EVALUACIÓN DE LA DIVERSIDAD GENÉTICA EN UNA COLECCIÓN DE GERMOPLASMA DE FRÍJOL COMÚN (Phaseolus vulgaris L.) DE RUANDA (ÁFRICA) LAURA FERNANDA GONZÁLEZ MARTÍNEZ PONTIFICIA UNIVERSIDAD JAVERIANA FACULTAD DE CIENCIAS CARRERA BIOLOGÍA Bogotá 18 de Febrero de 2008 EVALUACIÓN DE LA DIVERSIDAD GENÉTICA EN UNA COLECCIÓN DE GERMOPLASMA DE FRÍJOL COMÚN (Phaseolus vulgaris L.) DE RUANDA (ÁFRICA) LAURA FERNANDA GONZÁLEZ MARTÍNEZ TRABAJO DE GRADO Presentado como requisito parcial para optar al título de: BIÓLOGA PONTIFICIA UNIVERSIDAD JAVERIANA FACULTAD DE CIENCIAS CARRERA BIOLOGÍA Bogotá 18 de Febrero de 2008 ii Artículo 23 de la Resolución Nº 13 de Julio de 1946 “La Universidad no se hace responsable por los conceptos emitidos por sus alumnos en sus trabajos de tesis. Sólo velará por que no se publique nada contrario al dogma y a la moral católica y por que las tesis no contengan ataques personales contra persona alguna, antes bien se vea en ellas el anhelo de buscar la verdad y la justicia”. iii EVALUACIÓN DE LA DIVERSIDAD GENÉTICA EN UNA COLECCIÓN DE GERMOPLASMA DE FRÍJOL COMÚN (Phaseolus vulgaris L.) DE RUANDA (África). LAURA FERNANDA GONZÁLEZ MARTÍNEZ APROBADO _________________________ Matthew W. Blair, Ph.D Director ___________________________ María del Pilar Márquez, MSc. Codirectora _________________________ Manuel Ruíz García, Ph.D Jurado ________________________ Wilson Terán, Ph.D Jurado ii EVALUACIÓN DE LA DIVERSIDAD GENÉTICA EN UNA COLECCIÓN DE GERMOPLASMA DE FRÍJOL COMÚN (Phaseolus vulgaris L.) DE RUANDA (África). LAURA FERNANDA GONZÁLEZ MARTÍNEZ APROBADO ______________________ ANGELA UMAÑA Decana Académico _______________________ ANDREA FORERO Directora de Carrera iii Bogotá, 6 de Febrero 2008 Señores PONTIFICIA UNIVERSIDAD JAVERIANA Cuidad Estimados Señores: Yo Laura Fernanda González Martínez, identificada con C.C. No. 52966299 de Bogotá , autora del trabajo de grado titulado “Evaluación de la diversidad genética en una colección de germoplasma de fríjol común (Phaseolus vulgaris L.) de Ruanda (África)”, presentado como requisito para optar al título de Bióloga en el año de 2008; autorizo a la Pontificia Universidad Javeriana a: a) Reproducir el trabajo en medio digital o electrónico con el fin de ofrecerlo para la consulta en la Biblioteca General SI .. b) Poner a disposición para la consulta con fines académicos, en la página web de la Facultad, de la Biblioteca General y en redes de información con las cuales tenga convenio la Universidad Javeriana No . c) Enviar el trabajo en formato impreso o digital, en caso de que sea seleccionado para participar en concursos de trabajos de grado SI . d) Distribuir ejemplares de la obra, para la consulta entre las entidades educativas con las que la facultad tenga convenio de intercambio de información, para que este sea consultado en las bibliotecas y centros de documentación de las respectivas entidades SI EN TEXTO, NO EN DOCUMENTO ELECTRÓNICO .. e) Todos los usos, que tengan finalidad académica SI EN TEXTO, NO EN DOCUMENTO ELECTRÓNICO Los derechos morales sobre el trabajo son de los autores de conformidad con lo establecido en el artículo 30 de la Ley 23 de 1982 y el artículo 11 de la Decisión Andina 351 de 1993, los cuales son irrenunciables, imprescriptibles, inembargables e inalienables. Atendiendo lo anterior, siempre que se consulte la obra, mediante cita bibliográfica se debe dar crédito al trabajo y a su(s) autor(es). Este documento se firma, sin perjuicio de los acuerdos que el autor(es) pacte con la Unidad Académica referentes al uso de la obra o a los derechos de propiedad industrial que puedan surgir de la actividad académica. __________________________ Laura Fernanda González M C.C 52.966.299 iv FORMATO DESCRIPCIÓN TRABAJO DE GRADO AUTOR Apellidos: González Martínez Nombres: Laura Fernanda DIRECTOR Apellidos: Blair Nombres: Matthew W. ASESOR Apellidos: Márquez Nombres: María del Pilar TRABAJO PARA OPTAR POR EL TÍTULO DE: Bióloga TÍTULO COMPLETO DEL TRABAJO: Evaluación de la diversidad genética en una colección de germoplasma de fríjol común (Phaseolus vulgaris L.) de Ruanda (África). FACULTAD: Ciencias PROGRAMA: Carrera: Biología CIUDAD: Bogotá 2008 NÚMERO DE PÁGINAS: 130 TIPO DE ILUSTRACIONES: - Ilustraciones - Mapas - Tablas - Gráficos y diagramas DESCRIPTORES O PALABRAS CLAVES: Diversidad genética, Microsatélites, Fríjol común. v Dedico este trabajo a Dios, porque fueron sus manos las que lo elaboraron; por ser mi guía y mi fortaleza, por haber puesto los mejores regalos en mi camino. Al regalo mas hermoso que Dios me ha dado, Mi Familia, especialmente a mis padres, José y Julia y mis abuelitos Belén y Mardoqueo por su infinito anhelo por verme feliz siempre; por entregarme su sabiduría y sus consejos; y simplemente porque a ustedes les debo mi vida. Las lágrimas, el sacrificio y las mil risas que lleva este trabajo son dedicadas a ustedes por ser los artífices de la mujer que ahora soy. vi AGRADECIMIENTOS Al doctor Matthew Blair por esta magnífica oportunidad de dejarme hacer parte de su equipo de trabajo y por haber depositado su confianza en mi. A Tito Sandoval por su felicidad e inmensa entrega; por darme tanta tranquilidad y hacerme brotar una sonrisa cada día… por hacer esto parte de su vida. Gracias por ser mi ángel y mi fuerza durante esta travesía de la tesis. A Myriam Cristina Duque por su INCONDICIONAL apoyo en el desarrollo de la parte estadística y en general en la elaboración del documento; por sus consejos llenos de sabiduría y en especial por su amistad. A Héctor Fabio Buendía, por sus invaluables consejos y por el inmenso aporte de conocimientos académicos y de la vida. A Lucy Milena Díaz por su confianza y su esfuerzo depositados en este trabajo. A Natalia Moreno por la colaboración en todas las etapas de mi paso por CIAT. A Louis Butare por el inmenso aporte de conocimientos de Ruanda, por las apreciaciones hechas y sus buenos consejos; por su alegría y su apoyo. A los demás compañeros de laboratorio, Marcela, Asrat, Teshale, Juliana, Hernán, Carolina A, Carlos, Gina, Carolina Ch, Gloria, Alejandra, Aura, y Alejandro, por su compañía, sus risas y en especial por las oportunidades de crecimiento profesional y personal brindadas en el ambiente que compartimos. A los trabajadores del patio de fríjol, Don Luis, Alcides y en especial a Agobargo Hoyos por su paciencia y su ánimo en los momentos difíciles. A la doctora Ingrid Schuler y a María del Pilar Márquez por creer siempre en mí y por su ayuda para mi vinculación en el CIAT. A Piedad Medina y toda la familia por su inmenso apoyo emocional y porque en realidad me hicieron sentir parte de su hogar. A Clara Yalexy Delgado por brindarme su amistad sincera durante tantos años, por ser mi alegría y calma en los momentos más difíciles. A mis amigas Natalia Galindo, Andrea Barrera, Ivonne Salamanca, Martica Melo, Xamara Albarán y Luisa Castellanos, por su paciencia, alegría y compañía durante todos estos años. vii TABLA DE CONTENIDO 1 INTRODUCCIÓN ________________________________________ 3 2 MARCO TEÓRICO Y REVISIÓN DE LITERATURA_____________ 5 2.1 GENERALIDADES DEL FRÍJOL __________________________________________ 5 2.1.1 Características Taxonómicas y Botánicas _____________________________________ 5 2.1.2 Origen, distribución y domesticación ________________________________________ 7 2.1.3 Cultivo, producción y Usos _______________________________________________ 10 2.1.4 Composición Química y Calidad nutricional __________________________________ 11 2.1.4.1 Composición Química _______________________________________________ 11 2.1.4.2 Calidad Nutricional _________________________________________________ 11 2.2 SITUACIÓN DEL FRÍJOL EN ÁFRICA _____________________________________ 13 2.2.1 Generalidades Ruanda __________________________________________________ 15 2.2.2 Fríjol en Ruanda _______________________________________________________ 17 2.2.2.1 Producción y consumo ______________________________________________ 18 2.2.2.2 Problemática Nutricional ____________________________________________ 19 2.2.2.3 Estrategias para combatir la problemática nutricional _____________________ 21 2.2.3 Perspectivas del cultivo de Fríjol ___________________________________________ 23 2.3 DIVERSIDAD GENÉTICA Y ANALISIS MOLECULAR MEDIANTE MICROSATLITES __ 23 2.3.1 Marcadores Moleculares ________________________________________________ 23 2.3.2 Microsatélites analizados mediante fluorescencia y Análisis secuenciador automático 26 2.3.3 Estudios de diversidad genética en Fríjol común ______________________________ 27 2.3.4 Estudios de diversidad en fríjol Africano ____________________________________ 30 2.4 CUANTIFICACION DEL CONTENIDO DE MINERALES EN FRÍJOL ______________ 31 Cuantificación por Absorción Atómica (AA) __________________________________ 31 Estudios de cuantificación de minerales en Fríjol Común _______________________ 32 2.4.1 2.4.2 3 FORMULACIÓN DEL PROBLEMA ________________________ 34 3.1 FORMULACIÓN DEL PROBLEMA ______________________________________ 34 3.2 JUSTIFICACIÓN ____________________________________________________ 35 4 OBJETIVOS ___________________________________________ 37 4.1 Objetivo General __________________________________________________ 37 4.2 Objetivos Específicos _______________________________________________ 37 5 MATERIALES Y MÉTODOS ______________________________ 38 5.1 Población de Estudio _______________________________________________ 38 5.2 MÉTODOS ________________________________________________________ 40 viii 5.2.1 Procesamiento del material vegetal: _______________________________________ 40 5.2.1.1 Germinación de la semilla: ___________________________________________ 40 5.2.1.2 Procesamiento Post‐germinación _____________________________________ 40 5.2.2 Extracción y cuantificación de ADN ________________________________________ 41 5.2.3 Amplificación mediante PCR de microsatélites analizados con fluorescencia ________ 42 5.2.4 Análisis en secuenciador Analítico ABI 3730xl ________________________________ 44 5.2.5 Cuantificación de hierro y zinc ____________________________________________ 46 5.2.6 Identificación de características de grano ___________________________________ 46 5.3 ANÁLISIS DE DATOS ________________________________________________ 47 5.3.1 Análisis de Diversidad Genética ___________________________________________ 47 5.3.1.1 Parámetros de uso común de diversidad para población total _______________ 48 5.3.1.2 Parámetros de uso común de diversidad para grupos formados a partir de PCoA 49 5.3.1.3 Coeficiente de similaridad ___________________________________________ 49 5.3.2 Análisis de cuantificación de minerales _____________________________________ 50 5.3.3 Características morfológicas ______________________________________________ 51 6 RESULTADOS ________________________________________ 52 6.1 ANÁLISIS DE DIVERSIDAD GENÉTICA ___________________________________ 52 6.1.1 Diversidad Genética y estructura Poblacional ________________________________ 52 6.1.1.1 Determinación de alelos ____________________________________________ 52 6.1.1.2 Población Total ____________________________________________________ 53 6.1.1.3 Análisis de Ordenación ______________________________________________ 56 6.1.1.4 Grupos definidos mediante PCoA _____________________________________ 64 6.1.2 Posibles eventos de introgresión entre acervos _______________________________ 65 6.1.3 Agrupación mediante índice de disimilaridad ________________________________ 69 6.2 ANÁLISIS DE MINERALES ____________________________________________ 71 Contenido de minerales en semilla de fríjol __________________________________ 71 Asociación contenido de minerales y estructura genética _______________________ 74 6.2.1 6.2.2 6.3 7 CARACTERISTICAS DEL GRANO DE FRÍJOL ______________________________ 76 DISCUSIÓN DE RESULTADOS ___________________________ 79 7.1 ANÁLISIS DE DIVERSIDAD GENÉTICA ___________________________________ 79 7.1.1 Población Total ________________________________________________________ 79 7.1.2 Grupos definidos mediante PCoA __________________________________________ 83 7.1.3 Agrupación mediante índice de disimilaridad ________________________________ 85 7.1.4 Posibles eventos de introgresión en la población estudiada _____________________ 86 7.2 ANÁLISIS DE MINERALES ____________________________________________ 87 8 CONCLUSIONES ______________________________________ 90 9 RECOMENDACIONES Y PERSPECTIVAS __________________ 92 10 ANEXOS ____________________________________________ 100 ix INDICE DE TABLAS Tabla 1. Contenido nutricional de semilla de fríjol. Contenido total en semilla y por 100g de semilla (Geil y Anderson, 1994 En: (Sandoval, 2006)..........................12 Tabla 2. Áreas de producción de Fríjol en 20 países de África, modificado de “Atlas of common bean production in Africa” (Wortmann et al, 1998). .........................15 Tabla 3. Comparación de los indicadores poblacionales y económicos de Ruanda y África Sub-Sahariana (ISAR, 2000). ..................................................................17 Tabla 4. Concentraciones de Hierro, Zinc y proteína en cultivares producidos en África Oriental, Central y del sur (CIAT, 2005a) .................................................22 Tabla 5. Controles Diversidad utilizados en este estudio con su respectivo origen (acervo al que pertenecen) ................................................................................39 Tabla 6. Marcadores microsatélite fluorescentes utilizados en la caracterización de la diversidad genética de 355 genotipos de una colección de germoplasma de Ruanda. ..............................................................................................................42 Tabla 7. Reactivos necesarios para coctel PCR, condiciones necesarias y concentraciones originales (stock). ....................................................................43 Tabla 8. Parámetros de descripción para características de la semilla de fríjol; basado en el catalogo de líneas avanzadas. .....................................................47 Tabla 9. Rango de valores medidos en ppm para interpretación de resultados de cuantificación de minerales (hierro y zinc). ........................................................50 Tabla 10. No de Alelos, Diversidad Genética y Heterocigocidad observada de los 30 microsatélites (16 Genómicos y 14 Génicos) utilizados en este estudio. ..........54 Tabla 11. Prueba t para comparar parámetros de diversidad (Heterocigocidad Observada y Diversidad Genética) entre marcadores genómicos y génicos.....56 Tabla 12. Descriptores de diversidad para 6 grupos definidos por PCoA. ................64 x Tabla 13. Descriptores de diversidad (Número de alelos y Diversidad genética de Nei) para 30 loci SSR en población definida a partir de PCoA. .........................65 Tabla 14. Análisis de los parámetros de diversidad (Número de alelos y Diversidad genética de Nei) para 7 grupos formados incluyendo el nuevo grupo considerado como introgresado (Mesi-Intro)......................................................68 Tabla 15. Estadística descriptiva para contenido de (ppm) de hierro y zinc en 355 accesiones de frijol provenientes de Ruanda.....................................................71 Tabla 16. Estadística descriptiva para contenido en ppm de hierro y zinc en las poblaciones generadas mediante PCoA. ...........................................................75 xi INDICE DE FIGURAS Figura 1. Mapa de Ruanda, organización política (UnitedNations, 2007) .................16 Figura 2. Producción anual, en Toneladas, de Fríjol en Ruanda (Musoni, 2006) .....19 Figura 3. Sistema de flujo de la información obtenida a partir del archivo de la muestra dentro del software de auto-análisis. Modificado de (Joe et al., 2004). ...........................................................................................................................27 Figura 4. Localización geográfica de Ruanda en el continente Africano...................38 Figura 5. Diagrama del procedimiento que sigue la muestra a analizar (líneas azules gruesas señalan cada paso). Modificado de (Joe et al., 2004). .........................45 Figura 6. Electroferograma obtenido a partir del análisis por ABI 3730xl y generado por el software GeneMapper v.3.7. ....................................................................52 Figura 7. Electroferograma obtenido a partir del análisis por secuenciador ABI 3730xl y generado por software GeneMapper v.3.7. .........................................53 Figura 8. Representación gráfica en tres dimensiones de la distribución y ubicación espacial de los genotipos de Ruanda a partir del Análisis de Coordenadas Principales (PCoA), teniendo en primer plano horizontal la dimensión 2. .........57 Figura 9. Representación gráfica en tres dimensiones de la distribución y ubicación espacial de los genotipos de Ruanda a partir del Análisis de Coordenadas Principales (PCoA), teniendo en primer plano horizontal las dimensiones 1 y 2 ...........................................................................................................................58 Figura 10. Individuos considerados como raros a partir del análisis de coordenadas principales. .........................................................................................................59 Figura 11. Dendrograma de acervos genéticos obtenido por distancia euclidiana aplicada a coordenadas obtenidas por PCoA. ...................................................60 Figura 12A. Dendrograma de acervos genéticos obtenido por distancia euclidiana aplicada a coordenadas obtenidas por PCoA. Muestra dos grupos formados en el acervo Mesoamericano (MI y MIII). ................................................................61 xii Figura 13. Individuos que se presentan como posibles eventos de introgresión dentro del estudio ...............................................................................................66 Figura 14. Individuos pertenecientes a Meso-Intro (agrupados por PCoA como Meso II pero que posiblemente presenten eventos de introgresión) ...........................69 Figura 15. Dendrograma basado en el índice de disimilaridad de DICE para la colección de germoplasma de Ruanda.. ............................................................70 Figura 16. Histogramas de cuantificación de minerales mediante la metodología de AA. .....................................................................................................................72 Figura 17. Genotipos con mayor y menor contenido de hierro y zinc .......................73 Figura 18. Gradiente de concentración de zinc encontrado en grupos mesoamericanos indicado por las flechas azules. .............................................75 Figura 19. Distribución porcentual de color, tamaño y patrón de coloración de semilla en la población de estudio. ................................................................................76 Figura 20. Distribución del color de la semilla dentro de cada grupo poblacional formado a partir de PCoA...................................................................................77 xiii RESUMEN La presente investigación, adelantada mediante la realización de un trabajo interinstitucional entre la Pontificia Universidad Javeriana y el Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT) ubicados en Colombia, es una contribución de la ciencia para enfrentar uno de los más importantes problemas mundiales relacionados con el hambre en países en desarrollo. El fríjol común Phaseolus vulgaris L. es una de las leguminosas más comunes a nivel mundial, siendo uno de los alimentos más consumidos en los países en vías de desarrollo; en Ruanda (África) éste es el principal alimento en la dieta diaria. Debido a estos hechos trascendentales esta planta es el foco de muchos estudios de diversidad genética alrededor del mundo. El objetivo de este estudio fue caracterizar la diversidad genética de una colección de fríjol común proveniente de Ruanda. Un total 355 genotipos y 4 individuos (pertenecientes a los dos acervos principales del fríjol) usados como controles, fueron analizados mediante el uso de 30 marcadores moleculares tipo microsatélites fluorescentes. Se utilizaron dos tipos de marcadores genómicos (16) y génicos (14). Un total de 301 bandas fueron generadas con un promedio de 10.16 alelos por marcador y una diversidad total de 0.62. El análisis de coordenadas principales identificó la presencia de los dos acervos principales del fríjol (Andino y mesoamericano) y un posible grupo de genotipos introgresados. Se presentó mayor diversidad dentro del grupo de los mesoamericanos. Adicional a esto se realizó un análisis de datos minerales (hierro y zinc), mediante la técnica de absorción atómica (AA), encontrando valores altos para estos dos minerales. La caracterización de la diversidad genética de este grupo de genotipos de Ruanda permitió observar altos niveles de variabilidad genética y un importante contenido de minerales lo cual puede ser muy útil en futuros planes de mejoramiento. 1 ABSTARCT This research work, carried out through an interinstitutional work between Pontificia Javeriana University and The International Center of Tropical Agriculture –CIATlocated in Colombia, is a contribution of science to face one of the most important global issues dealing with hunger in developing countries. Common bean Phaseolus vulgaris L. is one of the most important legumes worldwide, belonging to the most consumed food in developing countries. In Rwanda (Africa), beans provide the centre-piece of the daily diet. Due to its great significance, common bean forms a focal point in many studies of genetic diversity throughout the world. The objective of this thesis is the genetic diversity characterization of a common bean collection originating from Rwanda. A total of 355 genotypes and 4 individuals used as controls (belonging to the two major gene pools of common bean) were analyzed through the use of 30 molecular markers which were fluorescent microsatellites. Two types of markers were used: genomic (16) and cDNA markers (14). A total of 301 bands were generated with an average of 10.16 alleles per marker and a total diversity of 0.62. Principal component analysis identified the presence of two major gene pools of common bean (Andean and Meso-American) and a possible group of introgressed genotypes. Most diversity was found in the group of the Meso-American genotypes. Additionally, an analysis of mineral content (iron and zinc) was realized using the method of atomic absorption (AA). High amounts were found for both minerals. The characterization of genetic diversity of this genotype collection of Rwanda allowed to observe high levels of genetic variability and high contents of minerals. This information may be very useful in future breeding projects. 2 1 INTRODUCCIÓN La desnutrición es uno de los grandes problemas que actualmente aqueja a la humanidad. Alrededor de 800 millones de personas en todo el mundo la padecen, esto ha llevado a buscar soluciones encaminadas al mejoramiento y conservación de las especies y hacía una mayor producción de las mismas, especialmente, en países en vía de desarrollo. Una consideración importante para iniciar esta investigación, radica en el hecho de que tres de los principales centros de estudio en el mundo son África, el subcontinente Asiático y América Latina; estos con frecuencia basan su dieta en alimentos como yuca, maíz, arroz, trigo, entre otros, que son ricos en carbohidratos, pero pobres en proteínas y minerales. Por tanto, especies vegetales como las leguminosas, que son el grupo de plantas que produce grano más rico en proteínas y minerales, juegan un papel crucial en la dieta de sus habitantes. Dentro de este grupo de plantas se encuentra una de las especies mas importantes en la que la humanidad fundamenta su alimentación, el fríjol común Phaseolus vulgaris L. América y África son los principales productores y consumidores de esta leguminosa. Más de 100 millones de personas en África, la mayoría de bajos recursos pertenecientes tanto a áreas rurales como urbanas, consumen fríjoles dentro de su dieta diaria, por ser estos una fuente importante y económica de proteínas, energía y micronutrientes. Específicamente en Ruanda el fríjol es un cultivo de gran relevancia, alrededor de 8 millones de Ruandeses consumen fríjol y se estima un consumo anual de 60 Kilogramos per capita. Este alimento provee el 84% de proteínas de leguminosas o 65% de todas las proteínas vegetales y animales (y 32% de energía) consumidas. Adicional a esto, el fríjol es un cultivo tradicional y de importancia cultural ya que se usa como ofrenda o regalo. Sólo en África, cerca de 4 millones de hectáreas son cultivadas anualmente con una producción de 2 millones de toneladas. A pesar de que en sus países la producción es alta, debido a la gran demanda que existe de este alimento, se presentan problemas fitosanitarios o ambientales que afectan el rendimiento de los cultivos. 3 Por todo lo anteriormente expuesto, y por su alta variabilidad genética, el fríjol común P. vulgaris L se constituye en una especie de gran importancia dentro de estudios de mejoramiento, lo que generó el interés por adelantar esta investigación realizada en el Laboratorio de Caracterización de Germoplasma de Fríjol (LCGF), ubicado en el CIAT, en torno al siguiente problema: El fríjol común (P. vulgaris L.), como renglón importante de la economía y alimentación de la mayoría de países en vía de desarrollo de África específicamente Ruanda, requiere la profundización en estudios a nivel molecular que permitan caracterizar su diversidad genética con miras a apoyar su mejoramiento nutricional. El presente estudio tiene como objetivo: Caracterizar la diversidad genética de 355 genotipos de fríjol común provenientes de diferentes regiones de Ruanda (África) mediante el uso de marcadores moleculares tipo microsatélites fluorescentes. El uso de los microsatélites en estudios de diversidad es muy importante debido a que ofrecen gran cantidad de información por su naturaleza multialélica, son codominantes, tienen alto poder discriminatorio, son reproducibles, tienen herencia mendeliana y presentan fácil detección dentro de sistemas automatizados. Adicional a la caracterización de la diversidad se realizó un análisis del contenido de hierro y zinc a partir de la técnica de Absorción Atómica. En este trabajo se logró encontrar altos niveles de diversidad genética y de contenidos de minerales para los genotipos en estudio, lo cual despierta la atención debido a las necesidades alimentarias por las que atraviesa Ruanda, siendo esto un paso importante para el inicio de programas que favorezcan la producción de la especie en este país. 4 2 MARCO TEÓRICO Y REVISIÓN DE LITERATURA El sustento teórico para la realización de esta investigación se basa en aportes de autores reconocidos e investigaciones acerca de las generalidades de fríjol, características de Ruanda, los cuales se contemplan a continuación: 2.1 GENERALIDADES DEL FRÍJOL El fríjol común (Phaseolus vulgaris L.) es una de las especies más importantes en el mundo pues hace parte del grupo de plantas en las cuales la humanidad encuentra la principal fuente de proteína para su alimentación. La mayor parte de su producción se presenta en los países de bajos recursos, como los pertenecientes a los continentes Africano y Americano (Broughton et al., 2003). Sin embargo, esta fuente alimenticia se ve amenazada por problemas que afectan la producción, debido a proliferación de plagas y enfermedades que generan pérdidas del 10 y 100% (Beebe et al., 2000b).Esto hace del fríjol, una especie interesante para estudios de diversidad enfocados hacia mejoramiento. 2.1.1 Características Taxonómicas y Botánicas El fríjol común Phaseolus vulgaris L. es una planta leguminosa dicotiledónea. La superfamilia Leguminosae, familia Fabaceae que comprende casi 10.000 especies agrupadas en 643 géneros encontrados en diferentes ambientes y temperaturas. El género Phaseolus comprende aproximadamente 35 especies, entre las que se encuentran Phaseolus vulgaris, Phaseolus lunatus, Phaseolus coccineus, Phaseolus polyanthus y Phaseolus acutifolius, las cuales corresponden a las cinco cultivadas comercialmente (Betancour & Dávila, 2002; Fonnegra, 1996). El genero Phaseolus se caracteriza por la presencia de la Faseolina, una proteína de almacenamiento en el tejido cotiledonal de la semilla; determina la cantidad y calidad nutricional de las proteínas en las semillas de frijol (Gepts et al., 1986); existen diferentes tipos de faseolinas asociados con el tamaño de la semilla, por ejemplo la de tipo ‘S’ (Sanilac) se relaciona con semilla pequeña, mientras que la ‘T’ (Tendergreen) y ‘C’ (Chile) con mediana y grande (Islam et al., 2002b; Singh et al., 1988). 