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Manual de parasitologia

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UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE
NUEVO LEÓN
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA
Y ZOOTECNIA
Manual de Parasitología
Huevos Larvados de Toxocara canis
AUTOR:
J. J. Zárate Ramos
_________________________________________________________Manual de parasitología
Prologo
Este manual esta dedicado a mi familia que son lo mas
importante para mi, en particular a mi esposa Nilda quien me ha
regalado lo mas hermoso que podía desear, mis hijas Carolina,
Itzel y Lizeth. Ellas son y serán el estimulo para realizar todo lo
que hasta ahora he logrado y lo que quiero lograr, mi hija Lizeth
que nació el 17 de febrero de 2007, día con día me enseña que
ningún problema es tan grande que no se pueda resolver, que cada
buena noticia por pequeña que sea es motivo de jubilo; pero sobre
todo me ha enseñado que hay valorar cada día de nuestro corto
paso por este maravilloso mundo……
JJZR
______________________________________________________Juan José Zárate Ramos
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_________________________________________________________Manual de parasitología
INTRODUCCIÓN
En cualquier especie animal las parasitosis representan uno de los principales problemas
de salud, no existe ninguna etapa del desarrollo de un animal que no sea susceptible de
padecer alguna de las enfermedades causadas por los parásitos.
El impacto económico producto de las parasitosis en muchas ocasiones es subestimado, lo
que crea una verdadera cortina de humo en torno a este problema.
Por otro lado el aspecto de la salud pública ligado a este grupo de enfermedades se
convierte en un punto crucial del conocimiento para cualquier profesionista del área médica y en
el caso particular de los médicos veterinarios y de los aspirantes a serlo, el dominio de los
aspectos relacionados al estudio de la parasitología se convierte en una necesidad. Más
recientemente el desarrollo de terapias a partir de parásitos (Helmintoterapia) ha provocado un
resurgimiento del interés en la parasitología y ha abierto nuevas posibilidades de estudio y
desarrollo tecnológico en este apasionante campo.
En este manual se pretende aportar algunos aspectos relacionados con la parasitología que
a nuestro criterio son de utilidad como los son la Taxonomía, nomenclatura especifica en
helmintología, terminología especializada basada en la triada epidemiológica, asociaciones
parasitarias, mecanismos de patogenia de los parásitos, la enfermedad parasitaria, mecanismos
de defensa del hospedador, evasión de la respuesta inmune, inmunopatología, morfología
general de helmintos, clasificación de parásitos de interés veterinario, técnicas básicas en
parasitología y en esta primera edición se presentan los principales parásitos de perros y gatos.
______________________________________________________Juan José Zárate Ramos
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Taxonomía
La taxonomía es la ciencia que se encarga de la clasificación de los seres vivos, en la
parasitología al igual que en otras áreas de las ciencias médicas, sería difícil el estudio y más
aún el aprendizaje sin el ordenamiento taxonómico existente.
Clasificación tradicional: se basa en dos Reinos.
 Reino Animalia
 Reino Plantae
Cronología de las aportaciones a la clasificación Taxonómica.
Tres Reinos: Sistema de Haeckel: (1894)
 Reino Protistas
 protistas atípicos
 Protozooa
 Protophyta
 Reino Plantae
 Reino Animalia
Sistema de Copeland: cuatro Reinos (1956)
 Reino Mychota
 Reino Protoctista
 Reino Plantae
 Reino Animalia
Sistema de Whittaker: Cinco Reinos (1969)
 Reino Monera
 Reino Protista
 Reino Plantae
 Reino Fungi
 Reino Animalia
Esquema de Margulis: dos dominios y 5 reinos (1988-1996)
o Dominio Prokarya
 Reino Bacteria
o Dominio Eukarya
 Reino Protoctista
 Reino Fungi
 Reino Plantae
 Reino Animalia
Cuatro Subdominios de Mayr (1990)
o Dominio Prokarya
 Subdominio Eubacteria
 Subdominio Archaebacteria
o Dominio Eukaryota
 Subdominio Protista
 Subdominio Metabionta
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_________________________________________________________Manual de parasitología



Reino Metaphyta (Plantas)
Reino Fungi
Reino Animalia
Tres Dominios de Woese (1990).
o Dominio Bacteria
o Dominio Archaea
o Dominio Eucarya
Suprareinos y Seis Reinos de Cavalier-Smith (1998)

Superreino Prokaryota
 Reinos Bacteria

Superreino Eukaryota
 Reino Protozoa
 Reino Animalia
 Reino Fungi
 Reino Plantae
 Reino Chromista
La clasificación de cinco reinos propuesta por Whittaker, con las modificaciones de Margulis
y la consideración de tres Dominios, incorporando a Archea con el sexto reino el de las
Arqueobacterias es la clasificación que mayor difusión ha alcanzado a la fecha.
Antes de continuar con los aspectos taxonómicos hay que hablar un poco de la Zoología, la
cual se define como la ciencia que estudia los a los animales en todos sus aspectos.
Sus objetivos se han redefinido, al ampliarse el número de disciplinas que anteriormente
estaban incluidas en la Zoología, pero que ahora han alcanzado la categoría de ciencias
independientes.
Y estos objetivos ahora son:
a).-Describir y explicar la diversidad animal en todos sus aspectos o manifestaciones, y
ello de forma compensada entre estructura y función. Con un enfoque diferente a la fisiología
que estudiará un órgano, por ejemplo los pulmones de un perro pero como un modelo y no
como los estudia un zoólogo, que estudia los pulmones de un perro que vive en determinado
lugar distinto a otros lugares y que le permiten un comportamiento diferente al de un perro de
otra región (Por ejem. Un perro de los andes) en el caso de un parásito, el estudio de un
órgano que esta presente en dos parásitos distintos y que presenta diferencias de estructura y
función de acuerdo a las adaptaciones que el parásito ha desarrollado. (Por ejemplo la capsula
bucal).
b).-Indagar, valorar, estudiar el ajuste y la adaptación de cada especie animal en un
ecosistema (autoecología). Pero en el sentido de establecer relaciones específicas entre un
animal determinado con un sistema ambiental específico, no como en ecología general que
básicamente estudia ciclos de energía.
C).-Consideración, desde un punto de vista sintetizante, de los aspectos históricos del
reino animal, es decir de su evolución y su filogenia.
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Las disciplinas que nos sirven como pilares básicos para estudiar los objetivos anteriores son:
En relación con Describir y explicar la diversidad animal:
a. Anatomía: Ciencia de la observación y de la descripción de las estructuras, en un
sentido completamente estricto. Se observa y describe lo que hay sin más intentos de
comparar o explicar. No es interpretativa.
b. Morfología: disciplina que estudia la organización de los animales en todos sus
aspectos, tanto estático como dinámico, tanto externo como interno, tanto macroscópica
como microscópicamente. En ella se debe interpretar y comparar, por lo que incluye a la
anatomía. Por tanto es interpretativa.
En relación con Indagar, valorar, estudiar el ajuste y la adaptación de cada especie
animal en un ecosistema:
a. Sistemática: Disciplina científica que investiga las especies y la diversificación de los
organismos y de las relaciones, en sentido amplio, existentes entre ellos. Es más amplia
que la taxonomía y por tanto incluye a ésta.
b. Taxonomía: Teoría práctica de la clasificación de los organismos.
En relación con Los aspectos históricos del reino animal:
a. Filogenia: Ciencia que estudia las relaciones de afinidad y de parentesco entre los
grupos animales e intenta dilucidar sus respectivos orígenes. Está interrelacionada con la
taxonomía, pues toda clasificación taxonómica aspira a ser lo más equivalente posible
con el árbol filogenético.
b. Evolución: Ciencia que considera las causas y mecanismos que determinan el
nacimiento de nuevas especies y todos los cambios de las poblaciones animales a favor
de nuevas circunstancias ambientales. Incluye a la filogenia.
Concepto de los cinco reinos de
Whittaker
Como ya se menciono Whittaker (1969) propuso otro sistema de clasificación en cinco
reinos, el cual es ahora ampliamente aceptado por considerar las relaciones evolutivas y es
compatible con los estudios resientes sobre bioquímica, genética y ultra estructura que hacen
suponer que la endosimbiosis hereditaria, que lleva a la conclusión de que la célula eucariótica
tal como la conocemos actualmente, se deriva de un antecesor procariótico común.
El sistema de los cinco reinos se basa en tres niveles de organización celular en relación
con los tres modos principales de nutrición: Fotosíntesis, absorción e ingestión. Los
Procariótes en el reino Monera, porque carecen de un modo de nutrición basado en la
ingestión.
Los microorganismos Eucarióticos unicelulares se clasifican dentro del reino Protista;
aunque en estos los métodos de nutrición son continuos. Los organismos eucarióticos
multicelulares y multinucleados se encuentran en el reino Vegetal y Animal, por último las
levaduras, mohos y hongos se incluyen en el reino Fungí. Los virus, no siendo celulares,
quedan fuera de este esquema.
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Categorías taxonómicas y clasificación binomial
La clasificación binomial fue introducida por Linneo (Linnaeus) y consiste en denominar a
cada animal o ser viviente, con un nombre compuesto de dos palabras o rangos taxonómicos
que son el género y la especie, por ejemplo el ser humano Homo sapiens o el perro doméstico
Canis familiaris.
Las principales divisiones taxonómicas de los organismos vivos son: reino, philum,
clase, orden, familia, género y especie, cada uno puede subdividirse a su vez en grupos
menores, como subclase, suborden y subfamilia.
Cuando estas subdivisiones se vuelven demasiadas, o las especies que las componen
tienen diferencias notables entre sí, se pueden añadir más categorías a la clasificación. En
helmintología se usa ocasionalmente la tribu, que se localiza entre el género y la subfamilia,
la cohorte, que se encuentra entre el orden y la clase los rangos taxonómicos inferiores son
el género y la especie y son la esencia de la taxonomía binomial. En total existen más de
20 divisiones del reino animal aceptadas universalmente.
Hay reglas para la nomenclatura de las divisiones taxonómicas mayores, aunque no se
siguen universalmente y se les modifica periódicamente. Es necesario que exista ambigüedad.
En el lenguaje que se utiliza, ya que por la terminación de las palabras se pueden
reconocer las diferentes categorías taxonómicas, las formas que a continuación se enlistan son
las más utilizadas, tabla No.1.
Clasificación Taxonómica
Clase
Orden
Suborden
Súper familia
Familia
Subfamilia
Terminación
- ea
- ida
- ina
- oidea
- idae
- inae
Ejemplo
Nematodea
Rhabditida
Strongylina
Strongyloidea
Strongylidae
Strongylinae
Tabla No.1 Categorías taxonómicas y su terminación.
Los nombres del género y la especie siempre deben estar en latín, y dado que un idioma
extranjero, se debe imprimir en itálicas. En un manuscrito por lo general se subrayan. (Es
extraño que no se siga esta regla para los grupos superiores de la clasificación taxonómica).
El género siempre empieza con letra mayúscula, la especie con minúscula, y ambos deben
concordar gramaticalmente. Por regla general, el género y la especie siguen la forma
nominativa. Por ejemplo Haemonchus contortus, aunque algunas veces se usa el genitivo,
como en Parascaris equorum.
Cuando se divide a la especie en subespecies se produce de igual forma, por ejemplo en
Echinoacoccus granulosus equinus; la última palabra corresponde a la subespecie.
Cuando se divide el género en un subgénero, como en Osesophagostomum
(Hysteracrum) venulosum.
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Un punto que nunca se ha precisado en helmintología es el de la abreviatura de nombres.
En bacteriología hay reglas muy definidas para esto, por ejemplo, la letra E, sólo representa a
Escherichia, y para abreviar Erysipelothrix se debe escribir Ery.
En helmintología no hay tales reglas, por lo que la letra T, puede representar a
Trichostrongylus, Trichuris, Toxocara, Toxocaris, Tetramers, Taenia, o una docena de
géneros más. No hay nada que evite que la gente invente sus propias abreviaturas. Los
helmintólogos necesitamos urgentemente asesoría en cuanto a nomenclatura se refiere.
Quien descubre un parásito puede nombrarlo como guste, con tal que siga las reglas
mencionadas antes. Por esta razón hay nombres como problemática, perniciosus y horrida,
lo que hace de la nomenclatura zoológica una materia tan interesante.
Los nombres eslavos latinizados suelen ser enfadosos, por ejemplo podjapolski y
matwejewi, pero tal vez resulte más enfadoso el nombre de Macracanthorhynchus
hirudinaceus, con el que un helmintólogo occidental designó a un parásito común del cerdo.
La nomenclatura en helmintología
Los nombres de los parásitos provienen por lo general de cuatro fuentes principales:
La primera fuente de nombres para denominar a los parásitos es el nombre del animal
al que parasitan. Todas las especies de animales domésticos están representadas de este modo
por ejemplo existen nombres como equi, bovis, ovis, caprae, sui, canis, cati, cameli, dromedarii,
elephasi, galli, anatinum y anseris.
Podemos identificar con facilidad a otros animales en nombres como bisonis, giraffae, lupi,
zebrae, pyhonis y boae.
El inconveniente de usar el nombre de hospedador para designar a un parásito es que
algún otro investigador puede encontrar después al mismo parásito en otros animales.
También ocurre que el nombre de un parásito que infecta a muchas especies sólo incluye
una variedad muy pequeña de hospedadores, por ejemplo con Paramphistomun cervi, que
de descubrió por primera vez en el venado, y Capillaria columbae que parásita a las palomas y a
otras aves.
Así mismo, encontramos con frecuencia que la infección rara vez se presenta en el
hospedador donde se descubrió al parásito originalmente, y que otro animal diferente es el
hospedador natural o más común.
Una segunda fuente de nomenclatura es dedicar el nombre del parásito a una persona.
Esto resulta muy práctico, porque no hay posibilidad de confusión posterior y además es bueno
que los parasitólogos famosos sean recordados en su materia. Por ejemplo, tenemos que
Chabertia recibe su nombre de honor a Chabert, Moniezia benedeni a Moniez y van
Beneden, Raillietina a Raillet, Davainea a Davaine, Mullerius a Muller (nótese que no se
permiten los acentos en la forma latina), Cooperia curticei a Copper Curtice.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Existen alrededor de 40 a 50 especies, géneros y grupos taxonómicos superiores que
deben su nombre a algunos de los parasitólogos más antiguos.
La tercer fuente de donde se toma el nombre de los parásitos es la localización
geográfica donde se descubrió por primera vez el parásito y, al igual que la primera fuente,
tiene el inconveniente de que se puede descubrir posteriormente esa misma especie en otra
entidad geográfica diferente.
La mayor parte de los países están representados en nombres como aegyptiacum,
africana, aethiopicus, australis, brasilense, ceylanicus, dagestanica. Los Estados Unidos están
representados por america, arizonensis, californicus, neomexicana, texanus entre otros. Por su
parte México por mexicana .
La cuarta forma de dar nombre a los parásitos y la más útil, es en base a su morfología.
El nombre del parásito incluye alguna característica valiosa en la identificación del mismo, lo
cual es de gran utilidad.
Ese método también tiene sus inconvenientes, pese a que el avance de la tecnología en
áreas como la histoquímica, la genética, biología molecular y la microscopia se hace posible
realizar diagnósticos diferenciales con un alto grado de exactitud. Las raíces de los nombres por
lo general son griegas o latinas, y recuerdan alguna característica diagnóstica.
Por ejemplo, ouros es la raíz griega de cola, y de ella derivan Oxyuris (que quiere decir
cola puntiaguda), Trichuris (cola en forma de pelo, aunque el nombre es inapropiado porque el
parásito presenta cabeza, y no cola en forma de pelo, por lo que debería llamarse
Trichocephalus) y Spirura (cola espiral).
También la raíz cercos quiere decir cola, por lo que Spirocerca tiene el mismo significado
que Spirura.
A manera de ejemplo, a continuación se presentan sólo algunas palabras utilizadas en la
construcción de los nombres de algunos grupos taxonómicos de interés en veterinaria se
muestran en la tabla No.2 (la letra G indica que proviene del griego; la letra L, del latín):
Raíz
Akantha
Akis
Amis
Angeion
Ankylos
Askaris
Bothros
Bounos
Cinctus
Dikros
Dirus
Echinos
Fascia
Filum
Furca
Significado
G. gancho
G. punta
G. vaso, vasija
G. vaso (linfático sanguíneo, etc.)
G. en forma de gancho
G. gusano
G. hueco
G. trinchera
L. acinturado
G. doble
L. cruel
G. espina
L. banda, faja
L. hilo
L. horqueta, horquilla
Ejemplo
Acanthocephala
Heterakis
Amidostomun
Angiostrongylus
Ancylostoma
Ascaris
Diphyllobothrium
Bunostomum
O. circumcincta
Dirocelium
Dirofilaria
Echinococcus
Fasciola
Filarioidea
O. trifurcata
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Gongylos
Habros
Heteros
Kestos
Nema
Petalos
Phyllon
Pylis
Rhabdos
Schizein
Sroma
Strongylos
Taenia
Toxon
Thrix
Trema
Uncinus
G. redondo
G. delgado
G. otro
G. cinta, listón
G. hilo
G. pétalo, hoja
G. hoja
G. puerta pequeña
G. vara
G. dividir
G. boca
G. cilíndrico
L. listón
G. flecha
G. pelo
G. abertura
L. gancho
Gongylonema
Habronema
Heterakis
Cestoda
Nematoda
Dipetalonema
Diphyllobothrium
Dipylidium
Rhabditida
Schistosoma
Oesophagostomun
Strongylus
Taenia
Toxocara
Trichostrongylus
Trematoda
Uncinaria
Tabla No. 2 Origen y significado de algunos nombres de parásitos.
Si examinamos el nombre Macracanthorhynchus hirudinaceus, de uso frecuente,
encontramos que tiene mucho sentido, pues quiere decir organismo con ganchos grandes en su
probócide y que parece una sanguijuela; una descripción excelente del parásito.
Aunque con menos frecuencia, otras fuentes que se usan en la formación de los nombres
de los parásitos y que también son susceptibles de error o de confusión posterior, son la
localización del parásito en el huésped, por ejemplo, hepática, intestinalis, trachea, renale,
cerebralis, laryngeus y pulmonalis; y el efecto patógeno del parásito, por ejemplo en Necator
(asesino), neoplasticum y phlebotomum.
Para citar el nombre completo de un parásito, se debe incluir el nombre del descubridor,
después del nombre del parásito. En caso de que se modifique posteriormente, se debe agregar
el nombre del revisor al final. Por ejemplo, Johan Christian Fabricius, descubrió en el año de
1788 un gusano al que nombró Strongylus ovinus Fabricius, 1788. El género Strongylus,
llegó a tener tantas y tan diferentes especies, que se tuvieron que crear nuevos géneros para
albergarlas.
Los parasitólogos franceses Railliet y Henry, sugirieron en el año de 1909, el nombre de
Chabertia, en honor a Chabert, para uno de estos nuevos géneros y bajo el cual quedó
clasificado el organismo descubierto por Fabricius. El nombre del parásito actualmente es
Chabertia ovina (Fabricius, 1788) Railliet y Henry, 1909.
El uso de los nombres populares de los parásitos, es cuestión de criterios. Los nombres
duela, tenia, ascaris, uncinaria y oxiuro, se han utilizado por tanto tiempo, que nos sentimos a
gusto con ellos.
Los nombres comunes son útiles desde la siguiente perspectiva ya que permiten que a la
hora de abordar un problema parasitario, el dueño de la mascota en muchas ocasiones refiere
un nombre común o describe muy burdamente el parásito o la forma de dispersión que su
mascota elimino, por ejemplo gusano café, gusano de palo de barbero, gusano del cujo, gusano
del bostezo, garrapata café etc.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Se dan casos en los que un parasitólogo informa una especie nueva, que en realidad es un
miembro deforme de especies ya existentes. La progenie de los helmintos, al igual que
cualquier animal de reproducción sexual, es susceptible a influencias extrínsecas del ambiente,
sobre todo en cuanto a desarrollo y tamaño corporal se refiere; cierto porcentaje de los
parásitos que habitan un huésped resistente son sub-desarrollados.
Los parásitos de una misma especie, son más grandes en un huésped de mayor tamaño,
como el guajolote, que en un huésped pequeño, como el gorrión y los parásitos son más
pequeños en un animal, en el que no está acostumbrado a vivir en el huésped original. Un
porcentaje de la descendencia de las hembras supervivientes a un tratamiento antihelmíntico
puede ser deforme.
No es raro que aparezca de cuando en cuando un “monstruo” teratológico entre la
población normal y aunque éstos son un poco de interés veterinario, puede complicar la
estructura de la clasificación taxonómica de los helmintos, cuando se les reconoce como
especies nuevas.
Filos o phylum
Los helmintos de importancia en medicina veterinaria, pertenecen a cuatro filos del reino
animal. El filo de los Nematelmintos, algunas veces llamado NEMATA, contiene a los parásitos
de cuerpo redondo o cilíndrico y una de sus características es que presentan los sexos
separados. Dentro de este filo se incluía a muchos helmintos, como los acantocéfalos, que
ahora forman un filo separado.
La clase Nematoda es el único grupo taxonómico, que se ha mantenido estable a través de
los años. Contiene a todos los gusanos redondos de interés veterinario y algunos parásitos del
hombre y de las plantas, así como a organismos de vida libre.
El filo de los Platelmintos, contiene a todos los parásitos planos, éstos presentan simetría
bilateral (en comparación con la simetría radial que presentan los nematelmintos), tiene forma
de hoja o listón y casi todos son hermafroditas. Hay dos clases en este filo:
Los tremátodos son organismos que por lo general tienen forma de hoja, no
segmentados, con sistema digestivo ciego y con una o dos ventosas para adherirse al huésped y
los céstodos, que son organismos segmentados, no poseen sistema digestivo y también se
adhieren al huésped, por medio de ventosas.
El filo de los Acantocéfalos es muy pequeño y cuenta sólo con gusanos de vida
parasitaria, no son segmentados y presentan los sexos separados. Su característica más
importante y sobresaliente, es que poseen espinas en su probóscide y a ella se debe el nombre.
El filo de los Anélidos tiene muy poca importancia en medicina veterinaria. Los miembros
de este grupo son los helmintos más evolucionados y solo las sanguijuelas tiene en estricto,
vida parasitaria, en el cuadro No.1 se presenta una comparativa de las características de los
helmintos.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Plathelmintos
Aplanados dorsoventrelmente
Monoicos (excepto Chistosoma)
Aparato digestivo ausento o incompleto
Ciclo biológico indirecto
Nematelmintos
Filiformes
Dioicos
Aparato digestivo completo
Ciclo biológico directo o
Indirecto
Acantocephalos
Filiformes
Dioicos
Aparato digestivo ausente
Ciclo biológico indirecto
Cuadro No.1 Cuadro comparativo entre diferentes helmintos
Un sistema de clasificación es presentado en la siguiente tabla No.3, aunque no es el único
es muy sencillo y práctico, se basa en diez familias de interés veterinario y son
convenientemente separados en dos grupos los bursados y los no bursados, imágenes en la
figura No. 1.
Superfamily
Tipical features
NO-BURSATE NEMATODES
Rhabditoidea
Strongyloides, Rhabditis, Pelodera, Very small worms; buccal capsule small. Free-living and
etc.
parasitic generations. Life cycle direct; infection by L3.
Ascaridoidea
Ascaris, Toxocara, Parascaris, etc.
Large white worms, life cycle direct; infection by L2 in egg.
Oxyuroidea
Oxyuris, Skrjabinema, etc.
Female has long, pointed tail, life cycle direct; infection by L3 in
egg.
Spiruruidea
Spirocerca, Habronema, Thelazia,
Spiral tail in male, life cycle indirect; infection by L3 from insect.
etc.
Filaroidea
Dirofilaria, Onchocerca, Parafilaria,
Long thin worms, life cycle indirect; infection by L3 from insect.
etc.
Trichuroidea
Trichuris, Capillaria, Trichinella, etc. Whip-like or hair-like worms, life cycle direct or indirect;
infection by L1.
Dictophymatoidea
Dictophyma, etc.
Very large worms, life cycle direct; infection by L3 in aquatic
annelids.
Superfamily
Tipical features
BURSATE NEMATODES
Trichostrongyloidea
Trichostrongylus, Ostertagia
Bucal capsule small, life cycle direct, infection by L3.
Dictyocaulus, Haemonchus, etc.
Strongyloidea
Strongylus, Ancylostoma,
Capsula bucal bien desarrollada, placas cortantes and teeth
Syngamus, etc.
usually present, life cycle direct, infection by L3.
Metastrongyloidea
Metastrongylus, Muellerius,
Small capsule buccal, ciclo biológico indirecto, infección por L3
Protostrongylus, etc.
in intermediate host.
Tabla No.3 Clasificación simplificada de los nematodos.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
a
b
Imagen cedida por el Dr. Juan A. Castillo
Imagen cedida por el Dr. Juan A. Castillo
Imagen cedida por el Dr. Juan A. Castillo
c
d
Imagen cedida por el Dr. Juan A Castillo
Figura No.1 Nematodos bursados (a-b), Nematodos No-bursados (c-d).
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Terminología especializada
El conocimiento de la terminología comúnmente empleada en parasitología es fundamental
para abordar el tema de las parasitosis, este punto partimos de la premisa de que para que el
parasitismo se presente se requiere la interacción de múltiples factores pero fundamental mente
la famosa triada epidemiológica, Parásito, Medio ambiente, Mesonero.
El parásito
Casi resulta imposible, generalizar acerca del ciclo de vida de los helmintos, porque los
animales adquieren la infección por muy distintas vías y porque los parásitos pueden emigrar,
casi por todos los tejidos del organismo. Otra característica de muchos helmintos, es que pasan
parte de su ciclo de vida, fuera del huésped.
Sin embargo, hay algunos términos especiales que se emplean con frecuencia, al hablar de
ciclos de vida y que vale la pena definirlos.
Por lo general, se dice que los helmintos son hermafroditas o sin sexos separados, lo cual
es un error, dado que aún los animales hermafroditas, presentan órganos sexuales separados.
Muchos autores, prefieren utilizar los términos Monoico que quiere decir precisamente, que los
órganos sexuales se encuentran en el mismo individuo y el término Dioico, para parásitos con
sexos separados.
