Estructura del material genético

NUCLEÓTIDOS
COMPOSICION
1.- La Hidrólisis completa de los ac. nucléicos da lugar a una mezcla equimolar de:
a) base nitrogenada heterocíclica (purina o pirimidina)
b) pentosa (D-ribosa o 2-D-desoxirribosa)
c) ortofosfato
2.- La Hidrólisis suave de los ac. nucléicos (enzimática, nucleasas) da lugar a una
mezcla de nucleótidos.
Nucleótidos + nucleotidasas da:
a) ortofosfato
b) nucleósido
nucleósido + nucleosidasas da: a) pentosa
b) base nitrogenada heterocíclica
Ejemplo:
BASES NITROGENADAS
DESCRIPCION
Bases nitrogenádas heterocíclicas que pertenecen a dos tipos fundamentales:
1.- purinas
2.- pirimidinas
ejemplo:
1.- Bases púricas: Adenina, Guanina (DNA y RNA) Hipoxantina, Xantina y ac. Urico
(metabolismo).
2.- Bases pirimidínicas: Citosina (DNA y RNA), Timina (DNA) Uracilo (RNA);
además ac. Orótico y dihidroorótico ( metabolismo).
Abreviaturas
ADENINA
(A)
GUANINA
(G)
HIPOXANTINA ( I )
CITOSINA (C)
URACILO (U)
TIMINA
(T)
OTRAS BASES
1.- Bases modificadas se encuentran preferentemente en el RNA y particularmente en
el tRNA.
a) metilaciones; metiladas o dimetiladas
b) Isopentenil derivados
c) Tioderivados; sobre todo en las pirimidinas
2.- Productos naturales: grupo importante con estructura de base púrica son las
metilxantinas; cuya acción farmacológica más importante es la de inhibir la
fosfodiesterasa de cAMP prolongando la acción de este segundo mensajero hormonal.
3.-Análogos sintéticos de bases; que se emplean como agentes antineoplásicos que
actúan por mecanismos de competitividad, o bien como agentes mutagénicos.
PROPIEDADES FISICO-QUIMICAS DE LAS BASES
1.- Disposición coplanar de los enlaces. Son planas porque los C tienen orbitales moleculares sp2
(tres orbitales moleculares en un plano y uno ρ perpendicular que sirve para formar el doble enlace).
Lógicamente, es una estructura resonante.
2.- Poco solubles en agua.
El carácter hidrófobo viene dado por la naturaleza aromática de los anillos purínicos y pirimidínicos.
Por tanto, son insolubles en agua a pH fisiológico.
3.- Dipolos. Las bases tienen átomos muy electronegativos (N y O) dentro y fuera del anillo aromático,
por lo que existe una distribución asimétrica de los electrones en la molécula y, por tanto, se forman
dipolos que permiten formar puentes de hidrógeno.
De todos los posibles, los más importantes son los que van a servir para formar los puentes de
hidrógeno de Watson y Crick para formar el DNA bicatenario a pH7. A diferente pH, la estructura se
debilita al cambiar la disposición electrónica de las bases: por protonación a pH ácido, o por
desprotonación a pH básico.
4.- Carácter débilmente básico. Todas las bases nitrogenadas son bases débiles al ser desprotonables
a pH entre 9 y 10, por lo que a pH intracelular carecen de carga eléctrica significativa. Aunque los
grupos ceto (C=O) pueden tautomerizar a enol (C–OH), perder el proton y conferir cierta acidez. La
Adenina al no tener ningún grupo ceto, es la más básica de todas. Caso extremo es el del ácido úrico,
que, a pesar de ser una base nitrogenada, tiene carácter ácido debido a los tres grupos ceto que
contiene.
pKa de algunas bases nitrogenadas
Base
grupo
pKa
1
Uracilo
N
9.5
Timina
N1
9.9
1
Guanina
N
9.5
Guanina
N7
3.2
3
Citosina
N
4.5
Adenina
N1
4.2
5.- Presentan tautomería.
Watson y Crick postularon la tautomería de las bases para explicar que se puedan aparear de manera
distinta a la que ellos proponían y generar mutaciones espontáneas. Hoy se sabe que dichas formas
existen debido a la migración de los electrones por los dobles enlaces conjugados. Hay dos tipos de
tautomería:
Tautomería ceto-enólica (lactama-lactima)
Interconvierte un grupo ceto (=O) y enol (—OH) extracíclicos cerca de un N cíclico. Se puede
producir en la G, C, T y U. Las lactimas imprimen un fuerte carácter ácido a las bases.
Tautomería imina-amina
Interconvierte un amino (—NH) extracíclico en un imino (=NH) cerca de un N cíclico. Se puede dar
en G, A y C.
_
6.-Presentan un espectro de absorción característico, con máximos de absorción diferentes según
las bases, pero centrados todos ellos en torno a los 260 nm.
7.- Reacciones químicas de las bases
a) Desaminación. Por ejemplo inducídas por el ac. nitroso ó hidroxilamina (citosina) adenina
guanina y citosina. La desaminación produce los oxo-derivados: hipoxantina, xantina y uracilo.
b) Alquilación. Agentes alquilantes: sulfato de metilo, que produce o-metil guanina; otros agentes
alquilantes son la dimetil nitrosamina y la mostaza nitrogenada.
LOS NUCLEOSIDOS. Estructura
a) Base nitrogenada + pentosa
N-glicósido (Nucleósido)
b) Enlaces β entre: C1 de la pentosa y N1 de las pirimidinas ó el N9 de las purinas.
c) La pentosa es invariablemente en forma furanósica y la conformación del enlace glicosídico puede
ser tanto syn- como anti- (se refiere a la situación relativa de los anillos de base y pentosa; siendo syndel mismo lado y anti del lado contrario).
β-N-glicosídico
NOMENCLATURA
1- Purinas – nombre del radical de la base + el sufijo -osina
2- Pirimidinas - nombre del radical de la base + el sufijo -idina
3- Para la 2-D-desoxirribosa se antepone el prefijo desoxi + nombre del ribonucleósido
4- Los carbonos de la pentosa se numeran como 1’, 2’, 3’, 4’ y 5’ para distinguirlos de los átomos de la
base.
Propiedades químicas
1.- Aumento de la solubilidad con respecto a las bases.
2.- La presencia de la pentosa permite la cuantificación de los nucleósidos basados en reacciones de
deshidratación del anillo furanósico. Así, los ribósidos pueden ser cuantificados por la reacción del
orcinol; y los desoxirribósidos por la reacción de la difenilamina. Estas reacciones son aplicables
también a los nucleótidos y a los ac. nucléicos.
