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CRÉDITOS
NOMBRE DEL CULTIVO:
Boletín Técnico Hibridación del Cocotero
AUTOR:
José María García Rodríguez
DIRECTOR EJECUTIVO DEL CENTA:
Hernán Ever Amaya Meza
COMITÉ EDITOR:
Hernán Ever Amaya Meza
Director Ejecutivo
Gerente de Investigación
Carlos Mario García Berríos
Gerente de Transferencia
Miguel Ángel Martínez
Silvia Ivonne de Vásquez
Gerente de Comunicaciones
José Abilio Orellana
Encargado de Impresión
COORDINADOR DE PROGRAMA:
Rogelio Ernesto Peñate
REDACCION, CORRECCIONES, DIBUJOS Y FOTOGRAFÍA
División de Comunicaciones CENTA
NÚMERO DE EJEMPLARES
1,000
CENTRO NACIONAL DE TECNOLOGÍA AGROPECUARIA Y FORESTAL
PRESENTACIÓN
El Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal (CENTA),
institución oficial autónoma que desarrolla, promueve y facilita la
investigación y transferencia de tecnología, con el fin de contribuir al
incremento de la producción y productividad de la actividad agropecuaria
en El Salvador, pone a disposición el BOLETÍN TÉCNICO HIBRIDACIÓN
DEL COCOTERO con información básica, producto de la experiencia
acumulada por personal especializado en las ciencias del agro, de
ensayos realizados en campo, del intercambio de conocimiento con
otras instituciones que generan tecnologías agropecuarias y de bibliografía
consultada.
Al igual que éste, CENTA ha generado otros documentos técnicos
organizados por temas que incluyen aspectos claves e importantes que
permiten apoyar a los productores en la toma de decisiones sobre
producción de diferentes rubros agrícolas, pecuarios y agroindustriales;
facilitando la producción y manejo de fincas; considerando condiciones
económicas y agroecológicas.
El BOLETÍN TÉCNICO HIBRIDACIÓN DEL COCOTERO ha sido
producido con el propósito de hacerlo accesible a los diferentes actores
de la actividad agrícola, a estudiantes y profesionales, de tal manera
que constituya una herramienta de investigación, aprendizaje y adopción
de tecnologías; como un aporte al proceso de desarrollo tecnológico
agropecuario de nuestro país.
Hernán Ever Amaya Meza
Director Ejecutivo
CENTA
ÍNDICE
Pag
INTRODUCCIÓN
7
IMPORTANCIA
8
BIOLOGÍA FLORAL
9
PRODUCCIÓN DE SEMILLA
9
Polinización natural controlada
9
Polinización artificial o hibridación
9
Selección de progenitores
10
Obtención de polen de plantas padres
11
Control de la calidad del polen
15
Aislamiento y emasculación de plantas madres
16
Etiquetado y registro
18
COSECHA
19
GLOSARIO
20
BIBLIOGRAFÍA
21
ANEXOS
22
Anexo1
22
Anexo 2
23
Anexo 3
24
BOLETÍN TÉCNICO
HIBRIDACIÓN DEL COCOTERO
INTRODUCCIÓN
El mejoramiento en cocotero, se refiere a la selección de plantas por sus características
fenotípicas y genotípicas sobresalientes, tales como tamaño de fruto, sabor y cantidad de
agua, cantidad de materia prima para la utilización de copra y otros. El término se aplica
también cuando se cruzan plantas de cocoteros diferentes para obtener individuos que superen
las características de los progenitores. El cocotero es la única especie del género Cocos,
diploide con 32 cromosomas; su hibridación es intraespecífica
En la naturaleza existen las polinizaciones entomófila y anemófila (efectuadas por insectos
y viento, respectivamente). Tomando como base este proceso el hombre ha logrado inducir
la polinización cruzada, utilizando polen de diferentes variedades para fecundar otras de la
misma especie, esta actividad se conoce como hibridación y de esta manera se obtiene
material genético que reúna las características deseadas. La primera polinización de cruces
artificiales en cocoteros la efectuó Marshall en 1926, en las islas Fiji, entre variedades enanas
de diferentes tipos: la Niu Leka y la Enana Malaya.
