BACTERINA STAPH PM+3 Control de colonización de Staphylococcus aureus MVZ, PhD, Pablo Hernández Jáuregui Dirección, Cytalabs S. A. de C. V. Adhesión y colonización de Staphylococcus aureus Staphylococcus aureus (S aureus) es una bacteria Gram positiva con capacidad de infectar la piel, mucosas y tejidos. Los factores de virulencia de S aureus son múltiples y es considerado un germen de alto riesgo, en forma particular en el humano por las infecciones intra hospitalarias y la resistencia a los antimicrobianos (Maslow JN. 1995. Kluytmans J. 1997. VandenBergh MF. 1999). En los animales domésticos la resistencia a los antimicrobianos es aún mayor, por el uso indiscriminado de estos compuestos para el tratamiento de mastitis. Su importancia por los daños a la glándula mamaria, residen en el ganado de producción lechera, en donde las lesiones son de tipo crónico, lo que reduce o elimina la capacidad de la producción láctea. S. aureus solía ser considerado como un patógeno no invasivo. Ahora se sabe que la bacteria puede invadir diversos tipos de células, con la ayuda de un mecanismo que involucra la formación de un puente entre las proteínas de adherencia de la bacteria a la fibronectina y la α5β1 integrina del hospedero, que activan el proceso de internalización de la bacteria en las células (Schwarz-Linek 2004, Schwarz-Linek 2003, Peacock 1999). El organismo puede sobrevivir en el interior de la célula en estado semi-activo, generalmente referido como variantes de colonias pequeñas (von Eiff 2000). Para adherirse a la membrana citoplásmica de las células huésped y eventualmente invadir el citoplasma celular, S aureus cuenta con proteínas de superficie que reconocen diferentes componentes de las membranas y tejidos (Krivan, H. C. 1988). Entre las proteínas de superficie de S aureus se encuentra la proteína de adhesión a la fibrina, fibronectina, y colágena así como la proteína de adhesión clonal. Estas proteínas se encuentran revestidas por el glicocalix celular de la bacteria. (McKeown-Longo, P J. 1987. Espersen, F. 1982) S aureus es capaz de adherirse a superficies inertes como catéteres y agujas hipodérmicas lo que explica por si mismo la propagación de S aureus cuando las medidas de higiene no alcanzan a ser suficientes. No obstante que S aureus se adhiere con mayor facilidad a los instrumentos cuando estos son revestidos de fibrina, existe propiedades físicas químicas e interacción hidrofóbica que establecen adhesión inespecífica. © 2010 CyTA Labs S.A. de C.V. 1/10 Staphylococcus aureus es un residente asintomático en la mucosa nasal de los mamíferos En el hombre se han realizado la mayoría de los estudios orientados al reconocimiento de los nichos de colonización de S aureus. No obstante que es posible el aislamiento de esta bacteria de la piel y mucosas, el vestibulum nasi es el sitio de donde el aislamiento es positivo en el 30- 37% de los individuos clínicamente sanos. Esta región de la nariz anterior, está revestida por epitelio estratificado queratinizado, con folículos pilosos, glándulas sebáceas y sudoríparas (Aly, R. 1977). El alto porcentaje de colonización nasal, se incrementa con factores de riesgo como; trabajadores de la salud en los hospitales, pacientes inmunosuprimidos con infecciones virales como el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH) (Jacobson M.A. 1988) o con trastornos de la producción de sialyl transferasas como en la Fibrosis Quística (Imundo, L. 1995). Los sujetos expuestos a continuo traumatismo en la región nasal anterior y con rinitis, como los navegantes de ríos caudalosos, alcanzan porcentajes de colonización hasta del 60%. En los animales domésticos se ha informado de igual forma, la colonización de S aureus en la región nasal anterior (narinas). En borregas lecheras, la colonización alcanza porcentajes semejantes como en los humanos y se establece relación de infección en otros órganos, como la glándula mamaria (Vautor E. 2004). En los conejos, donde la mastitis por S aureus es frecuente, se demostró la relación entre las mismas cepas de S aureus colonizadoras de la región nasal anterior con los aislamientos de la glándula mamaria (Selva L. 