura del animal, si está tumbado o en es­
tación. Un caballo cuando está tumbado debería
levantarse en cuanto nos acercamos y una vez
levantado mantenerse de pie. Por el contrario, si
avanzamos hacia otro lugar y vuelve a tumbarse
no es buena señal.
« Si el caballo está tumbado del todo con la cabeza
tocando el suelo o adopta la posición de "perro
sentado", indica que la situación es grave.
° Una vez en estación, hay que fijarse en la postura
que adopte el caballo, en la posición del cuello
(arriba o abajo), orejas, belfo, movimientos mas­
ticatorios repetidos, rechinar de dientes, colora­
ción de los ojos y su expresividad, extremidades
(abiertas o en posición normal), cola (movimiento
continuo o quieta), respiración (aumentada o dis­
minuida, superficial o profunda).
Caballo tumbado descansado, cuando nos acercamos reacciona levantándose.
° Si se mueve de manera incontrolada, está agre­
sivo o totalmente apático.
° El estado de nutrición nos va a proporcionar una
información de la alimentación que lleva el animal,
del tiempo que lleva enfermo o con la patología, o
bien si ha perdido mucho peso en poco tiempo.
° Si el animal no se acerca a comer cuando se le
ofrece comida es un claro indicador de que no se
encuentra bien.
° Nos debemos fijar en las heces: si son más duras
de lo normal, más blandas o menos frecuentes.
___
° Por último nos fijaremos en la presencia de cicatri-
4
ces o heridas, aumentos de volumen corporal que
alteren la simetría del mismo, aspecto de la capa
y presencia de secreciones nasales o descarga
vaginal.
Potro de 7 meses en estado de caquexia.
Constantes vitales
Temperatura
Debemos colocar el termómetro algo inclinado,
La temperatura normal del caballo adulto oscila entre
tocando la pared del recto, de tal manera que nos
37,5-38,5 °C; en el caso de los potros (<6 meses)
aseguremos de no penetrar el termómetro dentro de
esta temperatura puede estar ligeramente aumen­
una masa de heces, lo que daría una temperatura
tada, aunque cada caballo tiene su temperatura de­
errónea. También es muy importante la posición del
terminada. Por esta razón, es conveniente compro­
veterinario a la hora de tomarla para evitar cualquier
bar la temperatura de cada caballo, para que en el
coz por parte del caballo. Para ello, nos acercaremos
momento que tenga algún problema el propietario
tocando con la mano el dorso y la grupa del animal,
levantaremos la cola e introduciremos el termómetro.
pueda decir si es normal o no en él.
La temperatura en el caballo se toma por vía rectal
Primero, dar unos golpecitos alrededor del ano para
y hay que tener en cuenta no tomarla justo después
que se acostumbre y después se introduce el termó­
de que haya realizado ejercicio porque estará ele­
metro en el recto durante al menos dos minutos.
vada; conviene esperar al menos unos quince minu­
tos tras la actividad física.
Situaciones con aumento de temperatura
Infección
Golpe de calor
Fisiológica {hasta 39 °C)
Ejercicio intenso
Hipoxia cerebral
Anhidrosis
Situaciones con disminución de temperatura
Shock
Hipotermia
Cólicos graves
Yeguas antes de parir
Frío extremo
Mala circulación
Potros neonatos
Toma de temperatura vía rectal
Se debe introducir el termómetro de manera oblicua haciendo contacto con la pared del recto.
Frecuencia respiratoria (rpm)
La frecuencia normal en un caballo sano oscila entre
10 y 16 rpm (en los potros de 20-30 rpm) y debe ser
regular, homogénea, rítmica. Para tomarla nos pone­
mos a una distancia de unos dos metros y compro­
bamos el movimiento del tórax, el movimiento de los
flancos o el de los ollares. También podemos acer­
carnos y poner la mano en los ollares para notar la
salida del aire y contar las respiraciones por minuto.
Frecuencia aumentada (taquipnea) y con dificultad
Observar los
(disnea) puede verse en casos de:
movimientos
de los ¡jares
para contar
el número de
respiraciones
por minuto.
• Dolor abdominal (cólico)
• Enfermedades respiratorias
• Reacciones anafiláctícas
Frecuencia cardiaca (ppm)
La frecuencia cardiaca normal en un caballo es de
30-44 pulsaciones por minuto (ppm) (en potros de
50-100 ppm). Depende de la raza, edad, peso cor­
poral y nivel de entrenamiento del animal.
Para medir la frecuencia cardiaca haremos uso del es­
tetoscopio y se ausculta en la parte izquierda del ca­
ballo, justo detrás de la articulación del codo. O bien
colocando los dedos en una de las arterias siguientes:
• Arteria facial que pasa por debajo de la mandíbula
inferior.
• Arteria digital de las extremidades en la articula­
ción metacarpofalángica.
• Arteria temporal, por detrás de la comisura lateral
Comprobar con el dorso de la mano el aire espirado para contar las respiraciones,
del ojo.
• Arteria coccígea, en la cara ventral de la cola.
Auscultación cardiaca en el lado izquierdo del animal.
Toma del pulso en la artería facial
La frecuencia cardiaca es un claro indicador del
Grado de hidratación
grado de dolor que presenta un animal en procesos
Para medir el grado de hidratación, realizamos la téc­
como el cólico. En caballos que presentan una fre­
nica del pliegue cutáneo en la zona preescapular o
cuencia de 60 ppm podemos intuir que el cólico es
en las tablas del cuello; se pellizca la piel del caballo
leve, si es de 80 ppm es moderado y por encima de
y luego se suelta. Se debe contar cuántos segundos
100 ppm es grave, lo que indica un grave deterioro
necesita la piel para volver a su estado original. En
condiciones normales debería tardar menos de dos
cardiovascular.
segundos, por encima de eso nos indicaría un cierto
grado de deshidratación.
Otros signos para valorar el estado de deshidra­
tación, especialmente cuando están muy afectados,
son el hundimiento del ojo, mucosas orales secas,
disminución de la producción de orina y menor dis­
tensión de la vena yugular.
Realización del pliegue cutáneo en el cuello.
Pliegue en la articulación escápulo-humeral.
Hidratando al caballo durante una carrera de raid.
Grado de deshidratación y déficit de fluidos que presentará un caballo de 500 kg
Grado de
deshidratación
Signos clínicos
% Peso corporal
Déficit/I para caballo
de 500 kg
Ligera
T pliegue cutáneo
5
25
Media
>í pliegue cutáneo
7
35
Moderada
ojos caídos, extremidades frías
9
45
Grave
hipotermia, moribundo, tumbado
12
60
Tiempo de llenado capilar (TRC)
Color de las mucosas
Es una sencilla prueba que se utiliza para evaluar la
El color de las mucosas nos indica el estado del sis­
perfusión periférica. Se presiona con el dedo en las en­
tema vascular y la gravedad del animal. Se puede
cías, la mucosa se queda blanca y se cuenta el tiempo
comprobar en la mucosa oral o conjuntival.
que tarda en recuperar su color. Se puede considerar
normal un TRC de 1-2,5 segundos. Un TRC superior
Las modificaciones del color de las mucosas son:
a 3 segundos se considera anormal, indicando una
• Rosas: las mucosas normales son rosáceas.
perfusión periférica inadecuada debido a una hipovo-
• Pálidas: pueden indicar un estado de anemia.
lemia o vasoconstricción en situaciones de shock.
• Amarillentas: casos de ictericia debido a una piroplasmosis o incluso a un ayuno prolongado en
estados de cólico.
• Rojas/congestivas: el enrojecimiento de las mu­
cosas indica hemoconcentración y vasodilatación
capilar. El color puede ir oscureciendo a medida
que avanza el estado de shock hipovolémico o
de endotoxemia, y con ello también aumenta el
tiempo de llenado capilar, excepto en las fases ini­
ciales del proceso que está aumentado.
• Azul: unas mucosas cianóticas nos indican un
pronóstico grave debido a un gran compromiso
vascular.
Zona donde tiene que observarse el TRC.
Mucosa
conjuntival
rosácea de un
caballo sano.
Comprobar el TRC es imprescindible para valorar la
correcta perfusión capilar.
Caballo con
mucosas
pálidas en
estado de
anemia.
Estado correcto del TRC en un caballo sano.
Mucosas
enrojecidas
debido a una
endotoxemia.
Determinación de la edad por la dentición
La importancia de una correcta dentadura en el ca­
Las características de los dientes (forma, angu-
ballo se debe a que es la primera porción del tubo
lación y marcas) cambian a medida que el caballo
digestivo, por lo que cualquier lesión bucal o altera­
crece, y este fenómeno se utiliza para saber la edad
ción dentaria producirá una deficiente aprehensión
del caballo.
y masticación del alimento, y por consiguiente una
Sin embargo, a partir de los seis años, dictami­
mala digestión de ellos y un déficit nutricional en el
nar con exactitud la edad real del caballo puede ser
animal, lo que finalmente se traduce en la disminu­
inexacto debido a las diferencias masticatorias entre
ción de cualquiera de las actividades productivas en
ellos. La mandíbula superior es algo más ancha que
la que se utilice el caballo.
la inferior, los premolares superiores están colocados
Los dientes de los caballos se diferencian de los
algo más separados que los premolares inferiores.
de los humanos en que, en los individuos adultos,
crecen durante toda la vida. Como los dientes se
desgastan continuamente por el efecto lija de los
alimentos con mucha fibra, el crecimiento continuo
evita que se desgasten rápidamente.
Evolución de la dentadura con la edad
0-2 semanas
2 dientes incisivos temporales más el 2o y 3Wpremolar
1 mes
.................
6-9 meses
4 dientes incisivos temporales y 3 molares
6 incisivos temporales
12 meses
4 premolares
1,5 años
5 premolares
2,5 años
2 dientes permanentes sustituyen a dos temporales
3,5 años
4 incisivos permanentes
4 años
4 caninos y 6 molares
4,5 años
6 incisivos permanentes
Imagen de dientes permanentes
Dentadura decidua
Potro de 2,5-3 años
Potro de 4 anos
Caballo de 7 años
Caballo de 9 años
Caballo de 10 años
Caballo de 17 años
Cambios morfológicos más relevantes:
• Desaparición de los infundíbulos: a medida
• Pico de gavilán: aparece a los 7 años y se des­
que su superficie se desgasta, la parte vacía del
gasta para volver a aparecer a los 11 -13 años.
mismo desaparece, quedando expuesto un pe­
• Ángulo incisivo: en una vista lateral, entre las dos
queño núcleo de cemento y alrededor un anillo de
arcadas incisivas, en animales jóvenes quedan
esmalte, denominado marca dentaria.
aproximadamente en linea recta y con la edad se
• Desaparición de la marca: en los caballos más
hace más agudo.
jóvenes es ovalada y con la edad y el desgaste
• Surco de Galvayne: es un parámetro para deter­
se va haciendo redondeada y desapareciendo en
minar la edad del caballo a partir de los diez años,
dirección lingual en la superficie oclusal.
aunque solo aparece en un 50% de los caballos.
• Aparición de la estrella dentaria: suele aparacer
A los 15-20 años debe ocupar desde la mitad de
a los 5 años, 6 y 7 años en los centrales, medios
la superficie labial hasta el final en los incisivos ex­
y extremos.
tremos superiores.
Caballo
joven
Cemento _
Esmalte _
Cemento
Dentina .
Marca
dentaria
Cavidad
de la pulpa
Estrella
dentaria
Caballo
adulto
------------------------
r- - - -
Dentaduras
de équidos en diferentes
edades
' '
Iljilrf IT T r ih il f f M B lT irtP iB 'M fc lg li» tt i I
l i '
ir
I ■ i ir V É B ilM IÉ firT ^
7 años
____
3 años
Ficha de inspección
veterinaria
Datos generales
Nombre del propietario__________________________________ Apellidos___________________________
Localidad
Provincia
Teléfono
Datos y señas de identificación
Nombre del caballo_____________________________________Ra7a_______________________ Capa____________
Sexo_______________________________________________ Uso_________________________________________
Fecha de nacimiento (indicar al menos el año)_____________________________________________________________
Marcas y cicatrices_________________________________________________________________________________
N° Mícrochip__________________________________________¿Se ha leído en el momento de la inspección? Sí □ No □
Lugar de estabulación:______________________________________
Comprobar e indicar si el animal coincide con el descrito en la documentación acreditativa de su identidad y valor
(carta genealógica, TSE...)
¿Se ha comprobado la identidad del caballo y su documentación? Sí □ No □ _________________________________
¿Qué documentación ha revisado el veterinario? (Tarjeta sanitaria equina, carta genealógica...)_____________________
Indicar n° o código de la documentación consultada:___________________________________
n° lie:
n°TSE
n° pasaporte
otros:
Existen antecedentes o evidencia de... (en caso afirmativo indicar tipo y trascendencia actual y futura)
¿Vicios o hábitos perjudiciales? No □ Sí □ Describir___________________________________________
¿Cirugía abdominal? NoD SÍD__________________________________________________________
¿Otras intervenciones quirúrgicas? No □ Sí □ ¿Cuál?__________________________________________
¿Enfermedad infecto-contagiosa? No □ Sí □ ¿Cuál?__________________________________________
¿Episodios de cólico? NoD SÍD Fechas y trascendencia______________________________________
¿Antecedentes de laminitis? No D Sí D_____________________________________________________
¿Antecedentes de cojeras? No D Sí D Describir______________________________________________
¿Está tomando algún medicamento actualmente? No D Sí D ¿Cuál?______________________________
¿Ha recibido algún tratamiento médico en los últimos 60 días? No D SíD ¿Cuál?_____________________
Últimas vacunaciones y desparasitaciones. (Indicar fechas, tipo de vacuna y producto antiparasitario)
Influenza D
Fecha:_______________ Tétanos D
Desparasitación D
Fecha:_______________ Rimoneumonitis D
Fecha:
Fecha y producto:______________________________________________________
Alimentación
Reconocim iento general
Condición corporal: Sobrepeso D
Óptima D
Media D
Delgado D___________________________
Temperatura:___________________________________________________________________________
Ojos: Normales D
Anormales D___________________________________________________________
Aparato digestivo:_______________________________________________________________________
Boca y dientes: Normales D
Anormales D___________________________________________________
Presencia de hernias: NoD
SíD_______________________ Evidencia de cirugía abdominal: NoD
SÍD
Sistema cardiovascular:___________________________________________________________________
Pulso: en reposo:_______ lat/min.________________________ En ejercicio:_______ lat/min______________
A la auscultación cardiaca, ¿presenta alguna alteración?____________________________________________
No D
Sí D ¿cuál?______________________________________________________________________
Sistema respiratorio:______________________________________________________________________
Tos: NoD
SíD____________________________________ Disnea: NoD
SíD__________________
Respiración: en reposo:_______ resp/min.__________________ En ejercicio:______ resp/min_____________
A la auscultación pulmonar, ¿presenta alguna alteración?___________________________________________
No D
Sí D ¿cuál?______________________________________________________________________
Sistema nervioso: Normal D
Anormal D
Sistema urogenital/aparato reproductor:
Si es macho:
Entero
¿Testículos normales? SíD NoD
Castrado
Si es hembra:
¿Está preñada? No □
Sí □ Fecha estimada del parto
¿Tiene historial de abortos o incidencias en gestaciones anteriores?
Sistema musculoesquelético:
Extremidades (Indicar si son normales o si existe algún tipo de lesión y la patología de que se trate)
A.I.:
A.D.:
P.I.:
P.D.:
¿Hay evidencia de cojera? No □
Sí □ Grado de cojera (0-5)
¿Extremidades aíectada/s?
Indicar a qué se atribuye y trascendencia:
¿Hay evidencias de neurectomía? No □
Sí □
¿Presencia de ceños en los cascos? No □
¿Deformaciones de la palma del casco? No □
Sí □
Sí □ Describir
¿Se adjunta algún tipo de documentación con este informe de inspección? (Carta genealógica, TSE...) Sí □ No □
Detallar documentación que se adjunta:
Yo.
veterinario coleaiado en
con el número
una vez examinado el animal, cumpliendo el siguiente Informe Pericial, a mi leal saber y entender, y con arreglo a lo dispuesto en el artículo 335.2
de la Lev 1/2000 de Enjuiciamiento Civil, ciue exDido el día
de
de 20
Teléfono
Día de la visita:
Hora del examen
Teléfono
Mis señas
Firma v sello
Manejo
Manejo y comportamiento
Manejo y bienestar animal
Manejo de los potros (<6 meses)
Identificación
Destete de los potros
Métodos de contención o inmovilización física
Inmovilización farmacológica
Derribo y manejo del animal en decúbito
Castración
Manejo y bienestar animal
El caballo es un animal inteligente, se da cuenta rá­
pidamente a quien tiene delante, cómo reacciona, si
tiene miedo, si está nervioso, si tiene seguridad, si es
un niño o incluso una persona mayor y, por lo tanto,
va a actuar en consecuencia. Esto puede ser muy útil
para desempeñar nuestro trabajo como veterinarios.
En el ejercicio de nuestra profesión nos vamos a
encontrar todo tipo de caballos, desde muy nervio­
sos, tranquilos, miedosos, potros y caballos mayo­
res, pero con todos ellos debemos extremar las me­
didas de seguridad puesto que hasta el caballo más
tranquilo puede reaccionar de una manera brusca
ante una situación inesperada, ya que en la natura­
leza y en la vida salvaje su vida depende de ello. A
pesar de que su tamaño y fuerza puedan resultar en
ocasiones impresionantes, los caballos suelen ser
fáciles de controlar y su gran tamaño ofrece ciertas
Potro descansando. Se debería levantar en el momento que escuche movimiento.
ventajas.
Todo caballo que esté en una cuadra o en el
16
campo se siente seguro, es su territorio y por lo
lugar cuando nos estudie, adoptará una posición de­
tanto debemos actuar de una manera determinada.
terminada de superioridad, tranquilidad, nerviosismo,
Cuando entramos en su territorio y el caballo se
incomodidad, etc. En primer lugar debemos obser­
encuentra tumbado, lo primero que debe hacer un
var la posición de las orejas. Estas son básicamente,
animal sano es levantarse en el momento que nota
aparte de la posición postural del animal, las que nos
nuestra presencia; si no es así, excepto alguna rara
van a indicar si somos de su agrado o si, por el con­
circunstancia (exceso de confianza, cansancio físico,
trario, no se fía mucho de nosotros.
potros durmiendo, etc.) debemos suponer que no se
Nuestra posición debe ser clara, sin miedo, con
encuentra bien y que presenta algún tipo de dolor o
respeto y hemos de acercarnos suavemente, ge­
causa que le impide levantarse.
neralmente por su lado izquierdo, hablándole, per­
Una vez tenemos al animal en la estación (de pie),
mitiendo que nos vea en todo momento, y mante­
nos va a observar y rápidamente se pondrá en su
niendo el contacto con él, acariciándole con la mano
Caballos en libertad. En esta situación los caballos pasan gran parte del día pastando, interaccionando con los compañeros.
©O0[LD©ií@@¿&
Aproximación por el lado izquierdo del caballo.
Nudo de seguridad para poder soltarlo rápidamente si el
caballo pega un tirón.
Cabezada de cuadra.
Caballo preparado para trabajar a la cuerda.
Cabezada de cuerda trenzada.
por la cabeza, dejándole que nos huela para que el
suelta ni demasiado apretada. Nos posicionaremos
caballo empiece a coger confianza con nosotros y no
en su lado izquierdo a la altura del encuentro suje­
tenga miedo. Todo esto se realiza con el mayor sigilo
tando el ramal con nuestra mano derecha, aunque
y cuidado de no realizar cualquier movimiento brusco
idealmente se debería acostumbrar al animal a ser
que lo puede asustar.
Para la conducción del caballo, debemos ponerle
correctamente la cabezada, sin que esté demasiado
llevado por ambos lados para evitar la unilateralidad,
para que en un futuro pueda reaccionar bien ante
cualquier situación.
Conducción del caballo, siempre en un lado y por delante de él.
Cuando estamos manejando un caballo es im­
prescindible anticiparnos ante cualquier imprevisto,
para llevar el control de la situación y demostrarle al
animal quién es el jerárquicamente superior. Para ello
nos debemos colocar siempre un paso por delante
de él. Si el animal se niega a andar, otra persona se
pone en la parte posterior del caballo (siempre man­
teniendo las medidas de seguridad) y simplemente
haciendo gestos con las manos será suficiente para
que el caballo comience la marcha.
Es esencial la construcción de unas buenas cua­
dras, con unas dimensiones de al menos de 2,5 x 2,
5 m para que el animal se pueda sentir cómodo -en
caso contrario, el caballo podría desarrollar lesiones
por incapacidad de movimiento-ios techos deben ser
lo bastante altos como para que el caballo pueda ele­
varse con su tercio posterior y no tocar con la cabeza.
Entre las cuadras debe haber ventanas, para que los
caballos puedan verse y olerse y de esta manera pue­
Cuadra amplia y limpia con una abundante cama de paja que
asegura el confort del caballo.
dan sentirse mucho más seguros, además de esta
forma la ventilación de las instalaciones mejorará.
Manejo de los potros (<6 meses)
Los potros jóvenes reaccionan de una manera similiar a un caballo adulto, salvando las distancias
siempre, tratan de huir y de cocear y por eso hay que
saber inmovilizarlos muy bien para evitar que nos ha­
gan daño. Para sujetar a un potro suele ser necesario
que alguien nos ayude a sujetar a la yegua y que otra
persona inmovilice al potro, pasandole una brazo por
el cuello y cogiéndole firmemente de la cola en posi­
ción vertical para aumentar el control del mismo. La
mayoria de los potros suelen quedarse quietos con
este sistema, pero aun así, sigue habiendo potros
que se mueven y con éstos lo mejor es cogerles de
Inmovilización de un potro muy nervioso. Para conseguir que
se esté quieto lo empujamos contra la pared.
una oreja, de la cola en la misma posicion vertical y
con una pierna presionándole levemente en el ¡jar del
mismo lado para mantener mejor el control.
Inmovilización de un potro tranquilo.
Antes de coger un potro debemos tener sujeta a la madre.
Identificación
Proviene de la necesidad de identificar individual­
mente un individuo frente a los demás.
Con la implantación del microchip, que por conve­
nio se realiza en el lado izquierdo en la parte superior
Durante años se han utilizado métodos diversos
sobre el funículo nucal, en el momento que se quiere
como la forma de los espejuelos, tatuaje del belfo y
identificar un animal tan solo hay que pasar superficial­
reseña (capa, raza, edad dentaria, y particularidades
mente un lector de microchip sobre esta zona para
de la capa como espigas, remolinos, calzados, etc.).
realizar una lectura del código numérico del mismo.
Todos estos métodos tienen un gran margen de error
La posibilidad de extracción de este microchip im­
ya que existen un gran número de caballos con una
plantado en un animal vivo es remota ya que la ciru­
reseña similar.
gía necesaria para ello provocaría unas cicatrices en
A partir de los años 90 comenzó la implantación
el animal muy visibles desde el exterior.
sistemática de microchips, en principio a las razas
Existe una base de datos española y una europea
puras para su inscripción en los diferentes libros de
para registrar los datos identificativos de los propieta­
orígenes y posteriormente a todos los caballos, in­
rios y de los caballos identificados.
cluidos los cruzados de manera obligatoria.
Actualmente la identificación mediante microchip
junto con la reseña son los métodos más utilizados
en todo el mundo.
Pasaporte equino, microchip y lector.
Destete de los potros
El momento del destete es muy importante en la vida
posterior del potro, puesto que puede provocar tras­
tornos en su comportamiento. En este proceso de­
bemos evitar, en la medida de lo posible, un estrés
excesivo en el potro. En muchas ocasiones es inevi­
table y por ello trataremos de realizarlo de la forma
más natural posible.
Las yeguas que viven en libertad destetan a sus
potros cuando se aproxima el final de la siguiente
gestación, rechazándole cada vez que va a mamar
dándole una ligera coz. De esta forma se realiza el
cambio progresivo para alimentarse únicamente de
pasto.
Conviene no interrumpir el momento de toma de leche para no provocar en el potro
ningún estrés excesivo.
Cuando queremos destetar al potro que vive en
una cuadra o corraleta, la mejor manera es ir acos­
tumbrándolo a estar alejado de su madre, aumentar
Adopción por parte de la yegua de otro potro huérfano
el tiempo paulatinamente y hacerlo así de manera
progresiva hasta que finalmente se acostumbre y se
separen. Se puede comenzar a separar al potro en
las horas de la comida, siempre y cuando se man­
tenga el contacto visual con la madre, así el potro
estará relativamente tranquilo y la madre también
puesto que estará comiendo. Otra manera de hacer
el cambio es hacer trabajar a la yegua, o darse un
paseo con ella y así poco a poco el potro se acos­
tumbrará a estar solo. Cuando está sin su madre,
este será un buen momento para que comience a
coger confianza con las personas.
Métodos de contención o inmovilización física
A ningún veterinario, propietario, personal auxiliar
Las principales maniobras de contención son:
que trabaje con équidos, o incluso a cualquier per­
• Levantar una extremidad anterior: de esta manera,
sona que le gusten los caballos, les gusta utilizar los
el caballo tiene dificultad para cocear o incluso
métodos de contención, pero muchas veces y sobre
moverse, ya que se le está falseando uno de sus
todo cuando el animal presenta dolor, es inevitable
apoyos. No obstante, este método de sujeción no
su utilización. Con dichos métodos, bien por inca­
implica que el animal no pueda mover alguna ex­
pacidad física del caballo o bien por el dolor que les
tremidad ligeramente y pueda pisar o dar un golpe.
produce, el animal se queda quieto y nos permite su
• Un pellizco en la piel del cuello y retorcerla suele ser
exploración.
bastante eficaz como método de contención leve,
pero fundamentalmente porque no es muy cono­
cido y el animal se queda bastante sorprendido.
• Coger la base de la oreja y retorcerla.
Levantar una de las extremidades anteriores limita el
movimiento del caballo.
Al retorcer la oreja el animal se queda quieto.
Pellizco en las tablas del cuello.
Sistema de trabones para inten.'enciones quirúrgicas mínimas.
Trabones: son unas abrazaderas con unas pro­
tecciones para evitar el quemado de la zona por
abrasión en caso de coz. Se ponen en las extre­
midades posteriores con un sistema de cuerdas
para evitar que el animal pueda cocear, tanto al
veterinario en cualquier intervención necesaria, o
incluso al semental en caso de monta.
Acial o torcedor: es uno de los métodos utilizados
con más frecuencia. Se compone de una cuerda
sujeta a un palo y su función consiste en retorcer
el belfo superior o inferior del animal modificando
la presión en función del dolor que queramos oca­
sionarle. Algunas de las investigaciones acerca de
este sistema desvelan que la presión ejercida por
el torcedor produce la liberación de endorfinas y
Turcedor.
estas a su vez una atenuación del dolor y relaja­
ción consecuente.
Potro de contención: hay situaciones en las que
los caballos necesitan estar mucho más quietos,
para realizar determinadas exploraciones o ciru­
gías menores, y sobre todo por la seguridad del
examinador. Para ello empleamos estos cajones
donde tienen poco margen de maniobra, y esta­
mos a salvo de sus coces.
Con un sistema de torcedor y tapando la visión se consigue que el animal esté
bastante quieto.
Sistema de trabado para realizar una cubrición sin riesgo de coz para el semental.
Potro de contención, tanto para manipulación de animales
excesivamente nerviosos, como para intervenciones
quirúrgicas y palpaciones rectales en yeguadas.
Inmovilización farmacológica
La clínica equina, tanto ambulante como hospitalaria,
requiere en muchas ocasiones de una inmovilización
farmacológica del animal para trabajar sin riesgo y con
mayor eficacia. Afortunadamente, la mayoría de los
caballos que son sedados o anestesiados en la clínica
de campo están sanos y por lo tanto suelen responder
correctamente a los efectos de las anestesias.
Agentes sedativos
Tranquilizantes
Acepromazina: es el tranquilizante más utilizado que
tiene una acción de media sedación, provocando
una ligera ataxia. Tiene propiedades antieméticas y
antihistamínicas. La vía de administración es intrave­
nosa, intramuscular o incluso vía oral.
Algunos de los productos anestésicos más frecuentes.
El caballo está bien sedado pero responde a estí­
mulos externos.
Es la elección idónea para producir un prolapso
del pene.
Los principales agentes son la xilacina, la detomidina y la romifidina, siendo este último el que produce
una sedación más ligera.
a-2 agonistas
Producen una sedación y su efecto máximo se al­
Benzodiacepinas
canza al cabo de unos pocos minutos tras su admi­
En este grupo incluye el diazepam, midazolam y el
nistración por vía intravenosa. El caballo adopta una
zolazepam. No se emplean para producir una se­
posicion en la estación, con la cabeza abajo y apa­
dación en los caballos adultos pero sí que son em­
rentemente ajeno a cualquier estímulo externo.
pleados para su uso en potros o como inductores de
Todos ellos producen ataxia en función de la dosis
combinaciones anestésicas.
administrada, y se usan en función del procedimiento
veterinario a realizar, es decir, realizar una radiogra­
Opioides
fía, endoscopia, una cirugía menor o incluso la pre­
Principalmente poseen efectos analgésicos y su em­
paración del caballo para una anestesia general en
pleo se centra en combinaciones con otros agentes
decúbito.
sedativos.
Producto
Dosis
Indicaciones
Acepromacina
0,04-0,08 mg/kg
Prolapso de pene
Tranquilización leve
Xilacina
0,3-1 mg/kg
Altas dosis pueden producir ataxia
Mejor sedación que analgesia
Aprox. 30 min de duración
Detomidina
0,01 -0,04 mg/kg
Altas dosis pueden producir ataxia
60-90 min de duración
Romifidina
0,04-0,12 mg/kg
Menor ataxia
60-90 min de duración
Agentes amestésñcos
Ningún anestésico general inyectable reúne todas las
propiedades idóneas empleándolo solo, y la mayoría
de los procedimientos se hacen sin anestesia gene­
ral. Por esta razón se emplean combinaciones anes­
tésicas entre estos grupos para lograr una correcta
sedación, analgesia y relajación muscular. Existen va­
rias combinaciones posibles y efectivas, pero las más
ultilizadas son:
1. Acepromacina 0,03-0,04 mg/kg
+ detomidina 0,01-0,02 mg/kg.
2. Acepromacina 0,03-0,04 mg/kg
+ romifidina 0,05-0,1 mg/kg.
3. Detomidina 0,01-0,02 mg/kg
Sedación profunda de un caballo para una cirugía menor en la estación.
+ butorphanol 0,02 mg/kg.
4. Romifidina 0,05-0,1 mg/kg
+ butorphanol 0,01 -0,05 mg/kg.
5. Xilacina 0,5 mg/kg
+ butorphanol 0,01 -0,05 mg/kg.
Prolapso de pene, evidenciando la máxima relajación.
Equipo hospitalario de anestesia inhalatoria.
Equipo de anestesia inhalatoria.
Derribo y manejo del animal en decúbito
Derribar a un caballo es un procedimiento delicado,
Existen varias combinaciones a elegir por el profesio­
que únicamente se debe considerar en los casos ex­
nal veterinario o anestesista:
tremos, ya que un mal derribo puede suponer fractu­
1. Xilacina (1mg/kg) o detomidina (0,01 -0,02 mg/kg)
ras, luxaciones o diversos traumatismos.
o romifidina (0,1 mg/kg) + ketamina (2 mg/kg).
Se deben tener unas nociones básicas, tanto de
Esta es la combinación más frecuente en la clínica
premedicación, sedación, inducción, como de ma­
equina, se emplea para realizar intervenciones
nejo del caballo y sus reacciones; y poseer un lugar
menores.
con unas condiciones adecuadas para minimizar los
problemas que puedan surgir.
2. “Triple drip": a-2 agonista (xilacina o detomidina) +
guaifenesin + ketamina.
Si vamos a realizar un derribo controlado en una
Esta es la combinación más frecuente en
cuadra normal, hay que tener siempre un punto de
cirugías mayores sin que se emplee la anestesia
anclaje para que el animal no lo tengamos descon­
inhalatoria.
trolado; si el derribo va a ser en un hospital se em­
Una vez que tengamos al animal en decúbito, ya
pleara la “sala de derribo" perfectamente acolchada.
bien sea en el campo o en un hospital, se puede
Para el derribo de un caballo tenemos que com­
mantener esa anestesia con el isoflurano, princi­
binar drogas anestésicas para conseguir el efecto
palmente en cirugías mayores o que se prolongen
que queremos, que no es otro que el animal caiga
en el tiempo.
al suelo pero con una relajación muscular y una anal­
gesia suficiente y que su efecto se prolongue en el
tiempo sin complicaciones.
El manejo de un animal en decúbito en condiciones hospitalarias ofrece más seguridad para el animal y para el veterinario.
Castración
La castración es una de las técnicas quirúrgicas más
tenga un testículo -criptorquidia- y sea necesaria una
frecuentes en la clínica equina. La mayoría de los ca­
intervención quirúrgica diferente.
ballos machos se castran preferiblemente antes de
Es una técnica que se puede realizar bajo una se­
su madurez sexual, que comienza a los 16 meses
dación general en la estación o bajo una anestesia
aproximadamente. La mayoría de los potros enteros
general en decúbito, según la preferencia del profe­
muestran un comportamiento natural agresivo con
sional veterinario que la realice. La castración en la
mordiscos, intento de montar yeguas, nerviosismo,
estación (la más frecuente) conlleva una sedación
manoteos y la consiguiente peligrosidad que esto
profunda del animal, ayudada de una anestesia local
conlleva si se está montando a caballo en grupo. Es
en el escroto. Se realiza la exteriorización del testículo
por esta razón por la que aquellos machos enteros
y, con la ayuda de un emasculador, cortaremos y
no destinados a la reproducción se castran.
sellaremos los conductos espermáticos y el sistema
Se suele castrar en la estación del año que haya
vascular. Con esta técnica es más difícil mantener
menos moscas para prevenir cualquier complicación
una asepsia y hay más probabilidades de que halla
no deseada, pero realmente si se hace correctamente,
complicaciones posoperatorias, como hemorragias o
en un lugar limpio y las condiciones posoperatorias son
incluso eventración.
buenas, se puede realizar en cualquier estación del año.
Mediante la técnica de la castración en decú­
El examen veterinario previo es esencial para
bito, es posible una disección más precisa de los
comprobar que ambos testículos se encuentran en
tejidos y esto nos ayudará a controlar la hemorragia
la bolsa escrotal, puesto que puede ocurrir que solo
posoperatoria.
/
Proceso de castración en la estación
Limpieza y desinfección del escroto.
Infiltración de anestesia local en el escroto.
Exteriorización del testículo.
Con la ayuda del emasculador se corta y se sella.
PosibDes complicaciones
posoperatorias
El goteo frecuente de sangre de la piel del escroto y
inflamación
de los vasos sanguíneos es relativamente normal, a
l_a inflamación del escroto y del prepucio puede lle­
no ser que sea constante y abundante, en cuyo caso
gar a ser normal en función de la edad del caballo
será necesaria la sutura de los vasos.
y del tratamiento antiinflamatorio administrado. Esta
inflamación se reducirá con el ejercicio y con duchas
Eventración
de agua fría en la zona.
Esta es posiblemente la complicación más temida de
Infección
estación. Supone la salida de contenido abdominal
todo veterinario en el momento de la castración en la
Una infección en la bolsa escroíal supone una inflama­
al exterior a través de la incisión del escroto, que hay
ción de la zona y probablemente esa herida se “cierre
que corregir inmediatamente mediante una anestesia
en falso”, lo cual evita su drenaje y limpieza. En estos
general.
casos se debe proceder a un tratamiento antibiótico
y antiinflatorio y al buen drenaje de esa infección para
evitar una complicación como el "cordón cirroso”.
____
Castración mediante anestesia inhalatoria debido a una
neoplasia en el testículo derecho.
Infección posoperatoria por cierre de la herida en falso.
Neoplasia en testículo derecho.
El lavado del escroto con agua fría ayuda a rebajar la inflamación como
consecuencia de la castración.
