ResearchIn Surgery, Suplemento 8,Julio 1991 Anestesia en el Animal de Laboratorio. Parte 5 Servicio de Anestesiología y Reanimación. Hospital General de Valencia La nonnalización de la anestesiología experimental es una condición inexcusable para el desarrollo científico en materias biomédicas y desarrollo de modelos quirúrgicos experimentales. La legislación vigente sobre protección de los animales utilizados para experimentación y otros fines científicos, hace que cada vez se tome más en serio a estarama de la Anestesiología; reflejo de ello es la Normativa Comunitaria (BOE de 14 de marzo de 1988), en que queda explícita la absoluta necesidad de evitar el dolor en los experimentos con animales. El objetivo que se persigue con estas normativas, es que el animal de experimentación sufra lo menos posible y las alteraciones fisiológicas que toda técnica anestésicaimplica, no dificulten el método quirúrgico experimental. En el marco del VI Simposium Internacional de Anestesia-Reanimación celebrado en Valencia en Noviembre de 1987, tuvo lugar una mesa redonda sobre anestesiología experimental que dado su interés, causó un importante impacto. Sus claras conclusiones demostraron la concienciación y el interés de los anestesiólogo~por la anestesiaexperimental. La Sección de Investigación, dentro del marco de la Sociedad Española de Anestesiología. Reanimación y Terapia del Dolor, acoge a todos los anestesiólogos interesados en este tema. La utilización de primates en cirugía experimental es cada vez mayor pese a su elevado precio y su prodigalidad; esto contrasta con la carencia de bibliografía en el campo de la anestesiología experimental, así pues, siguiendo la línea abierta en este campo, trataremos en estenúmero, de la anestesiaen primates. Si el objetivo fundamental de la anestesia en cirugía experimental en cualquier animal de laboratorio, es el minimizar su sufrimiento, tal vez sea en los laboratorios en donde se trabaja con primates, donde las exigencias de trato hacia los animales deban ser más exquisitas. RECUERDO ANA TOMO-FISIOLOGICO Los simios sonmamíferosplacentarlos:babuíno(Papio spp ), chimpancé{Pan troglodytes},gorila (Gorilla), orangután (Pongo pygmaeus),formando parte de este grupotodos los monos. Suscaracterísticasmásimportantesson: la dentadura completa, dedosoponibles,por lo que susmanosy a veces sus pies son prensiles, ojos situados en un plano frontal y dos mamaspectorales,existiendo una gran se,. mejanza entre las caras de los monos, especialmente chimpancés,orangutanes, gorilas y gibones. Es importanteconocerla anatomíade las vías aéreas superiores,pues la anestesiacon relajantesmusculares exigela ventilaciónmecánicay la intubaciónendotraqueal del animal. Anatomía de las Vías Aéreas Superiores La configuraciónde la cavidadbucal,tienealgunaspeculiaridades: -oblicuidad y cortedadde la rama descendentedel maxilar; -con la cabezaen hiperextensión,la glotis es prácticamenteprolongacióndel hocico; -la glotis estásituadaa unagrandistanciade la arcada dentaria. El aparatolaringotraquealtiene las siguientescaracterísticasanatómicas: 3 -la glotis esestrecha; -el espacioentrelascuerdasvocales esde 2-4 mm; -la distanciaque separala glotis del primer espacio traquealesde 10 mm en el macacoy 18 en el babuíno; -la tráqueaestáformada por anillos cerradosde un modo incompleto. Sudiámetro interior es de 9 mm en el macacoy 11 mm en el babuíno; -las dosramasbronquiales,forman un ángulode 75°. Fisiología Es importanteconocerque gran parte de los fánnacos empleadosen la