5 Como planta anual y herbácea se cultiva esencialmente para obtener y consumir las semillas, que son las que más aporte nutricional hacen, al presentar alto contenido de proteínas (22% en materia seca). En cuanto a la morfología, presenta un sistema radicular que desarrolla raíces secundarias y terciarias, es superficial ya que el mayor volumen de la raíz se encuentra en los primeros 20 cm de profundidad del suelo; presenta nódulos distribuidos en las raíces laterales de la parte superior radical, estos nódulos son colonizados por bacterias del género Rhizobium las cuales fijan nitrógeno atmosférico (Debouck & Hidalgo, 1989). El tallo es cilíndrico y sub-glabro o pubescente, puede ser verde, morado o rosado. Tiene un incremento progresivo en la longitud de internodos y se pueden identificar 4 tipos de hábitos de crecimiento según la terminación apical del tallo y de las ramas, dependiendo de si se forma un racimo o un meristema apical, respectivamente (Betancour & Dávila, 2002): Los dos primeros tipos corresponden a los arbustivos, TIPO I: determinado arbustivo, sus ramas terminan en racimos; la inflorescencia desarrollada es terminal, es decir detiene el crecimiento de la rama; carecen de la habilidad de trepar. TIPO II: indeterminado arbustivo, tienen tallos cortos erectos de 30 a 50 internodos y ramas; las plantas terminan en guías cortas y son semi-trepadoras (Beebe et al., 2000b; Debouck & Hidalgo, 1989; Schoonhoven & Oswaldo, 1994). Los otros dos son: TIPO III indeterminado postrado, con ramificación bien desarrollada y altura superior a los 80cm; el hábito TIPO IV, se le conoce como indeterminado trepador, el cual desarrolla la capacidad de torsión, sus ramas son poco desarrolladas, pueden alcanzar alturas de más de dos metros (Schoonhoven & Oswaldo, 1994). Las hojas son trifoliadas con pecíolo y raquis acanalado; la inflorescencia es racimosa, en el caso del tipo determinado es terminal y para los indeterminados es axilar; la flor es la típica de la familia Fabaceae es decir, con forma de mariposa, bilateralmente simétrica, encerrada por bractéolas verdes, la corola es estándar, dos alas y una quilla asimétrica, los colores de la colora son usualmente verde, blanco, rosado o morado; el fruto es una vaina con dos valvas, las cuales provienen del ovario comprimido; presenta placentación marginal (Beebe et al., 2000b; Debouck & Hidalgo, 1989; Schoonhoven & Oswaldo, 1994). 6 La semilla puede ser redonda, esférica o arriñonada, de acuerdo con la variedad de fríjol, al igual que el hilum y el micrópilo. La semilla no es endospermica sino consiste en embrión con dos cotiledones simétricos, su germinación es epigea y consume estos cotiledones que sirven de almacenamiento para el crecimiento. Las hojas primarias son simples, opuestas, cordiformes y acuminadas y caen antes de que la planta esté completamente desarrollada; mientras que las hojas secundarias son compuestas, trifoliadas con venación reticular, pueden ser de forma ovalada a triangular (Debouck & Hidalgo, 1989; Debouck & Tohme, 1988). 2.1.2 Origen, distribución y domesticación El fríjol común Phaseolus vulgaris L. (2n=2x=22) fue domesticado en el Nuevo mundo aproximadamente hace 7000 a 10000 años atrás El fríjol ha evolucionado a través de su domesticación, desde las formas silvestres ancestrales como Phaseolus vulgaris var. aborigineus [Burk] Baudet, una enredadera anual que se distribuía en altitudes medias 1500-2000 msnm, en bosques claros o en las regiones del neotrópico en un rango superior a 8000km, desde el norte de México hasta el norte de Argentina (Beebe et al., 1997; Chrispeels & Savada, 2003; Koenig & Gepts, 1989). Estudios bioquímicos asociados con los patrones geográficos (Koenig & Gepts, 1989), evidencias de proteínas de la semilla (Gepts & Bliss, 1986), rasgos morfológicos (Singh et al., 1991b) y marcadores moleculares (Beebe et al., 2001; Beebe et al., 2000b), incluyendo los microsatélites (Blair et al., 2007; Blair et al., 2006; Díaz & Blair, 2006), han revelado que existen dos centros de diversidad primarios, un origen Mesoamericano y un origen Andino. En fríjol silvestre, según Koenig y Gepts (1989), Gepts y Bliss (1986), Beebe et al (1997), se ha hecho referencia a un tercer acervo en el norte de los Andes. Un estudio de la colección núcleo de CIAT por Islam (2002) quien evaluó 1072 accesiones, dio soporte a la evidencia de la existencia de este otro acervo. Hasta ahora éste no ha sido caracterizado como recurso potencial para el mejoramiento del fríjol y tampoco se ha realizado una evaluación nutricional de concentraciones de sus elementos (Islam et al., 2002b). 7 Estos centros de diversidad, actualmente llamados acervos, reflejan múltiples eventos de domesticación dentro de las distintas poblaciones silvestres (Gepts & Bliss, 1986). El acervo Mesoamericano se caracteriza por presentar genotipos con semillas pequeñas a medianas, con faseolinas tipo ‘S’, ‘CH’, ‘Sb’, ‘Sd’ y ‘M’, mientras que en el acervo Andino se encuentran semillas medianas a grandes con tipo de faseolina ‘T’, ‘H’ y ‘C’ (Islam et al., 2004; Kami et al., 1995; Singh et al., 1991a). Dentro de cada acervo se pueden distinguir razas, cuatro para Mesoamericano y tres para Andino, las cuales han surgido debido a procesos de domesticación (Singh et al., 1991a); para su clasificación y caracterización se han basado en las diferencias morfológicas de la planta (Hábito de crecimiento), de la semilla (Tamaño, forma, color) y a partir de estudios moleculares como Beebe et al 2000 quienes utilizaron RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA) y posteriormente Beebe et al 2001 con la técnica de AFLP (Amplified Fragment Length Polymorphism) o por medio de microsatélites (Blair et al., 2007; Blair et al., 2006; Díaz & Blair, 2006; Gomez et al., 2004). Los genotipos del acervo Mesoamericano predominan en México, América central (Guatemala, El Salvador, Honduras, Nicaragua y Costa Rica) y Brasil; se pueden distinguir las razas Mesoamérica (M), Durango (D), Jalisco (J) y Guatemala (G). (Beebe et al., 2000b; Broughton et al., 2003; Islam et al., 2004). La raza Mesoamérica es común en México y América Central, se caracteriza por tener un tamaño de semilla relativamente pequeño, por su adaptación a tierras bajas y por presentar principalmente los hábitos de crecimiento Tipo II o III, y en algunos casos Tipo IV. Las clases comerciales de esta raza incluyen semilla pequeña negra, semilla roja pequeña y semilla blanca. La raza Durango está compuesta principalmente por plantas con tipo de crecimiento III con hojas pequeñas, semillas de tamaño medio y con adaptación a ambientes secos de tierras altas en México; las clases comerciales incluyen pinto, grande del norte y rojo mexicano. La Raza Jalisco, se encuentra en ambientes más húmedos de las tierras altas de México y está compuesta principalmente por plantas trepadoras (Tipo IV), los genotipos presentan tamaño medio de semilla (Beebe et al., 2000b). Y por último la Guatemala 8 formada por especies trepadoras en regiones húmedas montañosas (Islam et al., 2004). Análisis mediante AFLP (de las siglas en Inglés Amplified Fragment Length Polymorphism) revelan que las poblaciones de fríjol silvestre en la zona Andina han sido aisladas la una de la otra, resultando poblaciones discretas en Ecuador y el norte de Perú; en el sur de Perú, Bolivia y el norte de Argentina (Tohme et al., 1996). Con base en estudios morfológicos y criterios ecológicos, el acervo Andino puede ser subdividido en tres razas; Raza Nueva Granada (NG), Perú (P) y Chile (C). La primera representa a los genotipos con tamaño de semilla medio a grande y con hábito de crecimiento arbustivo, e incluye la mayoría de cultivares comerciales de semilla grande. La raza NG es la más cultivada dentro del acervo Andino, prosperando principalmente en alturas medias de África y América; en ambientes de tierras bajas de Brasil, México y el Caribe y en climas templados de Norte América y Europa. A la raza Perú pertenecen las plantas trepadoras, la mayoría de las cuales están adaptadas a tierras altas por encima de los 2000 msnm, mientras que la raza Chile se característica por presentar habito de crecimiento tipo III, semilla de tamaño medio, de forma redonda u ovalada, y usualmente colores pálidos que se encuentran en latitudes altas en Turquía, Irán y China (Beebe et al., 2001). Hallazgos arqueológicos en Perú y en el sur occidente de los Estados Unidos, determinaron que el Nuevo mundo es el centro de origen del fríjol; sin embargo en la actualidad este se encuentra distribuido mundialmente (Diaz, 2005a; Singh, 2001). Los centros secundarios de diversidad están en África, Brasil, Europa, Medio Oriente, así como América del Norte (Broughton et al., 2003). Es posible que el fríjol halla sido introducido a África por los exploradores Árabes y Europeos y por los comerciantes de Brasil y el sur de los Andes en los siglos XVI y XVII (Debouck & Hidalgo, 1989; Musoni, 2006). Ruanda es considerado como un centro secundario de diversidad de fríjol. Existe gran diversidad de genotipos pertenecientes a los dos acervos; mezclas de plantas de diferentes granos crecen normalmente en las fincas de este país. Algunos materiales considerados como extintos en los centros de origen de América Latina existen en Ruanda (Musoni, 2006). 9 La alta variedad de ambientes en los cuales se cultiva el fríjol ha llevado a incrementar la variabilidad fenotípica, especialmente de caracteres como el hábito de crecimiento, el tipo de grano, la fenología y la sensibilidad al fotoperiodo. Los altos niveles de polimorfismo, la diversidad fisiológica y amplia distribución geográfica hacen difícil el establecimiento de patrones de domesticación y relación entre genotipos (Becerra & Gepts, 1994). El fríjol común tiene varios centros posibles de domesticación en América latina. De las especies conocidas del género Phaseolus, 5 de ellas se domesticaron durante la época precolombina; el fríjol común fue de gran importancia en los imperios azteca e inca siendo utilizado como elemento para el pago de tributos (Diaz, 2005a) El progenitor del fríjol y los descendientes cultivados generalmente dan una progenie fértil y viable, muestran diferencias contrastantes constituyendo así el síndrome de la domesticación; los genotipos cultivados, muestran un hábito de crecimiento más compacto comparado con los parentales silvestres, menos nodos vegetativos, hojas de mayor tamaño e internodos más largos. En cuanto a las semillas, éstas son más grandes y tienen menor pigmentación por antocianina. Algunos genotipos cultivados no poseen sensibilidad a la longitud del día (su progenitor solo florecía en días cortos), estos florecen más temprano (Koinange et al., 1996). Dos de los atributos más importantes en el proceso de domesticación son: pérdida de la habilidad de dispersión de semilla y la dormancia de la semilla (fundamentales para la adaptación a cultivo) (Broughton et al., 2003). La domesticación, fue un proceso rápido lo que puede indicar que la adaptación a las condiciones ambientales cambiantes involucró genes con mayores efectos genotípicos (Koinange & Gepts, 1992). 2.1.3 Cultivo, producción y Usos El fríjol es extremadamente diverso en términos de métodos de cultivo, usos, rangos de ambientes a los cuales ha sido adaptado y variabilidad morfológica. Puede cultivarse en terrenos ubicados desde la altura del nivel de mar hasta 3000 m.s.n.m, es cultivado en monocultivos, en asociaciones o en rotaciones. Los frijoles son consumidos como granos maduros, también como semilla inmadura, tanto como vegetales, hojas y vainas (Broughton et al., 2003). 10 Su recurso genético existe como un arreglo complejo de acervos genéticos mayores y menores, razas y tipos intermedios con introgresión ocasional entre tipos salvajes y domésticos. El cultivo de fríjol es entonces uno de los que mejor se adapta a diferentes ambientes; la producción mundial de fríjol alcanza los 23 millones de toneladas, de los cuales 7 millones se producen en países tropicales de Latinoamérica y África (Pastor-Corrales & Schwartz, 1994). Las condiciones donde se produce el fríjol son muy variables, van desde zonas muy húmedas a zonas semi-desérticas como el noreste de Brasil, el centro y el altiplano nororiental de México, el valle de Rift del oriente de África y entre las zonas montañosas de Estados Unidos (Singh, 2001). Sin embargo, la producción de fríjol está reducida a pequeños terrenos con agricultores de bajos recursos y en ambientes no óptimos para la especie con sequías estacionales (Broughton et al., 2003; López et al., 1985). El fríjol es uno de los principales cultivos, después del maíz, en el centro y este de África. Cerca de 4 millones de hectáreas de fríjol son cultivadas anualmente en éste continente, con una producción de dos millones de toneladas (Chrispeels & Savada, 2003). 2.1.4 Composición Química y Calidad nutricional 2.1.4.1 Composición Química Al 11 % del contenido de humedad, la semilla tiene 17-30% de proteína, generalmente bajos en amino ácidos azufrados (metionina y cisteína) pero alto en lisina. También tiene 57.8% del complejo de azucares, 1.6% de grasa, 4% de fibra y grandes cantidades de ácido fólico; en cuanto a los micronutrientes esenciales, presenta cerca de 34-89 ppm de hierro y 21-54 ppm de zinc(Beebe et al., 2000a; Musoni, 2006). Las hojas frescas son ricas en hierro y vitamina A. En África del este ESCABREN identificó ciertas variedades como ‘Ngwinurare’, ‘Gofta’, ‘Maharagi Soya’, con altos contenidos de minerales en hojas y semillas (Kimani et al., 2000) 2.1.4.2 Calidad Nutricional Más de 300 millones de personas basan su dieta diaria en la leguminosa comestible más importante del mundo, el Fríjol común, por ende hace una contribución 11 importante a la nutrición (Beebe et al., 2000a). Los fríjoles proveen proteína a la dieta y son alimento de gran importancia por complementar cereales que son fuente primaria de carbohidratos; como en otras leguminosas, los fríjoles contienen grandes cantidades de hierro y otros minerales (Beebe et al., 2000b; Broughton et al., 2003). El valor nutricional del fríjol radica en que su semilla es una fuente importante de calorías, vitaminas, proteínas, carbohidratos y grandes concentraciones de minerales esenciales, el contenido nutricional de la semilla se puede detallar en la tabla 1. En América Latina y en el continente Africano, el fríjol es utilizado totalmente para consumo humano y mundialmente el fríjol es conocido como la “carne de los pobres”, por ser fuente muy importante de proteína y de bajo costo (MINAGRI/MINEDUC, 1993). El contenido de proteína del fríjol varía según la variedad pero en general es de un 24% superando a la papa y al maíz (Betancour & Dávila, 2002). Tabla 1. Contenido nutricional de semilla de fríjol. Contenido total en semilla y por 100g de semilla (Geil y Anderson, 1994 En: (Sandoval, 2006). Contenido Total en Semilla Contenido por 100g de semilla Calorías (kcal) 110-143 Proteínas (%) 21-25 Carbohidratos (%) 60-65 Fibra (%) 3-7 Grasa (%) 0.8-1.5 Vitaminas (% RDA) Ácido fólico 30 Tiamina 25 Piridoxina Minerales (% RDA) 10-12 Niacina 10 Riboflavina 10 Hierro 29-55 Fósforo 20-25 Calcio 10 Zinc 10 % RDA: porcentaje que aporta de acuerdo a los requerimientos mínimos recomendados 12 El hierro es uno de los minerales vitales en la dieta del hombre, ya que participa en importantes procesos de oxido-reducción, está presente en numerosas enzimas involucradas en el mantenimiento de la integridad celular, tales como las catalasas, peroxidasas y oxigenasas y a su vez forma parte estructural y/o funcional de algunas enzimas como la hemoglobina. La forma de absorción en el organismo depende de la forma química presente en la dieta, ya sea como hierro hemo (en alimentos de origen animal) o hierro inorgánico (en alimentos de origen vegetal), en este último caso su absorción no es proporcional a su contenido ya que se ve afectada por factores químicos presentes en los alimentos, tales como oxalatos, taninos y fitatos (Barrios et al., 2000). El zinc es importante para la formación de enzimas, se encuentra directamente involucrado con el crecimiento y desarrollo, la insuficiencia de este mineral impide el crecimiento normal; adicional a esto se ha observado su importancia en el mantenimiento de la función y la estructura de las biomembranas; inhiben el daño oxidativo al atrapar radicales libres a través de su enlace con la metalotioneina o bien mediante la unión a las membranas en sitios que pueden ser ocupados por metales con potencial redox, estabiliza los grupos “tio” (O´Dell, 1981 En: (Moreno, 2007). 2.2 SITUACIÓN DEL FRÍJOL EN ÁFRICA En términos de producción y consumo, el fríjol común es la leguminosa de grano más importante en el oriente, centro y sur de África, mas de 100 millones de personas en este continente lo consumen; se estima que éste es el segundo recurso de proteína, y el tercero de calorías más importante de la región; los agricultores cultivan muchas variedades de fríjol. Típicamente 6 cultivares cuentan para el 95% de la producción en muchas comunidades, pero la diversidad es más alta en las regiones de los grandes lagos y áreas adyacentes a Uganda, donde las mezclas son la norma. 13 Las mezclas son también importantes en parte de Malawi, Mozambique y Tanzania (Martin & Adams, 1987). Sin embargo, hay una tendencia a producir cultivares más orientadas hacia el mercadeo, en poblaciones urbanas que demandan mayor uniformidad para el consumo de fríjoles (Broughton et al., 2003; CIAT, 2005a). Millones de hectáreas son cultivadas en más de 20 países de África (Tabla 2), en estos lugares los agricultores de bajos recursos e ingresos, producen fríjoles principalmente en escala pequeña; las mujeres siembran mucho más que los hombres. Gran cantidad de cultivos se pierden debido a enfermedades, pestes de insectos, sequía, baja fertilidad en los suelos u otros factores de estrés abiótico (David & Sperling, 1999). Gran cantidad de variedades de fríjol se cultivan en África, siendo notorio en la diversidad del tipo de semilla y su adaptación. La elección de las variedades más populares para el mercado, pueden estar dictadas por la resistencia a variabilidad climática y a condiciones agronómicas, en algunos casos dicha elección puede producirse por el tamaño grande de la semilla, pero la mayoría de agricultores especialmente del oriente y del centro de África hacen mezclas de todas las formas y colores de las semillas (Broughton et al., 2003; Musoni, 2006). Las semillas pequeñas y medianas suelen ser seleccionadas con mayor frecuencia debido a que se puede sembrar mayor área y además estas confieren mayor resistencia a factores ambientales y a enfermedades (Comunicación Personal B. Lewis investigador programa fríjol Ruanda CIAT, 2007). El comercio de la semilla de esta planta es muy importante, y puede ocurrir localmente, entre ciudades o informalmente entre países, usualmente se establecen rutas de comercio hacia áreas urbanas dentro del mismo país de producción; las hojas de esta planta también hacen parte del comercio(David & Sperling, 1999). 14 Tabla 2. Áreas de producción de Fríjol en 20 países de África, modificado de “Atlas of common bean production in Africa” (Wortmann et al, 1998). Países Área (%) Área (ha x 10-3) Burundi, DR Congo, Etiopia, Kenia, Ruanda, Tanzania, Uganda 62 2490 Africa del Sur Lesotho, Madagascar, Malawi, Mozambique, Sur África, Swaziland, Tanzania, Zambia, Zimbabue 31 1290 Africa Occidental Angola, Cameroon, Cape Verde, Togo 3 135 Algeria, DR Congo, Egipto, Mali, Malawi, Mauritius, Morocco, Nigeria, Sudan, Tunisi 4 200 100 4025 Región Africa Oriental- tierras altas y alturas medias Tierras bajas- estación de invierno TOTAL Se considera que en el oriente y sur de África el consumo de fríjol es mayor que el de Latinoamérica, las estadísticas muestran que 66kg por persona son consumidos en algunas zonas rurales de Kenia mientras que en Ruanda y Burundi el consumo promedio nacional excede 40kg por persona por año (Broughton et al., 2003). Los dos acervos principales de Phaseolus vulgaris L. están representados en África. El 61% de las cultivares presentes corresponden a semillas grandes típicas del acervo Andino; el resto pertenecen al acervo Mesoamericano, caracterizado por las semillas pequeñas o medianas (CIAT, 2005b). 2.2.1 Generalidades Ruanda Ruanda se encuentra localizado en una región conocida como África Subsahariana (término utilizado para describir a los países del continente africano ubicados al sur del desierto del Sahara y que no forman parte de la región conocida como Noráfrica) específicamente en la parte oriental de África Central (MINAGRI/MINEDUC, 1993). El país tiene una población de 8.6 millones de personas viviendo en un área de 26,368 Km2, haciendo de Ruanda uno de los países más densamente poblados en África, 322 habitantes por Km2 (ISAR, 2000). En la Figura 1 se muestra el mapa de organización política de Ruanda. 15 Fig gura 1. Mapa a de Ruanda, organización n política (UnitedNations, 2007) 2 L mayoría de los hab La bitantes vive en en núcleo os familiaress dispersos por la región m montañosa. La població ón está form mada por tress grupos étn nicos: los hu utus (cerca del d 9 90%), cuya lengua es el e bantú; loss tutsis (9%)), destacado os criadores de ganado, y l twa (1% los %), pueblos pigmeos p y presuntamen p nte habitante es originaless de la región ( (ISAR, op cit). En la acttualidad la tasa t de creccimiento anu ual es de 2.9 9%, se espe era q que crezca a 11.4 millo ones de perrsonas en el e año 2010;; para ese mismo m año se c calcula que la població ón urbana se e duplique y que la rura al crezca a 9.8 9 millones; el p país ha enc contrando muchos retoss para satisffacer las neccesidades alimenticias a de s gente (Ng su girumwami, 1992) L agriculturra aporta el 91.1% de lo La os empleos para la pobllación activa a y permane ece c como el priincipal recurso de creccimiento eco onómico. Ell sector de la agricultu ura c contribuye en e un 36.6% % al PIB (P Producto Intterno Bruto)) (Ferris et al., 2002). El p principal pro oducto de exxportación es e el café, el cual en 19 997 contribuyó en un 52 2% d las gana de ancias nacio onales, mie entras que en e el mism mo periodo el e té como el s segundo pro oducto más importante de d exportación, aportó un u 24% de las l ganancia as; 16 sin embargo es necesario tener en cuenta que más del 40% de la comida es importada (ISAR, op cit). Ruanda es un país con menor PIB que otros en áfrica, pero desde la guerra civil de 1994 ha comenzado a recuperarse económicamente (Ferris et al., 2002; Sperling, 2001), en la Tabla 3 se muestran los principales indicadores poblacionales de Ruanda y de África Subsahariana, teniendo en cuenta el porcentaje de población activa dentro de cada sector económico. Tabla 3. Comparación de los indicadores poblacionales y económicos de Ruanda y África Sub-Sahariana (ISAR, 2000). Indicador Tamaño poblacional Densidad Poblacional Población Activa: • • • Sector Agrícola Sector Industrial Sector de servicios PIB 2.2.2 Ruanda África Subsahariana 7.7 millones 303 por km2 596 millones 26 por km2 . • • • 91.1 % 1.7% 7.2 % US$ 240 • • • 70.0 % 7.5 % 22.5 % US$ 490 Fríjol en Ruanda El fríjol común (Phaseolus vulgaris L.) puede ser llamado una comida casi perfecta, por ser rico en proteínas carbohidratos, vitaminas y minerales como hierro, zinc y ácido fólico, componentes esenciales para el crecimiento y desarrollo del cuerpo humano y para el buen mantenimiento de la salud y desarrollo cognoscitivo (Ferris et al., 2002; ISAR, op cit). Los fríjoles son el principal componente en la nutrición de la vida de los Ruandeses; la mayoría de familias consumen al menos una vez al día esta leguminosa y no sólo en la forma más común como es el grano seco sino también utilizan en sus platos las hojas, las vainas verdes y las semillas verdes. El cultivo del fríjol es el más tradicional y de mayor importancia cultural, con frecuencia se usa como ofrenda o regalo (Sperling, 2001). 17 A pesar de su importancia se puede reconocer algunos problemas en la producción del fríjol y en gran parte se debe a que las tierras destinadas para los cultivos no presentan procesos de rotación o tratamientos adecuados que ayuden a mejorar la calidad del suelo. Adicional a esto el suelo carece de nutrientes esenciales tales como nitrógeno, fósforo y potasio (Kelly et al., 2001). Algunos suelos son ácidos, contribuyendo a la toxicidad de elementos minerales como aluminio y manganeso. Los problemas bióticos también son de resaltar, dentro de los cuales se encuentran enfermedades por patógenos como hongos, bacterias y virus, que atacan hojas, tallos, raíces y el grano (Ferris et al., 2002; ISAR, 2000). Las pérdidas se estiman hasta 305,700 toneladas por año en África oriental (Musoni, 2006). Las enfermedades (mancha angular de la hoja, antracnosis, pudrición de raíz) que atacan al fríjol causan pérdidas anuales de 761,900 toneladas en el oriente de África (Wortmann et al., 1999). En Ruanda estas enfermedades causan pérdidas de 219,575 toneladas, equivalente a 89 millones de dólares por año (Musoni, op cit). 2.2.2.1 Producción y consumo La producción de fríjol en Ruanda fluctuaba entre 150mil y 200mil toneladas al inicio de la década de los 70’s; a partir del año 1974 hubo un rápido incremento que llegó a tener su máximo valor en año de 1985 cuando se produjo más de 300mil toneladas; en el periodo comprendido entre 1998 y 2000 se encontró un total de 200mil y 300mil toneladas. Las epidemias de la enfermedad de pudrición de raíz y la guerra civil contribuyeron a la caída en la producción a mediados de los 90’s (Sperling, 2001); durante el periodo del 2000 al 2001 la producción tuvo un incremento, sin embargo los siguientes años hasta el 2004 por causa de problemas climáticos (aumento de lluvias) la producción se tuvo una amplia reducción (Comunicación Personal L. Butare investigador programa fríjol Ruanda CIAT, 2007). La figura 2 muestra las fluctuaciones de la producción anual de frijol entre 1979 y el 2004. 18 Figura a 2. Producció ón anual, en Toneladas, de Fríjol en Ru uanda (Muson ni, 2006) L frijoles son Los s cultivad dos por el 95 5% de los campesinos c Ruandeses sobre el 30 0% d la tierra cultivada; se de s pueden encontrar e en n monocultivvos o cultivo os mixtos con m maíz, banan nos, tubérculos y sorgo, los campessinos individu ualmente pu ueden manejjar p por encima de tres mezclas m durrante la missma época de siembrra; es común e encontrar es stas mezcla as tanto en el e consumo como para la producciión (Sperlin ng, 2 2001). La prroductividad es de 800kkg/ha, un terrcio del rend dimiento possiblemente son d estacion de nes de investigación (F Ferris et al., 2002; ISA AR, 2000). Se S estima un c consumo an nual de 60 Kg K per capitta; este alim mento provee el 84% de e proteínas de l leguminosas s o 65% de todas las prroteínas vegetales y animales (y 32% de energía) c consumidas s; ofrece un n recurso alternativo a p para los aliimentos pro ovenientes de a animales, es specialmentte dentro de e la població ón rural que e es la meno os privilegiada ( (Kelly et al., 2001; Muso oni, 2006). al 2.2.2.2 Problemática Nutriciona L malnutric La ción es reco onocida en la a actualidad d como uno de los retoss más grandes q la salud que d enfrenta en n muchos se ectores de la población Africana, particularmen nte e mujeres y niños de en e bajos recu ursos. Dentrro de las principales deficiencias d se e encuentran las de micronuetriente es (aún máss prevalente e que las de proteínass o 19 carbohidratos), las cuales incluyen las de hierro, zinc, vitaminas y aminoácidos azufrados (Comunicación Personal M.Blair mejorador de fríjol CIAT, 2007). La principal causa de esto es que las dietas son abundantes en energía pero pobres en proteínas, minerales y vitaminas; dicha situación adquiere mayor complejidad en estos países en donde la mayoría de personas no tienen acceso a los alimentos provenientes de animales ya que son muy costosos y además el conocimiento del valor nutricional del alimento que se encuentra a su disponibilidad es limitado (CIAT, 2005b; Donovan & Bailey, 2005). Debido a este desconocimiento muchas personas de bajos recursos en África basan su alimentación en los cereales, papas blancas y yuca, estos alimentos generalmente presentan bajos niveles de micronutrientes (CIAT, 2005b). La deficiencia en hierro afecta a millones de individuos durante todo su ciclo de vida, en especial a los lactantes, niños pequeños y las mujeres embarazadas, pero igualmente a los niños mayores, los adolescentes y las mujeres en edad reproductiva; los organismos vivos requieren hierro para que sus células funcionen normalmente (Donovan & Bailey, op cit; OPS, 2002). El hierro es necesario para el desarrollo de tejidos vitales —incluido el cerebro— y para transportar y almacenar oxígeno en la hemoglobina y la mioglobina muscular. La anemia ferropénica es la forma grave de carencia de hierro, puede dar lugar a una baja resistencia a infecciones, limitaciones en el desarrollo psicomotor y la función cognoscitiva en los niños, bajo rendimiento académico, así como fatiga y una baja resistencia física y bajo rendimiento en el trabajo (OPS, 2002). La prevalencia de esta anemia por falta de hierro varia en África desde un 8% de la población en Etiopía, 67% en Tanzania hasta el 69% en Burundi (CIAT, 2005b). Dietas deficientes en hierro frecuentemente son deficientes en zinc. Las consecuencias de la deficiencia de zinc pueden incluir crecimiento y desarrollo anormal, inmadurez sexual, complicaciones en el embarazo, mortalidad maternal e infantil, baja defensa inmunológica, por lo que hace necesario su consumo especialmente en personas que han sido diagnosticadas positivas para VIH/SIDA (Donovan & Bailey, 2005; Islam et al., 2002a). Sin embargo, la deficiencia de zinc es 20 un problema que hasta ahora se empieza a evidenciar como un serio tema de salud pública en los países de África (CIAT, 2005b). 