Capa, piel y sistema linfático
Exploración clínica de la capa,
la piel y el sistema linfático
Introducción
Historia clínica
Valoración de la capa
Toma de muestras
Ficha dermatológica
Exploración del sistema linfático
Introducción
Sección de las capas de piel y la estructura del pelo en los mamíferos
Epidermis
Glándula sebácea
Dermis
Nervio
Vaso linfático
Tejido
subcutáneo
Tejido graso
Vena
Arteria
____
La piel es el órgano más amplio del organismo ani­
y el fotoperiodo. En ambientes cálidos la capa está
mal. Es una capa de 1 a 5 mm de espesor depen­
compuesta por pelo medular grueso mientras que
diendo de la región corporal, que se continúa con las
en ambientes fríos, por fibras más largas y finas,
mucosas en los orificios naturales. Está formada por
con menor porción medular, proporcionándoles un
una capa externa delgada, la epidermis, seguida de
buen aislante del frió.
la dermis, donde se encuentra la red vascular sanguí­
Las enfermedades de la piel son muy comunes
nea y linfática, las terminaciones nerviosas y las glán­
en los équidos. En muchas ocasiones constituyen
dulas. La última capa es la hipodermis formada por
un reto diagnóstico importante para el clínico y ha­
grasa subcutánea que actúa como una almohadilla.
bitualmente quedan sin diagnosticar. Aunque es el
En el caballo, la piel presenta unos anejos: el pelo
órgano de mejor acceso para el veterinario, pues lo
y los cascos. Las glándulas sebáceas y sudoríparas
tiene a la vista, en muchas ocasiones nos encontra­
son más grandes y numerosas que en otros anima­
mos con procesos crónicos y de difícil diagnóstico.
les y tienen una importante función én la termorre-
A menudo, el propietario no da la suficiente impor­
gulación. Las cernejas, unas pequeñas callosidades
tancia a las enfermedades de la piel y sólo llama al
que se encuentran entre los mechones de pelo del
veterinario cuando el problema se hace crónico o
menudillo (superficie flexora), son un vestigio del
bien se extiende por todo el cuerpo afectando cla­
segundo y cuarto dedo de los équidos. El espe­
ramente al aspecto estético del caballo.
juelo es una masa de tejido córneo localizado en la
La mayoría de las enfermedades de la piel se pue­
superficie medial del radio. El casco es el recubri­
den dividir en infecciosas, es decir, originadas por bac­
miento córneo distal de la tercera falange.
terias, virus, hongos o parásitos y en no infecciosas,
La capa está formada por el pelo, éste se re­
entre las que destacan los procesos alérgicos que
emplaza influenciado por la temperatura ambiente
afectan a la piel y, en menor medida, las neoplasias.
Historia clínica
La variedad de capas y colores de los caballos es muy amplia, algunas como la de este Apaloosa aparecían dibujadas en las
cuevas rupestres de Europa hace 20.000 años.
Como en todo proceso patológico, la elaboración de
descubrir lesiones que no se ven a simple vista o
una historia clínica completa ayuda en gran medida al
para valorar la sensibilidad, elasticidad, temperatura,
diagnóstico. Se pueden hacer las preguntas clásicas
etc. Así se puede detectar si el pelo es untuoso, si
que se vieron en el primer capítulo, aunque lo mejor
se depila fácilmente o qué textura tiene. No hay que
es tener una ficha clínica donde se anoten todos los
olvidar levantar las patas del caballo para observar la
datos interesantes para el diagnóstico. La historia clí­
ranilla, las bandas coronarias y el casco.
nica debe incluir los siguientes datos: raza, edad, sexo,
aptitud, capa, enfermedades previas y evolución de las
mismas. La época del año es importante, pues habi­
tualmente con el buen tiempo se presentan reacciones
alérgicas a insectos, sobre todo Culicoides. También
hay que preguntar por la administración de medica­
mentos, ya que pueden explicar la aparición de una ur­
ticaria consecuencia de una alergia al fármaco; por las
pautas de desparasitación y los productos utilizados.
Tras realizar la historia clínica continuaremos con
un examen físico general, teniendo en cuenta todos
los órganos. Por ejemplo, una enfermedad hepática
puede originar una fotosensibilización de las partes
blancas del caballo. En el examen dermatológico nos
fijaremos en el aspecto de las lesiones, examinando
la base de los mechones de pelo de la crin y de la
cola, donde se pueden acantonar los parásitos ex­
ternos. Se debe palpar la superficie de la piel para
La presencia de espejuelo, cernejas y el pelo rayado de
la pata de este caballo son vestigios de los dedos de los
antepasados de los équidos.
La piel sana se caracteriza por una capa de pelo brillante, lustrosa, corta
en verano como la de este caballo.
La capa al final del invierno adquiere un aspecto basto y poco brillante,
Posteriormente se desprende y da lugar al pelo del verano.
En el examen dermatológico se debe separar los mechones de pelo de la
crin y de la cola para buscar la presencia de parásitos o de descamación.
Un pelo áspero, basto, mate, con la piel engrosada es propio de
procesos crónicos de la piel.
Hirsutismo o hipertricosis. Pelo largo, rizado, en la extremidad anterior
de un caballo con síndrome de Cushing.
Zona alopécica en el tarso de un potro, en este caso debido a una
herida.
Valoración de la capa
La capa está constituida por ei pelo y presenta una
gran variedad de colores atendiendo a la enorme di­
versidad de razas que existen. Un pelo sano suele
ser corto, suave y con brillo, mientras que un pelo
enfermo es más áspero o erizado y se enreda con
facilidad. Los caballos suelen pasar por un proceso
de muda exhibiendo en invierno un pelo más basto
y con pelusa. A medida que aumenta la temperatura
ambiente, este pelo se sustituye por uno más corto.
Las modificaciones de la capa son la hipertricosis o hirsutismo, que es normal en algunas razas de
ponis, y característico del síndrome de Cushing, con
pelo más abundante en la gotera de la yugular o en
extremidades. El caso contrario es la hipotricosis que
puede llegar hasta un caso de alopecia local o bien
generalizada. Estas alopecias pueden ser reversibles
o irreversibles y se deben a causas tóxicas, infec­
ciosas u hormonales. Las alopecias locales suelen
deberse a tiñas, sarnas, estados carenciales o bien
son de origen dérmico. Los cambios de color tienen
poca importancia en el caballo, por lo general a me­
dida que los animales avanzan en edad adquirieren
un color gris y canoso.
Atriquia o alopecia. Extensas zonas alopécicas que depilan
el rabo y todo el periné en una burra. Las causas pueden ser
tóxicas, hormonales o infecciosas.
Leucotriquia. Mechón de pelo blanco, sin pigmentar.
Hiperemia
Hiperemia de la piel debido a dermatitis en la cuartilla de un caballo y en la cara de un caballo con atopia.
Cambios de coloración de la piel
y de las mucosas
caballos presentan coloración amarillenta normal
Para apreciar el color de las mucosas se requiere una
enfermedad.
de la conjuntiva ocular sin presentar ninguna
buena iluminación.
• Color blanquecino: las mucosas están pálidas a
consecuencia de la falta de riego sanguíneo. Ca­
Humedad de la piel: glándulas
sudoríparas y sebáceas
racterístico de un estado de anemia no hemolítica
En la piel encontramos glándulas sudoríparas y se­
(hemorrágica, aplásica).
báceas, que son las encargadas de mantener la hu­
• Hipermelanosis: coloración oscura de la piel de
medad y la secreción de grasa para lubrificar la piel.
origen hormonal o inflamatorio.
• Hipomelanosis (leucodermia): despigmentación
Las glándulas sudoríparas se localizan por todo el
cutánea que aparece en ciertas enfermedades
cuerpo, su secreción se encarga de mantener la ho-
víricas.
meostasis del medio interno y la temperatura corporal.
• Enrojecimiento de la piel y de las mucosas
Los caballos transpiran abundantemente para comba­
• Hiperemia: enrojecimiento de la piel que se
tir el estrés térmico y regular la temperatura corporal.
ocasiona como consecuencia de dermatitis,
Se pueden diferenciar dos tipos, las glándulas más
insolaciones o septicemia.
abundantes en los équidos son las denominadas ecri-
Debido a los trastornos hemorrágicos se
nas, que producen una secreción acuosa rica en sa­
producen petequias, equimosis y manchas
les minerales. Las glándulas apocrinas están situadas
multiformes propias de enfermedades infeccio­
junto al folículo piloso y se encargan de la secreción
sas. El hematoma es la acumulación de sangre
odorífera produciendo una sudoración más densa.
en tejido subcutáneo como consecuencia de
Las alteraciones de estas glándulas son:
un traumatismo.
• Hiperhidrosis: aumento de la sudoración, fre­
• Cianosis: coloración azulada debido a un
cuente en caballos después de un ejercicio exte­
proceso de insuficiencia cardiaca o de asfixia.
nuante, con temperaturas y humedad elevadas.
Aparece frecuentemente en cólicos graves de
• Anhidrosis: incapacidad de transpirar ante estí­
tipo estrangulante. Coloración negruzca en el
mulos apropiados. Aparece en caballos que viven
caso de gangrena cutánea.
en países tropicales con humedad y temperaturas
• Ictericia: coloración amarillenta por incremento
de la bilirrubina en sangre. Está relacionado prin­
elevadas. La piel se seca, pierde elasticidad y se
convierte en escamosa.
cipalmente con anemias hemolíticas o afeccio­
• Hematidrosis o sudoración hemorrágica: se
nes hepáticas. No obstante, hasta el 15% de los
debe a pequeñas hemorragias a nivel del folículo
Elasticidad de la piel
piloso. Aparece en casos de anemia infecciosa
equina, púrpura hemorrágica o intoxicaciones por
raticidas.
• Las glándulas sebáceas se encargan de lubrificar
y dar brillo al pelo. Sus alteraciones son menos
frecuentes. Se clasifican en:
° Seborrea: excesiva producción de grasa. En
la seborrea húmeda la capa adquiere un as­
pecto untuoso, brillante y de olor rancio. La se­
borrea seca produce escamas y el pelo tiene
un aspecto reseco. Hay que diferenciar estas
escamas de las producidas por una dermatitis
o dermatosis.
° Asteatosis: es la situación contraria, la pro­
ducción grasa está disminuida. El pelo aparece
basto, sin brillo y quebradizo.
Elasticidad de lia piel
Se utiliza para valorar el estado de deshidratación. Se
realiza un pliegue cutáneo en la zona de las tablas
del cuello y se obsen/a el tiempo que tarda la piel en
recuperar su estado normal. También aparece au­
mentado en caso de dermatosis ya que se produce
un endurecimiento de la piel. Conforme los animales
tienen más edad se pierde la elasticidad de la piel y
por tanto aumenta este tiempo de recuperación.
Hematiclrosis. Se aprecian pequeñas hemorragias que
proceden del folículo piloso.
Temperatura de la piel
la base como la punta tienen que estar a la misma
Es un reflejo de la temperatura interna pero no es
temperatura, excepto cuando hay fiebre o la tem­
exactamente la misma. Se puede tomar aproxi­
peratura externa es muy fría y con viento fuerte. En
mando el dorso de la mano a la zona de la cara. Las
caso de hipotermia, se aprecian las extremidades
axilas resultan más cálidas. Al tocar las orejas, tanto
frías lo cual indica colapso circulatorio.
Edema
Prurito
Manifestaciones
de prurito.
El picor es tan
intenso que
lleva al poni a
rascarse con
la extremidad
posterior o,
en el caso
de la yegua,
a volverse
y morderse
dejando el
pelo húmedo
y revuelto.
Edema de la piel como consecuencia de una insuficiencia
cardiaca. Debido a lo prolongado de la lesión y a la
pérdida de elasticidad de la piel se ha producido una fisura
sangrante.
El edema de la piel deja una huella característica o fóvea
al presionar con el dedo.
Aumento del volumen de la piel
o bien debido a traumatismos que ponen en comuni­
Se produce en dos situaciones, cuando hay un in­
cación el medio externo e interno, por fracturas de la
cremento de líquido (edema) o de gas (enfisema) en
tráquea o costillas, etc.
la piel. En el edema, el líquido queda retenido en los
espacios intercelulares de la epidermis y del tejido
Prurito o picor
subcutáneo. Al presionar con el dedo, queda mar­
Es una sensación desagradable que provoca el de­
cada la huella o fóvea durante varios segundos. Los
seo de rascarse, morderse o rozarse con objetos. Es
edemas se presentan en las partes declives, principal­
el síntoma más común en dermatología. Lo produ­
mente en la punta del pecho y el abdomen ventral. Se
cen las terminaciones nerviosas de la piel. Su origen
suelen deber a insuficiencias cardiacas congestivas o
puede ser:
bien a alteraciones hepáticas que desencadenan la
• Sintomático: debido a la liberación de histamina
hipoalbuminemia.
en dermatitis alérgicas o por la acción mecá­
El enfisema es el aumento del volumen de la piel
nica de parásitos externos como Chorioptes o
por la presencia de aire en el tejido conjuntivo. Al pre­
sionar con el dedo tiene una consistencia crepitante.
Sarcoptes.
•
Central: prurito generalizado que no se debe a
El enfisema se produce como consecuencia del cre­
una enfermedad de la piel. Se puede considerar
cimiento de bacterias anaerobias (p. ej. Clostrídium)
como una neurosis cutánea.
Lesiones primarias
• Mácula: lesión circunscrita inferior a un centímetro
de diámetro que se caracteriza por un cambio de
coloración. Si el tamaño es superior a un centímetro
se llaman manchas. Pueden tener un origen vas­
cular, produciendo eritema, cianosis y angiomas, o
pigmentario por depósito de melanina en el tejido
dérmico como es el caso de los melanomas.
Verruga en la entrada de los ollares de un potro. Esta lesión
suele ser de origen vírico.
• Pápula/placa: lesión inferior a un centímetro de diá­
metro pero que hace relieve sobre la superficie de
la piel y se resuelve sin dejar cicatriz. Suele ser de
etiología viral. Cuando confluyen varias pápulas se
forma una placa.
• Nodulo: lesión circunscrita superior a un centímetro
de diámetro que hace relieve sobre la piel. Se en­
cuentra implicada la dermis y la hipodermis. El con­
tenido es variable y puede ser de naturaleza inflama­
toria, neoplásica o depósitos de fibrina.
Lesión primaria de la piel. Habones en la parte ventral del
abdomen consecuencia de picaduras de insectos.
• Quiste: lesión circunscrita que hace relieve sobre la
piel. Está formada por una cavidad que contiene el
líquido o el sólido producido por las células que for­
man la pared.
• Verruga: masa carnosa de la piel que está unida a la
misma por una base fina (pedunculada) o bien más
ancha (sésil). Suelen ser de origen vírico.
• Tumor: lesión circunscrita de la piel, no inflamatoria,
de contenido sólido, forma, color y tamaño variable.
Como por ejemplo melanomas o carcinomas.
Detalle de las lesiones de una foliculitis bacteriana. Se forma un
punto central que en ocasiones es hemorrágico.
® Habón o roncha: elevación circunscrita de la piel de
consistencia elástica que aparece repentinamente y
desaparece al cabo de unas horas. Esta es la lesión
que se produce como consecuencia de la picadura
de insectos o en las reacciones intradérmicas en las
pruebas alérgicas.
• Vesícula, ampolla, bulla y flictena: la vesícula es
una lesión prominente y circunscrita de menos de un
centímetro de diámetro, llena de líquido claro. Tiene
localización intradérmica. Las ampollas o bullas son
Salida de pus y exudados de un absceso que se ha roto
situado en la cara interna del muslo.
vesículas de mayor tamaño. Las flictenas son aún
mayores y se producen debido a quemaduras.
• Pústulas o ampollas purulentas: elevación cir­
Lesiones elementales de la piel
cunscrita de la piel llena de pus. Las pústulas pue­
En las enfermedades cutáneas se pueden observar
den ser superficiales como es el caso del impétigo,
dos tipos de lesiones: las primarias, que se desarrollan
o bien profundas, localizadas entre la dermis y la
de forma espontánea sobre la piel intacta, o bien se­
cundarias, que son la evolución de las anteriores como
consecuencia de las complicaciones del rascado.
epidermis.
• Absceso: tumefacción fluctuante originada por la
acumulación de pus.
Lesiones secundarias
• Erosión: pérdida de tejido dérmico a nivel muy
superficial.
• Escoriación: solución de continuidad de la epider­
mis y de la dermis. Se produce por el rascado o el
lamido de lesiones pruriginosas o también cuando
se rompen las vesículas. No suelen dejar cicatriz.
• Fisura: hendidura lineal de la epidermis que
puede llegar a la dermis o tejido subcutáneo.
Aparece en zonas sometidas a mayor movi­
miento y donde la piel ha perdido la elasticidad
natural.
• Úlcera: pérdida de continuidad de la piel donde
puede quedar expuesta al exterior la dermis o el
tejido subcutáneo.
• Costras: desecación de exudados, sangre y res­
tos celulares que se quedan en la superficie de la
piel. Recubren las superficies de soluciones de
continuidad cutánea como erosiones, o apare­
cen tras la ruptura de vesículas y ampollas.
• Escamas y collarete: la descamación se pro­
duce por la exfoliación de la capa córnea. Esta
lesión produce fragmentos laminares de la epider­
mis que tienden a desprenderse. Los collaretes
son un tipo de escamas circulares. Estos restos
de tejidos epidérmicos formaron parte de la pared
de vesículas, ampollas o pústulas.
• Escara: lesión de un tejido necrótico que el or­
ganismo tiende a eliminar. Son zonas de piel
necrosada, negruzca, provenientes de regiones
Sarcoide equino que se extiende por el cuello del caballo. En ocasiones puede
llegar a producir úlceras en la base de la oreja.
traumatizadas.
0 Cicatriz: tejido fibroso resultante de la repara­
ción de las lesiones que afectan a la dermis. Se
produce tras la curación de heridas traumáticas,
quemaduras o incisiones quirúrgicas.
B Liquenificación: engrasamiento y endurecimiento
de la piel caracterizada por una exagerada demar­
cación de las líneas de superficie. Suele aparecer
en dermatosis pruriginosas o crónicas como la
atopia.
3 Hiperqueratosis: engrasamiento y endureci­
miento de la piel por causas mecánicas origi­
nando callosidades o por causas infecciosas.
Costras formadas por la desecación de los exudados de
una dermatitis bacteriana. La capa tiene aspecto húmedo
y los pelos se encuentran apelmazados como consecuencia
de los exudados de la infección.
►
Descamación
Descamación. Es una lesión que se
encuentra frecuentemente y está
producida, en muchas ocasiones,
por la acción de parásitos externos.
Descamación ocasionada por
Choríoptes.
Toma de muestras
Como mínimo, se deben recoger muestras mediante
raspados de piel, de pelos y hacer impresiones direc­
tas con celo transparente.
Raspado de la piel
Es la prueba diagnóstica más común debido a que
es simple de realizar, rápida y barata. Es muy útil para
identificar parásitos, sobre todo los ácaros.
Técnica
Humedecer la piel con parafina líquida o KOH
10%.
Raspar cuidadosamente la piel con una hoja de
bisturí.
Depositar el material obtenido mediante raspado
en un portaobjetos con el mismo líquido con el
que se ha humedecido la piel.
Esta muestra ya se puede observar al micros­
copio óptico (MO), empezando con cuatro
aumentos.
Cuando hay una excesiva cantidad de costras,
lo mejor es montar las muestras con hidróxido de
potasio (KOH 10%) para permitir que el material se
disgregue. Esto conseiva bien a los parásitos, pero
los mata.
En ocasiones es necesario realizar raspados más
profundos para buscar parásitos menos comunes,
como los Demodex.
K)
Cepillado de la piel
Se realiza con un cepillo o peine de púas densas,
muy útil para la detección de ácaros y piojos. Se
puede utilizar un cepillo de dientes, que es un mé­
todo barato y efectivo. La muestra que se obtiene se
coloca sobre un portaobjetos para observarlo al MO.
Raspado de la piel para identificar parásitos. Una vez
obtenida la muestra se monta sobre un portaobjetos
con aceite de parafina y se observa al MO. En este caso
se observan liendres de piojos agarradas al pelo.
Muestra de pelo
superficie del manto como Choríoptes. En áreas alo-
Se utiliza para hacer tricogramas que son necesarios
pécicas se pueden identificar bacterias superficiales
para observar las características de las raíces, los
como Staphylococcus y levaduras como Candida y
tallos y las puntas del pelo. Cuando hay sospecha
Malassezia.
de dermatofitosis o dermatofilosis se deben arrancar
pelos de los márgenes de la lesión utilizando unas
pinzas.
Técnica
En áreas con abundante pelo, como crin o cola,
presionar firmemente sobre el pelo varias veces.
Técnica
Colocar directamente sobre un portaobjetos.
Coger cuidadosamente el pelo con unas pinzas y
En áreas sin pelo, presionar sobre la piel y frotar
tirar con fuerza para arrancarlo. Es mejor esto que
con el dedo para llevarnos a los microorganismos.
arrancar el pelo con los dedos.
Se pueden teñir con un colorante rápido de ci­
Colocar las muestras sobre un portaobjetos con
tología, omitiendo la primera solución que lleva
parafina líquida para observar la estructura del
alcohol, montarlo y observarlo directamente al
pelo o con KOH para ver hongos.
microscopio.
Si se sospecha de una dermatofitosis, hay que
añadir azul de metileno al KOH para teñir los ele­
mentos fúngicos.
Observar la muestra directamente al MO.
Además de estas técnicas más sencillas, en oca­
siones es necesario tomar muestras de lesiones que
presentan líquido como abscesos o vesículas o de
tumores. Para ello se realiza la técnica de aspiración
Toma de muestras con cinta
adhesiva transparente
con aguja fina, o bien se toma una muestra de tejido
Este método es muy útil para identificar huevos de
de un laboratorio especializado para lo que tendre­
Oxyuris equi de la región perianal y ácaros de la
mos que realizar una biopsia cutánea.
para realizar un diagnóstico histopatológico por parte
Toma de muestras con cinta adhesiva en la región perianal para obtener muestras de Oxyuris.
Aspiración con aguja fina
Técnica
Una simple aspiración del fluido de una masa en la
Los nodulos se pueden aspirar con agujas finas
piel nos puede indicar la presencia de exudado puru­
de 18 a 21G en jeringas de plástico de 5-10 mi.
lento en un absceso producido por bacterias o bien
El tamaño de la aguja depende de la firmeza del
hifas o macroconidias en nodulos micóticos. También
tejido. Una vez introducida la aguja, se debe dirigir
se pueden aspirar células de lesiones hiperplásicas y
hacia el centro de la lesión, tirar del émbolo, re­
neoplásicas.
orientar la aguja, y volver a succionar.
Liberar la presión negativa que ejerce el émbolo,
sacando la jeringa de la aguja.
Expulsar el contenido sobre un portaobjetos. Ex­
tender el contenido para disgregar los grupos
celulares.
Dejar secar al aire el aspirado y teñirlo directa­
mente para observarlo en un MO, o bien remitirlo
a un laboratorio de análisis.
Biopsia de piel
Material necesario para
realizar una biopsia
Biopsia cutánea
Utilizar trocares de biopsia de 6 a 8 mm de diáme­
Cuando sea posible, se deben obtener biopsias de
tro. El trocar se coloca sobre la lesión y se aplica
lesiones primarias tales como máculas, pápulas, tu­
una presión moderada a la vez que se gira. Una
mores, pústulas y vesículas. Las lesiones secunda­
vez que ha penetrado en la piel, se retira, dejando
rias y crónicas, como ulceraciones, liquenificaciones
la piel unida a la grasa subcutánea. Con una pinza
y excoriaciones, y en general las producidas por au-
recogemos la muestra, cortando la unión de la
tolesiones no suelen dar buena información. Las le­
muestra con la grasa subcutánea.
siones pequeñas deberían tener, cuando sea posible,
También se pueden obtener mediante un bisturí,
márgenes de tejido sano.
cortando un pequeño ojal de piel. Esto es espe­
cialmente útil para pústulas y vesículas. La herida
Técnica
se puede suturar colocando un punto, o bien una
Preparar y limpiar bien el área de la biopsia.
grapa.
Marcar con un rotulador el área a obtener e infiltrar
Fijar la muestra obtenida en formol al 10% y remi­
un anestésico local.
tirla al laboratorio.
En caballos rebeldes, o cuando las áreas son muy
sensibles, se les puede poner un sedante, o bien
un torcedor.
Biopsia de piel. En primer lugar hay que anestesiar la zona y tomar la muestra con un trocar de 6-8 mm. La muestra de piel, con tejido subcutáneo,
se introduce en formol 10%. La colaboración con el histopatólogo será esencial para llegar al diagnóstico en dermatología equina.
La última imagen muestra una dermatitis eosinofílica leve multifocal en un caso de atopia equina.
Toma de muestras para hongos
o infecciones bacterianas
Cultivos bacterianos
Cuando se sospecha de infección bacteriana se
Cultivos de hongos
pueden recoger muestras de hisopos de la superfi­
Se deben de realizar cuando hay una historia de pér­
cie de la lesión, pero raramente nos van a indicar el
dida de pelo en alopecias multifocales o costras y
causante de la enfermedad, pues es muy común el
hay más de un animal afectado.
aislamiento de gérmenes saprofitos. Lo mejor es ha­
cer aspirados de las pústulas con una aguja de 25G
Técnica
Limpiar la zona con alcohol y dejar secar al aire.
ratorio. Se pueden exprimir los exudados frescos y
Recoger pelos de las zonas periféricas de pápulas
recogerlos con un hisopo. Si se presentan costras,
o costras.
se pueden tomar muestras colocando el hisopo justo
En caso de lesiones extensas, utilizar cepillos, pei­
debajo de la costra.
nes que sean estériles.
En los procesos de tipo alérgico, como la atopia o
Envolver estas muestras en un sobre de papel, o
hipersensibilidad a Culicoides se puede desarrollar un
recipientes herméticos al aire.
test de ¡ntradermorreacción para identificar el agente
Los pelos y costras se pueden llevar a un medio
causal.
DTM para dermatofitos y dejar la muestra a tem­
peratura ambiente y en oscuridad durante 7 días.
Los hongos patógenos producen una variación
del color del medio de cultivo, pasando de color
ámbar a color rojo. Los hongos saprofitos tarda­
rán 10 o más días en virar el medio.
Se recomienda llevar las muestras a un laboratorio
y cultivarlas en medio Saboreaud.
4
y remitir el contenido dentro de un hisopo a un labo­
Test intradérmico
Inyectar intradérmicamente 0,05 mi de la suspen­
Al realizar esta prueba, hay que asegurarse de que
sión del alérgeno.
el caballo no ha sido tratado con antihistamínicos o
Inyectar intradérmicamente un control positivo
corticoides al menos 15-30 días antes del ensayo.
(histamína) y otro negativo (suero fisiológico).
Realizar la lectura a los 20 minutos, 1 hora y, si es
Técnica
Depilar y limpiar un área suficientemente amplia de
posible, a las 4 horas.
La reacción se considera positiva si entre los 20
la espalda del caballo para realizar el test.
y 60 minutos el diámetro del habón en el punto de
Marcar los lugares de inyección con un rotulador,
inoculación es de al menos 15 mm.
separados entre ellos 3 cm.
Situaciones en que empeora el prurito
Patrones clínicos de las enfermedades
de la piel de los caballos
Hipersensibilidad a la picadura de insectos
Meses de verano
Trombiculidiasis____________________
Enfermedades pruríticas
__________________ Dermatitis atópica a pólenes__________
Dermatosis alopécicas
Atopia a alérgenos de interior__________
Dermatosis nodulares
Pediculosis_______________________
Dermatosis escamosas costrosas
Sarna corióptica
Cambios de pigmentación
Meses de invierno
|
Distribución de las lesiones de la piel en los caballos y su causa más probable
Atopia
Hipersensibilidad a la picadura de insectos
Trombiculidiasis
Cabeza
Hipersensibilidad a los ácaros de la paja
Intolerancia alimentaria
Alopecia areata
Dermatofitosis
Atopia
Hipersensibilidad a la picadura de insectos
Orejas
Trombiculidiasis
Sarna psoróptica
Sarcoides
Hipersensibilidad a la picadura de insectos
Atopia
Intolerancia alimentaria
Cuello
Hipersensibilidad a tos ácaros de la paja
Pediculosis
Sama psoróptica
Oncocercosis
Hipersensibilidad a la picadura de insectos
Pediculosis
Dorso
Atopia
Intolerancia alimentaria
Psoroptes
Hipersensibilidad a la picadura insectos
Atopia
Dermatitis por Malassezia
Vientre, ingles y periné
Dermatitis por contacto
Intolerancia alimentaria
Melanomas
Carcinoma de células escamosas
Oncocercosis
Hipersensibilidad a la picadura de insectos
Sarna corióptica
Extremidades
Trombiculidiasis
Dermatitis por contacto
Dermatofitosis
Dermatofitosis
Ficha dermatológica
Anamnesis e historia clínica
Fecha
__________ Nombre del propietario
Teléfono
Dirección
Sexo
Nombre del caballo
Raza
Castrado o entero
Capa
Aptitud_________________ Nivel de actividad_____________
Rutina diaria_______________________________________
Medio ambiente:
a) interior_________________________________________
b) exterior_________________________________________
Tipo de alimentación_________________________________
Esquema de desparasitación/vacunación, producto y frecuencia
¿Motivo de consulta?
¿Cuándo comenzó el problema?
¿En qué parte del cuerpo empezó?
¿Cuál era el aspecto inicial de la lesión?_____
¿Se ha extendido o ha cambiado de aspecto?
¿El problema es continuo o intermitente?
¿Es estacional y cuándo se produce?
¿Se rasca?______________ ¿Dónde?
¿Hay más caballos afectados?
¿Tiene contacto con otros animales domésticos, mascotas o silvestres?
¿Hay alguna persona afectada con problemas de piel?
¿Son personas en contacto con el caballo?_____________
¿Utilizan algún tipo de control de insectos? ¿Qué productos?
Tratamientos aplicados hasta el momento______________
Resultado del tratamiento
Otras enfermedades y tratamiento que haya recibido
Edad
Rodear con un círculo las lesiones que presente el caballo
1. Lesiones cutáneas
Mácula
Verruga
Púrpura
Pápula
Nodulo
Placa
Tumor
Pústula
Vesícula
Bulla
Quiste
Absceso
Hlperhidrosis
Habón
Erosión
Eritema
Hipotricosis
Alopecia
Costra
Úlcera
Fisura
Escara
Escoriación
Collarete
Hiperpigmentación
Hipopigmentación
Escamas
Necrosis
Hiperqueratosis
Callo
Comedón
Cicatriz
Normal
Grueso
Fino
Frágil
Hipotónico
Hiperextensible
Incremento de laxitud
Liquenificación
2. Cambios cutáneos
3. Cambios en la capa
Hipotricosis
Alopecia
Hipertricosis
Leucotriquia
Melanotriquia
Otro color
Fácil depilación
Pelo quebradizo
Pelo desprendido
Capa seca
Capa oleosa
Otra
4. Forma de las lesiones
Folicular
Agrupada
Lineal
Ligero
Moderado
Grave
Ausente
Ligero
Moderado
Grave
Lesional
No lesional
Ácaros
Liendres
Anular
Otra
5. Dolor cutáneo
Ausente
6. Prurito
7. Parásitos
Piojos
Otros
8. Otros hallazgos
Orejas__________
Cavidad oral
Uniones mucocutáneas
Bandas coronarias
Cascos
9. Recogida de muestras
Raspados____________
Cinta adhesiva_________
Aspirados_____________
Medio DTM___________
Biopsia_______________
Hisopos______________
10. Diagnóstico diferencial
Garrapatas
Exploración del sistema linfático
sivo de los animales y lucha frente a la invasión de
Punción de los nodulos
linfáticos
microorganismos. Está formado por vasos y nodulos
Se realiza de un modo similar a lo indicado en la as­
El sistema linfático forma parte del sistema defen­
linfáticos. Los vasos linfáticos no se pueden explo­
piración por aguja fina. Las muestras obtenidas se
rar a no ser que se produzca una inflamación muy
utilizan para el estudio citológico y microbiológico del
marcada (linfangitis) o dilatación (linfangiectasia). Los
mismo.
nodulos linfáticos se pueden explorar mediante dos
procedimientos:
• Incruento: por inspección y palpación. Se valora
el tamaño, consistencia, sensibilidad, temperatura
y movilidad. En condiciones normales se despla­
zan con facilidad.
En las inflamaciones agudas los nodulos lin­
fáticos son menos movibles, aumentan de
tamaño y de consistencia así como de tem­
peratura y dolor. Si se forma un absceso son
grandes, blandos, fluctuantes y, en ocasiones,
su contenido puede fistulizar al exterior.
Si la inflamación es crónica presentan tamaño
y consistencia aumentada.
En los procesos tumorales están aumentados
de tamaño y son muy duros.
° Cruento: punción de los nodulos linfáticos.
Inspección y palpación
En los caballos se pueden explorar los siguientes
nodulos:
• Submandibulares: recogen la linfa de la cavidad
nasal, labios, mejillas, lengua, suelo de la boca y
____
mandíbula inferior. Se sitúan debajo de la piel ha­
cia la parte caudal del espacio intermandibular.
Tienen el tamaño de un dedo meñique. En las pa­
peras equinas se encuentran considerablemente
aumentados.
° Retrofaríngeos: recogen la linfa de las fosas na­
sales, piel de los senos, faringe, laringe, base de
la lengua y paladar blando y duro. Tienen forma
ovalada. Se localizan en la superficie dorsolateral
de la faringe, debajo de las bolsas guturales.
° Preescapulares: tienen forma alargada y se en­
cuentran delante de la escápula. Recogen la linfa
de las extremidades anteriores. En ocasiones son
difíciles de palpar.
° Precrurales: se encuentran por encima de la ro­
dilla, delante del músculo tensor de la fascia lata.
Recogen la linfa de la musculatura abdominal y
parte de la extremidad posterior.
Orejas y ojos
Exploración de orejas y ojos
Exploración de las orejas
Exploración de los ojos
4
Exploración de las orejas
La exploración clínica de las orejas en los équidos no
otra patología sistémica, no va a reaccionar como
presenta gran importancia desde el punto de vista
si estuviera sano. El animal no va a mover las orejas
de patologías propias del oído ya que las otitis en
con normalidad, ralentizando el movimiento o incluso
esta especie no son muy frecuentes. Sin embargo,
haciendo caso omiso del sonido provocado.
la observación de las orejas en los caballos son unos
El movimiento de las orejas es un claro indica­
indicadores claros del estado anímico del animal, de
dor del estado anímico del animal, indicándonos si
sus intenciones, o incluso si presentan algún dolor o
está tranquilo, inquieto, nervioso, agresivo, confiado,
enfermedad sistémica.
desconfiado, puesto que cuando el animal no se en­
La inspección de las orejas debe hacerse de ma­
nera dinámica y estática.
cuentra con una situación cómoda pone las orejas
totalmente hacia atrás. En este momento ya se sabe
que el animal no está tranquilo y que incluso puede
Inspección dinámica
reaccionar de una manera violenta.
Se realiza provocando un ruido sin que el animal nos
vea y de esta manera sabremos acerca de su capa­
Inspección estática
cidad auditiva, ya que, un caballo normal va a mover
Nos va a permitir ver el estado del pabellón auricu­
una o las dos orejas hacia el foco del sonido.
lar externo e interno y poder comprobar la presen­
cia de una otitis, heridas, infecciones por hongos o
Situaciones
cualquier otra patología. Debido a la configuración
Si un caballo con una capacidad auditiva correcta
del oído interno, es muy difícil realizar una exploración
está con un dolor cólico, fiebre, apatía o cualquier
con un otoscopio en caballos.
52
La posición de las orejas reflejan el estado anímico del animal. Cuando el caballo las echa hacia atrás puede indicar el inicio de un ataque.
Inspección
La exploración de las orejas comienza con una inspección para aseguramos de su simetría, para continuar con inspección de la cara interna auricular.
Realización de la prueba del chasquido.
Alteraciones
o Otitis: en estos casos el pabellón auricular estará
Infección fúngica de un pabellón auricular.
caliente, con una sensación dolorosa y positiva
a la “ Prueba del chasquido” si la cantidad de
cerumen es considerable. La prueba consiste en
° Micosis: la infección fúngica es la más frecuente
estirar de la oreja, presionar el cartílago auricular
y en muchas ocasiones suele ser un problema
con fuerza hasta que se toquen los dos lados y
crónico y muy molesto para los caballos puesto
soltar la presión de golpe. Notaremos cómo se
que la propia infección atrae a mosquitos que
pegan entre sí las paredes del conducto auditivo
rodean continuamente el pabellón auricular en la
y al despegarse se escuchara un “chasquido".
temporada de primavera y verano.
® Traumatismos: debido a su posición, en la parte
° Caída de las orejas: puede ser debido a una
más alta del cuerpo, y por sus movimientos brus­
mayor cantidad de piel y a una mayor distancia
cos, son muy típicos los traumatismos en las
entre los dos pabellones auriculares o bien a una
orejas.
parálisis del nervio facial que suele ir acompa­
ñada de caída del labio del lado afectado y de
ptosis del párpado superior.
Sección casi por completo del cartílago auricular debido a un traumatismo.
