ACTUACIÓN EN BROTES DE INFECIÓN NOSOCOMIAL

ACTUACIÓN EN BROTES DE INFECIÓN NOSOCOMIAL CAUSADOS POR
Acinetobacter baumanii MULTIRRESISTENTE 1
1. INTRODUCCIÓN
Descripción del agente causal: el género Acinetobacter está constituido por
microorganismos bacilares gram negativos, capsulados, aerobios, inmóviles, no
fermentadores, catalasa positivos, y oxidasa negativos. Se han descrito 19 genoespecies,
pero dada la dificultad para su diferenciación se clasifican en agrupaciones de cepas,
siendo la de mayor interés clínico la agrupación formada por el complejo Acinetobacter
calcoaceticus-baummanii complex. Los aislamientos más frecuentes son debidos
A.baummanii, seguida de A. lwoffii, A. haemolyticus, A. johnsonii y genoespecies 3 y 6.
En la actualidad Acinetobacter spp es uno de los microorganismos nosocomiales con un
patrón de multirresistencia más extenso que incluye antibióticos clásicos: carboxi y
ureidopenicilinas, aminoglucósidos, tetraciclinas y cloranfenicol, y otros más novedosos
cefalosporinas de 3ª y 4ª generación y fluoroquinolonas. Aunque los carbapenemes,
imipenem y meropenem siguen siendo agentes confiables, la aparición de brotes resistentes
al Imipenen constituyen una preocupación importante. Las especies diferentes a
A.baummanii tienden a ser menos resistentes. La aparición de resistencia antibiótica
creciente obstaculiza el manejo terapéutico
Reservorio y modo de transmisión: Se encuentra ampliamente distribuido en la
naturaleza y en el ambiente hospitalario, parasitario o en forma de vida libre en objetos
animados e inanimados. Es capaz de sobrevivir tanto en superficies húmedas como secas
hasta 6 días, y en un amplio rango de temperatura y pH, lo que influye en la persistencia de
las epidemias nosocomiales por el reservorio ambiental.
Microorganismo oportunista, hasta el 25% de los adultos sanos presentan colonización
cutánea, y el 7% de adultos y lactantes presentan colonización faríngea, pudiendo
encontrarse también en tracto gastrointestinal, siendo este el principal reservorio de cepas
resistentes. El huésped colonizado/infectado se convierte en un reservorio permanente
de A. baumannii.
Puede colonizar también las manos y faringe del personal sanitario
El mecanismo más frecuentemente implicado en la transmisión de la infección en los brotes
nosocomiales son las manos del personal sanitario (transmisión cruzada). Incluso se han
descrito brotes en los que se ha implicado la transmisión cruzada a través de los guantes de
látex contaminados (se adhiere al látex).
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Elaborado por grupo de trabajo del E.P. Hospital de Poniente. El Ejido (Almería):
Alvarez-Ossorio García de Soria. Mª Reyes. Jefe de Servicio de Prevención.
Cabezas Fernández, Teresa. F.E.A. de Microbiología.
Castillo Lorente, José Ignacio. Supervisor del Área de Cuidados Intensivos.
Fierro Rosón, Luis Javier. F.E.A. de Cuidados Intensivos.
Maldonado Valverde, Mª del Carmen. Enfermera de Higiene Hospitalaria.
Salas Coronas, Joaquín. Responsable de Unidad de Medicina Interna.
Factores de riesgo: Los factores de riesgo asociados a la infección por Acinetobacter
incluyen la hospitalización prolongada, catéteres intravenosos y/o urinarios permanentes,
uso reciente de antimicrobianos de amplio espectro (cefalosporinas de 3ª generación),
alcoholismo, tabaquismo, enfermedad pulmonar crónica, diabetes mellitus, ingreso en una
unidad de quemados o en una UCI, inmunosupresión.
2. DEFINICIÓN CLÍNICA DE CASO
Descripción de la enfermedad o enfermedades o forma de presentación
Aunque el Acinetobacter spp juega un papel limitado en la producción de infecciones fuera
del ámbito hospitalario, su importancia es creciente como patógeno nosocomial, en muchas
ocasiones en forma de brotes. El Acinetobacter es responsable fundamentalmente del
desarrollo de neumonías hospitalarias, pero se ha implicado también en infecciones del
tracto urinario, infecciones de heridas quirúrgicas y tejidos blandos, bacteriemias, y
meningitis secundarias.
Definición de caso: Aislamiento de Acinetobacter spp en una muestra biológica junto con
signos y/o síntomas de infección en esa localización.
Definición de caso de infección nosocomial: de acuerdo a los criterios de Infección de
los Centros para el Control de las Enfermedades (CDC, 1988 y 1992), una infección se
considera nosocomial si no hay indicios de que el paciente la tuviera ni en fase clínica ni en
periodo de incubación en el momento del ingreso. Se considera infección al ingreso de
origen nosocomial cuando esta se adquirió en un ingreso previo del paciente en el hospital.