2.2.2.3 Estrategias para combatir la problemática nutricional Existen tres estrategias de intervención que pueden contribuir en la prevención y disminución del abastecimiento problema con de productos deficiencia de farmacéuticos micronutrientes a poblaciones en África: vulnerables (micronutrientes), la fortificación de alimentos y el mejoramiento de la dieta (Biofortificación) (OPS, 2002). La primera estrategia, es efectiva para lograr un acceso con facilidades médicas en grupos vulnerables. Sin embargo solo sería efectiva en un grupo pequeño y requiere de un gran capital y una elaborada y costosa red de distribución; por lo que dejaría por fuera a muchos grupos de riesgo que no podrían recibir dicho abastecimiento (CIAT, 2005b). La fortificación de alimentos ha tenido un grado limitado de éxito en África debido a que la industria de alimentos se encuentra subdesarrollada y carece de una efectiva legislación. Hasta el momento los programas de fortificación se encuentran operando en dos países de África oriental y central: Kenya y Uganda. Este programa es más efectivo en áreas urbanas, dejando a un lado a comunidades pobres del área rural (HarvestPlus, 2006). El mejoramiento de la dieta es probablemente la estrategia más efectiva y sostenible para reducir la deficiencia de micronutrientes en África. Ésta ayuda a incrementar la disponibilidad de alimentos, permite que exista consumo de alimentos ricos en minerales en poblaciones de alto riesgo (CIAT, 2005b). La Biofortificación (incremento de concentraciones de los principales micronutrientes), se logra con la creación de variedades superiores agronómicamente hablando, es decir con valor nutritivo mejorado o variedades que presenten características más atractivas para los agricultores, tales como tolerancia a sequía o baja fertilidad de suelo. La Biofortificación del fríjol común podría producir los mejores resultados en áreas donde el fríjol es el suplemento de una proporción significativa de nutrientes en la dieta. Estas áreas incluyen partes de África Oriental, Central y del Sur; y América Central y Brasil (HarvestPlus, 2006). 21 Dentro de este mejoramiento se incluye promover el consumo de fríjol en la dieta, por ser ésta una especie de amplia producción y consumo (especialmente en África oriental y central). Por tal razón en 1995 el CGIAR inició un proyecto que busca desarrollar variedades ricas en minerales (hierro y zinc) y vitaminas especialmente la A, (CIAT, 2005b). El contenido de minerales (hierro y zinc) y proteínas de los cultivares analizados dentro de este proyecto se muestran en la Tabla 4, al igual que algunas características morfoagronómicas (tipo de hábito de crecimiento, color y tamaño de semilla). Los datos de contenido de minerales fueron tomados a partir de método de ceniza y no están confirmados. Tabla 4. Concentraciones de Hierro, Zinc y proteína en cultivares producidos en África Oriental, Central y del sur (CIAT, 2005b) Cultivares ricos en micronutrientes AND 620 País de origen Hábito de crecimiento Trepadora Color de Semilla Rojo Moteado Rojo Moteado Café Tamaño semilla Zinc (ppm) Hierro (ppm) Proteína (%) RDC Arbusto Grande 38 147 20.4 GLP 2 Kenia Arbusto Grande 28 124 16.2 G59/1-2 RDC Grande 24 106 - Kiangara RDC Trepadora Café Pequeña 44 104 20.1 LIB 1 RDC Trepadora Amarillo Mediana 52 94 20.8 MLB-49-98A RDC Arbusto Negro Pequeña 55 124 - Naindeky RDC Arbusto Blanco Pequeña 30 106 21.4 VCB 87013 RDC Trepadora Blanco Pequeña 25 122 19.4 VNB 81010 RDC Trepadora Negro Pequeña 62 77 - Cultivares ricos en Proteínas País de origen Hábito de crecimiento Tamaño semilla Zinc (ppm) Hierro (ppm) Proteína (%) Awash-1 Etiopia Arbusto Color de Semilla Crema Pequeña 24 - 23 Awash Melka Etiopia Arbusto Blanco Pequeña 28 - 25.3 K 131 Uganda Arbusto Carioca Pequeña 31 - 25 VCB 81012 RDC Trepadora Café Mediana 32 86 26.4 RDC: República Democrática de Congo Estos datos indican que existe un considerable potencial para el mejoramiento de proteínas y micronutrientes mediante la promoción del consumo de cultivares ricos 22 en estos nutrientes. Otros cultivares pueden ser mejorados a través de cruzas y programas de Fitomejoramiento. 2.2.3 Perspectivas del cultivo de Fríjol Se requiere la adquisición y la adopción de nuevas tecnologías para el cultivo de fríjol, con el fin de mejorar su producción y elevar el consumo y comercio. Las investigaciones se enfocan hacía la creación de nuevas tecnologías generadas por los estudios en patología, agronomía y aspectos socio-económicos. Algunos de los avances se han centrado en generar nuevas variedades por programas de entrecruzamiento e investigaciones en colección (Ferris et al., 2002; ISAR, 2000). Un avance adicional es una caracterización molecular de colecciones con el fin de conocer la base genética del germoplasma de estudio que permitan la adecuada selección de genotipos para cruzar con fuentes de alto contenido de minerales, proteínas o vitaminas en semilla. 2.3 DIVERSIDAD GENÉTICA Y ANALISIS MOLECULAR MEDIANTE MICROSATLITES 2.3.1 Marcadores Moleculares Los marcadores moleculares son definidos como “todo y cualquier fenotipo molecular oriundo de la expresión de un gen o estado alélico” (Ferreira & Grattapaglia, 1998); son herramientas que permiten conocer la variabilidad genética de un germoplasma. Existen diferentes tipos de marcadores: morfológicos, se refieren a rasgos fenotípicos; bioquímicos, incluyen variantes alélicas de enzimas llamadas isoenzimas; y marcadores de ADN que revelan sitios de variación del ADN. Las principales desventajas de los marcadores bioquímicos y morfológicos es que ellos están limitados en número y son influenciados por los factores ambientales o de la etapa de desarrollo de la planta. Sin embargo estos han sido de gran utilidad para los mejoradores (Winter & Kahl, 1995). Los marcadores de ADN son el tipo de marcador más ampliamente usado debido a su abundancia. Ellos surgen de diferentes clases de mutaciones de ADN tales como 23 mutaciones por sustitución (mutaciones puntuales), rearreglos (inserciones o deleciones) o errores en la replicación de tandems de repetición del ADN. Estos marcadores son selectivamente neutrales ya que ellos usualmente están localizados en regiones no codificantes del ADN. Dentro de los usos de este tipo de marcadores se encuentran, la elaboración de mapas de ligamiento y la evaluación del nivel de diversidad genética (Collard et al., 2005). Los marcadores moleculares pueden clasificarse en tres grupos de acuerdo a su fundamento: Marcadores basados en la hibridación del ADN, marcadores basados en la secuenciación de fragmentos de ADN y marcadores basados en la amplificación de fragmentos mediante la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) (Ferreira & Grattapaglia, 1998). Estos últimos son generalmente menos costosos y revelan mayores cantidades de polimorfismo. La PCR está diseñada para amplificar ADN en procedimiento cíclico y automatizado el cual resulta en un incremento exponencial en la cantidad de una secuencia específica del ADN. La selección del fragmento de ADN para la amplificación es el resultado del alineamiento, en la cual un “primer” o cebador (5 a 30 bases de largo) se une a una cadena simple de ADN genómico presentada en la reacción. El complejo primer-ADN se convierte en el punto de inicio para la replicación de la secuencia de ADN adyacente por la intervención de una polimerasa termoestable en la reacción de esta mezcla (Reisch, 1998). Uno de los marcadores más importantes basados en PCR son los microsatélites, fundamentados en el descubrimiento de secuencias simples repetidas (SSR) en el genoma; también se puede llamar ocasionalmente sitios de microsatélite de secuencia etiquetada (STMS) o polimorfismo de repeticiones de secuencia simple (SSRP) (Hajeer et al., 2000; Reisch, 1998). Estos hacen parte de los marcadores que permiten visualizar las diferencias genéticas entre individuos, organismos o especies. Generalmente ellos no representan genes “blanco” pero, sí actúan como señales o banderas. Estos marcadores están localizados cerca de los genes “blanco” y no afectan el fenotipo del rasgo de interés porque ellos están simplemente localizados cerca de los genes que controlan el rasgo. Todos los 24 marcadores genéticos ocupan una posición específica dentro de los cromosomas (como los genes), llamados “loci” (en singular locus) (Collard et al., 2005) Los microsatélites son repeticiones cortas en serie cuya secuencia básica tiene una longitud entre 1 y 10 pb, los más típicos de 2 a 4 pb. Son altamente variables y están distribuidos por igual en todo el genoma. Este tipo de ADN repetitivo es común en organismos eucariotas, y el número de unidades repetidas varía ampliamente entre los organismos, hallándose en algunos hasta 50 copias o más de la unidad repetida. Para identificar estos polimorfismos, se construyen cebadores o primers para la amplificación mediante PCR de la región del ADN que flanquea el microsatélite. Las regiones adyacentes a los microsatélites tienden a conservarse dentro de las especies, aunque a veces se conservan también en niveles taxonómicos mayores (Hajeer et al., 2000) La variación en tamaño de los productos de la PCR para un microsatélite se debe a las diferencias en el número de las unidades repetidas en el locus. El polimorfismo de los microsatélites es generado por la pérdida o ganancia de repeticiones, aunque se cree que se deba en mayor medida a la ganancia. Éste fenómeno no es conocido completamente, pero se piensa que esta expansión es debida a procesos de mutación durante la replicación (Roizès, 2000). Los polimorfismos de SSR se pueden visualizar mediante electroforesis en geles de agarosa o de poliacrilamida. Los alelos del microsatélite se detectan usando diversos métodos: tinción con bromuro de etidio, nitrato de plata, radioisótopos o fluorescencia. Si se usan cebadores marcados con fluorescencia, y los productos son suficientemente diferentes en tamaño y no se sobreponen, se pueden generar varios productos de forma simultánea, lo que aumenta enormemente la eficiencia de estos marcadores (Dean et al., 1999). Debido a que estos marcadores presentan grandes ventajas fueron seleccionados para este estudio. Dentro de estas características se encuentran: alto poder discriminatorio, ofrecen gran cantidad de información por su naturaleza multialélica, son codominantes, reproducibles, tienen herencia mendeliana, tienen relativa abundancia con una cobertura uniforme del genoma y presentan fácil detección 25 dentro de sistemas automatizados (Ferreira & Grattapaglia, 1998; Gaitan-Solis et al., 2002). 2.3.2 Microsatélites analizados mediante fluorescencia y Análisis secuenciador automático Las soluciones que sean altamente eficientes y a bajo costo, son esenciales en la actualidad en todos los campos de la investigación. La implementación de nuevas tecnologías y metodologías de trabajo proveen dichas soluciones; tal es el caso de los secuenciadores analíticos de ADN, los cuales permiten el estudio de microsatélites de una forma más eficiente, y vienen acompañados del uso de software que aumenta la precisión, sensibilidad, resolución y eficiencia en el genotipaje (Joe et al., 2004). Los microsatélites pueden ser marcados con etiquetas fluorescentes (fluorocromos) de diferentes colores por ejemplo verde, azul, amarillo y rojo, y posteriormente detectados automáticamente en secuenciadores de ADN; este método es económico y eficiente. Se pueden realizar combinaciones (multiplex) de marcadores en un mismo panel, lo cual puede incrementar la eficiencia ya que tiene en cuenta muchos fragmentos de ADN polimórficos y representa diferentes loci a lo largo del genoma. En los paneles, los marcadores etiquetados con el mismo fluorocromo deben tener diferente tamaño, mientras que los marcadores que se sobrelapan en tamaño deben ser diferenciados mediante el uso de colores diferentes. Muchos marcadores pueden ser mezclados después de la amplificación o bien amplificados juntos en una reacción común de PCR (Blair et al., 2002). Estos productos de PCR son leídos por un secuenciador analítico de ADN, por ejemplo el ABI serie 3730xl. El procesamiento de la información dentro del software funciona como se muestra en la figura 3. Los datos de la muestra leída mediante el secuenciador analítico de ADN, son convertidos en un archivo y éste es auto-analizado directamente por un software que interpreta el lenguaje análogo de las lecturas que hace el 26 secuenciador, realiza la identificación de picos y tamaños. Este software combina la información del archivo de la muestra con análisis preconfigurados y calibraciones estándar; las muestras procesadas pueden ser vistas, editadas y analizadas en una ventana generada por el software (Joe et al., 2004). Método de análisis Detección de pico Tabla de genotipo Confirmación de tamaño Etiquetado de tamaño Asignación de Auto‐Bin Etiquetado de Alelo Figura 3. Sistema de flujo de la información obtenida a partir del archivo de la muestra dentro del software de auto-análisis. Modificado de (Joe et al., 2004). 2.3.3 Estudios de diversidad genética en Fríjol común Debido a la importancia económica y nutricional del fríjol se ha llevado a cabo gran cantidad de estudios de diversidad genética en distintas partes del mundo, principalmente en el continente americano por ser centro de origen. Los estudios en el continente Africano se presentan en menor número pero han tomado mayor fuerza, al ser este continente un centro secundario. Las metodologías varían desde descriptores morfológicos, bioquímicos (isoenzimas y faseolinas) o técnicas moleculares con marcadores de ADN. Gepts & Bliss en 1986 estudiaron material silvestre y mostraron la presencia de faseolina (principal proteína de almacenamiento de la semilla de fríjol) tipo ‘S’, además un nuevo patrón denominado ‘CH’ (Chibcha); mientras que para materiales cultivados presentaron ‘S’, ‘T’ y ‘C’ y un nuevo tipo de faseolina denominada ‘B’ (Boyacá). 27 Estudios complementarios confirmaron la diversidad de los acervos genéticos, pues adicional a los tipos de faseolinas ya encontrados, se registraron nuevos tipos para las accesiones Andinas cultivadas: H (Huevo de Huanchaco), mientras que en materiales silvestres de Mesoamérica se encontró el tipo M (Mesoamérica) (Gepts et al., 1986). Koenig et al. 1989 consideraron que las accesiones de fríjol de Mesoamérica y de los Andes tienen diferentes tipos de faseolinas, en el primer grupo se distinguen las faseolinas tipo ‘S’ y ‘M’ mientras que en el grupo Andino predominaron las 'T', 'C', 'H', 'A', 'J' y la 'I'. Además encontraron una relación entre el tamaño de la semilla y el tipo de faseolina. Estudios como el realizado por Koenig y Gepts en 1989, en poblaciones silvestres analizadas mediante aloenzimas y características morfológicas, definen los dos grandes centros de diversidad. Sus resultados fueron consistentes con la diversidad encontrada en estudios previos con faseolinas. En otro estudio, se evaluaron accesiones pertenecientes a Centroamérica y Suramérica (desde México hasta Argentina y Chile) mediante la evaluación de patrón de aloenzimas; en este estudio fue posible distinguir dos grupos mayores con formas Andinas y Mesoamericanas. Las aloenzimas encontradas en los genotipos cultivados son un reflejo de las encontradas en cada uno de los dos grupos de genotipos silvestres analizados en las mismas áreas (Singh et al., 1991b). La técnica RFLP (Restriction fragment length Polymorphism) fue utilizada en 1994 por Becerra y Gepts (1994), quienes confirmaron la divergencia entre genotipos Mesoamericanos y Andinos. Sugieren la existencia de un aislamiento reproductivo, confirmando que en los cruces entre genotipos del acervo Mesoamericano y Andino hay debilidad del híbrido F1. Análisis mediante AFLP (de las siglas en Inglés Amplified Fragment Length Polymorphism) revelan que las poblaciones de fríjol silvestre en la zona Andina han sido aisladas la una de la otra, resultando poblaciones discretas en Ecuador y el norte de Perú; en el sur de Perú, Bolivia y el norte de Argentina(Tohme et al., 1996). 28 Beebe et al (2000), analizaron 269 genotipos de fríjol común implementando la técnica RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA) con el fin de determinar la estructura del acervo genético de fríjol cultivado en América central y México. Los análisis permitieron relacionar la agrupación en razas que se había realizado previamente mediante criterios morfológicos y agronómicos, con las agrupaciones formadas a partir de este estudio molecular. Este germoplasma resultó ser más complejo de lo que se pensaba anteriormente, se conservaron las agrupaciones de las razas Mesoamérica, Jalisco y Durango. Pero las accesiones del germoplasma de Guatemala no se agruparon con ninguna de las razas mencionadas previamente definiéndose así como una nueva raza. Análisis reportados por Beebe et al. (2001) determinaron la estructura genética de una muestra de 182 genotipos Andinos, analizados mediante el uso de 189 primers polimórficos AFLPs. Dentro de su estudio incluyeron genotipos Mesoamericanos y silvestres; un análisis de correspondencia múltiple permitió separar los grupos Andinos de los Mesoamericanos; dentro de los silvestres los genotipos Mesoamericanos y del sur del Perú se separaron de los del sur de los andes. El Acervo Andino no hubo una clasificación de accesiones como la encontrada por Tohme et al 1996, y la tendencia a formar razas discretas no se detectó. Las razas Nueva Granada, Perú y Chile del acervo Andino fueron definidas esencialmente basadas en la morfología, los resultados de Beebe y colaboradores sugieren que las tres razas pueden tener un origen común, estas razas pudieron haber resultado de la intensiva intervención humana y de la selección para estos rasgos. Un estudio reciente, por Blair et al en 2006, estima la diversidad alélica y la Heterocigocidad de 129 microsatélites en un panel de 44 genotipos de fríjol. Fueron evaluados marcadores génicos y genómicos; el análisis del contenido de información polimórfica (PIC) permitió reconocer un grupo de marcadores con gran capacidad de discriminación que pueden ser útiles en estudios de diversidad genética. Se evaluó la distribución y el rango del tamaño de alelos. Este estudio sugirió que los marcadores genómicos proveen mayor polimorfismo que los génicos arrojando valores en número de alelos de 6.0 vs 9.2 y valores de PIC de 0.446 vs 0.594. 29 Los microsatélites fueron útiles para distinguir genotipos Mesoamericanos, para revelar las razas de cada acervo Andinos de y para separar las accesiones cultivadas de las silvestres. Se encontró mayor polimorfismo (53% Andino y 33.4% Mesoamericano) y estructura de razas dentro del acervo Andino y la tasa de polimorfismo entre los genotipos fue consistente con el acervo y la identidad de razas. La diversidad intrapoblacional fue mayor dentro del acervo Andino que dentro del Mesoamericano y este patrón fue observado para los dos tipos de marcadores evaluados (génicos y genómicos) (Blair et al., 2006). Uno de los últimos estudios realizado con el fin de describir la estructura de razas del acervo Mesoamericano usando microsatélites es el de Díaz & Blair en el 2006, en cual evaluaron 60 genotipos con 52 marcadores; el análisis de correspondencia identificaron dos grupos principales equivalentes a la raza Mesoamérica y un grupo que contenía las razas Durango y Jalisco. El análisis con estos marcadores permitió identificar estos subgrupos, los cuales coinciden con las divisiones de clases comerciales. En una investigación realizada por Blair y colaboradores en el 2007, se buscó caracterizar la estructura de razas de una colección de 123 genotipos representantes del acervo Andino con 33 marcadores; adicional a esto se evaluó una colección de individuos provenientes de Colombia. El análisis de correspondencia múltiple de los genotipos Andinos identificó dos grupos predominantes correspondientes a las razas Nueva Granada y Perú; algunos individuos representantes de la raza Chile se agruparon de forma separada pero muchos individuos definidos en estudios anteriores dentro de esta raza fueron incluidos dentro de las otras razas. 2.3.4 Estudios de diversidad en fríjol Africano Se destacan los trabajos de Martin & Adams (1987) y Khairallah et al. (1990), ambos desarrollados en Malawi, para los que se emplearon dos técnicas importantes para el estudio de la diversidad. En el primero se recurrió al estudio de datos morfológicos, fenológicos y agronómicos, mientras que en el segundo se emplearon marcadores mitocondriales. Estos estudios permitieron encontrar una gran variabilidad morfológica en genotipos cultivados (variedades criollas y líneas 30 mejoradas) de fríjol Africano, aunque estos sólo se agruparon en los dos grandes acervos en términos de variabilidad genética: Andino y Mesoamericano. Por otra parte, en un reciente trabajo llevado a cabo por Moreno en el 2007, en el CIAT, se evaluó la diversidad genética existente en 221 variedades comerciales africanas de fríjol común, siendo este análisis una base para un programa de mejoramiento nutricional en donde la meta final será aumentar el contenido de hierro y zinc. 2.4 CUANTIFICACION DEL CONTENIDO DE MINERALES EN FRÍJOL 2.4.1 Cuantificación por Absorción Atómica (AA) La Absorción Atómica es una de las principales técnicas utilizadas en la cuantificación del contenido de minerales en muestras orgánicas. Ésta técnica espectroscópica tiene como fundamento la absorción de radiación de una longitud de onda determinada por parte de átomos libres, por lo tanto existe la necesidad de liberar el analito de la matriz que lo contiene. Esta radiación es absorbida selectivamente por átomos que tengan niveles energéticos cuya diferencia en energía corresponda a la energía de los fotones incidentes (Rocha, 2000; Skoog et al., 2001). El principio en que se fundamenta la absorción atómica se puede describir de la siguiente forma: cuando se hace pasar una disolución por una llama, los elementos presentes son parcialmente llevados a su forma atómica. Y si a través de la llama se hace pasar un haz de luz proveniente de una lámpara cuyo cátodo contiene el elemento que se desea determinar y que, por tanto, emite las líneas características de ese elemento, los átomos del elemento en cuestión presentes en la llama absorberán esa radiación obedeciendo leyes cuantitativas de forma análoga a la espectrofometría molecular (Muñiz, 1980). Para llevar a cabo esta técnica se requiere que la muestra esté de forma líquida o en solución. Las muestras sólidas son preparadas para el análisis mediante su disolución en un solvente apropiado, en el caso de tejido vegetal se usa ácido 31 perclórico o nítrico; cuando la muestra no es soluble, ésta puede ser digerida a altas temperaturas (Harvey, 2000). La muestra se hace pasar en la forma de una dispersión de gotas muy finas a un atomizador de llama, la disolución de la muestra es nebulizada mediante un flujo de gas oxidante, mezclado con gas combustible, y se transporta a una llama donde se produce la atomización. En la llama se produce una desolvatación, se evapora el disolvente hasta obtener un aerosol rico en moléculas y luego la disociación de la mayoría de estas moléculas produce un gas atómico. La mayoría de los átomos formados así se ionizan originando cationes y electrones (Skoog et al., 2001). Existen dos formas de atomización dentro de la técnica de AA, bien sea por llama o atomización electrotérmica; la elección de cualquiera de estos dos métodos está determinada principalmente por la concentración del analito en la muestra a analizar. La principal ventaja de la absorción atómica con atomizador de llama es la reproducibilidad con la cual la muestra es introducida dentro del espectrofotómetro, y su desventaja significativa es que la eficiencia de la atomización puede ser bastante pobre. Independientemente del método de atomización, la AA es una técnica ideal para cuantificación de trazas y ultratrazas de metales, debido a su sensibilidad, selectividad, precisión y exactitud; adicionalmente, su análisis es rápido y no implica mayor costo. 2.4.2 Estudios de cuantificación de minerales en Fríjol Común Uno de los principales estudios que se han realizado para el análisis del contenido de minerales en el fríjol común, es el de Beebe et al. (2000), en el que se analizaron mas de mil accesiones de la colección núcleo de fríjol del CIAT con el fin de determinar el grado de variabilidad genética del fríjol por contenido mineral, usando la tecnología de Plasma Acoplado Inductivamente ó ICP (Inductive Coupling Plasma), para la cuantificación de hierro y zinc. Encontraron un rango de 34 a 89 ppm con un promedio de 55 ppm para hierro, sin que hubiera evidencia de correlación entre el contenido de hierro y la distribución geográfica; sin embargo, las accesiones Andinas tendían a presentar valores más altos que las Mesoamericanas. 32 El contenido de Zinc en los fríjoles fue uno de los más altos dentro de las plantas; en la evaluación de la colección núcleo se encontraron rangos de 21 a 45 ppm en el contenido de Zinc , con un valor promedio de 35 ppm (Beebe et al., 2000a). Islam et al (2002), analizaron cinco elementos nutricionales (Ca, P, S, Fe y Zn), en la colección núcleo de CIAT, 1072 accesiones, mediante la implementación del método ICP. El producto del ICP fue usado para Espectroscopía de emisión atómica (AES). Obtuvieron un valor mínimo para hierro de 34,60 y máximo de 91,90 ppm y un valor promedio de 54,81 ppm. Para zinc, el valor mínimo fue de 20,7 y valor máximo de 59,40 ppm; el promedio correspondió a 34,40 ppm. En otro estudio se analizaron los contenidos de hierro y zinc en una población de líneas recombinantes, cruce entre G21242 (fríjol trepador colombiano con alto contenido de hierro y zinc) y G21078 (fríjol trepador Argentino con bajo contenido de hierro y zinc). Dos métodos de análisis de minerales fueron implementados, Plasma acoplado inductivamente (ICP) y Espectroscopia de Absorción Atómica (AA). La población fue analizada en dos localizaciones en Colombia (Popayán y Darién), el contenido promedio de hierro y zinc calculado en ppm en la progenie del cruce de poblaciones (G21242 x G21078). Se encontró correlación entre minerales y entre ambientes (Blair et al., 2005). 33 3 3.1 FORMULACIÓN DEL PROBLEMA FORMULACIÓN DEL PROBLEMA El fríjol común (Phaseolus vulgaris L.), es un renglón importante de la economía y alimentación de la mayoría de países en vía de desarrollo; Ruanda (África) es un país con uno de los índices más altos de consumo de ésta leguminosa, por lo tanto se requiere de la profundización en estudios a nivel molecular que permitan caracterizar la diversidad genética de esta especie con miras a apoyar su mejoramiento nutricional. Ruanda, como la mayoría de los países en vía de desarrollo de África Central basa sus ingresos, oportunidades de empleo y en general su economía en la agricultura, ya que cerca del 90% de sus habitantes se encuentra en las áreas rurales (Ferris et al., 2002). La perspectiva económica de Ruanda es un gran reto. El país experimenta un aumento en las tasas de crecimiento de la población, lo que afecta directamente en la disminución de terreno útil para el uso de la agricultura per cápita y a su vez genera un aumento en la demanda de alimentos, lo que trae como consecuencia que la seguridad alimentaria y el alivio de la pobreza estén en su punto más crítico. También se responsabiliza esta presión por tierra como causa de la guerra civil de 1994 que encajó un genocidio de más de un millón de personas en ese país (Sperling, 2001). Para garantizar seguridad alimentaria y que los ingresos rurales aumenten es necesario incrementar la productividad en el sector agronómico. Dicho incremento es posible con el mejoramiento de los principales cultivos del país. Dentro de éstos, se encuentra el fríjol (Phaseolus vulgaris L.), el cual forma parte integral del sistema de producción y consumo en Ruanda; principalmente es apreciado por su larga vida durante el almacenamiento y buenas propiedades nutricionales. Es uno de los alimentos centrales de la dieta en Ruanda, aportando cerca del 60% y 30% de todas las proteínas y calorías ingeridas respectivamente, siendo el segundo en importancia después del maíz (Ferris et al., 2002). 