CONTRIBUTION À L'ÉTUDE DES COLÉOPTÈRES DE GUYANE Tome II

CONTRIBUTION À L'ÉTUDE DES
COLÉOPTÈRES DE GUYANE
Tome II
______
Sous la direction de
Julien
TOUROULT
______
Supplément au Bulletin de liaison d’ACOREP-France "Le Coléoptériste".
ACOREP-France, 45 rue Buffon, F-75005 PARIS
––––––––––
Septembre 2010
__________
-1-
PRÉAMBULE
La Guyane, un pays qui fait rêver la majorité
des entomologistes ! "Mes chasses aux
papillons" d'Eugène Le Moult en poche, on s’y
rend une première fois, on y retourne ou on s’y
installe, espérant y faire de grandes découvertes.
Mais au-delà du rêve, la très riche faune de ce
département d’outre-mer reste souvent discrète.
Les collectes nécessitent même parfois plus
d’opiniâtreté qu’en Europe. En dehors de rares
ouvrages spécialisés et de quelques sites web,
l'entomologiste dispose de très peu d'outils
synthétique pour aider à la détermination d'une
faune néotropicale exceptionnelle.
Chaque année de très nombreux articles sont
publiés sur la faune de Guyane, qui est l’une des
zones les plus étudiées d'Amérique du Sud. Ces
travaux viennent
surtout d’entomologistes
amateurs français ou étrangers, dont de
nombreux collègues d’ACOREP-France et de la
SEF.
Cependant il s’agit de publications dispersées
dans les revues, souvent très "pointues"
(descriptions d’espèces, révisions de genre) qui
ne permettent pas de se faire une vue
d’ensemble. Certains groupes sont même
"orphelins" et n’ont pas fait l’objet de publication
concernant la Guyane depuis plus d’un siècle.
Quand Julien Touroult m’a parlé de ce projet
en 2009, nous envisagions un fascicule normal
de notre Bulletin de liaison "Le Coléoptériste".
L’idée a rencontré un tel franc succès, tous les
auteurs sollicités ayant répondu positivement et
d’autres les ayant rejoints bien vite, que nous
disposons déjà de quoi éditer dans un premier
temps deux fascicules et la matière arrive pour
bâtir un troisième tome !
En chiffres, cela représente pour les deux
premiers tomes : 172 pages, 18 articles et 12
courtes notes, 22 auteurs, 350 taxons illustrés, 5
espèces nouvelles pour la Science et plus de 70
nouvelles citations pour la Guyane. Si le succès
se confirme, nous poursuivrons donc cette
initiative en publiant d’autres tomes sur la
Guyane, avec les mêmes auteurs et, bien sûr,
avec tous ceux qui voudront contribuer à cette
importante entreprise.
Cette publication consacrée aux Coléoptères
de Guyane marque la volonté d’ACOREP-France
d’être l’association des coléoptéristes français, y
compris ceux de Guyane, le plus vaste
département français.
En lançant cette série "spéciale Guyane",
notre but est de regrouper des vues d’ensemble
par famille, avec des listes faunistiques, des
genera permettant de classer les espèces et des
illustrations pour s’y retrouver.
Une autre ambition est de rechercher les
méthodes d'observation et les périodes les plus
favorables sur le terrain, afin de développer
efficacement les inventaires et les études pour
contribuer in fine à la connaissance et à la
préservation du patrimoine naturel.
À terme, il faudra aussi bâtir un "Référentiel
taxonomique des Coléoptères de Guyane",
régulièrement mis à jour. Le chantier est
immense mais cela n’empêche pas de
commencer à le défricher !
Au nom de tous les membres de notre
association, je remercie chaleureusement et
félicite l’ensemble des auteurs pour avoir
parfaitement joué le jeu et fourni des
contributions de qualité dans les délais impartis. Il
faut saluer particulièrement nos collègues
Gianfranco Curletti et Joachim Rheinheimer,
respectivement italien et allemand, qui ont fait
l’effort de rédiger en français.
Le matériel étudié dans les divers articles
provient principalement d’une jeune association
d’entomologistes, la Société entomologique
Antilles-Guyane (SEAG). Depuis 2007, cette
équipe innove dans les méthodes de collecte, en
développant notamment les techniques de
piégeage d’interception sur le littoral et dans
l’intérieur, elle étudie certaines familles et confie
le reste du matériel aux meilleurs spécialistes,
dynamisant ainsi l’étude des insectes de Guyane.
Un grand merci pour sa précieuse contribution en
terme d’articles et de matériel d’étude.
Il faut noter également l’effort des
gestionnaires d’espaces protégés de Guyane
(réserves naturelles, ONF, Parc Amazonien de
Guyane) qui, depuis quelques années, sont
demandeurs d’études entomologiques, ce qui a
grossi la source d'un matériel d’étude de grande
qualité.
Enfin, nous sommes redevables à la Direction
régionale de l’environnement de Guyane (DIREN)
qui aide financièrement ce projet d’ACOREPFrance. Je remercie donc l'ensemble de la
DIREN-Guyane pour ce soutien et tout
particulièrement son directeur adjoint, Monsieur
Arnaud Anselin, qui a été notre contact attentif et
bienveillant pour lancer ce projet.
Vous avez entre les mains le second tome de
la série "Contribution à l'étude des Coléoptère de
Guyane", il ne tient qu'à vous de nous fournir
votre contribution pour que cette publication
prenne petit à petit toute la place qui lui revient.
-2-
Jean Raingeard
Président d'ACOREP-France
Introduction à la faune des Erotylinae de Guyane
(Coleoptera, Cucujoidea, Erotylidae)
par Jean-Hervé YVINEC *
* 7 rue de l'église
F-60280 Bienville
[email protected]
Résumé. Cette introduction à la faune des Erotylinae de Guyane a pour objectif de
faire le point sur les connaissances sur ce groupe. Après une rapide présentation sur
l’état de la systématique de la famille, une description et des données sur la biologie de
ces insectes sont fournies. Le catalogue préliminaire des 145 espèces citées de Guyane,
sous forme de liste, est agrémenté de quelques photographies destinées à mieux situer la
morphologie de ces coléoptères et à en faire apprécier la beauté. Une première synthèse
chiffrée des données est proposée sous forme d’un tableau commenté. Ce catalogue
constitue donc une base de travail qui sera probablement rapidement enrichie.
Abstract. This introduction to the Erotylinae fauna of French Guiana aims at taking
stock of knowledge about this group. After a brief presentation on the state of the
systematics of the family, a description and data on the biology of these insects are
provided. The preliminary catalog of the 145 known species from French Guiana, as a
checklist, is illustrated with several photographs to better visualize the morphology of
these beetles and to appreciate their beauty. A first numbered synthesis of the data is
proposed as a table with comments. This catalog is thus a working basis which will
probably be improved rapidly.
Un intérêt récent pour la Guyane et pour les
Erotylidae m’a conduit à créer quelques outils me
permettant de débuter. Le dossier ACOREP sur la
Guyane représentait donc une bonne opportunité de
formaliser ce travail et de le partager. Leur étude a
pour objectif d’aboutir à moyen terme à un inventaire
de cette faune et à une présentation photographique
détaillée. C’est donc dans cet esprit qu’a été réalisé cet
article initial ; en espérant qu’il permettra aux
amateurs de la faune guyanaise d’apprécier l’intérêt et
la beauté de ces insectes.
Pharaxonothinae,
Loberinae,
Languriinae,
Cryptophilinae et les Erotylinae. L’étude génétique de
2004 doit être complétée, mais elle lance déjà des
pistes sur la composition en sous-familles, ce qui fait
penser que la systématique évoluera encore largement
dans les années qui viennent. La classification interne
aux sous-familles et aux tribus se précisera aussi
largement. Ces modifications récentes dans la
systématique nous ont conduit à restreindre pour
l’instant le domaine d’étude à la seule sous-famille des
Erotylinae (ex-Erotylidae).
Présentation de la famille des Erotylidae
Outils d'identification
Sur le plan des outils, des clefs de
détermination, la situation est moins riante car à part
deux clefs des genres anciennes en allemand de
Khunt (1909) et en anglais de Deldeer (1942), il existe
peu de synthèses modernes. On citera malgré tout
quelques outils particulièrement utiles dans le cas de la
faune sud-américaine comme ceux de Skelley sur les
genres Ischyrus et Scaphengis (Skelley, 1997 et 1998) ou
les très intéressants travaux de Peterson Lasaro Lopes
sur les genres Mycolybas et Oligocorynus (Lopes, 2006 et
2009). Ceci implique de faire des préparations
(Prepopharus eduardoi, fig. 1) et des extractions quasi
systématiquement pour pouvoir observer les palpes
maxillaires (Iphiclus bisquinquepunctatus, fig. 2) ou les
pièces génitales (I. bisquinquepunctatus, fig. 3).
Les sous-familles
Comme dans bien d’autres groupes, les
études modernes au moyen de méthodes classiques
ou de la génétique ont largement remanié la
systématique des Erotylidae. Les travaux récents de
Piotr Węgrzynowicz (Węgrzynowicz, 2002) et Richard
A. B. Leschen (Leschen, 2003) ont largement clarifié
les choses en intégrant dans la famille les anciens
Languridae. Ceci est confirmé par l’analyse
phylogénétique moléculaire (Robertson et al., 2004).
P. Węgrzynowicz divise les érotylides en deux sousfamilles les Xenoscelinae et les Erotylinae (incluant les
tribus des Dacnini, Languriini, Erotylini, Tritomini et
Encaustini) tandis que Leschen propose 6 sousfamilles.
Cela
donnerait :
Xenoscelinae,
-3-
Figure 1. Préparation en pièces détachées d’un Prepopharus eduardoi. Fig. 2. Palpe maxillaire d’Iphiclus bisquinquepunctatus.
Fig. 3. Edéage d’Iphiclus bisquinquepunctatus. Fig. 4. Aile de Mycotretus sp. Fig. 5. Habitus type de Mycotretus, M.
duodecimguttatus [8,1 mm], vue sous trois angles. Fig. 6. Habitus de Mycotretus sp. Fig. 7. Face ventrale de Mycotretus sp. Figs 8.
Habitus de Mycotretus dorsonatus, 8a : femelle [7,1 mm], 8b : mâle [6,3 mm]. Fig. 9. Habitus de Mycotretus floriger mâle
[7,6 mm]. Fig. 10. Habitus de Mycotretus maculatus mâle [8,3 mm].
-4-
Figure 11. Habitus de Mycotretus polyophtalmus mâle [6,87 mm]. Fig. 12. Habitus type d’Aegythus (A. burmesteri) [14 mm], IRSNB
photo Noël Mal. Fig. 13. Habitus d’Iphiclus quinquifasciatus femelle [10,5 mm], vue sous trois angles. Fig. 14. Habitus d’Iphiclus
duodecimpustulatus femelle [8,5 mm]. Fig. 15. Habitus d’Iphiclus bisquinquepunctatus mâle [8,7 mm]. Fig. 16. Habitus d’Iphiclus
(Habrodactylus) egensis (?) femelle [7,5 mm]. Figs. 17, a et b : Habitus d’Iphiclus bellulus et/ou nitidulus ? femelles [7,3 et
9,4 mm]. Fig. 18. Habitus type d’Erotylus, E. histrio, [25 mm], vue sous deux angles, IRSNB photo Noël Mal.
-5-
La présence de deux crochets sur les palpes
maxillaires, comme ceux que l’on aperçoit sur la
photographie (fig. 2), permet de distinguer la tribu des
Erotylini (ex-Erotylinae) des autres. De même les ailes
sont des pièces très intéressantes sur le plan
diagnostique, ce qui vaut la peine de les préparer au
moins une fois par espèce (Mycotretus sp., fig. 4).
Description
Les Erotylinae, généralement de taille
moyenne, ont des tailles très variées, allant de 1,5 mm
à environ 3 cm. La plupart sont brillants, glabres, très
colorés et contrastés avec une grande richesse de
motifs de coloration. Ils sont souvent bicolores avec
le pronotum noir et les élytres très colorés ou
l'inverse.
Certaines espèces changent totalement de couleur
après leur mort. Lacordaire signalait déjà ce fait qui
trompe facilement celui qui n’a jamais vu les insectes
in natura. C’est plus particulièrement le cas des Gibbifer
qui, d’un magnifique bleu, tournent au jaune paille en
collection. On rencontre très souvent des taches, des
points, des fascies... Certains genres présentent une
morphologie très particulière, bossue comme les
Gibbifer, avec une épine comme certains Ellipticus
(fig. 25), rond comme les Aegithus parfois proches des
cassides tandis que beaucoup d’autres s’inscrivent
dans un ovale plus ou moins allongé mais récurrent.
La tête est petite, enfoncée dans le prothorax et
rétrécie en avant des yeux. Les antennes se
caractérisent par un club de 3 mais parfois 4 ou 5
segments. Les palpes maxillaires sont habituellement
dilatés. La formule tarsale est 5-5-5 mais le tarse 4 est
souvent réduit voire caché dans le précédent.
Biologie/écologie
Bien qu’on les aperçoive souvent sur les
feuilles de la végétation basse, ces insectes sont
strictement liés aux champignons poussant sur les
arbres ou le bois mort. Plus exactement, pour utiliser
la nomenclature proposée récemment (Bouget et al.,
2005), ce sont des xylomycétophages, à la fois au
stade larvaire et adulte. La plupart des espèces est liée
aux Aphyllophorales (nos pleurotes et amadouviers,
par exemple) mais il existe quelques groupes qui
consomment les Basidiomycota (ex basidiomycètes –
les champignons classiques de monsieur tout le
monde). On les trouve parmi les Mycotretus, certains
Dacne, les Tritoma et des Triplax.
Les femelles pondent directement sur ou dans les
fructifications des champignons sur/dans lesquelles se
développent les larves. Il existe parfois des
phénomènes visibles d’agrégation et certaines espèces
sont grégaires comme certains Iphiclus, Ellipticus et
surtout les Pselaphacus chez qui apparaissent des
phénomènes de soins parentaux (Robertson et al.,
2004).
Certaines espèces sont nocturnes et ont donc des
yeux à larges facettes et des couleurs ternes. À
l’inverse, les érotylides à mœurs diurnes possèdent des
yeux finement facettés et des couleurs vives.
Techniques d’inventaire
En l’absence d’expérience personnelle, les
discussions avec les uns et les autres tendent à
prouver que la chasse à vue sur la végétation ou mieux
sur les champignons permet de contacter les
Erotylidae. Mais ce n’est pas la technique la plus
rentable et de loin. Les dispositifs d’interception ont
un rendement bien plus intéressant. Les pièges vitres
sont extrêmement efficaces mais les tentes Malaise ne
donnent rien. En revanche ces insectes viennent peu
ou pas à la lumière.
Catalogue préliminaire
Afin de constituer une base de travail, un
catalogue préliminaire des espèces connues de
Guyane a été mis en place. Par bonheur, son
établissement a été largement facilité par l’existence
d’un excellent outil, le catalogue des Erotylidae
néotropicaux réalisé par Moacyr Alvarenga
(Alvarenga, 1994). Outre la liste des espèces, on y
découvre des indications biogéographiques, par pays.
On a donc extrait, de ce catalogue, la liste des espèces
mentionnées de « Guyana Francesa ». Les pays
limitrophes, en particulier le Suriname et le Brésil,
possèdent sans doute de nombreuses espèces en
commun avec la Guyane, ce qui aurait pu permettre
d’enrichir cette liste par recoupement. Mais, pour cet
inventaire préalable, il valait mieux rester dans un
cadre bien défini. Aucune exploitation de la
bibliographie postérieure à ce travail n’a d’ailleurs été
réalisée, faute de temps.
La liste est complétée par des planches
photographiques qui permettent de mieux visualiser
les genres, voire les espèces, dont il est question. Afin
d’apprécier au mieux la morphologie de ces
Erotylinae quelques illustrations sont des montages
photographiques des insectes sous plusieurs angles.
Les images ont été réalisées par photomontage au
moyen du logiciel Combine Z5 de façon à obtenir une
profondeur de champ maximum. Certaines des
espèces figurées sont présentes en Guyane, mais des
espèces d’autres pays ont été utilisées pour disposer
d’un nombre de genres suffisamment grand, en
attendant d’étendre notre base d’illustration. Il me
faut d’ailleurs remercier chaleureusement Noël Mal
qui a accepté de me fournir de superbes
-6-
photographies d’insectes prises à l'IRSNB (Institut
royal des Sciences naturelles de Belgique), pour
compléter les miennes.
DACNINI
Genre : Megalodacne
Espèce : indica indica Linné, 1758
EROTYLINI
TRITOMINI
Genre : Pselaphacus
Espèces : curvipes Guérin-Méneville. 1841, giganteus
Germar, 1824, puncticollis Guérin-Méneville, 1841,
quinquennotatus Lacordaire, 1842, rubricatus Herbst,
1799, signatus Guérin-Méneville, 1841, transversalis
Lacordaire, 1842 et trifasciatus Lacordaire, 1842.
Genre : Ischyrus
Espèces : undatus Olivier, 1792 et zonalis Lacordaire,
1842
Genre : Megischyrus
Espèces : auriculatus Lacordaire, 1842, incertus
Lacordaire, 1842, scriptus Olivier, 1807 et
subcylindricus Lacordaire, 1842.
Genre : Mycotretus (fig. 5)
Le deuxième genre le plus abondant en Guyane et
probablement le plus difficile à déterminer. On
reconnaît ces insectes en ovale ramassé (fig. 6), de
moins de 10 mm, à la forme de leurs fémurs, courts et
larges (fig. 7). Le club antennaire comprend 4 articles
et le mentum a une forme d’assiette coupée en
diagonale ou arrondie antérieurement.
Espèces : arcuatus Lacordaire, 1842, argus Lacordaire,
1842, bisseptemguttatus Crotch, 1876, cinctellus
Guérin-Méneville, 1841, Mycotretus dorsonotatus
Lacordaire, 1841 (fig. 8), durius Lacordaire, 1842,
episcopalis Lacordaire, 1842, floriger Lacordaire, 1842
(fig. 9), graniformis Lacordaire, 1842, humilis
Lacordaire, 1842, lacertosus Lacordaire, 1842, lepidus
Lacordaire, 1842, leprosus Lacordaire, 1842,
maculatus Olivier, 1792 (fig. 10), misellus Lacordaire,
1842, nigrivittis Lacordaire, 1842, nugator Lacordaire,
1842, ornatus Duponchel, 1825, palmiphilus
Lacordaire, 1842, polyophthalmus Lacordaire, 1842
(fig. 11), pusillus Lacordaire, 1842, scitulus Lacordaire,
1842, sticticollis Lacordaire, 1842, tigrinus Olivier,
1792, unicolor Fauvel, 1860 et vilis Lacordaire, 1842.
Genre : Mycophtorus
Espèce : melanocerus Lacordaire, 1842
Genre : Apolybas
Espèces : axillaris Lacordaire, 1842, corallinus
Lacordaire, 1842, ferrugineus Olivier, 1807, humeralis
Khunt, 1910, mycetophilus Lacordaire, 1842,
normalis Lacordaire, 1842, pulicarius Lacordaire,
1842, rufinus Lacordaire, 1842, seminulus Lacordaire,
1842 et thoracicus Olivier, 1807.
Genre : Strongylosomus
Espèce : dichrous Lacordaire, 1842, melanopus
Lacordaire, 1842, rotundatus Lacordaire, 1842,
rugosus Lacordaire, 1842 et unicolor Olivier, 1807.
Genre : Aegithus (fig. 12)
Espèce : bulla Lacordaire, 1842, lateritius Lacordaire,
1842, monochrous Lacordaire, 1842, torquatus
Lacordaire, 1842.
Genre : Iphiclus (fig. 13)
Ces espèces sont les plus courantes en milieu
néotropical. On peut les reconnaître à leur forme
ovale avec un thorax large et des antennes courtes.
Les yeux sont à petites facettes et le rostre est court
en forme de coin.
Genre : Iphiclus (Megaprotus)
Espèces : cinctellus Lacordaire, 1842, circulus
Lacordaire, 1842, clarosignatus Kuhnt, 1910,
coadunatus Lacordaire, 1842, delineatus Lacordaire,
1842, duodecimpustulatus Lacordaire, 1842 (fig. 14),
ephippium Duponchel, 1825, laevipennis Kuhnt,
1910, moniliferus Guérin-Méneville, 1841, nubilus
Lacordaire, 1842, orphanulus Lacordaire, 1842,
perlepidus Lacordaire, 1842, pithecius Lacordaire,
1842,
porcellana
Lacordaire,
1842
et
sedecimpunctatus Lacordaire, 1842.
Genre : Iphiclus (Habrodactylus)
Espèces :
antennalis
Lacordaire,
1842,
bisquinquepunctatus Lacordaire, 1842 (fig. 15),
concolor Lacordaire, 1842, deletus Lacordaire, 1842,
discus Lacordaire, 1842, haematites Lacordaire, 1842,
ictericus Lacordaire, 1842, kourouensis Lacordaire,
1842, meleagris Lacordaire, 1842, punctiger
Lacordaire, 1842, rufescens Lacordaire, 1842,
spadiceus Lacordaire, 1842, subsignatus Lacordaire,
1842 et vetula Lacordaire, 1842.
Espèce supplémentaire ? : Iphiclus (Habrodactylus)
egensis ? (N° Inv. JHY 2485), femelle L = 7.5 mm
(fig. 16). Cette espèce non repertoriée de Cayenne par
Alvarenga était déjà citée de Cayenne lors de sa
description par H.S. Gorham (Gorham, 1889).
-7-
Figure 19. Habitus de Typocephalus dimidiatus. Fig. 20. Habitus d’Erotylus giganteus, [20 mm]. Fig. 21. Habitus type de Gibbifer, G.
debauvei [15 mm], vue sous trois angles, IRSNB photo Noël Mal. Fig. 22. Habitus de Scaphidomorphus bosci [12,5 mm], vue sous
trois angles. Fig. 23. Habitus de Prepopharus americanus [9,1 mm], vue sous trois angles. Figure 24 : Habitus type d’un Ellipticus
sp, IRSNB photo Noël Mal.
-8-
Figure 25. Exemple de boîte d’Homeotelus de la collection Oberthür.
-9-
Genre : Iphiclus (lphiclus)
Espèce : maculatus Voet, 1778
1976 et opalizans Lacordaire, 1842.
Genre : Neopriotelus
Espèces : calceatus Lacordaire, 1842, dejeani
Lacordaire, 1842, equestris Lacordaire, 1842, irroratus
Lacordaire, 1842, octomaculatus Olivier, 1792,
tricolor Fabricius, 1801 et truncatus Lacordaire, 1842.
Genre : Iphiclus (Neoogaster)
Espèce : marginatus Olivier, 1792
Genre : Iphiclus (Saccomorphus)
Espèce : limbatus Olivier, 1792
Genre : Iphiclus (Brachymerus) (fig. 13)
Espèces : bellulus Lacordaire, 1842 (figs. 17a et b),
distinctus Duponchel, 1825, dorsalis Olivier, 1792,
geometra Lacordaire, 1842, hebraicus Lacordaire,
1842, neophyta Lacordaire, 1842, nigropictus
Lacordaire, 1842, nitidulus Olivier, 1807, ramosus
Olivier, 1807et tricinctus Duponchel, 1825.
Genre : Typocephalus
Espèces : cruciatus Lacordaire, 1842 et dimidiatus
Olivier, 1792 (fig. 19)
Genre : Sphenoxus
Espèce : erythropterus Lacordaire, 1842
Genre : Bacis
Espèces : scutellaris Lacordaire, 1842 et tripunctatus
Duponchel, 1825.
Genre : Phricobacis
Espèce : navicularis Lacordaire, 1842
Genre : Ellipticus (Fig. 24)
Espèce : pallidus Olivier, 1792
Synthèse des informations
Genre : Erotylus (fig. 18)
Espèces : aulicus Lacordaire, 1842, giganteus (fig. 20)
Linné, 1758, histrio Fabricius, 1787(fig. 18), incertus
Lacordaire, 1842, isequeboensis Voet, 1778, papulosus
Lacordaire, 1842 et pretiosus Perty, 1832.
Genre : Erotylina
Espèces : gemmata Fabricius, 1792 et marshami
Lacordaire, 1842.
Genre : Gibbifer
Espèces : debauvei Demay, 1838 (fig. 21),
dromedarius Lacordaire, 1842, elevatus Fabricius,
1801, gibbosus Linné, 1763 et jacquieri Lacordaire,
1842.
Genre : Barytopus
Espèces : lunulatus Olivier, 1792 et surinamensis
Voet, 1778.
Genre : Oligocorynus
Espèces : cinctus Herbst, 1799, indicus Herbst, 1783,
zebra Fabricius 1787 et nigrotibialis Demay, 1838.
Genre : Scaphidomorphus (fig. 22)
Espèces : bosci Guérin-Méneville
quinquepunctatus Linné, 1767.
Genre : Tapinotarsus
Espèces : multinotatus Lacordaire, 1842
1841
et
Genre : Prepopharus (fig. 23)
Espèces : americanus Voet, 1778, eduardoi Alvarenga,
L’inventaire comprend donc 145 espèces
réparties sur 3 tribus et 24 genres (tab. I). Les trois
séparations horizontales du tableau permettent
d’individualiser les trois tribus. Les Erotylini
fournissent l’essentiel du contingent, avec 90 espèces.
Celui-ci est complété par 51 Tritomini ; les Dacnini
étant quantité négligeable avec une seule espèce.
Très logiquement la répartition des espèces
guyanaises, au sein des genres, suit le schéma global
néotropical. Elle est très hétérogène. À eux seuls,
deux genres, Mycotretus et Iphiclus, livrent près de 50 %
du total :
- respectivement 217 et 283 espèces
néotropicales,
- respectivement 26 et 42 espèces en Guyane.
Ils fournissent donc 19,9 % et 26 % des espèces
néotropicales. Au niveau guyanais on observe des
proportions similaires avec 18,3 et 29,6 %.
Un troisième genre, Erotylus, est nettement moins
fourni en Guyane mais pas au niveau néotropical.
La dernière colonne du tableau permet d’apprécier le
taux de présence de ces Erotylinae néotropicaux en
Guyane. Il en ressort que, pour l’instant, en moyenne
13 % des espèces sont présentes en forêt guyanaise.
La plupart des genres y sont observés mais parmi
ceux au sein desquels les effectifs sont suffisants, on
note malgré tout quelques anomalies.
- 10 -
FAUNE DE GUYANE
Genre
Megalodacne
Pselaphacus
Ischyrus
Megischyrus
Mycotretus
Mycophtorus
Apolybas
Strongylosomus
Aegithus
Iphiclus
Typocephalus
Sphenoxus
Erotylus
Erotylina
Gibbifer
Barytopus
Oligocorynus
Scaphidomorphus
Prepopharus
Neopriotelus
Tapinotarsus
Bacis
Phricobacis
Ellipticus
Total
ENSEMBLE FAUNE NEOTROPICALE
PART PRESENTE en
Proportion de la GUYANE (% de la faune
Proportion de la
Néotropicale)
Richesse spécifique
Richesse spécifique faune Néotropicale
faune de Guyane (%)
(%)
1
0,7%
6
0,6%
16,7
8
5,5%
2
1,4%
4
2,8%
27
18,6%
1
0,7%
10
6,9%
5
3,4%
4
2,8%
43
29,7%
2
1,4%
1
0,7%
7
4,8%
2
1,4%
5
3,4%
2
1,4%
4
2,8%
2
1,4%
3
2,1%
7
4,8%
1
0,7%
2
1,4%
1
0,7%
1
0,7%
145
100,0%
Tableau I : Synthèse de la répartition par genre des Erotylinae guyanais.
Ainsi on tombe largement en dessous des 13 % pour
les Ischyrus (3,0 %) les Aegytus (5,3 %), les Erotylina
(6,7 %) et même pour les Erotylus pourtant de grande
taille (7 %). Inversement le genre Pselaphacus est
proportionnellement mieux fourni avec 2 fois plus
d’espèces que la moyenne comme les Strongylomus.
C’est la même chose pour les Apolybas dont le taux est
trois fois plus élevé que la moyenne. Il conviendra
donc de préciser si ce sont effectivement des genres
plus ou moins bien représentés sur le plateau des
Guyanes ou s'il s'agit d'un problème de
reconnaissance des espèces qui a conduit à ces
situations.
Perspectives
Ce catalogue constitue donc une base de
travail qui sera probablement rapidement enrichie. En
effet, il semble bien que nombre d’espèces, surtout de
petite taille, restent non identifiées dans les collections
actuelles. Un récent passage au MNHN m’a permis
d’évaluer le potentiel des anciennes collections. J’ai été
accueilli facilement, de manière professionnelle et
30
67
35
217
4
26
20
76
283
5
5
100
30
45
7
24
3
21
34
5
4
11
31
1089
2,8%
6,2%
3,2%
19,9%
0,4%
2,4%
1,8%
7,0%
26,0%
0,5%
0,5%
9,2%
2,8%
4,1%
0,6%
2,2%
0,3%
1,9%
3,1%
0,5%
0,4%
1,0%
2,8%
100,0%
26,7
3,0
11,4
12,4
25,0
38,5
25,0
5,3
15,2
40,0
20,0
7,0
6,7
11,1
28,6
16,7
66,7
14,3
20,6
20,0
50,0
9,1
3,2
13,3
sympathique par nos collègues du laboratoire
d’entomologie. Cela m’a permis de constater que les
Erotylidae sont bien représentés (des centaines de
boîtes) et que cela implique un investissement en
temps non négligeable pour en tirer les informations
utiles. De nombreux insectes proviennent/sont notés
de Cayenne dans la collection générale ou dans les
importantes collections Oberthür (fig. 25), Sedillot et
Sicard. La collection Sedillot contient apparemment
une partie de la collection Lacordaire (noté Lacordaire
> Sedillot MNHN 1935).
Ceci paraît très intéressant car cet auteur a décrit de
nombreuses espèces d’Erotylidae d’Amérique du Sud
suite, entre autre, à son séjour à Cayenne (fig. 26).
Parmi les insectes présents, il y a très probablement
des syntypes de Lacordaire. Il existe d’ailleurs un
indice concordant, car le spécialiste polonais Piotr
Węgrzynowicz a désigné un lectotype dans au moins
un cas (fig. 27 - boîte Brachyspahenus Lacordaire >
Sedillot). Il existe donc un fort potentiel pour
compléter la liste des espèces de Guyane, avec celles
non encore citées ; sans compter de potentielles
nouvelles espèces.
- 11 -
Figure 26. Exemple d’insectes de la collection Lacordaire, Zonarius xanthomelas. Fig. 27. Boîte de la collection Lacordaire avec un
syntype désigné en lectotype.
- 12 -
REMERCIEMENTS.
À M. G. Moragues pour m’avoir signalé ce dossier et incité
à y présenter ce premier travail.
À M. J. Touroult pour avoir accepté de l’intégrer au dossier
et ses encouragements.
À M. J.-L. Giuglaris pour m’avoir confié du matériel pour
débuter.
À M; Noël Mal pour les photographies.
Références
ALVARENGA M., 1994. - Catálogo dos Erotylidae
(Coleoptera) Neotropical. Revista Brasiliera de Zoologia,
11(1) : 1-175.
BOUGET C., BRUSTEL H. & NAGELEISEN L.M., 2005. Nomenclature des groupes écologiques d’insectes liés
au bois : synthèse et mise au point sémantique.
Nomenclature of wood-inhabiting groups in forest
entomology: synthesis and semantic adjustments.
Biologies (Comptes-Rendus de l’Académie des Sciences, Paris),
328 : 936-948.
CROTCH G.R., 1876. - A revision of the coleopterous family
Erotylidae. Cistula Ent., 1 : 377-572.
GORHAM H.S., 1889. - Description of new species of the
coleopterous family Erotylidae. Proceedings of the
Zoological Society of London, 41 : 613-620, pl.61.
LACORDAIRE J.T., 1842. - Monographie des Erotyliens, Famille de
l'Ordre des Coléoptères. Paris, Roret, xiv+543pp
LESCHEN R.A.B., 2003. - Erotylidae (Insecta: Coleoptera:
Cucujoidea): phylogeny and review. Fauna of New Zealand
No. 47. Manaaki Whenua Press, Lincoln, NZ, 103 pp.
LOPES P.L., 2006. - Taxonomic revision of Mycolybas Crotch,
1876 (Coleoptera: Erotylidae). Zootaxa, 1373 : 1-35.
LOPES P.L., 2009. - Taxonomia e análise cladística de
Oligocorynus Chevrolat, 1836 sensu Alvarenga (1994)
(Coleoptera, Erotylidae, Erotylinae, Erotylini), Tese de
Doutorado, Instituto de Biociências (IB), Universidade
de São Paulo.
SKELLEY P.E., 1997. - Revision of the genus Scaphengis
Gorham (Erotylidae: Encaustinae). The Coleopterists
Bulletin, 51(2) : 155- 167.
SKELLEY P.E., 1998. - Revision of the genus Ischyrus
Lacordaire (1842) of North and Central America
(Coleoptera: Erotylidae: Tritominae). Occasional Papers
of the Florida State Collection of Arthropods, 9 :
134 pp.
ROBERTSON J.A., MCHUGH J.V. & WHITING M.F., 2004. molecular phylogenetic analysis of the pleasing fungus
beetles (Coleoptera: Erotylidae): evolution of colour
patterns, gregariousness and mycophagy. Systematic
Entomology, 29(2) : 173-187.
WĘGRZYNOWICZ P., 2002. - Morphology, phylogeny and
classification of the family Erotylidae based on adult
characters (Coleoptera: Cucujoidea). Genus, 13 : 435504.
Courte note
Eurysternus plebejus Harold, une
présence énigmatique en Guyane
(Scarabaeidae, Scarabaeinae, Oniticellini)
exemplaires d’espèces diverses, une femelle là encore
unique de plebejus (fig. 1). Les raisons de la rareté dans
notre département s’expliquent difficilement.
par Gérard MORAGUES
Dans sa révision parue l’année dernière,
François Génier a fort utilement éclairci la situation
d’un genre délicat ; les publications antérieures
laissant en effet subsister certains doutes lors de
l'étude des spécimens. De distribution exclusivement
néotropicale, il y reconnaît 53 espèces et en décrit pas
moins de 27, soit la moitié nouvelles. La Guyane en
héberge onze et la présence d’une douzième (E.
calligramus Dalman) nécessite confirmation.
Parmi celles-ci, le cas de E. plebejus attire l’attention.
L’espèce, largement distribuée dans le bassin
amazonien et en Amérique centrale, paraît commune
si on se réfère au nombre de 2100 exemplaires
examinés par l’auteur dans le cadre de son travail. En
dépit de ce matériel important, il n’établit sa présence
en Guyane que sur la base d’une unique capture
réalisée dans le massif de Kaw à Fourgassié. Parmi les
récoltes de Pierre-Henri Dalens et Stéphane Brûlé
réalisées à Tibourou au PK 65 de la route nationale 2
en 2008, j’ai découvert, au milieu de nombreux
Fig. 1. Eurysternus plebejus Harold, 1880. Femelle de Guyane.
Photo de Nicolas Gompel. Trait d'échelle : 1 mm.
Source bibliographique
GÉNIER F., 2009. - Le genre Eurysternus Dalman, 1824
(Scarabaeidae :
Scarabaeinae :
Oniticellini).
Révision
taxonomique et clés de détermination illustrées. Pensoft éditeur.
317 pp, 110 planches.
- 13 -
Les Élatérides de Guyane (Coleoptera, Elateridae)
par Jacques CHASSAIN* & Julien TOUROULT**
Société entomologique Antilles-Guyane
*2 rue Gaston
F-77810 Thomery
[email protected]
** 15 avenue Christophe-Colomb
F-16800 Soyaux
[email protected]
Résumé. Des généralités sur les élatérides (Coleoptera, Elateridae) de Guyane française
sont exposées dans le présent article. Il recense les espèces guyanaises connues d'après le
Catalogue Blackwelder et y ajoute d'autres espèces non encore signalées de Guyane ainsi
que les espèces nouvelles décrites postérieurement à sa parution. La faune des élatérides
à présent connus de Guyane française totalise plus de 160 espèces, mais il reste encore
au moins 150 espèces à déterminer ou à décrire dans le matériel en cours d'étude.
L'article est accompagné de huit planches en couleurs représentant environ 120 espèces
différentes, qui illustrent l'ensemble des 57 genres connus de Guyane.
Mots-clés. Liste, faunistique, nouvelle citation, Agrypninae, Lissominae, Semiotinae,
Thylacosterninae, Elaterinae, Cardiophorinae.
Abstract. This paper relates to general considerations about the click-beetles
(Coleoptera, Elateridae) from French Guiana. It provides a listing comprising known
species according to Blackwelders' Catalogue, other known species not appearing on said
Catalogue, as well as species described posteriorly to the Catalogue issue. According to
this up to date checklist, more than 160 species are known from French Guiana but at
least 150 more remain to be determined or described among the material being studied.
The paper is illustrated with accompanying colour plates showing about 120 different
elaterid species which represent all the 57 genera known from French Guiana.
Key-words. Checklist, faunistic, new country records, Agrypninae, Lissominae,
Semiotinae, Thylacosterninae, Elaterinae, Cardiophorinae.
Dans l'ordre des Coleoptera, la famille des
Elateridae (vulgairement appelés taupins) appartient
au sous-ordre des Polyphaga où elle est rangée dans la
superfamille des Elateroidea, qu'elle partage avec un
certain nombre d'autres familles, notamment les
Cerophytidae, les Throscidae et les Eucnemidae, pour
ne citer que les familles les plus proches.
Cosmopolites, les Elateridae totalisent environ 9000
espèces connues réparties dans toutes les régions du
globe.
La région néotropicale (Mexique, Amérique centrale,
Antilles et Amérique méridionale) est particulièrement
riche en genres et en espèces. La plupart des genres
concernés, la totalité des espèces qui s'y rapportent,
sont propres à cette région. Le Catalogue raisonné de
Blackwelder (1944-1957), recensant les familles,
genres et espèces connus de coléoptères d'Amérique
latine, mentionne environ 1860 espèces d'élatérides
auxquelles il faut ajouter environ 140 espèces
représentant les sous-familles des Cebrioninae,
Lissominae et Thylacosterninae, à présent incorporées
aux Elateridae. Cela fait un total de l'ordre de 2000
espèces néotropicales, réparties entre 120 genres
environ. Ce nombre d'espèces s'est notablement accru
depuis la parution du Catalogue, tout en restant bien
évidemment très en dessous de la réalité ; il va
continuer de croître au fur et à mesure que sera étudié
le matériel considérable conservé dans les musées et
dans les collections privées, et collecté par les
méthodes modernes de récolte.