2008). S. aureus tiene una gran variedad de factores de virulencia secretados y asociados a la pared celular, incluyendo proteínas de superficie que promueven la adherencia a tejidos dañados y a la superficie de las células del hospedero (Foster 1998), que se adhieren a proteínas de la sangre que le permiten evadir la respuesta inmune y promover la absorción de hierro (Skaar 2004). Las proteínas de membrana por lo general están covalentemente asociadas a la pared celular por medio de la enzima sortasa, una enzima asociada a la membrana que reconoce y corta la secuencia LPXTG en el extremo carbonilo de la proteína de superficie, o también pueden ser retenidas en la pared celular por medio de interacciones iónicas (Foster 1998, Mazmanian 2001). Adicionalmente la mayoría de las cepas expresan una cápsula de polisacáridos (O’Riordan 2004). Como factores de virulencia S. aureus puede secretar una gama de enzimas extracelulares como proteasas, hialuronidasas, lipasas y nucleasas que facilitan la destrucción del tejido y la expansión en el hospedero, toxinas que dañan membranas que causan efectos citolíticos, y superantígenos que contribuyen al síndrome de choque tóxico (Bohach 1999, Dinges 2000). © 2010 CyTA Labs S.A. de C.V. 2/10 Microfotografía al microscopio de luz de células del epitelio nasal descamadas colonizadas en forma natural con S aureus. Las bacterias s e observan adheridas a la superficie de la membrana celular. Entre mayor es el grado de queratinización, mayor la adherencia de bacterias como se aprecia en la figura derecha. X 100. Adhesión al epitelio de la glándula mamaria de los bovinos La adhesión de S aureus al epitelio glandular es preferente en las células de la superficie (Mamo W. 1994). La adhesión a las membranas celulares se incrementa y facilita en presencia de leche. En esta circunstancia la adhesión es resistente al tratamiento con tripsina pero sensible al tratamiento con periodato, lo que indica que las adhesinas tienen principal constitución por carbohidratos (Frost A J. 1977). La adhesión de S aureus a glóbulos de leche está demostrada y sugiere que constituye un mecanismo de difusión de S aureus en la glándula mamaria (Mamo W. 1994). La adhesión de S aureus a las células de revestimiento epitelial glandular puede ser bloqueada con la presencia de anticuerpos generados contra la bacteria completa, sin embargo no se conocen con detalle, los mecanismos y/o las interacciones moleculares. © 2010 CyTA Labs S.A. de C.V. 3/10 Micrografía al microscopio de luz de dos células acinares en cultivo primario de la glándula mamaria de una vaca. Sobre la superficie de la membrana citoplásmica se encuentran grupos de racimos de S. aureus adheridos. Tinción de Gram, bacterias en azul, células en rojo X 100. Se presume de la contaminación desde los nichos de reserva y persistencia de S aureus como es la nariz, la piel, vagina a otros sitios como la glándula mamaria y viceversa. Patogénesis de la Infección La nariz es reconocida como la región donde se establece la condición de portador de S aureus y de donde la infección puede ser propagada a otros sitios anatómicos. En forma particular las manos ejercen mecanismo de difusión del S aureus nasal a otros sitios de la piel y subsiguiente contaminación en los pacientes con hemodiálisis y catéteres endovasculares. Otra posibilidad considerada, es que S aureus se propague de la nariz al aire y de ahí pueda colonizar otros individuos. Esta última forma de difusión encuentra soporte en el estudio del aire ambiental y cepas de S aureus colonizadoras de la nariz y de la ubre en borregas lecheras. La obtención de muestras aéreas y de leche de las borregas que se ordeñaron en una sala para ese propósito, se encontraron estrechas relaciones entre las cepas aisladas (Vautor E. 2004). En la sala de ordeño, el contacto humano y bovino es estrecho. Los ordeñadores son transmisores eventuales de estafilococos de los bovinos en sus manos y/o utensilios de ordeño, sin embargo, se desconoce la posible colonización cruzada de S aureus en las vías respiratorias altas entre ambas especies. La piel perianal y la vagina de mujeres portadoras de S aureus en esos nichos, son