II Congreso Latinoamericano de Especialistas en Pequeños Rumiantes y Camélidos Sudamericanos XI Congreso Nacional de Producción Ovina BIOTECNOLOGÍA REPRODUCTIVA EN NUESTRO FUTURO INMEDIATO Hernán Baldassarre, DVM Nexia Biotechnologies Inc., Ste. Anne de Bellevue, Québec, Canada El presente manuscrito discutirá el “estado del arte” en la aplicación de las –así llamadasBiotecnologías de Reproducción Asistida de ultima generación a la producción ovina y caprina. Dichas técnicas han sido desarrolladas o adaptadas al uso en ovejas y cabras, donde se obtienen hoy resultados comparables a aquellos obtenidos en las especies que son objetivo primario del desarrollo (generalmente bovinos). Los aspectos técnicos y resultados obtenidos serán motivo de extenso tratamiento, pero es también un importante objetivo de esta presentación la evaluación de las aplicaciones concretas (actuales y potenciales) para utilización de estas técnicas a la producción pecuaria, con especial interés en los pequeños rumiantes domésticos. 1. PRODUCCIÓN DE EMBRIONES IN VITRO: La In Vitro Producción de embriones (IVP) tiene la capacidad potencial de producir mayor cantidad de hijos de hembras sobresalientes que la Ovulación Múltiple y Transferencia Embrionaria (MOET). La naturaleza laparoscopica de la técnica de recuperación de óvulos permite repetir el procedimiento en la misma donante mayor cantidad de veces que la recuperación de embriones por lavaje uterino, que es un procedimiento quirúrgico que deja secuelas (adherencias) que limitan su repetibilidad en el mismo animal. Por otro lado, la IVP permite producir progenie a partir de animales de alto valor en circunstancias en las que la MOET no es posible, como es el caso de animales prepuberes, seniles, gestantes y postmortem. Esta técnica involucra al menos 4 etapas que son la recolección de ovocitos, la In Vitro Maduración (IVM), la In Vitro Fertilización (IVF) y el In Vitro Cultivo (IVC) hasta estadio de desarrollo compatible con transferencia al útero de una receptora. 1.a. Recolección de ovocitos: Si bien la IVP de embriones puede realizarse a partir de ovocitos recuperados de ovarios de matadero, la mayoría de las aplicaciones practicas que describiremos requieren que los óvulos provengan de animales de alto valor económico o de historia sanitaria conocida (e impecable). En consecuencia, dichas aplicaciones requieren la utilización de una técnica de recolección efectiva y eficiente para la obtención de óvulos procedentes de animales vivos. En este sentido, los mejores resultados se obtienen aplicando la técnica de recuperación de óvulos por aspiración laparoscopica (folículocentesis laparoscopica). Snider y Dukelow (58) reportaron la colecta laparoscopica de ovocitos ovinos por primera vez en 1974. Sin embargo, la técnica fue desarrollada casi 20 años mas tarde al mismo tiempo por el grupo de Robin Tervit en Nueva Zelanda (56,60,61, 62, 63) y nuestro grupo en Argentina (1,2,3,4), ambos trabajando con ovinos. El procedimiento se realiza bajo anestesia general, y requiere por tanto que los animales estén en ayuno sólido y líquido no menor de 24 h. Los animales se colocan en una típica camilla de laparoscopia que permite colocarlos en un plano inclinado de aproximadamente 45° con respecto al piso. La técnica de recolección es relativamente sencilla para el operador habituado a trabajar con laparoscopía. Brevemente, bajo II Congreso Latinoamericano de Especialistas en Pequeños Rumiantes y Camélidos Sudamericanos XI Congreso Nacional de Producción Ovina observación laparoscópica, los ovarios son expuestos levantando la fimbria con un fórceps atraumático, y los folículos son aspirados utilizando una aguja 20G de bisel corto montada en la punta de una pipeta plástica (tipo IA) conectada a un tubo de recolección y una línea de vacío. Cada 5-10 folículos punzados, la pipeta y tubuladura se enjuagan en medio de recolección, compuesto por TCM 199 suplementado con 0.05 mg/ml de heparina, 100 UI/ml de penicilina, 1 mg/ml de estreptomicina, 0.5 mg/ml de kanamicina, y 0.5% (p/v) de albúmina bovina sérica (fracción V). Respecto de las hembras donantes, las mismas pueden no tener ningún tratamiento hormonal en cuyo caso trabajaremos sobre una población folicular aleatoria y eventualmente