Resumen: M-026 UNIVERSIDAD NACIONAL DEL NORDEST E Comunicaciones Científicas y Tecnológicas 2005 Efecto de la pérdida aguda de volumen sanguíneo sobre la respuesta granulopoyetica producida por la administración de filgrastim en murinos tratados con ciclofosfamida Enacan, Rosa E. - Abraham, Raisa M. - Berecoechea, Carlos S. - Poletti, Oscar H. - Barrios, Lilian Cátedra Nº 1 de Fisiología Humana. Departamento de Ciencias Básicas. Facultad de Medicina de la UNNE. Moreno 1240 - CP:3400 Corrientes. Argentina.- [email protected] TE: 54- 3783 - 421355 ANTECEDENTES La hemorragia es una complicación que se presenta con relativa frecuencia en pacientes oncológicos (1,2). La neutropenia, por otro lado, es un efecto adverso frecuente de los regimenes terapéuticos que usan dosis crecientes de drogas quimioterápicas aplicados a los pacientes con cáncer, debido a la mielosupresión que producen estas drogas (3) – En los últimos años, se han presentado múltiples datos acerca del uso beneficioso de citoquinas que protegen o restauran el sistema hematopoyético de mamíferos del efecto de la irradiación y drogas antineoplásicas (4). Así, el filgrastim (factor estimulante de colonias de granulocitos recombinante humano), eleva el número de neutrófilos circulantes de pacientes y animales de experimentación tratados con quimioterápicos (5,6). Sin embargo, existe poco conocimiento acerca de la capacidad de los sistemas hemopoyéticos afectados por el efecto depresor de las drogas antineoplásicas de responder a la simultánea estimulación producida por la administración de filgrastim para estimular el aumento de neutrófilos circulantes en un paciente que esta padeciendo una importante neutropenia y que a la vez, sufre una pérdida sanguínea (estímulo para el aumento de una línea celular sanguínea distinta a la estimulada por el filgrastim . El motivo del presente trabajo fue estudiar la capacidad del sistema hemopoyetico de responder a la administración diaria de filgrastim en ratones tratados al inicio del experimento con la droga quimioterápica ciclofosfamida y que han padecido la sangría de aproximadamente el 10 % de su volemia en los dos días siguientes a la administración de la droga antineoplásica. MATERIAL Y METODOS Animales: se usaron ratones hembras CF1 de 3 meses de edad con 20 a 25 g de peso corporal. Ciclofosfamida (Cy): (Endoxan - Asta, LABINCA) La droga se administró a todos los animales de acuerdo al siguiente esquema: 100mg/Kg de ciclofosfamida disuelta en agua destilada apirógena, vía ip, el día 0 del experimento. Filgrastim (Factor estimulante de colonias de granulocitos recombinante humano: G-CSF): . Laboratorios ROCHE: 5 viales conteniendo cada uno: 30 millones de unidades = 300 µg de G-CSF. Antes de las inyecciones, la solución que contiene el filgrastim fue diluida con buffer salino de fosfato, pH 7.4, (PBS) conteniendo 0,1 % de albúmina bovina sérica. Esquema de tratamiento: A todos los animales se les administró 100 mg/kg de ciclofosfamida por vía intraperitoneal el día 0 del experimento y se le produjeron sangrías mediante dos extracciones iguales de 100 ul de sangre de la vena de la cola realizadas en los días 1 y 3 del experimento. A los lotes problema se les administró 20 µg/kg/día vía sc de filgrastim y a los lotes de animales control una dosis equivalente de la solución diluyente del filgrastim desde el día 4 y hasta el día 20, día final del experimento. Lotes de 6-8 animales se sacrificaran a los 0 ,4, 8,12, 16 y 20 días a partir del inicio del experimento. Se determinaron: Método de cultivo para la determinación de células progenitoras: Células nucleadas de médula ósea y bazo de los distintos lotes de animales se suspendieron en alfa medio suplementado con albúmina sérica; suero bovino fetal; lecitina, ácido linoléico y araquidónico, colesterol, transferrina saturada humana, selenito sódico, 2 - mercaptoetanol; penicilina - estreptomicina, insulina, hidrocortisona y methylcelulosa. La cantidad de células fue de una concentración final de 5 x 104 /ml de medio de cultivo para estudio de GM- CFU (Unidades formadoras de colonias de granulocitos – macrófagos) medulares y de 2 x 105 para GM – CFU esplénicas usándose como estimulante una concentración final de 20 % de medio condicionante de bazo de ratón (preparado en nuestro laboratorio). 