% . /% ! % % !34 IZTACALA ! " # $% & ' ( * ! , - + % . #* / )! 2 0 ) % )* $ + %01 !34 0 5667 ! #$ % " & & ' % $ (' AGRADECIMIENTOS Y DEDICATORIAS A Dios, por mi existencia y por brindarme el don del pensamiento y terminar mis metas, entre ellas la carrera. A mi Mama Yaya, se que donde quiera que se encuentre siempre estará orgullosa de mi. Por esos recuerdos tan bellos, por sus manos hábiles y llenas de cariño para mi y su sufrimiento callado. Quiero decirle que este triunfo va por usted. La extraño mucho. Tengo una gracia que me dejo antes de partir, por la fuerza que encontré en mi interior, por el llanto y la expiación de mi culpa, por sus vivencias y enseñanzas Gracias Papa Ipe. A mi madre, que me corresponde secar cada una de tus lagrimas con mis triunfos, acabar una eternidad de sacrificios por aferrarte a tus sueños y ahora te hago realidad uno de ellos, no me cansare de dar gracias a Dios por ser tu mi madre. Te quiero mucho. Desde una caricia y un grito, se ve en tus ojos cansados, todo el amor tan inmenso que tienes para tus sobrinos, y sobre todo a ese tiempo que dedicaste a la formación de mis hermanos y a la mía. Gracias, te quiero Tía Toña. A la Dra. Raquel, siempre has sido mi ejemplo a seguir, admiro tu empeño profesionalismo, y sobre todo tu generosidad. Gracias por siempre tener palabras para mí aunque duras muy ciertas, también por todo el gran apoyo durante mi carrera. Te quiero mucho. A mis hermanos. Arq. Enrique aunque lejos siempre permanecemos juntos por que existe una unión de gran amor de hermano mayor, sigue con tu entusiasmo y lo más importante nunca pierdas la fe en ti, gracias por ser mi hermano, te quiero muchísimo. Dr. Fernando, todo tiene un principio y un fin, y claro que duele crecer. Espero que te sientas muy orgulloso de mí, así como yo me siento de ti. Gracias por ser mi mejor amigo, mi confidente, mi cómplice y sobre todo mi hermano. Te quiero muchísimo. A mis cuñadas. Psi. Erika solo te diré que estoy muy contenta que seas la esposa de Fer, gracias por tu gran ayuda con mi abuelo, y por el apoyo moral y psicológico. Sigue con tu humanismo que la vida se encargara de compensarte. Te quiero mucho amiga. CP. Nancy que bueno que el destino te cruzo con Enrique así ahora somos amigas, gracias por lo que has hecho por él y por tu apoyo en esos momentos difíciles. Te quiero amiga. A la Maestra Marcela, principalmente por ser mi asesora, por la gran paciencia que me tuvo, por todas sus enseñanzas y también por saber que cuento con usted. No encuentro palabras para agradecerle todo lo que ha hecho por mí. Gracias la quiero mucho. A el Maestro Sergio Stanford, por su apoyo, consejos valiosos, regaños y por hacerme sonreír cuando lo necesitaba. Gracias por todo. A mis amigas. Alejandra, fuiste la primera persona que le hable el primer día de la carrera, ahora aprovecho para decirte que desde ese día nació una bella amistad; gracias por compartir los relajos, los estudios y muchos secretos, te deseo lo mejor en compañía de Xadani y Luis, y te doy gracias por tu valiosa amistad. Te quiero amiga. Liliana, quiero agradecerte por estar junto a mí en el momento justo, quisiera que te des cuenta de cuanto es lo que vales y de todo lo que eres capaz de hacer, no dejes que nadie te vuelva a lastimar. Mati, algún día llegara esa señal y si no, pues será en otra vida. Te quiero mucho amiga. Hilda, como olvidar todo lo que hemos pasado, bueno o malo, hemos estado ahí apoyándonos, sigue luchando por lo que quieres siempre ha sido así. Gracias te quiero mucho amiga. Sandra me dio mucho gusto compartir el trabajo de campo contigo pasamos cosas muy bonitas. Sabes que siempre estaré cuando me necesites aunque sea para intercambiar libros o música. Gracias por tu gran apoyo y a veces complicidad eres una gran persona y amiga. Jesús, tu apoyo visible en todo momento, me hacían sentir que cuento con un amigo como tú, gracias por las bonitas vivencias en campo y por tu alegría que siempre transmites, nunca cambies concha. Juan, no siempre con palabras se entiende la gente. Gracias por tus consejos y tus comentarios en los momentos precisos. A las Señoritas de Toluca. Josefina, gracias por tener siempre una sonrisa para mi, nunca cambies sigue siendo esa niña tan optimista. Karina las apariencias engañan, espero que todas la gente descubran que eres una persona muy linda y noble. Rocio hay momentos en los que sabes con quien contar, y se que estaremos ahi, lucha por lo que quieres. Gracias por su amistad, confianza y convivencia en campo, nunca las olvidare amigas. Diana y Arnulfo no recuerdo ni un momento triste conviviendo con ustedes siempre tienen algo que decir. Dianis gracias por tu amistad y tu apoyo; los dos hacen muy bonita pareja. Gracias por todo. Angélica por ser una niña tierna que siempre me apoyaste y me ayudaste a caminar cuando desvanecía, se que cuento con tu amistad valiosa. Gracias amiga Saharay por tu confianza, y por hacer que viera las cosas desde otra perspectiva. Tienes un gran tesoro, cuida mucho a Belén. Gracias amiga. Nelly por sembrar nuestra amistad desde el principio y hacer tu retorno menos dificil. Gracias amiga. A Luis por tu sincera amistad y por darme tu hombro para recargarme y seguir adelante. Gracias amigo. A la familia Espinosa López, principalmente a mi tía Jacqueline y a Zuleyka, por el inmenso apoyo para mi mama y para mí. Gracias. A mi tío José de Jesús por que siempre conté contigo, tu gran apoyo incondicional y por tu cariño. A mi tío Antonio por el apoyo durante mi carrera. A mi Tío Juan y Tía Carlota, a Verónica, Blanca y Felipe. A Sandra Espinosa y a Karla. A mis amigas y amigos de la prepa. Al Lic. Guillermo Castro, "si nos cubren el cielo con aviones, pelearemos a las sombras" siempre que tenga memoria me acordare de ti y de todo lo que vivimos juntos. Lo importante de un regalo es lo de adentro, y tú eres muy importante para mí. Gracias por todo lo que me has dado y enseñado. Adolfo, estudiar en Iztacala, en parte te lo debo a ti. Formaste algo muy especial para mí. Stephany, Rosalia, Erika, gracias por ser mis consejeras, y mejores amigas, estar conmigo en mis mejores y peores momentos desde la prepa hasta ahora aunque el destino nos haya encaminado por diferentes senderos. Las quiero mucho amigas. A Erikita, Mayra, Ivan, Jorge, Edgar, Eloir y Armando. A Alfonso Corraleño por sus comentarios y consejos y sobre todo la paciencia y apoyo. Gracias. Al Dr. Guillermo Franco, por preocuparse por nosotros y por todas sus amables atenciones. A Roberto por ser un buen compañero y amigo, Guillermo por tu compañerismo. Y a, Lupita, Paty y Pilar. A todos mis cuates que conocí durante la carrera: Miguel, Edgar, Santiago, Ángel, Fabiola, Jessenia, Jorge, Lupita, Tania, Nicte, Elisa (Mayeli), Alfredo, Arturo, Alberto, Mauricio, Raúl, Irwin, Benjamín, Ricardo, Claudia. Adrián Elier gracias por todo tu apoyo y amistad. Ya todas demás personas que estuvieron junto a mi. A Eduardo por todo lo bueno que pasamos durante la carrera. A todas las personas de Guanajuato. Fr. Ernesto, por su apoyo y amistad. Sra. Luz Maria Mares, por compartir con mi familia esos momentos difíciles y bonitos, y por la gran amistad con nosotros. A Dra. Berenice, Dr. Ernesto, Dra. Reyna, Dr. Salvador, por compartir su amistad conmigo. Dr. Salomón, me da mucho gusto que hayas encontrado tu felicidad con Josefina. A Pedro, Sandro, Chuy, Gil, Roberto