UVM México Escuela de Ciencias de la Salud | Vicerrectoría Ciencias de la Salud ______________________________ Dirección Nacional de Tecnologías Educativas en Salud Manual de prácticas Institucionales de la Escuela de Ciencias de la Salud — 2017 — Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 1 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Formato Institucional de Prácticas Explícitas de Fundamentos Biológicos -----BIOLOGÍA CELULAR----- Elaboró Dra. Yara Y. Mejía Alcantar Dr. José D artagnan Villalba M. Contacto: Ext. Cargo/Grado: Docente de asignatura Campus: Zapopan/Ch Fecha: 13 de Enero de 2017 Revisó (validó): Comité Nacional de Validación de Practicarios de QFBT Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 2 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Aviso Legal ® Todos los Derechos Reservados Universidad del Valle de México. 2017. Todos los derechos reservados. Teléfono: Lada internacional 52, lada nacional 01, número 55 9138 5000. © Copyright Derechos de Propiedad Intelectual. La Universidad del Valle de México (UVM), es el titular de todos los derechos de autor del contenido textual y gráfico de todos los documentos en este sitio, mismo que se encuentra protegido por las leyes de Derechos de Autor y demás leyes relativas internacionales y de los Estados Unidos Mexicanos. Está prohibido copiar, transmitir, retransmitir, transcribir, almacenar, alterar o reproducir por cualquier medio electrónico o mecánico el contenido del sitio, sin permiso por escrito por parte del UVM. "Queda prohibida la reproducción total o parcial de este material por cualquier medio sin el previo y expreso consentimiento por escrito de la Universidad del Valle de México". Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 3 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Presentación Escuela de Ciencias de la Salud ASIGNATURA: Lic. en QFBT BIOLOGÍA CELULAR CLAVE: 562938 CRÉDITOS TOTALES: 10 HORAS TOTALES 8 TIPO DE CICLO: SEMESTRAL CICLO: CUARTO SEMESTRE HORAS CON DOCENTE 4 HORAS DE PRÁCTICA 4 HORAS DE APRENDIZAJE INDEPENDIENTE 0 ÁREA CURRICULAR: Fundamentos biológicos Observaciones: Aspectos Curriculares 1.- OBJETIVO GENERAL DE LA ASIGNATURA: El estudiante adquirirá los conocimientos de los procesos biológicos a nivel celular, aplicando el conocimiento adquirido de las técnicas microscópicas. 2.- OBJETIVO, PROPÓSITO O COMPETENCIA VINCULADA A LA PRÁCTICA: Conocer y emplear adecuadamente la terminología básica de la Biología Celular. Identificar la estructura de células procariontes diferenciándola de la estructura de células eucariontes. Identificar y diferenciar la célula vegetal de la célula animal, reconociendo los principales componentes macromoleculares de cada tipo celular. Apreciar y ser consciente de la evolución de la metodología para el desarrollo de la biología celular. Dilucidar el origen de la vida a partir de un ambiente primitivo, así como la evolución de las especies. Conocer el uso de los principales instrumentos como el microscopio en el estudio de la célula. Comprender y razonar adecuadamente las propiedades bioquímicas y fisiológicas de los organelos celulares. Comprender los procesos bioquímicos y fisiológicos a nivel celular que se realizan día a día en los seres vivos. Desarrollar los conocimientos adquiridos que capaciten al alumno para realizar investigaciones innovadoras a nivel celular, que lleven a resolver diversas patologías que afecta al ser humano en la actualidad. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 4 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Competencias transversales genéricas Capacidad de análisis y síntesis Capacidad de organizar y planificar Capacidad de aprender Adquisición de conocimientos Capacidad de adaptación a nuevas situaciones Habilidades para trabajar en equipo Capacidad de generar nuevas ideas Inquietud por la calidad Conocimiento de la terminología básica de la Biología Celular Competencias específicas Saber: 1. Véase contenidos de la asignatura 2. Fundamentos de las técnicas microscópicas de investigación estructural 3. Estudio estructural y funcional de los organelos celulares 4. Capacidad de plantear metodologías para el estudio de la célula Saber hacer: 1. Aplicación de las técnicas microscópicas a la investigación celular 2. Capacidad para exponer trabajos científicos 3. Capacidad de manejo de modelos celulares y moleculares. Ser: 1. Capacidad de utilización y reconocimiento del método científico 2. Capacidad y habilidad para investigar el desarrollo de diversas patologías. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 5 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud 3.- CONTENIDOS: Práctica 1. Administración de riesgos biológicos y seguridad en el laboratorio…………….5 Práctica 2. Reconocimiento y uso del Microscopio distinguiendo células procariontes de eucariontes…………………………………………………………………………………………………...9 Práctica 3. Formación de coacervados…………………………………………………………………..12 Práctica 4. Célula animal y célula vegetal……………………………………………………………….15 Práctica 5. Cromatografía de pigmentos verdes……………………………………………………..…17 Práctica 6. Preparación de solución amortiguadora (PBS)……………………………………………19 Práctica 7. Fraccionamientro celular……………………………………………………………………..21 Práctica 8. Permeabilidad membranal…………………………………………………………………...24 Práctica 9. Transporte a través de la membrana……………………………………………………….27 Práctica 10. Identificación de carbohidratos…………………………………………………………….31 Práctica 11. Difusión……………………………………………………………………………………….34 Práctica 12. Osmosis en eritrocitos y células vegetales……………………………………………….36 Práctica 13. Observación de cloroplastos……………………………………………………………….38 Práctica 14. Determinación del contenido de clorofila en una suspensión de cloroplastos………..40 Práctica 15. Actividad respiratoria en mitocondria………………………………………………...……43 Práctica 16. División celular……………………………………………………………………………….46 Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 6 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 1 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 1. Introducción al estudio de la célula Nombre de la Práctica ADMINISTRACIÓN DE RIESGOS BIOLÓGICOS Y SEGURIDAD EN EL LABORATORIO Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Conocer el uso y manejo de sustancias peligrosas b) Identificar los riesgos en el laboratorio c) Simular eventos de riesgos d) Tomar decisiones ante el daño e) Aplicar la NOM para el manejo de RPBI Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 1 Caja Petri 1 Asa de siembra 1 Autoclave 1 Vidrio de reloj 1 Espátula 1 Balanza analítica 1 Vaso de precipitados de 250 ml 1 Bolsa roja para RPBI 1 Bolsa amarilla 1 Recipiente hermético rojo 1 Recipiente hermético amarillo 1 Contenedor rígido rojo 1 Mechero Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: Equipo de protección personal Reglamento de seguridad del laboratorio Pictogramas y señalizaciones en el laboratorio Sustancias: Cultivos bacterianos Cloro Alcohol Algodón Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido Identificación de instalaciones del laboratorio 1. Identificar los sistemas de ventilación y los servicios generales del laboratorio. 2. Identifique y enliste los dispositivos de seguridad con los que cuenta el laboratorio. PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación Simulación de manejo y exposición a sustancias peligrosas 3. En grupos de trabajo, realizar la lectura y análisis del material asignado y exponerlo en un período máximo de cinco minutos: a. Discutir las normas generales de seguridad e Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 7 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada higiene para cualquier laboratorio y aquellas que se aplican especialmente en el área biológica. b. Ubicar las zonas de seguridad y controles maestros de suministro de servicios. c. Establecer la utilidad de los desinfectantes, antisépticos y sanitizantes en el laboratorio. d. Simular los procedimientos a seguir en caso de accidente biológico relacionado a cultivo con agentes infecto contagiosos, describir y desechar acorde a la norma. Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Guía de observación para evaluar el cumplimiento de los Reglamentos y NOM Teoría Observación del evaluador Reconoce cuales son las NOM Identifica cuántos tipos de accidentes biológicos están descritos en la NOM Instalaciones Identifica la salida de emergencia Identifica la regadera a presión Identifica el sistema de lava ojos Identifica correctamente el color de las tuberías y sus servicios Identifica la llave maestra para suministro de gas Identifica el botiquín Ubica el directorio para emergencias Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 8 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Identifica el extintor Alumno Bata limpia y abotonada Uso de cubre bocas Uso de lentes de seguridad Zapato cerrado y de piel Cabello recogido Sin joyería Uñas cortas y sin esmalte Uso de guantes Área de trabajo Limpieza del área de trabajo antes de iniciar Orden del área de trabajo Mantuvo encendido el mechero en todo momento Selección adecuada de las condiciones de presión y temperatura para esterilización Esterilización del material contaminado Depósito adecuado de los desechos (residuos biológicos) Entrega adecuada del material Limpieza del área de trabajo al finalizar Se utilizó la bitácora para registrar el accidente de trabajo - Marcar x cuando no se cumpla la acción - Marcar ٧ cuando se cumpla la acción Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar el reglamento de UVM, uso de laboratorios b) Investigar la Norma Oficial Mexicana NOM-087-ECOL-SSA1-2002 c) Investigar equipos de protección personal en el laboratorio d) Investigar qué son las buenas prácticas de laboratorio e) Investigar y clasificar los RPBI’s f) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) Explicar qué equipo de protección personal utilizar en el manejo de cepas de agentes biológicoinfecciosos b) ¿Qué norma se debe de aplicar en el desecho de sangre? c) ¿Qué acción tomar cuando ocurre una punción accidentada y explicar por qué? d) Las muestras patológicas a qué tipo de residuos pertenecen y ¿cómo se desechan? e) ¿Qué tipos de residuos deben desecharse en bolsas o recipientes de color rojo y ¿cuál es su tratamiento?. Menciona un ejemplo f) La cristalería contaminada con RPBI, ¿cómo se debe de limpiar? Método de Evaluación De la Práctica Del Aprendizaje Independiente Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 9 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Examen rápido sobre la investigación previa Referencias y Bibliografía Recomendada http://www.salud.gob.mx/unidades/cdi/nom/087ecolssa.html NOM-017-STPS-2008, Equipo de protección personal-Selección, uso y manejo en los centros de trabajo NOM-026-STPS-1998, Colores y señales de seguridad e higiene-Identificación de riesgos por fluidos conducidos en tuberías. NOM-052-SEMARNAT-2005, Que establece las características, el procedimiento de identificación, clasificación y los listados de los residuos peligrosos. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 10 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 2 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 1. Introducción al estudio de la célula, 2. Métodos de estudio de la célula Nombre de la Práctica RECONOCIMIENTO Y USO DEL MICROSCOPIO, DISTINGUIENDO CÉLULAS PROCARIONTES DE EUCARIONTES Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: f) Conocer el uso y manejo del microscopio. g) Identificar las partes del microscopio y sus funciones h) Aplicar una buena iluminación para una observación correcta i) Observar las características estructurales de las células procariontes y eucariontes. j) Diferenciar entre células procariontes y eucariontes Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 1 Portaobjetos 1 Cubreobjetos 2 Bulbos para pipeta pasteur 1 Laminillas de cortes histológicos 2 Pipetas pasteur 2 Palillos o hisopos 1 Mechero bunsen 2 Papel seda Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: 4 Microscopios compuestos Sustancias: Aceite de inmersión Agua estancada Cristal violeta Lugol Alcohol o acetona Safranina Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido 1. Observar e identificar las partes del microscopio, realizar un diagrama y sus partes en la bitácora de trabajo PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los 3. Adicionar cristal violeta cubriendo toda la muestra, dejar 1 min. Lavar con el chorro de agua o con piseta para eliminar el exceso de colorante. 2. En una gota de agua sobre el portaobjetos, colocar la muestra, fijar con calor (mechero), hasta secar la gota de agua. 4. Agregar lugol hasta cubrir la muestra, después de 1 min., lavar. 5. Colocar el alcohol durante 15 o 30 segundos, inmediatamente después lavar con agua corriente 6. Agregar safranina dejar 1 min y lavar. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 11 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada 7. Cubrir y observar con el objetivo seco 10X para enfocar 8. Describir la forma de las bacterias y el color que se observa en las preparaciones. 9. En un portaobjetos limpio, colocar una gota de agua encharcada en el portaobjetos y cubrir. 10. Observar al microscopio. EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 11. Realizar anotaciones en la bitácora de trabajo. Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar el concepto de microscopia b) Investigar y enlistar las partes del microscopio óptico c) Investigar la función de cada una de las partes del microscopio d) Investigar los conceptos de amplificación y resolución e) Investigar y enlistar las características principales de las células procariontes y eucariontes f) Definir los términos de organismo autótrofo y heterótrofo. g) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) Explicar los tres sistemas del microscopio óptico b) ¿Qué es la iluminación de Köhler? c) ¿Cómo se define la apertura numérica? d) Indicar las características de lo observado en el microscopio. e) ¿Qué observaste de diferencia con los diversos objetivos del microscopio? f) Menciona las diferencias existentes entre un organismo procarionte y un organismo eucarionte g) Ingresar al link: https://www.educaplay.com/es/recursoseducativos/2698084/microscopio.htm y realizar el ejercicio, completando las partes del microscopio, al finalizar realizar captura de pantalla, integrando la imagen en el reporte de práctica. Método de Evaluación De la Práctica Del Aprendizaje Independiente Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 12 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Examen rápido sobre la investigación previa Referencias y Bibliografía Recomendada http://www.olympusmicro.com http://www.microscopyU.com http://www.facmed.unam.mx/deptos/biocetis/atlas2013A/tomo1.html http://www.ciens.ucv.ve:8080/generador/sites/labbiolvegetal/archivos/1%20El%20Microscopio.pdf Gerald Karp. 2014. Biología Celular y Molecular, Conceptos y experimentos, 6a Ed. Mc Graw-Hill. Alberts B. y Col 2011. Introducción a la Biología Celular, Editorial Médica Panamericana. Tercera Edición. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 13 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 3 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 1.Introducción al estudio de la célula Nombre de la Práctica FORMACIÓN DE COACERVADOS Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Conocer las condiciones que promueven la formación y disgregación de un modelo de cisterna prebiótico; los coacervados. b) Propiciar el interés por las demostraciones experimentales acerca del origen de la vida Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 3 Portaobjetos 3 Cubreobjetos 2 Tubo de ensaye 2 Pipetas de 5 ml 2 Bulbos para pipeta pasteur 2 Pipetas pasteur 2 Papel seda 1 Baño María Tiras indicadoras de pH Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: 4 Microscopio compuesto Sustancias: 2.5 ml Grenetina al 5% 1.5 ml Goma arábiga al 4% 5 ml Ácido clorhídrico (HCl) 0.1 M Agua destilada Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido 1. Preparar 2.5 ml de Grenetina al 5% y 1.5 ml de Goma arábiga al 4%, en baño maría (37°C). Medir el pH de las soluciones. PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los 2. Preparar 5 ml de HCl al 0.1 M. 3. Mezclar ambas soluciones suavemente y medir pH 4. Montar una gota de la mezcla en un portaobjetos. Cubrir la preparación y observar al microscopio con los objetivos 10X y 40X 5. Adicionar gota a gota (no exceder de 3 gotas) el HCl 0.1M a la mezcla hasta que se enturbie agitando suavemente. 6. Montar otro portaobjetos con una gota de la mezcla. Cubrir la preparación y observar al microscopio con los Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 14 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 objetivos 10X y 40X hasta localizar los coacervados. 7. Dibujar y describir lo observado en la bitácora de trabajo, si no identifica los coacervados repetir el procedimiento desde el principio añadiendo lentamente el HCl. 8. Adicionar HCl hasta que la solución se aclare nuevamente, medir pH y observar al microscopio. Registrar las observaciones y dibujos en la bitácora de trabajo. Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar y explicar que son los coacervados b) Investigar las condiciones de la atmósfera primitiva de la Tierra, las cuales pudieron contribuir a la formación de compuestos orgánicos. c) Investigar las reacciones de síntesis mediante las cuales pudieron formarse los compuestos necesarios para que se originara la vida. d) Describe los experimentos que producen algunas de las reacciones anteriores e) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) ¿Cuál fue el pH inicial de las soluciones utilizadas? b) De qué forma influye el HCl en la formación de coacervados. c) ¿Qué observaste de diferencia con los diversos objetivos del microscopio? Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 15 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Referencias y Bibliografía Recomendada http://www.comoves.unam.mx/assets/revista/23/la-vida-se-origino-en-la-tierra.pdf http://www.ejournal.unam.mx/cns/espno01/CNSE0103.pdf http://www.ejournal.unam.mx/cns/no94/CNS094000007.pdf https://www.youtube.com/watch?v=KAxOi10kapg Jiménez L. F. y Col. 2003. Biología Celular y Molecular, Prentice Hall. Solomon, P., E., Berg, R., L., y Martín, W., D., 2001 Biología. McGraw-Hill, Quinta Edición Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 16 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 4 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 1. Introducción al estudio de la célula Nombre de la Práctica CELULA ANIMAL Y CËLULA VEGETAL Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Distinguir e identificar las diferencias estructurales entre células animales y vegetales. b) Identificar los organelos que conforman a los dos tipos celulares c) Aplicar una buena iluminación para una observación correcta Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 3 Portaobjetos 3 Cubreobjetos 2 Bulbos para pipeta Pasteur 2 Pipetas Pasteur o gotero 1 Caja de petri 1 Pinzas 1 Hisopo o palillo de dientes 2 Papel absorbente Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: 4 Microscopios ópticos Sustancias: Aceite de inmersión Solución de lugol Solución de azul de metileno 1 Cebolla (por grupo) Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido 1. Colocar una gota de agua destilada en el portaobjetos, desprender con unas pinzas la epidermis de la superficie cóncava de una capa de la cebolla (transparente), extender con los palillos cualquier doblez sin romperla. Cubrir sin ejercer presión. PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 2. Observar al microscopio con los objetivos 4X, 10X, 40X y 100X. Dibujar y realizar anotaciones en la bitácora de trabajo. 