Todos los helmintos se reproducen sexualmente, a excepción de una cuantas especies,
que se reproducen por un mecanismo sexual modificado llamado Partenogénesis.
Todos producen huevos, los cuales dan lugar a las formas juveniles o larvas, por lo que el
término vivíparo, es inadecuado. Sin embargo, es muy práctico su uso en la helmintología.
Existen tres categorías reproductivas que son OVIPARO, cuando el parásito produce
huevos, mismos que salen del hospedero en esta forma; OVOVIVIPARO, cuando el parásito
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_________________________________________________________Manual de parasitología
produce huevos y éstos desarrollan larvas, antes de abandonar el hospedero y por último; los
VIVIPAROS, en donde los parásitos liberan sus larvas a partir de los huevos, antes de
abandonar a su hospedero.
De acuerdo a su localización los parásitos pueden ser:
1.- Ectoparásitos si se ubican sobre la superficie corporal y sus efectos se denominan
como infestación.
2.- Endoparásitos si son capaces de ingresar al organismo y sus efectos se denominan
como infección.
-Celoicos: Órganos cavitarios (conductos biliares y vejiga).
- Histozoicos: Tejidos (parénquima hepático).
- Intracelulares: citozoicos/plasmazoicos (citoplasma); citozoicos/cariozoicos
(núcleo)
- Extracelulares:
De acuerdo a su comportamiento pueden ser:
1.- Parásito Obligado, es el que necesariamente vive en forma parasítica.
a).- Temporal o intermitente, es el que parasita de forma momentánea y solo para
alimentarse, Ejemplo:
b).- Periódico, es el que parasita durante una fase de su ciclo biológico. Ejemplo:
c).- Permanente, es aquel que es parásito durante todo su ciclo biológico. Ejemplo:
2.- Parásito facultativo, es el que posee la capacidad de desarrollarse en vida libre o
vida parasitaria.
3.- Parásito Errático o Aberrante, es aquel que migra a lugares u órganos distintos a
los de su localización natural.
4.- Hiperparásito, es un parásito de parásitos.
De acuerdo a su espectro o rango de hospederos.
1.- Parásito estenoico o estenoxeno, es aquel que solo afecta a una especie de
hospederos.
2.- Parásito Eurígeno o Eurixeno, es aquel parásito que posee la capacidad de afectar
a diferentes especies de hospederos.
Fasciola hepatica es eurixeno en el estado adulto y estenoxeno en fase larvaria
(Lymnaea)
De acuerdo al ciclo de vida
1. Parásito Monoxeno o de ciclo directo o de un solo hospedero.
2. Parásito Heteroxeno o de ciclo indirecto o de dos o mas hospederos.
3. Parásito Autoheteroxeno un solo hospedador es HD y HI.
De acuerdo al desarrollo del ciclo de vida
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_________________________________________________________Manual de parasitología
1. Parásito Monógeno, aquel que no presenta alternancia de generaciones, bien es de
reproducción sexual o asexual.
2. Parásito Heterógeno, aquel que efectúa alternancia de generaciones, presenta tanto
reproducción sexual como asexual, ver figura No. 2.
Figura No. 2 Tipos de ciclos biológicos de los nematodos, adaptado de M. Rojas, 2004.
De acuerdo a su mecanismo de alimentación.
1.- Parásito Solenófago, con acceso directo a sangre o a linfa.
2.- Parásito Telmófago, que se alimenta de hemorragias, tejidos lisados y exudados.
El Medio ambiente
El medio ambiente es equivalente al ecosistema y está compuesto del biotopo +
biocenosis
Biotopo: Todos los compuestos físicos en un determinado espacio geográfico, que
interactúan y se relacionan entre sí.
Biocenosis: Son todos los seres vivos de ese biotopo, junto con todas las diferentes
relaciones que se establecen.
1. Factores abióticos = Biotopo
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_________________________________________________________Manual de parasitología
2. Factores bióticos = Biocenosis
1.
Factores abióticos: Se dividen según la composición química del suelo y los
factores atmosféricos:
a) Composición física del suelo:
 Es muy importante sobre el parásito ya que estos se desarrollan en su fase
exógena en el suelo
 También es importante para el hospedador, el suelo determina el tipo de
hospedador y este a su vez el tipo de parásito
 También determina la flora que tiene mucha relación con ambos
parásito/hospedador
b)
Factores atmosféricos: Los más importantes son:

Humedad

Temperatura

Insolación

Aireación
Los factores climáticos se confunden con los anteriores pero estos son un conjunto de
factores atmosféricos que actúan sobre una determinada área o zona geográfica
Clima X son zonas de equilibrio entre estos factores atmosféricos y la vegetación, también se
les llama zonas climáticas por ejem: tundra, bosque, desierto…..etc.
2.
Factores bióticos: En estos factores hay flora/microflora y fauna/microfauna
a)
Flora:
 La mayor parte de los parásitos y los hospederos tienen su comportamiento
ligado a ella
 Esta incluida en la cadena trófica del hospedador
 La microflora del interior del hospedador puede ser el hábitat externo del
parásito
b) Fauna:

Se pueden establecer relaciones interespecíficas positivas y negativas

Muchos parásitos han entrado en la cadena trófica del hospedador
3.
Factores socioeconómicos o supraorgánicos: En esta categoría se incluyen
todas las modificaciones introducida por la especie humana y que alteran el
ecosistema entre el parásito y su hospedador
a.
b.
c.
d.
a)
Practicas agrícolas
Practicas zootécnicas
Alimentación
Estrés
Practicas agrícolas: Influye sobre los seres vivos de forma directa o indirecta
 Deforestación está afecta tanto a la flora como a la fauna, se produce
desaparición de parásitos y la aparición de parásitos nuevos
______________________________________________________Juan José Zárate Ramos
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_________________________________________________________Manual de parasitología
 Desecación de zonas húmedas
 Rotación de cultivos
b) Practicas zootécnicas pastoreo en zonas no habituales o convivencia entre
especies diferentes
c)
Alimentación las modificaciones que ha introducido el ser humano en la
alimentación han provocado:
 Aparición de nuevas patologías asociadas a la nutrición (vacas locas)
 Desaparición de algunas parasitosis
d) Estrés es determinante y puede trasformar el fenómeno del parasitiasis en
parasiotosis ver tabla No.4.
El hospedero o mesonero
Se refiere al organismo que alberga a un parásito, sus categorías son:
a) Hospedero Definitivo (HD) es aquel donde el parásito alcanza al estado adulto y
realiza la reproducción sexual.
b) Hospedero Intermediario (HI) es aquel donde un parásito realiza la reproducción
asexual y/o desarrolla sus fases larvarias, puede haber varios HI.
c) Hospedero paraténico o de espera, es aquel donde el parásito no se desarrolla ni
evoluciona, es útil pero no necesario.
d) Hospedero reservorio, es un vertebrado donde el parásito permanece naturalmente y
constituye una fuente de infección para el hombre y los animales domésticos.
e) Vector, generalmente se refiere a un invertebrado (artrópodo o molusco) capaz de
transmitir a un patógeno (bacterias, virus, rickettsias, protozoos y parásitos metazoos)
de un vertebrado a otro vertebrado.
1) Ciclomultiplicadores: el parásito evoluciona y se multiplica en su interior, la
única fase que es capaz de con continuar su desarrollo en el HD es la última fase.
2) Cicloevolutivos: en los que el parásito sólo evoluciona hasta alcanzar el estado
infectante para el HD.
3) Multiplicadores: en este el parásito se multiplica, pero no cambia de forma y
es infectante en cualquier momento.
Las asociaciones parasitarias
Hay que considerar que el parasitismo es un fenómeno que se ha desarrollado a lo largo
del tiempo y es el resultado de interacciones complejas entre el parásito y su mesonero, estas
interacciones han forzado a ambos organismos a desarrollar adaptaciones en todos los sentidos,
por ejemplo adaptaciones anatómicas, fisiológicas y bioquímicas, resulta impresionante y a la
vez apasionante tratar de explicar como un relación huésped/parásito como en el caso de la
Dirofilariosis las larvas del parásito (microfilarias) incrementan su actividad durante el
crepúsculo lo que coincide con la mayor actividad de su HI (mosquitos) lo que aumenta las
posibilidades de transmisión, en la tabla No. 4, se muestran algunas de las asociaciones entre
organismos.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Sin dependencia metabólica
Con beneficio de uno de ellos
Con beneficio mutuo
Con beneficio de uno de ellos,
pero sólo para transporte y
refugio
Comensalismo
Mutualismo
Foresis
Con dependencia metabólica
Parasitismo
Simbiosis
Con beneficio de uno de ellos en detrimento del otro
Con signos clínicos evidentes
Sin signos clínicos evidentes
Parasitosis
Con beneficio mutuo
Parasitiasis
Tabla No.4 principales asociaciones entre organismos
Los mecanismos patogénicos de los parásitos
Entendiendo por patogenia, la capacidad que posee cada organismo para producir cambios
patológicos o enfermedad, en este caso sobre el hospedero en cuestión. Las distintas formas de
producir cambios patológicos en el hospedero son:
A. Competición por nutrientes, en este caso el parásito requiere de principios
activos (vitaminas, proteínas) que ingiere el hospedador para su metabolismo y
compite con este por ellos.
Por ejemplo los cestodos que se nutren a través de su superficie corporal por medio de sus
microtícos, estructuras capaces de absorber nutrientes del medio, por ello hay especies que
llegan a medir más de 5 metros de longitud, con la finalidad de incrementar la superficie
corporal y por ende la superficie de absorción, muchos cestodos requieren de vitamina B12
preformada (del hospedador) causando en el animal una hipovitaminosis.
Imagen de JJZR
Moniezia spp.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
B. Utilización de componentes del hospedador, en este caso el parásito no
compite por los nutrientes que ingiere el hospedador sino que consume e ingiere
nutrientes que forman parte del propio hospedador, de acuerdo al tipo de
compuestos ingeridos pueden ser:
1.- Hematófagos: que consumen sangre y causan anemia.
Por ejemplo Ancylostoma en caninos y Haemonchus en bovinos.
Imagen de JJZR
Ancylostoma caninum
2.- Histófagos, que consume tejidos, Ejem: Fasciola hepática en bovinos.
Los parásitos son capaces de influir indirectamente sobre la adecuada nutrición
de su hospedero mediante:
a) Reducción de la ingesta (anorexia), Ejem: Ancylostomiosis
b) Alteración de la digestión Ejem: Ostertagiosis tipo II
c) Alteración de la absorción, Ejem: Giardiosis
C. Destrucción de componentes del hospedador o traumática, la destrucción
puede a ser a nivel celular o tisular, hay parásitos que requieren luego de entrar al
hospedador migrar en el interior de este hasta alcanzar su órgano blanco, por lo
que destruyen tejidos a su paso. Aunque la mayoría de los parásitos intracelulares
causan destrucción de la célula a la que parasitan.
Ejemplo de destrucción celular Fasciola hepática en bovinos y de destrucción
celular Leishmania infantum.
Colangitis hiperplasica por F. hepatrica
D. Efecto tóxico, este tipo de Patogenia la ejercen muchos parásitos sobre sus
hospederos y consiste en la generación de productos de excreción y secreción que
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_________________________________________________________Manual de parasitología
resultan tóxicos para el hospedador, por ejemplo en los Ascaroideos producen
diversos productos metabólicos que resultan tóxicos para el animal y se les conoce
genéricamente como ASCARONAS que poseen efectos neurológicos y neurotóxicos
para mamíferos.
Imagen cedida por el Dr. Juan A. Castillo
A. suum
E. Efecto mecánico, este tipo de efecto del parásito sobre su hospedador
dependerá del tamaño, número y localización del parásito en el animal y sus
efectos pueden ser Irritativo, Compresión u Obstrucción.
1) Efecto irritativo, lo causan al fijarse a los tejidos del hospedador por
medio de ganchos o ventosas.
2) Efecto Compresivo, se presenta cuando el parásito o sus formas
evolutivas, presionan tejidos u órganos causando daño en el animal, por
ejemplo, el quiste hidatídico de los cestodos que por su tamaño (200300cm cúbicos) y localización no es raro que tenga esta capacidad
patógena (quiste hidatídico).
3) Efecto Obstructivo, este efecto lo poseen generalmente parásitos de
cavidades y la magnitud de este dependerá del número de parásitos y de
su localización así como de su tamaño, por ejemplo Toxacara canis
(parásito de ID) y Dirofilaria immitis (parásito de corazón) del perro.
4) Efecto perforativo (Macracanthorhynchus)
F.
Efecto sobre el metabolismo, alteran el metabolismo de lípidos, carbohidratos,
proteínas, alteran la función de las enzimas y las hormonas.
G. Alteraciones titulares, tanto a nivel tisular como a nivel celular los parásitos
pueden causar alteraciones, ya sea sobre la morfología de las células afectadas
como sobre la tasa de multiplicación de las mismas de esto se derivan los
siguientes términos:
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_________________________________________________________Manual de parasitología
1) Hipertrofia celular: En este caso la célula aumenta de tamaño pero este
aumento se debe a un mecanismo inducido por el parásito generalmente es
por la presencia de este, en el interior de la misma.
2) Hiperplasia: Es un incremento en la tasa de multiplicación de las células
de un tejido y tiene como consecuencia un aumento en el tamaño del
tejido se pueden dar por dos tipos de mecanismos, como son: mecánicos
o químicos.
Los mecánicos son muy frecuentes en Helmintos porque el parásito roza
un determinado número de células de un tejido y consigue aumentar la
tasa de multiplicación.
Ejemplo: En Fasciola debido a unas espinas que posee en su cuerpo al
moverse por el conducto biliar lo que produce una hiperplasia mecánica.
3) Metaplasia: Es un mecanismo que se relaciona con el aumento de las
células de un tejido, pero no de las propias sino de las que migan hacia
este tejido y esta relacionado con la inflamación, se habla de dos
fenómenos metaplásicos en parasitología.
a) Granuloma parasitario
b) Formación de quistes
a) Granuloma parasitario, existen muchos parásitos que con su sola presencia
provocan una respuesta inflamatoria del hospedador que rodea la zona para
destruir el parásito y de esta forma aislarlo del resto de los tejidos.
b) Formación de quistes, suele ir ligado a granulomas parasitarios ya que
cuando la respuesta inflamatoria (granulomas parasitarios) no logra destruir al
parásito se forma un quiste con lo que se pretende crear una barrera alrededor
del parásito, la pared quística es de tipo acelular o contiene muy pocas células
que acabarán modificándose hasta llegar a ser acelulares.
El parásito frente al quiste suele fabricar una segunda envoltura que le permite
defenderse del propio hospedador:
Así, son dos cubiertas o dos membranas: una externa del hospedador y una
interna del parásito.
Son bastantes frecuentes. Ejemplo:

Trichinella: Es un parásito intracelular en el que el hospedador son las
células del cerdo y no el propio cerdo. Este parásito, al meterse en células
musculares, lo que intenta es destruirlas pero si no lo consigue forma un
quiste con dos capas. Es un quiste intracelular y es igual a uno extra
celular. En ocasiones el quiste es de una sola capa y puede ser hecho por
el parásito como por el hospedador, se le llama Pseudoquiste.
4) Neoplasia: hay parásitos que su presencia induce la formación de
neoplasias que es el aumento de la tasa de multiplicación de las células
de un tejido esto se acompaña de un cambio en la función y la morfología
______________________________________________________Juan José Zárate Ramos
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_________________________________________________________Manual de parasitología
de estas llegando a un punto donde han perdido las características de la
célula original, hay de dos tipos:
a) Malignas: Las células adquieren la capacidad de difundirse por el organismo
(Metástasis) además de un cambio de función y morfología.
b) Benignas: Las células solamente cambian de forma y aumenta su tasa de
multiplicación no hay metástasis.
H. Inmunopatologías: Ciertos parásitos inducen
inmunopatológicas y pueden ser de tres tipos:
y
producen
alteraciones
1. Inmunodepresión: todos o casi todos los parásitos producen en
el hospedador un estado de inmunodepresión, los mecanismos son
muy variados por ejem: bloqueo de efectores inmunológicos
y/o daños del sistema inmunológicos. La mayoría de los
parásitos producen un estado de inmunodepresión de grado
variable por esta razón es imprescindible desparasitar a un
animal antes de vacunarlo, hay que tener en tal caso cuidado
con las vacunas vivas.
2. Formación
de inmunocomplejos: La
formación
de
inmunocomplejos no siempre es benéfica. Los inmunocomplejos
son macromoléculas que se adhieren a los endotelios a nivel renal
o cardiaco, lo que hacen estas macromoléculas en tapizar y
destruir los endotelios lo que origina distintas patologías.

Endocarditis

Glomerulonefritis
I.
3. Hipersensibilidad en los parásitos son muy importantes una
sobre todo la Hipersensibilidad retardada es muy importante
desde dos enfoques
a) por el importante efecto patógeno
b) por su utilizad en el diagnóstico
nota: se profundizara más adelante.
Efecto Bacterifero: muchos parásitos sobretodos aquellos que durante su
migración pasan por el tracto intestinal arrastran bacterias a sitios que
normalmente no están expuestos a estos microorganismos por lo que arrastran
mecánicamente bacterias a sitios donde estas colonizan con facilidad.
Enfermedad parasitaria
Una alteración del estado de salud causada por la presencia de un parásito se le llama
parasitismo esto deriva en una enfermedad parasitaria, de forma general el mesonero u
hospedador soporta mas o menos bien la acción del parásito no perdiendo su capacidad de
reacción, por lo que generalmente no se manifiestan signos clínicos y las lesiones si las hay en
su mayoría son insignificantes esto da lugar a lo que se denomina enfermedad asintomática
este categoría de enfermedad es muy peligrosa, desde el punto de vista epidemiológico ya que
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_________________________________________________________Manual de parasitología
el animal aparenta estar sano y es fuente de infección para el resto de los animales con el paso
del tiempo invariablemente el animal hospedador desarrollara la enfermedad clínica.
Cuando se manifiestan signos clínicos de la enfermedad hablamos de Parasitosis existen
dos tipos:
Parasitosis primaria: en este caso en la asociación huésped/parásito se manifiesta casi
de inmediato los efectos nocivos de esta asociación, el parásito causa lesiones y dan lugar a los
signos en el animal, su efecto es agudo es evidente en tan solo 3 ó 4 días, las razones de tal
efecto son varias como por ejemplo parásitos muy patógenos, número elevado de parásitos,
hospedadores muy jóvenes.
Parasitosis secundaria: en esta asociación las evidencias clínicas de la misma están
ausentes por lo que en principio cursa como una parasitiasis, pero eventualmente y luego de
un tiempo más o menos prolongado se manifiestan los signos de enfermedad, el o los factores
desencadenantes son entre otros cambios de temperatura, la asociación con otros patógenos,
bacterias, virus e incluso otros parásitos, este tipo de parasitosis dan lugar generalmente a
enfermedades crónicas.
La mayoría de las enfermedades parasitarias son de tipo crónicas, son irreversibles y de
mayor peligrosidad que las agudas, causan más perdidas económicas y cuando se les
diagnostica en una explotación la mayor parte de los animales están afectados.
Los mecanismos de transmisión de las parasitosis:
Estos pueden ser de dos tipos:
a) Horizontal: es la transmisión de un animal a otro o de una persona a otra, es decir de
un infectado a un receptor y hay varios mecanismos:
1) Directo: por contacto de un animal con otro, ejem: sarna, por núcleos
goticulares, exudados nasales entre otros.
2) Indirecto: por medio de fómites (materiales inorgánicos) o por medio de
vectores que a su vez pueden ser:
I) Mecánicos: son solamente transportadores y el parásito no se
multiplica en el.
II) Biológicos: el parásito se multiplica en el vector.
b) Vertical: de madres a fetos.
Hay muchos parásitos que tienen la capacidad de atravesar las barreras placentarias y
se denominan parásitos de transmisión transplacentaria, a parte de este tipo de
transmisión existen otras:
1) Transovárica, ejem: babesia
2) Calostral, ejem: Toxocara
3) Lactogénica, ejem: Ancylostoma
Los parásitos además pueden penetrar a través de la piel, vía digestiva (alimentos) o por
mucosas (genital, gingival).
Vías de entrada al hospedador
______________________________________________________Juan José Zárate Ramos
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Las vías de entrada de los parásitos a un hospedador susceptible son la alimentaría,
respiratoria, urogenital, anal, cutánea y conjuntival.
 La vía oral es una de las más comunes y es fundamentalmente por la ingestión de
formas de dispersión parasitarias.
 La vía cutánea es mas selectiva y es utilizada por algunos parásitos que se han
especializado para ingresar por esta vía y en muchos casos a pesar de poseer otras
alternativas de ingreso a su mesonero esta constituye la vía mas exitosa para el
establecimiento de parásito como en el caso de Ancylostoma, por el contrario otros
parásitos como Hypoderma solo lo realizan por la vía cutánea.
 La vía ocular es utilizada de forma más selectiva por algunos parásitos como Thelazia
 La vía nasal es utilizada por algunas larvas de moscas como Oestrus ovis
 La vía genital es utilizada por algunos protozoarios como Tritrichomona foetus
 La vía transplacentaria es común en el caso de Toxoplasma gondii y Toxocara
canis
Existe una forma de penetración muy especial que es utilizada por algunos protozoarios y
nematodos que ingresan al mesonero vía picadura de un vector como en el caso de Babesia,
Trypanosoma, Leishmania y Dirofilaria.
Vías de salida del hospedador
Los parásitos pueden abandonar al mesonero de forma pasiva o activa, la forma pasiva
implica que el parásito no gasta energía en salir de su mesonero y se deja llevar por la
intervención de un vector o por la fisiología del mesonero, por ejemplo los huevos de helmintos
salen junto con las heces del mesonero cuando este defeca y también las L5 de D.immitis
abandonan el pasivamente al ser ingerido por el mosquito vector, también se puede salir por
depredación del Hospedador paraténico e intermediario que contiene las fases infectivas del
parásito como en el caso de T.gondii y T.spiralis existe un tercera forma la mixta.
Nomenclatura para enfermedad
Normalmente se denominaba a las enfermedades parasitarias con términos vulgares, por
ejem: Palomilla (Fasciolosis); Tomatillo, grano, granizo (cisticercosis); cabeza negra
(Histomonosis). En la actualidad se denomina a las enfermedades de forma científica, las reglas
de nomenclatura generalmente utilizan el nombre del género del agente causal de la
enfermedad seguido del sufijo:
a) osis es el más usado
b) asis
c) oiosis
Algunos ejemplos de nombres anteriores y actuales de parasitosis se muestran en la Tabla
No.5.
Ahora
Fasciolosis
Toxocariosis
Leishmaniosis
Antes
Fasciolasis
Toxocariasis
Leishmaniasis
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Filariosis
Fasciolosis
Filariasis
Fasciolasis
Tabla No.5, Ejemplos de nomenclatura actual y anterior para algunas
Enfermedades parasitarias
Las parasitosis son abordadas de diversos enfoques dependiendo del animal o animales
afectados ya sea animales de compañía o de producción, por ejemplo en los animales de
compañía interesa el bienestar individual y del dueño de la mascota, en el caso de animales de
compañía importa el bienestar del hato y del consumidor de los productos y subproductos de
origen animal, por lo que las perdidas producto de las parasitosis son diversas pudiendo ser
desde el impacto psicológico por la muerte de una mascota hasta grandes perdidas económicas
producto de la muerte de ganado en engorda.
Mecanismos de defensa del hospedador frente a los parásitos
Para que se produzcan las parasitosis es necesario que el parásito penetre en el
hospedador por lo que este ha desarrollado mecanismos para evitar la entrada de los parásitos.
a) Los mecanismos físicos o barreras fisicas: Los hospedadores poseen
diferentes barreras para evitar el paso de los parásitos por ejemplo:
 Piel
 Mucosas
Ambas ejercen un efecto mecánico.
b) Los mecanismos químicos o barreras químicas: Son inespecíficos y
sirven para evitar la entrada de los parásitos que lo intentan y la finalidad es
destruirlos. Hay muchos tipos pero el más importante es el que esta mediado
por la Lisozima.
Si los parásitos logran librar estos mecanismos de defensa (físicos y químicos) entonces el
parásito estará ya en el interior del hospedador por lo que a este nivel entran en juego
mecanismos mas complejos e importantes (Los mecanismos inmunológicos) estos pueden
ser de dos tipos:
Mecanismos
inmunológicos
Específicos
Inespecíficos (inflamación)
La inflamación en si misma no es un mecanismo inmunológico en el sentido clásico pero
esta mediado por diversas sustancias. Los mecanismos que se ponen en parcha cuando los
parásitos ingresan en su hospedero son:
a. Inespecíficos: que son Interferon e Interleucinas.
b. Inflamación: es fundamentalmente un mecanismo primario que se activa con la
intención de destruir al parásito, cuando la inflamación no destruye al parásito
se forman los quistes y granulomas.
c. Específicos: el cual se inicia aproximadamente al mismo tiempo que la
inflamación es la inmunidad clásica y se basa en un fenómeno sencillo, así cuado
se produce la entrada o la presentación de una sustancia que posee capacidad
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_________________________________________________________Manual de parasitología
antigénica, el organismo reacciona y pone en marcha una cadena de eventos
específicos sincrónicos que pretenden destruir a el agente invasor.
Como los parásitos no son considerados como un único antígeno un solo
parásito expone muchos antígenos por lo que estimula a la producción de una
respuesta inmune MULTIPLE.
Hay tres tipos de antígenos parasitarios:
1) Antígenos de membrana o de superficie
2) Antígenos somáticos
3) Antígenos metabólicos
Antígenos de membrana o de superficie: se localizan en el exterior del parásito
y pueden ser más de cien los antígenos, el reconocimiento de estos
antígenos es el inicio de la destrucción del parásito también los
anticuerpos que se producen frente a estos son los primeros que se
detectan.
Antígenos somáticos: se localizan en el interior del parásito y son reconocidos
como tales cuando el parásito se rompe de tal forma que quedan
expuestas proteínas y mitocondrias entre otros antígenos internos, la
respuesta inmune frente a estos antígenos resulta de poca utilidad ya
que los blancos hacía los cuales son producidos estos antígenos como ya
se preciso se localizan en el interior del parásito y no están expuestos
cuando este esta vivo. Por lo que no suelen tener valor protector.
