CUANTIFICACIÓN DE NÉCTAR EXTRAFLORAL DEL FRIJOL LIMA (PHASEOLUS LUNATUS) Durán Flores F. de D.(1); Heil M.(2); Adame Álvarez R. M.(2) (1) Facultad de Química Universidad Autónoma de Querétaro (2) Departamento de Ingeniería Genética CINVESTAV unidad Irapuato RESUMEN En las plantas existen dos tipos de defensas; directas e indirectas. Las primeras permiten que la planta obtenga una mayor resistencia contra ataques de herbívoros por medio de liberación de alguna sustancia tóxica como ácido cianhídrico (HCN), espinas, etc. El segundo tipo utiliza otros medios para defenderse, externos a la misma planta, por ejemplo: emisión de compuestos orgánicos volátiles o néctar extrafloral para atraer depredadores y parasitoides que defenderán la planta de los herbívoros. El Frijol Lima (Phaseolus lunatus) responde al daño causado por herbívoros incrementando su producción normal de néctar extrafloral (NEF) y de compuestos orgánicos volátiles (COVs), los cuáles utiliza como medio de defensa indirecta. La inducción de la producción de COVs en el Frijol Lima es posible aplicando ácido jasmónico (AJ), una fitohormona involucrada en mecanismos de defensa indirecta de plantas (Ballhorn et al, 2008). INTRODUCCIÓN En la naturaleza, la interacción entre plantas y otros seres vivos es muy común. Algunas plantas responden a daños ocasionados por herbívoros produciendo compuestos orgánicos volátiles (COVs) y/o incrementando la producción normal de néctar extrafloral (NEF) el cuál es una solución acuosa de azúcares y aminoácidos, secretada por órganos no reproductores (nectarios) de la planta (ambos utilizados como defensa indirecta contra los herbívoros depredadores (Radhika y col, 2008; Kost y Heil 2007). El néctar extrafloral sirve como fuente de alimento a artrópodos benéficos, los cuáles defenderán a la planta de depredadores herbívoros (Heil, Lion y Boland 2008), ésta es la razón por la que la producción de néctar extrafloral es llamada defensa indirecta. 1 En estudios anteriores se ha comprobado que algunas plantas responden a la inducción con ácido jasmónico, una fitohormona que está involucrada en rutas metabólicas de algunas plantas, produciendo mayor cantidad de compuestos orgánicos volátiles y/o néctar (Kost y Heil, 2007). En éste experimento tratamos la planta del frijol-lima (Phaseolus lunatus) con ácido jasmónico para cuantificar el néctar producido por frijol-lima de diferentes líneas, unas cultivadas y otras silvestres, (cada línea es la misma especie de planta, sólo difiere en la región donde fue colectada) y evaluar la diferencia de secreción de néctar entre plantas de frijol-lima inducidas y no inducidas con éste ácido bajo condiciones de un invernadero. MATERIALES Y MÉTODOS La cuantificación de néctar se realizó mediante un refractómetro manual ATAGO®Master 20 M en al menos 4 plantas de la misma línea asperjadas con ácido jasmónico 1 mM, 4 con ácido jasmónico 0.25 mM y en otras 4 plantas de la misma línea que no fueron inducidas (controles). Las plantas que fueron asperjadas se lavaron alrededor de las 9 de la mañana con agua destilada y luego fueron asperjadas con el ácido fuera del invernadero, luego de 1 hr se metieron y se colocaron lo más alejado posible de nuestras plantas control. Después de 24 hrs se extrajo el néctar producido por los nectáreos lavando varias veces con aproximadamente 10 µl de agua destilada (porque los azúcares que forman el néctar son solubles en agua) cada uno de los nectáreos de una hoja trifoliar (ésto se hizo en las 7 hojas trifoliares más jóvenes de la guía más larga de cada planta) con una micropipeta para extraer todo el néctar. Mediante el refractómetro se cuantificaron los azúcares, en grados Brix (%), contenidos en un volumen. El volumen se midió en capilares (RINGCAPS®) de 5 µl, recogiendo, por capilaridad, la solución de néctar puesta en el refractómetro. Para obtener el valor de la cuantificación total de néctar (azúcares) en la planta, en mg se multiplicaron los grados Brix obtenidos de los nectareos de cada hoja por el volumen medido con el capilar, luego se sumó el producto de las 7 hojas de cada planta y se dividió entre 100 para eliminar el %, por último se y se obtuvo el promedio de contenido de azúcares para cada línea. RESULTADOS Los resultados obtenidos muestran una diferencia entre la producción de néctar extrafloral secretado por las