titulo: “efecto del ácido salicílico en la producción del chile habanero

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA CHAPINGO
DEPARTAMENTO DE SUELOS
EFECTO DEL ÁCIDO SALICÍLICO EN LA PRODUCCIÓN DE
CHILE HABANERO (Capsicum chinense Jacq) EN
INVERNADERO
TESIS PROFESIONAL
Que como requisito parcial
Para obtener el Título de:
INGENIERO AGRÓNOMO ESPECIALISTA EN SUELOS
Presenta:
JORGE ARIEL MAY PAT
Chapingo, Texcoco, Edo. De México
Octubre 2005
i
AGRADECIMIENTOS
A la Universidad Autónoma Chapingo por haberme dado la oportunidad de
realizar mis estudios en sus instalaciones.
Al centro de Investigación Científica de Yucatán por haberme permitido
llevar a cabo este trabajo de tesis colaborando en el proyecto de Ácido salicílico
en la productividad del Chile Habanero.
Al Dr. Alfonso Larqué Saavedra por la oportunidad que me brindo al
permitirme realizar la presente tesis bajo su dirección, por sus comentarios,
observaciones y su valioso apoyo en la revisión del mismo.
Al Ing. Francisco Rodríguez Neave, por su gran ayuda en la dirección del
presente trabajo, por sus valiosos comentarios y acertadas correcciones.
Al M.C. José Guadalupe Ruiz Salazar por su amistad brindada durante mi
formación profesional, por la revisión y por su valiosa aportación el en presente
trabajo de tesis.
Al Dr. Antonio Vázquez Alarcón por su valiosa revisión y aportaciones en el
presente trabajo de tesis.
Al Dr. Rafael García Pérez por su valiosa revisión y aportaciones en el
presente trabajo de tesis.
1
Al Ing. Rodolfo Martín Mex, por su paciencia y su valiosa aportación
durante el desarrollo del experimento, por sus comentarios, correcciones y
sugerencias. Por el apoyo brindado y por su gran amistad, gracias.
Al proyecto “Efecto de la aplicación del ácido salicílico en la productividad
del cultivo del chile habanero de la Fundación Produce Yucatán A.C. proyecto No.
3304. Por el financiamiento para la realización del presente trabajo.
A la empresa Hortilatino SPR DE RI ubicada en el municipio de Chicxulub
Pueblo, en especial al Ing. Eleazar Xool por su apoyo y consejos durante la etapa
de campo del experimento, por sus conocimientos aportados y experiencias en el
manejo del cultivo, y por las facilidades brindadas de las instalaciones para la
realización del presente trabajo.
Al personal de la empresa por las facilidades otorgadas en la realización de
la fase de campo del presente trabajo de tesis.
Un agradecimiento especial a mi hermano Filogonio May Pat por todo el
apoyo recibido durante mi etapa de estudiante, gracias por ser tan gentil y tener
ese pensamiento de seguir adelante y ser mejor en la vida.
A la familia López García, por todo el apoyo brindado durante mi etapa de
estudiante y tesista. Por los consejos y por su amistad, gracias.
2
Al Ing. Fernando Contreras Martín por el apoyo brindado durante el
desarrollo del experimento.
Al Ing. Ángel Nexticapan Garcés, al M.C. Felipe Gonzáles Rodríguez, a la
Q.B.B Marbella Cáceres Farfán, a la M.C. Lorena Vega Merino, al Ing. Luis
Alberto Rendón Salcido, a la Q.B.B. Magnolia Tzec Gamboa, por sus comentarios
y apoyo en el desarrollo del presente trabajo.
A mis amigos Alma y Rafael, por el apoyo brindado y por su amistad.
A mis compañeros, Adrián, Juliet, Luis, Carmen, Fátima, Lindia, Darling,
Edwin, agradezco su amistad brindada durante mi etapa de tesista. En especial a
Adrián por su gran apoyo durante el desarrollo del experimento.
3
DEDICATORIAS
A Dios por haberme permitido llegar a esta etapa de mi vida, por haberme
dado la inteligencia para salir adelante todos los días.
A mis padres Alfonso y Reyna Margarita, que con gran amor y cariño,
supieron guiarme por el buen camino, por sus consejos y por todo el apoyo que
me han dado gracias.
A mis hermanos Ramiro, Filogonio, Clara, Linda, Alfonso, Margarita, Maria,
Alejandro, por todo el apoyo y amor brindado.
En especial a mis hermanos Filogonio y Alejandro por todo el apoyo y
consejos brindados en mi etapa de estudiante.
A mí cuñada Celia por todo el apoyo y los consejos brindados, gracias.
Con mucho amor y cariño, para Alma, por su apoyo incondicional durante
el desarrollo de mi carrera, por su comprensión, amor y maravillosos consejos.
Gracias
A todos mis sobrinos, y que esto le sirva como un ejemplo para salir
adelante y seguir con sus estudios
4
ÍNDICE
Pág.
I.
INTRODUCCIÓN-------------------------------------------------------------------
1
II.
OBJETIVOS-------------------------------------------------------------------------
3
2.1. Objetivo General-------------------------------------------------------------
3
2.2. Objetivos Específicos------------------------------------------------------
3
III.
HIPÓTESIS--------------------------------------------------------------------------
4
IV.
ANTECEDENTES-----------------------------------------------------------------
5
4.1. Origen y distribución--------------------------------------------------------
5
4.2. Importancia Internacional-------------------------------------------------
5
4.3. Importancia del chile en México-----------------------------------------
6
4.4. Situación del chile en el estado de Yucatán--------------------------
7
4.5. Clasificación taxonómica--------------------------------------------------
9
4.6. Descripción botánica-------------------------------------------------------
9
4.6.1. Planta-----------------------------------------------------------
9
4.6.2. Raíz--------------------------------------------------------------
10
4.6.3. Tallo-------------------------------------------------------------
10
4.6.4. Hoja--------------------------------------------------------------
10
4.6.5. Flores------------------------------------------------------------
10
4.6.6. Fruto-------------------------------------------------------------
11
4.6.7. Semillas---------------------------------------------------------
12
4.6.8. Variedades-----------------------------------------------------
12
4.7. Tecnología de producción-------------------------------------------------
12
4.7.1. Requisitos climáticos----------------------------------------
12
4.7.2. Época de siembra--------------------------------------------
13
i
V.
4.7.3. Densidad de población-------------------------------------
13
4.7.4. Transplante----------------------------------------------------
14
4.7.5. Riego------------------------------------------------------------
14
4.7.6. Fertilización----------------------------------------------------
15
4.7.7. Manejo fitosanitario------------------------------------------
15
4.7.7.1. Plagas y su control-------------------------------
16
4.7.7.2. Enfermedades y su control--------------------
17
4.7.8. Control de malezas------------------------------------------
19
4.7.9. Cosecha--------------------------------------------------------
19
4.8. Calidad-------------------------------------------------------------------------
19
4.9. Reguladores de crecimiento----------------------------------------------
20
4.10.Ácido salicílico---------------------------------------------------------------
20
4.10.1.
Generalidades---------------------------------------------------------
20
4.10.2.
Biosíntesis del ácido salicílico-------------------------------------
22
4.10.3.
Papel de los salicilatos en las plantas---------------------------
22
4.10.4.
Efecto de los salicilatos en las plantas--------------------------
23
4.10.5.
Ácido salicílico en otros procesos fisiológicos-----------------
27
MATERIALES Y MÉTODOS----------------------------------------------------
29
5.1. Localización del proyecto-------------------------------------------------
29
5.2. Acondicionamiento del terreno-------------------------------------------
30
5.2.1. Preparación del área experimental----------------------
30
5.2.2. Preparación del terreno-------------------------------------
30
5.3. Obtención de plántulas y transplante----------------------------------
30
5.3.1. Material vegetal-----------------------------------------------
30
ii
5.3.2. Almacigo--------------------------------------------------------
32
5.3.3. Obtención de las plántulas---------------------------------
32
5.3.4. Transplante en invernadero-------------------------------
33
5.4. Manejo del cultivo-----------------------------------------------------------
33
5.4.1. Riegos y fertilización----------------------------------------
33
5.4.2. Tutoreo----------------------------------------------------------
34
5.4.3. Podas-----------------------------------------------------------
34
5.4.4. Control de plagas y enfermedades----------------------
34
5.5. Tratamientos evaluados y variables de estudio---------------------
35
5.5.1. Tratamientos evaluados------------------------------------
35
5.5.2. Variables de estudio-----------------------------------------
35
5.6. Diseño experimental--------------------------------------------------------
36
RESULTADOS Y DISCUSIÓN-------------------------------------------------
37
6.1. Altura de planta--------------------------------------------------------------
37
6.2. Diámetro de tallo------------------------------------------------------------
39
6.3. Número de frutos------------------------------------------------------------
40
6.4. Rendimiento por planta----------------------------------------------------
42
6.5. Rendimiento por corte------------------------------------------------------
43
6.6. Rendimiento total por hectárea------------------------------------------
44
6.7. Rendimiento en calidad por peso de frutos--------------------------
46
VII.
CONCLUSIONES------------------------------------------------------------------
49
VIII.
BIBLIOGRAFÍA--------------------------------------------------------------------
50
IX.
ANEXOS-----------------------------------------------------------------------------
63
VI.
iii
NDICE DE FIGURAS
Pág.