3.- La estructura de nucleósido no modifica para nada las características de absorción de luz
ultravioleta a 260 nm propias de las bases nitrogenadas.
Otros nucleósidos:
1.- Nucleósidos anormales en ac. nucleicos normales. Seudouridina (ψ) se forma entre el uracilo y la
ribosa mediante un enlade glucosídico especial entre el C1' y el C5. Forma parte del brazo TψC del tRNA.
Inosina. Ribosa unida a hipoxantina. Interviene en el metabolismo de las purinas y aparece en algunos
tRNAs
2.- Nucleósidos naturales. Por ejemplo la espongouridina y la espongotimidina presentes en las esponjas
donde la pentosa es arabinosa. Asi mismo, los antibióticos cordicepina y puromicina.
3.- En terapéutica antineoplásica tambien se utilizan multitud de análogos estructurales de
nucleósidos. Por ejemplo el citosin arabinósido.
NUCLEÓTIDOS
Generalidades y nomenclatura
1.- La esterificación de grupos –OH presentes en la pentosa de un nucleósido con
ortofosfato, pirofosfato o polifosfatos da lugar a las estructuras llamadas nucleótidos.
Los ribósidos: tienen tres posibilidades; los carbonos 2’, 3’ y 5’ dando lugar a 2’, 3’, y
5’ nucleótidos respectivamente.
Los desoxirribósidos : tienen dos posibilidades; los carbonos 3’ y 5’ dando lugar a los
3’ y 5’ desoxirribonucleótidos.
En ocasiones, el mismo grupo fostato aparece esterificando a dos carbonos distintos en
la misma pentosa de un nucleósido se forman así los nucleótidos cíclicos.
El nombre sistemático de los nucleótidos se forma con
1.- El nombre del nucleósido
2.- Seguido del carbono esterificado a fosfato
3.- Terminado en –monofosfato,-difosfato o –trifosfato en su caso.
Abreviaturas
Ribonucleótidos
(1) El número del carbono esterificado por fosfato
(2) La letra de la base
(3) el número de fosfatos que esterifican. Por ejemplo 5’-AMP, 5’-ADP y 5’-ATP.
desoxirribonucleótidos
Se antepone a la abreviatura del ribonucleótido correspondiente una “d” minuscula por ej. 5’-dAMP.
Existe así mismo una nomenclatura especial para los 5’-ribonucleósidos monofosfato, que consiste en
añadir el sufijo ílico al nombre radical de la base, en el caso de las purinas, o del nucleósido en las
pirimidinas. Así:
Adenina ac. adenílico 5’-AMP
Guanina ac. guanílico 5’-GMP
Citidina ac. citidílico 5’-CMP
Uridina ac. uridílico 5’-UMP etc.
Propiedades fisico-químicas
1.- Todos poseen un fuerte carácter ácido a pH fisiológico presentando carga negativa
Constantes de ionización de los ribonucleótidos expresadas en forma de valores de pKa
2.- Presentan un máximo de absorbancia en torno a los 260 mm debido a la base nitrogenada.
3.- La presencia de fosfato incrementa aún más la solubilidad respecto a los nucleósidos.
4.- Los nucleótidos se separan fácilmente por procedimientos cromatográficos.
Anexos
Pauta de protonación de un nucleótido a diferentes pHs
Funciones biológicas
1.- Depósitos de energía libre. Ejemplo ATP y GTP: Fosfatos
Proporciona el carácter eminentemente ácido del DNA y del RNA. Los 5 enlaces del ortofosfato están en
resonancia, de manera que la distribución espacial es equivalente a una molécula tetraédrica con orbitales
moleculares sp3. Cuando el fosfato se encuentra sustituido por algún radical, sólo tenemos el pK1 y el pK2.
Cuando tenemos dos sustituyentes, nos queda sólo el pK1.
Los difosfatos o pirofosfatos se presentan a pH fisiológico como un trianión, siendo estables en disolución a
pH neutro o alcalino. Sin embargo, dentro de las células es muy inestable y accesible a las pirofosfatasas
que lo descomponen en dos monofosfatos. Los trifosfatos siempre forman parte de un nucleósido, nunca
están libres
El enlace que une los dos átomos de fósforo a través de un átomo de oxígeno es un enlace anhídrido del tipo
fosfoanhídrido (no confundir los enlaces fosfoanhidro —entre dos ácidos— con el enlace fosfoéster —entre
alcohol y ácido— que es mucho menos energético). La hidrólisis de estos enlaces es altamente exergónica
(∆Gº' = –31 kJ/mol). Parte de esta alta energía se debe a:
1.- La energía de resonancia de los anhidro de ácidos, como los polifosfatos, es considerablemente menor
que las de sus productos de hidrólisis, lo que quiere decir que éstos son más estables que el anhídrido
primitivo.
2.- El ATP y compuestos análogos existen como polianiónes. La repulsión electrostática entre las cargas
negativas de los oxígenos tiende a desestabilizar la estructura del polifosfato.
3.- La solvatación diferencial entre los polifosfatos y sus productos de hidrólisis es otro factor que
favorece la hidrólisis de los mismos.
Procesos celulares que requieren energía libre
ATP
GTP
Biosíntesis
Síntesis de proteínas
Transporte en contra de gradiente
Procesos de traducción de señales
Energía mecánica (contracción muscular)
Bioluminiscencia, etc.
2.- La unión covalente de sustratos a nucleótidos representa en muchas ocasiones las formas
metabólicamente activas de aquéllos. Ejemplos:
Síntesis de glucógeno
Sintesis de lípidos complejos
Activación de los ac. grasos
Activación de los aa en la sint. de proteínas
Precursor: Uridin difosfato glucosa (UDPG)
Precursor: Citidin difosfato colina (CDP-colina)
Forma metabolicamente aciva: Acil-CoA
Aminoacil-adenilato: aa-AMP
3.- Los nucleótidos operan como coenzimas en multitud de reacciones enzimáticas. Por ejemplo:
NAD+ y NADP+, FMN y FAD
4.- Los nucleótidos cíclicos, como el cAMP y el cGMP operan como segundos mensajeros
intracelulares de multitud de señales químicas (hormonas y neurotransmisores.
Tipos de ácidos nucleicos: DNA y RNA
1) composición.
A) región variable, bases nitrogenadas
B) región constante, azúcar fosfato
Nucleósidos, nucleótidos y polinucleótidos.