Dans son Catalogue, Blackwelder cite de
"Fr.Guiana" et de "Guiana" 84 espèces d'Elateridae
dont plus de la moitié sont décrites ou mentionnées
par Candèze, dans sa Monographie et ses autres
travaux, comme provenant de "Cayenne" ou de
"Guyane"1. Parmi les Eucnemidae et les Throscidae
que Blackwelder mentionne de Guyane, 7 et 9 taxons,
respectivement, rentrent à présent dans les sousfamilles des Lissominae et des Thylacosterninae, qui
s'intègrent aux Elateridae.
Postérieurement au Catalogue, la faune des élatérides
de Guyane s'est enrichie de nombreuses autres
1 Blackwelder ne précise pas le sens biogéographique qu'il attribue au terme
"Guiana", la Guyane britannique étant spécifiée "Br. Guiana". En rapport avec
les citations de Candèze, il semble réserver l'expreession "Fr. Guiana" aux
espèces citées de Cayenne et le terme "Guiana" aux espèces citées de
Guyane. Il apparaît donc, au vu des espèces concernées, que Guiana
s'applique également à la Guyane française, tout au moins pour ce qui
concerne les Elateridae.
- 14 -
espèces latino-américaines déjà connues, ainsi que
d'un nombre appréciable d'espèces nouvelles.
Caractères morphologiques des Elateridae
1- Adultes
Une description complète de la forme
imaginale des élatérides dépasserait largement le cadre
de cet exposé. Leur morphologie est décrite en détail
et abondamment illustrée, entre autres, dans différents
ouvrages spécialisés (Leseigneur, 1972 ; Calder, 1996)
auxquels on pourra se référer. Il suffit de dire ici que,
limités à la faune néotropicale, les élatérides sont des
insectes de forme généralement allongée, de taille
allant de moins de 2 mm (Horistonotus, Rismethus) à
50 mm (Chalcolepidius), dont la tête est enfoncée dans
le pronotum, lequel a le plus souvent des angles
postérieurs prolongés en pointe, et dont les antennes
sont normalement dentées ou pectinées (Fusimorphus),
parfois flabellées (Balgus, Thylacosternus). Les hanches
postérieures sont conformées en lames coxales
atteignant généralement les bords postéro-externes du
métasternum. Le caractère principal qui distingue les
élatérides de toutes les autres familles de coléoptères
réside dans la conformation du bord postérieur du
prosternum prolongé en une apophyse prosternale
positionnée au repos en regard d'une cavité du
mésosternum dans laquelle elle vient s'engager,
lorsque l'insecte se trouve en position dorsale,
réalisant ainsi, grâce à la liberté de mouvement de
l'articulation entre le prothorax et le mésothorax, un
appareil saltatoire qui lui permet de sauter en l'air
(Schnellkäfer des allemands) une ou plusieurs fois
consécutives en produisant un déclic accompagné
d'un bruit sec (click beetles des anglais), jusqu'à ce que
l'insecte se retrouve en position ventrale. Le
mécanisme du saut a été décrit avec une grande
précision par Leseigneur et par Calder (l.c.).
Parmi les élatérides remarquables de la faune
de Guyane, on doit noter les espèces de la tribu des
Pyrophorini qui, en quasi-totalité, émettent une
lumière grâce à la présence de vésicules lumineuses à
la base du pronotum. On remarque aussi tout
particulièrement les espèces du genre Semiotus d'assez
grande taille, d'allure fusiforme et de couleur brillante
jaune et rouge vif avec des bandes élytrales
longitudinales noires. La tête porte souvent des épines
frontales caractéristiques. Ce genre typiquement
américain intertropical est représenté par un peu plus
de quatre-vingts espèces en Amérique latine. La
Guyane en possède huit. Le genre Semiotus a
récemment fait l'objet d'une révision (S. Wells, 2007).
On doit réserver une mention spéciale au magnifique
Fusimorphus submetallicus, profilé en fuseau comme son
nom l'indique, d'un bleu plus ou moins violacé à léger
reflet métallique. A noter également, comme unique
représentant du grand genre américain intertropical
Chalcolepidius, le très commun Chalcolepidius porcatus de
grande taille (jusqu'à 40 mm), au corps recouvert de
très petites écailles dont la couleur varie, selon
Candèze, "entre le châtain cuivreux, le ferrugineux
verdâtre, le vert olivâtre, le vert métallique et le bleu
d'azur", avec dans les stries des écailles plus grandes et
plus claires formant des raies blanchâtres. On peut
enfin citer, entre autres espèces remarquables, Lacon
chabannei, Lacon jacquieri, tous les Hemirhipini, ainsi
que les représentants du genre Balgus, notamment
Balgus schnusei cayennensis dont les "boursouflures"
thoraciques et élytrales constituent un caractère
exceptionnel.
2- Larves
Les larves d'élatérides sont allongées,
généralement cylindriques ou légèrement aplaties, en
majeure partie ou en totalité sclérifiées, à l'exception
de celles des Cardiophorinae qui sont vermiformes.
La tête porte des antennes formées de trois articles
dont l'article terminal est étroit et très court. Le
thorax comprend trois segments portant chacun une
paire de courtes pattes. L'abdomen est formé de dix
segments dont le segment terminal, caché sous le
pénultième, n'est pas visible de dessus. Le neuvième
segment peut être conique (Anchastus) ou plus ou
moins profondément échancré (Platycrepidius, Semiotus).
Chez les Cardiophorinae, les larves, peu sclérifiées,
comprennent de nombreux segments abdominaux
additionnels.
Une description et une illustration très
détaillées des larves de certains élatérides brésiliens
sont données dans Costa et al. (1988).
La
plupart
des
larves
d'élatérides
néotropicaux sont encore inconnues.
3- Nymphes
Les nymphes sont faciles à reconnaître par la
forme de leur prothorax qui est semblable, tant en
face dorsale qu'en face sternale, à celui de l'adulte. La
tête, les antennes, les autres appendices céphaliques,
les pattes, en partie les ébauches d'ailes membraneuses
et d'élytres, apparaissent nettement, appliqués contre
la face inférieure. Juste après l'éclosion, les nymphes
sont totalement dépigmentées.
- 15 -
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
Fig. 1. Dilobitarsus bidens (Fabricius, 1801) [15-16 mm] ; fig. 2. Dilobitarsus gracilis Candèze, 1874 [11-14 mm] ; fig. 3.
Dilobitarsus nebulosus Candèze, 1874 [13-16 mm] ; fig. 4. Dilobitarsus spp. aff. abbreviatus Candèze, 1857 [5-9 mm] ; fig. 5. ♀
Lacon bipectinatus Riese, 1989 [9-12 mm] ; figs. 6-7. Lacon chabannei (Guérin, 1829), variabilité individuelle [20-32 mm] ; fig. 8.
Lacon jacquieri (Candèze, 1857) [18-20 mm] ; fig. 9. Lacon laticollis (Candèze, 1857) [10-12 mm] ; fig. 10. Lacon linearis (Candèze,
1868) [8-11 mm] ; fig. 11. Lacon pollinarius (Candèze, 1857) [12-21 mm] ; fig. 12. Lacon sp.aff. coecus (Candèze, 1874) [1216 mm] ; fig. 13. Optaleus sp. [5-7 mm] ; Fig. 14. Rismethus sp. [2-2,5 mm] ; fig. 15. Aeolus leprieuri Candèze, 1859 [12-14 mm].
- 16 -
Biologie
Les larves vivent et se développent dans des
milieux variés, tels la carie et le terreau des vieux
arbres, où elles sont prédatrices d'autres larves ; le sol,
où elles peuvent parasiter des cultures (riz, canne à
sucre). Costa (loc. cit.) indique également comme
milieux l'aisselle des feuilles de broméliacées et les
nids d'insectes sociaux. Le cycle biologique est de
deux à cinq ans selon le milieu, les larves parasites des
cultures (vers fil de fer, wireworms) semblant avoir le
cycle le plus long.
Les imagos fréquentent les inflorescences de
plantes et les fleurs des arbres et arbustes. Certains
vivent sous les pierres. D'autres vivent sur l'écorce des
arbres. D'autres encore sont ripicoles. Beaucoup sont
crépusculaires ou nocturnes et sont attirés par la
lumière.
Méthodes de récolte des élatérides adultes
La méthode la plus simple est la recherche
des insectes "à vue", qui consiste à inspecter les fleurs,
les tiges des plantes, l'écorce des arbres, tout ce qui
peut servir de support temporaire aux insectes, ou
bien à les capturer au vol à l'aide d'un filet. Ce mode
de recherche peut donner dans certains cas quelques
informations sur la biologie des espèces, mais il
demeure souvent très limitatif au point de vue du
rendement en matériel récolté. Le battage du feuillage
des arbres et arbustes, notamment pendant la période
de floraison, et le fauchage des végétaux, peuvent
donner quelques bons résultats. Mais les seules
méthodes réellement productives sont assurément les
méthodes de piégeage qui, si elles présentent
ordinairement l'inconvénient de peu renseigner sur la
biologie des espèces, ont en tout cas le mérite de
fournir le plus souvent un abondant matériel d'étude.
Les principales méthodes de piégeage auxquelles on a
recours, en Guyane comme ailleurs, utilisent le piège
malaise, le filet cryldé, différentes formes de
réalisation de pièges à appâts (contenant vin, bière,
rhum, banane), le piège lumineux (lampe à rayons
UV), toutes ces méthodes étant bien connues et
certaines d'entre elles ayant fait l'objet de
perfectionnements très astucieux. Un piège à présent
très utilisé partout et notamment en Guyane pour les
résultats spectaculaires qu'il permet d'obtenir est le
piège d'interception à vitre, que l'on peut
grossièrement définir dans son principe comme étant
un panneau de matière plastique transparente de
grande surface, disposé verticalement, que les insectes
percutent en vol, ce qui les fait choir dans une
gouttière contenant un liquide, additionné d'une
substance tensio-active, dans lequel ils se noient.
Plusieurs modèles plus ou moins sophistiqués
existent, tous ont un tel rendement que le tri de la
masse de biotes est une opération ingrate qui exige
beaucoup de patience. Les résultats obtenus
dédommagent largement de la "pénibilité" de cette
tâche. La Société entomologique Antilles-Guyane
(SEAG) met en pratique inlassablement ce mode de
piégeage, avec un succès remarquable, dans le cadre
de missions d'inventaires conduites en Guyane sur le
site de la Montagne des Chevaux, autour de Saül, dans
la réserve naturelle des Nouragues, la réserve Trésor,
et tout récemment (mars 2010) à l'occasion de la
mission Itoupé (massif Tabulaire) effectuée à
l'initiative du Parc Amazonien de Guyane. Le matériel
récolté au piège à vitre au cours de ces missions a déjà
rapporté à la faune des élatérides de Guyane un
nombre important de nouvelles espèces déjà connues
d'Amérique latine, et un certain nombre d'espèces
nouvelles pour la Science. Ce matériel est en cours
d'étude.
Liste actualisée des espèces
Cette liste des Elateridae de Guyane se fonde
sur le Catalogue Blackwelder, augmentée (symbole
« * ») de l'énumération des espèces connues trouvées
en Guyane postérieurement au Catalogue et (symbole
« + ») des espèces et des genres décrits
postérieurement au Catalogue, suivie du répertoire
d'un nombre limité de localités indiquées sous forme
d'abréviations. Cette liste est établie d'après la
Classification en sous-familles proposée par Lawrence
et Newton (1995).
AGRYPNINAE
AGRYPNINI
Dilobitarsus bidens (Fabricius, 1801) fig. 1
Bz, Pa, Sa, NO, Tr, MCh. AC
Dilobitarsus cuneatus Candèze, 1865
* Dilobitarsus gracilis Candèze 1874 fig. 2
FC (Ir), MCh (Ro), SLM, NO, Ga. AR
Dilobitarsus nebulosus Candèze, 1874 fig. 3
MS, Kw, Bz, FT, Sa, MCh. AC
* Dilobitarsus sp. aff. abbreviatus Candèze, 1857 fig. 4
BM, Re, NO. R
+ Lacon bipectinatus Riese, 1989 fig. 5
Co, Sa, MS, PC. AC
Lacon chabannei (Guérin, 1829) figs. 6 et 7
(= Adelocera chabannei Guérin)
Bz, Kw, MS, MCh, RT, SLM, It. AC
* Lacon sp. aff. coecus (Candèze, 1874) fig. 12
MCh(Ro), Ga. R
+ Lacon giuglarisi Chassain, 2005
RT. RR
Lacon jacquieri (Candèze, 1857) fig. 8
(= Adelocera jacquieri Candèze)
Cy, It. R
- 17 -
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
Fig. 16. Aeolus retrofasciatus Candèze, 1859 [7 mm] ; fig. 17. Aeolus signatipennis Candèze, 1859 [7-8 mm] ; fig. 18. Aeolus
variolatus Candèze, 1878 [15-22 mm] ; fig. 19. Conoderus sp. aff. sericeus Candèze, 1865 [13-19 mm] ; figs. 20-23. Conoderus
spp. [11-13 mm ; 7-8 mm ; 18-23 mm et 8-9 mm] ; fig. 24. Heteroderes laurentii Guérin, 1838 [7-8 mm] ; fig. 25. Coctilelater
rosae Chassain, 2009 [12-17 mm] ; fig. 26. Coctilelater sanguinicollis (Candèze, 1878) [10-13 mm] ; fig. 27. Heligmus guyanensis
Chassain, 2010 [15 mm] ; fig. 28. Lygelater indicus (Herbst, 1784) [20-21 mm] ; fig. 29. Lygelater torridus Costa, 1990 [2123 mm] ; fig. 30. Opselater melanurus (Candèze, 1863) [17-21 mm].
- 18 -
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
Fig. 31. Ptosimopsia candezei (Fauvel, 1861) [25 mm] ; fig. 32. Pyrearinus amplicollis (Candèze, 1863) [15-23 mm] ; fig. 33.
Pyrearinus mitarakensis Chassain, 2010 [14-15 mm] ; fig. 34. Pyrearinus nictitans (Illiger, 1807) [17-19 mm] ; fig. 35. Pyrearinus
vesculus Costa, 1978 [12-16 mm] ; fig. 36. Pyrischius gerstaeckeri Candèze, 1857 [16-20 mm] ; fig. 37. Pyrophorus noctilucus
(Linné, 1758) [30-50 mm] ; fig. 38. Platycrepidius abdominalis Perty, 1834 [10-12 mm] ; fig. 39. Platycrepidius albipes Candèze,
1859 [9-12 mm] ; fig. 40. Platycrepidius alboguttatus Candèze, 1865 [7-9 mm] ; fig. 41. Platycrepidius costatus Candèze, 1859 [912 mm] ; fig. 42. Platycrepidius dewynteri Chassain, 2009 [15 mm] ; fig. 43. Platycrepidius eques Candèze, 1859 [10-12 mm] ;
fig. 44. Platycrepidius interruptus Olivier, 1792 [10-12 mm] ; fig. 45. Anaissus (Auctumnalis) calderi Riese, 2007 [23-35 mm].
- 19 -
Lacon laticollis (Candèze, 1857) fig. 9
(= Adelocera laticollis Candèze)
FC, MCh, Bz, Rg, Ma, NO, Tr, It. AC
* Lacon sp. aff. laticollis (Candèze)
NO. RR
Lacon linearis (Candèze, 1868) fig. 10
(= Adelocera linearis Candèze)
Kw, MCh, Ga. AR
Lacon mamillatus (Candèze, 1865)
(= Adelocera mamillata Candèze)
Kw, Ro, MCh, NO, Tib, Ga. AR
Lacon pectinatus (Candèze, 1865)
(= Adelocera pectinata Candèze)
* Lacon pollinarius (Candèze, 1857) fig. 11
(= Adelocera pollinaria Candèze)
PYROPHORINI
Kw, DS, FT, BM, MCh, Tib, Ga, Bz, Oy, RT, It. AC
* Optaleus sp. fig. 13
MCh, Mti. R
* Rismethus 2 n. spp. fig. 14
CONODERINI
Aeolus facetus Candèze, 1859
Aeolus leprieuri Candèze, 1859 fig. 15
Kw, Rg, Mti, NO, Tr, It. AC
Aeolus mannerheimi Candèze, 1859
MCh, Sa, Mti, Ko, Ga. AC
* Aeolus nigromaculatus Drapiez, 1819
Co, Ga, Mn, La. AC
Aeolus parvulus Schwarz, 1903
Aeolus retrofasciatus Candèze, 1859 fig. 16
Ko, FC, MCh, Tg. AC
* Aeolus signatipennis Candèze, 1859 fig. 17
Mn, La, Cy, Ko, Ir. AC
Aeolus signatus Schwarz, 1902
Aeolus signifer Candèze, 1859
* Aeolus sp. aff. saulcyi Guérin, 1838
Oy, Bz, Kw, NO, BM, Icy, PC. C
Aeolus unifasciatus (Fabricius, 1801)
Aeolus variolatus Candèze, 1878 fig. 18
Rg, Mti, SE, MCh. AC
Conoderus concretus Candèze, 1881
* Conoderus lenis Candèze, 1881
Kw, Sa, BM, Bz, NO, Ro. AC
* Conoderus leucophaeatus Candèze, 1859
SLM, Rg. R
Conoderus sericeus Candèze, 1865
* Conoderus sp. aff. sericeus Candèze, 1865 fig. 19
Rg, Co, Na, Bz, MS, Ir, Tg, BM, MCh, Oy, SM, Tr,
NO, Tib, Ga. CC
* Conoderus sp. aff. proximus Candèze, 1891
Cp, La. AR
Conoderus spp. figs 20-23
* Heteroderes laurentii Guérin, 1838 fig. 24
Ac, My, Oy, Sa, TP, Icy, CC, Mb, Ma, Ba, Ac. C
+ Coctilelater rosae Chassain, 2009 fig. 25
Sa, Bz, Mti, NO, Ko, Po, Mt, SLM, Cy, MS, DS,
MCh, Tr, Tib, Ga. AC
* Coctilelater sanguinicollis (Candèze, 1878) fig. 26
Bz, Cm, Ma, Mb, Co, Rg, BM, Kw, NO, Tr, Sa. AC
+ Heligmus guyanensis Chassain, 2010 fig. 27
MCh, Mti. RR
* Lygelater ignitus (Fabricius, 1787)
MCh, Bz, Ro, NO, Sa. AC
* Lygelater indicus (Herbst, 1784) fig. 28
Bz, Co, Ou, Cy, Sa, Kw, SE. AC
+ Lygelater torridus Costa, 1990 fig. 29
Kw, Mti, Cy, Ko, Oy, Co, NO, Tib. AC
Opselater lucens (Illiger, 1807)
(= Pyrophorus pyrophanus (Illiger)
Kw, RC, NO, Sa. AR
Opselater melanurus (Candèze, 1863) fig. 30
(= Pyrophorus melanurus Candèze)
RT, It. R
Ptosimopsia candezei (Fauvel, 1861) fig. 31
(= Pyrophorus candezei Fauvel)
Sa. RR
Pyrearinus amplicollis (Candèze, 1863) fig. 32
(= Pyrophorus amplicollis (Candèze, 1863))
FT, Oy, Kw, My, Bz, BM, Mk, Na, Ko, MS, Tr,
Sa. C
* Pyrearinus basalis Schwarz, 1902
BM, My, Kw, MS, Oy, Sa, Tib. AR
Pyrearinus fulgurans (Candèze, 1865)
(= Pyrophorus fulgurans Candèze)
SE, Kw, MS, Mr, Mj, CC, Bz, BM, Mk, Tr, NO,
Sa. AC
* Pyrearinus janus (Herbst, 1806)
PC. R
+ Pyrearinus mitarakensis Chassain, 2010 fig. 33
Mk (Tumuc Humac). RR
* Pyrearinus nictitans (Illiger, 1807) fig. 34
Ir, It, DS, Bz, NO. AC
* Pyrearinus retrospiciens (Illiger, 1807)
NO, Sa, Bz, BM, Tib. AC
* Pyrearinus sp. aff. lampyris (Candèze, 1863)
RT. R
+ Pyrearinus vesculus Costa, 1978 fig. 35
Kw, Bz, Rg, NO, Tr, Tib, Ga. AC
Pyrischius gerstaeckeri Candèze, 1857 fig. 36
Kw, FT, Co. R
+ Pyrophorus hayekae Costa, 1975
Mk. R
Pyrophorus indistinctus Germar, 1841
Oy, Ko, SG, MS. AR
Pyrophorus noctilucus (Linné, 1758) fig. 37
Kw, Oy, FC, SE, SJ, Cy, Tg, My, MS, Bz, NO,
Tr, BM, Ga. CC
Pyrophorus phosphorescens Castelnau, 1840
- 20 -
NEGASTRIINAE
PLATYCREPIDIINI
NEGASTRIINI
Platycrepidius abdominalis Perty, 1834 fig. 38
Bz, Ro, Mti, Kw, Rg. AR
Platycrepidius albipes Candèze, 1859 fig. 39
Kw, SLM, DS, Rg, SLM, Mti, Ro, NO, Ir. C
Platycrepidius alboguttatus Candèze, 1865 fig. 40
Cy, Ko, MCh, SLM, Rg, Ct, DS, Tib, Ga. AC
Platycrepidius costatus Candèze, 1859 fig. 41
Tr, Tg, NO, FV, Rg, It. AR
+ Platycrepidius dewynteri Chassain, 2009 fig. 42
NO, Rg, DS. RR
Platycrepidius eques Candèze, 1859 fig. 43
Bz, Mti, MCh, Rg, NO, Kw. AR
Platycrepidius interruptus Olivier, 1792 fig. 44
SE, Cy, Kw, NO, Sa, Tib. AC
Agrypnella squamifer Candèze, 1865
Monadicus brunnipennis Candèze, 1865
LISSOMINAE
LISSOMINI
ANAISSINI
+ Anaissus (Auctumnalis) calderi Riese, 2007 fig. 45
Kw, Mt, Bz, FC, Tg, Co, Pg, BM, Sa, Tib. AC
HEMIRHIPINI
Alaus plebejus Candèze, 1874 fig. 46
FT, MS, Kw, Sa, Bz, Cp, Ga. C
Alaus unicus (Fleutiaux, 1910) fig. 47
(= Chalcolepidius unicus Fleutiaux)
Bz. RR
Chalcolepidius porcatus (Linné, 1787) fig. 48
(= Chalcolepidius limbatus Eschscholtz)
MCh, NO, Ir, Ga, MS, Mk, FV, Bz, Kw, Ko, SLM,
Oy, Tg, My, Pa, It. CC
Chalcolepidius zonatus Eschscholtz, 1829 (douteux)
+ Chalcolepis similis Casari, 1999 fig. 49
Tg, Ir, MS, It. AC
Fusimorphus submetallicus (Fleutiaux, 1924) fig. 50
(= Hemirhipus submetallicus Fleutiaux)
DS, Kw, Bz, MCh, MS, FT, Tib. AR
Hemirhipus apicalis Candèze, 1857 fig. 51
(= Hemirhipus bonvouloiri Candèze)
MS, Bz (To). R
+ Hemirhipus ochraceipilosus Fleutiaux, 1942
Kw. RR
Lacais glauca (Castelnau, 1836) figs. 52-53
(= Alaus glaucus Castelnau)
Bz, Oy, Ko, Pi, PC, FT, Ou, NO, Ga. AC
* Pherhimius fascicularis (Fabricius, 1787) fig. 54
(= Hemirhipus fascicularis (Fabricius, 1787))
SG, Kw, FC, Ko, Ca, MS, BM, MCh, Mk, No, Tr,
Sa. C
* Saltamartinus perroudi (Candèze, 1874) fig. 55
(= Hemirhipus perroudi Candèze, 1874)
Kw. RR
* Saltamartinus scriptus (Candèze, 1900) fig. 56
(= Hemirhipus scriptus Candèze, 1900)
Kw, SG, FC, MS, Pg Ir, BM, MCh, Bz, FT, NO,
Ko, Re, Sa. AR
Drapetes bimaculatus Castelnau, 1839
Drapetes cayennensis Bonvouloir, 1859
Drapetes nigripes Bonvouloir, 1859
* Drapetes plagiatus (Boheman, 1858) fig. 57
Rg, MCh(Ro), Ga, It. C
Drapetes sanguineus Castelnau, 1835 fig. 58
FT, NO, Ga, MCh, Sa. AC
Drapetes signatipennis (Castelnau, 1835)
Drapetes submaculatus Bonvouloir, 1861
Drapetes sp. fig. 59
Lissomus bifloccosus Castelnau, 1835 fig. 60
Mk, SG, Mti, Rg, Kw, Bz, MCh, NO, Tib. AC
Lissomus hirticollis Castelnau, 1835
Lissomus lacordairei Castelnau, 1840
Lissomus spp.
THYLACOSTERNINAE
Balgus albofasciatus (Bonvouloir, 1875) fig. 61
(= Pterotarsus albofasciatus Bonvouloir)
Bz, Kw, PC, Ko, Rg, Ca, MCh, NO, Ga. AC
Balgus humilis (Bonvouloir, 1875)
(= Pterotarsus humilis Bonvouloir)
Bz, PC, Ko, MCh, FC, MS, FT. AC
Balgus obconicus Bonvouloir, 1875 fig. 62
(= Pterotarsus obconicus Bonvouloir)
Bz, Rg, MCh, MCh(Ro), Kw, NO, Tib, Ga. AC
* Balgus rugosus (Blanchard, 1843) fig. 63
(= Pterotarsus rugosus Blanchard)
MCh(Ro), NO, Ga. AC
+ Balgus schnusei cayennensis Chassain, 2003 fig. 64
Piste Co, RT, Sa, BM, CH. R
* Balgus tuberculosus (Dalman, 1823)
(= Melasis tuberculosus Dalman)
Ko, Rg, MCh, Bz, Ga. AC
Pterotarsus histrio Guérin, 1829 fig. 65
Kw, Bz, Rg, MCh, NO. AR
Pterotarsus histrio ab. bimaculatus Castelnau, 1835 (aberration)
Bz, FV, Ca, MCh, Mti, NO. AR
* Thylacosternus loetus Bonvouloir, 1875
Rg, Mti, NO. R
Thylacosternus melinoni Fleutiaux, 1896
Thylacosternus pulchellus Bonvouloir, 1875
MCh(Ro), Ga. RR
Thylacosternus pulcher Bonvouloir, 1875 fig. 66
Rg, MCh, NO, Kw, Ga. R
Thylacosternus sp.
- 21 -
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
58
59
60
Fig. 46. Alaus plebejus Candèze, 1874 [16-25 mm] ; fig. 47. Alaus unicus (Fleutiaux, 1910) [21-25 mm] ; fig. 48. Chalcolepidius
porcatus (Linné, 1787) [25-45 mm] ; fig. 49. Chalcolepis similis Casari, 1999 [30-33 mm] ; fig. 50. Fusimorphus submetallicus
(Fleutiaux, 1924) [21-35 mm] ; fig. 51. Hemirhipus apicalis Candèze, 1857 [30-40 mm] ; figs 52 & 53. ♂ et ♀ Lacais glauca
(Castelnau, 1836) [♂ 9-14 mm, ♀ 15mm] ; fig. 54. Pherhimius fascicularis (Fabricius, 1787) [18-24 mm] ; fig. 55. Saltamartinus
perroudi (Candèze, 1874) [20-22 mm] ; fig. 56. Saltamartinus scriptus (Candèze, 1900) [18-34 mm] ; fig. 57. Drapetes plagiatus
(Boheman, 1858) [4 mm] ; fig. 58. Drapetes sanguineus Castelnau, 1835 [5-7 mm] ; fig. 59. Drapetes sp. [6-7 mm] ; fig. 60.
Lissomus bifloccosus Castelnau, 1835 [12-15 mm].
- 22 -
61
62
63
64
65
66
67
68
69
70
71
72
73
74
75
Fig. 61. Balgus albofasciatus (Bonvouloir, 1875) [9-19 mm] ; fig. 62. Balgus obconicus Bonvouloir, 1875 [9-14 mm] ; fig. 63. Balgus
rugosus (Blanchard, 1843) [9-12 mm] ; fig. 64. Balgus schnusei cayennensis Chassain, 2003 (20-26 mm] ; fig. 65. Pterotarsus
histrio Guérin, 1829 [10-15 mm] ; fig. 66. Thylacosternus pulcher Bonvouloir, 1875 [6-12 mm] ; fig. 67. Semiotus angulatus Drury,
1782 [30-45 mm] ; fig. 68. Semiotus antennalis Candèze, 1895 [11-20 mm] ; fig. 69. Semiotus approximatus Candèze, 1857 [2026 mm] ; fig. 70. Semiotus convexicollis Blanchard, 1843 [20-25 mm] ; fig. 71. Semiotus fulvicollis Blanchard, 1843 [18-20 mm] ;
fig. 72. Semiotus furcatus (Fabricius, 1792) [15-25 mm] ; fig. 73. Semiotus illustris Candèze, 1857 [25-30 mm] ; fig. 74. Semiotus
ligneus (Linné, 1767) [30-35 mm] ; fig. 75. Elater crassus (Candèze, 1863) [22-28 mm].
- 23 -
SEMIOTINAE
Semiotus angulatus Drury, 1782 fig. 67
ICy, Bz, Ko, FT, FC, SLM, PC, NO, MCh, It. C
* Semiotus antennalis Candèze, 1895 fig. 68
(= Semiotus melanocephalus Schwarz, 1902)
CH(Co). RR
Semiotus approximatus Candèze, 1857 fig. 69
(= Semiotus decoratus Candèze, 1857)
Ir, NO, Kw, Tg, Mch, It. AC
* Semiotus convexicollis Blanchard, 1843 fig. 70
TP, FT, SLM, Bz, Ro, MCh, NO. AC
* Semiotus fulvicollis Blanchard, 1843 fig. 71
(=Semiotus furcatus (F.) v. fulvicollis Blanchard)
SLM, FV. R
Semiotus furcatus (Fabricius, 1792) fig. 72
Sa, Mk, MCh(Ro), Tg, Mh, Pa, B1, NO, Tr, Ga,
It. CC
Semiotus illustris Candèze, 1857 fig. 73
SE, Ko, Pg, Kw, Tg, Ir, Tr, FT, MS, MCh, NO. AC
Semiotus ligneus (Linné, 1767) fig. 74
NO, Sa, Kw, RT, SJM, Mk, KK, MCh(Ro), Tg,
B1, Ga, It. CC
ELATERINAE
ELATERINI
Elater crassus (Candèze, 1863) fig. 75
(= Crigmus crassus Candèze)
Bz, RTR, TPI, BPS. AR
Elater sp. fig. 76
* Orthostethus infuscatus (Germar, 1844) fig. 77
RT, It, Kw, Tg, MS. AC
* Probothrium amplicolle Candèze, 1863
NO, MCh. R
Probothrium sp. fig. 78
Tomicephalus sanguinicollis Latreille, 1834 fig. 79
Cy, Kw, Rg, SLM, Bz, NO, Tib. AR
MEGAPENTHINI
* Megapenthes sp. aff. psittaculus Candèze, 1859
Mr, Rg, MS, Tib, NO. AC
Megapenthes spp. figs 80-81
AGRIOTINI
* Cardiorhinus aeneolipennis Candèze, 1863 fig. 82
SG, SE, Ga, Cy, Ou, Cp, Ir, MS, Kw. AR
Cardiorhinus bilineatus (Fabricius, 1801) fig. 83
Ko, DS, RE, Ct, PPI, Ou, Ko, Ir, SG, MS, Tg,
FV, NO, Sa. C
Cardiorhinus hypocrita Erichson, 1848
Cardiorhinus semirufus Candèze, 1863
Cardiorhinus sp.
Cardiorhinus trivittatus Candèze, 1863 fig. 84
Ou, Kw, Ko, DS, MCh, Mti, NO, MS, FT, Tib,
Ga. AC
* Cosmesus spp. fig. 85
Pomachilius minutus Candèze, 1860
Pomachilius spp. fig. 86
* Smilicerus sp.aff. zonatus Candèze, 1881 fig. 87
NO, Tr. R
AMPEDINI
* Achrestus flavocinctus (Candèze, 1859) fig. 88
MS, SLM, MCh. AR
Achrestus lycidioides Candèze, 1859 fig. 89
Co, Kw, Ir, Rg, It, RT, MCh. R
* Achrestus sp.aff. ruficollis Fleutiaux, 1902
piste SE. RR
* Achrestus suturalis Schwarz, 1902
MCh, Tib. RR
+ Achrestus vincenti Chassain, 2008
MCh, Kw, RT. RR
Anoplischius (Cyathodera) lanugicollis Candèze, 1859
SLM, Cr. RR
* Anoplischius (Cyathodera) longicornis Blanchard, 1843 fig. 90
Ir, BM. AR
Anoplischius claudii Candèze, 1859
Tr. R
Anoplischius clavus Candèze, 1865
Anoplischius laticollis Eschscholtz, 1829 fig. 91
Sa, Kw, Bz, Ro, Rg, MCh, DS, NO, Tr, Ga. C
Anoplischius sp. fig. 92
Atractosomus atricornis Erichson, 1848
Atractosomus cayennensis Candèze, 1859
MS, Kw, Co, Bz, Cy, Pg, Tib. AC
+ Atractosomus champenoisi Chassain, 2008 fig. 93
Kw, MCh, Bz, Rg, PRo, RT. AR
Atractosomus plebejus Candèze, 1859
SLM, BM, MCh. AC
Atractosomus rhomboidalis Candèze, 1859
Bz, Kw, Cy, RT, Mk, Ga. AC
Atractosomus robustus Candèze, 1859 fig. 94
Bz, FT, Mk, It, Ko, Pg, MCh. AC
* Atractosomus sp. aff. conicicollis Candèze, 1859
MCh. AR
Crepidius cuneiformis Candèze, 1859
* Crepidius emarginatus Candèze, 1859 figs. 95-96
Sa, SLM, Kw, Co, It, Bz, RT, Tg, Ro, It, MS, Bal,
RE, Oy, NO, Ou, MCh. CC
Crepidius spp.
* Dicrepidius ramicornis Palisot de Beauvois, 1805 figs. 97-98
MS, Ou, Pa, Kw, Sa, CC, RT, Bz, It, Tg, BM, DS,
SG, Rg, NO, Ir, MCh, Ga. CC
* Dicrepidius sp.aff. corvinus Candèze, 1859 fig. 99
Co, Kw, MCh, Bz, It. R
Dipropus alopex (Fabricius, 1801)
(= Ischiodontus alopex (F.))
Dipropus chloropterus (Erichson, 1848)
(= Ischiodontus chloropterus Erichson)
Dipropus deletus (Candèze, 1859)
(= Ischiodontus deletus Candèze)
- 24 -
Dipropus latus (Candèze, 1859) fig. 100
(= Ischiodontus latus Candèze)
Kw, Sa, PC, SE, MS, BM, Tib, NO, Ir, MCh,
Ga. C
* Dipropus nigrita (Candèze, 1859)
PC, Kw, Bz, Tr, FT, MCh, RE, Cy, Bl, NO, Sa,
Tib, Ga. CC
Dipropus porosus (Erichson, 1848)
(= Ischiodontus porosus Erichson)
Dipropus punctatus (Candèze, 1859)
(= Ischiodontus punctatus Candèze)
Dipropus puncticollis (Fabricius, 1801) fig. 101
(= Elater puncticollis F.)
MS, Kw, SE, Bz, PC, NO, Ko, Tr, Sa, Tib. CC
Dipropus subsericeus (Candèze, 1859)
(= Ischiodontus subsericeus Candèze)
Tr, NO. AC
Dipropus spp. figs. 102-103
? Heterocrepidius spp.
+ Oplanischius Chassain, n.gen., 2010
+ Oplanischius biramicornis Chassain, 2010 fig. 104
Tr, NO. AR
* Spilus sp. aff. atractomorphus Candèze, 1859
MCh, Sa, Bz, BM, Kw, NO. AC
* Spilus sp. aff. ciliaticornis Champion, 1894
Kw, Bal, My, SLM, Pv, It, FT. AC
* Spilus sp. aff. crassus Candèze, 1900
MCh, Ro, Rg. AR
* Spilus sp. aff. nigricans Candèze, 1896
Rg, MCh. AR
Spilus nitidus Candèze, 1859
NO, MCh, Ga, Sa, Cr, SLM, Tr, Ga. AC
* Spilus sp. aff. rubidus Candèze, 1859 fig. 105
Ro, MCh, Rg, Kw. AC
* Stenocrepidius spp. fig. 106
PHYSORHININI
* Anchastomorphus spp. fig. 107
+ Anchastus boulardi Chassain, 2010
MCh, Tr, Bz, Ld, Si. R
+ Anchastus brulei Chassain, 2010 fig. 108
Bz, MCh, Mti, Rg. AR
* Anchastus brunneofasciatus Schwarz, 1906
Kw, B1, Rg, It, Tr. R
+ Anchastus gantieri Chassain, 2010
B1, Bz, Tib, MCh. R
+ Anchastus guyanensis Chassain, 2010
Tib, Kw(CC), MCh, Tib. R
Anchastus marginicollis Schwarz, 1902
SLM. RR
+ Anchastus montisequorum Chassain, 2010
MCh. R
* Anchastus moratus Candèze, 1889
DS, Co, Ca, Kw, Rg, FT. R
* Anchastus quadrimaculatus Candèze, 1889 fig. 109
Pk, SLM, Px. R
+ Anchastus touroulti Chassain, 2010 fig. 110
MCh, Ro/Kw, BPS, Ca. AR
Monelasmus guyanensis Candèze, 1863 fig. 111
Pk, Kw, Rg, Ro, MCh, Bz, Sa. AC
+ Physorhinus dalensi Chassain, 2008 fig. 112
Bz, MCh, Rg, NO, Tib, Ga. AR
* Physorhinus distigma Candèze, 1859 fig. 113
Cy, Rg, MCh, Tib. R
Physorhinus erythrocephalus (Fabricius, 1801)
Sa, Bz, FC, Ct, FT, PC, Mti, BM, RE, Mb, It, MS,
MCh, DSA, Ir, Mh, PPI, NO, Ga. CC
* Physorhinus marginatus (Candèze, 1859) fig. 114
Bz, Kw, MS, Ko, Rg, Ga, MCh, NO, Ir, Mr, Tib,
Ga. AC
* Physorhinus sexnotatus Steinheil, 1875
Bz, SLM, MCh, NO, Tib, Tr, Sa, Ir, Ga. C
CARDIOPHORINAE
Esthesopus carbonarius Candèze, 1860 fig. 115
Ro, PC, Kw, MCh, Ga. AC
* Esthesopus praecox (Erichson, 1840)
NO, Tr, Tib. AR
Esthesopus sp. fig. 116
Horistonotus distigma Candèze, 1878 fig. 117
Kw (Patawa), MCh. R
* Horistonotus sp. aff. popularis Erichson, 1847
MCh. R
* Horistonotus spernendus (Erichson, 1840)
Ko, Si, Bz. R
* Horistonotus zonatus Candèze, 1860 fig. 118
MCh. R
Horistonotus sp. fig. 119
Triplonychus acuminatus Candèze, 1860 fig. 120
Triplonychus cayennensis Erichson, 1840
Cr, Bz. AC
Triplonychus rufus Candèze, 1860
Espèce à retirer de la faune de Guyane : Chalcolepis
luczotii Candèze, 1857
Répertoire des localités indiquées par
leurs abréviations dans la liste :
Ac, Acarouany ; B1, Borne 1 (frontière Sud) ; Ba, Baduel
(Cayenne) ; Bal, Balata ; BM, Grand Boeuf mort (Saül) ;
BPS, Barrage Petit Saut. Bz, piste de Bélizon ; Ca, Route
Cacao ; CC, Camp Caïman (Montagne de Kaw) ; CH,
Changement ; Cm, Counamama (Iracoubo) ; Co, Coralie ;
Cp, Camopi ; Cr, Carapa (Montsinéry) ; Ct, Comté ; Cy,
Cayenne ; DS, Dégrad Saramaca (Kourou) ; FC, Forêt de
Counami (Iracoubo) ; FT, Forêt de Tamanoir (Iracoubo) ;
FV, Ferme Vidal ;
- 25 -
76
77
78
79
80
81
82
83
84
85
86
87
88
89
90
Fig. 76. Elater sp. [19-21 mm] ; fig. 77. Orthostethus infuscatus (Germar, 1844) [25-35 mm] ; fig. 78. Probothrium sp. [13 mm] ;
fig. 79. Tomicephalus sanguinicollis Latreille, 1834 [16-18 mm] ; figs. 80 & 81. Megapenthes spp. [8-10 mm, 4 mm] ; fig. 82.