Figura 1. Formula estructural del ácido salicílico---------------------------------------- 21
Figura 2. Efecto del ácido salicílico en la altura de planta de chile habanero cv
Habanero (C. chinense Jacq).---------------------------------------------------------------- 37
Figura 3. Efecto del ácido salicílico en el diámetro de tallo de planta de chile
habanero cv Habanero (C. chinense Jacq).----------------------------------------------- 39
Figura 4. Efecto del ácido salicílico en el número de frutos por planta de chile
habanero cv Habanero (C. chinense Jacq).----------------------------------------------- 41
Figura 5. Efecto del ácido salicílico en el rendimiento por planta de chile
habanero cv Habanero (C. chinense Jacq).----------------------------------------------- 42
Figura 6. Efecto del ácido salicílico sobre el rendimiento por corte en plantas
de chile habanero cv. Habanero (C. chinense Jacq).----------------------------------- 44
Figura 7. Efecto del ácido salicílico en el rendimiento total por hectárea, en
plantas de chile habanero cv Habanero (C. chinense Jacq).------------------------- 45
Figura 8. Efecto del ácido salicílico en las calidades de frutos de chile
habanero cv Habanero (C. chinense Jacq).----------------------------------------------- 47
iv
ÍNDICE DE CUADROS
Pág.
Cuadro 1. Especies más conocidas del género Capsicum y los países donde
se cultiva.-------------------------------------------------------------------------------------------
5
Cuadro 2. Principales regiones productoras de chile en México.-------------------
8
Cuadro 3. Clasificación taxonómica del chile habanero.------------------------------
9
Cuadro 4. Características de la planta de chile habanero cv criollo naranja.---- 31
Cuadro 5. Características del fruto de chile habanero cv criollo naranja.--------
32
v
ÍNDICE DE CUADROS DEL ANEXO
Pág.
Cuadro 1. Análisis de varianza para altura de planta de chile habanero.--------- 63
Cuadro 2. Análisis de varianza para diámetro de tallo de chile habanero.------- 63
Cuadro 3. Análisis de varianza para número de frutos por planta de chile
habanero.------------------------------------------------------------------------------------------- 64
Cuadro 4. Análisis de varianza para rendimiento por planta de chile
habanero.------------------------------------------------------------------------------------------- 64
Cuadro 5. Análisis de varianza para rendimiento por hectárea de chile
habanero.------------------------------------------------------------------------------------------
65
Cuadro 6. Análisis de varianza para rendimiento de fruto de primera de chile
habanero.------------------------------------------------------------------------------------------- 65
Cuadro 7. Análisis de varianza para rendimiento de fruto de segunda de chile
habanero.------------------------------------------------------------------------------------------- 66
Cuadro 8. Análisis de varianza para rendimiento de fruto de tercera de chile
habanero.------------------------------------------------------------------------------------------- 66
vi
RESUMEN
La finalidad del presente trabajo fue evaluar el efecto del ácido salicílico en
parámetros de crecimiento y producción de chile habanero cv Habanero
(Capsicum chinense Jacq). El experimento se realizo en condiciones de
invernadero en el municipio de Chicxulub Pueblo, Yucatán en los meses de
julio/2004-mayo/2005. Se utilizaron dosis diferentes de ácido salicílico (AS) en
concentraciones molares de 10-6, 10-8, 10-10 y un testigo. La aplicación se realizo
en la mañana en cuatro ocasiones a los 15, 23, 31 y 39 días de edad de la planta,
bajo un diseño experimental de bloques al azar, con 8 repeticiones y como unidad
experimental 12 plantas. Los resultados obtenidos mostraron que el AS en las
concentraciones probadas incremento significativamente la altura de las plantas.
A las concentraciones de 10-8 y 10-10 M se observó un incremento de 12 y 9 %
respectivamente mayor que el testigo. De igual manera 10 -6 y 10-10 M AS
incrementaron el diámetro de tallo en un 23 y 16 % respecto al testigo. Los
tratamientos que produjeron los mayores rendimientos por hectárea fueron 10-6 y
10-8 M con 42.8 y 38.9 t respectivamente referente al testigo que produjo 34.8 t.
En frutos de primera calidad no se presentaron diferencias significativas, sin
embargo 10-8 M incremento un 24 % más que el testigo.
Palabras clave: Capsicum chinense Jacq, ácido salicílico, reguladores de
crecimiento vegetal, calidad, capsaicina.
1.
SUMMARY
The purpose of research was to evaluate the effect of salicylic acid in growing
parameters and production of Habanero pepper (Capsicum chinense Jacq). The
experiment was carried out under greenhouse conditions in the Chicxulub Pueblo,
Yucatan in the months of July, 2004 to May, 2005. Different doses of salicylic acid
were used in molar concentrations of 10-6, 10-8, 10-10 and a control (distilled water).
The solutions were sprayed on the seedlings foliage in four occasions in the
morning at the 15, 23, 31 and 39 days of age. Was used fully random blocks
design in plots with eight repeats in experimental units consisting of 12 plants
each. Results showed that the salicylic acid on the concentrations tested 10 -8 and
10-10 M significantly increased the height of plant over 12 and 9 % in relation to the
control group. In the stem diameter signicantly increased over 23 y 16 % with
concentrations of 10-6 and 10-8 M in relation to the control. The treatments greatest
outputs were 10-6 and 10-8 M with 42.8 and 38.9 ton in relation to the output control
with 34.8 ton. In first fruit quality did not showed presented significantly difference;
however the concentrations of 10-8 M increased over 24 % in relation to the
control.
Keywords: Capsicum chinense Jacq, salicylic acid, plant growth regulators,
quality, capsaicin.
vii
I.
INTRODUCCIÓN
El sector hortícola esta experimentando una tendencia cada vez más
marcada hacia la producción temprana o fuera de época normal de producción,
en busca de ventanas de mercado que le permitan obtener los mejores precios de
venta y con ello mejorar su capacidad económica. Esto ha creado la necesidad de
utilizar sistemas de producción para proteger a sus cultivos por lo que se deben
implementar nuevas tecnologías y sistemas de producción que garanticen su
rentabilidad.
El uso de estructuras como invernaderos permite a los agricultores obtener
cosechas por un periodo prolongado, durante épocas donde no es factible
efectuarse si se cultiva en campo abierto, así como la obtención de mayor
rendimiento y mejor calidad de fruto.
El chile habanero, es un cultivo de gran importancia económica para los
productores de hortalizas del estado de Yucatán, ocupa el segundo lugar después
del cultivo de tomate (la superficie sembrada en 2004-2005 fueron de 1113
hectáreas.) y debido a su valor de producción y la demanda de mano de obra
generada. Sin embargo, el cultivo es afectado por factores climáticos y diversas
causas que disminuyen su eficiencia productiva (Subsecretaría de Agricultura,
CGD. y SIAP, 2004).
1
Es por eso que surge la necesidad de buscar alternativas viables dentro de
la producción de cultivos y una de ellas es el utilizar reguladores de crecimiento
en la agricultura, ya que estos ayudan a acelerar o inhibir diversos procesos
fisiológicos con la finalidad de poder incrementar el rendimiento, así como
disminuir el ciclo agrícola en los cultivos de interés económico.
El ácido salicílico es considerado como un regulador del crecimiento. Se
tiene evidencias en el ámbito científico que la aplicación de los salicilatos altera
fenómenos de transpiración, inhibe la producción de etileno, favorece el amarre
de fructificaciones, altera la permeabilidad de las membranas, incrementa la
productividad en plantas cultivadas, etc., por citar algunos eventos generalizados
en sus efectos.
Con base en lo anterior, el objetivo del presente trabajo fue evaluar el
efecto del ácido salicílico (AS) en parámetros de crecimiento y producción del
chile habanero, así como mejorar la calidad del fruto en condiciones de
invernadero.
2
II.
2.1.

OBJETIVOS
Objetivo General
Determinar el efecto del ácido salicílico en el crecimiento de la planta y
producción de fruto de chile habanero (Capsicum chinense, Jacq.) en
invernadero
2.2.

Objetivos Específicos
Evaluar el comportamiento del crecimiento en altura y diámetro del tallo
de la planta del chile habanero por efecto de tratamientos de ácido salicílico

Evaluar el rendimiento y calidad en peso del chile habanero en respuesta
a la aplicación del ácido salicílico.
3
III.
HIPÓTESIS
 Aspersiones de bajas concentraciones 10-6, 10-8 y 10-10 M de ácido
salicílico estimulan el crecimiento de plantas de chile habanero, bajo
condiciones de invernadero.
 El ácido salicílico aumenta el rendimiento agronómico al ser aplicado en
plantas de chile habanero, bajo condiciones de invernadero.
4
IV.
4.1.
ANTECEDENTES
Origen y distribución
El género Capsicum también es llamado pimiento o Ají, es originario de
América, la especie annum es originaria de México; las especies que más se
conocen son las indicadas en el Cuadro 1.
Cuadro 1. Especies más conocidas del género Capsicum y
los países donde se cultiva.
Especie
Países donde se siembra
Capsicum frutences
México, Centro y Sudamérica
Capsicum annum
México
Capsicum pendulum
Sudamérica (Perú)
Capsicum pubescens México y Centroamérica (Andes)
Soria et al., 1996.
Según (Laborde y Pozo 1982) indican que el chile habanero es probable que
sea originario de México y Centroamérica; existen centros secundarios en el
centro y sureste de Europa, en África, Asia y América Latina.
4.2.
Importancia Internacional
El chile es una hortaliza que desde antes de la conquista forma parte de la
dieta de los mexicanos en todos los estratos sociales. Este se consume en verde
o también en estado seco además, diversas especies son utilizadas para la
5
industria de las conservas, extracción de pigmentos y hasta preparación de
cosméticos en algunos casos (Soria et al., 1996).
La principal aportación del cultivo del chile al mundo, fue sin duda alguna,
la riqueza gastronómica que se adquirió con su uso, gracias a la variedad de
colores, sabores y grados de pungencía o picor que encontraron en especies y
que Colón llevó al viejo mundo. De 1970 a 1990 el volumen de comercialización
se ha triplicado, debido entre algunas razones a la creciente demanda de la
comida asiática y mexicana entre los países industrializados que gustan de las
cualidades saludables del chile; sin embargo, también se ha incrementado su
importancia en la agroindustria, por ser una fuente natural de colorantes y
esencias para la elaboración de alimentos (Chin, 1998).