Enlace fosfodiéster:
Formación del enlace. Variación de energía libre
a) simple deshidratación
b) precursores de alta energía
Energía libre estándar (∆G0)
Reacciones
1)
d NTP
+ H2O
d NMP
+ PPi
-31 Kj/mol
2) polinucleótido n + d NMP
polinucleótido (n+ 1) + H2O
+25 Kj/mol
+) polinucleótido n + d NTP
polinucleótido (n + 1) + PPi
- 6 Kj/mol
3) PPi + H2O
2Pi
- 33 Kj/mol
Características de los polinucleótidos
1) Los polinucleótidos poseen un sentido o polaridad, el enlace fosfodiéster entre las unidades
monoméricas se produce entre el carbono 3’ de un monómero y el carbono 5’ del siguiente;
normalmente poseen un extremo 5’ fosforilado y el otro extremo un grupo hidroxilo 3’ libre.
2) Los polinucleótidos poseen una secuencia de bases característica, esta secuencia se denomina
estructura primaria.
Representación convencional de los polinucleótidos
Polinucleótido
Desoxinucleótidos
Bases
Azúcar
Esta anotación indica:
1) la secuencia ACGTT
2) los enlaces fosfodiéster son entre hidroxilos 3’ y fosfatos 5’
3) tiene un extremo 5’ fosforilado y un grupo hidroxilo 3’ libre
4) que la secuencia es de DNA por la presencia de las T
Una notación más abreviada de la misma molécula es
pApCpGpTpT
si sólo nos interesa la secuencia de bases
ACGTT
Propiedades químicas de los polinucleótidos
1) los polinucleótidos absorben luz UV con un máximo entorno a los 260 nm
Aplicaciones:
a) índice A260/A280
b) proceso de desnaturalización
2) la presencia de las pentosas hace que den positivo a varias reacciones características
de estas
DNA---------------------- difenilamina
RNA-----------------------orcinol
2-D-desoxirribosa--------reactivo de schiff
3) los colorantes del tipo de las acridinas son capaces de intercalarse entre los planos
de las bases del DNA y RNA, dando lugar a complejos fluorescentes que pueden
detectarse cuando se estimulan a la longitud de onda adecuada (bromuro de etidio)
4) el tratamiento con ácido fuerte hidroliza tanto el DNA como el RNA; sin embargo,
el tratamiento con álcali solo hidroliza el RNA. La degradación alcalina produce una
mezcla de 2’ y 3’ nucleótidos en dos reacciones consecutivas
1
KOH
Alcali
2
5) Al tratar un polinucleótido de DNA con sulfato de metilo tiene lugar la metilación de
las purinas (guanina en N7 y adenina en N3 en general). Si a continuación calentamos a
pH neutro, se rompe el enlace glicosídico entre la desoxirribosa y la base modificada,
quedando un hueco apurínico. El tratamiento afecta predominantemente a los
nucleótidos de guanina. Si tras la metilación tratamos con ácido mineral diluído, el
enlace glicosídico se rompe preferentemente por los nucleótidos de adenina.- En uno y
otro caso, el tratamiento posterior con álcali rompe la cadena polinucleotídica en el
lugar en que se eliminó la base.
En el caso de las pirimidinas, el tratamiento con hidrazina da lugar a un ácido apirimidínico. El
tratamiento posterior con piperidina rompe el enlace ribosa-fosfato en los lugares en los que se
desprendió la pirimidina. Si el tratamiento se realiza en presencia de cloruro sódico, sólo se
desprende la citosina. Tanto esta reacción como la anterior, pueden llevarse a cabo en condiciones
bastante específicas para cada base. Estas reacciones son de gran interés ya que son el fundamento
del método de secuenciación de Maxan-Gilbert
Degradación enzimática de los polinucleótidos
El enlace fosfodiester puede romperse de dos maneras
Rotura tipo a entre el 3’-OH y el fosfato
Rotura tipo b entre el fosfato y el 5’
mezcla de 5’-nucleótidos
mezcla de 3’-nucleótidos
Existen gran cantidad de enzimas capaces de degradar ac. nucléicos. Genéricamaente
reciben el nombre de nucleasas, y su nombre químico correcto sería el de
fosfodiesterasas. Todas ellas rompen hidroliticamente el enlace fosfodiester.
Clasificación:
1) Exonucleasas. Ejercen su acción en los enlaces situados en los extremos de la
cadena polinucleotídica y van progresando hacia el interior.
2) Endonucleasas. Rompen enlaces fosfodiester situados en el interior de la cadena
polinucleotídica
El DNA ES EL PORTADOR DE LA INFORMACIÓN GENÉTICA
DYSCOVERY OF DNA: FRIEDRICH MIESCHER (1844-1895)
"Miescher had originally intented to study lymphocytes, but he soon
realized that it would be impossible to get enough of these cells.
Encouraged by Hoppe-Seyler, he instead focussed on leucocytes,
known to be the main cellular constituent of the laudable pus that could
be obtained fresh every day from used bandages in the nearby hospital.
The trick was to wash the cells without damaging them. To this end
Friedrich tried various salt solutions, but the cells swelled and gave rise
to a highly viscous porridge that was impossible to handle. In hindsight
it is easy to see that this occurred because he extracted high-molecularweight DNA from damaged cells. Eventually he hit on a dilute solution
of sodium sulfate as the best way to rinse well-preserved cells from the
bandages. After filtration to get rid of tissue fibers, the cells were left to
sediment to the bottom of the beaker; laboratory centrifuges were
nonexistent in those days. When examined in the microscope, the
leucocytes seemed intact and showed no sign of damage."
"His first task was to isolate undamaged nuclei free of cytoplasm. This had never been accomplished before and only after
long hours of hard work did Miescher come up with reasonable quantities of nuclei in good conditions. He tried several
methods, but his final procedure was as follows. Miescher first treated the cells with warm alcohol to remove lipids, and then
digested away the proteins of the cytoplasm with the proteolytic enzyme pepsin. What he used was not a pure preparation of
crystalline pepsin, as would be used today; nothing comparable was available. Instead, he extracted pig's stomach with dilute
hydrochloric acid, which gave him an active but highly impure enzyme that he used for his digestions. The pepsin treatment
solubilized the cytoplasm and left the cell nuclei behind as greyish precipitate...
He subjected his purified nuclei to the same alkaline extraction procedure he had previously used with the whole cells, and on
acidification he again obtained a precipitate. Obviously this material must have come from the nucleus, and he therefore named
it nuclein. Using elementary analysis, one of the few methods available to characterize an unknown compound. Miescher found
that his new substance contained 14 % nitrogen, 3 % phosphorus, and 2 % sulfur. Its comparatively high phosphorus
content and its resistance to digestion with pepsin suggested that the substance was not a protein. (At the same time, its
appreciable content of sulfur immediately indicates to us today that his preparation did contain substantial amounts of
proteins.)"