Antígenos metabólicos: los parásitos como todo ser vivo generan productos de
excreción y de secreción que pueden ser tóxicos o no.
A partir de aquí la respuesta inmune sigue como la de cualquier otro antígeno.
La inmunidad humoral no es eficaz en muchos de los casos ya que no posee gran
capacidad de destrucción de parásitos, las células B y T son las que recogen la información de
las células presentadoras y a partir de ello forman anticuerpos (IgM, IgA, IgG e IgE).
La eficacia de la respuesta inmune se mide por la capacidad para destruir y anular la
acción de un antígeno. En un parásito se mide en la capacidad que tiene para destruirlo el
hospedador o impedir sus funciones vitales o lesivas.
Hay tres tipos de inmunidad:
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_________________________________________________________Manual de parasitología
1) Inmunidad esterilizante
2) Inmunidad no esterilizante o premunición
3) Inmunidad concomitante
1) Inmunidad esterilizante: es la destrucción total de los antígenos.
2) Inmunidad no esterilizante o premunición: la gran mayoría de los
parásitos estimulan este tipo de inmunidad (premunición) en este caso
la inmunidad no llega a ser esterilizante por dos motivos:
 No queda recuerdo inmune
 La respuesta solo se da mientras exista estímulo antigénico
Sólo se presenta la respuesta inmune mientras está presente el parásito y que el
organismo sea capaz de reconocer sus antígenos.
El fenómeno del parasitismo no suele dejar recuerdo inmunológico de tal forma que ante
una reinfección el comportamiento inmune es como si nunca hubiese existido contacto.
3) Inmunidad concomitante: como ejemplo un fenómeno similar se da
en tumores, donde un animal producto del desarrollo de un tumor es
capaz de destruir nuevos tumores pero no el tumor original, en
parasitología ocurre que el mesonero es capaz de destruir la mayoría de
las larvas de una reinfección, pero no logra eliminar a los adultos de la
primoinfección este fenómeno se da también en hidatidosis,
coenurosis y cisticercosis.
Primoinfección = infección por vez primera
Reinfección = segunda infección y las subsecuentes
Cuando un organismo extraño (parásito) ingresa al hospedero ocurren en términos
generales los siguientes fenómenos:
1) Que el parásito fracase al momento de la infestación/infección a esto se le
denomina inmunidad natural o innata esto ocurre generalmente por que el
hospedero no proporciona en hábitat adecuado
2) Que el parásito logre establecerse y mate al hospedero, generalmente ocurre en
parasitosis masivas en los cuales se multiplica rápidamente el parásitos y mata al
hospedero o bien bloquea órganos vitales estos ocurre entre otras causas
fundamentalmente por que el sistema inmune no respondió adecuadamente.
3) Que el parásito se establezca y el hospedero supera la infestación/infección. Este es el
clásico ejemplo de inmunidad adquirida, el parásito es reconocido como extraño y
desencadena una adecuada respuesta inmune que logra destruir al parásito.
4) Que el parásito se establezca y el hospedero comience a superar la
infestación/infección, pero en lugar de destruirlo se genera una reacción
autoperjudicial, esta es la base de la inmunopatología y que en muchos de los
casos es más peligrosa que los efectos propios de la parasitosis.
5) En el último de los casos y que además es el más frecuente el parásito se establece y
el hospedero comienza a superar la infestación/infección, pero no del todo lo que
______________________________________________________Juan José Zárate Ramos
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_________________________________________________________Manual de parasitología
genera un balance entre el parásito y su mesonero, este es el típico
parasitismo crónico.
Inmunodepresión: durante el curso del parasitismo la respuesta inmune frente a una
amplia variedad de antígenos superpuestos es deprimida se ha demostrado en muchos
protozoarios y algunos metazoarios más no ocurre en coccidias.
Evasión de la respuesta inmune
Los parásitos con la finalidad de perpetuarse en la naturaleza han desarrollado diversas
estrategias para evadir la respuesta inmune, estas estrategias en muchos de los casos
operan secuencialmente o concurrentemente.
Estos son algunos de los mecanismos que utilizan los parásitos para evadir la respuesta
inmune son:
a. El ciclo biologico en si es un mecanismo ya que el parásito sufre cambios
estadiales que conllevan variaciones antigénicas por ejem: la L3 es diferente al
adulto (antigénicamente) en protozoos en esporozoito, es diferente al merozoito
y al gametocito.
b. El desplazarse a un lugar diferente al del desafío inmunológico inicial supone
evasión de la respuesta por ejem: L4 en hígado y adulto en intestino
(Lamanema).
c. El cambio de antígenos de superficie (cambio de vestido) por ejem:
Trypanosoma y Plasmodium.
d. Mimetismo o absorción de antígenos del hospedero (proteínas séricas,
glicoproteínas y glicolípidos) por ejem: Schistosoma, Theileria, Trypanosoma
y Cysticercus.
e. Copiando antígenos del Hospedero (antígenos CMH, glicoproteinas de hematíes A
y B) y distribuyéndolos en su superficie por ejem: Schistosoma, Loa loa,
Fasciola.
f. Estimulando la producción de anticuerpos bloqueadores o inmunosupresores por
ejem: (Filarias, Haemonchus y Demodex).
g. Generando un gran estímulo antigénico con antígenos generadores de
anticuerpos no potectores (efecto de cortina de humo) por ejem: Plasmodium.
h. Capacidad para desarrollarse intracelularmente en: entericitos, hepatocitos,
eritrocitos, macrófagos etc. etc. o bien por su capacidad para localizarse en
lugares inmunológicamente privilegiados como el cerebro y el ojo por ejme:
Toxoplasma.
______________________________________________________Juan José Zárate Ramos
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_________________________________________________________Manual de parasitología
i.
Invadiendo células del propio sistema inmune (macrófagos). NORMALMENTE,
el macrófago fagocita por endocitosis y forma inicialmente un fagosoma, que
requiere fusionarse al lisosoma para formar el fagolisosoma, en cuyo interior se
realiza la digestión. Por ejem: Leismania es restante a los fluidos lisosomales
del fagolisosoma. Toxoplasma evita la fusión del fagosoma con el
lisosoma. T. cruzi destruye al fagosoma y vive en el citoplasma de la célula.
j. El mismo fenómeno de la inmunodepresión.
Inmunopatología
La completa elucidación de las patologías involucradas en las enfermedades parasitarias
está insuficientemente entendida, aun en enfermedades bien estudiadas como la malaria y la
enfermedad de chagas ya que son productos de causas multifactoriales por ejem: por medio del
daño físico directo (larva migrans), otro es el efecto de los metabolitios (ácidos grasos de
Trypanosoma producen anemia), contradictoriamente en muchos de los casos la mayor
patología es debida por la respuesta inmune del propio organismo, el proceso inmunopatologíco
es el resultado de la prolongada duración del parasitismo, que permite la persistencia de la
fuente antigénica asociada a una gran variedad de respuestas inmunes. La consecuencia es una
respuesta inmunitaria hiperactiva que persiste más allá del retiro de la fuente estimuladora y las
más conocidas son:
1. Los antígenos circulantes ya sea cubriendo células, o alojadas en capilares o
tejidos causan hipersensibilidad Tipo I como en: Tricomonas, haemonchus,
Boophilus, Sarcoptes. Esta situación siendo patológica, resulta en algunos casos
beneficiosas como mecanismo de defensa por ejem: en el fenómeno de
“autocura espontánea”.
2. Hipersensibilidad Tipo II, por activación del complemento y lisis celular, por
ejem: babesiosis y anaplasmosis, los hematíes también presentan en su
superficie antígenos del parásito los cuales son detectados como extraños y son
eliminados por citólisis y fagosistiosis por ejemplo en Trypanosoma se fijan
a los eritrocitos fragmentos del parásito o complejos inmunes preformados que
inducen a la eritrofagosistosis provocando anemia.
3. Hipersensibilidad Tipo III, por formación de complejos inmunes que a su vez
generan vasculitis y glomerulonefritis.
4. Hipersensibilidad Tipo IV o hipersensibilidad retardada
Los cambios inmunopatológicos son tan importantes que es apropiado afirmar que la
enfermedad comienza con la respuesta inmune. El ejemplo clásico es Schistosoma, donde los
adultos al cubrirse con antígenos del hospedero permanecen inmunológicamente invisibles
produciendo huevos, que quedan atrapados en diversos tejidos incluyendo el hígado. Estos
huevos producen enzimas que son antígenos (antígenos solubles del huevo), que estimulan
una hipersensibilidad retarda o tipo IV, generando la formación de un granuloma
(producto inmunopatológico), cuya disposición celular es concéntrica alrededor del huevo,
que incluyen a macrófagos, linfocitos, eosinófilos, células epitelioides y fibroblastos.
Otro ejemplo es Lamanema durante su migración hepática.
Inmunomodulación
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_________________________________________________________Manual de parasitología
La respuesta inmune contra malaria, babesiosis, leishmaniosis y schistosomiosis,
pueden ser potenciadas con BCG y Corynebacterium parvum, mediante la activación de
macrófagos y la liberación de mediadores. De esta manera se puede hacer un “by pass” al
mecanismo de evasión usada por los parásitos.
También mediante inmunopotenciadores como Isoprinosine, que actuaría sobre la fase
de interleucina-2, y el levamisol a través del aumento de la concentración de guanosina
monofosfato cíclica; que incrementan la diferenciación, proliferación y función de los
linfocitos.
Recientemente se ha observado que el sistema inmunológico de los individuos en
sociedades desarrolladas donde los esquemas sanitarios son rigurosos al no tener patógenos a
quien combatir como por ejemplo los parásitos, empieza a atacar al propio cuerpo dando lugar
a la aparición de nuevas patologías como la colitis ulcerativa crónica inespecífica por sus
siglas CUCI, donde el sistema inmune provoca ulceraciones en el intestino que resultan en
grandes molestias para la persona que las padece e incluso ponen en riesgo su vida, por otro
lado se ha observado que en un individuo parasitado el sistema inmune se ocupa de librar una
batalla diaria por controlar a los parásitos dejando de lado al intestino, de estas observaciones
se origina el concepto de helmintoterapia es decir el uso de parásitos con fines benéficos en
este caso, al parasitar de manera intencional a personas que padecen CUCI la respuesta
inmune de estos se ocupa de controlar la parasitosis y los síntomas asociados al CUCI
desaparecen, uno de los parásitos que actualmente se usan con este fin es Trichuris suis.
Morfología general de helmintos
El cuerpo de los nematodos es cilíndrico excepto en algunos casos. Existe dimorfismo
sexual (Dioicos) y las hembras generalmente son más grandes que los machos. Presentan una
cavidad Pseudocelómica ocupada por membranas.
La Cabeza forma la parte anterior del cuerpo y la boca es su parte terminal, la cual
presenta distintas estructuras como por ejemplo Labios, Pseudolabios, Dientes, Papilas
cefálicas, Anfides etc. El número primitivo de labios es de seis, sin embargo esta condición no
se presenta en los modernos nematodos. En cada uno de estos labios triangulares se
encuentran dos Papilas sensoriales una en la punta cerca de la abertura de la boca y otra en
la base, las papilas en la punta de los labios forman un círculo interno y las que se encuentran
en la base constituyen un círculo externo. Hay cuatro Papilas cefálicas son también
encontradas una en cada cuadrante cerca de la base de los labios.
Debido a la fusión, en algunas especies, el número de labios se ha reducido dando un
nuevo arreglo en algunos nematodos. Cuando los dos labios dorsales se fusionan se desarrolla
un labio ventral y aparecen labios laterales dando lugar a una boca trilabiada, esta situación
ocurre en la orden de los Ascaridata y Oxyurata, que frecuentemente tienen un labio dorsal
y dos labios laterales. Por otro lado, en otras especies todos los labios se pueden perder y en su
lugar solamente quedan dos grandes labios laterales como ocurre en algunos Spirurata. Estas
nuevas estructuras en los Spirurata son conocidas como pseudolabios, en algunos casos la
boca esta rodeada de pequeñas papilas dando lugar a la Corona foliácea, ver figura No.3.
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Imagen cedida por el Dr. Juan A. Castillo
Boca trilabiada
Imagen de JJZR
Ausencia
de
Imagen
de labios
JJZR
Figura No. 3, Diversos tipos de labios
Imagen cedida por el Dr. Juan A. Castillo
Corona foliácea
Imagen de JJZR
Boca bilabiada
Estos labios pueden perderse completamente y no reemplazarse por ninguna otra
estructura, como ocurre en los Camallanata y algunos Filariata. Otros filaroideos tiene un
tipo de desarrollo como una elevación circular o proyecciones parecidas a dientes conocidas
como odontia, o bien puede haber proyecciones laterales conocidas como helmetos.
Mientras que el número de las papilas labiales se están reduciendo por fusión o por
perdida, los círculos interiores y exteriores son generalmente reconocidos. Son tangibles en su
funcionamiento.
Los amphidos consisten de dos poros, uno en cada lado de la cabeza cerca de la base de
los labios (son quimiorreceptores).
La Cola o terminal posterior de los machos varía en su estructura. En la Strongylata, la
bursa es bilateral, cuticular sostenido por un sistema de rayos musculares paralelos, y en la
Dioctophymata, es una bolsa gruesa, sin rayos, y tiene un succionador en forma de taza.
Ascaridata, esta despuntada y la cola esta ventral mente curveada, y Oxyurata son más
largas y atenuadas. Las colas de Spirurata y Filariata por lo regular están enrolladas y de
alguna forma se parecen a un zarcillo. Las papilas sensoriales están presentes ventral mente o
lateral mente, o ambos, en la parte posterior del cuerpo excepto en Strongylata. La cola de la
mayoría de las hembras es más simple.
La Pared del cuerpo esta compuesta de tres capas la más superficial cutícula, la de en
medio hipodermis y el más interior músculo somática. La cutícula es una capa delgada,
elástica y transparente cubriendo la parte superficial del cuerpo. Se extiende hacia dentro de la
boca, ano, y vulva. La cutícula tiene diversas características en su parte externa, algunas las
podemos observar como finas estriaciones transversas en la mayoría de las especies, además
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_________________________________________________________Manual de parasitología
tienen fuertes anulaciones dando una apariencia de segmentación externa, esto ocurre en
algunas especies y otras presentan cadenas longitudinales, ver figura No. 4.
Figura No.4, Partes de la cutícula de un Nematodo, adaptado de H.
Quiroz, 2005.
Las expansiones laterales de la cutícula se llaman alas cervicales. Estos pueden estar
presentes en la porción posterior del cuerpo alas caudales, o en toda la longitud del cuerpo
como el ala lateral. Áreas infladas de la cutícula en algunas especies aparentan un arreglo
irregular de placas o verrugas. Las expansiones de la cutícula en la región de la cabeza son
denominadas helmets o hoods (Vesículas cefálicas).
Otras diversas estructuras cuticulares son comunes. Cordons y epaulets son en forma de
cintas de la cutícula cefálica que comienzan en el ala cefálica y se unen firmemente en el lado
ventral por la parte anterior. Algunas veces se presentan en los márgenes posteriores de las
anulaciones del cuerpo, formando collarettes espinados, head ballons expandidos, o simple
líneas en el cuerpo.
La capa celular externa del cuerpo de un nematodo no es una epidermis verdadera, ya que
esta cubierta por cutícula. Esta se denomina hipodermis y forma una delgada capa sincitial
situada entre la cutícula y los músculos somáticos.
En la parte dorsal, en la ventral y en cada una de las partes laterales del cuerpo existe un
engrosamiento elongado que se extiende hacia dentro, entre las células musculares de la
cavidad del cuerpo.
Estas son conocidas como Fibras hipodérmicas y se pueden extender a todo lo largo
del cuerpo o pueden estar presentes en la parte anterior. El engrosamiento dorsal y ventral
contiene conductos nerviosos en algunas especies, así como Ascaris lumbricoides.
Las células del músculo somático situadas en la hipodermis, forman la capa más externa
de la pared del cuerpo. Están separadas dentro de cuatro campos por fibras hipodérmicas.
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Los tipos musculares que se presentan en los nematodos son básicamente de tres tipos
ver figura No.6:
Miario: Formado por numerosas células en forma de raqueta, con la porción más ancha
orientada hacia la cavidad celómica, esta capa no es continua y se encuentra interrumpida a
nivel de los cordones dorsal, ventral y laterales, ejem. Ascaris.
Meromario: En este tipo las células son más escasas pero más anchas, ocupando cada
campo de 2 a 3 células, ejem. Strongylus.
Holomario: En este tipo las células son muy numerosas y apretadas entre sí, formando
una capa continua que solo en algunas especies se interrumpe a nivel ventral, ejem. Trichuris
ver figura No.5.
Figura No.5, Tipos musculares en nematodos, adaptado de H. Quiroz, 2005.
Los orificios naturales incluyen la boca, ano, amfides, y los poros excretores en ambos
sexos, en el caso de las hembras, la vulva, se localiza ventral mente y anterior al ano. En la
clase fasmidia, dos órganos sensoriales, las fasmides y amfides, que se abren por un
minúsculo poro en cada uno de los lados en la punta de la cola y en la cabeza.
El Sistema digestivo consiste en un canal alimenticio, sumamente sencillo, lineal
formado por el estoma (cápsula bucal, vestíbulo), esófago, intestino, y recto).
En los machos el recto se abre en la cloaca y el ano es ventral y generalmente
subterminal.
El estoma o la cavidad bucal, está bien desarrollada con paredes gruesas, rudimentarias
que pueden o no estar presentes, cuando están presentes, están al final del extremo anterior
del esófago o parcialmente
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El esófago además posee singular importancia desde el punto de vista taxonómico o para
la identificación de especimenes de tal forma que los tipos principales de esta estructura son:
Rhabditiforme con ensanchamientos anterior y posterior este tipo se presenta en
muchos nematodos de vida libre o nematodos de plantas así como en formas preinfectantes de
Strongylus.
Filariforme siendo ligeramente mas ancho en su parte posterior que en su parte anterior
este tipo de esófago se presenta en las formas infectantes de Strongylus.
La forma de Bulbo con ensanchamiento posterior se presenta en los Ascaroideos.
El Doble bulbo es una variación de la forma anterior en la cual el bulbo sufre una
constricción en su parte media y es típico de los Oxiuroideos.
El esófago puede estar dividido en dos zonas una anterior muscular y una posterior
glandular como en los espirúridos o puede tener una luz tan delgada que da la impresión de
estar formado por una sola capa de células como en los trichuroideos ver figura No.6.
a
b
c
a
d
e
f
a
Figura No.6, Diferentes tipos de esófagos de nematodos: a. Rhabditiforme, b. Filariforme, c. Bulbo abajo, d. Doble
bulbo, e. Espirurido, f. Trichuroideo.
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Clasificación simplificada de los parásitos de interés veterinario.
Ejemplo: Ascaris suum the largest nematoda of swine.
Kingdom - Animal
Phylum – Nemathelmintos.
Clase – Nemátoda.
Subclase – Fasmida.
Orden – Ascaridata.
Familia – Ascarididae.
Subfamilia – Ascaridinae.
Género – Ascaris.
Especie – Suum.
Clasificación de parásitos de interés veterinario
y sus características más importantes.
Phylum -Nemathelmintes, the roundworms.
Class – Nematoda.
Order - Ascaroidea, los adultos de este orden son de pequeños a grandes, parasitan la
porción anterior del intestino delgado de sus hospederos vertebrados, su boca
está rodeada por tres labios un dorsal y dos subventrales, su ciclo biológico es
directo, la fase infestante es el huevo que contiene una larva.
Superfamily - Ascaridoidea, the ascarids.
1.- Family - Ascaridae. Sus adultos son relativamente grandes parasitan el
intestino delgado su ciclo biológico es directo y la fase infestante es el huevo
larvado. Example: Ascaris suum in swine.
2.- Family - Heterakidae. Sus adultos son relativamente pequeños, parasitan
intestino delgado de aves, fase infestante hevo larvado.
Example: Heterakis gallinarum and Ascaridia galli in poultry.
Superfamily - Oxyuriodea, the pinworms.
3.- Family - Oxyuridae. Adultos de tamaño mediano a pequeño viven en intestino
grueso, fase infestante huevo larvado. Example: Oxyuris equi in horses.
Superfamily - Rhabditoidea, free living cycles
4.- Family - Rhabditidae. Adultos pequeños generalmente no parásitos aunque
pueden tener generaciones parásitas, la fase infestante es la larva que es activa y
capaz de perforar piel intacta, hembras partenogénicas.
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Example: Rhabditis and Strongyloides.
Strongyloides westeri in horses.
Order - Strongyloidea, este orden comprende muchas especies de tamaño que va de
pequeño a grande, los machos poseen bursa copulatoria, poseen una cápsula
bucal bien desarrollada y muchas especies presentan dientes o placas cortantes
de naturaleza quitinosa, la mayoría de las especies presentan ciclos biológicos
directos la primera y segunda larva no son parásitas son activas y capaces de
sobrevivir en el medio ambiente (pastos y suelo), la fase infestante es la tercera
larva que puede ser ingerida o penetrar por piel de su hospedero vertebrado.
Cuando el ciclo biológico es indirecto por ejemplo en Metastrongylus, el huésped
definitivo se infesta al ingerir al hospedero intermediario que contenga la larva
infestante.
1.- Family - Strongylidae, adultos relativamente grandes, con cápsula bucal bien
desarrollada viven en colon traquea y riñón, su ciclo biológico es directo, con una
larva infestante activa que generalmente entra al huésped a través de su boca; las
larvas parásitas de las especies intestinales se desarrollan en nódulos en la pared
intestinal.
Example: Strongylus y Trichonema en equinos.
Oesophagostomum en ovejas, vacunos y cerdos.
Chavertia en ovejas, cabras y vacunos.
Syngamus en la tráquea las aves (gusano del bostezo).
Stephanurus en el riñón del cerdo.
2.- Family –Ancylostomatidae (gusanos gancho), los adultos son hemtófagos de
tamaño mediano, con cápsula bucal bien desarrollada y que contiene dientes o
placas cortantes.
Example: Ancylostoma en humanos, perros y gatos.
Uncinaria en perros y gatos.
Bunustomum en oveja, cabra y vacunos.
3.-Family–Amidostomatidae, adultos relativamente pequeños
molleja, proventrículo y esófago de gansos, patos y aves acuáticas.
Example: Amidostomum anseris in ducks.
que parasitan
Superfamily-Trichostrongyloidea, small hair-like worms, small buccal capsule and
large bursa in males, eggs typical form (ovoid).
4.- Family – Trichostrongylidae, the adults lived in the abomasums and small
intestine of ruminants, the infective stage only penetrate by oral ingestion.
Example: Haemonchus contortus in sheep.
Parasitan
Ostertagia ostertagi en ovejas, cabras y vacunos.
estómago
Hyostrongylus rubidus en cerdos.
Ollulanus tricuspis in cats.
Example: Trichostrongylus spp. En ruminates, equinos y aves.
Parasitan
Nematodirus en rumiantes.
I.D.
Cooperia en rumiantes.
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Superfamily - Metastrongyloidea, the lungworms, de tamaño mediano a grande
con cápsula bucal rudimentaria o sin ella viven en bronquios o bronquiolos, o en la
sustancia o en los vasos sanguíneos de los pulmones de sus hospederos, los rayos de la
bursa copulatoria de los machos están reducidos o ausentes, la larva infestante activa
entra al hospedero por vía oral dentro de un hospedero intermediario (invertebrado)
5.- Family - Metastrongylidae. Example: Metastongylus apri in swine.
6.- Family - Protostongylidae. Example: Muellerius capillaris in goats.
7.- Family - Crenosomatidae. Example: Crenosoma vulpis in dogs.
8.- Family - Filaroididae. Example: Aleurostongylus abstrusus in cats.
9.- Family – Dictyocaulidae. Example: Dictyocaulus viviparus in cattle.
Order- Trichinelloidea, los adultos de este orden son de pequeños a grandes y
parasitan diversas partes del tubo digestivo de sus hospederos vertebrados, así
como vías aéreas. El esófago se presenta como un tubo intracelular largo, no
muscular, con luz trirradiada empotrado o contiguo a una sola hilera de células
(glándulas faríngeas). En los miembros de la familia Trichuridae, los dos primeros
tercios de su cuerpo son marcadamente más delgados que el resto del cuerpo,
esta característica es menos marcada en capillaria (gusanos látigo). El ano esta
en la extremidad posterior y no existe cola. En la familia Trichuridae, la cola
posee una cubierta espinosa protrusible, que generalmente contiene sólo una
espícula, pero en la familia Trichinellidae no existe ni cubierta ni espícula. La
vulva de las hembras se abre al final del esófago o frente a él, además las
hembras poseen un solo ovario. Los huevos son de forma ovoide con tapones
polares característicos. Los miembros de la familia Trichuridae son ovíparos y los
de la familia Trichinellidae son vivíparos. El ciclo biológico es directo o indirecto.
Dentro del huevo se desarrolla una larva infestante pasiva. Cuando se trata de
ciclos monoxenos (Trichuris) el huevo infestante es ingerido accidentalmente por
el hospedero y en el caso de ciclos hetroxenos (Capillaria) el huevo infestante es
ingerido por un hospedero intermediario invertebrado y posteriormente este es
ingerido por el hospedero definitivo.
Superfamily - Trichuroidea, long narrow esophagus with stichisome cells
1.- Family – Trichuridae. Example: Trichuris suis in swine
2.- Family – Trichinellidae. Example: Trichinella spiralis in swine
Order – Spiruroidea, los adultos son pequeños y parasitan el tracto digestivo anterior
(esófago y estomago), las especies del género Thelazia parasitan el saco
conjuntival. La boca tiene dos labios laterales y el esófago esta dividido en una
porción anterior corta y muscular y otra posterior larga, muscular y glandular. El
extremo posterior de los machos está enrollado en espiral y las espículas son
diferentes y de distinto tamaño. Los huevos poseen un cascarón grueso y
contienen una larva en su interior al ser puestos. El ciclo biológico es indirecto
siendo artrópodos los hospederos intermediarios.