y Elga Fabiola. A la Diseñadora Marcela por ser mi amiga y siempre hacerme sonreír, tienes una forma de ser muy especial, nunca cambies. Y al Arq. Juan Carlos Cano. A todos ellos Gracias. A la Familia Díaz, principalmente a los señores, a Leonor y Javier y a sus hijos, muchas gracias. Ala familia Morales, a Gaby, Chabe y Norma. A todos mis profesores que me educaron académicamente. A Los maestros: Jorge Padilla, Marcial y Antonio Cisneros, por su apoyo. A El Maestro Alberto y su esposa Andrea, por su apoyo siempre palpable. Gracias!! A la Universidad Nacional Autónoma de México, por la gran oportunidad de formarme en sus muros. A la Escuela Nacional Preparatoria # 8, a mis maestros y compañeros. A la Facultad de Estudios Superiores Iztacala, por formarme en ella y concluir mi licenciatura A la Naturaleza por permitirme estudiarla y conocer todo lo maravilloso de la vida. Y no por estar al final es menos importante… A ese amor platónico, que un día mi corazón le confeso un gran secreto. Gracias por haberlo conocido y pintar mi mundo de colores con su sonrisa. INDICE Resumen………………………………………………………………..……………...1 Introducción…….………………………………………………………..……………2 Antecedentes………….……………………………………………….........…………9 Objetivo General…….…………………………………………………….………...12 -Objetivos Particulares……………………………………………………………....12 Área de Estudio……………………………………………………………………...13 - Mapa FES Iztacala……………………………………………………………..14 Mapa Sierra Norte de Puebla…………………………………… ……….…..18 Metodología…………………………………………………………….……………20 Resultados y Discusión…………………………...………………………….………24 - Phoebis phillea………………………………...………………………..………26 o Plantas hospederas ………………………………………………..…….35 Morpho peleides……………………..…………………………………………37 o Plantas hospederas……………………………………………………....41 Conclusiones………………………………………………………………………..... 43 Literatura Citada……………………………………………………………………..44 Apéndice I…………………………….. ……………………………………………...49 RESUMEN Phoebis philea es una especie de lepidóptero que tiene una distribución amplia en América, incluyendo el Valle de México; por otro lado Morpho peleides es una especie tropical habitante de la vertiente del Golfo, desde Tamaulipas hasta Chiapas. El ciclo de vida de ambas especies ya esta estudiado, sin embargo, no se tienen datos de su comportamiento y abundancia en el municipio de Tlalnepantla. El presente trabajo tiene la finalidad de estandarizar técnicas para su cría, describir aspectos etológicos particulares para la zona, conocer plantas hospederas y nutricias para obtener un pie de cría para su introducción en un mariposario. Para P. philea se realizaron muestreos semanales durante abril de 2002 a marzo 2003 en las instalaciones de la FES-I, Tlalnepantla, estado de México. En caso de M. peleides los muestreos fueron mensuales de febrero del 2002 a febrero 2003, en dos zonas de la Sierra Norte de Puebla. Se recolectaron los ejemplares por medio de red aérea, pinzas entomológicas y manualmente. Se obtuvieron 109 huevos, 58 larvas, 50 pupas y 60 adultos de P. philea. Dentro de las técnicas el mejor dispositivo en huevos y larvas fue el uso de vasos de plástico y para las pupas las cajas de cría. La principal planta hospedera en la FES para esta especie fue Senna didymotrya. Para M. peleides se recolectaron 85 organismos en etapa de adulto; no se obtuvo el ciclo de vida completo y se observó en campo que su hospedera fue Mucuna pruriens. 1 INTRODUCCIÓN Las mariposas son insectos terrestres que presentan una metamorfosis completa. El Orden Lepidoptera, es uno de los grupos más numerosos dentro de la Clase Insecta, asciende a más de 180,000 especies en el mundo y en nuestro país existen 2 000 descritas. Se agrupan como: macrolepidópteros que son las mariposas diurnas y algunas nocturnas de gran tamaño y los microlepidópteros que son nocturnas y pequeñas. En la clasificación los lepidópteros diurnos pueden agruparse como ropalóceros y los nocturnos como heteróceros (Zahradnik y Chvala, 1990). Las mariposas diurnas son altamente especializadas, se reconocen por sus colores brillantes, antenas en forma de maza y la posición de sus alas es de forma unida y vertical al cuerpo; la base de las posteriores es fuerte y ancha y se acoplan con las anteriores durante el vuelo. Las mariposas nocturnas son conocidas como polillas, poseen colores apagados, aunque algunos tienen colores brillantes parecidos a las diurnas; no obstante suelen distinguirse por la forma de las antenas plumosas o filamentosas. Se posan con las alas plegadas sobre el dorso como un techo. (Carter, 1993) Evolutivamente las mariposas poseen cierto parentesco con los tricópteros, debido a que los lepidópteros primitivos tienen parecido sobre todo en el aparato bucal, las nervaduras y la unión de las alas. Ciertos tricópteros presentan sedas que se ensanchan en forma de escamas, lo que permite pensar que estos son antepasados de las mariposas o bien, descienden ambos de un antecesor en común (Stanék, 1991). El ciclo de vida de estos insectos consta de las siguientes etapas: huevo, oruga o larva, prepupa, crisálida o pupa y finalmente imago o adulto. En la primera fase, se lleva a cabo el desarrollo embriológico del organismo, siendo uno de los estadios mas vulnerables; muchas orugas al eclosionar suelen comerse el 2 cascaron vació para sobrevivir hasta localizar su planta hospedera. La fase alimentaría por excelencia, es la de oruga, primordialmente para que pueda crecer, mudando varias veces; generalmente es eruciforme, con aparato bucal masticador, tiene trece metámeros corporales, los tres primeros comprenden el tórax, cada uno lleva un par de apéndices terminados en uñas simples y los restantes conforman el abdomen donde tienen propatas del sexto al noveno metámeros (Carter, 1992). Las orugas presentan criptosis con su entorno o algún objeto; algunas están recubiertas de sedas o espinas que generalmente son venenosas, convirtiéndolas en un desagradable bocado para las aves y mamíferos. Luego de encontrar un lugar apropiado, la oruga en fase de prepupa hila seda de la cual se adhiere por la parte caudal, teje una faja de seda alrededor de ella fijándose algún tallo, posteriormente muda por última vez formando la crisálida. En esta etapa, el organismo sufre un proceso de histolisis y fagocitosis, las células disminuyen de tamaño siguiendo la desaparición de órganos larvarios como son las glándulas de seda y modificando otros como el aparato bucal. En esta etapa también se forman las antenas, las alas y se le desarrollan los apéndices. Finalmente el adulto emerge y segrega un líquido denominado meconium, este contiene desechos acumulados durante la fase de pupa. (Grassé, 1982). El adulto posee una cabeza hipognata, su aparato bucal es de tipo sifón y el tórax contiene apéndices largos y delgados y dos pares de alas membranosas (Fig.1) con venación transversal muy reducida, recubiertas por escamas imbricadas que no son sino sedas planas de diferentes colores, a lo que se le atribuye el nombre del orden (Lepidos-escamas, pteron-ala) y que crean formaciones, manchas e imágenes distintivas según su especie. (De la Fuente, 1994). En la superfamilia Papilionoidea, se ubica la familia Pieridae, son lepidópteros conocidos comúnmente como mariposas blancas y amarillas. Los piéridos son de tamaño pequeño a medio; el primer par de apéndices ambulatorios 3 está bien desarrollado pero carece de epífisis en la tibia. Las uñas tarsales son bífidas. Esta