Trabajo práctico Nº BENTOS Se denomina complejo bentónico al conjunto de organismos vagantes, adherentes, posados e incrustantes vinculados al fondo de los cuerpos de agua lénticos y lóticos. La fauna es muy rica y variada e incluye ciliados, rotíferos, gastrotricos, tardígrados, ostrácodos, copépodos Harpacticoidea, cladóceros Chydoridae y Macrothricidae, nematodes, oligoquetos, hirudineos, anfípodos, isópdos, larvas Ceratopogonidae, de isectos (Lepidoptera, Diptera Coleoptera Hydrophilidae, ninfas Chironomidae y de y Odonata Ephemeroptera), ácaros y moluscos. La elección de la técnica de muestreo es difícil y depende del cuerpo de agua a investigar, del tipo de sustrato y del tipo de estudio que se quiera encarar. En sustratos blandos (limo) se utilizan dragas como por ejemplo la draga Ekman que consiste en una caja de hierro, bronce o acero inoxidable cerrada arriba con dos tapas y por debajo lleva dos palas que actúan a modo de mandíbulas que se cierran accionadas por un sistema de resortes. El área de sedimento que se obtiene con esta draga oscila entre 100 y 900 cm2. Este muestreador no puede usarse en sustratos duros ni entre vegetación. También para sustratos blandos y en aguas someras se utilizan los corer manuales, que son tubos de acrílico transparente cuya superficie varía desde 3 hasta 855 cm2. Es importante recordar que a medida que disminuye el área del muestreador a utilizar debe aumentar el número de muestras a tomar. Por ejemplo, si se utiliza un corer de 7 cm2 de área, deben obtenerse al menos 30 muestras. Además los muestreadores de área pequeña son más eficientes en el logro de una muestra representativa. Para sedimentos más compactos (arcilla, arena y materiales compactados) se utilizan dragas más pesadas que se introducen por empuje en el sedimento (draga de Petersen, draga Pomar). Para sustratos rocosos (piedras y cantos rodados) se utilizan cilindros que delimitan un área. Se toman las piedras removiéndose su superficie con un cepillo y este material se succiona o aspira dentro de un tamiz o una bolsa con 1 agua. La superficie de las piedras se determina asimilándola a figuras geométricas conocidas. Para ambientes lóticos de montaña es conveniente el empleo de dragas deslizantes como la de Usinger y Needham, que son aparatos movidos a contracorriente y que recogen los primeros 5 cm de sedimento y los organismos presentes de una determinada superficie. Estas dragas consisten en un bastidor de hierro con una red en su parte posterior. En la parte anterior e inferior del bastidor llevan dientes afilados. Cuando la draga se mueve cava el fondo y lo levanta, pero no levanta las piedras grandes. Los organismos removidos se introducen junto al sedimento fino en la red. Estas dragas también pueden usarse en aguas muy profundas accionadas desde un bote o un puente. En ambientes lóticos de escasa profundidad se utilizan muestreadores como el de Surber que consiste en un bastidor horizontal y otro vertical unidos uno con otro y una red fijada al bastidor vertical. Este muestreador puede ser activo cuando se remueven los organismos del sedimento y son transportados por la corriente dentro de la red o pasivo cuando los organismos son transportados por la corriente sin remover manualmente los sedimentos. Los organismos bentónicos tienen una distribución agregada en los sedimentos y si no se muestrea todo el rango de su distribución el rendimiento del muestreo sería incompleto y la estimación de la densidad muy variable. La mayoría de los organismos están agregados en los primeros 2-10 cm de sedimento. Una vez tomada la muestra y previo a la identificación y recuento de los organismos se la fija con formol al 5% y se la pasa por tamices de diferente abertura de malla (200, 125 y 60 µ) para separar los organismos del sedimento. Se lava la muestra bajo un flujo continuo de agua a través de la batería de tamices y se procede a contar toda la muestra bajo lupa binocular. El tamizado puede destruir algunos organismos y es por ello que se han desarrollado otras técnicas para la extracción de los mismos (ultrasonido, flotación por azúcares, centrifugación o separación eléctrica). El método por flotación da muy buenos resultados en sedimento arenoso ya que al colocar la muestra en solución de sacarosa de peso específico 1,12 los organismos flotan y pueden capturarse 2 del recipiente con una red pequeña o con pinzas a simple vista (ideal para larvas de insectos y moluscos). Los resultados se expresan en número de organismos por unidad de superficie o en gramos de peso fresco o peso seco de organismos por unidad de superficie. BIBLIOGRAFIA Downing J. A. & Rigler F. H.. 1971. A manual on methods for the assessment of secondary productivity in fresh waters. IBP Handbook 17. Blackwell Scientific Publications. Sampons M. R. 1983. Zoobentos del Río Arrecifes (Buenos Aires, Argentina) y sus principales tributarios. Iheringia, Sér. Zool., 68: 63-82. Schwoerbel J. 1975. Métodos de hidrobiología. Blume, Madrid, 262 p. R. G. & Likens G. E. 1991. Limnological Analysis. Springer-Verlag, New York, 391 p. 3