A nivel mundial, el Institute Plant Genetic Resources Internactional (IPGRI) y el International
Coconut Genetic Resources Network (COGENT) y en la región del Caribe, Jamaica Coconut
Industry Board (CIB) han propiciado tecnologías para el desarrollo del cultivo del cocotero,
especialmente en el área de mejoramiento. Parte del contenido de este documento se debe
a los conocimientos adquiridos en el evento Regional STANTECH Trainer´s Course for Latin
America and Caribbean, en Jamaica en 1997, que luego fueron llevados a la práctica.
En El Salvador el proceso de selección se inició en la década de 1950, cuando productores
utilizaron plantas que tenían frutos grandes y alto contenido de copra (alrededor de 200
gramos); se establecieron plantaciones en las islas de la bahía de Jiquilisco y Tihuilocoyo,
con la finalidad de producir aceite de coco y coco rayado.
El Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal (CENTA), ha generado tecnología
para la obtención del híbrido resultante (similar al Maypan) del cruce de cocotero Alto del
Pacífico con el Enano Malasino Dorado, con el propósito de obtener plantas precoces
(producción de frutos a los cuatro años), que produzcan más frutos por racimo, que los altos,
y que de estos frutos se obtenga mayor cantidad de copra que los cocoteros enanos y
contrarrestar la enfermedad del Amarillamiento Letal del Cocotero (ALC) (foto 3), que ha
causado estragos en los países de las Antillas y la Cuenca del Caribe. La tecnología ha sido
adoptada por los productores de la Cooperativa El Jobal, ubicada en la Isla El Espíritu Santo,
en donde se producen semillas híbridas, las cuales se han distribuido a nivel nacional.
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HIBRIDACIÓN DEL COCOTERO
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IMPORTANCIA
De las 9,800 manzanas de cocoteros plantadas en el país, alrededor del 50% tiene más de
40 años, y muchas de las variedades existentes son susceptibles al ALC (fotos 1 y 2), si la
enfermedad ingresa en El Salvador ocasionaría pérdidas en la producción de coco, por lo
que es necesario sustituir las plantaciones con germoplasma tolerante al ALC, consecuentemente
las producciones de coco fruta se incrementarían.
Actualmente se importan alrededor de 8,000,000 de kilogramos de coco fruta y 30,000
quintales de aceite de coco.
Foto 1. Daño del ALC en cocoteros (Roatán,
Honduras)
Foto 3. Híbrido tolerante a
la enfermedad del ALC
Foto 2. Plantas susceptibles (sin follaje) y tolerantes
(Enanos Dorados Malasinos) al ALC.
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HIBRIDACIÓN DEL COCOTERO
BOLETÍN TÉCNICO
BIOLOGÍA FLORAL
El cocotero es una planta monoica (en su inflorescencia presenta flores masculinas y femeninas)
la sucesión de inflorescencias es mensual, pero puede ocurrir que en la época seca tarde
menos que en temporada de lluvias. La duración de la fase masculina es de 20 días, pero
varía con el tipo de cocotero y la época, la fase femenina tiene una duración de tres a cinco
días en las variedades altas y hasta ocho días en promedio en las variedades enanas. En casos
extremos, la fase puede extenderse hasta 15 días. Cada flor femenina permanece receptiva
por uno a tres días, la polinización se realiza por insectos y por el viento; cuando se ha
realizado la fecundación, el estigma se necrosa (color oscuro del ápice). Si la flor es fertilizada
se desarrolla en fruto, el cual es una drupa. Algunas flores femeninas no logran alcanzar la
etapa de madurez. Durante las primeras seis semanas después de la polinización el 70% de
las flores se han caído. La cosecha de frutos se realiza 11 ó 12 meses después (dependiendo
de la variedad) de fertilizadas las flores (Santos G.A. 1996).