capaces de infectar al recién nacido (Martin R R. 1982. Dancer, S. J. 1991). No se conocen estudios en los animales domésticos respecto al contagio durante el parto, sin embargo por la insalubridad del parto en estas especies, se especula sobre la alta difusión de S aureus en la piel y en la © 2010 CyTA Labs S.A. de C.V. 4/10 glándula mamaria de los bovinos y de otros rumiantes lecheros. Es probable que este medio de propagación inicie la colonización en los recién nacidos en las vías respiratorias durante el tránsito por el canal del parto. Los hábitos de instinto que los animales ejercen en las crías al nacer, al lamer en forma entusiasta al recién nacido para estimular su respiración y homeostasis térmica, pueden ser mecanismos de infección y futura colonización nasal en el recién nacido. La propagación de S aureus en la piel podal de las vacas que asisten a una sala de ordeño en donde los primeros chorros de leche son esparcidos en forma incorrecta en el piso, es también una gran posibilidad de infección y difusión del germen a otros espacios. Recordemos que la adhesión de S aureus a las micelas de grasa, es uno de los eventos tempranos en la infección en la glándula mamaria (Mamo W. 1994) y que de ahí los estafilococos pueden ser desplazados al interior de la glándula pero también serán transferidos por acción mecánica al exterior en la sala de ordeño, contaminando los utensilios de ordeño, el piso y las manos del operador. Con frecuencia la piel de las patas y de los pezones se encuentra húmeda con escaras y lesiones que rompen la barrera de la epidermis, abriendo puertas a la infección. La presencia casi inevitable de moscas en los establos son factores aéreos de potencial contaminación. Vacuna recombinante contra dos fragmentos proteicos de S aureus (Staph PM+3) El biológico recombinante fue construido aplicando técnicas de biología molecular en donde secuencias seleccionadas de amioácidos de las proteínas de adhesión de S aureus fueron clonados, introducidos al Lactococcus vía plásmidos. El biológico inactivado, expresa en su pared celular los antígenos derivados de la secuencia de la proteína de adhesión a la fibronectina (FnbpA) y la proteína de adhesión clonal (ClfA) en Lactococcus lactis subs. cremoris recombinante. Estos fragmentos antigénicos fueron clonados por separado y en tándem en L. lactis, utilizando el sistema de secreción Sec a membrana, y el anclaje a pared celular mediada por la enzima sortasa por la señal de reconocimiento LPXTG. La respuesta inmune se midió en función de los anticuerpos IgG específicos contra los dos antígenos generados mediante distintas vías de administración de las diferentes cepas recombinantes de L. lactis. Lactococcus lactis transformado exhibe las proteínas FnbpA así como ClfA en la superficie de la membrana celular, como puede ser apreciado en la micrografía de fluorescencia. El testigo incubado con los mismos productos que para el lactococcus transformado, no muestra fluorescencia por carecer del sitio antigénico de reconocimiento de los anticuerpos fluorescentes. © 2010 CyTA Labs S.A. de C.V. 5/10 L. Lactis transformado con proteí proteínas fnfn-cl. Note el reconocimiento del antí antígeno en la superficie L. Lactis sin transformar. La reacció reacción de fluorescencia está está ausente por carecer de los antí antígenos La bacterina contiene pared celular completa de Lactococcus trasformado y toxoide contra la proteína B de S aureus obtenidos de casos con mastitis aguda por S aureus. Esta característica especial puede ser construida con aislamientos de su propio hato, lo que implica el inducir anticuerpos contra los determinantes antigénicos de superficie de pared de los estafilococos que circulan en su hato. La inmunización requiere de dos aplicaciones de 2 ml por la vía intramuscular espaciadas una de otra por 30 días a terneras después de 3 meses de edad. En forma posterior y por la memoria inmunológica, solo requerirá cada bovino de un refuerzo cada 6-9 meses. APLICACIÓN DE POMADAS CON ANTIMICROBIANOS PARA ERRADICACIÓN DE S AUREUS DE LA NARIZ. En el humano se ha ensayado el tratamiento de la nariz con pomada que contiene muporocin