pequeña (59), o bien podemos sincronizarlas a base de progestagenos (esponjas/CIDR) y estimularlas con gonadotropinas a los efectos de trabajar sobre una mayor población folicular (1,2,3,4,27,28,39,53,56,60,61,62,63,64). Los datos que siguen a continuación, resumen los resultados de recuperación laparoscopica publicados por diferentes grupos trabajando con ovejas y cabras. Tabla 1: Resultados de aspiración folicular y recuperación de ovocitos publicados en ovinos y caprinos. Especie Ovina Ovina Ovina Ovina Ovina Ovina # de donantes 18 40 64 27 46 Ovina 142 Ovina (pp) 44 Caprina 15 Caprina 16 Caprina 27 Caprina (pp) 23 Caprina 21 Caprina 60 (pp)=animales prepuberes TFA/donant TOR/donant %Rec. Autor (año) e e 5.3 – 6.9 1.6 – 2.7 35% Tervit y col. (1992) 10.4 5.2 50% Tervit y col. (1993) 14.7 8 54% Smith y col. (1994) 12.6 5.9 49% Tervit y col. (1995) 13.9 11.1 80% Baldassarre y col (1994ª) 12.5 10.2 82% Baldassarre y col (1994b) 13.6 10.7 79% Baldassarre y col (1995) 19.4 9.6 49% Rodríguez y col. (2000) 14.1 9.7 69% Terzano y col. (1999) 16.1 11.5 71% Graff y col (1995) 20 14.4 72% Graff y col (1999) 39 28.4 73% Koeman y col (2000) 19 15.9 84% Koeman y col (2000) 18.5 14.8 80% Baldassarre y col (2001) Diversos factores afectan el numero de folículos disponibles para aspiración y el número y calidad de los óvulos recuperados. En primer lugar tenemos el tratamiento de sincronización / superovulación empleado: trabajando con ovejas, hemos encontrado resultados equivalentes cuando comparamos un protocolo a base de múltiples inyecciones de FSH vs. un régimen que combina FSH y PMSG en una sola inyección (OS = one shot) 36-48h antes II Congreso Latinoamericano de Especialistas en Pequeños Rumiantes y Camélidos Sudamericanos XI Congreso Nacional de Producción Ovina de la aspiración folicular (Tabla 2). Similares resultados fueron obtenidos por Rodríguez y col. (1999) trabajando con corderos y por nuestro grupo en Canadá trabajando con cabras (Baldassarre y col., no publicados). En consecuencia, de rutina utilizamos el protocolo que combina FSH-PMSG en una sola inyección 36h antes de la recolección de óvulos. Tabla 2: Resultados comparativos entre diferentes tratamientos hormonales a nivel del total de folículos aspirados (TFA), total de ovocitos recuperados (TOR) y porcentaje de recuperación (%Rec.) en ovejas. Baldassarre y col. (1998) Protocolo # de ovejas TFA TFA/oveja TOR TOR/oveja Multiple FSH 73 1075 14.7±5.4 871 11.9±4.9 24 OS 38 475 12.5±5.3 369 9.7±3.7 OS-eCG24 31 390 12.6±5.2 282 9.1±5.2 48 OS-eCG 70 961 13.7±5.9 806 11.5±6.2 Resultados en la misma columna no son diferentes (P>0.05, ANOVA) %Rec. 81.0±5.6 77.4±10.3 72.2±5.2 83.9±15.2 Otro factor muy importante es la presión de vacío ya que debe ser suficiente para aspirar el contenido del folículo, pero no demasiada ya que haría que los óvulos pierdan sus cubiertas celulares (cúmulus). Durante el desarrollo de la técnica, llegamos a la conclusión de que la presión ideal es de entre 50 y 75 mmHg. Trabajos iniciales en bovinos con ovarios de matadero demostraron que los ovocitos con pocas cubiertas celulares tienen menores chances de desarrollo luego de IVM/IVF. Sin embargo, trabajando con ovocitos ovinos recuperados por laparoscopia, nuestro grupo no encontró diferencias en el desarrollo In Vitro de los embriones derivados de ovocitos de grado 1 (cúmulus compacto / completo) y grado 2 (1-3 capas celulares). Tabla 3: Resultados comparativos en el desarrollo hasta blastocistos luego de la IVM/F/C de ovocitos de grado 1 y 2 recuperados por laparoscopia (Baldassarre y col, 1998) Evaluados G1 G2 273 238 Madurados Fertilizados Blastocistos G1 G2 G1 G2 G1 G2 258 (94%) 234 (98%) 197 (72%) 180 (76%) 94 (34%) 75 (31%) De particular interés es la repuesta obtenida en animales jóvenes. Por mecanismos que no son del todo conocidos, corderos y cabritos prepuberes son capaces de responder a estimulo gonadotropico en forma exagerada, ofreciendo significativamente mayor numero de folículos para la aspiración de óvulos(19,20,21,39,40,52,53). Este fenómeno es particularmente evidente en animales de entre 45-60 días de edad y se va perdiendo (disminuyendo) a medida que el animal crece (20-21). Earl y col. (1995) reportaron cantidades superiores a los 100 