3. Repetir el paso 1 y 2, con una gota de azul de metileno en lugar de agua. 4. Repetir el paso 1 y 2, con una gota de lugol en lugar de agua. 5. Colocar una gota de agua destilada en el portaobjetos, frotar suavemente el interior de su mejilla con un palillo de dientes o hisopo. No frotar hacia atrás y hacia adelante, sino en una sola dirección, separando el palillo después de cada movimiento (nota: aunque no se vea material en el palillo se habrán colectado muchas células). Colocar el Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 17 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 hisopo en la gota de agua. Cubrir sin ejercer presión. 6. Observar al microscopio con los objetivos 4X, 10X, 40X y 100X. Dibujar y realizar anotaciones en la bitácora de trabajo. 7. Repetir el paso 5 y 6, con una gota de azul de metileno en lugar de agua. 8. Repetir el paso 5 y 6, con una gota de lugol en lugar de agua. . Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar el uso de colorantes en preparaciones celulares b) Investigar y describir las características de la pared celular, en qué tipo de célula se presenta c) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) Explique en cuál de las preparaciones se observan más detalles de la estructura celular b) Indicar como se distingue el citoplasma de las vacuolas celulares. c) ¿Por qué la pared celular es más fácil de observar en comparación con los organelos de la célula? Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Referencias y Bibliografía Recomendada http://portalacademico.cch.unam.mx/alumno/biologia1/unidad1/estructuraseucariotas/animalesvegetales Jiménez L. F. y Col. 2003. Biología Celular y Molecular, Prentice Hall. Solomon, P., E., Berg, R., L., y Martín, W., D., 2001 Biología. McGraw-Hill, Quinta Edición Lodish H. y Col. 2005 Biología Celular y Molecular Editorial Medica Panamericana, Quinta Edición Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 18 UVM México Práctica Número: Escuela de Ciencias de la Salud Duración (mins/horas): 5 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 2. Métodos de estudio de la célula Nombre de la Práctica CROMATOGRAFÍA DE PIGMENTOS VERDES Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Conocer el fundamento o bases de la cromatografía b) Identificar los colores de los cuales están compuestos las hojas c) Conocer qué moléculas hacen las hojas de color verde Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 1 Mortero 1 Tijeras 1 Embudo con papel filtro 1 Tubo de ensayo 1 Gradilla 1 Tira de papel cromatográfico Wathman (papel filtro) 2 Capilar o micropipeta 2 Caja de petri o vaso de precipitados Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: Sustancias: 10 ml Éter etílico 20 ml Alcohol metílico puro (vapor tóxico) Espinacas u hojas verdes Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido 1. Macerar las hojas de espinaca sin nervaduras en el mortero con 10 ml de éter hasta obtener una solución verde oscuro. Pasar la solución a un tubo y rotular. PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 2. Cortar un trozo de papel filtro de 8 cm de ancho x 10 cm de largo. Dibujar una línea tenue a lo ancho del papel ( a 2 cm del final del papel) 3. Agregar 5 gotas de la solución del extracto sobre la línea, esperar a que se seque y repetir una vez más. 4. Colocar en una caja petri o vaso de precipitado el metanol (suficiente para que el papel se moje hasta antes de la línea donde se aplicó la muestra) 5. Colocar el papel, esperar 30 minutos y observar. Dibujar y describir los resultados en la bitácora de trabajo. Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 19 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar los organelos abundantes en un tejido vegetal verde y los pigmentos que contienen b) Investigar y describir que son los pigmentos vegetales, cuál es su estructura y función c) Investigar que es un solvente orgánico d) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) Describir la solubilidad en alcohol de los pigmentos carotenos, clorofila b y xantofila, de mayor a menor. b) Indicar que pigmento corresponde a las bandas obtenidas c) ¿Por qué se utiliza el éter etílico para extraer la clorofila? Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Referencias y Bibliografía Recomendada http://blafar.blogia.com/2007/040901-los-pigmentos-vegetales.php http://ies.mariasarmiento.climantica.org/files/2011/12/imaxen7.pdf Gerald Karp. 2014. Biología Celular y Molecular, Conceptos y experimentos, 6a Ed. Mc Graw-Hill. Alberts B. y Col 2011. Introducción a la Biología Celular, Editorial Médica Panamericana. Tercera Edición. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 20 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 6 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 2.Métodos de estudio de la célula Nombre de la Práctica PREPARACION DE SOLUCIÓN AMORTIGUADORA (PBS) Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Conocer el uso y manejo de soluciones amortiguadoras. b) Identificar los efectos de las soluciones amortiguadoras en la integridad celular c) Aplicar en procesos celulares experimentales en investigación. Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 2 Espátula 1 Vaso de precipitados de 600 ml 2 Matraz aforado de 500 ml 1 Agitador magnético 2 Frascos con tapa de 500 ml Bitácora de trabajo Equipo: 1 Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Báscula analítica Sustancias: 20 ml Ácido clorhídrico HCl 1M 20 ml Hidróxido de sodio NaOH 10M Buffer de fosfatos 4.03 g Cloruro de sodio NaCl 0.11 g Cloruro de potasio KCl 0.575gr Fosfato monobásico de sodio Na2HPO4 0.10g Fosfato bibásico de potasio KH2PO4 500 ml Agua destilada Buffer de fosfatos 0.35 M 5.1 g NaCl 250 ml Buffer de fosfatos Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido 1. Preparar el material para pesar en la báscula analítica PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 4. Colocar el vaso sobre la plancha de agitación (solo utilizar la agitación) hasta diluir las sales. 2. Pesar las sustancias por separado 3. Añadir poco a poco 400ml de agua destilada, colocar el agitador magnético. 5. Ajustar el pH a 7.4 con HCl o NaOH (según sea necesario). 6. Aforar la solución a 500ml en el matraz. 7. Ya que se tiene los 500ml de la solución de fosfatos, Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 21 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 pesar la cantidad de NaCl y repetir los pasos del 3 al 6 (aforando a 250ml). 8. Rotular la solución con el nombre de la solución, fecha de preparación, grupo y profesor responsable. 9. Conservar para la práctica de fraccionamiento celular, a temperatura ambiente o en refrigeración a 4 u 8°C. Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar el significado de las siglas PBS b) Investigar y describe cuales son los tipos de soluciones que hay dependiendo de la concentración de los solutos c) Investigar cada compuesto NaCl, KCl, NaHPO4, KH2PO4, describir porqué es importante la preparación de este tipo de soluciones en la investigación biológica. d) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) Explicar por qué se utilizan soluciones amortiguadoras para fraccionar una célula b) Indicar qué función tiene el NaCl en el fraccionamiento celular. Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 22 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Referencias y Bibliografía Recomendada http://users.df.uba.ar/catalina/TBM/TBM_labo1.pdf http://www.protocolsonline.com/recipes/phosphate-buffered-saline-pbs/ Lodish H. y Col. 2005 Biología Celular y Molecular Editorial Medica Panamericana, Quinta Edición. Gerald Karp. 2014. Biología Celular y Molecular, Conceptos y experimentos, 6a Ed. Mc Graw-Hill. Alberts B. y Col 2011. Introducción a la Biología Celular, Editorial Médica Panamericana. Tercera Edición. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 23 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 7 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 2. Métodos de estudio de la célula Nombre de la Práctica FRACCIONAMIENTO CELULAR Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Aplicar la técnica de centrifugación para realizar el fraccionamiento celular. b) Identificar los organelos fraccionados por centrifugación diferencial c) Aplicar una buena iluminación para una observación correcta Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 1 Charola de plástico 7 tubos de ensaye 3 Bulbos para pipeta Pasteur 1 Pipeta graduada de 5 ml 5 Pipetas Pasteur 2 Vasos de precipitados de 50 ml 1 Vaso de precipitados de 250 ml 1 Mortero Gasas Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: 1 Balanza granataria 1 Centrífuga 2 Microscopio óptico Sustancias: 40 ml NaCl 0.35 M en solución amortiguadora de fosfatos 20 g Hojas de espinacas Hielo Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido 1. Trabajar en frío, pesar 20 g de hojas de espinaca, lavadas, secas y sin nervadura, macerar en el mortero durante 5 a 10 minutos con 40 ml de la solución de NaCl 0.35 M. PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 2. Pasar el molido por 8 capas de gasas, tomar una muestra de 1 ml del colado y colocarla en un tubo de ensayo marcado como colado, mantenerlo en frío. 3. Repartir el colado en 2 o 4 tubos de plástico de 15 ml. 4. Centrifugar a 1000 rpm durante 2 min. Decantar en un vaso de precipitado el sobrenadante, mantenerlo en frío. Tomar una muestra de 1 ml y colocarla en un tubo marcado como primer sobrenadante 5. Resuspender con 1 ml de medio con la pipeta pasteur todos los precipitados (al final el volumen será de 3 ml aprox). Verter a un tubo de ensaye y marcar como primer precipitado, mantener en frío. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 24 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. 6. Repartir el sobrenadante en 2 o 4 tubos de plástico, ajustar el volumen de centrifugación con medio de aislamiento. Centrifugar a 2500 rpm por 10 min. 7. Decantar el sobrenadante en un vaso de precipitado, mantener en frío, tomar 1 ml del sobrenadante y marcarlo como segundo sobrenadante, continuar en frío. 8. Resuspender los precipitados como se hizo en el evento anterior, y los 3 ml marcarlos como segundo precipitado, mantener en frío. 9. Centrifugar el resto del sobrenadante en 2 o 4 tubos de plástico a 5000 rpm por 15 min. 10. Decantar el sobrenadante igual que en los pasos anteriores, marcar como tercer precipitado, conservar en frío. 11. Observar al microscopio, cada una de las muestras obtenidas, establecer de manera arbitraria el tamaño de las estructiuras. Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar y definir fraccionamiento celular b) Investigar cómo se pueden separar los componentes de una célula c) Investigar la centrifugación diferencial d) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) Explicar ¿por qué se pueden separar los componentes subcelulares?. b) Indicar ¿qué objetivos utilizar para los diferentes componentes subcelulares?. c) ¿Qué observaste de diferencia con los diversos objetivos del microscopio? Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 25 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Referencias y Bibliografía Recomendada http://novella.mhhe.com/sites/dl/free/000001171x/1040126/Karp_7a_18_TECNICAS_BIOLOGIA_MOLECULAR.pdf Alberts B. y Col 2011. Introducción a la Biología Celular, Editorial Médica Panamericana. Tercera Edición. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 26 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 8 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 3. Membrana celular Nombre de la Práctica PERMEABILIDAD MEMBRANAL Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: d) Conocer la función de la membrana celular. e) Identificar el fenómeno de la permeabilidad en una membrana artificial Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 1 Vaso de precipitados de 500 ml 1 Portaobjetos 1 Cubreobjetos 2 Bulbos para pipeta Pasteur 1 Vidrio de reloj 3 Pipetas Pasteur 1 Varilla de vidrio 1 Regla graduada en cm 1 Tijeras 1 Vaso de precipitados de 2 L 1 Parrilla de calentamiento Papel seda Papel celofán Hilo Etiquetas adheribles Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: 4 Microscopio compuesto Sustancias: 2 ml 2 ml 15 ml Fenolftaleína Lugol Solución de almidón en Hidróxido de amonio Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido 1. Colocar 2 L de agua de la llave en un vaso de precipitados, adicionar en él un cuadro de papel celofán de 20 x 20 cm. Hervir 15 minutos, sacar y dejar enfriar. PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 2. Unir las orillas del papel celofán y colocar en su interior 15 ml de la solución de almidón, amarrar con el hilo quedando perfectamente cerrado. 3. Enjuagar la bolsa con agua de la llave. 4. Agitar la bolsa dentro del vaso de precipitados de 500 ml que contenga agua de la llave y 5 gotas de fenolftaleína por 5 minutos. Observar 5. Abrir la bolsa y agregar 4 gotas de lugol, observar y realizar anotaciones en la bitácora de trabajo. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 27 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada 6. Agregar 4 gotas de lugol al agua del vaso de precipitado y comparar coloración con el punto anterior. . Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar el concepto de permeabilidad b) Investigar cómo se realiza la permeabilidad en la membrana plasmática c) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) De las sustancias utilizadas (almidón, lugol y fenolftaleína) mencionar cuales atravesaron la membrana de celofán y cómo se demostró. b) Indicar cuáles no atravesaron y a qué se debe Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 28 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Referencias y Bibliografía Recomendada http://ocw.unican.es/ciencias-de-la-salud/fisiologia-general/materiales-de-clase-1/bloque-ii/Tema%204-Bloque%20IITransporte%20a%20traves%20de%20Membrana.pdf http://www.ibt.unam.mx/computo/pdfs/termodinamica_biologica/procesosdetransporte.pdf Jiménez, L. F. y Cols. 2003. Biología Celular y Molecular. Prentice Hall. Becker, W. M. y cols. 2006. El Mundo de la Célula. Pearson-Addison Wesley. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 29 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: 9 Duración (mins/horas): 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 3. Membrana celular Nombre de la Práctica TRANSPORTE A TRAVÉS DE LA MEMBRANA Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: f) Conocer la función de la membrana celular. g) Establecer el tipo de transporte por el cual las células de un cultivo aerobio o de levaduras incorporan glucosa Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 1 Matraz Erlenmeyer de 1000 ml 5 Matraz Erlenmeyer de 250 ml 15 Tubos de ensayo de 16 x 750 mm 1 Gradilla 4 Tubos de plástico Falcón de 15 ml 12 Pipetas graduadas de 1 ml 6 Pipetas graduadas de 5 ml 6 Pipetas graduadas de 10 ml 4 Vaso de precipitado de 250 ml Gasa 1 Cinta testigo Papel estraza Papel aluminio 1 Tripie 1 Tela de asbesto 1 Mechero Fisher 1 Parrilla eléctrica 2 Probeta graduada de 100 ml 2 Probeta graduada de 50 ml Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Un sobre de Levadura seca activa (Fleishmann) Equipo: Vortex Agitadores magnéticos Incubadora con agitación Microscopio de contraste de fase Hemocitómetro Espectrofotómetro Autoclave Centrifuga Sustancias: I. II. III. Solución de Ioacetato de sodio (Disolver 6 mg de ioacetato de sodio en 10 ml de solución glucosada) Solución de 2, 4 Dinitrofenol (Disolver 5 mg de 2,4 dinitrofenol en 10 ml de solución salina glucosaza) Reactivo de Somogy Solución I. Disolver en 600 ml de agua destilada 25 gr de carbonato de sodio (Na2CO3), 25 gr de tartrato doble de sodio y potasio, 20 gr de bicarbonato de sodio (Na2SO4) y aforar a 1000 ml. Calentar un poco. Solución II. Disolver 15 gr de sulfato de cobre (CuSO4) en 80ml de agua destilada. Agregar 2 gotas de ácido Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 30 UVM México IV. Escuela de Ciencias de la Salud sulfúrico concentrado (H2SO4) y aforar a 100 ml, mezclar 25 partes de la solución I con una parte de la solución II en el momento de usarse. Solución salina glucosaza 0.15mg/ml (Diluir 1:20 del medio salino glucosado) Solicitar: 2,4,6 trihidroxiacetofenona 0.3gr V. VI. Medio salino glucosado Fosfato de potasio (KH2PO4) 6.8 gr Sulfato de potasio (K2SO4) 1.305 gr Sulfato de Magnesio (MgSO4-7H2O) 0.1 gr Cloruro de Calcio (CaCl2) 0.005 gr Sulfato Ferroso (FeSO4 – 7H2O) 0.250 mg (agregar un pequeño cristal) Glucosa anhidra 1.5 gr Ajustar el pH a 7.4 con 3 ml KOH 10N o añadir 1.680 gr de KOH granular Aforar a 500 ml. Esterilizar en autoclave durante 20 min 2 a 15 lb/pg 121°C Reactivo de arsenomolibdato Solución A. Molibdato de amonio (NH4) MoO4 25 gr Agua destilada 450 ml Ácido Sulfúrico (H2SO4) 25 ml Solución B. Arseniato sódico (Na2HASO4 – 7H2O) 3 gr Agua destilada 25 ml Agregar la solución B a la A, mezclar e incubar a 37°C durante 24 h (maduración de la solución). Almacenar en un frasco ámbar. Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 4. Presentación e ingreso al laboratorio 5. Diagrama de bloques 6. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido Los pasos dos al cinco deben realizarse en condiciones de esterilidad, trabajando junto al mechero. Recordar que previamente es necesario flamear con alcohol (96%) toda la mesa de trabajo. PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno 1. 2. 3. 