anestesiaexperimental,se metabolizan en el hígadopor mecanismosde inducciónenzimática. La respiraciónde los primateses esencialmente abdominal, por lo que no sepuedecontar con la expansiónde la cajatorácicaparavalorarla efectividadde la misma.La frecuenciarespiratoriaes de 15 respiraciones/m in, siendo el volumencorriente del ordende 100 mI en el macacoy 200 mI en el babuíno. La compliancia pulmonar es alta, probablementeen razónde la facilidad de adaptacióndel animal a la ventilación manual. La temperaturabasales superiora la de los hombres, así, oscila entre 38.5 °C y 39.6 OC,por lo que habráque tomar medidascontra la hipotermia,(p. ej. colocandoal animal sobre una superficie caliente o envolviendo las Anestesia en el Animal de Laboratorio. Parte 5 zonas no quirúrgicas con algodón térmico durante la intervención quinírgica). PREPARACION PREVIA Examen flsico. Se debe realizar una exploración completa del animal antes del procedimiento anestésico, fijándonos en el aspecto general, color de las mucosas,ojos y oídos, etc; no obstante, puesto que el simio es una especie difícil de examinar coD"ectamente,parte de esteexamen se tendrá q~ hacer por mera observación. El animal debe ser activo, espabilado y ruidoso. Los primates son especialmente susceptibles a determinadas enfermedades contagiosas e infecciosas, sobre todo de los aparatos digestivo y respiratorio. Esta predisposición infecciosa, debe tenerse en cuenta a la hora de programar un experimento. Ejercicio. Como ya venimos comentando en números anteriores, el animal debe tener total libertad dentro de la jaula para eliminar normalmente las heces y la orina. Swninistro de alimento yagua. El animal debe permanecer en ayunas al menos 12 horas antes de la inducción anestésica. para así evitar la emesis. Puede beber agua ad libitum. Manejo preliminar y sujeci6n. Es muy variable, dependiendo <k la edad, sexo, tamafio y carácter del animal, así como del equipo de sujeción disponible. El manipulador debe llevar guantesprotectores de cuero y máscara facial. Respecto al trato del animal, deberemos recordar que éste, en muchas ocasiones, presenta actitudes semejantes al hombre. El peso del animal suele oscilar entre 5 y 8 kg en los macacos, 11-15 kg en los babuínos y 40 kg en los chim- pancés. Como se ha dicho, el procedimiento de sujeción variará según el equipo disponible; no obstante, una red y una jaula de sujeción facilitarán mucho el manejo. Después de echarle la red al primate, ésta se extiende por el suelo. Si es posible, se coge el animal por el sacro con una mano a través de la red apretando el cuerpo contra el suelo y con ayuda se intenta coger los dos codos a la espalda del animal. En esta postura de brazos tras la espalda con la cabeza mirando hacia delante, puede posicionarse el animal para anestesiarlo. Asepsia. Las reglas de asepsia generales, aunque no tan severas, son válidas en todas las especies animales al igual que en el hombre, en particular la asepsia del material quirúrgico, equipo quirúrgico y zonas quirúrgicas, y de punción venosa. TECNICAS ANESTESICAS En lo referentea procedimientos.hayquerecordarque algunos principios anestésicosaplicados en el hombre puedenserexuapolablesa los primates. Anestesia Local Los anestésicos locales (procaína, lidocaína, hexilcaíDa)interfieren en la conducción de los impulsos a lo largo de un tronco nervioso, por lo que si se depositan en o cer- 4 ca del nervio, anulan la sensibilidad inerva. en la región que éste La anestesia local no es recomendable, pues el animal puede moverse durante