ovocitos recuperados por laparotomía de corderos de 6-7 semanas de vida. Contrariamente a lo reportado en terneros, estos ovocitos tuvieron luego una buena tasa de desarrollo In Vitro y los autores sugirieron que la tecnología permitiría producir alrededor de 25 crías a partir de cada cordero donante. La alta recuperación por laparotomía (86/donante) II Congreso Latinoamericano de Especialistas en Pequeños Rumiantes y Camélidos Sudamericanos XI Congreso Nacional de Producción Ovina y una aceptable tasa de desarrollo in vitro de ovocitos procedentes de corderos de 4-6 semanas ha sido posteriormente confirmada por Ledda y col. (1999). En el caso de las cabras prepuberes, uno de los grupos más activos es la Universidad Autónoma de Barcelona. Sin embargo en sus trabajos los ovocitos provienen de ovarios de matadero en los que los cabritos no han sido estimulados hormonalmente por lo que la comparación es difícil (32,33,34,42). Trabajando con cabras prepuberes de 2 a 5 meses de edad, nuestro grupo publicó un trabajo de recuperación laparoscopica en el que el numero de folículos aspirados y ovocitos recuperados fue significativamente mayor que el de cabras adultas que actuaron como control (Tabla 4). Tabla 4: Aspiración laparoscopica de ovocitos en caprinos: Resultados comparativos entre cabras prepuberes y adultas. Extractado de Koeman y col. (2000) Edad # de animales Foliculos/donante Ovocitos/donant % Recuperación e Prepuberes 23 39.1±4.5a 28.4±3.5 a 73% a Adultas 21 19.1±1.4b 15.9±1.5 b 83% a Valores en la misma columna con distinto superíndice son diferentes (Anova P.0.05) En dicho estudio, el desarrollo In Vitro de los embriones procedentes ovocitos de cabras prepuberes y adultas fue similar aunque bajo, posiblemente producto de condiciones de cultivo suboptimas (8 y 14% respectivamente). Trabajos posteriores de nuestro equipo confirmarían que la capacidad de desarrollo de los ovocitos de cabras prepuberes luego de la IVM/IVF es aceptable (manuscrito en preparación). Por ultimo, un breve comentario sobre la recuperación de ovocitos por aspiración guiada por ultrasonografía. Si bien es el sistema de elección en vaquillonas y vacas adultas, los resultados obtenidos por Graff y col. (27,28) son bastante pobres comparados con los obtenidos por laparoscopia por ellos mismos (ovocitos recuperados, 11 vs 4.3/cabra). 1.b. In vitro maduración (IVM): El tubo conteniendo el liquido folicular aspirado es evaluado bajo stereomicroscopia y los complejos ovocito-cúmulus son pipeteados y transferidos a las placas con medio de maduración para comenzar la línea de IVP. En todos los casos, las incubaciones se realizan en microgotas de medio de cultivo bajo aceite de parafina, a 39ºT y en atmósfera de 7% O2, 5% CO2 y 88% N2 En el caso de los ovinos el medio de maduración es TCM199 suplementado con 10% suero fetal bovino y hormonas (10µg/ml oLH (ICP, Auckland, New Zealand; NIH-oLH-S1), 1 µg/ml pFSH (Schering, Omaha, NE, USA), y 1 µg/ml Estradiol 17ß (Sigma, USA). Un trabajo publicado por de Matos y col (18) sugiere que el agregado de cisteamina 200 µM en el medio de maduración de ovocitos ovinos tiene un efecto favorable en el desarrollo posterior de los embriones hasta estadio de blastocisto. En el caso de las cabras, utilizamos 10% suero caprino ya que estudios de Palacios y col (44) demuestran sugieren que el suero de cabra promueve una mejor maduración nuclear y adquisición de competencia meiotica y la incubación se realiza en atmósfera de 5% CO2 en aire. La duración de la IVM es 24 a 27h. II Congreso Latinoamericano de Especialistas en Pequeños Rumiantes y Camélidos Sudamericanos XI Congreso Nacional de Producción Ovina Utilizando estos medios, el porcentaje de maduración in vitro de ovocitos obtenidos por aspiración laparoscopica en ovejas y cabras estimuladas con gonadotropinas se encuentra en el orden del 80-90% (1,3,4,39,56,62). 