Exploración de los ojos
Introducción
En los caballos los ojos adquieren una gran impor­
tancia desde el punto de vista de la exploración clí­
nica, de manera que para realizar un profundo exa­
men es necesario conocer perfectamente todas sus
estructuras y anejos.
De manera rutinaria siempre se deben examinar los
ojos ya que debido a su posición (totalmente lateral)
están predispuestos a cualquier tipo de traumatismo.
No todos los caballos presentan ojos de color marrón.
Este ejemplar exhibe el ojo con el iris azulado.
Hay que tener en cuenta que los ojos reflejan otro tipo
de enfermedades sistémicas, como pueden ser, la co­
loración amarillenta de la conjuntiva ocular en las en­
fermedades del hígado o anemias hemolíticas.
Para realizar una completa exploración del ojo y de
sus anejos, es necesario seguir un protocolo de actua­
ción determinado y ordenado, anotando todos los pa­
rámetros exactos en un diagrama impreso previamente.
Los componentes del ojo y anejos son:
• Párpados (incluyendo el tercer parpado)
• Aparato lacrimal
• Órbita ocular (córnea, cámara anterior y posterior,
nervio óptico)
• Conjuntiva
• Músculos
Por la posición de los ojos de los caballos, la visión que tienen
es principalmente lateral. Esta posición hace que estén muy
predispuestos a sufrir traumatismos cuando se sacuden la
cabeza para eliminar las moscas.
í>
1 Cuerpo ciliar
Glándula tarsal
Ángulo iridocorneal
Pestaña
Fibras zonulares
Córnea
Cámara anterior
Pupila
Cristalino
10 Iris
11 Cartílago y glándula
de la membrana nictitante
12 Canal de Cloquet
13 Nervio óptico
14 Esclerótida
15 Coroides
16 Retina
17 Tapetum
18 Vitreo
19 Conjuntiva
20 Glándula lagrimal
2
3
4
5
6
7
8
9
Material
• Fluoresceína
El material necesario para llevar a cabo una explora­
• Suero fisiológico
ción rutinaria:
• Sedantes
• Fuente de luz normal
• Anestésicos locales y tópicos (lidocaína, mepiva-
• Lupa
caína, bupivacaína)
• Lámpara de Wood
• Agujas y jeringas
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Matenal básico para empezar la exploración del ojo en los caballos.
Quemosis: edema paipebral, puede tener un origen trau­
mático, infeccioso o incluso alérgico.
Entropión: inversión de los párpados, generalmente el In­
• Conjuntivitis: inflamación de las conjuntivas, originadas por
diversas causas.
• Queratitis: inflamación de córnea, se caracteriza por
ferior, hacia la superficie del ojo. La secuela más frecuente
una pérdida de la transparencia y torna a un color azul-
que puede llegar a producir es una queratitis, debido al
grisáceo.
roce con la córnea.
Blefaritis: inflamación de los párpados, por lo común de­
bido a una conjuntivitis.
Blefaroespasmo: contracción espasmódica de los párpa­
dos por dolor, generalmente cuando hay un cuerpo extraño.
• Uveítis: inflamación de la úvea anterior, compuesta por el
iris y el cuerpo ciliar. Su cronicidad puede originar secuelas
como sinequias.
• Exoftalmia: protrusión del globo ocular. Un caso muy claro
y llamativo es cuando un caballo presenta tétanos.
Epífora: derrame continuo de lágrimas, presente cuando
• Enoftalmia: hundimiento del globo ocular. Un signo claro
se obstruye el conducto nasolacrimal y la lágrima drena por
de enoftalmia es en enfermedades graves o en casos de
el exterior, llegando a provocar incluso lesiones en la piel
como dermatitis.
deshidratación extrema.
• Anoftalmia: ausencia del globo ocular.
1. Entropión. Como consecuencia del roce de las pestañas, se ha
producido una conjuntivitis purulenta.
2. Blefaritis.
3. Epífora en una yegua como consecuencia de una úlcera corneal.
4 y 5. Conjuntivitis: inflamación de las conjuntivas.
6. Queratitis en el ojo de un caballo. Se caracteriza por el aspecto gris
azulado de la córnea.
7. En la uveítis se observa una pérdida de transparencia de la úvea.
Exploración
También se puede usar una jeringa de insulina e
Para proceder a una exploración del ojo, el caballo
instilar el anestésico con el ojo abierto sin ser forzado.
debe estar lo más quieto posible, para ello haremos
uso de medidas de contención o directamente pro­
Bloqueos regionales
cederemos a la sedación del animal con anestésicos
Los nervios que se suelen bloquear para realizar
locales e incluso bloqueos regionales que detallare­
una completa exploración ocular son el auriculopal-
mos a continuación.
pebral, el supraorbitario, el lacrimal, el cigomático y
el infratroclear.
Sedación
Los protocolos más frecuentes de sedación incluyen
Bloqueo del nervio auriculopalpebral
los siguientes fármacos: hidrocloruro de detomidina,
Este nervio motor es una rama del nervio facial que
xilacina y romifidina por vía endovenosa lenta. Adi­
se puede bloquear por sitios diferentes. Inerva el
cionalmente, si el caballo o la exploración del ojo re­
músculo orbicular, que es muy fuerte en los caballos.
quiere de alguna técnica un poco más agresiva se
En aquellas exploraciones donde el caballo presenta
pueden combinar estos fármacos con un analgésico
blefaroespasmo es necesario bloquearlo para produ­
como el butorfanol también por vía endovenosa.
cir la aquinesia del mismo y poder trabajar sin difi­
cultades. Es importante conocer que no se pierde la
Anestesia tópica
sensibilidad del nen/io trigémino.
En determinadas ocasiones se necesita realizar una
Con una aguja de 22G se introduce en el tejido
anestesia tópica de la conjuntiva y de la córnea para
subcutáneo un volumen de 2-4 mi de anestésico
realizar la exploración sin ningún problema. Para ello
local, lidocaína 2%, mepivacaína o incluso bupi-
podemos evertir el párpado inferior de tal manera
vacaína, en función del tiempo de la exploración
que colocamos el líquido anestésico en esa zona y
que vayamos a realizar, siendo la mepivacaína la
que posteriormente, al volver el párpado y el ojo a su
que presenta mayor duración con 120 minutos de
posición normal, logremos su mayor difusión.
anestesia.
Esquema del bloqueo anestésico de los nervios oculares
Bloqueo del nen/io
3
Bloqueo del nervio
auriculopalpebral
Lugares donde se inocula el anestésico local
para obtener el bloqueo regional de los nervios oculares
Bloqueo del nervio auriculopalpebral.
Bloqueo del nervio supraorbitario.
Bloqueo del nervio lacrimal.
Bloqueo del nervio cigomático.
bral se encuentra en la depresión caudal sobre la
Exploración con luz
Examen visual
rama vertical de la mandíbula, aproximadamente 2,5
La primera parte de la exploración del ojo es compro­
cm por dejado de su punto más alto.
bar la simetría de ambos ojos y de sus estructuras
El punto de inoculación del nervio auriculopalpe-
La rama palpebral del nervio se bloquea inmedia­
anejas, párpados, aparato lacrimal, órbita y zonas
tamente medial y ligeramente rostral al punto más
periorbitarias. A continuación se comprueba la inte­
alto del arco cigomático, aproximadamente a mitad
gridad de la función palpebral, signos de descarga
entre el ojo y la oreja.
anormales, posibles traumatismos e inflamaciones,
Bloqueo del nervio sup ra orbita rio
supraorbitaria, puesto que cualquier tipo de inflama­
Este nervio es una rama del nervio trigémino y su blo­
ción a este nivel podría suponer una lesión de la zona
queo proporciona una desensibilización del párpado
retrobulbar o retroorbital.
palpación del arco cigomático, hueso orbital y fosa
superior. Se inyecta 1-2 mi de anestesia en el fora­
Debemos comprobar cualquier signo de dolor ocu­
men supraorbitario, a una profundidad de 1 cm, en la
lar (fotofobia o blefaroespasmo), conjuntivitis (edema y
cara dorsal de la órbita.
exudados), exoftalmos y enoftalmos del globo ocular.
Párpados
Se deben examinar las superficies de los párpados,
tanto superiores como inferiores, con una maniobra
determinada, presionando con el dedo índice sobre
el globo ocular y con el dedo pulgar evidenciando el
párpado inferior. De esta manera podemos examinar
la integridad del tercer párpado, así como la presen­
cia de algún cuerpo extraño o incluso un carcinoma
de células escamosas, ayudándonos de unas pinzas
atraumáticas previa instilación de anestésico local
para su manipulación.
Inflamación
Inflamación difusa de ambos párpados.
Técnica a aplicar para la exteriorización del tercer párpado.
Tumores
Quistes
Proceso de extracción de un quiste sebáceo.
Traumatismos
Traumatismos frecuentes en los párpados. Se acompañan frecuentemente de enrojecimiento de la conjuntiva, epífora y
edema de párpados.
Infección fúngica
Proceso micóticos próximos al ojo.
Región conjuntiva!
Comprende la conjuntiva palpebral y el tercer pár­
pado. En ella se puede observar cualquier patología
de manera aislada unilateralmente, o bien de manera
bilateral en alguna enfermedad sistémica. Para ex­
plorarla metemos el dedo índice entre la pared dor­
sal del globo ocular y el arco cigomático y al mismo
tiempo desplazamos con el pulgar el párpado inferior
hacia abajo.
Alteraciones:
• Conjuntivitis: conjuntiva enrojecida y con edema.
Producida por causas físicas, químicas o micro-
Queratoconjuntivitis. Se aprecia el orificio de una pequeña
úlcera.
biológicas. Muchas veces viene acompañada de
alteración de la córnea por lo que se produce una
queratoconjuntivitis.
• Ictericia: coloración amarillenta de las conjuntivas,
aparece en enfermedades del hígado o crisis hemolíticas.
• Pálida: la conjuntiva aparece blanquecina, debido
a procesos anémicos o isquemias.
• Cianosis: coloración azulada que indica una si­
tuación de hipoxemia como la que se encuentra
en enfermedades con grave compromiso respira­
torio, problemas cardiacos y congénitos.
Mucosas ictéricas debido a un problema hepático en un potro.
Exploración de las conjuntivas. Con el dedo índice y pulgar se separan los dos párpados para dejar visibles las conjuntivas.
Aparato lacrimal
Se tiene que comprobar la correcta formación y dre­
localizada y cursa con conjuntivitis y blefaroes-
naje de la lágrima a través de los orificios superior e
pasmo. Para desobstruir este conducto se debe
inferior así como en el orificio nasal, observando en
drenar con suero salino, bien desde el orificio nasal
los ollares una zona húmeda que determina el buen
o desde el orificio del globo ocular, siendo más fre­
funcionamiento. Para ello vamos a utilizar el Test de
cuente y sencillo realizarlo desde el primero.
Schirmer, el cual va a determinar el grado de secre­
ción lacrimal del animal.
Una patología muy frecuente es la obstrucción
del conducto nasolacrimal que genera una infección
Alteraciones:
•
Infecciones
° Traumatismos
Infecciones
La obturación del conducto nasolacrimal le ha provocado una conjuntivitis
purulenta a este caballo y el drenaje de pus por los ollares.
Obstrucción del conducto nasolacrimal con una espiguilla
a su salida por los ollares.
Reflejos sensoriales
La capacidad visual que tienen los caballos es com­
plicada de definir y de graduar, excepto en aquellos
individuos en los que la visión esté totalmente anu­
lada. La respuesta pupilar a la luz de diferentes estí­
mulos va a variar en función de la presencia o ausen­
cia de luz.
Reflejo de amenaza
Una respuesta de amenaza positiva (mover la cabeza,
cerrar los parpados, huir...) implica un funcionamiento
normal de las vías nerviosas periféricas y centrales y
por lo tanto un cierto grado de visión. Para realizar
esta prueba es importante hacerlo correctamente para
evitar que el flujo de aire al mover la mano entre en
contacto con la córnea o directamente con los párpa­
dos. Asimismo, cualquier sonido que el animal asocie
como extraño presentará una respuesta positiva y se­
guramente nos distorsionará nuestro estudio.
Traumatismos próximos al globo ocular.
Realización del reflejo de amenaza.
Reflejo pupilar
Exploración en oscuridad
La presencia de respuesta a la luz no significa nece­
La exploración del ojo a oscuras implica que todas las
sariamente que el caballo tenga una visión correcta,
posibles anomalías en presencia de luz se van a ver evi­
puesto que en enfermedades del SNC que producen
denciadas mucho mejor puesto que no hay otros refle­
ceguera puede haber una respuesta positiva al estí­
jos que nos distraigan. Para ello vamos a necesitar:
mulo de la luz.
• Linterna de bolsillo
Para hacer esta prueba conviene estar bajo un am­
• Una lente de aumento
biente tranquilo y con poca luminosidad para que en
• Oftalmoscopio directo
el momento de incidir con el haz de luz sobre el ojo
• Oftalmoscopio indirecto
podamos observar claramente los cambios pupilares.
Linterna de bolsillo
Es el método más sencillo y el más usado por los ve­
Esquema nervioso del funcionamiento ocular
terinarios clínicos equinos. Se pueden observar:
Córnea
Es la parte más anterior del globo ocular y es tam­
bién la más propensa a recibir golpes. Es importante
recordar que esta zona no está vascularizada.
Debemos identificar opacidades, cuerpos extra­
ños, úlceras, heridas punzantes, infecciones localiza­
das, vascularización normal o anormal (neovascularización), para ello también se puede hacer uso de una
lente de aumento.
Alteraciones frecuentes
• Queratitis: inflamación de la córnea. Se pierde la
transparencia de la córnea y ésta adquiere un co­
lor azulado-grisáceo. Las etiologías son muy varia­
das e incluyen causas biológicas (virus, bacterias,
hongos), traumatismos, cuerpos extraños, etc.
La neovascularización en este ojo se aprecia en la parte
inferior del globo ocular.
Heridas punzantes
Pérdida del globo ocular por traumatismo.
Test de fiuoresceína
Test de fiuoresceína para comprobar la presencia de una úlcera corneal.
• Úlcera corneal: es una pérdida de sustancia a nivel
Heridas punzantes: pueden provocar pérdida del
de la córnea. Las causas suelen ser traumáticas por
globo ocular.
cuerpos extraños, distiquias, entropión, etc.
Neovascularización: es una secuela de muchas
• Cuerpo extraño: pueden provocar úlceras cor­
neales.
enfermedades inflamatorias del segmento anterior
del ojo como la queratoconjuntivitis.
Segm ento ante rio r
Aquí se incluyen las estructuras internas hasta el
• Glaucoma: se produce por un fuerte aumento
de la presión intraocular que conlleva un endu­
recimiento del globo del ojo, atrofia de la retina y
cristalino.
Observando desde diferentes ángulos, podemos
ceguera.
ver la existencia de quistes, sinequias, neoplasias,
uveítis y cuerpos extraños en el iris, cristalino, humor
acuoso y la cámara anterior.
Glaucoma
Para observar bien el cristalino es necesario em­
plear un midriático como la tropicamida tópica al 1%
para producir la dilatación de la pupila, que se consi­
gue a los 20 minutos.
Alteraciones más frecuentes
• Uveítis: es la inflamación de la úvea que se acom­
paña de fotofobia, blefarospasmo, epífora y en­
grasamiento del iris.
• Depósitos de melanina (granos de hollín): nor­
mal en los caballos excepto si son demasiado
abundantes o grandes, puesto que pueden difi­
cultar la visión.
Granos de hollín
OñaBmoscopio directo
Utiliza una fuente luminosa dirigida al interior del ojo
mediante un espejo ajustable, con lo cual la luz refle­
jada se reúne mediante una lente de condensación
(por lo general de una potencia de +20 o +30 diop­
trías) para formar una imagen real invertida de la retina.
Tiene las ventajas de proporcionar una ilumina­
ción de gran intensidad y un amplio campo visual; se
puede valorar el fondo de ojo aún a través de medios
ópticos turbios, puesto que las opacidades cornea­
les de la cámara anterior, del cuerpo vitreo y del cris­
talino se observan contra la reflexión del tapete.
Se puede realizar una oftalmoscopia monocular
indirecta o una oftalmoscopia binocular indirecta.
Ésta posee una fuente de luz integrada y más po­
tente; permite obtener una visión estereoscópica e
imágenes separadas para cada ojo. Además permite
al veterinario disponer de una mano libre. Sus des­
ventajas son que la imagen está invertida y que su
manejo requiere cierta habilidad.
OftaBmiQscopio indirecto
El oftalmoscopio es un instrumento con varias lentes
y espejos que ilumina el interior del ojo a través de
la pupila y el cristalino, permitiendo el examen de la
retina y del fondo de ojo.
Existen muchas formas, siendo la más común­
mente utilizada la del oftalmoscopio manual diseñado
para la visión amplificada directa, con una fuente de
luz proyectada por medio de un espejo o un prisma
al fondo del ojo del paciente, que se refleja en la re­
tina y que coincide con la línea de visión del observa­
dor a través de la abertura.
Su principal aplicación es la observación del fondo
Realización del examen con oftalmoscopio directo.
de ojo, aunque también pueden examinarse el resto
de estructuras oculares, desde los párpados y el
segmento anterior del ojo hasta los medios infraocu­
lares y la retina.
Oftalmoscopio y tonómetro utilizados
para oftalmología equina.
Pruebas diagnósticas
Hisopo
Para descubrir la causa de una contaminación bac­
teriana o fúngica, se debe tomar una muestra antes
de comenzar con cualquier tratamiento tópico que
pueda interferir en los resultados. Si el animal no co­
labora se puede realizar la anestesia del nen/io auri­
culopalpebral. Con un hisopo y medio de transporte
o suero salino, se toma la muestra generalmente del
saco conjuntival inferior, lo más cercano a la comisura
medial, párpados y córnea. Hay que asegurarse de
tomar la muestra donde realmente existe la infección
para evitar una diseminación innecesaria.
Toma de muestra con hisopo para determinar el agente
causal de una conjuntivitis bacteriana.
Raspado-frotis
Para realizar un raspado se necesita anestesia tópica,
insensibilización del nervio auriculopalpebral o incluso
una sedación ligera del animal para evitar cualquier
posible complicación en el momento de la toma de
muestras. No es una técnica rutinaria pero se puede
emplear para el examen de lesiones fúngicas y carci­
noma de células escamosas. Se realiza con un bisturí
o un portaobjetos de inmersión respectivamente.
Material:
• Hisopo comercial
• Medio de trasporte suero salino
• Portas
• Bisturí
• Anestesia local tópica
• Medio de cultivo
• Fijador
Raspado-frotis
Tinciones oftálmicas
Otro uso que se le puede dar a esta solución es el
La fiuoresceína es una solución de color naranja,
de comprobar el correcto funcionamiento de drenaje
que en condiciones de alcalinidad vira a verde. Es
del canal nasolagrimal, puesto que cuando se coloca
una solución que no penetra en la córnea intacta o
la solución en el ojo debe aparecer pigmentada de
en la conjuntiva y que la empleamos como indicador
verde la zona de los ollares.
de la presencia de úlceras corneales puesto que en
esos casos el estroma hidrófilo absorbe el pigmento
Dacriocistorrinografía
y se delimita la zona lesionada perfectamente, que
Es una radiografía de contraste del conducto nasola­
se puede observar empleando una fuente de luz
grimal para determinar la magnitud de la lesión o ano­
levemente azulada. Consiste en poner una gota de
malía del conducto o incluso confirmar la necesidad
fiuoresceína y a continuación lavar el ojo con una so­
de una cirugía. Se inyectan 5 mi de solución de con­
lución salina para eliminar el pigmento sobrante.
traste como sulfato de bario o un contraste a base de
yodo por el punto lacrimal proximal o distal y a conti­
nuación se toman radiografías laterales y oblicuas.
Tinciones oftálmicas
Secuencia de imágenes
para la realización del test
de fiuoresceína.
Test de Schirmer
El método más empleado es la tonom etría
Consiste en comprobar el funcionamiento de la pro­
indirecta (Ton-O-Pen, el más conocido y portátil)
ducción de lágrima mediante una tira de papel estan­
que nos da la tensión infraocular midiendo la tensión
darizada puesta en el saco conjuntival y ver el reco­
desde la córnea.
rrido de papel mojado producido por la lágrima.
Valores normales
Caballos normales
15 mm en 30 s
20-30 mm en 60 s
Valores anormales
16-32 mm de Hg
< 16 mm de Hg: glaucoma
32 mm de Hg: uveítis aguda
Caballos con patología <10 mm en 60 s
Otra técnica empleada es la tonometría digital,
Un déficit de producción de lágrima podría corres­
ponder con una posible queratoconjuntivitis.
en la que se utiliza el dedo índice de nuestra mano,
realizando una ligera presión sobre el globo ocular,
tanto sobre el párpado superior como directamente
Tonometría
sobre la córnea, previa anestesia local. La prueba se
La presión infraocular es una técnica muy empleada
repite en el otro ojo para encontrar diferencias. No
tanto en humana como en pequeños animales, sin
obstante, se necesita tener mucha experiencia sobre
embargo su uso en caballos no es tan frecuente por
animales sanos para estimar de este modo la presión
la poca incidencia de glaucoma.
infraocular.
Test de Schirmer
Comprobación del
funcionamiento de la
producción de lágrima
mediante el test de
Schirmer.
Ecografía del globo ocular
Radiología
Esta técnica se emplea mucho y es bien tolerada ge­
La identificación de las estructuras anatómicas de la
neralmente por los caballos, aunque para la exactitud
cabeza del caballo no es una tarea sencilla, y para
del resultado y comodidad por parte del veterinario
ello se debe tener un conocimiento amplio de ana­
se puede proceder a su sedación y anestesia local
tomía y de las estructuras relacionadas directamente
cuando se realiza la ecografía directamente sobre la
o indirectamente con el globo ocular. Su empleo se
córnea. Es útil para determinar masas infraoculares,
limita a cuando hay alguna posible alteración de la
cuerpos extraños, lesiones retrobulbares y cataratas.
cavidad nasal, senos paranasales y del hueso orbital,
Aplicando gel sobre la piel y el transductor vamos
en los casos de traumatismos orbitarios o faciales,
a identificar diferentes estructuras:
exoftalmos o incluso en alteraciones del conducto
lacrimal.
Córnea
color negro
Cámara anterior
color negro
Cristalino
color negro
Tejidos
color blanco
Retina
color blanco
Coroides
color blanco
Esclerótica
color blanco
sinequias, tumores o desgarros de la base del iris y
Nervio óptico
color gris
cuerpo ciliar.
Gonioscopia
Permite el examen directo del ángulo iridocorneal,
el cual es una zona de drenaje del humor acuoso,
mediante una lente específica y una fuente de luz.
Se emplea para el estudio de la luxación del crista­
lino, presencia de cuerpos extraños, hemorragias,
Ecografía del globo ocular
Ecografía del globo ocular colocando el transductor sobre los
párpados o bien directamente sobre la córnea.
Otras técnicas
Son más específicas y se hacen a nivel hospitala­
rio para explorar el ojo en profundidad. Entre estas
destacar:
• Miomicroscopía: permite el examen de los ojos y
anexos mediante un microscopio asociado a una
fuente luminosa.
• Tomografía computerizada
• Resonancia magnética
• Electrorretinografía: es un registro gráfico de los
cambios en el potencial eléctrico cuando la retina
es estimulada por la luz.
Las afecciones del sistema respiratorio del caballo son
la segunda causa, después de las enfermedades mus-
• Introducir programas de vacunación para enfer­
medades específicas.
culoesqueléticas, causantes del bajo rendimiento en los
caballos. Originan también importantes pérdidas econó­
En la mayoría de los casos, las enfermedades infec­
micas, porque interrumpen los programas de entrena­
ciosas de las vías respiratorias en el caballo se pro­
miento debido a las lesiones pulmonares. Por lo tanto,
ducen por la suma de múltiples causas como:
la temprana detección de los signos clínicos y el trata­
• Inclemencias del tiempo atmosférico (vientos do­
miento de los problemas respiratorios son esenciales
minantes, frío).
para que los caballos vuelvan a su actividad deportiva.
• Estrés del destete o del transporte, predisponen
Esto se realizará llevando a cabo en el animal:
• La deficiente ventilación de los boxes favorece el
mucho a las enfermedades infecciosas.
• Diagnóstico clínico y de laboratorio.
incremento de gases tóxicos y de polvo que irrita
• Intentar predecir la aparición de enfermedades espe­
las vías aéreas.
cíficas, basándose en experiencias previas y la intro­
• Transmisión entre caballos de los agentes infec­
ducción de técnicas de administración que reduzcan
ciosos, especialmente virus de la influenza y her-
al mínimo el efecto de los factores de estrés.
pesvirus.
Anamnesis
• Edad y raza: hay que tener en cuenta los defec­
tos congénitos como atrofia de coanas, desvia­
ción del tabique nasal y neumonías por fíhodococcus equi en potros. Además, los potros de
• Programa de vacunación: frente a influenza y
herpesvirus.
• Programa de desparasitación:
* Parascaris equorum: por la migración de los
raza Árabe pueden presentar el síndrome de in-
parásitos en potros,
munodeficiencia combinada favorecedor de infec­
o Dyctiocaulus arnfieldi.
ciones pulmonares.
• Patologías previas: si ha habido infecciones por
• Medio ambiente: los animales deben alojarse en
Streptococcus pueden presentarse abscesos in­
boxes bien ventilados sin acumulación de gases,
ternos (papera bastarda), empiema de bolsas gu­
humedad o polvo.
turales, abscesos retrofaríngeos.
Valoración del estado general
Es necesario apreciar el estado mental del animal;
Se debe valorar la presentación de disnea, ollares
comprobar si está alerta, postrado, decaído, si no
dilatados y con mucosidades, actitudes ortopneicas
come..., situaciones que nos encontraremos en ani­
para favorecer la respiración o bien la cara con expre­
males con enfermedades graves.
sión de ansiedad.
Fosas nasales
Inspección
Exámen funcional
En primer lugar realizaremos una inspección externa
Permite valorar diversos parámetros como el aire es­
de cavidades nasales. Si con luz natural no es sufi­
pirado. Para el aire espirado debe valorarse:
ciente se puede ayudar con una linterna.
• Temperatura: aumenta en procesos febriles y
disminuye en hipotermia.
Los principales signos que podemos recoger al ob­
servar los ollares son:
• Desviaciones y estrechamiento por parálisis unila­
teral del nervio facial.
• Deformación de los supranasales: por tumores o
abscesos.
• Edemas pronunciados en el extremo de la nariz.
• Costras, excoriaciones: por rozamiento, rascado
del hocico en superficies duras.
• Volumen: disminución unilateral, cuerpo extraño
en la nariz, edema de mucosa; disminución bilate­
ral, afecciones en vías respiratorias profundas.
• Fuerza
• Olor: digestivo (debido a caries, olor a estómago),
respiratorio (gangrena).
• Ruidos nasales: por obstrucciones o la presencia
de moco.
• Flujo nasal: secreción nasal fisiológica: secreción
de mucosa nasal.
Palpación
• Ruidos
Externa, con los dedos para comprobar, sensibilidad
0 Ruidos ordinarios.
dolorosa por fracturas, hematomas, edemas, cam­
• Ruidos anormales: en el caso de hemiplejía
bios de temperatura, consistencia o crepitaciones
laríngea y patología pulmonar.
debido a fracturas internas.
Inspección de los ollares para buscar la presencia de sangre o cuerpos extraños.
Toma de muestras con un hisopo directamente de los ollares.
Valoración del moco en los ollares del caballo
Cantidad: abundante o escaso.
Examen microscópico:
• Células epiteliales, glóbulos rojos y fibras
Aparición: unilateral o bilateral.
elásticas: indica destrucción del parénquima
pulmonar.
Examen macroscópico:
• Fibrina y bacterias.
• Aspecto: seroso, seromucoso, purulento,
hemorrágico.
• Consistencia: más fluido (seroso), más difuso y
viscoso (purulento).
• Color: incoloro (fisiológico), amarillo-verdoso
(purulento), herrumbroso (presencia de
Alteraciones del flujo:
• Aumenta al bajar la cabeza: indica proceso
en senos o bolsas guturales.
• Aumenta al comprimir bolsas guturales o en
deglución: indica proceso en bolsas guturales.
hemoglobina como en casos de neumonía),
• Espumoso: indica edema de pulmón.
amarronado (gangrena).
• Hemorrágico: puede ser epistaxis (sangre en
• Olor: inodoro, pútrido, carioso.
gotas) o rinorragia (hemorragia nasal, la sangre
sale en chorro).
Senos paranasales
Tienen la función de aligerar el peso del cráneo, pues
Palpación
están huecos en su interior. Su importancia clínica ra­
Se hace con la punta de los dedos sobre la piel que
dica en que están recubiertos de una mucosa y que
recubre el seno para comprobar el desplazamiento
se puede infectar. En los équidos se exploran los senos
de la piel y la ausencia de una dermatitis. Después,
frontales y los senos maxilares. Estos últimos enferman
una más profunda con los nudillos para obtener da­
en muchas ocasiones debido a problemas dentales.
tos que nos informan sobre la sensibilidad (presen­
La exploración se realiza siempre que se observe
cia o no de dolor), temperatura y consistencia de las
flujo nasal, estenosis nasal (silbido nasal) y la presen­
paredes que, si son menores, nos pueden indicar la
cia de dolor y aumento de tamaño en los nodulos
existencia de una trepanación.
linfáticos.
Lugares de punción para
la trepanación de los senos
Palpación
Palpación del seno frontal primero con la punta de los dedos y en segundo
lugar con los nudillos para buscar puntos dolorosos.
Percusión
Se realiza de manera directa con la contera del martillo,
Obtendremos los siguientes sonidos:
o bien con los nudillos. En ocasiones es necesario ta­
• Timpánico: normal, suena como a caja hueca.
par ambos ojos al caballo y percutir de manera gradual
• Submate: por engrasamiento de la pared.
hasta que se acostumbre. La boca debe estar cerrada
• Mate: presencia de exudados.
para que ésta no actúe como caja de resonancia.
Percusión
Percusión del seno frontal con la contera del martillo para buscar alteraciones del sonido que pueden dar un sonido mate como la acumulación de
pus que se produjo en el seno de este caballo.
Exploración de laringe y tráquea
La laringe regula el paso de aire y la fonación, por lo
Palpación
que es la responsable de emitir los relinchos en el
caballo. Esta constituida por varios cartílagos unidos
por un aparato ligamentoso y muscular. Su inervación
se realiza por medio del nervio laríngeo craneal que
inerva la mucosa de la laringe (le da sensibilidad), y el
nervio laríngeo caudal que inerva la musculatura de la
laringe. Su parálisis origina la hemiplejía laríngea.
Palpación
Para palpar la laringe se levanta levemente la cabeza,
y se toca con ambas manos los lados de la laringe
para detectar deformaciones o presencia de cica­
trices por traqueotomías, sensibilidad o calor. Si se
comprime fuerte la laringe o los anillos traqueales es po­
sible provocar la tos en el caballo, siendo más fácil si
el animal padece un problema respiratorio. En las en­
fermedades respiratorias de las vías altas no hay que
Palpación de la laringe y tráquea con una mano. Oprimiendo fuertemente en estos sitios se puede provocar la tos.
olvidarse de la exploración de los ganglios regionales,
Palpación
ya que se suelen encontrar afectados en los casos
de empiemas de bolsas guturales o de paperas por
Streptococcus.
Auscultación de las vías
respiratorias altas
La auscultación de la traquea debe hacerse en una
zona tranquila, exenta de ruidos. Si no consegui­
mos oír nada utilizaremos una bolsa de respiración,
para aumentar la presión de C 02 y dar lugar a un
incremento en la frecuencia y en la profundidad de
la respiración. Debe valorarse, tanto en la inspiración
como en la espiración, la presencia de artefactos, in­
flamación de la mucosa traqueal o moco que puedan
obturar la luz traqueal.
Hay que empezar auscultando a nivel de la laringe
para ir después descendiendo a lo largo del cuello
siguiendo la referencia de los anillos traqueales hasta
llegar al último tercio, donde ya se pierde la traquea.
A la vez que realizamos esta auscultación, no
olvidaremos una auscultación cardiaca, ya que el
edema pulmonar y la intolerancia al ejercicio por
una enfermedad de origen cardiovascular pueden
cursar con síntomas muy similares a las patologías
respiratorias.
La hemiplejía laríngea es una de las patologías
más comunes de los caballos de deporte en las
que está implicada la laringe. Es la parálisis por cie­
La exploración de los nodulos linfáticos de la cabeza está siempre indicada en
las afecciones de las vías respiratorias altas.
rre incompleto de uno o los dos cartílagos aritenoides lo que origina un ruido agudo muy ostensible
cuando el caballo comienza su actividad deportiva.
Auscultación
Conforme la gravedad del proceso es mayor, la dis­
minución de la luz provocará un mayor “ronquido
laríngeo” y por tanto una mayor gravedad del pro­
ceso por riesgo de shock cardiorrespiratorio. La
endoscopia permite cuantificar el grado de parálisis
de esos cartílagos y la probabilidad de éxito de una
cirugía correctora.
Auscultación de la tráquea. En esta posición se auscultan perfectamente los
sonidos respiratorios aun en caballos en reposo.
Métodos complementarios de exploración
de las vías respiratorias altas
Radiografías
• Radiografía del cráneo
• Radiografía de faringe y laringe
• Engrasamiento del paladar blando.
Septo nasal y cavidad nasal (roturas óseas,
• Epiglotis hipoplásica.
desviaciones tabique nasal).
• Fracturas del aparato hioideo.
Patologías de los senos paranasales (presencia
de fluidos en sinusitis, masas que invaden los
Trepanación de los senos
senos).
En caso de infecciones agudas permite la extracción
• Radiografía de bolsas guturales
° Distensión timpánica en potros con timpanismo
de bolsas guturales.
del contenido infectado, la limpieza y desinfección de
los senos nasales implicados y la valoración del resto
de las cavidades de los senos.
Presencia de líneas de fluidos en empiemas de
bolsas guturales.
Caballo mostrando una descarga nasal mucopurulenta.
Trepanación para acceder a los senos nasales.
Exploración de las bolsas guturales
Las bolsas guturales son una estructura caracterís­
tica de los équidos formadas por dos sacos muco­
sos constituidos como un divertículo ventral de la
trompa de Eustaquio en el oído interno con una co­
municación con la faringe a través del orificio faríngeo
del tubo auditivo. Se localizan por detrás de la man­
díbula, debajo de la base de la oreja, y por delante
del ala del atlas.
Las patologías más habituales que se presentan en
las bolsas guturales son:
• Empiema: formación de pus en su interior.
• Timpanismo: por defecto congénito, sobre todo
en potrancas. Las bolsas se llenan de aíre y dis­
tienden, provocando dolor.
• Micosis: por micelios de hongos del género Aspergillus que colonizan los divertículos de las bolsas.
Inspección
Lo primero es comprobar la ausencia de abultamientos. Lo mejor es colocarse delante de la cabeza
del caballo y observar la simetría de ambas bolsas
guturales.
Localización extema de la bolsa gutural.
Vista del interior de la bolsa gutural derecha
Palpación y percusión
Exploración de las bolsas guturales mediante palpación y
percusión dígito-digital.
Palpación
Con los dedos comprobamos que tienen una consis­
tencia blanda y elástica. En ocasiones, al comprimir
se produce un aumento del flujo nasal y en los ca­
sos de empiema la palpación denota una estructura
blanda y fluctuante.
Percusión
Es dígito-digital y se realiza de arriba abajo. Dos de­
dos de la mano izquierda, en el caso de que el clínico
sea diestro, se colocan encima de la bolsa gutural y
con los dedos de la mano derecha se percute enér­
gicamente para obtener el sonido. En condiciones
normales es submate tirando a timpánico, debido a
que se trata de una estructura hueca llena de aire.
Un sonido claramente timpánico se obtendrá en el
timpanismo de bolsas guturales, mientras que el so­
nido mate es típico de las colecciones de pus dentro
de la bolsa.
Exploración del tórax respiratorio
Inspección
La inspección busca descubrir cambios de forma
o de volumen. Se puede captar un aumento de ta­
maño del tórax a consecuencia de enfisema alveolar
crónico, un abuitamiento ventral debido a edemas o
hidrotórax, abultamientos por traumatismos de costi­
llas o bien que estén deformadas. Es posible encon­
trarse con modificaciones de la columna vertebral
como cifosis, lordosis o escoliosis.
En inspiración, el caballo desplaza hacia fuera la
caja torácica y la cavidad abdominal, mientras que
en la espiración ocurre todo lo contrario. La inspira­
ción es ligeramente más corta que la espiración. Los
équidos presentan una respiración costo-abdominal
Este caballo
presenta los
ollares dilatados
a consecuencia
de la disnea
que padece.
en la que intervienen a partes iguales la caja torácica
y la prensa abdominal. La respiración exclusivamente
costal aparece en los procesos dolorosos del abdo­
men, como es el caso de los cólicos o peritonitis.