plantas control y las inducidas. La secreción más elevada de néctar la tienen todas las plantas que fueron asperjadas con ácido jasmónico 0.25 mM. sin embargo, en la mayoría de las líneas tomadas para el experimento, las plantas que fueron rociadas con ácido jasmónico 1 mM tuvieron una menor secreción que las plantas control, a excepción de la línea silvestre WT-Lima. Los mismos resultados son observamos en las líneas cultivadas (CV) y en las silvestres (WT). La gráfica siguiente muestra la cantidad de néctar extrafloral promedio para cada línea de frijol-lima 2 Figura 2. Cantidad promedio de néctar extrafloral extraído en cada una de las líneas de FrijolLima: cultivadas (CV) y silvestres (WT). Comparación entre tratamiento con ácido jasmónico 1 mM, 0.25 mM y tratamiento control (sin tratamiento con ácido jasmónico, bajo las mismas condiciones). DISCUSIÓN DE RESULTADOS Debido a que nuestro interés es conocer el efecto que tiene la aplicación del ácido jasmónico en diferentes líneas de frijol-lima bajo condiciones de invernadero sólo se realizó una comparación entre las plantas seleccionadas como controles y las inducidas con dicho ácido. Los resultados obtenidos no fueron los esperados ya que en experimentos anteriores se comprobó que el ácido jasmónico incrementa la producción de néctar extrafloral en el frijol-lima (Kost y Heil, 2007) por lo que era de esperar que nuestras plantas control tuvieran una menor producción de néctar que las inducidas con ácido jasmónico 1 mM. Sin embargo, no fue así y sólo con la concentración de 0.25 mM aumentó la producción de NEF. De acuerdo a los datos observados en la figura 2 parece ser que el ácido jasmónico actúa de una manera tal que impide o disminuye la producción de néctar extrafloral. La razón de ésto puede deberse a diferentes factores o condiciones en las cuales se llevó a cabo el experimento, desde que las plantas crecieron dentro de un invernadero y no a campo abierto como las que fueron estudiadas en experimentos anteriores hasta las condiciones de luz solar y de temperatura, pues en la mayoría de los días en los que las plantas de frijol-lima fueron inducidas el clima estuvo cambiando constantemente, lo que tal vez pudo afectar la eficiencia del ácido jasmónico o actuar directamente en las plantas. Otro de los factores que probablemente influyó en los datos obtenidos es la concentración de ácido jasmónico utilizada, pues se ha comprobado que aplicando una concentración muy alta de ácido jasmónico inhibe la producción de néctar extrafloral de la planta (Radhika, Kost, Bartram, Heil, Boland 2008). CONCLUSIONES De acuerdo a datos obtenidos en experimentos anteriores nuestros resultados no fueron los esperados en cuanto a la utilización de ácido jasmónico 1 m M, así que lo que se puede 3 concluir hasta ahora es que las condiciones en las que se realizamos los experimentos no fueron las mismas que en estudios anteriores por lo que las plantas pueden cambiar su comportamiento o respuesta al ácido jasmónico. Sin embargo, bajo nuestras condiciones, tenemos una respuesta positiva del frijol-lima al ácido jasmónico 0.25 mM. Debido a que o todos los factores externos pueden ser controlados se puede probar con diferentes concentraciones de ácido jasmónico, mayores o menores a 1 mM hasta encontrar la concentración adecuada para una producción óptima de néctar extrafloral del frijol-lima. Aplicar ácido jasmónico al Frijol Lima silvestre o cultivado en la concentración adecuada hará que la planta secrete mayor cantidad de néctar y por lo tanto tendrá mayor probabilidad de atraer a artrópodos benéficos que la defenderán. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Heil M., Lion U., Boland W. “Defense-Inducing Volatiles: In search of the Active Motif”. Chem Ecol 34:601-604. 2008 Heil M. “Induction of two indirect defences benefits Lima bean (Phaseolus lunatus, Fabaceae) in nature”. Journal of Ecology 92: 527-536. 2004 Heil M. “Transley review. Indirect defence via tritrophic interactions”. New Phytologist. 178: 41-61. 2007 Kost C., Heil M. The Defensive Role of Volatile Emission and Extrafloral Nectar Secretion for Lima Bean in Nature. Chem Ecol 34:2-13. 2008 Radhika V., Kost C., Bartram S., Heil M., Boland W. “Testing the optimal defence hypothesis for two indirect defences: Extrafloral nectar and volatile organic compounds. Open Acces. 2008 4