El polen del cocotero se desprende constantemente de las inflorescencias abiertas hasta por
24 días con un patrón basípeto; éste puede ser dispersado por el viento en la mayoría de los
casos hasta 200 m y esporádicamente hasta 315 m. La producción del polen por inflorescencia
varía un poco más de un gramo en algunos cocoteros enanos hasta diez gramos en las
variedades altas. El polen puede permanecer viable por varios días a temperatura ambiente,
y muere fácilmente cuando se expone al alcohol o a una temperatura de 150° C El polen
desprendido naturalmente no es viable después de seis días y esto es atribuible a los cambios
en las condiciones de clima (seco y húmedo), alternando con cambios en las temperaturas
bajas por la noche y altas durante el día (Santos G.A. 1996).
PRODUCCIÓN DE SEMILLA
En el cultivo del cocotero existen dos sistemas fundamentales de hibridación: polinización
natural controlada y polinización artificial (asistida). En los dos casos se empleará material
vegetal seleccionado y mejorado.
Polinización natural controlada:
Se utilizan variedades altas como polinizadoras y enanas como madres. Las características
que se buscan en las progenitoras madres son: alta tolerancia al ALC, homocigocidad,
precocidad, alto rendimiento en frutos y su baja altura. En los progenitores padres son: fruto
grande, mayor cantidad de agua y copra. La combinación de variedades altas con enanas,
resulta exitosa debido a su buena aptitud combinatoria. Las inflorescencias de las plantas
madres se emasculan y el polen de los padres cae de manera natural sobre las flores femeninas
receptivas de las plantas madres, dando origen a un fruto híbrido. En este caso los lotes de
producción de semillas deben estar aislados.
Polinización artificial o Hibridación (asistida).
En la polinización artificial, los progenitores masculinos y las plantas madres pueden estar
separados. El polen de los progenitores masculinos fecunda a las flores femeninas con la
intervención humana, de esa manera se efectúan las combinaciones para obtener material
mejorado (foto 4).
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HIBRIDACIÓN DEL COCOTERO
BOLETÍN TÉCNICO
Foto 4. Polinización artificial
Para la realización de este tipo de polinización se sigue el siguiente proceso:
1)
2)
3)
4)
5)
6)
Selección de progenitores.
Obtención de polen de plantas padres.
Control de la calidad del polen
Aislamiento y emasculación de plantas madres.
Etiquetado y registro.
Polinización manual.
1) Selección de progenitores (masculinos y femeninos)
SANTOS ETAL (1996) menciona que los progenitores deben ser seleccionados con base en
sus caracteres fenotípicos y su potencial genético, comportamiento vegetativo y crecimiento
reproductivo. Deben tomarse en consideración características deseables como la tolerancia
a condiciones agroclimáticas adversas y resistencia a plagas. El conocimiento de las
características básicas de los cultivares enanos y altos y del germoplasma deseado es el
resultado de estudios genéticos y de pruebas de habilidad combinatoria así como de los
objetivos específicos en los programas de mejoramiento.
Los cultivares enanos, debido a su precocidad y baja altura son utilizados como progenitores
femeninos; las variedades altas, como donadoras de polen, ya que poseen una producción
estable, tolerancia a las condiciones adversas y, en algunos casos, resistencia a plagas y
enfermedades.
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BOLETÍN TÉCNICO
HIBRIDACIÓN DEL COCOTERO
Foto 6. Cocotero Alto del Pacífico, utilizado como
progenitor padre
Foto 5. Cocotero Enano Amarillo Malayo,
utilizado como progenitor hembra
2) Obtención de polen de plantas padres.
Los métodos convencionales en la colecta de polen de cocotero comprenden el aislamiento
de la inflorescencia, la cosecha de flores masculinas, preparación y acondicionamiento del
polen y control de calidad del mismo. Los materiales y el equipo que se necesitan para llevar
a cabo este proceso se detallan en el anexo 1.
2.1. Aislamiento de la inflorescencia
2.1.1.Colocación de la bolsa de aislamiento para la colecta de flores masculinas.
El aislamiento de la inflorescencia para la colecta de flores masculinas es importante para
obtener polen puro. Esta técnica sirve para evitar otro polen contaminante; el embolsado
reduce el tiempo de la fase masculina por las altas temperaturas dentro de la bolsa.