4.3.
Importancia del chile en México
México destaca como un país hortícola potencialmente productivo en el
mundo debido en parte a la amplia diversidad de microclimas y tipos de suelo,
que aunado a la tecnología desarrollada, hacen posible obtener una amplia gama
de productos en diferentes épocas del año, tales como: papa, tomate, cebolla y el
chile, productos de mayor consumo nacional así como en otros países (Siller,
2000)
El cultivo comercial del chile es una actividad muy extendida en nuestro
país, se le puede producir desde el nivel del mar en las costas del golfo y del
pacifico hasta los 2,500 msnm en la mesa central, con gran diversidad de colores,
6
tipos y pungencias según la región y la época. Las principales regiones
productoras de chile en México se presentan en el Cuadro 2.
4.4.
Situación del chile en el estado de Yucatán
De la gran variedad de chiles encontrados en el estado de Yucatán, el chile
habanero es el más importante por su demanda. La producción del chile se
destina principalmente al mercado local para su consumo en fresco; otra parte de
esta, cada vez mayor, lo utiliza la agroindustrial, por el alto contenido de
capsaicina, para la elaboración de salsas picantes y salmueras, y una pequeña
parte se destina para la obtención de semilla. Los principales municipios
productores son Maxcanú y Halachó al suroeste del estado (Medina, 1984; Chin,
1998).
7
Cuadro 2. Principales regiones productoras de chile en México.
PRINCIPALES TIPOS DE
REGION
ESTADO
CHILE
GOLFO
Veracruz, Tamaulipas
MESA
Jalapeño, Serrano
Poblano, Miahuateco, Serrano
Puebla, Hidalgo
CENTRAL
y Carricillo
Zacatecas, Durango, San Luis
NORTE
Mirasol, Ancho, Jalapeño
Potosí, Chihuahua
BAJIO
Guanajuato
PACIFICO
Sinaloa, Nayarit Sonora, Baja
NORTE
California
SUR
Guerrero, Yucatán, Oaxaca
Ancho, Pasilla, Mulato
Bell, Fresno, Caribe, Anaheim
Mirasol, Ancho, Jalapeño,
Habanero
FUENTE: Secretaria de Programación y Presupuesto (1981 Vol.5 Num.10) citado por Chin 1998.
8
4.5.
Clasificación taxonómica
La clasificación taxonómica para el cultivo del chile habanero se describe
en el Cuadro 3.
Cuadro 3. Clasificación taxonómica del chile habanero
Reino
Vegetal
Subreino
Embriophyta
División
Angiospermeae
Clase
Dicotiledónea
Subclase
Metachlamidae
Orden
Tubiflorae
Familia
Solanaceae
Género
Capsicum
Especie
Chinense
Nombre Científico Capsicum chinense Jacq.
Fuente: (Pérez et al., 1997).
4.6.
Descripción botánica
4.6.1. Planta
La planta se comporta como perene, su ramificación es erecta, con tres o
cinco ramas primarias y de nueve a trece secundarias, presenta una altura no
menor de 1.30 m y sus hojas son grandes, verdes obscuras de 10 a 15 cm de
largo (Soria et al., 1996).
9
4.6.2. Raíz
El chile habanero posee una raíz principal de tipo pivotante, la cual
profundiza de 0.40 m a 1.20 m, con raíces secundarias extendidas en el suelo
(Morales, 1993). Lateralmente se extienden hasta 120 cm de diámetro alrededor
de la planta. La mayor parte de las raíces está situada a una profundidad de 5 a
40 cm en el suelo (Pérez et al., 1997).
4.6.3. Tallo
El tallo es cilíndrico o prismático angular. Su parte inferior es leñosa y se
ramifica de manera pseudodicotómica, con altura variable, posee de tres a cinco
ramas primarias y de nueve a trece secundarias (Pérez et al., 1997).
4.6.4. Hoja
Las hojas son grandes, enteras, pueden llegar a medir hasta 15 cm de
largo por 10 cm de ancho, situadas en los nudos de las ramificaciones, se
encuentran solitarias o en grupos, ovaladas o lanceadas, con ápices agudos y la
base asimétrica; son de color verde amarillento o verde oscuro (Morales, 1993).
4.6.5. Flores
Posee una inflorescencia umbeliforme, por lo general de tres a seis flores
por nudo (Laborde y Pozo, 1982). El pedúnculo es erguido o inclinado hacia
abajo, el androceo consta generalmente de cinco estambres, y el ginecéo de dos
cárpelos, las anteras son azules agudas y alargadas; cáliz y corola de una sola
pieza de color blanco verdoso o amarillento, raramente de color blanco claro
(Morales, 1993; Nuez et al., 1996).
10
Cuando la temperatura es alta el estigma crece sobre los estambres antes
que se abran las anteras (Heterostilia), lo que facilita la fecundación cruzada. El
polen tiene la mayor disponibilidad para la fecundación durante las horas de la
mañana en el momento que se abren las flores, la temperatura más favorable es
alrededor de 20 ºC (Pérez et al., 1997).
4.6.6. Fruto
El fruto es una baya con estructura hueca, con forma de cápsula,
constituida por un pericarpo grueso y jugoso y un tejido placentario; el pericarpo a
la vez esta constituido por una capa externa, el mesocarpo o zona carnosa
intermedia y el endocarpo o capa membranosa interna (Nuez et al., 1996).
Presenta en promedio seis frutos por axila; estos son de un tamaño entre 2
y 6 cm con 3 ó 4 lóculos; cuando el fruto es tierno, su color es verde, cónico, de
pulpa delgada y extremadamente picante, mide aproximadamente de 3 cm de
diámetro por 5 cm de largo, y son anaranjados, amarillos o rojos cuando son
maduros y además son muy picantes aromáticos pero no irritantes (Tun, 2001).
Los frutos son extremadamente pungentes (picantes), lo cual es debido a
su contenido de capsaicina. Este es un alcaloide que se encuentra en las células
de la placenta. Un sólo gen dominante controla la pungencia, y los diferentes
grados de la misma se deben a algunos modificadores de dicho gen, entre los
cuales se tiene la influencia del ambiente (Tun, 2001).
11
4.6.7. Semillas
Las semillas son lisas, ovaladas y pequeñas de 2.5 a 3.5 mm; tienen testa
de color café claro a café obscuro y su periodo de germinación varía entre ocho y
quince días (Tun, 2001).
4.6.8. Variedades
La única variedad mejorada que se vende en el mercado nacional, la
produce la compañía Seminis, y la vende con el nombre de “habanero”. Esta
variedad se cosecha entre los 90 y 100 días después del transplante y el número
de cortes varía según en el manejo que se le dé al cultivo. Si la parte aérea y las
raíces están sanas, pueden darse hasta 20 cortes o más ya que esta especie es
casi semiperenne. Los productores dan un promedio de 8 a 12 cortes (Soria et al.,
1996).
4.7.
Tecnología de producción
4.7.1. Requisitos climáticos
La temperatura requerida para el desarrollo óptimo del chile habanero es
de 25 ºC; la mínima tolerada es de 15 ºC y la máxima de 32 ºC. Una temperatura
inferior a la mínima detiene el crecimiento de la planta y causa malformación del
fruto y caída de las flores por quemadura y/o aborto. Requiere suelos de textura
media a fina con profundidad entre 40 y 50 cm y pH entre 6 y 6.5, aunque se
adapta bien a suelos calcáreos con pH ligeramente mayor a 7.0 (Tun, 2001).
12
4.7.2. Época de siembra
El cultivo del chile habanero puede sembrarse durante todo el año, siempre
y cuando se le proporcione el riego adecuado, de lo contrario la producción puede
reducirse, ya que las lluvias no satisfacen las necesidades del cultivo. Sin
embargo, los mayores rendimientos se obtienen durante la época de lluvias,
debido a las condiciones de temperatura, luminosidad y humedad que se
presentan (Tun, 2001).
La disminución de la temperatura en el periodo de diciembre a febrero,
reduce el desarrollo de las plantas de chile habanero que se encuentran en
almácigo, o están recién transplantadas (Tun, 2001).
4.7.3. Densidad de población
La cantidad de planta por unidad de superficie y su arreglo topológico en el
terreno definitivo dependen en gran medida del tipo de suelo y del sistema de
riego.
En suelos pedregosos, las distancias que se recomiendan entre las hileras
de pocetas es de 80 cm y la separación entre las mismas es de 60 cm, con lo cual
se tendrán 20,800 pocetas/ha. En suelos mecanizables se puede realizar con un
sistema de doble hilera, en el cual se alternan calles anchas y angostas. La
separación recomendada entre calles angostas debe ser de 80 cm, la de las
calles anchas de 120 cm y entre planta 50 cm, con lo cual la densidad será de
20,000 pocetas /ha (Tun, 2001).
13
La poceta consiste en una pequeña porción de suelo, removida con un
pico, tiene 25 cm de diámetro y de profundidad aproximadamente, a la cual se le
extraen las piedras sueltas; se les agrega estiércol y se mezcla con el suelo. La
poceta facilita el desarrollo de las raíces y conserva la humedad por más tiempo
(Soria et al., 1996).
4.7.4. Trasplante
Las plántulas de chile se trasplantan al terreno definitivo cuando tienen
entre 15 y 20 cm de altura, lo cual ocurre en un periodo de 35 a 40 días después
de la siembra en almacigo. El trasplante se debe realizar por las tardes, cuando la
temperatura disminuye; también puede hacerse por la mañana, pero el riesgo de
mortandad es mayor debido al incremento de la temperatura después del medio
día (Tun, 2001).