0,5 ml de suspensión final se colocó en placas de 26 cavidades, y se dejó permanecer 7 días en estufa de cultivo con control electrónico de temperatura a 37º C y atmósfera húmeda de 5 % de CO2 (Cole Parmer Instruments). Las colonias fueron contadas en microscopio invertido Nikon. Se consideraron colonias derivadas de GM-CFU a colonias mayores de 8 células claras y redondeadas. Las colonias se contaron a los 8 días de cultivo. Contajes celulares: los leucocitos periféricos/mm3 se contaron en hemocitómetro de Neubauer, mediante extracción de 300al de sangre por punción cardiaca. Las células de médula ósea femoral y de bazo fueron procesadas con homogenador de vidrio y contadas en hemocitómetro standard. Morfología celular: fue evaluada en sangre periférica, médula ósea y bazo mediante frotis teñidos con May GrünwaldGiemsa. Resumen: M-026 UNIVERSIDAD NACIONAL DEL NORDEST E Comunicaciones Científicas y Tecnológicas 2005 Análisis estadístico: se realizó en el Software Instat (Graph Pad). Los datos fueron analizarán mediante una vía de análisis de varianza (ANOVA) y el Test de comparaciones múltiples de Student - Neuman - Keuls. Los datos se expresan como promedio ± un error standard y se considera significativa una p < .05. DISCUSIÓN DE RESULTADOS La administración diaria de 20 ug/kg/día de filgrastim desde del día 4 hasta el día 20 del experimento a los animales inyectado con ciclofosfamida el día 0 y con sangría aguda posterior, fue capaz de producir un aumento significativo del número de neutrófilos circulantes desde el día 8 y hasta el final del experimento (Fig. 1) a la vez que el valor de hematocrito que había disminuido por efecto de la ciclofosfamida y la sangría producida, retorna a valores normales a partir del día 12 y hasta el final del experimento (Tabla 1) . Estos resultados indican que el sistema hemopoyético de estos animales es capaz de responder al estímulo simultáneo de dos líneas celulares sanguíneas diferentes a pesar de los efectos mielodepresores de la droga quimioterápica administrada inicialmente Fig. 1: Cambios en el número absoluto de neutrófilos circulantes. A todos los ratones se les administró 100 mg/kg de ciclofosfamida el día 0 y se les extrajeron 100 µL de sangre los días 1 y 3 del experimento. Filgrastim fue administrado en dosis de 20 ug/kg /día desde el día 4 hasta el día 20 (barras grises : Cy + Sangría + Filgrastim)). Los animales control (barras blancas: Cy + Sangría Control ) recibieron PBS. Las barras representan el valor promedio ± 1 Error Standard. (***) indica diferencia significativa entre los Cy +Sangría + Filgrastim y Cy + Sangría -Control : p< .001. Tabla 1: % de hematocrito en ratones a los que se les administró 100 mg/kg de ciclofosfamida el día 0 y se les extrajeron 100 µL de sangre los días 1 y 3 del experimento .Filgrastim fue administrado en dosis de 20 ug/kg /día desde el día 4 hasta el día 20 (Cy + Sangría + Filgrastim). Animales control (Cy + Sangría Control) recibieron PBS. Los resultados representan el valor promedio ± 1 Error Standard. Día 0 4 8 12 16 20 Cy + Sangría Control 41.6 ± 0.5 31,0 ± 0,7 35,0 ± 0,5 42,5 ± 0,8 39,1 ± 0,7 43,9 ± 1,0 Cy +Sangría + Filgrastim 41.6 ± 0.5 32,2 ± 0,4 35,1 ± 0,8 41,1 ± 1,0 42,2 ± 1,1 40,2 ± 0,9 Como se observa en Fig. 2 , luego de la administración de 100 mg/kg de ciclofosfamida y sangría aguda de aproximadamente el 10 % del peso corporal , los lotes de ratones tratados con filgrastim no muestran el efecto estimulante sobre la población precursora granulocítica medular que normalmente produce este factor de crecimiento (8), lo que sugiere que el mecanismo granulopoyético femoral esta alterado, al menos temporariamente en estos