Debido a que el polen tiene viabilidad de 8 días bajo condiciones de campo (Santos et al
1996) la inflorescencia de la cual las flores masculinas serán colectadas deberá embolsarse
ocho días antes que las espiguillas se colecten, el embolsamiento se hace el mismo día o un
día después que la espata abra naturalmente.
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BOLETÍN TÉCNICO
HIBRIDACIÓN DEL COCOTERO
Indicadores para el momento del embolsado son: el agrietamiento longitudinal y los
abultamientos en la base de la espata, ocasionados por las flores femeninas
La espata de la inflorescencia que será aislada se remueve, la base del pedúnculo se envuelve
con tela de algodón previamente tratada con insecticida disuelto en agua; se rocía sobre la
inflorescencia para eliminar los insectos. La bolsa colectora se coloca sobre la inflorescencia
procurando no dañar las espigas y flores masculinas, asegurando que el extremo abierto de
la bolsa alcance la base de la inflorescencia, la bolsa es plegada sobre la tela o cojincillo de
algodón y se asegura con una banda de hule o hilo resistente y manejable. La fecha de embolse
se marca y se anota en el libro de registros.
2.1.2. Cuidado de las bolsas de colecta
Después de cada uso, las bolsas deben ser cuidadosamente lavadas con agua y jabón,
posteriormente éstas deben ser remojadas en una solución al 5% de formalina y después se
ponen a secar al sol y se almacenan en cuartos
secos.
2.2. Cosecha de flores masculinas
La duración del embolsado de la inflorescencia
es de seis a ocho días. Después que las
espiguillas son colectadas se podan con tijeras.
Los brazos y manos del colector deben ser
desinfectados con una solución de 95% de
alcohol etílico.
Antes de abrir las bolsas se deben cortar las
espigas una por una dentro de la bolsa, cerca
de 2 cm arriba de las flores femeninas, deben
dejarse caer las espiguillas a través del surtidor
dentro de la bolsa. Después que el número
deseado de espiguillas se ha colectado, se
separan cuidadosamente del surtidor y su
extremo abierto se amarra inmediatamente con
una banda de hule o hilo resistente. La bolsa
colectora de polen se etiqueta con el número
de la planta, fecha de colección y después se
traslada al laboratorio para ser procesada.
Para evitar errores la etiqueta que indica el
número de la planta debe colocarse dentro del
recipiente de espiguillas antes de embolsarlas.
Foto 7. Bolsas de aislamiento (verde) y
colectora (transparente) de flores masculinas
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BOLETÍN TÉCNICO
HIBRIDACIÓN DEL COCOTERO
En la cosecha en fresco las flores
masculinas están húmedas y emiten muy
pocas cantidades de polen, un alto
porcentaje de estas flores se encuentran
inmaduras con polen no viable. Debido
a que el lapso de vida del polen fresco es
de dos días, debe acondicionarse para
prolongar y mantener su alta viabilidad.
Se envasa en tubos viales y se almacena
en refrigeradoras caseras (menos 15ºC)
durando su viabilidad hasta 6 meses.
Figura 8. Espigas con flores masculinas
2.3. Desprendimiento de las flores masculinas de las espiguillas:
Las flores masculinas se desprenden de las espiguillas en forma manual, antes de este proceso,
el colector deberá desinfectarse los brazos y las manos con alcohol etílico al 95%.
Cuando las flores hayan sido desprendidas
póngalas en bolsas de papel. Es
aconsejable utilizar una cantidad
moderada de flores masculinas (un puñado
por bolsa) para facilitar el secado. La
identidad del polen y la fecha de colección
se escribe sobre cada bolsa, usando
etiquetas de papel.
2.4. Preparación del polen
2.4.1. Secado de flores masculinas
Un aspecto importante en la extracción
de polen viable, es el proceso de secado
de las flores masculinas. Se colocan dentro
de una caja de cartón, extendiéndolas
para reducir el contenidode la humedad
Foto 9. Desprendimiento de flores
masculinas de espiga
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HIBRIDACIÓN DEL COCOTERO
a un nivel que asegure su conservación
prolongada. La temperatura de secado
debe mantenerse a menos de 40°C para
evitar que se dañen los granos de polen.