34 Lo anterior indica la necesidad de adelantar procesos de caracterización y evaluación de la diversidad genética de una colección de fríjol de Ruanda, con el fin de establecer un punto de partida en el camino de la implementación de un programa eficiente de mejoramiento, ya sea este nutricional o meramente genético, de esta especie y así poder contar en un futuro cercano con materiales promisorios que suplan las necesidades de consumo. Por otra parte, las accesiones africanas han sido poco estudiadas a nivel molecular lo que genera mayor interés al realizar este estudio. 3.2 JUSTIFICACIÓN El fríjol común (Phaseolus vulgaris L.) es la leguminosa de grano más importante en el mundo siendo uno de los principales productos de la dieta de los países en vía de desarrollo. Es especialmente importante en países en desarrollo de América y en África, regiones donde se produce el 47% y 24% respectivamente, de la producción mundial de fríjol seco (Becerra & Gepts, 1994). El valor nutritivo del fríjol se centra en el alto contenido de proteínas, carbohidratos, grasas, vitaminas y minerales (Bazel & Anderson, 1994). Aún cuando el fríjol es una de las especies más importantes del sistema de producción y consumo en el continente Africano, específicamente en el país de Ruanda, su consumo sobrepasa la producción siendo necesaria su importación; además éste cultivo presenta diversos problemas, por ejemplo la baja fertilidad del suelo, plagas y enfermedades (Ferris et al., 2002). Teniendo en cuenta estos factores que han afectado la economía y la seguridad alimentaria de sus habitantes, se hace imperiosa la necesidad de emprender estudios del conocimiento de la diversidad genética, encaminados hacía un futuro fitomejoramiento de la especie. La diversidad de los recursos genéticos facilita la adaptación a necesidades y condiciones siempre cambiantes y hace posible la agricultura sostenible en muchos de los diferentes ambientes de producción. Los recursos genéticos de una especie vegetal constituyen la materia prima con la que los fitomejoradores producen nuevas variedades (FAO, 1996). 35 Estas son las principales razones por las que se motivó la realización de un estudio de caracterización de la diversidad genética de la colección de germoplasma del fríjol de Ruanda, como apoyo a los procesos de mejoramiento de esta especie en ese país, especialmente dirigido a un mejoramiento nutricional. La caracterización y evaluación de la colección de fríjol se realizará mediante el uso de marcadores genéticos, lo que permitirá el conocimiento de la composición genotípica de estos materiales. Por lo tanto, la presente propuesta se centra en determinar la variabilidad genética mediante marcadores microsatélites y a su vez la composición de minerales (hierro y zinc) de una colección de fríjol de Ruanda. Se recurre a las técnicas moleculares como los microsatélites, ya que se han utilizado con mucho éxito en la estimación de la variabilidad genética dentro y entre poblaciones, así como en muestras de accesiones de especies cultivadas o silvestres, de manera efectiva y rápida (Mitchell et al., 1997) y específicamente se utiliza un marcaje fluorescente, por ser una técnica automatizada que garantiza mayor precisión, sensibilidad, resolución y eficiencia en el genotipaje (Joe et al., 2004). 36 4 4.1 OBJETIVOS Objetivo General Caracterizar la diversidad genética de 355 genotipos de fríjol común provenientes de Ruanda (África), mediante el uso de marcadores moleculares tipo microsatélites marcados con fluorescencia. 4.2 Objetivos Específicos i) Evaluar el polimorfismo alélico para 355 genotipos de fríjol de Ruanda (África) mediante el uso de marcadores moleculares tipo microsatélites analizados con una técnica de fluorescencia. ii) Analizar la relación que presentan los genotipos entre sí mediante su similaridad evaluada con criterios de diversidad genética y el uso de métodos estadísticos. iii) Relacionar por medio de estadística descriptiva los caracteres de grano (color y tamaño) y el contenido de minerales de los genotipos, con las agrupaciones generadas a partir de la evaluación del polimorfismo alélico. 37 5 MATE ERIALES Y MÉTODOS S L elaboración de este trabajo La t (el procesamiento de las mu uestras, análisis molecular y análisis estadístico de los da atos), se lle evó a cabo o en el Laboratorio de C Caracterizac ción de Germoplasma G a de Fríjo ol (LCGF), ubicado en e el Centtro Internaciona al de Agriicultura (CIAT), situado en el municipio de Palmira d departamen to del Valle del Cauca, Colombia. C 5 5.1 Poblac ción de Estu udio P Para el desarrollo de este e proyecto o se utilizó semilla de fríjol f proveniente Ruand da, e específicam ente de ISA AR (Instituto de Cienciass Agronómiccas de Ruan nda); este pa aís e está localiza ado en la parte oriental de d África Ce entral en una a región con nocida como o la S Subsaharian na o la de “g grandes lago os”, con coorrdenadas ge eográficas de e 1° 57′ S 30° 3 4 E, en la fig 4′ gura 4 se muestra la ubicación de Ruanda R en el e continente e Africano. Fiigura 4. Loca alización geog gráfica de Rua anda en el co ontinente Africcano L semillas Las s se encontrraban almaccenadas en el e cuarto de conservació ón de semilllas p pertenecient te al progra ama de Cara acterización de Germop plasma de Fríjol F del CIA AT e Palmira, Valle. La muestra en m para a la evaluacción de la diversidad ge enética fue de 3 355 genotip pos y adicionalmente se utilizaro on 4 materiiales como controles de d diversidad, en e la tabla 5 se muestra an los genotipos y su resspectivo orig gen. 38 Tabla 5. Controles Diversidad utilizados en este estudio con su respectivo origen (acervo al que pertenecen) CONTROLES ACERVO GENÉTICO DOR 364 Mesoamericano FOTO ICA-PIJAO Mesoamericano CALIMA Andino G19833 Andino El modelo de tamaño de muestra propuesto por Leung et al. (1993), predice que con una confiabilidad del 95%, son necesarios 29 genotipos de un acervo genético para capturar o incluir alelos con una frecuencia de hasta el 10%, lo que se cumpliría para el caso de las accesiones provenientes de Ruanda escogidas para este estudio y es conforme con lo propuesto por Li y Nei (1987) quienes aconsejan utilizar un mínimo de 20 a 30 individuos por locus sí el número de loci a examinar es 25. Para este estudio se tiene una muestra de 355 individuos, lo que indica que se tiene un buen número para el análisis de diversidad. 39 5.2 MÉTODOS 5.2.1 Procesamiento del material vegetal: 5.2.1.1 Germinación de la semilla: Se seleccionaron 10 semillas de cada uno de los 355 genotipos las cuales se germinaron en condiciones de laboratorio, de la siguiente manera: Las diez semillas de cada genotipo fueron lavadas superficialmente con agua bidestilada y posteriormente escarificadas (corte longitudinal de la testa en el lado opuesto del micrópilo de la semilla) para asegurar una rápida y uniforme germinación, ya que mediante este proceso se facilita la absorción de agua a la semilla. Las semillas se colocaron de forma lineal y espaciada en el centro de un rectángulo de papel de germinación de 30 x 25cm, debidamente rotulado con el número de identificación de cada genotipo. Cada rectángulo de papel se enrolló y se amarró con un alambre con el fin de asegurar las semillas. Cada rollo se colocó en imbibición en una bandeja con una solución de Sulfato de Calcio (Ca2SO4) 0.5 mM para evitar contaminación con patógenos. Las bandejas con los rollos de papel de germinación se almacenaron bajo condiciones de oscuridad, para evitar el desarrollo de tejidos fotosintéticos ya que éstos pueden afectar la calidad del ADN por la acumulación de almidones. Después de 8 días de crecimiento las hojas cotiledonares habían emergido; se escogió un trifolio etiolado de cada planta, se colectaron en total 10 trifolios por genotipo y se distribuyeron en tres tubos Eppendorf de 2mL (3-3-4 trifolios). 5.2.1.2 Procesamiento Post-germinación Los tubos marcados con la identificación de cada genotipo, fueron almacenados en un congelador a -80°C hasta el momento de su liofilización. La liofilización es un método para deshidratar el tejido por medio de choques congelantes y secado en el estado de congelación bajo condiciones de vacío, haciendo que el hielo pase directamente a vapor de agua (sublimación). El material celular y las macromoléculas secas mantienen su actividad biológica y pueden almacenarse por 40 este estado por periodos largos (Ferreira & Grattapaglia, 1998). Este proceso se llevó a cabo durante dos días en un equipo Dryer MODULYoD-115 marca Thermo. Una vez secas las muestras, se procedió a su maceración con morteros especiales para tubos de microcentrífuga y con la ayuda de un motor manual. 5.2.2 Extracción y cuantificación de ADN Una vez macerados los trifolios se combinó el material de los tres tubos de cada genotipo en un solo tubo Eppendorf de 1,5mL; es necesario aclarar que debido a que la semilla llevaba aproximadamente dos años almacenada en el cuarto de conservación de semillas del CIAT, durante el proceso de germinación se presentaron problemas y en muchos casos los trifolios colectados eran muy pequeños, por lo que la cantidad macerada de los tres tubos cabían perfectamente en un solo tubo de 1,5mL. El proceso de extracción, se realizó empleando el método de Mahuku (2004), que utiliza la acción combinada de la Proteinasa K y del EDTA para inhibir o degradar completamente a las nucleasas (Anexo 1), este método funciona muy bien con poco tejido (Ferreira & Grattapaglia, 1998; Mahuku, 2004). El producto de la extracción se almacenó a -20°C. Con el fin de determinar la calidad del ADN, se sembraron 2 µL de ADN total de cada muestra en un gel de agarosa al 1%, teñido con Bromuro de etidio. La cuantificación del ADN extraído se realizó mediante electroforesis en gel de agarosa utilizando el software Quantity one® v 4.0.3, el cual calcula la cantidad de ADN en cada una de las bandas, de acuerdo a las extrapolaciones que realiza con los patrones de concentración de ADN conocidos (Bio-Rad, 1998), para este caso se utilizaron ADN lambda de [50ng], [100ng], [200ng] y [400ng]. La electroforesis, se realizó en gel de agarosa al 1% y se tiñó con bromuro de etidio; en cada pozo del gel se sembró una mezcla de 2µL de ADN, 6µL de agua grado HPLC y 4µL de Blue Juice (Glicerol + Azul de Bromofenol) y se sometió a electroforesis durante 20 minutos aproximadamente a 120 V. Posteriormente se tomó una fotografía del gel con el equipo GelDoc 2000 de BioRad acoplado a un trasniluminador de luz U.V. 41 Con el fin de corroborar los datos obtenidos a partir de la cuantificación realizada con el software Quantity one®, se realizó una segunda cuantificación del material mediante el uso del Fluorometro DyNA Quant, (Hoefer Pharmacia Biotech Inc., 1995) con base en la solución de colorante HoeschtH 33258 5.2.3 Amplificación mediante PCR de microsatélites analizados con fluorescencia La caracterización de los genotipos se realizó a partir del uso de 30 marcadores tipo microsatélites marcados con fluorocromos (tabla 6) seleccionados de 6 paneles según Blair et al 2007, de los cuales 14 eran génicos y 16 genómicos; este grupo de marcadores fue seleccionado por ser altamente polimórfico (Blair et al., 2003; Diaz, 2005a; Diaz, 2005b; Gaitan-Solis et al., 2002): Tabla 6. Cebadores fluorescentes para la amplificación de microsatélites utilizados en la caracterización genética de la colección de germoplasma de Ruanda. Marcador AG01 BM139 BM143 BM156 BM160 BM165 BM172 BM175 BM183 BM187 BM188a BM188b BM201 BM205 GATs54 GATs91 BMd01 BMd02 BMd08 BMd16 BMd17 BMd18 BMd20 BMd45 BMd46 BMd47 Pv-ctt001 Pv-ag003 Pv-gaat001 Pv-cct001 Motivo Fluorescencia Genómicos (GA)8GGTA(GA)5GGGGACG(AG)4 6-FAM (CT)25 PET (GA)35 6-FAM (CT)32 6-FAM (GA)15(GAA)5 NED (TC)14 TET (GA)23 PET (AT)5(GA)19 VIC (TC)14 TET (CT)10T(CT)14 HEX (CA)18(TA)7 NED (CA)18(TA)7 NED (GA)15 6-FAM (GT)11 PET (GA)5AACAGAGT(GA)8 HEX (GA)17 6-FAM Génicos (AT)9 6-FAM (CGG)8 PET (CT)7 NED (CATG)4 VIC (CGCCAC)6 TET (TGAA)3 HEX (TA)5 VIC (AG)5 TET (TCT)4 TET (AT)5 HEX (AT)9 6-FAM (AG)8 NED (AT)4(T)2 TET (CTT)3(T)3(CTT)6 VIC PET: rojo, VIC: verde, 6-FAM: azul, NED: amarillo TET: verde 42 Panel 7 6 8 6 6 3 5 5 7 7 5 5 7 5 7 5 6 6 5 6 7 9 5 3 8 8 6 6 9 6 Los marcadores fueron diseñados a partir de regiones codificantes (génicos) y no codificantes (genómicos) de Phaseolus vulgaris (Blair et al., 2003; Gaitan-Solis et al., 2002; Yu et al., 2002). Dicha amplificación fue hecha en el laboratorio de Caracterización de Germoplasma de Fríjol del CIAT; los modelos de los termocicladores usados para tal fin fueron PTC-100TM y PTC-200TM (Programmable Thermal Controller) del fabricante MJ Research, INC. Los pasos básicos para realizar una PCR se muestran el la figura 5. Amplificaciones individuales de PCR de cada microsatélite fueron llevadas a cabo en un volumen final de 15 µL por reacción con 15ng de ADN; los reactivos necesarios y condiciones requeridas para realizar el coctel o mezcla para la amplificación de los microsatélites marcados con fluorocromos se muestran en la tabla 7. El extremo 5’ (Forward), de los primers seleccionados, estaba marcado con los siguientes fluorocromos: hexachloro-6-carboxyfluorescein (HEX), 6- carboxyflourescein (6-FAM), (NED), (PET), y (VIC), y sintetizada en Applied Biosystem 3730xl (Applied Biosystem, Foster City, Calif), facilitado por el centro de recursos biotecnológicos (BRC) de la universidad de Cornell, USA. Tabla 7. Reactivos necesarios para coctel PCR, condiciones necesarias y concentraciones originales (stock). Reactivo Condiciones Requeridas [ ] soluciones Originales 1X 10X MgCl2 1.5mM 25mM dNTP's 0.2mM 20mM Primer 3pmol/rxn 2µL Buffer PCR taq [1:10] 0.15µL ADN 25ng/µL Volumen final = 15µL (5µL ADN + 10µL mix) La composición del buffer PCR (100 mM Tris HCl pH 7.2; 500 mM KCl) 43 El programa de PCR para la amplificación consistió en una denaturacion fuerte durante 2 minutos, seguida de 30 ciclos de denaturación a 95°C cada uno de 30 segundos; una etapa de hibridación a 55°C durante 30 segundos; extensión a 72°C durante 50 segundos; y una extensión final de 72°C durante 45 minutos. Se tomaron 2µL del producto de PCR de cada reacción de cada microsatélite y 9µL de agua HPLC, se realizó una mezcla en una placa nueva de 96 pocillos, teniendo en cuenta que la mezcla de cada reacción debía tener producto de los cuatro primers teñidos con fluorocromos (PET: Rojo; VIC: Verde; 6-FAM: Azul; NED: Amarillo) (Blair et al., 2002). Se establecieron 5 paneles (5, 6, 7, 8 y 9) cada uno con la presencia de 4 marcadores (Comunicación Personal M.W Blair mejorador de fríjol, CIAT 2006), teniendo en cuenta que para hacer esta mezcla los marcadores deben tener diferente tamaño y sí éstos se sobrelapan en tamaño, deben ser diferenciados mediante el uso de colores diferentes (Joe et al., 2004). En el Anexo 2 se muestran los marcadores utilizados para este estudio y la forma de organización de estos dentro de cada panel. Se determinó que se debían agregar dos marcadores más (BM165 y BMd45), por lo que se hizo el arreglo de un panel adicional. De esta mezcla se tomaron 0.5 µL para adicionarlo con 9 µL de Formamida Hi Di, 0.06µL de Liz 500 estándar, 0.44µL de agua, es decir un volumen final de 10µL para cada reacción; cada placa de 96 pozos se sometió a denaturación a 94°C durante 3 minutos para finalmente ser analizada en el secuenciador ABI 3730xl. 5.2.4 Análisis en secuenciador Analítico ABI 3730xl Los microsatélites marcados con etiquetas fluorescentes (fluorocromos) de colores verde, azul, amarillo y rojo, fueron analizados automáticamente en un secuenciador de ADN Applied Biosystem 3730xl (Applied Biosystem, Foster City, Calif) facilitado por el centro de recursos biotecnológicos (BRC) de la universidad de Cornell USA, el cual detecta la muestra a través de un sistema de electroforesis capilar; en el anexo 3 se puede observar el ciclo que sigue la muestra en el secuenciador. 44 Los datos de la muestra leída mediante el secuenciador ABI 3730xl, fueron analizados automáticamente por el software GeneMapper v.3.7, el cual interpreta el lenguaje análogo de las lecturas que hace el secuenciador y realiza la identificación de picos y tamaños en los electroferograma generados por la evaluación de unidades fluorescentes por tiempo de elución. Este software combina la información del archivo de la muestra con análisis preconfigurados y calibraciones estándar; las muestras procesadas luego fueron vistas, editadas y analizadas en una ventana generada por el software (AppliedBiosystems, 2004; Joe et al., 2004). En la figura 5 se observa el procedimiento que sigue la muestra una vez se han efectuado las amplificaciones y se ha realizado la mezcla. La muestra entra al secuenciador, posteriormente un software colecta la información analizada y procede a ser leída en otro software autoanalizador el cual puede encontrarse en otro computador con conexión remota, el cual recoge los datos mediante un servidor. Secuenciador ABI 3730 Muestra Preparada Software colector de datos Servidor Software Auto‐analizador GeneMapper Figura 5. Diagrama del procedimiento que sigue la muestra a analizar (líneas azules gruesas señalan cada paso): entra al secuenciador ABI 3730xl, es colectada por un software y se analiza con GeneMapper v.3.7. Modificado de (Joe et al., 2004). 45 5.2.5 Cuantificación de hierro y zinc Los genotipos analizados en este estudio corresponden a la colección de frijol de Ruanda, que incluye semilla de color blanco, rojo, rojo moteado, café, crema y crema moteado, amarillo y amarillo moteado, rosado, púrpura y negro; con tamaños de semilla que se encontraban desde pequeña, mediana y grande. El contenido de minerales, hierro y zinc, fue evaluado mediante la técnica de espectroscopía por absorción atómica (AA). El proceso de obtención de datos para la realización del análisis de minerales, fue realizado previamente a este estudio en el laboratorio de caracterización de germoplasma de fríjol de CIAT. Para llevar a cabo este procedimiento, se pesaron aproximadamente 3 gramos de semillas por cada genotipo, las cuales fueron lavadas y limpiadas con agua destilada y gasa, posteriormente se secaron en un horno a 40°C durante dos días y finalmente se molieron en un molino Retsch modificado en cámaras de teflón y con balines de zirconio con volumen de 25 ml. El polvo obtenido se envasó y etiquetó en frascos de plástico herméticamente sellados. Una vez obtenido el material, las muestras fueron enviadas al Departamento de Servicios Analíticos del CIAT para analizarlas por AA. Las ecuaciones de calibración para predecir el contenido de hierro y zinc fueron obtenidas mediante el software winISI III Project Manager v 1.60, con el modelo matemático de Mínimos Cuadrados Parciales (PLS). 5.2.6 Identificación de características de grano La semilla fue registrada fotográficamente mediante el escaneo digital de 4 semillas, esto con el fin de tener la información visual del color, tamaño y forma de cada genotipo. Se realizó una clasificación de la semilla de acuerdo con su patrón de coloración siguiendo el Catálogo de líneas avanzadas de fríjol del CIAT 1995, ver tabla 8, en donde cada color se representa con un número (1-9), al igual que el brillo de la semilla (1-3) y el patrón de coloración con una letra (R, J, M, P, V), Anexo 4: 46 Tabla 8. Parámetros de descripción para características de la semilla de fríjol; basado en el catalogo de líneas avanzadas. 1 2 3 4 5 6 7 8 9 5.3 Color de Semilla Blanco Bayo, Crema Amarillo Café, Marrón Rosado Rojo Morado, Púrpura Negro Gris o Raros Brillo de Semilla 1 Opaco 2 Semi‐Brillante 3 Brillante Patrón de Color M Moteado J Jaspeado R Rayado P Punteado V Venación ANÁLISIS DE DATOS 5.3.1 Análisis de Diversidad Genética Como primer paso para el análisis de la diversidad se llevó a cabo la determinación de alelos mediante el software GeneMapper v.3.7 (AppliedBiosystems, 2004), el cual generó un archivo en Excel que registró para cada genotipo los alelos en cada uno de los loci. A continuación se construyó una matriz de similaridad genética basada en la proporción de alelos compartidos (PS) calculado con el módulo IML/SAS, esta es una medida adecuada para datos de individuos diploides analizados con microsatélites; este proceso realizado de esta manera es una herramienta útil para los análisis de similaridad genética cuando existe una pequeña porción de datos faltantes por la no amplificación de determinados loci (Comunicación Personal M.C. Duque consultora estadística CIAT, 2007). La elaboración de esta nueva matriz de similaridad se llevó a cabo mediante el paquete estadístico SAS el cual utiliza la siguiente fórmula: / i locus número total de loci 30. Psi proporción de alelos compartidos en locus i. 47 A partir de la construcción de la matriz de similaridad fue posible efectuar dos tipos de análisis: un análisis multivariado de Coordenadas Principales (PCoA) y la obtención de dos representaciones gráficas: una gráfica de 3D y un dendrograma utilizando distancia Euclidiana. El PCoA es una técnica descriptiva de análisis multivariado que representa en un espacio multidimensional la asociación de las bandas alélicas derivadas de los genotipos estudiados; el nivel de asociación se determina de acuerdo a la cercanía que presenten los genotipos en el gráfico de tres dimensiones resultante. Resuelve relaciones complejas en interacciones de factores más simples y menos numerosos (Ferreira & Grattapaglia, 1998). Las coordenadas de ubicación obtenidas para cada genotipo fueron graficadas mediante SAS-GRAPH modulo G3D para gráficas, Proc cluster para generación de grupos, lo cual permitió determinar conjuntos de genotipos de acuerdo con el perfil molecular obtenido; en NTSYS se hizo una descomposición espectral mediante el módulo EIGEN, se crearon las coordenadas de cada punto en el nuevo espacio definido por las coordenadas principales; se realizó un proceso de agrupamiento en SAS y con el criterio de R2 y se eligió el número de grupos (Comunicación Personal M.C Duque consultora estadística, CIAT 2007). Esta representación gráfica refleja la similaridad genética entre genotipos en términos de distancias geométricas, definida por la proporción de alelos compartidos; esto permitió establecer la estructura del conjunto de individuos estudiados (Ayad et al., 1997). El siguiente paso fue la obtención del dendrograma el cual tiene las coordenadas del PCoA utilizando distancia euclidiana y el método de agrupamiento UPGMA mediante los módulos GRAPHICS y TREE PLOT del programa NTSYS v 2.10 (Rohlf, 2002). 5.3.1.1 Parámetros de uso común de diversidad para población total Se midieron los parámetros de uso común tales como: Heterocigocidad Observada, Diversidad Genética de Nei (1987) y número de alelos encontrados para cada marcador, mediante el programa estadístico Powermarker V3.25 (Liu & Muse, 2005), 48 La Heterocigocidad observada corresponde a la proporción de individuos heterocigotos en la población. Para un locus es estimada como (Weir, 1996): 1 locus l‐ésimo Frecuencia del genotipo en el locus é en la población La diversidad genética se define en términos de frecuencias génicas y usualmente se refiere a la Heterocigocidad esperada; es definida como la probabilidad de que dos alelos que sean escogidos aleatoriamente de la población sean diferentes. Según Weir en 1996 un estimador insesgado de la diversidad genética en el locus th es (Liu & Muse, 2005): 1 / 1 1 = alelos en el locus l locus lth Frecuencia del alelo en el locus th en la población Número de individuos muestreados coeficiente de endogamia 5.3.1.2 Parámetros de uso común de diversidad para grupos formados a partir de PCoA Los parámetros tenidos en cuenta fueron los mismos que se utilizaron en la caracterización de la diversidad genética polimorfismo, Heterocigocidad observada, Diversidad genética, entre los grupos definidos a partir de PCoA, para este fin se utilizó el software Popgene v1.32 (Yeh et al., 1997). 5.3.1.3 Coeficiente de similaridad Con el fin de observar otra forma de agrupación de los datos se utilizó un método diferente al de PCoA, usando el software Darwin v. 5.0.149. A partir de una matriz binaria de los alelos presentes en el estudio, se estimó el índice de disimilaridad de 49 DICE, que utiliza la fórmula a continuación expuesta. El módulo para dibujar el árbol fue NeighborJoining. 2 : disimilaridad entre unidades i y j : número de variables donde xi presencia y xj presencia : número de variables donde xi presencia y xj ausencia : número de variables donde xi ausencia y xj presencia Este método fue propuesto por Saitou y Masatoshi Nei (1987), basado en el principio de parsimonia y consiste en la unión de los genotipos más cercanos (vecinos) tratando de minimizar la longitud total del árbol. 5.3.2 Análisis de cuantificación de minerales Con base en estudios previos de cuantificación de minerales realizados para la colección núcleo del CIAT (Beebe et al., 2000a; Islam et al., 2002a), se consideró lo siguiente (tabla 9): Tabla 9. Rango de valores medidos en ppm para interpretación de resultados de cuantificación de minerales (hierro y zinc). Bajo Medio Alto Hierro Zinc <50ppm <20ppm 51-60ppm 21-30ppm >61ppm >31ppm Se analizaron los datos mediante estadística descriptiva en el programa SAS, este análisis incluyó valores máximos, mínimos, promedio, coeficiente de variación, desviación estándar, varianza y curtosis. Se elaboraron histogramas con el fin de determinar la distribución de datos en la población de estudio. Se elaboraron pruebas ANOVA con el fin de comparar los grupos generados a partir del análisis de diversidad (PCoA) y poder reconocer si había o no diferencias significativas, 50 posteriormente se realizó una prueba para ajustar medias llamada Least Square Means y se hizo una prueba de separación de medias de rango múltiple (RyanEinot-Gabriel-Welsch), mediante el paquete estadístico SAS. 5.3.3 Características morfológicas Se realizaron gráficas que muestran la distribución porcentual de cada característica morfológica presentada por los individuos dentro de la población total. Adicional a esto se realizaron tablas de contingencia que permitieron describir la distribución de cada característica dentro de los grupos formados a partir de PCoA 51 6 6.1 RESULTADOS ANÁLISIS DE DIVERSIDAD GENÉTICA 6.1.1 Diversidad Genética y estructura Poblacional 6.1.1.1 Determinación de alelos Una vez se obtuvieron los electroferogramas se realizó la lectura de alelos presentes para cada marcador. En la figura 6 se muestra la amplificación de 4 marcadores para un mismo individuo, (GATs91, BMd20, BMd08 y BM172) pertenecientes al panel 5A. Como se puede observar cada marcador fue etiquetado con un fluorocromo de color diferente: 6-FAM (azul), NED (amarillo), PET (rojo), y VIC (verde). MARCADOR Figura 6. Electroferograma obtenido a partir del análisis por ABI 3730xl y generado por el software GeneMapper v.3.7. Se muestra la amplificación de 4 microsatélites marcados con fluorocromos 6-FAM (Azul), PET (Rojo), VIC (Verde) y NED (Amarillo; en la gráfica con color negro), para un mismo individuo. Los picos representan la intensidad de fluorescencia (eje vertical) y tamaños estimados en nucleótidos (eje horizontal). 52 En la figura 7 se presentan los mismos 4 marcadores de la figura anterior; en este caso se sitúan en un solo plano con el marcador estándar denominado LIZ 500, el cual fue efectivo para estimar los pesos moleculares de todos los productos de PCR amplificados a lo largo de los paneles. Figura 7. Electroferograma obtenido a partir del análisis por secuenciador ABI 3730xl y generado por software GeneMapper v.3.7. Se muestra la distribución de los picos (zapote) del marcador estándar LIZ-500 junto con los marcadores del panel 5A. Nuevamente los picos representan la intensidad de fluorescencia (eje vertical) y tamaños estimados en nucleótidos (eje horizontal). 