la intervención; sólo deberemos emplearIa si el animal ha sido sedadoprofundamente. Anestesia General La anestesia general en los primates al igual que en el hombre, se asocia a una depresión del sistema activador reticular, y no hay duda de que la pérdida de conciencia y el sueno que producen las drogas correspondientes se debena dicha depresión. El inconveniente de esta técnica radica, por un lado en que la recuperacióndependede la capocidad del animal para redistribuir, metabolizar o excretar el agenteanestésico, 10 que adquiere importancia especial en animales enfermos o debilitados. VIAS DE ADMINISTRACION Ora/. No es recomendable por su dificultad de control, pero sí puede servir para la premedicación del animal. 1ntramuscu/ar.Tiene el mismo inconvenienteque la anterior. Sepuedeaplicar en la parte lateral del muslo o enlos músculosde la espalda(deltoides). Endovenosa.Es una técnica fácil pero puede ser de difícil abordajesi el animal no estápreviamentesedado. Requierefármacosde rápidasolubilidad. Las técnicasendovenosas se puedenadministrarenperfusióncontinuao en bolo. Los accesosmáscómodosson: -vena radial, lejos de la flexura, -vena femoral, -vena safena, -vena tarsalen la zonaposteriorde la pata. -vena mamariaexternaen el animal no obeso. Intraperitonea/.En animalesde pesoreducido. Recta/.Las respuestasdel fármaco no sonfácilmente predecibles. Sepuedeemplearpentobarbitalsódico(25-30 mg/kg), obteniendo a los 15 minutos un efecto de 6-9 h de duración. 1nha/atoria. Las técnicas inhalatorias,posibilitan un mejor control sobrela profundidadde la anestesia,pero por el contrario, tienen el inconvenientede que para su aplicaciónsenecesitaun equipomáscomplejo. Requierenmáscarao intubaciónendotraquealmediante laringoscopiao visión directa. En estamaniobratienengran importanciala glotis, la cavidadbucal y la prominenciade los incisivos, asícomo el diámetrode la traquea. Recordemos algunosaspe<:tos queguardanrelacióncon la anatomíadel animal: -la longitud del hocico en algunosprimates,excluye la posibilidadde empleode mascarilla; -la movilidad de la lengua hacedificultosa la introducciónde un laringoscopio,siendonecesariotraccionar de ella con cuidadomedianteuna pinza; -la longitud de los tubos endotraquealesdebe ser grandesobretodo en el macaco,en el cual se debecolocar lateralmentea las arcadasdentarias;las sondasendotra- Research In Surgery, Suplemento8, Julio 1991 quealesdebenteneruna longiwd de 20 cm aproximadamente(distanciaincisivossuperiores-carina bronquial). -Maleato de acepromazina (CalmoneosánlBl),a dosis de 0.044-0.088 mg/kg im o iv. .Hidroclorato de clorpromacina (ClorpromacinalBl), a dosis de 2.0 mg/kg, 30 min antes de la inducción anestésica. -Promacina (PromazinelBl)a dosis de 1 mg/kg im. -Xilacina (RompúnlBl). Sedante con propiedades analgésicas. Dosis: 1.1 mg/kg iv o 2.2 mg/kg im. Puede producir bradicardias y arritmias cardíacas transitorias que se pueden prevenir con la administración previa de atropina. Los efectos sedantesse aprecian a los 10-15 min de la inyección im y 3-5 min después de la inyección iv. La sedacióndura 1-2 h Y la analgesia 15-30 mino -Fenciclidina (SemyllBl). Fue el primer agente empleado para producir anestesiadisociativa. Produce ataxia, narcosis cataleptoide y analgesia profunda. La relajación muscular obtenida es pobre. Se administra por vía sc diluído al 1/5 a razón de 0.50.8 mg/kg. Los efectos del fármaco aparecen a los 5 min, con una duración de una hora. La asociación de xilacina 0.5 mg/kg y fenciclidina 1-5 mgjkg produce una profunda