Péptido-C Código: 2775-300

para formar un complejo soluble de sándwich. La interacción es
ilustrada por la siguiente ecuación:
Enz
Ac
(M)
+ AgC-PEP + Btn Ac (m)
Btn
k
a
k
-a
Enz
Ac(M) - AgCPEP - BtnAc (m)
Ac(m) = Anticuerpo Monoclonal Marcado con biotina (Cantidad
en exceso)
AgC-PEP = Antígeno nativo (Cantidad variable)
Enz
Ac(M) = Anticuerpo marcado por la enzima monoclonal
(Cantidad en exceso)
Enz
Ac(M) –AgC-PEP –
k
a
Ac(m) = Complejo Antigeno-Anticuerpos
= Tasa Constante de Disociación
Ac (M) – AgC-PEP –
(IC)
Péptido-C
Código: 2775-300
Propósito: Determinar cuantitativamente la concentración
de Péptido-C circulante en el suero humano mediante el
inmunoanálisis de Quimioluminiscencia de microplacas.
RESUMEN Y EXPLICACION DE LA PRUEBA
La diabetes es una de las causas principales de invalidez y
muerte en los Estados Unidos. Esta afecta un numero estimad
de 16 millones de americanos, cerca de un tercio de estos no
saben que poseen esta enfermedad. Las causas de la diabetes
no son exactamente conocidas. Pero tanto los factores
genéticos como ambientales juegan un papel significante. La
enfermedad es marcada por deficiencias en la habilidad de
cuerpo de producir y usar apropiadamente la insulina. Las
formas mas comunes de diabetes son la tipo 1, en la cual se
destruye la habilidad del cuerpo de producir insulina y tipo 2, en
la cual el cuerpo se resiste a la insulina incluso aunque se
produzca cierta cantidad de esta.
La determinación in vitro de insulina y los niveles de Péptido-C
ayudan en la diagnosis diferencial de enfermedades del hígado,
acromegalia, síndrome de Cushing, intolerancia a la glucosa,
insulinoma, fallas renales, ingestión accidental de drogas
hipoglicemicas o hipoglicemia inducida por insulina. Tanto la
insulina como los Péptido-C son producidas por fallas
enzimáticas de pro insulina. La pro insulina es almacenada en
los gránulos secretorios de las células β pancreáticas y luego
dividida en péptidos con enlace aminoácido (Péptido-C; MW
3600) e insulina (MW 6000). Los Péptido-C están exentos de
cualquier actividad biológica pero parece ser necesario para
mantener la integridad estructural de la insulina. Aunque la
insulina y el Péptido-C son segregados en circulación en
concentraciones equimolares. Los niveles degradados de
Péptido-C son 5-10 veces mas altos que los de insulina debido
a la mayor longevidad media de los Péptido-C. Aunque el
hígado no extrae el péptido-C, este es removido de la
circulación mediante la degradación en los riñones con una
fracción no cambiante en la orina. Así los niveles de péptido-C
en la orina se correlacionan con los niveles degradados de
Péptido-C en el suero. La determinación estimulada de PéptidoC es muy usada para la diagnosis diferencial entre pacientes
diabéticos insulinodependientes y no dependientes.
PRINCIPIO
Análisis Inmunoenzimométrico
Los reactivos esenciales requeridos para un análisis
inmunoenzimático incluyen mayor afinidad y especificidad de
los anticuerpos (enzima conjugada e inmovilizada), con
diferentes y distintos reconocimientos de epítopes, en exceso,
un antígeno nativo. En este procedimiento, la inmovilización
toma lugar durante el análisis en la superficie de una microplaca
fuente a través de la interacción de estreptavidina que cubre la
fuente y con el anticuerpo Péptido-C monoclonal marcado con
biotina agregado exógenamente (Ac).
Después de la mezcla del anticuerpo monoclonal marcado con
biotina, el anticuerpo marcado con enzima y un suero que
contiene antígeno nativo, la reacción resulta entre el antígeno
nativo y los anticuerpos, sin competencia u obstáculo estérico,
D Concentrado de Solución de Lavado- 20 ml – Icono
Un vial que contiene un surfactante en suero salino tamponado.
Un preservante ha sido adicionado. Almacenar a 2-30ºC.