4.7.5. Riego
Los sistemas de riego más utilizados en la Península de Yucatán son por
manguera, goteo, espagueti y por gravedad. Los tres primeros son utilizados en
suelos pedregosos y el riego por gravedad es utilizado en suelos mecanizables.
Cuando se utiliza riego por mangueras, se sugiere regar cada cinco días y aplicar
aproximadamente 50 litros por planta; en el caso de riego por espagueti se
sugiere dos horas diarias y el riego por goteo es constante en el suelo; si llueve
durante el período de cultivo se suspende el riego (Soria et al., 1996).
14
4.7.6. Fertilización
Tanto en suelos mecanizables como en los pedregosos, se recomienda
fertilizar con el tratamiento 120-120-120, a base de fertilizantes inorgánicos; pero
en los suelos pedregosos se recomienda la adición de cinco toneladas de
gallinaza/ha. Cuando se utiliza riego por goteo se recomienda manejar la
fertirrigación.
La fertirrigación es una práctica que consiste en la aplicación de
fertilizantes solubles incorporados al agua de riego, para su distribución a las
plantas a través de este medio. Los fertilizantes recomendados son: ácido nítrico
y nitrato de amonio como fuentes de nitrógeno; fosfato monoamónico y ácido
fosfórico agrícola como fuentes de fósforo; y nitrato de potasio y sulfato de potasio
como fuentes de potasio (Tun, 2001).
4.7.7. Manejo fitosanitario
Las condiciones de temperatura y humedad prevalecientes en el estado,
por sus características propias del trópico húmedo, son propicias para el
desarrollo de una gran cantidad de organismos patógenos, los cuales pueden
afectar al cultivo durante todo su ciclo vegetativo. Las poblaciones de los
patógenos se incrementan fuertemente al presentarse las condiciones óptimas
para su desarrollo, razón por la cual no es posible su control total (Tun, 2001).
15
4.7.7.1.
Plagas y su control
Las plagas más importantes a escala nacional, que se presentan en el
cultivo del chile son: el barrenillo del chile (Anthonomus eugenii), la mosquita
blanca (Bemisia tabaci) y el pulgón verde (Myzuz persicae) (Tun, 2001).
El barrenillo del chile (Anthonomus eugenii)
Es la plaga más importante, su ataque se manifiesta por la caída de flores y
frutos, si no se controla puede ocasionar pérdidas superiores al 50% de la
producción del fruto comercial. Para el control químico se recomienda
aplicaciones de Oxamyl (de 0.52 a 0.78 kg ha -1), Carbaril (1.25 kg ha-1) y
Permetrina (0.20 kg ha-1) y debe iniciarse cuando aparezcan los primeros botones
florales y se observen adultos en cualquier parte de la plantas (Tun, 2001).
Mosquita blanca (Bemisia tabaci)
Se considera como una plaga importante del chile habanero ya que es
vector de la virosis denominada “chino del tomate”. El control químico se realiza
con Endosulfan (0.50 kg ha-1), Imidacloprid (0.25-0.35 kg ha-1), Diazinon (0.25 kg
ha-1), (Tun, 2001).
Pulgón verde (Myzuz persicae)
Puede ser transmisor de enfermedades de tipo viral. Su control se realiza
con Pirimicarb (0.25 kg ha-1) y Metamidofos (0.60 kg ha-1) (Tun, 2001).
Existen otras plagas que aunque no son de gran relevancia, se presentan
en el cultivo y merecen atención como el minador de la hoja (Liriomyza spp), la
16
pulga saltona (Epitrix spp), la araña roja (Tetranychus cinnabarinus y Tetranychus
urticae Koch), y el acaro blanco (Polyphagotarsonemus latus) según (Tun, 2001).
4.7.7.2.
Enfermedades y su control
Las principales enfermedades en el chile habanero, se clasifican en dos
grupos: Las que se presentan en el semillero y las foliares y de raíz.
Enfermedades del semillero
La enfermedad más frecuente es el Damping off o secadera de las
plántulas que es producida por varios hongos, siendo los más comunes Pythium
sp, Fusarium sp y Phytophthora infestans. Se puede prevenir y controlar con
Captan (1.0 g L-1 agua) y Mancozeb (1.0 g L-1 de agua) y con sistémicos
Carbendazim (1.0 mL L-1 de agua) y Metalaxil (1.0 mL L-1 de agua) (Tun, 2001).
Enfermedades foliares y de raíz
Las principales enfermedades foliares en orden de importancia son: virosis,
que es transmitida por los áfidos, principalmente por la mosquita blanca; la
mancha de la hoja (Cercospora capsici); la antracnosis (Colletotrichum sp); la
mancha bacteriana (Xanthomonas campestris pv vesicatoria) y el cancro
bacteriano (Corynebacterium michiganense pv. michiganense) (Tun, 2001).
Virosis (complejo viral)
Es la enfermedad más importante en chile tanto nacional como regional, a
la cual denominan “mulix”. Se transmite a través de insectos chupadores,
principalmente la mosquita blanca (Bemisia tabaci) de manera semipersistente.
17
Se previene mediante el control químico y colocación de trampas de color amarillo
para mosca blanca y eliminación de plantas enfermas (Tun, 2001).
Mancha de la hoja (Cercospora capsici Helad & wolf)
Esta enfermedad es muy común en temporadas lluviosas produce
manchas foliares y pudrición de las puntas de la rama tierna. En las hojas se
observan manchas casi redondas de 0.5 a 2.5 cm de diámetro, al principio se ven
acuosas y después se presentan con márgenes de color obscuro, las hojas son
amarillentas y caen, el hongo se desarrolla en el interior del pedúnculo de los
frutos. Su control se realiza con aplicaciones de Captan (1.0 kg ha -1) y Mancozeb
(1.6 kg ha-1) y Oxicloruro de cobre (de 1.0 a 1.5 kg ha-1) (Tun, 2001).
Marchitez (Phytophthora capsici Leo.)
El síntoma más común de la enfermedad en plantas de chile es un
marchitamiento general o parcial. Cuando el ataque es en la raíz, el
marchitamiento es general, ya que destruye el xilema y el floema impidiendo el
paso de agua y nutrimentos al follaje de las plantas. Si el ataque ocurre en una
rama, en las hojas o en los frutos, la marchitez es parcial, aunque eventual. En
plántulas causa ahogamiento (damping off). Se puede prevenir mediante la
rotación de cultivos y el manejo adecuado del riego. Las prácticas de control para
el damping off también pueden ser utilizadas (Tun, 2001).
18
4.7.8. Control de malezas
Antes de realizar el transplante se recomienda chapear y aplicar Paraquat
en dosis de 0.60 kg i.a. ha-1. Después del transplante, se recomienda realizar un
control combinado de la maleza mediante el deshierbe de una franja de 40 cm
alrededor de las hileras de plantas, y la aplicación de Paraquat en dosis de 0.5 mL
ha-1 en la superficie restante (Tun, 2001).
4.7.9. Cosecha
El inicio de la cosecha depende del tipo de chile habanero empleado y el
destino de la producción, aunque esto ocurre aproximadamente a los 75 días
después del transplante, cortando con todo y pedúnculo los frutos de consistencia
dura y color verde brillante. Las cosechas varían de una o dos semanas, no debe
permitirse que el fruto madure fisiológicamente en la planta porque esto la debilita
y envejece acortando su ciclo productivo (Tun, 2001).
4.8.
Calidad
Es determinada por la apariencia del fruto, el tamaño, el peso unitario, la
firmeza y el color. Para su venta, el fruto se clasifica en: grande cuyo peso unitario
es mayor de 10 g; mediano, con peso entre 7.5 y 10 g; chico, con peso entre 5.0 y
7.5 g y, rezaga, con peso menor a 5.0 g. (Tun, 2001). Se calcula que el 80% de la
producción total se consume fresco, el 15% se utiliza en la industria y el 5% para
la obtención de semilla (Piña, 1982).
19
4.9.
Reguladores de crecimiento
Los reguladores de crecimiento vegetal son compuestos orgánicos que
estimulan, inhiben o modifican de alguna forma los procesos fisiológicos de las
plantas. Este termino engloba a las sustancias químicas naturales y sintéticas
(Jankiewicz, 2003).
A los reguladores de crecimiento generalmente los han clasificado en cinco
grupos: auxinas, citocininas, giberalinas, ácido abscisico y etileno. Aunque hay
substancias que actualmente son clasificadas también como reguladores de
crecimiento vegetal (RCV), siendo el caso del ácido jasmonico, compuestos
fenólicos y ácido salicílico (Jankiewicz, 2003).
Los RCV inhiben o promueven algún proceso vegetal, que depende de
diversos factores como son: estado fisiológico de la planta, la especie, etapa
fenológica, concentración, la forma, frecuencia y época de aplicación del
regulador lo que hace que sea muy dinámico su estudio (Jankiewicz, 2003).
4.10. Ácido salicílico (AS)
4.10.1.
Generalidades
El ácido salicílico es uno de los numerosos compuestos fenólicos que está
presente en las plantas, pertenece al grupo de los salicilatos, cuya característica
química los relaciona por presentar el radical 2-hidroxibenzoico, como el ácido
acetilsalicílico y el metilo de AS (Weissman, 1991; Klessig y Malamy, 1994).
20
El AS se aisló por vez primera en 1838 a partir de plantas del género Salix
perteneciente a la familia Salicaceae, a la cual debe su nombre (Devore, 1979).
También se ha encontrado en los géneros Spirea, Gautheria, Xanthium y Lemna
(Raskin, 1992). Las hojas de arroz contienen los valores más altos de ácido
salicílico entre 0.01 y 37.19 g g-1 de peso fresco (Silverman et al., 1995).