Durante la inspección nos fijaremos si se presenta
disnea, que se define como una respiración dificul­
la hemiplejía laríngea o empiema de bolsas guturales.
tosa o laboriosa. La disnea inspiratoria se produce
Al contrario, la disnea espiratoria aparece cuando hay
cuando existen obstáculos a la entrada de aire de
dificultades para expulsar el aire de los pulmones. Es
los pulmones. El animal tiene los ollares dilatados y
el caso de la obstrucción recurrente de vías respira­
depresión del hueco del ijar. Aparece en casos como
torias (ORVR), que en los casos crónicos produce el
Representación esquemática de las vías respiratorias bajas
3
Bronquio
derecho e
izquierdo
Bronquio
principal
Bronquiolo
surco del huélfago, una línea a lo largo de las unio­
nes costocondrales, originado por la hipertrofia de los
músculos abdominales encargados de expulsar el
aire. En esta situación también es posible ver el con­
tragolpe del ijar.
Palpación
En primer lugar se hace una palpación superficial
del tórax para buscar puntos dolorosos, o calientes
debido a abscesos. La palpación profunda se hace
para comprobar el estado de las costillas. Para ello
se pasan los nudillos de una mano por la superficie
de las costillas para comprobar la presencia de frac­
turas o fisuras que provocarán dolor que dificulta la
Este caballo, con ORVR, recibe una sesión de sauna como tratamiento para
mejorar su función pulmonar.
respiración. Con la punta de los dedos se recorren
los espacios intercostales para localizar puntos de
dolor pleural en los principios de pleuritis.
Espacios intercostales en los
que cortan las líneas del pulmón
Línea
Si los caballos presentan problemas respiratorios es conveniente realizar las tareas
de limpieza sin los animales dentro del box.
Espacio
intercostal
Paravertebral, paralela al suelo, a
4 dedos de las apófisis espinosas
17
Ilíaca, paralela a la anterior
16
Isquiática, parte del ángulo
externo del isquion
14
Del encuentro, pasa por la
articulación escápulo-humoral
10
Del codo
6
Unos boxes
individuales y bien
ventilados reducen
considerablemente
la presentación de
ORVR.
Palpación
Palpación intercostal y encima de las costillas para buscar puntos calientes o dolorosos.
Percusión
tratamos de buscar los límites del pulmón. En los
Se hace con martillo y plesímetro. El plesímetro se
équidos, en el caso de la ORVR se encuentra atra­
coloca bien adherido a la superficie de la piel y se
sado. Con la percusión profunda se quieren localizar
dan golpes con el martillo continuados, de la misma
lesiones concretas dentro del área pulmonar como
intensidad. Ello se consigue golpeando con el martillo
puntos de neumonía o abscesos. En muchas oca­
con movimientos de muñeca, no levantando la mano
siones es posible originar la tos.
arriba y abajo. La percusión tiene que ser ordenada,
El sonido que se obtiene es claro con una reso­
siguiendo las líneas de los paradigmas o la de los
nancia que depende del grosor de la pared costal,
espacios intercostales. Con la percusión superficial
siendo más sordo en los animales obesos. Aparece
Percusión
En la percusión del tórax en el caballo, los golpes del martillo deben ser secos para apreciar bien la sonoridad.
Auscultación
La auscultación del pulmón ha de ser ordenada y sistemática, auscultando ambos pulmones. Conviene mirar el flanco para comprobar los
movimientos respiratorios.
un sonido hipersonoro en animales delgados o con
del lugar de derrame pleural e hipersonoro en la zona
enfisema pulmonar. Por el contrario, el sonido mate
que está por encima.
o submate se escucha en los casos de alteraciones
pulmonares como neumonías o derrames torácicos.
Auscultación
En estos casos se nota una línea mate por debajo
Supone un buen método para diagnosticar mu­
chas enfermedades pulmonares. La auscultación
ha de ser ordenada, simétrica y comparativa. Debe
hacerse en un lugar lo más silencioso posible. En
ocasiones es muy difícil escuchar los ruidos respi­
ratorios, por lo que para forzarles la respiración se
puede poner una bolsa de plástico tapando los
ollares durante el tiempo que aguante el animal. Al
retirar la bolsa el caballo realizará varias inspiracio­
nes profundas; es el momento que aprovecharemos
para auscultar. También se le puede hacer correr un
poco para aumentar la frecuencia respiratoria y por
tanto la profundidad de la respiración.
En cada punto de auscultación hay que estar
durante al menos cuatro o cinco respiraciones. Si el
caballo tiene mucho pelo, separar con los dedos el
mismo o mojarlo para evitar ruidos de roce.
El sonido respiratorio normal que se escucha se
conoce como "sonido respiratorio”, que se aprecia
mejor al inicio y mitad de la inspiración. En la espi­
ración son casi inaudibles, como en animales muy
gruesos o con respiración muy superficial. En la la­
Colocando una bolsa de plástico sobre los ollares durante un tiempo se consigue
una inspiración más profunda para poder auscultar.
ringe y tráquea se escuchan perfectamente como un
sonido áspero y tubular.
Toracocentesis
Modificaciones de
los sonidos normales
Se escuchan sonidos más fuertes sobre la tráquea
cuando se presenta un incremento de la ventilación
ocasionado por ejercicio, fiebre, cardiopatías, ane­
mia grave, etc. Las enfermedades obstructivas del
pulmón como bronconeumonías, enfisemas, ORVR,
también lo originan como consecuencia del estre­
chamiento de las vías aéreas en los pulmones. El
incremento de los sonidos durante la inspiración es
sugestivo de estrechamiento de las vías extratorácicas y si lo es en la espiración indica estrechamiento
en las vías intratorácicas.
La disminución de los sonidos normales del pul­
món se deben a enfisema y su ausencia se debe a
derrames pleurales.
Sonidos anormales del pulmón
• Silbidos: son estertores secos y se producen por
la vibración de las paredes de las vías aéreas o de
sustancias extrañas intraluminales. Si son espira­
torias indican lesiones intratorácicas, mientras que
si los escuchamos en la inspiración suelen origi­
narse en la laringe o la tráquea.
• Sonidos crepitantes: son sonidos discontinuos
de duración muy breve. Suelen distinguirse en
broconeumonías en cualquiera de las dos fases
de la respiración.
Toracocentesis
Es una técnica exploratoria que se realiza cuando se
Toracocentesis para drenar el líquido del hemotórax de un caballo.
sospecha la presencia de líquido en el tórax. También
tiene un fin terapéutico con el objeto de drenar los líqui­
dos encontrados en la cavidad pleural.
• Se realiza con el animal de pie, en el 5o espacio
de 14 G unido a una llave de tres vías. El líquido
intercostal izquierdo o 6o espacio intercostal de­
fluirá libremente; si no es así, utilizar una jeringa
recho, 10 cm dorsal al olecranon, justo craneal al
para aspirar.
borde de la costilla.
• El líquido normal tiene menos de 10.000 células/ml
• Desinfectar bien la zona, realizar una anestesia lo­
y menos de 2,5 g/dl de proteína. Las muestras
cal y desplazar la piel del tórax para que no coin­
se llevan al laboratorio para determinar los micro­
cida con el músculo intercostal. Utilizar un catéter
organismos causantes de una pleuritis.
Otras técnicas de diagnóstico
Radiografías
de la fosa nasal, si hay úlcera, mucosidades, presen­
Son útiles para detectar alteraciones de las vías res­
cia de hematoma etmoidal progresivo y de la con­
piratorias superiores, como masas producidas por
cha ventral. El principal hallazgo en la nasofaringe
abscesos, pólipos, etc. o acumulación de líquidos en
es la hiperplasia linfoide, común en potros de hasta
bolsas guturales o senos. La exploración radiográ­
dos años y que con la edad tiende a desaparecer. Al
fica del tórax del caballo adulto presenta dificultades
avanzar con el endoscopio se puede ver la entrada a
técnicas, no son específicas y quedan reservadas a
ambas bolsas guturales y la nasofaringe. Con mucha
potros recién nacidos.
precaución se puede entrar dentro de las bolsas gu­
turales para confirmar la presencia de exudados con
Ecografía
Es muy útil en la detección de efusiones pleurales,
Clasificación de
la hiperplasia linfoide
consolidación pulmonar o formación de abscesos o
cuando se aprecie dolor en la percusión pulmonar.
Características
También se puede utilizar la biopsia pulmonar ob­
Grado
teniendo tejido a través del 8o espacio intercostal, y a
1
Folículos pequeños, poca cantidad,
pared faríngea dorsal
lación escapulo-humeral.
II
Muchos folículos, pequeños, pared
lateral y dorsal de la faringe
Endoscopia de vías
respiratorias altas
III
Muchos folículos grandes que se
pueden extender al paladar blando
Es la más utilizada. Se comienza el examen por las
IV
Muchos folículos grandes,
edematosos que cubren toda la
faringe, epíglotis y paladar blando
8 cm por encima de una línea horizontal de la articu­
fosas nasales introduciendo el endoscopio por el
meato ventral para observar el estado de la mucosa
Introducción de la sonda del endoscopio. Es necesario sujetar bien al animal para evitar en la medida de lo posible la sedación
con medicamentos.
sangre consecuencia de micosis o bien de pus por
empiema de las bolsas. Dentro de las bolsas, tener
precaución de no dañar las arterias carótida interna y
externa y la arteria maxilar externa. De las estructuras
de la laringe lo que hay que comprobar es la simetría
de los cartílagos aritenoides, ya que en el caballo es
común la hemiplejía laríngea izquierda. Para compro­
barlo, realizaremos el “test de la palmada". Mientras
se realiza la endoscopia, un ayudante da una pal­
mada fuerte en la espalda derecha del caballo. Los
aritenoides responderán cerrándose y abriéndose de
una forma simétrica. En el caballo enfermo se pro­
duce un movimiento asincrónico y que tiene diversas
graduaciones, como se indica en la tabla. Cuando se
abren los cartílagos aritenoides se entra en la tráquea
para comprobar el estado de la mucosa, esteno­
sis o presencia de pus o de sangre en los caballos
de carreras de velocidad que sufren de hemorragia
pulmonar inducida por el esfuerzo. Situándose en la
tráquea se podría hacer un lavado broncoalveolar
para obtener muestras para citología muy útil en el
Aspirado transtraqueal
diagnóstico de la ORVR. Para ello, a nivel de la carina
Es una alternativa al lavado broncoalveolar. Se pre­
y a través del canal de biopsias del endoscopio se
para un área en el tercio medio de la tráquea que
inyectan 100 mi de suero salino fisiológico para luego
se rasura y desinfecta. Después de administrar un
aspirarlo y enviar una muestra con EDTA al labora­
anestésico local se hace una pequeña incisión en
torio para el análisis citológico. Esta citología es más
la piel con un bisturí y se inserta un catéter de 16G
fácil de interpretar que la del aspirado transtraqueal.
y 17 cm de longitud entre dos anillos traqueales.
Clasificación de
la hemiplejía laríngea
Clasificación de la hemorragia pulmonar
inducida por el ejercicio
Funcionalidad
Grado
Grado
I
Abducción y aducción completa
y sincrónica de ambos cartílagos
aritenoides.
II
Movimientos asincrónicos, menor
aducción del aritenoides izquierdo, pero
abducción completa en la deglución.
III
Movimientos asincrónicos del
aritenoides izquierdo sin producirse
la aducción completa.
IV
Asimetría manifiesta de la laringe
en reposo y falta de movimiento
del aritenoides izquierdo.
Características
0
No hay sangre en vías respiratorias.
1
Hay 1-2 estrías de sangre que ocupan
poca longitud y diámetro en la tráquea.
2
Restos de sangre que ocupa más
de la mitad de largo de la tráquea,
o varios rastros que ocupan menos
de un tercio.
3
La sangre ocupa más de un tercio
de diámetro de la tráquea.
4
La sangre cubre más del 90%
de la superficie de la tráquea.
El enorme esfuerzo exigido en las carreras de caballos de velocidad hace que muchos de estos PSi (Pura Sangre Inglés) presenten hemorragia
pulmonar inducida por el ejercicio.
Realización de un aspirado transtraqueal.
Se deja que el catéter avance hasta la carina y a
En el lavado broncoalveolar los fluidos que tengan
continuación se administran 50 mi de suero salino
un porcentaje del 5% de neutrófilos son sugestivos
fisiológico. Inmediatamente se aspira la muestra y se
de ORVR, mientras que en los aspirados traqueales
vierte en tubos con EDTA y sin aditivos para llevarlo
frecuentemente tiene que ser mayor al 90% de neu­
a un laboratorio. La diferencia del líquido obtenido
trófilos para considerarlo positivo.
con lavado broncoalveolar se muestra en la tabla.
Comparación entre ei líquido obtenido con lavado transtraqueal y lavado broncoalveolar
Longitud endoscopio
Aspirado transtraqueal
Lavado broncoalveolar
Catéter 16G x 17 cm
160 cm
No
Sí
Sí
No. Sólo se recoge muestra
de una parte del pulmón
Calidad de las células obtenidas
Variable
Excelente
Ejercicio post-operación
Normal
Esperar 48 horas
Sedación
¿La muestra recogida es representativa
de todas las células de las vías aéreas?
Sistema cardiovascular
Exploración del sistema
cardiovascular
Inspección y palpación
Percusión cardiaca
Auscultación
Electrocardiografía
Pruebas de resistencia
Ecocardiografía
Valoración del sistema vascular
El examen del corazón es una parte esencial dentro de la exploración clínica del caballo. Las manifestaciones
clínicas de estas enfermedades son la intolerancia al ejercicio, debilidad, arritmias, coloración anormal de las
mucosas, insuficiencia cardiaca congestiva y, en ocasiones, la muerte súbita. Debido a que en los caballos es
frecuente hallarnos con soplos y arritmias cardiacas, a menudo es complicado diferenciar si lo encontrado se
corresponde con una situación fisiológica o patológica.
La información inicial comienza con una auscultación detallada y un electrocardiograma (ECG) y esto es en
muchas ocasiones lo único que tiene el clínico para tomar una decisión en condiciones de campo. Otras téc­
nicas más avanzadas de exploración consisten en la ecocardiografía Doppler, la ECG con Holter y los tests de
ejercicio funcionales que se pueden realizar en establecimientos de referencia. Debido al gran tamaño de los
animales adultos, la radiografía del corazón carece de importancia.
Inspección y palpación
Además de apreciar la condición general del caballo
La palpación ofrece poca información y se centra
hay que observar ambas yugulares y el pulso a la en­
en la exploración de la región precordial. Adelantare­
trada del pecho con la cabeza a la altura de la cruz.
mos la extremidad anterior izquierda para apreciar y
Si el pulso se hace prominente y se extiende más allá
palpar el choque de la punta del corazón en animales
del tercio inferior en el cuello suele estar asociado a
muy delgados o en potros neonatos. Es posible pal­
insuficiencia de la válvula tricúspide o hipertrofia del
parlo tras momentos de esfuerzo, en casos de hiper­
ventrículo derecho. Si se observa sólo distensión de
trofia cardiaca o de anemia grave.
la yugular, sin pulso, es sugestivo de insuficiencia car­
diaca congestiva (ICC) derecha, de efusiones pericár-
Yegua con ICC
dicas o calcificaciones de los vasos. Los edemas se
aprecian a la altura del esternón, extendiéndose hacia
atrás y es un signo frecuente en la ICC derecha. No
hay que olvidarse de explorar el color de las mucosas,
que deben ser rosadas y el tiempo de relleno capilar
(TRC) menor de dos segundos. Un aumento de este
tiempo suele indicar insuficiencia vascular periférica.
Adelantando la extremidad izquierda se puede apreciar
el choque de la punta del corazón en animales jóvenes y
delgados.
Edema ventral e ingurgitación de la vena yugular.
Percusión cardiaca
Actualmente tiene poco interés y ha sido desplazada
músculo cardíaco, y después una zona submate de­
por otras técnicas de exploración. Se adelanta la
bido a que es la zona del pulmón que cubre el co­
extremidad izquierda y con el martillo y el plesíme­
razón. En los équidos el área mate puede aparecer
tro percutiremos de un modo radial desde la punta
incrementada como consecuencia de una hipertrofia
del codo. Primero se escucha una zona mate, es el
o dilatación cardiaca.
Para la percusión cardiaca el martillo ha de incidir perpendicularmente sobre el plesímetro.
Zona de percusión cardiaca de los équidos.
Auscultación
Es la base de la exploración cardiaca y se debe rea­
lizar antes de cualquier otra técnica. Permite detec­
tar los sonidos normales y también otros como los
Un fonendoscopio y un reloj
con segundero son la base
de la exploración cardiaca.
soplos cardiacos. En condiciones normales no hay
ninguna dificultad en auscultar el corazón, pero la in­
tensidad puede disminuir por un excesivo desarrollo
muscular, obesidad, pelo muy denso o presencia de
fluidos en el saco pericárdico o en el tórax.
Para auscultar bien al caballo conviene estar en un
ambiente relajado y sin ruidos que nos distraigan, con
el animal tranquilo. La campana del fonendoscopio
se coloca entre el 3o y 5o espacio intercostal izquierdo
para auscultar el sonido de las válvulas pulmonar, aór­
tica y mitral.
Se escuchan dos tonos cardiacos: el primer tono
(sistólico) (S1) se debe al cierre de las válvulas auriculoventriculares mitral y tricúspide cuando se contraen
los ventrículos. Este tono es más largo y duradero que
S2. Después viene un pequeño espacio de tiempo
para continuar con el segundo tono (S2) (diastólico),
de relajación de los ventrículos, menos intenso produ­
cido por el cierre de las válvulas semilunares pulmonar
y aórtica. El ciclo continúa con un silencio más pro­
longado antes de comenzar un nuevo ciclo cardiaco.
En ocasiones, en los caballos atléticos es posible aus­
cultar un sonido S3 opaco, sordo, justo después de
S2 al final del comienzo del llenado de sangre de los
ventrículos. Un cuarto sonido S4, a menudo conocido
como “A” de contracción auricular, se produce justo
antes que S1, puede ser difícil de diferenciarlo, se
escucha al final de la diástole y marca la contracción
atríal. Estos sonidos cardiacos suenan como una su­
cesión de lub-dup, lub-dup,...
Auscultación de las válvulas pulmonar, aórtica y mitral del
corazón por el lado izquierdo.
La válvula tricúspide se ausculta por el lado derecho en el 4o
espacio intercostal.
Representación esquemática de los sonidos cardiacos
Frecuencia cardiaca
Es el primer factor que debemos evaluar. Los caba­
b
lub
dup
I
I d
b
lub
dup
llos presentan una frecuencia cardiaca baja en com­
I
I d
paración con otras especies domésticas, estando el
intervalo normal entre 24 y 40 latidos por minuto. Un
aumento de la frecuencia cardiaca (taquicardia) se
A
|
|
S1
S2
A
S3
|
■
S1
S2
S3
considera cuando la frecuencia cardiaca se sitúa por
encima de 50 ppm. Esta situación se puede deber
a una grave disminución del volumen de sangre (el
sístole
|
diástole
sístole
corazón no bombea suficiente cantidad de sangre
por latido) y aumenta su frecuencia para mantener el
gasto cardiaco. En potros estas frecuencias son muy
A = S4
amplias y pueden variar de 80 hasta 240 ppm.
Ritmo
Areas de auscultación cardiaca
El ciclo cardiaco tiene su origen en el nodulo sinusal.
Desde aquí se transmite a la aurícula, se contrae y
se produce la sístole auricular. El nodulo auriculoventricular recoge el impulso de la despolarización del
músculo de la aurícula y lo conduce a los múscu­
los ventriculares por el fascículo de His y la red de
Purkinje, produciéndose la sístole ventricular.
Las alteraciones del ritmo cardiaco se dividen en dos:
• Bloqueos: se producen por la interrupción del
impulso cardiaco. La arritmia más frecuente del
caballo es el bloqueo auriculoventricular (AV) de
segundo grado.
• Arritmias: son alteraciones del ritmo cardiaco y
se producen por alteraciones en la formación o
propagación de los impulsos del sistema nervioso
autónomo.
Las arritmias más frecuentes en équidos son:
Bloqueo AV de segundo grado: hasta un 20%
de los caballos en reposo lo presentan y se debe
al alto tono vagal de los caballos en reposo. A la
auscultación se aprecia que un latido se pierde, la
frecuencia es lenta. Desaparece cuando el caba­
llo es sometido a esfuerzo o al aumentar el tono
simpático que se produce durante la excitación.
En general, no tiene significado patológico.
Arritmia sinusal: está mediado por el nervio
vago y se pueden presentar bradicardias en
casos de vagotonías como el bloqueo AV de
primer grado, pero lo más común son las ta­
Áreas de auscultación cardíaca vistas desde el lado izquierdo (A) y derecho (B).
quicardias sinusales que aparecen en estados
de ansiedad, dolor, anemia, fiebre o shock.
Bloqueo AV de tercer grado: se produce
de deporte. Se puede confundir con un bloqueo
cuando el impulso sinusal no puede pasar a tra­
AV de segundo grado, ya que se pueden pro­
vés del nodulo AV, por lo que los tejidos distales
ducir pausas prolongadas en los dos tipos de
a este punto toman el papel de un marcapasos.
arritmias. Se debe a múltiples impulsos que se
Esta arritmia se considera patológica. Los caba­
originan en la aurícula pero que no se transmiten
llos presentan bradicardia y ésta no se corrige
a los ventrículos. A la auscultación se aprecia un
significativamente incrementando el ejercicio.
ritmo irregular con una frecuencia normal, ele­
Complejo prematuro atrial (CPA): se produce
vada o disminuida, con pausas cortas o prolon­
por la formación de un impulso anormal en la
gadas al azar. Estas pausas pueden ser de hasta
aurícula. La aparición de frecuentes CPAs in­
ocho segundos seguidas por unas ráfagas de
dica enfermedad miocárdica, desequilibrios
latidos de forma periódica. En esta arritmia no se
electrolíticos, toxemia, septicemia, hipoxia o
escucha el componente S4 del ciclo cardiaco, a
valvulopatía AV crónica. A la auscultación se
diferencia del bloqueo AV de segundo grado en
reconoce porque hay un intervalo diastólico
el que sí está presente. No hay un ritmo regular,
corto, generalmente sin pausa compensatoria.
por lo que el ritmo es “irregularmente irregular”.
Taquicardia auricular: tiene una frecuencia
Esta arritmia se puede acompañar o no de una
alta y por lo común un ritmo regular. Puede
enfermedad cardiaca subyacente.
ser paroxística o sostenida. Se origina porque
Complejo ventricular prematuro (CVP): se
un punto de la aurícula produce impulsos de
debe a la formación de un impulso en el músculo
forma rápida. Aparece en situaciones de intoxi­
ventricular. La presencia de un CVP no tiene más
caciones, simpaticotonías, hipertiroidísmo, etc.
significado patológico, pero si se acompaña de
Fibrilación auricular: es el tipo de arritmias que
taquicardia o signos de ICC sí que es importante.
más repercute en el rendimiento de los caballos
A la auscultación se reconoce porque un ritmo
Representación esquemática del sistema de conducción cardiaca y su registro en el ECG
A) El latido comienza en el marcapasos situado en la aurícula derecha extendiéndose por todo el atrio, representado por
la onda P; B) La conducción se retrasa en el nodulo AV, registrado como intervalo P-R; C) La onda de despolarización
continúa por el haz de His y la red de Purkinje, siendo el complejo QRS del ECG. La repolarización ventricular viene
representado por la onda T.
regular es interrumpido por un latido que ocurre
mientras que los que se originan sin enfermedad car­
más pronto de lo común. En la mayoría de los ca­
diaca se llaman funcionales, que suelen ser de corta
sos está seguido por una pausa prolongada.
duración e intensidad grado 1-2.
Taquicardia ventricular: ocurre cuando apare­
cen cuatro o más CVP. Pueden ser paroxísticos
SopDos sistóSicos
o sostenidos. Se escuchan a un ritmo rápido
Se producen durante las contracciones de los ventrí­
que es regular, pero si se produce una taquicar­
culos, entre S1 y S2. Si acaban antes que el sonido S2
dia paroxística entonces se aprecia irregular.
se trata de soplos de eyección y estos son comunes
Fibrilación ventricular: es un evento terminal
en los caballos y no suelen ser patológicos. Se escu­
en el cual se producen despolarizaciones ven-
chan mejor en la base del corazón, en las áreas de las
triculares no organizadas. El caballo entra en
válvulas aórtica y pulmonar. En ocasiones se escucha
colapso, no puede tomarse el pulso y los lati­
un soplo sistólico de grado 3/6 en el área de la válvula
dos no se escuchan claramente.
tricúspide. Estos soplos pueden desarrollarse durante
una anemia grave, en la gestación o el cólico, pero
Soplos cardiacos
suelen desaparecen cuando el caballo se recupera.
Son sonidos con una duración superior al de los so­
nidos cardiacos y se escuchan durante el periodo de
Soplos diastólicos
silencio del ciclo cardiaco. Los soplos se originan por
Se producen en la diástole entre el S2 de un latido
las turbulencias del flujo de la sangre y se transmiten
y el S1 del siguiente. La mayoría se aprecian entre
a la superficie corporal. Los que se relacionan con
el inicio o el final de la diástole y menos frecuente es
enfermedades cardiacas se denominan orgánicos,
que ocupen toda la diástole. Pueden ser soplos de
regurgitación por una apertura incompleta de las vál­
vulas aórtica y pulmonar, comunes en caballos viejos,
Graduación de la intensidad
de los soplos cardiacos en el caballo
o bien soplos debido al llenado de los ventrículos.
1/6
Soplo casi imperceptible en un área pequeña de la pared costal.
Soplos cootinyos
2/6
Soplo tenue audible después de unos pocos segundos
de auscultación.
Empiezan en el S1 de un latido y llegan al S1 del si­
3/6
Soplo claramente audible al comienzo de la auscultación
y que puede irradiar en un área grande de la pared costal.
terioso permanente. En los casos de anemia grave
4/6
Igual que 3/6 y acompañado de frémitos.
entrada del pecho.
5/6
Soplo muy fuerte que se aprecia con apenas poner el fonendos­
copio en la pared costal. Se acompaña de frémitos precordial.
6/6
Soplo muy fuerte que se escucha incluso cuando el fonendos­
copio no está en contacto con la pared costal. Se acompaña
de frémitos.
guiente. Esto es común en potros con conducto ar­
se puede escuchar este soplo sobre la yugular, a la
Sitio de máxima intensidad
y radiación del latido
Esto ayuda a localizar el origen del soplo. Los so­
plos aórticos se escuchan en la base del corazón
y se irradian por el cuello, gotera de la yugular y en
Causas de bradicardia y taquicardia en équidos
Bradicardia
Bloqueo AV de segundo grado: fisiológico.
Bradicardia sinusal.
Bloqueo AV de tercer grado: patológico.
Taquicardia
T. sinusal: > 50 ppm, en ejercicio, miedo, ansiedad,
shock, ICC.
T. supraventricular (TSV): miocarditis, hipertrofia
auricular, fibrilación auricular.
T. ventricular fTV): miocarditis, septicemia, toxemia,
intoxicación por quinidina.
ocasiones hasta la base de la oreja. El soplo sistólico
por estenosis de la válvula pulmonar se escucha más
fuerte en la base del corazón.
Frémito
Es una vibración palpable que acompaña a un so­
plo intenso. Se puede sentir al colocar la palma de la
mano en la pared torácica. Este sitio suele coincidir
con el punto de máxima intensidad y tiene una signi­
ficación patológica.
Electrocardiografía
Se trata de un método diagnóstico que permite la
con los dedos, se limpia con alcohol y se coloca gel
detección de trastornos de la conducción cardiaca.
de ecografía para colocar la pinza de cocodrilo de los
Su principal aplicación en el caballo es el diagnóstico
electrodos. Las condiciones del aparato son: deriva­
de arritmias cardiacas. A diferencia de lo que ocurre
ción II, 25 mm/s, 1mV=10 mm.
en pequeños animales, el electrocardiograma (ECG)
En condiciones normales, en unos pocos segun­
no es útil para la valoración del tamaño de las cáma­
dos se obtiene el ECG. El artefacto más común es
ras cardiacas debido a que la despolarización entra
el movimiento del caballo, que hace que la línea me­
en el músculo ventricular a través de la extensa red
dia se desplace mucho. A veces, el registro es malo
de Purkinje, lo que implica que la amplitud del com­
debido al pobre contacto eléctrico de los electrodos
plejo QRS no se relaciona con su tamaño.
con la piel. En este caso, asegurarse de que la pinza
La forma más sencilla de obtener un ECG en un
caballo es utilizando el sistema base-ápex que ori­
contacte con la piel o bien rasurar el pelo para tener
mejor acceso a la piel.
gina un registro fácil de leer e interpretar. Para ello el
electrodo negativo (rojo) se coloca en el tercio infe­
Interpretación del ECG
rior de la gotera yugular derecha, el electrodo posi­
A la velocidad de 25 mm/s cada pequeño cuadradito
tivo (verde) en el 5o espacio intercostal izquierdo y el
supone 0,04 segundos. Lo primero que hay que ha­
electrodo neutro (negro) se sujeta en un punto ale­
cer es calcular la frecuencia cardiaca contando el nú­
jado del corazón, como es la espalda. No obstante,
mero de complejos QRS en un tiempo dado. Valorar
la posición precisa no es fundamental para obtener
si el ritmo es regular o no. Para ello nos fijaremos en
el registro. Sí que es importante mantener al caba­
la distancia de los intervalos R-R.
llo en estación, que no se mueva, que esté tranquilo,
pero sin administrar tranquilizantes. En ocasiones, la
humedad de los cascos puede ser un problema ori­
Análisis de las ondas
Onda P
ginando la presencia de artefactos. Para evitar este
Es la primera onda del ECG. Representa la despola­
inconveniente, se puede poner al caballo un tiempo
rización auricular. La morfología es variable y puede
sobre un lecho de serrín para eliminar el exceso de
estar dividida (bífida) o presentar dos deflexiones se­
humedad. Si el animal tiene el pelo largo, se separa
paradas (bifásica). Es una onda positiva.
Electrocardiógrafo. Con modelos sencillos, monocales, se
pueden tomar ECG en condiciones de campo.
Colocación de los electrodos en el sistema base-apex: electrodo negativo en el
tercio inferior de la gotera yugular derecha, el electrodo positivo en el 5o espacio
intercostal izquierdo y el electrodo neutro en la espalda.
Duración de las ondas del ECG del caballo
en el sistema base-ápex a 25 mm/s
Duración (s)
N° de cuadrados pequeños
Onda P___________ < 0,16________________ <4 __________
Intervalo P-R
<0,5
12,5
La auscultación del corazón
con un fonendoscopio que
registra los sonidos nos sirve
para indicarnos la frecuencia
cardiaca y para analizar en
el ordenador la presencia
de soplos cardiacos.
Complejo QRS______ < 0,14________________ 3J5__________
Intervalo QT
<0,6
15
ECG normal de una burra. Se aprecia el ritmo regular a 38 latidos por minuto, onda
P bífida.
Deflexiones de las ondas de los équidos en el sistema base-apex.
Taquicardia sinusal (60 Ipm). El ritmo es regular y se puede deber a miedo,
excitación, ejercicio o dolor.
Fonocardiograma de un caballo con un ritmo sinusal. Los
dos tonos más próximos corresponden a la sístole y el
espacio más grande a la diástole.
Fonocardiograma de un potro en la que se aprecia
taquicardia propia de animales jóvenes.
Complejo QRS
La radiotelemetría transmite la señal del ECG a una
Es la onda más grande de todas, de 3-4 mV, y re­
terminal y sirve para detectar arritmias que se pre­
presenta la despolarización ventricular. Comienza
sentan durante el ejercicio y que puede explicar un
con una pequeña onda positiva y después una gran
bajo rendimiento atlético en un caballo de deporte.
deflexión negativa.
La electrocardiografía continua ambulatoria [Holter)
Onda T
en el transcurso de 24 horas.
consiste en un dispositivo que recoge todo el registro
Sigue al complejo QRS y representa la repolarización
La fonocardiografía permite la representación grá­
ventricular. Es muy variable de tamaño y de orienta­
fica de los tonos y soplos cardiacos. Se registra con
ción, por lo que no se puede utilizar como indicador de
un fonendoscopio que permite grabar el sonido para
enfermedad cardiaca o alteraciones de los electrolitos.
después analizarlo en un ordenador.
Pruebas de resistencia
La exploración de los caballos después del ejercicio
Soplos cardiacos y ejercicio
forma parte del examen precompra y se debería rea­
Algunos soplos que se oyen en reposo, como los de
lizar como parte de la evaluación clínica cuando se
eyección de las válvulas semilunares, no se aprecian
sospecha de enfermedad cardiaca. En general, es
después del ejercicio y, en caso contrario, se pueden
mejor examinar a los caballos cuando están monta­
escuchar soplos cardiacos justo después del ejerci­
dos por un jinete y no cuando se les da cuerda. Lo
cio. Cuando se ausculta en estas condiciones, hay
primero que se hace es auscultar el corazón después
que prestar especial atención para diferenciarlo de
de un ejercicio submáximo y luego otra vez cuando
sonidos extraños o de sonidos respiratorios.
ya han alcanzado el nivel máximo de ejercicio.
Pruebas de resistencia
y arritmias
Se valora si persisten las arritmias y si éstas han sido
Recuperación después
del ejercicio
El retorno de la frecuencia cardiaca de reposo des­
pués del ejercicio puede sen/ir para valorar una enfer­
de origen vagal (bloqueo AV de segundo grado,
medad cardiaca en el caballo. Depende de muchas
bradicardia sinusal) suelen desaparecer. También se
variables, pero por lo común la frecuencia cardiaca
pueden presentar arritmias a consecuencia de un
retorna dentro del 10% de lo normal a los 15 minutos
ejercicio intenso, las cuales no se detectan en re­
después de un ejercicio moderado o a los 30 minu­
poso. A continuación, realizar un ECG para examinar
tos si el ejercicio ha sido intenso.
con más exactitud la arritmia.
Uso de cintas rodantes
Estas cintas permiten graduar la intensidad del ejer­
cicio controlando la velocidad y la inclinación de la
plataforma. Generalmente se monitoriza la frecuencia
cardiaca y se hace un ECG.
jpHliíiliíilíill
8 S S ¡'
(jiy E U iiiin im iii i
Caballo en una cinta rodante.
Para evaluar la resistencia y el rendimiento en los caballos es mejor hacerlo con el
jinete montado y no a la cuerda.
Ecocardiografía
La ecocardiografía es una técnica no invasiva que
Para realizar una ecocardiografía con éxito hace
permite visualizar las estructuras intracardiacas. Es
falta un equipo con sondas de 2,5-3,5 MHz si vamos
esencial en el diagnóstico de soplos asociados a de­
a examinar a un animal adulto. Si tenemos un potro
fectos cardiacos congénitos y derrames pericárdicos.
o un poni con una sonda de 5 MHz alcanzaremos el
En la ecografía Doppler, los ultrasonidos se reflejan
corazón y obtendremos una mejor imagen.
en las células sanguíneas permitiendo calcular la
velocidad y la dirección del flujo de sangre. Algunos
Las indicaciones de una ecocardiografía son:
modelos elaboran una imagen en color. Este método
• Cuando se detecta un soplo que no sea funcional
es especialmente útil para identificar las regurgitacio­
nes valvulares.
(de origen valvular o congénito).
• Cuando se detectan arritmias.
En el examen ecocardiográfico en modo B se
• Los sonidos del corazón se escuchan apagados.
obtienen imágenes bidimensionales del plano eco-
• Se aprecian signos clínícos de insuficiencia car­
grafiado para estudiar los movimientos de las es­
diaca congestiva.
tructuras del corazón. En este método es impor­
• Caballos con fiebre de origen desconocido.
tante conseguir la máxima perpendicularidad entre
• Caballos que disminuyen su rendimiento deportivo
el transductor y corazón. En el modo M se obtiene
sin causa aparente.
una imagen monodimensional del movimiento del
corazón.
La ecocardiografía permite a los veterinarios estudiar el corazón de los atletas que presentan bajo rendimiento deportivo.