es la única familia del Orden que no presenta preespiráculo cerrado en la base del abdomen. Las larvas son delgadas, lisas, cilíndricas, de color verde con rayas longitudinales obscuras y los ganchos de las propatas están colocados en una hilera (Ehrlich y Ehrlich, 1961). APENDICES PROBOCIS PALPOS CABEZA ANTENAS TORAX ADBOMEN ESTIGMAS VALVAS ALAS POSTERIORES ALAS ANTERIORES Fig. 1 Morfología general (De la Maza, 1987). Phoebis philea es un piérido colinino, representante ideal de las mariposas diurnas ya que exhibe todos los rasgos típicos de este insecto. En Estados Unidos es conocida como “colias gigante de listas anaranjadas” ó “gran mariposa anaranjada”. Tiene alas grandes de color amarillo brillante con antenas filiformes, palpos, tórax y abdomen amarillo tenue, el tórax esta provisto de largas sedas en el dorso y tiene una envergadura alar de 68 a 75 mm. (Carter Haergreaues 1987). Existe un marcado dimorfismo sexual, donde el macho posee una mancha anaranjada rectangular que atraviesa la célula discal en las alas anteriores, el borde costal es negro cerca del ápice, lo mismo en la terminación de cada vena en el margen externo. Las alas posteriores son amarillas con anaranjado en la mayor parte del borde externo; ventralmente son de color amarillo cremoso y con manchas pardas en la terminación de la célula discal en ambos pares de alas (Beutelspacher, 1980). 4 En la hembra el color de las alas anteriores es amarillo rosáceo con un margen obscuro y una serie submarginal de manchas obscuras quebradas; en la terminación de la célula discal posee una mancha negra; en las alas posteriores presentan únicamente la serie submarginal de puntos negros. La cara inferior es de color variable, con matices violáceos y rosa salmón (Fig. 2). a b Fig. 2. Dimorfismo sexual de Phoebis philea (a) Macho, (b) Hembra Esta especie reside en el continente Americano, desde el norte de Brasil hasta el sur de Florida. En México se distribuye ampliamente con excepciones de algunas regiones del norte y noroeste del país. Sus hábitats principales son espacios abiertos como praderas, parques y jardines urbanos (Strutmann, 2003). La cópula se lleva a cabo en pleno vuelo; después de la fecundación la hembra busca plantas específicas para depositar los huevecillos, los coloca en diferentes niveles de la hospedera preferentemente en el ápice de la flor. Los huevos son amarillos y blancos y su desarrollo es continuo dependiendo de las diferentes estaciones. Las larvas, al emerger miden unos cuantos milímetros, están densamente cubiertas de sedas cortas, son verde-amarillentas, con arrugas transversales y una franja negra de cada lado, llegan a medir hasta 10 cm. de largo y de inmediato comienzan a alimentarse de las hojas; el color amarillo lo adquieren por los pigmentos de las flores de la planta hospedera. En el último estadio se les forman parches negros por todo el cuerpo que es distintivo de este piérido lo que indica, que la oruga va a empezar a transformarse en crisálida. En el capullo sufre una metamorfosis a estado adulto y finalmente maduran sexualmente (De la Fuente, 1994). 5 Por su parte, en la familia Nymphalidae existen lepidópteros de gran tamaño conocidos como pañuelos voladores o “morfos”. Dorsalmente su color es muy llamativo, desde azul metálico, blanco, violeta, gris y café; ventralmente el patrón de coloración es críptico y poseen un número variable de dibujos circulares llamados ocelos. La forma de las alas es rectangular con los ápices redondeados. Existe dimorfismo sexual, el macho se distingue por menor tamaño y abdomen esbelto y la hembra lo presenta más robusto. En México existen cuatro especies: Morpho peleides, M. theseus, M. luna y M. polyphemus. Morpho peleides habita principalmente en selva perennifolia y subperennifolia, especialmente se les puede observar en los meses de mayor precipitación (mayo a octubre), es conocida como morfo común (Fig.3). El macho posee en la parte dorsal más azul que la hembra; parte ventral tiene un motivo distintivo conspicuo de ocelos cercados de amarillo y negro sobre un fondo marrón. Tienen envergadura alar de 9.5 a 12 cm. Fig. 3. Adulto de Morpho peleides. Tras la cópula, los huevos de forma ovalada, son depositados aisladamente en el envés de las hojas, las larvas están cubiertas de sedas marrón rojizo y blanco que forman mechones en el dorso, se alimentan de hojas de leguminosas como Machaerium seemanii y Lonchocarpus sp. La pupa que es de forma cilíndrica se fija de las hojas o ramas por la parte posterior y después emerge el adulto. 6 Esta especie es atraída por fruta en fermentación, secreciones de árboles y excrementos de aves y mamíferos. En caso de verse amenazadas producen una secreción de olor desagradable. Su vuelo es activo cuando la temperatura del día es alta y se posan en los árboles o zonas bajas de la vegetación (De la Maza, 1987). Junto con los coleópteros, los lepidópteros son de los más ricos en especies, siendo muy codiciados por los coleccionistas. Sus colores y dibujos, la diversidad de sus formas y la facilidad con que algunas especies se crían, explican el interés que suscitan entre muchos aficionados (Zahradnik y Chvala, 1990). Uno de los modos de contribuir a la conservación de las especies es la creación de mariposarios los cuales son sitios donde se crían mariposas, siendo sus objetivos el mantenimiento de lepidópteros en cautiverio para la observación de su comportamiento, de sus colores y diversidad, con fines de investigación y difusión, así, alberga los recursos naturales sin dañarlos y representa una opción para proteger especies en peligro de extinción. (Olivares, 2000). En condiciones naturales, de cada cien mariposas de cualquier especie que nacen solo una llega a la etapa adulta, debido a que mueren por sus depredadores, enfermedades, por efecto de insecticidas o simplemente por la escasez de alimento. Sin embargo, cuando se crían con ciertos cuidados se pueden obtener casi el 100% de los adultos. Para la realización de un mariposario se requiere del estudio y reconocimiento de las especies que están en el entorno, al igual que las plantas hospederas y nutricias. La crianza de estas tiene varias exigencias, por ejemplo, el control de las condiciones ambientales, la alimentación de acuerdo a cada especie, el control y calidad de las plantas nutricias, la regulación del tamaño poblacional y la cantidad de especies (Olivares, 2000). Estos insectos requieren de áreas con buena iluminación solar, protegidas del viento y con suficientes plantas con que alimentarse para poner sus huevos. Como la mayoría se sustentan del néctar de flores, en un mariposario deben incluirse plantas que tengan florecimiento en diferentes épocas del año. En caso de no tener flores se utilizarán alimentos artificiales, como mezclas de azúcar ó 7 miel con agua ó frutas fermentadas con cerveza. Entre los mariposarios turísticos en nuestro país podemos citar el de Guadalajara, X-Caret en Quintana Roo (con fama mundial por sus dimensiones y por la cantidad de especies nativas que alberga) y el de Africam Safari en Puebla y con fines de producción de estos individuos se encuentran los de en Chiapas, D. F. y Puebla (Anónimo 2001). 