1.- Family - Spiruridae.
Example: Habronema microstoma in horses.
2.- Family - Thelaziidae.
Example: Thelazia lacrimalis in horses.
3.- Family - Physalopteridae.
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Example: Physaloptera rara in dogs.
Physaloptera praeputialis in cats.
4.- Family – Ascaropidae.
Example: Ascarops strongylina en cerdos.
5.- Family – Acariidae.
Example: Acuaria spiralis en gallináceos.
6.- Family: Tetrameridae.
Example: Tetramers americana en aves.
7.- Family – Gnatostomidae.
Example: Gnatostoma spinigerum en perros y gatos (humanos).
Order – Filarioidea, las especies contenidas en este orden poseen un cuerpo
típicamente alargado y filiforme, sin embargo algunas especies son pequeñas
como Setaria. En su mayoría parasitan cavidades generales del cuerpo, sistema
linfático, tejido conectivo y sistema nervioso de sus hospederos vertebrados, la
boca es pequeña y no poseen cápsula bucal, el esófago esta dividido en una
porción anterior muscular y una posterior glandular, las hembras presentan un
poro genital de implantación anterior, el ciclo biológico es siempre hetroxeno,
siendo los hospederos intermediarios insectos hematófagos que trasmiten por
picadura, la larva infestante al hospedero definitivo (vertebrado), la primera
larva se llama “microfilaria”, la cual se encuentra libre en la sangre del
hospedero vertebrado y de está es tomada por el insecto (hospedero
intermediario) que la trasmite a un nuevo hospedero definitivo al alimentarse de
este.
1.- Family – Filariidae.
Example: Parafilaria bovicola in cattle.
2.- Family – Setariidae.
Example: Setaria equina in horses.
3.- Family – Onchocercidae.
Example: Onchocerca cervicalis in horses.
Superfamily – Cracunculoidea. Las hembras son vivíparas, los adultos parasitan
cavidades generales del cuerpo.
Family – Dracunculidae. Los miembros de esta familia son originarios de África y
fueron introducidos a América.
Example: Dracunculus medinensis in dogs.
Superfamily - Dioctophymoidea, the large kidney worm. Los adultos de las especies
de esta superfamilia son de tamaño mediano y parasitan el tracto
digestivo y otros órganos de mamíferos y aves acuáticas. La boca carece
de labios y esta rodeada de 6 a 18 papilas colocadas en uno o dos
círculos, la cutícula presenta estriaciones transversales en su parte
anterior, en ocasiones pueden presentar espinas. Los machos presentan
bursa copulatoria en forma de copa, sin rayos y una larga espícula. La
hembra presenta una vagina muy larga y la vulva se encuentra cerca del
extremo anterior del cuerpo o en las proximidades del ano.
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1.- Family – Dioctophymatidae.
Example: Dioctophyma renale in dogs, esta especie es de color rojo sangre se le
localiza en el riñón y con menor frecuencia en la cavidad peritoneal, pleural e hígado
de perros, zorros, nutrias, mofetas, martas, minks, comadrejas y focas, D. renale es
uno de los nemátodos conocidos de mayor tamaño, las hembras llegan a medir
hasta 103cm.
Phylum –Acanthocephala,
Thorny headed worm, aunque originalmente fueron
clasificados como nematodos, en la actualidad se les considera en un Phylum
independiente (Acantocephala), el carácter distintivo de los miembros de este phylum
es su prosbóscide hueca la cual esta armada con hileras transversales de ganchos,
por lo que se les conoce como “gusanos con cabeza espinosa”, dicha estructura
(prosbóscide) le sirve para fijarse al intestino de su hospedero vertebrado y no posee
ninguna función relacionada con la nutrición por lo que esta estructura seria un
equivalente a las ventosas y ganchos presentes en los cestodos que estos usan con el
mismo propósito, se asemejan a los cestodos en que ambos carecen de boca, ano,
canal digestivo y viven en el tubo digestivo de sus hospederos nutriéndose del
contenido intestinal al través de su epidermis. Existe dimorfismo sexual (Dioicos)
1.- Family- Gigantorhynchidae, vive en el yeyuno de suidos el macho mide
hasta 10cm. Example- (Macracanthorhynchus spp. in swine)
Phylum - Platyhelminthes - Flatworms
Class – Cestoda, gusanos cinta, cuerpo segmentado de mm a metros de longitud, sin
aparato digestivo, monoicos (hermafroditos) su cuerpo esta dividido en:
a).- Escolex o cabeza que es una estructura de fijación la cual puede tener:
1.- Con rostelo o rostelum (armado) con una o varias hileras de ganchos y
cuatro ventosas circulares u ovaladas.
2.- Sin rostelo (desarmado) con cuatro ventosas circulares.
3.- Sin rostelo (desarmado) con dos ventosas alargadas o Botridias.
b).- Cuello (generador de proglotidos).
c).- Cuerpo o estróbilo (es una estructura de alimentación “microtricos” así como
una estructura reproductiva). Ver figura No.7.
Tipos de Proglótidos
-Inmaduros.
- Maduros.
- Grávidos (huevos y bolsas ovígeras).
- Postgrávidos (Tocostoma).
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Figura No.7, Partes de un cestodo adulto, adaptado de H. Quiroz, 2005.
- Unilaterales.
Tipos de poros genitales - Anfilaterales (regulares e irregulares).
- Bilaterales.
Figura No.8, Genitales femeninos de un cestodo, adaptado de H. Quiroz,
2005.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Figura No.9, Genitales masculinos de un cestodo, adaptado de H. Quiroz,
2005.
Order – Pseudophyllidae, escolex desarmado y botiridia presente (ventosas alargadas).
Example: Diphylobothrium latum in dogs.
Spirometra spp. In cats.
Order – Cyclophyllidea, escolex con cuatro ventosas.
1.- Family- Anpolocephalidae, sus miembros son de tamaño mediano a
grande, el escólex carece de rostelo y ganchos, no existe cuello entre el escólex y
los proglótidos siendo estos más anchos que largos, cada uno presenta poros
genitales en los márgenes, los huevos son periformes, en el interior de estos se
encuentra el embrión hexacanto.
Respecto al ciclo biológico los hospederos intermediarios son ácaros oribátidos en
los cuales se desarrolla la fase larvaria infestante para el vertebrado llamado
“cisticercoide”.
Example: Moniezia benedeni en rumiantes.
Anoplocephala magna en equinos.
2.- Family- Davainidae, las especies de esta familia son de tamaño pequeño a
mediano, poseen un rostelo retráctil armado con ganchos en forma de T, además
presentan ventosas armadas. Los poros genitales son unilaterales y alineados
regular e irregularmente. Los hospederos intermediarios son en el caso de
Raillietina hormigas, mientras que en el caso de Davainea, caracoles y babosas,
en estos se desarrolla la fase larvaria llamada “cisticercoide” que es infestante
para aves (hospederos definitivos).
Example: Raillietina y Davainea spp. En aves.
3.- Family: Mesocestoididae, las especies de esta familia están entre los
órdenes Cyclophyllidea y Pseudophyllidae, parasitan zorros, perros y gatos, el
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_________________________________________________________Manual de parasitología
genero representativo de esta familia es el Mesocestoides lineatus que parasita
caninos y sus congéneres salvajes. Los parásitos adultos poseen cuatro en su
escolex pero carecen de rostelo, el poro genital en ventral y mediano.
4.- Family- Dilepididae, las especies de esta familia parasitan aves y
mamíferos, son de tamaño pequeño a mediano, poseen cuatro ventosas que
pueden tener o no ganchos, la mayoría de las especies poseen un roselum
armado con una o más hileras de ganchos, sin embargo algunas especies poseen
un rostelum inerme y otras incluso carecen de él, las aperturas genitales son
unilaterales o pueden alternarse regular o irregularmente, la fase larvaria es el
cisticercoíde.
Example: Dipylidium caninum en perros (hospederos intermediarios “pulgas”).
5.- Family- Hymenolepididae, las especies de esta familia son parásitas de
humanos, roedores y aves, los adultos son de tamaño mediano a pequeño,
poseen un rostelo esférico o en forma de cono armado con una sola hilera de
ganchos, los proglótidos son más anchos que largos, los HI son insectos.
Example: Hymenolepis nana en humanos y roedores.
6.- Family- Taeniidae, las especies de esta familia son de medianas a grandes,
los proglótidos cuando contienen huevos fecundados son más anchos que largos,
el escolex posee cuatro ventosas inermes el rostelum esta armado con una doble
fila de ganchos, poseen poros genitales únicos en cada proglótido localizados en
forma alternativa. La fase larvaria es un cisticerco, cenuro o equinococo.
Example: Echinococus granulosus in dogs.
Class -Trematoda, flukes, de apariencia foliácea, con ventosa oral (boca) y ventral
(fijación), hasta 3cm de tamaño, aparato digestivo ciego o incompleto, monoicos
con ciclos biológicos heteroxenos HI (caracoles y hormigas), formas larvarias:
miracidio, esporocisto, redia, cercaria y metacercaria. Hay dos subclases la
Monognea (C.B. monoxeno) y la Dignea (C.B. heteroxeno).
Subclass - Digenea- alternation of sexual and asexual generations, one or more
intermediate hosts.
1.- Family- Fasciolidae. Example: Fasciola hepatica in cattle.
2.-Family- Paramphistomatidae. Example: Paramphistomum cervi in cattle.
3.-Family- Dicrocoeliidae. Example: Platynosoma fustosum in cats.
4.-Family- Opisthorchiidae. Example: Metorchis conjuctus in dogs.
5.-Family- Heterophyidae. Example:.Cryptocotyle lingua in dogs.
6.-Family- Troglotrematidae. Example: Paragonimus kellicotti in cats.
7.-Family– Echinostomatidae. Example: Echinostoma revolutum in birds.
8.-Family- Strigeidae. Example: Alaria canis in dogs.
9.-Family- Plagiorchidae. Example: Prosthogonimus in birds.
10.-Family- Schistosomatidae. Example: Schistosoma nasali in horses.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Protozoología.
Clasificación de los protozoarios de interés veterinario.
Subphylum
Phylum
Protozoa
Sarcomastigophora
Sporozoa
Ciliophora
Microsphora
Protozooa
Clase
Sarcodina
Mastigophora
Coccidía
Piroplasmida
Orden
Haemosporida
Phylum Protozoa, son animales eucarióticos unicelulares.
Subphylum Sarcomastigophora:
- Núcleo vesicular, órganos de locomoción: flagelos y/o pseudópodos.
- Reproducción asexual: división binaria y/o múltiple.
Clase Sarcodina: Órganos de locomoción pseudópodos.
Ejemplo: Entamoeba histolítica
Clase Mastigophora: Órganos de locomoción flagelos.
Ejemplo: Trichomona foetus.
1) Monoflagelados (excepto T. equiperdum*)
Hospedero intermediario insectos.
a) TRYPANOSOMA o TRYPOMASTIGOTE.
Extracelulares plasmáticos y algunos intracelulares.
Grupo Estercolaría.
Subgénero: Schizotrypanum: T. cruzi.
Grupo Salivaría.
Subgénero: Duttonella: T. vivax.
: Nannomonas: T. congolense.
: Picnomonas: T. suis.
: Trypanozoon:
- En vector biológico: T. brucei.
- En vector mecánico: T.evansi, T. equinum, T. equiperdum*
*Agente etiológico de enfermedad venérea en equinos.
b) LEISHMAIA o AMASTIGOTE.
Intracelulares.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
1) Monoflagelados
Ejemplo: Leishmania infantum.
2) Pluriflagelados.
Ejemplo. H. meleagridis, T. foetus, T. gallinae, G. canis.
Subphylum Apicomplexa o Sporozoa:
- Su locomoción se realiza por medio de flexión o desplazamiento del cuerpo.
- Presentan complejo apical una estructura que aparentemente ayuda a la penetración de
las células del hospedero y visible solo al microscopio electrónico.
- Su reproducción es sexual y asexual.
Reproducción: Asexual: División binaria
Endodiogenia
Endopoligenia
Esquizogonia
Trofozoítos o zoitos
Merozoitos
Reproducción: Sexual: Micro y Macrogametos (esporozoitos).
Clase Piroplasmida: Parásitos de sangre, que se trasmiten por vectores tales como
garrapatas ente otros, en estos vectores ocurre la reproducción sexual. Ejemplos: Babesia,
Thileria y Cytauxzoo
Clase Coccidia: Parásitos de células epiteliales con reproducción sexual y asexual.
Gametogonia, esporogonia y esquizogonia.
1).- Esporogonia interna o endógena monoxenos.
Género Cryptosporidium: Ooquiste con 4 esporozoitos (no presentan
esporoquistes).
Ejemplo: C. parvum.
2).- Esporogonia externa o exógena en el medio ambiente monoxenos y
heteroxenos.
a).- Monoxenos.
Género Eimeria: Ooquistes con 4 esporoquistes y cada esporoquiste con 2
esporozoitos.
Ejemplos: E. tenella, E. bovis, E. stiedae.
Género Isospora: Ooquistes con 2 esporoquistes y cada esporoquiste con 4
esporozoitos.
Ejemplo: I. canis.
b).- Heteroxenos.
Del grupo “Predador presa” con Ooquiste morfológicamente similar a Isospora.
Facultativos que pueden o no usar hospederos intermediarios.
Género Cystoisospora: Ooquistes que salen sin esporular, quiste polizoico
panhistotrópico (quistozoito).
Ejemplos: C. felis, C. rivolta.
Género Toxoplasma: Ooquistes que salen sin esporular, quiste polizoico
panhistotrópico (bradizoitos).
Ejemplo: T. gondii.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Obligatorios que requieren hospederos intermediarios.
Género Sarcocystis: Ooquistes y/o esporoquistes que salen esporulados,
quiste polizoico en músculos (merocoitos).
Ejemplos: S. bovifelis, S. ovicanis.
Género Hammonida: Ooquistes que salen sin esporular, quiste polizoico en
músculos (bradizoitos).
Ejemplo: H. hammondi.
Género Besnoitia: Ooquistes que salen sin esporular, quiste polizoico en
fibroblastos (bradizoitos).
Ejemplo: B. Besnoiti.
3).- Esporogonia interna o endógena en el vector, heteroxenos obligados.
Subphylum Microsphora:
Orden Haemosporida: Parásitos de las células sanguíneas y cuyos vectores son los
dípteros.
Género Plasmodium: Esquizogonia y gametogonia en hematíes de aves y
mamíferos.
Ejemplos: P. malarie, P. gallinaceum.
Género Haemoproteus: Esquizogonia en endotelios y gametogonia en
hematíes de palomas, patos y pavos.
Ejemplo: H. columbae.
Género Leucocytozoon: Esquizogonia en células parenquimatosas y
gametogonia en leucocitos afecta a patos y gansos.
Ejemplo: L. simondii.
Subphylum Ciliophora:
- Órganos de locomoción son los cilios.
- Reproducción sexual y asexual:
Reproducción sexual: Fisión binaria.
Reproducción asexual: Conjugación.
Ejemplo: Balantidium coli. in swine.
Phylum – Arthropoda.
Class- Insecta, the insecta.
Order - Diptera – flies.
Example: Musca spp., Siphona sp, on cattle.
Orden - Siphonoptera – fleas.
Example: Ctenocephalides spp. on dogs.
Orden - Mallophaga - biting lice.
Example: Haematopinus spp., Linognathus spp. on horses.
Class- Aracnida
Order - Araneida- spiders.
Order - Acarina- mites and ticks.
1.- Family -Ixodidae- hard ticks. Example: Dermacentor spp. etc.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
2.- Family -Argasidae- soft ticks. Example: Otobius spp. etc.
3.- Family -Dermanyssidae-mites. Example: Dermanyssus spp. etc.
4.- Family -Sarcpotidae- mites. Example: Sarcoptes spp.etc.
5.- Family -Demodicidae-mites. Example: Demodex spp. etc.
6.- Family -Cheyletidae- mites. Example: Cheyletiella spp. etc
7.-Family -Psoroptidae- mites. Example: Psoroptes spp. etc..
Aracnoentomología.
Comprende el estudio de los ácaros, garrapatas e insectos, ellos son dioicos, con
cuerpo que presenta simetríabilateral formado de segmentos articulados, su cuerpo
encuentra cubierto por un exoesqueleto formado principalmente de quitina (cuya función
protección mecánica y evitar tanto la evaporación como la transpiración), el desarrollo de
cuerpo es mediante mudas o ecdisis.
un
se
es
su
Clasificación simplificada de acuerdo a su morfología general:
Cheliceratos u octópodos.
En este grupo se incluye a las garrapatas y a los ácaros.
-
Morfología:
Presentan un Capítulo o Gnatostoma cuya función es la perforación y la aprehensión, el
cual esta constituido de:
 1 Hipostoma, buscar definición:
 2 Cheliceros, buscar definición:
 2 Palpos, buscar definición:
 Además presentan un Cuerpo o Idiostoma el cual esta constituido de:
- Propodosoma o región II la cual presenta 2 pares de patas.
- Metapodosoma o región III la cual presenta 2 pares de patas.
- Opistosoma o región caudal.
Las fases evolutivas de una garrapata son:
a) Huevo
b) Larva
c) Ninfa
d) Adulto o Imago
Nota: Las garrapatas pueden tener uno, dos y hasta tres hospedadores dependiendo del
tipo de garrapata, ver figuras No. 10,11 y 12.
1).- Ácaros: De tamaño pequeño entre 150µ y 2mm.
2).- Garrapatas: De tamaño mayor a 2mm.
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Tipos de garrapatas:
a).- Garrapatas Duras (Ixodidas) ver figura No. 10.
 Capítulo terminal.
 Presencia de Escudo dorsal quitinoso.
 En su evolución solo presenta un estadio de ninfa y puede poseer 1, 2 ó 3
hospederos dependiendo del género de garrapata ver figuras No. 12,13 y 14.
Figura No. 10 Garrapata Dura (Ixodida).
b).- Garrapatas Blandas (Argasidas) ver figura No.11.
- Capítulo ventral.
- Ausencia de escudo dorsal quitinoso.
- En su evolución presenta más de un estadio ninfal, por lo que requiere de varios
hospederos, hasta alcanzar el estado adulto.
Figura No. 10 Garrapata Blanda (Argasida)
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Figura No. 12, Garrapata de un hospedador.
Figura No. 13, Garrapata de dos hospedadores.
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Figura No. 13, Garrapata de tres hospedadores.
Insectos Mandibulados o hexápodos.
En este grupo se incluyen las chinches, moscas, los piojos y las pulgas entre otros.
Morfología:
*Cabeza: -2 Antenas.
-2 Ojos compuestos.
Aparato bucal adaptado al tipo de alimentación.
-2 Mandíbulas.
-2 Maxilas.
-1 Labio superior o epiferinge (Labrum).
-1 Labio inferior (Labium).
-1 Hipofaringe.
*Tórax: -Prototorax: Región del primer para de patas.
-Mesotorax: Segundo par de patas y primer par de alas.
-Metatorax: Tercer par de patas y segundo par de alas.
Ápteros: Insectos carentes de alas (piojos y pulgas).
Dípteros: Insectos con alas (Moscas).
*Abdomen: Formado por 10 segmentos.
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Figura No.14 Características anatómicas de Dípteros e Himenópteros
1).- Hemípteros: El primer par de alas posee parte basal coriacea y la parte basal
membranosa, el segundo para de alas es totalmente membranoso,
cuerpo aplanado dorso ventralmente.
Ejemplo: Chinches (Triatomas).
2).- Dípteros: Primer par de alas enteramente membranoso, segundo para de alas
modificado (Haleteres).
Ejemplo: Moscas, Mosquitos y Tabanos.
3).- Hipoboscidos: Estos pueden ser sin alas o con alas, son parásitos de mamíferos y
aves, su cuerpo es aplanado dorsoventralmente, algunas especies
poseen la capacidad de perder las alas al encontrar a su huésped.
Ejemplo: Pseudolynchia canariensis parasita palomas.
Melophagus ovinus en ovinos.
4).- Phthirapteros o Piojos: No poseen alas (ápteros), con un cuerpo aplanado dorso
ventral mente. Pueden ser de dos tipos:
a).- Picadores (Anoplura): La cabeza es igual o más angosta que el tórax, son
parásitos de mamíferos en su mayoría, poseen órganos bucales
adaptados para picar y taladrar la epidermis de sus hospederos.
Ejemplos: Haematopinus.
b).- Masticadores (Mallophaga): La cabeza es más ancha que el tórax, poseen
estructuras bucales adaptadas para masticar por lo que se nutren de
tejidos epiteliales de la superficie corporal.
Ejemplo: Damalinia.
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5).- Siphonopteros o pulgas: No poseen alas (ápteros), su característica principal es
que están aplanados lateralmente.
Ejemplos: Ctenocephalides y Tunga.
Figura No.15 Características Generales de los ciclos evolutivos de los Dípteros, Servicio Público de Salud de los Estados
Unidos.
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Técnicas diagnósticas básicas en parasitología
El diagnóstico constituye la parte fundamental al abordar un proceso morboso, sin
embargo no sería posible sin una adecuada toma de muestra y su envío al laboratorio.
A pesar de los grandes avances que han ocurrido en las ciencias médicas, con respecto a
las técnicas diagnósticas como por ejemplo la integración al diagnóstico, de los principios de las
reacciones antígeno/anticuerpo y enzima / sustrato, como en la prueba de (ELISA) Enzima
ligada a Inmunoensayo o la detección molecular de secuencias genéticas como en la prueba de
(PCR) Reacción en Cadena de la Polimerasa, éstos son sólo algunos ejemplos de lo anterior.
En el área del diagnóstico parasitológico, sobre todo en las parasitosis gastroentéricas, las
técnicas coproparastioscópicas (CPS) siguen siendo de gran valor en el diagnóstico y aún mas,
son las más utilizadas y en comparación con otros métodos diagnósticos resultan más prácticos
y económicos.
El fundamento de las pruebas (CPS) es el de poner de manifiesto alguna de las fases
evolutivas de un parásito como por ejemplo: Los huevos, larvas, quistes y trofozoítos entre
otros, mediante el uso de soluciones de flotación. La gravedad específica (GE) que aportan las
distintas soluciones de flotación es variable, por ejemplo el Dicromato de Sodio posee una GE
de 1.36 y es más recomendada que la que aporta en Sulfato de Zinc (GE de 1.18), Sulfato del
Magnesio (GE de 1.25), la del Nitrato de Sodio (GE de 1.25), o la saturada de Azúcar (GE 1.23)
En este manual solo revisaremos las técnicas (CPS) más comunes.
Colección y
envío de muestras
Las muestras fecales se deberán de tomar directamente del recto y se procesarán
inmediatamente después, dependiendo de la especie animal de que se trate, será la forma de
obtención de las mismas, por ejemplo en pequeñas especies se puede utilizar el termómetro,
una * cucharilla rectal o bien una varilla de vidrio. Si bien la cantidad de heces que se obtiene
con ellas es pequeña, es apenas suficiente para un examen directo. En grandes especies es
común el uso de guantes de palpación para colectar las muestras directamente del recto.
En caso de no poder realizar las colectas por ninguno de estos métodos, se le puede tomar
del suelo cuidando de estar seguros, de que pertenece al paciente en cuestión y de que son
frescas.
La cantidad de materia fecal que se recomienda colectar es de 5 a 10gms., Sin embargo la
cantidad dependerá del tipo de prueba(s) a realizar.
* Dibujar en la última hoja del capítulo.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Manejo de la muestra
Para el manejo de las muestras se utilizan preferentemente bolsas de plástico o frascos de
vidrio limpios de boca ancha, el material no debe de estar contaminado con tierra, agua u orina,
los frascos se colocan en lugares frescos, pues el calor acelera los fenómenos de fermentación.
Los datos que acompañan a las muestras son nombre y dirección de la persona y del animal se
anotará la edad, sexo, estado fisiológico y de ser posible, antecedentes terapéuticos; así como
la hora y fecha de la toma de la muestra.
Conservación de la muestra
Los conservadores pueden ser físicos o químicos. Los medios físicos de conservación, son
las temperaturas bajas. Por ejemplo 4ºC muchos estadios parasitarios pueden ser preservados
al menos por dos meses con un desarrollo mínimo.
A 10ºC que es la temperatura del refrigerador, las muestras así conservadas podrán
examinarse 24 y hasta 48 horas después de evacuadas, en el caso de heces diarreicas éstas
deberán examinarse en un lapso no mayor de una hora. Los medios químicos permiten la
conservación de las muestras por más tiempo, sin correr el riesgo de que las formas parásitas
se deformen o destruyan. Las muestras se pueden conservar indefinidamente en formalina
al 10% (1 parte de heces 9 partes de formalina).
Aproximadamente el 50% de los huevos de algunos Strongyloideos de rumiantes, fueron
detectados luego de 200 días de conservación con esta solución, la solución al 5% se
recomienda para muestras, en las que se sospecha que contengan quistes de protozoarios.
Examen de las heces
El examen de las heces principia, desde la observación directa de las mismas, lo cual pone
de manifiesto su consistencia, la cual puede ser pastosa, reseca o diarreica o bien; un trastorno
orgánico como la melena, esteatorrea, ______________________ por mencionar algunos.
Además se pueden identificar parásitos completos como por ejemplo: Ascaroideos y
Trichostringyloideos, entre otros; También porciones de parásitos, como en el caso de cestodos
(Proglótidos).
Existen varios métodos de laboratorio que demuestran la presencia de estadios
parasitarios como evidencia del parasitismo concomitante. Sin embargo, a pesar de la búsqueda
acuciosa de ellos, es imposible afirmar con seguridad la ausencia de huevos, larvas o algún otro
estadio en el animal, por distintos factores como por ejemplo:
-
Errores en el muestreo.
Variación en el lapso del ciclo circadiano.
Edad de animal.
Estado fisiológico.
Estadio evolutivo del parásito.
*___________________________
*___________________________
* Nota: agregar otros factores que a criterio tuyo pudieran influir en lo anterior.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Por ello, el resultado de un examen fecal, en el cual no se hallen evidencias de formas
parásitas o de estadios evolutivos de los mismos, no deberá de expresarse como negativo, sino
como no se observa.