El período de secado varía entre 24 y 36
horas, reduciendo el contenido de la
humedad a casi 5%.
El número de la planta y el número de
bolsa que corresponde por planta se anota
en un libro de registros.
Foto 10. Secado de flores masculinas al
ambiente
2.4.2. Trituración de flores masculinas
La trituración de las flores masculinas se realiza girando un rodillo de metal sobre la parte
superior de una bandeja de madera para abrir las flores, el borde de la bandeja deberá tener
una altura de 2.5 mm para evitar macerar los estambres, ya que provocaría una oxidación
que reduciría la viabilidad del polen. De 200 pedúnculos, se pueden colectar 3 kg de flores.
Una inflorescencia puede producir hasta 30 gramos de polen.
2.4.3.Tamizado y envasado en viales.
El tamizado se hace dentro del cuarto
aséptico para la obtención de polen. Las
flores masculinas de un cocotero, secas
y trituradas, son colocadas en un tamiz
y sacudidas para extraer y colectar el
polen. Se coloca en un recipiente de vidrio
(beaker de 250 ml). Este es envasado en
cantidades de 0.4 a 0.5 g en viales de
vidrio taponados con un algodón estéril
y debidamente etiquetadas, indicando la
identidad del polen y la fecha de colecta
para su almacenamiento.
El polen desecado puede mantenerse
viable para polinización manual por un
período de 2 a 3 meses. Es importante
aislar cada clase de polen en el desecador
para prevenir la contaminación.
Foto 10. Secado de flores masculinas al ambiente
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BOLETÍN TÉCNICO
El rendimiento de polen por inflorescencia aumenta con la edad hasta llegar a la madurez,
que puede obtenerse 30 g por inflorescencia.
Foto 12. Polen tamizado y viales para almacenarlo
3. Control de la calidad del polen.
Prueba de viabilidad del polen. Una muestra de cada lote de polen se coloca aparte para
verificar la viabilidad y determinación del contenido de humedad. Si los resultados no son
aceptables, se analiza una segunda muestra, en caso de contaminación todo el lote es
destruido. El porcentaje de germinación del polen es analizado in vitro, utilizando una
solución de Agar ligeramente dulce, suplementada con una pizca (0.12 gramos) de ácido
bórico (Whitehead, citado por Fernández, 2000).
Proceso de preparación del medio de germinación del polen
1. Disolver 0.5 gramos de Agar en 100 ml de agua destilada, calentando hasta disolver el
Agar.
2. Se deja enfriar el Agar y se agrega lentamente 100 gramos de sacarosa. Se agita
cuidadosamente para disolver la mezcla.
3. Añadir 0.12 gramos de ácido bórico
4. Verter 10 ml de este medio en una caja Petri desinfestada y dejar enfriar a temperatura
ambiente. Para evitar que este medio solidificado se rompa, se debe cubrir la caja Petri
con algodón humedecido en agua destilada.
5. Con un poco de algodón se colecta una pequeña cantidad de granos de polen, a la cual
se le determinará el porcentaje de germinación. Esta muestra es espolvoreada formando
una nube de polen sobre el medio. Posteriormente la caja Petri se cierra y se etiqueta.
Debe usarse una caja por muestra
6. Después de dos horas, a temperatura ambiente, se obtiene el porcentaje de germinación
del polen, observándose con un microscopio.
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Un lote de polen se considera viable cuando tiene un mínimo de 25% de germinación. El
polen con baja viabilidad se elimina.
4. Aislamiento y emasculación de plantas madres.
4.1. Huerto semillero aislado.
El huerto debe estar protegido contra la contaminación del polen. Un huerto se considera
aislado cuando está rodeado por 200 m de bosque (natural o artificial) así se evita el ingreso
a la plantación de polen acarreado por el viento o insectos. En este caso siempre se realiza
la emasculación y la aplicación del polen de los padres seleccionados; y no es necesario
utilizar bolsas para la protección de las flores femeninas.