8 ANTECEDENTES Las mariposas diurnas han sido muy trabajadas en nuestro país, especialmente en el Valle de México; se conoce que: los aztecas para distinguir la variedad de formas de mariposas les asignaron nombres con base a sus mitos y religión. A las orugas les llamaban ocuilpapalotl que significa gusano de mariposa; los capullos cochipilotlque, dormir colgado y cospapalotl Mariposa amarilla de la especie Phoebis philea (Beutelspecher, 1999). Kattain y Vázquez, (1973) hicieron un estudio con algunas observaciones taxonómicas y biológicas de los ropa loceros de una zona del Pedregal en la ciudad de México, dentro de la cual reportaron a P. philea Beutelspacher, (1980) registró para todo el Valle de México diez familias de lepidópteros con 111 géneros y 163 especies; posteriormente, en 1981, el mismo autor, inventarió mariposas diurnas de Chamela, Jalisco reportando un total de 150 especies, 22 de ellas de la familia Pieridae. En ambos estudios se incluye a P. philea y en particular en Jalisco esta presente durante todo el año. Llorente, (1988) realizó un listado de los papilionideos del Valle de México, recolectando 4121 organismos catalogados en 65 especies, 52 géneros y 4 familias entre ellas se reporta Phoebis philea. De estas especies 4 fueron nuevos registros para el Valle de México entre ellas Phoebis argate Llorente, et al., (1996) elaboraron un inventario lepidofaunístico de los papilionoideos en la Sierra de Manatlán, Jalisco y áreas continuas del estado de Colima produciendo una lista preliminar de 608 especies para Jalisco y 520 para Colima y en ambos estados se cita a Phoebis philea. Struttmann (2003) menciona que Phoebis philea también se distribuye al norte de México, en los Estados de Baja California Sur, Durango, Chihuahua, Sonora, Tamaulipas y Nuevo León. 1 Franco et. al., (1988) efectuaron la crianza de orugas de piéridos en cautiverio con el fin de seguir el ciclo de vida y determinar el posible periodo de diapausa. Encontrando tres fases metamórficas, con una duración de huevo de dos a cinco días, sus larvas de 12 a 30 y las pupas de 12 a 33 días. Montesinos, (2002) maneja el monitoreo, conocimiento y principalmente la cría de las mariposas, mencionado entre ellas, a Phoebis philea y sus plantas hospederas. Sugiere cajas de madera y de petri para la crianza de las orugas Con relación a los mórfidos, De la Maza (1978) estudio el ciclo biológico de M. peleides reportando que están constituido por 5 estadios, encontrando que Arachis hypogaca, Mucuna urens, y Macharom seemanii, son sus plantas hospederas. Mencionando también que se encuentra durante todo el año en los estados de Veracruz, Tabasco, Oaxaca y Chiapas. González (1996) elaboró un listado fáustico de los papiliónidos del Estado de Puebla, con especial referencia a la zona de la barranca de Patla, y reportó que ocupa el quinto lugar de riqueza especifica en el país. Sin embargo, no registró la especie de Morpho peleides; pero Phoebis phiela si se encuentra. Wright, (1990) identificó a Pterocorpus hayesii como una planta hospedera de Morpho peleides y describió cada una de las etapas de su ciclo de vida (citado en Belice Hank, 2003). En cuanto a trabajos realizados sobre la cría de lepidópteros, Enríquez en 1996, evaluó algunos aspectos que influyen en el crecimiento del gusano blanco de maguey (Lepidoptera: Megathymidae) en cautiverio dando una buena opción para su consumo. Además, reportó un alto índice de mortalidad determinada por parásitos naturales Con respecto a la producción de mariposas en sitios cerrados, Cruz, et al., (2001) propagaron plantas hospederas y nectaríferas para alimento de larvas y adultos de mariposas en el parque Ecoarqueológico X-Caret; observaron que Senna sp. (leguminosa) es la hospedera del género Phoebis y Baliña divariaba y B. jenningsii para Morpho peleides. A su vez se formalizó un registro de la abundancia de todas las mariposas en el parque: obteniendo una representación 2 escasa de Phoebis philea en 1995 y en el año 1999 poco abundante. Mientras que Morpho peleides en 1995 fue considerada como una especie abundante. Finalmente, De la Maza (1987) hizo un listado de todas las mariposas de México, registrando 651 especies, siendo las más representativas para el Valle de México Leptophobia aripa, Nymphalis antiopa, Pterourus multicaudata y Phoebis philea; así mismo, reportó a Morpho peleides en la barranca de Patla y Villa Juárez, Puebla, durante los meses de mayo a octubre, sitio de donde se obtuvieron los ejemplares de morfos; además, la reporta para los estados de Veracruz, Oaxaca y Chiapas. A pesar de que Tlalnepantla, es un municipio muy contaminado, algunas mariposas se han establecido dentro de las áreas verdes de la Facultad de Estudios Superiores Iztacala, siendo una de las mas representativas la especie Phoebis philea. Por otro lado, Morpho peleides es uno de los lepidópteros tropicales más bellos. Por ello se busco introducir a ambas especies en condiciones de cautiverio bajo este ambiente, para que la población en general pueda llegar a conocer a estos organismos. 3 OBJETIVO GENERAL Conocer el ciclo biológico en cautiverio de Phoebis philea y Morpho peleides OBJETIVOS PARTICULARES • Estandarizar técnicas para la cría bajo condiciones de laboratorio de Phoebis philea y Morpho peleides. • Describir aspectos etológicos de Phoebis philea y Morpho peleides en laboratorio. • Conocer posibles plantas hospederas para su alimentación y ovoposición. • Obtener un pie de cría de estas especies para su posible introducción en un mariposario. 4 ÁREAS DE ESTUDIO La primera zona de trabajo en donde se recolectó la especie Phoebis philea fue la Facultad de Estudios Superiores Iztacala, de la UNAM, la cual se ubica en Tlalnepantla de Baz, Estado de México. Este municipio se sitúa en la porción noreste del Estado, junto al límite norte del Distrito Federal. Cuenta con 83.477 Km2, lo que representa el 0.38% del total de la superficie del territorio estatal (Gobierno del Estado de México 2003). La facultad se encuentra entre las coordenadas 19°31’ 35” y 19º31’33” latitud N y 99º11’11” y 99º11’12” de longitud O, con una altitud de 2250 a 2300 m snm. (INEGI, 1997) (Mapa 1). FISIOGRAFIA El municipio se ubica dentro de la provincia fisiográfica del eje neovolcánico y se encuentra constituida por afloramiento de material de origen ígneo representados por rocas de tipo lavas, brechas, tobas, basaltos, riolitas y andesitas. y también de origen sedimentario, dentro de la cuales las rocas están representadas por dos clases: rocas clásticas en un 20%, y tobas y materiales detríticos en un 10%, así también por depósitos lacustres y aluviales; además, de existir fracturas y fallas regionales, asociadas a los fenómenos de vulcanismo y mineralización. (Gobierno del Estado de México 2003). 5 Mapa 1. Ubicación de la FES-I en el Municipio de Tlalnepantla de Baz Estado de México (Maps of México, 2003). 