1.c. In vitro Fertilización (IVF): En el caso de los ovinos, la misma se realiza en base a procedimientos ampliamente descriptos en la bibliografía (1,3,4,56,51,62). El medio base es el SOFM, que es el Synthetic Oviduct Fluid (SOF) descripto por Tervit y col. en 1972 con el agregado de 1 mM glutamina, 2% (v/v) aminoácidos esenciales (BME-essential, Sigma) y 1% (v/v) aminoácidos no esenciales (MEM-nonessential NEAA, Sigma). Para el caso de la fertilización, el SOFM se suplementa con 20% suero de oveja en estro, 20 µM penicilamina y 10 µM hipotaurina. Para su capacitación, el semen ovino / caprino fresco debe dejarse a oscuras y a temperatura ambiente por espacio de 2-3 horas. Luego se procede a enriquecer la muestra a través de un lavaje en gradiente discontinuo de Percoll (90:45). Los espermatozoides sedimentados son luego resuspendidos en Hepes-SOFM y vueltos a centrifugar, para finalmente realizar la cuenta en cámara y su suspensión definitiva en medio de fertilización a concentración de 5×106 espermas/ml , de la cual usaremos 10µl por “gota” en la placa de Petri. En el caso de los caprinos, se utilizan mas comúnmente los medios DM y TALP y la solución de espermatozoides requiere ser incubada en presencia de “agentes capacitantes” tales como heparina (42,45), heparina + cafeína (65,66) ionóforo de calcio (38), lactato de calcio (16) antes de “inseminar” las gotas conteniendo los ovocitos. En líneas generales podemos decir que la obtención de buenos resultados de fertilización (~70%) es un poco mas difícil en los caprinos donde requiere habitualmente un tiempo encontrar la relación ideal entre la concentración de los agentes capacitantes y el tiempo de incubación compatible con alta tasa de fertilización, baja tasa de poliespermia y alta tasa de desarrollo embrionario. 1.d. In vitro Cultivo (IVC): Si bien pueden encontrarse en la literatura cientos de trabajos empleando co-cultivo con células somáticas y/o medios conteniendo altos porcentajes de suero, los trabajos en los que los embriones fueron transferidos muestran que para obtener buenas tasas de viabilidad post transferencia, buenas tasas de viabilidad post-congelamiento y mínima incidencia de síndromes de cordero / cabrito grande, la IVC debe realizarse en ausencia de suero. Trabajando con ovinos, excelentes resultados han sido obtenidos cultivando los embriones en medio SOFM suplementado con 8mg/ml de FAF-BSA (3,4,25,40,51,52,62,63.) La Tabla 5 resume los mejores resultados en la literatura utilizando medios de cultivo sin suero. Tabla 5 : Desarrollo hasta estadio de blastocisto en embriones IVP cultivados en medios sin suero luego de la IVM e IVF. Especie Medio Blastocist (%) %Gest. %Crias Autor (año) Ovina SOFM-BSA 31% 55% 55% Tervit y col. (1992) Ovina SOFM-BSA 20% 41% 38% Baldassarre y col (1996)* Ovina SOFM-BSA 30% 59% 41% Ptak y col (1999) Los resultados de preñez y parición fueron reportados por Martínez y col (1997) II Congreso Latinoamericano de Especialistas en Pequeños Rumiantes y Camélidos Sudamericanos XI Congreso Nacional de Producción Ovina En el caso de los embriones caprinos, existe un menor volumen de información incluyendo transferencias y congelamiento de embriones producidos in vitro, pero la mayoría de los autores utilizan medios conteniendo suero y/o co-cultivo con células somáticas (10, 15, 16, 41, 45, 48,49, 65, 66), . 2. TRANSGENESIS: La posibilidad de modificar el genoma de un animal a través de la introducción de un fragmento de DNA que no le es propio, es uno de los logros mas interesantes de la biotecnología reproductiva en los últimos años (43,50,67,68). Este fragmento de DNA, el “transgen”, codificara la producción de una proteína determinando una nueva función orgánica o modificando una existente según el caso. Si bien las aplicaciones como veremos mas adelante son múltiples, debido a limitaciones actuales de la tecnología la misma esta siendo utilizada solamente en aquellas aplicaciones de muy alta rentabilidad, lo que se reduce prácticamente a la producción de proteínas de interés medico y farmacéutico utilizando la glándula mamaria de animales transgénicos como birreactor (50). En este sentido, la glándula mamaria tiene un potencial fabuloso ya que ha sido estimado que tiene una capacidad para producir hasta 40g de proteína por litro de leche. Es por ello que la producción de proteínas en animales transgénicos resulta siendo mucho mas eficiente que los sistemas tradicionales a base de bacterias y hongos que son primitivos y no pueden sintetizar proteínas complejas, o el caso de los cultivos celulares que son extremadamente costosos y de baja eficiencia. Tradicionalmente, la