Valoración del sistema vascular
Pulso arterial
El pulso arterial está formado por la onda de presión
sistólica que comienza en el corazón y viaja por las
arterias hasta llegar a los capilares. Como todo el sis­
tema arterial está lleno de sangre, la sístole impulsa
más sangre al sistema arterial notándose el pulso. Se
trata de un indicador indirecto de la frecuencia car­
diaca. En los équidos, los lugares de elección para
tomar el pulso son la arteria maxilar situando los de­
dos en el canal exterior de la mandíbula y la arteria
temporal por encima del arco cigomático. También
es posible en las arterias metacarpianas y metatarsianas en el hueco que hay entre la caña y los ten­
dones. En algunos animales también se aprecia en la
arteria coccígea situada en la cara ventral de la cola.
La frecuencia del pulso es el número de pulsa­
ciones (contracciones ventriculares) por minuto. En
los caballos se sitúa en el intervalo 24-40 ppm. Los
potros pueden tener hasta un 50% superior de pul­
saciones y aún más los animales recién nacidos. Se
puede notar un pulso doble en las insuficiencias o es­
tenosis de la válvula aórtica. Sin embargo, un pulso
dicrótico en los que se aprecia un primer pulso más
fuerte que el segundo se puede encontrar en caba­
llos con frecuencias muy bajas.
Las cualidades que se aprecian en el pulso son:
• Fuerza del pulso: indica el choque máximo sis­
tólico. Un pulso fuerte indica una buena capaci­
Puntos habituales donde se toma el pulso en el caballo, en la arteria maxilar y arteria
temporal.
dad de contracción del corazón y de elasticidad
de las arterias. Lo presentan los caballos de com­
petición. Un pulso débil se debe a la debilidad
y respiratorio del caballo. Se utiliza la arteria carótida
cardiaca (hiposistolia) en la insuficiencia cardiaca
accesible desde el tercio inferior del cuello.
izquierda o porque llega poca sangre al corazón
(hemorragia, shock).
• Amplitud del pulso: refleja el volumen de san­
Con una aguja de 20-25G se busca el pulso de la
arteria carótida en la gotera de la yugular que se sitúa
inmediatamente profunda a la vena yugular. Cuando
gre que sale del ventrículo en cada sístole ventri­
se punciona la arteria, obtendremos rápidamente un
cular. Podemos encontrarlo con un pulso amplio
flujo de sangre roja brillante en el cono de la aguja.
que aparece en los casos de hipertrofia cardiaca,
Unir la jeringa, que llevará heparina de Na como an­
mientras que un pulso pequeño indica vasocons­
ticoagulante, y aspirar la muestra. Para el análisis de
tricción que se palpa en estados de ansiedad o
gases, retirar cualquier resto de aire de la jeringa y
estenosis de las válvulas cardiacas.
realizar el análisis lo antes posible o bien, guardar la
muestra heparinizada en hielo picado.
Punción arterial y análisis
de gases sanguíneos
como la arteria facial, arteria metatarsíana dorsal, ar­
La punción arterial está indicada en los análisis de
teria transversa y arteria braquial recomendable en el
gases sanguíneos para valorar el estado metabólíco
caso de los potros.
Se puede obtener sangre arterial de otros sitios
Capilares
Venas y pulso venoso
Son tubos muy finos por los que discurre tan sólo
Las venas más fáciles de explorar son las yugulares
una fila de eritrocitos. Estos pequeños vasos funcio­
que se encuentran a la entrada del pecho. La inspec­
nan como una membrana por la cual pasan agua,
ción y palpación de estas venas se utiliza para valorar
oxígeno y sustancias nutritivas. Clínicamente tienen
la función cardiaca. Cuando se encuentra aumen­
importancia para la valoración del tiempo de relleno
tado de tamaño es un signo de ICC derecha, origi­
capilar (TRC). Para ello se aplica presión sobre las en­
nado por una insuficiencia de las válvulas tricúspide,
cías hasta que ésta se vuelve blanca. Al levantar el
cardiomiopatías o miocarditis.
dedo, se cuentan mentalmente los segundos trans­
A la entrada del pecho se puede observar el
curridos para que se recupere el color normal. Si la
“pulso yugular" cuando la cabeza del caballo se si­
perfusión sanguínea es óptima, este tiempo es me­
túa la altura de la cruz. Se trata de un reflejo de la
nor de dos segundos. La prolongación del TRC es
actividad cardiaca derecha. Es normal observarlo
un indicador de deshidratación, shock o enfermedad
en animales sin ninguna patología, pero este pulso
vascular periférica.
no debe sobrepasar un tercio de distancia desde la
base del pecho. Los pulsos anómalos se producen
cuando aumentan la resistencia al llenado ventricular
derecho. El pulso venoso puede ser positivo o ne­
gativo. El negativo se produce por la sístole auricular
y no coincide con el pulso arterial. Sin embargo, el
pulso yugular positivo coincide con el arterial y con
la sístole ventricular. Para comprobarlo, a la vez que
observamos el pulso en la base del cuello, tomamos
el pulso arterial en la arteria maxilar de la cabeza; si
coinciden los dos pulsos es patológico y es indicativo
de un aumento de la presión venosa central, ICC de­
recha o insuficiencia de la válvula tricúspide,
Comprobación del pulso arterial en la mandíbula y
observación del pulso yugular en la base del pecho.
Realización del TRC en la mucosa gingival de un caballo.
▼
Punción venosa y análisis
de sangre
Vasos para la extracción de sangre venosa
y arterial en el caballo
La utilización de los análisis de sangre en los équidos
es un apoyo importante y, en muchas ocasiones,
esencial para llegar al diagnóstico de las enfermeda­
des. Muchas de estas pruebas requieren de sangre
entera o bien sin anticoagulantes para la obtención de
suero. La vena de elección para obtener sangre es la
yugular, situada en la gotera de la yugular. El lugar para
la punción se localiza entre el primer y segundo tercio
medio del cuello. Para ello se presiona la base del cue­
llo para ingurgitar la yugular y se introduce la aguja con
un ángulo de 45° respecto a la vena. De este modo
se obtiene fácilmente la sangre utilizando aguja de 2025G o bien mediante tubos de vacío.
Extracción de sangre mediante aguja y jeringa.
_
Otras venas que se utilizan es la vena facial trans­
versa situada en la cabeza, pero sólo para recoger
muestras de sangre muy pequeñas. También se
puede recurrir a la vena torácica superficial, vena ce­
fálica y vena safena medial. Las complicaciones que
se obtienen a menudo son hematomas cuando se
utiliza una aguja muy gruesa o se traumatiza mucho
el vaso. Esto se puede minimizar levantando la ca­
beza y aplicando una presión directa sobre el lugar
de la venopuncíón.
Suero
El suero es la muestra de elección para la determi­
Tipos de muestras sanguíneas
nación de pruebas bioquímicas y hormonales, y para
Sangre
la determinación de anticuerpos. Se obtiene tras la
Se recoge con anticoagulantes y se destinan al es­
coagulación de la sangre y retracción del coágulo.
tudio hematológico, la investigación de parásitos
Para obtenerlo, dejar el tubo durante 1-2 horas a
herméticos o la realización de hemocultivos. Las
temperatura ambiente para que se forme el coágulo.
muestras recogidas con heparina se utilizan para de­
A continuación, se despega el coágulo de las pare­
terminaciones de gases sanguíneos.
des y se centrifuga a 3.000 rpm durante 10 minutos.
Extracción de sangre
Distintos tipos de tubos con o sin aditivos para la obtención
de sangre.
Lo mejor es trasvasar el suero a otro tubo o vial de plástico
para enviarlo al laboratorio.
La utilización de tubos de vacío favorece y ayuda la toma
de sangre cuando se requieren varios tipos de muestras.
El suero se trasvasa a otro tubo limpio. Si no se va
a analizar inmediatamente, lo mejor es congelar la
abundancia de fibrinogeno
en la sangre de los caballos
hace que en ocasiones
el suero se coagule con
temperaturas frías.
muestra a -20 °C hasta su análisis. Hay que tener en
cuenta que los sueros muy hemolizados o lipémicos
interfieren en muchas determinaciones, especial­
mente en la actividad de diferentes enzimas.
Plasma
Se obtiene después de centrifugar la sangre recogida
con un anticoagulante. Se recomienda separarlo de
los eritrocitos lo antes posible para evitar la hemolisis,
detener el consumo de glucosa y evitar la produc­
ción de lactato. Tiene los mismos componentes que
ir -
el suero, pero además presenta fibrinogeno. Para
obtenerlo adecuadamente, se centrifuga la muestra
de sangre a 3.000 rpm durante 10 minutos, se tras­
vasa el plasma a un tubo y, si no es posible el análi­
sis inmediato, se congela la muestra a -20 °C hasta
su procesado. Las muestras de plasma, preferible­
mente heparinizado, se utilizan para determinaciones
bioquímicas y hormonales y las de plasma citratado
para pruebas de coagulación.
Análisis liematoDógico
Serie roja
El análisis elemental de la serie roja incluye el número
de glóbulos rojos, valor hematocrito y concentración
de hemoglobina. Los modernos laboratorios de aná­
lisis suelen realizar estas determinaciones con unos
aparatos denominados contadores celulares. Los re­
sultados que ofrecen son más rápidos y fiables que
los de los métodos manuales. Hay dos tipos de sis­
temas: los semiautomáticos, que requieren la realiza­
ción de una preparación previa de la muestra (gene­
ralmente dilución), y los totalmente automáticos que
realizan todas las operaciones necesarias.
Para hallar el valor hematocrito se puede hacer
con métodos semiautomáticos o mediante centrífu­
Después de centrifugar los capilares se observa la columna de plasma y el volumen de
los eritrocitos. En los caballos es normal un color ligeramente amarillento del plasma.
gas de microhematocrito. El valor hematocrito indica
la relación entre el volumen de los eritrocitos y el de
permiten identificar ictericia (coloración amarillenta),
sangre total. Se define como el volumen ocupado por
lipemia (aspecto lechoso) o hemolisis (color rojizo).
los eritrocitos contenidos en 100 mi de sangre y se ex­
La concentración de hemoglobina se calcula
presa en porcentaje (%) respecto al volumen de san­
habitualmente por medio de reacciones colorimétri-
gre total. El valor hematocrito proporciona una amplia
cas mediante los diferentes analizadores hematológi-
información. Así, la disminución del hematocrito es in­
cos automáticos. Se expresa en g/dl, su disminución
dicativa de anemia, el aumento se debe a deshidrata-
indica la presencia de anemia y su aumento se debe
ción o eritrocitosis. Los cambios en el color del plasma
a deshidratación o eritrocitosis.
Los modernos contadores celulares para veterinaria permiten realizar los análisis hematológicos para cada especie.
índices eritrocitarios
Serie blanca
El recuento de eritrocitos, la concentración de hemo­
El recuento diferencial o fórmula leucocítaría per­
globina y el valor hematocrito se relacionan entre sí
mite cuantificar cada uno de los tipos de glóbulos
mediante los llamados índices eritrocitarios, los cua­
blancos existentes en la sangre, es decir, linfoci-
les son de utilidad en el diagnóstico de las anemias.
tos, monocitos, neutrófilos, eosinófilos y basófilos.
• Volumen corpuscular medio (VCM): es la me­
La fórmula leucocitaria se determina diferenciando
dida del tamaño de los eritrocitos y representa el
y contando un número de leucocitos (100-200) en
volumen medio de un glóbulo rojo aislado.
un frotis o extensión sanguínea teñida sobre un
portaobjetos.
VCM (fl)
Hematocrito x 10
= -------------------------------------------n° eritrocitos
Para realizar el frotis o extensión sanguínea se co­
loca una gota de sangre en uno de los extremos del
portaobjetos. Se toma otro portaobjetos y se coloca
• Hemoglobina corpuscular media (HCM): es el
sobre el primero formando un ángulo de unos 30-
contenido medio de hemoglobina en un glóbulo rojo.
45°, de manera que el borde contacte con la gota
de sangre y esta se distribuya por dicho borde por
Concentración de hemoglobina x 10
HCM (pg) = ----------------------------------------------n° eritrocitos
capilaridad. A continuación se desplaza el segundo
portaobjetos de manera rápida, suave y continuada,
arrastrando y así extendiendo la gota de sangre so­
• Concentración media de hemoglobina corpus­
bre el primer portaobjetos. Es preciso que las ex­
cular (CMHC): es la cantidad o porcentaje de he­
tensiones sean finas y homogéneas, para evitar que
moglobina en 100 mi de glóbulos rojos.
aparezcan amontonados los eritrocitos y tapen a
los leucocitos haciendo imposible su identificación.
CMHC
Concentración de hemoglobina x 100
( /o o g/dl)
hematocrito
Una vez secada al aire la extensión, se procede a su
tinción.
Para realizar el recuento al MO debe seguirse un
recorrido en vaivén por los bordes de la extensión de
Serie blanca
un extremo a otro de la misma ya que los leucocitos
tienden a colocarse en la periferia del frotis. A medida
que se van encontrando leucocitos, hay que identi­
Extensión de
una capa fina de
sangre. Se consigue
arrastrando de
manera suave y
continuada una
muestra de sangre
con un porta sobre
otro.
ficar a qué tipo pertenecen y anotarlo. Se recorre la
preparación hasta haber identificado un mínimo de
100 leucocitos (preferiblemente 200) y se calcula el
porcentaje de cada uno de ellos:
100 x n° de cada tipo de leucocito
Porcentaje = ----------------------------------------------n° total de leucocitos contados
A partir del porcentaje podremos calcular el nú­
mero absoluto de cada clase de leucocitos cono­
ciendo el recuento de glóbulos blancos totales:
A continuación se
tiñe mediante un
método de tinción
rápida.
% x n° leucocitos totales
N° absoluto = -------------------------------------------100
Tipos de tubos para análisis de sangre
Color del tapón
Aditivo
Tipos de análisis
Rojo
Ninguno
Bioquímica clínica, anticuerpos, reacciones cruzadas
Violeta
EDTA Na
Hematología completa
Verde
Heparina de Na
Bioquímica clínica, gases sanguíneos
Amarillo
Ácido cítrico dextrosado
Reacciones cruzadas, tipificación grupos sanguíneos
Azul
Citrato de Na
Estudios de coagulación
Gris
Fluoruros, oxalatos
Medición de glucosa
Cambios en la bioquímica sanguínea y el hemograma
de algunas enfermedades cardiovasculares de los équidos
Enfermedad cardiovascular
Bioquímica sanguínea
Hemograma
Valvulopatías
í= AST, SDH, PT, globulinas, fibrinogeno,
BUN, creatinina
GR, Hto
f= GB, neutrófilos
Miocarditis, miocardiopatías
í= CK, AST, LDH, BUN, creatinina
U = GB, neutrófilos
Pericarditis
T= AST, SDH, PT, globulinas, fibrinogeno
1= Na, Cl
T= GB, neutrófilos
Enfermedades congénitas
í= AST, SDH, BUN, creatinina
T= GR, Hto
Vasculitis
T= CK, AST, PT, globulinas, fibrinogeno,
BUN, creatinina
J.= PT, albúmina
i= GR, Hto, GB,
linfocitos, plaquetas
T= GB, neutrófilos
t aumento del nivel; i disminución del nivel; = nivel igual
AST= aspartato aminotransferasa, CK= creatinin quinasa, SDH= sorbitol deshidrogenasa, PT= proteínas totales,
BUN= nitrógeno ureico en sangre, GR= glóbulos rojos, GB= glóbulos blancos, Hto= hematocrito.
Intervalos de referencia en hematología equina
Parámetro
Caballo
Potro nacimiento
Potro > 7 días
Glóbulos rojos (1OVpl)
6,8-12,9
9-13
7,5-10,5
Hemoglobina (g/dl)
11-19
12-18
11,5-17,5
Hematocrito (%)
32-53
40-52
31-40
VCM (fl)
37-58,5
-
-
CMHC (g/dl)
31-38,6
-
-
HCM (pg)
12-18
-
-
Leucocitos (103/pl)
5,4-14,3
5,5-11,5
7-12
Linfocitos (1OVpl)
1,5-7,7
1,8-3
2-4
Monocitos (103/|jl)
0-1
-
-
Neutrófilos (103/[jl)
2,3-8,6
3,5-10
7-10
Eosinófilos (103/pl)
0-1
-
-
Basófilos (10'J/|jl)
0-0,29
-
-
Plaquetas (1CP/pl)
100-350
100-250
100-400
Valores normales de parámetros
que intervienen en el equilibrio ácido-base
de los caballos adultos
Valores de referencia de bioquímica clínica
en caballos adultos
Parámetro
Valores normales
Ácidos biliares
5-15 pmol/l
Alanino amonitransferasa (ALT)
3-23 Ul/I
pH (venosa y arterial)
Amilasa
75-150 Ul/I
pCO?
38-46 mm Hg
Amoniaco
13-108 pg/dl
pO?
34-50 mm Hg
Arginasa
0-14 Ul/I
Bicarbonato
20-34 mEq/l
Aspartato aminotransferasa (AST)
226-336 Ul/I
Anión gap
10 mEq/l
Bilirrubina conjugada
0-0,4 mg/dl
Exceso de bases
1-10 mEq/l
Bilirrubina total
1-2 mg/dl
Lactato
10-16 mg/dl
BUN
10-24 mg/dl
Calcio
11,2-13,6 mg/dl
Cloro
99-109 mEq/l
Colesterol
75-150 mg/dl
Cortisol
36-81 mmol/l
Creatinin quinasa (CK)
119-287 Ul/I
Creatinina
0,9-1,9 mg/dl
Fosfatasa alcalina (FA)
138-251 Ul/I
Fósforo
3,1-5,6 mg/dl
Gamma glutamiltransferasa (GGT)
4-44 Ul/I
Glucosa
75-115 mg/dl
Glutamato deshidrogenasa (GLDH)
0-11,8 Ul/I
Lactato deshidrogenasa (LDH)
162-412 Ul/I
Potasio
2,4-4,7 mEq/l
Selenio
15-25 mg/dl
Sodio
132-147 mEq/l
Sorbitol deshidrogenasa (SDH)
1,9-5,8 Ul/I
Triglicéridos
4-44 mg/dl
Parámetros
Valores normales
7,32-7,44
Valores de proteínas sanguíneas
y sus fracciones en el caballo adulto
Valores normales
Parámetro
Proteínas totales
52-70 g/l
Albúmina
26-37 g/l
Globulinas
26-40,4 g/l
Alfal -globulinas
0,6-7 g/l
Alfa2-globulinas
3,1-13,1 g/l
Betal -globulinas
4-15,8 g/l
Beta2-globulinas
2,9-8,9 g/l
Gamma-globulinas
5,5-19 g/l
Relación albúmina/globulinas (A/G)
0,62-1,46
Fibrinogeno
Determinación de proteínas totales mediante
reíractometría. Lo primero es colocar unas
gotas de suero sobre el reíractómetro
y a continuación se mide su valor.
1-4 g/l
Electroforesis
HYDRAGEL 7 p i -fi2
La separación por electroforesis de
las proteínas sanguíneas permite el
estudio de la albúmina y las globulinas
para la investigación de posibles
disproteinemias.
Aparato digestivo
Exploración del
Exploración de la boca
Exploración de la faringe
Exploración del esófago
Exploración del estómago
Exploración de la cavidad abdominal
Exploración del hígado
Anamnesis e historia clínica
El caballo es un animal monogástrico herbívoro ca­
muy variada y rica en gramíneas y leguminosas, pero
racterizado por su especial capacidad para aprove­
no les aporta muchas calorías.
El proceso de domesticación ha implicado la intro­
char y digerir grandes cantidades de fibra vegetal,
siendo junto con la cabra uno de los pocos animales
ducción del caballo en cuadras, donde sus movimien­
que pueden digerir la lignina contenida en las partes
tos se han limitado y se les ha ofrecido de comer dos
más bastas de las plantas.
a tres veces al día un alimento muy concentrado. Esta
La capacidad de ingestión de un caballo en con­
alimentación supone una sobrecarga estomacal y de
diciones naturales es casi constante ya que dedican
calorías en poco tiempo. El resultado del desequilibrio
de 12 a 14 horas al día a pastar al mismo tiempo que
de esta alimentación, junto con la falta de ejercicio den­
avanzan en su marcha sobre el pasto. Su dieta es
tro del box, provocan los trastornos gastrointestinales.
Situación anatómica de los órganos digestivos en el caballo
Estómago
Hígado
Colon
descendente
Flexura
pélvica
Yeyuno
Ion dorsal
izquierdo
□n ventral
izquierdo
T ñ ñ t v
Duodeno
Boca
Faringe
Yeyuno
Colon dorsal
derecho
Hígado
Colon ventral
derecho
Flexura
diafragmática
Exploración de la boca
La captación y aprehensión de los alimentos se realiza
Antes de examinar la boca nos fijaremos en los la­
por medio del labio superior, de los incisivos y de la len­
bios y en la mucosa gingival que es húmeda y de color
gua. El examen rutinario de la boca se hace para ob­
rosado. Aquí se pueden presentar petequias o equi­
servar el estado de dientes y muelas en animales que
mosis, lesiones indicativas de alteraciones en la coa­
muestran agitación reiterada de la cabeza, sialorrea,
gulación. En los équidos viejos, es normal encontrarse
dificultades para masticar o disfagia. También, siempre
con el labio inferior caído. Hay que fijarse en el aspecto
que se observe una disminución en la ingestión de ali­
de los incisivos y si la oclusión de estos es correcta
mentos o adelgazamiento crónico. Otras causas son
o no. Dentro de la boca se encuentra la lengua. En
la sobrecarga de arcadas dentarias por embocaduras
ocasiones aparece lesionada por traumatismos, heri­
agresivas y la presencia de úlceras y aftas.
das o cortes que provocan una glositis (inflamación de
la lengua) o un aumento conocido como macroglosia.
Abuitamiento
en la comisura
de los labios
debido a
un absceso
interno.
El excesivo desgaste de los dientes puede dificultar la
aprehensión y explicar la caquexia de un caballo.
Úlcera labial
en el belfo
superior.
Mucosa gingival
congestionada.
Lesión de la lengua y su posterior sutura. Este traumatismo
puede provocar macroglosia y dificultad de masticación
del alimento.
Uso del abrebocas
Para abrir la boca cuando se vayan a realizar exá­
menes odontológicos, muchas veces necesitamos,
además de un abrebocas, sedar al caballo con un
tranquilizante. Para abrir la boca se introducen los
dedos por el diastema, cogiendo la lengua y lleván­
dola con precaución debajo de la arcada denta­
ria. Esto nos permite observar por un momento su
interior.
En la inspección de la boca hay que fijarse en el
belfo superior e inferior. El superior tiene mayor ta­
maño. El paladar duro se extiende desde el borde
lingual de los dientes hasta las fauces. La lengua se
encuentra en el espacio intermandibular. Aquí mu­
Abertura de la boca sacando ia lengua y colocándola,
con precaución, debajo de la arcada dentaria.
chas veces nos podemos encontrar heridas o incluso
arrancamiento, pues la lengua está sometida a fric­
ción con el filete y el bocado.
Abrebocas de Hausmann.
Dientes de leche en un potro.
Colocación del abrebocas.
Mal posicionamiento de los dientes que provocan lesiones en
la mucosa oral.
Los dientes y las muelas se deben examinar para
laterales de la mandíbula al masticar. Los remolones
asegurarse de que la oclusión sea completa, ya que
se comportan como cuerpos extraños lesionando la
de lo contrario el animal engullirá el grano entero pro­
lengua y las encías. Las radiografías de la boca se
vocando alteraciones en la digestión estomacal que
realizan cuando nos encontramos con enfermedades
puede desarrollar cólicos. También para comprobar
dentales que se extienden al tejido periodontal. Con
la presencia de remolones, que son crecimientos irre­
los modernos equipos portátiles y el desarrollo de la
gulares y picudos en los molares debido al desgaste
radiografía digital es fácil obtener buenas imágenes
anormal que se produce por los desplazamientos
para el diagnóstico.
Extracción de un remolón
Extracción ele un remolón. Para ello el clínico utiliza un abrebocas de Hausmann, buena contención del animal e instrumentos de odontología.
Exploración de la faringe
La faringe es un órgano muscular que comunica la
La exploración de la faringe sólo puede producirse
boca con el cardias. Está implicada en el paso de
por palpación. Para ello juntaremos las dos manos
aire a las fosas nasales pues el caballo no respira por
por encima del cuello para notar el carácter elástico
la boca y únicamente lo hace por la nariz. El paladar
del órgano y en condiciones normales se llega a to­
blando situado al fondo de la cavidad bucal actúa
car con los dedos de una mano los dedos de la otra.
como barrera para impedir el retorno de los alimen­
Hay que comprobarins la ausencia de dolor a la pal­
tos y el aire a la boca a través de la faringe. Debido
pación o de algún alimento atascado.
a este mecanismo fisiológico, es por lo que los ca­
Las radiografías de la orofaringe se hacen para
ballos raramente vomitan y si lo hacen el contenido
buscar lesiones del tipo masas retrofaríngeas o abul-
aparece por la nariz y no por la boca.
tamientos de las bolsas guturales por gas, sangre o
pus. La presencia de aire en la nasofaringe propor­
ciona un buen medio de contraste con los tejidos
adyacentes.
Palpación de la faringe con las dos manos.
Exploración del esófago
El esófago es un órgano musculado que se extiende
Las radiografías se utilizan para comprobar la
desde la faringe hasta el cardias. Su proyección ex­
presencia de alimento en las compactaciones del
terna se sitúa en la gotera de la yugular izquierda.
órgano o bien de tejidos traslúcidos en el caso del
Para explorar el esófago nos fijaremos en los movi­
megaesófago. Se puede intentar una radiografía de
mientos peristálticos que pasan por la gotera de la
contraste con sulfato de bario introduciendo la papilla
yugular del lado izquierdo. En caso de sospecha de
por sonda nasoesofágica. Sin embargo, es más co­
disfagias debe observarse cómo bebe y come el
mún realizar una endoscopia del esófago. Para reali­
caballo. Se puede palpar el esófago desplazando la
zar un examen completo se requiere un endoscopio
punta de los dedos por la gotera de la yugular para
de dos metros de longitud. El aspecto de la mucosa
apreciar, en el caso de espasmos musculares, un
es rosáceo y húmedo.
cordón duro en la gotera de la yugular. También es
posible la palpación de cuerpos extraños.
Obstrucción del esófago
■c:
Obstrucción del esófago. Se aprecia un engrasamiento en la gotera de la yugular izquierda y también secreción nasal como consecuencia de los
intentos de vómito o regurgitación.
Exploración del estómago
El estómago de los caballos tiene una capacidad
muy reducida, 8-15 litros, y normalmente sólo se lle­
nan los dos tercios de su volumen. El estómago se
vacía de contenido y secreciones gástricas entre 6 y
8 veces al día. En el estómago se produce la diges­
tión ácida de los alimentos con ayuda del pH bajo de
las secreciones gástricas.
Este órgano se sitúa en la cavidad abdominal de­
bajo del arco costal sobre el plano medio abdominal
izquierdo. Debido a su localización en la zona más
profunda de la cavidad abdominal, su exploración clí­
nica es difícil y sólo se puede hacer mediante sonda
nasogástrica, con un endoscopio largo o con ecografía abdominal.
Úlcera gástrica en el estómago de un caballo.
Sólo mediante un endoscopio largo es posible observar la mucosa gástrica
del caballo.
En la cavidad abdominal se encuentran los principa­
les órganos digestivos, además de los órganos ane­
jos que son el hígado y el páncreas.
° Cirugías previas en la cavidad abdominal (cólico,
cesáreas).
° Cantidad y calidad del pienso y forraje ingerido.
° Desparasitaciones: cuándo y con qué productos
Anam nesis
Como en toda exploración, comenzaremos reali­
zando una anamnesis. Preguntaremos acerca de:
° Ambiente: regularidad de las comidas en canti­
dad, calidad y horario.
se han realizado.
° Estado sanitario de la cuadra: limpieza de estiércol
y desinfecciones.
° Aspecto del estiércol (presencia de cuerpos extra­
ños, arena, etc.).
° Antecedentes clínicos: en animales con cólicos re­
petidos (tres meses o más).
Exam en clínico
° Especie: los asnos y mulos son animales más
Empezaremos la exploración con los procedimientos
rústicos lo que les protege de ciertos procesos
clásicos, es decir, inspección, palpación, percusión
abdominales y presentan un umbral para el dolor
y auscultación, siendo esta última la que más infor­
más alto.
mación proporciona. Los métodos complementarios
° Raza: la consanguinidad o razas muy selecciona­
que se pueden utilizar para mejorar el diagnóstico
das para ciertas disciplinas deportivas presentarán
son la búsqueda de sangre o parásitos en heces,
un descenso de la capacidad de adaptación y un
análisis hematológicos y bioquímicos, endoscopias,
mayor número de alteraciones abdominales.
ecografías y, en menor medida, radiografías.
° Sexo: en yeguas en los últimos meses de gesta­
ción el útero presiona sobre los órganos digesti­
[Inspección
vos. Los machos, en la época de reproducción,
Muchos caballos con dolor abdominal presentan un
están más estresados.
cambio brusco en su comportamiento. Los caballos
Los caballos con cólico presentan sudoración profusa que
hace que se adhiera la paja a su superficie.
Es muy probable que los caballos que han sido operados
vuelvan a tener un cólico.
Con la inspección nos fijamos en el mal estado de carnes de
Situarse detrás del caballo para inspeccionar si hay
abultamientos en el contorno abdominal.
este caballo.
son animales muy expresivos y su umbral para el do­
lor es bajo, por lo que el propietario enseguida ad­
vierte que se encuentra enfermo. Hay que fijarse en el
aspecto general del animal, en las alteraciones de la
capa y la piel y en si el animal está flaco o no.
Si hay ausencia de heces sugiere algún tipo de
obstrucción intestinal. Debemos fijarnos en la pre­
sencia de elementos extraños, como sangre, pará­
sitos, moco, arena, tierra o cuerdas de atar, etc. o de
alimentos sin digerir, especialmente grano cuando el
animal no mastica bien.
La oliguria es un indicador de deshidratación
grave, insuficiencia renal aguda o de shock. El dolor
abdominal que sufre el caballo durante el síndrome
cólico puede ser similar al que presenta un caballo
con disuria.
La falta de apetito puede ser un indicador más del
dolor abdominal común con otras patologías. Pres­
tar atención a la distensión abdominal, observando al
caballo por detrás, descartando en primer lugar una
gestación avanzada en una yegua. Aparece distensión
como consecuencia de timpanismos o, en casos más
graves, torsiones del intestino grueso. En estos casos
se apreciará una convexidad en la parte superior de
los ¡jares. En raras ocasiones se presenta disnea y taquipnea cuando se produce distensión gástrica o del
intestino anterior. En otras ocasiones, se puede ver un
vientre recogido a la vez que lo endurece, conocido
como “vientre en tabla" debido al dolor abdominal.
Asno con abdomen abultado a consecuencia de una ascitis.
Las dificultades para beber agua por hielo, agua sucia o por comer tierra favorecen
la presentación de cólicos.
Auscultación abdominal
aumentan en amplitud y frecuencia, escuchándose
Los sonidos intestinales reflejan la actividad intes­
un gorgoteo del lado izquierdo (colon) y el lado de­
tinal y son de gran utilidad en la valoración clínica
recho (ciego) cada 6-10 segundos.
del cólico. La auscultación de la cavidad abdomi­
Los sonidos de propulsión se diferencian de los
nal se debe realizar en un ambiente tranquilo para
sonidos de mezcla por su modelo cíclico, mayor in­
escuchar bien los sonidos. Hay que acercarse con
tensidad y duración más larga. Los sonidos que se
precaución antes de tocar los ijares del caballo. Co­
escuchan en el lado derecho reflejan la actividad de
locaremos el fonendoscopio en las dos fosas para-
las válvulas ileocecal y cecocólica.
lumbares derecha e izquierda en la parte superior e
inferior, auscultando en cuatro cuadrantes.
Los sonidos se producen con regularidad de
dos a cuatro veces por minuto. Los sonidos de
Los movimientos que realiza el colon son de mez­
cla del alimento y se oyen en cualquier zona de la
superficie ventral del abdomen.
La ausencia de sonidos o su disminución se asocian
progresión, conocidos como borborigmos, se oyen
a peritonitis o hipoperfusión intestinal en el caso de es­
cada dos o cuatro minutos cuando el caballo no
trangulaciones con o sin infarto. También es frecuente
ha ingerido alimento. Con la ingesta, estos ruidos
encontrarlo después de las operaciones de digestivo.
Auscultación de los cuatro cuadrantes del caballo
La presencia de gas atrapado entre el intestino
y la pared abdominal se puede identificar mediante
percusión-auscultación simultánea. Para ello, se co­
loca la campana del fonendoscopio en el hueco del
ijar y con la otra mano percutimos alrededor de la
campana con los dedos o con el mango del martillo.
La producción de un sonido fuerte, timpánico, indica
gas atrapado en el órgano. En este caso, hay que
tener en cuenta el gas expulsado por el recto cuando
el caballo trota a la cuerda.
Los aumentos de motilidad se deben a espasmos
intestinales, irritación por parásitos, diarreas, etc.
La arena se puede oír durante los movimientos
del colon colocando el estetoscopio en el abdomen
ventral, detrás de la apófisis xifoides. Se oye un so­
nido similar al roce de la arena dentro de una bolsa
Técnica de percusión-auscultación para determinar la presencia de gas atrapado en
de papel.
las visceras abdominales.
Palpación rectal
Es una parte fundamental para alcanzar el diagnós­
tico de muchas enfermedades digestivas. Se tiene
que realizar después de hacer el resto de la explora­
ción clínica. Existen limitaciones a la técnica.
• El tamaño del animal hace imposible la explora­
ción en potros y ponis.
° En animales con reacciones peligrosas se nece­
sitará un torcedor y, en caso de no ser suficiente,
levantando una mano o bien sedarlos.
• Lo ideal es realizar la palpación en un potro de
contención, pero si no hay uno disponible, hacerlo
protegido tras la puerta del box.
• Sólo se puede acceder al tercio posterior de la ca­
vidad abdominal.
Una vez protegido de las reacciones del caballo, la
palpación hay que realizarla con cuidado para no
Conviene realizar la palpación rectal detrás de un potro para protegerse de las
coces de los caballos.
dañar el recto. Utilizar un guante lubrificado con gel
e introducir los dedos despacio, dilatando el esfínter
atrapamientos de asas intestinales que darán lugar a
anal. Una vez introducida la mano, vaciar la ampolla
cólicos. En los machos pueden palparse en la zona
rectal de heces.
ventral las aperturas vaginales que cubren los anillos
Las principales estructuras que se pueden palpar
vaginales internos. Dependiendo del contenido en el
son: por el lado izquierdo, pegado a la pared ab­
digestivo no siempre se puede palpar el colon ventral
dominal, se palpa la porción caudal del bazo como
izquierdo, flexura pélvica y colon dorsal derecho.
un borde carnoso y firme, y dorsocraneal a éste se
En la zona central es posible localizar la raíz del
encuentra el riñón izquierdo. Entre ambos se sitúa el
mesenterio alrededor de la arteria mesentérica cra­
espacio nefroesplénico limitado ventralmente por el
neal, como una banda firme suspendida de la pared
ligamento nefroesplénico, donde pueden aparecer
dorsal en la línea media.
Impactación por meconio en el intestino grueso de un potro.
Vólvulo de intestino delgado. Esta lesión, si no se interviene
pronto, lleva rápidamente a la muerte del animal.
En la palpación rectal debemos valorar:
• Cantidad y consistencia de heces y estado de la
mucosa rectal.
° Posición fisiológica de asas intestinales y órganos
palpados.
» Aumento del tamaño del intestino por impactación
de heces.
° Distensiones intestinales en forma de gas o líquido.
Grano sin digerir.
Cuando la mucosa rectal está seca, pegajosa y con
heces duras indica deshidratación. En caso de obs­
trucciones hay una falta de heces posterior al lugar
En el lado derecho se encuentra la base del ciego
con un contenido semilíquido. Pueden palparse tam­
de la obstrucción. Valorar el tamaño, naturaleza y
consistencia de lo que se palpa.
bién las tenias del ciego en la zona dorsal y ventral
Las visceras distendidas por gas se localizan en
del órgano. Siguiendo ventralmente y un poco a la
el ciego o por contenido líquido en caso de enteritis
izquierda se palpa la flexura pélvica con un contenido
proximales, o por sobrecargas intestinales.
blando. Después nos encontramos con el colon ven­
La tensión de las tenias del colon nos indican es­
tral izquierdo que se reconoce por ser de gran diá­
tiramiento mesentérico, ya sea por sobrecarga, tor­
metro y por sus bandas longitudinales.
sión, vólvulo o invaginación intestinal.
Sondaje nasogástrico
Además de una aplicación terapéutica, la intubación
nasogástrica se realiza para introducir glucosa o xilosa en los tests de absorción o para descomprimir el
estómago cuando éste se encuentra lleno.