sedación y una buena relajación muscular. Técnica de Intubación Endotraqueal Es recomendableen intervencionesde larga duración querequieranventilaci6nmecánica.Procedimiento: -se coloca la cabeza del animal en hiperextensión y se ttacciona de la lengua. -se visualizanlascuerdasvocalescon la ayudade un laringoscopiode palalarga. -se introduce a travésde las cuerdasvocalesel tubo endotrnqueal. La sondaendottaquealseconectaal aparatode anesteSla. V ALORACION DE LA PROFUNDIDAD DE LA ANESTESIA Si se usa una sedaciónprevia a la inducción anestésica, el animal puede anestesiarsemás facilmente. Lo más sencillo es valorar la pérdida de los reflejos posturales y la caída de la cabezadel animal, como índice de anestesiabasa1;y la abolición del reflejo de la tos y una relajaciónde la orofaringe suficientepara permitir la introducción de un tubo endotraqueal, como índice de anestesiaquirúrgica. Además hay que tener en cuenta en el control de la anestesiageneral,lascaracterísticasde la respiracióndel animal, que disminuye de frecuencia y amplitud con la profundidadanestésica, la coloraciónde mucosas,el tamaño de la pupila, tono muscular, las característicasdel pulso y la presiónarterial. La desapariciónde los reflejos comeal,palpebral,conjuntival, faríngeo,laríngeoy cutáneoes signode anestesiaprofunda. FARMACOS ANESTESICOS VANTES DE LA ANESTESIA y COADYU Hipnóticos y Sedantes Se busca con su empleo la depresi6ndel SNC y la inducci6n al sueftode forma reversible. Los hipn6ticos sondepresores centralesno selectivos. Así como un anestésico general administrado a pequeftasdosistiene un efectohipnótico. todo hipnóticoa grandesdosispuedeproduciranestesia general. ELECCION DE LA TECNICA ANESTESICA Es importante seftalar,que no hay técnica o agente anestésicoidóneo y que la eleccióndependede distintos factores, debiendo considerarprimero el que el animal debasobrevivirtrasla técnicaanestésicao no. La elecciónde la técnicaanestésica dependede: -los mediosy el equipodisponible; -el tipo de intervenciónquirúrgicay suduración; -condición física y patologías; -la edadY el sexo; -estadonutricional; -tolerancia a los fármacos; Fármacos A) Vía parenteral Enumeramosen este apartadoalgunos fármacosque puedeninducir al animal al sueno,aunqueno sonlos únicos, ya que los fármacoscitados en el apartadode preanestesiatambiénpuedenemplearseenla faseanestésica. -Tiobarbitúricos: Tiopental sódico, tiamilal sódico(Nembuta1~, Brevane~). Han sido los fármacos más utilizados por su manejabilidady seguridad.Producenuna parálisis descendentedel SNC, que segúnla dosispuede ir desdela hipnosishastala anestesiageneral,comao muerte del animal. Producen hipoventilación y depresióncardiovascular.Sonbiotransfonnadosen el hígadoy los metabolitosexcretadospor la orina. Sonde acciónultracortay la duraciónde la anestesia quirúrgicavienea serde 20 min, sepuedenusar o bien en dosis repetidasque producirána su vez efectos más prolongados que la primera, o perfusiónconLÍnuadel fármaco. PREANESTESIA Con el objeto de obteneruna sedaciónligera que disminuya el estrés y la irritación del animal se emplean fármacosdepresores del SNC. De estemodo se facilitaránlas primerasmaniobrasde la técnica anestésica(p.ej. canalización de una vena periférica). Al mismo tiem}X>estasdrogas facilitan la induccióny el mantenimientode la anestesia. Los tranquilizantesusadosmáscomunmenteson: 5 Anestesiaen el Animal de Laboratorio. Parte5 Algunos autoreshan utilizado dosis de 35-40 mg/kg ip consiguiendo4-5 h de anestesiaquirúr- tercostales y diafragma. La