A
Simultáneamente, el complejo es depositado en la fuente a
través de la mayor reacción de afinidad de la estreptavidina y el
anticuerpo marcado con biotina. Esta reacción es ilustrada a
continuación:
Enz
⇓
C. Fuente de reacción lumínica- 96 fuentes- Icono
Una microplaca de 96 fuentes revestida con estreptavidina y
empaquetada en una bolsa de aluminio con un agente de
secado. Almacenar a 2-8ºC.
Btn
= Tasa Constante de Asociación
k
-a
B. Reactivo Indicador de Péptido-C- 13 ml/vial – icono
Un (1) vial que contiene anticuerpo purificado monoclonal de
ratón con afinidad a la enzima marcada, IgG de ratón
monoclonal marcado con biotina en buffer, tinte y preservante.
Almacenaje a 2-8ºC.
Btn
Ac (m) + Estreptavidinac.w.⇒ Complejo inmovilizado
EstreptavidinaCW = Estreptavidina inmovilizada en la fuente
Complejo Inmovilizado (IC) = Complejo de sándwich unido a la
superficie sólida.
Después que el equilibrio se mantiene, la fracción unida al
anticuerpo es separada del antígeno no unido por decantación o
aspiración. La actividad de la enzima en la fracción unida al
anticuerpo es directamente proporcional a la concentración
nativa del antígeno. Mediante el uso de diversas referencias de
sueros de concentración antígena conocida, se puede generar
una curva de respuesta de dosis, de la cual se puede deducir la
concentración de antígeno desconocida.
PRECAUCIONES
Para el uso Diagnóstico in Vitro
No para el Uso Interno ni Externo en Humanos o Animales
Todos los productos que contienen suero humano se
encontraron no reactivos para el Antígeno de Superficie de la
Hepatitis B, VIH 1 y 2 y anticuerpos para VHC por los reactivos
licenciados por la FDA. Incluso no se ha conocido prueba que
pueda ofrecer seguridad a pesar que los agentes infecciosos
estén ausentes, todos los productos séricos de humanos serán
manejados como potencialmente peligrosos y capaces de
transmitir enfermedades. Los procedimientos de laboratorio
excelentes para el manejo de productos sanguíneos pueden ser
encontrados en el Centro de Control de Enfermedades/ Instituto
Nacional
de
Salud,
“Bioseguridad
en
Laboratorios
Microbiológicos y Biomédicos”, 2da Edición, 1988, HHS .
RECOLECCION DEL ESPECIMEN Y PREPARACION
Los especimenes sean suero de sangre en tipo y las
precauciones en la recolección de muestras por punción venosa
serán observadas. Para la comparación exacta de los valores
normales establecidos, una muestra de suero por la mañana en
ayunas será obtenida. La sangre será recogida en un tubo de
punción venosa con línea roja superior sin aditivos o
anticoagulantes. Permitir que la sangre coagule. Centrifugar el
espécimen para separar el suero de las células.
Las muestras pueden ser refrigeradas a 2-8ºC por un período
máximo de 5 días. Si el espécimen no puede ser ensayado
dentro de este tiempo, la muestra puede ser almacenada a
temperatura de -20ºC por hasta 30 días. Evitar el congelamiento
rápido y el descongelamiento. Cuando se analice en duplicado,
0.100ml del espécimen es requerido.
E Reactivo señal A – 7.0 ml/vial- Icono S
Una (1) botella que contiene luminol en buffer. Almacenaje a 28ºC.(ver sección de preparacion de reactivos).
F. Reactivo señal B – 7 ml/vial – Icono SB
Una (1) botella que contiene peróxido de hidrógeno (H2O2) en
buffer. Almacenaje a 2-8ºC. (ver sección de preparacion de
reactivos).
G. Inserto del Producto
Nota 1: No usar reactivos más allá de la fecha de expiración
Nota 2: Los reactivos abiertos son estables por 60 días cuando son
almacenados a 2-8ºC.