Cardiorhinus aeneolipennis Candèze, 1863 [12-15 mm] ; fig. 83. Cardiorhinus bilineatus (Fabricius, 1801) [14-17 mm] ; fig. 84.
Cardiorhinus trivittatus Candèze, 1863 [12-17 mm] ; fig. 85. Cosmesus sp. [9 mm] ; fig. 86. Pomachilius sp. [5 mm] ; fig. 87.
Smilicerus sp.aff. zonatus Candèze, 1881 [12 mm] ; fig. 88. Achrestus flavocinctus (Candèze, 1859) [13-14 mm] ; fig. 89. Achrestus
lycidioides Candèze, 1859 [9-14 mm] ; fig. 90. Anoplischius (Cyathodera) longicornis Blanchard, 1843 [30-40 mm].
- 26 -
91
92
93
94
95
96
97
98
99
100
101
102
103
104
105
Fig. 91. Anoplischius laticollis Eschscholtz, 1829 [12-18 mm] ; fig. 92. Anoplischius sp. [10-15 mm] ; fig. 93. Atractosomus
champenoisi Chassain, 2008 [22-25 mm] ; fig. 94. Atractosomus robustus Candèze, 1859 [16-18 mm] ; figs. 95 & 96. ♂ et ♀
Crepidius emarginatus Candèze, 1859 ; figs. 97 & 98. ♂ et ♀ Dicrepidius ramicornis Palisot de Beauvois, 1805 [16-30 mm] ;
fig. 99. Dicrepidius sp.aff. corvinus Candèze, 1859 [16-20 mm] ; fig. 100. Dipropus latus (Candèze, 1859) [16-17 mm] ; fig. 101.
Dipropus puncticollis (Fabricius, 1801) [17-20 mm] ; figs 102 & 103. Dipropus spp. [10-12 mm] ; fig. 104. Oplanischius
biramicornis Chassain, 2010 [12-17 mm] ; fig. 105. Spilus sp.aff. rubidus Candèze, 1859 [11-19 mm].
- 27 -
Ga, Galion (RN2, pk 20) ; ICy, Île de Cayenne ; Ir,
Iracoubo ; It, Mont Itoupé (Parc Amazonien de Guyane) ;
KK, Koulé-Koulé ; Ko, Kourou ; Kw, Kaw ; La, Larivot ;
Ld, Lavaud ; Ma, Matoury ; Mb, Montabo ; MCh,
Montagne des Chevaux ; Mh, Mont Mahury ; Mj,
Montjoly ; Mk, Mont Mitaraka ; Mn, Mana ; Mr,
Maripasoula ; MS, Montagne des Singes ; Mti, Matiti
(Macouria) ; My, Montsinéry ; Na, Nancibo ; NO, Réserve
des Nouragues ; Ou, Ouanary ; Oy, Oyapok ; Pa,
Paramana ; PC, Piste des Compagnons-réunis ; Pg,
Patagaï ; Pi, Papaïtchon ; Pk, Parakou ; Po, Pariacabo ;
PPI, Piste Paul Isnard ; Pr, Mont Paramana ; Pro, Piste
Rocoucoua ; Pv, Piste Couleuvre ; Px, Piton Rocheux de
l'Armontabo ; RE, Route de l'Est ; Rg, Régina (RN1, pk
125) ; Ro, Roura ; Rq, Risquetout (Montsinéry) ; RT,
Réserve de la Trinité ; Sa, Saül ; SE, Saint-Élie ; SG, SaintGeorges ; Si, Sinnamary ; SJ, Saint-Jean ; SLM, SaintLaurent du Maroni ; SM, Saut Paripa ; Tg, Tonnegrande ;
Tib, Tibourou (RN2, pk 65) ; To, Montagne Tortue ; TP,
Trou Poissons ; Tr, Réserve Trésor.
La rareté relative des diverses espèces, c'est-àdire la fréquence des captures estimée sur la base de
récoltes totalisant environ 15000 spécimens, est
indiquée d'après l'échelle de notation suivante :
CC = très commun, C = commun, AC =
assez commun, AR = assez rare, R = rare, RR = très
rare ou exceptionnel.
La liste de taxons présentée ci-dessus n'est
pas exhaustive. En complément, on doit aussi tenir
compte de l'existence d'un nombre important
d'espèces indéterminées, en cours d'étude, dont le
statut d'espèces connues ou d'espèces nouvelles ne
peut pas être établi dans l'immédiat. En effet, certains
genres sont beaucoup plus abondamment représentés
en Guyane que ne l'indique le Catalogue Blackwelder
et nécessitent une étude approfondie. Il s'agit des
principaux genres suivants, pour lesquels est indiqué
le nombre approximatif d'espèces innommées :
− Conoderus, env. 10 spp. ;
− Aeolus, env. 10 spp. ;
− Elater, env. 10 spp. ;
− Anoplischius, env. 5 spp. ;
− Dipropus, env. 25 spp. ;
− Horistonotus, env. 10 spp. ;
− Esthesopus, env. 10 spp. ;
− Triplonychus, env. 10 spp. ;
− Drapetes, env. 10 spp.
Tout additionné, le nombre actuel d'espèces
d'élatérides de Guyane présentes dans la collection de
référence de l'un de nous (JC) dépasse largement trois
centaines, ce qui fait plus que tripler le contingent
guyanais du Catalogue Blackwelder.
L'entomologiste désireux de s'intéresser à la
faune des Élatérides de Guyane française aura tout
avantage à consulter la liste (non exhaustisve) des
travaux de Candèze, Casari, Champion, Costa,
Golbach et autres auteurs cités dans les Références
annexées, de même qu'il pourra se reporter avec
profit aux références bibliographiques citées dans ces
travaux.
REMERCIEMENTS. Nous tenons à remercier nos amis de la
SEAG, Pierre-Henri Dalens, Stéphane Brûlé et Eddy
Poirier, pour le don du riche matériel issu de leurs
prospections, qui constitue la base de ce catalogue. Nous
remercions les structures suivantes qui initient des
inventaires entomologiques dans les aires protégées : la
Réserve naturelle des Nouragues gérée par l'Office national
des Forêts (M. Dewynter), la Réserve Trésor (O. Tostain), le
Parc Amazonien de Guyane (F. Mortier, C. Guitet et N.
Surugue) ainsi que la DIREN Guyane qui en assure une
partie du financement.
Nous remercions chaleureusement Gérard Moragues pour
la communication de matériel d'étude issu de sa belle et
riche collection de Guyane. Nous saluons Jean-Louis
Giuglaris qui fournit un important matériel d'étude.
Nos remerciements vont également à notre collègue
Gérard Tavakilian qui nous a mis à disposition son matériel
pour la réalisation des photos qui illustrent cet article. Nous
exprimons enfin toute notre gratitude aux Drs Olivier
Montreuil et Antoine Mantilleri, du Muséum national
d'Histoire naturelle, Paris, grâce à l'obligeance desquels
nous pouvons consulter les riches collections de référence
du Laboratoire d'Entomologie.
Bibliographie
BLACKWELDER R.E., 1944-1957. - Checklist of the coleopterous Insects of
Mexico, Central America, the West Indies, and South America. Part 1,
Smithsonian Institution. United States National Museum, Bulletin 185 :
275-305 (Elateridae, pp. 280-303 ; Cebrionidae, p. 275 ; Melasidae :
Balginae, pp. 275-276 ; Trixagidae, pp. 304-305).
BONVOULOIR H. de, 1859. - Essai monographique sur la Famille des
Throscides, I-XVIII & 1-144, pl. 1-4. Deyrolle, Paris.
BONVOULOIR H. de, 1861. - Description de plusieurs espèces nouvelles de
la Famille des Throscides. Annales de la Société entomologique de France, 4è
série T.1 : 349-360, 1 pl.
BONVOULOIR H. de, 1870. - Monographie de la Famille des Eucnémides.
Annales de la Société entomologique de France, 4è série T.10, Supplément : 1907, pl. 1-42 (Pterotarsus, Thylacosternus, pl. 40-42).
CALDER A.A., 1978. - The Neotropical genus Anaissus (Elateridae) and its
relationship to the Pyrophorinae. The Royal Entomological Society of
London, Systematic Entomology, Vol. 3(4) :295-306
CALDER A.A., 1996. - Click Beetles - Genera of the Australian Elateridae
(Coleoptera). Monographs on Invertebrate Taxonomy. CSIRO, vol.2 :
I-X & 1-401.
CANDÈZE E., 1857. - Monographie des Élatérides, Tome premier. Mémoires
de la Société royale des Sciences de Liége, Tome douzième : I-VIII & 1-400,
pl. I-VII.
CANDÈZE E., 1859. - Monographie des Élatérides, Tome second. Mémoires
de la Société royale des Sciences de Liége, Tome quatorzième : 1-543, pl. IVII.
CANDÈZE E., 1860. - Monographie des Élatérides, Tome troisième.
Mémoires de la Société royale des Sciences de Liége, Tome quinzième : 1-512,
pl. I-V
CANDÈZE E., 1863. - Monographie des Élatérides, Tome quatrième.
Mémoires de la Société royale des Sciences de Liége, Tome dix-septième : 1534, pl. I-VI.
CANDÈZE E., 1865. - Élatérides nouveaux, premier fascicule, extrait du
Tome XVII des Mémoires couronnés et des Mémoires des Savants étrangers :
- 28 -
(1)-(63).
CANDÈZE E., 1874. - Révision de la Monographie des Élatérides, premier
fascicule. Mémoires de la Société royale des Sciences de Liége, 2è série, t. IV :
1-218.
CANDÈZE E., 1878. - Élatérides nouveaux, deuxième fascicule, extrait des
Comptes-rendus de la Société entomologique de Belgique : 1-54.
CANDÈZE E., 1882. - Élatérides nouveaux, troisième fascicule Mémoires de la
Société royale des Sciences de Liége, 2è série, T.IX (I)-(II) & (1)-(112).
CANDÈZE E., 1900. - Élatérides nouveaux, septième fascicule (oeuvre
posthume), Annales de la Société entomologique de Belgique, XLIV : 77-101
(Surinam).
CASARI-CHEN S.A., 1985. Sistemática e Evolução dos Hemirhipini
neotropicais (Pyrophorinae, Elateridae, Coleoptera). Revista Brasileira
de Entomologia 29(3/4) : 383-423.
CASARI-CHEN S.A., 1991. - Systematics and phylogenetic Analysis of Lacais
Fleutiaux, 1942 (Coleoptera, Elateridae, Pyrophorinae, Hemirhipini).
Revista brasileira de Entomologia, 35(4) : 773-794.
CASARI S.A., 1996. - Systematics and phylogenetic Analysis of Alaus
Eschscholtz, 1829 (Coloptera, Elateridae). Revista brasileira de
Entomologia, 40(2) : 249-298.
CASARI S.A., 1996. - Revision of Pherhimius Fleutiaux, 1942 with
establishment of the Saltamartinus, new genus (Coleoptera,
Elateridae, Pyrophorinae, Hemirhipini). Papéis Avulsos de Zolologia,
39(21) : 379-403.
CASARI S.A., 1998. - Revision of Hemirhipus Latreille, 1825 (Coleoptera,
Elateridae). Revista Brasileira de Entomologia, 41(2-4) : 317-334.
CASARI S.A., 1999. - Three new Species of Chalcolepis Candèze, 1857 (Col.
Elateridae: Agrypninae: Hemirhipini). Annales de la Société entomologique
de France (N.S.), 35(2) : 203-215.
CASARI S.A., 2002. - Catelanus and Fusimorphus (Coleoptera, Elateridae,
Agrypninae). Iheringia, Sér. zool., 92(3) : 85-96.
CASARI S.A., 2002. - Review of the Genus Chalcolepidius Eschscholtz, 1829
(Coleoptera, Elateridae), Agrypninae. Revista brasileira de Entomologia,
46(3) : 263-428.
CASARI S.A., 2003. - New Species of Alaus Eschscholtz, 1829 (Coleoptera:
Elateridae: Agrypninae, Hemirhipini). Annales de la Société entomologique
de France (N.S.), 39(4) : 315-333.
CHAMPION G.C., 1894-1897. - In Biologia Centrali-Americana. Insecta,
Coleoptera, Vol.III, Part 1, Serricornia, Elateridae : 258-556, pl. 11-24.
CHASSAIN J., 2001. - Note synonymique au sujet de deux espèces
appartenant au Genre Semiotus [Coleoptera, Elateridae]. Revue française
d'Entomologie (N.S.), 24(1) : 31-32.
CHASSAIN J., 2003. - Balgus schnusei (Heller) cayennensis, Sous-espèce nouvelle
d'Élatéride de la Faune de Guyane française [Coleoptera, Elateridae,
Thylacosterninae]. Revue française d'Entomologie (N.S.), 25(2) : 81-84.
CHASSAIN J., 2003. - Présence en Guyane française de deux espèces
remarquables d'Élatérides du Genre Saltamartinus Casari [Coleoptera,
Elateridae, Pyrophorinae]. Revue française d'Entomologie (N.S.), 25(3) :
147-151.
CHASSAIN J., 2005. - Lacon giuglarisi, espèce nouvelle pour la faune de
Guyane
française
(Coleoptera,
Elateridae,
Agrypninae).
L'Entomologiste, 61(3) : 131-134.
CHASSAIN J., 2008. - Description de deux nouvelles espèces de Coléoptères
Élatérides de Guyane française (Coleoptera Elateridae Dicrepidiinae).
L'Entomologiste 64(1) : 11-14.
CHASSAIN J., 2008. - Description d'une nouvelle espèce guyanaise
d'Élatéride
du genre
Physorhinus
(Coleoptera
Elateridae
Physorhininae). L'Entomologiste 64(2) : 85-88.
CHASSAIN J., 2009. - Description d'une nouvelle espèce guyanaise et
brésilienne d'Élatéride du genre Coctilelater (Costa, 1975) (Coleoptera
Elateridae Agrypninae Pyrophorini). L'Entomologiste, 65(1) : 55-58.
CHASSAIN J., 2009. - Description d'une espèce nouvelle du genre
Platycrepidius de Guyane (Coleoptera, Elateridae, Pyrophorinae,
Platycrepidiini). Le Coléoptériste, 12(3) : 191-195.
CHASSAIN J., 2010. - Pyrearinus mitarakensis, nouvelle espèce d'Élatéride de
Guyane française (Coleoptera Elateridae Agrypninae Pyrophorini).
L'Entomologiste, 66(1) : 23-25.
CHASSAIN J., 2010. - Description d'une espèce nouvelle du genre Heligmus
de Guyane (Coleoptera Elateridae Agrypninae Heligmini).
L'Entomologiste 66(2) : 87-89.
CHASSAIN J., 2010. - Les Anchastus LeConte, 1853 de Guyane (Coleoptera,
Elateridae, Physorhininae). Le Coléoptériste, 13(1) : 43-53.
CHASSAIN J., 2010. - Oplanischius n.gen. et Oplanischius biramicornis n.sp.,
nouveau genre et nouvelle espèce d'Élatéride de Guyane (Coleoptera,
Elateridae, Dicrepidiinae). Le Coléoptériste, 13(2).
COSTA C., 1972. - Gênero Pyrophorus. 6. Redescrição de P. tuberculifer
Eschscholtz, P. phosphorescens Castelnau e Descrição de quatorze
Espécies novas (Col. Elateridae). Papéis Avulsos de Zoologia, Vol. 25(21) :
199-227.
COSTA C., 1975. - Novas Espécies do Gênero Ptesimopsia Costa, 1979
(Coleoptera, Elateridae, Pyriphorinae), Papéis Avulsos de Zoologia, Vol.
29(9) : 55-64.
COSTA C., 1975. - Systematics and Evolution of the Tribes Pyrophorini
and Heligmini, with Description of Campyloxeninae, new Subfamily
(Coleoptera, Elateridae), Arquivos de Zoologia, Vol. 26(2) : 49-190.
COSTA C., 1976. - Speciation and geographical Pattern in Pyrophorus
Bilberg, 1820 (Coleoptera, Elateridae, Pyrophrinae), Papéis Avulsos de
Zolologia, Vol. 29(18) : 141-154.
COSTA C., 1978. - Sistematica e Bionomia de Pyrearinus Costa (Coleoptera,
Elateridae), Arquivos de Zoologia, Vol. 29(4) : 187-236.
COSTA C., 1980. - Novas Espécies do Gênero Lygelater Costa, 1975
(Elateridae, Pyrophorinae), Papéis Avulsos de Zolologia, Museu de
Zoologia da Universidade de São Paulo, Vol. 33(20) : 299-307.
COSTA C., 1988. - Larvas de Coleoptera do Brasil. Museu de Zoologia,
Universidade de São Paulo : 1-282, pl. 1-165.
FAUVEL A., 1861. - Catalogue des Insectes recueillis à la Guyane française
par M. E. Déplanche, Chirurgien auxiliaire de la Marine impériale,
pendant la Campagne de l'Aviso à Vapeur le Rapide, années 1954-5556. Bulletin de la Société linnéenne de Normandie, Vol. V : 1-31.
GOLBACH R., 1983. - Contribucion al Conocimiento de la Subfamilia
Agrypninae de Sudamerica con Descripcion de 3 Especies nuevas
(Col. Elat.). Acta zoologica lilloana XXXVII, 1 : 141-152.
GOLBACH R., 1994. - Elateridae (Col.) de la Argentina. Historia, Catálogo
actualizado hasta 1991 inclusive y Clave de Subfamilias y de Géneros
de Centro y Sudamérica. Opera lilloana 41 : 1-48.
HAYEK C.M.F. von, 1973. - A Reclassification of the Subfamily
Agrypninae (Coleoptera : Elateridae), Bulletin of the British Museum
(Natural History), Entomology, Supplement, 20 : 1-309.
HAYEK C.M.F. von, 1979. - Additions and Corrections to "A
Reclassification of the Subfamily Agrypninae (Coleoptera:
Elateridae)", Bulletin of the British Museum (Natural History), Entomology
Series, Vol. 38(5) : 183-261.
HORN G., 1890. - In Biologia Centrali-Americana. Insecta, Coleoptera,
Vol.III, Part 1, Serricornia, Throscidae and Eucnemidae : 193-257, pl.
10 (Supplément par G.C. Champion, pp. 667-670).
LACORDAIRE Th., 1832. - Notice sur l'Entomologie de la Guyane française.
Annales de la Société entomologique de France, Tome premier : 348-366.
LAWRENCE J.F. & A.F. NEWTON Jr., 1995. - Families and Subfamilies of
Coleoptera (with selected genera, notes, references and data on family
group names). [pp. 779-1006 + 48]. In : PAKALUK J. & S.A. SLIPINSKI
(Eds.). Biology, Phylogeny and Classification of Coleoptera. Papers celebrating
the 80th Birthday of Roy A. Crowson. Muzeum i Instytut Zoologii PAN,
Warszawa.
LESEIGNEUR L., 1972. - Coléoptères Elateridae de France continentale et de
Corse. Supplément au Bulletin mensuel de la Société linnéenne de Lyon : 1380.
RIESE S., 2003. - Appunti su alcuni Elateridae dell'America meridionale
(Coleoptera). Boll. Soc. entomol. Ital., 134(3) : 241-244.
RIESE S., 1989. - Una nuova specie di Lacon Castelnau del Sud America
(Coleoptera Elateridae). Boll. Soc. ent. Ital., 129(3) : 191-194.
RIESE S., 2007. - Contributo alla conoscenza del genere Anaissus con
descrizione di sei nuove specie. Boll. Soc. entomol. Ital., 139(2) : 91-100.
ROSA S.P., 2004. - Revisão do Gênero Opselater (Coleoptera, Elateridae,
Agryninae). Revista Brasileira de Entomologia 48(2) : 203-219.
SCHAAF D., 1970-1971. - Revision of the Genus Physorhinus (Coleoptera,
Elateridae) in North, Central, and South America. Part 1:
Introduction and Key to Species. Entomological News 1970, 81 : 225232. Part 2 continued from vol. 81 : Descriptions. Entomological News
1971, 82 : 57-84.
SCHWARZ O., 1906-1907. - In Wytsman, Genera Insectorum, Coleoptera,
Fam. Elateridae. 46A-C : 1-370, 6 pl.
WELLS S.A., 2007. - Revision of the neotropîcal Click-beetle Genus
Semiotus Eschscholtz (Coleoptera: Elateridae) Serial Publications of the
Natural History Museum of Los Angeles County, pp. 1-114.
- 29 -
106
107
108
109
110
111
112
113
114
115
116
117
118
119
120
Fig. 106. Stenocrepidius sp. [6-7 mm] ; fig. 107. Anchastomorphus sp. [2,5-3,5 mm] ; fig. 108. Anchastus brulei Chassain, 2010
[7,5-10 mm] ; fig. 109. Anchastus quadrimaculatus Candèze, 1889 [10 mm] ; fig. 110. Anchastus touroulti Chassain, 2010 [910 mm] ; fig. 111. Monelasmus guyanensis Candèze, 1863 [11-17 mm] ; fig. 112. Physorhinus dalensi Chassain, 2008 [7-8 mm] ;
fig. 113. Physorhinus distigma Candèze, 1859 [10-11 mm] ; fig. 114. Physorhinus marginatus (Candèze, 1859) [11-13 mm] ; fig.
115. Esthesopus carbonarius Candèze, 1860 [6-7 mm] ; fig. 116. Esthesopus sp. [4 mm] ; fig. 117. Horistonotus distigma Candèze,
1878 [9 mm] ; fig. 118. Horistonotus zonatus Candèze, 1860 [8 mm] ; fig. 119. Horistonotus sp. [8 mm] ; fig. 120. Triplonychus
acuminatus Candèze, 1860 [8-10 mm].
- 30 -
Peplomicrus uyttenboogaarti (Bernhauer, 1928), espèce nouvelle pour
la Guyane française (Coleoptera, Staphylinidae, Micropeplinae)
par Marc TRONQUET* & Nicolas DEGALLIER **
* 10 Carrer de Llimbergua
F-66500 Molitg les Bains
[email protected]
** 120 rue de Charonne
F-75011 Paris
[email protected]
Les Micropeplinae, considérés comme une
famille par certains auteurs (LÖBL & BURCKHARDT,
1988), comptent environ 110 espèces réparties en
cinq genres (HERMAN, 2001 ; TRONQUET, 2007).
Généralement de petite taille, ces staphylins possèdent
un aspect très caractéristique avec leurs téguments
fortement sclérifiés et sculptés, les élytres carénés, des
fossettes antennaires sur la face inférieure du
pronotum et des carènes longitudinales surplombant
des fossettes à la base des tergites abdominaux
L’espèce qui est signalée ici pour la première
fois de Guyane française est l’une des six espèces
néotropicales du genre Peplomicrus Bernhauer, 1928.
L'exemplaire mâle récolté le 24-III-2010 au piège à
vitre par la SEAG lors de la mission du Parc
Amazonien de Guyane au Mont Itoupé - Sommet
Tabulaire (3° 1' N ; 53° 4' W ; alt. 570 m) correspond
en tous points à la description originale (BERNHAUER,
1928) et à la diagnose donnée par CAMPBELL (1986).
Elle se distingue des autres espèces néotropicales du
genre et de Peplomicrus iviei Campbell, 1991 des
Antilles par la combinaison de caractères suivante :
ponctuation élytrale dense et grossière, carènes
longitudinales du vertex longues, métasternum avec
deux paires d’orifices glandulaires, carène médiane des
tergites 4 à 6 nette, ponctuation du métasternum
granulée au milieu, pronotum nettement plus large
que la base des élytres, avec des dents latérales
grandes, carène médiane du prosternum étroite,
distincte, longueur supérieure à 1,4 mm (fig. 1-2).
L’écologie de ce groupe est mal connue et la
méthode de collecte utilisée dans le cas présent (piège
d’interception) n’apporte pas de précisions. D’après
les auteurs cités, ces petits Coléoptères vivent dans la
litière où ils se meuvent lentement et se nourrissent
probablement de spores de champignons. Peplomicrus
uyttenboogaarti semble être l’espèce à plus large
répartition, déjà signalée du Panama, d'Équateur, du
Pérou, du Venezuela, du Suriname (localité-type) et sa
découverte en Guyane française étend sa distribution
vers l’est du continent.
REMERCIEMENTS. Nous remercions chaleureusement
Julien Touroult, Stéphane Brûlé, Eddy Poirier et PierreHenri Dalens (SEAG) pour la communication de ce
matériel ainsi que Mme Cécile Guitet, MM. Nicolas
Surugue et Frédéric Mortier du Parc Amazonien de
Guyane qui ont permis la réalisation de la mission Itoupé.
Antoine Mantilleri nous a permis d’utiliser la station
photographique du laboratoire d’entomologie du Muséum
national d’Histoire naturelle (Paris) pour réaliser les
illustrations. Alfred Newton Jr. (FMNH, Chicago) nous a
aimablement
communiqué
d’utiles
informations
taxonomiques.
1
2
Figures 1-2. Habitus de Peplomicrus uyttenboogaarti
(Bernhauer, 1928) de Guyane [1,62 mm du clypéus à l'apex
du pygidium] : 1, vue dorsale ; 2, vue ventrale.
Références
BERNHAUER M., 1928. – 33ster Beitrag zur südamerikanischen
Staphylinidenfauna. Tijdschrift voor Entomologie, 71 : 286-288.
CAMPBELL J. M., 1986. – A review of the New World species of
Peplomicrus Bernhauer (Coleoptera : Micropeplidae) with
description of a new species from Peru. The Coleopterists
Bulletin, 40 (1) : 62-74.
HERMAN LEE H., 2001. — Catalog of the Staphylinidae (Insecta
Coleoptera). 1758 to the end of the second millenium. Bulletin
of the American Museum of Natural History, 265 : 1-4218 (203)
LÖBL I. et BURCKHARDT D., 1988. – Cerapeplus gen. n. and the
classification of micropeplids (Coleoptera : Micropeplidae).
Systematic Entomology, 13 : 57-66.
Tronquet M., 2007. – Staphylinidae Micropeplinae de la faune de
France et contrées voisines des genres Arrhenopeplus (Koch,
1937) et Micropeplus Latreille, 1809 (23ème contribution à la
connaissance des Staphylins). R.A.R.E., 16 (3) : 104-116.
- 31 -
Les genres de Cantharidae, Lampyridae, Lycidae et Telegeusidae de
Guyane française (Coleoptera, Elateroidea)
par Robert CONSTANTIN*
* 103 impasse de la Roquette
F-50000 Saint-Lô
[email protected]
Abstract. Keys to separate the genera of Cantharidae (10 genera), Lampyridae (19
genera), Lycidae (21 genera) and Telegeusidae (1 genus) of French Guiana are proposed
in French and English language. Habitus photographs of each genus are provided, as
also microphotographs of several morphological characters. New faunistic data are
given: Pseudotelegeusis howdeni Wittmer, 1976 (Telegeusidae), Photinoides mystrionophorus Mc
Dermott, 1963 and Aspisomoides bilineatum (Gorham, 1880) (both Lampyridae) are cited
for the first time from French Guiana.
Key-words. Coleoptera, Cantharidae, Lampyridae, Lycidae, Telegeusidae, taxonomy,
French Guiana.
Les Cantharoidea, au sens de Crowson
(1972), ont été démembrés lors de travaux récents et
sont maintenant regroupés avec les Elateroidea.
Historiquement, les Lampyridae, Lycidae et
Cantharidae néotropicaux ont été décrits en majeure
partie à la fin du XIXéme siècle par J. Bourgeois, H.
Gorham, T. Kirsch et E. Olivier. Après les décès de
Jules Bourgeois en 1911 et d'Ernest Olivier en 1914,
Maurice Pic livra une longue série de descriptions
squelettiques, embrouillant pour longtemps ses
successeurs, tandis que G. Champion (1914, 1915)
révisait les Cantharidae du Mexique et d'Amérique
centrale.
Ces familles ne donnèrent lieu qu'à peu de travaux
modernes au cours du XXème siècle, dont un
catalogue mondial des Lampyridae (McDermott,
1966). Récemment, les publications de S. Zaragoza
Caballero sur la faune mexicaine, de R. S. Miller
(1991) et S. Kazantsev (2005, 2008) sur plusieurs
genres de Lycidae, de M. Bocakova (2001, 2003) sur
les genres de Lycidae Platerodinae et Calopterini ont
apporté un éclairage nouveau. Walter Wittmer (19151998) se passionna pour l'étude des Phengodidae,
enrichissant considérablement la connaissance de
cette famille.
L'étude d'un riche matériel collecté en Guyane par la
SEAG a révélé un nombre considérable d'espèces
nouvelles, tout comme celui récolté personnellement
en Équateur, dont la composante faunistique
amazonienne est voisine. Le classement systématique
dans un cadre générique a été une tâche plus délicate
que prévue, en particulier pour les Lampyridae, les
auteurs classiques ayant chacun leur opinion sur la
systématique. Un important travail de révision
générique reste à entreprendre pour les taxons placés
dans les genres Lucidota et
Photinus. Certaines
photographies représentent des espèces nouvelles.
Elles sont ici désignées comme "sp". ou "sp. cf. taxon
voisin".
Les clés présentées ici font de larges
emprunts à Olivier (1907, 1911), McDermott (1964),
Crowson (1972), Ivie (2002) et Bocakova (2003). Elles
constituent une synthèse provisoire pour réaliser un
classement préliminaire et promouvoir de nouvelles
recherches. La découverte de représentants
néotropicaux d'autres genres est prévisible. Une étude
des Phengodidae de Guyane sera publiée séparément.
Matériel et méthodes
Le matériel provient en majeure partie de
récoltes de la SEAG par pièges d'interception, avec
recueil dans l'eau fortement salée, rinçage, égouttage,
congélation, montage à sec sur paillette après
réhydration. Cette méthode a procuré des spécimens
en parfait état et souples. Les photographies ont été
réalisées avec un appareil numérique Canon
Powershot G3 adapté sur un stéréomicroscope Leica
MZ12, selon la technique d'assemblage de différents
plans focaux (une dizaine en moyenne) par le logiciel
CombineZ de Alan Hadley.
Le matériel a été comparé aux collections
européennes, en premier lieu à celle du MNHN où
sont conservés les collections de Jules Bourgeois,
Ernest Olivier, Maurice Pic, et une partie de la
collection de Henry S. Gorham, ainsi qu'au NHMB,
- 32 -
collection générale comprenant la collection de Walter
Wittmer, et au NHM, riche de ses collections liées à la
publication des volumes de Biologia CentraliAmericana et de la collection George C. Champion.
Acronymes des collections et abréviations :
CCo : collection R. Constantin, Saint-Lô, F
GF : Guyane française
LT : longueur totale du clypéus à l'apex élytral ou
abdominal
MCV : Montagne des Chevaux, localité située à 6 km à
l'ouest de Roura
NHM : The Natural History Museum, London
NHMB : Naturhistorisches Museum, Basel, CH
MNHN : Muséum national d'Histoire naturelle, Paris
SEAG : Société entomologique Antilles-Guyane,
Cayenne
Clé des familles des ex-Cantharoidea
(Elateroidea partim) observés en Guyane
1. Trochanters allongés. Hanches intermédiaires
distinctement séparées. Marge antérieure du
mésosternum droite. Pronotum avec une carène
longitudinale ou au moins une fossette médiane
basale. Élytres à carènes longitudinales et à
intervalles divisés en cellules formant une réticulation
...............................................................................Lycidae
-
Trochanters non allongés. Hanches intermédiaires
non ou faiblement séparées. Marge antérieure du
mésosternum échancrée. Pronotum sans carène ni
fossette basale..................................................................2
2. Pronotum recouvrant la tête en vue dorsale. Organes
lumineux habituellement présents sur l'abdomen........
.......................................................................Lampyridae
Aragua, Rancho Grande (NHMB).
Cette espèce, nouvelle pour la Guyane, est
apparue en petite série dans les pièges-vitre de la
SEAG. Matériel examiné : Guyane française, réserve
Trésor, 4°36' N-52°16' W, alt. 260 m, 5-X-2009, 4 ♂,
SEAG leg. ; idem, 13-X-2009, 4 ♂, SEAG leg. ; réserve
natuelle des Nouragues, Station de Saut Pararé,
4°01 'N-52°41' W, alt. 120 m, 1-XI-2009, 2 ♂, SEAG
leg. ; Mont Tabulaire-Itoupé, 3°01'19" N-53°05'03" W,
alt. 800 m, 17-III-2010, 1 ♂, SEAG leg. ; Laussat 3
km NW, 20-V-2010, 1 ♂, G. Lamarre leg. (MNHN et
CCo).
Sa biologie reste inconnue. Les Telegeusidae,
voisins des Phengodidae, constituent une toute petite
famille comprenant trois genres et une dizaine
d'espèces discrètes et rares, distribuées entre le sud
des USA et le nord du continent sud-américain.
Clé générique des Lampyridae de Guyane
1. Clypéus très développé, fortement sclérifié et soudé
au front. Labre situé sous le bord antérieur du
clypéus (fig. 1) (Photurinae)...........................................2
-
Clypéus court, peu sclérifié. Labre membraneux
prolongeant le bord antérieur du clypéus....................3
2. Tarses (♂ ♀) à ongle externe bifide et ongle interne
simple (fig. 32)................................................... Photuris
-
Tarses à ongles externe et interne bifides (♂) ou
simples (♀) (fig. 33).................................. Bicellonycha
3. Mandibules modifiées, à base conique large,
pubescente, la pointe fine et glabre (fig. 2)..................4
Tête visible en vue dorsale.............................................3
Mandibules simples, arquées, régulièrement rétrécies
de la base à l'apex (fig. 3)..............................................12
3. Antennes biflabellées à lamelles très longues, souvent
enroulées. Élytres raccourcis, ne recouvrant qu'une
partie des ailes (fig. 34). Larves connues à organes
lumineux....................................................Phengodidae
4. Tarses étroits, le dernier article dépassant l'avantdernier de plus de la moitié. Antennes ♂
relativement courtes, biflabellées. ♀ inconnues
(Pleotomini)......................................................................5
- Antennes simples ou dentées. Pas d'organe lumineux.
............................................................................................ 4
-
-
-
Tarses larges, compacts, à quatrième article long et
large, enveloppant la plus grande partie du dernier
article (fig. 8). Épipleures larges, délimités
intérieurement par un léger sillon oblique...................6
4. Antennes pectinées. Mandibule fine et simple.
Pronotum brillant, rebordé, à fossettes près des
angles antérieurs. Élytres raccourcis, ne recouvrant
que la moitié basale des ailes. Longueur 3,5-4 mm
(fig. 14).......................................................Telegeusidae
5. Corps allongé, parallèle. Pronotum aussi long que
large, rétréci triangulairement en avant (fig. 16)............
............................................................. Calyptocephalus
-
-
Antennes simples ou faiblement dentées. Élytres
entiers, ou raccourcis, dans ce cas la mandibule est
bidentée avant l'apex (fig. 4).....................Cantharidae
Note sur un Telegeusidae
Le Telegeusidae Pseudotelegeusis howdeni
Wittmer, 1976, n'était connu que par trois exemplaires
mâles. Il a été décrit sur deux spécimens collectés par
H. & A. Howden sur l'île antillaise de Trinidad, Morne
Bleu et un exemplaire provenant du Venezuela, prov.
Corps oblong ou ovalaire. Pronotum transverse (fig.
15)..................................................................... Phaenolis
6. Stigmates abdominaux en position ventrale (fig. 10).
Antennes ♂ flabellées ou pectinées (Lamprocerini)..7
-
Stigmates abdominaux en position dorsale (fig. 11).
Antennes courtes et simples (Cratomorphini)..........10
7. Antennes biflabellées, à lamelles très longues (♂) ou
courtes (♀).......................................................................8
-
- 33 -
Antennes uniflabellées (♂) ou pectinées (♂ ♀)..........9
Fig. 1. Photuris fulvipes (Blanchard) ♂, clypéus. vue dorsale. Fig. 2. Aspisoma maculatum (DeGeer) mandibule droite, vue ventrale. Fig. 3.