como antibiótico. El resultado es positivo logrando el 100% de eliminación de portadores de S aureus en la nariz. En estudios de seguimiento en algunos de los pacientes tratados con éxito, la recolonización con cepas diferentes se llevo al cabo. Por lo anterior es necesario el establecer tratamiento periódico, con alternancia de antimicrobianos para combatir el estado de resistencia por S aureus. © 2010 CyTA Labs S.A. de C.V. 6/10 CONCLUSIONES S aureus es una bacteria que tiene nichos de persistencia en los mamíferos, como la nariz, la piel y la glándula mamaria. La persistencia se obtiene por la capacidad invasiva de S.aureus a células epiteliales no fagocíticas como el endotelio vascular, fibroblastos, células glandulares. S aureus permanece en nichos como el epitelio queratinizado de la nariz sin agredir al huésped de donde se desprende junto con las células de descamación e infecta otros ambientes. S aureus tiene mecanismos de virulencia que frecuentemente vence a los de defensa del huésped, estableciendo el estado de infección, cronicidad y persistencia. Como otras bacterias, S aureus muestra multi resistencia a los antimicrobianos. Se sugiere el examen microbiológico de las narinas y establecer tratamiento antimicrobiano en esa región para erradicar el principal nicho de persistencia de S aureus. Se sugiere la inmuno protección de las terneras desde los tres meses de edad para contrarrestar los mecanismos de adhesión de S aureus a las células, mediante bacterina que genera inmunoglobulinas anti adhesinas Fn y Cl de S aureus (Staph PM+tres·CyTA Labs) La bacterina contiene pared celular completa de Lactococcus trasformado y toxoide contra la proteína B de S aureus. La inmunización requiere de dos aplicaciones de 2 ml por la vía intramuscular espaciadas una de otra por 30 días a terneras después de 3 meses de edad. Referencias Aly, R., and S. Levit. 1987. Adherence of Staphylococcus aureus to squamous epithelium: role of fibronectin and teichoic acid. Rev. Infect. Dis. 9:341–350. Aly, R., H. I. Maibach, H. R. Shinefield, and A. Mandel. 1974. S. aureus carriage in twins. Am. J. Dis. Child 127:486–488. Aly, R., H. R. Shinefield, and H. I. Maibach. 1981. Staphylococcus aureus adherence to nasal epithelial cells: studies of some parameters, p. 171–179. In H. I. Maibach and R. Aly (ed.), Skin microbiology. Springer-Verlag, New York, N.Y. Aly, R., H. R. Shinefield, C. Litz, and H. I. Maibach. 1980. Role of teichoic acid in the binding of Staphylococcus aureus to nasal epithelial cells. J. Infect. Dis. 141:463–465. Aly, R., H. R. Shinefield, W. G. Strauss, and H. I. Maibach. 1977. Bacterial adherence to nasal mucosal cells. Infect. Immun. 17:546–549. © 2010 CyTA Labs S.A. de C.V. 7/10 Armstrong-Esther, C. A., and J. E. Smith. 1976. Carriage patterns of Staphylococcus aureus in a healthy non-hospital population of adults and children. Ann. Hum. Biol. 3:221–227. Biesbrock, A. R., M. S. Reddy, and M. J. Levine. 1991. Interaction of a salivary mucin secretory immunoglobulin A complex with mucosal pathogens. Infect. Immun. 59:3492–3497. Blair, E. B., and A. H. Tull. 1969. Multiple infections among newborns resulting from colonization with S. aureus 502A. Am. J. Clin. Pathol. 52: 42–49. Blumberg, E. A., V. B. Hatcher, and F. D. Lowy. 1988. Acidic fibroblast growth factor modulates Staphylococcus aureus adherence to human endothelial cells. Infect. Immun. 56:1470–1474. Carruthers, M. M., and W. J. Kabat. 1983. Mediation of staphylococcal adherence to mucosal cells by lipoteichoic acid. Infect. Immun. 40:444–446. Cree, R. G. A., P. Aleljung, M. Paulsson, W. Witte, W. C. Noble, A. Ljungh, and T. Wadstrom. 1994. Cell surface hydrophobicity and adherence to extra-cellular matrix proteins in two collections of methicillin resistant S. aureus. Epidemiol. Infect. 122:307–314. Dancer, S. J., and W. C. Noble. 1991. Nasal, axillary, and perineal carriage of S. aureus among women: identification of strains producing epidermolytic toxin. J. Clin. Pathol. 44:681–684. E. Vautor, G. Abadie, J.-M. Guibert, N. Chevalier and M. Pépin. 