animales aunque el aumento del número de neutrófilos observado puede involucrar un acortamiento del tiempo de maduración de estas células mas que un aumento en el número de estas células precursoras. Fig. 2: Cambios en el número de células granulocíticas femorales x 106.. A todos los ratones se les administró 100 mg/kg de ciclofosfamida el día 0 y se les extrajeron 100 µL de sangre los días 1 y 3 del experimento. Filgrastim fue administrado en dosis de 20 ug/kg /día desde el día 4 hasta el día 20 (barras grises : Cy + Sangría + Filgrastim)). Los animales control (barras blancas: Cy + Sangría Control ) recibieron PBS. Las barras representan el valor promedio ± 1 Error Standard. Resumen: M-026 UNIVERSIDAD NACIONAL DEL NORDEST E Comunicaciones Científicas y Tecnológicas 2005 Sin embargo, en el bazo (Fig. 3 ) la administración de filgrastim a ratones tratados con ciclofosfamida y que han padecido una sangría aguda generó un microambiente esplénico favorable a la granulopoyesis observándose un incremento significativo del número de precursores granulocíticos , desde el día 12 y hasta el final del experimento. Este efecto del filgrastim aumentando la granulopoyesis esplénica ya fue observado previamente en animales normales (8) e indica migración de progenitores granulopoyéticos tempranos de la médula ósea femoral al bazo. Esta incrementada granulopoyesis esplénica observada contribuye al aumento de neutrófilos circulantes observado. Fig. 3: Cambios en el número de células granulocíticas esplénicas x 106. Cambios en el número de células granulocíticas femorales x 106.. A todos los ratones se les administró 100 mg/kg de ciclofosfamida el día 0 y se les extrajeron 100 µL de sangre los días 1 y 3 del experimento. Filgrastim fue administrado en dosis de 20 ug/kg /día desde el día 4 hasta el día 20 (barras grises : Cy + Sangría + Filgrastim). Los animales control (barras blancas: Cy + Sangría Control) recibieron PBS. Las barras representan el valor promedio ± 1 Error Standard. (** ; * ) indican diferencia significativa entre los Cy +Sangría + Filgrastim y Cy + Sangría -Control : p< .01 y p< .05. La población de GM-CFU de médula ósea de los animales que luego de ser inyectados con ciclofosfamida, fueron sangrados y posteriormente tratados diariamente con filgrastim muestra un comportamiento bifásico, comparada con el lote control. Luego de un aumento significativo el día 8 estas células progenitoras disminuyen su número entre los días 12 y 16 alcanzando valores similares al lote control el día 20 del experimento. (Fig 4). La disminución observada podría ser compatible con migración de dichas células al bazo, ya que la administración conjunta de ciclofosfamida con filgrastim constituye uno de los estímulos más importantes (7) para la movilización de células medulares inmaduras hacia la sangre circulante y eventualmente hacia el bazo. Fig 4: Cambios en el número de GM-CFU (Unidades de colonias de granulocitos – macrófagos ) de médula ósea x 106. A todos los ratones se les administró 100 mg/kg de ciclofosfamida el día 0 y se les extrajeron 100 µL de sangre los días 1 y 3 del experimento. Filgrastim fue administrado en dosis de 20 ug/kg /día desde el día 4 hasta el día 20 (barras grises : Cy + Sangría + Filgrastim)). Animales control (barras blancas: Cy + Sangría Control ) recibieron PBS. Las barras representan el valor promedio ± 1 Error Standard. (*** ) indica diferencia significativa entre los lotes Cy +Sangría + Filgrastim y Cy + Sangría -Control : p< .001. En el bazo (Fig.5 ), los cambios en el número de GM-CFU de los animales que, luego de recibir la inyección de ciclofosfamida fueron sangrados y posteriormente tratados con filgrastim, muestran un comportamiento diferente al observado en la médula ósea. Comparado con el lote control, salvo en día 8, la población de GM-CFU esplénica aumento significativamente en todos los días estudiados. Esto indicaría que la administración de ciclofosfamida y posterior sangría y tratamiento con filgrastim, ha