Psilocladus guyanensis Pic, mandibules, vue ventrale. Fig. 4. Macromalthinus maximiceps Pic, mandibule droite, vue dorsale. Fig. 5. Cyrtopteron
atripenne Pic, disque du pronotum. Fig. 6. Haplobothris costata Pic, disque du pronotum. Fig. 7. Silis lemoulti Pic, bord droit du pronotum, vue
dorsale. Fig. 8. Aspisoma maculatum (DeGeer), articles IV et V du métatarse droit. Fig. 9. Discodon surinamense Pic, articles IV et V du métatarse
gauche. Fig. 10. Lucio blattinum (Perty), stigmate du ventrite VI, vue ventrale. Fig. 11. Aspisoma maculatum (DeGeer), stigmate de l'urite IV, vue
ventrale avec pleurite éversé vers le bas. Fig. 12. Photinoides mystrionophorus McDermott, pygydium, vue ventrale. Fig. 13. Pygodiscodon
obscurum Wittmer, pygydium, vue latero-dorsale.
8. Antennes biflabellées à lamelles symétriques (fig. 18)
...................................................................... Lamprocera
-
Antennes biflabellées à lamelles asymétriques, les
lamelles internes 3 à 5 fois plus longues que les
lamelles externes (fig. 19)...................................... Lucio
longitudinale. Élytres à trois côtes fines et à
épipleures réduits (fig. 23).....................Aspisomoides
12. Antennes ♂ flabellées (Amydetinae).............................13
-
Antennes simples (♂ ♀) (Lampyrinae Photinini).........15
9. Antennes uniflabellées à lamelles longues (♂) ou
dentées (♀) (fig. 20)..................................... Lychnacris
13. Antennes biflabellées, les lamelles longues (♂) ou
courtes (♀) ciliées de longs poils (fig. 26)......................
....................................................................... Psilocladus
-
-
Antennes pectinées (♂) ou dentées (♀). Forme plus
aplatie (fig. 21).................................................. Tenaspis
10. Corps ovalaire. Yeux ♂ très gros et contigus.
Pronotum à deux taches vitrées translucides près du
bord antérieur. Abdomen à segments lobés (fig. 24)...
................................................................. Cratomorphus
Antennes uniflabellées ♂ (♀ inconnues)...................14
14. Élytres subulés, déhiscents à leur côté interne,
découvrant les ailes. Pronotum sans gibbosités.
Grande taille, supérieure à 12 mm (fig. 17)....................
....................................................................... Dryptelytra
Corps ovalaire, en forme de bouclier. Yeux ♂ non
contigus. Pronotum sans taches vitrées. Abdomen à
segments non lobés.......................................................11
- Élytres entiers, parfois découvrant les ailes à leur côté
externe. Pronotum à deux gibbosités. Taille plus
petite 5-8 mm. Élytres à côtes très saillantes (fig. 25). .
..................................................................... Magnoculus
11. Corps ovale. Pronotum trapézoidal. Élytres sans
côtes et à épipleures très larges (fig. 22).....Aspisoma
15. Antennes de 9 articles. Espèce jaune de 10 mm...........
.......................................................................... Oliviereus
-
-
-
Corps parallèle. Pronotum ogival à fine carène
- 34 -
Antennes de 11 articles.................................................16
Fig. 14. Pseudotelegeusis howdeni Wittmer, 1976 (LT : 4 mm ; GF, réserve Trésor). Fig. 15. Phaenolis sp. cf. defecta Olivier, 1907
(LT : 10 mm ; GF, Nouragues). Fig. 16. Calyptocephalus comatus Olivier, 1895 (LT : 15 mm ; GF, MCV). Fig. 17. Dryptelytra
cayennensis Laporte, 1833 (LT : 12-14 mm ; GF, MCV). Fig. 18: Lamprocera flavofasciata (Blanchard, 1846) (LT : 19 mm ; Uruguay,
Canelones). Fig. 19. Lucio blattinum (Perty, 1830) (LT : 15 mm ; GF, Montsinéry). Fig. 20. Lychnacris sp. ♀ (LT : 13 mm ; Ecuador,
Napo). Fig. 21. Tenaspis sp. ♂(LT : 16 mm ; Panama, Varagues). Fig. 22. Aspisoma maculatum (DeGeer, 1774) (LT : 16 mm ; GF,
Nouragues). Fig. 23. Aspisomoides bilineatum (Gorham, 1880) ♀ (LT : 10,5 mm ; GF, piste de Kaw). Fig. 24. Cratomorphus
bifenestratus Gorham, 1880 ♂ (LT : 23 mm; Brésil, Sao Paulo). Fig. 25. Magnoculus sp. cf. obscurus (Olivier, 1885) ♂ (LT : 6 mm ;
GF, MCV).
- 35 -
16. Antennes courtes, ne dépassant pas la moitié du
corps, les articles subcylindriques. Suture clypéofrontale membraneuse. Abdomen ♂ à deux avantderniers sternites lumineux, blanchâtre cireux..........17
-
Antennes allongées, dépassant la moitié du corps, à
articles fortement comprimés, parfois dentés.
Clypéus soudé au front. Appareil lumineux ♂ réduit..
.......................................................................................... 18
17. Pygidium sans projections ventrales (fig. 30)................
............................................................................ Photinus
-
Pygidium ♂ à deux longues apophyses ventrales (fig.
12, 31).......................................................... Photinoides
18. Corps allongé, parallèle. Antennes dentées ou
simples. Pronotum arrondi ou rétréci en avant (fig.
27, 28)................................................................ Lucidota
-
Corps plus court, ovalaire. Antennes simples.
Pronotum triangulaire à marge latérale large et
relevée. Élytres courts, les épipleures élargis à la base
et relevés (fig. 29)........................................ Platylampis
Remarques et
Lampyridae.
notes
faunistiques
sur
les
Calyptocephalus Gray, 1832. Un genre comprenant
22 espèces, dont 5 signalées de Guyane.
Phaenolis Gorham, 1880. Un genre voisin du
précédent, regroupant 22 espèces, dont une guyanaise
P. lemoulti Pic 1938.
Lamprocera Laporte de Castelnau, 1833. Il y a 16
espèces connues, dont une est décrite de Guyane L.
diluta Olivier, 1885.
Lucio Laporte de Castelnau, 1833. Les Lucio
comprennent 16 espèces, toutes de grande taille, dont
L. maerens E. Olivier, 1912, de Guyane.
Lychnacris Motschulsky, 1853. Un genre
comprenant 15 espèces, dont L. flabellata (F., 1801)
décrit de Guyane
Tenaspis Leconte, 1881. Un genre néotropical
comprenant 16 espèces, dont T. rufibasis Olivier, 1909
et T. sinuosa Olivier, 1899, décrits de Guyane.
Aspisoma Laporte de Castelnau, 1833, regroupe plus
de 75 espèces, toutes néotropicales, dont 5 signalées
en Guyane
Aspisomoides Zaragoza, 1995. Deux espèces
d'Aspisoma d'Amérique centrale ont été transférées
dans ce genre, dont Aspisomoides bilineatum (Gorham,
1880), retrouvé en Guyane sur la piste de Kaw, pk 38,
20-VIII-1996, 1 ♀, leg. J. Touroult (CCo).
Cratomorphus Motschulsky, 1853. Un genre qui
comprend des insectes de grande taille, souvent à
large répartition. Plus de 30 espèces ont été décrites,
toutes néotropicales. Aucune n'est connue de la
Guyane, mais leur présence est très probable.
Lucidota Laporte de Castelnau, 1833. Un très grand
genre néotropical dans lequel ont été placées plus de
170 espèces. La séparation entre Photinus et Lucidota
reste confuse. Une dizaine d'espèces ont été décrites
de la Guyane, mais le matériel de la SEAG des
Nouragues, de la Montagne des Chevaux, du Mont
Itoupé, révèle déja près d'une vingtaine d'espèces.
Platylampis Motschulsky, 1853. Un petit genre avec
7 espèces sud-américaines. Platylampis explanata Pic,
1943, décrit du Pérou et de Bolivie, se retrouve en
Equateur, au Venezuela et en Guyane.
Oliviereus Pic, 1930. Genre monospécifique,
Oliviereus flavus Pic, 1930, décrit de Guyane. Jusqu'à
présent, aucun exemplaire n'a pu être retrouvé dans
les collections de l'auteur au MNHN.
Photinoides McDermott, 1963. Un genre créé pour
4 espèces du Mexique, de Bolivie et du Pérou.
Photinoides mystrionophorus McDermott, 1963, décrit du
Pérou, a été observé en Guyane : Montagne des
Chevaux (Roura), 22-XII-2008, 19-XII-2009, 3-I2010, 14-III-2010, 3 ♂ 2 ♀, SEAG leg. (CCo).
Photinus Laporte de Castelnau, 1833. Un autre très
grand genre, de contour difficile. Plus de 250 espèces
sur tout le continent américain, dont 9 signalées de la
Guyane. Déja plus de 15 espèces ont été observées en
Guyane.
Magnoculus McDermott, 1966 (nom de
remplacement de Megalophalmus Gray, 1832,
préoccupé). Un genre bien individualisé, comprenant
23 espèces. Aucune n'était signalée de Guyane, mais
déja 5 espèces ont été distinguées dans le matériel de
la SEAG.
Dryptelytra Laporte de Castelnau, 1833. Il compte
14 espèces, dont D. cayennensis Laporte, 1833, assez
commun en Guyane.
Psilocladus Blanchard, 1876. Un genre comprenant
42 espèces néotropicales, dont 3 signalées de Guyane.
Les individus, majoritairement des mâles, sont
interceptés en grand nombre par les pièges-vitres.
Psilocladus miltoderus Blanchard, décrit de Bolivie,
montre une vaste distribution dans le bassin
amazonien, et se retrouve en Guyane avec d'autres
espèces voisines.
Bicellonycha Motschulsky, 1853. Une quarantaine
d'espèces néarctiques et néotropicales, dont B.
bipartita Pic, 1927, de Guyane.
Photuris Dejean, 1833. Un grand genre abritant plus
de 80 espèces néarctiques et néotropicales, dont 5
signalées de Guyane.
- 36 -
Clé générique des Lycidae de Guyane
1. Tête allongée, prolongée en avant par un rostre.
Antennomère III très allongé (Lycini).........................2
- Tête non prolongée en avant par un rostre.................3
2. Élytres amples et nettement élargis vers l'extrémité
chez le ♂, plus faiblement chez la ♀ (fig. 37)....Lycus
- Élytres subparallèles, non dilatés vers l'extrémité, les
deux sexes semblables (fig. 36)................Lycostomus
3. Espèces brun noir de petite taille, pièces buccales
réduites en position ventrale. (Femelles inconnues)...4
- Espèces en partie rouge ou orangé de plus grande
taille...................................................................................7
4. Antennes de 10 articles, les antennomères III-X
rectangulaires fortement comprimés (fig. 46)...............
........................................................................ Neolyrium
- Antennes de 11 articles...................................................5
5. Antennes dentées (fig. 48)..........Ceratopriomorphus
- Antennomères IV-XI longuement flabellées..............6
6. Antennomère III court et étroit. Quelques soies
antennaires écailleuses (fig. 47).......... Flabellocaenia
- Antennomère III flabellé. Pas de soies antennaires
écailleuses (fig. 49)............................. Pseudacroleptus
7. Pronotum à fond lisse sans traces de carène
longitudinale (Platerodini)............................................20
- Pronotum à carène médiane longitudinale, simple ou
divisée (Calopterini)........................................................8
8. Carène médiane du pronotum simple, non divisée....9
- Carène médiane du pronotum divisée, formant une
aréole centrale................................................................14
9. Base du pronotum avec prolongement médian
recouvrant le scutellum (fig. 42).............Lycoplateros
- Base du pronotum droite ou bisinuée, laissant le
scutellum découvert......................................................10
10. Élytres avec 4 côtes primaires, au moins à la base....11
- Élytres avec 3 côtes primaires......................................13
11. Mâles à antennes flabellées. Dernier article des
palpes maxillaires allongé (fig. 41)..........Leptoceletes
- Mâles à antennes dentées.............................................12
12. Dernier article des palpes maxillaires transverse,
tronqué et élargi au sommet. Élytres dilatés vers
l’extrémité, parfois triangulaires. Cellules élytrales
transverses (fig. 35)...................................... Calopteron
- Dernier article des palpes maxillaires allongé,
sécuriforme. Élytres subparallèles. Cellules élytrales
allongées (fig. 43)....................................... Mesopteron
13. Dernier article des palpes maxillaires et labiaux à
apex prolongé par une longue pointe. Élytres à 3 è
côte interrompue. ♂ à antennes dentées (fig. 40).........
.................................................................. Lycomorphon
- Dernier article des palpes maxillaires et labiaux
tronqués à l’apex. ♂ à antennes flabellées (fig. 38).......
......................................................................... Idiopteron
14. Carène médiane du pronotum divisée dans sa partie
basale, ménageant une aréole étroite triangulaire à
plus grande largeur près du bord basal (fig. 5)..........15
- Carène médiane divisée dans sa partie médiane,
formant une aréole fusiforme ou lenticulaire (fig. 6)...
.......................................................................................... 16
15. Élytres à 4 fortes côtes (fig. 39)...............Cyrtopteron
- Élytres à 3 côtes, la 3è interrompue (fig. 40)..................
.................................................................. Lycomorphon
16. Élytres à 4 côtes, sans côtes secondaires....................17
- Élytres à 4 côtes primaires et 5 côtes secondaires,
parfois réduites...............................................................18
17. Aréole médiane du pronotum rétrécie sur le tiers
basal. Cellules élytrales fortes et presque aussi
longues que larges (fig. 44)........................Metapteron
- Aréole médiane du pronotum lenticulaire. Cellules
élytrales transverses (fig. 45)..................Haplobothris
18. Antennes des ♂ pectinées ou flabellées.....................19
- Antennes des ♂ dentées (fig. 52 ♀)..............Linoptes
19. Pronotum trapézoïdal, rétréci en avant (fig. 51)............
........................................................................ Calocladon
- Pronotum arrondi en avant (fig. 50)..........Emplectus
20. Antennes allongées, atteignant le quart apical des
élytres (fig. 54)................................................... Teroplas
- Antennes plus courtes (fig. 53)........................ Plateros
Remarques et notes faunistiques sur les Lycidae.
Lycus Fabricius, 1787. Ce très grand genre tropical
comprend aussi un lot d'espèces néotropicales, dont
Lycus (Thoracocalon) icarus Bourgeois, 1889, décrit de
Guyane. Aucun spécimen de cette région n'était
disponible dans les collections historiques conservées
au MNHN. Le genre est illustré avec une espèce assez
voisine d'origine mexicaine (fig. 37).
Lycostomus Motschulsky, 1861. Un grand genre
oriental avec quelques espèces néotropicales, dont
Lycostomus maroniensis Pic, 1923, décrit de Guyane et
voisin de Lycostomus championi Gorham, 1880.
La tribu néotropicale des Calopterini comprend en
Guyane au moins les genres suivants : Calopteron
Laporte de Castelnau, 1838, Metapteron Bourgeois,
1905, Leptoceletes Green, 1952, Idiopteron Bourgeois,
1905, Cyrtopteron Bourgeois, 1905, Mesopteron
Bourgeois, 1905, Haplobothris Bourgeois, 1879,
Calocladon Gorham, 1881, Emplectus Erichson, 1847,
Linoptes Gorham, 1884, Lycoplateros Pic, 1922, et
Lycomorphon Pic, 1922.
- 37 -
Fig. 26. Psilocladus miltoderus Blanchard, 1846 ♂ (LT : 8 mm ; GF, Nouragues). Fig. 27. Lucidota mellicula Olivier 1907 (LT : 911 mm ; GF, Nouragues). Fig. 28. Lucidota pennata Dejean, 1837 (LT : 12 mm ; GF, Nouragues). Fig. 29. Platylampis explanata Pic,
1943 (LT : 7,5 mm ; GF, Nouragues). Fig. 30. Photinus sp. (LT : 12 mm ; GF, MCV). Fig. 31. Photinoides mystrionophorus McDermott,
1963 (LT : 10 mm ; GF, MCV). Fig. 32. Photuris fulvipes (Blanchard, 1846) (LT : 12 mm ; GF, Nouragues). Fig. 33. Bicellonycha sp. ♂
(LT : 13 mm ; GF, Nouragues). Fig. 34. Phrixothrix gibbosus Wittmer, 1976 (LT : 12 mm ; GF, Nouragues). Fig. 35. Calopteron
tropicum ♀ (Linné, 1764) (LT : 17 mm; GF, Nouragues). Fig. 36. Lycostomus championi Gorham, 1880, paratype MNHN (LT : 12
mm ; Guatemala, Duenas). Fig. 37. Lycus fernandezi Dugès, 1878 (LT : 13-15 ; USA, Arizona, photographie de Tom Murrray).
- 38 -
Fig. 38. Idiopteron sp. cf. biplagiatum (Kirsch, 1884) (LT : 8,5 mm ; Ecuador, Sto Domingo). Fig. 39. Cyrtopteron atripenne Pic, 1922
(LT : 6 mm ; GF, MCV). Fig. 40. Lycomorphon sp. cf. amazonicum Nascimento & Bocakova, 2009 (LT : 5,5 mm ; GF, Nouragues).
Fig. 41. Leptoceletes sp. (LT : 7 mm ; GF, Nouragues). Fig. 42. Lycoplateros sp. (LT : 6 mm ; GF, MCV). Fig. 43. Mesopteron sp. (LT :
5,5 mm ; GF, MCV). Fig. 44. Metapteron sp. cf. suturale (Latreille, 1833) (LT : 6 mm ; GF, Nouragues). Fig. 45. Haplobothris costata
Pic, 1930 (LT : 4,5 mm ; GF, Nouragues). Fig. 46. Neolyrium sp. cf. duidaense Kazantzev, 2005 (LT : 5 mm ; GF, Mont Itoupé). Fig. 47.
Flabellocaenia sp. cf. letitia Miller, 1991 (LT : 3,5 mm ; GF, Mont Itoupé). Fig. 48. Ceratopriomorphus sp. (LT : 3,5 mm ; GF, MCV).
Fig. 49. Pseudacroleptus sinuatus Pic, 1911 (LT : 4,5 mm ; GF, Nouragues).
- 39 -
Au delà de l'identification des genres, il est impossible
de préciser l'espèce sauf pour quelques genres
contenant peu d'espèces comme Cyrtopteron,
Haplobothris, Metapteron. La monographie de Bocakova
(2003), base de la clé des Lycidae de Guyane,
comprend une riche iconographie de référence.
Pseudacroleptus Pic, 1911, Flabellocaenia Pic,
1929 et Ceratopriomorphus Pic, 1922, sont des
insectes discrets, inféodés aux forêts primaires bien
conservées et généralement absents dans les paysages
modifiés. Leur apparition en petite série dans les
pièges d'interception constitue une excellente surprise.
Neolyrium Kazantsev, 2005. Un genre créé
récemment pour deux espèces remarquables du
Venezuela et d'Équateur. Quelques exemplaires d'un
Neolyrium voisin de N. duidaense Kasantsev, 2005, ont
été observés en Guyane.
Plateros Bourgeois, 1879. Un très grand genre
pantropical. En Guyane, la SEAG a collecté 8 espèces
différentes, avec une prédominance de femelles.
Teroplas Gorham, 1884. Ce genre, redéfini par
Bocakova (2001), puis par Kazantsev (2005),
comprend quelques espèces d'Amérique centrale. Il
est aussi présent en Guyane dans les récoltes de la
Montagne des Chevaux et des Nouragues.
Le genre Macrolygistopterus Pic, 1929 comprend
une série d'espèces répandues entre le Mexique et le
Brésil. Non signalé de Guyane, sa présence y est
possible. Ce sont des insectes de bonne taille, 12-18
mm, reconnaissables par la tête avec un rostre, le
pronotum sans carène médiane ni expansions
marginales mais avec des traces de côtes latérales
obliques, les élytres à 4 fines côtes lisses sans cellules
réticulées.
Clé générique des Cantharidae de Guyane
1. Les trois premiers articles des palpes maxillaires
inégaux. Épines tibiales robustes et bien visibles.......2
- Les trois premiers articles des palpes maxillaires
subégaux. Épines tibiales très petites. Sternite IX des
♂ et édéages asymétriques (Chauliognathinae)...........8
2. Quatrième article tarsal fendu transversalement à sa
base (fig. 9). Abdomen à huit segments apparents, IX
et X invaginés. Sternite VIII du ♂ divisé jusqu’à la
base (Silinae).....................................................................4
- Quatrième article tarsal non divisé près de sa base.
Abdomen à neuf segments visibles..............................3
3. Dernier article des palpes maxillaires globulaire à
sommet pointu (Malthininae) (fig. 55).........Caccodes
- Dernier article des palpes maxillaires globulaire ou
sécuriforme, à apex tronqué ou en lame, non pointu
(Dysmorphocerinae) (fig. 61).................Plectonotum
4. Premier article antennaire allongé, en forme de scape
(fig. 56)............................................................. Tylocerus
- Premier article antennaire non allongé........................5
5. Scutellum ♂ portant un long appendice médian
(fig. 60) ...................................... Silis sgn. Peltariosilis
- Scutellum ♂ sans appendice..........................................6
6. Pronotum fortement transverse. Bord latéral du
pronotum des ♂ à apophyses, excroissances ou
fissures près de la base (fig. 7, 59)........................... Silis
- Pronotum moins transverse. Bord latéral non
modifié près de la base ou à petite incision transverse
près du tiers postérieur...................................................7
7. Pygidium ♂ prolongé par une pointe mucronée
portant deux tubérosités (fig. 13, 58)..............................
.................................................................. Pygodiscodon
- Pygydium ♂ simple (fig. 57).........................Discodon
8. Élytres raccourcis, à peine plus longs que larges, ne
recouvrant que la base des ailes membraneuses.........9
- Élytres entiers, parfois rétrécis vers l’extrémité,
recouvrant la majeure partie des ailes membraneuses.
.......................................................................................... 10
9. Front légèrement concave entre les yeux. Antennes
courtes, les articles comprimés, au plus 2x plus longs
que larges. Pronotum aussi long que large (fig. 68)......
.............................................................................. Lobetus
- Front et vertex nettement concaves. Antennes
longues, les articles fins, 4x plus longs que larges.
Pronotum plus long que large, plus étroit en avant
(fig. 69)................................................ Macromalthinus
10. Élytres progressivement élargis vers l’extrémité
(fig. 66)............................................................. Daiphron
- Élytres non élargis vers l’extrémité.............................11
11. Pronotum mat, fortement rebordé latéralement.
Élytres rétrécis vers l'extrémité. 7-9 mm (fig. 67).........
........................................................................... Malthesis
- Pronotum brillant, sans rebord marqué. Élytres non
rétrécis au sommet. Taille variable 7-24 mm (fig. 63,
64, 65)................................................... Chauliognathus
Remarques et
Cantharidae.
notes
faunistiques
sur
les
Tylocerus Dalman, 1833. Un genre distribué dans les
Antilles. Tylocerus cayennensis Pic, 1910 est la seule
espèce décrite du continent sud-américain.
L'holotype, aimablement prêté par le MNHN, est le
seul exemplaire connu.
Discodon Gorham, 1881. Un très grand genre
comprenant plus de 335 espèces néotropicales, dont
une douzaine décrites de Guyane. Ce petit nombre est
déjà dépassé dans le matériel des pièges-vitre de la
SEAG.
Pygodiscodon Wittmer, 1966. Pygodiscodon obscurum
Wittmer, 1966, décrit du nord du Brésil, a été retrouvé
en Guyane à la station des Nouragues et sur la
- 40 -
Montagne des Chevaux.
Silis Charpentier, 1825. Un autre très grand genre
comprenant plus de 150 espèces néotropicales. Cinq
espèces ont été signalées de la Guyane, dont Silis
peruviana Pic, 1906, décrite du sud du Pérou
amazonien (Constantin, 2009).
Silis sous-genre Peltariosilis Wittmer, 1952. Ce sousgenre contient 3 espèces, dont 2 décrites du Brésil et
Silis (Peltariosilis) guyanensis Pic, 1906.
Polemius LeConte, 1851. Un genre néarctique et
néotropical, voisin des Silis. Il se reconnaît aux ongles
des tarses, non bifides mais à petite dent basale et au
pronotum incisé latéralement près des angles
antérieurs. Il n'est pas recensé de Guyane, mais sa
présence y est probable (fig. 62).
Plectonotum Gorham, 1891. Un genre comprenant
près de 50 espèces, à large répartition néotropicale, du
Panama au sud du Chili. Dans les régions
montagneuses des Andes de l'Équateur, il montre une
très grande diversité spécifique (Constantin, 2008).
Aucun Plectonotum n'était signalé de Guyane, mais un
exemplaire ♀ de Plectonotum sp. cf. labiale Gorham,
1885, décrit de Panama, volcan de Chiriqui, a été
observé sur la Montagne des Chevaux.
Caccodes Sharp, 1885. Un genre à vaste distribution
tropicale asiatique, pacifique et néotropicale, dont les
40 représentants évoquent certains petits Malthodes
pâles. Aucun n'était signalé de Guyane, mais déjà les
♀ de deux espèces ont été observées sur la Montagne
des Chevaux et aux Nouragues.
Chauliognathus Hentz, 1830. L'un des plus grands
genres de Cantharidae, relativement homogène. Sa
distribution occupe les régions néarctiques,
néotropicales et australiennes. Il y a près de 350
espèces néotropicales, la plupart décrites par Maurice
Pic.
Daiphron Gorham, 1881. Regroupe une quarantaine
d'espèces, toutes néotropicales, dont 3 décrites de
Guyane.
Malthesis Motschulsky, 1853. Un genre qui regroupe
34 espèces, dont 3 en Guyane française et au Guyana.
Lobetus Kiesenwetter, 1852. Ce genre révisé par
Brancucci (1982), comprend 12 espèces distribuées du
Panama au Brésil. Lobetus lemoulti Pic, 1913 est la seule
espèce citée de Guyane.
Macromalthinus Pic, 1919. Un autre genre révisé par
Brancucci (1981), qui recense 5 espèces néotropicales,
dont 3 du Brésil, 1 du Pérou et Macromalthinus
maximiceps (Pic, 1919) de Guyane.
Maronius Gorham, 1881. Ce genre a été révisé par
Brancucci en 1981 et comprend 17 espèces
distribuées du Mexique au Brésil et à l'Argentine.
Aucune n'était signalée de Guyane. Des exemplaires
femelles de deux espèces ont été reconnues dans le
matériel de la SEAG. Elles sont voisines des
Macromalthinus et se reconnaissent aux antennes un
peu moins allongées, au pronotum faiblement
transverse, subrectangulaire, à angles antérieurs
légèrement saillants. Longueur : 5-6 mm.
APPENDIX:
Keys to the genera of Lampyridae, Lycidae and
Cantharidae of French Guiana
Key to Families of ex-Cantharoidea (Elateroidea
partim) occuring in French Guiana
1. Trochanters more or less elongate. Middle coxae distinctly
separated. Front margin of mesosternum straight. Pronotum
with a longitudinal carina or at least a basal median furrow.
Elytra with longitudinal costae and intervals divided in
reticular cells...................................................................... Lycidae
- Trochanters short. Middle coxae not or little separate. Front
margin of mesosternum straight always strongly emarginate.
Pronotum without carina nor basal furrow................................2
2. Pronotum covering the head in dorsal view. Luminous organs
usually present on the abdomen..............................Lampyridae
- Head visible in dorsal view............................................................3
3. Antennae biramose, the rami very long, often rolled up.
Brachelytrous, the short elytra covering only the basal part of
the wings (fig. 34). Known larvae luminous........Phengodidae
- Antennae normal or serrate. Not luminous...............................4
4. Antennae pectinate. Mandible thin and not toothed.
Pronotum lustrous, bordered, with small groves near the basal
angles. Brachelytrous, the elytra covering only the basal half
of the wings. Length 3,5-4 mm (fig. 14)..............Telegeusidae
- Antennae normal or feebly serrate. Elytra developed, or
shortened, in this case mandible apically bidentate (fig. 4).........
..................................................................................... Cantharidae
Key to the genera of Lampyridae of French Guiana
1. Clypeus expanded, strongly sclerotized and connate with
frons. Membranous labrum arising from its ventral surface
near the anterior border (fig. 1) (Photurinae).............................2
- Clypeus short, not strongly sclerotized, merging anteriorly
with the membranous labrum......................................................3
2. External tarsal claw bifid and internal claw entire (♂ ♀)
(fig. 32).............................................................................. Photuris
- Both tarsal claws bifid (♂) or entire (♀) (fig. 33).........................
................................................................................... Bicellonycha
3. Mandibles modified, basally conical and stout, tips slender,
glabrous, discontinous in curvature from the base (fig. 2).......4
- Mandibles normal, arcuate, regularly narrowing to tips (fig. 3).
........................................................................................................ 12
4. Tarsi slender, tarsomere V extending for at least half its
length beyond lobes of the IVth. Male antennae
comparatively short, biramose. ♀ unknown (Pleotomini).......5
- Tarsi stout and compact, tarsomere V extending only slightly
beyond lobes of the IVth (fig. 8). Epipleura wide, interiorly
delimited by a thin, oblique furrow.............................................6
5. Body elongate, parallel-sided. Pronotum as long as wide,
anteriorly narrowed toward the apex (fig. 16)..............................
............................................................................ Calyptocephalus
- Body oval. Pronotum transverse (fig. 15).................. Phaenolis
- 41 -
Fig. 50. Emplectus sp. ♂ (LT : 5 mm ; GF, Mont Itoupé). Fig. 51. Calocladon sp. ♂ (LT : 8 mm ; GF, Nouragues). Fig. 52. Linoptes sp. ♀
(LT : 12 mm ; GF, Nouragues). Fig. 53. Plateros sp. ♀ (LT : 8 mm ; GF, Nouragues). Fig. 54. Teroplas sp. ♂ (LT : 7 mm ; GF, MCV).
Fig. 55. Caccodes sp. ♀ (LT : 3,5 mm ; GF, MCV). Fig. 56. Tylocerus cayennensis Pic, 1910, holotype (LT : 13 mm ; GF, Cayenne,
MNHN). Fig. 57. Discodon surinamense Pic, 1906 (LT : 8 mm ; GF, Nouragues). Fig. 58. Pygodiscodon obscurum Wittmer, 1966 (LT :
6 mm ; GF, MCV). Fig. 59. Silis barticana Pic, 1908 (LT : 5 mm ; GF, Nouragues). Fig. 60. Silis (Peltariosilis) guyanensis Pic, 1906 (LT :
4 mm ; GF, MCV). Fig. 61. Plectonotum sp. cf. labiale Gorham, 1885 ♀ (LT : 2,5 mm ; GF, MCV).
- 42 -
Fig. 62. Polemius dentimargo Champion, 1915 holotype (LT : 4,5 mm ; Guatemala, Cubilguitz, NHM). Fig. 63. Chauliognathus
flavolineatus Pic, 1947 (LT : 10 mm ; GF, Nouragues). Fig. 64. Chauliognathus cinguliventris (Erichson, 1847) (LT : 14-16 mm ;
Ecuador, Napo). Fig. 65. Chauliognathus sulphureus Waterhouse, 1878 (LT : 14 mm ; GF, Nouragues). Fig. 66. Daiphron laticolle Pic,
1919 (LT : 19 mm ; GF, Nouragues). Fig. 67. Malthesis forestierei Pic, 1934 ♀ (LT : 8 mm ; GF, Nouragues). Fig. 68. Lobetus lemoulti,
Pic, 1913 ♂ (LT : 4 mm ; Brésil, A.P., rio Calçoene, NHMB). Fig. 69. Macromalthinus maximiceps Pic, 1919 (LT : 8 mm ; GF, MCV).
6. Abdominal spiracles ventral (fig. 10). Antennae ♂ flabellate or
pectinate (Lamprocerini)..................................................................7
- Abdominal spiracles dorsal (fig. 11). Antennae short , not
serrate (Cratomorphini)..................................................................10
7. Antennae biramose, the rami very long (♂) or short (♀).........8
- Antennae uniramose (♂) or pectinate (♂ ♀).............................9
8. Antennae biramose, the rami symmetrical (fig. 18).....................
.................................................................................... Lamprocera
- Antennae biramose, the rami asymmetrical, the internal 3-5 x
longer than the external rami (fig. 19)................................ Lucio
9. Antennae uniramose with long rami (♂) or serrate (♀)
(fig. 20)......................................................................... Lychnacris
- Antennae pectinate (♂) ou serrate (♀). Body more depressed
(fig. 21)............................................................................. Tenaspis
10. Body oval. Male eyes bulging and contiguous. Pronotum with
distinct vitrous spots near forward edge. Abdominal segments
lobed (fig. 24)........................................................ Cratomorphus
- Body oval, scutiform. Male eyes not contiguous. Pronotum
without vitrous spots. Abdominal segments non lobed.........11
11. Body oval. Pronotum trapezoid. Elytra without costae and
epipleura very wide (fig. 22)......................................... Aspisoma
- Body parallel-sided. Pronotum ogival with a thin longitudinal
carina. Elytra with three thin costae and narrow epipleura
(fig. 23).................................................................... Aspisomoides
12. Antennae ♂ flabellate (Amydetinae).........................................13
- Antennae simple (♂ ♀) (Lampyrinae Photinini).....................15
13. Antennae biramose, the rami long (♂) or short (♀) ciliate with
long hairs (fig. 26)...................................................... Psilocladus
- Antennae uniramose ♂ (♀ unknown)......................................14
14. Elytra subulate, arcuately dehiscent, not fully covering the
wings. Pronotum without tubercles. Size over 12 mm (fig. 17).
...................................................................................... Dryptelytra
- Elytra entire, sometimes not covering externally the wings.
Pronotum with two subbasal rounded tubercles. Smaller size
5-8 mm. Elytra with raised costae (fig. 25)...........Magnoculus
15. Nine antennal joints. Yellow species, length 10 mm...................
........................................................................................ Oliviereus
- Eleven antennal joints.................................................................16
16. Antennae short, not longer than half body-length,
antennomeres
subcylindrical.
Clypeo-frontal
suture
membranous. Abdomen ♂ with the last two penultimate
ventrite luminous, waxy white....................................................17
- Antennae elongate, longer than half body-length, the
antennomeres more or less compressed, sometimes serrate.
Clypeus connate with frons. Luminescence ♂ reduced..........18
17. Pygidium without ventral projections (fig. 30)............Photinus
- Pygidium ♂ with two ventral projections (fig. 12, 31)................
..................................................................................... Photinoides
- 43 -
18. Body elongate, parallel. Antennae dentate or simple.
Pronotum rounded or narrowed apically (fig. 27, 28).................
.......................................................................................... Lucidota
- Body shorter, oval. Antennae simple. Pronotum triangular
shaped, the lateral margins wide and upturned. Elytra short,
epipleura wide at the base and upturned (fig. 29). Platylampis
Key to the genera of Lycidae of French Guiana
1. Head elongate, rostrate. Antennomere III elongate (Lycini)...2
- Head not rostrate ..........................................................................3
2. Elytra large, widened distally ♂, more feebly ♀ (fig. 37)............
................................................................................................ Lycus
- Elytra more parallel-sided, not widened distally, both sexes
similar (fig. 36)........................................................... Lycostomus
3. Brown black species of small size. Mouth pieces reduced in
ventral position. Antennae often peculiar. (♀ unknown).........4
- Species partly red or orange, usually of bigger size..................7
4. Ten antennal joints, antennomeres III-X quadrate, strongly
compressed. Antennal pubescence complemented with small
roundish scales (fig. 46).............................................. Neolyrium
- Eleven antennal joints...................................................................5
5. Antennae serrate (fig. 48).......................... Ceratopriomorphus
- Antennomeres IV-XI flabellate....................................................6
6. Antennomere III short and narrow. Antennal pubescence
complemented with small roundish scales (fig. 47).....................
................................................................................ Flabellocaenia
- Antennomere III flabellate. No antennal roundish scales
(fig. 49)............................................................... Pseudacroleptus
7. Pronotum median surface without median longitudinal carina
(Platerodini).................................................................................. 20
- Pronotum with a median longitudinal carina, entire or divided
(Calopterini).................................................................................... 8
8. Median pronotal carina entire, not divided. If divided, only
slightly basally................................................................................. 9
- Median pronotal carina divided, forming a longitudinal areola
........................................................................................................ 14
9. Basal pronotal margin of the pronotum with median apical
projection covering the scutellum (fig. 42)...........Lycoplateros
- Basal pronotal margin of the pronotum bisinuate or straight,
the scutellum not covered..........................................................10
10. Elytra with four raised costae, at least at the base...................11
- Elytra with three raised costae...................................................13
11. Male antennae flabellate. Last maxillar palpomere elongate
(fig. 41)...................................................................... Leptoceletes
- Male antennae serrate..................................................................12
12. Last maxillar palpomere transverse, truncate and widened
distally. Elytra widened distally, sometimes triangular. Elytral
cells transverse (fig. 35).............................................. Calopteron
- Last maxillar palpomere elongate, securiform. Elytra more
parallel-sided. Elytral cells elongate (fig. 43).........Mesopteron
13. Last maxillar and labial palpomeres apically pointed. Third
elytral costa discontinuous. ♂ antennae serrate (fig. 40).............
................................................................................. Lycomorphon
- Last maxillar and labial palpomeres apically truncate. ♂
antennae flabellate (fig. 38)......................................... Idiopteron
14. Median pronotal carina divided basally, the areola narrow,
triangular, widest near the base (fig. 5)......................................15
- Median pronotal carina divided in the middle, with almost
lenticular longitudinal areola, widest medially (fig. 6)............ 16
15. Elytra with four raised costae (fig. 39)................... Cyrtopteron
- Elytra with three raised costae, the third costa interrupted
(fig. 40)................................................................... Lycomorphon
16. Elytra with four raised costae, without secondary costae.......17
- Elytra with four primary costae and with five secondary
costae, sometimes reduced.........................................................18
17. Median longitudinal areola on pronotum slightly constricted
on the basal third. Elytral reticulate cells strong, almost
quadrate (fig. 44)........................................................ Metapteron
- Median longitudinal areola on pronotum lenticular. Elytral
reticulate cells transverse (fig. 45)......................... Haplobothris
18. Male antennae pectinate or flabellate........................................19
- Male antennae serrate (fig. 52 ♀).................................. Linoptes
19. Pronotum trapezoid, anteriorly narrowed (fig. 51)......................
...................................................................................... Calocladon
- Pronotal margin anteriorly rounded (fig. 50)...........Emplectus
20. Antennae elongate, reaching the apical forth of elytra (fig. 54)
........................................................................................... Teroplas
- Antennae shorter (fig. 53)............................................... Plateros
Key to the genera of Cantharidae of French Guiana
1. Maxillar palpomeres I-III of unequal lengh. Tibial spurs
robust and clearly visible. Male sternite IX and aedeagus
symmetrical..................................................................................... 2
- Maxillar palpomeres I-III subequal. Tibial spurs very small.