4.2. Emasculación o eliminación de flores masculinas de plantas madres.
El tiempo de emasculación depende del inicio de la fase femenina. Oler, 1986, reporta que
un operario realiza de 300 a 400 emasculaciones por mes. Al inicio se despunta el espádice
(se elimina 1.1/2 cm del extremo distal), luego, cuidadosamente se separa la base del espádice
del pedúnculo. Las flores masculinas se colectan en una bolsa y se queman o entierran fuera
de la plantación. Se registra en el libro de campo y, en el pecíolo de la hoja adyacente a la
inflorescencia, se escribe la fecha de la actividad realizada (foto 13). El corte de las espiguillas
para facilitar la emasculación no es aconsejable, debido a que promueve la producción de
hormonas de maduración, lo cual ocasiona la absición de flores femeninas; al dejar las
espiguillas se previene el roce de las flores femeninas contra la bolsa de aislamiento.
Foto 13. Registro de fecha de polinización, en pecíolo adyacente a la inflorescencia
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4.3. Tiempo de embolsamiento
El embolsado se hace seis días antes que la primera flor femenina, en una inflorescencia
emasculada, se vuelva receptiva, y se retira una vez que la última flor femenina finalice su
receptividad. SANTOS ETAL (1996), menciona que la bolsa se debe retirar 2 ó 3 días después
de la últimas polinización.
La receptividad de una flor femenina se evidencia por una secreción transparente y viscosa
en el extremo del estigma.
Cuando las palmeras madres están aisladas, no es necesario cubrir las inflorescencias con
bolsas. Si se ha destinado un lote de palmeras madres, la polinización se deberá hacer a
diario para asegurar un 90% de semillas híbridas. El CENTA en el trabajo efectuado en la Isla
El Espíritu Santo, Cooperativa El Jobal, obtuvo 95% de semillas híbridas sin utilizar bolsas
de aislamiento, aplicando polen a las flores receptivas en visitas diarias a las palmeras madres.
Foto 14. Embolsado de inflorescencia para protección de flores femeninas
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BOLETÍN TÉCNICO
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5. Etiquetado y registro
Un día antes de la polinización, el supervisor revisa los progenitores femeninos que serán
polinizados directamente en el campo, y determina cuáles plantas serán fecundadas. A cada
polinización se le asigna un número y se enumera consecutivamente.
6. Polinización manual
6.1. Preparación del polen para la fecundación (hibridación)
El polen viable de un solo donador es utilizado para cada polinización, excepto cuando más
progenitores femeninos simultáneamente requieren del mismo polen como se expresa en los
planes de cruzas.
6.2. Llenado de picetas o rociadores
El polen rehidratado deberá
mezclarse con talco, antes de usarlo
para alcanzar mejor dispersión.
Cada piceta (de 250 ml) se llena
con el talco necesario, utilizando
una cuchara pequeña. La mezcla
se hará en proporción de una parte
del polen por ocho partes del talco.
Debe hacerse dentro de la sala de
manipulación del polen
(laboratorio). Se toma la piceta y se
escríbe el número de cruza de
progenitores sobre un pedazo de
cinta adhesiva, previamente
colocada en las picetas.
Fot 15.. Polinización manual con piceta
Después desinfecte manos y brazos
con alcohol y mezcle el polen y el
talco en cada piceta. Antes de salir del laboratorio verifique nuevamente los números y las
cruzas específicas que se harán en el campo y siga el proceso que se describe a continuación:
1) Coloque la escalera cerca de la palma que será el progenitor femenino.
2) Tome el material con la etiqueta llevando el número de cruza y la lata de insecticida.
3) Rocíe una pequeña cantidad de insecticida diluido con agua alrededor de la inflorescencia
para ahuyentar a los insectos.
4) Después de la primera polinización amarre la etiqueta al pedúnculo del racimo,
posteriormente anotar el número de la polinización en el libro. Si hay más plantas para
ser polinizadas repita los pasos anteriores.
5) El paso 3 es repetido por algunos días utilizando el mismo tipo de polen. En general la
polinización es realizada más de cuatro veces por inflorescencia. En algunos casos la
polinización se hace a diario, para Enanos Rojos Malayos.