producción de animales transgénicos se realiza por medio de la microinyección de DNA a ovocitos fertilizados en estadio de pronúcleos (30). El procedimiento en si mismo es relativamente sencillo cuando se cuenta con el equipamiento y entrenamiento necesario y confiable como sistema de producción de transgénicos. Sin embargo, es característico de observar bajas tasas de integración (1-10%), integración al azar (con la consiguiente variabilidad en los resultados de expresión dependiendo de la posición y numero de copias) y alta proporción de mosaicismo (determinando variabilidad en la heredabilidad del transgen cuando el animal es reproducido). Para ejemplificar la ineficiencia general del sistema, veamos los resultados que obtuvimos la producción de cabras transgénicas para htPA (activador tisular de plasminógeno humano) por microinyección de zigotas en estado de pronúcleos (5). En este trabajo, zigotas en estadio de pronúcleos fueron recolectadas de cabras superovuladas e inseminadas. La recolección se realizo por laparotomía mediana seguida de un lavaje de oviducto. Un importante factor para el éxito de este tipo de programa es la correcta sincronización de ovulación en las donantes, para asegurar que huevos recuperados se encuentren en un periodo de 15-20h post-fertilización, la cual se logra a través del uso de una inyección de GnRH a las 36h de retirada la esponja de sincronización (6). II Congreso Latinoamericano de Especialistas en Pequeños Rumiantes y Camélidos Sudamericanos XI Congreso Nacional de Producción Ovina Cabras superovuladas: Cabras colectadas: Ovulaciones: Huevos recuperados: Zigotas aptas para microinyección: Zigotas microinyectadas y transferidas: Receptoras transferidas: Receptoras preñadas: Receptoras a termino: Cabritos nacidos: Cabritos transgénicos: 118 83 981 774 540 487 134 69 51 86 4 (70%) (11.8/cabra colectada) (9.3.cabra colectada) (6.5/cabra colectada) (5.9/cabra colectada) (3.6 embriones/receptora) (51%) (1.7/receptora; 17% de los embriones) (2M:2H; 4.6% transgénesis; ~1% emb.) Ambas hembras produjeron htPA en su leche pero la bioactividad y concentración en leche fue superior en una de ellas (~ 5g/litro) ejemplificando quizás la variabilidad del resultado motivada por integración al azar. Ambas hembras parieron mellizos (2 hembras y 2 machos respectivamente) de los cuales ninguno fue transgénico sugiriendo los efectos del mosaicismo en la heredabilidad del carácter. Asimismo, la presencia del transgen en la población de espermatozoides fue estudiada en ambos machos usando FISH (Fluorescent In Situ Hybridization). Los resultados mostraron una gran diferencia entre ambos a nivel del porcentaje de espermas conteniendo el transgen (70% vs 20%). Cuando el mejor de los machos fue utilizado por inseminación artificial para generar el rodeo productor de htPA, 28/54 cabritos nacidos resultaron transgénicos confirmando que el FISH es un buen test para estimar la potencial transmisión vertical del transgen (7). Si bien estos resultados exponen la ineficiencia general del sistema, debemos decir también que el htPA tiene un valor (dependiendo del mercado) del orden de los U$S 20.000 por gramo (1 dosis = 100 mg.). Por lo tanto podemos decir que es una actividad extremadamente rentable que justifica los enorme costos. Múltiples estrategias han intentado mejorar la ineficiencia de la microinyección de pronúcleos como mecanismo de producir animales transgénicos. Estas estrategias incluyen la transferencia de DNA mediada por espermatozoides –resumido por Squires en 1999-(57); ICSI utilizando espermatozoides transgénicos (46), la utilización de retroviruses para inyectar / infectar ovocitos y embriones (31) y la utilización de la tecnología de Transferencia Nuclear (clonación) a base de células transgénicas (9, 35, 54). De todas ellas, la que ofrece una mejor perspectivas es la clonación a base de células transfectadas in vitro con el DNA de interés. En cuanto a las aplicaciones posibles esta tecnología, las mismas son de lo mas variadas. La mas concreta y corriente es el uso de los animales como biorreactores para la producción de proteínas recombinantes de interés farmacéutico. Ejemplos en los que la especie en uso es un pequeño rumiante incluyen el citado htPA (5, 7, 