6 TOPOGRAFÍA Tlalnepantla de Baz se encuentra ubicada dentro de la provincia terrestre del eje neovolcánico, que a su vez ocupa la subprovincia de los lagos y volcanes de Anáhuac. En la región del vaso lacustre se observan lomeríos que integran pequeños valles, que corresponden a la subregión denominada Valle de México, cuya forma es la propia de un amplio valle con áreas de lomeríos y montañas aisladas, con la característica de presentar como génesis una planicie lacustre. Así también, se puede observar la presencia de pequeños conos volcánicos cineríticos altamente erosionados; esta subregión ocupa una extensión de 4,056 km2, con intervalos de altitud que van de 1,800 a 2,750 m snm. (Gobierno del Estado de México 2003). EDAFOLOGÍA La distribución de tipos de suelo se sitúa con relación al tipo de geología, topografía y procesos de transporte: en la zona plana se presenta un tipo de suelo regosol, que son claros y se parecen a las rocas que les dieron origen, acompañados de litosoles y de afloramiento de rocas de tepetate. Estos últimos se caracterizan por presentar capas homogéneas en concordancia con las rocas que los subyacen. Los suelos se asocian a un feozem calcárico de textura media en fase lítica, que presentan cal en sus horizontes; además, se presenta un tipo de suelo litosol. (Gobierno del Estado de México 2003). HIDROLOGÍA Se encuentra en la región hidrológica número 26 del Alto Pánuco. Las tres principales corrientes que cruzan el municipio son los ríos Tlalnepantla, San Javier, y los Remedios; este último inicia su trayectoria a partir del "Vaso de Cristo", cuerpo de agua que comparte con el municipio de Naucalpan. (Gobierno del Estado de México 2003). 7 CLIMA El clima al oeste de Tlalnepantla corresponde al grupo templado, subgrupo templado, humedad intermedia. El porcentaje de precipitación invernal es menor de 5, el grado de humedad con cociente entre precipitación y temperatura tiene un rango de 43.2 a 55.0, y se identifica como C(w1)(w), de acuerdo con García, (1973). El clima predominante se encuentra en la mayor parte de la zona poniente y en la totalidad de la oriente de Tlalnepantla, correspondiente a un grupo templado, subgrupo templado, humedad baja, precipitación invernal menor de 5, el más seco de los subhúmedos; el cociente entre precipitación y temperatura es menor a 43.2 y se identifica como C(w0)(w), de acuerdo con García (1973). VEGETACIÓN En el Municipio se encuentran reportadas las siguientes especies: Schinus molle (pirúl), Eucaliptus camandulensis (eucalipto), Eucaliptus globulus (alcanfor), Ficus venjamina (ficus), Ficus elastica, (hule) Cupressus benatmi, (ciprés) Casuarina equisetifolia, (casuarina) Jacaranda mimosaefolia (jacaranda), Cupressus lindley (cedro) y Pinus spp. (pinos) En la ribera de los ríos abundan los álamos canadienses Populus deltoides y es posible observar capulín Prunus capulli, durazno Prunus persa, tejocote Crataegus mexicana y en menor frecuencia sauce llorón Salix babilonica (Gobierno del Estado de México 2003). Respecto a la especie Morpho peleides se recolectó al noroeste del Estado de Puebla, en la cuenca hidrológica del Rio Necaxa, en un macizo montañoso que se desprende de la Sierra Madre Oriental y colinda con la llanura Costera del Golfo, incluyendo parte de los municipios de Zihuateutla, Xicotepec de Juárez y Pantepec. Encontrándose situados entre los 20°11’06” y los 20°17 23” de latitud N y los 97°52’23” y los 97°57’32” de longitud O en un rango altitudinal aproximado que varió de los 350 a los 1300 m snm (INEGI, 2002). En el año de 2002 la Cuenca Hidrólogica fue decretada como en el Área de Protección de Recursos 8 Naturales (Diario Oficial de la Federación, 2002) (Mapa 2). FISIOGRAFIA Pertenece a las provincias Sierra Madre Oriental y Llanura Costera del Golfo (Subprovincia de Llanuras y Lomeríos) (INEGI 1987). HIDROLOGIA La zona pertenece a la Región Tuxpan-Nautla, representada por partes de las cuencas de los ríos Tecolutla, Cazones y Tuxpan. El afluente del río Tecolutla en esta zona es el río Necaxa, que se ubica al sur. Al oeste está el afluente del río Cazones, y el río San Marcos (INEGI 1996). EDAFOLOGIA El tipo de suelo predominante es el luvisol, que abarca los municipios de Xicotepec y Zihuateutla. Existen dos tipos de suelos que colindan muy cerca de la zona, estos son los Regosoles y los Cambisoles estos últimos presentes en el Municipio de Pantepec (INEGI 1996). 9 Mapa 2. Ubicación de la Sierra Norte de Puebla (Maps of México, 2003). 10 CLIMA La zona tiene un clima (A)C(fm) semicálido húmedo con lluvias todo el año, el cual abarca tres zonas: en el norte se encuentra en forma de una franja orientada noroeste-sureste con una precipitación media anual de 2946. 4 mm y una temperatura media anual varía entre los 22° y 26°C. (INEGI 2002). En los terrenos del norte se localiza la estación metereológica Xicotepec de Juárez (antes Villa Juárez); la cual es la estación más cercana al área de estudio. Donde se reporta que la temperatura media anual más baja registrada es de 18.3°C, la temperatura media del mes más cálido es de 21.8°C y pertenece a mayo, mientras que enero es el mes más frío con 13.5°C. (INEGI, 2002). VEGETACION La vegetación dominante presente es la selva alta perennifolia (con vegetación secundaria) y el bosque mesófilo de montaña, que se desarrollan en la regiones con relieve accidentado y en laderas con pendiente pronunciada. Entre las diferentes comunidades que lo integran, están: Liquidambar y Quercus (Rendowski, 1978). La zona presenta diferentes grados de perturbación, esto debido a la gran cantidad de áreas de cultivo, principalmente cafetales, pastizales inducidos para la ganadería; además por la extracción de madera, lo que determina en gran medida la fisonomía de las localidades incluidas dentro de la zona. 11 METODOLOGÍA Trabajo en campo Se realizaron 41 muestreos semanales de abril de 2002 a marzo de 2003 en la FES-Iztacala,(FESI) y en la Sierra Norte de Puebla fueron mensuales durante el ciclo de febrero de 2002 al febrero de 2003. Primeramente se hizo un estudio prospectivo para conocer las especies que habitan en la FESI, y se optó por trabajar con Phoebis philea por su presencia constante y lo llamativo de sus colores. La recolecta fue una vez a la semana en diferentes horarios contemplando un rango de las 10:00 a.m. hasta las 16:00 p.m. para conocer la actividad y sus hábitos de conducta durante el día. Por otra parte, se realizaron observaciones de las plantas existentes en la FESI, para reconocer de cuales se alimentaban los adultos y en las que se encontraban huevos y orugas. De esta forma se determinaron aquellas que fueron nutricias y hospederas. Los muestreos en la Sierra Norte de Puebla, fueron dirigidos hacia Morpho peleides, en cualquiera de sus fases. Estos se iniciaron de 10:00 a.m. a 16:00 p.m. En este sitio se localizaron las plantas hospederas y nutricias para recolectar los huevos, larvas y pupas que se encontraran en ellas. Esto se realizó de forma manual y con la manta de golpeo de Bignell. Para el caso de los adultos se colocaron trampas de cilindro Van SomerenRydon (Llorente, 1990) con diferentes cebos para atraerlas, las cuales se capturaron y se transportaron posteriormente al laboratorio. Estos cebos consistieron de una mezcla espesa formada por cerveza negra, cáscara de plátano en fermentación; piña y su cáscara, guayaba y papaya. Así mismo, en las trampas se colocaron mariposas de cartón azul forradas con papel celofán o 1 metálico de color azul colgadas dentro y fuera de las mismas, ya que se sabe que esta especie es atraída por objetos de este color. En ambas zonas, la recolección de huevos se realizó con mucho cuidado debido a que son muy frágiles; se colocaron en frascos y bolsas de plástico transparentes de manera manual ó con pinzas entomológicas; para el caso de P. philea además, se utilizaron cajas de petri, con el fin de evitar el maltrato de los organismos durante su transporte al laboratorio. Las orugas se localizaron y se colocaron en frascos y bolsas de plástico introduciendo en