Antes de pasar a la descripción de las técnicas (CPS) más comunes, mencionaremos
algunos de los criterios básicos, al realizar este tipo de exámenes.
a).-Siempre realizar los exámenes en la misma forma y bajo iguales condiciones.
b).-Para tener una idea de la situación de un hato numeroso (más de 100 cabezas),
seleccionar alrededor del 10% de los animales, de los cuales la mitad serán animales
muy flacos y la otra, de mejor condición física.
c).-En algunos casos, para obtener una idea más segura del grado de infección de un animal,
se puede mezclar varias tomas, del total de excrementos producidos en 24 hrs.
d).-Las muestras mal colectadas, inadecuadamente conservadas y muy viejas, no sirven para
observaciones y estudios ulteriores, e inclusive pueden conducir a resultados erróneos o
falsos.
e).- Llevar a cabo, la examinación con esmero y de forma sistemática.
Método directo simple
Es uno de los métodos más antiguos que se conoce, probablemente Anton Va Leewenhoek
a mediados del siglo XVII, fue de los primeros en utilizarlo, al encontrar y observar en sus
propias heces, trofozoítos de Giardia lambia. Es un método sencillo y económico, que a
continuación se describe.
Material:
-
Láminas portaobjetos y cubreobjetos.
Solución dilutora (agua corriente, suero fisiológico, Lugo débil, MIF).
Varillas de vidrio o palillos de dientes.
Heces en volumen equivalente a un grano de arroz.
Procedimiento:
- Se colocan las heces en un portaobjetos, se agrega una gota de la solución dilutora y con
la ayuda de la varilla de vidrio, se extiende hasta hacer un área transparente.
- Se cubre con el cubreobjetos y se observa al microscopio.
Comentario:
Si la solución dilutora es Lugo débil, en el caso de Amebas y Giardias, quedarán coloreadas
y se facilitará su detección. Debido a la pequeña muestra de heces utilizadas, este método es
insuficiente para asegurar que un animal es negativo y por ello, se le debe de complementar
con algún método de concentración.
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Métodos de concentración
por Flotación
Estos métodos se fundamentan, como su nombre lo indica, en hacer flotar las formas
parásitas o sus estadios evolutivos, sobre todo los (huevos), valiéndose de la gravedad
específica de una solución. Para la mayoría de los huevos de helmintos la gravedad específica
que permite que floten de manera selectiva oscila entre 1.10 y 1.20 huevos de mayor peso,
como en el caso de trematodos y algunos nemátodos flotan en soluciones de hasta 1.30 y
1.35, en las que es frecuente que ocurra Plasmolisis, Osmosis y ruptura de los mismos,
provocando que se deformen y en el peor de los casos, sean irreconocibles.
Las soluciones más usadas, por eficientes y económicas son:
a).-Solución saturada de Cl Na, con la cual se obtiene una densidad de 1.19 a 20ºC Se prepara
de la siguiente forma: Sal de mesa 360gms más 1,000ml de agua desmineralizada.
b).-Solución saturada de azúcar, con la cual se obtiene una densidad de 1.12 a 15ºC y se
prepara de la siguiente forma: Azúcar 1,280gms más 1,000 ml. de agua desmineralizada, a
esta solución se le tiene que agregar 10ml de fenol licuado o 20ml de fenol comercial, para
evitar la formación de hongos u otros microorganismos.
Existen ventajas y desventajas al comparar estas soluciones, en términos generales, la
solución glucosada es menos plasmolítica, además se puede guardar una preparación de ésta
por 24 horas a 4ºC con un mínimo de destrucción de huevos. La desventaja es que es muy
pegajosa y atrae artrópodos sobre todo moscas. Cuando se utiliza solución salina, la distorsión
tiende a secarse y cristalizarse en pocas horas. Sin embargo la vida útil del material (porta y
cubreobjetos) es mayor por su fácil lavado.
Antes de pasar a describir los métodos de flotación, es necesario aclarar que estos
métodos pueden ser cuantitativos o cualitativos, lógicamente con los primeros (cuantitativos) se
puede observar la forma del huevo y de esta manera, realizar una identificación, sin embargo
cada técnica preferentemente deberá ser utilizada para su propósito específico.
Adaptado de W.J. Foreyt, 2001.
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Método cualitativo de concentración
por Flotación
Material:
-
Porta y cubreobjetos.
Tamiz (colador o doble capa de gasa).
Mortero.
Gradiente de densidad (solución, saturada de azúcar o solución saturada de sal).
Tubos de ensayo de 15ml.
vaso de precipitado e 50ml.
Procedimiento:
1.- Se homogenizan con la ayuda del mortero más o menos 2gms. de heces en
aproximadamente 20ml. de agua.
2.- Se tamiza y el filtrado se colecta en tubos de ensayo.
3.- Se le deja sedimentar por 30minutos o se centrifuga a 100rpm/1 minuto, se decanta el
sobrenadante.
4.- Se suspende el sedimento, pero ahora agregando la solución de flotación se deja en
reposo 30minutos o se le puede centrifugar, es conveniente agregarle a los tubos la
solución hasta que se forme un menisco en la superficie.
5.- La muestra se obtiene al poner en contacto el portaobjetos con el menisco, o bien con
la ayuda de una varilla de vidrio.
6.- Se examina con el microscopio, y la magnificación dependerá de lo que se sospeche
huevos de nemátodos poco aumento quistes de protozoos gran aumento.
Interpretación:
En cuanto a la interpretación de los resultados es común que se exprese con +, ++, +++
o más para indicar la cantidad de estadios parasitarios. Por ejemplo en el caso de Ascaris suum:
0 = Ningún huevo.
+ = Infección ligera de 1 a 10 huevos por preparación o de 1 a 500 HPG.
++= Infección moderada de 5 a 10 huevos por preparación o de 500 a 5000 HPG.
+++= Infección grave de más de 10 huevos por preparación o más de 5000 HPG.
Sin embargo es una apreciación muy subjetiva, ya que la cantidad dependerá de muchos
factores y el hecho de ser pocos o muchos, no en todos los casos indica la magnitud del
problema.
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Método cualitativo de concentración
por Sedimentación (Formol-Éter)
Material:
-
Porta y cubreobjetos.
Tubos de centrífuga de 15ml.
Agua.
Formol al 10%.
Éter.
Centrífuga.
Microscopio.
Procedimiento:
1.- Se mezclan 1g de heces con 15ml de agua, se agita la mezcla y se coloca en un tubo
de 15ml.
2.- Se centrifuga a 1,000 rpm por 1-2 minutos.
3.- Se decanta el sobrenadante y se rellena el tubo con 15ml de agua limpia.
4.- Se centrifuga a 1,000 rpm por 1-2 minutos.
5.- Se decanta el sobrenadante y se agregan 10ml de formol al 10% se deja reposar por
10 minutos.
6.- Se agregan 3ml de éter se tapa el tubo y se mezcla vigorosamente.
7.- Se centrifuga a 1,000 rpm por 1-2 minutos.
8.- Se remueve el sobrenadante.
9.- Al sedimento se le observa al microscopio.
Nota: este método es excelente para la observación de huevos de trematodos.
Método cualitativo de concentración
por Sedimentación (Fasciola hepatica)
Material:
-
Matraz de 250ml.
Colador.
Cajas de Petri.
Microscopio.
Procedimiento:
1.- Se mezclan 5g de heces en 200ml de agua.
2.- Se cuela la muestra y se descarta el material atrapado en el colador.
3.- Luego de 10 minutos se decanta aproximadamente el 70% del sobrenadante y se
rellena con agua limpia.
4.- Se repite en tres ocasiones el paso anterior hasta que el sobrenadante sea claro.
5.- Se retira el 90% a 95% del sobrenadante y el sedimento se pasa a una caja de petri.
6.- Se observa al microscopio.
Nota: hay que buscar huevos grandes operculados y de color amarillo.
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Método Cuantitativo de
Mc Master
Material:
-
Balanza.
Dos recipientes de 50ml.
Mortero.
Tubo de ensayo de 15ml.
Tamiz (colador o bien doble capa de gasa).
Solución saturada de ClNa.
Cámara de Mc Master.
Procedimiento:
1.- Homogenizar 3gms. de heces en 45ml. de agua corriente, con la ayuda del mortero.
2.- Tamizar y del filtrado se colocan 15ml en un tubo de ensayo.
3.-Sedimentar por espacio de 30 minutos o si se cuenta con centrifuga centrifugar a
1000rpm/1 minuto.
4.- Eliminar el sobrenadante y remplazarlo con solución de Cl Na.
5.- Homogenizar y con un gotero tomar una muestra para con esta llenar la cámara de Mc
master.
6.- Esperar por espacio de 2 minutos para que los huevos y/o quistes floten y se ubiquen
en el campo de lectura.
7.- Se procede a realizar el conteo esto se facilita si se ubica en el mismo foco óptico
donde se encuentran las micro burbujas de aire.
Interpretación:
Si en 45ml habría 3mgs de heces, en 15 ml habrá 1gmo si de los 15ml se usa solo 0.15
(que es el volumen de cada área de lectura de la cámara de Mc Master), se estará utilizando la
centésima parte de 15ml; Luego el factor de relación para cada área de lectura será de 100 y si
la lectura se realiza en ambas cámaras será de 50. El resultado se expresa en HPG (huevos por
gramo) es difícil calcular el número exacto de parásitos adultos en un animal basándose en este
tipo de métodos. Debido a que existen muchos factores que intervienen en la producción de
huevos así como el número de huevos presentes en las heces.
Por ejemplo:
- La población de parásitos adultos machos así como de larvas son discriminada en estos
resultados.
- La cantidad y periodicidad de la producción de huevos varía de parásito a parásito
(Ascaroideos ponen muchos huevos) en cambio (las Facsiolas ponen pocos huevos).
- En una primoinfección durante el período prepatente no hay producción de huevos.
- La respuesta inmune del hospedero disminuye y llega a inhibir la producción de las
hembras. Esto significa que existe una relación inversamente proporcional entre la
producción de huevos y el desarrollo de inmunidad.
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- Existe una producción cíclica de huevos en el caso de nemátodos, en algunos más
marcada que en otros, por ejemplo existe un incremento en la producción en primavera y
una disminución en invierno. También en hembras parasitadas existe un incremento en la
eliminación de huevos durante el período puerperio.
- La consistencia de las heces influye en las cuentas de HPG. Heces acuosas diluyen la
cantidad de huevos presentes en la muestra.
- El estado nutricional y el tratamiento antihelmíntico del hospedero influyen.
- HPG solo tendrá valor diagnóstico en cestodosis.
Nota: a pesar de todas estas consideraciones, el recuento de HPG tiene valor en la
interpretación de datos para el investigador clínico.
Otro ejemplo del recuento con la cámara de Mc Master se muestra a continuación así como las
características de la cámara Figura No.16.
Cámara de recuento de Mc Master
Es una cámara que permite el recuento de huevos o formas de dispersión de algunos parásitos
con la finalidad de realizar la estimación de la carga parasitaria en el animal.
10 mm
10 mm
1.5mm
Figura No.16, Características y dimensiones de la Cámara de Mc Master
Las dimensiones de la cámara de Mc master son 1cm de largo x 1cm de ancho y 0.15 cm de
profundidad, los valores del recuento en esta cámara se expresan en Huevos por Gramo de
Heces, HPG es decir el número de huevos contados en cada gramo de excremento.
Como el recuento de un gramo de heces resulta poco practico, en la técnica de Mc Master se
aplica un factor que permite establecer la equivalencia del recuento de un gramo de la muestra
problema con la muestra utilizada por esta técnica.
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Ejemplo: se pesan 2 gramos de heces que se disuelven 60ml de solución glucosada, es decir
que en 30ml tendríamos un gramo, de tal forma que si contamos los huevos contados en los
30ml de muestra tendremos la cantidad de HPG.
1.5mm es igual a 0.15cm que son equivalentes a 0.15ml
0.15ml que leemos de 30ml totales.
Si multiplicamos 0.15 por 200 nos da 30ml, es decir si el número de huevos que contamos en
0.15ml lo multiplicamos por 200 estaremos encontrando la equivalencia de contar los 30ml
totales.
Método de Stoll
(Cuantitativo de Sedimentación)
Este método fue desarrollado por Stoll para cuantificar uncinarias. Se publico en 1923, por
las características de este método tiene un alto valor en encuestas epidemiológicas, no solo
para en el caso de uncinariosis sino en muchas helmintiasis.
Materiales:
- Matraz volumétrico de un litro.
- Probetas graduadas de 100ml, con tapón esmerilado.
- Pipetas de 1 a 2ml, graduadas en centésimas.
- Portaobjetos de 38 x 75mm.
- Cubreobjetos de 22 x 40 mm.
- Varillas de vidrio de 20 cm de longitud.
- Perlas de vidrio de 3 mm de diámetro.
Reactivos y soluciones:
- Hidróxido de sodio Q.P.
- Agua destilada.
- Solución de hidróxido de sodio al 0.1N. la cual se obtiene al mezclar 4gms de Hidróxido
de sodio en 1000ml de agua destilada.
Procedimiento:
1.- En la probeta se ponen 56 ml de la solución de hidroxilo de sodio.
2.- Se añade materia fecal hasta el nivel de 60ml, ayudándose para ello con la varilla de
vidrio.
3.- Se añaden de 15 a 20 perlas de vidrio y se tapa la probeta.
4.- Colocando uno o dos dedos sobre el tapón esmerilado y tomando firmemente la
probeta con el resto de la mano, se agita vigorosamente durante un minuto, hasta
formar una suspensión homogénea.
5.- En cuanto cesa la agitación, los restos fecales y huevos comienzan a irse al fondo; se
toma de inmediato la pipeta Pasteur y se introduce hasta la parte medía de la
suspensión.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
6.- Se toman 0.075 o 0.15ml, los cuales se colocan sobre portaobjetos y se cubre.
7.- Se observa la preparación con el microscopio con objetivos seco débil y seco fuerte.
8.- Se cuentan absolutamente todos los campos de la preparación contando los huevos
encontrados para ello se sigue siempre una rutina que puede ser de arriba a abajo o de
un lado a otro.
Interpretación:
El número de huevos o larvas contadas en todos los campos de la preparación se
multiplican por los siguientes factores, según se hayan tomado 0.075 ó 0.150ml de la
suspensión y también tomando en cuenta la consistencia de la muestra ver tabla No 6.
HECES
Duras
Pastosas
Líquidas
Duras
Pastosas
Líquidas
MUESTRA
0.075ml
0.075ml
0.075ml
0.150ml
0.150ml
0.150ml
FACTOR
50
100
200
100
200
400
Tabla No.6, factor de Multiplicación.
El resultado se expresa en huevos o larvas por mililitro de heces (hmlh o lmlh), por
ejemplo si la materia fecal es pastosa y se tomaron 0.075ml y se encontraron en todos los
campos observados dos huevos: Se multiplicará 2 por 100 = h.ml.h.
Método de recuperación de larvas
Técnica de Baermann
El fundamento de este método es el de que gracias a la habilidad migratoria de las larvas
estas pueden ser separadas de la muestra y quedar aisladas resultando más fácil su observación
se pueden recuperar larvas de:
 Heces frescas como en el caso de L1 de Dictyocaulus y Strongyloides.
 Heces cultivadas como en el caso de L3 de Nematodos Gastroentericos.
 Pastura como en la determinación de L3 de Nematodos Gastroentericos (esófago
Rhabditiforme L1,L2 nematodos de vida libre- Esófago Filariforme L3 larvas infectantes).
 Tejidos digeridos como por ejemplo de L4 de Toxocara y Lamanema.
Material:
-
Embudo de vidrio de 15-20cm.
Manguera de látex.
Tubo de ensayo de 15ml.
Soporte Universal.
Agua desclorinada.
Gasa.
Microscopio.
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Procedimiento:
1.- Se colocan de 5-10g de muestra (Heces, pasto o tejido digerido) en una capa doble de
gasa.
2.- Se coloca la gasa que contiene la muestra en el embudo.
3.- Se agrega agua declorinada hasta cubrir la muestra.
4.- Se deja el aparato de Bearmann a temperatura ambiente por espacio de 12-24 horas,
tiempo suficiente para permitir que las larvas migren de la muestra al agua por su
hidrotropismo, con lo que se consigue separarlas de la muestra y facilita su
observación, ver aparato de Bearmann, Figura No. 17.
Figura No.17, aparato de Bearmann
Nota: cabe mencionar que este método es útil para el aislamiento de larvas de parásitos
pulmonares.
Cultivo de Larvas a partir de heces
Existen parásitos cuyas características de huevo son tan particulares que pueden ser
identificados sin muchos problemas por ejemplo en el caso de Trichuris spp., Fasciola spp.,
Coccidia spp., Strongylus spp. y Moniezia spp., sin embargo en otros casos las
características del huevo son tan similares que resulta difícil su identificación como en el caso de
los miembros de la familia Trichostrongyloidea, por lo cual se requiere madurar los huevos
hasta que se desarrollen al estadio de L3 el cual posee características distintivas y permite la
identificación de los géneros de la familia Trichostrongyloidea, las diferencias se basan en el
recuento de células intestinales y medida de la longitud total de la larva, longitud de la cola de
la larva, longitud de la vaina y la porción distal, ver figura No. 18.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Figura No.18, Estructura típica de una larva de un nematodo gastrointestinal. La vaina es una cubierta que cubre a
la larva y la protege del medio ambiente:
CL: Cola de la larva o parte interna que va desde el ano hasta al final de la larva (no de la vaina).
PD: Porción Distal es la distancia que separa el extremo de la cola de la larva del final de la cola de la vaina.
CV: Cola de la Vaina es la porción de la Vaina desde el ano hasta el extremo posterior de la Vaina
(según el género existen diferentes longitudes y formas: cónicas, afiladas, etc.)CV=CL+PD
LT: Longitud Total es la distancia que va desde el extremo anterior al extremo posterior de la vaina.
CI: Células Intestinales pueden ser de diferentes formas y el número varia según el género
Método de Corticelli y Lai
Material:
- Incubadora bacteriológica
- Cajas de petri de 10 y 15cm.
Procedimiento:
1.- Se colocan 10g de heces en la caja de petri de 10cm.
2.- Se coloca la caja de 10cm en la de 15cm a esta ultima se le agrega agua desclorinada
hasta la mitad de la caja de 10cm con ello se forma una cámara húmeda.
3.-Se coloca en incubación a 25-27°C, se destapa diariamente la cámara para su
oxigenación por espacio de 10 a 12 días sin embargo el tiempo dependerá del la
especie del nematodo.
4.-Transcurrido el tiempo se invierte la cámara de 10cm se manera que quede
parcialmente sumergida, se deja de 12-24 horas para permitir el paso de las larvas a la
fase liquida de la caja de 15cm.
5.- Se aspira el líquido del fondo de la caja y se observa al microscopio, ver figura No. 19.
Figura No. 19, Cámara húmeda para el método de Corticelli y Lai.
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Método de Harada Mori
Material:
-
Tubos de ensayo de 20 x 200mm
Tiras de papel filtro de 1.5-2.0 x 16-18cm.
Aguja del No. 18.
Agua desclorinada.
Procedimiento:
1.- Se unta una capa uniforme de heces en el papel filtro dejando sin muestra 3cm en la
base y 4cm en el fondo.
2.- Se llena el tubo de agua hasta llegar a 1cm antes de la muestra.
3.- Se deja el tubo en posición vertical o inclinada cuidando de que no se sumerja en el
agua la porción de papel filtro con muestra.
4.- Se tapa el tubo con un tapón de plástico o corcho en este se clava la aguja con la
finalidad de permitir el paso de aire.
4.- Se esperan de 8-10 días a temperatura ambiente luego de este tiempo se buscan las
larvas en el fondo del tubo con ayuda del microscopio, ver figura No. 20.
Figura No.20, Método de Harada Mori
Micrometría
Sin lugar a duda una de las alternativas de mayor utilidad a la hora de establecer la
identificación ya sea de formas de dispersión, larvas infectantes o de parásitos adultos es la
medición de estos mediante métodos micrométricos la forma mas común de realizarlo es por
medio de un ocular micrométrico, para calibrar este aditamento se requiere de una lámina
patrón, los elementos y la forma de realizar dicha calibración a continuación se describe:
- Lámina patrón (LP), es una regla de 1mm dividida en 100 partes iguales, de tal manera
que cada espacio es igual 1mm 100 =10µ.
- Ocular micrométrico (OM), es una escala dispuesta en una lentilla que se coloca en el
ocular del microscopio y las subdivisiones dependen del fabricante.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Para calibrar el ocular del micrométrico.
1.- Se inicia con el objetivo de menor magnificación para luego hacerlo con los de mayor.
2.- Se coloca la LP en la platina y se enfoca la escala.
3.- El OM colocado en el ocular, se rota para sobre poner ambas escalas y mediante la LP
se hacen coincidir los ceros de ambas escalas.
4.- Se cuentan las exactas coincidencias de la LP y el OM.
Por ejemplo: Con el objetivo de 10X, en este caso habrá una exacta coincidencia de 11
divisiones del OM con 10 divisiones de la LP, de tal forma que cada espacio del OM en 10X
corresponderá a:
Cada espacio del OM= (OM 10) (constante 10µ) = 9µ.
(LP 11)
Con el objetivo de 40X, 56 divisiones del OM coinciden con 21 divisiones de la LP de tal
forma que:
Cada espacio del OM= (21) (10µ) = 3.75µ.
56
Nota: Primero se calibran los objetivos secos (3,10,20,40 y 50X) y luego los de inmersión
de (50 y 100X)
La calibración específica para cada objetivo y para cada microscopio. Los resultados de
esta calibración deben colocarse en una parte visible del microscopio, ver figuaras No.21 y 22.
Por ejemplo:
10X =9µ, 40X =3.75 µ y 100X =1.5µ.
Figura No.21, Ocular Micrométrico y Lámina Patrón (detalle de calibración).
Figura. No.22, Micrometría de un huevo de T.ovis
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Recuperación de larvas del forraje
La principal fuente de infección de parásitos es el alimento y en el caso de herbívoros es el
forraje, por lo que la determinación del número de larvas potencialmente infectantes (L3) es
fundamental para evitar un brote de parasitosis en animales que ingresan a un nuevo potrero.
Material:
- Bolsas de plástico.
- Cubeta de 20 litros.
- Equipo de Bearmann.
Procedimiento:
1.- Se traza una W imaginaria en el terreno a muestrear de una extensión total de 400
pasos del recorrido total se muestrea el 10% es decir cada 40 pasos.
2.- Se toma un puñado de pasto de cada uno de los cuatro costados donde se detiene el
coleccionador y se deposita la muestra en la bolsa de plástico.
3.- El pasto contenido en la bolsa se pesa, se coloca en la cubeta, se llena de agua,
declorinada y se lava vigorosamente.
4.- Se deja sedimentar por espacio de una hora, luego se transfiere el forraje a un
segunda cubeta se lava nuevamente y se deja sedimentar, al final de este paso se
descarta el forraje.
5.- Los sedimentos de ambas cubetas se tamiza a través de una malla de
30cuadriculas/pulgada.
6.- El sedimento se procesa por el método de Bearmann o se coloca en copas de
sedimentación.
Nota: El resultado se expresa en L3 por Kg. de forraje.
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Principales parásitos del perro
Distribución anatómica de los principales parásitos del perro, adaptado de W.J. Foreyt, 2001.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Organismo
Enfermedad
Modo de infección
Protozoarios
Entamoeba hystolitica
Amibiasis
Ingestión de quistes
Leishmania infantumi
Leishmaniosis visceral
Contacto con el artrópodo vector
Leishmania donovani
Leishmaniosis cutánea
Contacto con el artrópodo vector
Pneumocystis carini
Pneumocistosis
Ingestión o inhalación
Trypanosoma cruzi
Trypanosomiosis
Contacto con el artrópodo vector
Toxoplasma gondii
Toxoplasmosis
Ingestión de ooquistes
Nematodos
Ancylostoma spp.
Larva Migrans Cutanea (L.M.C)
Contacto con larva 3
Dirofilaria immitis
Dirofilariosis
Picadura de mosquito
Strongyloides spp.
L.M.C.
Contacto con larva 3
Strongyloides stercolaris
Strongylosis
Ingestión de larvas
Toxacara canis
Larva Migrans Visceral
Ingestión de huevos larvados
Toxacara cati
Larva Migrans Visceral
Ingestión de huevos larvados
Gnathostoma spinigerum
Larva Migrans Visceral
Ingestión de huevos larvados
Cestodos
Dipylidium caninum
Dipylidiosis
Ingestión de Cysticercoides
Echnococcus granulosus
Hidatidosis
Ingestión de huevos
Echinococcus multilocularis
Hidatidosis alveolar
Ingestión de huevos
Trématodos
Paragonimus spp.
Paragonimiosis
Ingestión de metacercarias
Artrópodos
Cheyletiella spp.
Acariosis
Contacto con perros enfermos
Notoedres cati
Acariosis
Contacto con gatos enfermos
Sarcoptes scabei
Acariosis
Contacto con perros enfermos
Tabla No. 7, Parásitos zoonóticos asociados al contacto con perros y gatos, Adaptado de W.J. Foreyt, 2001.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Drug
Bunamidina HCl
Butamisole
Dichlorophene
Trade Name
Scolaban
Styquin
Various
Dose (mg/kg PO)
25-50
2.4 sc
220
Dichlorvos
Task
5-100
Diethylcarbamazine
Caricida
1.24 daily
50-100
Dithiazanine
Dizan
20 q24hx3 - 13d
Epsiprantel
Febantel +
prazincuantel
Cestex
5.5 (dogs) 2.8(cats)
10febantel/1praziquantel
q24hx3d (dogs and cats)
Vercom
Fenbendazole
Panacur
50 q24hx3d
Furazolidone
Ipronitazole
Furazolidone
Ipropan
4 q12hx7d (cat)
127 mg per liter H2Ox7d
Ivermectin
Ivomec
Heartguard
0.2, 0.05, 0.006 SC
(30 days intervals)
Levamisole
Levasole
5, 2.5 q24hx10-12d
Mebendazole
Telmintic
20 q24hx3-20d
Methylbenzene +
Dichlorophene
Various
200
Metronidazole
Flagyl
25 q12hx5d(dog)
10-25 q12x5d (cat)
Milbemycin oxime
Interceptor
0.5 (30 day intervals)
Niclosamide
Phthalofyne
Yomesan
Whipcide
Piperazine
Various
Praziquantel
Pyrantel pamoate
Quinacrine
Thenium closylate +
Piperazina
Thiabendazole
Thiacetarsamide
Droncit
Nemex
Atabrine
TBZ
Caparsolate
Disophenol
Various
100(dog) , 200 (cat)
250
100-250 (2nd dose after
10 days), or 100-150
q24hx2d
5-50
15 (dog) 20-30 (cat)
11q24hx12d
500q23hx1d
250q24hx3d
50 q24hx3d
22 q12hx2d IV
7.5-10 (2nd dose in two
weeks).