Figura 1. Fórmula estructural del ácido
salicílico
El AS se produce en hojas jóvenes, meristemos florales y vegetativos y es
transportado vía floema (Cleland y Ajami, 1974). El AS se encuentra en las
plantas en forma de conjugados de azúcares, como son ésteres de glucosa
(glucosa unida con un grupo carboxilo) y glucósidos (glucosa unida con un grupo
hidrófilo) como la salicina que por acción enzimática o mediante ácidos, se
hidroliza en glucosa y saligenina, ésta última por oxidación general del AS
(Devore, 1979; Umetamy et al., 1990).
El AS en la industria, se obtiene químicamente por medio del tratamiento
de la sal de un fenol con dióxido de carbono, el cual produce el remplazamiento
de un hidrógeno anular por el grupo carboxilo, conociéndose esta reacción con el
nombre de Kolbe, mediante la cual se obtiene el ácido ortobenzoico o ácido
salicílico (López, 1984).
21
El AS es un polvo cristalino, que tiene un punto de fusión de 157 a 159°C,
es poco soluble en agua y muy soluble en solventes orgánicos polares. El pH en
una solución acuosa saturada, es de 2.4 y tiene una fluorescencia de 412 nm
excitado hasta 301 nm y por estas propiedades es más fácil de estudiarlo ya que
puede ser detectado dentro del sistema de las plantas (Raskin et al., 1990).
4.10.2.
Biosíntesis del ácido salicílico
El mecanismo más importante para la formación de ácidos benzoicos en
plantas, es la degradación de la cadena lateral de los ácidos cinámicos, los cuales
son importantes intermediarios en la ruta del ácido shikímico. (Raskin, 1992).
En la actualidad se sabe que el ácido salicílico es sintetizado a partir de la
eritrosa 4 fosfato y el fosfoenol piruvato (PEP) en tabaco y arroz (Silverman et al.,
1995).
4.10.3.
Papel de los salicilatos en plantas
El AS se considera como un regulador de crecimiento, puesto que
recientemente se ha encontrado que conjuntamente con el ácido jasmónico,
regulan la biosíntesis de otros metabólitos secundarios (Bennet y Wallsgrove,
1994).
El término salicilato se ha utilizado para la descripción de un grupo de
compuestos químicos que presentan al radical 2- hidroxibenzoico. Dentro de
estos compuestos se encuentran el salicilato de sodio, éster y el metilo del ácido
22
salicílico. Así como el ácido acetilsalicílico (ASA), los cuales son de gran utilidad
química (Smith y Smith, 1966).
Se ha observado que el ácido salicílico en algunas ocasiones estimula o
inhibe algún proceso fisiológico de las plantas. Se ha reportado por ejemplo que el
AS es un inhibidor de la biosíntesis de etileno, ya que reduce la conversión de
ácido 1-aminociclopropano-carboxílico (ACC) hacia etileno, en cultivos celulares
de pera Pyrus cumunis (Leslie y Romani, 1986), zanahoria (Roustan et al., 1990)
y manzana (Romani et al., 1989). También la aspirina (ácido acetilsalicílico)
mostró niveles de inhibición semejantes a los del ácido salicílico (Leslie y Romani,
1988).
En relación a la raíz, se conoce que el AS actúa sinérgicamente con
auxinas, promoviendo el enraizamiento de fríjol Phaseolus vulgaris (Basu et al.,
1969). También estimula fuertemente el desarrollo de raíces adventicias en el
árbol del Neem de 6 años de edad, aunque al combinarlo con ácido indolbutírico
(AIB) se inhibió el enraizamiento, concluyendo que es mejor manejarlo sólo que
en combinación con el AIB (Mohinder et al., 1992). El AS también estimula la
formación de raíces adventicias en el hipocótilo de Vigna radiata (Ling y Li, 1995).
4.10.4.
Efecto de salicilatos en plantas
Entre los efectos que causa el ácido salicílico en el desarrollo de los
vegetales se tiene: inhibición de la germinación o del crecimiento de la raíz y
coleóptilo, inducción de la floración e inhibición de la misma (Saxena y Rashid,
1980), esto sucede al suministrarse el AS en concentraciones altas (10 -2 M), ya
23
que resulta tóxico para las plantas (García, 1982; Larqué-Saavedra, 1979),
provoca cierre de estomas y reducción de la transpiración (Larqué-Saavedra,
1975, Larqué-Saavedra, 1978; Larqué-Saavedra, 1979; De León y LarquéSaavedra, 1979; Trejo, 1981), mantiene turgente los estomas y pulvinolos
(Saeedi, 1984) y altera la permeabilidad de los tilacoides (Bell, 1981).
Cortés (1982), aplicó ASA a 10-2 M a plántulas de naranjo agrio, obteniendo
una reducción significativa en el número de espinas, área foliar y en el número de
estomas, lo que ayudó para que se redujera la tasa transpiratoria.
El ácido salicílico reduce la acumulación de peso seco en tallos de algunos
cultivos y especies de malezas (Shettel y Balke, 1983) quizá por interferencia con
la membrana transportadora de iones en raíces, reportándose inhibición en la
absorción de K+ en raíces de avena, en la permeabilidad de la membrana a iones
inorgánicos en cebada (Glass y Dunlop, 1974), menor actividad de la nitrato
reductasa en maíz, trayendo por consecuencia una disminución en la
acumulación de nitrógeno orgánico (Jain y Srivastava, 1981) y una inhibición en la
toma de fosfato por raíces de cebada a diversos ácidos fenólicos, incluyendo
salicilatos (Glass, 1973).
Se sugiere que el ácido salicílico puede estar involucrado en la regulación
de la floración en plantas. Al tomar evidencias de experimentos en el cual áfidos
se alimentaron de partes vegetativas y reproductivas de plantas como lo es
Xanthium strumarum y en Lemma gibba, colectando la miel del áfido, se observó
que la sustancia inductora de la floración era ácido salicílico.
24
El mecanismo por el cual el ácido salicílico y acetil salicílico induce
floración en plantas no es conocido. Una hipótesis sugiere que esta inducción se
debe a su acción como un agente quelatante, debido que al grupo libre o-hidroxilo
confiere una actividad quelatante sobre ácidos benzoicos. Esto es fundamentado
por los agentes quelatantes que pueden inducir floración en Lemmaceae (Raskin,
1992).
Larqué-Saavedra y Rodríguez (1993), reportan estimulación de raíces con
ácido acetilsalicílico (ASA), en bioensayos realizados, en Lepidium sativum L.,
bajo condiciones controladas, donde la concentración de ASA a 10 -7 M estimuló el
desarrollo de más raíces.
Gutiérrez (1997) en soya, algodonero y tabaco se observo que el AS,
estimula fuertemente el crecimiento aéreo, pero sobre todo el crecimiento y
formación de raíces en hasta un 100 % respecto al testigo.
Aristeo (1998) Aplicó AS y estimuló un mayor crecimiento de raíces de
zanahoria (60 %), betabel (16%) y rábano (200 %) referente al testigo.
Almaguer (1994) encontró que las aplicaciones de ASA promueven la
floración de naranja cv. nevelina bajo condiciones de invernadero en la tercera
fecha de evaluación.
Rodríguez (1990) encontró que al asperjar ASA en concentraciones de 10 -2
M, se redujo el número de espinas y gloquidios de opuntia amyclaea.
25
Aspersiones AS incremento de manera significativa el contenido de nitratos
y proteínas en las raíces en 34 y 30 % a las concentraciones de 10 -10 y 10-8 M
(San Miguel et al., 2002) y de biomasa con 10-6 y 10-8 M en Pinus patula (San
Miguel et al., 2003).
López (2003) encontró que aspersiones de AS en concentraciones de 10 -8
y 10-10 M aumento en un 18 y 11 % el rendimiento por planta respectivamente
referente al testigo en chile habanero.
Martín et al. (2003) AS en concentraciones de 10-8 M incrementaron en un
75 % el numero de botones florales y una precosidad de floración de 15 días en
violeta africana.
Aplicaciones exógenas de AS en concentraciones de 10 -6 y 10-8 M
incrementaron el área foliar, el número y tamaño de flores en comparación con el
testigo en plantas de gloxinia (Martín et al., 2003).
Quijano (2004) aplicaciones exógenas de AS en concentraciones de 10 -6 y
10-8 M incrementaron en un 86 y 75 % el numero de botones florales y una
precosidad de floración a los 41 días respecto al testigo en Chrysantemun
morifolium Ramat.
Herrera (2004) aplicaciones exógenas de AS en concentraciones de 10 -8 y
10-14 incrementaron los rendimientos en un 23 y 22 % respectivamente referente
al testigo en papaya maradol.
26
Sandoval (2004) aplicaciones exógenas de AS en concentraciones de 10 -14
y 10-12 M incrementaron la longitud de las raíces en un 14 y 7 % respectivamente
referente al testigo en cempazúchitl
Matú (2004) aplicaciones exógenas de AS en concentraciones de 10-6 y 108
M incrementaron el numero de frutos en un 24 y 19 % respectivamente referente
al testigo en tomate saladette.
4.10.5.
Ácido salicílico en otros procesos fisiológicos
Se sabe que el AS interviene en otros procesos metabólicos como los
siguientes:
Incrementa la temperatura de estructuras reproductivas masculinas en
Arum lilies (Raskin et al., 1987).
Incrementa la capacidad de la vía alternativa en la respiración aumentando
la acumulación de proteínas de 35 kd (kilodalton) en células de tabaco (Rhoads y
McIntosh, 1993).
Aumenta la producción en soya Glycine max L. (Sharma et al., 1993;
Gutiérrez, 1997).
Induce la acumulación de glucosinolatos (2-feniletilglucosinulato) en las
hojas de Brassica napus (Kiddle, Doughty y Walgrove, 1994).
27
Incrementa la actividad de la superóxido dismutasa, catalasa y nitrato
reductasa en hojas de soya aumentando clorofila, por tanto la tasa de fotosíntesis
aumenta marcadamente (Zhao et al., 1995).