1) Células blancas (linfocitos y polimorfos nucleares)
2) Lísis alcalina, ácida ó enzimática
3) Obtención de núcleos
4) Extracción con álcali
5) Precipitar con ácido
6) Análisis químico elemental: 14 % N, 3 % P y 2 % S
Frederick Griffith
In 1928 an army medical officer named Frederick Griffith was trying to find a vaccine against streptococcus
pneumoniae, but instead made a breakthrough in world of heredity. He did four experiments in which he
injected strands of bacteria into mice, one strand that was harmless (R) and one that was harmful (S).
1) In his first experiment, he injected the live R bacteria cells into the mice and the mice lived.
2) In his second experiment, he injected the live S bacteria cells into the mice and mice died.
3) In his third experiment, he killed the harmful S cells with extreme heat, and then injected the dead S cells
into the mice and the mice lived.
4) In his last experiment, he added live R cell (which are harmless) to the already dead heat-killed S cells,
and then injected it into the mice, but the mice died!
Griffith found from this experiment that even though he had killed the S cells, he hadn’t destroyed their
hereditary material, which was the one part that caused the disease! When some more experiments had been
done, it had been discovered that the harmless R cells, had used the information from the hereditary material
of the dead S cells and became harmful; this he called, hereditary transformation.
(Oh and by the way… he never did find the vaccine.)
Transformación de los neumococos R por la acción de un
extracto libre de células de neumococos S muertos por calor. “
In Vitro”
Fraccionamiento del extracto celular de los neumococos S muertos
por calor y búsqueda de la naturaleza química del “ Principio
Transformador “, en las diferentes fracciones
Conclusiones:
1)
El principio transformador purificado con elevada
actividad dió un análisis químico elemental que concordaba
estrechamente con el calculado para el DNA.
2)
Las propiedades ópticas, de ultracentrifugación, difusión
y electroforésis del material purificado fueron semejantes a
las del DNA.
3)
No se perdió la actividad transformadora al realizar la
extracción de proteínas o lípidos.
4)
La tripsina y quimotripsina no afectan a la actividad
transformadora.
5)
La ribonucleasa (degrada el RNA) no tenía ninguna
acción sobre el principio transformador.
6)
En cambio la actividad transformadora fue perdiéndose
por la acción desoxirribonucleasa.
The Hershey and Chase experiment that supported DNA as the hereditary material
The breakthrough in the quest to determine the hereditary material came
from the work of Max Delbruck and Salvador Luria in the 1940s.
Bacteriophage are a type of virus that attacks bacteria, the viruses that
Delbruck and Luria worked with were those attacking Escherichia coli, a
bacterium found in human intestines. Bacteriophages consist of protein
coats covering DNA. Bacteriophages infect a cell by injecting DNA into
the host cell. This viral DNA then "disappears" while taking over the
bacterial machinery and beginning to make new virus instead of new
bacteria. After 25 minutes the host cell bursts, releasing hundreds of new
bacteriophage. Phages have DNA and protein, making them ideal to
resolve the nature of the hereditary material
In 1952, Alfred D. Hershey and Martha Chase conducted a
series of experiments to determine whether protein or DNA
was the hereditary material. By labeling the DNA and
protein with different (and mutually exclusive)
radioisotopes, they would be able to determine which
chemical (DNA or protein) was getting into the bacteria.
Such material must be the hereditary material (Griffith's
transforming agent). Since DNA contains Phosphorous (P)
but no Sulfur (S), they tagged the DNA with radioactive
Phosphorous-32. Conversely, protein lacks P but does have
S, thus it could be tagged with radioactive Sulfur-35.
Hershey and Chase found that the radioactive S remained
outside the cell while the radioactive P was found inside the
cell, indicating that DNA was the physical carrier of
heredity.
T2 phage
El RNA como material genético: Virus del mosaico del tabaco
En 1956, Gierer y Schramm purificaron el ácido nucleico ( ssRNA + ) del virus del mosaico del tabaco
(VMT), y demostraron que ARN viral purificado podía ser infeccioso si se tomaban las precauciones
necesarias para protegerlo de ser inactivado por la acción de enzimas capaces de degradar ácido
ribonucleico. Experimentos previos habían demostrado que las partículas de VMT podían ser disociadas
en proteína y ARN, ambos componentes podían ser reasociados en el tubo de ensayo para formar
partículas virales infectivas por completo y morfológicamente maduras. Basándose en esta observación,
Frankel-Conrat y Singer procedieron a disociar dos cepas diferentes de VMT. El ARN obtenido de una
cepa fue reasociado con la proteína obtenida de la otra cepa y viceversa, originando partículas híbridas,
las cuales fueron usadas para infectar plantas de tabaco. En todos los casos, las plantas infectadas dieron
origen a progenies virales que correspondían al tipo del ARN presente en el híbrido utilizado para la
infección.
El experimento de Frankel-Conrat y Singer que demostró que el ARN es el material genético del virus
del mosaico del tabaco (VMT).
Estudios comparados sobre la composición en bases del DNA
Mediante procedimientos cromatográficos de partición Chargaff estudió la composición en bases del
DNA de diferentes procedencias.
Erwin Chargaff was a biochemist who first figured out the equation
for the different bases. Here is what he concluded:
The amount of (A)denine will always equal the amount of (T)hymine.
The amount of (G)uanine will always equal the amount of (C)ytosine.
Especie
Hombre
Levadura
Mycobacteria
Vaca
A
0.29
0.30
0.12
o.26
G
0.18
0.18
0.28
0.24
C
T
0.18
0.15
0.26
0.23
0.31
0.29
0.11
0.27
Las conclusiones más importantes fueron las siguientes :
1) En todos los DNAs estudiados, las proporciones de las bases varían según las especies estudiadas.
2) La composición en bases era constante para cada especie, y para diferentes tejidos dentro de la misma
especie.
3) En todas las especies estudiadas, la proporción molar de purinas era igual a la proporción molar de
pirimidinas; es decir, A + T = G + C ó que la relación purina/pirimidina es igual a 1.
4) En el DNA de todas las especies estudiadas, la proporción molar de adenina era igual a la proporción
molar de timina A = T; y la proporción molar de guanina igual a la de citosina G = C.
Diagrama de difracción de rayos X del DNA.
La repetición (c) de la hélice es la distancia paralela al eje en la que la
estructura se repite exactamente. La repetición contiene un número
entero (m) de residuos del polimero. En la figura m = 4.
El paso (p) de la hélice es la distancia paralela al eje de la hélice en la
que ésta realiza una vuelta completa. Si hay un número entero de
residuos por vuelta, el paso y la repetición son iguales.