estas, hojas de la planta hospedera donde se encontraron, para transportarlas hasta el laboratorio. Además, se cortaron hojas de estas plantas con las cuales se alimentaron a las orugas en laboratorio; para conservarlas frescas y se envolvieron en papel revolución guardándolas en bolsas de plástico. Por otro, lado los adultos de las dos especies trabajadas se recolectaron con redes entomológicas. Para su transporte al laboratorio se introdujeron en bolsas de papel glassine y se liberaron dentro un espacio cerrado acondicionado con malla para la observación de su comportamiento y conocer otras plantas de su preferencia para alimentarse. Los adultos de M. peleides recolectados en campo fueron puestos en una hielera con la finalidad de bajar el metabolismo; lo que aumento la posibilidad de que continuarán vivas durante el transporte al el laboratorio. Trabajo en laboratorio Para el cuidado de los huevos se utilizaron recipientes diferentes, como bolsas de plástico, vasos, frascos de vidrio, cajas de petri con una cubierta húmeda, (Montesinos 2002) y cajas de plástico grandes (Figs. 5 6 y 7). A medida que las orugas eclosionaron, se trasladaron con un pincel fino a los recipientes antes mencionados, se les alimento con las hojas de la planta hospedera y se les limpio diariamente con una franela seca. Una vez que las orugas maduraron al último estadio se instalaron en cajas de cría, para que ahí puparan y el adulto al emerger llevase a cabo la cópula. 2 Cabe mencionar que cada especie se dispuso por separado. Fig. 5 Vasos de plástico donde se mantuvieron a los organismos en cautiverio. El acoplamiento de las parejas se efectuó de dos maneras: natural y manual. En el primer caso se colocó a solo un macho con una o dos hembras en un espacio cerrado o en una caja de cría y se observó su comportamiento para el este proceso. En el segundo se sujetaron a los organismos por las alas (plegadas), se frotaron las antenas del macho contra el abdomen de la hembra hasta que el macho excitado habría completamente las valvas del abdomen, seguidamente se juntaron por la parte posterior hasta que el macho cerró las valvas. (com. pers. Coraleño 2002) Los adultos muertos se colocaron en bolsas de papel glassine dentro de una cámara húmeda para ablandarlos y facilitar el montaje en seco; para el cual se utilizaron restiradores (Baez, 1995). Las mariposas montadas se etiquetaron y se colocaron en cajas entomológicas para ingresarlas a la colección didáctica de la FESI. 3 6 7 Figs. 6 y 7 Cajas de plástico con tapa otro dispositivo en las que se mantuvieron en cautiverio a los organismos. 4 RESULTADOS Y DISCUSION De acuerdo con la metodología, se realizó un inventario de las mariposas existentes en la FESI, con el propósito de conocer las que habitan en esta zona, sus plantas hospederas y en que mes se encontraron. (Apéndice I (Tablas 1 y 2)). Se observó que las mariposas de la familia Pieridae fueron las más frecuentes entre las cuales se halló a Phoebis philea; por tal motivo se trabajo con esta especie y se obtuvo lo siguiente: Estandarización de técnicas de cría. HUEVOS En las bolsas se concentró mas el calor; provocando con esto que se agilizara su desarrollo por un día; no obstante la humedad también aumento, lo que causó la proliferación de hongos y la muerte de algunos de los organismos. En los vasos el desarrollo de los huevos de P. philea se extedió por dos días mas de lo habitual, es decir, la duración normal en esta etapa es de 5 días, en este dispositivo duro de 6 a 7 días pero murieron menos organismos. En las cajas de petri los huevos no lograron su desarrollo y cambiaron su morfología deshidratándose. En las cajas de plástico, la maduración de estos si se completo, sin embargo, cuando las orugas eclosionaron, no se alimentaron y murieron, ya que el espacio fue muy grande en relación a su tamaño. Cabe mencionar que para el caso de M. peleides no se recolectaron organismos en esta etapa. 1 ORUGAS El cuidado de las orugas en las bolsas de plástico, fue adecuado y se mantuvieron satisfactoriamente siempre y cuando no se concentrara el calor; ya que en este caso, la humedad que se formó por la transpiración de las plantas, provoco que las orugas contrajeran algún hongo no identificado y con ello la muerte. En el caso de los vasos de plástico se puso una oruga por cada uno, ya que si se colocaban 2 o 3 organismos, solo pupaba uno de ellos. En las cajas de plástico se dispusieron de 5 a 6 orugas, las cuales se desarrollaron adecuadamente y se tuvo el cuidado de no introducir alguna de ellas con parasitodides o infectada por algún hongo o bacteria ya que podría contagiar a las demás. CRISALIDAS Cuando las orugas llegaron a esta etapa, en algunos casos hubo un cambio de coloración y deshidratación de las mismas. Para evitar esto, se retiraron y se colocaron en cajas de cría para que cuando los organismos emergieran no se escaparan. A pesar de que la muerte de las larvas fue alta en las bolsas, las que lograron pupar fue gracias a que se les colocaron dentro de las bolsas, pequeños trozos de madera para que ahí se fijaran y no quedaran adheridas al plástico ya que así al emerger los adultos no podían extender sus alas y morian. Una vez alcanzada la etapa de pupa el cuidado fue menos intensivo, bastó con sujetarlas en un sustrato (ramas o palos de madera) dentro de una caja de cría. 2 Causas de principales de muerte en los organismos Las orugas infectadas por patógenos mostraron cambios en su coloración y comportamiento, su cuerpo se volvió flácido y la cutícula se rompió generalmente por la parte ventral. Esencialmente disminuyeron su tamaño y se deshidrataron hasta su muerte. Una manifestación común fue no comer y el vómito de material. Algo similar ocurrió cuando se les molestaba y se sentían agredidas, pues arrojaron un líquido verde por la boca, considerándose esto como un mecanismo de defensa. Abundancia y etología de Phoebis philea HUEVOS Se obtuvieron 109 huevos de esta especie durante todos los muestreos en la FESI de los cuales eclosionaron el 51% (Grafica 1). Esto muestra que hay una mortandad del 49% de la población; de los huevos eclosionados solo el 29% llegaron a fase de pupa y el 20% a la fase adulta (Apéndice I (Tabla 5)). 3 PUPAS 29% ADULTOS 20% HUEVOS ECLOSIONADOS 51% Grafica 1. Porcentajes de organismos que llegaron a diferentes etapas desde los huevos recolectados. Los huevos en su mayoría fueron de color amarillo; presentaron estrías verticales y se observó que el desarrollo embrionario dentro del huevo duró 5 días después de que la hembra lo colocó. Cuando la larva iba eclosionar el huevo cambió de color pasando de amarillo a naranja. La mayor cantidad de huevos se encontró en abril con 37 seguido por el mes de septiembre con 25; en este lapso la cantidad recolectada fue de 5 a 15 huevos sobre las hospederas siendo casi igual, en los dos meses (Grafica 2, Apéndice I (Tabla 5)). 