22, 23); Factor de coagulación humano VIII y IX (12,29,54); α-1 Anti-tripsina humana (55, 71.), Anti-trombina III (23,24) y anticuerpos monoclonales (26). En líneas generales podemos decir que dependiendo del tamaño del mercado, las cabras (y en menor medida las ovejas) ofrecen un excelente II Congreso Latinoamericano de Especialistas en Pequeños Rumiantes y Camélidos Sudamericanos XI Congreso Nacional de Producción Ovina modelo para la producción de fármaco-proteínas en la leche de animales transgénicos, ya que la producción de fundadores y los costos operativos son significativamente inferiores con respecto a los bovinos (23). En un estudio hecho por Wall y col. en 1992 se estimo que el costo de producir una vaca transgénica era U$S 546.000 mientras que una oveja / cabra transgénica era U$S 60.000. Estas cifras confirman un importante rol para los pequeños rumiantes en la industria de referencia. Otro interesante ejemplo de los alcances que puede tener la tecnología, es el caso de la producción de Biosteel(BioAcero) que es la proteína de la “tela de araña” producida en la leche de cabras transgénicas. En este caso, la proteína producida en la leche de nuestras cabras transgénicas es hilada para producir una fibra que será posteriormente utilizada para aplicaciones de lo mas variadas, incluyendo aplicaciones medicas (suturas, ligamentos prostéticos) e industriales (redes de pesca, chalecos antibala, etc.) . En cuanto a los usos de la tecnología con miras a aumentar la producción pecuaria, la misma tendrá que aumentar la eficiencia y abaratarse antes de que podamos ver aplicaciones practicas en este campo. Sin embargo algunas aplicaciones concretas ya han sido insinuadas o probadas en pequeña escala. Estas aplicaciones incluyen la modificación de la composición de la leche (mas proteína para mejorar el rinde en la producción de quesos; menos lactosa para el mercado de las personas que no pueden digerir este azúcar, etc.); resistencia a las enfermedades por ejemplo producción de “lysostaphin” (stafilo-lisina) en la leche para generar resistencia a las mastitis S. Aureus (37); mejoras en la producción de carne a través de la modificación de los perfiles de crecimiento trabajando con cassettes de hormona de crecimiento (resumido por Wall, 1996) y en la producción de lana , por ejemplo a través de la expresión de factores de crecimiento en el folículo lanoso (17). 3. CLONACION : La habilidad de poder re-programar el núcleo de una célula diferenciada y luego utilizarlo para generar individuos idénticos es un desarrollo que sin duda marcara el futuro de la producción pecuaria. La demostración física de este concepto –Dolly- ha puesto a la biotecnología de reproducción y a las ovejas en la tapa de todos los diarios y revistas del mundo en forma casi cotidiana desde que su existencia fuera comunicada por Wilmut y col. en Febrero de 1997 (11, 70). Poco tiempo después, la técnica ha sido utilizada con éxito para producir otras mas clones de oveja (69) y otras especies domesticas incluyendo vacas (13), cabras (9, 35,36) y, mas recientemente, cerdos (47). A casi cinco años del nacimiento de Dolly, la tecnología básica para producir clones por transferencia nuclear (TN) permanece la misma. El citoplasma receptor son básicamente ovocitos en estadio de Metafase II los cuales son enucleados por aspiración con una micropipeta. En cuanto a las células donantes, en la técnica original descripta por Wilmut y col., las mismas deben ser inducidas a salir del ciclo celular (G0) por medio de su cultivo en medios pobres en suero (serum starvation). Así cultivadas, las células entran en un estadio de reposo (quiescencia) en el que la cromatina nuclear seria mas fácil de ser re-programada por el citoplasma receptor. Dicho estadio también puede ser inducido por cultivo de las células hasta confluencia, en este caso la quiescencia es el resultado de “inhibición por contacto”. Cibelli y col. (13) han reportado también la producción exitosa de clones a partir de células ciclando, sugiriendo que el estadio de quiescencia no seria esencial, lo cual ha producido cierto debate ya que en todo grupo de células ciclando siempre hay una II Congreso Latinoamericano de Especialistas en Pequeños Rumiantes y Camélidos Sudamericanos