6.1.1.2 Población Total Para el análisis de la población de 359 genotipos (incluyendo los 4 controles de diversidad genética) mediante el uso de 30 microsatélites marcados con fluorescencia, fue posible encontrar 301 alelos en total para toda la población en estudio, un valor alto sí es comparado con otros estudios también de microsatélites (Blair et al., 2007; Díaz & Blair, 2006) en los que no se encontró un valor superior a 270 alelos. Uno de los promedios de alelos más altos fue el encontrado por Blair y 53 colaboradores en el 2006, quienes obtuvieron 7.8 por marcador, sin embargo el valor encontrado en este estudio sigue siendo superior (ver tabla 10). Tabla 10. No de Alelos, Diversidad Genética y Heterocigocidad observada de los 30 microsatélites (16 Genómicos y 14 Génicos) utilizados en este estudio. Marcador AG01 BM139 BM143 BM156 BM160 BM165 BM172 BM175 BM183 BM187 BM188-a BM188-b BM201 BM205 GATs54 GATs91 Media Genómicos Marcador BMd01 BMd02 BMd08 BMd16 BMd17 BMd18 BMd20 BMd45 BMd46 BMd47 Pv-ctt001 Pv-ag003 Pv-gaat001 Pv-cct001 Media Génicos MEDIA TOTAL Genómicos No de Alelos 6 11 31 18 16 9 9 12 14 40 4 16 9 7 3 19 14 Génicos No. ind obs. No de Alelos 349 16 355 2 356 5 344 6 359 5 357 5 356 5 357 4 349 4 350 4 358 5 355 3 358 9 349 4 353.7 5.5 354.18 10.16 No. ind obs. 355 358 353 358 356 358 356 359 357 348 358 353 337 356 357 354 354.6 : Marcadores con mayor número de alelos Ve Verde: Marcadores con alta diversidad genética Diversidad Genética 0.32 0.52 0.89 0.88 0.66 0.85 0.51 0.78 0.81 0.92 0.51 0.85 0.72 0.66 0.52 0.91 0.71 Ho* 0.14 0.13 0.44 0.31 0.13 0.18 0.13 0.14 0.17 0.41 0.01 0.65 0.18 0.02 0 0.2 0.2 Diversidad Genética 0.81 0.5 0.53 0.57 0.67 0.32 0.66 0.49 0.5 0.51 0.72 0.51 0.56 0.02 0.53 0.62 Ho* 0.61 0.12 0 0.11 0.3 0.12 0.22 0.09 0 0.01 0.39 0 0.43 0.01 0.17 0.19 Magenta: Marcadores con mayor Heterocigocidad observada *Ho: Heterocigocidad Observada 54 Todos los marcadores fueron polimórficos; se destacaron BM143 y BM187 por presentar el número más alto de alelos dentro de la población de estudio, lo cual coincide con el estudio de razas andinas (Diaz, 2005a), en el que se reporta al marcador BM143 como muy polimórfico. Estos dos marcadores junto con GATs91 presentan también los valores más altos de diversidad genética. Los marcadores BM188b y BMd01 presentaron alto número de individuos heterocigotos (tabla 10), lo que indica que estos marcadores son menos útiles para estudios en un futuro por la posible presencia de bandas inesperadas que pueden inflar el resultado de la Heterocigocidad observada, ya que la mayoría de marcadores presentan este valor por debajo de 0.20; otros marcadores problemáticos pueden ser: BM143, BM156, BM187, BMd17, BMd20, Pv-ctt001 y Pvgaat001, por presentar altos valores para este índice. Al hacer la comparación del promedio de número de alelos entre los dos tipos de marcadores utilizados, es posible observar que los genómicos presentan valores más altos que los marcadores génicos. De la misma forma el índice de diversidad genética fue mayor para los genómicos. Estos resultados son coherentes y corresponden con los presentados por Blair y colaboradores y Díaz & Blair en 2006, quienes reportan que los marcadores genómicos presentan mayor número de alelos y diversidad genética. Por otra parte se observa que el número de alelos en los marcadores genómicos fluctúa entre 3 y 40, mientras que en los génicos presentan valores muy similares, es decir no están variando de la misma forma que los genómicos. Para los marcadores Pv-cct001 (génico) y AG01 (genómico) se encontraron los valores más bajos de diversidad genética, sin embargo es posible observar una amplia diferencia numérica entre estos dos valores, mostrando que los marcadores genómicos tienen diversidad mucho más alta. Por otra parte, los marcadores BM187 (genómico) y BMd01 (génico) presentaron el número máximo de alelos encontrados para un locus dado dentro del conjunto completo de genotipos; se aprecia una amplia diferencia numérica entre los dos tipos de marcadores. Se realizó una prueba F para comparar las varianzas de los parámetros de diversidad para los dos tipos de marcadores; esta prueba demostró que las 55 varianzas no son estadísticamente diferentes. Luego se realizó una prueba t de comparación de medias para los mismos parámetros y se encontró que la diversidad genética promedio para los marcadores génicos difiere significativamente del promedio encontrado para los genómicos. En la tabla 11 se muestran los resultados para cada parámetro dentro de cada tipo de marcador, la prueba completa se muestra en el anexo 5. Tabla 11. Prueba t para comparar parámetros de diversidad (Heterocigocidad Observada y Diversidad Genética) entre marcadores genómicos y génicos. Tipo de marcador N Genómicos Génicos 16 14 Het. Obs Prom 0.2 0.17 Var 0.02 0.03 D. Genética Prom* 0.7 0.52 Var 0.034 0.035 * : Promedios significativamente diferentes P<0.013 NOTA: en cada prueba realizada, hubo homogeneidad de varianza 6.1.1.3 Análisis de Ordenación El análisis de ordenación permitió determinar de forma contundente la existencia y separación de los dos acervos principales del fríjol común, en la colección de germoplasma de Ruanda. Mediante el método de ordenación conocido como Análisis de Coordenadas Principales (PCoA) y su representación gráfica en tres dimensiones (Figuras 8 y 9), se mostró la presencia de agrupamientos dentro de los genotipos analizados, los cuales tienen correspondencia con la estructura de acervos Andino y Mesoamericano propuesta en diversos estudios morfológicos (Singh et al., 1991b), bioquímicos (Gepts & Bliss, 1986; Koenig & Gepts, 1989) y moleculares (Beebe et al., 2001; Beebe et al., 2000b; Blair et al., 2006; Díaz & Blair, 2006). La representación gráfica en tres dimensiones permite observar la estructura y las distancias geométricas del conjunto de los genotipos estudiados, definidas por la proporción de alelos compartidos, siendo esto un reflejo de la similaridad genética existente entre los mismos. Una de las grandes ventajas de este tipo de gráficos en 3D es que se puede observar las relaciones de cada genotipo con todos los demás del estudio, siendo ésta representación mucho más didáctica y menos lineal que los dendrogramas en los cuales no se permite observar todas las diferentes relaciones que ocurren entre uno y todos los genotipos; es posible decir que las distancias que manejan los dendrogramas pueden estar solapando otras importantes ya que 56 muestran una agrupación de un individuo a un grupo específico pero teniendo en cuenta solo un criterio de distancia (Comunicación Personal M.C Duque consultora estadística, CIAT 2007). Andino CONTROLES Meso I Meso II DOR 364 Meso III ICA‐PIJAO Meso IV CALIMA G19833 Introgresados Individuo Raro 1 Individuo Raro 2 Figura 8. Representación gráfica en tres dimensiones de la distribución y ubicación espacial de los genotipos de Ruanda a partir del Análisis de Coordenadas Principales (PCoA), teniendo en primer plano horizontal la dimensión 2. Controles de cada acervo encerrados en círculos. El grupo señalado corresponde un posible grupo de individuos introgresados. Las accesiones utilizadas como controles, andinas (círculos azules) y Mesoamericanas (círculos rojos), se ubicaron respectivamente como se esperaba 57 en los diferentes grupos, Calima y G19833 dentro del grupo Andino y en el grupo de los Mesoamericanos DOR364 e ICA-PIJAO. Figura 9. Representación gráfica en tres dimensiones de la distribución y ubicación espacial de los genotipos de Ruanda a partir del Análisis de Coordenadas Principales (PCoA), teniendo en primer plano horizontal las dimensiones 1 y 2 De acuerdo a lo visualizado en la figura 8 en la que se tiene como primer plano la dimensión 2, se puede describir la forma en la cual se distribuye la variabilidad de la siguiente manera: la dimensión 2 separa por completo los acervos Andino y Mesoamericano dejando en el centro algunos individuos que posiblemente sean candidatos de introgresión ya que tienden a fluctuar entre los dos grupos principales, algunos de estos genotipos corresponden al grupo de Mesoamericanos II (trébol verde encerados por una línea azul) y los otros son los genotipos representados con cruces azules. 58 A diferencia del grupo de Andinos, dentro del acervo Mesoamericano se puede observar que hay una subdivisión a nivel de la dimensión 3 que parte a este grupo en cuatro: Mesoamericanos I (círculo azul), Mesoamericanos II (trébol verde), Mesoamericanos III (Rombo fucsia) y Mesoamericanos IV (estrella negra). Sin embargo comparten elementos en las dimensiones 1 y 2 razón por la cual se encuentran agrupados dentro del gran grupo Mesoamericano, reflejando similaridad en su composición alélica. El grupo de las cruces constituye individuos muy diversos que pueden estar en parte relacionados con el grupo de Mesoamericanos I y con los Andinos puesto que están a la misma altura y forma un puente a través de la dimensión 2. Además, estos individuos pueden estar compartiendo características con los grupos de los Mesoamericanos III y nuevamente los Andinos, ya que se observa en la dimensión 2 la aparición de parte de estos individuos dentro de estos grupos. Por lo tanto, de acuerdo a esta distribución en estos diagramas este grupo (cruces azules) puede corresponder a eventos de introgresión En la figura 9 los individuos candidatos a ser determinados como introgresados se muestran dispersos en el diagrama, entrando al conjunto de los dos acervos principales. Por otra parte, se puede observar que los dos individuos RW226 y RW269 se consideran como raros debido a que en esta perspectiva se muestran como individuos completamente separados en el estudio; en la figura 10 se muestra su registro fotográfico, se caracterizan por ser de grano pequeño de color rojo, características típicas del acervo mesoamericano. RW226 RW269 Figura 10. Individuos considerados como raros a partir del análisis de coordenadas principales. 59 Por otra parte, a partir del análisis de coordenadas principales se elaboró un dendrograma (figura 11) en el que se muestran la separación y definición de dos grupos principales con una similaridad promedio de 0.85. De acuerdo con los controles de diversidad que se tuvieron en cuenta fue posible establecer a que acervo pertenecían los genotipos en estudio. Es posible determinar la predominancia del acervo Mesoamericano con respecto al Andino, con un total de 208 genotipos contra 132; el resto de individuos son los que posiblemente sean introgresados, sin embargo no se ubican en esta figura ya que a la distancia de Mesoamericanos similaridad de 0.85 solo se dividen los dos acervos principales. ICA DOR Andinos 1 0 3 MW G19 CAL 0.00 0.25 0.50 0.75 1.00 Coeficiente de distancia euclidiana Figura 11. Dendrograma de acervos genéticos obtenido por distancia euclidiana aplicada a coordenadas obtenidas por PCoA. En la parte superior izquierda en rojo se encuentra el grupo Mesoamericano con sus respectivos controles en azul y en la inferior el grupo Andino en verde y sus controles en amarillo. 60 En los dendrogramas de las figuras 12A, 12B y 12C se determina de manera más detallada las agrupaciones formadas dentro de cada acervo, se observa que el grupo de los Andinos no sufrió una subdivisión mientras que el Mesoamericano tuvo 4. Con fines ilustrativos la gráfica se dividió en tres partes. 103 438 596 257 595 MI: Mesoamericanos grupo 1 MII: Mesoamericanos grupo 2 MIII: Mesoamericanos grupo 3 MIV: Mesoamericanos grupo 4 A: Grupo de Andinos I: Grupo de Introgresados 134 400 175 266 465 500 586 151 258 415 152 158 606 273 181 211 556 582 238 518 207 77 557 59 563 110 MI 119 145 96 440 112 122 121 124 128 126 143 185 240 267 328 147 605 270 87 166 187 429 436 242 95 156 572 21 550 23 39 421 38 530 408 445 284 285 101 136 492 140 196 153 186 102 441 682 73 76 69 71 133 188 434 679 61 M III 157 277 64 180 176 182 235 72 244 74 177 66 184 62 70 428 150 444 410 234 281 676 105 107 142 287 137 149 209 141 146 192 0.00 0.25 0.50 0.75 1.00 Coeficiente de distancia euclidiana Figura 12A. Dendrograma de acervos genéticos obtenido por distancia euclidiana aplicada a coordenadas obtenidas por PCoA. Muestra dos grupos formados en el acervo Mesoamericano (MI y MIII). En la figura 12A se observan algunas discrepancias para genotipos de un grupo determinado que fueron asignados en otro diferente; por ejemplo dos individuos (marcados con color fucsia) del MIII se ubican dentro de MI (marcados con color azul claro). Algunos individuos que aparecieron como posibles candidatos a ser 61 introgresados en las figuras 8 y 9 se ubicaron dentro de los grupos de Mesoamericanos I y IV, (fig 12A se señalan con líneas azules oscuras gruesas). 199 144 109 139 154 MI: Mesoamericanos grupo 1 MII: Mesoamericanos grupo 2 MIII: Mesoamericanos grupo 3 MIV: Mesoamericanos grupo 4 A: Grupo de Andinos I: Grupo de Introgresados 278 459 575 127 16 243 155 ICA 104 274 259 12 597 170 DOR 114 115 275 116 118 Individuos raros: Líneas rojas en MIV y en I. 130 319 M II 320 236 117 129 131 312 58 570 159 81 94 212 82 80 93 88 271 24 260 25 564 461 647 272 509 255 507 171 172 568 174 92 10 103MW 17 15 574 11 554 M IV 165 224 539 567 90 19 1 27 28 540 269 603 26 3 601 37 536 522 M-I? 573 20 620 667 247 498 279 655 I 426 613 604 268 611 357 678 226 162 44 36 41 40 193 386 A 227 231 4 89 204 32 31 45 229 526 5 35 552 523 0.00 0.25 0.50 0.75 1.00 Coeficiente de distancia euclidiana Figura 12B. Dendrograma de acervos genéticos obtenido por distancia euclidiana aplicada a coordenadas obtenidas por PCoA. Muestra los grupos formados en el acervo Mesoamericano (MII y MIV), al igual que un grupo de introgresados y parte de los andinos y un posible grupo nuevo de introgresados que se separa de MII. En el dendrograma 12B se ve delimitado el grupo de los MII (color verde) dentro del cual se ubican los dos controles; al igual que en las gráficas 8 y 9, se puede observar que un grupo de individuos de MII se separó del gran grupo y se ubican hacía la posición de los Andinos muy cerca de los introgresados; lo que podría sugerir que las dos gráficas muestran a estos individuos como un posible nuevo 62 grupo de introgresados, sugiriendo flujo de genes entre acervos. Por otra parte en la representación del dendrograma 12B se ubican los individuos raros como líneas rojas dentro del grupo de MIV y dentro de un grupo de posibles Introgresados. 475 201 220 6 253 MI: Mesoamericanos grupo 1 MII: Mesoamericanos grupo 2 MIII: Mesoamericanos grupo 3 MIV: Mesoamericanos grupo 4 A: Grupo de Andinos I: Grupo de Introgresados 325 479 78 55 7 9 219 609 630 385 397 404 221 538 249 290 303 298 299 625 481 216 302 516 310 454 316 468 389 640 514 205 223 333 218 206 297 54 8 214 373 33 340 34 215 232 217 321 383 375 335 A 542 359 103MW 336 371 288 291 368 341 50 345 338 296 47 G19 191 476 399 246 289 480 245 393 474 636 631 637 634 295 194 497 311 56 329 377 46 49 478 283 292 464 48 384 672 282 332 376 374 CAL 370 390 394 379 301 164 230 674 30 189 43 326 163 528 642 0.00 0.25 0.50 0.75 1.00 Coeficiente de distancia euclidiana Figura 12C. Dendrograma de acervos genéticos obtenido por distancia euclidiana aplicada a coordenadas obtenidas por PCoA. Muestra dos grupos formados en el acervo Mesoamericano (MI y MIII). El grupo de los genotipos pertenecientes al acervo Andino, líneas de color rosado pálido, se ubica en parte de la figura 12B y se completa este grupo en la figura 12C; para este estudio este acervo no tiene subdivisión; los controles están mucho más separados que los controles Mesoamericanos lo que puede sugerir la presencia de razas diferentes. Mientras tanto hay una agrupación de individuos mayormente introgresados que se ubican dentro de los andinos al final de la figura 12C. 63 6.1.1.4 Grupos definidos mediante PCoA El análisis de coordenadas principales permitió definir 6 grupos en total: un grupo de Andino, 4 grupos dentro de Mesoamericanos: I, II, III y IV y un grupo llamado introgresados. Como se muestra en la tabla 12, el grupo de Andinos fue el que más individuos y número de alelos presentó, no obstante este alto valor puede estar relacionado con el hecho que este grupo no se dividió en subgrupos. A pesar de esto, el valor más alto para diversidad genética, medida a partir del índice de Nei, se encontró en el grupo de los individuos que posiblemente sean considerados como introgresados. El segundo valor más alto calculado para diversidad se encuentra en el grupo de los Mesoamericanos II, sin embargo dentro de este grupo puede existir un grupo de individuos introgresados (figura 8), por lo que se podría sobrestimar la diversidad de este grupo. Tabla 12. Descriptores de diversidad para 6 grupos definidos por PCoA. Con fines ilustrativos, las celdas se han coloreado para diferenciar las variables; el tamaño de la barra de color es proporcional al número que aparece en la misma permitiendo hacer una comparación de cada variable entre grupos. Grupos Poblacionales No Indiv Andino Meso I Meso II Meso III Meso IV Introgresados 132 65 79 43 21 17 Media No Alelos 7.53 5.33 6.46 4.03 3.73 4.86 H(Nei) 0.420 0.433 0.495 0.354 0.391 0.586 No loci polimorficos 29 29 30 28 28 29 % loci polimorficos 96.67 96.67 100 93.33 93.33 96.67 Con el fin de hacer una comparación más general de los acervos de fríjol es posible establecer 3 grupos, uniendo los 4 Mesoamericanos a partir de los datos generados por PCoA; en la tabla 13 se presenta la comparación de estos. El comportamiento observado para cada una de las poblaciones fue similar al de la población total pues los marcadores genómicos fueron más polimórficos y presentaron mayor diversidad que los génicos. Por otra parte, la diferencia numérica en cuanto al polimorfismo entre los grupos Mesoamericano y Andino no fue muy amplia, ya que solo se diferenciaron en un alelo; de la misma forma sucede con el índice de diversidad no existe una amplia diferencia numérica entre estos dos grupos. El grupo de introgresados sigue presentando el valor más alto para la diversidad genética. 64 Tabla 13. Descriptores de diversidad (Número de alelos y Diversidad genética de Nei) para 30 loci SSR en población definida a partir de PCoA. Con fines ilustrativos, las celdas se han coloreado para diferenciar las variables; el tamaño de la barra de color es proporcional al número que aparece en la misma y permite hacer una comparación de cada variable entre marcadores génicos y genómicos. Mesoamericanos Marcador AG01 Andinos Introgresados No de Alelos H(Nei) No de Alelos H(Nei) No de Alelos H(Nei) 6 0.0982 3 0.4954 3 0.4239 BM139 7 0.0801 8 0.7836 7 0.4446 BM143 20 0.8181 24 0.8845 7 0.7949 BM156 10 0.7818 13 0.8462 8 0.8183 BM160 9 0.2086 15 0.8788 9 0.6522 BM165 8 0.8155 7 0.5212 6 0.7889 BM172 6 0.0613 8 0.7876 6 0.4014 BM175 10 0.6158 7 0.5605 7 0.7093 BM183 11 0.7301 11 0.5437 4 0.6436 BM187 17 0.8706 35 0.9320 9 0.8547 BM188-a 4 0.5454 2 0.1400 3 0.6016 BM188-b 15 0.8604 12 0.7775 12 0.84 BM201 9 0.6602 6 0.1145 5 0.6348 BM205 6 0.4284 5 0.4955 5 0.7266 GATs54 3 0.4355 3 0.3585 2 0.3599 GATs91 16 0.8516 12 0.7799 10 0.8564 BMd01 15 0.7353 13 0.5996 7 0.8244 BMd02 2 0.2523 2 0.0301 2 0.4922 BMd08 5 0.5746 2 0.2829 3 0.6367 BMd16 6 0.3910 5 0.1940 3 0.4941 BMd17 5 0.6146 4 0.1288 4 0.6436 BMd18 5 0.3981 3 0.1783 3 0.2145 BMd20 5 0.5491 3 0.1168 3 0.6228 BMd45 2 0.0959 4 0.0965 2 0.4844 BMd46 3 0.3085 2 0.2159 3 0.5547 BMd47 3 0.2320 3 0.0543 2 0.4983 Pv-ctt001 5 0.6460 4 0.4873 4 0.6436 Pv-ag003 3 0.2584 1 0.0000 2 0.4297 Pv-gaat001 7 0.4253 7 0.5162 4 0.5069 Pv-cct001 4 0.0239 2 0.0239 1 0 Suma Total alelos 227 226 146 Media Genómicos 9.813 5.000 0.554 0.393 10.688 3.929 0.619 0.209 6.438 0.659 Media Génicos 3.071 0.503 MEDIA TOTAL 7.567 0.479 7.533 0.427 4.867 0.587 6.1.2 Posibles eventos de introgresión entre acervos A partir del análisis de coordenadas principales se puede observar que existe un grupo de individuos que pueden describirse como eventos de introgresión. En las figuras 8 y 9 se muestran con un ícono azul en forma de cruz y se ven claramente distribuidos en la mitad de cada gráfico, es decir fluctuando entre los dos grupos principales. 65 Aunque en este estudio no se tengan los datos morfoagronómicos suficientes que permitan establecer de manera definitiva rasgos aceptables para hablar de introgresión, es posible observar que a pesar de que algunos individuos presenten ciertas características morfológicas de semillas típicas de un acervo, estos son clasificados o agrupados dentro de otro como respuesta a su perfil molecular evaluado en 30 loci. Por ejemplo, en la figura 13a los individuos muestran caracteres de semilla propios del acervo Mesoamericano (tamaño pequeño), sin embargo en el dendrograma mostrado en la figura 12C se agrupan dentro del acervo Andino. RW 30 a c RW 105 RW 230 RW 43 RW 268 RW 285 RW 142 b RW 674 RW 301 RW 426 RW 357 RW 107 RW 604 d RW 284 RW 611 RW 613 RW 678 Figura 13. Individuos que se presentan como posibles eventos de introgresión dentro del estudio; se divide la imagen de acuerdo con la agrupación observada en el dendrograma. a) Individuos agrupados dentro de acervo Andino; b) Individuos agrupados dentro de acervo Mesoamericano grupo I; c) Individuos agrupados dentro de acervo Mesoamericano grupo II; d) Individuos agrupados dentro de acervo Mesoamericano pero no incluido dentro de ningún grupo de Mesoamericano. 66 En el caso de los demás individuos presuntos de ser introgresados, se puede observar (figura 13 b, c y d) que morfológicamente su semilla tiene características típicas del acervo Mesoamericano (semilla de tamaño mediano-pequeño) y en efecto en el dendrograma (figura 12A y B) se agrupan dentro de algunos grupos de este acervo; no obstante se puede presumir a partir de los datos moleculares obtenidos, que estos genotipos presentan algún tipo de introgresión ya que al realizar el análisis de ordenación PCoA, éstos no se encuentran definidos dentro de un grupo en particular sino que fluctúan entre los dos acervos principales (como se muestra en las figuras 8 y 9). Dentro de este mismo contexto, es de gran importancia resaltar la posible aparición de un segundo grupo de introgresión, señalado en la gráfica 8 con un circulo azul. Algunos individuos que se agruparon dentro del grupo de Mesoamericano II (a partir del análisis de coordenadas principales), se encuentran formando un puente entre éste y los andinos, como se señala en la misma gráfica, razón que permite pensar que existe un posible flujo de genes entre acervos. Se llevó a cabo un nuevo análisis de los parámetros de diversidad (tabla 14) teniendo en cuenta el nuevo grupo de posibles introgresados, al cual se le ha denominado Meso-Intro; como era de esperase, los valores no cambiarían dentro de los grupos anteriormente analizados, excepto para el grupo de Mesoamericanos II, debido a que se separaron 17 individuos de éste. El nuevo grupo formado (MesoIntro) tiene el segundo valor más alto de diversidad en comparación con los Mesoamericanos y Andinos, lo cual resulta interesante ya que los dos grupos con diversidad más alta son los que posiblemente sean considerados como Introgresados. La diversidad y el promedio de número de alelos en el grupo Mesoamericano II disminuyen cuando se separa el grupo de posibles introgresados, esto se muestra en la parte inferior de la tabla 14, al igual que la comparación de valores entre el grupo general de los Mesoamericanos antes de la separación de Meso-Intro y después de esta. 67 Tabla 14. Análisis de los parámetros de diversidad (Número de alelos y Diversidad genética de Nei) para 7 grupos formados incluyendo el nuevo grupo considerado como introgresado (Mesi-Intro). Se resaltan las columnas en azul claro para identificar los cambios obtenidos con respecto a los análisis realizados para 6 grupos. Se muestra una tabla adicional en la parte inferior que muestra los valores obtenidos en el grupo Meso II y Meso general, para los mismos parámetros, antes y después de la separación del grupo Meso-Intro. Meso I Marcador Meso II No de H(Nei) No de Alelos Alelos H(Nei) Meso III Meso IV Introgresados Meso-Intro H(Nei) No de Alelos H(Nei) 0.395 AG01 4 0.089 3 0.078 2 0.045 1 0.000 3 0.495 3 0.424 4 BM139 3 0.031 3 0.078 1 0.000 3 0.092 8 0.784 7 0.445 4 0.393 BM143 14 0.835 12 0.735 13 0.833 4 0.364 24 0.885 7 0.795 8 0.649 BM156 7 0.758 6 0.777 5 0.686 4 0.609 13 0.846 8 0.818 8 0.808 BM160 5 0.145 4 0.122 3 0.246 2 0.047 15 0.879 9 0.652 7 0.666 BM165 6 0.751 6 0.801 4 0.570 4 0.693 7 0.521 6 0.789 6 0.803 BM172 3 0.030 2 0.032 1 0.000 3 0.092 8 0.788 6 0.401 3 0.348 BM175 6 0.483 7 0.548 3 0.152 3 0.176 7 0.561 7 0.709 8 0.803 BM183 9 0.695 7 0.667 5 0.602 6 0.594 11 0.544 4 0.644 8 0.796 BM187 13 0.853 14 0.844 9 0.767 5 0.523 35 0.932 9 0.855 9 0.784 BM188-a 3 0.480 4 0.541 4 0.112 3 0.177 2 0.140 3 0.602 2 0.360 BM188-b 12 0.840 11 0.864 8 0.657 9 0.862 12 0.778 12 0.840 10 0.822 BM201 7 0.580 8 0.670 5 0.102 3 0.395 6 0.115 5 0.635 5 0.662 BM205 4 0.368 5 0.416 4 0.389 4 0.458 5 0.496 5 0.727 5 0.621 GATs54 2 0.401 2 0.271 3 0.511 2 0.172 3 0.359 2 0.360 2 0.484 GATs91 12 0.839 9 0.840 8 0.604 8 0.750 12 0.780 10 0.856 12 0.884 BMd01 10 0.696 11 0.712 9 0.715 12 0.795 13 0.600 7 0.824 8 0.760 BMd02 2 0.281 2 0.121 2 0.110 2 0.387 2 0.030 2 0.492 2 0.500 BMd08 3 0.555 4 0.599 4 0.522 3 0.390 2 0.283 3 0.637 3 0.519 BMd16 5 0.367 5 0.253 4 0.394 4 0.359 5 0.194 3 0.494 2 0.430 BMd17 4 0.522 5 0.562 4 0.395 3 0.595 4 0.129 4 0.644 3 0.638 BMd18 4 0.309 4 0.368 2 0.427 4 0.581 3 0.178 3 0.215 3 0.337 BMd20 4 0.560 4 0.511 2 0.392 3 0.520 3 0.117 3 0.623 4 0.545 BMd45 2 0.030 1 0.000 2 0.023 2 0.278 4 0.097 2 0.484 2 0.438 BMd46 2 0.346 2 0.228 2 0.093 3 0.335 2 0.216 3 0.555 2 0.469 BMd47 2 0.142 2 0.180 3 0.068 2 0.408 3 0.054 2 0.498 2 0.498 Pv-ctt001 3 0.601 4 0.581 3 0.641 4 0.472 4 0.487 4 0.644 4 0.647 Pv-ag003 3 0.119 3 0.177 2 0.357 2 0.091 1 0.000 2 0.430 2 0.469 Pv-gaat001 5 0.301 2 0.453 2 0.206 3 0.526 7 0.516 4 0.507 4 0.548 Pv-cct001 1 0.000 3 0.063 2 0.023 1 0.000 2 0.024 1 0.000 1 0.000 Suma Total alelos Media Genómicos Media Génicos MEDIA TOTAL 160 155 121 112 226 146 6.438 0.518 4.875 0.392 4.000 0.375 10.688 0.619 6.438 3.714 0.343 3.071 0.312 3.429 0.410 3.929 0.209 3.071 5.333 0.434 5.167 0.436 4.033 0.355 3.733 0.391 7.533 0.427 4.867 6.875 3.571 0.511 0.345 Meso II Meso General Antes Después Antes Después No Alelos 6.46 5.17 7.57 6.77 Div genética 0.49 0.44 0.48 0.46 Separación Meso‐Intro 68 Andinos No de H(Nei) No de H(Nei) No de H(Nei) No de Alelos Alelos Alelos Alelos 143 0.659 0.503 0.587 6.313 3.000 4.767 0.642 0.486 0.569 A continuación se muestra el registro fotográfico de los 17 individuos pertenecientes al grupo denominado como Meso-Intro, se puede observar que dentro de este registro es posible encontrar individuos con colores raros (grises) o semillas con colores mezclados; estos rasgos podrían esperarse en un grupo de genotipos introgresados. RW3 RW20 RW26 RW37 RW163 RW247 RW279 RW498 RW522 RW528 RW536 RW573 RW601 RW620 RW642 RW667 RW655 Figura 14. Individuos pertenecientes a Meso-Intro (agrupados por PCoA como Meso II pero que posiblemente presenten eventos de introgresión) 6.1.3 Agrupación mediante índice de disimilaridad En la figura 15 se muestra claramente la subdivisión de la población de estudio en los dos acervos principales y posiblemente dos grupos de introgresados, lo cual coincide con lo encontrado a partir del análisis de coordenadas principales. Se encontró un total de 205 genotipos para el grupo Mesoamericano, 127 para el grupo Andino, 15 para Introgresados I y 12 para Introgresados II; de tal manera es posible decir que aunque no se recurra a la elaboración de una minuciosa comparación de 69 las dos metodologías (matriz de similaridad e índice de disimilaridad), si es posible decir que la cantidad de individuos asignados para cada grupo es comparable entre las dos formas de asociación, ya que sigue siendo mayor el número de individuos para Mesoamericano. El agrupamiento de los controles también fue similar en las gráficas generadas por ambas metodologías, ya que en el caso de los Meso, éstos aparecen más unidos que los andinos. Figura 15. Dendrograma basado en el índice de disimilaridad de DICE para la colección de germoplasma de Ruanda. Muestra en verde (parte superior) al grupo de los mesoamericanos y sus dos respectivos controles en azul; en la parte inferior en rojo el grupo de los andinos y sus controles en amarillo. Los dos posibles grupos de introgresados se observan en la mitad de la gráfica. 