El tubo nasogástrico debe poseer un diámetro lo
suficientemente amplio y ser maleable a la tempera­
tura interna del caballo, con un sistema de apertura
lateral, para evitar su taponamiento con partículas
gruesas de comida. Se introduce por los ollares,
buscando el meato ventral del caballo hasta la glo­
tis, donde el tubo debe dirigirse hacia el esófago sal­
vando la tráquea. En esta localización es importante
disminuir, tirando de la cara del animal hacia el suelo,
el ángulo que forma la cabeza con el cuello, con el fin
de facilitar que la sonda entre al esófago y no a la trá­
quea. Por último llegaremos al cardias y entraremos
en el estómago, donde debemos alcanzar el fundus.
Aquí se acumula la ingesta y es donde se extrae el
contenido estomacal o el líquido que contenga.
Cuando haya gas, después de atravesar el cardias,
se producirá una salida del mismo.
Para que salga el líquido se coloca la sonda por
debajo del nivel en que se encuentra el estómago del
caballo para conseguir un efecto sifón. En caso de
no conseguirlo deberemos utilizar una bomba ma­
Impactación de colon. El aumento de la presión llega a
romper la pared intestinal.
B
nual de extracción realizando presión negativa en la
boca de la sonda hasta exteriorizar su contenido.
Sondaje nasogástrico en el caballo
Esófago
Tráquea
Al pasar la sonda por el esófago se incrementa la resistencia
No hay resistencia, el caballo puede toser
Se ve cómo la sonda desciende por el lado izquierdo,
al lado de la gotera de la yugular
No se observa la sonda
Al aspirar por la sonda, se colapsa el esófago y al soplar
se puede distender
Al aspirar por la sonda se traga aire continua­
mente, al soplar no se produce distensión
Se palpa la sonda en potros y animales delgados cerca
de la tráquea, notándose “2 tubos"
Sólo es posible palpar la tráquea
Al entrar en el estómago se nota el olor de la ingesta
y hay resistencia al pasar la sonda a la entrada del pecho
No hay resistencia ni olor
El contenido del estómago es normalmente verde,
Paracentesis abdominal
tiene un olor dulzón y está compuesto predominan­
Los cambios en la composición del líquido peritoneal
temente por partículas de alimento.
reflejan los cambios producidos en las superficies pe-
El pH se mide mojando un papel indicador en el
ritoneales de los órganos abdominales. El análisis es
líquido. Los valores normales de pH se encuentran
especialmente útil en el diagnóstico de cólicos graves
entre 3 y 6.
y peritonitis.
El reflujo que proviene del intestino delgado es
amarillo-marrón con olor fétido. Este líquido tiene un
Método
pH de 6 a 8 debido al efecto tampón del líquido del
Lo primero es rasurar y desinfectar la zona. Utilizar
intestino delgado.
material estéril y guantes para realizar la operación.
La obtención de grandes cantidades de líquido
La extracción de líquido peritoneal se realiza con
estomacal sugiere obstrucción en el intestino del­
una aguja o con un catéter. Se utiliza una aguja
gado o enteritis proximal.
calibre 18 y de una pulgada y media de largo, la
cual se inserta directamente sobre la línea alba, en
la zona más caudal y ventral de la apófisis xifoides
y penetra en la cavidad abdominal, debiendo te­
ner especial precaución de no puncionar ningún
asa intestinal para no contaminar la muestra u ori­
ginar una peritonitis.
El contenido del estómago se recoge en un cubo para medir
el volumen y las características del mismo.
Si no se puede obtener por la línea media, se
leucocitos/mm, concentración de proteínas tota­
puede intentar una punción por la línea parame-
les inferior a 2,5 g/dl.
dial, procurando evitar dirigirse hacia el colon y el
Realizar un frotis directo del líquido abdominal
ciego.
sobre un portaobjeto para observar las distintas
En el caso de caballos obesos que tienen una
clases de células, hacer un recuento diferencial de
cantidad considerable de grasa retroperitoneal,
glóbulos blancos, evaluar la degeneración celular,
nos podemos ayudar con un catéter que penetre
y buscar bacterias y/o partículas de ingesta.
por la zona adiposa y el peritoneo.
En caso de extraer baja cantidad de muestra, se
Recoger el líquido por gravedad, en dos tubos, uno
puede centrifugar el líquido y el sedimento exten­
con EDTA como anticoagulante y otro sin aditivos.
derlo en un portaobjeto antes de teñirlo. La tinción
Si no es posible recoger la muestra con una aguja,
más común es la Wright-Giemsa, aunque también
porque hay riesgo evidente de lesionar el intestino
se puede utilizar un panóptico rápido.
o de contaminación con sangre, se puede utilizar
un catéter romo. Para ello es necesario realizar
Alteraciones más comunes
una incisión con un bisturí en la línea alba para in­
La turbidez se debe a la presencia de células,
troducir el catéter.
principalmente leucocitos.
En las obstrucciones estranguladas, infartos no
Evaluación de la muestra
estrangulados y obstrucciones simples, el líquido
Las características que presenta este líquido abdo­
presenta un color serohemorrágico indicativo de
minal son:
isquemia.
Volumen: lo normal es obtener 5-10 mi mediante
En los casos de toxemia se observa un gran nú­
goteo en 4-5 minutos.
mero de eritrocitos, de leucocitos y un aumento
Aspecto macroscópico: es un líquido inodoro,
en la concentración de proteínas de 3,5-6 g/dl.
claro o ligeramente amarillo, con menos de 5.000
En las peritonitis el líquido contiene abundan­
tes bacterias libres y fagocitadas por leucocitos
tóxicos, y que su número puede alcanzar los
100.000/mm. Este líquido es muy turbio, de mal
olor y coagula.
Si hay rotura de una viscera se observa un color
verde-marrón en el líquido obtenido del contenido
intestinal.
En los casos de estrangulación sin infarto se pro­
duce un aumento de proteínas y glóbulos blancos
de 300.000 a 400.000 células/mm.
Una extravasación sanguínea o la punción acci­
dental del bazo durante la maniobra de la para­
centesis pueden provocar un hemoperitoneo.
En la abdominocentesis de los potros recién na­
cidos con rotura vesical aparece un líquido con
aumento de la creatinina y que llega a ser el doble
que la de los niveles del plasma.
Caballo con cólico tratado con fluldoterapia.
Exploración del hígado
El hígado es una viscera que participa en una gran
cantidad de funciones metabólicas necesarias para
La biopsia hepática sirve para definir histológica­
el adecuado funcionamiento fisiológico del animal.
mente la lesión como infecciosa, tóxica, obstructiva
Interviene en el metabolismo de los hidratos de car­
o congestiva. La técnica se realiza de forma percutá-
bono, lípidos y proteínas, en el almacenamiento de
nea con agujas de biopsia de 14 G y 15 cm de longi­
vitaminas y minerales, la excreción de pigmentos
tud. Realizar antes una ecografía por el lado derecho
biliares y en la síntesis de factores de coagulación.
para localizar la mejor área de parénquima hepático.
Además es un órgano muy importante en la detoxifi-
Una vez sedado el animal y rasurada y desinfectada
cación de sustancias extrañas.
un área del lado derecho entre el sexto y el quin­
En los équidos, el hígado se localiza en la parte
ceavo espacio intercostal, se inyecta un anestésico
medial del abdomen, dentro de la bóveda diafragmá-
local. Con un bisturí se hace una pequeña incisión y
tica, sin contacto con la pared costal, por lo que en
se introduce la aguja en el 14° espacio intercostal en
condiciones normales no puede ser explorado. En
una línea imaginaria que va desde el hombro hasta
los casos de hepatomegalia, se podría apreciar un
la tuberosidad coxal, en dirección craneoventral a
aumento del área de sonido mate en el lado derecho,
través del pulmón y alcanzar el hígado. Avanzar más
por detrás del borde posterior del pulmón. Las enfer­
profundamente hasta penetrar en el hígado. Guardar
medades del hígado suelen presentar pocos sínto­
la muestra en formol al 10%.
mas patognomónicos y por eso, cuando se sospe­
cha de un proceso hepático, se obtiene suero para
realizar un estudio de su biopatología.
Biopsia hepática
1. La biopsia ele hígado se realiza por el lado derecho
entre el 13 y 14 espacio intercostal.
2. Antes de hacer la biopsia, preparar una amplia zona
del lado derecho para realizar una ecografía que
ayudará a localizar el mejor lugar de la punción.
3. Imagen normal del parénquima hepático mediante
ecografía.
4. Hígado con fibrosis de un caballo que padeció
insuficiencia hepática.
Variaciones en el hemograma y bioquímica clínica
en algunas enfermedades gastrointestinales de los équidos
Enfermedad
Hemograma
Bioquímica clínica
Úlcera gástrica
GB, Neu T
GGT, BUN, Crea!
Gluc, Na, K, Cl i
Duodenitis/yeyunitis proximal
GR, Hto, GB T
GB, Neu = i
PT, Alb, BUN, Crea T
Na, K, Cl i
Obstrucción No estrangulante del ID
GR, Hto T
GB, Neu i
BUN, Crea T
PT, Alb, Glob =T
Ki
Obstrucción estrangulante del ID
GR, Hto, T
GB, Neu =t
GB, Neu i
AST, SDH, BUN, Crea T
PT, Alb, Gluc =t
Obstrucción No estrangulante del IG
GR, Hto T
GB =!
GGTt
PT, Alb, Glob, BUN, Crea =T
Ki
Obstrucción estrangulante del IG
GR, Hto T
GB, Neu =¿
AST, SDH, GGT, BUN, Crea T
PT, Alb, Glob =t
Gluc =Ti
Peritonitis
GR, Hto, GB, Neu = ti
AST, SDH T
BUN, Crea =T
PT, Alb, Glob = ti
Diarrea
GR, Hto =T
GB, Neu, = i
PT, Alb, BUN, Crea =í
Gluc, Na, K, Cl =i
T aumento del nivel; i disminución del nivel; = nivel igual.
GB = glóbulos blancos; GR = glóbulos rojos; Neu = neutrófilos; l-lto = hematocrito; GGT = gamma glutamil transferasas; AST = aspartato amino transferasa,
SDH = sorbitol deshidrogenasa; PT = proteínas totales; Alb = albúmina; Glob = globulinas, BUN = nitrógeno de la urea; Crea = creatinina; Gluc = glucosa;
Na = sodio, K = potasio; Cl = cloro.
Anamnesis e
historia clínica
Datos de anamnesis de interés en las enfermedades gastrointestinales de los équidos
Datos generales
Hábitat: estabulado o no______________________________________________________
Dieta: ¿ha ingerido una cantidad inusual de pasto o de ración, alguna sustancia o planta tóxica?
Rutina diaria_____________
Utilidad del animal_________
Historia médica: antecedentes
Controles parasitarios, desparasitaciones_________________________________________________________________
Datos clínicos recientes
Duración del cólico_________________________________________________________________________________
Última vez que ha comido____________________________________________________________________________
Cambios recientes de la ingestión de alimentos, agua, medicación, estabulación, cama del box, viajes, rutina del ejercicio, cuidadores
Posibles cuerpos extraños ingeridos_____________________________________________________________________
Gestación
___________________________________________________________________________________
Parasitosis reciente_________________________________________________________________________________
Traumatismos recientes______________________________________________________________________________
Última vez que defecó, aspecto de las heces______________________________________________________________
Sudoración_______________________________________________________________________________________
Signos observados: escarba, rueda sobre sí, molestias abdominales, miradas hacia el flanco, permanece recostado, giros hacia atrás
Datos de enfermedades anteriores
Respuesta al tratamiento_____________________________________________________________________________
Episodios de cólicos previos o cirugía abdominal___________________________________________________________
Comportamiento y síntomas del caballo con cólico
Escarbar en el suelo con las manos
Dejarse caer al suelo de manera súbita
Mirarse repetidamente los flancos
Sudar profusamente
Cocearse con las patas traseras en el abdomen
Temblar
Agacharse como si quisiera sentarse
Gemir
Actitud de orinar durante un tiempo prolongado
Jugar con en el agua
Permanecer echado en el suelo
Morderse el flanco
Mover la boca en actitud de masticar
Cabeza fija contra el suelo
Adoptar la postura de perro sentado
Golpearse contra las paredes del box en casos de dolor extremo
Genitorurinario
Exploración del sistema
genitourinario
Aparato genital
Aparato urinario
Aparato genital
Aparato genital
del semental
(prepucio y
escroto).
SViacho: el semental
Orntrodluccnóini
El objetivo del examen clínico del sistema reproductor
en caballos es asegurarnos de que no existan pato­
logías que puedan afectar a la fertilidad y, por tanto, a
su capacidad reproductiva.
La valoración del semental debe incluir una explo­
ración clínica o examen físico completo por sistemas
y aparatos (digestivo, cardiorrespiratorio, músculo es­
quelético, etc.), empleando métodos de inspección
directos o inmediatos y pruebas complementarias
Patología peneana (balanopostítís).
como electrocardiografías, ecografías, radiografías,
etc. Este examen debe estar encaminado a la detec­
El escroto, los testículos, el epídídímo, el pene y el
ción de problemas reproductivos que puedan causar
prepucio se examinan de manera rutinaria mediante
infertilidad, subfertilidad y esterilidad en el semental.
palpación. La ecografía y la endoscopia se utilizan
Es básico mantener un perfecto equilibrio metabólico
habitualmente como exámenes complementarios.
para obtener una buena respuesta a nivel sexual.
Pueden emplearse diversas pruebas laboratoriales
El examen del aparato genital externo se realiza me­
con el fin de detectar enfermedades sistémicas o ve­
diante inspección, palpación y/o ecografía y debe
néreas en el semental. A partir de muestras de san­
englobar:
gre, orina, semen, exudados, heces, etc., se pueden
® Pene
realizar pruebas citológicas, serológicas, inmunoló-
° Prepucio
gicas, bioquímicas, histoquímicas y hormonales, así
° Testículos
como análisis para detectar bacterias (MCE, Klebsie-
° Epidídimo
lla, Pseudomonas), virus (Herpesvirus, AVE, AIE.), y
° Cordón espermático
protozoos (Trypanosoma equiperdum), etc.
0 Escroto
El examen del aparato genital interno se realiza por
palpación rectal de forma manual y mediante ecogra­
fía o endoscopia por vía uretral; debe abarcar:
° Glándulas vesiculares
o Glándula bulbouretral
° Próstata
HostoiriaD y anamnesis
La historia clínica de un semental debe empezar con
una identificación del mismo, que ha de incluir ios si­
guientes datos:
• Nombre y edad
Detalle de la sonda en ecografía testicular.
• Raza
• Número de registro
La anamnesis debe recoger los problemas mé­
• Microchip o tatuaje labial
dicos, lesiones, vacunaciones y tratamientos farma­
® Marcas ocultas
cológicos de los últimos seis meses, así como los
• Reseña
datos de antecedentes deportivos, reproductivos y
el actual uso del semental. Hay que tener en cuenta
A continuación debe realizarse el historial reproduc­
que una nutrición inadecuada o una enfermedad
tivo, que debe incluir:
pueden producir, secundariamente, el deterioro de
• Fecundidad en su primera temporada reproductiva
la calidad seminal. También deben reseñarse las
• Fertilidad del año
posibles enfermedades hereditarias que el semental
• Libido
pueda transmitir (criptorquidia, síndrome de Wobbler,
• Comportamiento en la cubrición
etc.), y que son motivos suficientes para descartar al
• Anomalías observadas durante la cubrición
caballo como semental.
Ecografía testicular en un semental en la estación.
Exploración directa
Esquema del aparato genital externo
Genitales externos
La exploración directa debe comenzar con un acer­
camiento al hombro del caballo; poco a poco se
desliza la mano derecha medialmente a lo largo de
la parte ventral de la pared abdominal hasta llegar al
escroto.
La mayoría de los sementales toleran bien la ex­
ploración, pero si el semental se muestra agresivo
o tiene mal carácter puede realizarse la exploración
en un potro de contención o, en su defecto, puede
arrinconarse al caballo en una esquina con pacas.
Testículos y escroto
Se deben palpar los testículos para determinar su
forma, tamaño, orientación y textura.
El epidídimo se subdivide en cuerpo y cola. El
cuerpo debe poseer una textura suave y esponjosa,
• Nodulos o pústulas cutáneas asociados
con el exantema coital.
sin tumefacción ni dolor a la palpación y sin nodula-
° Granulomas por Habronema spp.
ciones; se apoya libremente sobre la superficie dor-
0 Papilomas.
solateral del testículo, con la cola localizada en su
° Sarcoides.
polo caudal.
0 Balanopostitis.
La bolsa que recoge el testículo es el escroto.
« Carcinomas de células escamosas.
Junto con la túnica dartos, el plexo pampiniforme y
el músculo cremáster se encargan de mantener una
correcta temperatura testicular. Las principales pa­
Todas estas lesiones pueden dificultar la cópula y
provocar hemospermia.
tologías de esta bolsa son la hernia y el hidrocele o
hematocele (cuando la bolsa escrotal está llena de lí­
Genitales internos
quidos o de sangre, respectivamente). Estas lesiones
Debido al carácter excitable de los sementales, la
son debidas a traumatismos y pueden originar altera­
exploración de los genitales internos mediante pal­
ciones del conducto epididimario, llegando a producir
pación rectal implica un riesgo añadido. Para evitar
eyaculados sin espermatozoides.
este riesgo, se puede utilizar un fármaco alfa-ago­
nista (detomidina), que puede combinarse con otro
Pene y prepucio
fármaco opiáceo (butorfanol) para reducir la hiper­
La exploración correcta del pene se realiza fuera
sensibilidad del tercio posterior y la tendencia a
del prepucio, tras la estimulación del semental con
cocear.
una yegua o bien administrando acepromacina o
detomidina.
La exploración de las glándulas accesorias se rea­
liza cuando existen evidencias de determinadas pa­
tologías, por la presencia de bacterias o de células
Antes de realizar el examen debe retirarse el es-
inflamatorias en el eyaculado.
megma de la fosa uretral en el glande con una gasa
impregnada en suero. El pene se sujeta con la mano
Glándulas accesorias
y debe observarse ausencia de:
El semental posee cuatro glándulas sexuales
° Cicatrices, heridas o hematomas que indican trau­
accesorias:
matismos. Éstos pueden estar causados por las
• Ampollas del conducto deferente
patadas de la yegua durante la cubrición.
° Próstata
un estrecho istmo central y dos lóbulos que acompa­
ñan lateralmente a la uretra pélvica. Su consistencia es
blanda y es difícil de palpar por vía rectal, por lo que es
Ampollas
del conducto
deferente
preferible identificarla mediante ecografía. Su tamaño
y la cantidad de su contenido líquido aumentan tras el
Vejiga de la orina
Uréter
recelado, sin embargo disminuyen tras la eyaculación,
hasta alcanzar los valores de reposo sexual.
Glándulas bulbouretrales
Glándulas
vesiculares
Son un par de glándulas tubulares que se ensanchan
en la parte distal del conducto deferente. Por palpa­
ción rectal, se localizarán siguiendo cranealmente el
recorrido de la uretra pélvica hasta encontrarlas pe­
gadas a los conductos deferentes, cerca del cuello
Próstata
de la vejiga.
Glándulas
bulbouretrales
G lándulas vesiculares
Se aprecian por palpación rectal si están llenas de
líquido o inflamadas; en estado normal no se pue­
Uretra
den palpar. Por ecografía se observa una forma
irregular de las glándulas vesiculares con una zona
central hipoecoica en los sementales durante el re­
poso sexual. Son como pequeñas bolsas aplanadas
0 Glándulas bulbouretrales
dorsoventralmente, con paredes musculares grises y
• Glándulas vesiculares (vesículas seminales)
una luz central oscura.
La función de todas ellas es formar el eyaculado.
Anillos inguinales
Tienen una textura muy similar y son muy difíciles
La parte más superficial del anillo inguinal puede lo­
de diferenciar con exactitud por palpación rectal.
calizarse palpando la pared ventral del abdomen, en­
Por ello, en .aso de presentarse alguna patología
tre el pene y la parte medial del muslo. Normalmente,
asociada a i stas glándulas, es preferible exami­
la abertura del anillo inguinal superficial tiene entre
narlas mediante ecografía rectal con una sonda de
2-3 cm de diámetro y el canal interno entre 10-12 cm
7,5 MHz.
de largo. El anillo discurre en dirección lateral, craneal
y ligeramente ventral con respecto al eje del tendón
A m polla del con d ucto deferente
prepúbico.
Las ampollas del conducto deferente se localizan
La parte interna del anillo inguinal se localiza en
dorsales a la vejiga de la orina. Son muy fáciles de
el borde craneal de la pelvis. Se puede apreciar por
localizar por palpación rectal. Se debe desplazar la
palpación rectal, dirigiendo la mano ventral y lateral­
mano cranealmente a lo largo de la uretra pélvica
mente hasta tocar la pared abdominal.
hasta localizar los conductos deferentes, a la altura
La criptorquidia es una patología que describe la
dei cuello de la vejiga; las ampollas del conducto de­
falta de descenso de uno o de los dos testículos a
ferente se encuentran en la parte distal del mismo.
la bolsa escrotal. Esto puede ser detectado por pal­
pación del escroto y del anillo inguinal externo. Si los
Próstata
testículos no se encuentran en el anillo inguinal, se
Se localiza dorsal a la intersección entre la uretra pél­
pueden palpar vía rectal, pero su identificación es di­
vica y el cuello de la vejiga, pero es una estructura
ficultosa ya que son estructuras pequeñas y móviles
completamente aislada de la uretra. Se compone de
en la cavidad abdominal.
Montaje de la
vagina artificial.
Extracción del
semen en caballos
Los métodos de extracción de semen más habitua­
les son la vagina artificial y el colector cervical.
El manejo del semental y el recelo de la yegua
son fundamentales para una buena cubrición o para
la recogida del semen, ya que no sólo estimula a la
yegua hacia la cubrición, sino que también favorece
que el semental aumente su concentración espermática. El recelo debe empezar por un acercamiento del
macho a la cabeza de la hembra y posteriormente
Control del
semental con
“Chifney” en el
momento de la
cubrición.
ir dirigiéndolo hacia el tercio posterior y los genitales
externos de la yegua. Se recomienda como emboca­
dura un hierro "Chifney”, que permite un control total
sobre el semental.
Durante la eyaculación se deben controlar los
movimientos de contracción uretral del semental
mediante la palpación de la uretra, y el control de los
movimientos de la cola cuando termina la cubrición.
Si la yegua no acepta al macho se debe contener
con unos trabones y colocar un torcedor en el belfo.
El maslo de la cola debe protegerse con un vendaje
que evite que el pene del semental entre en contacto
En la extracción
de semen
con vagina
artificial hay que
tener especial
cuidado con los
movimientos
del semental.
con zonas contaminadas.
Extracción de
semen con
“phantom"
cuando no se
tiene una yegua
estrogenizada.
Pene del semental en erección justo antes de la penetración
en la yegua.
Vagina artificial
La vagina artificial es uno de los métodos más utiliza­
dos. Se trata de un dispositivo compuesto de varias
partes con las que se intenta reproducir las condicio­
nes fisiológicas de la vagina de una yegua (presión,
temperatura y tacto). El dispositivo está atempe­
rado y tiene un mecanismo estanco para recoger el
eyaculado.
Existen diferentes modalidades de recogida, se­
gún utilicemos una yegua estrogenizada o un mani­
quí artificial (por ejemplo, tipo “phantom”). También se
puede realizar la recogida con el caballo en estación
La extracción con vagina artificial también se puede realizar
en burros.
sin necesidad de una yegua, pero esta recolección
es mucho más dificultosa.
La técnica de vagina artificial precisa de tres per­
Es necesario controlar los movimientos pelvianos
sonas expertas para la recogida del semen: una
del macho y favorecer que la eyaculación se realice
atendiendo al caballo, otra a la yegua y una tercera
a la mayor profundidad posible en la vagina artificial,
con la vagina artificial. Esta técnica requiere personal
para evitar el shock térmico de los espermatozoides.
especializado, ya que éste se ve expuesto a ciertos
En ocasiones, algunos sementales se muestran ca­
riesgos durante la recogida del semen. En el mo­
prichosos, pues la temperatura y la presión de la va­
mento en el que el semental va a montar a la yegua
gina artificial no son los adecuados y por lo tanto no
se debe orientar el pene hacia la vagina artificial.
eyaculan.
Secuencia del cortejo sexual y cubrición en un semental, acercamiento-reflejo del Flehmen, contacto y monta
Colector cervical
El colector cervical consiste en un recipiente de cris­
tal soplado de borosilicato, de un grosor constante
de 2,2 a 3 mm, que se introduce en el cén/ix de una
yegua en celo antes de la cubrición. Es muy impor­
tante que el colector sea de la medida del cérvix de la
yegua, de esta manera se encuentra perfectamente
sujeto por la boca del mismo.
Una vez colocado en la yegua se acerca el semen­
tal para que comience su cortejo sexual. Cuando en­
tra en erección se le permite realizar una cópula natu­
ral. El caballo eyacula en el interior del colector cen/ical
situado entre el cérvix y el útero. No existe posibilidad
alguna de que pase semen al útero, si la técnica se
sigue correctamente. Tras la extracción del colector, el
semen se envía al laboratorio para su testaje.
El colector presenta la ventaja de que el semen­
tal realiza una cópula natural, ésta no se encuentra
inhibida por la utilización del utillaje, y se invierte mu­
cho menos tiempo. Es mucho más fácil de limpiar,
esterilizar y preparar que la vagina artificial y requiere
menos personal especializado para su utilización.
2
Con el método del colector cervical, la penetración es totalmente natural, sin
interferencias.
Colocación del colector cervical en el cérvix de una yegua.
Extracción del colector cervical con el eyaculado.
Características del semen
Macroscópicas
Color, olor, volumen. Se puede detectar la presencia de sangre (hemospermia),
orina (urospermia), etc.
Microscópicas
Motilidad total, motilidad progresiva, concentración, morfología, pH.
Anormalidades seminales que habitualmente
encontramos en la morfología, concentración
y motilidad espermáticas
Definición
Oligospermia
Pocos espermatozoides en el eyaculado
Atenozoospermia
Poca motilidad en el eyaculado
Teratospermia
Aumento de formas anormales
Formas combinadas
Oligoatenozoospermia
Oligoteratospermia
Atenoteratospermia
Oligoatenoteratospermia
Parámetros
Caballo
Volumen (mi)
60
Concentración de espermatozoides (x 10°)
15
Total de espermatozoides (x 109)
9
Espermatozoides con motilidad (%)
70
Espermatozoides morfológicamente normales (%)
70
Eyaculaciones por semana
3
pH del semen
7,0-7,8
Parámetros a valorar en un espermiograma
Volumen espermático
Debe ser entre 40 y 100 mi.
Motilidad masal
Se vlsiona la gota pendiente y se clasifican de 1 a 3 +.
| Motilidad total y motilidad progresiva
La concentración ideal debe estar entre 25-50 x 106 espermatozoides/ml.
Motilidad objetiva
Los sistemas informatizados permiten la evaluación espermática con
precisión mediante medidas cuantitativas del movimiento individual de los
espermatozoides.
Test de resistencia térmica
o supervivencia
El semen diluido se coloca en un tubo a diferentes temperaturas hasta
que la motilidad desciende a menos del 10%.
Morfología espermática
La presencia de una gran cantidad de formas anormales está relacionada
con alteraciones de la espermatogénesis y espermiogénesis.
Tinciones vitales
Permiten detectar espermatozoides vivos y muertos de la muestra.
Tinciones fluorescentes
Hay múltiples tinciones y test basados en la observación del
espermatozoide con el microscopio de fluorescencia, para el estudio de la
fisiología espermática y los efectos de la congelación.
Concentración espermática
El número medio está entre los 100-300 x105 espermatozoides/ml.
Test de endósmosis HOST
Se valora la entrada de agua del espacio extracelular al interior del
espermatozoide para equilibrar las concentraciones de solutos dentro y
fuera de éste.
Hembra: la yegua
Irntroducción
Fisiología
Esquema hormonal de la yegua en el estro y en diestro.
La yegua es una especie poliéstrica estacional de
días largos, su estación reproductiva tiene lugar
durante los meses de primavera y verano principal­
mente. En invierno tiene un anestro estacional y el
otoño, básicamente, es un periodo de transición.
El anestro invernal se denomina quiescencia re­
productiva y comienza en la última ovulación del año.
En este periodo los niveles hormonales son muy ba­
jos y no hay actividad folicular.
La transición primaveral se caracteriza principal­
Día 1-4
Día 6-10
Día 16-18
mente por unos celos largos e irregulares que, en
nuestras latitudes, comprenden los meses de marzo
y abril.
La estación reproductiva tiene su actividad
máxima a finales de la primavera e inicios del verano,
con unos celos largos, de hasta 7 días, coincidiendo
con los días de más horas de luz, puesto que un
fotoperiodo de más de doce horas estimula la acti­
vidad ovárica. En la transición otoñal, el desarrollo de
los folículos y su crecimiento comienza a ser irregular
y prolongado; se dan celos anovulatorios, debido a
que los niveles de LH y de FSI-I comienzan un des­
censo progresivo.
Ciclo estral
El ciclo estral de la yegua se puede dividir en dos eta­
pas bien diferenciadas:
1. Estro: fase folicular
El estro es el periodo en el que la yegua acepta
al macho, debido a un nivel hormonal de estrógenos elevado. Este periodo tiene una duración
variable de entre 4-7 días y se caracteriza por un
edema vulvar, micción cuando se acerca el se­
mental, elevación de la cola y vulveo del clítoris.
Este comportamiento estral continúa unas 24
horas tras la ovulación del folículo preovulatorio.
2. Diestro: fase luteínica
En el diestro la yegua no está receptiva y la hor­
mona predominante es la progesterona. Tiene
una duración de unos 14-16 días y la estructura
predominante en el ovario es el cuerpo lúteo, que
regresará si no hay gestación para comenzar de
nuevo un ciclo.
Folículo ovulacio el día 7 del estro.
Historia clínica, Anamnesis
Exploración
La anamnesis de una yegua ha de ser completa y
debe realizarse de manera rutinaria para un correcto
Directa
examen clínico del animal. Es importante comenzar
Genitales externos
la historia clínica con una reseña básica del individuo:
• Nombre
Vulva y región perianal
• Edad
La vulva es la estructura más externa del sistema re­
° Raza
productor en las hembras. Está constituida por los
• Número de microchip
labios y una comisura inferior en forma redondeada,
en la cual se encuentra el clítoris, con una forma pro­
Una vez obtenidos los datos identificativos se debe
minente y una coloración oscura. Nos fijaremos en
conseguir información más relevante en relación a
él cuando la yegua esté en celo, pues realiza un mo­
su historial sanitario y reproductivo, que nos puedan
vimiento característico, conocido como “vulveo del
orientar en el diagnóstico, como:
clítoris".
• Vacunaciones desde los últimos 6 meses o el año
anterior.
Para que cumplan una función óptima, los labios
de la vulva deben estar en una posición vertical, o
• Última ecografía del aparato reproductor. Es impor­
por lo menos tener una inclinación de craneal a cau­
tante reseñar si hubo algún hallazgo importante.
dal de no más de 10° con respecto a la vertical. Es
• Última gestación.
importante que ambos labios vulvares cierren correc­
• Último parto.
tamente para evitar la contaminación con heces que
• Último aborto. Especificar en qué estadio de la
puede provocar infecciones y afectar a la vida repro­
gestación se produjo.
ductiva de la yegua.
• Historial de gestaciones gemelares.
G enitales internos
Por último, se debería revisar la localización del
En el examen de la vagina se aprecian distintas par­
animal (box, campo, corraleta y box) y su alimenta­
tes. Con la ayuda de un espéculo vaginal se puede
ción, puesto que tanto un estado de carnes pobre
realizar una buena inspección visual, pero también
como un exceso de grasa pueden condicionar su
es posible realizar una exploración introduciendo la
condición reproductora.
mano, por palpación.
Clítoris de una yegua con una coloración normal.
Vulveo del clítoris de una yegua en estro.
Vestíbulo
Comienza en el himen y termina en los labios vulvares. Es aquí donde se localiza la abertura de la uretra
y además las paredes contienen glándulas vestibula­
res, que tienen la misión de lubrificar en el momento
de la cópula.
Vagina
Es el órgano copulador de la yegua, y en su ex­
tremo caudal se encuentra el himen. Recibe al pene
durante la cópula pero no acoge la descarga semi­
nal, ya que ésta se deposita directamente en el cue­
llo del útero.
En ocasiones las yeguas tienen vaginitis. Para
tratar este problema se recomienda tomar una
muestra de la mucosa vaginal, realizar una citolo­
gía, un antibiograma y administrar el antibiótico de
elección en cada caso.
Útero
Se sitúa en la cavidad abdominal y pelviana. Está
constituido por el cuello, el cuerpo, los dos cuernos y
las dos trompas uterinas.
El cuello del útero o cérvix se une con la vagina,
mide unos 5-8 cm de longitud y 3-4 cm de diámetro.
En alguna ocasión el cérvix puede estar totalmente
fibrosado debido a reacciones cicatriciales antiguas
posparto o a que, simplemente, la yegua posee una
edad avanzada y la función de relajación cervical no
actúa como debería. Esta lesión dificulta la entrada
Vestíbulo vaginal donde se localiza la
abertura de la uretra.
Desgarro posparto de la mucosa vaginal en proceso
de cicatrización.
Útero de yegua en la que se observa el cuello, cuerpo,
cuernos uterinos y ovarios con folículos.
extienden desde los cuernos uterinos hasta los ova­
rios. Su función es recoger al ovocito.
Ovarios
Los ovarios de la yegua tienen forma arriñonada y
miden unos 7-8 cm de longitud y 3-4 cm de grosor,
con un peso de 70-90 g (cuando tienen actividad
ovárica). Se encuentran localizados en la región sublumbar, aproximadamente debajo de la 4a-5avértebra
Edema de los pliegues
endometriales de un útero en estro,
llamado también "Rueda de carro”.
Útero en un estro temprano con
edema y sin rueda de carro,
lumbar y están en contacto con la pared muscular
lumbar del abdomen.
Dentro del ovario, los folículos comienzan su cre­
cimiento hasta alcanzar un tamaño de 45-55 mm, en
función del tamaño y raza de la yegua, hasta adquirir
del semen y por lo tanto, en estos casos, es aconse­
una forma de “pera", que es el folículo preovulatorio.
jable realizar una inseminación artificial.
En las horas siguientes se producirá la ovulación, for­
El cuerpo del útero es cilindrico y está aplanado
dorsoventralmente. Los cuernos uterinos están situa­
mando un cuerpo hemorrágico que se transformará
en un cuerpo lúteo.
dos en la región abdominal. Sus bordes dorsales son
algo cóncavos y están unidos a la región sublumbar
Palpación rectal!
por el ligamento ancho, los bordes ventrales son
Para realizar la palpación rectal adecuadamente hay
convexos y están libres, no están unidos a ningún
que vaciar previamente el recto, utilizando un guante
ligamento.
bien lubricado. Por lo general, las yeguas se dejan
La presencia de endometritis o de quistes en es­
explorar sin necesidad de un potro de exploración,
tas zonas puede interferir en la fertilidad, por ello es
pero si se dispone de uno será mucho mejor para
importante realizar un examen ecográfico exhaustivo
prevenir accidentes. En las yeguas con mal carác­
para detectarlos lo antes posible.
ter se puede levantar una de las manos falseando el
Las trompas uterinas son dos conductos que
apoyo y así evitar la coz, o pueden incluso emplearse
unen los ovarios al útero. Se trata de dos tu­
medios coercitivos como es el torcedor en el belfo
bos flexuosos de unos 30 cm de longitud que se
inferior o un pellizco supraescapular.
Estructuras anatómicas destacables en la palpación rectal
Anatomía
Palpación rectal
Cuello del útero
o cérvix
5-8 cm de longitud y 3-4 cm de diámetro.
Estro: relajado y edematoso.
Diestro: pequeño, duro y tubular.
Cuerpo del útero
Cilindrico y algo aplanado dorsoventralmente.
Estro: edema de los pliegues endometriales
(rueda de carro).
Diestro: aumento del tono uterino, fácilmente palpable.
Cuernos uterinos
Se extienden lateralmente y dorsalmente hasta unirse
a la región sublumbar por el ligamento ancho, sus
bordes ventrales son convexos y están libres.
Estro: edematizados, poco tono.
Diestro: tono uterino, se palpa como unas estructuras
tubulares.
Ovarios
Forma arriñonada, miden de 7-8 cm de longitud
y 3-4 cm de grosor con un peso de 70-90 g en
actividad ovárica.
Estro: aumentan su tamaño debido al crecimiento de
folículos.
Anestro: pequeños, duros y acíclicos.