La elevación (h) de la hélice es la distancia paralela al eje, que va
desde el nivel de un residuo hasta el siguiente, es decir: h = c/m. Si
pensamos en una escalera de caracol como ejemplo de una hélice, la
elevación es la altura de cada peldaño y el paso es la distancia desde el
lugar en el que uno se encuentra hasta el lugar correspondiente situado
directamente encima.
Todas las manchas se encuentran en líneas perpendiculares al eje de la fibra; estas líneas se
denominan líneas de capa. El espaciado entre estas líneas es inversamente proporcional a la repetición
de la hélice, c; que en este caso es igual al paso. Obsérvese que el patrón cruzado se repite cada cuarta
línea de capa. Este patrón de repetición nos indica que hay exactamente 4 residuos por vuelta de la
hélice. Así pues, la elevación de la hélice es de c/4. Este es el tipo de prueba que llevó a Watson y
Crick a deducir que el B-DNA era una hélice con 10 residuos por vuelta.
With all she did to make Watson and Crick's
discovery possible, Rosalind Franklin was
essentially "a de facto collaborator,"
“‘I considered her a genius, and I don’t use that
word lightly.’”
Anatomy of Photo 51
This shadowy X-ray photograph speaks
volumes about the shape of DNA.
3.4A
34Aº
El modelo de Watson y Crick
1) El DNA B tiene una estructura de doble hélice dextrógira de 2nm de diametro y
plectonémica ( para poder separar los dos filamentos debe desenrollarse primero),
con un paso de rosca de 3.4 nm. Cada uno de los filamentos es un polinucleótido y
estan dispuestos en forma antiparalela.
2) Los filamentos de la hélice están constituídos por los ejes ribosa-fosfato de los dos
polinucleótidos, estando situados hacia el exterior, y con las cargas electronegativas
del fosfato en contacto con el solvente.
3) El enlace beta-glicosídico está en conformación anti- y la desoxirribosa en forma
furanósica; en esta forma se ha podido comprobar que de los cinco átomos que
constituyen el anillo, cuatro son coplanares y uno se sale del plano; en el DNA el
átomo que sobresale es el 2’ (posición llamada endo-2’). Los sustituyentes del
fosfato se dirigen aproximadamente según los vértices de un tetraedro.
4) Las bases están en planos aproximadamente perpendiculares al eje mayor de la hélice,
y situadas hacia el interior. La distancia entre planos contiguos de bases es de 0.34 nm, de
manera que en cada vuelta de la doble hélice hay 10 pares de bases. Cada base es
aproximadamente coplanar con la que está en el filamento opuesto, y están
interaccionando entre sí a través de enlaces de hidrógeno. Esta interacción sólo puede darse
si adenina interacciona con timina y guanina con citosina, o viceversa.
5) La estructura de la hélice está mantenida por los enlaces de hidrógeno entre las bases
complementarias y una interacción de naturaleza hidrofóbica que se da entre planos
contiguos de bases, llamada interacción de apilamiento. La carga electronegativa debida a
los grupos fosfato, interacciona con iones magnesio, con agua, o con proteínas básicas
(histonas).
6) Los enlaces N-glicosídicos de las bases coplanares con los azúcares no están en situación
diametralmente opuesta. Esto hace que el espacio que queda entre los filamentos enrollados
uno sobre otro constituya dos surcos de diferente tamaño, un surco estrecho y un surco
ancho. A través de estos surcos las bases pueden entrar en contacto con el solvente o
interaccionar con diversas moléculas. En el surco estrecho siempre se encuentra la función
2-oxo de las pirimidinas (C y T) y el N3 de las purinas.
Patrones de dadores y aceptores de puentes de hidrógeno:
a) surco menor; no (AT), on (TA), nho (GC) y ohn (CG)
b) surco mayor; nho (AT), ohn (TA), noh(GC) y hon (CG)
Pruebas experimentales del modelo de Watson y Crick
1) El modelo es perfectamente coherente con los datos cristalográficos. Desde su
publicación hasta la fecha se han refinado las cifras sin variar sustancialmente la
estructura del modelo original. Sin embargo, lo que se ha podido comprobar es una
flexibilidad mucho mayor para las dimensiones del modelo. Estudios de Dikerson
han demostrado que:
a) la rotación de un par de bases sobre el anterior puede oscilar entre 28º y 42º ( en el
modelo original era de 36º)
b) las bases opuestas no son exactamente coplanares; cabe una cierta torsión entre sus
planos respectivos.
c) Los planos contiguos de bases no son exactamente paralelos.
2) El modelo predice una determinada densidad lineal para la molecula de DNA. Si
cada 3.4 nm tenemos 10 pares de nucleótidos, la densidad lineal será de unos 6000
Dalton cada 3.4 nm.
3) El modelo postula la existencia de tres enlaces de hidrógeno en un par G-C y dos en
un par A-T. Esto implica que el DNA rico en G + C debe ser más estable que el
DNA rico en A + T.
4) A. Kornberg y colaboradores idearon una técnica para la medida de frecuencias del
vecino más próximo en el DNA; los resultados obtenidos eran compatibles con una
doble hélice de estructura complementaria y antiparalela.
5) El modelo nos sugiere un modelo de replicación semiconservativa del DNA.
Implicaciones genéticas del modelo
1) el modelo de Watson y Crick es una estructura regular, aperiódica y lineal, lo que
esta en concordancia con la idea que se tenía de cómo debía ser la molécula de la
herencia.
2) el apareamiento de bases establece un mecanismo mediante el cual la doble hélice
dispone de información para duplicarse a si misma.
3) La reactividad de las bases y la estructura general del DNA explica la acción de los
mutágenos químicos y las mutaciones espontáneas.
4) Ademas de la autoduplicación, el material genético debe ser suceptible de
recombinación, y sobre todo de dirigir la formación del fenotipo.
Dodecámero de Dickerson cristalizado
5’-CGCGAATTCGCG- 3’
3’-GCGCTTAAGCGC-5’
Estructura del B-DNA según los estudios de cristales moleculares.
Obsérvense las distorsiones locales de la estructura idealizada.
Estas y otras variaciones locales de la doble hélice dependen de la
secuencia de bases, lo que implica que:
-Las proteínas encuentren sus dianas
-La hélice se puede torcer suavemente
-La hélice se puede superenrollar con pequeños cambios en la estructura
local. DNA circular.