XI Congreso Nacional de Producción Ovina subpoblación de células en G0. La forma mas frecuente de realizarla TN es fusionando la célula donante y el citoplasma receptor por medio de pulsos eléctricos. Detalles de estos procedimientos han sido cubiertos ampliamente en publicaciones anteriores (9, 11, 13, 35, 36,54, 70). Factores a tener en cuenta en le estrategia de un programa de TN: • • • Citoplasma receptor: Mientras que todos los trabajos reportados en bovino utilizan ovocitos de matadero y la vasta mayoría de los trabajos en ovejas y cabras se basan en ovocitos madurados in vivo recuperados por lavaje de oviducto, nuestro sistema se basa en la utilización de ovocitos inmaduros recuperados por aspiración laparoscopica. Esta característica nos permite garantizar salud animal en el origen de dichos óvulos y, al mismo tiempo, prolongar la vida útil de estas donantes comparado con el limitado uso que permite el lavaje de oviductos. Tipo celular: Dependiendo del objetivo del trabajo, las líneas celulares pueden ser no transgénicas (fetales-adultas), de un animal transgénico (feto o adulto) o líneas transfectadas en cultivo (fetales-adultas) Cultivo posterior a la TN: Casi todos los trabajos de clonación en bovinos y ovinos describen el cultivo de los embriones “reconstruidos” hasta estadio de blastocisto antes de ser transferidos al útero de una hembra receptora. Curiosamente, los 2 grupos que trabajamos en cabras hemos preferido transferir los embriones al oviducto de cabras receptoras 24-48h post TN. Este hecho se vuelve muy interesante ya que los resultados publicados parecen sugerir que la incidencia de anormalidades que desencadenan en perdidas de preñez y de crías post-parto son muy superiores en clones ovinos y bovinos. Algunas de estos problemas (anormalidades placentarias, síndrome ternero grande, etc.) parecen ser compartidos con los embriones producidos in vitro, particularmente cuando los embriones han sido cultivados en medios conteniendo suero. Esto podría sugerir que las menores perdidas reportadas en la producción de cabras por TN se deben (al menos parcialmente) al hecho de que se evita el cultivo in vitro por tiempo prolongado. Los resultados que se muestran a continuación reflejan el grado de eficiencia de la técnica de TN en nuestras manos, aplicado a la producción de cabras (35-36) Tipo Celular Ovocitos procesados Ovocito madurados (%IVM) Resultados de fusion nuclear Embriones transferidos Receptoras preñadas/transferidas Crías nacidas Crías sobrevivieron Fetales Adultas Transfectadas TOTAL ========================= 989 ========================= 784 (80%) ========================= 54 to 80% 124 97 13 234 5/14 4/8 1/2 10/24 (41%) 7 7 2 16 3 6 1 10 (62%) II Congreso Latinoamericano de Especialistas en Pequeños Rumiantes y Camélidos Sudamericanos XI Congreso Nacional de Producción Ovina El número de crías logradas respecto del numero de embriones trasferidos termina siendo semejante al obtenido por microinyección de pronúcleos (1-2%). La ventaja de la clonación en la producción de transgénicos es se requieren menos receptoras para lograr la misma cantidad de transgénicos ya que si utilizamos células transgénicas todos los individuos que nacen son transgénicos. En cuanto a las aplicaciones de la TN, las mismas pueden ser de lo mas variadas: a) Asociada a Transgénesis: definitivamente, la TN esta destinada a mejorar las ineficiencias de la producción de animales transgénicos (14,41). Las células pueden ser transfectadas y seleccionadas in vitro para asegurar que los individuos que nazcan serán transgénicos. Las células pueden ser además estudiadas en cuanto a numero de copias del transgen y posición en la que ha integrado antes de su transferencia, mejorando así las posibilidades de expresión. Mas aun, modernas herramientas de biología molecular podrán ser utilizadas para poder activar y desactivar genes y/o las secuencias que los controlan, mientras las células están en cultivo y previo a la transferencia. En este sentido, las aplicaciones son las antes descriptas para transgénesis pero con mayor eficiencia. b) Duplicado de animales de alto valor genético: En primera instancia, conservar células de un animal de alto valor servirá como póliza de seguro en caso de muerte. En este caso, la técnica ofrece mas sofisticación y garantías que el banco se semen o embriones. En una segunda instancia el clonado de individuos de superioridad probada permitirá expandir los limites de su uso en programas de IA y TE. c) Generación de individuos idénticos para la investigación: El experimento perfecto tendrá como controles a animales genéticamente idénticos a los que están recibiendo el tratamiento experimental. d) Transplante de órganos: En particular es una aplicación en la que los cerdos son vistos como la especie ideal, pero debe ser mencionado. 