Male
sternite
IX
and
aedeagus
asymmetrical
(Chauliognathinae)......................................................................... 8
2. Fourth tarsomere split across at the base (fig. 9). Abdomen
with eight visible ventrites, IX et X invaginated. Division of
the male sternite VIII reaching the base (Silinae)......................4
- Fourth tarsomere not split across at the base. Abdomen with
nine visible ventrites...................................................................... 3
3. Last maxillar palpomere globular and apically pointed
(Malthininae) (fig. 55).................................................... Caccodes
- Last maxillar palpomere globular, or securiform, apically
truncate or sharp, not pointed (Dysmorphocerinae) (fig. 61)....
................................................................................... Plectonotum
4. First antennomere elongate, scape-like (fig. 56)........Tylocerus
- First antennomere not elongate...................................................5
5. Scutellum of the male with a long median projection (fig. 60)
.................................................................... Silis sgn. Peltariosilis
- Scutellum of the male without projection..................................6
6. Pronotum strongly transverse. Pronotal lateral margin of the
male basally deeply notched or featuring long spines and folds
(fig. 7, 59).................................................................................. Silis
- Pronotum less transverse. Pronotal lateral margin of the male
not modified or with a small basal transverse split....................7
7. Pygidium ♂ with a mucronate projection bearing two
tubercles (fig. 13, 58)............................................ Pygodiscodon
- Pygydium ♂ not modified (fig. 57)............................. Discodon
8. Brachelytrous. Elytra just longer than wide, covering only
basally the wings............................................................................. 9
- Elytra entire, sometimes distally narrowed , covering most of
the wings....................................................................................... 10
9. Frons slightly concav between the eyes. Antennae short, the
joints compressed, less than 2x longer than wide. Pronotum
as long as wide (fig. 68)................................................... Lobetus
- Frons and vertex concave. Antennae elongate, the
antennomeres 4x longer than wide. Pronotum longer than
wide, narrowed anteriorly (fig. 69)................. Macromalthinus
10. Elytra distally widened (fig. 66).................................. Daiphron
- Elytra not distally widened ........................................................11
11. Pronotum dull, strongly bordered on the lateral margins.
Elytra distally narrowed. Length 7-9 mm (fig. 67)....Malthesis
- Pronotum lustrous, the margins only slightly bordered. Elytra
not distally narrowed. Length 7-24 mm (fig. 63, 64, 65)
............................................................................. Chauliognathus
REMERCIEMENTS. Je remercie particulièrement les
conservateurs des musées qui m'ont largement ouvert
leurs portes, procuré des conditions de travail
confortables, facilité l'accès aux collections historiques et
le prêt de spécimens, en premier lieu le Muséum national
d'Histoire naturelle, Paris (Thierry Deuve, Antoine
Mantilleri, Olivier Montreuil, Azadeh Taghavian, ainsi
que Stéphane Boucher), the Natural History Museum,
London (Maxwell Barclay), Naturhistorisches Museum,
Basel (Michel Brancucci).
Le matériel étudié ici est le résultat des collectes
- 44 -
intensives menées collectivement par la SEAG et c'est
avec une profonde admiration que je salue le dynamisme
et l'efficacité de cette équipe, notamment Pierre-Henri
Dalens, Stéphane Brûlé, Eddy Poirier et Julien Touroult.
Plusieurs captures remarquables sont dues à Greg
Lamarre (INRA-UMR EcoFoG). D'autres spécimens de
Guyane m'ont été confiés par Alain Audureau, Mickaël
François, Gérard Nazaret et Sébastien Rojkoff. Merci à
Tom Murray (MS, USA) pour la permission de
reproduire sa photographie de Lycus fernandezi.
Je remercie aussi ma collègue Milada Bocakova
(Department of Biology, Palacky University, Olomouc,
CZ) pour son aide dans le traitement des Lycidae et une
lecture critique.
Enfin, je suis reconnaissant aux autorités du
Parc National de Guyane (F. Mortier, C. Guitet et N.
Surugue), de la réserve naturelle des Nouragues, de la
réserve Trésor (O. Tostain), de l'ONF (M. Dewynter) et
de la DIREN Guyane pour les facilités accordées pour
les recherches en zone protégée. Les prospections
initiées avec la SEAG en ont rapporté un matériel d'une
belle diversité.
Références
BOCAKOVA M., 2001. – Revision and phylogenetic analysis of the
subfamily Platerodinae (Coleoptera: Lycidae). European Journal
of Entomology, 98 : 53-85.
BOCAKOVA M., 2003. – Revision of the Tribe Calopterini
(Coleoptera: Lycidae). Studies on Neotropical Fauna and
Environment, 38 (3) : 207-243.
BRANCUCCI M., 1980. – Morphologie comparée, évolution et
systématique des Cantharidae (Insecta: Coleoptera).
Entomologica Basiliensia, 5 : 215-388.
BRANCUCCI M., 1981. – Révision du genre Macromalthinus Pic (Col.
Cantharidae). Entomologische Arbeiten aus dem Museum Frey 29 :
259-272.
BRANCUCCI M., 1981. – Révision du genre Maronius Gorham
et notes sur les genres voisins (Coleoptera :
Cantharidae). Entomologica Basiliensia 6 : 328-367.
BRANCUCCI M., 1982. – Révision du genre Lobetus Kiesw. (Col.,
Cantharidae). Entomologica Basiliensia, 7 : 315-339.
CHAMPION G.C., 1914. – III. Revision of the Mexican and Central
American Chauliognathinae (Fam. Telephoridae), based on
the genital armature of the males. Transactions of the
Entomological Society of London, (1914) : 128-168, plates III-VIII.
CHAMPION G.C., 1915. – II. Revision of the Mexican and Central
American Telephorinae (Fam. Telephoridae), with
descriptions of new species. Transactions of the Entomological
Society of London, (1914) : 16-146, plates III-IX.
CONSTANTIN R., 2008. – A contribution to the genus Plectonotum
Gorham, 1891, in Ecuador (Coleoptera, Cantharidae).
Entomologica Basiliensia et Collectionis Frey, 30 : 49-74.
CONSTANTIN R., 2009. – A contribution to the genus Silis
Charpentier, 1825, in Ecuador (Coleoptera, Cantharidae).
Entomologica Basiliensia et Collectionis Frey, 31 : 55-87.
CROWSON R.A., 1972. – A review of the classification of
Cantharoidea (Coleoptera), with the definition of two new
families, Cneoglossidae and Omethidae. Revista de la
Universidad de Madrid, 21 (82) : 35-77.
DELKESKAMP K., 1977 .– Coleopterorum Catalogus Supplementa, pars
165, fasc. 1. Editio seconda. Cantharidae, 485 pp. Dr W. Junk
ed., The Hague.
GORHAM H.S., 1880-1886. in : F. D. Godman & O. Salvin (eds.).
Biologia Centrali-Americana. Insecta, Coleoptera, Malacodermata
(Lycidae,
Lampyridae,
Telephoridae,
Lymexylonidae,
Melyridae, Cleridae, Ptinidae, Bostrychidae, Cioidae), volume
3, part 2. Porter, London. XII + 372 pp.+ 13 color plates
(Supplement: 306-307, 1885).
IVIE M.A., 2002. – Key to Families of Beetles in America North
of Mexico. in: Arnett R.H. et al., ed. American Beetles,
Polyphaga: Scarabaeoidea through Curculionoidea. CRC
Press, Boca Raton 2 : 816-835 ; 861pp.
KAZANTSEV S.V., 2005. – Neolyrium gen. n., first South American
genus of net-winged bbetles with 10-segmented antennae
(Coleoptera: Lycidae). Zootaxa, 1064 : 51-64.
KAZANTSEV S.V., 2005. – A review of the genera Microlycus Pic,
1922 and Teroplas Gorham, 1884 (Coleoptera: Lycidae).
Russian entomological Journal, 14 (4) : 275-280
KAZANTSEV S.V. & ZAITSEV A.A., 2008. – Description of larval and
imaginal stages of new species from the genera Pseudacroleptus
Pic, 1911 and Ceratoprion Gorham, 1880 (Coleoptera: Lycidae:
Leptolycinae). Russian Entomological Journal 17 (3) : 283-292.
KLEINE R., 1933. – Pars 128: Lycidae. Coleopterorum Catalogus
auspiciis et auxilio W. Junk editus a S. Schenkling. W. Junk,
Berlin, 145 pp.
LLOYD J.E., 2002. – Family 62. Lampyridae Latreille 1817. in:
Arnett R.H. et al., ed., American Beetles, Polyphaga:
Scarabaeoidea through Curculionoidea. CRC Press, Boca
Raton 2 : 187-196 ; 861pp.
MCDERMOTT F.A., 1963. – Photinoides, a new genus, with three new
species (Coleoptera: Lampyridae). Coleopterists Bulletin. 17 : 8489.
MCDERMOTT F.A., 1964. – The Taxonomy of the Lampyridae.
Transactions of the American Entomological Society. 90 : 1-72.
MCDERMOTT F.A., 1966. – Lampyridae. In : Steel W.O. ed.
Coleopterorum Catalogus Supplementa. Junk, W Pars 9 (Editio
Secunda), 149 pp.
MILLER R.S., 1991. – A revision of Leptolycini with a discussion
of paedomorphosis. Ph.D Dissertation. The Ohio State
University, Colombus, 403 pp.
NASCIMENTO E.A. do & BOCAKOVA M., 2009. – A revision of the
genus Lycomorphon (Coleoptera: Lycidae). Zootaxa, 2132 : 4052.
OLIVIER E., 1907. – Coleoptera. Fam. Lampyridae. In : Wytsman P,
ed., Genera Insectorum. 74 pp.
OLIVIER E., 1911. – Révision des Lampyrides. Revue Scientifique du
Bourbonnais et du Centre de la France. 24 : 24-27, 39-58, 63-85, 98112.
WITTMER W., 1976. – Eine neue Gattung der Familie Telegeusidae
(Col.). Mitteilungen der Schweizerischen Entomologischen Gesellschaft
49 : 293-296.
WITTMER W., 1976. – Arbeiten zu einer Revision der Familie
Phengodidae (Coleoptera). Entomologische Arbeiten aus dem
Museum Frey 27 : 415-524.
ZARAGOZA S., 1993. – Descripcion de especie nueva y registros
nuevos del genero de Pyropyga (Coleoptera: Lampyridae:
Lampyrinae: Photini) de Mexico. Anales Instituto de Biologia
Universidad Nacional Autonoma de Mexico, Ser. Zool., 64(2) : 139151.
ZARAGOZA S., 1995. – La familia Lampyridae (Coleoptera) en la
estación de biologia tropical Los Tuxtlas, Veracruz, Mexico.
Publicaciones especiales Instituto de Biologia Universidad Nacional
Autonoma de Mexico, Ser. Zool., 14 : 1-93.
- 45 -
Les Rhysodini de Guyane (Coleoptera, Carabidae)
par Ross T. BELL*
*Professor Emeritus, University of Vermont, Biology Dept.
Burlington, Vermont 05405-0086
Research Associate, Carnegie Museum of Natural History, Invertebrate Zoology
Pittsburgh, Pennsylvania, USA 15213-4080
Résumé. Brève présentation de la morphologie, de l'éthologie et des méthodes de
collecte des Rhysodini. Liste, clé d'identification et illustration des six espèces connues de
Guyane et des pays voisins.
Mots-clés. Clé, Suriname, Guyana, Rhyzodiastes, Clinidium, Plesioglymmius
Abstract. Rhysodini of French Guiana. Short presentation of the Rhysodini.
Checklist, key and illustrations of the six species known from French Guiana and from
surrounding countries.
Key-words. Key, Suriname, Rhyzodiastes, Clinidium, Plesioglymmius, Guiana shield
Les Rhysodini (parfois considérés comme
une famille séparée) constituent un petit groupe très
particulier de Carabidae qui vivent dans le bois
décomposé. Ils possèdent de nombreux caractères
remarquables. La tête présente une cavité interne qui
est connectée à la surface par une fente ou un pore.
Les pièces buccales sont particulières : les mandibules
forment un abri pour les autres pièces buccales. Elles
ne peuvent pas mordre car le mentum est projeté au
dessus d'elles. Le mentum forme ainsi une lame qui
permet à l'insecte de se frayer un passage en avançant
dans le bois décomposé partiellement ramolli.
arbres morts sur pied. On a parfois la chance d'en
trouver en soulevant les écorces déhiscentes sur les
grumes au sol. Quelques espèces peuvent se déplacer
dans la litière et être capturées dans les échantillons de
Berlèse. Les espèces qui ont des ailes et de larges
yeux, par exemple les Omoglymmius, peuvent être
attirées par les pièges lumineux et également être
collectées dans les pièges d'interception situés au ras
du sol.
Sigles utilisés :
BMNH : British Museum, Natural History, London,
United Kingdom
CMNH : Carnegie Museum of Natural History,
Invertebrate Zoology, Pittsburgh, Pennsylvania, USA
KU : University of Kansas, Lawrence, Kansas, USA
MNHN : Muséum national d'Histoire naturelle, Paris,
France
Éthologie et méthodes de collecte
Les Rhysodini utilisent les quatre stylets de
leurs maxilles pour consommer le stade amoeboid
(monocellulaire) de la masse gélatineuse des
plasmodes (Myxomycetes, amibes collectives). Les
Rhysodini se rencontrent uniquement dans les régions
boisées où les précipitations importantes favorisent la
décomposition du bois et le développement des
plasmodes.
Les méthodes de collecte les plus efficaces
consistent à décortiquer les parties adéquates des
troncs, souches ou racines pourries à l'aide d'un
tournevis ou d'un petit pied-de-biche. A l'occasion
une machette, une hachette voire une scie peuvent
rendre service. Certains spécimens ont été trouvés
dans des parties mortes de branches fraîchement
tombées d'un arbre vivant, d'autres ont été trouvés
dans les racines situées à une profondeur allant
jusqu'à trois mètres sous la surface ; d'autres encore se
capturent dans la partie centrale pourrie de gros
Liste des espèces
Six espèces ont été citées de la région :
1. Plesioglymmius (Ameroglymmius) reichardti
Bell & Bell, 1979 [figs. 1-3]
Matériel examiné : Kabo, Agricultural Station,
Saramacca, Suriname (Holotype : BMNH).
2. Clinidium (Clinidium) guildingii Kirby, 1835
[figs 4-8]
Matériel examiné : Guyane. Montagne des Singes,
Kourou, sous-écorce, J. Touroult leg. (collection H.
Brustel). Localité de l'holotype : Mt. St. Andrew,
Kingston, St. Vincent, West Indies (exemplaire
perdu).
3. Clinidium (Clinidium) impressum Bell & Bell,
1985 [figs. 9-13]
- 46 -
Matériel examiné : Guyane, St. Laurent du Maroni
(Holotype : MNHN). Guyana (British Guiana),
Iwokrama Forest Region (KU).
4. Rhyzodiastes (Rhyzostrix) ininius Bell & Bell,
2009 [figs. 14-18]
Matériel examiné : Guyane, Iracoubo pk 35, J.
Touroult leg. (Collection H. Brustel). Holotype : Saut
Eoltage (sic), Fr. Guiana (CMNH) et paratype :
Matoury, French Guiana (KU).
5. Rhyzodiastes (Rhyzostrix) quadristriatus
Chevrolat, 1873.
Décrit de “Cayenne” (MNHN) sans localité précise ;
nous n'avons pas réussi à retrouver le type de cette
espèce. Elle a également été citée par Vulcano &
Pereira de Santarém au Brésil. A mon avis, l'espèce ne
correspond pas à l'exemplaire illustré par Vulcano &
Peirera (1975).
6. Rhyzodiastes (Rhyzostrix) menieri Bell & Bell,
1985 [figs. 19-22]
Matériel examiné : Guyane, “Haut-Carsevenne, F.
Geay”, Holotype (MNHN).
Clé d'identification des Rhysodini de Guyane
1. Grands yeux ronds ; pronotum avec des lignes de
points s'étendant vers l'avant à partir de chaque
impression basale. Ailes présentes..............................
.......................................Plesioglymmius reichardti
– Yeux soit semi-circulaires, soit étroitement en
forme de croissant (en vue latérale) ; pronotum
sans ligne de points ; ailes vestigiales......................2.
2. Impressions basales du pronotum atteignant la
marge antérieure ; yeux semi-circulaires.................3.
– Impressions basales du pronotum étendues jusqu'à
une petite strie discale mais n'atteignant pas la
marge antérieure ; yeux en forme de croissant
étroit.............................................................................5.
3. Trois stries médianes de chaque élytre très
grossièrement ponctuées ; donnant un aspect
ondulé aux interstries....................................................
...................................Rhyzodiastes quadristriatus
– Trois stries médianes plus faiblement ponctuées ;
interstries ne présentant pas un aspect ondulé......4.
4. Interstrie sutural des élytres plan, plus plan que
l'interstrie suivant et dépourvu de soies ; absence
de tubercule médian sur le sternite VI de la femelle
.....................................................Rhyzodiastes ininius
– Interstrie sutural des élytres convexe, plus que
l'interstrie suivant, et pourvu de deux soies ;
présence d'un tubercule médian sur le sternite VI
de la femelle..........................Rhyzodiastes menieri
5. Pronotum avec une carène médiane de largeur
constante ; présence de soies sensorielles sur les
antennomères V à X.............Clinidium guildingii
– Pronotum avec une carène médiane élargie au
milieu, déprimé à l'avant et à l'arrière et faiblement
élargi à la base et à l'apex ; présence de soies
sensorielles sur les antennomères IV à X..................
.......................Clinidium (Clinidium) impressum
Key to Rhysodines of French Guiana
1. Eye large, round; pronotum with line of punctures
extending anteriorly from each basal impression;
hind wings present.........Plesioglymmius reichardti
- Eye either semicircular or narrowly crescentic (side
view); pronotum without lines of punctures; hind
wings vestigial.................................................................2.
2. Basal impressions of pronotum extended to anterior
margin; eye semicircular................................................3.
- Basal impressions extended anteriorly by linear discal
striole, which does not reach anterior margin; eye
narrowly crescentic........................................................5.
3. Three most medial striae of each elytron very
coarsely punctate, so that adjacent intervals undulate
........................................ Rhyzodiastes quadristriatus
- Three most medial striae less coarsely punctate,
adjacent intervals not at all undulating........................4.
4. Sutural interval flat, more so than interval II, without
setae; female without median tubercle on Sternum
VI ............................................... Rhyzodiastes ininius
- Sutural interval convex, more so than interval II,
with two setae; female with median tubercle on
Sternum VI............................... Rhyzodiastes menieri
5. Pronotum with median groove linear; sensory tufts
of antennae on Segments V-X........................................
..................................................... Clinidium guildingii
– Pronotum with median groove dilated at middle,
narrowed anteriorly and posteriorly, slightly dilated at
apex and base; sensory tufts on Segments IV-X...........
................................................... Clinidium impressum
La connaissance de ce groupe est encore
partielle sur le plateau des Guyanes. Les forêts
d'Amazonie abritent beaucoup d'espèces, et des
nouveautés sont régulièrement trouvées. Je pense que
des prospections approfondies sur ce groupe dans la
zone des Guyanes devraient apporter beaucoup de
nouvelles espèces, peut-être une vingtaine voire plus.
En particulier, on n'a pas recensé de collecte de
Rhysodini dans le sud des Guyanes.
Références
BELL R.T. & BELL J.R., 1979. - Rhysodini of the world, Part
II. Revisions of the smaller genera (Coleoptera:
Carabidae or Rhysodidae). Questiones Entomologicae, 15 :
- 47 -
377-446.
BELL R.T. & BELL J.R., 1985. - Rhysodini of the world, Part
IV. Revisions of Rhyzodiastes Fairmaire and Clinidium
Kirby, with new species in other genera (Coleoptera:
Carabidae or Rhysodidae). Questiones Entomologicae, 21 :
1-172.
BELL R.T. & BELL J.R., 2009. - Rhysodine Beetles (Insecta:
Coleoptera: Carabidae): new species, new data, III.
Annals of Carnegie Museum, 78(1) : 45-77.
CHEVROLAT A., 1873. - Descriptions de Rhysodides
nouveaux et énumération des espèces décrites. Annales
de la Société entomologique de France, 3(5) : 207-218.
KIRBY W., 1835. - The characters of Clinidium, a new genus
of insects in the order Coleoptera, with a description of
Clinidium guildingii. Zoological Journal, 5 : 6-10.
VULCANO M.A. & PEREIRA F.S., 1975. - Os Rhysodidae Sulamericanos (Col). Studia Entomologia, 18(1/4) : 153-188.
Figures 1-3. Plesioglymmius (Ameroglymmius) reichardti. Fig. 1. Tête et pronotum, vue dorsale ; Fig. 2. Élytre gauche ; Fig. 3.
Métasternum et abdomen, ♀. Figures 4-8. Clinidium (Clinidium) guildingii. Fig. 4. Tête et pronotum, vue dorsale ; Fig. 5. Élytre
gauche ; Fig. 6. Métasternum et abdomen ♂ ; Fig. 7. Pattes avant, trochanter et fémur, ♂ ; Fig. 8. Tibia postérieur, ♂. Trait
d'échelle : 1 mm.
- 48 -
Figures 9-13. Clinidium (Clinidium) impressum. Fig. 9. Tête et pronotum, vue dorsale ; Fig. 10. Élytre gauche ; Fig. 11. Patte avant,
trochanter et fémur, ♂ ; Fig. 12. Tibia postérieur, ♂ ; Fig. 13. Métasternum et abdomen, ♀. Figures 14-18. Rhyzodiastes
(Rhyzostrix) ininius. Fig. 14. Tête et pronotum, vue dorsale ; Fig. 15. Élytre gauche ; Fig. 16. Métasternum et abdomen, ♀ ; Fig. 17.
Tibia postérieur, ♂ ; Fig. 18. Élytre droit, vue postérieure. Figures 19-22. Rhyzodiastes (Rhyzostrix) menieri. Fig. 19. Tête et
pronotum, vue dorsale ; Fig. 20. Élytre gauche ; Fig. 21. Métasternum et abdomen, ♀ ; Fig. 22. Élytre droit, vue postérieure.
- 49 -
Les Rutelinae : présentation des tribus et genres de Guyane
(Coleoptera, Scarabaeidae)
par Marc SOULA*
6, rue de la Salle
F-09320 Massat
[email protected]
Résumé. Aperçu des Rutelinae de Guyane : clé des tribus, sous-tribus et genres présents,
avec une illustration de chacun des 28 genres signalés. Clé des espèces de Pelidnotina.
Listes des 81 espèces de Rutelinae connues de Guyane et des 28 autres espèces douteuses
ou à confirmer.
Mots-clés. Clés, Antichirina, Pelidnota, Macraspis, Leucothyreus, Lagochile, Chlorota.
Abstract. Overview of the Rutelinae from French Guiana: key to tribes, subtribes and
genera with a picture of all the 28 known genera. Key to species of Pelidnotina.
Checklist of the 81 Rutelinae from French Guiana, more 28 other species that are
dubious or needing confirmed records.
Key-words. Keys, Antichirina, Pelidnota, Macraspis, Leucothyreus, Lagochile, Chlorota.
Dans l'immense ordre des Coléoptères, la
super-famille des Scarabaeoidea comprend plus d'une
douzaine de familles, dont celle des Scarabaeidae.
Dans cette dernière, on peut distinguer quelques sousfamilles, comme les Cetoniinae (nos Cétoines), les
Scarabaeinae (beaucoup de nos copros...), les
Melolonthinae (nos hannetons...), les Dynastinae (nos
rhinocéros miniatures...) et les Rutelinae.
Certains de nos collègues ne sont pas d’accord avec
cette vision et ont gardé l’ancienne classification dans
laquelle ces sous-familles d’aujourd’hui (Cetoniinae,
Dynastinae, Rutelinae…) sont toujours des familles à
part entière. On rencontrera donc encore souvent le
terme de Rutelidae.
Également, chez les Cyclocephala,
les métatarses sont plus longs,
plus fins, subcylindriques (un peu
élargis vers l'apex) ; les griffes,
plus courtes (en général), plus
courbées que chez les Rutelinae et
toujours pratiquement semblables
(fig. 3). Chez les Rutelinae, les
griffes sont différentes, l'une des
deux toujours plus longue et
robuste que l'autre, voire même
bifide (figs. 1 et 2)
fig. 1 Griffes
postérieures d'un
Rutelinae. La griffe
interne est toujours
plus longue, plus
robuste que l'autre
et souvent bifide.
Distinction entre Cyclocephala
(Scarabaeidae, Dynastinae) et Rutelinae
Depuis de nombreuses années, je reçois des
quantités de Cyclocephala dans des lots de Rutelinae ; il
est vrai que la confusion est facile sur l'allure générale
des bêtes, mais un examen des pattes postérieures
avec une bonne loupe permet de les distinguer
rapidement (figs. 1-3) :
− Les deux éperons du métatibia sont peu
dissemblables chez les Rutelinae (l'un des
2 souvent un peu plus court et courbé que
l'autre).
− Chez les Cyclocephala, l'un de ces éperons
est nettement plus long, plus fin et plus
rectiligne que le plus long de celui des
Rutelinae, l'autre nettement plus court et
courbé que le premier.
fig. 2. Métatarses de 3 Rutelinae (tarses courts et robustes,
griffes inégales, la plus grosse griffe simple ou bifide).
fig. 3. Métatarses de Cyclocephala (tarses longs et fins, griffes
égales, un des éperons souvent très développé).
Dans le travail qui suit, je vais représenter au
moins une espèce guyanaise par genre ; pour la
description et la représentation de toutes les espèces,
on voudra bien se référer à mes travaux déjà parus (cf.
- 50 -
références en fin d'article) ou à paraître.
Clé des tribus présentes en Guyane
1. Le labre (L) est à peu près horizontal, accolé au
clypéus (C) ; on peut le séparer assez facilement de
ce dernier (fig. 4)........................................................2.
– Le labre est plutôt vertical, plus ou moins soudé au
clypéus (fig. 5).............................................................3.
fig. 9. Tête de Spodochlamyni,
vue frontale.
fig. 10. Habitus de
Spodochlamys caesarea
Burmeister, 1855 (30 mm).
Diversité selon les tribus
fig. 4. Labre horizontal, accolé
au clypéus.
fig. 5. Labre vertical, soudé
au clypéus.
2. Une membrane reborde l'élytre (fig.6) ; antennes
de 9 articles.................................................Anomalini
– Pas de membrane ; antennes de 10 articles...............
..........................................................................Rutelini
fig. 6. Exemple de membrane rebordant l'élytre (Anomalini).
3. Le labre et le menton présentent chacun une sorte
d'apophyse ou de dent (figs. 7 et 8) qui se
rejoignent plus ou moins ; protarses élargies chez
le mâle seulement ou dans les 2 sexes......Geniatini
– Ni le labre ni le menton ne présentent de "dent"
(figs. 9 et 10).....................................Spodochlamyni
(une seule espèce en Guyane).
fig. 7. Tête de Geniatini, vue
frontale.
En Guyane française, on peut donc
dénombrer quatre tribus : la plus importante, Rutelini,
comportant 4 sous-tribus ; deux autres n’étant
représentées, chacune, que par une sous-tribu, la
troisième sans sous-tribu (tableau I). Ces dernières
années, j’ai beaucoup travaillé sur les Rutelini,
découvrant plus d’une dizaine d’espèces nouvelles
(pour la Science) pour la seule Guyane française ;
quelques espèces nouvelles pour la Guyane ont aussi
été capturées ; des découvertes restent encore
possibles.
Tribu &
sous-tribu
Nombre
de genres
connus de
Guyane
Nombre
d'espèces
connues
de
Guyane
Nombre
d'espèces
douteuses
ou à
confirmer
Nombre
d'espèces
décrites
depuis
1990
Spodochla
myni
1
1
1
0
Anomalini
2
3
10
0
Rutelini,
Areodina
Rutelini,
Pelidnotina
Rutelini,
Rutelina
Rutelini,
Antichirina
1
1
0
0
3
12
2
7
3
6
5
1
15
38
5
15
Geniatini
4
20
5
0
TOTAL
29
81
28
23
Tableau I. Importance numérique des tribus et sous-tribus en
Guyane.
fig. 8. Patte avant de Geniatini
(tarsomères dilatés).
Une tribu, Spodochlamyni, n’est représentée que par
une espèce (S. caesarea) et il y a vraiment peu de
chance que l’on en découvre une autre. Je n’ai pas
- 51 -
encore travaillé sur les Anomalini (une seule soustribu, Anomalina) mais elles sont faciles à capturer et
déjà bien connues. J’ai commencé à travailler sur les
Geniatini et c’est sans conteste dans cette tribu que les
perspectives de découvertes sont les plus
prometteuses. J’invite donc nos collègues à ne pas
négliger ces petites bêtes qui n’ont, à première vue,
que peu d’attraits. Quelques recherches sont encore à
effectuer sur de « vieux » types à retrouver dans divers
muséums.
ANOMALINI
Tribu en cours de révision. Pour l’instant, une
seule sous-tribu, Anomalina, semble représentée en
Guyane, avec 3 genres (dont un douteux) :
– Pas de saillie mésosternale (fig. 11) ; tout au plus
une simple boursouflure.............................Anomala
– Une saillie mésosternale bien présente (fig. 12)........
.............................................................Callistethus
Liste des espèces par tribu
SPODOCHLAMYNI
Une seule espèce en Guyane :
Spodochlamys caesarea Burmeister, 1855 (figs. 10
et 15)
fig. 11. Mésosternum d'un
Anomala.
fig. 12. Mésosternum d'un
Callistethus.
15
16
17
18
19
20
21
22
Figures 15-22. Habitus de Rutelinae de Guyane. Fig. 15. Spodochlamys caesarea Burmeister, 1855 [30 mm] ; fig. 16. Anomala sp.
[10 mm] ; fig. 17. Callistethus sp. [12 mm] ; fig. 18. Byrsopolis aenescens Ohaus, 1915 [26 mm] ; fig. 19. Hoplopelidnota metallica
(Laporte, 1840) ♂, vue oblique [21 mm] ; fig. 20. Pelidnota bleuzeni (Bouchard, 2003) [25 mm] ; fig. 21. Epichalcoplethis
chameleon (Herbst, 1789) ♂ [35 mm] ; fig. 22. Pelidnota touroulti Soula, 2008 [20 mm].
- 52 -
Seules trois espèces sont connues de façon certaine de
Guyane :
Anomala du « groupe – binotata » :
Anomala brunipennis (Gyllenhal, 1817), in
Schönherr Syn. Ins. Bd, 2(2), p. 220 [Melolontha];
décrite du Surinam = Anomala limbata Laporte, 1840,
Histoire Naturelle des Coléoptères, p. 136 ; décrite de
Cayenne.
Callistethus du « groupe – maculatus » :
Callistethus atropurpureus (Ohaus, 1897)
Stettin. Ent. Zeit., Vol. 58, p. 414 ; décrite de Cayenne
[Anomala]
Callistethus sulcipennis (Laporte, 1840),
Histoire Naturelle des Coléoptères, Vol. 2, p. 136 ;
décrite de Cayenne [Anomala] = Anomala surinama
Burmeister, 1844, Handb. Ent., Vol. 4(1), p. 538 ;
décrite du Guyana.
Espèces douteuses ou à confirmer :
Anomala arawaka Ohaus, 1902, Stettin. Ent. Zeit., p. 44 ;
décrite de Surinam voisin.
Anomala inconstans Burmeister, 1844, Handb. Ent., Vol. 4(1),
p. 252 et 562 ; "Amérique du Sud" ; sa présence est à
confirmer en Guyane.
Anomala undulata varians (Fabricius, 1801) ; Syst. Eleuth.,
Vol. 2, p. 173 ; décrite du Guyana.
23
Anomala jordani Ohaus, 1902, Stettin. Ent. Zeit., Vol. 63, p.
42 ; décrite du Guyana
Anomala vayana Ohaus, 1930, D. Ent. Zeit., p. 147 ; décrite
du Guyana.
Callistethus trivittatus Perty, 1831, Observ. Col. Ind. Orient.,
p. 34 [Spilota] ; décrite de Java (!) = Anomala costopunctata
Ohaus, 1897, Stettin. Ent. Zeit., Vol. 58, p. 425 ; décrite de
Cayenne (!) = Spilota ignorata Brancsik, 1910, Soc. Hist. Nat.
Trencsen, p. 183 ; sans localité. Il faudra évidemment
retrouver les types et l'espèce elle-même pour éclaircir ce
"sac de noeuds".
Callistethus marginatus (Fabricius, 1792), Ent. Syst., Vol.1(2),
p. 164 ; de l'Amérique du Nord jusqu'à l'Amazonie
Callistethus virescens (Burmeister, 1844), Handb. Ent., Vol.
4(1), p. 268 ; décrite du Guyana.
Strigoderma marginata Olivier, 1789, Entomologie, Vol. 1(5),
p. 70 [Melolontha] ; décrite "d'Amérique méridionale" =
Melolontha glabrata Fabricius, 1801, Syst. Eleuth., Vol. 2, p.
178 ; Amérique méridionale = Melolontha videns Fabricius,
1801, Syst. Eleuth., Vol. 2, p. 178 ; Amérique méridionale.
Il s'agit de vérifier ces synonymies et de confirmer si
l'espèce est bien présente en Guyane.
Strigoderma villosula Blanchard, 1850, Catalogue de la
Collection d'Entomologie du Muséum d'Histoire naturelle
de Paris, p. 203 ; décrite "d'Amérique du sud". Il faut
vérifier sa présence en Guyane.
24
25
26
Figures 23-26. Habitus de Rutelina de Guyane. Fig. 23. Rulela histrio Sahlberg, 1823 [15 mm] ; fig. 24. Microrutela campa (Ohaus,
1922) [12 mm] ; fig. 25. Cnemida leprieuri Arrow, 1899 [13 mm] ; fig. 26. Cnemida retusa (Fabricius, 1801) [11mm].
RUTELINI
Les divers genres néotropicaux ont été révisés
et la faune de Guyane est relativement bien connue.
Les liens entre ces genres, c'est-à-dire les sous-tribus
sont à revoir complètement à la lumière d’analyses
cladistiques et moléculaires. Pour des raisons
pratiques évidentes, je vais cependant utiliser les soustribus traditionnelles.
Clé de détermination des sous-tribus de Rutelini
de Guyane française :
1. Suture clypéo-frontale nette et complète (fig. 13)....
........................................................................Areodina
– Suture clypéo-frontale interrompue au milieu ou
totalement absente.....................................................2.
- 53 -
2. Base du pronotum entièrement rebordée (fig. 14)...
....................................................................Pelidnotina
– Rebord basal du pronotum incomplet, effacé en
son milieu ou totalement absent..............................3.
3. Bord apical des métatibias non cilié...........Rutelina
– Bord apical des métatibias cilié..............Antichirina
RUTELINI, AREODINA
Une seule espèce, Byrsopolis aenescens
Ohaus, 1915, D. Ent. Zeit., p. 225
verdâtres ; corps un peu plus foncé que les élytres
......................................Epichalcoplethis aciculata
4. Espèces brunâtres ou jaunâtres...............................5.
– Espèces verdâtres.......................................................8.
5. Une crinière de poils sur le bord postérieur de
l’élytre, à l’approche de l’angle sutural ; très grosse
et forte ponctuation sur le pronotum ; commune
.....................................................Pelidnota touroulti
– Pas de crinière sur le bord postérieur de l’élytre...6.
6. Des points noirs en nombre variable sur les côtés
du pronotum et des élytres (mais quelques
spécimens sans les points). Assez allongée............7.
– Pas de point noir ; plus grosse et plus trapue ;
commune.......................................P. durantonorum
fig. 13. Détail de la tête de Byrsopolis aenescens,
montrant la suture clypéo-frontale.
RUTELINI, PELIDNOTINA
7. Petite espèce d’un ocre jaunâtre plutôt clair ; la
plus petite des « jaunâtres » ; jusqu’à 4 points ; peu
commune......................................P. quadripunctata
– Plus grande, encore plus allongée ; jusqu’à 8
points ; très rare, à rechercher...............P. lavalettei
8. Assez grosses (> 20 mm) ; les élytres
grossièrement ponctués et même ridés..................9.
– Nettement plus petites (< 18 mm) et plus lisses. 11.
9. Dessous et pattes cuivreux.....................................10.
– Dessous et pattes à peu près du même vert, plus
clair que chez les 2 voisines ; peu commune.............
.....................................................................P. bleuzeni
fig. 14. Base du pronotum rebordée, caractéristique des
Pelidnotina.
Clé de détermination des espèces de Guyane :
1. Le mâle présente des cals apicaux prolongés en
pointe (fig. 19) ; mâle et femelle sont d’un vert très
sombre, plus sombre que celui des Pelidnota vertes ;
femelle plus grosse et encore plus sombre que
celle de P. girardi ; peu commune.................................
........................................Hoplopelidnota metallica
– Mâle sans ces pointes ; espèces brunâtres ou d’un
vert plus clair...............................................................2.
2. Les pattes postérieures sont plus longues que chez
les espèces voisines, surtout chez le mâle ; une
crinière de poils à l’intérieur du métatibia..............3.
– Pattes de proportions plus habituelles ; pas de
crinière sur le métatibia.............................................4.
3. Grosse espèce d’un vert éclatant à reflets cuivreux
plus ou moins intenses.................................................
.................................. Epichalcoplethis chameleon
– Plus petite, assez allongée ; brunâtre à reflets
10. Pronotum fortement ponctué et ridé ; espècez un
peu plus claire que la suivante ; très commune.........
...................................................................P. granulata
– Pronotum moins ponctué et surtout peu ridé ;
sombre ; peu commune..............................P. girardi
11. Les pattes
postérieures
ne
sont
pas
particulièrement renforcées ni allongées ; d’un vert
plus clair et plus brillant ; abdomen « habituel » ;
rare......................................... P. parvasedmagnifica
– Pattes postérieurs renforcées, surtout chez le
mâle ; d’un vert plus foncé et plus « rugueux » ;
abdomen particulier avec un décrochement
vertical entre les sternites ; très rare, à rechercher....
......................................................................... P. cerdai
Epichalcoplethis chameleon (Herbst, 1789),
Natursys. Kaffer, Vol. 2, p 248 [Pelidnota]
Epichalcoplethis aciculata (Bates, 1904), Trans.
- 54 -
Ent. Soc. London, p. 261 [Pelidnota]
confirment la présence de cette espèce dans notre
département.
Hoplopelidnota metallica (Laporte, 1840), Hist.