Aplicaciones exógenas de AS inducen la expresión de los genes
relacionados con la patogénesis y establecen el SAR (Sistema de resistencia
adquirida) (Bi et al., 1995; Conrath et al., 1995).
El ácido abscísico (ABA) es un potente inhibidor del hipocótilo de plantas
de Raphanuis sativus, pero cuando se aplica con el AS éste antagoniza la acción
del ABA y restaura el crecimiento normal de las plantas. Respuestas similares se
encontraron en la síntesis de betacianinas en plantas de Amaranthus caudatus
(Ray, et al., 1983; Ray, 1986).
El AS aplicado exógenamente induce secuencias de activación (as-1
tipocis) en la síntesis de genes como la nopalina, octopina y glucación STransferasa (GNT35) en plantas de tabaco (Xiang et al., 1996).
28
V.
MATERIALES Y MÉTODOS
5.1.
Localización del proyecto
El presente trabajo se realizó, durante los meses de julio/2004 –
mayo/2005, en condiciones de invernadero en el municipio de Chicxulub Pueblo,
localizada en la región denominada centro norte del estado. Queda comprendido
entre los paralelos 21º 08’ y 21º 13’ de latitud norte y 89º 30’ y 89º 35’, longitud
oeste; posee una altura promedio de 2 m.s.n.m. (Gobierno del estado de Yucatán,
S/f)
El área de estudio se caracteriza por tener un clima cálido semiseco con
lluvias en verano BS (h’) w (x’), con un régimen térmico caluroso y con presencia
de altas temperaturas medias a lo largo del año. La temperatura media anual es
de 26.5 °C y la precipitación pluvial anual de 469 milímetros, de los cuales el 70%
cae en el verano (Duch, 1991).
Para el establecimiento del sistema de producción se utilizó un invernadero
de estructura metálica con techos de plástico calibre 800, tratado con rayos UV
(ultravioleta), malla antiáfidos, acceso restringido y sistema de riego por goteo, en
una superficie de 480 m2.
29
5.2.
6.1.1
Acondicionamiento del invernadero
Preparación del área experimental
Durante el establecimiento del cultivo del chile, se realizaron diversas labores
de limpieza y mantenimiento en el interior y exterior del invernadero tales como:
deshierbes y una aplicación de herbicida Doblete® (gramoxone). Fumigación
contra plagas en el interior del invernadero con Lannate® (metomilo) de manera
preventiva.
6.1.2
Preparación del terreno
El presente trabajo, se estableció en un suelo Rendzina (Puslum en maya)
según la clasificación de la FAO-UNESCO (Duch, 1991). Con un pico se hicieron
pocetas de 20 cm de profundidad, en las que se extrajeron las piedras sueltas, y
se les agrego 500 g de gallinaza y se mezcló con el suelo. Posteriormente se
aplico Furadan® (carbofuran) para el control de nemátodos por medio del sistema
de riego por goteo.
5.3.
Obtención de plántulas y transplante
5.3.1. Material vegetal
Se utilizaron semillas de chile habanero cv criollo naranja, proporcionadas
por la empresa Hortilatino SPR de RI ubicada en el municipio de Chicxulub
Pueblo.
30
Según Trujillo Aguirre y Pérez Llanes, (2004), las características de la
planta y el fruto de la variedad obtenidas en campo se anotan en los Cuadros 4 y
5.
Cuadro 4. Características de la planta de chile habanero cv criollo naranja.
Planta
Ciclo de vida
Anual
Hábito de crecimiento
Erecta
Forma de la hoja
Lanceolada
Altura media
67.4 cm
Día de la floración
70
Rendimiento/planta
898.5 g
Número de frutos por planta 132.4
Días a la fructificación
103
31
Cuadro 5. Características del fruto de chile habanero cv criollo naranja.
Fruto
Color del fruto en estado intermedio
Color del fruto en estado maduro
Verde
Naranja
Forma del fruto
Acampanulado
Ancho del fruto
2.83 cm
Largo del fruto
4.9 cm
Peso del fruto
8.4 g
Numero de lóbulos
Número de semillas por fruto
Diámetro de la semilla
3
20-50
3.5 mm
5.3.2. Almacigo
Se utilizaron charolas de 200 cavidades de poliestireno, llenadas con
sustrato Sunshine # 3, en la cual se colocó una semilla por cavidad,
posteriormente se cubrió con una capa delgada de vermiculita, y se humedecieron
a capacidad de campo. Seguidamente se apilaron y se cubrieron con bolsas de
polietileno para crear una cámara de germinación y así acelerar este proceso.
Para el manejo fitosanitario se aplico Previcur® (propamocarb) y Derosal®
(carbendazim) para controlar damping-off y Confidor® (imidacloprid) para plagas.
5.3.3. Obtención de las plántulas
Se seleccionaron plántulas de 15 días de edad (10 cm de altura y dos hojas
verdaderas) y se iniciaron las aspersiones foliares de ácido salicílico,
32
posteriormente a los 45 días de edad de la planta (25-30 cm de altura) se realizó
el trasplante en invernadero.
5.3.4. Transplante en invernadero
El transplante en invernadero se realizó en el mes de julio de 2004. Las
plántulas se transplantaron a una distancia de 1.2 m entre hileras y 0.40 m entre
plantas. Para tal efecto se utilizaron 184.32 m 2 (38.4 m x 4.8 m) de área útil del
invernadero en la que se establecieron 384 plantas para la evaluación.
5.4.
Manejo del cultivo
5.4.1. Riegos y Fertilización
Para el presente proyecto, el tratamiento de fertilización del chile habanero
fue 180-120-170, distribuido de acuerdo a la etapa fenológica del cultivo, se utilizó
como fuente de nitrógeno, fósforo y potasio, fertilizantes solubles Champion
Ultrasol 15-30-15, 15-00-00, 18-18-18 y Champion complejo NKS 12-00-45. Así
como el complemento nutrimental Champion quelatos, para proporcionar los
micronutrimentos para el cultivo.
Además de las aplicaciones de fertilizantes con el riego por goteo, se les
aplicó riegos auxiliares alternados, con la finalidad de mantener los niveles de
humedad edáfica del cultivo, cuando el aspecto físico de las plantas y las
condiciones climáticas lo demandaran.
33
Al utilizar riego por goteo se aumenta considerablemente los rendimientos
agrícolas tanto en cantidad como en calidad, así como la uniformidad de frutos.
Para este tipo de riego no es necesario efectuar la nivelación del terreno, ya que
este método no provoca perdidas de agua por escurrimiento superficial. La
eficiencia en la aplicación del riego aumenta, ya que este sistema tiene una
eficacia arriba del 80% en suelos pedregosos.
5.4.2. Tutoreo
Fue una práctica necesaria en el invernadero, porque facilita las labores de
poda, aplicación de agroquímicos y la cosecha. Se extendieron alambres
horizontales calibre 9 en el soporte de la estructura, paralelos a lo largo de los
surcos de las plantas y a una altura de 2.4 m. Se amarro rafia alrededor del tallo
en su parte inferior, utilizando un nudo amplio y deslizable, otro amarre se pasa
sobre el alambre superior y se fija con un nudo simple. Esta actividad se realizó al
menos cada dos semanas para lograr un crecimiento vertical.
5.4.3. Podas
Esta práctica consistió en la eliminación de hojas y ramas básales, para
mejorar el desarrollo y aspecto de la planta relacionada con su eficiencia
fotosintética, hábito de crecimiento, sanidad, fructificación y facilidad de manejo.
5.4.4. Control de plagas y enfermedades
El chile habanero es un cultivo muy susceptible al ataque de plagas y
enfermedades, por lo que se corre el riesgo de obtener bajo rendimiento. Para el
control fitosanitario del chile, se realizaron aplicaciones preventivas de plaguicidas
34
con base en lo recomendado en la región (Tun, 2001; Soria et al., 1996), para
contrarrestar los daños de las plagas y enfermedades que se presenten durante el
desarrollo del cultivo.
5.5.
Tratamientos evaluados y variables de estudio
5.5.1. Tratamientos evaluados
Las soluciones fueron preparadas a partir de un stock con una
concentración de 10-4 M AS, de la cual se tomo 10 mL y se diluyo en un litro de
agua destilada, para obtener la concentración de 10 -6 M, para obtener la
concentración de 10-8 M, se tomo 10 mL de la concentración de 10 -6 M y se diluyo
en un litro de agua destilada.
Los tres tratamientos evaluados fueron: 10-6, 10-8, 10-10 M AS y un testigo
con agua destilada, estas concentraciones se seleccionaron con base en trabajos
previamente realizados. Las soluciones se aplicaron en cuatro ocasiones a todo el
follaje de la planta hasta punto de goteo, con una mochila manual de capacidad
de 15 litros. La hora de aplicación fue entre las 7:00 y las 8:00 horas a los 15, 23,
31 y 39 días de edad de la planta, tiempo en el cual las plantas se encontraban en
almacigo.
5.5.2. Variables de estudio
Con el fin de analizar los mecanismos de respuesta del chile habanero a
las aspersiones foliares del ácido salicílico, se determinó evaluar algunos cambios
en la fenología: altura de planta y diámetro de tallo. Las variables de crecimiento
35
fueron determinadas al final del ciclo del cultivo. La altura de tallo se midió con
una regla graduada en cm, desde la base del tronco hasta la primera flor terminal.
El diámetro del tallo se midió con un Vernier manual, a partir de los 5 cm de la
base del tallo.
El rendimiento total fue determinado durante el período de la cosecha
mediante la cuantificación del número de cortes realizados de frutos. En cada
corte se registro el número y peso de frutos por planta. La calidad de los frutos se
definió por peso, primera calidad (mayor a 10 g), segunda calidad (de 7.5 a 10 g)
y tercera calidad (de 5 a 7.5 g).