4 40 35 30 25 20 15 10 5 40 37 34 31 28 25 22 19 16 13 10 7 4 1 0 MUESTREOS Grafica 2. Abundancia de huevos de P. philea ORUGAS Al eclosionar las orugas, estas rompieron el huevo por la parte apical y salieron poco a poco por a los movimientos del cuerpo; ya afuera, buscaron las hoja y comenzaron a comer. Conforme fueron creciendo, las orugas de P. philea se alimentaron por completo de las hojas, al terminarlas emigran sobre la planta a otras hojas; sin embargo, el daño que estas provocan no es drástico ya que no consumen toda la planta, solo desfolian una parte. Sus heces fecales fueron sólidas, pequeñas, cilíndricas y de color negro. Cabe mencionar que la coloración de las orugas durante su desarrollo (constituido por 5 estadios), dependió de lo que consumieron de la planta, su coloración fue verde cuando consumían hojas, anaranjado cuando se alimentaban de flores y también fue verde cuando comian frutos e independientemente de lo que ingirieron presentaron las arrugas transversales de color negro en todo el cuerpo. Esta etapa completa duró de 5 a 6 días. 5 La abundancia de orugas fue mayor en el mes de Junio (Gráfica 3 Apéndice I (Tabla 3)). Se recolectaron 58 orugas, de las cuales solo 17.2 % llegaron a fase de crisálida y de estas solo 8 adultos emergieron, es decir el 13.7% alcanzó esta etapa desde oruga. (Grafica 4). 25 20 15 10 5 MUESTREOS Grafica 3. Abundancia de organismos en etapa de oruga de P. philea 6 40 37 34 31 28 25 22 19 16 13 10 7 4 0 1 ABUNDANCIA DE ORUGAS 30 CRISALIDAS 17.2% ADULTOS 13.7% ORUGAS 69.1% Gráfica 4. Porcentajes de organismos que llegaron a crisálidas y adultos desde las orugas recolectadas. CRISÁLIDAS En esta fase se notó que las orugas pasaron por dos procesos: prepupa y pupa. Prepupa Las orugas en esta etapa, cambiaron de color amarillo obscuro a cristalino y seleccionaron los lugares donde empezaron a pupar, se observó que prefirieron hacerlo en los tallos de la planta, tejieron un tipo de almohada a la cual se adhirieron por la parte caudal,y rodearon su cuerpo con un hilo de seda, para su protección; posterior a esto, mudaron por última vez y se transformaron en crisálida. El período de prepupa duro un día. 7 Pupa Existe un dimorfismo sexual en esta fase, los machos emergieron de las pupas de color verde, similar al de las hojas de la retama; y las crisálidas de las hembras mostraron una coloración de verde con lila. Se recolectaron 50 pupas durante los muestreos y se encontró mayor abundancia en los meses de julio y septiembre. (Gráfica 5, Apéndice I (Tabla 3)). Cabe mencionar que de estos organismos recolectados, al ser trasladados al laboratorio 40 cambiaron a color café que al tocarlas se rompieron y salió un líquido con olor desagradable, emergiendo de estas solo 10 adultos. Cabe mencionar, que de los 109 huevos solo un total de 19 organismos llegaron a esta etapa, es decir, un 29% del de las orugas eclosionadas. (Gráfica 1, Apéndice I (Tabla 5)). 5 4 3 2 MUESTREOS Grafica 5. Abundancia de organismos en etapa de crisálida de P. philea. 8 40 37 34 31 28 25 22 19 16 13 10 7 0 4 1 1 ABUNDANCIA DE CRISALIDAS 6 ADULTOS La actividad de los adultos comenzó alrededor de las 10:00 a.m. Vuelan por las áreas verdes a una altura de 2 metros en general o de la planta hospedera, y se descubrió que estas mariposas se inquietan fácilmente. Durante los muestreos se encontraron en todos los jardines de la FESI una cantidad superior de machos, mientras que la mayoría de las hembras se localizaron solo en su planta hospedera, que son los sitios óptimos de oviposición. (Grafica 6, Apéndice I (Tabla 4)). Principalmente los machos de esta especie, se persiguen entre ellos o a otras especies de mariposas. Esto fue especialmente cuando volaban sobre alguna flor o se encontraban alimentando o cortejando. Los machos buscaron a las hembras recién emergidas por lo tanto vírgenes. Para el cortejo el macho voló alrededor de la hembra, mientras ésta levanto el abdomen, desplegó ambos pares alas y comenzó a temblar, este comportamiento duró media hora repitiéndose varias veces al día hasta que ocurrió la copula. En cuanto al pie de cría, de esta especie solo se obtuvieron dos huevos, los cuales no concluyeron su desarrollo. La abundancia fue notable durante todos los muestreos, encontrando 24% del total de esta especie en sus diferentes estadios (Grafica 7 y 8). 9 36 35 34 33 32 31 30 29 28 MACHOS HEMBRAS Grafica 6. Total de adultos recolectados de P. philea. 5 4 3 2 1 MUESTREOS Grafica 7. Abundancia de organismos en la etapa de adulto de P.philea. 10 41 39 37 35 33 31 29 27 25 23 21 19 17 15 13 11 9 7 5 3 0 1 ABUNDANCIA DE ORGANISMOS 6 ADULTOS 24% HUEVOS 38% PUPAS 18% ORUGAS 20% Grafica 8. Porcentajes de las etapas de desarrollo de P. philea recolectados. La mayor abundancia de los adultos de esta especie se encontró en los meses que no se presentó precipitación (Gráfica 9) Esto es notorio ya que en la época de lluvia se incrementó el follaje en las plantas y las florescencias, por lo tanto, existió una mayor oportunidad de alimento para estas mariposas. 300 14 250 12 200 10 8 150 6 100 4 50 2 IO JU LI O AG O S SE TO PT IE M B R O E C TU B N RE O VI EM B R D E IC IE M BR EN E E R O FE BR E R O M A RZ O JU N M A R AB YO 0 IL 0 PRECIPITACIÓN (mm) ABUNDANCIA DE ADULTOS 16 ORGANISMOS PRECIPITACIÓN MESES Grafica 9. Abundancia de adultos de P. philea con respecto a la precipitación. 11 PLANTAS HOSPEDERAS Y NUTRICIAS Se conoció el genero Senna sp. para P. philea (Cruz, et. al., 2001) y se encontró que la principal planta hospedera en la FESI para especie, fue Senna didymotrya conocida como retama africana de la familia Fabacea (Fig. 8) (Martínez, 1979). Los adultos tuvieron preferencia en oviponer sobre los renuevos o en hojas tiernas de Senna didymotria, en cuanto a la alimentación de estos se observó la predilección en la floración de esta planta, ya que esta presenta recurrieron frecuentemente, fue Lantana camera (Fig. 9 y 10) conocida como asclepia (Martínez, 1979). Se les suministró alimento en el laboratorio lográndose una mezcla de agua y miel junto con frutas fermentadas guayabas, naranjas y manzanas. Fig. 7 Retama africana Senna didymotrya 12 9 10 Fig. 9 y 10 Asclepia Lantana camara 13 Abundancia y etología de Morpho peleides Durante la realización de este proyecto no se halló Morpho peleides durante los meses de diciembre del 2002, enero, febrero y marzo del 2003, esto pudo deberse a que en esa temporada se presentaron temperaturas muy bajas en la zona. La presencia de esta especie fue mas abundante durante agosto, pues se alcanzó la cifra de 26 organismos (Gráficas 10 y 11); esto coincide con la época en que las plantas hospederas tuvieron flores y hojas. HUEVOS Los huevos de M. peleides se sabe son redondos blancos de 1.5 mm (Wright, 1990, Belize Hank 99-03). Para este estudio no se obtuvieron huevos en el campo. ORUGAS Se observó que las orugas provocaron esqueletonización en las hojas, es decir, comieron el parénquima solo dejando las venaciones principales. Cuando las orugas estuvieron en los primeros estadios sobre la hoja donde se alimentaron, formaron túneles con seda y excrementos (de coloración café claro) y se introdujeron dentro de ellos. 