Otras estructuras posibles en el DNA: el DNA-A y el DNA Z
El 2’OH del RNA encaja en una hélice de A-DNA con pares de bases inclinados
pero no con una hélice de B-DNA
Una de las formas analizadas primitivamente por Wilkins fue el DNA-A, con un grado
de hidratación menor que el DNA-B y mucho menor peso molecular. El DNA-A es
también una doble hélice, pero más ancha y corta que el DNA-B; base y pentosa están
en situación anti-, pero el anillo furanósico está en posición endo-3’ (es decir, sobresale
el carbono 3’ ), las bases presentan una inclinación de 19º sobre el eje de la hélice y se
atenúa la diferencia entre los surcos mayor y menor. Esta estructura se presenta en los
RNA de doble hélice; asi como en los híbridos DNA-RNA.
El Z-DNA es una doble hélice levógira en la que los fosfatos del esqueleto están
dispuestos en zig-zag
En 1982, el análisis de tractos de DNA ricos en G + C demostró que el modelo de
Watson y Crick no es el único presente en DNAs de fuentes naturales. Estos DNA ricos
en G + C pueden presentar la estructura llamada DNA Z, descubierta por primera vez en
un duplex formado por copolimeros GCGCGCGC.
El DNA Z es asi mismo una doble hélice, pero el enrollamiento tiene lugar a izquierdas.
El apareamiento de bases tiene lugar en la misma manera que en el modelo de Watson y
Crick, pero los planos de las bases no son perpendiculares al eje de la hélice,
presentando grados diversos de inclinación. El enlace beta glicosídico está
alternativamente en conformación sin- (el de purina) y anti- (el de la pirimidina) esto
hace que el eje pentosa-fosfato presente una disposición en zig-zag.
Características estructurales de los A, B y Z-DNA ideales
A
B
Z
Sentido de la hélice
Arrollada hacia la
derecha
Arrollada hacia la
derecha
Arrollada hacia la izquierda
Diámetro
2,6 nm
2 nm
1.8 nm
Pares de bases por vuelta de hélice
11
10
12 (6 dímeros)
Giro de la hélice por par de bases
33º
36º
60º (por dimero)
Paso de rosca de la hélice
2,8 nm
3.4 nm
4.5 nm
Elevación de la hélice por par de bases
0,26 nm
0,34 nm
0,37
Inclinación del plano de las bases
respecto al eje de la hélice
20º
6º
7º
Surco mayor
Estrecho y profundo
Ancho y profundo
Plano
Surco menor
Ancho y poco profundo
Estrecho y profundo
Estrecho y profundo
Atomo desplazado en el azúcar
C(3`)-endo
C(2´)-endo
C(2´)-endo para
pirimidinas;
C(3´)-endo para purinas
Enlace glucosídico
anti
anti
Anti para pirimidinas;
sin para purinas
Conformaciones de los ácidos nucleicos de cadena única.
Presentan estructuras diversas dependiendo de la secuencia y condiciones del
medio:
A) Condiciones extremas:
alta temperatura,
agentes desnaturalizantes etc.
Estructura de ovillo aleatorio de las cadenas
simples desnaturalizadas. Existe flexibilidad de
rotación de los residuos y una estructura
inespecífica.
B) Condiciones suaves:
similares a las fisiológicas
Estructura de bases apiladas adoptada por las
cadenas sencillas no autocomplementarias en
condiciones “nativas” las bases se apilan para
llevar la cadena a una hélice, pero no hay
enlaces de hidrógeno.
C) Condiciones suaves:
Presencia desecuencias
autocomplementarias
Estructura de horquilla formadas por secuencias
autocomplementarias, la cadena se dobla sobre
sí misma para formar una estructura de lazo.
Triples hélices y H-DNA
Las triples hélices se forman debido al apareamiento de bases de tipo Hoogsteen. De gran
importancia en procesos como: replicación, transcripción, recombinación etc.
A) Se descubrieron usando homopolímeros de ribonucleótidos:
poli (U)-poli (A)-poli (U)
B) Pueden darse también en homopolímeros de desoxirribonucleótidos:
poli (T)-poli (A)-poli (T)
poli (C+)*-poli (G)-poli (C)
*(C+) citosina protonada en N3
Apareamientos de Hoogsteen
Los nucleótidos que participan en los pares de bases de Watson y Crick pueden formar puentes de
hidrógeno adicionales, sobre todo con los grupos funcionales que se encuentran en el surco mayor.
Los átomos N7, O6 y N6 de las purinas que participan en los puentes de hidrógeno del DNA triples se
conocen como posiciones de Hoogsteen, y el apareamiento que no sigue el patrón de Watson y Crick
se denomina apareamiento de Hoogsteen.
Estructura particularmente exótica, es el H-DNA, se encuentra en regiones de polipurina o de
polipirimidina que incorporan una repetición especular. Ejemplo, un fragmento largo de residuos
de T y C alternados.
…….TCTCTCTCTCTCTC….
……AGAGAGAGAGAGAG…
Puede existir la estructura de doble hélice, o bien con una cadena doblada hacia atrás para formar
una triple hélice (con los tripletes C+-G-C y T-A-T) con lo que queda la otra cadena (Pu)
desapareada.
Estructuras secundarias poco habituales del DNA
Curvaturas, horquillas y cruces
Se han encontrado otras variaciones estructurales dependientes de la secuencia
Ejemplos:
-Cuatro o más adeninas consecutivas en una de las hebras produce curvatura de la hélice. Seis
adeninas consecutivas producen una curvatura de aproximadamente 18º
-En moléculas de DNA de cadena sencilla la presencia de secuencias autocomplementarias
permite que la cadena se pliegue sobre si misma y forme una hélice antiparalela de bases
apareadas.
-En ocasiones pueden formarse horquillas dobles formando una estructura cruciforme, para lo cual
es necesario la presencia de una secuencia palindrómica.
Palindromes y repeticiones especulares
Desnaturalización del DNA: transición hélice-ovillo aleatorio
La estructura secundaria en doble hélice es relativamente bastante estable en condiciones
fisiológicas para el DNA; la pérdida de dicha estructura se conoce como desnaturalización.
Consideraciones termodinámicas del proceso:
1- Factores que favorecen la forma de ovillo aleatorio
a) Repulsión electrostática entre las cadenas debido a la carga negativa de los fosfatos, en
parte amortiguada por contraiónes.
b) La forma en ovillo posee mayor entropía, de acuerdo con:
S = K ln W
S = entropía; K = cte de Boltzmann (cte de los gases/nº de Avogadro) y W = nº de subestados de la
misma energía.
Conclusión: ∆ S > 0 y positiva e ∆ H < 0 y negativa
Por tanto, ∆ G = ∆ H – T ∆ S
negativa (desnaturalización).
2- Factores que favorecen la estructura en doble hélice
a) Los puentes de hidrógeno entre las bases complementarias
b) Apilamiento de bases
Estos dos factores dan un incremento de entalpía positivo, que compensan el valor negativo en
sentido contrario, favoreciendo la estructura en doble hélice.