En el examen rectal se puede palpar el útero en una
una estructura anecogénica con forma redondeada,
posición central y los ovarios suspendidos dorsalmente
de entre 0,5 y 1 cm de diámetro. Dicha estructura
de la zona lumbar, el ovario derecho siempre se en­
conservará su forma circular u ovoide y un contorno
cuentra en una situación más craneal que el izquierdo.
regular hasta aproximadamente el día 17-18, mo­
mento en el que comienza a tornarse irregular.
Pruebas compDementarsass
ecografía
ción que, aunque no sean tan frecuentes, pueden
D iagnóstico de gestación
ser igualmente válidos. Uno de ellos es la palpación
El diagnostico de gestación en las yeguas se realiza
rectal, método que requiere una cierta experiencia
Existen otros métodos de diagnóstico de gesta­
mediante exploración ecográfica con una sonda de 5
previa para la detección temprana de la gestación;
MHz.
se puede realizar alrededor del día 20 posovulación.
La primera imagen que se observa ventralmente
Otro método para detectar la gestación es el
es la vejiga de la orina, se visualiza como una man­
empleo de un macho recela. Se comprueba "el no
cha oscura (hipoecogénica), más o menos grande en
retorno al estro" de las yeguas, que puede ser con­
función del tiempo transcurrido desde la última mic­
siderado como un signo de que la hembra está ges­
ción; a continuación se aprecia el cérvix y el cuerpo
tante. Algunas hembras pueden entrar en estro aún
del útero. La visión de la vesícula embrionaria es rela­
estando gestantes, por lo que se debe tener mucho
tivamente precoz en el caso de las yeguas gestantes.
cuidado para no caer en el error de cubrir a la yegua
Hacia el día 14-15 posovulación se puede observar
nuevamente, pudiendo provocar un aborto.
Diagnóstico de gestación por ecografía
1. Embrión
de 16 dias
poscubrición.
2. Gestación
de 28 días.
3. Gestación
de 75 días.
4. Aborto
de 120 días.
5. Momento
del parto al final
de la gestación.
Por último, existen métodos de diagnóstico de
gestación hormonales pero, hasta el momento, no
son muy fiables y por ello su uso no es muy común.
Patologías más frecuentes
detectadas con ecografía
Ováricas
En el examen ecográfico del ovario, las patologías
más frecuentes son:
° Folículos anovulatorios por transición prima­
veral: en esta época es necesario inducir la ovula­
ción en la mayoría de las yeguas, ya que si estos
folículos no llegan a ovular pueden alcanzar tama­
ños de hasta 9-10 cm de diámetro con el peligro
de provocar un dolor agudo en la yegua que in­
cluso puede llegar a desencadenar un cólico.
Un folículo de más de 70 mm es improbable
que ovule, así que puede ser conveniente admi­
nistrar una inyección de hCG para hacer que ese
folículo ovule en las primeras fases de su cre­
cimiento. El aspecto de estos folículos suele ser
parecido al de un folículo normal, con la diferen­
cia de que van perdiendo esa ecogenicidad tan
clara y en ocasiones comienzan a compartimentarse. Además, a la palpación resultan bastante
dolorosos.
° El tumor más habitual que nos encontramos en
el ovario es el tumor de las células de la granu­
losa, que presenta un aspecto duro y pequeño
aunque en ocasiones pueda ser también grande.
En su interior aparecen pequeña áreas oscuras
que son cavidades llenas de líquido.
° Ninfomanía o celo continuo es un síndrome neuroendocrino que cursa con una constante actitud
de celo. Este trastorno va unido a una degenera­
ción quístíca del ovario debido a la hipertrofia del
folículo.
Folículo ovillando rodeado de dos folículos pequeños que no
han llegado a desarrollarse.
Uterinas
La ecografía del útero evidencia otras afecciones
podemos realizar una biopsia uterina, en la cual
como:
hallaremos una infiltración de neutrófilos, desde las
° Endometritis aguda: cuando en la ecografía ute­
capas más superficiales hasta las más profundas.
rina nos encontramos una cantidad determinada
Como tratamiento se recomienda realizar la­
de líquido hipoecogénico intraluminal durante el
vados uterinos y a continuación introducir un
diestro, probablemente estemos ante una en­
antibiótico intrauterino, así se preparará el útero
dometritis aguda. Para su diagnóstico definitivo
para la siguiente cubrición o inseminación.
° Quistes endometriales: la presencia de estos
quistes pueden interferir en la gestación de la ye­
gua, sobre todo debido a su tamaño, número y
extensión en el útero. Estos quistes crean, mu­
chas veces, dudas o incluso errores en el diag­
Endometritis
aguda en una
potra de 4 años
tras 15 días
poscubrición.
nóstico de la gestación debido a que son prác­
ticamente iguales a un embrión de 15 días. La
principal y gran diferencia con los embriones es
que los quistes no crecen, no se mueven y, en
ocasiones, están compartimentados.
Vaginales
Los trastornos vaginales más importantes son la
neumovagina y la urovagina.
° La neumovagina consiste en una mala conforma­
ción entre el periné y el cierre de la vulva, de forma
que entra aire dentro de la vagina. Esto puede
___
provocar infecciones, reabsorciones embrionarias
° La urovagina se presenta con mayor frecuencia
y placentitis. Suelen padecer este trastorno las ye­
en yeguas viejas o en aquellas con una mala con­
guas viejas, los animales con extrema delgadez o
formación vaginal, que origina que se quede siem­
simplemente aquellas hembras con una alteración
pre una pequeña cantidad de orina en la vagina.
en la conformación del periné. Su resolución es
Un análisis de la concentración de urea y creati­
quirúrgica mediante la “técnica de Caslick".
nina nos confirmará que se trata de orina.
Lavado del
útero tras una
retención de
placenta y
una infección
uterina
posterior.
Aparato urinario
Introducción
Para realizar una exploración completa de este
El aparato urinario está formado por los riñones, los
aparato se debe realizar una historia clínica, obser­
uréteres, la vejiga de la orina y la uretra. Las funciones
var los genitales externos y la postura que adopta el
del aparato urinario son la eliminación de productos
animal durante la micción y finalmente realizar una
de desecho a través de la orina y el mantenimiento
palpación externa y/o una exploración rectal de las
de la homeostasis del medio interno. Estará indicada
estructuras del aparato urinario. Finalmente, es nece­
una exploración minuciosa cuando el animal pre­
sario tomar una muestra de orina para realizar una
sente cambios de comportamiento en el momento
analítica. En algunos casos incluso se optaría por
de orinar, o cambios evidentes en la calidad o volu­
realizar alguna de las pruebas completarías descritas
men de la orina.
a continuación.
Detalle del aparato genitourinario del caballo
1 Riñones
2 Uréteres
3 Vejiga
4 Vesícula seminal
5 Glándula prostética
6 Glandula bulbouretral
7 Uretra
8 Epididimo
9 Testículos
10 Escroto
11 Prepucio
12 Pene
13 Cordón espermático
14 Conducto espermático
15 Base de la pelvis
Detalle del aparato genitourinario de la yegua
1 Riñones
2 Uréteres
3 Cérvix
4 Vagina
5 Vulva
6 Uretra
7 Base de la pelvis
8 Vejiga
9 Cuerpo del útero
10 Prolongación
derecha del útero
11 Trompa de Falopio
12 Ovario
Historia cDíoica
en la parte izquierda de la línea media; presenta un
En la historia clínica deberán verse reflejadas, además
aspecto liso, es movible y, si está sano, no presenta
de los datos relativos a la identificación del animal, las
dolor a la palpación. El riñón derecho sólo se puede
respuestas del propietario o cuidador del caballo a
palpar cuando está desplazado y es muy grande.
las preguntas clásicas de la anamnesis: ¿qué le pasa
al animal? ¿desde cuándo? ¿a qué lo atribuye?
Se debe prestar especial atención a todo aquello
relacionado con las alteraciones en la micción del ca­
ballo, o si el animal bebe u orina más de lo habitual.
Los uréteres no se suelen palpar, a no ser que
estén engrosados debido a una obstrucción o una
infección, en cuyo caso están tensos y dolorosos a
la palpación.
La vejiga de la orina, cuando se encuentra vacía,
es difícil de explorar. En cambio, cuando está repleta
Exploración
se puede palpar fácilmente junto al borde de la pelvis.
En caso de cistitis, la pared de la vejiga está engro­
Darecta
sada y dolorosa a la palpación. Se pueden percibir
Inspección
los cálculos urinarios, pero esta patología es poco
La micción es un acto reflejo que se produce por es­
común en caballos. En las situaciones de parálisis
tímulos mecánicos, debido a la distensión de la ve­
u obstrucciones, la vejiga se encuentra distendida y
jiga de la orina, y por estímulos de tipo químico, a
con las paredes tensas.
consecuencia de la composición de la orina, que son
La palpación rectal de la porción pélvica de la ure­
recogidos por los receptores del plexo nervioso de la
tra es difícil y tan sólo es posible en machos que pre­
sentan cálculos en esta zona. La palpación externa
pared de la vejiga.
Los caballos orinan de 4 a 6 veces al día, elimi­
nando un total de 2 a 11 litros de orina, esto depende
mucho de las condiciones ambientales de humedad
de la uretra en el macho se inicia en el prepucio y
acaba en el escroto.
El objetivo es buscar zonas hinchadas o dolorosas
a causa de la presencia de cálculos alojados en la
y temperatura.
zona peniana o perineal. Para facilitar esta maniobra
se puede exteriorizar el pene administrando xilacina o
En los équidos, es posible palpar el riñón izquierdo
acepromacina favoreciendo así su salida del prepu­
mediante exploración rectal. Se puede alcanzar el
cio. En este momento se puede proceder a sondar la
polo caudal de dicho riñón en el techo del abdomen,
uretra del macho.
Variaciones en la emisión de orina
Modificación
Causas
Poliuria (aumento del volumen de la orina)
Administración de diuréticos, insuficiencia renal
crónica, hiperadrenocorticismo, diabetes insípida,
polidipsia psicógena, etc.
Oliguria (disminución del volumen de la orina)
Deshidratación, insuficiencia renal aguda, etc.
Anuria (ausencia de orina)
Cálculos, rotura de la vejiga o de la uretra.
Polaquiuria (aumento de la frecuencia de micción)
Cistitis, uretritis, etc.
Disuria (micción dolorosa)
Urolitiasis, cistitis, acumulación de esmegma,
decúbitos prolongados, neoplasias, etc.
Iscuria (retención de orina)
Síndrome de cauda equina con parálisis vesical.
Estranguria (expulsión lenta y dolorosa de la orina)
Desgarros uretrales.
Iscuria paradójica (salida de la orina por desbordamiento) Causas neurológicas que afectan a la médula espinal.
Pruebas compQememtarias
A nálisis de orina
La orina es el líquido orgánico de desecho elaborado
por el riñón y almacenado en la vejiga. Su composi­
ción definitiva se ve alterada por cualquier afección
del sistema urinario, pero también por trastornos en
otros órganos del animal como corazón, hígado y
páncreas. Hay que tener en cuenta que los riñones
participan en la eliminación de muchas sustancias
tóxicas y medicamentosas.
Las muestras de orina se deben de recoger en un
recipiente limpio y, a ser posible, estéril. Sí el análisis
no va a ser inmediato, se puede conservar hasta 12
horas a 4 °C.
La orina obtenida se recoge en un bote para llevar al
laboratorio y realizar el urianálisis.
El análisis de orina incluye:
0 Valoración macroscópica: color, olor, turbidez.
° Valoración física y química.
° Valoración microscópica del sedimento urinario.
Cultivo y aislamiento bacteriano.
Las tiras de orina proporcionan una información
La tira de orina de la
muestra de orina de la
yegua indica una reacción
fuertemente positiva a
presencia de eritrocitos,
mioglobina/hemoglobina y
proteína urinaria
aproximada del pH, densidad o presencia de glu­
cosa, de cuerpos cetónicos, de sangre y/o hemoglo­
bina en la orina. La densidad urinaria se puede deter­
minar con más precisión con un refractómetro.
Sondas de distinto tamaño,
vaselina y botes para recoger la
orina en el sondaje vesical del
caballo.
Detalle del sondaje vesical en el
macho. El pene se exterioriza
aplicando un relajante muscular
y al cabo de 15 minutos ya se
puede introducir la sonda.
Interpretación de las tiras de orina
Parámetro
Asociación
pH (normal: 7,0-9,0)
pH <7 en acidosls metabólica, ejercicio prolongado,
alimentación con concentrados; fisiológico en potros
Proteínas (normal: <100 mg)
Proteinuria en lesiones glomerulares e inflamatorias, hemorragias;
orinas alcalinas dan falsos positivos
Densidad (normal: 1.020-1.050)
Potros lactantes tienen < 1.010
Isostenuria (1.008-1.017) en insuficiencias renales
Glucosa
Síndrome de Cushing, estrés (liberación de glucocorticoides),
diabetes mellitus
Cuerpos cetónicos
Aumento del catabolismo proteico (raro)
Bilirrubina
Hemolisis, ictericia obstructiva
Hemoglobina
Hemolisis intravascular (el suero aparece hemolizado)*
Mioglobina
Rabdomiolisis por ejercicio (el suero aparece normal)*
‘Una reacción positiva de la tira de orina no diferencia entre hematuria, mioglobinuria y hemoglobinuria. El cambio de color del suero
(hemolizado) sólo aparece durante la hemolisis.
Aspecto de la
orina obtenida
de una yegua
que presentaba
hematuria.
Este color
oscuro también
se podría
deber a una
mioglobinuria.
Citología del sedimento urinario en el caballo
Sedimento urinario
Alteración
Eritrocitos (más de 5 por campo)
Hematuria, inflamación, traumatismos, cateterismos, coagulopatías
Leucocitos (más de 5 por campo)
Piuría, inflamaciones del tracto urinario
Bacterias
Pielonefritis, cistitis
Células epiteliales escamosas
Alteraciones de vejiga, uretra o vagina
Células epiteliales de transición
Alteraciones de pelvis renal, uréteres, vejiga o uretra
Células epiteliales renales
Pielonefritis, amiloidosis
Cilindros hialinos
Glomerulonefritis, nefrosis grave
A veces se ven cilindros de mucoproteínas
Cristales
Carbonato cálcico y oxalato cálcico son comunes
Perfil bioquím ico de la función renal
La creatinina es un indicador más sensible que la
La azotemia es un término que define el incremento
urea para detectar la enfermedad renal. Su concen-
de sustancias nitrogenadas en la sangre y se carac-
tración está influenciada por la masa muscular, por
teriza por la elevación de los niveles de urea y creati-
lo que suele estar incrementada en sementales y en
nina en el suero.
individuos de razas muy musculosas.
En la insuficiencia renal, tanto aguda como
fino, se puede apoyar firmemente el transductor so­
crónica, se da un aumento de estos parámetros
bre la piel para obtener distintos planos de la zona.
acompañado de isostenuria (densidad de la orina
La imagen de la cápsula renal es ecogénica y la cor­
1,008-1,017).
teza renal es un área homogénea con finos ecos e
En los casos de nefrolitiasis y cálculos uretrales,
hipoecoica, en relación con los tejidos que la rodean.
estas alteraciones vienen acompañadas de aumento
La pelvis renal se identifica como una línea o banda
de eritrocitos, leucocitos y cristales en el sedimento
ecogénica en el centro del riñón.
urinario.
Para visualizar la vejiga en un potro, se puede ha­
En situaciones de uroperitoneo, la azotemia se
cer colocando la sonda del ecógrafo directamente
presenta junto con alteraciones en los niveles de
sobre la piel. En los adultos, sin embargo, se debe
electrolitos sanguíneos, con incremento de los niveles
hacer a través del recto con una sonda lineal de 5
de sodio, cloro y descenso de los niveles de potasio.
MHz. La vejiga se visualiza como una estructura eco­
Las alteraciones en las proteínas séricas se ob­
génica, de tamaño variable. Por vía transrectal, tam­
servan cuando el caballo padece una insuficiencia
bién se puede apreciar el contorno y el grosor de la
renal crónica, con disminución de los valores de la
pared.
albúmina y las globulinas, como consecuencia de la
pérdida de proteínas debido a la grave lesión renal.
Biopsia renal
Ecografía
fermedad renal difusa, masas renales o cuando se
La biopsia renal está indicada en los casos de en­
La ecografía percutánea se puede realizar con una
quiere conocer con exactitud el patrón histológico de
sonda sectorial de 2,5-5 MHz. El riñón derecho se
la lesión. La técnica no está exenta de riesgos, por
encuentra en posición ventral respecto a las apófisis
lo que hay que tomar precauciones. Es mejor reali­
espinosas transversas, en los espacios intercostales
zar una biopsia guiada por ecografía para precisar el
14 a 16; el riñón izquierdo en el 17° espacio inter­
punto de obtención de la muestra y evitar cualquier
costal, en la fosa paralumbar izquierda coincidiendo
daño a los grandes vasos, al bazo o al intestino. En
con una línea horizontal imaginaria entre la tuberosi­
el caso del riñón izquierdo, se puede realizar una téc­
dad coxal y la isquiática. Este último se localiza un
nica a ciegas, mediante palpación a través del recto,
poco más centralmente que el derecho en la cavidad
pero la técnica de elección es hacer una biopsia
abdominal. Si el caballo tiene mucho pelo, se reco­
ecoguiada.
mienda afeit. .. la zona; si tiene poco pelo o es muy
Mediante ecografía percutánea se puede visualizar bien el
riñón y tomar medidas del mismo para valorar una posible
renomegalia.
Para realizar una biopsia renal es mejor guiarse con ecografía
para asegurarnos de no dañar ninguna estructura importante
del riñón o de órganos adyacentes.
Aparato locomotor
Exploración del .
aparato locomotor
Examen general
Examen clínico del aparato muscular
Examen clínico del aparato tendinoso
Examen clínico del aparato podotroclear
Examen clínico del aparato osteoarticular
El aparato locomotor del caballo está conformado anatómicamente por diversas estructuras del sistema mús­
culo esquelético que sirven de sostén para todos los aparatos fisiológicos que permiten al animal realizar la
locomoción.
Huesos, articulaciones, músculos, tendones y ligamentos interactúan de manera armónica durante la loco­
moción y, tanto los tejidos blandos como el tejido óseo, están diseñados para resistir las fuerzas a las que se
someten de manera repetitiva con la actividad normal, sin sufrir cambios en su estructura y funcionamiento.
Sin embargo, cada tejido tiene una resistencia determinada que depende de su composición, ubicación ana­
tómica y función. Cuando este equilibrio se rompe se desencadenan las cojeras.
La claudicación se define como la alteración de la marcha producida por dolor o restricción del movimiento.
Examen general
AmamimesDS
Por otra parte, se valoran las alteraciones locomo­
Factores de riesgo o predisponentes:
toras que estas posibles malformaciones ocasionan,
• Edad y raza.
teniendo en cuenta la trascendencia que tienen tanto
• Aplomos defectuosos.
en la selección como en la cría del caballo.
• Conformación defectuosa (ensillados).
• Herrajes inadecuados para esa conformación.
Un aplomo se considera correcto cuando los ra­
dios óseos de sus miembros anteriores y posteriores
• Disciplina deportiva a la que se dedica.
convergen adecuadamente en sus articulaciones, de
• Tipo de terreno sobre el que trabaja.
tal modo que posibiliten la correcta transmisión de
« Medio donde vive el animal (box o prado).
fuerzas y avances por los ejes de mayor densidad
ósea, repartiendo el esfuerzo equitativamente entre
Exammemi en estacüón
sus estructuras.
• Evaluar aplomos de frente, de perfil y desde la
De este modo, ninguna estructura -hueso, liga­
parte caudal; los defectos de aplomos predispo­
mento o músculo- debería realizar sobreesfuerzos por
nen a patologías óseas, tropiezos, distensiones de
sobrecargas adicionales, y la locomoción resulta fácil,
ligamentos, etc.
adecuada y no debe salvar resistencias inapropiadas.
• Evaluar actitudes anormales de los miembros
En el examen de los aplomos se valoran las es­
(posturas antialgidas o descansos constantes de
tructuras (huesos, ligamentos o tendones) que re­
uno de los miembros).
ciben sobrecargas adicionales de apoyo o tensión
• Evaluar dificultades funcionales (parálisis de neivio ra­
debido a una mala conformación, tanto en los miem­
dial), problemas mecánicos (retracción de tendones).
bros torácicos como en los pelvianos. La observa­
ción debe realizarse craneal (de frente), lateral (de
Conformación de los aplomos
en estación y locomoción
de los miembros del caballo
perfil) y caudalmente (por detrás) para examinar la
disposición columnar de los miembros.
En el caso de potros durante el crecimiento,
El caballo debe aplomarse para compartir el peso en
los defectos de aplomos resultan más sencillos de
las cuatro extremidades con un descanso rotatorio
corregir despalmando el casco de manera ade­
en tres de ellas. Las alteraciones en los aplomos de­
cuada hasta su completa corrección. Por ejemplo,
ben ser valoradas como uno de los principales cau­
cuando la situación del casco se produce hacia el
santes de las patologías de la locomoción.
exterior, se denomina izquierdo.
Carpus valgus y carpus varus que provocan sobrecarga en la articulación carpiana
Caballo con defecto de apoyo estaquillado.
La desviación se produce a partir del menú-
trascendencia de este aplomo es mínima, aunque sí
dillo izquierdo propiamente dicho. Este defecto
que va a provocar sobrecarga de ciertas estructuras
puede ser uni o bilateral. En algunos casos la
óseas y ligamentosas.
Aplomos del tercio anterior
Normal
Remetido
Plantado
Corvo
Trascorvo
Aplomos tercio posterior y sobrecarga articular
Aplomos tercio posterior
Sobrecarga articular
Plantado
Tracción ligamentosa debido a un aplomo incorrecto
Inspección regional
colaterales de la cuartilla o digitales (la única per­
Se realiza un examen clínico de todas las estructuras
cepción de pulso en condiciones fisiológicas es
implicadas en el aparato locomotor como articula­
en ejercicio). También se busca el calor propio
ciones, grupos musculares o tendinosos. Se evalúa
de procesos agudos (comparándolo con el lado
la forma, el tamaño, la simetría, la integridad (p. ej.
tumefacciones, abscesos, etc.) y la presencia o au­
sano, con la región simétrica).
° Directa profunda: se busca dolor, se hace a
sencia de soluciones de continuidad.
punta de dedos o por pellizcamiento de la piel, los
músculos y los tendones; se evalúa consistencia,
tono muscular y crepitaciones.
• Directa superficial: se deben buscar inflama­
© Indirecta: se hace con pinza de tentar o podálica,
ciones, tumefacciones, edemas, callos, cambios
también con sondas rígidas o blandas para eva­
de consistencia y de forma, pulsación de arterias
luar trayectos en el caso de fístulas.
Palpación
Examen por palpación del dorso.
Palpación de la corona y fibrocartílagos.
Toma de temperatura del casco.
Comprobación de caballo lunanco.
Palpación de la articulación carpiana.
Palpación de la bolsa tarsiana.
Prueba de flexión
Pruebas:
° Movimientos de manipulación o pasivos. Se eva­
lúa la funcionalidad de músculos y articulaciones,
se aprecia si dichas estructuras están normales o
alteradas (por tumor, parálisis o problemas mecá­
nicos), también se puede apreciar dolor.
• Prueba de flexión. Mantener la articulación flexionada durante 1 a 2 minutos, luego hacer trotar
al animal, evaluando los primeros 6-7 pasos (si
aumenta la claudicación es prueba positiva, hay
afección en la articulación).
° Prueba de extensión o de la cuña de Lungwitz. Se
coloca al animal sobre una rampa y se le levanta
uno de los miembros por 1 a 2 minutos, luego hay
que hacerle trotar.
Pronación-supinación de la articulación coxo-femoral.
Prueba de extensión
32
Test de flexión en una mano.
Test de Wobbler. Se comprueba la falta de consistencia del tercio posterior.
Extensión de la articulación tarsiana (tercio posterior).
Percusión)
• Los movimientos de balancín (cabeza y cuello)
Se percute el casco, con los dedos o martillo para
también son útiles para determinar la claudicación:
encontrar oquedades.
ante un problema del miembro anterior, la cabeza
y el cuello se elevan al apoyar el miembro afec­
Exam en de Da m archa
(8a claudicación se
maniifiiesta más)
tado (en algunos casos inclina la cabeza hacia el
lado sano), desplazando el centro de gravedad y
disminuyendo presión en el miembro afectado.
Se procede a poner el caballo al paso en una su­
• Esta elevación se produce para colaborar con el
perficie lineal y despejada de al menos 30 m y a ob­
movimiento frente a la dificultad funcional y para
servarlo desde fuera de la línea de avance, desde
no distender músculos del miembro afectado.
ambos lados poniendo atención en cada una de las
• También tiene valor diagnóstico examinar el caba­
extremidades de una manera seriada.
llo montado en cada uno de sus aires (paso, trote
° Debe examinarse en terreno duro y en terreno
y galope) ya que el peso del jinete aumenta la pre­
blando, de forma que permita al menudillo des­
sión sobre el dorso del caballo y el descenso del
cender lo suficiente para realizar su evaluación.
menudillo aumenta en cada tranco, por lo que nos
Como norma general, las cojeras de origen óseo
permitirá un examen clínico más completo.
(artritis, osteítis podal) se manifestarán más agu­
° Trabajo del caballo en el caminador (¡treadmill): lo
das en terreno duro, mientras que las cojeras de
que nos permite evaluar su locomoción de una ma­
tendones, músculos, ligamentos y cápsulas se
nera precisa, repetitiva y sin estar sujeta a alteracio­
manifestarán más claramente en terreno blando.
nes de la marcha debidas al terreno.
® También debe evaluarse en subida y bajada, al
paso, al trote y al galope, ya que el aumento de
tensión sobre las diferentes estructuras anatómi­
cas (sesamoideo distal y flexor superficial, en su­
bida, y codo con escápula, en bajada) favorece­
rán el diagnóstico de la patología que presenten.
• Se debe hacer trotar al animal en círculos, con una
cuerda larga dejando el miembro que claudica en
la parte interior para que aumente la presión y se
manifieste mejor la cojera.
La longitud del cabo debe acortarse, dismi­
nuyendo el radio del círculo, para permitir que el
animal aumente la presión sobre las estructuras
anatómicas laterales y mediales y el trabajo sobre
la escápula aumente.
La claudicación se manifiesta por actitudes
Cuando se da a la cuerda en círculos evaluamos
la extremidad de la parte interior que soporta más presión
y manifestará mejor la cojera.
y movimientos anormales, por ejemplo mayor
apoyo en un miembro que en el otro, apoyo en
pinzas o talones, o sobre la zona medial o lateral
del casco. Debe fijarse la atención de manera se­
riada en cada uno de los miembros del caballo,
comenzando con el Al (anterior izquierdo), AD (an­
terior derecho), Pl (posterior izquierdo), PD (pos­
terior derecho) y se compara la locomoción del
miembro examinado con el homólogo. También
se compara si hay mayor o menor flexión en la ar­
ticulación examinada.
Caballo en un caminador para evaluar la locomoción.
Claudicación o cojera
Si se sospecha de un esguince del pie, se realiza
la torsión de la articulación interfalángica distal. Se
toma la cuartilla y se fija, y se mueve el pie hacia
Síntoma clínico, que se presenta en marcha o
ambos lados para comprobar si existe dolor.
estación, de un trastorno estructural o funcional
Prueba de flexión del tarso. También se flexiona
en uno o más miembros. Es el resultado de una
la articulación femorotibiorrotuliana. Aunque no es
sincronización inapropiada de algunos compo­
patognomónica de tarso nos sin/e para la detec­
nentes del sistema locomotor (Rooney). La pér­
ción de esparaván.
dida de sincronía puede ser estructural, funcional
Prueba de la fijación patelar: sirve para evaluar
o ambas a la vez.
la movilidad de la rótula dentro de la articulación
femorotibiorrotuliana. Se toma la rótula y se sube
sobre la tróclea medial del fémur, se levanta la ró­
Cuando el problema se presenta en los miem­
tula y al mismo tiempo, para que se enganchen
bros posteriores, la grupa se eleva en apoyo-eleva-
los ligamentos, se lleva hacia fuera. Cuando existe
ción para desplazar el peso del cuerpo al miembro
fijación patelar se hace lo contrario.
homólogo y colaborar en la elevación; la cabeza y
Movimientos de cabeza de un caballo cojo
Normal
Balancín
cuello pueden dirigirse de manera leve hacia delante
a fin de no recargar el miembro que claudica. Esta
elevación provoca un movimiento anormal de todo
el cuerpo.
Tipos de cojeras en caballos
Inclinación hacia un bípedo: se produce en patologías que impliquen
la claudicación del bípedo opuesto (infosunas, mialgias de dorso).
Marcha rígida-envarada (p.ej. tétanos, envaradura por rabdomiolisis generalizada, ataxias nerviosas en atrofias cerebelosas).
Locomoción del caballo
Según el momento metabólico del animal
° En frío
• En caliente
• Continua
Huella del caballo al paso.
Según el momento de la cojera
» De apoyo
° Elevación
• Mixta
Según la evolución
• Aguda
° Crónica
° Intermitente
• Compensatoria
Según el grado de dificultad
° De primer a cuarto grado
® Leves-moderadas-intensas
Según la etiopatogenia
• Por dolor
• Dificultad funcional (paresia-parálisis)
® Dificultad mecánica (ejemplo anquilosis,
retracción de flexores)
Apoyo de lumbres en la mano de un caballo.
Pruebas diagnósticas
complementarias
Bloqueo nervioso diagnóstico
Bloqueo anestésico palmar
Hueso IV metacarpiano
(metatarsiano)
—
Consiste en insensibilizar, mediante anestesia local (lidocaína o mepivacaína) comenzando desde la parte
distal de las manos, los nervios cuyo trayecto pasa
por esas localizaciones para valorar la remisión de la
cojera tras la insensibilización. Se realizará siguiendo
los siguientes pasos:
Valorar el caballo al trote sobre terreno duro y de­
terminar las características de la cojera.
Inocular el anestésico en la zona sospechosa de
ser el origen de la patología.
Hacerlo andar durante 5 minutos para difundir el
anestésico y posteriormente ponerlo al trote sobre
suelo duro para valorar la cojera.
Valorar el grado de remisión de la cojera.
En caso de no remitir la cojera o tener una mejoría
casi inapreciable, repetir la anestesia de conduc­
ción en el siguiente punto de inoculación (se rea­
liza de distal a proximal).
Ejemplo de estructuras desensíbilizadas en el blo­
queo del nervio digital palmar bajo:
• El hueso navicular.
La bolsa navicular.
Los ligamentos sesamoideos distales.
La porción distal de los tendones flexores.
El corion de la ranilla y la suela.
< El tercio palmar y la cara solear de la falange distal.
La anestesia de bloqueo intra-articular comple­
menta la anterior y es de muchísima ayuda en el diag­
nóstico por bloqueo de la articulación afectada.
Radiología
Permite evaluar el sistema osteoarticular, las super­
ficies internas de las articulaciones y los reflejos de
lesiones que dejan estructuras como los tendones
sobre el hueso, como por ejemplo en caso de es­
guince del tendón extensor digital del dedo.
Nervio lateral palmar (plantar)
metacarpial (metatarsa!)-----
Ecografía
Termografía
Es una técnica no invasiva que permite el examen de
La termografía permite detectar los cambios de tem­
vainas, tendones, músculos, cápsulas sinoviales y
peratura que se producen en una zona determinada
en general todas las estructuras blandas del caballo.
de una extremidad, por alteraciones en su circulación
Las ecografías más habituales realizadas como diag­
sanguínea (proceso inflamatorio o séptico).
nóstico son las del miembro anterior, en los tendones
flexores, suspensor del menudillo, ligamento anular,
codo y encuentro.
Gammagrafía ósea
con tecnecio-99m
En el miembro posterior se realizarían ecografías
Consiste en la utilización de radioisótopos que son
de babilla y tarso; y axiales como las realizadas en el
captados por los tejidos que están sufriendo un pro­
miembro anterior.
ceso degenerativo o inflamatorio. Posteriormente se
Se utiliza también para examinar el músculo dorsal
mide la emisión de rayos gamma. Proporciona infor­
y la grupa para determinar las zonas a infiltrar o para
mación respecto a la vascularización relativa y la velo­
determinar inyecciones enquistadas.
cidad del metabolismo tisular.
Analíticas laboratoriales
Resonancia magnética nuclear
Enzimas musculares: CK, LDH, AST, perfiles
Es una técnica de alto coste económico. Permite to­
bioquímicos que evalúan el estado del músculo,
mar imágenes detalladas de los tejidos mediante un
(ejemplo relación calcio-fósforo). La extracción de
fuerte campo magnético. El alto contraste del tejido
sangre debe hacerse de la yugular y deben ex­
blando ofrecido por resonancia magnética hace que
traerse dos muestras, una para conservarla con
esta técnica sea ideal para valorar el cartílago articular,
EDTA, y otra muestra sin conservantes (suero).
ligamientos, tendones, capsula articular, sinovial.
Análisis de liquido sinovial: se obtiene mediante
punción de la cápsula y es muy importante sobre
Tomografía computarizada
todo para determinar la presencia de neutrófilos y
Permite evaluar cambios patológicos en los huesos
bacterias en el interior de la articulación y, de esta
de una manera más precisa que la simple radiografía.
manera, diferenciar el proceso séptico.
Cultivo microbiológico: consiste en realizar un antibiograma de líquido sinovial en aquellos procesos
que provoquen alteraciones infececciosas en el
interior de la articulación.
Artroscopia de la articulación
La artroscopia se lleva a cabo cuando se quiere rea­
lizar una inspección microscópica de los tejidos blan­
dos, tales como ligamentos y tendones y para eva­
luar el grado o daño de degeneración del cartílago de
la superficie flexora del hueso navicular.
Resonancia
magnética nuclear
del casco de
un caballo con
podotrocleítis.
Examen
El examen del aparato muscular del caballo, debido
o Pruebas de movilidad dorso-lomo: rigidez, re­
chazo a moverse o a flexionar el dorso.
a su gran extensión, es complejo pero lo basaremos
en lo siguiente:
Exámen de la grupa
Se debe evaluar la presencia de dolor crónico y atro­
Inspección
fia por desuso. Luxación coxofemoral (lunanca).
• Evaluar la presencia de tejido blando subcutáneo y
° Palpación y manipulación del trocánter mayor
lesiones que pueden no ser aparentes (por ejemplo,
para detectar crepitación y desplazamiento. Com­
atrofia de músculos escapulares-lesiones nerviosas).
parar las distancias entre el sacro y los coxales.
° Distensión de cápsulas articulares.
° Dorso, lomo y pelvis: debe evaluarse el eje axial
completo a ambos lados (atrofias, desviaciones la­
Palpación y manipulación
terales, fracturas, nodulos, pérdida de pelo, asime­
o Mediante el tacto se pretenden localizar zonas ca­
tría coxal). Debe realizarse una palpación fuerte con
lientes, dolorosas, endurecidas, etc.
los dedos para detectar dolor o hipersensibilidad.
° Pruebas de movilidad dorso-lomo: rigidez, re­
Pruebas de extensión, flexión
y abducción
chazo a moverse o flexionar el dorso.
• Examen rectal: estructuras pélvicas internas.
° Pruebas de flexión y extensión del tarso (prueba
de esparaván): casi siempre diagnóstica, aunque
afecta a otras estructuras (menudillo, rodilla, anca).
Examen de la espalda
y el miembro anterior
Se evaluará toda anomalía que provoque alteración
Principales patologías
musculares en el caballo
tanto morfológica como fisiológica de la extremidad.
Miositis. Es la inflamación del músculo por dife­
En la zona del antebrazo (radio, codo, húmero y hom­
rentes causas. La miositis degenerativa llegaría a
bro) puede detectarse:
producir necrosis muscular.
• atrofia de los músculos escapulares
(lesión nerviosa).
• ligamentos colaterales del codo,
fractura de olécranon.
o hombro (artritis, bursitis, fractura del surco bicipital).
Miopatías en el caballo.
Las más importantes son:
• Rabdomiolisis: como consecuencia de
ejercicios extenuantes o intensos.
Nutricionales: deficiencias de vitamina E y Se.
Exámen del dorso
• Palpación y manipulación: palpación fuerte con los
dedos para detectar dolor o hipersensibilidad en la
zona dorsal de apoyo de la silla.
° Tóxicas: en alto porcentaje por endotoxemia
(también en caso de tétanos, botulismo).
• Traumáticas.