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BOLETÍN TÉCNICO
6) Al final del día elimine la mezcla remanente de polen-talco, lleve todas las picetas y
desinféctelas con alcohol, las hojas de hibridación serán presentadas al supervisor para
cotejar y registrar el plan de hibridación.
7) Al finalizar la polinización se indica en la pizarra de control de actividades, las operaciones
realizadas durante el día.
Para verificar la fecundación, las inflorescencias polinizadas son visitadas al tercer día después
de la última polinización, la cual se registra en el libro de campo.
Foto 16. Frutos híbridos (primer plano) al fondo flores femeninas polinizadas
COSECHA
Los frutos se cosecharán cuando el color de la epidermis este cafe claro, (10.5 - 11 meses
despues de la hibridación) se debe evitar golpear los frutos, inmediatamente despues de
cosechados deberán trasladarse a las areas destinadas para los semilleros.
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HIBRIDACIÓN DEL COCOTERO
BOLETÍN TÉCNICO
GLOSARIO
Abscisión: se refiere a la caída de flores, frutas u hojas.
Alógama: dícese de las plantas que son fecundadas después de la apertura de la flor.
Amarillamiento Letal del Cocotero (ALC): enfermedad causada por un fitoplasma en el cocotero,
produciendo la muerte de las plantas.
Autógama: dícese de las plantas cuyas flores femeninas son fecundadas por el polen de la misma
planta.
Copra: parte comestible del coco, cuando ya está maduro y deshidratado.
Emasculación: proceso mediante el cual se eliminan las flores masculinas de una planta, dejando solo
las femeninas, como paso previo a la hibridación.
Endocarpio: capa interna del pericarpio o pared del fruto.
Endosperma: parte comestible del coco, ya sea líquido o carnoso.
Espata: vaina protectora que rodea la inflorescencia del cocotero.
Espiga: parte de la inflorescencia del cocotero, generalmente no ramificada, alargada, simple, cuyas
flores son sésiles, estando las flores situadas a lo largo de un eje.
Hibridación: puede ser natural o inducida. Es el proceso mediante el cual se fecunda la flor femenina
de una planta con polen de otra. Cuando es inducida se busca que la planta resultante posea características
deseables de calidad de fruto, alto rendimiento o tolerancia a enfermedades como el ALC.
Híbrido: planta producida por polinización cruzada; en el mejoramiento del cocotero, se refiere a
cruzamientos entre variedades con características bien identificadas y deseables en la producción o
tolerancia a enfermedades tales como el ALC.
Hormonas: sustancia química que es producida en una parte de la planta y produce una respuesta
de crecimiento, actuando generalmente en concentraciones extremadamente bajas.
Inflorescencia: Arreglo de las flores cuando no son solitarias.
Maceración: acción mediante la cual se aplica una fuerza moderada sobre las espigas del cocotero,
con un rodillo, con el propósito de separar el polen de las anteras.
Mesocarpo: parte media del fruto.
Monoico: con flores estaminadas y pistiladas (masculinas y femeninas) en la misma planta, como en
el cocotero.
Nuez: fruto simple, seco indehiscente, con una sola semilla y el pericarpio endurecido, derivado
usualmente de un ovario unilocular. El fruto del cocotero es una nuez.
Polinización: transferencia del polen de una antera dehiscente a un estigma receptivo..
Polinización anemófila: polinización provocada por la intervención del viento.
Polinización cruzada: transferencia del polen de una flor sobre el estigma de otra (generalmente de
otra planta).
Polinización entomófila: polinización provocada por la intervención de los insectos.
Progenitores: plantas utilizadas como padre y madre, para la producción de uno o más individuos.
Raquis: estructura o eje donde se disponen o distribuyen los órganos; raquis floral o raquis de las hojas.
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Viabilidad: capacidad de vivir, crecer y desarrollarse.
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BOLETÍN TÉCNICO
HIBRIDACIÓN DEL COCOTERO
BIBLIOGRAFÍA
Bourgoing, R. 1991. Coconut. A Pictorial Technical Guide for small holders, CIRAD-IRHO,
París, France. 301 p.