Por tanto, el resultado global del proceso es:
∆ H e ∆ S son positivos y el signo de ∆ G depende solamente de la temperatura
Conclusión:
A) Temperatura baja: T ∆ S < ∆ H
∆ G positiva → Hélice
B) Temperatura alta: T ∆ S > ∆ H
∆ G negativa → Ovillo
Espectro de absorción uv del DNA de E. coli nativo y
desnaturalizado por calor. La desnaturalización no cambia la
forma general de la curva de absorción sino que solo
aumenta su intensidad
Curva de fusión del DNA. La absorbancia relativa es la
relación de la absorbancia (normalmente medida a 260 nm)
a la temperatura indicada con respecto a la medida a 25º C.
La temperatura de fusión Tm es la temperatura a la que se
alcanza la mitad de la absorbancia máxima.
Variación de la temperatura de fusión, Tm, de diferentes
DNAs en función de su contenido G + C. Los DNAs
fueron disueltos en una solución que contenía NaCl 0.15M
y Na citrato 0.015M
A un valor bajo de temperatura, ∆G es positivo y la
desnaturalización del DNA no está favorecida. A medida
que aumenta la temperatura, -T∆S supera a ∆H con lo que
∆G pasa a ser negativo y la desnaturalización es favorable.
El punto medio de la curva señala la temperatura de
“fusión”, Tm del DNA
Organización del DNA en procariotas
Superenrollamiento
a) empaquetamiento
b) Distribución de la tensión entre la torsión y el retorcimiento
Vuelta de superhélice
a) a la derecha ----- sobrenrollamiento (+)
b) a la izquierda --sobrenrollamiento ( -)
Organización del DNA en eucariotas
Los cromosomas eucarióticos, constituidos por un complejo formado por DNA, RNA y proteínas
llamado cromatina, son entidades dinámicas cuya apariencia varía de manera espectacular durante las
fases del ciclo celular.
Comparación entre la cromatina
interfásica extendida y la cromatina
del cromosoma mitótico. A)
cromatina saliendo de un núcleo
interfásico lisado. B) cromosoma
metafásico (duplicado). Obsérvese
la diferencia de escala.
Micrografías electrónicas de cromatina
extraída en las formas extendída y
condensada. a) la cromatina aislada a
baja fuerza iónica tiene un aspecto
extendído de “collar de perlas”. Las perlas
son nucleosomas (10 nm de diámetro) y el
“cordón” es DNA conector. b) la
cromatina aislada a fuerza iónica
fisiológica (0.15M ClK) aparece como
una fibra condensada de 30 nm de
diámetro.
EUCROMATINA
Fuerza iónica baja
(Se expresa)
HETEROCROMATINA
Fuerza iónica fisiológica
(No se expresa)
Los cromosomas humanos poseen entre 48 y 240 millones de pares de bases en sus DNAs, con una
longitud entre 1.6 y 8.2 cm (0.34 nm/bp). Sin embargo, en metafase su estado más condensado estos
cromosomas tienen una longitud entre 1.3 y 10 µm. El DNA cromosómico tiene, por tanto, una relación de
empaquetamiento superior a 8000 veces.
¿Cómo alcanza el DNA de la cromatina un grado tan alto de condensación?
Se consigue a tres niveles
a) Nucleosomas
b) Filamentos de 30 nm
c) Bucles radiales
NUCLEOSOMAS
Histonas. Características:
a) proteínas básicas de bajo peso molecular
b) secuencias altamente conservada a lo largo de la evolución
c) pueden estar modificadas en las cadenas laterales de sus residuos o en el N-término:
(acetilaciones, o-fosforiladas y mono o di N-metiladas
Tipos:
Histonas de timo de ternera
Masa (KD)
% Arginina
% Lisina
Histona
Nº restos
H1
215
23.0
1
29
H2A
H2B
H3
H4
129
125
135
102
14.0
13.8
15.3
11.3
9
6
13
14
11
16
10
11
Función
Se une al DNA de conexión y
colabora en la estabilización de
estructuras de orden superior
2 cadenas de cada una forman el
núcleo central del nucleosoma
Secuencia de aminoácidos de la histona H4 de timo de ternera:
- Las histonas están conservadas a lo largo de la evolución. Ejemplo: en el guisante la H4 solo se
diferencia de la de ternera en dos aminoácidos; la valina 60 es isoleucina y la lisina 77 es arginina
- En rojo los 25 aa básicos
- Subrayados los restos que pueden ser objeto de modificaciones postraduccionales:
A) La serina 1 invariablemente es N-acetilada, ó o-fosforilada
B) Los restos de lisina 5, 8,12 y 16 pueden ser N-acetilados, y la lisina 20 puede ser mono ó di Nmetilada.
Estructura de las histonas
A
B
C
Organización estructural de las histonas del núcleo del nucleosoma. (A) Cada una de las
histonas tiene una cola N-terminal que es objeto de diversas modificaciones y una región plegada.
(B) (arriba) Estructura del pliegue de la histona, tres α-hélices unidas por dos bucles; (abajo) las
histonas 2A y 2B forman un dímero mediante una interacción conocida como “encajada de manos”.
Las histonas H3 y H4 forman un dímero mediante el mismo tipo de interacción. (C) Las histones
H2A, H2B, H3 y H4 adoptan una estructura tridimensional similar.
Organización estructural del nucleosoma
El primer modelo de la estructura de un nucleosoma fue postulado por Roger Kornberg en 1974,
apoyado en las siguientes evidencias:
1) La cromatina contiene aproximadamente el mismo número de moléculas de las histonas H2A,
H2B, H3 y H4, y no más de la mitad de ese número de moléculas de la histona H1.
2) Los estudios de difracción de rayos X indican que las fibras de cromatina tienen una estructura
regular que se repite aproximadamente cada 10 nm
Microscopia electrónica de
cromatina aislada de núcleos
interfásicos.A) Filamento de 30 nm.
B) desempaquetada ó
descondensada después del
aislamiento experimentalmente
para observar los nucleosomas
(fibras de 10 nm)
3) Una digestión breve de la cromatina con nucleasa micrococal (nucleasa inespecífica da patrones
específicos) seguido de ultracentrifugación en gradiente de densidad de sacarosa y posterior
electroforésis de las fracciones en gel muestra que cada n-mero de la particula contiene 200 bp o
múltiplos del mismo.
Gradiente de densidad de sacarosa.