Examen clínico del aparato tendinoso
Los tendones son el elemento de sostén del sistema
característica, aliviando el peso en los talones. Du­
óseo. En el caballo, debido a las múltiples disciplinas
rante la palpación se aprecia dolor, calor y edema,
que puede realizar con un jinete encima, se produce
por lo que en el examen conviene realizar esta ma­
un incremento en el peso natural del caballo que
niobra en apoyo, y luego en elevación, donde los ten­
hace descender sus articulaciones hasta el suelo.
dones se relajan y es posible palpar mejor todas las
estructuras.
En el examen clínico de los tendones en un animal
Ecografía
sano, tanto los tendones flexores como el ligamento
La ecografía es una técnica diagnóstica no inva­
suspensorio deben ser perfectamente identificables y
siva que permite determinar la localización, exten­
sus bordes han de estar perfectamente definidos. A
sión y naturaleza del traumatismo del tendón en los
la palpación presentan cierta sensibilidad al tacto, por
equinos.
lo que a veces conviene comparar con el miembro
Es necesario el conocimiento exacto de las es­
opuesto. La presencia de dolor sólo es representativa
tructuras anatómicas para realizar una buena inter­
cuando es constante, en la zona que se palpan y en
pretación del estado de las vainas sinoviales, las cáp­
intensidad. Deben recorrerse desde la zona articular
sulas y los tendones.
proximal a la distal intentando delimitar engrasamien­
Para realizar la técnica, el caballo debe aplomarse.
tos, tumefacciones, edematizaciones, crepitaciones y
Hay que rasurar la zona que se va a examinar y des­
dolor asociado.
infectarla posteriormente con alcohol. Tras ello se
Si el caballo o yegua presentan dolor muy acen­
impregna la piel de la zona con 0,5 cm de gel de
tuado, el animal adopta una posición antiálgica
ecografía. El ecógrafo debe tener una sonda lineal o
III metacarpiano
0
IV metacarpiano
Ligamento accesorio
inferior (ICL)
Tendón digital flexor
profundo (DDF)
Ligamento suspensor
(SL)
Tención digital flexor
superficial (SDF)
Ecografía de tendones.
sectorial de 7,5 MHz y el contacto con el gel de eco-
los tendones flexores soportan unas presiones ma­
grafía debe ser el máximo posible.
yores que el resto de los tendones del cuerpo del ca­
En algunos casos los propietarios se niegan a
rasurar la zona para que su caballo no denote una
ballo, por lo que su examen clínico es muy habitual a
la vez que imprescindible.
lesión tendinosa, pero hay que advertir que realizar
así una expíe, ación ecográfica provocará muy baja o
nula calidad c'o la imagen obtenida.
El examen de los tendones flexores debe referirse
a las zonas anatómicas del hueso metacarpiano III
Los tendones tienen propiedades (impedancia
o metatarsiano III (hueso de la caña), de tal forma
acústica, reflexión, refracción y atenuación) que de­
que los hallazgos ecográficos y en la palpación los
penden de su estructura y que determinan la eco-
denominaremos:
genicidad de estos permitiendo la división de las
1. Lesiones altas (tercio superior de la caña).
estructuras a estudiar en ecogénicas, hiperecoicas,
2. Lesiones medias (tercio medio de la caña).
y anecoicas. Por ejemplo: una rotura fibrilar aguda
3. Lesiones bajas (tercio inferior de la caña).
de los tendones aparece como un espacio anecoico
4. Vientre de trucha (se denomina así cuando afecta
o con una ecogenicidad difusa en el tendón o liga­
a los tres tercios de la caña y el tendón lesionado
mento afectado (estas lesiones son frecuentes en el
es el flexor superficial).
tendón flexor digital superficial y en el ligamento sus­
pensorio del menudillo).
En el caso de tendinitis crónicas, pueden provo­
car formación de fibrina que llegará a producir defor­
La ecografía de los tendones
flexores en eS miembro anterior
y con aparición o no de dolor). En el caso de lesión
Debido a su capacidad de extensión y contracción
tendinosa de flexores, la cojera provocada es de tipo
máxima cuando se realiza una actividad deportiva,
mecánico a causa de la restricción del movimiento.
maciones (muchas veces sin tumefacción en la zona
Examen clínico del aparato podotroclear
Diagnóstico clínico
El examen clínico puede dividirse en tres grupos:
1. Examen en la estación y al paso
2. Procedimientos diagnósticos
3. Anestesia de conducción
Observación
• Actitud postural: cuando la dolencia se encuen­
tre en los talones, el caballo evitará apoyarlos, vol­
cando el peso en las lumbares: de la misma ma­
nera que lo volcará en los talones cuando la lesión
se encuentre en lumbares.
° Aplomado: cuando el caballo se encuentra mal
aplomado o herrado incorrectamente, el peso
del mismo se transmitirá de manera desequi­
librada al casco, provocando sobrecargas y
desgastes irregulares en el mismo, con lo que el
aplomado del mismo debe hacerse corrigiendo
este factor.
• Examen al paso: en caso de cojera se producirá
la sobrecarga del casco y el animal levantará la
Exámen de las lumbres del caballo con la pinza podal.
cabeza de la extremidad afectada.
• Examen en círculo: el animal presentará un in­
cremento de cojera cuando la cuerda se dé a la
mano que presenta alguna patología. En caso
de encontrarse la patología en la zona lateral
aumentará por el desplazamiento de la presión
lateral.
• Manual: realizando presión con ambos pulgares
en la fosa de chenot (fosa navicular).
* Presión con la pinza de casco: se realiza tomando
un diámetro longitudinal con la muralla opuesta,
Despalmado de casco,
presionando el surco central con la pinza y abar­
cando ambos talones.
Prueba de Da cuña
de Lungwitz
La cuña de Lungwitz es una pieza longitudinal de
madera cuyas caras forman un ángulo de 20° y per­
mite, mediante su elevación desde el suelo, tensar el
tendón flexor profundo y aumentar la presión sobre
los talones del casco y sobre la bolsa podotroclear.
Debe mantenerse así durante 60 segundos mientras
se mantiene en el aire el miembro opuesto, y poste­
riormente se saca al animal al trote.
Prueba de Lundwing.
Examen clínico del aparato osteoarticular
Las patologías articulares en el caballo de silla están
condicionadas en gran medida por el régimen de en­
trenamiento y por la competencia a la que son some­
tidos estos ejemplares. El carpo es la articulación que
mayor incidencia de patologías presenta, aunque el
resto de articulaciones pueden presentar lesiones
que se determinarán con un examen adecuado.
Los componentes que encontramos en una articula­
ción son los siguientes:
8 Los huesos. Cubiertos en su parte final por el car­
tílago articular.
• El cartílago articular. Es un tipo de tejido conec­
tivo que ayuda a reducir la fricción que producen
los movimientos.
® La membrana sinovial. Es un tejido que reviste
Elaboración de una herradura para casco.
a la articulación y que secreta el líquido sinovial,
protector de la articulación.
• El líquido sinovial. Líquido transparente que
8 Radiología: se utilizan aparatos portátiles para la
ayuda a la lubricación y disminuye el roce entre los
clíníca de campo con una emisión de 60 a 90 kV
cartílagos.
y un amperaje de 15-30 mA. Las proyecciones
• Ligamentos. Son bandas de tejido conectivo
más habituales son: la dorso-palmar, la latero-
duro y elástico que le dan sostén y limitan el movi­
medial oblicua y la proyección del navicular (cuña
miento de la articulación.
de 60°).
• Tendones. Tejido conectivo duro que sujeta a los
8 Artroscopia: nos permite el examen quirúrgico
músculos que controlan los movimientos de las
de la articulación en su parte interna, pudiendo
articulaciones.
valorar el estado del cartílago articular y de frag­
• Bursas. Son bolsas llenas de líquido localizadas
entre huesos, ligamentos u otras estructuras ad­
mentos de éste que con radiología no se pueden
detectar.
yacentes que ayudan a amortiguar la fricción en
una articulación.
• Meniscos. Cartílagos amortiguadores que se en­
Lesiones óseas y articulares más
frecuentes encontradas en el caballo
cuentran en la rodilla y en otras articulaciones.
• Cápsula articular. Tejido fibroso que encapsula
toda la articulación.
O
Fracturas de ratón de la primera falange
(chips)
El examen clínico
O
Fractura conminuta de la primera falange
La exploración del aparato osteoarticular debe incluir:
o
Constricción del ligamento anular palmar
• Examen extemo: se determinarán las modificacio­
o
Fractura de los sesamoideos proximales
nes que el soporte óseo presenta sobre la aparien­
o
Sesamoíditis
cia normal del miembro afectado mediante la pal­
o
pación seriada de todas las articulaciones y huesos
Enfermedad metacarpiana dorsal [bucked
shins). Sobrecañas
que las comunican (p. ej. sobrehueso en cañas).
o
Fracturas (chips)
• Examen dinámico: detectar en movimiento las
o
OCD (osteocondrosis disecante)
alteraciones que la patología ósea provoca sobre
o
Osteoartritis o enfermedad articular
la locomoción.
8 Anestesia seriada: descrita anteriormente.
degenerativa
Osteomielitis/artritis séptica
PT, Alb, Glob, Fibri = T
GB, Neu = T
GR, Hto = i
Rabdomiolisis por ejercicio
CK, AST, PT, Alb, Glob T
BUN, Crea = T
K, Cl = i
GR, Hto = T
Miodegeneración nutricional
CK, AST t
BUN, Crea t , K=T
Na, Cl 1
Mionecrosis bacteriana
CK, AST T
BUN, Crea - T
Color, sangre, proteínas,
cilindros T
Color, sangre, proteínas,
cilindros = T
GR, Hto T
GB, Neu = T i
T aumento del nivel; I disminución del nivel; = nivel igual
GB= glóbulos blancos; GR= glóbulos rojos; Neu= neutrófilos; Hto= hematocrito; AST= aspartato amino transferasa; PT= proteínas totales; Alb= albúmina;
Glob= globulinas; Rbri=fibrinógeno; BUN= nitrógeno de la urea; Crea= creatinina; Na= sodio, K= potasio; Cl= cloro
Después de un ejercicio intenso, la ducha reduce el calor metabólico y las lesiones del aparato locomotor.
Sistema nervioso
Exploración del
sistema nervioso
Historia clínica
Exploración neurológica de la cabeza
Exploración de la postura y la marcha
Exploración del cuello y extremidades anteriores
Exploración del tronco y
extremidades posteriores
Exploración de cola y ano
Exploración de caballos en decúbito
Obtención de líquido cefalorraquídeo
Otras técnicas exploratorias
Ficha de examen neurológico del caballo
El diagnóstico de las enfermedades neurológicas de
El sistema nen/ioso se encarga de la relación funcio­
los équidos puede suponer un importante reto para
nal del organismo con el mundo exterior y coordina
el clínico, pues a menudo estos animales presentan
la función de sus diversas partes. Se puede dividir en
múltiples alteraciones de la conducta, problemas
cinco partes:
mentales o de la marcha como ataxia, paresia, es-
• Cerebro: telencéfalo y diencéfalo
pasticidad, hipermetría y que pueden ser difíciles de
• Cerebelo
localizar. Para llevar a cabo una exploración neuro-
• Tronco encefálico: mesencéfalo, metencéfalo (o
lógica es esencial un conocimiento básico de la es­
puente) y mielencéfalo (bulbo raquídeo o médula
tructura y función del sistema nervioso (SN). No obs­
oblongada)
tante, un simple pero ordenado examen neurológico
• Médula espinal
puede darnos suficiente información para localizar la
• Nen/ios periféricos (pares craneales, nervios espi­
lesión. Para realizar la exploración no se necesita un
nales y sistema nervioso autónomo).
equipamiento especial y, por lo tanto, está al alcance
de todos los clínicos. Hay que seguir una sistemática,
empezando por la cabeza y acabando por la cola.
Representación del sistema nervioso del caballo
Encéfalo
Medula espinal
Arco reflejo: Corte de la médula espinal y órganos
y células implicados en un arco reflejo
consciencia. También se localizan centros vitales tan
importantes como el de la respiración, cardiaco y
movimientos intestinales.
La médula espinal se divide en distintos segmen­
tos medulares, de donde parte un nervio medular.
Receptor
En los caballos hay 8 segmentos cervicales (C8),
Sustancia
gris
Sustancia
blanca
18 torácicos (T18), 6 lumbares (L6) y 2 o 3 sacros
(S2-3). La médula espinal se conecta con los mús­
culos a través de la neurona motora inferior (NMI)
Médula
Neurona
sensitiva
que es la unidad efectora del SNC regulada a su vez
por la neurona motora superior (NMS), situada en el
área motora de la corteza cerebral.
Para que se produzca una respuesta consciente
a un estímulo se debe transmitir hasta la corteza ce­
rebral por una vía sensitiva aferente por la raíz dorsal
medular. La NMS lleva la respuesta por la raíz ven­
tral medular, donde conecta con la NMI y ésta con el
músculo efector y actuará de forma consciente. Por
lo tanto, la percepción de un estímulo y su respuesta
necesita una vía ascendente y otra descendente in­
Nervio
espinal
tactas. Otra respuesta diferente es la del arco reflejo.
Efector
Aquí el estímulo viaja por una neurona sensitiva, entra
en la médula por la raíz dorsal, luego una interneurona se conecta a la raíz ventral, donde la NMI actúa
sobre el músculo efector produciendo la respuesta
Cerebro, cerebelo, tronco encefálico y médula es­
inconsciente.
pinal forman el sistema nervioso central (SNC), y
Los centros nerviosos reciben información sensi­
los nervios periféricos el sistema nervioso periférico
tiva a estímulos dolorosos y temperatura: esto es co­
(SNP). La función del telencéfalo o corteza cerebral
nocido como nocicepción. La propiocepción, proce­
es la del comportamiento, la consciencia o estado
dente del aparato locomotor, informa de la posición
mental y carácter del caballo. El diencéfalo o tálamo
de las diferentes partes del organismo en el espacio.
y el hipotálamo controlan el sistema neuroendocrino
De este modo, los animales tienen noción de la si­
y sistema nervioso autónomo. El cerebelo es el en­
tuación y postura de las diferentes partes del cuerpo
cargado de la coordinación motora. Por el tronco
sin intervención del sentido de la vista. Las vías pro-
encefálico pasan las vías sensitivas y motoras; aquí
pioceptivas llevan información al tálamo y al cerebro
se originan los pares craneales y el sistema reticu­
(propiocepción consciente) o al cerebelo (propiocep­
lar encargado de mantener el estado mental y la
ción inconsciente).
Historia clínica
Es esencial en el diagnóstico de las enfermedades
Es conveniente disponer de un registro de los datos
neurológicas. Además de los datos generales de
para apuntar todos los signos que obtenemos del
edad, raza, sexo, aptitud, se necesita recoger los si­
examen neurológico y que nos servirá como ficha
guientes datos:
clínica del paciente. Además de la exploración neuro-
• Síntomas observados, inicio y progresión. Los
lógica, no se debe olvidar una exploración de la mar­
traumatismos y lesiones vasculares suelen te­
cha, del sistema musculoesquelético y de la toma de
ner un inicio rápido, mientras que inflamaciones,
las constantes vitales para evaluar la gravedad de la
neoplasias o degeneraciones suelen ser procesos
lesión neurológica.
crónicos y progresivos.
• Cambios en el comportamiento.
• Historia de traumatismos.
• Otras enfermedades como abortos o síntomas
respiratorios puede sugerir infección por Herpesvirus equino 1.
• Antecedentes familiares, problemas congénitos.
• Número de caballos afectados.
• Medio ambiente del caballo (establo, parque).
• Cambios en el manejo, incluyendo la dieta, ac­
ceso a plantas tóxicas...
• Vacunaciones y desparasitaciones.
• Medicamentos administrados.
Hay que tener en cuenta los problemas de comportamiento en los caballos cuando se realiza una exploración neurológica.
Exploración neurológica de la cabeza
En primer lugar hay que fijarse en el comportamiento
N„ óptico (par DO)
del caballo. Los animales con lesión cerebral suelen
Responsable de la visión. Hacer el reflejo de amenaza
girar de forma compulsiva la cabeza hacia el lado de
acercando la mano al caballo. Tiene que responder
la lesión. También apreciar el estado mental del ca­
cerrando los párpados. Los potros no lo presentan de
ballo para evaluar su nivel de consciencia, valorando
una forma completa hasta los 7-14 días. La respuesta
su respuesta a estímulos visuales, auditivos o dolo­
anormal indica lesión de las vías aferentes o eferentes.
rosos. Según la gravedad de la falta de estímulos, el
No oculomotor (par DDO)
o en coma cuando hay una falta total de respuesta.
lnen/a los músculos constrictores de la pupila regu­
La posición de la cabeza nos indica la localización de
lando el diámetro pupilar. Hay que apreciar el tamaño
la lesión. Las lesiones cerebrales producen un giro la­
de las pupilas en relación a la luz ambiental y su si­
teral de la cabeza y cuello hacia el lado de la lesión
metría. También la respuesta a la luz, evaluando los
sin afectar a la nuca. En las lesiones vestibulares se
reflejos fotomotores directo e indirecto. Para ello nos
produce el giro lateral de la nuca hacia el lado de la
situamos en un lugar en penumbra e iluminamos el
lesión pero sin afectar al cuello. Estos síntomas se in­
ojo del caballo con una linterna. La respuesta normal
crementan al tapar los ojos al caballo.
es la contracción de la pupila (miosis); la lesión pro­
(Ver ficha examen neurológica).
duce el efecto contrario (midriasis).
Exploración de pares craneales
N. troclear (par BV)
Se realiza explorando la cara y la cabeza, los ojos y sus
Junto con el par VI o N. abducens son los responsa­
reflejos, anejos oculares, ollares, boca, laringe y faringe.
bles de la posición del globo ocular dentro de la ór­
N„ olfatorio (par I)
observar la posición de los ojos y sus movimientos,
Tapando los ojos, se le ofrece para oler alimentos, al­
moviendo la cabeza con la mano. Las lesiones de
bita y de sus movimientos. Por lo tanto, tenemos que
cohol, etc. Hay que observar la respuesta del animal.
los pares III, IV y VI produce estrabismo lateroventral,
La falta de respuesta se llama anosmia.
dorsomedial y medial, respectivamente.
Evaluación de la simetría de la cara. Con ello evaluamos
posición de los ojos, estrabismos y otras alteraciones en las
que se ven implicados los pares craneales.
Reflejo de
amenaza. Al
acercar el dedo
al ojo, el caballo
responde
cerrando los
párpados y
apartando la
cara.
Reflejo pupilar.
Con esta prueba se
evalúan el N. óptico
y el N. oculomotor.
Exploración del sistema nervioso
animal se muestra depresivo, en situación de estupor
Nervio trigémino
No trigémino (par V)
Tiene fibras motoras encargadas de inervar los mús­
culos de la masticación y otras fibras sensitivas que
recogen la sensibilidad de la cabeza mediante las
ramas maxilar, mandibular y oftálmica. La lesión pro­
voca parálisis con caída de la mandíbula y salida de la
lengua con sialorrea. Para evaluar la función sensitiva
se pellizca la piel en las regiones inervadas por cada
una de las tres ramas. La rama oftálmica se evalúa
mediante el reflejo corneal, es decir, tocando ligera­
mente la córnea con el dedo o con un objeto romo.
INL afoducems (par VI)
Se valora la capacidad de retraer el globo ocular apli­
Ramas oftálmica, maxilar y mandibular del N. trigémino.
cando una ligera presión digital sobre el globo por
encima del párpado cerrado y notando el reflejo de
retracción.
Proyección externa de las tres ramas del N. trigémino.
Rama
oftálmica
Rama
maxilar
Rama
mandibular
Presionando encima del párpado para comprobar
la capacidad de retracción del globo ocular que regula
el N. abducens.
INL facial (par Vil)
Inerva los músculos de la expresión de la cara y las
glándulas lacrimales y salivares y por lo tanto controla
los movimientos de párpados, orejas, labios y olla­
res. Se explora mediante el test de amenaza, reflejo
palpebral y corneal. Por lo tanto, para detectar una
lesión de este nervio es necesario determinar la si­
metría de la cara y comprobar que no hay caída de la
oreja, labios o salida de saliva.
El reflejo corneal nos indica el correcto funcionamiento
del N. facial.
N. vesfibulococlear (par VIH)
Presenta una rama auditiva que es responsable de la
audición y otra rama vestibular responsable del equi­
librio que controla la posición de la cabeza, cuello,
cuerpo y extremidades en relación con la gravedad
y el movimiento. Las lesiones vestibulares provocan
alteraciones en el equilibrio, giros de la cabeza hacia
el lado de la lesión o nistagmos con la fase rápida
hacia el lado contrario de la lesión. Los signos de la
enfermedad vestibular se agravan tapando los ojos
al caballo.
Evaluar la capacidad auditiva de un caballo es difícil.
Podemos dar una palmada fuerte y observar la reacción
del caballo.
N. glosofaríngeo (par IX), N. vago
(par X), N. espinal accesorio (par XI!)
Estos pares inervan la faringe y la laringe con ramas
motoras y sensitivas. Estos nervios se exploran com­
probando la deglución normal de alimentos o de
se produce el reflejo de deglución. El síntoma más
importante es la parálisis laríngea. La parálisis del
N. accesorio espinal provoca atrofia de los músculos
del cuello, pero esto es difícil de detectar.
N. hipogfloso (par XAH)
Es el nervio motor de los músculos linguales. Se ex­
plora intentando extraer la lengua, a lo que el caballo
se resiste con fuerza. La lesión bilateral interfiere con
la aprehensión y deglución de alimentos.
La valoración del N. hipogloso se realiza intentando extraer
la lengua.
Exploración
del sistema nervioso
agua, o bien, al realizar el sondaje nasogástrico cómo
181
La forma de evaluar el N. glosofaríngeo es observando a los caballos cuando
comen y beben.
Exploración de la postura y la marcha
Con esta exploración podemos detectar lesiones en
Caminando al paso con la cabeza y el cuello en
el cerebelo, tronco encefálico, médula espinal, ner­
extensión.
vios periféricos y músculos. Las alteraciones de la
Caminando al paso tirando de la crin y de la cola.
marcha dan lugar a debilidad, ataxia, hipometría o
Obligando al caballo a giros amplios y cerrados.
hipermetría. Esto se puede evaluar de 0 a 5 depen­
Andando hacia atrás.
diendo de la gravedad, siendo el 0 lo normal y 5 es­
Subiendo y bajando planos inclinados.
tando el animal en decúbito.
Caminar al paso con los ojos tapados.
Lo primero es observar cuál de los dos miembros
presenta una marcha o postura anormal y si hay evi­
dencias de anormalidades musculoesqueléticas. Por
lo tanto observar al animal:
• Caminando al paso, andando en paralelo o detrás
del caballo para detectar asimetrías.
Distintas maniobras para explorar la postura y la marcha en
un caballo.
Si queremos estudiar la posición propioceptiva hay que:
• Andar al caballo entre obstáculos.
• Obligar a subir escalones o frenar de repente.
• Cruzar las extremidades anteriores o forzar un
aplomo de base amplia para que corrija su postura.
Evaluación de la debilidad
o paresia
En los caballos se manifiesta porque arrastran las ex­
tremidades con desgaste del casco en las lumbres,
tropiezan y se muestran torpes, presentan un arco
más bajo en la fase del paso. Ai cargar más peso so­
bre la extremidad más débil, se producen temblores
y el animal puede caerse por falta de soporte. Los
animales empeoran con los movimientos en círculo
y andando sobre planos inclinados con la cabeza
elevada. Para comprobar la debilidad de las extremi­
dades anteriores se tira fuertemente de la crin y la de­
bilidad de las posteriores se hace tirando fuertemente
de la cola. Si encontramos paresia indica lesión de
NMS localizada en el tronco encefálico o médula es­
Cruzando las extremidades anteriores o realizando la prueba
del saco evaluamos la posición propioceptiva del caballo.
pinal, nervios periféricos y/o músculos. Sin embargo,
la lesión de la NMI produce una parálisis flácida.
Para comprobar el posicionamiento propioceptivo se
realizan las siguientes pruebas exploratorias:
Encéfalo de
un potro que
mostraba
ataxia. Las
lesiones que
presentaban
no fueron muy
graves.
Evaluación de la incoordinación
o ataxia
• Cruzar las extremidades anteriores: el caballo
sano corrige enseguida la posición.
Se produce por un déficit propioceptivo. Se mani­
• Prueba del saco: con las extremidades posterio­
fiesta con marcha inestable y balanceo de la pelvis,
res. Colocar debajo de una extremidad un saco
tronco o de todo el cuerpo, se les cruzan las piernas,
resistente y estirar de él. El caballo siente que se
pueden pisarse y tropezarse. Si se les hace caminar
desplaza su extremidad y corregirá inmediata­
en círculos cerrados el miembro afectado pivotea a
mente la posición.
su alrededor y empeoran los síntomas. Al caminar
con la cabeza elevada por un plano inclinado se
Hipermetría
acentúan los signos de ataxia sobre todo de las ex­
Es un movimiento exagerado y sin dirección de las
tremidades posteriores.
articulaciones. Se observa un sobreestiramiento de
los miembros. Puede originar un paso más corto o
más largo. Esta dismetría sin paresia es típica de las
enfermedades cerebelares.
Hipometría
También conocida como espasticidad, rigidez o mar­
cha envarada. Produce un movimiento rígido y corto
de las extremidades. Cuando se presenta sugiere
lesión de la NMS o de las vías vestibulares. Como
mejor se observa es caminando con el caballo ha­
cia atrás o subiendo una pendiente con la cabeza
elevada.
Exploración del cuello y extremidades anteriores
Mediante inspección y palpación podemos apreciar:
para observar la “respuesta cervical” que responde
• Defectos esqueléticos.
contrayendo los músculos.
• Atrofias y asimetrías musculares.
La exploración propioceptiva se realiza empujando
• Sudoración local: implica alteración de los tractos
lateralmente al caballo al nivel de la espalda cuando
simpáticos descendentes de la médula espinal.
está en estación o caminando. El caballo tiene que
• Palpación de la musculatura axial y de las vérte­
mantener el equilibrio y corregir la posición. Si tiramos
bras para comprobar deformidades o dolor.
simultáneamente de la cabezada y de la cola pode­
mos comprobar la fuerza de cada lado del cuerpo. El
Para realizar la exploración manipularemos el cuello
animal atáxico tropieza o se equivoca con las extre­
con las manos para comprobar la movilidad normal o
midades anteriores. También podemos provocar un
bien rigidez o incluso la negativa del caballo a flexio-
movimiento ventral o lordosis al pellizcar con los dedos
nar el cuello. Para estimular el músculo cutáneo to­
en la reglón de la cruz. Un animal débil arquea más el
caremos con unas pinzas distintas partes del cuello
dorso o incluso dobla las extremidades anteriores.
Exploración del tronco y extremidades posteriores
Lo primero es observar y palpar las malformaciones o
defectos esqueléticos, asimetrías musculares provo­
cadas por lesiones en la sustancia gris toracolumbar
de la médula espinal o puntos de sudoración local.
El reflejo cutáneo o panicular se realiza al pinchar
en la cara lateral del tronco, provocando la contrac­
ción del músculo cutáneo y observando cómo el ca­
ballo sacude la piel. El estímulo sensitivo viaja a los
segmentos medulares C8-T1. Las lesiones que se
encuentren en esta vía no permitirán la respuesta.
La evaluación de la propiocepclón se lleva a cabo
presionando lateralmente en la pelvis y tirando fuerte
de la cola cuando el animal está en marcha.
El reflejo panicular se realiza pellizcando la piel del tronco y observando la respuesta
del músculo subcutáneo.
Exploración de cola y ano
Con esta exploración se evalúan las estructuras iner­
vadas por los nervios de los segmentos medulares
sacros y coccígeos. Lo primero es determinar el
“tono de la cola". Al levantar la cola siempre se siente
que el animal quiere bajarla. Si está ílácida, sin movi­
mientos voluntarios, indica lesión en los segmentos
sacrococcígeos. Para comprobar el reflejo perineal
se pellizca la piel del periné con unas pinzas notando
la flexión de la cola cuando la sostenemos con la
mano. En el reflejo anal se nota la contracción del
esfínter anal al pellizcar el ano o simplemente al to­
carlo con la punta del termómetro. Estos reflejos es­
tán mediados por el nervio pudendo y por los nervios
sacrococcígeos.
Ano dilatado por lesión de los nervios sacrococcígeos.
Cuando introducimos el termómetro en el recto podemos
comprobar el reflejo anal.
Exploración de caballos en decúbito
Dependiendo de si el caballo se puede levantar o no
pellizca la parte distal de la extremidad consiguiendo
de un decúbito nos indica a qué nivel se produce una
la flexión del menudillo, rodilla, codo y hombro. Aquí
lesión. Si puede utilizar las manos para levantarse
intervienen los nervios de los segmentos medulares
sugiere que la lesión está por detrás de T2. Si sólo
C6-T2.
puede levantar la cabeza, la lesión se localiza muy
craneal en la médula cervical.
En las extremidades posteriores se explora el re­
flejo flexor pellizcando la piel más distal de la extre­
Los reflejos de las extremidades se evalúan me­
midad y observando su flexión. El reflejo patelar se
jor en potros neonatos. Los reflejos espinales que se
realiza sosteniendo la extremidad parcialmente flexio-
pueden evaluar son conocidos como reflejo flexor.
nada y percutiendo con el martillo debajo de la rótula
Para ello se utilizan unas pinzas, con las que se
lo que origina la extensión de la rodilla.
Obtención de líquido cefalorraquídeo
La recogida del liquido cefalorraquídeo (LCR) esta
indicada en los casos de confirmación del diagnós­
^^^^^^P uncjór^tlantoocciD ital
tico presuntivo de una enfermedad neurológica. Su
• Se necesita una sedación profunda y colocar al caballo en decú­
interpretación tiene limitaciones, pues si el LCR se
bito lateral.
toma lejos de la lesión, probablemente no mostrará
• Depilar y desinfectar bien la piel antes de proceder a la punción.
alteraciones. En el caballo se puede recoger a nivel
• Utilizar una aguja de 19G y 7,5 cm de longitud. La aguja se in­
lumbosacro con el animal de pie y sedado, o bien
serta perpendicularmente al eje de la médula espinal y paralelo al
en la región atlantooccipital con el animal tumbado o
suelo en el punto medio del triángulo formado por la protuberan­
anestesiado.
cia occipital externa y los bordes craneales del ala del atlas.
Con la muestra se hace un análisis visual para
comprobar que el liquido es claro, sin color y no coa­
gula. La turbidez representa hipercelularidad y un
color rojizo indica la presencia de sangre. Un color
amarillento se atribuye a la bilirrubina que se define
como xantocromía. El examen completo del LCR,
• Al Insertar la aguja se aprecia una ligera resistencia al penetrar en
la duramadre.
• Después de este punto la resistencia disminuye, y la profundidad
a la que se encuentra el líquido ya se ha alcanzado.
• Aspirar con la jeringa con precaución para obtener un líquido
acuoso y claro.
con cultivo microbiológico incluido se lleva a cabo en
• Si se alcanza una profundidad de 10 cm y se toca el hueso sin
laboratorios especializados. En la tabla 2 se mues­
obtener LCR, se puede redirigir la aguja para intentar obtener el
tran los valores de referencia para el LCR del caballo.
líquido.
• Recoger el líquido en tubos con EDTA y sin aditivos para citología
y bioquímica respectivamente.
Valores de referencia del LCR en caballos
Punc'ón lumbosacra
(Green, C o nstan tine scu y K roll, 1993)
Punción
atlantooccipital
Punción
lumbosacra
• Se realiza con el animal de pie y ligeramente
1,004-1,008
1,004-1,008
• Preparar quirúrgicamente un área de 30x30
Leucocitos (pl)
0-7
0-7
Eritrocitos (pl)
<600
<600
Proteínas totales (mg/dl)
10-120
10-120
Albúmina (mg/dl)
24-51
24-56
• Infiltrar un anestésico y con un bisturí hacer
IgG (mg/dl)
3-8
3-10,5
una pequeña incisión en la piel. Se utiliza una
30-70
35%-75% valores
del plasma
40-75
45%-75% valores
del plasma
• Insertar la aguja con las manos verticalmente,
duce un movimiento inesperado del caballo.
Parámetro
Densidad
Glucosa (mg/dl)
sedado.
cm sobre el espacio lumbosacro.
• El lugar de inserción de la aguja es la línea
media inmediatamente caudal a la apófisis es­
pinosa de L6.
aguja de 18G y 15 cm de longitud.
decididamente y con precaución por si se pro­
CK (Ul)
0-8
0-8
LDH (Ul)
0-8
0-8
Lactato (mg/dl)
1,92±0,12
2,3±0,21
Sodio (mEq/l)
140-150
140-150
Potasio (mEq/l)
2,5-3,5
2,5-3,5
Cloro (mEq/l)
95-123
95-123
• Una vez que se ha penetrado en el espacio
Calcio (mg/dl)
2,5-6
2,5-6
aracnoides, que se nota por la reacción del
Fósforo (mg/dl)
0,5-1,5
0,5-1,5
Urea (mg/dl)
5-20
• Se traspasa el ligamento lumbosacro y al pe­
netrar en la duramadre y espacio aracnoides
produce una ligera respuesta local.
• Si aquí tropezamos con el hueso, entonces
retirar la aguja antes de redirigirla.
animal, el cono de la aguja se llena de líquido
y entonces ya se puede aspirar.
5-20
Otras técnicas exploratorias
No son de rutina y se realizan en hospitales de refe­
la región. Las mielografías se utilizan para buscar
rencia donde se encuentran los aparatos para obte­
puntos de compresión medular producidas por luxa­
ner las imágenes. Las angiografías se utilizan para
ciones o fracturas. La tomografía axial computari-
detectar neoplasias que ocupan el interior del crá­
zada (TAC) ha desplazado a las anteriores pues per­
neo; las venografías utilizan un medio de contraste
mite obtener imágenes de gran resolución útiles en
que permiten ver el seno cavernoso de la base del
el diagnóstico de neoplasias, hidrocefalia, abscesos
cráneo y que es capaz de detectar hemorragias en
cerebrales y hemorragias.
Ficha de examen
neurológico del caballo
(adaptado de Matthews y Andrews, 1990)
[ Datos generales
Nombre del propietario
Población
Nombre del caballo
Edad
Raza
Sexo
Aptitud
Peso
Historia clínica
Postura/apariencia
Evaluación nervios craneales
Izquierdo
N. olfatorio (I)
N. óptico (II) respuesta de amenaza, tamaño pupilar, reflejo pupilar
N. oculomotor (III) tamaño y simetría pupilar, reflejo pupilar, posición ocular
N. troclear (IV) posición ocular
N. trigémino (V) simetría cara, reflejo palpebral, retracción ocular
N. abducens (VI) posición y retracción ocular
N. facial (VII) expresión facial, simetría músculos, reflejo palpebral
N. vestibulococlear (VIII) posición ocular
N. glosofaríngeo (IX) reflejo de deglución
N. vago (X) reflejo deglución, disfagia
N. accesorio espinal (XI) atrofia músculo del cuello
N. hipogloso (XII) tono de la lengua
Simetría de la cabeza, cuello, cuerpo:
Manipulación de la cabeza y el cuello:__________________
Derecha-izquierda:___________________________________
Arriba-abajo:________________________________________
Movimientos involuntarios espontáneos (trémor, mioclonias):
Descripción de la marcha al paso y al trote:
Derecho
Realización de círculos:
Grandes, a la izquierda
Grandes, a la derecha
Pequeños, a la izquierda
Pequeños, a la derecha
Con ojos vendados
Con obstáculos
Plano inclinado arriba-abajo
Cabeza elevada
Marcha y postura {grado de 0 a 5)
0= sin déficits en la marcha
1= déficit escasamente perceptibles, em­
peoran al levantar la cabeza
2= déficit que se nota al paso
3= déficit en descanso y al paso; casi se
cae con la cabeza levantada
4= se cae o casi en una marcha normal
5= en decúbito
Bamboleo:
Delante:
Propiocepción:
EAI
EAD
EPI
EPD
Miembros anteriores
Miembros posteriores
Motor
Debilidad
Sensitivo
Espasticidad
Hipermetría
Ataxia
EAI
EAD
EPI
EPD
Reflejos
Hiperreflexia
Normal
Hiporreflexia
Patelar
Extensor digital
Tríceps
Flexor miembro torácico
Flexor miembro pélvico
Anal
Respuesta nociceptiva:
Exagerada:____________________ Normal:______________ Disminuida:
Tono de la cola:
Sistema autónomo:
Incontinencia urinaria:
Incontinencia fecal:
Sudoración:
Proteínas
Cultivo
Sensibilidad cutánea:
Valoración/comentarios:
Localización de la lesión:
Diagnóstico presuntivo:
Análisis de LCR:
Células
Radiografías:
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