Material adicional (no proporcionado):
1. Pipeta(s) capaces de distribuir 50µl con una precisión
superior al 1.5%
2. Dispensador(es) para las distribuciones repetidas de 0.100 ml
y 0.300ml con una precisión superior al 1.5% (opcional)
3. Lavador de microplaca o una botella de lavado (opcional).
4. Luminómetro de microplaca
5. Papel absorbente para borrar los pozos de la microplaca.
6. Cubierta plástica o de microplaca para los pasos de incubación.
7. Aspirador al vacío o vacuo (opcional) para los pasos del lavado.
8. Cronómetro
9. Materiales de control de calidad.
PREPARACION DE LOS REACTIVOS
1. Buffer para Lavado
Diluir los contenidos del Concentrado de Lavado a 1000 ml con
agua destilada o desionizada en un contenedor de almacenaje
adecuado. Almacenar a temperatura ambiente de (20-27ºC)
hasta 60 días.
2. Solución de Reactivo Señal activo
Determinar la cantidad necesaria de reactivos y preparar
mezclando porciones iguales de Reactivo A y Reactivos B en un
contenedor limpio. Por ejemplo, adicione 1 ml de A y 1 ml de B
por dos (2) de ocho tiras de fuente (Se produce un exceso
mínimo de solución). Desechar la porción no utilizada. O, para
periodos más largos, verter el contenido de los viales marcados
con reactivo A en los viales marcados con Reactivo B. Mezclar
y almacenar a 2-8°C. Usar en 36 horas.
PROCEDIMIENTO DE PRUEBA
7. Adicionar 350µl de buffer de lavado (ver Sección Preparación de
Reactivos), decantar (golpe y secado) o aspirar. Repetir 4 veces
adicionales para un total de 5 lavados. Un lavador de placa
automático o manual puede ser adicionado. Seguir las
instrucciones del fabricante para el uso apropiado. Si se usa
un
exprimidor
de
botella,
llene
cada
fuente
descomprimiendo los contenedores (evitar las burbujas de
aire) para dispensar el lavado. Decantar el lavado y repetir
cuatro (4) veces adicionales.
8. Adicionar 0.100 ml de solución de reactivo señal activo. (Ver
sección de preparación de reactivo). Siempre adicione
reactivos en el mismo orden para minimizar las diferencias
del tiempo de reacción en los pozos.
9. Incubar a temperatura ambiente durante 30 minutos en la
oscuridad
1. Leer las Unidades de Luz Relativas ULR usando una
microplaca de 96 fuentes en cada fuente durante 0.2 – 1.0
segundos. Los resultados deben ser leídos dentro de
treinta (30) minutos luego de haber adicionado la
solución se sustrato.
CONTROL DE CALIDAD
Cada laboratorio ensayará los controles a niveles de inferior,
medio y mayor nivel para el monitoreo del rendimiento del
análisis. Estos controles serán tratados como desconocidos y
los valores determinados en cada procedimiento de prueba
realizado. Las tarjetas de control de calidad serán mantenidas
en seguir el rendimiento de los reactivos suministrados. Los
métodos estadísticos pertinentes serán empleados para acertar
en las tendencias. La desviación significante del rendimiento
establecido puede indicar cambio no notificado en las
condiciones experimentales o degradación de los reactivos del
kit. Los reactivos frescos serán usados para determinar la razón
para las variaciones.
CALCULOS Y RESULTADOS
Una curva de respuesta a la dosis es usada para asegurar la
concentración de Péptido-C en especimenes desconocidos.
1.
Registrar las unidades de luz relativa ULR obtenidas del
impreso del luminómetro como se delinea en el Ejemplo 1
2.
Graficar las ULR para cada suero referencia duplicado
versus la correspondiente concentración de Péptido-C en
ng/ml en el papel de gráfica lineal.
3.
Sacar la mejor curva fija a través de los puntos de la
grafica.
4.
Para determinar la concentración de Péptido-C para un
desconocido, localizar las ULR promedio para cada
desconocido en el eje vertical del gráfico, encontrar el
punto de intersección de la curva y leer la concentración
(en ng/ml) del eje horizontal del gráfico (los duplicados de
los desconocidos pueden ser promediados como se
indica). (Ver Figura 1). En el siguiente ejemplo, las
unidades de luz relativa promedio (12864) de las
desconocidas intersecta la curva de calibración en una
concentración de Péptido-C (1.18 ng/ml). (Ver Figura 1).*
<
Antes del procedimiento con el análisis lleve todos los reactivos, las
referencias séricas y los controles a temperatura ambiente (20-27ºC).