Microscopía electrónica de las fracciones
Electroforésis de las fracciones del gradiente
Antes del
gradiente
1
4
2
3
2
3
1
4
4) Experimentos de cross-linker (dimetilsuberimidato), indican que las histonas H3 y H4 se asocian
para formar el tetrámero (H3)2 (H4)2.
53.2 KD
26.6 KD
15.3 KD
11.3 KD
Ensamblaje de un octámero de histonas. El dímero de las histonas H3-H4 y el H2A-H2B se
forman a través de interacciones del tipo encajada de manos. Un tetrámero de H3-H4 forma el
armazón sobre el cual se incorporan dos dímeros H2A-H2B para completar su ensamblaje. Puede
apreciarse que las colas N-terminales de las histonas sobresalen de la estructura en forma de disco
del núcleo.
Todas estas observaciones permitieron a Kornnberg proponer que las particulas de la cromatina,
llamadas nucleosomas, estan costituídas por el octámero (H2A, H2B, H3 y H4)2, asociado a 200 bp de
DNA. La histona H1 se propuso que estaría asociada a la parte externa del nucleosoma (cromatosoma).
Una digestión posterior corta parte del DNA de los cromatosomas mediante un proceso que libera la
histona H1 (166 bp). Posterior hidrólisis da lugar a la llamada particula núcleo del nucleosoma , que
consiste en una cadena de DNA de 146 bp asociada con el octámero de histonas.
Estructura del nucleosoma
Esquema de digestión:
El DNA nucleosomal de 166
pb/0.34 nm/bp, tiene una
relación de empaquetamiento de
10 (56 nm de longitud se
pliegan dando una estructura
altamente superenrollada de 5.6
nm, 1.7 vueltas de superhélice
levógira)
DNA =200pb
=166pb
=146pb
El ensamblaje del nucleosoma está mediado por otros factores
La nucleoplasmina ( proteína ácida) participa en el ensamblaje del nucleosoma actuando
como una chaperona molecular que asocia las histonas y el DNA de manera controlada,
evitando así su agregación no específica debído a sus fuertes interacciones electrostáticas
FILAMENTOS DE 30 nm
El filamento del nucleosoma de 10 nm presente a baja fuerza iónica que contiene H1, se pliega en una
conformación en zigzag (filamentos de 30 nm) a medida que la fuerza iónica del medio sube. Su aspecto
sugiere que los nucleosomas interaccionan mediante contactos entre sus moléculas de H1.
A concentración salina fisiológica, la
cromatina forma un filamento de 30nm de
espesor.
Modelo de como la histona H1 puede cambiar la
trayectoria del DNA y su salida del nucleosoma
Klug propuso que el filamento de 30 nm se formaba por enrollamiento del filamento de 10 nm formando
un solenoide con 6 nucleosomas / vuelta y un paso de rosca de 11 nm. El solenoide está estabilizado
por las moléculas de H1 y probablemente por la participación de las colas de las histonas que forman el
núcleo. La relación de empaquetamiento es de 40 (6 nucleosomas, cada uno con 200 bp, con un total de
11 nm.).
Vista a lo largo del eje de la croomatina condensada dispuesta
en solenoide que muestra la localización interior de una histona
H1 asociada con cada nucleosoma
Modelo solenoidal propuesto para la cromatina, que
contiene seis nucleosomas por cada vuelta de hélice. La
doble hélice del DNA está enrollada alrededor de cada
octámero de histonas.
Remodelación de la cromatina
↔
Complejos de remodelación
Características:
-Existen distintos tipos
-Complejos multiméricos, > de 10 cadenas
-hidrolizan ATP
-Debilitan las interacciones histonas-DNA (nucleosomas remodelados)
-Cambian de posición (el nucleosoma cambia de posición)
Mecanismo
Ciclo
Función:
Irregularidades en la fibra de 30 nm mediante proteínas unidas a secuencias específicas
de DNA. Las interrupciones pueden relacionarse con regiones del DNA en las que
faltan nucleosomas o, más probablemente, con regiones que tienen nucleosomas
alterados o remodelados.
Modificaciones covalentes de las colas de las histonas
Las colas N-terminales de las cuatro histonas del núcleo del nucleosoma tienen una secuencia
altamente conservada y juegan un papel crucial en la regulación de la estructura de la cromatina.
Modificaciones de las histonas
-postraduccionales
-post-ensamblaje del nucleosoma:
a) no afectan la estabilidad del nucleosoma
b) afectan la estabilidad del filamento de 30 nm y otras estructuras superiores
c) gran capacidad para atraer especificamente a determinadas proteínas. Las cuales:
-modifican el grado de empaquetamiento de la cromatina
-facilitan el acceso al DNA
BUCLES RADIALES
Los cromosomas metafásicos desprovistos de histonas muestran un esqueleto central de
proteína fibrosa rodeado por un extenso halo de DNA. Las cadenas de DNA forman
bucles que entran y salen del esqueleto prácticamente en el mismo punto.La mayoría de
estos bucles tiene una longitud entre 15 y 30 um (que corresponden a 45-90 kb), con lo
que al empaquetarse como filamentos de 30 nm tendrían una longitud de 0.6 um.
Micrografías electrónicas de cortes transversales de cromosomas, sugieren que las fibras
de cromatina de los cromosomas metafásicos estan dispuestas de forma radial. Si los
bucles que se observan corresponden a esas fibras radiales, cada uno debería contribuir
con 0.3 um al diámetro del cromosoma ( una fibra debe doblarse sobre si misma para
formar un bucle). Teniendo en cuenta los 0.4 um de anchura del esqueleto, este modelo
predice 1.0 um para el diámetro del cromosoma metafásico, concordando con lo
observado. Un cromosoma humano de 140 millones de bp, tendría por lo tanto 2000 de
estos bucles radiales de 70 kb. El esqueleto de dicho cromosoma, de 0.4 um de
diámetro, tiene una superficie lo suficientemente grande, a lo largo de sus 6 um de
longitud, como para unir ese número de bucles radiales. Por tanto, el modelo de bucle
radial explica la relación de empaquetamiento del DNA observada en los cromosomas
metafásicos.
Organización del material genético eucariótico: Resumen
Modelo de empaquetamiento de la cromatina y
el armazón de los cromosomas en metafase.
En los cromosomas en interfase, largas porciones
de cromatina de 30 nm forman asas hacia el
exterior de los armazones extendidos. En los
cromosomas en metafase, el armazón se pliega
para formar una hélice y se empaqueta aun más
para formar una estructura muy compacta, cuya
geometría exacta aun no se conoce.
Microfotografía electrónica de un cromosoma
en metafase sin histonas, por tratamiento con
un detergente suave. Se distingue un armazón de
proteína no histona (estructura oscura), del que se
extienden largas asas de DNA.