Rev. Méd. Hosp. Na!. Niños Costa Rica 1 y 2 (24): 97-100,1989. Utilización de la esculina en la identificación de bacterias DI'. José L. Salas, Dr. Jaime Guevara y Dr. Marco L. Herrera Introducción La hidrólisis de la esculina y su detección fue descrita por primera vez en 1907. En el año de 1930 fue asociada como un instrumento taxonómico en la descripción de la familia Enterobacteriaceae, pero la reacción química de la hidrólisis no fue usada por muchos años (7). A partir de 1971, algunos investigadores la utilizan para la identificación presuntiva de los Streptococcus del grupo D (7,9). Estas bacterias hidrolizan la esculina a 6,7 dihidroxicumarina, la cual reacciona con los iones hierro presentes en el medio de cultivo para formar un compuesto de color negro (6,7,9). Tradicionalmente se ha informado que el grupo KIebsielIa-Enterobacter-Serratia son los únicos miembros de la familia Enterobacteriacesae que producen esta reacción. Hay reportes en la literatura en los cuales mencionan a Escherichia coli como causante de su hidrólisis. (l,2,5 ,6,7 ,9). La esculina es una B-D-glucosa -6,7dhidroxicumarina: es hidrolizada a glucosa y a 6,7 dihidroxicumarina (esculetina). Esta reacción puede ser determinada en laboratorio por la medida de la producción de ácido en la fermentación de la glucosa, o por el color negro formado por la esculetina con los iones hierro presentes en el medio de cultivo (7). El propósito de este estudio es el de obtener los porcentajes de bacterias que hidrolisan la esculina en un medio de cultivo no inhibitorio, con el fin de tratar de incorporarlo a la lista de reacciones químicas que usamos rutinariamente para la identificación de bacterias de interés médico. Material y Métodos Se aislaron 554 cepas bacterianas de diferentes muestras en la División de Microbiología del Laboratorio del Hospital Nacional de Niños de Costa Rica. Las cepas fueron identificadas según métodos bioquímicos convencionales (4,6). Todas fueron sometidas a la prueba de hidrólisis de la esculina, usando como medio de cultivo agar esculina (BBL) (6). El medio de cultivo se preparó y esterilizó de acuerdo a las instrucciones del fabricante, luego de enfriar se distribuyó en cajas de Petri, las cuales fueron selladas y guardadas a 4 0 C hasta el momento de usar. Para determinar la capacidad de las bacterias de hidrolizar la esculina se empleó el siguiente procedimiento: las cepas crecieron en caldo tripticase-soya (GIBCO) a 37 0 C hasta alcanzar una turbiedad comparable a la mitad del Nefelómetro NO 1 de MacFarland, posteriormente se diluyeron en una solución tampón de fosfatos pH 7 hasta alcanzar una turbiedad de aproximadamente de 10 5 ufc/m1. Las bacterias fueron sembradas en el medio descultívo empleando el aparato aplicador de ínóculos de Steer (3,8). Se incubaron a 37 0 C por 18 horas. La presencia de un color negro en el medio de cultivo indica resultado positivo. Como control positivo se usó el Streptococcus gama-hemoIítico del grupo O, tipificado con latex (BIOMERUX) y como control negativo se empleó la Escherichia coJi ATCC-25922. 97 98 REVISTA MEDICA HOSPITAL NACIONAL DE NIÑos "DR. CARLOS SAENZ HERRERA Resultados De las 554 cepas aisladas, correspondieron 157 a Escherichia coli, 110 Staphylococcus aureus, 52 Pseudomonas aeruginosa, SO Staphylococcus sp coagulasa negativo, 48 Klebsiella pneumoniae, 38 Streptococcus gama-hemoIítico, 28 Enterobacter sp, 20 Proteus sp, 13 Serratia sp, 9 Salmonella sp, 5 Citrobacter sp, 3 Aeromonas hydrophila. Los resultados positivos y negativos a la hidrólisis de la esculina se observan en el cuadro. Podemos notar que la Klebsiella y la Serratia son las dos bacterias de la familia Enterobacteriaceae que tienen mayor porcentaje de positividad. Aeromonas hydrophila presenta reacción variable. Discusión y conclusiones La prueba de bilis-esculina agar es usada en bacteriología como una ayuda más para la identificación de especies de Streptococcus, algunos bacilos gram-negativos y de Listeria monocytogenes (6). Algunos est ud ios han llegado a la conclusión de que el tiempo de incubación juega un papel muy importante, ya que el tiempo requerido por una bacteria para dar la reacción positiva de la hidrólisis de la esculina es directamente proporcional al tamaño del ináculo (7,9). Este estudio con el fin de estandarizar el inóculo, usó una densidad bacteriana de aproximadamente de 10 5 ufc/ml, todas bajo las mismas condiciones. La literatura ha reportado que la Escherichia coli no