14 8 ABUNDANCIA DE ORGANISMOS 7 6 5 4 HEMBRAS 3 MACHOS 2 1 0 MES 18 16 14 12 10 8 6 4 2 0 M AR ZO FE BR ER O EN ER O ST SE O PT IE M BR E O C TU BR E N O VI EM BR E D IC IE M BR E JU LI O AG O JU N IO M AY O AB R IL HEMBRAS MACHOS M AR ZO FE BR ER O ABUNDANCIA DE ORGANISMOS Grafica 10. Total de organismos por sexo recolectados de M. peleides en Patla. MES Grafica 11. Organismos por sexo recolectados de Morpho peleides en El Pozo. 15 CRISÁLIDAS Las pupas se encontraron en el envés de las hojas. Estas son pequeñas, de aproximadamente 3 cm color verde claro y se le puede observar las venaciones de las alas dobladas. Cuando los adultos no emergieron y muerieron las pupas, cambiaron de coloración a café obscuro. ADULTOS Los adultos en su ambiente natural, comenzaron su actividad visible aproximadamente a las 9:00 a.m. (Horario Invierno),y no se les encontró cuando estaba nublado o había neblina. En campo su vuelo fue lento, a una altura de 1 a 2 metros y se observó que siguieron una misma trayectoria en intervalos de 5 a 10 minutos aproximadamente. Cuando se les perturbó el vuelo fue más rápido y a mayor altura. Hay que señalar que en el momento de huir, trazaron nuevas vías y que las mariposas que posterioremente pasaban continuaron éstas, probablemente se deba a un rastro de olor dejado por las precedentes. En cautiverio vivieron de 2 a 6 días y durante este periodo no se llevó a cabo la copulación. Los adultos fueron mas abundantes en El Pozo (Gráficas 10 y 11, Apéndice I (Tablas 6 y 7)). En ambas zonas, tanto en El Pozo como en Patla, se encontró una cantidad mayor de hembras; 59% con relación a los machos y principalmente en El Pozo se recolectaron más en comparación a Patla (Graficas 13 y 14. Apéndice I (Tablas 6 y 7)). Los meses en que se presentó un incremento de la precipitación fueron junio a julio y un decremento notable se dio en agosto que fue el mes en el que se recolectaron más mariposas de esta especie. Septiembre fue en el que hubo mayor precipitación y se tuvo una cantidad similar de organismos que en mayo que fue cuando empezaron a incrementar las lluvias. 16 900 800 25 700 20 600 500 15 400 10 300 200 5 PRECIPITACIÓN (mm) ABUNDANCIA DE ORGANISMOS 30 100 0 FE BR ER M O AR ZO AB R IL M AY O JU N IO JU L A I SE GO O PT ST IE O M O BR C E N TU O B VI R E E D MB IC R E IE M BR EN E FE ER BR O ER M O AR ZO 0 MESES ABUNDANCIA DE ORGANISMOS PRECIPITACION (m m ) Grafica 12. Abundancia de mariposas de M. peleides con respecto a la precipitación del año de colecta. 44% HEMBRAS MACHOS 56% Grafica 13. Porcentaje por sexo de M. peleides en El Pozo. 17 MACHOS 34% HEMBRAS 66% Grafica 14. Porcentajes por sexo de M. peleides en Patla. PLANTAS HOSPEDERAS Y NUTRICIAS Su hospedera fue una leguminosa conocida en la zona como “pica pica”, (Mucuna pruriens); (Martínez, 1979), es una planta trepadora con hojas pinadas (compuestas), su flor es blanquecina con azul pálido, su fruto es de tipo seco deshiscente común en la familia Fabacea (Tejero, 1998), tiene forma de vaina, y poseen muchos pelitos sumamente urticantes que llegan a causar comezón e inflamación en el humano. Sin embargo, otros autores mencionan a Baliña divarida, B. Jenningsii (Cruz et. al. 2001) Pterocurpus hayesii (Wright 1990) Arachis hypogaca, Mucuna urens, y Macharom seemanii (De la Maza, 1978), como las plantas hospederas de esta mariposa. Cabe mencionar que todas estas plantas son leguminosas. La alimentación de los adultos, en campo fue a base de Impatiens balsamina conocida como belén y pertenecen a la Familia Balsaminaceae (Martínez, 1979). Esta flores son abundantes en la zona donde se muestreo y también se alimentaron de las florecencias de M. pruriens (Fig. 11). Ninguna de ambas plantas se ha reportadocomo alimento para esta mariposa. 18 Fig. 11 Impatiens balsamina (Belén) planta nutricia de Morpho peleides. También se utilizaron los frutos en proceso de descomposición y fermentados para su captura, las mariposas se acercaron a alimentarse a los cebos de piña y plátano con cerveza que fueron utilizados en las trampas Van Someren-Rydon, sin embargo, ninguno de estos organismos fueron recolectados por este método. Los lugareños comentaron la preferencia de esta mariposa por la naranja y se confirmo ya que en cautiverio se le alimento de este fruto encontrando mayor preferencia que a los cebos antes mencionados (Fig. 12). Fig. 12 Morpho peleides alimentándose de fruta en descomposición. 19 CONCLUSIONES Dentro de las técnicas que se utilizaron en este estudio, para el cultivo de Phoebis philea y Morpho peleides, los vasos de plástico fueron el mejor dispositivo para el cuidado de huevos y larvas. En el caso de las pupas el mejor dispositivo fue la caja de cría en donde después pudieron emerger como adultos y además se reprodujeron. De ambas especies la mas factible para mantenerse en cautiverio fue Phoebis philea debido a la aclimatación que ya presentan en la zona; la falta de humedad y sombra evitaron el desarrollo adecuado de Morpho peleides. El ciclo biológico de P. philea tuvo una duración de entre 20 y 22 días, en total. Los huevos eclosionaron de 5 a 6 días, las orugas presentaron 5 estadios. En la fase de crisálida se notó que manifiestan dos períodos, el de prepupa y el de pupa, toda la fase duró de 5 a 6 días. Se recolectaron 108 larvas, 50 pupas y 67 adultos para formar el pie de cría. Se observó un dimorfismo sexual durante el período de crisálida y finalmente la etapa de adulto duró de 5 a 6 días. No se logro obtener el ciclo de vida para Morpho peleides, sin embargo, se observó la conducta de las orugas y se conoció el comportamiento de los adultos en campo. Las mejores condiciones para la copulación de Phoebis philea; fueron que la hembra tuviera máximo 24 horas de haber emergido y el macho más de un día. La planta hospedera de P. philea fue Senna didymotrya y la nutricia fue la Lantana camera. La forma optima de alimentarlas en laboratorio fue agua con miel o fermentos de frutas. La planta hospedera de M. peleides fue Mucuna pruriens y la nutricia Impatiens balsamina. los mejores cebos en campo fueron de frutas 1 fermentadas y cerveza con los que se alimnetaron en el laboratorio. 2 LITERATURA CITADA Báez, I. 1995. Equipo para colectar y montar mariposas diurnas. Dugesiana 2:2 Belize Hank. 1999-2003. 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Nymphalis antiopa L. Cyntia virginiensis Dru. Pterourus multicaudata Kirby. Pterourus garamas Hbn. Rothsahilddea orizaba Ascalapha odorata Linnaeus. Dione moneta poeyii Catocala amatrix Linnaeus. Drudula phaestosa L. Hepialus sp. MESES Julio-Febrero Julio-Febrero Julio-Febrero Julio –Enero Septiembre Julio-Febrero Julio-Diciembre Julio Septiembre-Noviembre Agosto Septiembre Septiembre Julio Tabla 2 Meses en los que se encontraron los organismos en la FES-I. 1 FECHA ABRIL-AGOSTO SEPTIEMBRENOVIEMBRE ENERO-MARZO HUEVOS ORUGAS 75 34 17 30 3 7 109 58 PUPAS ADULTOS 20 36 24 6 50 22 9 67 Tabla 3. Total de organismos colectados de Phoebis philea durante el tiempo de muestreo FECHA ABRIL-AGOSTO SEPTIEMBRE-NOVIEMBRE ENERO-MARZO MACHO 22 8 6 36 HEMBRA 14 16 1 31 TOTAL 36 24 7 67 Tabla 4. Numero total de organismos adultos colectados de Phoebis philea. MUESTREO 1º 3º 4º 7º 10º 11º 16º 17º 19º 23º 29º 31º 32º 41º HUEVOS 37 2 5 6 15 6 2 2 4 25 1 1 1 2 ECLOSIONADOS 6 1 2 4 7 6 2 2 4 13 1 1 1 1 1º 6 1 2 4 7 4 6 2 4 4 1 1 1 1 2 2 1 2 4 5 4 6 2 3º 4º 5º PUPA ADULTO 3 5 4 6 5 4 6 5 4 6 5 4 6 4 4 6 4 4 4 4 4 4 1 Tabla 5. Seguimiento de organismos de Phoebis philea desde huevo a adulto. 2 MES MACHOS HEMBRAS TOTAL FEBRERO 0 0 0 MARZO 0 0 0 ABRIL 0 1 3 MAYO 1 2 3 JUNIO 1 1 2 JULIO 1 3 4 AGOSTO 3 5 8 SEPTIEMBRE 3 4 7 OCTUBRE 0 3 3 NOVIEMRE 0 2 2 DICIEMBRE 2 0 2 ENERO 0 0 0 FEBRERO 0 0 0 MARZO 0 0 0 Tabla 6. Cantidad de Morpho peleides recolectadas en la zona de muestreo Patla. MES FEBRERO MARZO ABRIL MAYO JUNIO JULIO AGOSTO SEPTIEMBRE OCTUBRE NOVIEMBRE DICIEMBRE ENERO FEBRERO MARZO MACHOS 0 2 1 2 1 3 7 2 3 2 0 0 0 0 HEMBRAS 0 3 1 4 2 1 11 2 1 2 2 0 0 0 Tabla 7. Total de Morpho peleides en la zona de El Pozo. 3 TOTAL 0 5 2 6 3 4 18 4 4 4 2 0 0 0