Domínguez Castillo, E.1996. Plantaciones de coco híbrido para incrementar la producción
de copra en Tabasco. INIFAP. Villa Hermosa, Tabasco, México. pp 17-22.
Domínguez, CE.; López A, JI; Castillo G, R y Ruiz B P. 1999. El cocotero, Cocus nucifera L.
Manual para la producción en México. Campo experimental Huimanguillo. Libro técnico
No. 6 Tabasco. México. p 89-95.
Fernández, BM et al. 2000. Manual para la polinización controlada del cocotero. Centro de
Investigaciones Científicas de Yucatán (CICY). México. 25 p.
García, JM. 1998. El Amarillamiento Letal del Cocotero. Centro Nacional de Tecnología
Agropecuaria y forestal. CENTA, Mensajes Técnicos. 2 p.
Lizano, M. Guía técnica del cultivo de coco. S/f. Ministerio de Agricultura y Ganadería (MAG);
Instituto Interamericano de Cooperación Agrícola (IICA) y FRUTAL ES. El Salvador. Pp 26-30.
Oler, JG. 1986. El Cocotero Árbol de Vida. Organización de las Naciones Unidas para la
Agricultura y la Alimentación (FAO). Roma. 347 p.
Santos, GA. et al. 1996. Manual Sobre Ténnicas Estandarizadas para la Investigación del
Mejoramiento del Cocotero. IPGRI, Regional Office For Asia, The Pacific and Oceania
Internacional Coconut Genetic Resources Network (COGENT) 46p.
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Anexo 1
Bolsa colectora de flores masculinas
(tomado de IPGRI, 1992)
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Dimensiones en centímetros
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Anexo 2
Equipo y material requerido para realizar la hibridación
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
15.
16.
17.
Bolsa de aislamiento de la flor masculina
Bolsa colectora de la flor masculina
Bolsa de aislamiento de la flor femenina
Hilo: debe ser grueso, resistente y manejable.
Tijeras de podar: deben ser de punta curva con resorte
Botes aspersores de plástico (de 250-500 ml), para la aplicación de insecticidas a las
inflorescencias y para la desinfección de material con alcohol etílico.
Algodón. Para sellar las bolsas de aislamiento y para las pruebas de viabilidad del polen.
Se utiliza algodón comercial.
Detergente. Se utiliza para lavar las bolsas de aislamiento y colecta de polen.
Picetas de plástico (de 250 ml): se utilizan para envasar el polen para su aplicación.
Termómetro. Para registrar la temperatura en la sala de manipulación de polen.
Rodillo. Se utiliza un cilindro metálico para la trituración de las flores masculinas.
Tamiz de metal de 21 cm de diámetro, con malla de alambre de bronce No. 200 con
cubierta y bandeja en la base.
Brocha de 3 pulgadas para la recolección del polen tamizado
Talco comercial no perfumado para mezclarlo con el polen
Plumón marcador indeleble. Para marcar inflorescencias, semillas y etiquetas para los
registros.
Cinta adhesiva “Masking tape” (tirro). Se necesita para sellar el agujero de la bolsa de
aislamiento de la flor femenina y para la identificación de las bolsas colectoras.
Escaleras de aluminio de 5 m y 3 m, para realizar los trabajos de polinización. El tamaño
dependerá de la altura de la planta.
Equipo y material químico utilizado en las pruebas de viabilidad del polen.
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
Agar
Acido bórico
Sacarosa
Agua destilada
Cajas Petri
Algodón
Pincel
Parrilla de agitación y calentamiento
Balanza analítica
Microscopio estereoscópico
Microscopio compuesto
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No. de
Palma inflorescencia
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aparición embolsado
Fecha de
ovarios
femeninos
No de
bolsa
No. de
ovarios
inicio Término Fecundación amarrados
Fase receptiva
polen
Origen del
Anexo 3
Formato para el registro de datos de polinización
colecta
de
polen
Fecha
colecta
de
polen
Fecha
Observaciones
Tomado de Fernández et al. 2000
inflorescencia
No. de
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