produce hidrólisis de la esculina a las 24 h de incubación (4,7); sin embargo algunos autores encontraron cepas positivas, empleando para ello inóculos fuertes y tiempos prolongados de incubación (1,2,5,7). En nuestro estudio no se incubaron cepas por más de 18 h. Explicaciones al respecto establecen la producción de una enzima beta-glucosidasa de la Escherichia coH es inducible, el organismo es incapaz de producir enzima constitutiva (6,7). Observando el cuadro, notamos que el porcentaje de positividad para la KIeb· siella pneumoniae (98% ) y Streptococcus gama-hemolítico (97 ,3%) son bastante confiables para usarla como ayuda en la identificación presuntiva de estas bacterias; así mismo en la identificación de Serratia (92,3% de positividad) y de poca ayuda en Enterobacter y Salmonella (14,3% y 11 % respectivamente) y variable en Aero· monas hydrophila (33,3%). Al emplear esta prueba como una ayuda para la identificación de bacterias, hacemos la siguiente recomendación: establecer cuidadosamente el tamaño del inóculo y controlar el tiempo de incubación. Resumen La prueba bioqu ímica de hidrólisis de la esculina es usada en bacteriología principalmente en la identificación de Streptococcus grupo D. En este estudio con 554 cepas bacterianas el 98% de Klebsiella pneumoniae y 92,3% de Serratia sp. dieron resultados positivos. Presentaron bajos porcentajes Enterobacter sp., SalmoneHa sp. y Aeromonas hydrophíla y resultados negativos Escherichia coli Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus sp., Proteus sp. y ShigeIla sp. consideramos que en nuestro medio esta prueba tiene valor en la clasificación de KlebsieUa pneumoniae, Streptococcus sp. gama hemolíticos y Serratia sp. Salas J. el al.: UTILIZACION DE LA ESCULlNA EN LA IDENTIFICACION DE BAcrERlAS. 99 Cuadro 1 Reacciones de hidrólisis de la esculina de 554 cepas bacterianas sobre agar esculina BBL Micoorganismo Escherichia coli Staphylococcus aureus Pseudomonas aeruginosa Staphylococcus sp Klebsiella pneumoniae . Streptococcus gama hemol Enterobacter sp Proteus sp Shigella sp Serratia sp Salmonella sp Citrobacter sp Aeromonas hydrophlla Total 157 110 52 50 49 38 28 20 20 13 9 5 3 Positivos O O O O 48 37 4 O O Négativos 157 110 52 50 1 1 24 20 20 12 1 1 8 5 2 O 1 % positividad O O O O 98 97,3 14,3 O O 92,3 11 O 33,3 Summary The esculin hydrolysis test is applied to bacteriological identification of group D Streptococcus. This study reportes the hydrolysis produced by 554 bacterial strains. The 98% of Klebsiella pneumoniae and 92,3% of Serratia sp. were positive. With low nomber of positíve strains: Enterobacter 9p., Salmonella sp. y Aeromonas hydrophila. With negative reaetíon: Escherichia eóli, Pseudo monas aeruginosa, Staphylococcus sp., Proteus sp. y Shigella sp. We think this test is of value in the clasification of our strains of Kle"'iella pneumoniae, gama hemolytic Streptococcus and Serratia sp. Bibliograf{a l. Edberg A. et a1.: Rapid test for the determinatían of esculin hydrolysís. J. Clin. Microbiol. 4: 180,1976. 2. Edberg S. el al.: Esculin hydrolysis by Enterobaeteriaceae J. elin. Microbiol. 6: 111, 1977. 3. Fuchs P.: Th. replicator method for identification and biotyping af eonunon bacterial isolatls. Laboratory Medicine 6: 6, 1975. 4. Lennette E. ot al.: Manual of Clínical Microbiology Trurd Edition Washington D.C. Amerioan.,ciety ForMicrobiology p 83-110,195-219,1980. 98 REVISTA MEDICA HOSPITAL NACIONAL DE NIÑos "DR. CARLOS SAENZ HERRERA Resultados De las 554 cepas aisladas, correspondieron 157 a Escherichia coli, 110 Staphylococcus aureus, 52 Pseudomonas aeruginosa, 50 Staphylococcus sp coagulasa negativo, 48 KlebsieIla pneumoniae, 38 Streptococcus gama-hemolítico, 28 Enterobacter sp, 20 Proteus sp, 13 Serratia sp, 9 Salmonella sp, 5 Citrobacter sp, 3 Aeromonas hydrophila. Los resultados positivos y negativos a la hidrólisis de la esculina se observan en el cuadro. Podemos notar que la KlebsielIa y la Serratía son las dos bacterias de la familia Enterobacteriaceae que tienen mayor porcentaje de positividad. Aeromonas hydrophila presenta reacción variable. Discusión y conclusiones La prueba de bilis-esculína agar es usada en bacteriología como una ayuda más para la identificación de especies de Streptococcus, algunos bacilos gram-negativos y de Listeria monocytogenes (6). Algunos estudios han llegado a la conclusión de que el tiempo de incubación juega un papel muy importante, ya que el tiempo requerido por una bacteria para dar la