Various
Parasites susceptible
Cestodes
Hookworms,whipworms
Cestodes
Ascarids,hookworms,
whipworms
Heartworm prevention (L4)
Ascarids
Ascarids,
hookworms,whipworms,
threadworms,heartwom
microfilariae
Tapeworms
Ascarids,hookworms,
whipworms,tapeworms
Ascarids,hookworw,
whipworms,tapeworms
Giardía
Giardía
Whipworm
Heartworm microfilariae
Heartworm prevention
Ascarids, hookworms
Heartworm microfilariae
Ascarids,Hookworms,
whipworms
Ascarids,hookworms,
cestodes
Giardía
Heartworm preventative
hookworms
Cestodes
Whipworm
Ascarids
Cestodes
Ascarids, hookworms
Giardía
Hookworms,ascarids
Stongyloides
Adult heartworms
Hookworms
Table No.6 Efficacy of Anthelmintics Against Major Internal Parasites of Cats and Dogs, adaptado de W.J. Foreyt,
2001.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Phylum Protozoa
Subphylum Sarcomastigophora
Clase Mastigophora
Trypanosoma cruzi.
Familia: Trypanosomatidae (estercolaria).
Clase: Zoomastigophora
Hospedero: Vector - miembros del grupo de insectos Triatominae (chinche).
Hospederos Reservorios: Mamíferos, especialmente perros, tlacuaches, armadillos, mapaches.
Hospedero Definitivo: humano.
Descripción: La forma tripomastigote tiene un final posterior puntoso con un cinétoplasto
subterminal.
El flagelo empieza en el cinétoplasto y se estira a la punta anterior. Se
encuentra esa forma en la sangre donde tiene la forma de oz. La forma de amastigote que
se encuentra enquistada en células, especialmente músculos cardíacos, no tiene flagelo.
Se puede reconocer por el cinetoplasto que tiene la forma de punto característico.
Distribución: En perros entre Brasil y en el sur de los EUA desde, California hasta Carolina del
sur, en México en toda la costa del golfo (En Nuevo León).
Ciclo de Vida: El tripomastigote entra al tracto digestivo de una chinche junto con la sangre
del hospedero mamífero y cambia a un epimastigote en el insecto. En el intestino
posterior de este se cambian a tripomastigote metacíclico que son las formas infectantes
para el mamífero. Cuando pasa a la sangre del hospedero entra en contacto con los
macrófagos a los cuales infecta y se multiplican adquiriendo la forma de amastigote. Estos
salen de los macrófagos como tripomastigotes y entran a otras células entre estas las del
corazón para formar más amastigotes. El ciclo sigue así de manera in interrumpida y
paulatinamente se incrementa la destrucción celular.
Las chinches se infectan al ingerir sangre contaminada con tripomastigotes provenientes
de un animal infectado, el hospedador mamífero se infecta al rascarse el sitio donde la
chinche le ha picado ya que las formas infectivas del parásito no se encuentran en la
saliva de la chinche si no en las heces y dado que estos insectos son sumamente voraces
generalmente luego de alimentarse o durante la alimentación tienden a defecar en los
sitios aledaños al sitio donde pican para alimentarse de tal forma que el humano o el
animal luego de que pasa el efecto analgésico, siente prurito y al rascarse el mismo
favorece la penetración del parásito.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Patología: Cachorritos de menos de tres meses sufren la enfermedad aguda con linfadenopatía
y miocarditis aguda. La parasitemia es más alta de 2 - 3 semanas después de la
primoinfección.
Los perros adultos no sufren tanto pero tiene una forma crónica con daño continuo al
corazón
mediante destrucción de las células cardíacas. Después de varios meses o años pueden
mostrar síntomas, tales como falla cardiaca congestiva. A la necropsia se encuentra que
las paredes del corazón están hipotrofiadas.
Diagnóstico: Observar el organismo en sangre o en una biopsia de un nódulo linfático
inflamado. Pruebas indirectas por detección de anticuerpos mediante ELISA. Los estudios
radiológicos pueden mostrar cambios en el tamaño del corazón y Xenodiagnóstico.
Control y Tratamiento: Prevenir contacto con los vectores que pueden vivir en cualquier
hueco en la pared o techo de la casa. Hay unos productos experimentales que pueden
ayudar en algunos casos (nifurtimox, benzimidazole)
Comentario:
Giardia intestinalis.
Clase: Zoomastigophora
Hospedero: mamíferos
Descripción: Un organismo en la forma de una gota de agua con la superficie ventral en la
forma de ventosa, posee 8 flagelos, dos núcleos, dos axostilos, se le llama trofozoíto y
esta forma es la que se observa en el mamífero, es anaerobio y frágil, se mueve en una
forma caracterizada por movimientos rápidos y erráticos, su tamaño es dos veces el
tamaño de un eritrocito 15 x 10µ.
El quiste que es la forma de resistencia y la que
generalmente se observa en los exámenes coprológicos, pierde los flagelos y los dos
núcleos se dividen en 4 es inmóvil y su tamaño es de 18 x 8µ.
Distribución: Mundial
Ciclo de Vida: División por fisión sin formas sexuales.
semanas en un medio ambiente húmedo.
Como quiste sobrevive de 3 a 4
El trofozoíto muere en una medía hora en
condiciones adversas. El trofozoíto se encuentra en el duodeno unido a las vellosidades
intestinales.
Transmisión es por la vía fecal/oral.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Patologenia: El periodo asintomático varía de cinco a doce días, seguidos de diarrea que
puede ser aguda o crónica incluso graves.
Más importante es el síndrome de
malabsorción, especialmente de grasas y proteínas.
Vellosidades son truncadas y
obstruidas por el parásito. El organismo es capaz de interferí con enzimas digestivas y
con el proceso de absorción. Hay ataques de diarrea intermitentes. Los animales adultos
son portadores inaparentes. No provoca hemorragia.
Diagnóstico: Se encuentra quistes en las heces bien formadas y trofozoítos en heces
diarreicas. Usar frotis directo con luz baja o con campo oscuro (400X). Puede teñir con
Lugol. Los quistes pueden flotar en ZnSO4 (g.e.1.8) pero los otras soluciones se van a
destruir los quistes por osmosis. Necesitan al menos tres pruebas negativas para decir
que un animal no esta infectado.
Control y Tratamiento: Higiene, durante el tratamiento hay que limpiar bien, la sequedad
mata a los quistes.
Fenbendazole 50 mg/kg/día por 5 días en perro
Metronidazole 25 mg/kg/2x por día por 5 días en perro
Metronidazole 10 mg/kg/2X por día por 5 días en gato
Comentario: Probablemente es una zoonosis pero no se ha comprobado que las cepas que se
encuentran en animales pueden infectar a humanos también.
Cryptosporidium parvum.
Filum: Apicomplexa
Hospedero: Mamíferos
Descripción: El ooquiste es muy pequeño, y tiene una pared que no acepta la tinción normal.
Contiene lípido y necesita una tinta ácido-resistente como Kinyoun. En el hospedero se
encuentran los merozoitos y gametos. El ooquiste presenta 4 esporozoitos.
Distribución: Mundial
Ciclo de Vida: Típico de Eimeria. Transmisión es oral/fecal, donde un esporozoito entra una
célula del intestino y produce merozoitos, solamente que los merontes se encuentra en el
borde de las vellocidades. El problema es que los ooquistes son infectantes antes de pasar
en las heces y pueden autoinfectar el hospedero. Agua de bebida es una fuente de
infección muy importante porque los ooquistes pueden sobrevivir en ese medio varias
semanas. Todavía no esta seguro si animales adultos pueden ser portadores, pero hay
estudios que sugieren que sí.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Patología: En un animal sano, producen diarrea que dura hasta dos semanas. Animales con
un sistema inmunitario deprimido pueden morir de deshidratación. Se encuentra más en
neonatales, pero cualquier animal, inclusive humanos, que no tiene buena inmunidad
puede enfermarse.
La diarrea es muy liquida y copiosa pero generalmente no tiene
sangre.
Diagnóstico: Encontrar ooquistes en un CPS de flotación con azúcar. También se puede
encontrar ooquistes en un frotis directo teñidos con tinta ácido-resistente de Kinyoun.
Control y Tratamiento: El control es mediante higiene. El tratamiento es mediante terapia de
liquidos y iones hasta que el sistema inmunitario puede superar la infección. No se ha
descubierto un medicamento que sea curativo.
Comentario: Es un problema en humanos con SIDA.
Hepatozoon canis.
Filum: Apicomplexa
Hospedero: HD - Rhipicephalus sanguineus (vector); HI - caninos
Descripción: El Isogameto se encuentra en el citoplasma de los neutrófilos, el núcleo es rojo
oscuro y el citoplasma es gris/azul. Hay que hacer el frotis inmediatamente después de
tomada la muestra de sangre porque salen de los neutrofilos cuando la temperatura de la
sangre baja. Los merontes en los tejidos tienen varias formas. Se encuentran más en
músculos, pulmones y miocardio pero también en nódulos linfáticos, hígado y bazo. Una
forma es un núcleo dentro un quiste parecido a una cebolla. Otros merontes tienen
muchos merozoitos. Algunos merontes estimulan una reacción inflamatoria y otros no.
Distribución: El área del Golfo en Texas. Probablemente otras áreas también. Donde se
buscan, se encuentran.
Ciclo de Vida: La garrapata toma neutrófilos con isogametos que forman zigotos. Después se
desarrollan los esporozoitos, el perro se infecta por consumir la garrapata. Hay varias
generaciones de merontes que eventualmente producen merozoitos que entran a las
neutrófilos y vuelvan a ser isogametos.
Patología: Infección provoca un neutrofilia muy alta. Con tiempo los huesos de los perros
jóvenes, especialmente vértebras y huesos largos de las piernas, desarrollan un
proliferación periostal. Los músculos se atrofian y duelen mucho durante una crisis aguda.
También provoca fiebre pero no provoca anorexia. Hay periodos de remisión entre
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_________________________________________________________Manual de parasitología
periodos de enfermedad aguda. Unos perros pueden recuperar pero son portadores
crónicos.
Diagnóstico: Neutrofilia muy alta, signos clínicos característicos, radiografías de los huesos,
encontrar isogametos en neutrofilos (muy difícil), biopsia del músculo (normalmente el
muslo) con histopatología.
Control y Tratamiento: Animales enfermos se tratan con antinflamatorios no esteroides
durante la crisis. Control de garrapatas ayuda pero hay casos donde no hay garrapatas.
Posiblemente hay otros métodos de transmisión. No se ha encontrado un tratamiento que
curar la infección.
Comentario: Greene - Enfermedades Infecciosas de Perros y Gatos - Capitulo 80
Isospora spp.
Fílum: Apicomplexa
Hospedero: Carnívoros
Descripción: Ooquistes esporulados tienen dos esporoquistes y cuatro esporozoitos por
esporoquiste. Las paredes son lisas, los que infectan a gatos y perros no tiene una capa
micropilar. Los otros estadios se encuentran en el epitelio intestinal del hospedero.
Distribución: Mundial
Ciclo de Vida: Isospora spp. Tienen uno solo hospedero pero posiblemente algunos pueden
tener hospederos paraténicos. Cuando el ooquiste esporulado (infectante) se ingiere por el
hospedero, los esporozoitos entran células del epitelio intestinal y producen muchos
merozoitos. Los merozoitos salen de la célula, destruyéndola, y entran a otras células. Ese
proceso se repiten varias veces depende del especie de la Isospora. Al final en las células
los merozoitos producen macro o microgametos que se fertilizan para producir un zigoto,
un proceso que se llama gametogonia. Ese zigoto pasa a las heces como ooquiste no
esporulado. En el medio ambiente, dependiendo de la temperatura, en 3 a 11 días, el
ooquiste se esporula para ser infectante.
Patología: La destrucción de las células del epitelio intestinal causa diarrea, a veces con
sangre. También hay deshidratación, baja del peso y muerte. Los animales con más riesgo
son los jóvenes al tiempo de destetarlos cuando empiezan a comer cosas sólidas.
Diagnóstico: Signos clínicos con examen del copro por flotación para buscar ooquistes. El
problema es que en los primeros días, no producen ooquistes. Hay que medir el ooquiste
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(micrometría) para saber la especie, pero tres, I. ohioensis, I. neorivolta, I. burrowsi, tiene
las mismas características solo Isospora canis es más grande que los demás.
Control y Tratamiento: Higiene es el principal factor en el control. Tratamiento por amprolio
(300 - 400 mg/kg por 5 días) o sulfas (cuya dosis depende de la sulfa). Cuando el animal
tiene diarrea, ya es demasiado tarde para tratarlo. Dar tratamiento a los demás para
prevenir infección en ellos. En los animales con diarrea ya que corregir la deshidratación y
desequilibro de ionice.
Comentario: Por el tipo de ciclo de vida en el hospedero, si se puede prevenir reinfección, el
curso de la enfermedad se autolimita dentro de 2 - 3 semanas. Después de sobrevivir a
una primoinfección, el animal tiene un inmunidad fuerte frente a esa especie de Isospora
pero no hay inmunidad cruzada.
Neospora spp.
Filum: Apicomplexa
Hospedero: HD - desconocido; HI - rumiantes, perros, otros animales
Descripción: Se conocen solamente los tachyzoitos y bradizoitos. Son muy parecidos a
Toxoplasma pero la pared del meronte con bradizoitos es más gruesa en Neospora. Se
encuentran los merontes en el SNC de perros y todos los tejidos de rumiantes.
Posiblemente son especies diferentes.
Distribución: Probablemente mundial
Ciclo de Vida: Desconocido
Patología: En perros produce signos nerviosos con muerte. Normalmente se encuentra la
enfermedad en una camada reciente parida. El número de cachorritos afectados pueden
varia entre solo uno a toda la camada. Se produce una parálisis espástica ascendente que
empieza en el tren posterior.
Una perra puede tener varias camadas afectadas. En rumiantes, provoca abortos. Una
vaca puede abortar varias veces por Neospora. En un estudio en California se demostró
que es la causa más común de abortos en ganado lechero en California.
Diagnóstico: IFA - Serología; Histopatología
Control y Tratamiento: Por el momento, no se sabe. Después de que los síntomas aparecen,
tratamiento no es muy eficaz, pero si un cachorrito es diagnosticado con la enfermedad,
tratamiento con pirimidina con trimetoprim sulfa puede salvar los demás.
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Comentario: Es un parásito importante y uno necesita tomarlo en cuenta de cara al futuro
Babesia canis.
Filum: Apicomplexa
Hospedero: HI - Perros; HD - Rhipicephalus sanguineus
Descripción: Un protozoario que se encuentra dentro del eritrocito. Normalmente tiene la
forma de una gota de agua. Con tinción de Giemsa el núcleo es morado y el citoplasma es
gris. El núcleo se encuentra en la punta roma y tiene la forma de un sombrero. Si hay dos
dentro de la misma célula, tienen la forma de V.
Distribución: Donde se encuentran las garrapatas vectores, Rhipicephalus sanguineus
Ciclo de Vida: La garrapata toma sangre con eritrocitos infectados. Probablemente un zigoto
se forma en el tracto digestivo de la garrapata, pero de todas maneras, un meronte se
forma en la pared del tracto digestivo. Los merozoitos entran al hemoceloma y producen
más merozoitos. Después de la muda cuando la garrapata comienza a tomar sangre otra
vez, los merozoitos infectan las glándulas salivales y producen esporozoitos. Los
esporozoitos entran a la sangre del perro e infectan eritrocitos donde se replican. Los
merozoitos pueden entrar a los ovarios de la garrapata también y las larvas de garrapata
eclosiona ya infectadas.
Patología: En la sangre cada vez que los piroplasmas (trofozoítos) salen del eritrocito, lo
rompen. También cuando el sistema inmunitario aprende a reconocer el antígeno y los
eritrocitos que expongan ese antígeno extraño son destruidos, todos los eritrocitos
infectados y otros también, son ingeridos por los macrófagos en bazo e hígado. Eso
provoca una anemia posiblemente con ictericia. Es más común en perros destetados o
adultos, más que en cachorritos porque ellos tienen más posibilidad de encontrar
garrapatas.
Diagnóstico: Signos clínicos con glóbulos rojos parasitados. Normalmente cuando un perro
presenta en una crisis, la parasitemia ha cedido y no se encuentran muchos eritrocitos
infectados. Los síntomas son los mismos que en la hemólisis autoinmune.
Control y Tratamiento: Control de Rhipicephalus sanguineus. Tratamiento con Ganaseg.
Comentario:
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Toxoplasma gondii.
Filum: Apicomplexa
Hospedero: HD - felinos; HI - otros mamíferos y aves
Descripción: Ooquiste - 11-14 x 9-11m con dos esporoquistes, cada uno que contiene cuatro
esporozoítos. El ooquiste no es esporulado cuando pasa a las heces. Taquizoito es una de
las formas que se pueden observar dentro de macrófagos, leucocitos, neuronas,
músculos, células de hígado, bazo y pulmones. Los quistes que se encuentra en los tejidos
de los HI son intracelulares y están llenos de bradizoitos, parecen uvas. Los bradiozoítos y
merozoítos son parecidos a los taquizoitos pero más ajustados y se encuentran con mayor
frecuencia en células del cerebro.
Distribución: Mundial
Ciclo de Biológico: Los esporozoitos, taquizoítos y bradizoítos pueden infectar cualquier
animal que los come. En un felino adulto entran a las células epiteliales del tracto
intestinal donde se replican en cinco generaciones antes de formar macro y
microgametos. Después de formar cigotos, ellos producen ooquistes que necesitan más de
48 horas para desarrollar, dependiendo de la temperatura. En otra especie o un gatito
joven los esporozoitos entran a la circulación sanguínea e infectan macrófagos donde se
replican. La forma así producida se llama taquizoíto que se replica y destruye la célula
muy rápido. El taquizoíto se puede encontrar en cualquier tejido. Después que el
hospedero monta una respuesta inmunologíca, la forma producida se llama bradizoíto que
se replican más despacio y se les localiza en neuronas cerebrales. Con tiempo los otros
quistes en otros tejidos desaparecerán. Cualquier de estas forma puede infectar a otro
hospedero que consuma carne así infectada pero los bradizoítos son más eficaz que
taquizoítos o ooquistes, especialmente para infectar gatos. El taquizoíto puede cruzar la
placenta para infectar al feto pero una madre con inmunidad no tiene mucho riesgo de
producir una cría infectada. La mayoria de las infecciones en humanos probablemente es
por consumo de carne mal cocida. El 25 - 35% de los humanos están infectados en los
Estados Unidos.
Patología: Normalmente no se nota la infección en animales normales. Puede provocar
síntomas como los de influenza con nódulos linfáticos hinchados. También puede provocar
abortos, retinitis y encefalitis. Los taquizoitos puedan cruzar la placenta y infectar al feto
causando abortos, defectos cerebrales y ceguera. Eso es un problema de salud publica. La
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enfermedad es más fuerte en animales inmunodeprimidos por otras enfermedades como
el moquillo, por quimioterapia con corticoesteroides o en humanos con SIDA.
Diagnóstico: En gatos por encontrar mediante flotación ooquistes en las heces. La primera vez
que se infecta un gato, va a eliminar ooquistes por 2 - 4 semanas en cantidades altas.
Después si sé reinfectan, la cantidad es mucho menor y la duración de esta etapa es de
tan solo una semana. En otros animales se encuentran taquizoítos en macrófagos
peritoneales u otros tejidos. Durante una necropsia se pueden encontrar bradizoítos en el
cerebro. En caso de aborto se encuentra zoítos en improntas de placenta. Se nota
placentitis. Serología muestra infección crónica porque las pruebas son para IgG, no IgM,
pero puede ser importante para saber si un animal tiene resistencia. Si el titulo sube entre
dos pruebas a dos semanas, probablemente el animal está recientemente infectado.
También por histopatología, normalmente después de la necropsia o aborto. La infección
aguda causa linfoadenopatía.
Control y Tratamiento: Prevención es evitar el consumo de ooquistes y zoítos. Para humanos
es más importante el cocinar bien la carne, especialmente puerco, cordero y cabrito. Los
gatos en explotaciones de estas especies (puercos, corderos y cabritos) deben de
permanecer en casa por esta y otras enfermedades que los felinos trasmiten a otros
animales y una medida efectiva de controlar la enfermedad es dar solamente comida
comercial a los gatos. Con otros animales, especialmente pequeños rumiantes, no dejar a
los gatos usar la comida como cama para defecar. En Nueva Zelanda se usan una cepa
poca patógena para inmunizar borregas. Tratamiento es con clindamicina o sulfas con
pirimetamina.
Comentario: Es muy importante de leer Greene: Enfermedades Infecciosas de Perros y Gatos
capítulo 86.
Toxoplasmosis tiene mucho importancia en salud publica y los médicos
humanos no la entienden muy bien. La carne mal cocida es mucho más importante para
la transmisión a humanos que la ingestión de ooquistes.
Sarcocystis spp.
Filum: Apicomplexa
Hospedero: HD - carnívoro; HI - herbívoro
Descripción: En el excremento del HD, se encuentran esporoquistes con cuatro esporozoitos.
En los músculos de los HI se encuentran quistes grandes lleno de bradizoitos. Los quistes
tienen la misma forma que la de las células musculares.
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Distribución: Mundial
Ciclo de biológico: El esporoquiste infectante sale en las heces del HD. Es ingerido por el HI y
los esporozoitos penetran la pared del intestino delgado. Entran las células al endotelio de
las arteriolas y los capilares y se reproducen por merogonia. Otra generación de
merozoitos reinfecta las células. Al final los merozoitos infectan las células de los
músculos. Forman quistes grandes con septaciones entre grupos de bradizoitos. El HD
come la carne y se infectan las células del epitelio del intestino. Hay una reproducción
típica con merogonia que terminan en producción de macro y microgametos. Después de
la singamia producen ooquistes que se desarrollan rápido y son infectantes cuando salen
en las heces. La pared del ooquiste es muy delgada y se rompe fácilmente liberando los
esporoquistes.
Patología: En el HI la infección del endotelio puede causar petequias con inflamación
generalizada, abortos, perdida de peso y muerte. También producen una toxina,
sarcocistina, que puede dañar al HI. En el HD no causa nada. A veces puede causar
diarrea leve durante unos días sin mucho problema.
Diagnóstico: Encontrar esporquistes típicos en las heces de un carnívoro. Encontrar los quistes
típicos a nivel muscular del HI. Casi 100% de los rumiantes domésticos están infectados.
Control y Tratamiento: No es necesario porque normalmente no causa problemas pero es
mejor no dar comida cruda a perros y gatos.
Comentario: Ahora las nuevas especies que se encuentran se llaman según los hospederos,
p.e. S. ovicanis, S. bovifelis
Cytauxzoon felis.
Familia: Theileriidae
Hospedero: HI - Gatos; HD - Dermacentor
Descripción: Un piroplasma que se encuentra en la mayoria de los eritrocitos.
Forman
merontes en las células endoteliales de las arteriolas y capilares, especialmente en los
pulmones. Normalmente se encuentran varios en un eritrocito y casi todos los eritrocitos
están infectados.
Distribución: Sur de los EUA y probablemente México también.
Ciclo de Vida: El hospedero normal es un gato de monte que es portador no asintomático. Se
infectan garrapatas del género Dermacentor donde hay multiplicación en el hemoceloma.
Los esporozoitos se desarrollan en las glándulas salivales e infectan un hospedero cuando
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la garrapata toma sangre de este. En el gato forman merontes en las células del endotelio
de las arteriolas. Es más fácil verlos realizando Histopatología del pulmón y se encuentra
que los lúmenes están casi llenos con células hipertrofiadas. Después de varias
generaciones los merontes producen isogametos que infectan eritrocitos y que no se
replicaran hasta estar dentro de una garrapata.
Patología: Causan depresión y muerte en 100% de los gatos domésticos que se infectan. Es
fácil ver las células endoteliales infectadas que llenan las arteriolas. Con depresión, se
encuentran ictericia, anemia, edema pulmonar y muerte dentro de 1 - 2 semanas. Los
piroplasmas son fácil de ver en los eritrocitos.
Diagnóstico: Signos clínicos además de muchos piroplasmas en los eritrocitos. Hay que
diferenciar entre Cytauxzoon y Haemobartonella.
Control y Tratamiento: No dejar al gato andar donde se pueden encontrar garrapatas
infectadas con el agente. No hay tratamiento.
Comentario: Se puede transmitir la enfermedad con sangre infectada que tiene glóbulos
blancos pero no con eritrocitos solamente.
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Toxocara canis.
Nombre común: Ascaroideo o gusano redondo (Ascaroidea)
Localización: Intestino Delgado (I.D.).
Medida del Huevo: 80 x 75 micras.
Característica
Largo en (cm)
Macho
Hembra
Cabeza
Ala cervical
Esófago
Cola del macho
Pared del huevo
Hospederos Defini.
Toxocara canis
Toxocara cati
Toxascaris
leonina
4-10
6-18
Ventroventral
Elíptica
Bulbo muscular post.
Digitiforme con ala
caudal
Rugosa 80x75m
Perro
3-6
4-12
Ventroventral
Forma de corazón
Bulbo muscular post.
Digitiforme con ala
caudal
Rugosa 65x70m
Gato
3-7
4-10
Recta
Elíptica
Sin bulbo posterior
Cónica sin ala
caudal
Liso 80x90m
Perro y Gato
Tabla No. 7 Comparación morfológica entre los Ascaroideos más importantes de perros y gatos.