Definición de portador: Aislamiento de Acinetobacter spp en una muestra faríngea, axilar o
rectal, en paciente asintomático.
Definición del paciente de alto riesgo: pacientes con múltiples ingresos hospitalarios y/o
de larga estancia, uso previo de antibioterapia, con enfermedades graves subyacentes
(neoplasias, inmunocomprometidos o quemados), pacientes sometidos recientemente a
cirugía mayor, y sobre todo ancianos y neonatos.
En relación con el desarrollo de neumonías, se consideran factores predisponentes la
estancia en UCI (sobre todo si ha precisado técnicas de IOT, ventilación mecánica o
colocación de tubos gástricos), la edad avanzada, la presencia de una enfermedad
pulmonar crónica, cirugía, inmunosupresión y el tratamiento antibiótico previo.
3. CRITERIO DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO
Aislamiento de Acinetobacter spp multirresistente a partir de una muestra biológica cultivada
en Agar MacConkey durante al menos 48 horas en paciente con clínica compatible con una
de las definiciones de caso descritas.
Para el caso de neumonía por Acinetobacter spp: Normalmente los cultivos de
secreciones respiratorias expectoradas por el paciente no son útiles para el diagnóstico
pero sí para la identificación del agente y de su perfil de resistencias. No obstante, dada la
dificultad de obtener una muestra de secreciones respiratorias mediante aspiración
transtraqueal, CTO o BAL, en caso de esputo purulento con gran desarrollo de
Acinetobacter multirresistente y clínica compatible podemos asumir que dicho germen es el
responsable del cuadro.
Diagnóstico de neumonía en unidades de Cuidados Intensivos: clínica compatible más
presencia de un nuevo infiltrado radiológico o progresión de uno previo junto con cultivo
cuantitativo en una muestra respiratoria (103 ufc/ml en caso de CTO, 104 ufc/ml en caso de
BAL, o 10 6 ufc/ml en aspirado bronquial).
4. DEFINICIÓN DE BROTE
Se considera la existencia de un brote de infección nosocomial por Acinetobacter
multirresistente cuando se detecte un aumento en la incidencia de casos de infección
nosocomial en un área de hospitalización por encima de la esperada. Se considera una
situación de alerta que debe comunicarse a la red del SVEA.
En caso de que en los tres meses previos en un área de hospitalización no se hubiera
detectado ningún caso de infección, la aparición de un sólo caso de infección
nosocomial debe de tener la consideración de brote epidémico.
En caso de detección de un solo caso de infección de origen comunitario, las medidas de
control a instaurar son iguales que en el caso de origen nosocomial, con excepción de la
comunicación del mismo como una alerta. La aparición de casos nosocomiales
secundarios al mismo si obligarían a la comunicación del brote.
5. MODO DE VIGILANCIA
En ausencia de brote: el método de vigilancia será el elegido en cada centro para la
monitorización y control de las infecciones nosocomiales.
Además, la detección de un aislamiento de Acinetobacter multirresistente en cualquier
muestra de un paciente hospitalizado se comunicará inmediatamente desde Microbiología al
Servicio de Medicina Preventiva, con objeto de abrir una investigación del caso y determinar
la existencia o no de un brote epidémico.
En caso de brote:
- mantener un sistema de búsqueda activa de nuevos casos de pacientes infectados o
colonizados en el mismo área de hospitalización para detección de pacientesreservorio e instaurar las medidas de control. El screening se realizará mediante
frotis faríngeo y axilar en los pacientes con alto riesgo de infección (ver definición)
- Además se realizará vigilancia ambiental mediante muestreo en superficies y
material médico que rodea al paciente infectado o colonizado, así como de los
puntos o áreas de trabajo comunes (controles de enfermería, teléfonos, carros de
curas, etc)
- Monitorización de la adherencia del personal sanitario a las precauciones de
aislamiento y, en especial, a las recomendaciones sobre lavado de manos.
Vigilancia ambiental
Método de gasa húmeda: frotar (unos 25 cm) superficies y objetos con una gasa
humedecida en caldo de enriquecimiento (tioglicolato). Transportar en recipiente estéril con
tioglicolato. Incubar 24 horas a 37ºC, dar pase a MacConkey y mantener 48 horas antes de
descartar el cultivo como negativo.
6. ACTUACIÓN ANTE UN BROTE DE INFECCIÓN NOSOCOMIAL
ACINETOBACTER MULTIRRESISTENTE. MÉTODOS DE CONTROL
POR
6.1. Comunicación de la alerta: una vez confirmada la existencia de un brote, el mismo se
comunicará como una alerta sanitaria a la red del SVEA. La comunicación se realizará
desde el Servicio de Medicina Preventiva a la Delegación Provincial de la Consejería de
Salud correspondiente mediante la Hoja de Notificación de Brote Nosocomial por
Acinetobacter multirresistente (anexa)
6.2. Constitución de un Grupo de mejora para el control del brote : se trata de un grupo
de trabajo multidisciplinar, impulsado y dirigido por la dirección del centro y coordinado por
un Facultativo especialista en control de infecciones. Sus funciones son el establecimiento
de medidas de control, y el seguimiento del brote y evaluación del impacto de las medidas
establecidas para el control del mismo.
