Subido por Jennyfer Rios

Sanger-

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Secuenciación Sanger
Diapositiva 2.
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A finales de la década de 1970, los investigadores desarrollaron varias estrategias
para determinar, de forma sencilla y rápida, la secuencia de nucleótidos de cualquier
fragmento de ADN purificado.
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La que se convirtió en la más utilizada se denomina secuenciación dideoxídica o
secuenciación de Sanger.
Se trata de una técnica desarrollada por el bioquímico británico Frederick Sanger.
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El método es una forma de secuenciar una secuencia de ADN.
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Este método se utilizó para determinar la secuencia de nucleótidos de muchos
genomas, incluidos los de E. coli, moscas de la fruta, gusanos nematodos, ratones y
seres humanos.
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El método se basa en la acción de las ADN polimerasas.
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Capaces de unirse a una cadena de ADN a la que se le haya unido un fragmento
corto de ADN complementario (cebador) previamente e ir añadiendo nucleótidos.
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De este modo, a partir de una cadena simple, podemos obtener una doble cadena.
Este proceso que ocurre de forma natural en nuestras células es el que ocurre
también en la secuenciación de Sanger,
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salvo por un ingenioso detalle: la presencia de didesoxinucleótidos. Cuando una
polimerasa inserta un didesoxinucleótido, la síntesis de la nueva cadena se detiene.
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¿Qué se necesita para el método de Sanger?
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Para secuenciar una molécula de ADN mediante el método de Sanger clásico, es
necesario disponer de los siguientes elementos:
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ADN a secuenciar
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ADN polimerasa
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Primer o cebador (una secuencia de ADN que servirá como base para comenzar la
síntesis de ADN)
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Nucleótidos (A, T, C y G). Uno de ellos, marcado radiactivamente.
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Didesoxinucleótidos (ddA, ddT, ddG y ddC), desoxirribonucleótidos con una
pequeña modificación en el grupo unido al carbono 3 de la ribosa.
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utiliza ADN polimerasa, junto con nucleótidos especiales de terminación de cadena
llamados dideoxirribonucleósido trifosfatos (izquierda), para hacer copias parciales
del fragmento de ADN que se va a secuenciar.
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Estos ddNTP son derivados de los desoxirribonucleósidos trifosfatos normales que
carecen del grupo hidroxilo 3′. Cuando se incorporan a una cadena de ADN en
crecimiento, bloquean su elongación.
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El método de Sanger original paso a paso
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1. Amplificación del ADN
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Lo primero que hay que hacer para secuenciar una molécula por el método de
Sanger es amplificar el ADN que queremos estudiar. Esto servirá para obtener
muchas copias del fragmento que queremos analizar.
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Actualmente lo que se hace es amplificar el ADN mediante una PCR.
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2. Preparación de la muestra
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El segundo paso es añadir el ADN amplificado a las 4 reacciones independientes que
se han de preparar, cada una de ellas con:
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Una ADN polimerasa
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Un primer específico
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Uno de los cuatro tipos de nucleótidos (A, C, T y G) marcado radiactivamente
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El resto de nucleótidos no marcados
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En cada una de las disoluciones añadiremos una pequeña cantidad de un solo
tipo de didesoxinucleótido.
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3. Acción de la ADN polimerasa
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El siguiente paso será propiciar la síntesis de nuevas cadenas de ADN a partir de las
dobles cadenas problema, amplificadas en pasos anteriores. Para ello, se aumenta la
temperatura de las reacciones, lo que provoca la separación de las dos cadenas del
ADN del que queremos conocer la secuencia. Luego dejaremos enfriar para
favorecer la unión de los primers o cebadores.
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Una vez unido el cebador, comenzará la reacción de la ADN polimerasa, que irá
añadiendo nucleótidos marcados, hasta que inserte un didesoxinucleótido, se
detenga la síntesis y la nueva cadena se suelte. Entonces, la ADN polimerasa empieza
de nuevo. De este modo, en cada una de las reacciones obtendremos fragmentos de
diferentes tamaños, acabados en el didesoxinucleótido que hayamos empleado en
ellas.
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4. Electroforesis
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Tras la actuación de la ADN polimerasa, el resultado de cada una de las cuatro
reacciones se somete a una electroforesis.
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Una electroforesis consiste en colocar una mezcla de moléculas con diferente
tamaño y/o carga eléctrica en un “filtro” o soporte poroso, que puede ser en un gel.
Este filtro se introduce en una solución y se somete a un campo eléctrico. De este
modo, las moléculas se moverán por bandas más o menos rápido por el filtro según
su carga y tamaño. Por ejemplo, el ADN, que tiene carga negativa, migrará hacia el
polo positivo.