Importancia: Sus formas larvarias tienen una migración Hepato Cardio Pulmonar (H.C.P.)
localizaciones erráticas incluyen cerebro, corazón y músculo esquelético. Hay infección
prenatal y una primoinfección de la perra es suficiente para la contaminación de camadas
subsecuentes, también existe una infección lactogénica durante las primeras tres semanas
de lactancia, existe la participación de hospederos paraténicos, finalmente es un parásito
zoonótico.
Ciclo biológico: Una hembra de Toxocara es capas de producir 200,000 huevos diarios y en
un animal puede haber varios cientos de parásitos, con una temperatura de 15 a 35 ºC y
una humedad relativa del 85% los huevos se vuelven infectantes en 2 a 5 semanas. el
pico de larvas en pulmón se alcanza a los 5 días postinfección, la migración trasplacentaria
ocurre al día 42 de la gestación, si la infección de la perra ocurre en los primeros tres
cuartos de la gestación la infección prenatal es más copiosa pero si ocurre después la
infección lactogénica la supera. En el C.B. de T.canis participan como paraténicos
lombrices, ratones, ratas, gallinas, palomas, corderos y cerdos.
Patogenia: El daño atribuido a este parásito es bifásico, es decir el daño causado por el
parásito adulto y el daño causado por las larvas. El daño causado por el parásito adulto es
principalmente en base a una sustracción selectiva de nutrientes proteínas, lípidos,
carbohidratos y vitaminas (vitamina C) y por otro lado el daño es mecánico obstructivo.
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Por otro lado, la larva causa una acción irritativa y traumática en su migración provocando
neumonía y edema, cualquier daño depende de la intensidad de la parasitosis.
Diagnóstico: Sintomatológico, signos neumónicos a las dos semanas de edad, diarrea mucosa,
pobre desarrollo, distensión y dolor abdominal, hiperperistaltismo, formación de gas.
Laboratorio exámenes
Coproparásitoscopico C.P.S’s por flotación para establecer
morfología, Dx. Serológico.
Tratamiento: Tratar a todos los cachorros luego de las primeras 2 semanas de edad y 3
semanas después, tratar a todos los perros cuando el examen C.P.S. resulta positivo.
Diclorvos 100mg/kg PO.
Fenbendazol 20mg/kg PO c24h x 5d. o tratar a la perra con 50mg/kg PO c24h al día 40 de
gestación y hasta tres días luego del parto.
Mebendazol 22mg/kg PO c24h x 5d.
Piperazina 110 - 200mg/Kg PO y repetir a los 10 días, considerar la dosis reducida en
cachorros con fuertes parasitosis.
Pirantel 5-10mg/kg PO y tratar a las hembras luego del Parto
Infección en humanos: A partir de 8,457 sueros de una población general de los E.U.A.
usando la técnica de ELISA sé encontró una seroprevalencia del 2.8%, siendo los niños
con edades inferiores a 12 años en los que existió más frecuencia. existen dos formas de
presentación en humanos una es la Larva Migrans Visceral (L.M.V) y la otra es la Larva
Migrans Ocular (L.M.O). En un estudio realizado por oftalmólogos en el área de Atlanta
durante 18 meses se encontró que el 37% de los problemas de retina diagnosticados eran
causados por L.M.O de T.canis.
Toxascaris leonina.
Superfamilia: Ascaridoidea
Hospedero: Felinos y caninos
Nombre común: Ascaroideo o gusano redondo (Ascaroidea)
Localización: Intestino Delgado
Medida del Huevo: 80 x 90 
Ciclo Biológico: Difiere del parásito anterior porque no existe migración H.C.P. es meramente
enterica detal manera que no existe trasmisión prenatal, no es zoonótico. Animales de
todas las edades son susceptibles.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Importancia: Provoca trastornos digestivos, acciones competitivas, irritativas y mecánico
obstructivas.
Diagnóstico: Mediante la sintomatología aunque esta no es especifica, el examen fecal es la
alternativa diagnostica mejor (tec. de concentración por flotación).
Tratamiento: Tratar a todos los cachorros luego de las primeras 2 semanas de edad y 3
semanas después, tratar a todos los perros cuando el examen C.P.S. resulta positivo.
Diclorvos 100mg/kg PO.
Fenbendazol 20mg/kg PO c24h x 5d.
Mebendazol 22mg/kg PO c24h x 5d.
Piperazina 110 - 200mg/Kg PO y repetir a los 10 días.
Pirantel 5-10mg/kg PO y tratar a las hembras luego del Parto
Bayliascaris procyonis.
Nombre común: Ascaroideo del Mapache. (Ascaridea).
Medida del Huevo: 75 x 60 m.
Importancia: A pesar de que Bayliascaris es un parásito de mapaches, infecciones por este
parásito han sido reportadas en el perro y la prevalencia de este parásito en el perro es
desconocida, por otro lado se ha reconocido migraciones larvarias causantes de L.M.V.,
L.M.O. y Nematodíasis cerebroespinal fatales (N.C.F.) en muchas especies animales
incluyendo el ser humano. El humano se puede infectar por ingestión accidental de
huevos infectivos que contaminan suelo, agua o contaminación de las manos con heces de
mapache. por las similitudes del huevo de Bayliascaris con otros Ascaroideos del perro,
tales como Toxacara o Toxascaris es difícil la diferenciación lo cual provoca diagnósticos
erróneos.
Característica
B. procyonis
T. canis
Tamaño
75 por 60m
80 por 75m.
Cubierta
Elipsoidal
Subesferica
Capa proteica
Café
Café
Textura
Granular
Rugosa
Superficial
Color del embrión Café oscuro opaco Café oscuro opaco
Embrión
Parcialmente lleno
Casi lleno
T. leonina
80 por 90m.
Elipsoidal
Sin color
Lisa
Gris traslucido
Parcialmente
lleno
Tabla No.8 Características de huevos de Ascaroideos encontrados en heces de perros.
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_________________________________________________________Manual de parasitología
Diagnóstico: Mediante la identificación de adultos cuya medida es de 10 a 22cm., Además de
que ambos sexos presenta alas cervicales reducidas y estas solo pueden ser advertidas
por procesos histológicos. Además del diagnóstico C.P.S´s mediante técnicas de flotación
con sulfato de Zinc.
Tratamiento: La piperazina a razón de 110 - 200mg/Kg PO y repetir a los 10 días, se ha
utilizado como vermífugo con buenos resultados en los pocos casos reportados en
caninos, sin embargo seria bueno evaluar otros antihelmínticos que muestran buenos
resultados contra otros ascaroideos y contra Bayliascaris esto ultimo en el caso de
mapaches, fármacos tales como el pamoato de pirantel, el febendazole y el mebendazol.
Physaloptera praeputialis, P. rara y P.canis.
Nombre común: Gusano gástrico (Spiruruidea)
Características: Los miembros del genero Physaloptera presentan dos grandes pseudolabios,
armados con un numero variable de dientes, cutícula holgada y espículas asimétricas
medidas del parásito adulto de 27 a 45mm.
Tamaño del huevo: 40 por 30 m. siendo larvados al momento de ser puestos.
Importancia: Aunque se le atribuye poca patogenia se le asocia a gastritis en grado variable
dependiendo de la magnitud de la infección, el parásito adulto se adhiere firmemente a la
mucosa ejerciendo una acción traumática.
Ciclo biológico: El ciclo biológico es indirecto y participan como H.I. cucarachos y grillos,
mientras que aves y reptiles actúan como H.P. el parásito adquiere el estadio de L3 a los
28 días en el H.I. y en el H.D. el adulto aparece de los 56 a los 83 días postinfección.
Diagnóstico: Presencia de huevos larvados en heces, mediante técnicas C.P.S.´s. de flotación
o bien endoscopia digestiva, así como sintomatología (vomito recurrente y baja de peso).
Tratamiento: Tratar todo animal positivo al examen C.P.S.´s.
Diclorvos 27-33mg/kg.
Febendazole 20mg/kg PO c 24hx5d.
Ivermectina 0.05-0.5 mg/kg SC o PO.
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Spirocerca lupi
Nombre común: Gusano del esófago (Spiruruidea)
Características: Es un parásito de color rojizo, enrollado en forma de espiral, mide de 3 a
8cm de largo, presenta boca hexagonal, espículas asimétricas.
Tamaño del huevo: Los huevos miden 40 por 12 m, ósea que tienen forma de salchicha y
son embrionados al ser puestos.
Importancia: Su principal patogenia es una acción irritativa crónica, que se traduce en
lesiones granulomatosas en el lumen esofágico, así como predisposición a tumores
malignos y osteoartropatia hipertroficapulmonar.
Ciclo biológico: Se ha reportado a Spirocerca de gatos, coyotes, zorros, chacales, jaguares,
linces, leopardos, lobos, cabras, caballos, burros y humanos, el parásito adulto
normalmente reside en masas nodulares en la porción torácica del esófago que comunican
a el lumen de sete órgano por medio de túneles al través de los cuales los huevos son
eliminados al tracto digestivo, los huevos son eliminados junto con la materia fecal de
donde son ingeridos por escarabajos coprófagos que son los H.I. o bien pueden ser
ingeridos por Hospederos de Transporte (H.T.) como pequeños mamíferos y aves así
como reptiles y anfibios. Luego de que el H.D. ingiere a la larva infectante L3 esta penetra
la mucosa del estomago a las 48hrs. de su ingestión, alcanzando a la arteria gástrica por
la cual migra en sus capas, hasta alcanzar la porción torácica de la aorta esto ocurre
aproximadamente a los 102 a 124 días postinfección, luego de un periodo de maduración
de 2
½
a 3 meses en la pared de la aorta migra a su órgano blanco. El periodo prepatente
es de 6 meses.
Diagnóstico: Sintomatológico, del cual se describe vomito frecuente, disfagia, emaciación
cuadros nerviosos en localizaciones erráticas. Esófagos copia y/o gastroscopia,
radiologicamente se puede hacer fluoroscopia para evaluar él transito de la pasta de bario
(Esophgotrast) al través del esófago o él estomago, mediante radiología normal se puede
apreciar espondilosis de la vértebra T5 a la T12.
Tratamiento: Dietilcarbamicina 500mg/kg PO c24hx10d.
Prevención: Evitar la ingestión de H.I. y H.T.
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Filaroides osleri
Superfamilia: Metastrongyloidea (gusanos pulmonares).
Hospedero: Caninos
Descripción: Nematodos pequeños y delgados que se encuentran en nódulos en la bifurcación
de la traquea y bronquios.
Distribución: Mundial
Ciclo de Vida: huevos eclosionan en los pulmones del hospedero y pasan por la tráquea hasta
la faringe y al tracto digestivo. Pasan al excremento e infectan a otros perros (cachorritos)
que los comen. Migran probablemente por la sangre hasta los pulmones.
Patología: Causan una tos seca. Los nódulos se forman en la mucosa del tráquea.
Normalmente no provocan daños hasta que están tan grandes que interfieren con el paso
de aire.
Diagnóstico: Es difícil encontrar las larvas en las heces por Baermann porque no se mueve
mucho. Más fácil es frotis directo de esputo o de las heces. Flotación con ZnSO4 (g.e. =
1.18) puede mostrar larvas en las heces. El diagnóstico es más seguro si se usa una
broncoscopio para ver los nódulos.
Control y Tratamiento: Al nacimiento separar los cachorritos de la madre. Posiblemente
ivermectina es eficaz, otros antihelmínticos no son tan buenos.
Comentario:
Aelurostrongylus abstrusus
Superfamilia: Metastrongyloidea (gusanos pulmonares)
Hospedero: HI - muchas especies de caracoles y babosas; HP - lagartos, ratones, etc.; HD –
felinos.
Descripción: Un nematodo que se encuentra en nódulos en la parenquima de los pulmones.
Los nódulos se proyectan de la superficie de la pleura. En el pulmón los nódulos aparecen
blancos con centros grises. En los nódulos se puede encontrar huevos y larvas. Las larvas
tienen colas con una bifurcación en la punta.
Distribución: Mundial
Ciclo de Vida: L1 pasan por los bronquiolos hasta la traquea y después pasan a las heces.
Entran a cualquier molusco y desarrollan hasta L3. La L3 es la fase infectante para el gato
o un HP. Normalmente gatos se infectan por comer HP. Migran hasta los pulmones por
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la cavidad peritoneal, no por la sangre. En los pulmones empieza a poner huevos y el
hospedero forma nódulos.
Patología: Normalmente no hay signos clínicos, pero se puede presentar tos, anorexia, disnea,
y caquexia. Los alvéolos se encuentran infiltrados por eosinófilos, macrófagos, y linfocitos.
La capa de músculo suave en la pared de las arterias y arterioles desarrolla hiperplasia e
hipertrofia. Generalmente hay autocuración con desaparición de las lesiones dentro de 6
meses después la infección.
Diagnóstico: Las larvas son más activas que las de Filaroides spp. y por eso se puede usar el
método de Baermann.
Control y Tratamiento: Ivermectin 200ug/kg, fenbendazole 20 mg/kg/día por 5 días.
Comentario:
Ollulanus tricuspis
Superfamilia: Trichostrongyloidea
Hospedero: Normalmente gatos pero se le puede encontrar en caninos también
Descripción: Menos de 1 mm de largo. La hembra tiene una cola con tres puntas con huevos
y larvas en el útero. Se localiza en el estómago de gatos.
Distribución: Todo el mundo
Ciclo de Vida: Los adultos están entre el moco que forra el estómago y la mucosa. Las
hembras producen larvas infectivas (L3) que pasan en el vomito o cuando la hembra
regurgita comida para las crías.
Causan también auto infección y pueden producir
poblaciones muy altas.
Patología: En caso de tener muchos nematodos, pueden provocar inflamación de la mucosa
con vómito, pero es muy raro. Normalmente no son patógenos.
Diagnóstico: Encontrar los nematodos en el vómito
Control y Tratamiento: Normalmente no es necesario pero cualquier benzimidazole o
ivermectina debe funcionar
Comentario: No es muy importante con excepción de casos con números muy altos.
Probablemente hay más animales infectados de lo que suponemos.
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Strongyloides stercoralis y S. tumefaciens
Superfamilia: Rhabditoidea
Hospedero: Caninos y humanos -Strongyloides stercoralis
Felinos - Strongyloides tumefaciens
Descripción: Hembras de 2.2 mm con esófago 1/3 a 1/4 el largo del nematodo.
No hay
machos parasitarios. Los huevos tienen larvas cuando son puestos. Los huevos son
parecidos a los huevos de los trichostrongyloideos pero son de 2/3 del tamaño. Muchas
veces las larvas L1 eclosionan en el tracto digestivo y pasan en las heces.
Distribución: Áreas tropicales y subtropicales.
Ciclo de Vida: La hembra infecta el intestino delgado y produce huevos larvados por
partenogenisis. Las larvas pasan en las heces y desarrollan hasta L3 que es infectiva o
adultos de son de vida libre (machos y hembras) que producen larvas infectivas.
Necesitan 24 a 48 horas para producir L3.
Son muy susceptibles a condiciones de
resequedad. Las L3 infectan el hospedero por penetración del piel. Migran por la sangre
hasta los pulmones donde entran a los alvéolos y pasan por la traquea hasta el tracto
digestivo. En humanos el hospedero puede sufrir auto infección, pero esto no pasa en
perros.
Patología: Penetración del piel provoca una reacción alérgica con prurito. Migración en los
pulmones provoca neumonía. En el intestino delgado las vellosidades se acortan e
inflaman. Causan diarrea con moco y sangre.
Diagnóstico: Encuentra las larvas en un frotis directo o de Baermann de heces frescas.
Control y Tratamiento: Secar el medio ambiente donde habitan los perros y tratar con
benzimidazoles tres días seguidos o avermectinas uno solo vez.
Hay que repetir el
tratamiento una vez por semana por tres semanas.
Comentario: Ese parásito es un zoonosis y es difícil tratar en humanos. Tener mucho cuidado
con el. Es muy susceptible al calor, resequedad, y frió. Hay que limpiar bien el medio
ambiente.
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Ancylostoma spp.
Superfamilia: Strongyloidea
Hospedero: Normalmente A. caninum en caninos, A. tubaeforme en gatos
Descripción: Nematodos de 1 a 2cm de largo encontrados en duodeno. La boca es lateral. Hay
dos juegos de tres dientes en la parte anterior de la boca. Tiene un esófago grueso y
musculado y una cavidad bucal.
Distribución: Áreas tropicales y subtropicales
Ciclo de Vida: Huevos pasan en las heces, larvas se desarrollan hasta L3 en el medio
ambiente. Necesitan temperaturas entre 23 - 30C con humedad para desarrollarse
óptimamente. Entran al hospedero por la piel o por la boca. Pasa por la sangre a los
pulmones donde entran a los alvéolos y migran por la traquea y se degluten para llegar al
intestino delgado. Otras larvas siguen en la sangre a los tejidos corporales y quedan
secuestrados en los músculos. Unas de esas larvas, somáticas, se reactivan
constantemente y migran hasta el intestino pero la mayoria de ellas esperan que la perra
este lactante y migran por las ubres y entran a la leche. Se encuentran más en la leche
durante la primera semana pero hay unas que pasan hasta la tercera semana. El periodo
prepatente en los cachorros es 2 semanas.
Patología: Provocan perdida de sangre por tomarla y cuando se cambian de un sitio a otro, la
herida sigue sangrando unos minutos por los anticoagulantes que se encuentran en la
saliva.
La cantidad de sangre que toman es más de la que necesita para nutrirse y
probablemente la usan como fuente de O2. Hay varias formas de la enfermedad.
A.- Hiperaguda En los cachorritos recién nacidos que reciben 50 - 100 larvas en la leche
la infección puede matarlos dentro de una semana antes de que se encuentren huevos en
las heces. Las membranas mucosas son muy pálidas y las heces son más liquidas de lo
normal y con sangre.
B.- Aguda En animales mayores que se infectan con muchos nematodos a la vez, se
pueden tener los mismos síntomas pero no tan fuertes. Normalmente demora hasta que
se pueden encontrar huevos en las heces en grandes cantidades.
C.- Crónica Enormalmente no hay signos clínicos pero se pueden encontrar huevos en
las heces y hematocrito un poco bajo.
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D.- Secundaria En perros viejos pueden tener un síndrome con anemia y caquexia y se
encuentran huevos pero casi siempre hay otros factores no parasitarios asociados a este
cuadro. Muchas veces es por mala nutrición.
Diagnóstico: Anemia en un animal que tiene una historia compatible con infección, huevos del
tipo strongyloideo en las heces
Control y Tratamiento: En el criadero usar concreto para el piso de las jaulas y limpiarla
todos los días. Usar un programa regular de antihelmínticos en los adultos para que no
contaminen el medio ambiente con larvas. Dar tratamiento cada semana a los cachorritos
cuando hay peligro de ser infectado hasta que tienen 6 semanas de edad o después
dependiendo de la situación. Algunos Cachorritos posiblemente van a necesitar una
transfusión de sangre.
Comentario: Ancilostomiasis es uno de los peores problemas de cachorritos. Reactivación de
las larvas hipo bióticas pueden reemplazar los adultos que mueren por tratamiento. La
sanidad es muy importante. La Inmunidad es importante para proteger animales adultos y
es más o menos fuerte en animales sanos.
Dirofilaria immitis
Superfamilia: Filaroidea (gusano del corazón).
Hospedero: caninos, focas, hurones, gatos; humanos y otros son hospederos aberrantes.
Descripción: 12 - 30 cm de largo. Machos tienen una cola en la forma de espiral. Se
encuentran en el corazón derecho. Microfilarias se reconocen por su tamaño 307 - 322µm
y su largo 6 - 7µm de ancho. El extremo anterior es ahusado. Hay que distinguir de las
micrafilarias de Dipetalonema reconditum. Ellas son 246 - 293µm de largo y >5.6µm de
ancho. D. reconditum tiene un extremo anterior redondeado que no es ahusado.
Distribución: Donde hay mosquitos y caninos.
Ciclo de Vida: Microfilarias se ingieren por mosquitos de casi todos los géneros. En el
mosquito la microfilaria se desarrolla hasta L3 dentro de dos semanas y pasa a las
glándulas salivarias. Escapan cuando el mosquito pica a un perro. Migran por los tejidos
conectivos aproximadamente 4 meses. Después la ultima muda a 50 a 70 días la L5
(adulto inmaduro) entra el sistema venoso y entra al corazón derecho. El periodo
prepatente en el perro es aproximadamente 6 meses. El parásito puede sobrevivir 7 años
y la microfilaria 2 años.
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Patología: Si no hay muchos adultos, el perro no sufre si no tiene que hacer mucho ejercicio.
Pero el numero de nematodos no esta bien correlacionado con la severidad de la
enfermedad. Hay dos síndromes. El más común es el de falla congestiva del corazón
donde un aumento en la presión arterio pulmonar presiona al corazón derecho hasta que
este se dilata. La presión sube porque la intima de las paredes de las arterias pulmonares
proliferan y el lumen se hace más estrecho. Con tratamiento los lesiones pueden
disminuir. El otro síndrome se llama síndrome de vena cava, que se presenta cuando
un perro joven sufre una primoinfección con muchas larvas que llegan al corazón al mismo
tiempo entonces se produce un bloqueo que afecta flujo de sangre y el daño es directo al
hígado. Los síntomas aparecen de forma hiperaguda: muere dentro de 1 día, hemolisis
con hemoglobinemia y hemoglobinuria.
Se encuentra muchos parásitos en el atrio
derecha y la vena cava. Hay que extraer quirúrgicamente a los nematodos usando fórceps
de caimán por la vena yugular.
Diagnóstico: Encontrar microfilarisa por el método de Knott. Mucho mejor que gota directa. Si
es negativo, puede ser parasitosis oculta. Usar pruebas que demuestren antígenos en la
sangre. Dirofilariasis oculta es por 1) infección prepatente, 2) Uno solo sexo del
nemátodo (por tratamiento), 3) Nematodos viejos, 4) Respuesta inmunologíca del
hospedero contra microfilarias. Radiografías muestran los cambios en el tamaño del
corazón y la opacidad de los pulmones. Hay que diferenciar entre microfilarias de D.
reconditum y D. immitis (ver Descripción).
Control y Tratamiento: Preventivo - dietilcarbamazina 2.5 mg/kg/día por siempre.
ivermectina 0.006 mg/kg/mes
milbemicina 0.05 mg/kg/mes
Tratamiento - Thiacetarsamide (Caparsolate) 2.2 mg/kg IV 2x/día por 2 días - mucho
cuidado, si provoca ictericia o vomito persistente, termina la aplicación. Guardar 3
semanas sin ejercicio ninguno. Trata con aspirina empezando 1 semana antes del
tratamiento y seguir por dos semanas para no tener tanto problemas de trombosis. Tres o
cuatro meses después del tratamiento, matar las microfilarias con ivermectina 0.05
mg/kg. Dos semanas después hacer una Knott para ver si han muerto todas las
microfilarias y si no, trata otra vez. A los seis meses hacer una prueba para ver si todos
los adultos están muertos.
Comentario: Es el parásito más importante y común en perros adultos.
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Dracunculus insignis
Superfamilia: Dracunculoidea
Hospedero: Mapaches, perros
Descripción: 120 cm de largo encontrado bajo de la piel, normalmente de las piernas
Distribución: Donde hay mapaches y también ciénagas
Ciclo de Vida: La hembra pone larvas por una ulcera en la piel del hospedero cada vez que el
hospedero entra el agua. El hospedero intermediario es un crustáceo microscópico,
Cyclops. Se infecta el hospedero definitivo por ingestión y migra hasta el tejido
subcutáneo después del apareamiento.
Patología: La hembra viaja por la piel y duele mucho. Ulceras se pueden infectar.
Diagnóstico: Ulceras con un nematodo muy largo dentro la ulcera
Control y Tratamiento: Extracción quirúrgica.
Comentario:
Capillaria plica
Superfamilia: Trichuroidea
Hospedero: Carnívoros, los gatos se infectan por C. feliscati también.
Descripción: 20 - 60 mm de largo. Se encuentran huevos característicos en la orina.
Distribución: Todo el mundo
Ciclo de Vida: Adultos están embutidos en el epitelio de la vejiga o uréteres producen huevos
que pasan a la orina. Para que otro hospedero se infecte primero hay que infectar un
lombriz. Los huevos eclosionan en la lombriz. Después de que se ingieren las lombrices,
las larvas (L2) desarrollan en la pared del intestino delgado. Después más o menos 1 mes,
se encuentran L3 y L4 en la vejiga.
Patología: Puede provocar disuria, cistitis secundaria, hematuria, micción frecuente.
Normalmente no se encuentran números suficiente para causar problemas.
Diagnóstico: Se encuentran huevos típicos en la orina
Control y Tratamiento: IVM 0.2 mg/kg. No dejar animales encuentran lombrices y no dejar
los perros orinar donde hay lombrices. Poner los animales en concreto o arena.
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Comentario: Más probable se encuentra este nematodo en situaciones donde muchos perros
comparten poco espacio. Sin reinfección los hospederos van a perder su población
primoinfectante dentro de 3 o 4 meses por la muerte de los parásitos adultos.
Capillaria hepatica
Superfamilia: Trichuroidea
Hospedero: Roedores (definitivos), gatos y perros (incidentales)
Descripción: El adulto se evidencia en el hígado por histopatología como hallazgo incidental.
Es un nematodo que contiene huevos características de Capillaria. Los huevos están entre
las células del hígado. Tiene una pared gruesa bioperculados. La forma es parecida a
Trichuris pero las paredes son más paralelas.
Distribución: Todo el mundo donde hay ratas.
Ciclo de Vida: El adulto vive en el hígado y produce huevos que se atrapan en el hígado.
Cuando un predador come al hospedero, los huevos se sueltan del hígado por la acción
digestiva del predador y se pasan en las heces del predador. Con tiempo y con O2 los
huevos desarrollan a huevos infectantes. Si cualquer animal come los huevos, el parásito
migra hasta el hígado y comienza poner huevos. Si el hospedero muere en el hígado en
descomposición los huevos también puede desarrollar hasta ser infectivos.
Patología: Normalmente no provoca daños.
Se encuentra en el hígado como hallazgo
incidental cuando se hace una examen histológico.