Nat. Col., p. 122 Laporte, 1840, Hist. Nat. Col., p. 122
[Pelidnota]
Pelidnota bleuzeni (Bouchard, 2003), Coléoptères,
p. 105 [Chalcoplethis]
Pelidnota cerdai (Soula, 2006), Les Coléoptères du
Nouveau Monde, RUTELINI 1 [Strigidia]
Pelidnota durantonorum Soula, 2009, Les
Coléoptères du Nouveau Monde, RUTELINI 3
Pelidnota girardi (Bouchard, 2003), Coléoptères, p.
104 [Chalcoplethis]
Pelidnota granulata (Gory, 1834), Ann. Soc. Ent.
France, p. 112 [Rutela]
Pelidnota lavalettei Soula, 2008, Les Coléoptères du
Nouveau Monde, RUTELINI 2
Pelidnota parvasedmagnifica (Soula & Moragues,
2006), Les Coléoptères du Nouveau Monde,
RUTELINI 1 [Strigidia]
Pelidnota quadripunctata Bates, 1904, Trans. Ent.
Soc. London, p. 269
Pelidnota touroulti Soula, 2008, Les Coléoptères du
Nouveau Monde, RUTELINI 2
Présence douteuse ou à confirmer (ce sont de très anciens
types, à retrouver) :
Pelidnota marginata Laporte, 1840, Hist. Nat. Col., p. 122
Pelidnota terminata Laporte, 1840, Hist. Nat. Col., p. 122
RUTELINI, RUTELINA
Rutela lineola (Linné, 1767), Syst. Nat. (ed.12), Vol.
1(2), p. 552 [Scarabeus]
Rutela histrio Sahlberg, 1823, Periculum Ent., Part.
5, pl. 1, fig. 5
Microrutela campa (Ohaus, 1922), D. Ent. Zeit., p.
325 [Rutela]
Cnemida leprieuri Arrow, 1899, Ann. Mag. Nat.
Hist., Vol. 4(7), p. 367 ; de nombreuses captures
récentes.
Cnemida retusa (Fabricius, 1801), Syst. Eleuth, Vol.
2, p. 133 [Trichius]
Cnemida tristriata Jameson, 1996, Insecta Mundi,
Vol. 10, Nos. 1-4, p. 299. Quelques récentes captures
Présence douteuse ou à confirmer :
Rutela formosa Burmeister, 1844, Handb. Ent., Vol. 4(1), p.
383 ; un seul exemplaire connu étiqueté "Cayenne".
Rutela laeta (Weber, 1801), Obs. Ent., p. 68 [Cetonia] ; un
seul exemplaire connu étiqueté "Cayenne".
Rutela tricolorea Ohaus, 1905, Stettin. Ent. Zeit., p. 310 ; 2
exemplaires connus étiquetés "Cayenne".
Microrutela egana (Ohaus, 1922), D. Ent. Zeit., p. 325
[Rutela] ; un seul exemplaire connu étiqueté "Cayenne".
Cnemida lacerata (Germar, 1824), Ins. Spec. Nov, Vol. 1, p.
118 ; présence en Guyane à vérifier.
RUTELINI, ANTICHIRINA
Clé de détermination des genres guyanais de la
sous-tribu :
1. Scutellum plutôt petit, plus large à sa base que
long au milieu ; lobe médiobasal du pronotum
convexe........................................................................2.
– Scutellum en général grand, aussi long que large
ou plus long que large ; le lobe médiobasal du
pronotum est à peu près droit ou concave............3.
2. Saillie mésosternale petite ; elle ne dépasse pas ou
dépasse à peine les hanches médianes ; elle est
courbée vers le bas.......................................Chlorota
– La saillie mésosternale s'allonge fortement et
semble cassée ; angles postérieurs du pronotum
étirés vers l'arrière........................................ Mucama
3. Scutellum subéquilatéral, aux côtés fortement
courbés ; tous les tibias s'épaississent ; abdomen et
poitrine glabres ; les élytres régulièrement et
finement ridés.........................................Chalcenthis
– Scutellum nettement plus long que large...............4.
4. Mandibules arrondies sur leur bord externe..........5.
– Mandibules plus ou moins échancrées (ou du
moins concaves) sur leur bord externe ; leurs
"dents" externe et apicale plus ou moins relevées...
.......................................................................................7.
5. Scutellum relativement petit, plus court que la
moitié de la suture élytrale ; le lobe médio-basal
pronotal, devant le scutellum, est droit. Ptenomela
– Le scutellum est grand ; moins grand que chez
Macraspis cependant ; le lobe médio-basal pronotal
est concave devant le scutellum...............................6.
- 55 -
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
Figures 27 à 38. Habitus d'Antichirina de Guyane. fig. 27. Antichira capucina (Fabricius, 1787) [34 mm] ; fig. 28. Antichiroides
cuprinus (Laporte, 1840) [32 mm] ; fig. 29. Dorysthetus corruscus (Serville, 1825) [25 mm] ; fig. 30. Paradorysthetus coerulescens
(Blanchard, 1850) [16 mm] ; fig. 31. Telaugis aenescens (Burmeister, 1844) [28 mm] ; fig. 32. Exantichira rigouti Soula, 1998
[12 mm] ; fig. 33. Macraspis olivieri (Waterhouse, 1881) [25 mm] ; fig. 34. Pseudomacraspis affinis (Laporte, 1840) [23 mm] ; fig.
35. Ptenomela psittacina (Burmeister, 1844) [35 mm] ; fig. 36. Vayana bicolor (Olivier, 1789) [33 mm] ; Fig; 37. Chlorota
haemorrhoidalis (Olivier, 1789) [23 mm] ; fig. 38. Theuremaripa cayennensis (Ohaus, 1903) [21 mm].
- 56 -
6. Mandibules très étroites, en forme de "faucille", le
"tranchant" profondément concave ; lobe
médiobasal du pronotum bien arrondi ; griffe
interne du tarse antérieur du mâle peu épaissie ;
bords latéraux des élytres de la femelle sans cal
........................................................Pseudomacraspis
– Mandibules plus larges et plus courtes, qui n'ont
pas cet aspect en faucille ; lobe médio-basal plus
faiblement arrondi ; apex du scutellum moins
effilé ; présence d'une dent sur la base de l'arête
interne des méso- et métatarses des mâles
..............................................................Theuremaripa
7. Bord antérieur du clypéus profondément échancré
...................................................................... Lagochile
– Bord antérieur du clypéus très légèrement concave
ou droit ou le plus souvent convexe, ni échancré,
ni crénelé.....................................................................8.
8. Très grand scutellum, aussi long ou plus long que
la suture élytrale ; côtés des premiers sternites et
face dorsale des fémurs postérieurs portant un
appareil stridulatoire (respectivement passif et
actif).............................................................Macraspis
– Scutellum assez grand, mais bien moins long que
la suture élytrale ; pas d'appareil stridulatoire........9.
9. Saillie longue, voire très longue ; bords latéraux
des élytres de la femelle non élargis ou seulement
très légèrement et régulièrement............................10.
– Saillie courte, voire très courte ; bords latéraux des
élytres de la femelle qui s'élargissent
singulièrement ; clypéus tronqué, présentant à
l'avant un plan très incliné au bord légèrement
concave ; labre qui dépasse largement, avec son
bord antérieur concave ; élytres profondément
sillonnés..........................................................Telaugis
10. Élytres bien sillonnés, les côtes et intervalles
identiquement bombés en largeur et profondeur ;
corps en large ovale, encore élargi et déprimé vers
l'arrière (aussi bien chez le mâle que chez la
femelle)............................................................. Vayana
– Élytres lisses ou seulement légèrement sillonnés.....
.....................................................................................11.
11. Bordure latéro-postérieure de l'élytre lisse ; espèces
convexes ; le lobe médio-basal du pronotum
légèrement concave..................................................12.
– Bordure latéro-postérieure de l'élytre plus ou
moins crénelée ; espèces le plus souvent assez
déprimées à l'arrière ; lobe médio-basal du
pronotum plus ou moins fortement concave......13.
12. Forme en large ovale ; chez le mâle, la griffe
antérieure interne est bifide, les autres simples ;
chez la femelle, la griffe antérieure interne est
simple mais munie d'une dent basale plus ou
moins développée, les autres griffes internes
bifides............................................................Antichira
– Forme allongée avec les côtés subparallèles ; chez
le mâle, la griffe antérieure interne est bifide, les
autres simples ; chez la femelle, toutes les griffes
internes sont bifides........................... Antichiroides
13. La saillie est d'abord abaissée, peu courbée et donc
ensuite peu relevée à l'approche de l'apex ; celui-ci
plus ou moins épaissi ; lobe médio-basal du
pronotum toujours arqué (et concave) ; assez
grandes espèces..................................... Dorysthetus
– La saillie est courbée et se relève donc plus
fortement à l'approche de l'apex ; celui-ci plus ou
moins affiné...............................................................14.
14. Le lobe médio-basal du pronotum arqué ; très
longue saillie en crochet relevé ; très grand
scutellum ; assez petites espèces amazoniennes en
ovale allongé...................................Paradorysthetus
– Lobe médio-basal concave ou droit chez le mâle,
légèrement convexe chez la femelle ; clypéus
modérément avancé et vaguement semi-circulaire ;
labre dépassant largement, avec un bord antérieur
légèrement concave ; disque élytral fortement strié
et ponctué................................................Exantichira
Liste des espèces présentes en Guyane :
Antichira capucina (Fabricius, 1787), Mantissa
Insectorum, Vol. 1, p. 28
Antichira girardi Soula, 1998, Révision des
Anticheirina 1, p. 61
Antichiroides cuprinus (Laporte, 1840), Histoire
Naturelle des Coléoptères, Vol. 2, p. 117
Antichiroides generosus (Waterhouse, 1881), Trans.
Ent. Soc. London, p. 541
Chalcenthis bonini Soula, 2009, Les Coléoptères du
Nouveau Monde, RUTELINI 3
Chlorota cerdani Soula, 2002, "Les Coléoptères du
Monde", 26.2, p. 145
Chlorota
haemorrhoidalis
(Olivier,
1789),
Entomologie, Vol. 1(5), p. 79 [Melolontha]
Chlorota lesnei Ohaus, 1912, Stettin. Ent. Zeit., p.
- 57 -
294, décrite de St. Laurent et retrouvée à d'autres
endroits.
Chlorota surinama Ohaus, 1898, Stettin. Ent. Zeit.,
p. 58
Chlorota terminata (Serville, 1825), Encyclopédie
Méthodique, Vol. 10, p. 317 [Rutela]
Dorysthetus cayennensis Ohaus, 1905, Stettin. Ent.
Zeit., Vol. 66, p. 297
Dorysthetus
corruscus
(Serville,
1825),
Encyclopédie Méthodique, Vol. 10, p. 317
Macraspis lateralis (Olivier, 1789), Entomologie,
Vol. 1(6), p. 80
Macraspis xanthosticta Burmeister, 1844, Handb.
Ent., Vol. 4(1), p. 359
Macraspis pseudochrysis Landin, 1956, Ent.
Tidskr., p. 16
Macraspis oblonga Burmeister, 1844, Handb. Ent.,
Vol. 4(1), p. 359
Macraspis olivieri (Waterhouse, 1881), Trans. Ent.
Soc. London, p. 537
Macraspis faurei Soula, 2006, Les Coléoptères du
Nouveau Monde, RUTELINI 1, p. 158, décrite sur un
mâle du Ceara (Brésil) et présente en Guyane.
Mucama camusi Soula, 2002, Les Coléoptères du
Monde, 26.2
fig. 39. Tête de Dorysthetus corruscus. Bord externe de la
mandibule échancré.
Dorysthetus virens virens (Drury, 1773),
Illustrations of Natural History, Vol. 2, p. 54
Dorysthetus lineatopennis Ohaus, 1912, Stettin.
Ent. Zeit., Vol. 73, p. 278
Paradorysthetus coerulescens (Blanchard, 1850),
Catalogue de la Collection d'Entomologie du Muséum
d'Histoire naturelle de Paris, p. 205
Pseudomacraspis affinis (Laporte, 1840), Histoire
Naturelle des Coléoptères, Vol. 2, p. 118
Exantichira rigouti Soula, 1998, Les Coléoptères du
Monde, 26.1, Révision des Anticheirina 1, p. 110 et
2002, Les Coléoptères du Monde, 26, p. 83.
Lagochile brunnipes (Olivier, 1789), Entomologie,
Vol. 1(6), p. 77 [Cetonia].
Lagochile brunnea castanea Benderitter, 1923, Bul.
Soc. Ent. France, p. 91
Lagochile cetonoides rosanti Soula, 2005, Les
Coléoptères du Monde, 26.3
Lagochile giuglarisi Soula, 2005, Les Coléoptères
du Monde, 26.3
Lagochile macraspidoides Ohaus, 1905. Présence
confirmée récemment.
Lagochile sparsa guyanensis Soula, 2005, Les
Coléoptères du Monde, 26.3
Lagochile trigona soleri Soula, 2005, Les
Coléoptères du Monde, 26.3
Lagochile trigona incerta Soula, 2005, Les
Coléoptères du Monde, 26.3
Macraspis chloraspis chloraspis (Laporte, 1840),
Histoire Naturelle des Coléoptères, Vol. 2, p. 118
fig. 40. Tête de Pseudomacraspis affinis. Bord externe de
la mandibule non échancré ; mandibule en faucille.
Ptenomela psittacina (Burmeister, 1844), Handb.
Ent., Vol. 4(1), p. 366
Telaugis aenescens Burmeister, 1844, Handb. Ent.,
Vol. 4(1), p. 337
Theuremaripa cayennensis (Ohaus, 1903), Berl.
ent. Z., p. 229 (une variété mélanisante, carbonaria, très
fréquente)
Theuremaripa moraguesi Soula, 2002, "Les
Coléoptères du Monde", 26.2, p. 241 et 26 p. 93
Vayana bicolor (Olivier, 1789), Entomologie, Vol.
1(6), p. 70
Présence douteuse ou à confirmer :
Chlorota metallica Burmeister, 1844, Handb. Ent., Vol. 4(1),
- 58 -
p. 363 = aulica ; décrite de Guyane, elle n'y a jamais été
reprise ; assez commune dans la Mata atlantica brésilienne.
Lagochile laticollis Soula, 2005, présence en Guyane à
confirmer.
Lagochile monnei Soula, 2005, présence probable, mais à
confirmer.
Macraspis guyanensis guyanensis Soula, 1998, Révision des
Anticheirina 1, p. 24 ; un seul exemplaire connu étiqueté
"Guyane"
Macraspis splendida (Fabricius, 1775), présence à confirmer. Il
s'agit peut-être d'une variété d'oblonga ou d'olivieri.
GENIATINI
Cette tribu ne comporte pas de sous-tribu. La
faune de Guyane est en cours de révision. La
principale différence entre les grands genres Bolax et
Leucothyreus concerne la taille des yeux (figs. 41 et 42).
fig. 41. Tête de Bolax (petits
yeux)
fig. 42. Tête de Leucothyreus
(grands yeux)
Bolax foveolata Blanchard, 1850, Catalogue de la
Collection d'Entomologie du Muséum d'Histoire
Naturelle de Paris, p. 236 ; décrite de Cayenne.
Bolax squamulifera Blanchard, 1850, Catalogue de
la Collection d'Entomologie du Muséum d'Histoire
Naturelle de Paris, p. 236 ; décrite de Cayenne.
Bolax vittipennis (Laporte, 1840), Histoire Naturelle
des Coléoptères, p. 139 [Aulacodus] ; décrite de
Cayenne.
Geniatosoma nigrum (Ohaus, 1917), Stettin. Ent.
Zeit., Vol. 78, p. 49 ; décrite de Cayenne et Godebert.
Leucothyreus aloysius Ohaus, 1918, Stettin. Ent.
Zeit., Vol. 79, p. 350 ; décrite de Passoura (Guyane).
Leucothyreus amandus Ohaus, 1918, Stettin. Ent.
Zeit., Vol. 79, p. 354 ; décrite de Charvein, sur le bas
Maroni (Guyane).
Leucothyreus crispinus Ohaus, 1918, Stettin. Ent.
Zeit., Vol. 79, p. 353 ; décrite de Cayenne et Kourou.
Leucothyreus lividus Burmeister, 1844, Handb.
Ent., Vol. 4(1), p. 496, décrite du Guyana =
Leucothyreus capitatus Blanchard, 1850, Catalogue de la
Collection d'Entomologie du Muséum d'Histoire
Naturelle de Paris, p. 239 ; Cayenne = Leucothyreus
pallens Erichson, 1848, in Schomburgk, p. 563 ;
Cayenne
Leucothyreus melchiades Ohaus, 1918, Stettin.
Ent. Zeit., Vol. 79, p. 356 ; décrite de Cayenne et
"Amazonie".
Leucothyreus metallescens Burmeister, 1844,
Handb. Ent., Vol. 4(1), p. 497 ; décrite de Cayenne.
Leucothyreus
nitidulus
(Olivier,
1789),
Entomologie, Vol. 1(5), p. 70 [Melolontha], décrite de
Cayenne.
Leucothyreus parvulus Ohaus, 1931, Stettin. Ent.
Zeit., Vol. 92, p. 240 ; décrite de St. Laurent du
Maroni
Leucothyreus vayanus Ohaus, 1917, Stettin. Ent.
Zeit., Vol. 78, p. 9 ; sur une femelle provenant de
Cayenne.
Lobogeniates apicalis Ohaus, 1931, Stettin. Ent.
Zeit., Vol. 92, p. 249 ; décrite du bas-Maroni.
Lobogeniates flavolineatus Ohaus, 1917, Stettin.
Ent. Zeit., Vol. 78, p. 30 ; décrite de Cayenne.
Lobogeniates marronus Ohaus, 1917, Stettin. Ent.
Zeit., Vol. 78, p. 35 ; décrite de Cayenne.
Lobogeniates punctipennis Ohaus, 1917, Stettin.
Ent. Zeit., Vol. 78, p. 35 ; décrite de Cayenne.
Lobogeniates signicollis Ohaus, 1917, Stettin. Ent.
Zeit., Vol. 78, p. 34 ; décrite de Cayenne.
Trizogeniates temporalis Ohaus, 1917, Stettin. Ent.
Zeit., Vol. 78, p. 41 ; décrite du Pérou.
Présence douteuse ou à confirmer :
Leucothyreus anachoreta Erichson, 1848, in Schonburgk, p.
563 ; décrite du Guyana.
Leucothyreus modestus Blanchard, 1850, Catalogue de la
Collection d'Entomologie du Muséum d'Histoire Naturelle
de Paris, p. 238 ; décrite "d'Amérique du sud".
Leucothyreus pallidipes Blanchard, 1850, Catalogue de la
Collection d'Entomologie du Muséum d'Histoire Naturelle
de Paris, p. 237 ; décrite "d'Amérique du sud", Venezuela.
Leucothyreus stibentes Ohaus, 1924, Stettin. Ent. Zeit., Vol. 84,
p. 183 ; décrite du Guyana.
Lobogeniates waraputanus Ohaus, 1931, Stettin. Ent. Zeit.,
Vol. 92, p. 252 ; décrite du Guyana.
REMERCIEMENTS. Merci à Jean-Louis Giuglaris (Matoury)
pour la mise à disposition de certaines photos.
- 59 -
43
44
45
46
47
48
49
50
Figures 43 à 50. Habitus d'Antichirina et de Geniatini. fig. 43. Chalcenthis bonini Soula, 2009 [11 mm] ; fig. 44. Lagochile brunnea
castanea (Benderriter, 1923) [27 mm] ; fig. 45. Mucama camusi Soula, 2002 [18 mm] ; fig. 46. Bolax squamulifera Blanchard, 1850
[15 mm] ; fig. 47. Leucothyreus sp. [12 mm] ; fig. 48. Lobogeniates sp. [20 mm] ; fig. 49. Geniatosoma nigrum (Ohaus, 1917) [23
mm] ; fig. 50. Trizogeniates sp. [22 mm].
Bibliographie
Je ne citerai que les ouvrages anciens incontournables et les
travaux récents :
ARROW G.J., 1899. - The Annals and Magazine of Natural
History, IV(7) : 363-370.
ARROW G.J., 1899. - On sexual dimorphism in beetles of the
family Rutelinae. Trans. Ent. Soc. London : 255-269.
BATES H.W., 1888. - Biologia Centrali Americana. Insecta, II(2),
p. 262-267.
BATES F., 1904. - A revision of the sub-family Pelidnotinae
of the coleopterous family Rutelidae, with descriptions
of new genera and species. Trans. Ent. Soc. London 1904 :
249-276.
BLACKWELDER R.E., 1944. - Checklist of the coleopterous insects
of Mexico, Central America, the West Indies, and South
America, Bull. U.S. Natl. Mus. : 185-341.
BLANCHARD E., 1845. - Histoire Naturelle des Insectes, II, p. 218
et p. 248.
BLANCHARD E., 1850. - Catalogue de la Collection entomologique
du Muséum d'Histoire Naturelle de Paris, Coléoptères, Vol. I,
p. 203-207.
BURMEISTER H.C.C., 1844. - Handb. Ent., IV(1), p. 343-359
(et p. 549) et 1855, IV(2), p. 516-519.
CHALUMEAU F., 1983. - Les Coléoptères Scarabaeides des Petites
Antilles, p. 125-127.
CHALUMEAU F., 1985. - Les Rutelinae des Antilles. Bull. Soc. Ent.
Suisse : 231-260.
FABRICIUS J.C., 1775. - Systema Entomologiae
FABRICIUS J.C., 1792. - Entomologia Systematica
FABRICIUS J.C., 1801. - Systema Eleutheratorum
HAROLD & GEMMINGHER 1869. Catalogus Coleopterorum. p.
1221-1225.
JAMESON M.L., 1990. - Revision, phylogeny, and
biogeography of the genera Parabyrsopolis Ohaus and
Viridimicus, new genus (Coleoptera: Scarabaeidae:
Rutelinae). Coleopterists Bulletin 44(4) : 377-422.
JAMESON M.L., RATCLIFFE B.C. & MORÓN M.A., 1994. - A
synopsis of the Neotropical genus Calomacraspis Bates
with a key to larvae of the American genera of Rutelini
(Coleoptera: Scarabaeidae: Rutelinae). Annals of the
Entomological Society of America, 87(1) : 43-58.
JAMESON M.L., 1996. - Revision and phylogeny of the
Neotropical genus Cnemida (Coleoptera: Scarabaeidae:
Rutelinae). Insecta Mundi 10 : 285-315.
JAMESON M.L., 1996. - The search for natural groups:
phylogenetic analysis of the subtribe Rutelina
(Scarabaeidae: Rutelinae), p. 31 (Abstract). Scarabiology
Symposium, Kruger Nat. Park, South Africa, January 1519.
- 60 -
JAMESON M.L., 1998. - Phylogenetic analysis of the subtribe
Rutelina and revision of the Rutela generic groups
(Coleoptera: Scarabaeidae: Rutelinae: Rutelini). University
of Nebraska State Museum Bulletin, 14 : 1-184.
JAMESON M.L. & MORÓN M.A., 2001. - Descriptions of the
larvae of Chlorota cinticollis Blanchard and Chasmodia
collaris (Blanchard) (Scarabaeidae: Rutelinae: Rutelini)
with a key to the larvae of the American genera of
Rutelini. Coleopterists Bulletin, 55(3) : 385-396.
JAMESON M.L., PAUCAR-CABRERA A. & SOLÍS A., 2003. Synopsis of the New World genera of Anomalini
(Coleoptera: Scarabaeidae: Rutelinae) and description of
a new genus from Costa Rica and Nicaragua. Annals of
the Entomological Society of America, 96(4) : 415-432.
JAMESON M.L. & HAWKINS S.J., 2005. - Synopsis of the
genera of Geniatini (Coleoptera: Scarabaeidae:
Rutelinae) with an annotated catalog of species. Zootaxa,
874 : 1-76.
LACORDAIRE T., 1856. - Genera des Coléoptères, III, p. 318-350.
LAPORTE de CASTELNAU F.L., 1840. - Histoire Naturelle des
Insectes, Coléoptères, Vol II, p. 117-124.
LATREILLE P.A., 1802 - Histoire Naturelle des Crustacés et des
Insectes, Vol.3.
LATREILLE P.A., 1804. - ibid., Vol.10
LATREILLE P.A., 1807. - Genera des Crustacés et Insectes, Vol.3.
LINNÉ C., 1764. - Museum Ludovicae Ulricae, p. 21.
LINNÉ C., 1767. - Systema Naturae, éd. 12, Vol I(2), p. 551.
LINNÉ C., 1771. - Mantissa Plantarum, Vol. 6, p. 530.
LINNÉ C., 1793. - Systema Naturae, éd. 13, Vol.I(4), p. 15721573.
MACHATSCHKE J.W., 1972. Coleopterorum Catalogus:
Melolonthinae, Rutelinae, Pars 66(1).
MACHATSCHKE J.W., 1974. - idem (index), ibid.(2), p. 365-429.
MACLEAY W.S., 1819. - Horae Entomologicae, Vol.1.
MANNERHEIM C., 1829 - Mém. Soc. Nat. Moscou, Vol. 7, p.
50-51.
OHAUS F., 1918. - Coleopterorum Catalogus, pars 66.
OHAUS F., 1934. - Genera Insectorum, Fam. Scarabaeisae, Subfam.
Rutelinae, Tribus Rutelini.
OLIVIER A.G., 1789. - Entomologie, dans Histoire Naturelle des
Insectes, I(6), p. 70-77.
RITCHER P.O., 1948 - Description of the larvae of some
ruteline beetles with keys to tribes and species. Ann.
Ent. Soc. Amer., 41(2) : 206-212.
Serville J.G., 1825. - Encyclopédie Méthodique, Vol.10, p. 317.
SOULA M., 1998. - Les Coléoptères du Monde. 26.1
Antichirina 1, texte long, avec descriptions détaillées et
dessins d’édéages (Macraspis, Antichira, Dorysthetus…),
116 p.
SOULA M., 2002. - Les Coléoptères du Monde, 26, Rutelini
2, texte court (français et anglais) et photos, (Macraspis,
Antichira, Dorysthetus…), 102 p.
SOULA M., 2002. - Les Coléoptères du Monde. 26.2
Antichirina 2, texte long, avec descriptions détaillées et
dessins d’édéages (Chlorota, Ptenomela, Thyridium…).
SOULA M., 2003. - Les Coléoptères du Monde, 29, Rutelini
3, texte court (français et anglais) et photos, Antichirina
2, (Macraspis, Antichira, Dorysthetus…), 79 p.
SOULA M., 2005. - Les Coléoptères du Monde. 26.3
Antichirina 3, texte long, avec descriptions détaillées et
dessins d’édéages, (Lagochile, Addenda…).
SOULA M., 2006. - Les Coléoptères du Nouveau Monde,
Rutelini 1, « Pelidnotina 1 » et « Lasiocalina », 176 p.
SOULA M., 2008. - Les Coléoptères du Nouveau Monde,
Rutelini 2, « Pelidnotina 2 », 40 p.
SOULA M., 2009. - Les Coléoptères du Nouveau Monde,
Rutelini 3, « Pelidnotina 3 », photos des Lagochile
(complément du 26.3 de 2005), 137 p.
VARIN S.A. & COSTA C., 1980. - Larvae of neotropical
Coleoptera. III: Scarabaeidae, Rutelinae. Pap. Avul. Zool.,
S. Paulo, 33(17) : 275-282.
WATERHOUSE C.O., 1881. - On some South American
Coleoptera of the family Rutelidae. Trans. Soc. Ent.
London, Vol.IV(12) : 535-553.
Epichalcoplethis chameleon (Herbst, 1789). Guyane. Mont Itoupé, alt. 570 m,
piège lumineux, mars 2010. Photo prise par Denis Blanchet (SEAG) lors de la
mission d'inventaire du Parc Amazonien de Guyane.
- 61 -
Coleoptera Histeridae de Guyane française. VI.
Mise à jour du catalogue et contribution à la connaissance des Hololeptini
par Nicolas DEGALLIER1, Gerardo ARRIAGAGA2, Stéphane BRÛLÉ3, Julien TOUROULT4, Pierre-Henri DALENS5
& Eddy POIRIER6
1
120 rue de Charonne, 75011 Paris, France ;
[email protected]
4
15, avenue C. Colomb, 16800 Soyaux, France ;
[email protected]
2
Casilla 9802, Santiago 21, Chili ;
[email protected]
5
1 Rés. Kelfleur, Rte de Montabo, 97300 Cayenne, France ;
[email protected]
6158
18, Lot. Amaryllis, 97354 Remire-Montjoly, France ;
[email protected]
3
R. St Germain Est, Rimouski, G5L1A8, Prov.
Quebec, Canada ; [email protected]
Résumé. Des récoltes récentes et intensives en Guyane française permettent d'apporter
de nombreuses données de faunistique dont 19 espèces nouvelles pour ce Département
d'Outre-Mer. Des pièges à vitre (pièges d'interception) ont fourni le matériel le plus
abondant et varié et des récoltes réalisées dans des aires protégées peu prospectées ont
permis d'obtenir des espèces rares ou nouvelles pour la science. Une clé illustrée permet
d'identifier 28 espèces d'Hololeptini. La faune de Guyane française compte actuellement
124 espèces distribuées dans 7 sous-familles et 54 genres. La présence de 22 espèces
reste cependant à confirmer
Mots-clés. piège d'interception, clé d'identification, faunistique, néotropical.
Abstract. Coleoptera Histeridae from French Guiana. VI. An updated catalog and
new data on the Hololeptini.
Recent and intensive collecting in French Guiana allowed to bring many new faunistic
data, including 19 species new for this country. Flight intercept traps gave the most
abundant and diverse results, and collecting in protected areas allowed to find
uncommon or undescribed species. An illustrated key is provided to help identify 28
species of Hololeptini. The fauna of French Guiana accounts now for 7 subfamilies, 54
genera and 124 species. The presence of 22 species remains to be confirmed.
Key-words. flight intercept trap, identification key, faunistic, Neotropical region.
Depuis un séjour réalisé en Guyane française
de 1975 à 1979, le premier auteur s’intéresse à la faune
histéridologique de ce département. Après un premier
catalogue (DEGALLIER, 1979), plusieurs espèces
nouvelles pour la science ou pour cette faune ont été
ajoutées (DEGALLIER, 1982 ; DEGALLIER & KANAAR,
2001), la sous-famille des Hetaeriinae a été traitée
séparément (DEGALLIER, 2004a) et une note « grand
public » publiée pour stimuler les recherches sur cette
faune (DEGALLIER, 2004b). Le présent article concerne
une partie d’un matériel abondant, récolté
principalement depuis 2008 par les quatre derniers coauteurs, membres de la Société entomologique
Antilles-Guyane (SEAG). Ce catalogue reprend les
listes établies précédemment en citant les travaux
antérieurs et en y ajoutant les localités ou captures
nouvelles et des précisions sur certaines espèces.
Sauf mention contraire, le matériel provient de
récoltes faites au piège d’interception vitré, décrit
ailleurs (DEGALLIER & ARNAUD, 1995 ; DEGALLIER &
GOMY, 1983 ; GOMY, 2010). Pour rendre ce travail plus
attrayant qu’une simple liste de noms, les Histerinae
de la tribu Hololeptini ont fait l’objet d’une étude plus
approfondie et une clé illustrée est présentée pour
compléter les illustrations publiées par DEGALLIER &
KANAAR (2001).
Nous avons utilisé les conventions suivantes :
•
les citations entre crochets « [ ] » nécessitent
confirmation,
•
les citations nouvelles pour la Guyane sont
précédées d’un astérisque « * » et enfin,
•
«NDPK» et «ND» renvoient le lecteur
respectivement aux articles de DEGALLIER &
KANAAR (2001) et DEGALLIER (2004a).
Abréviations des localités :
- 62 -
•
MCV : Montagne
52°24' O),
des
Chevaux
(4°43' N ;
•
NOUR : Réserve naturelle des Nouragues-Station
de Saut Pararé (4° 02' 16" N ; 52° 40' 21" O)
Chelonarhister ashei Degallier, 2004. ND : figs. 102108.
•
TRE : la Réserve Trésor (route de Kaw Pk18, alt.
225M, (4°36'37,6" N ; 52°16'44,5" O)
Clientister fernandi Reichensperger, 1938. ND : fig.
6.
•
IT : emplacements des récoltes réalisées sur le
Mont Tabulaire, localité Itoupé indiqués avec
l’altitude : IT400 m (03°01’49’’ N ; 53°06’24’’ O),
IT570 m (03°01’23’’ N ; 53°05’44’’ O), IT600 m
(03°01’20’’ N ;
53°05’41’’ O)
et
IT800 m
(03°01’19’’ N ; 53°05’03’’ O).
Colonides collegii guyanensis Degallier, 1998.
Cyclechinus raucus Bickhardt, 1917.
Euxenister caroli Reichensperger, 1923.
Euxenister wheeleri Mann, 1925. ND : fig. 69.
Les dates des récoltes sont suivies du nombre
d’exemplaires.
Guianahister ashei Tishechkin, 2007. Espèce
connue du Guyana et du Surinam, citée de Roura,
Saül et Cayenne par TISHECHKIN (2007). MCV : 27-VI-
Catalogue
française
09, 1.
des
Histeridae
de
Guyane
Homalopygus pluristriatus Reichensperger, 1929.
Latronister guyanensis Degallier, 2004. ND : figs.
25-36.
ABRAEINAE
*Acritus (Pycnacritus) tuberculatus Wenzel &
Dybas, 1941. Espèce répandue dans toute la région
néotropicale (MAZUR, 1997 ; WENZEL, 1944 ).
Paramana, Île de Cayenne : sous écorces, 25-II-1976, 20 ;
29-II-76, 3 ; 13-VI-76, 1. Roura, sous écorce d’arbre abattu,
14-XI-76, 1.
*Aeletes sulcipennis Wenzel, 1944. Espèce décrite
du Costa Rica. IT570 : 17-III-10, 3.
DENDROPHILINAE
Bacanius scalptus Lewis, 1888. NDPK : figs. 105106. Paramana, Ile de Cayenne, sous écorce d’arbre abattu,
29-II-76, 2. La Chaumière, Ile de Cayenne, sous écorce, 22I-78, 3 ; fin janvier 1979, 3.
Carcinops misella Marseul, 1855. NDPK : fig. 112.
Carcinops ovatula Lewis, 1888.
Carcinops tenella (Erichson, 1834).
Carcinops troglodytes (Paykull, 1811).
Paromalus (Isolomalus) didymus Marseul, 1855.
*Mecistostethus pilifer Marseul, 1870. Cette espèce
décrite des « Amazones » est retrouvée pour la
première fois depuis sa description. Les genres
Tarsilister Bruch, 1932 et Mecistostethus nécessitent
d’être revisés car, contrairement au classement
proposé par HELAVA et al. (1985), ils n’appartiennent
sans doute pas à la sous-famille des Hetaeriinae.
IT600 : 23-III-10, 1.
Mesynodites degallieri Tishechkin, 2007. Espèce
connue du Brésil (Pará et Amapa), citée de Kourou,
1987, 1 spécimen (M. Duranton) et Roura, 2 spécimens
(4°44’20“N, 52°13’26“O, alt. 280 m) (Ashe & Brooks).
Neoterapus bicarinatus (Lewis, 1898). ND : figs.
71-83. MCV : 1-XI-09, 1. NOUR : 22-IX-09, 1 ; 10-X-09,
3 ; 28-I-10, 1.
Nicolasites graniformis (Schmidt, 1893) (Mesynodites
graniformis in ND). Espèce connue du Brésil, du
Guyana et du Venezuela, signalée de Guyane française
par un spécimen récolté le 1/8-VI-1997 au Mont La
Fumée (3°39’46’’ N ; 53°13’19’’ O ; alt. 490 m) au
piège d’interception (Ashe & Brooks) (TISHECHKIN,
2007).
[Nymphister monotonus (Reichensperger, 1938)]
D’après TISHECHKIN (2007), les figures 41-45 in
DEGALLIER (2004a) se rapportent probablement à une
autre espèce.
Paromalus (Isolomalus) jejunus Lewis, 1888.
[Paromalus (Isolomalus) sincerus Lewis, 1888]
HETAERIINAE
Pulvinister nevermanni Reichensperger, 1933. ND :
figs. 2-5.
Aphanister fungifer Reichensperger, 1933. ND :
fig. 1.
Reninus puncticollis Lewis, 1907. Espèce citée de
Saül par TISHECHKIN (2003).
Cachexia guyanensis Degallier, 2004. ND : figs. 724.
Reninus turritus Lewis, 1902. Espèce citée de Saül
par TISHECHKIN (2003). MCV : 23-V-09, 1.
Chelonarhister castroi Degallier, 2004. ND : figs.
46-59, 109-110.
[Scapicoelis tibialis Marseul, 1862]. Les réserves
émises par ND sur les exemplaires cités de Guyane
française sont confirmées par la description prochaine
- 63 -
d’une espèce nouvelle.
Termitolister subcylindricus Degallier, 2004. ND :
figs. 84-101.
Termitoxenus strigicollis Lewis, 1898. IT800 : 17III-10, 1.
*Terapus marseulii Westwood, 1874. Espèce décrite
du Brésil et connue du Pérou (N. Degallier, comm.
pers.). MCV : 8-IX-09, 1. NOUR : 3-IX-09, 1 ; 30-IX-09,
2.
*Troglosternus dasypus Bickhardt, 1917. Espèce
connue du sud du Brésil (Rio Grande do Sul). NOUR :
3-IX-09, 2 ; 30-IX-09, 4.
Tylois trilunatus Marseul, 1864. Premier signalement
de cette espèce en Guyane depuis sa description.
NOUR : 8-IX-09, 1 ; 10-X-09, 1.
*Xenister schwarzmaieri Borgmeier, 1929. Espèce
connue du Brésil. NOUR : 10-X-09, 1.
*Operclipygus hospes (Lewis, 1902). Cette espèce
est connue du Brésil, du Pérou et du Guyana.
Cayenne-Montsinéry, Carrefour du Gallion, 29-IV / 9-V05, piège d’interception pendant le jour (A. Hielkema), 1
mâle.
*Operclipygus subdepressus (Schmidt, 1889).
Espèce décrite de Colombie. TRES : 1-XI-09, 1.
Phelister desbordesi Bickhardt, 1917. NDPK : figs.
16-17.
Phelister haemorrhous Marseul, 1853. NDPK : figs.
5-8. Sinnamary, Route de l'Anse, 1-II-03 (P. Queney), 1.