5.6.
Diseño experimental
Estos tratamientos se distribuyeron en un diseño experimental de bloques
al azar con ocho repeticiones por tratamiento y como unidad experimental 12
plantas. Para el análisis estadístico se utilizó el paquete Statgraphics, los datos
obtenidos en el presente estudio se sometieron a un análisis de varianza y se hizo
una comparación de medias por la prueba de Tukey al 5% de significancia
36
VI.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
6.1.
Altura de planta
Al valorar el comportamiento de altura de las plantas de chile habanero, el
cual se determino al término del ciclo del cultivo, se observaron diferencias
significativas entre las plantas tratadas con ácido salicílico en relación al testigo
(Cuadro1 del anexo), con un 12 y 9 % de incremento con el tratamiento de 10-8 y
10-10 M AS respectivamente. En general se pudo observar un crecimiento mayor
en todos los tratamientos de AS comparados con el testigo (Figura 2).
220
a
200
a
b
Altura (cm)
c
180
160
140
120
0
DMS = 4.66
10-10
10-8
10-6
Concentración de ácido salicílico [M]
Testigo
Figura 2. Efecto del ácido salicílico en la altura de planta de chile
habanero cv Habanero (C. chinense Jacq).
37
Resultados similares fueron encontrados en un estudio previo en chile
habanero realizado en campo, en el que se reporta incrementos en la altura de las
plantas de hasta un 11 % referente al testigo (López, 2003). En soya se reportan
incrementos de hasta un 20 % en la altura de las plantas con la concentración de
10-2 M AS respecto al testigo (Gutiérrez, 1997). Martín y Larqué-Saavedra. (2003)
reportan incrementos en la altura de las plantas con el tratamiento de 10 -8 M AS
en un 17 % respecto al testigo en pepino europeo. En papaya se encontraron
incrementos en la altura de las plantas en un 15 y 12 % con las concentraciones
de 10-14 y 10-12 M AS respectivamente referente al testigo (Herrera, 2004). En
cempazúchitl se presentaron incrementos en la altura de las plantas en un 31 %
con la concentración de 10-12 M AS respecto al testigo (Sandoval, 2004). En
Chrysantemun morifolium Ramat se reportó incrementos en la altura de las
plantas de hasta un 13 % con la concentración de 10 -10 M AS respecto al testigo
(Quijano, 2004).
Dicho comportamiento se presupone que se deba a que el ácido salicílico
fomenta la producción de ácido indolacético y de ácido naftalenacético, que son
reportadas como hormonas de crecimiento (Lethan et al., 1978 a, b). Al respecto
Neera y Garg (1989), comentan que el ácido salicílico al igual que otros
compuestos fenólicos incrementan la actividad de las enzimas ácido indolacético
oxidasa y peroxidasa en leguminosas tales como garbanzo, regulando con ello su
producción.
38
6.2.
Diámetro de tallo
En lo que respecta a grosor del tallo, en la Figura 3, se muestra la variación
entre los tratamientos evaluados (Cuadro 2 del anexo). Se puede observar que
los tratamientos de 10-6 y 10-8 M AS, obtuvieron un mayor incremento en el
diámetro del tallo aumentando en un 23 y 16 % respectivamente referente al
testigo. En general todos los tratamientos de ácido salicílico presentaron una
tendencia de un mayor grosor de tallo.
32
a
ab
30
Diámetro de tallo (mm)
b
28
c
26
24
22
20
0
DMS = 2.38
10-8
10-10
10-6
Concentración de ácido salicílico [M]
Testigo
Figura 3. Efecto del ácido salicílico en el diámetro de tallo de planta de
chile habanero cv Habanero (C. chinense Jacq).
En papa se menciona que el AS induce a la tuberización, en donde se
encontraron que las concentraciones de AS, que oscilan entre 10 -8 y 10-6 M,
tuvieron los mejores resultados (López y Scott, 1997).
39
En chile habanero se presentaron resultados similares al incrementarse en
un 9 % el grosor del tallo respecto al testigo, con el tratamiento de 10 -8 M AS
(López, 2003). Aristeo (1998) menciona que plantas de betabel tratadas con 10-6
M AS incrementan el diámetro en un 6 % de la raíz comestible. De igual manera
San Miguel et al., (2002), mencionan incrementos en el diámetro del tallo de Pinus
patula de un 20 % respecto al testigo. Herrera (2004) reporta incrementos en el
diámetro del tallo de hasta un 5 % con la concentración de 10 -14 M AS respecto al
testigo. Resultados similares fueron encontrados en cempazúchitl (Tagetes
erecta) al incrementarse el diámetro del tallo en un 30 y 29 % con las
concentraciones de 10-10 y 10-8 M AS respectivamente referente al testigo
(Sandoval, 2004).
6.3.
Número de frutos
Al cuantificar el número de frutos, se encontraron diferencias significativas
entre tratamientos y testigo (Cuadro 3 del anexo), siendo las mejores
concentraciones 10-6 y 10-10 M AS, obteniéndose un incremento del 26 y 15%
respectivamente referente al testigo (Figura 4).
40
a
300
ab
bc
c
Frutos planta-1
250
200
150
100
0
DMS = 29.20
10-10
10-8
10-6
Concentración de ácido salicílico [M]
Testigo
Figura 4. Efecto del ácido salicílico en el número de frutos por planta de
chile habanero cv Habanero (C. chinense Jacq).
Lang (1998) reporta aumentos en número de vainas normales por
aplicaciones de salicilatos en fríjol. López et al., (1998) en trigo mencionan que
obtuvieron incrementos de 2.19 y 7.33 % con los tratamientos 10-6 y 10-4 M AS
respectivamente referente al testigo, en la variable de número de granos por
espiga.
Martín et al., (2003) mencionan que en Vitroplantas de Violeta africana
tratadas con ácido salicílico, aumentan el número de botones florales en un 75 %.
Matú (2004) reporta incrementos en número de frutos de un 24 y 19 % con los
tratamientos de 10-6 y 10-8 M AS respectivamente referente al testigo en tomate
saladette.
41
6.4.
Rendimiento por planta
Las plantas tratadas con AS obtuvieron un rendimiento promedio de 2.05
kg con 10-6 M y 1.87 kg con 10-8 M AS, los cuales fueron significativamente
mayores respecto al testigo (1.67 kg) (Cuadro 4 del anexo), de tal manera que los
tratamientos de 10-6 y 10-8 M AS superaron al testigo en un 26 y 12 %
respectivamente (Figura 5).
2.2
a
Rendimiento (kg planta-1)
2.0
b
bc
1.8
c
1.6
1.4
1.2
0.0
DMS = 0.173
10-10
10-8
10-6
Concentración de ácido salicílico [M]
Testigo
Figura 5. Efecto del ácido salicílico en el rendimiento por planta de chile
habanero cv Habanero (C. chinense Jacq).
En un estudio previo en chile habanero producido en suelo mecanizado y
campo abierto, López (2003) reporta incrementos del 18 y 11 % mayor que el
testigo, con los tratamientos de 10-8 y 10-10 M AS. Podemos observar que la mejor
concentración fue de 10-8 M AS mientras que en este trabajo resulto ser 10 -6 M
AS.
42
En trabajos realizados en otros cultivos se observaron resultados similares,
en tomate se obtuvo un rendimiento promedio de 6.97 kg con 10-6 M y 6.68 kg con
10-8 M AS con respecto al testigo (5.95 kg). Esto representó incrementos del 23 y
18 % (Matu, 2004).
López et al. (1998) reporta en trigo un incremento de 47 % en el peso de
los granos por espiga con el tratamiento de 10-4 M AS que fue mayor en
comparación con el testigo, aumentando de esta manera el rendimiento por
espiga.
Hasta el momento no existe explicación sobre el mecanismo de acción del
ácido salicílico sobre el rendimiento pero se piensa que este ácido actúa
sinergísticamente con las auxinas, ya que estas regulan la acumulación de
fotosintatos (Larqué-Saavedra, 1978).
6.5.
Rendimiento por corte
En la Figura 6, se presenta la dinámica de producción del cultivo,
observamos que para el primer corte el tratamiento que obtuvo mayor rendimiento
fue 10-8 M AS con 3.45 t ha-1 contra el testigo que presento 1.83 t ha-1, esto
representa un incremento del 88 %. También podemos observar que el mayor
pico de producción se presentó en el corte número 3, en donde el mejor
tratamiento fue 10-6 M AS con un rendimiento de 8.92 t ha-1 mientras que el
testigo presento 5.88 t ha-1, esto representa un incremento del 52 %. Para el corte
6 se presento un comportamiento similar obteniendo con el tratamiento de 10 -6 M
AS un rendimiento de 8.45 t ha-1 referente al testigo que tuvo un rendimiento de
43
6.38 t ha-1. Para el último corte observamos que el testigo obtuvo un mayor
rendimiento que los tratamientos con AS.
12
10-6 M AS
10-8 M AS
10-10 M AS
Testigo
Rendimiento (t ha-1)
10
8
6
4
2
0
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Número de corte
Figura 6. Efecto del ácido salicílico sobre el rendimiento por corte en
plantas de chile habanero cv. Habanero (C. chinense Jacq)
Esto se debe quizás a que con aplicaciones foliares de AS se induce un
incremento de rendimiento en los primeros cortes en el cultivo probablemente
debido a la precosidad de floración que se presenta y a un mayor desarrollo
radicular y de crecimiento de la planta en etapas tempranas (Martín-Mex y
Larqué-Saavedra, 2003).
6.6.