instauración de la parálisis muscular provoca apnea, que exigirá la ventilación megica. cánica. La respuestavaría con las especies,asíel macaPor su mecanismo de acción se subdividen en bloco es ligeramentemássensibleque el babuíno. queadoresdespolarizantes(producen despolarizoción 00 la -Ketamina(Ketaset~,Keto~): Sustituyóa la membrana celular muscular) y no despolarizantes o comfenciclidinacomo agentedisociativoenla anestesia petitivos (compiten con la acetilcolina natural liberada en de primates.Bloquea el sistematalamocorticalno la sinapsis por el mismo receptor nicotínico a la altura de específicocon derivaciónal córtexcerebralexcepto la placa motora terminal). los lóbulos. Tras la administración del fármaco, permaneceintacto el reflejo laríngeo.No produce relajación muscular. Su biotransformación se realizaen el hígaooy unapequeftaparte seelimina sin modificar, a travésde los riflones. Altas dosis, deprimen la repiración y aumentala presiónarterial. Puede ser empleadocomo agenteinductor o como anestésico propiamente dicho, dada su potenciaanalgésicatanto por vía im 10-25 mg/kg, como iv. El efectoanestésicocomienzaa los 5 ó 15 min y dura de 30 a 60 mino La recuperacióntotal se prodoceen 1-5 h,dependiendo de especiesy dosis. Su índice terapéuticoes alto y puedenrepetirse las dosisde administración. Fármacos -Despolarizantes Por ejemplo el Suxametonio: (Sucostrin~, Quelicin~) a dosis de 0.15 mg/kg, iv, tiene un efecto potente pero breve (5 min). La administración repetida puede originar un bloqueo mioneural no despolarizante. Tras 30-60 s de su administración se puede proceder a la intubación endotraqueal del animal. -No despolarizantes Por ejemplo Triyoduro de gallamina (Flaxedil~) a dosis de 0.4-1.1 mg/kg iv produce taquicardia y relajación muscular. A dosis de 0.3 mg/kg iv provoca un bloqueo neuromuscular cuya máxima intensidad se alcanzará al cabo de 120 s y persistirá aproximadamente 35 mino Puesto que en perfusión continua la concentración plasmática demuestra una cinética lineal este modo de administración, facilita el manejo. El bloqueo neuromuscular provocado por los relajantes musculares no despolarizantes,puede invertirse fácilmente y de forma duradera mediante la administración de atropina y neostigmina. B) Inhalatorios -Gases: -Oxido nitroso (N20): es un gas inorgánico, no irritante, inductor fácil al sueftoque sepuede utilizar parala inmovilización del animalantesdel abordaje.Se debede administrarjunto con °2 para evitar la anoxia,no debiéndoseutilizar concentracionessuperioresal 70% de N2O. Es de accióndébil y la relajaciónmuscularque produce es pobre si se usa solo. El restablecimiento esrápido (2-3 min) -Líquidos volátiles: Pueden utilizarse junto con óxido nitroso para aprovecarel efectodel gasy acelerarasíla induccióny la recuperaciónpostanestésica. -Eteres halogenados:Metoxiflurano (Metofane~, PenÜ1rane~): Es buenanalgésicoy relajante muscular.Produceuna vasodilataciónperiférica y roouceel gastocardíaco. -Halotano (Fluotano~):Producebuenaanalgesia pero menor relajaciónmuscularque la del metoxiflurano. En igualdad de condicionesla recuperaciónesmásrápidaquela del metoxiflurano. Dosis: La concentracióncon oxígeno a la inducción debe ser de 2.0-3.5 %, manteniéndoseasí durante 2-5 minutostras los cualessedisminuye el flujo del fármaco a 0.08%-2%. La concentraciónde mantenimientovariará. Analgésicos Para la supresión del dolor, se emplean en general los analgésicosnarcóticos. Sus acciones fundamentales son la analgesia y el sueño (hipnoanalgésicos). Son biotransformados