1. Formatear los pozos de la microplaca para cada calibrador,
muestras de control y de paciente para que sean ensayadas
en duplicado. Reemplazar cualquier tira de la micropozo
no usado dentro de la bolsa de aluminio, sellarla y
almacenarla a 2-8ºC.
Nota 1: El software de reducción de datos diseñado para
análisis de quimioluminiscencia puede ser usado para la
reducción de datos. Los duplicados de los desconocidos
pueden ser promediados como se indica (Ver figura 1)
Nota 2: Monobind puede atender el laboratorio en la compra e
implementación de equipo/software para la toma de medidas y
la interpretación de datos de quimioluminiscencia.
2. Pipetear 0.050 ml (05µl) del suero de referencia apropiado,
control o espécimen dentro de la fuente asignada.
REACTIVOS Y MATERIALES PROPORCIONADOS
A. Calibradores de Péptido-C– 2.0 ml/vial- Iconos A-F
Seis (6) viales de referencia para antígenos Péptido-C a
niveles de 0(A), 0.2 (B), 1.0(C), 2.0 (D), 5.0 (E) y 10.0 (F)
ng/ml. Un preservante ha sido adicionado. Reconstituir cada
vial con 2 ml de agua destilada o desionizada. Los calibradores
reconstituidos son estables durante sesenta (60) días. Un
preservante ha sido adicionado.
Nota: Los calibradores en base a suero humano fueron
calibrados usando una preparación de referencia, la cual fue
analizada contra WHO 3er IS 84/510.
E
3. Adicionar 0.100ml (100µl) de Reactivo de Ferritina a cada fuente.
Es muy importante dispensar todos los reactivos cercanos
al fondo de la fuente revestida.
4. Revolver la microplaca ligeramente por 20-30 segundos para
mezclar y cubrir.
5. Incubar 30 minutos a temperatura ambiente
6. Descartar los contenidos de la microplaca por decantación o
aspiración, la mancha de la placa secar con papel absorbente.
FIGURA 1
EJEMPLO 1
Cal F
Control 1
Control 2
Paciente 1
160
1402
F1
1462
10416
11257
G1
20703
H1
22038
A2
B2
C2
54430
50387
100672
F2
99328
15212
16008
G2
61273
H2
61122
A3
B3
12617
D2
E2
13110
Valor
(ng/ml)
Cal E
B1
C1
D1
E1
Media
Cal D
163
ULR (B)
Cal C
ULR (A)
Cal B
Numero
de Fuente
Muestra
I.D.
Cal A
A1
161
0
1432
0.2
10837
1
21370
52387
2
5
100000
10
15610
1.43
61198
5.84
12864
1.18
* Los datos presentes en el Ejemplo 1 y Figura 1 son
únicamente para ilustración y no deben ser usados en cambio
de una curva de respuesta a la dosis preparada con cada
análisis. Adicionalmente, los ULR de los calibradores se han
normalizado a 100.000 ULR/seg. para el calibrador F (mayor
producción de luz). Esta conversión minimiza las diferencias
causadas por la eficiencia de varios instrumentos que pueden
ser usados para medir la producción de luz.
PARAMETROS DE C. C.
7. Usar los componentes del mismo grupo no mezclar los
reactivos de diferentes conjuntos.
8. Las muestras de pacientes con concentraciones de PéptidoC de más de 10ng/ml pueden diluirse con el calibrador cero y
reensayadas. Multiplicar el valor obtenido por el factor de
dilución para obtener el valor corregido.
9. Es esencial un pipeteo preciso y exacto así como seguir el
tiempo exacto y la temperatura requerida. Cualquier desviación
de las instrucciones de uso puede arrojar resultados inexactos.
10. Se deben seguir las buenas prácticas de laboratorio todos
los estándares nacionales aplicables, regulaciones y leyes de
manera estricta para asegurar el cumplimiento y uso adecuado
del dispositivo.
11. Es importante calibrar todos los equipos, por ejemplo:
pipetas, lectores, lavadores y/o instrumentos automatizados con
este reactivo y realizar un mantenimiento preventivo rutinario
12. El análisis de riesgo – como la requiere la directiva IVD
98/79/EC de la marca CE- para estos y otros dispositivos
elaborados por Monobind, pueden ser solicitados vía e-mail:
[email protected]
B. interpretación
1. Los resultados de laboratorio por si solos son únicamente un
aspecto para determinar el cuidado del paciente y no deben ser
la única base para una terapia, particularmente si los resultados
están en conflicto con otros determinantes.