70 6.2 ANÁLISIS DE MINERALES 6.2.1 Contenido de minerales en semilla de fríjol En la evaluación de minerales de los 355 genotipos de la colección de germoplasma de fríjol de Ruanda, mediante la técnica de Absorción Atómica, fue posible observar que los valores para el contenido de hierro estuvieron en el rango esperado en semilla de fríjol de acuerdo con estudios previos (Beebe et al., 2000a; Blair et al., 2005; Islam et al., 2002a); sin embargo al comparar el contenido promedio se encuentra que para este estudio los valores de hierro resultaron más altos que los encontrados en los trabajos mencionados, excepto por el de Blair et al. (2005) quienes obtuvieron un valor de 83.3 ppm. En este caso se hallaron 68.24 ppm, como se muestra en la tabla 15, mientras que en el trabajo de Islam et al. 2002 el contenido de hierro correspondió a 54.8 ppm y en Beebe et al. (2000) fue de 55ppm. Tabla 15. Estadística descriptiva para contenido de (ppm) de hierro y zinc en 355 accesiones de frijol provenientes de Ruanda. Fe (ppm) Zn (ppm) Contenido Medio 68.24 34.46 Desviación Estándar 8.41 3.39 Varianza 70.74 11.50 Mínimo 45.35 25.12 Máximo 97.55 49.05 Rango 52.20 23.92 Coeficiente de Variación 12.33 9.84 -0.0047 0.7471 Curtosis En la tabla 15 se observa que los resultados de zinc obtenidos para este estudio (34.5ppm) fueron congruentes con los reportados en los estudios anteriores. En su investigación Blair y colaboradores (2005) encontraron un promedio de 32.5 ppm, 71 Beebe y colaboradores (2000) un valor de 35 ppm e Islam y colaboradores (2002) encontraron 34,4ppm. Con base en los datos obtenidos, se generaron dos histogramas de distribución de contenido en minerales (figura 16) los cuales permiten detallar el comportamiento de la distribución del contenido de estos minerales en los genotipos evaluados; se puede ver que los datos reflejan una tendencia a distribución normal. La curtosis permite observar lo concentrada (picuda) que está la distribución de frecuencias de la concentración de hierro y zinc en torno a la media. De acuerdo con los datos mostrados en la tabla 15 y al comportamiento de datos en la figura 16, se puede observar que los valores de zinc presentan una curtosis mucho más alta que la observada en hierro, por lo que la curva de zinc puede presentar una mayor acumulación de datos hacía el centro lo que hace que su distribución se vea un poco más picuda que la del hierro. Figura 16. Histogramas de cuantificación de minerales mediante la metodología de AA. Es posible pensar que para el mejoramiento de la calidad nutricional de un alimento sea necesario tratar cada micronutriente por separado, pero si existe una relación entre estos componentes es posible que con el incremento de uno se favorezca el del otro. En este estudio se encontró que existe una correlación positiva entre el 72 hierro y el zinc, la cual es estadísticamente significativa a lo largo de los diferentes genotipos, su valor es de 0.52 (P=0.0000). A partir del rango de valores determinados para la interpretación de resultados de cuantificación de minerales (ver tabla 9), se estableció que los genotipos (figura 17a) con el contenido más alto de hierro fueron: RW 582, RW 375, RW 221, RW 500, RW 216, RW 28 y RW 298; de la misma forma se encontraron que los que presentaban valores más bajos fueron RW 77, RW 32 y RW 40, RW 95 y RW 76 (figura 17c). a b RW 375 RW 221 RW 582 RW 6 RW 257 97.55ppm 89.45ppm 87.46ppm 49.05ppm 44.94ppm 43.56ppm RW 500 RW 216 RW 492 RW 149 RW 88 42.54ppm 42.70ppm 42.91ppm RW 582 86.7ppm RW 28 86.48ppm 86.55ppm RW 298 RW 500 41.91ppm 86.36ppm c RW 77 RW 32 RW 40 d RW 345 45.35 ppm 45.81 ppm RW 95 RW 8 48.43 ppm RW 76 25.12ppm 48.88 ppm RW 542 26.30ppm 26.56ppm 50.45 ppm Figura 17. Genotipos con mayor y menor contenido de hierro y zinc: (a) Genotipos con contenido más alto de Fe; (b) Genotipos con contenido más alto de Zn; (c) Genotipos con contenido más bajo de Fe; (d) Genotipos con contenido más bajo de Zn. 73 Para el zinc los genotipos que se muestran en la figura 17b corresponden a los de mayor contenido: RW 582, RW 6, RW 257, RW 88, RW 149, RW 492 y RW 500, y los de la figura 17d, son los de contenido más bajo: RW 345, RW 542 y RW 8. Sin embargo, de acuerdo con el rango para interpretación, ningún valor de concentración de zinc se encontró clasificado como bajo, ya que dicho rango sugiere que los genotipos se deben determinar con contenido bajo cuando presentan valores menores a 20 ppm y para este estudio todos los genotipos contenían concentraciones superiores a 25 ppm. Es importante resaltar que el individuo RW582 presentó los valores más altos para estos dos minerales, por lo tanto es un genotipo digno de tener en cuenta en programas de mejoramiento. Lo mismo ocurre con el individuo RW500 que estuvo dentro de los genotipos con altos valores para ambos minerales. 6.2.2 Asociación contenido de minerales y estructura genética De acuerdo con los datos de contenido de minerales obtenidos y con las agrupaciones formadas a partir de PCoA, se puede decir que el grupo de los genotipos introgresados presentó el valor numérico de contenido medio de hierro más alto de toda la colección, aunque el genotipo de mayor contenido se localizó en el grupo de Mesoamericanos IV. En la comparación entre grupos Andino y Mesoamericano se observa que el primero tiene mayor valor numérico en contenido de hierro que cualquiera de las agrupaciones formadas para el segundo. Sin embargo se encontró que estos datos no son significativamente distintos entre sí (ver prueba ANOVA en anexo 6). Por el contrario en el caso del zinc se encontró que los valores entre grupos difieren significativamente entre sí (tabla 16 y anexo 6); al realizar las pruebas de separación de medias de rango múltiple se encontró que los introgresados no son diferentes de ningún grupo de los mesoamericanos pero sí es diferente del grupo andino. En general los andinos resultaron muy diferentes de los demás lo cual era de esperarse debido que los acervos genéticos pueden diferir bastante en características fenotípicas como genotípicas; sin embargo como contraste a esto se encontró que no son tan diferentes con el grupo de Mesoamericanos IV. 74 En general todos los grupos presentan individuos de alto y bajo hierro y de alto y medio contenido de zinc. Dentro del grupo de los Andinos se presentaron los genotipos con contenido más bajo de zinc y el promedio general de este grupo fue el más bajo con respecto a los demás, lo cual está de acuerdo con lo reportado por Islam 2004 quien encontró el mismo patrón. Tabla 16. Estadística descriptiva para contenido en ppm de hierro y zinc en las poblaciones generadas mediante PCoA. HIERRO ZINC* ANDINO MESO I MESO II MESO III MESO IV INTRO ANDINO MESO I MESO II MESO III MESO IV INTRO n Media Desv estd Varianza Mínimo Máximo Rango CV 132 69.19 8.39 70.39 45.81 89.45 43.64 12.13 65 68.59 8.66 75.05 45.35 86.73 41.38 12.63 79 67.43 7.07 49.99 51.86 84.10 32.24 10.49 43 66.65 10.35 107.08 50.45 97.55 47.10 15.53 21 65.49 7.99 63.88 52.04 86.48 34.44 12.20 17 70.96 7.64 58.41 59.04 84.40 25.36 10.77 132 33.02 3.10 9.62 25.12 44.94 19.81 9.39 65 35.54 3.25 10.55 29.90 43.56 13.66 9.14 79 35.48 2.82 7.93 28.42 42.91 14.49 7.93 43 35.77 3.83 14.68 31.07 49.05 17.97 10.71 21 33.98 3.00 9.00 29.15 39.51 10.36 8.83 17 35.11 3.50 12.25 27.93 39.56 11.63 9.97 *: Promedios significativamente diferentes p<0.0001 A partir de las pruebas de separación de medias de rangos múltiples se pudo observar que existe un gradiente de distribución de concentración de zinc a lo largo de la dimensión 3, como se observa en la figura 18. 35.10 35.48 35.53 35.77 Figura 18. Gradiente de concentración de zinc encontrado en grupos mesoamericanos indicado por las flechas azules. 75 6.3 CARA ACTERISTIC CAS DEL GR RANO DE FRÍJOL L caracterrísticas de la Las a semilla ten nidas en cue enta para esste estudio fu ueron el colo or, t tamaño y pa atrón de colo oración. Sin n embargo es e necesario o aclarar que e la coloración d la semilla de a se pudo ver v afectada a por el largo o tiempo qu ue llevaba almacenada, lo q que pudo haber h generrando un po osible proce eso de oxid dación que finalmente se p puede ver reflejado en n el color observado. o El tamaño de semilla fue estimado ú únicamente bajo criterio o visual. S encontró Se ó gran variedad de colo ores dentro de la coleccción (figura 19), siendo el c color café ell que se pressentó en ma ayor proporcción, sin emb bargo la dife erencia con los g granos de color c rojo no o fue muy am mplia. El patrón de colo oración en la a colección se v fuerteme vio ente marcad do por semilllas sin patró ón de coloración definida a, es decir por p s semillas de e un solo color, c seguiido por el patrón motteado, el cual c tuvo una r representac ión del 14% %. En cuantto al tamaño o se enconttró igual pro oporción tan nto p para la semilla de peque eña como pa ara la media ana (46%) y solo un 8% de la grande e. 2% 2% 12% 1 1% 26% 1% Color de e semilla Patrón de Coloración Caféé/Marrón 57% Rojo o 9% Amaarillo 14% Jaspeado Moteado 14% 17% 25% Crem ma 11 1% Negro 3% 6% Punteado Rayado Venación NP: Sin Patrón F Figura 19. Distribución D po orcentual de color, tamaño o y patrón de e coloración de d semilla en n la p población de estudio. L distribuc La ción de colo or, tamaño y patrón de coloración dentro de e cada grupo f formado a partir p de PCo oA se muesstra en la figura 20 (las tablas de co ontingencia en e anexo 7)). Los colorres café, am el marillo y cre ema fueron constantes en todos los g grupos, mie entras que el e color mora ado fue excclusivo de lo os Andinos. La semilla de t tamaño med diano y peq queño se pre esentó en to odos los gru upos; el tam maño pequeño e estuvo hom mogéneamen nte distribuid do en los Mesoamerica M anos I, II y III; la semiilla g grande fue exclusiva e de e los Andino os. Todos loss grupos pre esentaron se emillas que no 76 t tenían un pa atrón de colo oración es decir d eran de e un solo co olor, sin emb bargo el patrrón m moteado fue e constante y el rayado exclusivo e de el grupo And dino. No de Individuos Color 140 Amarillo 120 Rojo 100 Rosado Negro 80 Morado 60 Gris 40 Crema 20 Café 0 Blanco MI MII M MIII MIV A I Grup po Poblacional Tamaño 140 No de Individuos 120 100 Pequeña 80 Mediana 60 Grande 40 20 0 MI MII MIII MIV A I Grup po Poblacional No de Individuos Patrón 140 1 1 120 1 100 80 60 40 20 0 NP Venación Rayado Punteado Moteado MI MII MIII MIV A I Jaspeado Grupo Poblacional Grupos pobla acionales: MI: Mesooamericanos grupo 1; MII: Mesoamericanoss grupo 2; MIII: Mesoamericanos grupo 3; MIV: M Mesoamericanos grupo 4; A: Grupo de Andinos; I: Grup po de introgresados Figura 20. Distribución D d color de la del a semilla denttro de cada grrupo poblacio onal formado a partir de PCo oA. 77 En los grupos Mesoamericanos hubo predominio de semilla pequeña de color café con patrón de coloración moteado, con excepción del grupo cuatro que presentó un mayor número de individuos con patrón de coloración jaspeado. Sin embargo el tamaño de semilla mediano también tuvo una gran presencia dentro de estos grupos Mesoamericanos, lo cual es congruente con estudios morfológicos que resaltan que el tamaño típico de las semillas Mesoamericanas puede ser pequeño o mediano (Gepts & Bliss, 1986). Por otra parte las semillas pertenecientes al grupo Andino se caracterizaron por presentar semillas de tamaño mediano (primordialmente) y grande, lo que concuerda con estudios previos en semilla de fríjol (Singh et al., 1991a). El color predominante fue el rojo moteado y tuvieron prevalencia de semilla mediana a grande. En el grupo de los introgresados el color de semilla que más se encontró fue el amarillo con patrón moteado y los tamaños mediano y pequeño fueron los que se presentaron en este grupo. 78 7 7.1 El DISCUSIÓN DE RESULTADOS ANÁLISIS DE DIVERSIDAD GENÉTICA conocimiento de la diversidad permite tener una perspectiva amplia de la estructura de las especies y ayuda a los mejoradores a encontrar genotipos con características óptimas para la obtención de cultivos mejorados. 7.1.1 Población Total Para el nivel de polimorfismo (número de alelos), se encontró en su mayoría valores más altos que los obtenidos en estudios previos (Blair, 2007; Blair et al., 2006; Díaz & Blair, 2006), lo cual podría estar indicando el buen desempeño de la técnica. Por otra parte, es relevante tener en cuenta que tanto para el presente estudio como en el de Moreno (2007), ambos realizados mediante la técnica de microsatélites fluorescentes, se obtuvieron altos valores de número de alelos (301 y 429 respectivamente). Este factor junto con el hecho de que todos los loci sean polimórficos podría verse explicado por los niveles de divergencia entre los genotipos estudiados o por la sensibilidad, precisión y resolución de la técnica al momento de reconocer polimorfismos; el secuenciador ABI 3730xl permite identificar polimorfismos de hasta un solo par de bases, los cuales ocurren por mutaciones puntuales en los extremos de la región microsatélite amplificada (Smith et al., 1997). Los marcadores BM143, BM187 y GATs91 presentaron los números de alelos mas altos para la población, lo que podría indicar que estos tienen alto poder de discriminación, este hallazgo se apoya en la caracterización realizada por Gaitán et al. (2002) quienes reportaron que dos de estos mismos loci (BM143 y GATs91) son bastante útiles en el genotipaje de accesiones de germoplasma de P. vulgaris. Los marcadores genómicos en promedio presentan este valor más alto que los génicos lo que sugeriría que con los primeros se podría llevar a cabo una mejor caracterización en colecciones similares a la del presente estudio. La diversidad total del conjunto de genotipos evaluados, fue alta (0.62) al compararse con los resultados obtenidos en estudios anteriores con otras clases de 79 marcadores. Por ejemplo con RFLPs se encontró un total de 0.38 (Becerra & Gepts, 1994), en este mismo se halló que mediante marcadores tipo isoenzima el valor de la diversidad fue de 0.19. En otro estudio también realizado con isoenzimas el valor correspondió a 0.159 (Paredes-Lopez & Gepts, 1995) y con CAP se encontró 0.37 (Chacón et al., 2005). Un aspecto importante a resaltar es que este alto valor de diversidad genética, posiblemente se deba al poder de resolución y gran cantidad de información que poseen los microsatélites, ya que en general los altos valores en cuanto a dicho parámetro, se encuentran para este tipo de marcadores; tal y como se muestran en otras investigaciones en las que se evaluó la diversidad, por ejemplo Díaz J.M en el 2005, encontró un valor de 0.49 para 125 genotipos Andinos evaluados con 30 marcadores y Díaz, L. en el mismo año halló una diversidad de 0.47 para accesiones Mesoamericanas. Sin embargo se sigue encontrando un valor mas alto para estudios realizados con microsatélites fluorescentes. Otro posible argumento del cual se podría inferir el hecho de que estos resultados tuvieran altos valores en diferentes parámetros de diversidad fue que se usó un subconjunto de primers con altos valores de PIC a partir de los trabajos realizados por Gaitán y colaboradores (2002) y Blair y colaboradores (2006). El PIC corresponde al contenido de información polimórfica y es un índice importante debido a que permite determinar la capacidad discriminatoria de un grupo de marcadores, y de esta forma poder reproducirlo en otros estudios en donde el conocimiento y caracterización de la población sea el principal objetivo, como ocurre en este estudio. El número máximo de alelos encontrado en todo el conjunto de genotipos fue de 40 y correspondió al marcador BM187, este valor es alto comparado con estudios previos como el elaborado por Blair et al (2006), en el que el número más alto que se presentó fue 23 alelos. Al igual ocurre en el estudio de Díaz y Blair en el 2006, quienes encontraron un número de alelos máximo de 15. Es posible hacer la misma comparación para los valores promedio de número de alelos, ya que en este estudio se presentaron 10 alelos en promedio para cada marcador, mientras que en 80 estudios previos fueron inferiores: 7.8 en Blair et al (2006) y 5.1 en Díaz & Blair (2006). Estos resultados son muy favorables si este estudio se encamina hacia objetivos de mejoramiento genético, ya que la alta variabilidad confiere mayor probabilidad de responder favorablemente a presiones de selección ambiental, como las que comúnmente se presentan en Ruanda entre las que se encuentran enfermedades, cambios climáticos drásticos, variación en la composición química del suelo entre otros. Por otra parte, se observó que en cuanto a la clase de marcadores evaluados los genómicos permitieron identificar mayores niveles de diversidad y mayor número de alelos. Las diferencias en el polimorfismo detectado entre los tipos de marcadores también fue observada en varios estudios de diversidad genética en fríjol (Blair et al., 2006; Blair et al., 2003; Diaz, 2005a; Díaz & Blair, 2006; Moreno, 2007), y puede justificarse en el origen de cada clase de marcador, pues los microsatélites génicos al provenir de secuencias codificantes, podrían no transmitir una modificación en su secuencia a nuevas generaciones en el caso que dicha variante corresponda a un cambio drástico o mutación ya que haría menos viable al individuo. En el caso de los marcadores genómicos, que por estar principalmente en secuencias no codificantes, pueden albergar mayor cantidad de variantes en la secuencia y no comprometer la supervivencia o adaptación del organismo mutante (Diaz, 2005a). En este estudio se encontró un valor alto de Heterocigocidad observada (Ho) correspondiente a 0.19 comparado con el valor (0.038) obtenido para Díaz y Blair en el 2006. Los marcadores que especialmente presentaron alta Heterocigocidad observada son: el marcador genómico BM188b (0.65) y el génico BMd01 (0.61). Este alto valor probablemente corresponde a una fuerte endogamia dentro del objeto de estudio, lo que supone un enorme exceso de homocigotos en el conjunto de accesiones y eso está en consonancia con fuerte endogamia dentro de las accesiones (Comunicación Personal, M. Ruíz). 81 Sin embargo es necesario resaltar que los microsatélites fluorescentes permiten identificar más fácilmente los polimorfismos, debido a la ya mencionada alta sensibilidad; es posible que el nivel de Heterocigocidad observado, se haya visto incrementado por esta causa, por lo que es necesario prestar mayor atención a estos marcadores, en futuros estudios para no confundir el mérito de la técnica con características de la población. En general estos resultados reflejan valores altos en cuanto a parámetros de diversidad y nivel de Heterocigocidad y pueden estar ocurriendo debido a las mezclas de semillas que comúnmente se ve en las regiones en Ruanda. Aunque en ciertos lugares y situaciones se haga selección de grano, en la mayoría de los casos el consumo y producción de fríjol no se ve marcado por el tipo y tamaño de semilla (Comunicación Personal L. Butare investigador programa fríjol Ruanda, CIAT 2007). Las mezclas pueden ocurrir en diferentes momentos después de la cosecha, por ejemplo cuando se ponen a secar los fríjoles bajo la incidencia de la luz solar, resulta ser más atractivo para los campesinos ver mezcla de fríjoles, por lo tanto ellos se encargan de organizarlas. También puede darse en el momento de la colecta cuando recogen los granos pues hacen este proceso sin una selección determinada; ó simplemente las mezclas pueden originarse por actividades culturales como juegos, regalos o deudas (Martin & Adams, 1987). El fríjol en Ruanda es producido tanto para la venta como para la alimentación mediante sistemas de cultivos en mezcla durante dos estaciones al año. Las semillas son cultivadas y cosechadas principalmente para consumo por parte de los propios campesinos, sin embargo su venta es común especialmente cuando se presentan problemas ambientales graves que afectan los cultivos o debido a los pobres sistemas de almacenamiento de semilla que se tienen (David & Sperling, 1999). En este proceso de venta y adquisición es cuando se maneja con más detalle el tema de las mezclas de variedades. Los campesinos que venden la semilla se encargan de escoger la que presente mejor calidad, lo cual garantiza el mejoramiento del recurso genético pero no existe preferencia por un tipo de grano (David & Sperling, op cit.). El conocimiento de los campesinos acerca de la 82 efectividad de las mezclas en la producción es amplio, ellos saben que este tipo de método confiere mayor resistencia por parte de los genotipos a enfermedades o fuertes cambios ambientales, siendo esta una posible causa del alto valor de la variabilidad genética encontrado en la colección de este estudio. Por otra parte, aunque el intercambio de semilla en forma de regalo o como red comercial entre países ha disminuido en la actualidad (David & Sperling, op cit.), este es un factor muy importante que podría estar afectando la diversidad, ya que podría existir una recombinación de material genético confiriendo mayor variabilidad en un mismo conjunto. 7.1.2 Grupos definidos mediante PCoA Mediante el análisis de ordenación (PCoA) se mostró la presencia de grupos dentro de los genotipos analizados, los cuales tienen correspondencia con la estructura de acervos propuesta, esto permite inferir nuevamente la utilidad de la técnica para diferenciar entre estos dos grupos. El comportamiento observado para cada grupo definido a partir de PCoA fue similar al de la población total ya que los marcadores genómicos presentaron mayor polimorfismo que los génicos, lo que podría sugerir que las fuerzas existentes que modelan cada patrón de cada grupo son similares (Diaz, 2005a). Sin embargo al encontrar una mayor diversidad de los loci genómicos en el grupo de los Introgresados insinúa que la composición alélica de los genotipos que lo conforman puede ser diferente o tener diferentes frecuencias. La alta diversidad total encontrada para todos los grupos generados por PCoA, en especial para el grupo de los introgresados, podría demostrar que los agricultores pueden estar contribuyendo al mantenimiento e incluso aumento de la diversidad a través de entrecruzamientos intencionales o in intencionados, como ya ha sido reportado por Martin y Adams (1987). El manejo post-cosecha en África juega un papel importante en el mantenimiento y aumento de la variabilidad genética, ya que en la mayoría de los casos los pequeños agricultores mezclan las semillas, lo que podría aumentar las probabilidades de polinización cruzada. 83 Aunque en este estudio no se puede hablar de una estructura de razas debido a la ausencia de datos que permitan confirmarlo, se puede tener en cuenta la subdivisión del grupo Mesoamericano, infiriendo dentro de este gran grupo una posible estructura de razas, que será resuelta en la medida en que sean utilizados controles moleculares definidos para tal fin y que sea posible la obtención de características, morfológicas, agronómicas y bioquímicas que permitan hacerlo. Contrario a lo que se muestra en otros estudios en cuanto a representación de semilla de los dos acervos principales (Blair et al., 2006; Islam et al., 2002b), el mayor porcentaje de genotipos pertenecen al grupo de los Mesoamericanos (58.3%) mientras que la representación andina correspondió al 37% y el resto hizo parte de los introgresados. Es posible pensar que esto se deba a la implementación de estrategias para combatir las amenazas a las que se ha visto enfrentada la biodiversidad en Ruanda; dichas estrategias van encaminadas hacía la utilización de los recursos genéticos para incrementar la productividad. Por ejemplo han aumentado la siembra de variedades de semillas medianas y pequeñas que presentan mayor tolerancia a las enfermedades de raíz (CIAT, 2005a) y a la sequía (Martin & Adams, 1987). Lo anterior puede ser confirmado por la incidencia de un alto porcentaje de semilla de tamaño mediano y pequeño en toda la colección. De acuerdo con las experiencias de los campesinos Ruandeses (Comunicación Personal L. Butare investigador programa fríjol Ruanda, CIAT 2007), la tendencia de los campesinos, que comercializan la semilla y que dependen de ella para su alimentación, es a sembrar muchas áreas con fríjol y la semilla de menor tamaño confiere la ventaja de poder sembrar mas semillas en una menor área, razón por la cual se pudo ver reflejada esta incidencia. Además se produce mayor cantidad de semillas pequeñas o medianas en una misma planta que las que se pueden producir de tamaño grande (Martin & Adams, 1987). La presencia de gran cantidad de tipos de fríjol (variedad de colores y tamaños) sugiere que se mantiene la existencia de redes de distribución y que estos fríjoles han tenido la aceptación de los consumidores (o una amplia adaptación ambiental) (Martin & Adams, 1987). La acción de las preferencias de consumo o factores 84 ambientales, o las dos en conjunto, ha sido fundamental para la existencia de la variabilidad existente en esta colección de germoplasma de fríjol de Ruanda. Los colores que más se comercializan en Ruanda son rojo (moteado) y café por lo tanto hacen parte de la gran producción de este país, esto podría explicar el porque estos dos tipos de semilla fueron predominantes en la colección (Comunicación Personal L. Butare investigador programa fríjol Ruanda, CIAT 2007); los fríjoles de colores blanco y amarillo se comercializan principalmente en las ciudades y son destinados a los restaurantes, por lo tanto son los que mayor valor comercial presentan, sin embargo la baja incidencia de los de color blanco para este estudio, puede verse explicada por el hecho de que muchos campesinos no siembran estos genotipos por su difícil cocción o por tradiciones culturales. Los fríjoles de color negro nos son muy apreciados en el mercado sin embargo éste lo producen para consumo en mezcla (Butare op cit.). En cuanto a los individuos que se les ha denominado como raros, debido a que no se agruparon dentro de ningún acervo, se puede decir que son excéntricos dentro de la población estudiada, ya que aparentemente no comparten muchas características moleculares con los dos acervos encontrados e inclusive tampoco se encuentran relacionados con los individuos candidatos a introgresión. Por lo que se sugiere que se realice un seguimiento de estos, ya que su aislamiento molecular se pudo haber originado por problemas de contaminación, errores en el procedimiento llevado a cabo en el laboratorio, entre muchas otras causas. La variabilidad encontrada en la colección de germoplasma de Ruanda puede ser el resultado del conjunto de diferentes fuerzas, dentro de las que se incluye las prácticas agronómicas, la selección humana, la selección natural, el intercambio local y nacional de semilla y los eventos naturales de polinización cruzada. 7.1.3 Agrupación mediante índice de disimilaridad Se observa que en este caso el grupo es dividido en los dos acervos principales y dos posibles grupos de introgresión, lo cual coincide con el análisis de PCoA. La agrupación de individuos en cada metodología no es muy diferente la una de la otra ya que agrupan un número similar de individuos dentro de cada grupo; sin embargo 85 debido a que utilizan índices diferentes y sistema de graficas es muy diferente no es posible hacer una comparación directa de estas dos metodologías, ya que esto implicaría realizar una compleja comparación de software que no compete en este estudio. Sin embargo se quiso mostrar esta otra forma de agrupación para evidenciar a través de otro método las agrupaciones por acervos dadas para este estudio. 7.1.4 Posibles eventos de introgresión en la población estudiada De acuerdo con la caracterización molecular realizada y al análisis de ordenación implementado, fue posible encontrar un primer grupo de 17 individuos que presentan características moleculares que los hacen candidatos de ser introgresados, estos fluctúan en sentido Mesoamericano-Andino. Dentro de este grupo 5 individuos presentan características morfológicas típicas del acervo Mesoamericano y en el dendrograma mostrado en la figura 13C se agrupan dentro del acervo Andino. Adicionalmente se encontró un segundo grupo que presenta características moleculares propias de introgresión; estos dos grupos son los que presentan valores más altos de diversidad, lo cual podría ser un indicativo de que la introgresión entre acervos tiende a aumentar la diversidad (Beebe et al., 2001) La formación de estos grupos no es sorprendente en una región como Ruanda a la que, al igual que el resto de África, llegaron los dos acervos principales de fríjol y a partir de ese entonces las mezclas de estos se han realizado continuamente (Martin & Adams, 1987). Esta formación de grupos, puede deberse a una posible hibridación entre acervos, un evento que ha sido postulado en estudios como el de Beebe et al (1997) quienes encontraron en mezclas de cultivares sembradas en Colombia y en Perú, la posible ocurrencia de un proceso de alogamia. En la producción de semillas en la que es indiferente la elección de algún tipo de grano específico, es frecuente encontrar que los campesinos finalmente escogen todas las semillas producidas, sin importar que estas provengan de una recombinación genética (Beebe et al., 2001); por lo tanto en esta situación los tipos introgresados son más probables de mantenerse en las mezclas de los campesinos que lo que ocurriría en los cultivadores orientados hacia el mercado. Esto podría explicar la presencia de los individuos posiblemente introgresados dentro de la colección 86 ruandesa; como se sabe la selección por color es laxa y las mezclas son aceptadas por campesinos. Ruanda es considerado como un centro secundario de diversidad de fríjol, por lo que la diversidad encontrada refleja en la influencia de los dos acervos introducidos a este país. Por lo tanto encontrar genotipos que presentan características genéticas de los dos acervos puede representar el flujo genético entre estos o la introgresión desde el acervo Mesoamericano al andino o viceversa; sin embargo se sugiere confrontar estos datos moleculares con mayores evidencias morfológicas y bioquímicas que permitan llegar a una conclusión más contundente. 