Rendimiento total por hectárea
El rendimiento total se obtuvo de la acumulación de 9 cortes hasta los 210
días de edad del cultivo. El análisis de varianza para el rendimiento total indico
diferencias significativas entre tratamientos y testigo (Figura 7), (cuadro 5 del
anexo), estableciendo que el mejor tratamiento fue 10 -6 M AS con 42.85 t ha-1
44
seguida por el tratamiento 10-8 M AS con 38.93 t ha-1 lo cual representa un
aumento de 26 y 12 % respectivamente más que el testigo (34.83 t ha-1).
48
45
a
Rendimiento (t ha-1)
42
b
bc
39
c
36
33
30
27
0
DMS = 3.60
10-10
10-8
10-6
Concentración de ácido salicílico [M]
Testigo
Figura 7. Efecto del ácido salicílico en el rendimiento total por hectárea,
en plantas de chile habanero cv Habanero (C. chinense Jacq)
López (2003) reporta incrementos del 18 y 11 % mayor que el testigo, con
los tratamientos de 10-8 y 10-10 M AS respectivamente, en un estudio previo
realizado en campo en chile habanero.
López et al., (1998) mencionan un rendimiento promedio en trigo de 6.69 t
ha-1 con el tratamiento 10-6 M AS, lo cual representa un incremento del 22 %,
observaron que a medida que la concentración fue disminuyendo, el rendimiento
fue aumentando. Este efecto se puede atribuir a que el AS según García, (1982) y
Larqué-Saavedra (1979) resulta tóxico para los vegetales al suministrarse en
concentraciones altas (10-2 M).
45
En tomate se observó un efecto similar donde se obtuvo un incremento en
el rendimiento de 23 y 18 % con los tratamientos de 10 -6 M AS y 10-8 M AS
respectivamente (Matú, 2004).
Herrera (2004) reporta que en papaya se obtuvieron rendimientos de 117.4
t ha-1 con 10-8 M contra el testigo (95.5 t ha-1) incrementándose en 23% el
rendimiento.
De igual manera Martín-Mex y Larqué-Saavedra (2003) reportan en pepino
en invernadero, un incremento en el rendimiento del 33 y 25 % con los
tratamientos de 10-6 M AS y 10-8 M AS respectivamente referente al testigo.
Enríquez et al. (2001) menciona que en Vitroplantas de tomate tratadas
con AS tuvieron un incremento del 13 % en rendimiento comercial.
6.7.
Rendimiento en calidad por peso de frutos
La calidad de frutos se presenta en la Figura (8). De acuerdo con el análisis
de varianza y prueba de medias, no se encontraron diferencias significativas entre
frutos de primera calidad (Cuadro 6 del anexo), pero el mayor rendimiento se
obtuvo con el tratamiento 10-8 M AS con un incremento de 24 % (5.50 t ha -1)
respecto al testigo (4.45 t ha-1.). En frutos de segunda calidad se encontraron
diferencias significativas entre tratamientos y testigo (Cuadro 7 del anexo), el
mejor tratamiento fue 10-6 M con un promedio de 12.94 t ha-1, mientras que el
testigo se obtuvo 9.89 t ha-1 En frutos de tercera (Cuadro 8 del anexo), el mejor
46
tratamiento, fue la concentración de 10-6 M AS (25.69 t ha-1), mientras que el
testigo produjo 20.49 t ha-1.
32
28
1ra. Calidad
2da. Calidad
3ra. Calidad
a
Rendimiento (t ha-1)
24
b
bc
c
20
16
a
b
12
8
a
a
bc
a
c
a
4
0
a
DMS 1 = 1.28
DMS 2a = 1.78
DMS 3a = 2.23
10-6
10-8
10-10
Concentración de ácido salicílico [M]
Testigo
Figura 8. Efecto del ácido salicílico en las calidades de frutos de chile
habanero cv Habanero (C. chinense Jacq).
Observamos también que la mayor cantidad de frutos cosechados fueron
de tercera calidad (de 5 a 7.5 g). Esto probablemente se deba a una característica
genética de la variedad criolla que produce mayormente frutos pequeños, aunque
Matú (2004) en tomate saladette reporta incrementos del 30 y 23 % en frutos de
primera calidad con los tratamientos 10-6 y 10-8 M AS respectivamente referente al
testigo, situación contraria en el presente trabajo, donde no se presento
diferencias significativas en cuanto a producción de frutos de primera calidad, ya
que en el cultivo del chile habanero, la calidad no se obtiene con el manejo del
cultivo, como en tomate.
47
Martín et al. (2003) reporta que la calidad de flores (gloxinia) expresada en
el tamaño tuvo una respuesta favorable con el tratamiento de 10 -6 M AS.
48
VII.
CONCLUSIONES
El ácido salicílico incrementó la altura de las plantas en un 12 y 9 % con
respecto al testigo con los tratamientos de 10-8 y 10-10 M.
El ácido salicílico incrementó el diámetro de las plantas en un 23 y 16 %
con respecto al testigo con los tratamientos de 10-6 y 10-8 M.
El ácido salicílico incrementó el número de frutos por planta en un 26 y 15
% con respecto al testigo con los tratamiento de 10-6 y 10-10 M.
El ácido salicílico indujo precocidad en el cultivo de chile habanero al
obtener una producción de 3.45 t.ha-1 con la concentración de 10-8 M, mientras
que el testigo solo produjo 1.83 t.ha-1 en el corte 1, lo cual representa un
incremento del 88 % mayor que el testigo.
El ácido salicílico incrementó el rendimiento total en un 26 y 12 % con los
tratamientos de 10-6 y 10-8 M respectivamente referente al testigo.
El ácido salicílico incrementó el rendimiento de frutos de primera calidad en
un 24 % con el tratamiento de 10-8 M respecto al testigo, aunque estadísticamente
no presentaron diferencias significativas.
49
VIII.
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61
physiological characteristics and yield of soyabeans. Acta agronómica Sinica 21:
3, 351-355.
62
IX.
ANEXOS
Cuadro 1. Análisis de varianza para altura de planta de chile habanero.
FUENTE
SC
GL
MC
F
P
EFECTOS PRINCIPALES
A: Tratamientos
B: Bloques
2038.13
226.875
3
7
679.375
32.4107
33.74
1.61
0.0000
0.1874
RESIDUAL
422.875
21
20.1369
TOTAL
2687.88
31
La prueba resulta ser significativa, existen diferencias estadísticas
significativas entre tratamientos a un nivel de 95 % de confianza.
Cuadro 2. Análisis de varianza para diámetro de tallo de chile habanero.
FUENTE
SC
GL
MC
F
P
EFECTOS PRINCIPALES
A: Tratamientos
B: Bloques
139.094
16.2187
3
7
46.3646
2.31696
8.84
0.44
0.0006
0.8646
RESIDUAL
110.156
21
5.24554
TOTAL
265.469
31
La prueba resulta ser significativa, existen diferencias estadísticas
significativas entre tratamientos a un nivel de 95 % de confianza.
63
Cuadro 3. Análisis de varianza para número de frutos por planta de chile
habanero
FUENTE
SC
GL
MC
F
P
EFECTOS PRINCIPALES
A: Tratamientos
B: Bloques
15976.8
6176.97
3
7
5325.61
882.424
6.75
1.12
0.0023
0.3885
RESIDUAL
16569.4
21
789.019
TOTAL
38723.2
31
La
prueba
resulta
ser
altamente
significativa,
existen
diferencias
estadísticas entre tratamientos a un nivel de 95 % de confianza
Cuadro 4. Análisis de varianza para rendimiento por planta de chile habanero
FUENTE
SC
GL
MC
F
P
EFECTOS PRINCIPALES
A: Tratamientos
B: Bloques
0.6024
0.2695
3
7
0.20082
0.38501
7.25
1.39
0.0016
0.2607
RESIDUAL
0.5016
21
0.02769
TOTAL
1.45363
31
La
prueba
resulta
ser
altamente
significativa,
existen
diferencias
estadísticas entre tratamientos a un nivel de 95 % de confianza
64
Cuadro 5. Análisis de varianza para rendimiento por hectárea de chile habanero.
FUENTE
SC
GL
MC
F
P
EFECTOS PRINCIPALES
A: Tratamientos
B: Bloques
261.952
117.094
3
7
87.3173
16.0126
7.27
1.39
0.0016
0.2599
RESIDUAL
252.265
21
12.0126
TOTAL
631.311
31
La prueba resulta ser significativa, existen diferencias estadísticas entre
tratamientos a un nivel de 95 % de confianza
Cuadro 6. Análisis de varianza para rendimiento de fruto de primera de chile
habanero.
FUENTE
SC
GL
MC
F
P
EFECTOS PRINCIPALES
A: Tratamientos
B: Bloques
7.4344
13.424
3
7
2.4781
1.9177
1.61
1.25
0.2160
0.3213
RESIDUAL
32.2313
21
1.5348
TOTAL
53.0897
31
No existe diferencia significativa, entre los tratamientos a un nivel de 95 %
de confianza.
65
Cuadro 7. Análisis de varianza para rendimiento de fruto de segunda de chile
habanero
FUENTE
SC
GL
MC
F
P
EFECTOS PRINCIPALES
A: Tratamientos
B: Bloques
43.3538
23.4377
3
7
14.4513
3.3483
4.89
1.13
0.0099
0.3805
RESIDUAL
62.0684
21
2.9556
TOTAL
128.8600
31
La prueba resulta ser significativa, existen diferencias estadísticas
significativas entre tratamientos a un nivel de 95 % de confianza.
Cuadro 8. Análisis de varianza para rendimiento de fruto de tercera de chile
habanero.
FUENTE
SC
GL
MC
F
P
EFECTOS PRINCIPALES
A: Tratamientos
B: Bloques
113.792
32.974
3
7
37.9306
4.7106
8.19
1.02
0.0008
0.4483
RESIDUAL
97.3148
21
4.6340
TOTAL
244.081
31
La prueba resulta ser significativa, existen diferencias estadísticas
significativas entre tratamientos a un nivel de 95 % de confianza.
66