en el hígado y excretados por la orina. Entre sus efectos no deseables destacan la depresión respiratOriapor su acción selectiva depresora sobre el centro respiratorio, enlentecimientO del pulso y disminución del reflejo de la tOS. Fármacos .Morfina: Produce sedación y analgesia. Se administra a dosisde 0.75 mg/kg iv. -Petidina o Meperidina (Demerol~): su actividad analgésicasesituaentrela codeínay la morfina. Produce sedacióny puedecausarliberación de histamina.La acción se inicia a los 15-25 min despuésde su inyección im. La dosis a administrar va de 1.1 a 1.4 mg/kg im o 1.1 mg/kg iv lentamente. -Metadona (Amidone~. Dolophine~): Es ligeramente más potente que la morfina y varias veces más que la meperidina. Al igual que ambas puede deprimir la respiracióndel animal. Dosis: 0.11-0.22mg/kg iv. -Fent.anil y droperidol (Innovar-Vetc!l): El fentanil produce una analgesiaintensa del orden de ocho veces Relajantes Musculares Los bloqueadores neuromusculares,producen una parálisis de todos los músculosestriadosvoluntarios al interferir ]a octividad o ]a fijación de ]a acetilcolina en la placa motoraterminal. La paralización de ]a musculatura es progresiva, afectando al cuello, extremidades, músculos respiratorios in- 6 Research In Surgery, Suplemento8, Julio 1991 MATERIAL Y FARMACOS Respirador Fuentede oxígeno Laringoscopio Tubosendotraqueales Pinzasde Magil Bombade perfusi6n Jeringuillas 10 mI, 5 mI Agujas AnaIgésicos AbocatsN° 20 G x 1/4 SueroflSiol6gico Sueroglucosalino Equiposgotero Esparadrapo Guantes superior a la morfina. La presentaciónfarmacológica combina el narcótico (fentanil) y el tranquilizante (droperidol).Dosis: 0.3 mVk:gim Anticolinérgicos Las drogas anúcolinérgicas protegen el SNV inhibiendo las respuestasde éstasa la esúmulaciónde las fibras colinérgicas postganglionaresy a la acetilcolina, transmisor químico parasimpático, cuya liberación no suprimen. Reducenlas secreciones,estimulan la respiración y producentaquicardia. -Ej. Sulfato de atropina. Dosis: 0.01-0.03 mg/kg im o iv. Rasumdora ADMINISTRACION DE FLUIDOS La capacidadsanguíneade estosanimalesoscilaentre 300 mI en el macaco y 800 mI en el babuíno. por lo tantounahemorragiapequeftapuedeserya peligrosa. La cantidad de líquido a perfundir puede oscilar en condicionesnormalesentre 100y 150ml/h. empleándose normalmenteuna solución de glucosa entre el 5% y el 30%. La piel de los primates no humanoses gruesay las venassonfrágiles.Se puedenutilizar parala canalización venosaagujasepicranealesdel número12. Ketolar Tiobarbital Atropina Relajantesmusculares Antibi6ticos Etereshalogenados N20 POSIBLES PAUTAS A SEGUIR -Preanestesia: -Atropina 0.01-0.03mgjkg sc o im. -Anestesia: -Canalizaciónvenosa. -Inducción: Tiobarbital (3-5 mgjkg) o Ketamina (enpequenosprimates)5-25 mgjkg im. -Recuperaciónen40-140mino -Intubaciónendotraqueal: atracurio(0.3-0.5 mgjkg). -Mantenimiento: Tiobarbital (2-3 mgjkg). EXTUBACION y DESPERTAR La extubociónno planteaningúnproblemasi la sonda seretira despuésde que el animal vuelva a tenerunarespilación espontánea, regulary de buenaamplitud El animal deberádespertarespontáneamente y sedeberá dejar en ayunas12 h pero permitiéndoleaguaa su disposición. Si el animal manifiesta signos visibles de dolor, se puedenadministraranalgésicos. BIBLIOGRAFIA Guidelines for the use of anima/s in research. Bulletin the British Psycological Society 1985. Anesthesie et reanimation des primates. Ann. Anesth. Franc., XI, 4. Octobre, Novembre,Decembre1970. 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