7.2 ANÁLISIS DE MINERALES Las diferencias encontradas entre este estudio y otros de minerales (Beebe et al., 2000a; Blair et al., 2005; Islam et al., 2002a) pueden ser de origen genético y/o ambiental; se encontraron valores altos de hierro y zinc dentro de la colección, lo cual es de gran importancia debido a que estos minerales son fundamentales para la nutrición de la población Ruandesa. Es pertinente resaltar que los genotipos que presentaron los contenidos más altos de hierro se encuentran por encima de 85ppm siendo este un valor alto teniendo en cuenta los estudios mencionados anteriormente. Estos resultados son muy importantes ya que el hierro es un componente esencial de la semilla de fríjol pues interviene en importantes procesos metabólicos en el cuerpo humano siendo esencial en la prevención de enfermedades graves como lo es la anemia ferropénica; por ende encontrar genotipos con alto contenido de este mineral en países en vía de desarrollo como lo es Ruanda facilita los planes de mejoramiento de cultivos en los que se buscan incrementar los valores nutricionales y así generar variedades de fríjol con mayor contenido de nutrientes. Todos los valores hallados para zinc fueron considerados entre medianos y altos, es decir fueron mayores a 25 ppm, lo que resulta ser muy interesante ya que encontrar valores altos de zinc pueden garantizar que en futuros estudios de mejoramiento del fríjol común en Ruanda se utilicen estos genotipos y de esta forma incrementar el 87 consumo en esta población que presenta graves problemas de malnutrición y salud pública especialmente el VIH/SIDA. Es bien sabido que el zinc ayuda a incrementar la defensa inmunológica del organismo por lo que es importante en el tratamiento de enfermedades tales como VIH/SIDA. Otro punto importante a tratar es el caso de los individuos RW582 y RW500 que presentaron los valores más altos para hierro y para zinc; es importante resaltar que estos genotipos no son morfológicamente atractivos para producción y/o consumo, debido a la coloración negra que presentan, por lo tanto podrían ser importantes en un plan de mejoramiento ya que podrían servir de progenitores donantes de nutrientes. Al comparar el dato de la desviación estándar encontrada con el estudio de Beebe et al. 2005, se puede ver que la variación es similar (8.3 Beebe y 8.4 tabla 14). La desviación estándar y el coeficiente de variación pueden ser un reflejo de la variabilidad genética que existe en el material estudiado. El valor de la desviación era de esperarse debido a que los genotipos provienen de diferentes regiones de Ruanda y existe alto grado de combinación de material. Se encontró un valor más alto de curtosis en zinc que en hierro lo que podría sugerir que existe mayor varianza para este mineral, esto podría deberse a que existen desviaciones infrecuentes en los extremos, que se oponen a desviaciones comunes de medidas menos pronunciadas. Al comparar este estudio con el de Beebe et al. 2002 se encontró el mismo valor para el coeficiente de correlación de los dos minerales (0.52). Es posible proponer que esta correlación sea un reflejo de la cosegregación de genes para estos dos rasgos. La implicación de estas correlaciones es que algunos factores genéticos para los minerales están cosegregando y que la selección de uno de estos elementos puede resultar simultáneamente en un incremento en el otro, de esta forma se multiplica el impacto y se facilita el mejoramiento. A pesar que la diferencia entre grupos para la variable de hierro no fue significativa es posible decir que, de acuerdo con la asociación de datos de contenido de minerales obtenidos y las agrupaciones formadas a partir del análisis de diversidad 88 genética se observó que el grupo de los genotipos introgresados presentó el contenido medio de hierro más alto de toda la colección. Esto podría deberse a la influencia que ha comenzado a tener la introgresión en la evolución dentro de los acervos del fríjol, algunos rasgos importantes como alto contenido de minerales o resistencia a una enfermedad puede deberse a eventos de introgresión (Islam et al., 2004). Encontrar un gradiente de zinc en los grupos mesoamericanos podría representar un factor importante en el conocimiento de procesos de selección para este estudio. Se podría hablar de un proceso de domesticación o que la posible causa de la aparición de este gradiente sea debida a procesos de selección humana, sin embargo no se tienen argumentos claros para explicar la aparición de este gradiente. La baja diferencia existente entre los valores de zinc del grupo de Mesoamericanos IV y el grupo de los andinos puede explicarse en la posible influencia de factores ambientales o genéticos que han ayudado a moldear los genotipos permitiendo así encontrar valores muy similares entre estos dos grupos. También se puede argüir que posiblemente exista introgresión por parte de alguno de estos grupos pero que esta no sea detectada a nivel molecular. 89 8 CONCLUSIONES En la caracterización de la diversidad genética para 355 genotipos de fríjol común de Ruanda (África), mediante el uso de marcadores moleculares analizados con fluorescencia se observó que esta colección presentó un alto polimorfismo y altos índices de variabilidad genética. El valor para diversidad total encontrado en este estudio se consideró como alto en comparación con estudios en otras regiones del mundo, lo que indica la importancia de Ruanda como centro secundario de diversidad del fríjol común. Los 30 marcadores utilizados presentaron un alto nivel de información y un excelente poder de discriminación, lo que permitió dividir a la población de estudio en los dos acervos genéticos principales para fríjol común. La presencia de posibles eventos de introgresión permitió ver efectos relacionados con flujo de genes o recombinación genética, siendo este un factor importante en la conservación e incremento de la variabilidad genética. Las características morfológicas de la semilla como el color y tamaño se pudieron relacionar con los grupos derivados a partir de los análisis de diversidad y se observó que cada grupo se encuentra específicamente caracterizado por alguno de los niveles de estas dos variables. Adicional a esto se observa la presión que ha ejercido selección humana en la caracterización de cada grupo. El alto contenido de minerales encontrado en este estudio evidencia la importancia que la presión de selección humana está ejerciendo sobre la colección de germoplasma de fríjol en este país. La correlación encontrada en el contenido de los dos minerales permite esperar que en futuros planes de mejoramiento los dos minerales tengan un incremento simultáneo. 90 El acervo predominante en cuanto a número de individuos en este estudio fue el mesoamericano, siendo este resultado contrario a lo que hasta el momento se ha observado en estudios de diversidad genética (mayor número de individuos para andinos). Los marcadores moleculares tipo microsatélites analizados mediante fluorescencia, por su alta sensibilidad, permitieron obtener el mayor número de alelos descritos para algún marcador microsatélite de P. vulgaris. 91 9 RECOMENDACIONES Y PERSPECTIVAS Se recomienda hacer futuros estudios de diversidad utilizando genotipos controles pertenecientes a las diferentes razas en que se dividen los acervos ya que de esta forma sería posible establecer una estructura poblacional más completa. El principal factor tenido en cuenta para este estudio de diversidad fue el molecular por lo que se sugiere ampliar el estudio con datos morfoagronómicos que permitan definir de manera contundente las relaciones moleculares acá encontradas. Realizar una comparación de las técnicas utilizadas para la evaluación de polimorfismos en microsatélites, la tradicional tinción en plata y la fluorescente a través del ABI 3730xl. Este estudio se constituye como el primero en la caracterización de la colección de germoplasma de fríjol de Ruanda, por lo que es imperante desarrollar investigaciones más profundas que contemplen otro tipo de marcadores y la experiencia directa de los campesinos para poder llegar a conclusiones que vayan más allá de una evaluación molecular. El haber encontrado valores altos de diversidad genética y de características nutricionales, abre la posibilidad para la realización de futuros estudios enfocados hacía el mejoramiento. Existen dos individuos importantes para un plan de mejoramiento al servir de progenitores donantes de nutrientes, estos podrían ir junto con otro genotipo que presente características morfológicas atractivas para el consumo en este país, por ejemplo un fríjol rojo moteado. 92 10. REFERENCIAS Applied Biosystems. 2004. GeneMapper® Software v.3.7 User Guide. Applied Biosystems, USA. Ayad, W., T. Hodkin, A. Jaradat, and V. Rao. 1997. Molecular genetic techniques for plant genetic resources, In I. P. G. R. Institute, (ed.) Report of an IPGRI Workshop, 9-11 Octubre, Rome, Italy. Barrios, M.F., H.G. du Défaix, and N. Fernandez. 2000. Metabolismo del Hierro. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter. 16:149-160. Bazel, P., and J. Anderson. 1994. Nutrition And Health Implication of Dry Beans: A Review. Journal of American College of Nutrition. 13:549-558. Becerra, V., and P. Gepts. 1994. RFLP Diversity of common bean (Phaseolus vulgaris L.) in its centres of origin. Genome. 37:256-263. Beebe, S., A.V. Gonzalez, and J. Rengifo. 2000a. Research on trace minerals in the common bean. Food and Nutrition Bull. 21:387-391. Beebe, S., O. Toro, A.V. Gonzalez, M.I. Chacón, and D.G. Debouck. 1997. Wildweed.crop complexes of common bean (Phaseolus vulgaris L., Fabaceae) in the Andes of Peru and Colombia, and their implications for conservation and breeding. Genetic Resources and Crop Evolution. 44:73-91. Beebe, S., J. Rengifo, E. Gaitán-Solís, M.C. Duque, and J. Tohme. 2001. Diversity and origin of Andean landraces of common bean. Crop Sci. 41:854-862. Beebe, S., P.W. Skroch, J. Tohme, M.C. Duque, F. Pedraza, and J. Nienhuis. 2000b. Structure of Genetic Diversity among Common Bean Landraces of Middle American Origin Based on Correspondence Analysis of RAPD. Crop Sci. 40:264273. Betancour, M.J., and J.E. Dávila. 2002. El fríjol (Phaseolus vulgaris L.): Cultivo, beneficio y variedades. FENALCO., Medellín. Colombia. Bio-Rad. 1998. Quantity One: User Guide for version 4.0.3 for Windows and Macintosh. Versión 1999. Bio-Rad, USA. Blair, M., J. Díaz, R. Hidalgo, L. Díaz, and M. Duque. 2007. Microsatellite characterization of Andean races of common bean (Phaseolus vulgaris L.). TAG Theoretical and Applied Genetics. in press. Blair, M.W. 2007. Organización de marcadores fluorescentes en paneles. 93 Blair, M.W., V. Hedetale, and S.R. McCouch. 2002. Fluorescent-labeled microsatellite panels useful for detecting allelic diversity in cultivated rice (Oryza sativa L.). Theor Appl Genet. 105:449–457. Blair, M.W., C. Astudillo, and S. Beebe. 2005. Analysis of Nutritional Quality traits in an Andean Recombinant inbred Line Population, En B. I. C, ed. Annual Report of the Bean Improvement Cooperative, Michigan. Blair, M.W., M.C. Giraldo, H.F. Buendía, E. Tovar, M.C. Duque, and S.E. Beebe. 2006. Microsatellite marker diversity in common bean (Phaseolus vulgaris L.). Theor Appl Genet. 113:100–109. Blair, M.W., F. Pedraza, H.F. Buendia, E. Gaitan-Solis, S.E. Beebe, P. Gepts, and J. Tohme. 2003. Development of a genome-wide anchored microsatellite map for common bean ( Phaseolus vulgaris L.). Theor Appl Genet. 107:1362–1374. Broughton, W.J., G. Hernández, M. Blair, S. Beebe, P. Gepts, and J. Vanderleyden. 2003. Beans (Phaseolus spp.) – model food legumes. Plant and Soil. 252:55-128. CIAT. 2005a. Utlisation of bean genetic diversity in Africa Highlights CIAT in Africa, Vol. 21. CIAT, Univesity of Nairobi, PABRA, SABRN, ESCABREN. CIAT. 2005b. Fast tracking of nutritionally-rich bean varieties Highlights CIAT in Africa, Vol. 24. CIAT, Univesity of Nairobi, PABRA, SABRN, ESCABREN. Collard, B., M.Z. Jahufer, J.B. Brouwe, and E.C. Pang. 2005. An introduction to markers, quantitative trait loci (QTL) mapping and marker-assisted selection for crop improvement: The basic concepts. Euphytica. 142:169 - 196. Chacón, M.I., S. Pickersgill, and D.J. Debouck. 2005. Domestication patterns in common bean (Phaseolus vulgaris L.) and the origin of Mesoamerican and Andean cultivated races. Theor Appl Genet. 110:432-444. Chrispeels, M.J., and D.E. Savada. 2003. Plants Genes and Crop Biotechnology. Jones and Bartlett Publishers, Inc, USA. David, S., and L. Sperling. 1999. Improving technology delivery mechanisms: Lessons from bean seed systems research in eastern and central Africa. Agriculture and Human Values. 16:381-388. Dean, R.E., J.A. Dahlberg, M.S. Hopkins, S.E. Mitchell, and S. Kresovich. 1999. Genetic redundancy and diversity among 'Orange' accessions in the U.S. national sorghum collection as assessed with Simple Sequence Repeat (SSR) markers. Crop Sci. 39:1215-1221. Debouck, D., and R. Hidalgo. 1989. Morfología de la planta de fríjol común, p. 7-41, En M. Lopez, et al., eds. Investigación y producción, Cali, Colombia. 94 Debouck, D.J., and J. Tohme. 1988. Implications for bean breeders of studies on the origins of common beans, Phaseolus vulgalis L., p. 2-42, En S. Beebe, ed. Current Topics in Breeding of Common Bean. Proceedings of the International Bean Breeding Workshop, Cali, Colombia Diaz, J.M. 2005a. Diversidad Genética y Estructura Poblacional de Germoplasma Andino De Fríjol Común Phaseolus vulgaris L. Tesis, Universidad Nacional De Colombia Sede Palmira, Colombia. Diaz, L. 2005b. Diversidad Genética de Accesiones Representativas del Acervo Mesoamericano de Phaseolus Vulgaris L. Tesis, Universidad Nacional De Colombia Sede Palmira, Colombia. Díaz, L.M., and M.W. Blair. 2006. Race structure within the Mesoamerican gene pool of common bean (Phaseolus vulgaris L.) as determined by microsatellite markers. TAG Theoretical and Applied Genetics. 114:143-154. Donovan, C., and L. Bailey. 2005. Understanding Rwandan agricultural households’ strategies to deal with prime age illness and death: A propensity score matching approach IFPRI/Renewal Conference on HIV/AIDS and Food and Nutrition Security, Durban South Africa. FAO (ed.) 1996. Conferencia Técnica Internacional sobre los recursos Fitogenéticos, Leipzing, Alemania. 17-23 junio. Ferreira, M., and D. Grattapaglia. 1998. Introducción al uso de marcadores moleculares en el análisis genético. Brasilia, DF. Ferris, R.S.B., J. Tuyisenge, M. Rucibango, D. Munkankubana, C. Ngagoyisonga, C. Gatarayiha, L. Butare, C. Kanyange, C. Uwantege, B. Kagiraneza, and K. Wanda. 2002. Atdt-Ciat/Isar/Iita-Foodnet And Pearl Project – Ruanda. International Institute Of Tropical Agricultura (IITA - Foodnet), Institute Des Sciences Agronomique Du Ruanda (ISAR), PEARL– Project., Rwanda, Africa. Fonnegra, R. 1996. Taxonomía de plantas vasculares. 2a Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia. edición ed. Editorial Gaitan-Solis, E., M.C. Duque, K.J. Edwards, and J. Tohme. 2002. Microsatellite Repeats in Common Bean (Phaseolus vulgaris): Isolation, Characterization, and Cross-Species Amplification in Phaseolus ssp. Crop Sci. 42:2128-2136. Gepts, P., and F.A. Bliss. 1986. Phaseolin variability among wild and cultivated common beans (Phaseolus vulgaris) from Colombia. Econ. Bot. 40:469-478. Gepts, P., T.C. Osborn, K. Rashka, and F.A. Bliss. 1986. Phaseolin-protein variability in wild forms and landraces of the common bean (Phaseolus vulgaris L.) evidence for multiple centers of domestication. Econ. Bot. 40:451-468. 95 Gomez, O.J., M.W. Blair, B.E. Frankow-Lindberg, and U. Gullberg. 2004. Molecular and Phenotypic Diversity of Common Bean Landraces from Nicaragua. Crop Sci. 44:1412-1418. Hajeer, A., J. Worthington, and S. John, (eds.) 2000. SNP and microsatellite genotyping: Markers for genetic analysis. Eaton Publishing, Manchester, U.K. HarvestPlus. 2006. Biofotified Beans. Breeding Crops for Better Nutrition. Harvey, D. 2000. Modern Analytical Chemistry. McGraw-Hill, New York. ISAR. 2000. Rwanda Brief introduction to the http://www.isar.cgiar.org/Isarprog/Bean.htm (verified 15 Enero). Country [Online] Islam, F.M.A., K.E. Basford , C. Jara, R.J. Redden, and S. Beebe. 2002a. Seed compositional and disease resistance differences among gene pools in cultivated common bean. Genetic Resources and Crop Evolution. 49:285-293. Islam, F.M.A., K.E. Basford, R.J. Redden, A.V. Gonzalez, P.M. Kroonenberg, and S. Beebe. 2002b. Genetic variability in cultivated common bean beyond the two major gene pools. Genetic Resources and Crop Evolution. 49:271-283. Islam, F.M.A., S. Beebe, M. Muñoz, J. Tohme, R.J. Redden, and K.E. Basford 2004. Using molecular markers to assess the effect of introgression on quantitative attributes of common bean in the Andean gene pool. Theor Appl Genet. 108:243252. Joe, L.K., A.M. Wheaton, S.J. Bay, L.E. Krotzer, P.A. Baybayan, O.S. Ostadan, S.R. Berosik, T.H. Yang, S.A. Pistacchi, S.-S. Feng, and S.-S. XLou. 2004. Improved Solutions for High Throughput Microsatellite Analysis. Applied Biosystems, Foster. Kami, J., V. Becerra, D. Debouck, and P. Gepts. 1995. Identification of presumed ancestral DNA sequences of phaseolin in Phaseolus vulgaris. Proc. Natl. Acad. Sci. 92:1101-1104. Kelly, V., E. Mpyisi, E. Shingiro, and J.B. Nyarwaya. 2001. Agricultural Intensification in Rwanda:An Elusive Goal Fertilizer Use and Conservation Investments, In Rwanda, (ed.), Vol. 3. FSRP/DSA Publication. Khairallah, M.M., M.W. Adams, and B.B. Sears. 1990. Michondrial DNA polymorphisms of Malawian bean lines: further evidence for two major genepools. Theor Appl Genet. 80:753-761. Kimani, P.M., R. Chirwa, and M.W. Blair. 2000. Bean breeding for east and central África: Strategy and Plan East and central Africa Research Network. Revised draft. Koenig, R., and P. Gepts. 1989. Allozyme diversity in wild Phaseolus vulgaris: further evidence for two major centers of genetic diversity. Theor Appl Genet. 78:809-817. 96 Koinange, E.M.K., and P. Gepts. 1992. Hybrid weakness in wild Phaseolus vulgaris L. J Hered. 83:135–139. Koinange, E.M.K., S.P. Singh, and P. Gepts. 1996. Genetic control of the domestication syndrome in common-bean. Crop Sci. 36:1037–1045. Liu, K., and S.V. Muse. 2005. PowerMarker: Integrated analysis environment for genetic marker data. Bioinformatics. 21:2128-2129. López, M., F. Fernández, and A.v. Schoonhoven, (eds.) 1985. Frijol: investigación y producción, pp. 1-417. Programa de las Naciones Unidas (PNUD); Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), Cali, CO. Mahuku, G.S. 2004. A simple extraction method suitable for PCR based analysis of plant, fungal and bacterial DNA. Plant Mol Biol Rep. 22:71-81. Martin, G.B., and M.W. Adams. 1987. Landraces of Phaseolus vulgaris (Fabaceae) in Northen Malawi I. Regional variation. Econ. Bot. 41:190-203. MINAGRI/MINEDUC. 1993. Plan directeur Nationale de la recherche agricole 19932003. République Rwandaise, Rwuanda. Mitchell, S.E., S. Kresovich, C.A. Jester, C.J. Hernandez, and M.A.K. Szewc. 1997. Application Of Multiplex-PCR And Fluorescence-Based, Semi-Automated Allele Sizing Technology For Genotyping Plant Genetic Resources. Crop Science 37:617624. Moreno, N. 2007. Caracterización molecular y nutricional de 221 variedades Africanas de fríjol común (Phaseolus vulgaris L.) postuladas como parentales en un programa de mejoramiento nutricional. Tesis, Biologa. Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá D.C. Muñiz, O. 1980. Espectrofotometria de absorción atómica. Su aplicación a la determinación de elementos metalicos en la Agroquímica. Boletín de Reseñas Suelos y Agroquímica:5-35. Musoni, A. 2006. Inheritance of resistance to Fusarium wilt (F. oxysporum f.sp. phaseoli) and selection of marketable climbing bean varieties with multiple disease resistance. Thesis, Master of Science. University of Nairobi, Rwanda. Ngirumwami, J.L. 1992. Analysis of food crop production and marketing trends in Rwnada with emphasis on dry beans. Thesis, Master of Science. Michigan State University. OPS. 2002. Compuestos de hierro para la fortificación de alimentos: guías para América Latina y el Caribe. Washington, D.C. 97 Paredes-Lopez, O., and P. Gepts. 1995. Extensive introgression of middle American germplasm into Chilean common bean cultivars. Genetic Resources and Crop Evolution. 42:29-41. Pastor-Corrales, M.A., and H.F. Schwartz, (eds.) 1994. Problemas de producción del frijol en los trópicos. . pp. 1-734 p. + Figuras a color (p. 735-805). Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), Cali, CO. Reisch, B.I. 1998. Molecular markers: The foundation for grapevine genetic mapping, DNA fingerprinting and genomics Proc. 7th Intern. Symp. Grapevine Genetics and Breeding., Montpellier, France. Rocha, E. 2000. Principios Básicos de Espectroscopía. UACh, México. Rohlf, F. 2002. NTSys-pc v.2.10: Numerical Taxonomy System. Exter Publishing, NY. Roizès, G. 2000. Identification of Microsatellite Markers: Screening for Repeat Sequences and Mapping Polymorphisms, p. 152, En A. Hejeer, et al., eds. SNP and microsatellite genotyping: markers for genetic analysis. Biotechniques Books, USA. Sandoval, T. 2006. Cuantificación de Fitatos por espectroscopia visible en dos poblaciones de fríjol común (Phaseolus vulgaris L.) e identificación de QTL´s asociados a su contenido, Quimico. Universidad del Valle, Santiago de Cali. Schoonhoven, A.A., and V.V. Oswaldo. 1994. El fríjol común en América Latina y sus limitaciones. Centro Internacional de Agricultura Tropical. Cali, Colombia. Singh, S., P. Gepts, and D. Debouck. 1991a. Races of common bean (Phaseolus vulgaris Fabaceae). Econ. Bot. 45:379-396. Singh, S.P. 2001. Broadening the Genetic Base of Common Bean Cultivars: A Review. Crop Sci. 41:1659-1675. Singh, S.P., D.G. Debouck, and P. Gepts. 1988. Races of Common Bean, Phaseolus vulgalis, p. 75-89, En S. Beebe, ed. Current Topics in Breeding of Common Bean. Proceedings of International Bean Breeding Workshop, Cali, Colombia. Singh, S.P., R.O. Nodari, and P. Gepts. 1991b. Genetic diversity in cultivated common bean: I. Allozymes. Crop Sci. 31:19-23. Skoog, D.A., F.J. Holler, and T.A. Nieman. 2001. Principios de Análisis Instrumental. 5a ed. McGraw-Hill, Madrid. Smith, J.S.C., S.L. Chin, H. Shu, O.S. Smith, J.S. Wall, and M.L. Senior. 1997. An Evaluation of the utility of SSR loci as molecular markers in Maize (Zea mays L.): comparisons with data from RFLPs and Pedigree. Theor Appl Genet. 95:163-173. 98 Sperling, L. 2001. The effect of the civil war on Rwanda’s bean seed systems and unusual bean diversity. Biodiversity and Conservation. 10:989–1009. Tohme, J., D.O. Gonzalez, S. Beebe, and M.C. Duque. 1996. AFLP analysis of gene pools of a wild bean core collection. Crop Sci. 36:1375-1384. UnitedNations. 2007. Maps and Geographic Information Resources [Online]. Available by Cartographic Section, DPKO http://www.un.org/Depts/Cartographic/map/profile/rwanda.pdf (verified 27 Agosto). Weir, B.S. 1996. Genetic data analysis II. Sunderland, M.A: Sinauer Associates, Inc. Winter, P., and G. Kahl. 1995. Molecular marker technologies for plant improvement. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 11:438-448. Wortmann, C.S., R.A. Kirkby, E. C.A, and D.J. Allen. 1999. Atlas of Common Bean [Phaseolus vulgalis L.] Produciton in Africa. CIAT Pan-African Bean Research Alliance. Yeh, F., R. Yang, T. Boyle, Z. Ye, and J. Mao. 1997. POPGENE, the User-Friendly Shareware for Population Genetics Analysis. Molecular Biology and Biotechnology Centre, University of Alberta, Canada. Yu, K., S. Park, V. Poysa, and P. Gepts. 2002. Integration of simple sequence repeat (SSR) markers into a molecular linkage map of common bean (Phaseolus vulgaris L.). J Hered. 91:429-434. 99 10 ANEXOS Anexo 1. Protocolo de Extracción de ADN de fríjol utilizando proteinasa K (Mahuku 2004) 1. Agregar en un tubo de micro centrífuga de 2 µl: 800 μl de buffer de extracción (NaCl 5M, Tris 1M, pH 7.5, EDTA 0.5M pH 8, SDS 10%, proteinasa K 10mg/ml agua) y 0.03g de tejido. Se deja a baño maria 1 hora a 65ºC agitando cada 15 min. 2. Terminada la hora agitar el tubo y agregar 200 μl de acetato de Amonio 7.5 M, agitar y se dejar por 15 min a temperatura ambiente. 3. Centrifugar a 12000 r.p.m. por 15 min. 4. Transferir el sobrenadante a otro tubo y agregar 500 μl de cloroformo:octanol (24:1), mezclar bien y centrifugar a 12000 r.p.m. por 10 min. 5. Transferir el sobrenadante y agregar ½ volumen de isopropanol frío y dejar precipitando a 20ºC mínimo dos horas, pero preferiblemente toda la noche. 6. Posteriormente centrifugar a 12000 r.p.m. por 15 min, eliminar el sobrenadante lavar el pellet con 500 μl de etanol frío al 70%. 7. Deja evaporar el etanol totalmente 8. Preparar el agua de resuspensión (6 μl de RNAasa/ 1 mL de TE 10:1 (Tris HCL 1M pH 8.0, EDTA 0.5 M, pH 8.0)), y agregar entre 100 a 200 μL dependiendo del tamaño del pellet. 9. Dejar el ADN a 37ºC por 30 min y se observa su calidad en un gel de agarosa 1.0%. 100 Anexo 2. Organización en paneles de los marcadores fluorescentes, teniendo en cuenta la secuencia, el rango de pares de bases, la fluorescencia y el motivo para cada uno. En rojo se resaltan los marcadores que se tuvieron en cuenta en el estudio. no. 