Phelister sanguinipennis Marseul, 1853. NDPK :
figs. 9-10.
*Yarmister barberi Wenzel, 1939. La présence en
Guyane française de cette espèce connue jusqu’ici que
de sa localité-type en Floride pose un problème
biogéographique. MCV : 23-V-09, 1 ; 31-V-09, 1 ; 30VIII-09, 5. NOUR : 8-IX-09, 1.
HISTERINAE
HOLOLEPTINI
HISTERINI
Hister cavifrons Marseul, 1854. Saül, "Point Chaud", 10VII-98, sous excréments (A. Faille), 1 ; 16-VII-98, dans tripes
de biche (A. Faille), 1 ; 21-VII-98, environs de "Popote", sur
fruit (A. Faille), 1.
Hister curvatus Erichson, 1834. NDPK : figs. 11-12.
[Hister diadema Marseul, 1854]
Hister incisifrons Marseul, 1862. NDPK : figs. 1-4.
Iracoubo, Crique deux Flots, 1-III-03 (J. Touroult), 1.
[Dimalus platamodes Marseul, 1870] Nous
connaissons cette espèce du Brésil : Corcovado,
Guanabara, Rio de Janeiro RJ, XI-72, 1 (M. Alvarenga).
Hololepta aradiformis Erichson, 1834. Piste de Bélizon,
PK15 et 17, 3-XII-05, 1. Régina, Montagne de Kaw, 13VIII-99, scierie, sous écorce de tronc coupé, 1 (J. Dalmon).
IT800 : 17-III-10, 1.
Hololepta attenuata Blanchard, 1842. NDPK : figs.
13-15. Espèce peut-être synonyme de la précédente.
Saül, 18-VII-98, piège aérien au vin et bananes (A. Faille), 1.
Hololepta bidentata Marseul, 1853. NDPK : figs.
38-40. NOUR : 3-IX-09, 1.
EXOSTERNINI
[Hololepta bogotana Marseul, 1853]
*Baconia coerulea (Bickhardt, 1917). Espèce
connue du Pará, Brésil. MCV, 25-I-09, 2.
Conchita propygidiale Mazur, 1994. NDPK : figs.
110-111. MCV, 18-IV-09, 2 ; 16-5-09, 2 ; 23-V-09, 1 ; 6-VI09, 1 ; 4-VII-09, 1 ; 19-VII-09, 1 ; 9-VIII-09, 1 ; 23-VIII09, 1 ; 1-XI-09, 9 ; 14-IV-10, 2. NOUR : 20-VII-09, 3 ; 4VIII-08, 1 ; 11-VIII-09, 2 ; 24-VIII-09, 1 ; 3-IX-09, 1 ; 8IX-09, 2 ; 30-IX-09, 1 ; 10-X-09, 5 ; 1-XI-09, 3 ; 5-II-10, 2 ;
27-III-10, 7 ; 9-IV-10, 3. IT400 : 17-III-10, 6 ; 23-III-10, 3.
IT570 : 24-III-10, 2. IT600 : 17-III-10, 4 ; 24-III-10, 2.
IT800 : 17-III-10, 1 ; 24-III-10, 2.
*Operclipygus angustisternus (Wenzel, 1944).
Espèce décrite du Pará, Brésil. Saül, "Courant doublé",
17-VII-98, au vol (A. Faille), 1.
Operclipygus arnaudi Degallier, 1982.
Operclipygus depressus (Hinton, 1935).
Hololepta cayennensis Marseul, 1853. NDPK : figs.
18-20. Espèce possiblement synonyme d’Hol.
aradiformis dont nous ne connaissons pas d’exemplaire
authentique. Nous reproduisons dans la clé les
caractères fournis par MARSEUL (1853).
Hololepta curta Marseul, 1853. NDPK : figs. 21-23.
Guyane française, 1984-85, 1 (S. Boucher). MCV : 15-II-09,
3 ; 8-III-09, 5 ; 15-III-09, 1 ; 11-IV-09, 2. NOUR : 20-VII09, 7 ; 25-VII-09, 8 ; 4-VIII-09, 7 ; 11-VIII-09, 3 ; 3-IX-09,
2 ; 8-IX-09, 1 ; 13-IX-09, 1 ; 10-IX-09, 4. IT570 : 31-III-10,
9. IT600 : 24-III-10, 1.
Hololepta humilis Paykull, 1811. NDPK : figs. 2427. Montsinéry, crique Coco, VIII-97, 1. Carapa, 15-VIII05, piège à vitre, 1. MCV : 6-XII-08, 1 ; 22-XII-08, 2 ; 28XII-08, 1 ; 4-I-09, 1 ; 18-I-09, 1 ; 11-IV-09, 1 ; 1-XI-09, 1.
NOUR : 20-VII-09, 2 ; 25-VII-09, 2 ; 24-VIII-09, 2 ; 3-IX09, 1 ; 8-IX-09, 9 ; 13-IX-09, 4 ; 30-IX-09, 18 ; 10-X-09,
18 ; 20-X-09, 9 ; 27-III-10, 1 ; 9-IV-10, 1 ; 25-VII-09, filet
- 64 -
cryldé, 1. IT570 : 31-III-10, 1. IT800 : 17-III-10, 1.
NDPK : figs. 41-43. Île de Cayenne, RN2, rivière Comté
Hololepta lamina Paykull, 1811. NDPK : figs. 28-29.
NOUR : 30-IX-09, 3.
au niveau du port, 5-XII-05, 3. Rivière Comté, pointe
Maripa, 5-XII-05, 2 ; 12-I-06, 1 ; 23-XII-05 (P.-H. Dalens),
piège à vitre, 1. Carapa, 15-VIII-05, piège à vitre, 1; 22-XII05, 1. MCV : 1-X-08, 2 ; 18-X-08, 7 ; 27-X-08, 7 ; 16-XI-08,
5 ; 22-XI-08, 4 ; 6-XII-08, 11 ; 16-XII-08, 2 ; 22-XII-08, 5 ;
26-XII-08, 6 ; 4-I-09, 4 ; 10-I-09, 8 ; 18-I-09, 5 ; 25-I-09, 8 ;
8-II-09, 1 ; 15-II-09, 5 ; 23-II-09, 8 ; 8-III-09, 11 ; 15-III09, 9 ; 25-III-09, 4 ; 11-IV-09, 11 ; 25-IV-09, 4 ; 2-V-09, 1 ;
5-V-09, 8 ; 23-V-09, 2 ; 31-V-09, 1 ; 20-VI-09, 1 ; 27-VI-09,
1 ; 4-VII-09, 2 ; 19-IX-09, 2 ; 10-X-09, 3 ; 24-X-09, 3.
NOUR : 4-VIII-09, 1 ; 11-VIII-09, 3 ; 3-IX-09, 2 ; 8-IX-09,
1 ; 30-IX-09, 4 ; 10-X-09, 1 ; 20-X-09, 3.
[Hololepta morator Marseul, 1860]
Hololepta quadriformis Marseul, 1853. NDPK :
figs. 35-37. Maripasoula, Kayodé, 7-I-05, abattis de MarieAndrée, écorce de tronc coupé non brûlé, 1 (J. Dalmon).
*Hololepta wenzeli Mazur, 1984. Nom donné par
Mazur à l’espèce faussement identifiée par MARSEUL
(1853 : 142, 179) comme Hol. humilis Paykull et
répandue au Brésil, au Paraguay et en Argentine.
NOUR : 8-IX-09, 4.
Hololepta (Leionota) cerdo (Marseul, 1853).
Espèce apparemment non revue en Guyane française
depuis sa description. Île de Cayenne, RN2, rivière
Comté au niveau du port, 5-XII-05, 1. Rivière Comté,
pointe Maripa, 23-XII-05 (P.-H. Dalens), piège à vitre, 1.
Massif du Mitaraka (02°27’613” N ; 54°52’908” O), 28X/3-XI-04, filet cryldé (J.-P. Champenois), 2. MCV : 1-X-08,
1 ; 16-XI-08, 2 ; 22-XI-08, 4 ; 6-XII-08, 2 ; 22-XII-08, 6 ; 4I-09, 2 ; 10-I-09, 3 ; 18-I-09, 4 ; 25-I-09, 1 ; 8-II-09, 3 ; 8III-09, 2 ; 15-III-09, 1 ; 25-III-09, 1 ; 11-IV-09, 4 ; 2-V-09,
3 ; 31-V-09, 1. IT800 : 17-III-10, 1.
Hololepta (Leionota) devia Marseul, 1853. NDPK :
figs. 30-34. Guyane française, 1991 (M. Duranton), 1. Ile de
Cayenne, RN2, rivière Comté au niveau du port, 5-XII-05,
1. Rivière Comté, pointe Maripa, 12-I-06 (J. Touroult), 3 ;
23-XII-05 (P.-H. Dalens), piège à vitre, 1. Montsinéry, Les
Champs Virgile, La Carapa, 19-V-05, piège à vitre, 1; 9-XII05, 2 (P.-H. Dalens). Route des Compagnons, VIII-84, 1.
Bélizon, Montagne Tortue, piège d’interception, IX-05, 2
(P.-H. Dalens). MCV : 1-X-08, 1 ; 27-X-08, 9 ; 16-XI-08,
11 ; 6-XII-08, 20 ; 22-XII-08, 8 ; 26-XII-08, 10 ; 4-I-09, 12 ;
10-I-09, 13 ; 18-I-09, 9 ; 25-I-09, 15 ; 8-II-09, 6 ; 15-II-09,
8 ; 23-II-09, 9 ; 8-III-09, 4 ; 15-III-09, 9 ; 25-III-09, 3 ; 11IV-09, 5 ; 25-IV-09, 7 ; 2-V-09, 6 ; 5-V-09, 4 ; 9-V-09, 5 ; 23V-09, 5 ; 31-V-09, 3 ; 6-VI-09, 1 ; 20-VI-09, 2 ; 27-VI-09 ;
1 ; 4-VII-09, 1 ; 9-VIII-09, 9 ; 19-IX-09, 3 ; 10-X-09, 4 ; 24X-09, 9 ; 14-IV-10, 1. NOUR : 25-VII-09, 1 ; 4-VIII-09, 2 ;
11-VIII-09, 7 ; 24-VIII-09, 5 ; 8-IX-09, 6 ; 13-IX-09, 4 ; 30IX-09, 17 ; 10-X-09, 9 ; 20-X-09, 15 ; 27-III-10, 4 ; 9-IV-10,
2. IT400 : 23-III-10, 1. IT570 : 31-III-10, 2. IT600 : 23-III10, 1 ; 24-III-10, 1. IT800 : 24-III-10, 2 ; 30-III-10, 1.
TRES : 5-X-09, 2 ; 13-X-09, 3 ; 24-X-09, 2 ; 1-XI-09, 3.
[Hololepta (Leionota) guyanensis Desbordes,
1928]
Hololepta (Leionota) intersecta (Lewis, 1904).
NDPK : fig. 113. L’étude de matériel typique de cette
espèce sera nécessaire pour confirmer sa synonymie
avec Hol. cerdo qui, d’après DESBORDES (1928), n’en
diffère que par la largeur de l’interruption de la strie
latérale du pronotum. Par ailleurs, l’exemplaire typique
(étiqueté par Lewis) présent au MNHN est un Hol.
devia ! MCV : 26-XII-08, 2.
Hololepta (Leionota) minuta Erichson, 1834 .
Hololepta (Leionota) punctulata (Marseul, 1853).
Espèce connue du Brésil et, à notre connaissance, non
signalée de Guyane française depuis sa description. Île
de Cayenne, RN2, rivière Comté au niveau du port, 5-XII05, 5. Rivière Comté, pointe Maripa, 12-I-06 (J. Touroult), 6.
Carapa, 15-VIII-05, piège à vitre, 1. MCV : 6-XII-08, 2 ;
16-XII-08, 4 ; 26-XII-08, 3 ; 18-I-09, 1 ; 8-III-09, 2 ; 15-III09, 2 ; 25-IV-09, 1 ; 31-V-09, 2 ; 14-IV-10, 1. NOUR : 10X-09, 1. IT400 : 31-III-10, 1.
Hololepta (Leionota) quadridentata (Olivier,
1789). NDPK : figs. 44-46. Guyane française, 1984-85, 1
(S. Boucher) ; 1991 (M. Duranton), 1. Massif du Mitaraka
(02°27’613” N 54°52’908” O), 28-X/3-XI-04, filet cryldé
(J.-P. Champenois), 1. La Carapa, 15-VIII-05, piège à vitre, 5;
19-V-05 (P.-H. Dalens), 6. Ile de Cayenne, RN2, rivière
Comté au niveau du port, 5-XII-05, 3. Route Cayenne-Kaw
K44 (M. Duranton) : 18-IX-85, 1. Saül, "Layon Gros
Arbres", 7-VII-98 (A. Faille), 1. Savane Matiti, 10-XII-05,
piège à bananes (J. Touroult), 1. MCV : 4-X-98 (M. Vialard),
1 ; 1-X-08, 10 ; 11-X-08, 19 ; 18-X-08, 5 ; 27-X-08, 9 ; 16XI-08, 10 ; 22-XI-08, 10 ; 6-XII-08, 23 ; 16-XII-08, 5 ; 22XII-08, 1 ; 26-XII-08, 4 ; 4-I-09, 5 ; 10-I-09, 6 ; 18-I-09, 1 ;
8-II-09, 2 ; 15-II-09, 1 ; 23-II-09, 3 ; 27-VI-09, 2 ; 9-VIII09, 1 ; 3-X-09, 1 ; 24-X-09, 1 ; 14-IV-10, 1 ; 14-IV-10, piège
à bananes, 1. NOUR : 30-IX-09, 1, piège à bananes, 1 ; 16III-10, piège à bananes, 5. IT570 : 31-III-10, 1.
Hololepta (Leionota) reichii (Marseul, 1853).
NDPK : figs. 47-49. Guyane Française, 1991 (M.
Duranton), 4. Montagne des Singes, IX-84, 1. Montagne
Tortue, IX-98, 1 (A. Glaud). Roura, Montagne de Roura :
10-IX-99, route D6, PK 8, piège, 2 (J. Dalmon). Régina,
Montagne de Kaw, 10-IX-99, route D6, PK 5,5 après
Patawa, 2 (J. Dalmon). Montagne de Kaw, 13-XII-97 (M.
Vialard), 1. Matoury, Mont Grand Matoury, 5-IX-99,
chemin de la Mirande, piège, 1 (J. Dalmon). Montagne des
Serpents, 8-X-02 (M. Vialard), 1 ; 28-X-02, 2. Sinnamary,
Trou Poisson pk 10 22-VIII-06, piège à bananes (J.
Touroult), 6. MCV : 16-XI-08, 1 ; 6-XII-08, 2 ; 16-XII-08, 1 ;
22-XII-08, 1 ; 26-XII-08, 1 ; 4-I-09, 2 ; 18-I-09, 1 ; 8-II-09,
1 ; 8-III-09, 4 ; 25-IV-09, 2 ; 31-V-09, 1 ; 27-VI-09, 18 ; 16X-09, 13 ; pièges à bananes : 27-VI-09, 18 ; VII-09, 2 ; 15VIII-09, 11 ; 30-VIII-09, 11 ; 3-X-09, 5 ; 16-X-09, 13 ; 14IV-09, 5. NOUR : 25-VII-09, 1 ; 24-VIII-09, 1 ; 3-IX-09,
3 ; 8-IX-09, 1 ; 10-X-09, 2 ; 20-X-09, 1 ; pièges à bananes :
4-VIII-09, 29 ; 17-VIII-09, 26 ; 23-VIII-09, 37 ; 1-IX-09,
31 ; 22-IX-09, 12 ; 30-IX-09, 12 ; 10-X-09, 17 ; 20-X-09,
- 65 -
17. IT600 : 17-III-10, 4. TRES : 5-X-09, 3; 24-X-09, piège à
bananes, 7.
Oxysternus maximus (L., 1767). Bien que MAZUR
(2009) soulève le problème de l’appartenance de ce
genre monospécifique à la tribu des Hololeptini et tant
qu’une étude cladistique des tribus qui subdivisent les
Histerinae n’aura pas été réalisée, nous conservons sa
classification actuelle. Montsinéry, La Carapa, 15-IX-05,
piège à vitre, 1. MCV : 16-XII-08, 1 ; 19-IX-09, 1.
Petalosoma hirtipes Lewis, 1897. Espèce non
signalée de Guyane française depuis sa description.
Rivière Comté, pointe Maripa, 12-I-06 (J. Touroult), 1.
MCV : 16-XI-08, 2 ; 6-XII-08, 2 ; 16-XII-08, 4 ; 22-XII-08,
2 ; 26-XII-08, 9 ; 4-I-09, 6 ; 10-I-09, 6 ; 18-I-09, 7 ; 25-I-09,
2 ; 15-II-09, 1 ; 11-IV-09, 3 ; 25-IV-09, 1 ; 2-V-09, 1 ; 6-VI09, 1 ; 20-VI-09, 1 ; 4-VII-09, 3. NOUR : 20-X-09, 3.
*Platyeutidium bahiense (Marseul, 1860). Espèce
décrite de l’état de Bahia, dans le Nordeste du Brésil.
Les spécimens de Guyane française ne possèdent pas
d’appendice de strie en face de la deuxième strie
dorsale. NOUR : 11-VIII-09, 2 ; 24-VIII-09, 1 ; 8-IX-09,
1.
24-VIII-09, 1 ; 3-IX-09, 10 ; 8-IX-09, 4 ; 13-IX-09, 1 ; 30IX-09, 8 ; 10-X-09, 7 ; 20-X-09, 5 ; 27-III-10, 1 ; 9-IV-10,
2 ; 25-VII-09, filet cryldé, 2. IT570 : 31-III-10, 2.
OMALODINI
Ebonius politus Lewis, 1885. MCV, 25-IX-04, 1 ; 26IX-08, 1 ; 28-XII-08, 1 ; 10-I-09, 1 ; 25-I-09, 4 ; 11-IV-09,
2 ; 18-IV-09, 2 ; 2-V-09, 2 ; 23-V-09, 1 ; 31-V-09, 1 ; 6-VI09, 2 ; 13-VI-09, 1 ; 27-VI-09, 1 ; 21-II-10, 1. NOUR : 25VII-09, filet cryldé, 1 ; 11-VIII-09, 1 ; 28-I-10, 1 ; 5-II-10,
2 ; 19-II-10, 2 ; 27-III-10, 1 ; 9-IV-10, 2. IT570 : 17-III-10,
3 ; 24-III-10, 4 ; 31-III-10, 11. IT600 : 24-III-10, 1. IT800 :
17-III-10, 1 ; 24-III-10, 8 ; 30-III-10, 5.
[Omalodes amazonicus Marseul, 1861]
Omalodes bifoveolatus Marseul, 1853. NDPK : figs.
54-57. Paracou, 23-IV-99 (A. Ferment), 1. Saül, "Courant
Doublé", 17-VII-98, sur peau d'ananas (A. Faille), 1; "Point
Chaud", environs de Popote, 20-VII-98, dans fruits (A.
Faille), 1. Cascade de Fourgassié, 1-VIII-98, piège aérien
(rhum + banane) (A. Faille), 1.
Omalodes depressisternus Marseul, 1853. NDPK :
figs. 58-59.
[Platyeutidium mandibulare (Marseul, 1853)]
*Platyeutidium monodon (Marseul, 1870). Espèce
décrite d’Amazonie brésilienne. MCV : 6-VI-09, 1.
NOUR : 25-VII-09, 6 ; 4-VIII-09, 8 ; 11-VIII-09, 5 ; 24VIII-09, 4 ; 8-IX-09, 1.
Platyeutidium multispinosum (Wenzel, 1944).
NDPK : fig. 53. Piste de Bélizon, PK15 et 17, 3-XII-05,
1. Saül, sentier Grand Boeuf Mort, XI-07, 1 (J. Touroult).
MCV : 4-I-09, 2 ; 18-I-09 ; 25-I-09, 1 ; 15-II-09, 1 ; 25-III09, 1 ; 18-IV-09, 4 ; 9-V-09, 1 ; 20-VI-09, 2 ; 27-VI-09, 5 ;
4-VII-09, 2 ; 27-VII-09, 3 ; 9-VIII-09, 1 ; 1-XI-09, 1.
NOUR : 25-VII-09, 3 ; 4-VIII-09, 6 ; 11-VIII-09, 3 ; 24VIII-09, 3 ; 3-IX-09, 1 ; 8-IX-09, 2 ; 13-IX-09, 1 ; 30-IX09, 1 ; 10-X-09, 6 ; 20-X-09, 2 ; 27-III-10, 2 ; 9-IV-10, 1.
IT800 : 17-III-10, 1 ; 24-III-10, 3 ; 30-III-10, 2.
*Platyeutidium unistriatum Dillon, 1935. Espèce
décrite du Guyana, très proche de la suivante. NOUR :
3-IX-09, 3. Ces spécimens sont rapportés avec doute à
cette espèce dont la description est sommaire.
Platyeutidium williamsi Dillon, 1935. NDPK : figs.
50-52. Guyane française, 1984-85, 1 (S. Boucher). Saül, 14IX-99, partie commune entre circuit des Gros Arbres et
sentier du Boeuf Mort, sous écorce de tronc coupé, 1 (J.
Dalmon). Route de Kaw pk 32, 25-XII-03, battage (J.
Touroult), 1. Roura, Montagne de Kaw, 9-VII-98, scierie,
sous écorce, 1 (J. Dalmon). Maripasoula, Kayodé, 7-I-05, 2
(J. Dalmon). MCV : 16-XII-08, 1 ; 22-XII-08, 2 ; 26-XII-08,
5 ; 4-I-09, 3 ; 10-I-09, 3 ; 18-I-09, 2 ; 23-II-09, 1 ; 8-III-09,
2 ; 15-III-09, 2 ; 25-III-09, 5 ; 11-IV-09, 2 ; 18-IV-09, 3 ; 25IV-09, 3 ; 2-V-09, 1 ; 5-V-09, 1 ; 9-V-09, 1 ; 23-V-09, 3 ; 6VI-09, 6 ; 13-VI-09, 4 ; 20-VI-09, 4 ; 27-VI-09, 12 ; 4-VII09, 8 ; 19-VII-09, 7 ; 9-VIII-09, 1-XI-09, 1. NOUR : 20VIII-09, 5 ; 25-VII-09, 3 ; 4-VIII-09, 12 ; 11-VIII-09, 6 ;
[Omalodes extorris Marseul, 1853]
[Omalodes exul Marseul, 1853]
Omalodes faustus Erichson, 1834. NDPK : fig. 62.
MCV : 28-XII-08, 1.
Omalodes fortunatus Lewis, 1898. NDPK : figs. 6364.
Omalodes foveola Erichson, 1834. NDPK : figs. 6567.
Omalodes gagatinus Erichson, 1847. NDPK : figs.
68-69. Saül, "Boucle Roche Bateau", 9-VII-98, sur papaye
mûre (A. Faille), 1. Cascade de Fourgassié, 1 -VIII-98,
piège aérien (rhum + banane) (A. Faille), 1.
Omalodes laevinotus Marseul, 1853. NDPK : figs.
70-71.
Omalodes lucidus Erichson, 1834. NPDK : fig. 114.
Paracou, 23-IV-99 (A. Ferment), 1. Cascade de Fourgassié,
1-VIII-98, piège aérien (rhum + banane) (A. Faille), 1. Saül,
"Point Chaud", 16-VII-98, sous tripes de biche (A. Faille),
1 ; "Crique Popote", 19-VII-98, sous fruits pourris (A.
Faille), 2 ; "Point Chaud", environs de Popote, 20-VII-98,
dans fruits (A. Faille), 1.
[Omalodes planifrons Marseul, 1853]
*Omalodes praevius Marseul, 1861. Espèce connue
du Venezuela et du Panama. NOUR : filet cryldé, 25VII-09, 1.
Omalodes pulvinatus Erichson, 1834. NDPK : figs.
72-73. NOUR : filet cryldé, 1.
[Omalodes serenus Erichson, 1834]
- 66 -
Omalodes seriatus Schmidt, 1889. NDPK : figs. 6061.
type « ?Cayenne », la présence de cette espèce en
Guyane française est confirmée.
Omalodes (Cornillus) tuberculatus Lewis, 1905.
NDPK : figs. 74-75. MCV : 11-VIII-09, 1 ; pièges à
Euspilotus (Hesperosaprinus) flaviclava (Marseul,
1870). Savane Matiti : 1-XI-05, 1. Piste de Tonnégrande,
bananes : 16-X-09, 1 ; 14-IV-10, 2. NOUR : 11-VIII-09, 1 ;
22-IX-09, 2 ; 9-IV-10, 30 ; piège à bananes : 17-VIII-09, 1 ;
10-X-09, 2 ; 4-IV-10, 3. TRES : 8-X-09, 2 ; 24-X-09, piège à
bananes, 8.
pk 7 : piège à vitre, 25-II-10, 2. TRES : 22-IX-09, 1 ; 13-X09, 4 ; 1-XI-09, 1 ; 21-XI-09, 1. MCV : 9-II-08, 4 ; 22-II-08,
6 ; 1-X-08, 3 ; 11-X-08, 1 ; 18-X-08, 4 ; 27-X-08, 3 ; 1-XI08, 1 ; 16-XI-08, 20 ; 6-XII-08, 26 ; 16-XII-08, 18 ; 22-XII08, 2 ; 26-XII-08, 7 ; 4-I-09, 5 ; 10-I-09, 1 ; 18-I-09, 4 ; 25I-09, 3 ; 8-III-09, 5 ; 15-III-09, 3 ; 18-IV-09, 1 ; 25-IV-09,
3 ; 2-V-09, 1 ; 5-V-09, 3 ; 16-V-09, 1 ; 23-V-09, 3 ; 31-V-09,
1 ; 6-VI-09, 3 ; 13-VI-09, 7 ; 20-VI-09, 13 ; 27-VI-09, 4 ; 4VII-09, 1 ; 11-VII-09, 6 ; 19-VII-09, 5 ; 27-VII-09, 8 ; 1VIII-09, 4 ; 9-VIII-09, 2 ; 30-VIII-09, 1 ; 8-IX-09, 2 ; 10-X09, 6 ; 14-IV-10, 13. NOUR : 20-VI-09, 4 ; 25-VII-09, 3 ;
11-VIII-09, 2 ; 23-VIII-09, 1 ; 3-IX-09, 1 ; 8-IX-09, 1 ; 13IX-09, 2 ; 19-IX-09, 1 ; 30-IX-09, 1 ; 24-X-09, 3 ; 1-XI-09,
1 ; 19-II-10, 1. IT400 : 17-III-10, 1. IT600 : 24-III-10, 3 ;
29-III-10, 1. IT800 : 17-III-10, 2.
[Omalodes (Cornillus) tuberculifer Desbordes,
1917]
Scapomegas auritus Marseul, 1855. NDPK : fig.
104. MCV : 10-I-09, 1 ; 25-I-09, 1 ; 25-IV-09 ; 31-V-09, 1 ;
27-VI-09, 2 ; 27-VII-09, 1 ; 30-VIII-09, 1 ; 14-IV-10.
NOUR : 20-VII-09, 1 ; 25-VII-09, 1 ; 4-VIII-09, 2 ; 11VIII-09, 3 ; 24-VIII-09, 1 ; 3-IX-09, 1 ; 8-IX-09, 1 ; 22-IX09, 2 ; 30-IX-09, 1 ; 20-X-09, 2 ; 1-XI-09, 1 ; 3-XI-09, 4 ;
28-I-10, 5 ; 5-II-10, 6 ; 19-II-10, 8 ; 9-IV-10, 2. IT600 : 17III-10, 2 ; 24-III-10, 1 ; 29-III-10, 1. IT570 : 20-III-10, 1.
IT800 : 17-III-10, 1 ; 24-III-10, 3 ; 30-III-10, 3 ; 24-IV-10,
1.
Sphyracus anjubaulti (Marseul, 1864). NDPK.
MCV : 6-XII-08, 1 ; 16-XII-08, 1 ; 22-XII-08, 1 ; 26-XII08, 14 ; 28-XII-08, 3 ; 4-I-09, 1 ; 10-I-09, 3 ; 23-II-09, 5 ; 8III-09, 1 ; 15-III-09, 2 ; 25-III-09, 1 ; 11-IV-09, 1 ; 2-V-09,
2 ; 9-V-09, 1 ; 4-VII-09, 2. NOUR : 20-VII-09, 1 ; 20-X-09,
1.
*Euspilotus
(Hesperosaprinus)
innubus
(Erichson, 1834). Espèce connue du Brésil, de Bolivie
et du Chili. MCV : 23-II-09, 1 ; 1-XI-09, 3. NOUR : 10-X09, 4 ; 20-X-09, 4 ; 1-XI-09, 2 ; 28-I-10, 4 ; 5-II-10, 2.
Euspilotus (Hesperosaprinus) milium (Marseul,
1855).
Euspilotus
(Hesperosaprinus)
modestus
(Erichson, 1834). Piste de Tonnégrande, pk 7 : piège à
vitre, 25-II-10, 1. MCV : 8-III-09, 1 ; 1-XI-09, 1. NOUR :
13-XI-09, 1 ; 21-XI-09, 1 ; 30-XI-09, 1.
SAPRININAE
Euspilotus (Hesperosaprinus) auctus (Schmidt,
1890) : Savane Matiti, 1-XII-05, 1. MCV : 1-X-08, 3 ; 16-
Euspilotus (Hesperosaprinus) pavidus (Erichson,
1834).
XI-08, 1; 6-XII-08, 1 ; 4-I-09, 1 ; 18-I-09, 1 ; 8-III-09, 1 ;
11-IV-09, 1 ; 25-IV-09, 2 ; 2-V-09, 1 ; 5-V-09, 2 ; 23-V-09,
5 ; 31-V-09, 1 ; 6-VI-09, 5 ; 20-VI-09, 2 ; 27-VI-09, 3 ; 4VII-09, 2 ; 11-VII-09, 4 ; 27-VII-09, 2 ; 30-VIII-09, 1 ; 8IX-09, 2 ; 10-X-09, 1; 14-IV-10, 8. NOUR : 9-V-09, 1 ; 30IX-09, 2 ; 10-X-09, 1 ; 20-X-09, 4 ; 24-X-09, 1.
Phoxonotus tuberculatus Marseul, 1862. NDPK :
figs. 107-109. MCV : 25-V-09, 1. NOUR : 11-VIII-09, 1.
Euspilotus (Hesperosaprinus) azureus (Sahlberg,
1823) (Euspilotus (Hesperosaprinus) azurescens (Marseul,
1855) in NDPK). Saül, 7-VII-98, abattis (A. Faille), 1;
10-VIII-83 (G. Minet), 16 (2 in coll. D. Verity).
"Point Chaud", 10-VII-98, sous excréments (A. Faille), 1;
16-VII-98, sous tripes de biche (A. Faille), 1. Savane Matiti :
1-XII-05, 1. TRES : 22-IX-09, 5. MCV : 9-II-08, 6 ; 18-X08, 1 ; 16-XI-08, 1 ; 6-XII-08, 75 ; 22-XII-08, 2 ; 26-XII-08,
1 ; 10-I-09, 1 ; 18-I-09, 21 ; 25-I-09, 3 ; 23-II-09, 32 ; 8-III09, 14 ; 15-III-09, 9 ; 11-IV-09, 3 ; 25-IV-09, 8 ; 5-V-09, 1 ;
31-V-09, 1 ; 13-VI-09, 4 ; 19-VII-09, 1 ; 27-VII-09, 1 ; 9VIII-09, 1 ; 8-IX-09, 1 ; 14-IV-10, 1. NOUR : 3-IX-09, 1 ;
20-X-09, 1 ; 24-X-09, 2 ; 13-XI-09, 8. IT570 : 24-III-10, 1.
IT600 : 24-III-10, 5. IT800 : 24-III-10, 1.
Euspilotus (Hesperosaprinus) blandus (Erichson,
1834).
*Euspilotus
(Hesperosaprinus)
canalisticus
(Marseul, 1855). NOUR : 28-I-10, 2 ; 19-II-10, 3 ; 27-III10, 2. Le descripteur indiquait avec doute la localité-
Saprinus guyanensis Marseul, 1855. MCV : 5-V-09, 1.
*Xerosaprinus dolatus (Marseul, 1862). Décrit et
connu du Brésil. Mana, plage des Hattes, sous détritus,
Xerosaprinus vitiosus (J. L. LeConte, 1851).
Plusieurs espèces nouvelles d’Euspilotus,
également retrouvées dans des pays voisins, sont
décrites par ailleurs par le deuxième auteur.
TRIBALINAE
Epierus alutaceus Marseul, 1854. NDPK : figs. 7678, 115.
Epierus bisbistriatus Marseul, 1854. NDPK : figs.
79-81.
Epierus lucidulus Erichson, 1834. NDPK : fig. 116.
Epierus mundus Erichson, 1834. NDPK : figs. 8283, 117. Saül, 7-VII-98, abattis (A. Faille), 1.
Epierus notius Marseul, 1861.
- 67 -
Epierus planulus Erichson, 1834. NDPK : figs. 8485.
*Epierus vandepolli Schmidt, 1889. Décrit du
Brésil. Saül, sous écorce, VII-78 (G. Nazaret), 1.
Idolia antennata Lewis, 1888.
Plagiogramma arciger (Marseul, 1854). NDPK : figs.
86-88.
Diagnose de la tribu des Hololeptini. Prosternum
prolongé par une mentonnière ou lobe prosternal ;
pronotum sans bourrelets latéraux ; élytres striés ou
non mais sans carènes ; dessus glabre ; massue
antennaire entièrement pubescente ; labre non
sétigère ; corps aplati ou peu convexe, de forme
générale rectangulaire (fig. 1) ; tête horizontale.
Plagiogramma glabra (Bickhardt, 1911). NDPK :
figs. 118-119.
Plagiogramma guyanense (Mazur, 1974).
Plagiogramma lucens (Marseul, 1854). NDPK :
figs. 89-90.
TRYPANAEINAE
Fig. 1. Habitus d'Hololeptini : type d'Hololepta attenuata
(MNHN).
Coptotrophis proboscideus (F., 1801).
[Trypanaeus breviculus Marseul, 1857]
[Trypanaeus carinirostris Marseul, 1856]
Trypanaeus ensifer Marseul, 1856. NDPK : figs. 9496.
Trypanaeus flavipennis Marseul, 1856. NDPK :
figs. 100-101.
Trypanaeus foveatus Bickhardt, 1916. NDPK : figs.
91-93.
[Trypanaeus junceus Lewis, 1913]
Trypanaeus nasicornis Marseul, 1870. NDPK : fig.
120.
1. Front sans dent préoculaire; élytres avec au moins
deux stries dorsales entières; stries supraoculaires
entières ; longueur (pronotum + élytres) supérieure à
11 mm (photo de fin d'article).
Oxysternus maximus
1'. Front avec une dent en avant de chaque
œil (fig. 2) ; tout au plus une strie dorsale entière aux
élytres; longueur (pronotum + élytres) inférieure à 10
mm
[Trypanaeus noxius Marseul, 1862]
[Trypanaeus pictus Marseul, 1856]
Trypanaeus quadricollis Marseul, 1856. NDPK :
figs. 97-99.
Trypanaeus volvulus Erichson, 1834. NDPK : figs.
121-122.
Trypolister capucinus Bickhardt, 1916.
Fig. 2. Tête d'Hololepta
bidentata : front avec une
dent en avant de chaque oeil.
[Xylonaeus trigonalis (Marseul, 1860)]
Xylonaeus tuberculifrons (Marseul, 1856). NDPK :
figs. 102-103.
Clé d’identification
Guyane française
des
Hololeptini de
Les
caractères
discriminants
sont
accompagnés de caractères complémentaires pour
aider à la résolution des cas douteux. En hommage à
MARSEUL (1853) qui a publié les clés les plus récentes
de ce groupe, nous en avons conservé le format
séquentiel ou "linéaire".
2. Deuxième strie dorsale complète ou avec un
appendice apical plus long que sa portion basale
3. Front avec deux strioles transversales
4. Bords latéraux du pronotum imponctués, à
l'exception de un ou deux gros points isolés vers le
milieu
Hololepta (Leionota) reichii (figs. 3 et 4)
- 68 -
5'. Épipleures élytraux lisses (ex. fig. 8).
Fig. 8. Épipleures élytraux lisses. Hololepta quadridentata.
7. Base du pygidium ponctuée (ex. fig. 9)
Figs 3-4. Hololepta reichii. Habitus et édéage (vue dorsale).
4'. Bords latéraux du pronotum ponctués
5. Epipleures élytraux ponctués ou rugueux (ex. fig.
5).
Fig. 9. Pygidium ponctué. Hololepta bidentata.
8. Appendice de la deuxième strie élytrale atteignant
ou dépassant la moitié de l'élytre (voir commentaire
dans le texte pour les deux espèces suivantes)
9. Deuxième strie élytrale dorsale plus courte ;
appendice simple ; ponctuation moins forte
Hololepta (Hololepta) aradiformis
Fig. 5. Epipleures élytraux ponctués. Hololepta bidentata.
6. Appendice de la deuxième strie dorsale des élytres
atteignant la moitié.
Hololepta (Hololepta) attenuata (fig. 1)
9’. Deuxième strie élytrale dorsale plus longue ;
appendice accompagné d’une strie punctiforme ;
ponctuation plus forte
Hololepta (Hololepta) cayennensis (figs. 10-11)
6'. Appendice de la deuxième strie élytrale dorsale
n'atteignant pas la moitié
Hololepta (Hololepta) wenzeli (figs. 6-7)
Figs. 10-11. Hololepta cayennensis. Habitus (face dorsale et
ventrale).
Figs. 6-7. Hololepta wenzeli. Habitus (face dorsale et
ventrale).
8'. Appendice de la deuxième strie élytrale dorsale
- 69 -
n'atteignant pas la moitié de l'élytre ; pygidium à
ponctuation peu dense
10. Première strie élytrale dorsale égale au tiers de la
longueur des élytres ; longueur (pronotum + élytres)
d’environ 5 mm
Hololepta (Hololepta) morator (fig. 12)
Figs. 14-15. Hololepta punctulata. Habitus (face dorsale et
ventrale).
Fig. 12. Hololepta
morator
Habitus.
Type (MNHN)
10’. Première strie élytrale dorsale n’atteignant pas le
tiers de la longueur des élytres ; longueur (pronotum
+ élytres) de plus de 6 mm
Hololepta (Hololepta) bogotana
11'. Strie pronotale latérale entière
12. Bord pronotal angulé ou sinué (en vue dorsale) ;
propygidium non fovéolé apicalement
Hololepta (Hololepta) curta (figs. 16-17)
7'. Base du pygidium avec un espace lisse.