4. BALANCE Y CONCLUSIONES La aplicación en escala comercial de estas tecnologías esta necesariamente ligada a la ecuación costo beneficio. En este sentido, seguirá siendo difícil encontrar situaciones pecuarias de producción caprina y ovina en las que se justifique la necesaria inversión en laboratorios, personal, equipamiento y, en algunos casos, pago de licencias. La IVP de embriones está suficientemente desarrollada como para ofrecer una alternativa eficiente a la MOET convencional. En particular, en programas orientados a la introducción de nuevas razas puras a partir de un núcleo pequeño de hembras. La posibilidad de acortar los intervalos generacionales mediante el uso de donantes prepuberes puede también en este caso tener un valor muy importante. La limitante mas importante es la necesidad de tener un laboratorio fijo donde procesar los ovocitos recuperados de estas donantes, que II Congreso Latinoamericano de Especialistas en Pequeños Rumiantes y Camélidos Sudamericanos XI Congreso Nacional de Producción Ovina también puede ofrecer el servicio de producir embriones a partir de animales de alto valor que han perdido su fertilidad o de los ovarios de animales valiosos que han muerto. La tecnología de transgénesis (asociada o no a la de transferencia nuclear para la producción de los fundadores) ofrecerá un nicho de oportunidad a unos pocos productores lecheros con capacidad para adaptarse a trabajar bajo la alta rigurosidad sanitaria que exige la producción de proteínas de interés medico y farmacéutico. En este sentido, proteínas de uso industrial como nuestro Biosteelquizás tengan mas posibilidades de ofrecer en el futuro una mayor rentabilidad que la producción tradicional a los productores. Por ultimo, las aplicaciones específicamente pecuarias (mejoras en la producción, resistencia a enfermedades, etc.) requerirán primero una aumento de la eficiencia, una disminución de los costos y mejoras substanciales en los márgenes agropecuarios. Por ultimo, la tecnología de Transferencia Nuclear permitirá aumentar la eficiencia en la producción de animales transgénicos y expandir sus aplicaciones, así como también el duplicado de animales sobresalientes o de alto valor, mas allá de su propia vida. Para ello primero deberá superar un gran numero de problemas que afectan su eficiencia, en particular los problemas de mortalidad pre y peri-natal. En el caso de las aplicaciones terapéuticas de clones y transgénicos el gran fantasma seguirá siendo por un tiempo el poder demostrar las garantías que serán exigidas por los organismos de control (ej. FDA) a los efectos de autorizar la venta y distribución de estos productos. En estos casos esta invertida la carga de la prueba, y los productos son vistos como potencialmente nocivos y deben demostrar su inocuidad. Este proceso a veces puede ser imposible o tan costoso de demostrar que no vale la pena. Otro escollo a superar será la opinión publica cuya sensibilidad inicial es negativa por la habitual reacción a lo que no se entiende, pero también por el temor de que estas tecnologías puedan ser utilizadas en el futuro en personas con fines inapropiados. Por ultimo, el gran interés económico generado alrededor de la producción de animales transgénicos y clones impide la comunicación abierta entre los diferentes grupos trabajando en el área, lo que hace que los progresos puedan ser mas lentos. Al mismo tiempo, los desarrollos resultan en patentes y luego, para aplicar la tecnología con fines comerciales, es necesario obtener licencias y pagar regalías, lo que puede tener un gran peso negativo a la hora de realizar la ecuación costo-beneficio. 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