2. Para resultados de pruebas válidas, los controles adecuados
y otros parámetros deben estar dentro de los rangos listados y
requerimientos del ensayo.
3. Si los kits de prueba están alterados, ya sea por mezcla de
partes de diferente kits, lo cual puede producir resultados de
prueba falsos o si los resultados son interpretados
incorrectamente, Monobind no tendrá responsabilidad.
4. Si se utiliza el sistema de reducción de datos controlados por
Computador para interpretar los resultados del ensayo, es
necesario que los valores de predicción para los calibradores se
ubiquen dentro del 10% de las concentraciones asignadas.
La curva de respuesta a la dosis (Intercepciones 80%,
50% y 20%) debe estar entre los parámetros establecidos.
2.
4 de 6 grupos de control de calidad estarán dentro de los
rangos establecidos
ANALISIS DE RIESGOS
A. Desempeño del análisis
1. Es importante que el tiempo de reacción en cada pozo sea
mantenido en forma constante para obtener resultados
reproducibles.
2. El pipeteo de las muestras no se extenderá más de 10
minutos para evitar derivar el análisis.
3. No se deben emplear muestras altamente lipémicas,
bemolizadas o contaminadas.
4. Si más de 1 placa es usada, se recomienda repetir la curva
de respuesta a la dosis.
5. La adición del reactivo de señal inicia una reacción cinética
por lo tanto el reactivo de señal debe ser adicionado en la
misma frecuencia para eliminar cualquier derivación de tiempo
durante la reacción.
6. La falla al remover solución adherida en los pasos de
aspiración o decantación puede resultar en replicación baja y
resultados incorrectos.
20
8.99
0.85
9.45%
B. Exactitud
La microplaca CIA TM Monobind para Péptido-C fue comparada
con un ensayo de inmunoanálisis enzimático para microplaca.
Se utilizaron muestras biológicas de población (sintomática y
asintomática). (Los valores presentaron un rango de 0.2 ng/ml –
11.8 ng/ml). El número total de tales especimenes fue 133. Los
datos obtenidos se muestran en la Tabla 4.
Método
Este método (y)
Referencia (x)
C. Sensitividad
La sensitividad (limite de detección) fue acertada determinando
la variabilidad del calibrador de suero 0 ng/ml y usando las
estadísticas de 2σ (95% cierto) para calcular la dosis mínima.
Se encontró la sensitividad de 0.025 ng/ml.
Los valores de Péptido-C son consistentemente mas altos en
plasma que en el suero; es así que se prefiere el suero.
Comparado con los valores continuos en individuos obesos no
diabéticos, los niveles de Péptido-C son mayores en los sujetos
obesos no diabéticos y menores en atletas entrenados.
Sustancia Reactividad Cruzada
Péptido-C
1.000
Proinsulina
0.120
Insulina
no detectable
Glucagon
no detectable
Se sugiere que cada laboratorio establezca sus propios rangos
para poblaciones normales y anormales. Estos rangos
dependen siempre de la localización población, laboratorio,
técnica y especificidad del método.
E. Efecto-gancho de dosis altas.
Adulto (Normal) 0.7- 1.9 ng)ml
A. Precisión
Las precisiones dentro y entre los análisis del Sistema de
Prueba de Péptido-C AccuBindTM ELISA fueron
determinadas por análisis en 3 diferentes niveles de
suero de control. El número (N), valor medio (X), la
desviación estándar (σ) y el coeficiente de variación
(C.V.) para cada uno de estos sueros controles son
presentados en la Tabla 1 y Tabla 2.
TABLA 1
Precisión dentro del Análisis (Valores en ng/ml)
Muestra
Grupo 1
Grupo 2
Grupo 3
N
20
20
20
X
0.82
3.16
8.11
σ
0.07
0.19
0.52
C.V.