reacción positiva de la hidrólisis de la esculina es directamente proporcional al tamaño del inócula (7,9). Este estudio con el fin de estandarizar el inócula, usó una densidad bacteriana de aproximadamente de 10 5 ufc/ml, todas bajo las mismas condiciones. La literatura ha reportado que la Escherichia coli no produce hidrólisis de la esculina a las 24 h de incubación (4,7); sin embargo algunos autores encontraron cepas positivas, empleando para ello inóculos fuertes y tiempos prolongados de incubación (1,2,5,7). En nuestro estudio no se incubaron cepas por más de 18 h. Explicaciones al respecto establecen la producción de una enzima beta-glucosidasa de la Escherichia coli es inducible, el organismo es incapaz de producir enzima constitutiva (6,7). Observando el cuadro, notamos que el porcentaje de positividad para la KIeb· siella pneumoniae (98% ) Y Streptococcus gama-hemolítico (97,3%) son bastante confiables para usarla como ayuda en la identificación presuntiva de estas bacterias; así mismo en la identificación de Serratia (92,3% de positividad) y de poca ayuda en Enterobacter y Salmonella (14,3% y 11 % respectivamente) y variable en Aeromonas hydrophila (33,3%). Al emplear esta prueba como una ayuda para la identificación de bacterias, hacemos la siguiente recomendación: establecer cuidadosamente el tamaño del inóculo y controlar el tiempo de incubación. Resumen La prueba bioquímica de hidrólisis de la esculina es usada en bacteriología principalmente en la identificación de Streptococcus grupo D. En este estudio con 554 cepas bacterianas el 98% de KlebsieUa pneumoniae y 92,3% de Serratia sp. dieron resultados positivos. Presentaron bajos porcentajes Enterobacter sp., Salmone11a sp. y Aeromonas hydrophila y resultados negativos Escherichia coli Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus sp., Proteus sp. y ShigeUa sp. consideramos que en nuest ro medio esta prueba tiene valor en la clasificación de KlebsieIJa pneumoniae, Streptococcus sp. gama hemolíticos y Serratia sp. Salas J. el al.: UTlllZACION DE LA ESCULINA EN LA IDENTIFrC.AOON DE BACfERlAs. 99 Cuadro 1 Reacciones de hidrólisis de la esculina de 554 cepas bacterianas sobre agar esculina BBl Micoorganismo Escherichia coli Staphylococcus aureus Pseudo monas aeruginosa Staphylococcus sp Klebsiella pneumoniae . Streptococcus gama hemol Enterobacter sp Proteus sp Shigella sp Serratia sp Salmonella sp Citrobacter sp Aeromonas· hydrophlla Total 157 110 52 50 49 38 28 20 20 13 9 5 3 Positivos O O O O 48 37 4 O O 12 1 O 1 Negativos 157 110 52 50 1 1 24 20 20 1 8 5 2 % positividad O O o O 98 97,3 14,3 O O 92,3 11 O 33,3 Summary The esculin hydrolysis test is applied to bacteriological identification of group O Streptococcus. This study reportes the hydrolysis produced by 554 bacteria! strains. The 98% of Klebsiella pneumoniae and 92,3% of Serratia sp. were positive. With low nomber of positive strains: Enterobacter 9p., Salmonella sp. y Aeramonas hydrophila. With negative reaetion: Escherichia eoli, Pseudo manas aeruginosa, Staphylococcus sp., Proteus sp. y Shigella sp. We think this test is of value in the clasification of our strains of Klebaiella pneumoniae, gama hemolytic Streptococcus and Serratia sp. Bibliografía 1. Edberg A. et al.: Rapid test for the determination of esculin hydrolysis. J. Ciin. Microbiol. 4: 180,1976. 2. Edberg S. et al.: Esculin hydrolysis by Enterobacteriaceae J. elin. Microbiol. 6: 111, 1977. 3. Fuchs P.: Th. replicator method foc identification and biotyping of eormnon bacteria! isolat.s. Laboratory Medicine 6: 6, 1975. 4. Lennette E. et al.: Manual of Clínical Microbiology Third Edition Washington D.C. Arneriaan Iociety For Microbiology p 83-110, 195-119, 1980. 100 REVISTA MEDICA HOSPITAL NACIONAL DE NIÑos "DR. CARLOS SAENZ HERRERA 5. Lindell S. & P. Quinn: Use ofbile-esculin agar for rapid diferentiation ofEnterobacteriaceae, J. Clin Microbiol. 1: 440, 1975. 6. McFaddin J.: Biochemical tests for Identification of Medical Bacteria Second Edition Williams & Wilkins. Baltimore p 4-12, 1980. 7. Miskin A. & S. Edberg: Esculin hydrolysis reaction by Escherichia eoli. J. Clin. Microbio!. 7: 251,1978. 8. Streers E. et al.: An inocula replicating aparatus for routine testing of bacterial susceptibilyty to antibiotics. Antibiot. and Chemother.'9: 307, 1959. 9. Wasilauskas B.: Preliminary observations on the rapid differentiation of the Klebsiella-Enterobacter-Serratia group on bile . esculin agar. Appl. Microbiol. 21: 162,1971.