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 ID Marker GATS91 BMd08 BMd20 BM172 BM188 BM175 BM200 BM205 BM139 BM156 PV-ctt001 BM160 PV-ag003 BMd01 BMd02 BMd16 BM201 AG01 BM140 GATS54 BM187 BMd17 BM183 BMy09 BM143 BM149 BM137 BMd46 BMd47 BM141 PV-cct001 BMd15 BMd51 BMd18 Pv-gaat001 BMd56 Sequence GAG TGC GGA AGC GAG TAG AG TTC ATC CTC TCT CCC GAA CTT GTT GCC ACC GGT GAT AAT CT CTG TAG CTC AAA CAG GGC ACT TCG CCT TGA AAC TTC TTG TAT C CAA CAG TTA AAG GTC GTC AAA TT TGG TGG TTG TTA TGG GAG AAG CTA GAC CAG GCA AAG CAA GC TTA GCA ATA CCG CCA TGA GAG CTT GTT CCA CCT CCC ATC ATA GC GAG GGT GTT TCA CTA TTG TCA CTG C CGT GCT TGG CGA ATA GCT TTG TCA CGT ACG AGT TGA ATC TCA GGA T CAA ATC GCA ACA CCT CAC AA AGC GAC AGC AAG AGA ACC TC ATG ACA CCA CTG GCC ATA CA TGG TGC TAC AGA CTT GAT GG CAT GCA GAC GAA GCA GAG TG TGC ACA ACA CAC ATT TAG TGA C GAA CCT GCA AAG CAA AGA GC TTT CTC CAA CTC ACT CCT TTC C GTT AGA TCC CGC CCA ATA GTC CTC AAA TCT ATT CAC TGG TCA GC GGG AGG GTA GGG AAG CAG TG GGG AAA TGA ACA GAG GAA A CGA TGG ATG GAT GGT TGC AG CCG TAT CCG AGC ACC GTA AC GGC TGA CAA CAA CTC TGC AC ACC TGG TCC CTC AAA CCA AT TGA GGA GGA ACA ATG GTG GC CCA ACC ACA TTC TTC CCT ACG TC TGC CAC CAC AGC TTT CTC CTC CGC CAA TTC TTC AAC CCT AA AAA CAC ACA AAA AGT TGG ACG CAC ACC TAG AGC CTA ATC CTT CTG CGT AAT GCG TGA GCA TGA TTA AGG pb min 210 176 118 82 142 160 227 135 84 210 152 183 161 165 100 135 94 126 160 114 150 100 134 170 118 242 122 320 128 160 137 163 107 156 156 186 pb max 275 190 132 110 190 195 295 153 118 315 172 265 168 199 110 150 114 142 210 117 226 118 160 330 176 258 238 330 154 350 158 202 118 242 166 192 DIFF 65 14 14 28 48 35 68 18 34 105 20 82 7 34 10 15 20 16 50 3 76 18 26 160 58 16 116 10 26 190 21 39 11 86 10 6 PANEL 5A 5A 5A 5A 5B 5B 5B 5B 6A 6A 6A 6A 6B 6B 6B 6B 7A 7A 7A 7A 7B 7B 7B 7B 8A 8A 8A 8A 8B 8B 8B 8B 9A 9A 9A 9A FLUORESC 6-FAM NED VIC PET NED VIC 6-FAM PET PET 6-FAM VIC NED NED 6-FAM PET VIC FAM FAM 6-FAM HEX HEX TET TET TET FAM FAM TET TET HEX HEX FAM FAM HEX HEX TET TET Color blue yellow green red yellow green blue red red blue green yellow yellow blue red green Motivo (GA)11 (CT)7 (TA)5 (GA)23 (CA)18(TA)7 (AT)5(GA)19 (AG)10 (GT)11 (CT)25 (CT)32 (CTT) (GA)15(GAA)5 (AG)8 (AT)9 (CGG)8 (CATG)4 (GA)15 (GA)8GGTA(GA)5GGGGACG(AG)4 (GA)30 (GA)5AACAGAGT(GA)8 (CT)10T(CT)14 (CGCCAC)6 (TC)14 (TA)22 (GA)35 (TGC)6(TAG)3 (CT)33 (TCT)4 (AT)5 (GA)29 (AT)12 (AG)6 (CT)5 (TGAA)3 (AT)4(T)2 (AT)5 Panel Adicional ID Marker BMd45 BM151 pb min 92 146 pb max 130 154 PANEL ADD ADD FLUORESCENCE HEX HEX Color Verde Verde Motivo GGTTGGGAAGCCTCATACAG CACAACAAGAAAGACCTCCT Sequence BM165 BM154 TCAAATCCCACACATGATCG TCTTGCGACCGAGCTTCTCC 177 210 192 360 ADD ADD HEX HEX Verde Verde (TA)3(CA)9 (CT)17 101 (AG)5 (TC)14 2 2 2 2 4 4 2 2 2 2 3 5 2 2 3 4 2 17 2 12 5 6 2 2 2 6 2 3 2 2 2 2 2 4 3 2 Anexo 3. Diagrama en el que se observa el ciclo que sigue la muestra dentro del secuenciador ABI 3730xl 102 Anexo 4. Descripción de características morfológicas de la semilla de fríjol Cod Brillo Cod Color Principal Color Secundario 1 Blanco ‐ ‐ Mediana Opaco 101 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 3 Color Principal Blanco Color Secundario ‐ Patrón de Color Venación Mediana Semi‐Brillante 102 Amarillo ‐ Venación Pequeña Semi‐Brillante 4 Café/Marrón Café/Marrón Rayado Tamaño Mediana Semi‐Brillante 103 ‐ Venación Tamaño Pequeña Brillo Semi‐Brillante 5 Café/Marrón Rojo Rayado Mediana Opaco 104 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 6 Amarillo Rojo Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 105 Café/Marrón ‐ Venación Pequeña Semi‐Brillante 7 Amarillo Rojo Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 107 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 8 Crema Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 109 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 9 Amarillo Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 110 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante Pequeña Semi‐Brillante 10 Jaspeado Pequeña Opaco 112 Café/Marrón 11 Café/Marrón Negro Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 114 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña 12 Café/Marrón Negro Jaspeado Pequeña Opaco 115 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Opaco 15 Café/Marrón Negro Jaspeado Pequeña Opaco 116 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Opaco Café/Marrón Negro Café/Marrón Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Opaco Café/Marrón Negro Jaspeado Pequeña Opaco 118 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Opaco Amarillo Café/Marrón Jaspeado Mediana Opaco 119 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Opaco ‐ Pequeña Pequeña Opaco 117 Opaco 16 ‐ Jaspeado ‐ 17 Amarillo Negro ‐ 19 20 Semi‐Brillante 121 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Opaco 21 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 122 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 23 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 124 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante Semi‐Brillante 24 Amarillo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 126 Rosado ‐ ‐ Pequeña 25 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 127 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña 26 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 128 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Opaco 27 Amarillo ‐ ‐ Mediana Opaco 129 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 28 Amarillo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 130 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Opaco 30 Amarillo Café/Marrón Punteado Opaco Mediana Semi‐Brillante 131 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Opaco 31 Amarillo Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante 133 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 32 Amarillo Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante 134 Negro ‐ ‐ Pequeña 33 Morado/Púrpura ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 136 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 34 Rojo Crema Moteado Grande Semi‐Brillante 137 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 35 139 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco Amarillo Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante 36 Amarillo Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante 140 Negro ‐ ‐ Mediana Opaco 37 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 141 Negro ‐ ‐ Mediana Opaco Opaco 38 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 142 Negro ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 39 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 143 Negro ‐ ‐ Mediana Opaco 40 Amarillo Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante 144 Negro ‐ ‐ Mediana 41 Amarillo Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante 145 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 43 Amarillo Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante 146 Negro ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 44 Amarillo Rojo Rayado Mediana Semi‐Brillante 147 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 45 Amarillo ‐ Mediana Negro Rayado Mediana Semi‐Brillante 149 Negro ‐ Opaco Semi‐Brillante 46 Crema Negro Rayado Mediana Semi‐Brillante 150 Negro ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 47 Crema Negro Rayado Mediana Semi‐Brillante 151 Negro ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 48 Crema Negro Rayado Mediana Semi‐Brillante 152 Negro ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 49 Crema Negro Rayado Mediana Semi‐Brillante 153 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 50 Crema Negro Rayado Mediana Semi‐Brillante 154 Negro ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante Crema Negro Rayado ‐ Mediana 54 Mediana Semi‐Brillante 155 Negro ‐ Semi‐Brillante 55 Crema ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 156 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 56 Crema ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 157 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 58 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 158 Café/Marrón Café/Marrón Jaspeado Pequeña Semi‐Brillante Café/Marrón 59 Rojo ‐ Pequeña Semi‐Brillante 159 Gris/Raros 61 Rosado ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 162 Café/Marrón ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 62 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 163 Café/Marrón Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante Semi‐Brillante 64 Rojo ‐ ‐ Moteado Pequeña Opaco ‐ Pequeña Semi‐Brillante 164 Crema Negro Rayado Mediana 66 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 165 Café/Marrón Negro Moteado Mediana Opaco 69 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 166 Amarillo ‐ ‐ Mediana Opaco 70 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 170 Blanco Negro Jaspeado Pequeña Opaco 71 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 171 Crema Negro Jaspeado Pequeña Semi‐Brillante 72 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 172 Café/Marrón Negro Jaspeado Pequeña Semi‐Brillante Semi‐Brillante 73 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 174 Café/Marrón Negro Jaspeado Mediana 74 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 175 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 76 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 176 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 77 Rosado ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 177 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 78 Negro Crema Moteado Grande Semi‐Brillante 180 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante Semi‐Brillante 80 Amarillo ‐ Venación Mediana Opaco 181 Café/Marrón Café/Marrón Moteado Pequeña 81 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 182 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 82 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 184 Café/Marrón Negro Moteado Pequeña Semi‐Brillante 87 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 185 Crema ‐ Venación Pequeña Semi‐Brillante 88 Amarillo ‐ Pequeña Semi‐Brillante 186 Crema ‐ Venación Pequeña Semi‐Brillante 89 Rosado Café/Marrón Rayado Mediana Semi‐Brillante 187 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 90 Amarillo ‐ Venación Venación Mediana Semi‐Brillante 188 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 92 Café/Marrón Negro Jaspeado Pequeña Rojo ‐ ‐ Mediana 93 Crema Negro Jaspeado Mediana Opaco 191 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 94 Amarillo ‐ Venación Pequeña Opaco Opaco 192 189 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 95 Amarillo ‐ Venación Mediana Semi‐Brillante 193 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 96 Amarillo ‐ Venación Mediana Semi‐Brillante 194 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 103 Amarillo Patrón de Color Semi‐Brillante Anexo 4. (cont.) Descripción de características morfológicas de la semilla de fríjol Cod Color Principal Color Secundario Patrón de Color Tamaño Brillo Cod Color Principal Color Secundario Patrón de Color Tamaño Brillo 196 Negro ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 301 Amarillo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 199 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 302 Amarillo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 201 Crema Rojo Rayado Grande Semi‐Brillante 303 ‐ Mediana Semi‐Brillante 204 Crema Rojo Rayado Mediana Semi‐Brillante 310 Amarillo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 205 Crema Rojo Rayado Mediana Semi‐Brillante 311 Café/Marrón Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 206 Crema Rojo Rayado Mediana Semi‐Brillante 312 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 207 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 316 Amarillo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 209 Café/Marrón ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 319 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 211 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 320 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña 212 Café/Marrón ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 321 Rojo Crema Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 214 Café/Marrón ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 325 Negro Crema Moteado Grande Semi‐Brillante 215 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 326 Amarillo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 216 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 328 Crema Café/Marrón Jaspeado Pequeña 217 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 329 Crema Rojo Rayado Grande Semi‐Brillante 218 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 332 Crema Rojo Rayado Mediana Semi‐Brillante 219 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 333 Crema Rojo Rayado Mediana Semi‐Brillante 220 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 335 Crema Rojo Rayado Mediana Semi‐Brillante 221 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 336 Crema Rojo Rayado Mediana Semi‐Brillante 223 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 338 Crema Negro Rayado Mediana 224 Café/Marrón Negro Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 340 Crema Negro Rayado Mediana Semi‐Brillante 226 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 341 Crema Negro Rayado Mediana Semi‐Brillante Mediana ‐ Semi‐Brillante Semi‐Brillante Semi‐Brillante 227 Rojo ‐ ‐ Semi‐Brillante 345 Crema Negro Rayado Mediana Semi‐Brillante 229 Amarillo Café/Marrón Punteado Pequeña Semi‐Brillante 357 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 230 Amarillo Café/Marrón Moteado Mediana Semi‐Brillante 359 Amarillo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 231 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 368 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 232 Café/Marrón Rojo Punteado Mediana Semi‐Brillante 370 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante Pequeña Semi‐Brillante Moteado Mediana 234 Crema ‐ ‐ 235 Café/Marrón Café/Marrón Venación Pequeña Opaco 373 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 236 Rojo ‐ ‐ Pequeña Opaco 374 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 375 238 371 Rojo Crema Semi‐Brillante Rojo ‐ ‐ Mediana Opaco Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 240 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 376 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 242 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 377 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 243 Negro ‐ ‐ Mediana Opaco 379 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 244 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 383 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 245 Rojo Café/Marrón Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 384 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 246 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 385 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 247 Café/Marrón Rojo Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 386 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 249 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 389 Rojo ‐ ‐ Grande Semi‐Brillante 253 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 390 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 255 Gris/Raros Café/Marrón Moteado Pequeña Opaco 393 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 257 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 394 Rojo ‐ ‐ Grande Semi‐Brillante 258 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 397 Rojo ‐ ‐ Grande Brillante 259 Café/Marrón ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 399 Rojo ‐ ‐ Grande 260 Café/Marrón ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 400 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 266 Amarillo Café/Marrón Moteado Mediana Semi‐Brillante 404 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 267 Crema ‐ Moteado Mediana Semi‐Brillante 408 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante Semi‐Brillante 268 Pequeña Brillante Rojo ‐ Punteado Semi‐Brillante 410 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña 269 Rojo ‐ Punteado Pequeña Semi‐Brillante 415 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña 270 Amarillo ‐ Moteado Mediana Semi‐Brillante 421 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 271 Café/Marrón ‐ Punteado Pequeña Semi‐Brillante 426 Crema Negro Moteado Pequeña Semi‐Brillante Semi‐Brillante 272 Crema ‐ Punteado Pequeña Semi‐Brillante 428 Rojo ‐ ‐ Pequeña Brillante 273 Gris/Raros Café/Marrón Punteado Pequeña Semi‐Brillante 429 Rojo ‐ ‐ Pequeña Brillante 274 Gris/Raros Café/Marrón Moteado Mediana Semi‐Brillante 434 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 275 Café/Marrón Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 436 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 277 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 438 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 278 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 440 Negro ‐ ‐ Pequeña 279 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 441 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 281 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 444 Negro ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante ‐ ‐ Opaco 282 Amarillo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 445 Negro Pequeña Opaco 283 Gris/Raros Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 454 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 284 Blanco ‐ ‐ Mediana Opaco 459 Crema Negro Moteado Pequeña Semi‐Brillante 285 Blanco ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 461 Café/Marrón Negro Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 287 Blanco ‐ ‐ Mediana Opaco 464 Café/Marrón ‐ ‐ Grande Semi‐Brillante 288 Crema Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 465 Café/Marrón Negro Jaspeado 289 Crema Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 468 Rojo ‐ ‐ Grande Semi‐Brillante 290 Crema Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 474 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 291 Crema Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 475 Amarillo Café/Marrón Punteado Pequeña Semi‐Brillante 292 Café/Marrón Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 476 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 295 Café/Marrón Rayado Mediana Semi‐Brillante 478 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 296 Café/Marrón Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 479 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 297 Crema Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 480 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 298 Café/Marrón Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 481 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 299 Café/Marrón Negro Rayado Grande Semi‐Brillante 492 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante Negro 104 Amarillo Pequeña Semi‐Brillante Anexo 4. (cont.) Descripción de características morfológicas de la semilla de fríjol Cod Color Principal Color Secundario Patrón de Color Tamaño Brillo 497 Crema ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 498 Crema ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 500 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 507 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 509 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 514 Café/Marrón Negro ‐ Grande Semi‐Brillante 516 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 518 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 522 Amarillo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 523 Amarillo Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante 526 Amarillo Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante 528 Amarillo Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante 530 Amarillo Café/Marrón Punteado Mediana Semi‐Brillante 536 Gris/Raros Café/Marrón ‐ Mediana Semi‐Brillante 538 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 539 Café/Marrón Negro Jaspeado Pequeña Semi‐Brillante 540 Crema Negro Jaspeado Pequeña Semi‐Brillante 542 Rojo Crema Moteado Grande Semi‐Brillante 550 Café/Marrón Café/Marrón Moteado Pequeña Semi‐Brillante 552 Crema Rojo Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 554 Café/Marrón Café/Marrón Jaspeado Pequeña Semi‐Brillante 556 Crema ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 557 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 563 Crema ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 564 Crema Negro Moteado Pequeña Semi‐Brillante 567 Café/Marrón Negro Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 568 Café/Marrón Negro Moteado Mediana Semi‐Brillante 570 Crema Negro Moteado Pequeña Semi‐Brillante 572 Crema Negro Moteado Mediana Semi‐Brillante 573 Crema Negro Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 574 Café/Marrón Negro Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 575 Crema Negro Jaspeado Mediana Semi‐Brillante 582 Café/Marrón Crema Moteado Pequeña Semi‐Brillante 586 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 595 Negro ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 596 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 597 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 601 Negro ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 603 Negro ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 604 Negro ‐ ‐ Pequeña Opaco 605 Negro ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 606 Café/Marrón Negro Rayado Mediana Semi‐Brillante 609 Rojo ‐ ‐ Grande Semi‐Brillante 611 Rosado ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 613 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 620 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 625 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 630 Café/Marrón ‐ Moteado Mediana Semi‐Brillante 631 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 634 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 636 Morado/Púrpura ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 637 Café/Marrón ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 640 Café/Marrón ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 642 Crema ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 647 Crema ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 655 Rojo Crema Moteado Mediana Semi‐Brillante 667 Negro ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 672 Crema ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 674 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 676 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 678 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante 679 Rojo ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante 682 Café/Marrón ‐ ‐ Pequeña Semi‐Brillante CALIMA Rojo Crema Moteado Grande Brillante DOR364 Rojo ‐ ‐ Mediana Semi‐Brillante G19833 Café/Marrón Rojo Jaspeado Grande Brillante ICA‐PIJAO Negro ‐ ‐ Pequeña Opaca 105 Anexo 5. Prueba F y t de comparación de varianzas y medias para los parámetros de diversidad analizados en la población de estudio Two Sample Test for Variances of Het__Observada_ and Het__Observada_1 1 15:13 Wednesday, October 31, 2007 Sample Statistics Group N Mean Std. Dev. Variance ‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐ Het__Observada_ 16 0.2025 0.1729 0.029887 Het__Observada_1 14 0.172143 0.1925 0.037064 Hypothesis Test Null hypothesis: Variance 1 / Variance 2 = 1 Alternative: Variance 1 / Variance 2 ^= 1 ‐ Degrees of Freedom ‐ F Numer. Denom. Pr > F ‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐ 0.81 15 13 0.6832 R// varianzas no diferentes distribución prueba f 106 Anexo 5 (cont). Prueba F y t de comparación de varianzas y medias para los parámetros de diversidad analizados en la población de estudio Prueba t Two Sample t‐test for the Means of Het__Observada_ and Het__Observada_1 3 Sample Statistics Group N Mean Std. Dev. Std. Error ‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐ Het__Observada_ 16 0.2025 0.1729 0.0432 Het__Observada_1 14 0.172143 0.1925 0.0515 Hypothesis Test Null hypothesis: Mean 1 ‐ Mean 2 = 0 Alternative: Mean 1 ‐ Mean 2 ^= 0 If Variances Are t statistic Df Pr > t ‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐ Equal 0.455 28 0.6525 Not Equal 0.452 26.42 0.6551 R/// Medias no diferentes, igual se toma la primera por la prueba f que dijo que no son diferentes Distribucion t 107 Anexo 5 (cont). Prueba F y t de comparación de varianzas y medias para los parámetros de diversidad analizados en la población de estudio Para diversidad Two Sample Test for Variances of Diversidad_Gen_tica and Diversidad_Gen_tica1 1 Sample Statistics Group N Mean Std. Dev. Variance ‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐ Diversidad_Gen_tica 16 0.706875 0.1842 0.033916 Diversidad_Gen_tica1 14 0.526429 0.1885 0.035517 Hypothesis Test Null hypothesis: Variance 1 / Variance 2 = 1 Alternative: Variance 1 / Variance 2 ^= 1 ‐ Degrees of Freedom ‐ F Numer. Denom. Pr > F ‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐ 0.95 15 13 0.9224 R// varianzas no diferentes distribución prueba f 108 Anexo 5 (cont). Prueba F y t de comparación de varianzas y medias para los parámetros de diversidad analizados en la población de estudio Two Sample t‐test for the Means of Diversidad_Gen_tica and Diversidad_Gen_tica1 2 Sample Statistics Group N Mean Std. Dev. Std. Error ‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐ Diversidad_Gen_tica 16 0.706875 0.1842 0.046 Diversidad_Gen_tica1 14 0.526429 0.1885 0.0504 Hypothesis Test Null hypothesis: Mean 1 ‐ Mean 2 = 0 Alternative: Mean 1 ‐ Mean 2 ^= 0 If Variances Are t statistic Df Pr > t ‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐‐ Equal 2.649 28 0.0131 Not Equal 2.644 27.29 0.0134 R// medias diferentes distribución prueba t 109 Anexo 6. ANOVA para contenidos de minerales (hierro y zinc) a partir de las poblaciones generadas mediante PCoA. The GLM Procedure Class Level Information Class Levels Values grupo_ 6 1 2 3 4 5 6 Number of observations 353 NOTE: All dependent variables are consistent with respect to the presence or absence of missing values. However only 343 observations can be used in this analysis. 09:39 Wednesday, November 14, 2007 2 The GLM Procedure Dependent Variable: Fe_ Sum of Source DF Model 5 Error 337 Corrected Total 342 R-Square 0.022779 Source grupo_ Coeff Var 12.25295 DF 5 Fe Squares 549.41626 23570.50801 24119.92427 Root MSE 8.363143 Type III SS 549.4162648 Mean Square 109.88325 69.94216 F Value 1.57 Pr > F 0.1676 Fe_ Mean 68.25414 Mean Square 109.8832530 F Value 1.57 Pr > F 0.1676 09:39 Wednesday, November 14, 2007 The GLM Procedure Dependent Variable: Zn_ Sum of Source DF Model 5 Error 337 Corrected Total 342 R-Square 0.127856 Source grupo_ Coeff Var 9.196127 DF 5 Zn Squares 496.840452 3389.091097 3885.931549 Root MSE 3.171222 Type III SS 496.8404522 Mean Square 99.368090 10.056650 Zn_ Mean 34.48432 Mean Square 99.3680904 110 F Value 9.88 F Value 9.88 Pr > F <.0001 Pr > F <.0001 3 Anexo 6 (cont). ANOVA para contenidos de minerales (hierro y zinc) a partir de las poblaciones generadas mediante PCoA. 09:39 Wednesday, November 14, 2007 The GLM Procedure Least Squares Means LSMEAN grupo_ Fe_ LSMEAN Number 1 68.5490573 1 2 69.1892573 2 3 67.4307669 3 4 66.6529650 4 5 65.4870095 5 6 70.9563438 6 Least Squares Means for effect grupo_ Pr > |t| for H0: LSMean(i)=LSMean(j) Dependent Variable: Fe_ i/j 1 2 3 4 5 6 1 2 0.6202 0.6202 0.4379 0.2644 0.1480 0.3054 0.1497 0.0944 0.0607 0.4257 3 4 5 0.4379 0.1497 0.2644 0.0944 0.6359 0.1480 0.0607 0.3479 0.6052 0.6359 0.3479 0.1272 0.6052 0.0829 LSMEAN Zn_ LSMEAN grupo_ 6 0.3054 0.4257 0.1272 0.0829 0.0496 0.0496 Number 1 35.5382718 1 2 33.0242438 2 3 35.4809358 3 4 35.7669388 4 5 33.9813857 5 6 35.1076594 6 Least Squares Means for effect grupo_ Pr > |t| for H0: LSMean(i)=LSMean(j) Dependent Variable: Zn_ i/j 1 2 3 4 5 6 1 <.0001 0.9164 0.7224 0.0527 0.6285 2 3 <.0001 0.9164 <.0001 <.0001 <.0001 0.2003 0.0136 0.6461 0.0567 0.6697 4 0.7224 <.0001 0.6461 0.0374 0.4827 5 0.0527 0.2003 0.0567 0.0374 6 0.6285 0.0136 0.6697 0.4827 0.2853 0.2853 NOTE: To ensure overall protection level, only probabilities associated with pre-planned comparisons should be used. 111 4 Anexo 6 (cont). ANOVA para contenidos de minerales (hierro y zinc) a partir de las poblaciones generadas mediante PCoA. 9:39 Wednesday, November 14, 2007 5 The GLM Procedure Ryan-Einot-Gabriel-Welsch Multiple Range Test for Fe_ NOTE: This test controls the Type I experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 337 Error Mean Square 69.94216 Harmonic Mean of Cell Sizes 34.79191 NOTE: Cell sizes are not equal. Number of Means Critical Range 2 4.8120927 3 4 5.2402928 5.4729326 5 5.4993403 6 5.7471385 Means with the same letter are not significantly different. REGWQ Grouping A A A A A A Mean 70.956 A 69.189 A 68.549 A 67.431 A 66.653 A 65.487 N grupo_ 16 6 130 2 62 1 74 3 40 4 21 5 09:39 Wednesday, November 14, 2007 The GLM Procedure Ryan-Einot-Gabriel-Welsch Multiple Range Test for Zn_ NOTE: This test controls the Type I experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 337 Error Mean Square 10.05665 Harmonic Mean of Cell Sizes 34.79191 NOTE: Cell sizes are not equal. Number of Means Critical Range 2 1.8246986 3 1.9870679 4 2.0752826 5 2.0852962 6 2.1792588 Means with the same letter are not significantly different. 112 6 Anexo 6 (cont). ANOVA para contenidos de minerales (hierro y zinc) a partir de las poblaciones generadas mediante PCoA. REGWQ Grouping A A A A B B A Mean 35.7669 A 35.5383 A 35.4809 A 35.1077 A 33.9814 B 33.0242 113 N 40 4 62 1 74 3 16 6 grupo_ 21 5 130 2 Anexo 7. Tablas de contingencia que describen la distribución de cada característica morfológica (color, patrón de coloración y tamaño) dentro de cada grupo de PCoA formado. vember 14, 2007 1 The FREQ Procedure Table of clustert by color clustert color Frequency|Amarillo|Blanco |Cafe/Mar|Crema |Gris/Rar|Morado/P|Negro |Rojo |Rosado | | | |ron | |os |urpura | | | | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 1 | 14 | 1 | 19 | 5 | 0 | 0 | 16 | 8 | 2 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 2 | 23 | 0 | 17 | 31 | 1 | 2 | 2 | 55 | 1 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 3 | 14 | 2 | 28 | 11 | 4 | 0 | 15 | 5 | 0 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 4 | 2 | 0 | 14 | 2 | 1 | 0 | 8 | 15 | 1 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 5 | 4 | 1 | 14 | 2 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 6 | 5 | 2 | 2 | 1 | 0 | 0 | 2 | 4 | 1 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 7 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 1 | 0 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 8 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 1 | 0 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ Total 62 6 94 52 6 2 43 89 5 Table of clustert by patron clustert patron Frequency|Jaspeado|Moteado |NP |Punteado|Rayado |Venacion| ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 1 | 3 | 5 | 51 | 1 | 1 | 4 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 2 | 6 | 29 | 48 | 11 | 38 | 0 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 3 | 8 | 9 | 54 | 4 | 0 | 4 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 4 | 0 | 2 | 37 | 1 | 0 | 3 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 5 | 15 | 2 | 3 | 0 | 0 | 1 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 6 | 0 | 2 | 11 | 3 | 0 | 1 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 7 | 0 | 0 | 1 | 0 | 0 | 0 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ 8 | 0 | 0 | 0 | 1 | 0 | 0 | ---------+--------+--------+--------+--------+--------+--------+ Total 32 49 205 21 39 13 The FREQ Procedure Table of clustert by tamano clustert tamano Frequency|Grande |Mediana |Pequena | ---------+--------+--------+--------+ 1 | 0 | 13 | 52 | ---------+--------+--------+--------+ 2 | 28 | 100 | 4 | ---------+--------+--------+--------+ 3 | 0 | 29 | 50 | ---------+--------+--------+--------+ 4 | 0 | 1 | 42 | ---------+--------+--------+--------+ 5 | 0 | 12 | 9 | ---------+--------+--------+--------+ 6 | 0 | 10 | 7 | ---------+--------+--------+--------+ 7 | 0 | 0 | 1 | ---------+--------+--------+--------+ 8 | 0 | 0 | 1 | ---------+--------+--------+--------+ Total 28 165 166 114 Total 65 132 79 43 21 17 1 1 359 Total 65 132 79 43 21 17 1 1 359 Total 65 132 79 43 21 17 1 1 359 Anexo 8. Comparación de agrupación de genotipos entre el índice de Disimilaridad de DICE utilizado por el software Darwin y las agrupaciones por PCoA. Pcoa M A M+I M M M+I raro raro 1 2 3 4 5 6 7 8 Total ggd ( GRANDES GRUPOS Darwin) A_FGHI I____E I___J M_ABCD 65 126 1 5 7 3 69 43 21 1 6 4 6 1 1 127 15 12 205 115 Total 65 132 79 43 21 17 1 1 359