PDF ficha de diagnóstico - Ministerio de Agricultura, Alimentación y

Ficha
Pollinia pollini (Costa)
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OLIVO
Cochinilla globosa del olivo
Olea europaea L.
Sinonimia
(Hemiptera: Asterolecaniidae /
Cerococcidae).
Coccus pollini Costa, Pollinia costae Targ.
Distribución en España
Presente en España, pocos registros.
♂
Cultivos afectados
Olivo.
Sintomatología
Suele tener dos generaciones al año, con
emergencia de larvas en primavera (mayojunio) y finales de verano o principios de
otoño (septiembre-octubre).
Las colonias del insecto se observan en
ramillas como agrupaciones de escudos
globosos cubiertos por filamentos de seda; el
conjunto resulta bastante compacto. Suelen
situarse en las axilas de las ramillas y en las
bases de los peciolos de las hojas. Suelen
aprovechar pequeñas cavidades de la
corteza
ocasionadas
por
Phloeotribus
scarabaeoides u otras causas (Liottta y
Sammartano, 1981). En ataques importantes
se produce una defoliación considerable.
Análisis de la muestra
Los insectos se separan cuidadosamente del material vegetal, se colocan en un tubo de
ensayo o un microvial con una solución de KOH al 10%, y se calientan al baño maría o
mediante un calentador para microviales durante 15-30 minutos (el tiempo varía en función de
la cantidad de insectos que hayamos introducido y sobretodo de la cantidad de fibras sedosas
presentes). Cuando observamos que las hembras, de color amarillo-anaranjado, están limpias y
libres de las sedas y otros despojos, procedemos a aclararlas mediante una solución
compuesta por 50% de alcohol 70º y 50% de ácido acético glacial. Les damos otro aclarado,
esta vez sólo con alcohol 70º y procedemos a vaciarlas.
Las hembras son muy globosas y para vaciar el contenido
deberemos proceder cuidadosamente haciendo el corte con
unas tijeras o bisturí de puntas muy finas. También podemos
ayudarnos de alfileres entomológicos enmangados. El corte o
abertura por donde vayamos a vaciar la hembra deberá
hacerse en un lateral y en la parte media-inferior del cuerpo.
Tras el vaciado procuraremos que las cochinillas queden bien colocadas y extendidas sobre un
porta excavado, pondremos algunas con la parte ventral hacia arriba y otras con la parte
dorsal. Después procederemos a la tinción.
Para la tinción podemos utilizar un colorante compuesto por Fucsina ácida 0,5 gramos + 25 ml
de HCl 10% + 300 ml de agua (30-60 segundos).
Identificación
Miden alrededor de 1 mm. Las antenas se ven reducidas a tubérculos de 1 o 2 segmentos, las
patas son inexistentes y los lóbulos anales no están desarrollados. El anillo anal es muy pequeño
y rodeado de 6 setas que nacen de los bordes de la invaginación. Toda la superficie está
cubierta por poros tubulares con extremo en forma de “8”. En la parte ventral, además, hay
poros quinqueloculares, sobretodo rodeando los espiráculos. No presentan conductos
tubulares.
Zona donde se encuentran abundantes
poros quinqueloculares.
Los poros en forma de “8” se
encuentran distribuidos por
todo el cuerpo.
Vista ventral de Pollinia pollini Costa.
Bibliografía
Detalle del anillo anal y las
setas que lo rodean.
DE ANDRÉS, F., 2001: Enfermedades y plagas del olivo. Riquelme y Vargas Ediciones. 249-250.
FERRIS, G.F., 1955: Atlas of the scale insects of North America (ser.7). The families Aclerdidae,
Asterolecanidae, Conchaspidae, Dactylopidae and Lacciferidae. Stanford University Press.
GÓMEZ-MENOR, J., 1937: Cóccidos de España. INIA. 243-244.
SYSTEMATIC
ENTOMOLOGY
LABORATORY,
ARS,
USDA.
2007:
Scale
Insects.
<http://
www.sel.barc.usda.gov/ scalekeys/ ScaleFamilies/key/ Scale%20Families/ Media/ Html/
ScaleFamilies/ Families/ PolliniaGroup/ Polinis.html> (Consulta 13 de octubre de 2009).
LIOTTTA, G. Y SAMMARTANO, B. 1981: Bioethological data on Pollinia pollini (Costa) (Hom.
Asterolecaniidae). Redia. 64: 205-206.
GRUPO DE TRABAJO FITOSANITARIO DE LABORATORIOS.
MINISTERIO DE MEDIO AMBIENTE Y MEDIO RURAL Y MARINO
Laboratorio de Sanidad Vegetal de Baleares
Olmo García, D. y Nieto López, A.