Diapositiva 22.
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Combinando la información de las cuatro electroforesis, podemos establecer el
orden de la cadena complementaria a la que estamos estudiando. Luego, solo hay
que cambiar las bases por sus complementarias y ya tendríamos las dos.
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Secuenciación Sanger por electroforesis capilar
Diapositiva 24.
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Sanger elaboró un buen método para secuenciar el ADN de un organismo. Sin
embargo, todavía tenía muchas cosas por pulir. Afortunadamente, las técnicas de
electroforesis capilar y su automatización favorecieron modificaciones en el método
de Sanger que perduran hasta el día de hoy:
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se dejó de utilizar nucleótidos radiactivos y se añadieron marcadores fluorescentes
a los didesoxinucleótidos (cada uno de ellos de un color diferente). Desde luego, una
técnica más visual y muchísimo más práctico, porque podemos visualizar los
resultados en un único gel y con una sola reacción. De este modo, lo que antes
veíamos como en la figura anterior, se puede ver como en esta figura. ¡Mucho más
ordenado y vistoso!
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SECUENCIACIÓN DIDEOXI MANUAL
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Para determinar la secuencia completa de un fragmento de ADN monocatenario
(gris), primero se hibrida el ADN con un cebador de ADN corto (naranja) marcado
con un colorante fluorescente o un radioisótopo.
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La ADN polimerasa y un exceso de los cuatro desoxirribonucleósidos trifosfatos
normales (azul A, C, G o T) se añaden al ADN cebado, que a continuación se divide
en cuatro tubos de reacción.
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Cada uno de estos tubos recibe una pequeña cantidad de un único
dideoxirribonucleósido trifosfato terminador de cadena (rojo A, C, G o T).
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Dado que éstos se incorporarán sólo ocasionalmente, cada reacción produce un
conjunto de copias de ADN que terminan en diferentes puntos de la secuencia.
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Los productos de estas cuatro reacciones se separan por electroforesis en cuatro
carriles paralelos de un gel de poliacrilamida (etiquetados aquí A, T, C y G).
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En cada carril, las bandas representan fragmentos que han terminado en un
nucleótido dado pero en diferentes posiciones en el ADN.
Diapositiva 33.
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Leyendo las bandas en orden, empezando por la parte inferior del gel y leyendo a lo
largo de todos los carriles, se puede determinar la secuencia de ADN de la cadena
recién sintetizada
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* Aquí se muestran los resultados de una reacción de secuenciación dideoxi.
De izquierda a derecha, las bandas en los cuatro carriles se produjeron
añadiendo nucleótidos G, A, T y C encadenados. Las moléculas de ADN se
marcaron con 32P, y la imagen que se muestra se produjo colocando una
película fotográfica sobre el gel y dejando que el 32P expusiera la película,
produciendo las bandas oscuras que se observan al revelar la película.*
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La secuencia, que aparece en la flecha verde a la derecha del gel, es complementaria
a la secuencia del ADN monocatenario gris original.
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SECUENCIACIÓN DIDEOXI AUTOMATIZADA
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Las máquinas totalmente automatizadas pueden realizar reacciones de
secuenciación dideoxídica. (A) El método automatizado utiliza una cantidad excesiva
de dNTPs normales más una mezcla de cuatro ddNTPs de terminación de cadena
diferentes, cada uno de los cuales está marcado con una etiqueta fluorescente de un
color diferente.
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Los productos de la reacción se cargan en un gel capilar largo y fino y se separan
por electroforesis.
Diapositiva 38.
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Una cámara (no mostrada) lee el color de cada banda a medida que se desplaza por
el gel y transmite los datos a un ordenador que ensambla la secuencia.
Diapositiva 39.
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(B) Una pequeña parte de los datos de este tipo de secuenciación automatizada.
Cada pico de color representa un nucleótido de la secuencia de ADN.
Diapositiva 40.
Aplicaciones de la secuenciación de Sanger
Diapositiva 41.
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La secuenciación de didesoxinucleótidos fue un bombazo científico en la década de
los 70, que impulsó la creación de proyectos tan importantes como el Proyecto
Genoma Humano, que empezaba a “cocinarse” como una posibilidad entre los
científicos de todo el mundo. Después de unos años, en los años 90, comenzó
formalmente este proyecto, gracias al avance en este tipo de técnicas de
secuenciación y a la aparición de la PCR.
Diapositiva 42.
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Actualmente la secuenciación de Sanger sigue utilizándose en los laboratorios, pero
tiene sus limitaciones. Por ello, se han desarrollado diferentes técnicas de
secuenciación de nueva generación, mucho más rápidas y económicas.
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