generado un microambiente favorable para la granulopoyesis en un órgano que en ratones normales contribuye ínfimamente al número de neutrófilos circulantes Resumen: M-026 UNIVERSIDAD NACIONAL DEL NORDEST E Comunicaciones Científicas y Tecnológicas 2005 Fig. 5: Cambios en el número absoluto de la población de GM-CFU (Unidades de colonias de granulocitos – macrófagos ) de bazo x 106. A todos los ratones se les administró 100 mg/kg de ciclofosfamida el día 0 y se les extrajeron 100 µL de sangre los días 1 y 3 del experimento. Filgrastim fue administrado en dosis de 20 ug/kg /día desde el día 4 hasta el día 20 (barras grises : Cy + Sangría + Filgrastim)). Los animales control (barras blancas: Cy + Sangría Control ) recibieron PBS. Las barras representan el valor promedio ± 1 Error Standard. (*** ; * ) indican diferencia significativa entre los Cy +Sangría + Filgrastim y Cy + Sangría -Control : p< .001. y p< .05. CONCLUSIONES Los resultados obtenidos sugieren que ni el efecto depresor hemopoyético de la ciclofosfamida , ni el nivel de estímulo de eritropoyesis generado por la sangría producida en el animal interfieren con la estimulación de la línea granulocítica producida por la administración de filgrastim. Ello podría deberse a que el número de células progenitoras hemopoyéticas comunes a ambas líneas es suficiente para atender la demanda en estas condiciones experimentales. Esta hipótesis es refrendada por el hecho de que el valor de hematocrito de los animales que disminuyó por efecto de la ciclofosfamida y la sangría , retorna a valores similares al del animal normal, tanto en el lote control, como en los animales que recibieron la administración de filgrastim. Sin embargo, estos resultados no descartan que ante estímulos simultáneos más intensos, no pueda producirse una competencia por células ancestrales comunes, con mutua inhibición de ambas líneas, como fuera informado previamente por otros autores (9) . BIBLIOGRAFÍA 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. Wasif Saif M, Moody JS, Russo SM. Gastrointestinal bleeding associated with concurrent capecitabine and radiotherapy in patients with pancreatic cancer. JOP. 2005, 6:325-33. Koutras AK, Makatsoris T, Paliogianni F, Kopsida G, Onyenadum A, Gogos CA, Mouzaki A, Kalofonos HP.Oxaliplatin-induced acute-onset thrombocytopenia, hemorrhage and hemolysis. Oncology. 2004;67:179-82. Hurria A, Brogan K, Panageas KS, Jakubowski A, Zauderer M, Pearce C, L, Howard J, Hudis C. Change in cycle 1 to cycle 2 haematological counts predicts toxicity in older patients with breast cancer receiving adjuvant. Drugs Aging. 2005;22:709-15. Lyman GH. Guidelines of the National Comprehensive Cancer Network on the Use of Myeloid Growth Factors with Cancer Chemotherapy: A Review of the Evidence. J Natl Compr Canc Netw. 2005 , 3:557-571. Douglas W. Blayney, Brian W. McGuire, Scott E. Cruickshank, David H. Johnson. Increasing Chemotherapy Dose Density and Intensity: Phase I Trials in Non-Small Cell Lung Cancer and Non-Hodgkin’s Lymphoma. The Oncologist, 2005; 10: 138-149 Barrios L, Poletti OH, Agustini MI. The influence of recombinant human granulocyte colony – stimulating factor on granulopoiesis in mice recovering from cyclophosphamide treatment. Methods Find Exp Cli Pharmacol 2000, 22: 275- 280. De Pasquale MD, Cacchione A, Foco M, Gozzer M, Libera F, Soscia F, Ragni G, Cappelli C. Peripheral blood stem cell collection in paediatric malignancies: between three mobilizing regimens] Clin Ter. 2003 ;154:305-9 Barrios, L Agustini MI, Poletti OH, Juaristi J, Brandan NC. Effects of recombinant human granulocyte colony stimulating factor (rhG-CSF) on murine bone marrow and spleen erythropoiesis. APPTLA 1998, 48: 18-24. de Haan G, Engel, C, Dontje B, Nijhof W, Loeffler M. Mutual inhibition of murine erythropoiesis and granulopoiesis during combined erythropoietin, granulocyte colony – stimulating factor, and stem cell factor administration: in vivo interactions. Blood 1994; 84: 4157-4163