4. Pesar 50 mg de levadura activa para cada una de las cuatro condiciones experimentales. Preparar los siguientes tubos: Tubo 1: 50 mg de levadura + 1ml de solución salina glucosada Tubo 2: 50 mg de levadura + 1ml de solución salina glucosada + 0.1 ml de solución 2,4 dinitrofenol Tubo 3: 50 mg de levadura + 1ml de solución salina glucosada + 0.3 gr de 2,4,6 trihidroxiacetofenona Tubo 4: 50 mg de levadura + 1ml de solución salina glucosada. A continuación este tubo debe esterilizarse en autoclave durante 20min (121°C, 2 20 min, 15 lb/pag Resuspender perfectamente las células utilizando el vórtex Agregar estas suspensiones en cuatro matraces Erlenmeyer que contengan 100 ml de solución salina glucosada. Etiquetar cada matraz como 1, Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 31 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud 2, 3 y 4 Tapar los matraces y colocar en incubación de 30 a 60 min a 37°C y con 200 rgm de agitación Una vez transcurrido el tiempo de incubación, poner en agitación los cuatro cultivos, empleando imanes. Para homogenizar al máximo las suspensiones de levadura. Tomar 10ml de cada uno de los cultivos de los matraces experimentales y centrifugar por separado a 2500 rpm durante 5 min Con los sobrenadantes (SN) se preparan los tubos enlistados a continuación: tenga el área de trabajo limpia y despejada 5. EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. 6. 7. 8. T 1.0 1.0 SN MS A RS 1 0.5 0.5 1.0 2 0.5 .0.5 1.0 3 0.5 0.5 1.0 4 0.5 0.5 1.0 5 0.2 0.8 1.0 6 0.4 0.6 1.0 7 0.6 0.4 1.0 8 0.8 0.2 1.0 9 1.0 1.0 Colocar todos los tubos tapados durante 20 min en baño maria, después enfriarlos con agua de la llave RA 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 Agitar una vez que haya cesado la fervescencia, debe diluirse cada tubo con agua destilada hasta alcanzar un volume total de 10 ml .T= testigo SN= sobrenadante MS= medio salino glucosado 0.15 mg/ml A= Agua destilada (ml) RS= reactivo de Somogy (ml) RA= reactivo de arsenomolibdato (ml) 9. 10. 11. 12. 13. 14. Calibrar el espectrofotómetro con el tubo testigo. Leer la absorbancia (Abs) a 540 nm de longitud de onda Conociendo la Abs. De cada tubo experimental, calcular la concentración de glucosa en cada uno de ellos, utilizando la ecuación de la curva patrón (tubos 5 a 9) Con estos datos calcular los moles de glucosa transportadas, teniendo en cuenta las moles teóricas o iniciales del experimento Con los cultivos experimentales que no fueron centrifugados (y que se mantienen en agitación) se determina el número de levaduras por cultivo, valiéndose para ello del hemocitómetro. De esta forma puede establecerse el transporte de moles de glucosa para una sola célula del cultivo Calcula el transporte de glucosa para un tiempo estándar, por ejemplo una hora de incubación Haciendo este calculo para cada uno de los matraces experimentales, pueden hacerse inferencias sobre el tipo de transporte general mediante el cual las levaduras incorporan la glucosa Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar el concepto difusión simple, difusión facilitada, transporte activo b) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) ¿Qué tipos de proteínas intervienen en el mecanismo de transporte celular?. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 32 UVM México b) Escuela de Ciencias de la Salud Explique la función del transportador de Na+/K+, presente en un gran número de células Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Referencias y Bibliografía Recomendada http://ocw.unican.es/ciencias-de-la-salud/fisiologia-general/materiales-de-clase-1/bloque-ii/Tema%204-Bloque%20IITransporte%20a%20traves%20de%20Membrana.pdf http://depa.fquim.unam.mx/amyd/archivero/Membranas_Parte2_21229.pdf http://depa.fquim.unam.mx/amyd/archivero/Transportedemembranas_24759.pdf Libro del Fondo de Cultura Económica: http://iespoetaclaudio.centros.educa.jcyl.es/sitio/upload/membranas_libro.pdf Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 33 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 10 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 3. Membrana Celular Nombre de la Práctica IDENTIFICACION DE CARBOHIDRATOS Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Identificar diferentes tipos de monosacáridos b) Identificar las principales técnicas para el reconocimiento de carbohidratos Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 15 Tubos de ensayo 13 x 100 mm 2 Gradillas 1 Mechero Fisher 1 Tripie metálico 1 Tela de asbesto 2 Pipeta graduada de 10 ml 2 Pipeta graduada de 5 ml 2 Pipeta graduada de 1 ml 2 Pinzas para tubo de ensayo 1 Vaso de precipitados de 250 ml 4 Matraz Erlenmeyer de 250 ml 1 Piceta 1 Espátula metálica pequeña Papel aluminio 5 Matraz aforado de 100 ml 1 Porta pipeta Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: Sustancias: Glucosa 5g Galactosa 5g Fructosa 5g Lactosa 5g Ácido sulfúrico concentrado Ácido pícrico Alfa naftol 5g Reactivo Benedict: CuSO4 5H2O Citrato sódico Na2CO3 Agua destilada Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido I. REACCIÓN DE MOLISCH PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno Procedimiento: 1. Pipetear en un tubo de ensayo 2 ml de disolución de azúcar problema 2. Añadir 2 gotas de alpha-naftol al 1% y mezclar bien 3. Con una pipeta se dejan resbalar por la pared del tubo de ensayo 2 ml de ácido sulfúrico concentrado con mucho cuidado procurando que no se mezcle para que forma una capa bajo la disolución de azúcar. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 34 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 En la superficie de separación de ambas capas se producirá la deshidratación del azúcar y su reacción con el alpha-naftol formándose un anillo de color oscuro en dicha interfase II. REACCIÓN DE BENEDICT Procedimiento: 1. Pipetear en un tubo de ensayo 5 ml de reactivo de Benedict 2. Calentar a ebullición 3. Añadir 1 ml de la solución de azúcar, mezclar bien y se volverá a calentar a ebullición Si la reacción es positiva aparece un precipitado rojizo, aunque si la cantidad de azúcar es pequeña puede dar color anaranjado o verdoso III. REACCIÓN DE BRAUN Procedimiento: 1. Añadir en un tubo de ensayo: Disolución de azúcar 4 ml Acido pícrico saturado 2 ml (ES MUY VENENOSO) NaCO3 1M 2ml 2. Calentar a ebullición DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Si el test es positivo, el color amarillo pasa a rojo PRECUACIONES: Al trabajar con mecheros, en esta práctica no está permitido el uso de guantes. Por tanto, el manejo de los reactivos tiene que hacerse con especial cuidado. El calentamiento de las muestras hasta ebullición se hace siempre en baño de agua NUNCA se calentará directamente a la llama salvo que se indique lo contrario. Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar el fundamento de la reacción de Molisch b) Investigar el fundamento de la reacción de Benedict c) Investigar el fundamento de la reacción de Braun d) Investigar el fundamento de la reacción de Barfoed e) Investigar el fundamento de la reacción de Selivanoff f) Investigar el fundamento de la reacción de Tollens Después de la práctica: a) Dibujar la fórmula de la glucosa, lactosa, galactosa fructosa y sacarosa, señalando las características químicas que permiten su identificación b) Resultados de las pruebas efectuadas (realizar una tabla colocando en cada fila el nombre de la reacción, Molisch, Benedict, etc expresando el resultado +/- que daría cada prueba con cada uno de los azúcares) c) Según estos resultados de ¿De qué azúcar se trata? Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 35 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Referencias y Bibliografía Recomendada https://acasti.webs.ull.es/docencia/practicas/5.pdf http://depa.fquim.unam.mx/amyd/archivero/FUNDAMENTOSYTECNICASDEANALISISDEALIMENTOS_12286.pdf https://riunet.upv.es/bitstream/handle/10251/29788/C%C3%A1lculo%20del%20contenido%20en%20az%C3%BAcares %20totales.pdf?sequence=3. http://www.redalyc.org/pdf/2231/223120664006.pdf Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 36 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 11 1 sesión de 2 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 3. Membrana celular Nombre de la Práctica DIFUSIÓN Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Conocer el proceso de difusión. b) Identificar las condiciones que afectan a la difusión c) Aplicar el principio de difusión en diversas condiciones Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 6 Probetas de 100 ml 2 Cajas de Petri 1 Cronometro 1 Mechero o plancha de calentamiento 1 Tripie 1 Vaso de precipitado 1 Termómetro Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: Sustancias: 2 Colorantes artificiales para alimentos 1 cda Grenetina (amarillo o blanco) Hielo Agua Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido 1. Preparar 3 probetas graduadas con 100 ml de agua. Una a 5°C, la segunda a temperatura ambiente y la tercera a 70°C. PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los 2. Poner una gota de colorante en una de las probetas y cronometrar el tiempo que tarde en difundirse el color uniformemente en toda la probeta. Anotar los resultados en la bitácora de trabajo. 3. Repetir con las otras 2 probetas. 4. Poner en una caja de petri la grenetina (realizar la gelatina) y en otra caja colocar agua destilada. 5. Formar 2 orificios en la gelatina, colocar una gota de colorante en cada abertura. 6. En la caja de petri con agua, colocar una gota de colorante en el extremo, anotar los resultados. 7. Tomar 3 probetas con 100 ml de agua a tempertura ambiente. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 37 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 8. Añadir colorante al mismo tiempo, en la primera probeta 1 gota, en la segunda 2 gotas, en la tercera 3 gotas. Anota los resultados. 9. Montar un sistema de destilación simple y destilar todo el cloroformo, el residuo es el producto. Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar el concepto de difusión b) Investigar la clasificación de la difusión c) Investigar el concepto viscosidad d) Investigar el concepto de gradiente de concentración e) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) Explicar si una célula muerta puede realizar difusión y porqué b) Indicar los factores que afectan la velocidad de difusión y cómo lo hacen. c) ¿Qué observaste de diferencia con las diferentes condiciones? Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Referencias y Bibliografía Recomendada Jiménez, L. F. y Cols. 2003. Biología Celular y Molecular. Prentice Hall. Becker, W. M. y cols. 2006. El Mundo de la Célula. Pearson-Addison Wesley. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 38 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 12 1 sesión de 2 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 3. Membrana celular Nombre de la Práctica OSMOSIS EN ERITROCITOS Y CELULAS VEGENTALES Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Conocer el efecto de soluciones hipotónicas, isotónicas e hipertónicas en la célula. b) Identificar la morfología de los eritrocitos c) Observar el fenómeno de la osmosis en los glóbulos rojos Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 6 Portaobjetos 6 Cubreobjetos 3 Tubos de ensaye 3 cajas de petri 3 Pipetas pasteur Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: 4 Microscopio compuesto Sustancias: Aceite de inmersión 2 ml Soluciones de NaCl al 1.3%, 0.6% y 0.9% 2 ml Sangre de pollo (traerla en refrigeración 4°C) Muestra vegetal Alcohol Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido 1. Rotular los tubos, portaobjetos y cajas de petri, con las diferentes soluciones de NaCl PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 2. Colocar 2ml de cada solución en el tubo o caja correspondiente 3. Agregar a cada tubo 2 gotas de sangre y agitar suavemente. 4. Colocar una gota de solución en el portaobjetos correspondiente, cubrir y colocar la preparación al microscopio. 5. Cortar láminas delgadas de la muestra vegetal y colocar en cada caja de petri. Esperar 15 min y observar al microscopio 6. Dibujar y describir los resultados en la bitácora de trabajo. Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 39 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar el concepto de Osmosis b) Investigar solución hipotónica c) Investigar solución isotónica d) Investigar solución hipertónica e) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) Explicar hacia donde se mueve el agua en cada una de las soluciones (dentro o fuera de la célula) b) Indicar cuál es el objetivo del movimiento del agua a través de la membrana c) ¿Cómo una célula puede mantener su forma cuando en el exterior hay variaciones en la concentración de solutos? Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Referencias y Bibliografía Recomendada http://biblioteca.uns.edu.pe/saladocentes/archivoz/curzoz/osmosis_y_presion_osmotica.pdf https://www.scor.com/images/stories/pdf/library/newsletter/life-globule_rouge-es.pdf Jiménez, L. F. y Cols. 2003. Biología Celular y Molecular. Prentice Hall. Alberts, B. y cols. 2004. Biología Molecular de la Célula. Omega. Becker, W. M. y cols. 2006. El Mundo de la Célula. Pearson-Addison Wesley Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 40 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 13 1 sesión de 2 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 4. Organelos celulares relacionados con las transformaciones de energía Nombre de la Práctica OBSERVACIÓN DE CLOROPLASTOS Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Conocer la metodología para visualizar los organelos de la célula vegetal b) Identificar la morfología de los cloroplastos c) Aplicar una buena iluminación para una observación correcta Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 2 Portaobjetos 2 Cubreobjetos 2 Bulbos para pipeta pasteur 1 Navaja o bisturí 2 Pipetas pasteur 1 Caja de Petri o vidrio de reloj 1 Pinzas de disección Papel seda Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: 4 Microscopio compuesto Sustancias: Aceite de inmersión Agua Azul de metileno Hojas de lechuga y espinaca Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido 1. Retirar la epidermis de las hojas PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, 4. Identificar y localizar los cloroplastos. 2. Montar en una gota de agua sobre un portaobjetos y cubrir. Cuidar no formar burbujas de aire. 3. Observar al microscopio con el objetivo 10X y 40X. 5. Dibujar y realizar anotaciones en la bitácora de trabajo 6. Montar en una gota de azul de metileno, dejar reposar 5 minutos y enjuagar con agua sobre la muestra. Cubrir. 7. Observar al microscopio con el objetivo 10X y 40X. 8. Dibujar y realizar anotaciones en la bitácora de trabajo. Ø Limpieza de materiales y entrega Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 41 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada Ø Limpieza y orden del laboratorio EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar que son los cloroplastos b) Investigar y enlistar las estructuras que forman parte de los cloroplastos c) Investigar la función de los cloroplastos d) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) Explicar que morfología presentaron los cloroplastos. b) Indicar que otras estructuras observó y cuáles eran más numerosas. c) ¿Por qué los cloroplastos son abundantes en la célula vegetal? Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 42 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Referencias y Bibliografía Recomendada http://mmegias.webs.uvigo.es/descargas/atlas-celula-06-per-mit-clor.pdf http://www1.ub.edu/xtpn/wq/wqc/DadesWQC/cloroplasto-Imatges-3.pdf https://biologiamyblog.files.wordpress.com/2010/03/cloroplastos.pdf http://www.fca.uner.edu.ar/files/academica/deptos/catedras/biologia/cloroplastos_fotosintesis_12.pdf Jiménez, L. F. y Cols. 2003. Biología Celular y Molecular. Prentice Hall. Alberts, B. y cols. 2004. Biología Molecular de la Célula. Omega. Becker, W. M. y cols. 2006. El Mundo de la Célula. Pearson-Addison Wesley. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 43 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 14 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 4. Organelos celulares relacionados con las transformaciones de energía. Nombre de la Práctica Determinación del contenido de clorofila en una suspensión de cloroplastos Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Conocer el fenómeno de fotosíntesis. b) Identificar las partes del vegetal que realizan la fotosintesis c) Determinar los miligramos de clorofila presentes por cada gramo de tejido vegetal Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: Bitácora de trabajo 15 1 1 1 8 1 2 2 2 2 Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) 1 1 1 5 1 Tubos de ensayo 13 x 100 mm Gradilla Mortero Matraz Erlenmeyer de 100 ml Tubo de plástico de 15 ml Probeta graduada de 100 ml Pipetas graduadas 10 ml Pipetas graduadasde 5 ml Pipetas graduadas de 1 ml Papel filtro Whatman No. 1 Gasa Piceta Propipeta Bisturí Matraz aforado 100 ml Embudo pequeño Hojas frescas de Espinaca Investigación previa Equipo: Centrifuga Espectrofotómetro Celdas para espectrofotómetro Sustancias: Hielo Cloruro de Sodio, NaCl 0.35 M Acetona al 80% 80 ml 20ml de agua destilada + 80 ml de acetona Buffer Tris 0.2 M pH 8.0: 24.2 gr Solución A: Disolver la sal en 80 ml de agua destilada. Aforar a 100 ml Solución B: HCl 0.2 M El volumen del ácido aforarlo hasta 1000 ml con agua destilada 16.1 ml 50 ml de solución A agregar 26.8 ml de solución B, determinando continuamente el pH, hasta obtener pH 8.0, aforar a 200 ml con agua destilada Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 44 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido Método: PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada 2. EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 11. Conservar el material en frio 1. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 12. 13. 14. 15. 16. 17. Seleccionar algunas hojas frescas de espinaca, lavarlas con agua corriente y secarlas con toallas de papel Con una navaja de afeitar cortar el tallo y la nervadura principal de cada hoja. Desecharlos Pesar 50 gr de superficies foliares y molearlas con 100 ml de NaCl 0.35 M más 10 ml de buffer Tris 0.2M pH8.0 Filtrar con varias capas de gasa humedecida en buffer Colocar 30 ml del filtrado en los tubos de plástico y centrifugar a 1700 rpm durante 5 min. Desechar el sedimento El sobrenadante volverlo a centrifugar a 2500 rpm por 10 min para sedimentar los cloroplastos intactos. Desechar el sobrenadante El sobrenadante resuspenderlo en 2 o 3 ml de NaCl 0.35 M revolviendo suavemente Llevar esta suspensión a un volumen final de 30 ml con NaCl 0.35 M Centrifugar a 2500 rpm durante 10 min Desechar el sobrenadante y resuspender los cloroplastos en 10 ml de NaCl 0.35 M. Rotular como suspensión de cloroplastos Colocar 0.1 ml de la suspensión de cloroplastos en un tubo de ensayo y agregarle 2.0 ml de acetona al 80% Agitar el tubo suavemente Filtrar a través de papel filtro (Whatman 1) Recoger el filtrado en otro tubo limpio Leer en el espectrofotómetro a 652 nm de longitud de onda Usar la solución de acetona al 80% como blanco de reactivo Multiplicar el valor de absorbancia por 5.8 para obtener los miligramos de clorofila por mililitro de suspensión de cloroplastos Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar el concepto de fotosíntesis b) Investigar qué ocurre en las reacciones luminosas de la fotosíntesis Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 45 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud c) Investigar qué pasa en las reacciones oscuras de la fotosíntesis d) Describa la estructura y función del cloroplasto e) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) ¿Qué es la clorofila y su importancia biológica? b) Realiza un esquema de la estructura química de la clorofila Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Referencias y Bibliografía Recomendada http://mmegias.webs.uvigo.es/descargas/atlas-celula-06-per-mit-clor.pdf http://www1.ub.edu/xtpn/wq/wqc/DadesWQC/cloroplasto-Imatges-3.pdf https://biologiamyblog.files.wordpress.com/2010/03/cloroplastos.pdf http://www.fca.uner.edu.ar/files/academica/deptos/catedras/biologia/cloroplastos_fotosintesis_12.pdf Jiménez, L. F. y Cols. 2003. Biología Celular y Molecular. Prentice Hall. Alberts, B. y cols. 2004. Biología Molecular de la Célula. Omega. Becker, W. M. y cols. 2006. El Mundo de la Célula. Pearson-Addison Wesley. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 46 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 15 1 sesión de 2 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 4. Organelos celulares relacionados con las transformaciones de energía. Nombre de la Práctica ACTIVIDAD RESPIRATORIA EN MITOCONDRIA Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Observar la variación de la cantidad de CO2. b) Identificar el efecto de inhibición en la cadena respiratoria c) Aplicar una buena iluminación para una observación correcta Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 3 tubos de ensaye 1 Gradilla 1 Pipeta de 5 ml 3 Bulbos para pipeta pasteur 1 Espátula 3 Pipetas pasteur 2 Papel para sella (parafilm) 1 Vaso de precipitados de 500 ml 1 Termómetro 1 Tela adhesiva o cinta adhesiva 1 Regla graduada en milímetros 1 Parrilla de calentamiento 1 Vortex 3 Hojas de papel milimétrico 1 Manómetro Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: Balanza granataria Sustancias: 20 ml Cianuro de potasio 0.5 M 2 ml 2,4-DNP 0.3 M 20 ml Azul de metileno 3g Sacarosa en polvo 1.5 g Levadura seca activa 15 ml Agua destilada Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido 1. Numerar los tubos del 1 al 3, agregar 1g sacarosa, 0.5 gr de levadura y 5 ml de agua a 45°C. Mezclar PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h Manejar estas dos soluciones con cuidado, altamente tóxicas. Lavar las manos inmediatamente después de utilizar. 2. El tubo 1 será el control, al tubo 2 agregar 30 gotas de cianuro de potasio, al tubo 3 adicionar 8 gotas de 2,4DNP. 3. Montar el manómetro como el profesor te explique. 4. Conectar el tubo 1 al manómetro (recuerde sellar con parafilm). Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 47 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno tenga el área de trabajo limpia y despejada EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 5. Efectuar 10 mediciones a intervalos iguales de acuerdo a la velocidad de reacción (cada 10 segundos). Utilizar el mismo intervalo de tiempo para los otros dos tubos. Nota: Medir el diámetro del manómetro utilizado y anotar en bitácora. 6. Calcular el total de moles de CO2 producidas para cada muestra con la siguiente fórmula PV=nRT Donde: 2 V=Volumen V= πr h r=Radio (del tubo del manómetro) h=Altura máxima alcanzada por la solución coloreada P=Presión atmosférica P= 0.769 atm 3 R=Constante universal de los gases R=82atm cm /mol°K T=Temperatura absoluta T= °C+273 n=Moles 7. Calcular la ecuación de la recta y=mx+b en exel. Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar la definición de mitocondria b) Investigar cómo funciona un inhibidor de la cadena respiratoria y de un ejemplo c) Investigar cómo funciona un desacoplante de la fosforilación oxidativa y mencione un ejemplo d) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) Explicar los resultados obtenidos en cuenta a producción de CO2 en cada muestra. b) Explicar qué respuesta obtendría si en vez de identificar producción de CO2 cuantificara consumo de O2 al usar el inhibidor. Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 48 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Referencias y Bibliografía Recomendada https://drleivaenriquez.files.wordpress.com/2007/06/cadena-respiratoria-fosforilacion.pdf http://themedicalbiochemistrypage.org/es/oxidative-phosphorylation-sp.php http://laguna.fmedic.unam.mx/~evazquez/0403/generalidades%20mitocondria.html Becker, W. M. y col. 2006. El Mundo de la Célula. Pearson-Addison Wesley. Karp, G. 2009. Biología Celular y Molecular: conceptos y experimentos. McGraw Hill. Lodish, H., y col. 2002. Biología Celular y Molecular. Médica Panamericana. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 49 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Práctica Número: Duración (mins/horas): 16 1 sesión de 3 h Nombre de la Asignatura Biología Celular Unidad de Contenido 5. Almacenamiento y flujo de la información genética Nombre de la Práctica DIVISIÓN CELULAR Competencia asociada a la práctica. Que el alumno sea capaz de: a) Conocer el proceso de división celular b) Identificar las diferentes fases del ciclo celular mediante el uso del microscopio óptico Materiales De la Institución/Docente: Para el Alumno(s): Material: 1 Portaobjetos 1 Cubreobjetos 1 Bisturí 2 Pinzas de disección 2 Papel seda Bitácora de trabajo Equipo de seguridad (mascarilla, googles, guantes, bata, pantalón y zapato cerrado) Investigación previa Equipo: 4 Microscopio compuesto Sustancias: Ácido clorhídrico (HCl) 5N Ácido acético al 45% Acetorceína Cebolla con raíces Actividades Para el Docente/Facilitador: Para el Alumno(s): BRIEFING INICIAL (20 MINUTOS) 1. Presentación e ingreso al laboratorio 2. Diagrama de bloques 3. Socialización del propósito de Aprendizaje y/o examen rápido Con 6 -7 días de anticipación, colocar una cebolla en un frasco y agregar agua corriente hasta que se cubra la porción radicular vegetal (la cebolla no debe estar sumergida por completo en el agua). Cambiar el agua por agual limpia al menos en dos ocasiones, en el transcurso de los 7 días. PREPARACIÓN INICIAL (15 MINUTOS) 1. El docente solicita a los auxiliares de laboratorio con 1 semana de anticipación sus materiales 2. El docente verifica que el alumno ingresó su solicitud de materiales con los auxiliares de laboratorio con mínimo 24 h de anticipación 3. El docente verifica que los auxiliares de laboratorio entreguen el material a los alumnos contra vale de solicitud y credencial del responsable del equipo, posterior al briefing 4. El docente verifica que el alumno revise que cuenta con el 100% de los materiales solicitados 5. El docente verifica que el alumno 1. Cortar sobre un portaobjetos, una porción de 1 a 2 mm de la punta de la raíz en crecimiento, con ayuda de un bisturí. 2. Agregar con un gotero, una gota de HCl 5N, dejar reposar entre 15 y 25 minutos. 3. Retirar el exceso de HCl con papel absorbente. 4. Teñir con aceto-orceína durante 20 minutos. 5. Colocar el corte en el portaobjetos limpio y añadir una gota de ácido acético al 45%. Colocar el cubreobjetos y presionar con la goma de un lápiz. . 6. Observar al microscopio con los objetivos, 10X, 40X y 100X (utilizar el aceite de inmersión). 7. Dibujar y realizar anotaciones en la bitácora de trabajo. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 50 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud tenga el área de trabajo limpia y despejada EJECUCIÓN DE LA PRÁCTICA 1. Lleva los tiempos y ayuda a los alumnos a llevar la cronología. 2. Provee Feedback descriptivo durante la práctica. 3. Resuelve dudas durante la ejecución. 4. Promueve el buen Comportamiento del equipo durante la ejecución de la práctica 5. Verifica la Entrega de material limpio y completo. 6. Utiliza un Modelo de FACILITADOR NO INSTRUCCIONAL. 7. Llenado de bitácora electrónica: https://goo.gl/forms/Ep16K5pZtsuutiRE3 Ø Limpieza de materiales y entrega Ø Limpieza y orden del laboratorio DEBRIEFING (10 MINUTOS) 1. Recapitula con los alumnos los hechos ocurridos. 2. Promueve la reflexión, discusión y resolución de dudas. 3. Verifica si se cumplió el propósito de aprendizaje. Aprendizaje Auto-dirigido (Independiente): Antes de la práctica: a) Investigar cómo se lleva a cabo la reproducción de las células eucariontes b) Investigar y describe qué papel tiene la mitosis en la transmisión de la información genética c) Investigar y describe las etapas del ciclo celular d) Lectura de la práctica Después de la práctica: a) Explicar la función de la acetorceína en la preparación de la muestra. b) ¿Por qué se utilizan las partes en crecimiento de la cebolla para observar la mitosis? c) ¿Qué etapas de la mitosis observó? Método de Evaluación De la Práctica Investigación previa 10% Trabajo en el laboratorio 40% Reporte de práctica 50% (véase anexo 1) Del Aprendizaje Independiente Examen rápido sobre la investigación previa Referencias y Bibliografía Recomendada http://www.edu.xunta.gal/centros/iespolitecnicovigo/system/files/TEMA+2+la+division+celular.pdf http://diarium.usal.es/vgnunez/files/2012/10/03.-La-divisi%C3%B3n-celular.pdf https://www.ucm.es/data/cont/media/www/pag-56185/05-La%20Mitosis.pdf Lodish H. y Col. 2005 Biología Celular y Molecular Editorial Medica Panamericana, Quinta Edición. Gerald Karp. 2004. Cell and Molecular Biology, Ed. Wiley. Fourth Edition. Alberts B. y Col 2006. Introducción a la Biología Celular, Editorial Médica Panamericana. Quinta Edición. Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 51 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud ANEXOS ANEXO 1: RÚBRICA DE EVALUCIÓN 369984 formDE https://w w w .goo 1 rubricgradepostf_ 0 NO 0 rubricgradeeditf.c rubricshow c.cfm 31076E21908326 DD3CE07407C60 Parámetro 2. Ortografía 5% 7118461 7118462 7118463 Excelente Bueno Regular Deficiente 10 8 6 5 Regular 6 pts Deficiente 0 pts 7118465 7118466 7118467 -Nombre de la Ins Falta alguno de lo Faltan más de la m No presenta los d Excelente Bueno Regular Deficiente -Cumple con el formato que se anexa al final de este manual -Se entregó en tiempo - Se entregó en formato electrónico Hubo incumplimiento en uno de los tres requisitos: -Cumple con el formato que se anexa al final de este manual -Se entregó en tiempo - Se entregó en formato electrónico Hubo incumplimiento en dos de los tres requisitos: -Cumple con el formato que se anexa al final de este manual -Se entregó en tiempo - Se entregó en formato electrónico Hubo incumplimiento en los tres requisitos: -Cumple con el formato que se anexa al final de este manual -Se entregó en tiempo - Se entregó en formato electrónico 7118468 7118469 7118470 7118471 -Presenta listado -Presenta listado -Presenta el cont No presenta el índ Regular Deficiente -No presenta errores de ortografía Bueno Presenta entre 1 y 3 errores ortográficos Presenta entre 3 y 6 errores ortográficos El reporte incluye más de 6 errores ortográficos 7118472 7118473 7118474 7118475 -Describe con su -Describe con su -Describe de man No presenta resu Regular Deficiente Hubo incumplimiento en dos de los tres requisitos: -En el resumen describe con sus propias palabras en máximo 1 cuartilla los objetivos del trabajo, la metodología general con los resultados más relevantes. -Redacta los verbos en pasado -Incluye las palabras claves relacionadas a la práctica Hubo incumplimiento en los tres requisitos: -En el resumen describe con sus propias palabras en máximo 1 cuartilla los objetivos del trabajo, la metodología general con los resultados más relevantes. -Redacta los verbos en pasado -Incluye las palabras claves relacionadas a la práctica Excelente -En el resumen describe con sus propias palabras en máximo 1 cuartilla los objetivos del trabajo, la metodología general con los resultados más relevantes. -Redacta los verbos en pasado -Incluye las palabras claves relacionadas a la práctica 4. Introducción 15% Bueno 8 pts 7118464 Excelente 3. Resumen y palabras clave 5% no 7118460 Excelente 10 pts 1.Formato tipo artículo en formato electrónico 5% NO Bueno Hubo incumplimiento en uno de los tres requisitos: -En el resumen describe con sus propias palabras en máximo 1 cuartilla los objetivos del trabajo, la metodología general con los resultados más relevantes. -Redacta los verbos en pasado -Incluye las palabras claves relacionadas a la práctica 7118476 7118477 7118478 7118479 -Realiza una revis -Realiza una revis -Realiza una revis - Es incongruente Excelente Bueno Regular Deficiente Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 52 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud -Realiza una revisión bibliográfica donde plantea ordenadamente el tema de investigación, su importancia e implicaciones partiendo de lo general a lo particular. -Incluye las referencia bibliográficas o hemerográficas en el texto -Realiza una revisión bibliográfica completa donde plantea desordenadamente el tema de investigación (no se cumple la regla de lo general a lo particular), - o no incluye las referencia bibliográficas o hemerográficas en el texto -Realiza una revisión bibliográfica incompleta - o no incluye las referencia bibliográficas o hemerográficas en el texto - La revisión bibliográfica es incongruente al tema y no se incluyen las referencias bibliográficas o hemerográficas en el texto 5. Planteamiento del problema El planteamiento responde a la pregunta ¿qué voy a investigar? El planteamiento responde parcialmente a la pregunta ¿qué voy a investigar? No responde a la pregunta ¿qué voy a investigar? 6. Justificación El planteamiento responde a la pregunta ¿por qué voy a investigar? El planteamiento responde parcialmente a la pregunta ¿por qué voy a investigar? 7. Objetivos 5% El planteamiento responde a la pregunta ¿para qué voy a investigar? El planteamiento responde parcialmente a la pregunta ¿para qué voy a investigar? 8. Hipótesis La hipótesis constituye un juicio de posibilidad que expresa la relación causa efecto (si vs entonces) que se pretende verificar. La hipótesis constituye un juicio de posibilidad que expresa la relación causa efecto (si vs entonces) que se pretende verificar parcialmente correcto. El planteamiento responde deficientemente a la pregunta ¿qué voy a investigar? El planteamiento responde deficientemente a la pregunta ¿por qué voy a investigar? El planteamiento responde deficientemente a la pregunta ¿para qué voy a investigar? La hipótesis constituye un juicio de posibilidad que expresa la relación causa efecto (si vs entonces) que se pretende verificar de manera deficiente. 9. Método 5% La hipótesis no constituye un juicio de posibilidad que exprese la relación causa efecto (si vs entonces) que se pretende verificar. 7118485 7118486 7118487 -Enlista de mane -Enlista de mane -Enlista de mane - No enlista los m Excelente Bueno Regular Deficiente -Describe el procedimiento experimental de forma que responde parcialmente correcto a la pregunta ¿Cómo lo voy a investigar? -Describe el procedimiento experimental de forma que responde de forma deficiente a la pregunta ¿Cómo lo voy a investigar? -No describe el procedimiento experimental 7118488 7118489 7118490 7118491 -Recopila y orden -Recopila y orden -Recopila y orden -No presenta los Excelente Bueno Regular -Recopila y ordena los datos obtenidos presentándolos en párrafos, cuadros o gráficos claramente identificados. -Incluye las fórmulas y sustituciones empleadas 11. Análisis de resultados 20% No responde a la pregunta ¿para qué voy a investigar? 7118484 -Describe el procedimiento experimental de forma que responde a la pregunta ¿Cómo lo voy a investigar? 10.Resultados 15% No responde a la pregunta ¿por qué voy a investigar? -Recopila y ordena los datos obtenidos presentándolos en párrafos, cuadros o gráficos pero no los identifica claramente -O no incluye las fórmulas y sustituciones empleadas -Recopila y ordena los datos obtenidos presentándolos en párrafos, cuadros o gráficos pero no los identifica claramente -No incluye las fórmulas y sustituciones empleadas Deficiente -No presenta los resultados obtenidos 7118492 7118493 7118494 7118495 -Interpreta y anal -Interpreta y anal - Interpreta y ana -No Interpreta y n Excelente Bueno Regular Deficiente Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 53 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud -Interpreta y analiza los resultados obtenidos comparativamente con la bibliografía consultada -Indica las aplicaciones teóricas 12.Conclusiones 20% - Interpreta y analiza los resultados obtenidos pero no comparativamente con la bibliografía consultada -No indica las aplicaciones teóricas -No Interpreta y no analiza los resultados obtenidos -Ni tampoco indica las aplicaciones teóricas 7118496 7118497 7118498 7118499 -Redacta con sus -Redacta con sus -No redacta con s -No redacta las c Excelente Bueno Regular Deficiente -Redacta con sus propias palabras si se cumplen o no los objetivos en base al análisis de los resultados 13.Referencias 5% -Interpreta y analiza los resultados obtenidos pero no comparativamente con la bibliografía consultada -O no indica las aplicaciones teóricas -Redacta con sus propias palabras si se cumplen o no los objetivos pero no considera completamente el análisis de los resultados -No redacta con sus propias palabras si se cumplen o no los objetivos -o No considera el análisis de los resultados -No redacta las conclusiones o las copia de textos 7118500 7118501 7118502 7118503 -Presenta por lo m -Presenta menos -Presenta menos -No presenta bibl Excelente Bueno Regular Deficiente -Presenta por lo menos 3 bibliografías consultadas, en orden alfabético , siguiendo el formato APA -Presenta menos de 3 bibliografías consultadas - o no las presenta en orden alfabético - o no sigue el formato APA -Presenta menos de 3 bibliografía consultada, sin orden alfabético , - o no sigue el formato APA Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. -No presenta bibliografía 54 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud ANEXO 2: REPORTE DE PRÁCTICA Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 55 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 56 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 57 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 58 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 59 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 60 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 61 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 62 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 63 UVM México Escuela de Ciencias de la Salud ANEXO 3: SOLICTUD DE REACTIVOS Y MATERIALES UNIVERSIDAD DEL VALLE DE MEXICO Región Ciudad de México Campus: Hoja de solicitud de reactivos y materiales de laboratorio Titulo de la práctica Fecha de la práctica Fecha de entrega de solicitud Numero de equipos Semestre Horario Profesor Materia Carrera Laboratorio REACTIVOS Descripción del Reactivo Cantidad por grupo Observaciones Copyright © UVM México, 2017. Todos los Derechos Reservados. 64