6.3. Control de pacientes
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Interposición de medidas de Aislamiento de contacto (basadas en las
Recomendaciones de los CDC 1996):
o Ubicación de los casos en habitación individual.
o Uso de guantes: emplear guantes (no es necesario que sean estériles) para
entrar en la habitación. Recambio de guantes si se ha tocado material
infectivo contaminado. Quitarse los guantes antes de salir de la habitación y
lavarse las manos inmediatamente con jabón antiséptico (povidona yodada
jabonosa). Para ello debe disponerse jabón antiséptico y toallas de papel en
el aseo del paciente.
o Batas: uso de batas desechables para entrar en la habitación. Quitarse la
bata antes de salir de la misma
o Limitar los movimientos y traslados del paciente a los estrictamente
necesarios, asegurando, en caso de que sea imprescindible, que se
mantienen las precauciones.
o Ubicar un contenedor para residuos biosanitarios especiales con señal de
peligro biológico dentro de la habitación del paciente, donde se eliminará
todo el material desechable en contacto con él mismo o sus secreciones.
Tratamiento de los casos: requiere una cuidadosa elección basada en el
antibiograma y en las herramientas terapéuticas disponibles. Debe decidirse en el
seno del grupo de mejora
Screening de pacientes de alto riesgo semanal mediante frotis faríngeo y axilar
Control de la antibioterapia: se restringirá por un lado, el uso de antibioterapia de
amplio espectro especialmente carbapemenes y, cefalosporinas de 3ª y 4ª
generación; y por otro de los antibióticos seleccionados para el control de las
infecciones por Acinetobacter, según el antibiograma. Sólo está indicado el
tratamiento en caso de infección.
Alta precoz de los casos, siempre que las condiciones clínicas del paciente lo
permitan.
Se aconseja dejar constancia en el Informe de Alta del estado de portador o
infección de un paciente durante el ingreso, con objeto de proceder al aislamiento
preventivo de ese paciente hasta tanto no se identifique en screening su situación en
caso de nuevo ingreso.
En caso de detección de portador las recomendaciones de aislamiento, si es posible, serán
las mismas que para los casos de infección. pero no debe tratarse la condición de portador.
6.4. Control de la transmisión cruzada:
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Recomendaciones de lavado exhaustivo del personal sanitario con jabón antiséptico
conteniendo povidona yodada antes y después de entrar en la habitación del
paciente, y entre técnicas de cuidados en diferentes localizaciones corporales del
mismo paciente. Monitorizar la adherencia del personal a estas recomendaciones.
En lo posible, dedicar material no-crítico para usar en un solo paciente o grupo de
pacientes con la misma infección. No usar carro de curas para entrar en la
habitación sino bateas con el material necesario. En caso de empleo de equipos
comunes, asegurarse la desinfección adecuada entre pacientes.
Asignación de personal sanitario para el cuidado exclusivo de pacientes
infectados/colonizados
Formación e información del personal sanitario y personal de limpieza sobre el
Acinetobacter spp, su modo de transmisión y los mecanismos de control. Informar
periódicamente de la marcha del brote y de los resultados de los muestreos
ambientales, así como de las conclusiones a las que se llegue en el grupo de
mejora.
Información a familiares y pacientes afectados sobre el proceso y sobre las medidas
de control de infección que ellos mismos deben seguir para evitar la propagación de
la contaminación ambiental. Se hará especial hincapié en la inocuidad para las
personas sanas, para evitar el alarmismo
6.5. Control del reservorio ambiental
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Limpieza exhaustiva de habitaciones y superficies próximas al paciente con agua
jabonosa y lejía a dilución 1/10 y con otros desinfectantes de superficie. Asignación
de material de limpieza (carros, gamuzas, etc) para uso exclusivo de habitaciones de
aislamiento.
Monitorización ambiental semanal de superficies próximas al paciente y aquellas en
las que hay una manipulación habitual (mandos de respiradores o humidificadores,
pomos de puertas, teléfonos)
Al alta del paciente, asegurarse del procesamiento adecuado de colchones y
almohadas. Limpieza exhaustiva de habitación y nueva monitorización (idealmente
la habitación no debería ocuparse hasta que haya garantía de la negatividad de los
cultivos ambientales)
7. BIBLIOGRAFIA
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Saene HKF, Sganga G, Silvestri L. Infection in the critically ill: an ongoing challenge.
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Van Saene HKF, Sganga G, Silvestri L. Infection in the critically ill: an ongoing
challenge. Springer Ed. Milan, 2001: 146-159
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