11. Strie pronotale latérale interrompue au milieu
Hololepta (Leionota) punctulata (figs. 13-15)
Figs. 16-17. Hololepta curta. Habitus (face dorsale et
ventrale).
Fig. 13.Hololepta punctulata
Habitus
Type (MNHN).
12'. Bord pronotal en courbe régulière ; propygidium
bifovéolé apicalement
Hololepta (Hololepta) lamina (figs. 18-19)
- 70 -
Fig. 22. Détail du lobe
prosternal. Hololepta
bidentata.
15'. Apex du prosternum droit ou faiblement convexe
(ex. fig. 33)
Hololepta (Hololepta) humilis (fig. 23-24)
Figs. 18-19. Hololepta lamina. Habitus (face dorsale et
ventrale).
3’. Front sans strioles (fig. 20).
Fig. 20. Tête.
Hololepta
cerdo.
Figs. 23-24. Hololepta humilis. Habitus (face dorsale et
ventrale).
13. Strie pronotale latérale entière
14. Arête inférieure des tibias postérieurs inerme
(fig. 21)
14'. Arête inférieure des tibias postérieurs avec 1-3
dents (ex. fig. 25)
Fig. 25. Tibia postérieur. Hololepta quadridentata.
Fig. 21. Tibia postérieur. Hololepta bidentata.
15. Apex du prosternum nettement bifide (émarginé)
(fig. 22)
Hololepta (Hololepta) bidentata (figs. 5 & 9)
16. Mandibules dentées ; première strie élytrale
dorsale entière
Platyeutidium monodon (figs. 26-27)
- 71 -
Fig. 30. Bord latéral du pronotum. Hololepta cerdo.
18. Bord apical du pygidium relevé
Hololepta (Leionota) cerdo (figs. 31-32)
= ? Hololepta (Leionota) intersecta
Figs. 26-27. Platyeutidium monodon. Habitus (face dorsale et
ventrale).
16'. Mandibules inermes ; deuxième strie élytrale
dorsale entière
17. Bords du pronotum angulés et sinués avec la strie
latérale fortement amincie au milieu
Hololepta (Leionota) devia
17'. Bords du pronotum régulièrement recourbés avec
la strie latérale de largeur constante ; épipleures
élytraux imponctués (fig. 8) ; ponctuation du
pygidium dense et fine (fig. 29).
Hololepta (Leionota) quadridentata (fig. 28)
Figs. 31-32. Hololepta cerdo. Habitus (face dorsale et
ventrale).
18'. Bord apical du pygidium non relevé
19. Apex du pygidium ponctué
Hololepta (Leionota) minuta (figs. 33-35)
Fig. 28-29. Hololepta quadridentata. Habitus et détail du
pygidium.
13'. Strie pronotale latérale raccourcie en arrière ou
interrompue (fig. 30)
Fig. 33. Détail. Lobe
prosternal.
Hololepta minuta.
- 72 -
Fig. 37.
Platyeutidium mandibulare
Habitus
Type (MNHN).
Figs. 34-35. Hololepta minuta. Habitus (face dorsale et
ventrale).
21'. Mandibules avec une dent interne élargie
Dimalus platamodes
19'. Apex du pygidium lisse (fig. 36)
Hololepta (Leionota) guyanensis
20'. Mandibules non angulées.
22. Stries frontales présentes
Hololepta (Hololepta) quadriformis
22'. Stries frontales absentes
23. Bords latéraux du pronotum ponctués
24. Dessous des tarses postérieurs avec des touffes de
longues soies claires (fig. 38)
Petalosoma hirtipes (figs. 39-40)
Fig. 36. Détail du pygidium. Hololepta guyanensis.
2'. Deuxième strie dorsale des élytres raccourcie en
arrière, sans appendice apical ou avec celui-ci plus
court que sa portion basale.
20. Mandibules avec un angle externe net
21. Mandibules avec une dent interne simple
Platyeutidium mandibulare (fig. 37)
Fig. 38. Détail du dessous d'un tarse postérieur de
Petalosoma hirtipes.
- 73 -
26’. Élytres pointillés
Platyeutidium unistriatum
25'. Carène inférieure des tibias antérieurs avec plus
d'une rangée de denticules pectiformes (fig. 44)
Platyeutidium multispinosum
Fig. 44. Détail du tibia antérieur, face inférieure.
Platyeutidium multispinosum.
Figs. 39-40. Petalosoma hirtipes. Habitus (face dorsale et
ventrale).
Discussion et conclusions
24'. Dessous des tarses postérieurs avec seulement
quelques soies ; première strie élytrale dorsale entière
Platyeutidium bahiense (fig. 41-42)
Figs. 41-42. Platyeutidium bahiense. Habitus (face dorsale et
ventrale).
23'. Bords latéraux du pronotum imponctués.
25. Carène inférieure des tibias antérieurs avec une
seule rangée de denticules pectiformes (fig. 43).
Fig. 43. Détail du tibia antérieur, face inférieure.
Platyeutidium williamsi.
26. Élytres lisses
Platyeutidium williamsi
Ce travail ne représente qu’une étape dans la
connaissance de la faune de ce département français
au climat équatorial. Plusieurs espèces dont la
présence en Guyane française a été signalée il y a
environ un siècle ou qui sont connues des pays
voisins méritent d'être recherchées. Les groupes qui
nécessitent une révision de toutes les espèces avec
consultation de l’ensemble des types sont les
suivants : Abraeinae, Dendrophilinae, Exosternini,
Omalodes, Sphyracus, Tribalinae, Trypanaeinae.
Plusieurs espèces nouvelles, notament dans les sousfamilles des Hetaeriinae et Saprininae, seront décrites
ailleurs.
REMERCIEMENTS. Les photographies ont été réalisées
avec la station d’imagerie de l’équipe « entomologie »,
USM 602 (taxonomie et collections du département
systématique et évolution) et grâce à l’obligeance de
Mme Claude Pierre-Balthus, de MM. Antoine Mantilleri
et Laurent Albenga (MNHN). Nous remercions Mme
Azadeh Taghavian et M. Thierry Deuve pour nous avoir
autorisé l’accès aux riches collections du Laboratoire
d’Entomologie du Muséum national d’Histoire naturelle
(Paris). M. Maël Dewynter, Conservateur de la Réserve
des Nouragues (ONF Guyane), a permis de réaliser une
grande partie des récoltes à l’origine de ce travail lors de
l’inventaire de la diversité entomologique de la réserve.
Mme Cécile Guitet, chef du service Patrimoines
Naturels et Culturels, M. Nicolas Surugue, chargé de
mission Ecologie et M. Frédéric Mortier, Directeur du
Parc Amazonien de Guyane, ont permis la réalisation de
la mission Itoupé. Nos collègues et amis Moacir
Alvarenga,
Stéphane
Boucher,
Jean-Philippe
Champenois, Jacques Dalmon, Michel Duranton, Anne
Glaud, Yves Gomy, Arnaud Faille, A. Ferment, Auke
Hielkema, Gérard Minet, Gérard Nazaret, Pierre
Queney et Michel Vialard ont cédé soit des exemplaires,
- 74 -
soit des données de capture inédites. Enfin nous
remercions nos amis Piet Kanaar et Yves Gomy qui ont
bien voulu relire le manuscrit et tester la clé.
Références
DEGALLIER N., 1979. - Coleoptera Histeridae de Guyane
française. Bulletin de la Société entomologique de France, 84(78) : 177-184.
DEGALLIER N., 1982. - Coleoptera Histeridae de Guyane
française. II. Description d'un Operclipygus nouveau.
Revue française d'Entomologie (Nouvelle Série), 4 (4) : 158160.
DEGALLIER N., 2004a. - Coleoptera Histeridae de Guyane
française. IV. Myrmécophiles et termitophiles de la
sous-famille des Hetaeriinae : notes techniques,
faunistiques et taxonomiques. Bulletin de la Société
entomologique de France, 109(3) : 293-316.
DEGALLIER N., 2004b. - Coléoptères Histeridae de Guyane
française... p. 67-74. In : Gombauld P. (ed.). Insectes de
Guyane : beauté et diversité. Cayenne, Guyane Française,
(ed.), SEPANGUY : 67-74 p.
DEGALLIER N. & ARNAUD P., 1995. - Utilisation du piège
d’interception. Le Coléoptériste, 23 : 57-58.
DEGALLIER N. & GOMY Y., 1983. - Caractères généraux et
techniques de récolte des Coléoptères Histeridae.
L'Entomologiste, 39(1) : 9-17.
DEGALLIER N. & KANAAR P., 2001. - Coleoptera Histeridae
de Guyane française. III. Compléments au catalogue et
notes systématiques. Bulletin de la Société entomologique de
France, 106(2) : 199-214.
DESBORDES H., 1928. - Tableau des espèces américaines du
genre Lioderma Marseul (Col. Histeridae), description
d'une espèce nouvelle et note synonymique. Bulletin de la
Société entomologique de France, (4) : 53-60.
GOMY Y., 2010. - Les Histeridae : des Coléoptères qui se
méritent !, p. 15-32. In : Vincent R. (ed.). Catalogue des
Coléoptères du département de Saône-et-Loire (F-71). Complété
par des recherches muséologiques, biographiques et
bibliographiques sur les entomologistes bourguignons et leurs
Associations (1850-2009). Vol. II.- HISTERIDAE.
Supplément HS au n° 154 de la revue trimestrielle "Terre
Vive". Mâcon, (ed.), Société d'études du milieu naturel
en mâconnais, SEMINA: 15-32 p.
HELAVA J.V.T., HOWDEN H.F. & RITCHIE A.J., 1985. - A
review of the new world genera of the myrmecophilous
and termitophilous subfamily Hetaeriinae (Coleoptera
Histeridae). Sociobiology, 10 (2) : 127-382.
MARSEUL S.A., 1853. - Essai monographique sur la famille
des Histérides. Annales de la Société entomologique de France
(3e sér.), 1 : 131-294.
MAZUR S., 1997. - A world catalogue of the Histeridae
(Coleoptera: Histeroidea). Genus International Journal of
invertebrate Taxonomy, supplement : 1-373.
MAZUR S., 2009. - Notes on the genus Oxysternus Dejean,
1834 (Coleoptera: Histeridae) with special reference to
its systematic position. Studies and reports of District
Museum Prague-East, taxonomical Series, 5(1-2) : 225-232.
TISHECHKIN A.K., 2003. - New distribution records of
neotropical Hetaeriinae (Coleoptera: Histeridae).
Sociobiology, 41(3) : 673-683.
TISHECHKIN A.K., 2007. - Phylogenetic revision of the
genus Mesynodites (Coleoptera: Histeridae: Hetaeriinae)
with descriptions of new tribes, genera and species.
Sociobiology, 49(1) : 5-167.
WENZEL R.L., 1944. - On the classification of the histerid
beetles. Fieldiana, Zoological Series, 28(2) (publ. 545) : 51169.
Oxysternus maximus. D'après une photographie de Stéphane Brûlé.
- 75 -
Hydrophiloidea de Guyane (Insecta, Coleoptera) : aide à la
détermination des genres (adultes) et actualisation des espèces citées
par Pierre QUENEY*
* 10 rue Descartes,
F-92190 Meudon
[email protected]
Résumé. Des tableaux de détermination au niveau du genre sont proposés pour les
Hydrophiloidea (adultes) cités de Guyane ou des pays proches. Chaque genre fait l'objet
d'une représentation photographique ou graphique. La liste des espèces mentionnées du
territoire est mise à jour. Elle comporte 37 espèces dont 15 n'avaient apparemment pas
encore été signalées dans la littérature.
Mots-clés. Clé d'identification, faunistique, Hydrophilidae, plateau des Guyanes,
néotropical.
Abstract. Tables to genus are proposed for identifying the Hydrophiloidea (adults)
mentioned from French Guiana or close countries. Each genus is the subject of a
photographic or graphic representation. An updated list of the species quoted from the
territory is provided. It comprises 37 species of which 15 were not cited up to now.
Key-words. Identification key, faunistic, Hydrophilidae, Guiana shield, Neotropical
region.
Avec un peu plus de 2800 espèces connues
(Hansen, 1999 ; Short & Hebauer, 2006), la
superfamille des Hydrophiloidea représente environ
1% des Coléoptères déjà décrits dans le monde. Elle
correspond à l'ancienne notion de Palpicornes qui
comprenait également les Hydraenidae, aujourd'hui
rattachés aux Staphylinoidea. La nomenclature ainsi
que les données de répartition géographiques utilisées
se réfèrent au catalogue de Hansen (1999).
Les Hydrophiloidea sont présents sur
l'ensemble du globe, à l'exception sans doute de
l'Antarctique. Ce sont en majorité des insectes de
mœurs aquatiques au stade adulte mais environ un
quart ont un habitat terrestre (Hansen, 1999).
Généralités
Parmi les quelque 170 genres qui regroupent
les espèces concernées, un peu plus de 60 se
retrouvent dans la zone néotropicale. Sur ce nombre,
13 ont été mentionnés explicitement de Guyane dans
des publications mais l'on peut penser, en raison de la
pauvreté des prospections effectuées, qu'un nombre
équivalent de genres devraient progressivement venir
s'y ajouter. C'est cet existant et son devenir potentiel,
soit 24 genres, qui sont pris en compte ci-après pour
établir des tableaux de détermination jusqu'au genre.
Adaptés à la seule faune guyanaise, ceux-ci devraient
permettre aux amateurs de Coléoptères de mieux
classer leur matériel dans ce groupe peu étudié en
France, première étape sur la voie d'une identification
au niveau spécifique. Les espèces sont toutefois
mentionnées pour information à la suite des tableaux
énumérant les genres, d'après l'inventaire connu à ce
jour. On en recense 37 dont 15 n'avaient, semble-t-il,
pas encore été citées de Guyane (Hansen, 1999 et
descriptions postérieures).
Une approche taxonomique plus aisée devrait
renforcer l'intérêt des entomologistes pour les
Hydrophiloidea, malgré l'existence de conditions de
récolte relativement éprouvantes. Le climat de la
Guyane, contrasté selon les saisons, et ses
conséquences sur le régime des cours d'eau et
l'extension très variable des zones humides, rendent
en effet la recherche des insectes dans les habitats
concernés très déconcertante pour l'entomologiste
habitué à observer la faune des régions tempérées. La
répartition quantitative et qualitative des espèces
correspondantes est elle-même très surprenante et
impose un assez long apprentissage pour ne pas
succomber à la déception. Il faut ainsi se familiariser
avec les mœurs des espèces inféodées à la savane,
telles que les Berosus, pour comprendre leur absence
presque totale en saison sèche, et, au contraire, tirer
profit des périodes d'étiage, pour prospecter, en cette
même saison, les berges des criques et des fleuves,
auparavant si fougueux, devenant brusquement aussi
hospitaliers pour les insectes et leurs observateurs que
les plus calmes de nos canaux métropolitains.
- 76 -
Tableaux de détermination
Les tableaux de détermination proposés
utilisent principalement les critères retenus par
Hansen (1991). Ils ne sont valables que pour la faune
admise comme pouvant être présente en Guyane et
ne retiennent que les caractères nécessaires pour
distinguer les seuls genres pris en compte dans les
tableaux. Ces caractères seraient donc modifiés ou
complétés si de nouveaux genres ou groupes
supragénériques devaient être introduits. Ces tableaux
sont accompagnés de figures, à raison d'une
représentation photographique ou graphique illustrant
chaque genre, complétée de quelques illustrations
détaillées pour une meilleure compréhension du texte.
Dans les tableaux le signe X signifie que le
caractère correspondant est valable pour l'ensemble
du genre ou groupe supragénérique concerné ; en
revanche le signe (X) indique que le caractère ne
s'applique qu'à une petite partie des espèces
appartenant au genre ou groupe supragénérique
intéressé. Par ailleurs les genres ou groupements
supragénériques sont placés entre [ ] lorsque leur
présence en Guyane, sans avoir encore été citée de
façon explicite dans une publication, est
vraisemblable.
Tableau I. COLEOPTERA : POLYPHAGA : HYDROPHILOIDEA
SUPERFAMILLE
HYDROPHILOIDEA
Tableau :
Conformation générale
- longueur en mm*
- angle pronoto-élytral peu
sensible
- angle pronoto-élytral très
marqué
Tête
- infléchie, partiellement cachée
sous le pronotum proéminent
- yeux entièrement divisés ou
presque en deux parties
dorsale et ventrale
- yeux très saillants et dégagés
du pronotum
Scutellum
- indistinct
- distinct
Pronotum
- inégal, avec des dépressions
ou fossettes
- uni, sans dépressions ni
fossettes
- sommet plus large ou aussi
large que la base
- notablement élargi vers la
base
Face ventrale
- 1er ventrite** beaucoup plus
court que le second
- 1er ventrite guère plus court,
aussi long ou plus long que le
second
[EPIMETOPIDAE] [GEORISSIDAE] HYDROCHIDAE
HYDROPHILIDAE
1 genre :
[1 genre :
[1 genre :
nombreux genres
Epimetopus] (Fig. 6) Georissus] (Fig. 7) Hydrochus (Fig. 8)
II
1,2-3,5
1-2,2
1,5-5,5
1-50
X
X
X
X
X
X
X
X
(X : Berosini)
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
* longueur en mm : les données sont valables pour l'ensemble du genre ou groupe supragénérique indiqué et non pour les
seuls taxons présents en Guyane.
** ventrite : sternite visible.
- 77 -
Tableau II. HYDROPHILOIDEA : HYDROPHYLIDAE
FAMILLE
HYDROPHILIDAE
Tableaux :
Conformation générale
- longueur en mm
Palpes maxillaires
- un peu plus courts en général que les antennes
- plus longs ou aussi longs en général que les antennes
- second article fortement dilaté
- second article en général non dilaté
Tête
- labrum bien sclérifié, pas plus pâle que le clypéus
- labrum plutôt mou et plus pâle que le clypéus
- labrum plus ou moins caché par le clypéus
- labrum non caché par le clypéus
Pattes
- 1er article des méso et métatarses plus long que le
second
- 1er article des méso et métatarses plus court que le
second
Hydrophilinae
Sphaeridiinae
III
X
1-50
1-6
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
3
2
1
4
5
Figures 1-5. Détails de caractères morphologiques. Fig. 1. Oocyclus : yeux obliques ; Fig. 2. Enochrus : palpes maxillaires ; Fig. 3.
Helochares : palpes maxillaires ; Fig. 4. Sacosternum : prosternum, d’après Fikacek & Short (2010) ; Fig. 5. Tropisternus : carène
méso- et métasternale.
- 78 -
Tableau III. HYDROPHILOIDEA :
SOUS-FAMILLE
HYDROPHILINAE
HYDROPHILIDAE : HYDROPHILINAE
Anacaenini
Berosini Chaetarthriini Hydrophilini
Laccobiini
[1 genre :
Oocyclus]
(Fig. 9)
Tableaux :
Conformation générale
IV
V
VI
VII
- longueur en mm
- ponctuation
systématique*
présente sur la tête, le pronotum
et/ou les élytres
- ponctuation systématique absente
sur la tête, le pronotum et les
élytres
Tête
- fortement infléchie vers la face
ventrale (Figs. 30 et 31)
- non fortement infléchie vers la
face ventrale
1-3,3
1,5-9
1,3-1,7
2-50
2,5-6,5
X
(X)
X
X
X
X
X
X
- à peu près aussi large que long
Face ventrale
- 2 premiers ventrites excavés et
couverts d'une frange de longues
soies jaunâtres insérées sur le
bord antérieur du 1er ventrite (Fig.
32)
- 2 premiers ventrites simples
Pattes
- méso et métatibias avec une
frange de longues soies natatoires
au bord interne
- méso et métatibias sans frange de
longues soies natatoires au bord
interne
X
X
X (sauf
Derallus)
- yeux saillants
- yeux réniformes et obliques en
vue dorsale (Fig. 1)
Scutellum
- beaucoup plus long que large
X
(X :
Notionotus)
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
(X :
Tropisternus)
X
X
X
X
X
X
* ponctuation systématique : gros points sétifères, plus ou moins alignés sur la tête, le pronotum et les élytres, auxquels on
accorde une valeur systématique.
- 79 -
Tableau IV. HYDROPHILIDAE :
HYDROPHILINAE : ANACAENINI
TRIBU
ANACAENINI
Conformation générale
- longueur en mm
Tête
- yeux nettement échancrés antérieurement
- yeux non échancrés antérieurement
Élytres
- strie suturale bien imprimée postérieurement
- strie suturale absente
Face ventrale
- Prosternum caréné au milieu
- Prosternum non caréné
Pattes
- métafémurs pubescents
- métafémurs non pubescents (ou très étroitement à la
base)
Anacaena
(Fig. 10)
Notionotus
(Fig. 11)
[Paracymus]
(Fig. 12)
1,5-3,3
1-2
1-3,2
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Tableau V. HYDROPHILIDAE :
HYDROPHILINAE : BEROSINI
TRIBU
BEROSINI
Conformation générale
- longueur en mm
- corps très convexe, comprimé sur les côtés
- corps plus ou moins convexe, non comprimé sur les
côtés
Pronotum
- angles postérieurs peu marqués, obtus ou très largement
arrondis
- angles postérieurs bien marqués
Pattes
- protarses ♂ plus ou moins dilatés à la base
- protarses ♂ non dilatés à la base
- pubescense fémorale très courte et dense, soyeuse
- pubescense fémorale jamais soyeuse
Berosus
(Fig. 13)
Derallus
(Fig. 14)
[Hemiosus]
(Fig. 15)
1,5-9
1,5-4
X
2-4
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Tableau VI. HYDROPHILIDAE :
HYDROPHILINAE : CHAETARTHRIINI
TRIBU
CHAETARTHRIINI
Conformation générale
- longueur en mm
Tête
- yeux fortement échancrés antérieurement
- yeux non échancrés antérieurement
Élytres
- strie suturale présente
- strie suturale absente
[Chaetarthria]
(Fig. 16)
Guyanobius
(Fig. 17)
1,3-2,5
3-3,5
X
X
X
X
- 80 -
6
7
8
9
10
11
12
13
14
Figures 6-14 Habitus d'espèces indicatives des genres retenus (espèces néotropicales ou non). Fig. 6. Epimetopus thermarum
Schwarz & Barber [2,2 mm] d'après Hansen (1991) ; Fig. 7. Georissus crenulatus (Rossi) [2,1 mm] ; Fig. 8. Hydrochus drakei Knisch
[4,3 mm] ; Fig. 9. Oocyclus maculatus Sharp [2,7 mm] ; Fig. 10. Anacaena suturalis (LeConte) [1,8 mm] ; Fig. 11. Notionotus sp.
[1,7 mm] ; Fig. 12. Paracymus aeneus (Germar) [2,8 mm] ; Fig. 13. Berosus olivae Queney [2,5 mm] ; Fig. 14. Derallus terranovae
Oliva [2,4 mm].
- 81 -
Tableau VII. HYDROPHILIDAE :
TRIBU
HYDROPHILINI
HYDROPHILINAE : HYDROPHILINI
Tableaux :
Conformation générale
- longueur en mm
Face ventrale
- forte carène médiane commune au mésosternum et au
métasternum (Fig. 5)
- carènes médianes du mésosternum et du métasternum
non fusionnées
Acidocerina
VIII
Hydrophilina
IX
2-10
6-50
X
X
Tableau VIII. HYDROPHILINAE :
HYDROPHILINI : ACIDOCERINA
SOUS-TRIBU
ACIDOCERINA
Enochrus
Helobata
Helochares
2-9
4,5-6
2,5-10
X
X
X
X
(Fig. 18)
Conformation générale
- longueur en mm
Palpes maxillaires
- article apical tourné légèrement vers l'extérieur (Fig. 2)
- article apical tourné légèrement vers l'intérieur (Fig. 3)
- 2ème article (le plus long) à face interne convexe (Fig. 2)
- 2ème article (le plus long) à face interne concave ou
rectiligne (Fig. 3)
Tête
- clypéus cachant complètement le labre et débordant
devant les yeux
- clypéus ne cachant pas le labre et ne débordant pas devant
les yeux
- yeux échancrés antérieurement
- yeux non échancrés antérieurement
Élytres
- strie suturale fortement sillonnée
- strie suturale imprimée ou absente comme les autres stries
(Fig. 19)
(Fig. 20)
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Tableau IX. HYDROPHILINAE :
HYDROPHILINI : HYDROPHILINA
SOUS-TRIBU
HYDROPHILINA
Hydrobiomorpha
Hydrophilus
Tropisternus
12-28
20-50
6-15
X
X
(Fig. 21)
Conformation générale
- longueur en mm
Antennes
- 1er article de la massue divisé en 2 lobes asymétriques
- 1er article de la massue non bilobé
Tête
- bord antérieur du clypéus échancré
- bord antérieur du clypéus tronqué ou subtronqué
Face ventrale
- partie médiane du prosternum fortement carénée,
pointue à l'arrière
- partie médiane du prosternum en forme de capuchon,
fendue plus ou moins complètement à l'arrière pour
recevoir l'apex de l'apophyse mésosternale
Pattes
- fémurs pubescents à la base
- méso et métafémurs glabres
- 82 -
(Fig. 22)
(Fig. 23)
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Tableau X. HYDROPHILOIDEA :
SOUS-FAMILLE
SPHAERIDIINAE
HYDROPHILIDAE : SPHAERIDIINAE
Omicrini
Coelostoma
Megasternini [1 gen. : Omicrus]
tini
(Fig. 24)
Tableaux :
XI
XII
Conformation générale
- longueur en mm
Tête
- brusquement rétrécie ou excisée devant les yeux,
découvrant la base des antennes
- non brusquement rétrécie ou excisée devant les yeux,
cachant la base des antennes
- labrum rétracté sous le clypéus
- labrum non rétracté sous le clypéus
Face ventrale
- 1er ventrite beaucoup plus long que le second
- 1er ventrite aussi long ou plus court que le second
1,5-5
1-6
1-2
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Tableau XI. HYDROPHILIDAE :
SPHAERIDIINAE : COELOSTOMATINI
TRIBU
COELOSTOMATINI
Dactylosternum
(Fig. 25)
[Phaenonotum]
(Fig. 26)
3,8-5
1,5-4,5
Conformation générale
- longueur en mm
Antennes
- massue compacte
- massue déliée
Élytres
- strie suturale présente vers l'arrière
- strie suturale absente
Face ventrale
- 1er ventrite caréné
- 1er ventrite non caréné ou seulement à la base
X
X
X
X
X
X
Tableau XII. HYDROPHILIDAE : SPHAERIDIINAE :
MEGASTERNINI
TRIBU
MEGASTERNINI
Conformation générale
- longueur en mm
Face ventrale
- apophyse prosternale avec une carène médiane émoussée
- apophyse prosternale fortement carénée au milieu et
prolongée par des ailes latérales surélevées (Fig. 4)
- apophyse prosternale carénée au milieu, sans ailes
latérales surélevées
- apophyse mésosternale ovale, plus longue que large
- apophyse mésosternale pentagonale, aussi large que
longue
- 83 -
[Cercyon]
(Fig. 27)
Moraphilus
(Fig. 28)
Sacosternum
(Fig. 29)
1-6
3-3,5
1,4-2,6
X
X
X
X
X
X
15
16
17
18
19
20
21
22
23
Figures 15-23. Habitus d'espèces indicatives des genres retenus (espèces néotropicales ou non). Fig. 15. Hemiosus maculatus
Sharp [2,5 mm] ; Fig. 16. Chaetarthria seminulum (Herbst) [1,9 mm] ; Fig. 17. Guyanobius sp. [3,1 mm] ; Fig. 18. Enochrus
nigritus (Sharp) [3,7 mm] ; Fig. 19. Helobata larvalis (Horn) [5,2 mm] d'après Hansen (1991) ; Fig. 20. Helochares punctatus
Sharp [4,9 mm] ; Fig. 21. Hydrobiomorpha praesumptapolita Bachmann [18 mm] ; Fig. 22. Hydrophilus smaragdinus
Brullé [30 mm] ; Fig. 23. Tropisternus collaris (Fabricius) [10 mm].
- 84 -
24
25
26
27
28
29
30
31
32
Figures 24-32. Habitus d'espèces indicatives des genres retenus (espèces néotropicales ou non). Fig. 24. Omicrus brevipes Sharp
[1,4 mm] d'après Hansen (1991) ; Fig. 25. Dactylosternum abdominale (Fabricius) [4,8 mm] ; Fig. 26. Phaenonotum sp. [4,2 mm] ;
Fig. 27. Cercyon unipunctatus (Linné) [3,2 mm] ; Fig. 28. Moraphilus sulcatus Orchymont [3,5 mm] d'après Hansen (1991) ;
Fig. 29. Sacosternum lebbinorum Fikacek & Short [2,5 mm] d’après Fikacek & Short (2010) ; Fig. 30. Chaetarthria : vue latérale ;
Fig. 31. Derallus : vue latérale ; Fig. 32. Chaetarthria : vue ventrale.
- 85 -
Liste actualisée des espèces connues de
Guyane
Sharp, 1883 : Cayenne (avec doute) (Hansen 1999).
Espèces déjà citées dans des publications :
Dactylosternum americanum (Mulsant, 1844) :
Cayenne (Hansen 1999).
Berosus duquefi Queney, 2006 : Roura, Camp
Caïman, marécage en forêt, 23-I-2006, P. Queney réc.
Berosus geayi Orchymont, 1937 : Hansen 1999 ;
Mana, N1, ouest de Saut Sabbat, 18-II-2004, P.
Queney réc.
Berosus guyanensis Queney, 2006 : Iracoubo, route
des Pères, 4 et 7-II-2003 ; route de Trou Poissons, 5II-2005 ; Sinnamary, route Jojo, 2-II-2003 et 28-I2006, P. Queney réc.
Berosus olivae Queney, 2006 : Iracoubo, route des
Pères, 7-II-2003 ; route de Trou Poissons, pk 4, 30-I2006 ; Sinnamary, route Jojo, 28-I-2006 ; route de
Petit-Saut, pk 6, 5-II-2005 et 2-II-2006.
Helochares (s. str.) abbreviatus (Fabricius, 1801) :
Hansen 1999.
Helochares (s. str.) inornatus Orchymont, 1926 :
Passoura (Hansen 1999).
Helochares (Sindolus) femoratus (Brullé, 1841) :
Cayenne (avec doute) (Hansen 1999).
Hydrobiomorpha (s. str.) praesumptapolita
Bachmann, 1988 : Hansen 1999 ; Roura, Cacao, XI1999, Boqueron leg. ; Iracoubo, route de Trou
Poissons, 7-II-2003, P. Queney réc.
Hydrobiomorpha (s. str.) polita (Castelnau, 1840) :
Hansen 1999.
Hydrophilus (s. str.) ensifer Brullé, 1837 : Cayenne
(Hansen 1999) ; Mana, D10 vers Acarouany, 24-I2005, P. Queney réc. ; Sinnamary, route Jojo, sablière,
1-II-2003, P. Queney réc. ; Roura, Cacao, XI-1999,
Boqueron leg.
Hydrophilus (s. str.) regimbarti (Zaitzev, 1908) :
Régimbart, 1901 (Hansen, 1999).
Hydrophilus (Dibolocelus) smaragdinus Brullé,
1837 : Régimbart, 1901 (Hansen 1999) ; Saül, 20-VIII1978, G. Nazaret leg. ; idem, lampe UV, 22-II-2004, P.
Queney réc. ; Cayenne, Madeleine, 20-XII-1979, G.
Nazaret leg. ; Roura, Cacao, XI-1999, Boqueron leg.
Tropisternus (Pristoternus) chalybeus Castelnau,
1840 : Orchymont (1921) ; Iracoubo, route de Trou
Poissons, 7-II-2003, P. Queney réc. ; crique Deux
Flots, piège lumineux, III-2003, J. Touroult leg.
Tropisternus (Pristoternus) laevis (Sturm, 1826) :
Cayenne (Hansen 1999) ; Sinnamary, route Jojo,
sablière, 1-II-2003, P. Queney réc.
Tropisternus (Pristoternus) robustus femoratus
Tropisternus (Pristoternus) variolosus Hansen,
1999 : Orchymont (1921).
Dactylosternum cayannum
Cayenne (Hansen 1999).
(Mulsant,
1844) :
Dactylosternum convexum (Castelnau, 1840) :
Cayenne (Hansen 1999).
Dactylosternum fulgens Orchymont,
Nouveau Chantier (Hansen 1999).
1937 :
Moraphilus sulcatus Orchymont, 1925 : SaintLaurent-du-Maroni, mai, R. Peschet leg. (Hansen
1999).
Sacosternum lebbinorum Ficacek & Short, 2010 :
Roura, piège d'interception, 26 à 29-V-1997, J. Ash &
R. Brooks collecteurs.
Espèces apparemment
Guyane :
nouvelles
pour
la
Hydrochus drakei Knisch, 1921 : Iracoubo, route de
Trou Poissons, 2-II-2003 ; Sinnamary, route
Changement, pont Renner, 16-II-2004 ; Sinnamary,
Rabbotin, crique Toussaint, délaissé, 22-IX-2009, P.
Queney réc. ; Maripasoula, Kayodé, 15-I-2005, J.
Dalmon leg.
Hydrochus pupillus Orchymont, 1939 : Sinnamary,
route Jojo, 26-I-2003 ; Sinnamary, route Jojo, mare
sablonneuse,
27-XI-2007 ;
Sinnamary,
route
Changement, pont Renner, 16-II-2004, P. Queney réc.
Hydrochus obscurus Sharp, 1882 : Iracoubo, route
des Pères, 4-II-2003, P. Queney réc.
Anacaena suturalis (LeConte, 1866) : Roura, Cacao,
chemin Molokoï, crique, 20-XI-2007, P. Queney réc.
Notionotus sp. n. 1 (publication en cours) : Roura,
Cascades de Fourgassié, 11-IX-2009 ; Roura, Cacao,
Chemin Molokoï, crique, 20-XI-2007 ; Régina,
Montagne Favard, crique en forêt, 10-IX-2009, P.
Queney réc.
Notionotus sp. n. 2 (publication en cours) : Régina,
Patawa, crique en forêt, 170 m, 13-IX-2009, 19-XI2007 ; Roura, Camp Caïman, crique Grand Couacou,
250 m, 12-IX-2009 ; Roura, RN2, crique à 11 km au
sud de l'Orapu, 25 m, 19-IX-2009, P. Queney réc.
Berosus erraticus Mouchamps, 1963 : Sinnamary,
route de Petit-Saut, pk 6, 5-II-2005, P. Queney réc.
Derallus intermedius Oliva, 1995 : Cayenne,
Gallion, route du Tour de l'Île, 30-X-1979, N.
Degallier réc.
- 86 -
Derallus terraenovae Oliva, 1983 : Sinnamary, route
de Petit Saut, pk 6, 5-II-2005, P. Queney réc. ;
Sinnamary, Pripris de Yiyi, 19-II-2004, P. Queney
réc. ; Iracoubo, crique Morpio, 10-II-2003, P. Queney
réc.
Tropisternus (Strepitornus) collaris (Fabricius,
1775) : Cayenne, IX-1973, A. Fargue leg. ; Roura,
Cacao, XI-1999, Boqueron leg.
Références
Guyanobius sp. n. (publication en cours) : Régina,
Patawa, ru, 19-XI-2007, P. Queney réc.
FICACEK M. & SHORT A.E.Z., 2010. - A revision of the
Neotropical genus Sacosternum Hansen (Hydrophilidae:
Sphaeridiinae: Megasternini). Zootaxa, 2538 : 1-37.
HANSEN M., 1991. - The Hydrophiloid Beetles. Phylogeny,
Classification and a Revision of the Genera (Coleoptera,
Hydrophiloidea). Biologiske Skrifter 40: The Royal Danish
Academy of Sciences and Letters, Copenhagen.
HANSEN M., 1999. - Hydrophiloidea. World Catalogue of Insects,
vol. 2. Stenstrup : Apollo Books.
ORCHYMONT A. d’, 1921. - Le genre Tropisternus. I. (Col.
Hydrophilidae). Annales de la Société entomologique de
Belgique, 61 : 349-374.
QUENEY P., 2006. - Description de trois espèces nouvelles
de Berosus de Guyane française (Coleoptera,
Hydrophilidae). Bulletin de la Société entomologique de France,
111 : 457-464.
SHORT A.E.Z. & HEBAUER F., 2006. World Catalogue of
Hydrophiloidea – additions and corrections, I (19992005) (Coleoptera). Koleopterologische Rundschau, 76 : 315359.
Hydrophilus (s. str.) simulator (Bedel, 1891) :
Maripasoula, Kayodé, 5-III-2005, F. Lavallette leg. ;
Mana, D10 vers Acarouany, 24-I-2005, P. Queney réc.
Tropisternus (Pristoternus) ovalis Castelnau, 1840 :
Sinnamary, route de l'Anse, Parakou, 2-II-2006, P.
Queney réc. ; Roura, Cacao, XI-1999, Boqueron leg.
Tropisternus (Pristoternus) baeri Orchymont,
1921 : Roura, Cacao, XI-1999, Boqueron leg. ;
Montagne des Chevaux, 23-V-2009, S Brûlé leg. ;
Montsinéry, La Carapa, 15-VIII-2006, J. Touroult leg. ;
Sinnamary, route Jojo, sablière, 1-II-2003, P. Queney
réc. ; Iracoubo, crique Deux Flots, piège lumineux,
III-2003, J. Touroult leg. ; Iracoubo, RN1, ancienne
sablière, 30-I-2006, P. Queney réc.
Tropisternus (Pristoternus) bruchi Orchymont,
1921 : Saül, piste de Roche Bâteau, 21-II-2004, P.
Queney réc.
*
*
Repères : carte écologique de la Guyane.
(page 88)
La carte de la page suivante a été dessinée à partir de
plusieurs fonds de cartes.
Elle indique les cinq grandes zones écologiques de
Guyane
définies
par
leurs
caractéristiques
géomorphologiques (modelés du relief). Ces régions
écologiques sont celles utilisées dans la carte réalisée
par Paget (1999) sur la base des travaux du botaniste
Jean-Jacques de Granville.
Quelques communes, lieux-dits et secteurs de collecte
fréquemment cités sont indiqués à titre de repère.
Référence
PAGET D., 1999. - Étude de la diversité spatiale des
écosystèmes
forestiers
guyanais :
Réflexion
méthodologique et application. Thèse de doctorat,
ENGREF (No : 00 ENGR 0055), 169 p.
- 87 -
*
- 88 -