Diagnóstico: Encuentra huevos típicos en el hígado. Si encuentra huevos en los heces de un
gato o perro, no quiere decir que está infectado pero si que “la rata que acababa de
comer”.
Control y Tratamiento: Ninguno tratamiento pero puede disminuir el problema sin el control
de las ratas. No es un problema importante.
Comentario: Hay muchos casos de coyotes y zorros infectados por haber comido carroña.
También se encuentra en algunos gatos, pero no es común.
Trichuris vulpis
Superfamilia: Trichuroidea
Hospedero: Caninos, en gatos T. serrata y T. campanula son raros.
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Descripción: Se encuentra normalmente en el ciego y intestino grueso. Tiene de 45 - 75 mm
de largo. El esófago ocupa 2/3 anteriores del nematodo y el 1/3 posterior es mucho más
grueso. El macho tiene una sola espicula. La hembra esta llena de huevos característicos.
Los huevos tiene la forma de un fútbol americano bioperculados. Puede diferenciar de los
huevos de Capillaria por la forma de las paredes.
Distribución: Todo el mundo.
Ciclo de Vida: Huevos pasan al excremento y una larva se desarrolla dentro de ellos. Necesita
varias semanas, dependiendo de la temperatura, para ser infectante. En la sombra con
temperaturas frescas, el huevo sobrevive 4 - 5 años.
En el hospedero la larva se
desarrolla hasta el adulto y pone huevos después 11 - 12 semanas. el adulto entra la
superficie de la mucosa y toma sangre
Patología: En perros causa diarrea con moco cuando hay muchos parásitos. como el nematodo
toma sangre, puede causar anemia también
Diagnóstico: Los huevos son característicos y flotan con soluciones de (g.e de 1.2).
Control y Tratamiento: Ivermectina o un benzimidazol.
Hay que tratar al menos 3 días
seguidos con benzimidazoles y 5 es mejor. Los huevos son susceptibles a la resequedad y
al sol, normalmente sobreviven hasta 5 años. Es un problema en perros que no tiene
mucho espacio para defecar. NaOH (50%) ayuda pero si hay un gran problema, mejor de
reemplazar las paredes y el piso con algo no poroso.
Comentario: No es zoonótico pero es un problema serio en perros. Hay que prevenir la
contaminación del medio ambiente.
Alaria spp.
Superfamilia: Strigeidae
Hospedero: perros, gatos - HD; caracoles - HI1; renacuajos - HI2; HP son importantes
Descripción: La parte anterior es más grande y adaptada para fijarse a la pared del intestino.
El parte posterior es más estrecha >4.5cm de largo. Se encuentra en el intestino delgado.
Distribución: Varias especies en todos partes del mundo.
Ciclo de Vida: Huevos eclosiona en agua y miracidio buscan un caracol. Salen del HI1 como
cercaria y busca HI2 - un renacuajo. Penetran la piel y forma metacercaria que
enquistarse y infecta HD o HP cuando se come la rana. Cuando es comida por el HD,
migra por la pared intestinal, por la cavidad peritoneal, por la diafragma, y entra a los
pulmones. Pasa por la traquea hasta la faringe y entra el intestino delgado.
HP son
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importantes. Una especie en gatos puede pasar a la leche cuando se infecta una gata
lactante. Van a infectar los gatitos. Posiblemente otras especies pueden hacer lo mismo.
Patología: En parasitosis de baja intensidad no pasa nada. Diarrea cuando hay muchos. Se
encuentra por accidente en la necropsia rutina. Hay un caso de un hombre que murió
cuando comió patas de ranas mal cosidas. Las metacercarias había migrado por sus
pulmones y el murió por hemorragia pulmonar.
Diagnóstico: Encontrar los huevos por sedimentación.
Control y Tratamiento: Controlar la dieta de las mascotas. Praziquantel 5 mg/kg
Comentario:
Paragonimus kellicotti
Superfamilia: Troglotrematidae.
Hospedero: HI1 - caracoles acuáticos; HI2 - cangrejo; HD – carnívoros.
Descripción: Grueso, rojomarron, 15 X 8mm encontrado en quistes en los pulmones.
Normalmente hay dos por quiste. El huevo es característico el opérculo es bien
demarcado.
Distribución: América del Norte y el norte de América del Sur.
Ciclo de Vida: Huevos eclosionan en el agua y las miracidíos entran en caracoles por
penetración de la piel. Se reproducen como cercarías que entran a los cangrejos. Las
Metacercarias se desarrollan en el cangrejo e infectan cualquier carnívoro que las come.
Pasan por la pared del intestino. Entran la cavidad abdominal. Después unos días, pasan
por el diafragma hasta los pulmones. El hospedero lo encapsula en un quiste con fistulas
para que los huevos puedan entrar a los bronquiolos.
Patología: Causan daño durante la migración y en los pulmones. Hay problemas cuando
entran a otros órganos distintos a los pulmones. En los pulmones el problema mayor es
hipersenistividad a los huevos. Neumotorax puede ocurrir también.
Diagnóstico: Huevos característicos en las heces, radiografías.
Control y Tratamiento: Controlar la dieta de las mascotas. Albendazole 25 mg/kg 2X/día por
2 semanas, praziquantel 25 mg/kg 3X/día por 2 días
Comentario: Humanos son susceptibles. La presencia de HI1 es importante en la
epidemiología del parásito.
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Taenia spp.
Superfamilia: Taeniidae
Hospederos: -T. multiceps
-T. ovis
-T. saginata
-T. solium
-
HD:
HD:
HD:
HD:
canino
canino
humano
humano
-
HI
HI
HI
HI
-
ovino
ovino
bovino
suinos, humano
Descripción: T. multiceps - coenurus localizados en el SNC.,T. ovis, T solium y T. saginata cisticercos localizados en los músculos.
El coenurus de T. multiceps es de hasta 5cm de tamaño. Los cisticercos de T. solium,T.
ovis y T. saginata tiene un tamaño de 1 mm X 6mm y normalmente se encuentran en el
corazón, maseteros o diafragma pero también pueden estar en todos los músculos
esqueléticos. Los adultos están en el intestino delgado del HD y pueden alcanzar hasta
10m de largo.
Distribución: Mundial, T. multiceps no es muy común en América.
Ciclo de Vida: Los proglótidos pasan a las heces del HD y se mueven por el medio ambiente
dejando huevos. Cuando el HI ingiere los huevos, el embrioforo eclosiona y migra por la
sangre hasta su sitio. Las larvas se desarrollan en los tejidos hasta ser infectantes. T.
multiceps: 7 - 8 meses, T. solium: 9 - 10 semanas, T. saginata y T. ovis 10 - 12 semanas
y sobreviven en el HI hasta 2 años. Cuando el HD come las larvas, los escolexes se
evierten y se fijan a la pared del intestino delgado. Comienzan a producir proglótidos con
un solo poro.
Patología: T. multiceps y T. solium producen signos nerviosos por dañar al cerebro o medula
espinal. Los signos dependeran del sitio donde se encuentra el coenurus o cisticercus.
Diagnóstico: En el HD se encuentran los proglótidos o los huevos en las heces. En HI se
encuentran los cisticercos o coenurus a la necropsia.
Control y Tratamiento: Hay que prevenir la transmisión del HD al HI. No comer carne cruda y
no usar aguas negras para regar pastos. Poner sanitarios en las engordas para los
trabajadores.
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Comentario:
Taenia spp.
Superfamilia: Taeniadae
Hospedero: HD - carnívoros; HI - herbivoros
Descripción: Existen muchas especies que son muy parecidas de morfología, pero que son
especificas para sus hospederos. Con una excepción el escólex tiene una corona doble de
ganchos y 4 ventosas.
Un parásito puede tener hasta miles de proglótidos. Los
proglótidos inmaduros son más ancho que largos pero los grávidos son más largos que
anchos. Cada proglotido tiene un ovario y un testículo y el poro genital es unilateral. El
huevo es circular u oval con tres pares de ganchos finos. La pared es gruesa y lisa. El
tamaño es un poco más pequeño que el huevo de Toxocara.
Distribución: Mundial
Ciclo de Vida: El huevo (embrioforo) pasa en el excremento del HD dentro del proglotido o
libre. El HI lo come. El embrión hexacanto sale del huevo y usa sus ganchos para entrar
la pared del intestino. El pasa en la sangre hasta su órgano de preferencia y desarrolla en
un quistocercoidea. Dependiente de la ruta de migración y el sitio del quistocercoidea,
puede provocar daños.
Cuando el predador la come y entra del intestino delgado, el
quistocercoidea evagina y nuevos ganchos agarran la pared del intestino.
El escólex
comienza producir nuevos proglótidos.
Adulto
T. pisiformis
HD
perro
T. hydatigena
perro
T. saginata
T. solium
humano
humano
T. ovis
T. multiceps
T. serialis
perro
perro
perro
Larva
Cysticercus
pisiformis
Cysticercus
tenuicollis
Cysticercus bovis
Cysticercus
cellulosae
Cysticercus ovis
Coenurus cerebralis
Coenurus serialis
T. taeniaformis
gato
Cysticercus
HI
conejo
Localización
peritoneo
rumiante
peritoneo
bovino
porcino
músculo
SNC, músculo
ovinos
ovinos
conejo
músculo
SNC
tejido
conectivo
hígado
roedores
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fasciolaris
Tabla No. 9 Cestodos de perros, gatos y humanos.
Patología: En el hospedero definitivo no provocan síntomas pero los dueños están molestados
si se encuentran segmentos en las heces de la mascota.
Las larvas de T. hydatigena migran del intestino hasta el hígado.
Aquí pasan por el
parénquima hasta la cápsula donde entran la cavidad peritoneal. Cuando hay muchas al
mismo tiempo, la oveja o cabra puede morir por daño al hígado.
Las larvas de T. solium enquistan el los músculos de cerdos pero si un humano se infectan
puede migrar a cualquier sitio inclusivo el SNC donde forman quistes.
Las larvas de T. multiceps se encuentran en el cerebro de ovejas donde producen
síntomas nerviosos. El daño de T. solium y T. multiceps son por destrucción de neuronas
del cerebro.
Diagnóstico: En el perro o gato se encuentra huevos en flotación y se puede ver los
segmentos en el excremento.
Control y Tratamiento: Para cortar el ciclo es necesario de no dejar a perros y gatos comer el
HI.
Praziquantel 5 mg/kg
Epsiprantel
5.5 mg/kg
Niclosamide 157 mg/kg
Fenbendazole 50 mg/kg/día por 3 días.
Dipylidium caninum.
Superfamilia: Dilepididae.
Hospedero: HD - perros, humanos; HI – pulgas.
Descripción: El escólex es parecido al de Taenia pero los ganchos son más pequeños. Los
segmentos tiene la forma de semilla de pepino, con un poro genital en ambos lados. Los
huevos se encuentran cuando se machaca un segmento, están dentro de una cápsula que
contiene de 5 - 30 huevos por cápsula, el cisticercoide se encuentra solamente dentro de
pulgas.
Distribución: Mundial
Ciclo de Vida: proglótidos pasan a las heces. Los huevos escapan por los movimientos
musculares del segmento.
Las larvas de pulgas los comen y los quistocercoides se
desarrollan en la larva. Los quistocercoides sobreviven la muda y infectan a las pulgas
adultas. Entran el HD cuando este come una pulga infectada y el escólex evagina en el
intestino delgado y se une a la pared y empieza de producir proglótidos.
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Patología: Ninguna, provoca nausea en el dueño. El adulto puede infectar niños que comen
pulgas.
Diagnóstico: Encontrar segmentos (proglotidos) en las heces
Control y Tratamiento: Hay que controlar pulgas. Si no, después tratamiento puede tener
otra infección patente dentro de tres semanas. Praziquantel 5 mg/kg, Fenbendazole 50
mg/kg por 3 días.
Comentario:
Echinococcus granulosus
Superfamilia: Taeniadae
Hospedero: Caninos - HD; otros mamíferos - HI
Descripción: El adulto es casi microscópico (3 - 4mm de largo) tiene 3 o 4 segmentos. El
ultimo es grávido. Puede haber miles de cestodos en el intestino de un perro. El huevo
es típico de la familia Taeniadae. Las larvas, se encuentran con más frecuencia en el
hígado y pulmones, y son del tipo hidatídico.
Llega a ser del tamaño de una cabeza
humana con una pared gruesa y dura. Dentro del quiste hay miles de protoescolices
dentro de quistes hijos.
Distribución: Asociado con ovejas y caninos pastores. Se encuentra más en las regiones
donde hay mucho producción de ovinos. También se encuentra en Kenya donde es un
problema serio con chacales, perros y humanos.
Ciclo de Vida: típico para Taenia. Huevos con embriones hexacantos pasan en las heces del
perro. Se ingieren por los herbívoros y migran en la sangre hasta que se encuentra un
red de capilarias. Se forman quistes hidatídicos. Como una quiste puede tener miles de
protoescolices, es posible que
un perro pueda tener miles de adultos en su intestino
delgado.
Patología: Crecimiento del quiste causa necrosis por presión en el órgano donde se encuentra.
Los síntomas dependerán del órgano afectado.
Diagnóstico: Perro - Por encontrar huevos de Taenia en el copro, tratan el perro con
arecolina. Si salen miles de parásitos chicos, ya tienes el diagnóstico.
Control y Tratamiento: El más importante es no dejar que los perros coman vísceras mal
cosidas. Praziquantel 5mg/kg.
Comentario: Hay otras especies que pueden afectar humanos también. En América Latina se
encuentra E. vogeli que produce una quiste hidatídico poliquístico. El HI normal es una
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_________________________________________________________Manual de parasitología
paca pero humanos pueden ser infectados también. Como humanos son hospederos
aberrantes, en regiones endémicas, es peligroso para humanos.
Además no es una
manera muy linda de morir.
Filum: Arthropoda
Moscas
Clase: Insecta
Cuterebra
Orden: Díptera
Hospedero: Normalmente roedores y conejos pero se encuentra en gatos u otros animales que
entran a los nidos de roedores
Descripción: Se encuentra la larva bajo la piel con un hueco de  0.5cm y que comunica al
exterior. La larva tiene dos espiráculos para respirar y usa esta hueco en la piel para
poner sus espiráculos. La larva tiene muchas espinas y puede llegar a más de 2 cm de
largo. La larva generalmente está cerca del cuello.
Distribución: Las Américas
Ciclo de Vida: El adulto pone sus huevos donde el hospedero preferido, normalmente un
roedor o conejo, puede encontrarlos. La larva eclosiona cuando un hospedero está cerca
y penetra por la piel. Hay otros estudios que dicen que la larva entra por orificios
naturales (boca, ano, ojo) y migran por los tejidos conectivos hasta su sitio. En su sitio se
hace un hueco en la piel para respirar. El gatito se infecta cuando está casando ratones en
sus nidos donde la mosca ha puesto sus huevos. Después de crecer se sale por el hueco y
forma una pupa en la tierra. El adulto sale de la pupa y busca un lugar para poner
huevos.
Patología: Puede dañar órganos como el ojo, cerebro, etc. si su migración es aberrante. El
hueco deja entrar bacterias que puede causar una infección secundaria.
Diagnóstico: Si hay un hueco redondo en la piel de un gatito con un nódulo bajo de la piel y
dos “ojos” (espiráculos), es Cuterebra.
Control y Tratamiento: Cirugía. La extracción es muy fácil con pinzas de dientes de ratón
pero hay que cuidar de no romper la larva dentro del hospedero para evitar problemas de
anafilaxia. A veces es necesario abrir el hueco un poco. Después hay que lavar la herida
con algo como agua oxigenada, furacina, etc. y tratar como cualquier herida.
Comentario: No es algo que se encuentre todos los días pero si trabajas con gatos,
eventualmente vas a encontrarlo, en conejos produce castración parasitaria.
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Pulgas
Ctenocephalides felis
Superfamilia: Siphonaptera
Hospedero: Cualquier mamífero, prefiere mamíferos que están en el mismo lugar.
Descripción: Insecto sin alas que tiene patas adaptadas para saltar. Es plano lateralmente y
tiene dos juegos de espinas (peines) en la cabeza.
Distribución: Mundial
Ciclo de Vida: La pulga queda casi siempre en el hospedero. La hembra pone huevos que caen
del hospedero y eclosionan en el medio ambiente. La larva es parecida a las larvas de las
moscas y come material orgánica, especialmente las heces de las pulgas adultas que
tienen mucha proteína y probablemente otros factores. Después de tres mudas, la larva
cambia a pupa y esta sufre una metamorfosis para ser adulto. El adulto queda en la
cáscara de la pupa por unos meses hasta que hay un señal como la presencia de un
hospedero cerca (vibraciones, CO2, calor). Sale de la cáscara y salta en la dirección del
hospedero. Puede sobrevivir unas semanas buscando un hospedero especialmente si el
ambiente es frió y húmedo, pero después de tomar sangre hay cambios bioquímicos y no
puede sobrevivir más que 1 - 3 días fuera del hospedero. La hembra puede poner como
400 huevos en su vida. Las larvas necesitan condiciones muy húmedas para sobrevivir.
Patología: Irritación por alergia a la saliva, perdida de sangre, vector de Dipylidium y
Dipetalonema. La patogenia más importante se llama alergia por mordedura de pulgas
Diagnóstico: Pruritis y también pulgas o heces de las pulgas. Un animal muy alérgico no tiene
muchas pulgas porque las mata con mucho vigor.
Control y Tratamiento: Hay que controlar todos los estadios, huevos, larvas, adultos.
Limpiar y tratar el medio ambiente contra las larvas. Bañar y trata la mascota con
productos que matan los adultos e interfiere con el desarrollo de los huevos. El medio
ambiente incluye dentro y fuera la casa. Productos que se pueden usar son insecticidas
contra larvas y adultos, hormonas sintéticas metroprene (inhibidores de la ecdisona)
contra las larvas y los huevos, aspirador contra todos los estadios en el medio ambiente.
Comentario:
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Garrapatas
Las garrapatas y demás ácaros pertenecen al orden Acarina de la clase Arachnida que
también comprende formas tan diversas como las arañas, los escorpiones y cangrejos y los
moluscos. Las garrapatas y demás ácaros se parecen a los insectos sólo superficialmente.
Difieren por presentar la cabeza, el tórax y el abdomen (idiosoma), porque los adultos tienen
ocho patas en lugar de seis, por carecer de antenas y por poseer quelíceros bucales.
Todas las garrapatas son succionadoras de sangre obligadas por su parte los ácaros se
alimentan además de otros componentes de la piel y no todos son parásitos, muchos de ellos
son de vida libre.
En términos generales las garrapatas se clasifican en dos grupos: las Ixodidas o garrapatas
duras y las argasidas o garrapatas blandas, esta característica se basa en la presencia o
ausencia de escudo.
Superfamilia: Ixodidae con cuatro géneros importantes en mascotas: Rhipicephalus
sanguineus, Dermacentor, Amblyomma, Ixodes
Hospedero: Rhipicephalus - caninos; Dermacentor, Amblyomma, Ixodes - mamíferos y aves.
En las tres etapas evolutivas (larva, ninfa, adulto) las garrapatas escogen hospederos
diferentes.
Descripción: La larvas son casi invisibles pero las otras etapas se puede ver sin microscopio. El
cuerpo no está separado en cabeza, tórax y abdomen. La boca esta formada de
hipostoma (2), chelicera (2) y palpas (2). Ella tiene 6 patas como larva y 8 patas como
ninfa y adulto.
Atrás de la boca se encuentra el escudo que tiene un diseño
(Dermacentor, Amblyomma) o es oscuro (Rhipicephalus, Ixodes).
Distribución: Mundial
Ciclo de Vida: Las larvas eclosionan y buscan un hospedero. Los géneros que parasitan perros
y gatos usan tres hospederos en su vida, uno por cada etapa. Después de engullirse con
sangre la larva cae al suelo donde muda. La ninfa busca otro hospedero y también se
llena con sangre. Se cae, muda y el adulto busca el último hospedero. En ese hospedero
la hembra engorda grandemente después de aparearse con el macho. El macho busca
otras hembras pero la hembra cae al suelo donde ella pone sus huevos y después se
muere. El tiempo para hacer todo eso depende de la temperatura y si la garrapata puede
encontrar un hospedero. No queda en un hospedero más de 3 o 4 semanas.
Patología: Una garrapata toma mucha sangre en su vida y puede provocar anemia si hay
muchas garrapatas pero también puede transmitir microorganismos de un hospedero a un
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otro. Unos microorganismos se pueden transmitir solamente de un etapa a la otra pero
otros se pueden transmitir por los huevos también.
Diagnóstico: Por la forma del escudo, basis capitulum y boca
Control y Tratamiento: En mascotas el único que se pueden controlar es Rhipicephalus
sanguineus que vive solamente en áreas cerradas como casas u otros edificios.
Los
demás se tratan con baños de acaricida u con otros productos químicos. La mascota
encuentra las garrapatas en el campo.
Comentario:
Otobius megnini
Superfamilia: Argasidae
Hospedero: Equinos, bovinos, perros, ovinos, etc.
Descripción: Garrapatas suaves que tiene la forma de una guitarra. Las ninfas son cubiertas
con muchas espinas. La larva es una forma más chica, blanca, tiene 6 patas y no parece
una garrapata. Se encuentra en los oídos en el canal.
Distribución: América Norte y Sur
Ciclo de Vida: Larvas eclosionan y buscan hospederos. Entran los orejas y comienza a tomar
sangre por 1 - 2 semanas. Las dos etapas de ninfas toman sangre 4 semanas - 7 meses.
Después de ser desarrolladas, las ninfas salen del animal, mudan en el medio ambiente y
los adultos ponen huevos. Las formas parasitarias se encuentran por fundo del canal del
oído cerca el tímpano.
Patología: Provocan infección secundaria del oído y puedan dañar el tímpano.
También
provocan irritación que molesta el hospedero.
Diagnóstico: Encontrar las garrapatas
Control y Tratamiento: Aplicar un polvo insecticida dentro el oído. Ivermectina no mata Otobius.
Si se aplica una insecticida, hay que asegurar que no provoca irritación.
Comentario:
Ácaros
Demodex canis
Superfamilia: Demodeciea
Hospedero: perros, otros animales inclusivo humanos tienen sus propios especies de
Demodex. No hay infección cruzada?.
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Descripción: Un acaro que tiene la forma de un cocodrilo sin mandíbulas. Las patas son casi
invisibles porque son muy cortas. Se encuentran en grandes cantidades en los folículos del
pelo en lesiones.
Distribución: Mundial
Ciclo de Vida: Se ponen huevos en los folículos y larvas eclosionan. Ellas mudan a ninfas que
mudan a adultos. Casi todos los perros son portadores y se puede encontrar unos ácaros
en todos los perros.
La perra pasa la infección a sus cachorritos después de sus
nacimento por contacto directo. Si el cachorrito tiene defectos en su sistema inmunitario,
la infección puede volver clínica.
animales susceptibles.
Estrés también puede provocar casos clínicos en
Unos parásitos que bajan el sistema inmunitario, p.e.
Heterobilharzia, también pueden provocar casos clínicos.
Patología: Perdido de pelo en áreas redondas primero en la cabeza, después las patas anterior
y después todo el cuerpo.
El problema más grande es la infección secundaria con
Staphylococcus spp. Hay tres formas clínicas, localizada, generalizada y pododermatitis.
Normalmente la forma localizada resuelve sin tratamiento cuando el perrito llega a
pubertad.
Diagnóstico: Raspado de la piel. Si es bien hecho, debe encontrar muchos ácaros y huevos.
Con cualquier tipo de acaro, hay que tomar muestras de la región periférica de las
lesiones.
Control y Tratamiento: Como la tendencia de enfermarse es hereditaria, debe esterilizar
cualquier animal que sufra de la forma generalizada. También si hay unas en una camada
con la forma localizada, debe esterilizar la perra y el macho y no usar las crías como
reproductores.
Tratamiento es por baños en amitraz una vez por semana. Antes de
bañar hay que cortar el pelo y lavar bien con un producto que entra los folículos para
sacar el sebo. Va necesitar 3 - 4 baños y posiblemente hasta 14 - 16. Si ese programa
no tiene éxito, puede tratar con ivermectina (0.6 mg/kg) una vez por día por 2 - 3 meses
hasta no se encuentran ácaros por 2 semanas o milbemicina dos veces por día con el
dosis mensual por dos meses hasta no se encuentra ácaros por 2 semanas..
Comentario: Amitraz es algo toxico y muchos de los perros tartados están más o menos
sedeados. En casos cuando hay toxicidad el perro puede ser comatoso. provoca cambios
en el nivel de glucosa en la sangre y no usar en animales diabéticos (ni humanos
tampoco). Amitraz es muy toxico en caballos. No usar en equinos.
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Otodectes cynotis
Superfamilia: Astigmata
Familia: Trombiculidae
Hospedero: Todas las mascotas, probablemente es el ácaro más común de perros, zorros,
gatos y hurones.
Descripción: Un acaro redondo con 2 pares de patas anteriores y dos pares posteriores.
Pierna numero tres es muy largo. Las ventosas tarsales son grandes pero curtas. Se
encuentran los ácaros en la canal de la oreja.
Distribución: Mundial
Ciclo de Vida: Como los otros ácaros. Casi todos los Otodectes se encuentran en las orejas
pero unos están en otros partes del cuerpo y puedan reinfectar las orejas después del
tratamiento de las orejas. Unos animales también están infectados sin síntomas clínicos y
puede reinfectar otros animales tratados. El ciclo es de tres semanas.
Patología: Prurito intenso de la oreja. Exceso de cerumen y inflamación del epitelio dentro de
la oreja.
Diagnóstico: Se encuentran ácaros en la cerumen
Control y Tratamiento: Hay que tratar el animal infectado y también todos los animales en
contacto con el al mismo tiempo.
Es mejor de repetir el tratamiento dentro de 1 -2
semanas porque los huevos no son susceptibles al acaricidas y puede eclosionar después
del tratamiento.
Tratamiento es ivermectina (0.1 ml/oreja topical y/o 0.2 mg/kg
subcutaneo) o varias acaricidas en las orejas. Con los otros acaricidas hay que tratar
diariamente por 2 - 3 semanas. NO USAR PRODUCTOS CON LINDANO EN GATOS.
Comentario:
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