2004. Nasal carriage of Staphylococcus aureus in dairy sheep. Ehrenkranz, N. J. 1964. Person-to-person transmission of S. aureus: quantitative characterization of nasal carriers spreading infection. N. Engl. J. Med. 271:225–230. Espersen, F., and I. Clemmensen. 1982. Isolation of a fibronectin-binding protein from S. aureus. Infect. Immun. 37:526–531. Fainstein, V., D. M. Musher, and T. R. Cate. 1980. Bacterial adherence to pharyngeal cells during viral infection. J. Infect. Dis. 141:172–176. Foster, T.J. McDevitt D.1994. Surface associated proteins of S aureus; their possible role in virulence FEMS Microbiol Let. 118: 199-206. Frost, A. J., D. D. Wanasinghe, and J. B. Woolcock. 1977. Some factors affecting selective adherence of microorganisms in the bovine mammary gland. Infect. Immun. 15:245–253. Haagen, I. A., C. H. Heezius, R. P. Verkooyen, J. Verhoef, and H. A. Verbrugh. 1990. Adherence of peritonitis-causing staphylococci to human peritoneal mesothelial cell monolayers. J. Infect. Dis. © 2010 CyTA Labs S.A. de C.V. 8/10 161:266–273. Imundo, L., J. Barasch, A. Prince, and Q. Al-Awqati. 1995. Cystic fibrosis epithelial cells have a receptor for pathogenic bacteria on their apical surface. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92:3019–3023. Jacobs, S. I., G. M. Williamson, and A. T. Willis. 1961. Nasal abnormality and the carrier rate of S. aureus. J. Clin. Pathol. 14:519–521. Jacobson M.A., Gellerman H., Chambers H.: 1988. S aureus bacteriemia and recurrent staphylococcal infection in patients with AIDS and AIDS relates complex. Am J Med 85: 172-175. Jarraud S, Mougel C, Thioulouse J, et al. Relationships between Staphylococcus aureus genetic background, virulence factors, agr groups (alleles), and human disease. Infect Immun 2002; 70:63141. Kluytmans J, van Belkum A, Verbrugh H. Nasal carriage of Staphylococcus aureus: epidemiology, underlying mechanisms, and associated risks. Clin Microbiol Rev 1997; 10:50520. Kluytmans, J. A. J. W. 1996. Nasal carriage of S. aureus: the key to preventing staphylococcal disease. Ph.D. thesis. Erasmus University Rotterdam, Rotterdam. The Netherlands. Krivan, H. C., D. D. Roberts, and V. Ginsburg. 1988. Many pulmonary pathogenic bacteria bind specifically to the carbohydrate sequence Nac beta 1-4 Gal found in some glycolipids. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85:6157– 6161. Mamo, W., and G. Fröman. 1994. Adhesion of S. aureus to bovine mammary epithelial cells induced by growth in milk whey. Microbiol. Immunol. 38:305–308. Martin, R. R., V. Buttram, P. Besch, J. J. Kirkland, and G. P. Petty. 1982. Nasal and vaginal S. aureus in young women: quantitative studies. Ann. Intern. Med. 96:951–953. Maslow JN, Brecher S, Gunn J, Durbin A, Barlow MA, Arbeit RD. Variation and persistence of methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains among individual patients over extended periods of time. Euro J Clin Microbiol Infect Dis 1995; 14:28290. McKeown-Longo, P. J. 1987. Fibronectin-cell surface interactions. Rev. Infect. Dis. 9 (Supple. 4):S322. McNeely, T. B., and J. D. Coonrod. 1992. Comparison of the opsonic activity of human surfactant protein A for Staphylococcus aureus and Streptococcus pneumoniae with rabbit and human macrophages. J. Infect. Dis. 167:91–97. © 2010 CyTA Labs S.A. de C.V. 9/10 Miller M, Cespedes C, Vavagiakis P, Klein RS, Lowy FD. Staphylococcus aureus colonization in a community sample of HIV-infected and HIV-uninfected drug users. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2003; 22:4639. Schoenbaum EE, Hartel D, Selwyn PA, et al. Risk factors for human immunodeficiency virus infection in intravenous drug users. N Engl J Med 1989; 321:8749. Selva L., Viana D., Penadés J.R., Corpa J.M. Staphylococcus aureus nasal carriage in rabbits. Pathology and Hygiene 2008. 1079-1083 World Rabbit Congress, June 10-13 Verona Italy. Shuter J., Hatcher V.B., Lowy F. D. 1996 Staphylococcus aureus binding to human nasal mucin. Infec. Immun. 64: 310-318 VandenBergh MF, Yzerman EP, van Belkum A, Boelens HA, Sijmons M, Verbrugh HA. Followup of Staphylococcus aureus nasal carriage after 8 years: redefining the persistent carrier state. J Clin Microbiol 1999; 37:313340. © 2010 CyTA Labs S.A. de C.V. 10/10