8.53%
6.00%
6.40%
TABLA 2
Precisión Entre Análisis* (valores en ng/ml)
Muestra
Grupo 1
Grupo 2
N
20
20
X
0.79
3.31
σ
0.09
0.22
Concentración
1900 ng/ml
1.0 mlU/ml
150 ng/ml
La prueba no será afectada por las concentraciones de PéptidoC de hasta 100ng/ml en suero. Sin embargo las muestras que
presenten más de 10 ng/ml deben ser diluidas 1:10 y 1:50 en el
suero humano normal y el grupo normal debe ser analizado
para obtener un valor base. El valor base y el factor de dilución
deben tomarse en cuenta para obtener la correcta
concentración de Péptido-C en la muestra.
REFERENCIAS
CARACTERISTICAS DEL RENDIMIENTO
C.V.
11.2%
6.61%
Revisión: 3
Fecha: 112210
Cat #: 2775-300
Solo pequeñas cantidades de bias entre el Sistema CIA TM para
Péptido-C y el método referencia se indican por la proximidad
de los valores medios. La ecuación de regresión cuadrada y el
coeficiente de correlación indican un excelente acuerdo del
método.
VALORES ESPERADOS
Basado en los datos clínicos recolectados por Monobind en
concordancia con los escritos publicados se han asignado los
siguientes rangos. Estos rangos deben ser usados como
guías únicamente:
7. Kahn CR, Rosenthal AS, Immunologic reactions to insulin,
insulin allergy, insulin resistance and autoimmune insulin
syndrome. Diabetes Care 2, 283-295. (1979)
TABLA 4
Ultimo Análisis
De regresión
Coeficiente de
Media (X) Cuadrada
Correlación
1.068
y = 0.2079 + 0.8036(x)
0.962
1.066
D. Especificidad
La reactividad cruzada del método CIA TM para Péptido-C sobre
las sustancias seleccionadas se evaluó mediante la adición de
sustancias de interferencia a una matriz de suero con las
siguientes concentraciones. La reactividad cruzada se calculó
derivando el radio entre la dosis de sustancia de interferencia y
la dosis de Péptido-C necesaria para producir la misma
absorbancia.
Para que los resultados del análisis sean considerados
válidos se deben cumplir los siguientes criterios:
1.
Grupo 3
* Medido en 10 experimentos en duplicado durante 7 días.
1. Eastham, R.D.: Biochemical Values in Clinical Medicine, 7th
Ed. Bristol. England. John Wright & Sons, Ltd. (1985)
2. Gerbitz, VKD, Pancreatische B-zellen Peptide: Kinetic and
Konzentration von Proinsulin insulin and C-peptide in
Plasma and Urin Probleme der Mezmethoden Klinische und
Literaturubersicht. J. Clin. Chem. Biochem 18, 313-3. 326.
(1980)
3. Boehm TM, Lebovitz HE, Statistical analysis of Glucose and
insulin responses to intravenous tolbutamide: evaluation of
hypoglycemic and hyperinsulinemic states: Diabetes Care
479-490. (1979)
4. National Committee for Clinical Laboratory Standards.
Procedures for the collection of diagnostic blood specimens
by venipuncture: approved standards. 4th Ed. NCCLS
Document H3-A4, Wayne, PA: (1998)
5. Turkington RW, Estkowkski A, Link M. Secretion of insulin or
connecting peptide; a predictor of insulin Med. 142, 11021105. (1982) dependence of obese diabetics. Archives of
Internal
6. Sacks BD: Carbohydrates In Burtis, C.A. and Ashwood, AR
(Eds) Tietz Textbook of Clinical Chemistry. 2nd Ed.
Philadelphia. W.B. Saunders Co. (1994)
Instrumentos y aplicaciones
Los productos de inmunoensayo de Monobind están diseñados
para que funcionen en ambientes de laboratorios manuales y
automatizados. AccuBind y Acculite son compatibles cualquier
instrumentación de extremo abierto incluyendo analizadores
químicos, lectores de microplacas y lavadores de microplacas.
Es posible que exista o no un desarrollo de aplicación para su
instrumento en particular, para estos casos, se recomienda
visitar la sección de instrumentos de nuestro sitio en la web o
comunicarse con [email protected]
Monobind ofrece diversos instrumentos, incluyendo el lector de
placa Impulse 2, el luminómetro CLIA diseñado para ser
utilizado simultáneamente con nuestros productos y capaz de
una calibración de dos puntos. Visitar nuestro sitio en la web
para obtener mayor información.