IA-MBA-PT-020 Detección y enumeración de Escherichia

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Detección y enumeración de Escherichia coli y
coliformes en agua
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1. Objetivo
Disponer de un método para realizar la detección de Escherichia coli y coliformes en agua.
2. Alcance
Para aplicar en muestras de agua potable.
3. Responsabilidad y autoridad
Jefe de Sección: debe velar por el cumplimiento de las normas establecidas en este procedimiento.
Analista: deben realizar las actividades descritas en este procedimiento.
4. Definiciones
Bacteria lactosa positiva: bacteria aerobia capaz de crecer a 36 °C en 24 horas y formar colonias en un
agar selectivo y diferencial que contiene lactosa y producir ácido.
Bacteria coliforme: bacteria lactosa positiva, oxidasa negativa
Escherichia coli: bacteria coliforme que produce indol a partir del triptofano a una temperatura de 44 °C en
24 horas.
5. Abreviaturas y/o Siglas
No aplica
6. Referencias y/o Bibliografía
IA-MBA-PE-009-RE- 008 Hoja de trabajo
SEG-PE-005 Control de medios
IA-MBA-PO-004 Control de Equipo.
ISO 9308-1 Calidad del agua: detección y enumeración de Escherichia coli y bacterias coliformes (Edición
2000)
Normativo Propiedad del SENASA, el documento vigente se encuentra en INTERNET cualquier versión impresa es una copia no
controlada
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7. Descripción del procedimiento
7.1 Fundamento Teórico
Filtración de un volumen específico de agua a través de una membrana con un tamaño de poro de 0,45
μm que permite retener las bacterias.
La membrana es colocada en un agar selectivo y diferencial que contiene Tergitol 7, esta sustancia impide
el crecimiento de bacterias Gram positivas. El medio contiene también lactosa, TTC y azul de bromotimol
como indicador de pH. Los coliformes fermentan la lactosa y esto se evidencia por un cambio de color del
indicador de pH; además el TTC es reducido a un complejo insoluble rojo formazán por la mayoría de
coliformes excepto E.coli
7.2 Equipo, Materiales, Medios de cultivo y reactivos
7.2.1 Equipo
Incubador 36 ºC ± 2 °C
Incubador 44 ºC ± 0,5 °C
Sistema para filtración de agua (Embudos, bomba para vacío, soporte para embudos)
7.2.2 Materiales
Pinzas estériles
Membranas Millipore 0,45 µm estériles
Aplicadores de madera
Papel filtro
7.2.3 Medios de cultivo y reactivos
Agar Tergitol 7 (agar lactosa TTC con heptadecisulfato de sodio )
Caldo Triptofano
Agar Triptona de soya
Reactivo de Kovacs
Reactivo de oxidasa
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7.2.4 Cepas control
Escherichia coli
7.3 Procedimiento
7.3.1 Colocar la membrana Millipore en el embudo de filtración, utilizar pinzas estériles.
7.3.2 Sellar el embudo
7.3.3 Depositar 100 ml de agua en el embudo y filtrar por vacío.
7.3.4 Remover la membrana con pinzas estériles y colocarla en placa de agar Tergitol 7
7.3.5 Incubar la placa a 36 °C ± 2 °C por 21 h ± 3 horas
7.3.6 Después del período de incubación examinar la placa y considerar las colonias amarillas, como
colonias típicas
7.3.7 Si se observan colonias típicas, inocular una placa de agar triptona de soya y un tubo de 3 ml de
caldo triptófano , incubar a 36 °C ± 2 °C por 21 h ± 2 horas y 44 °C ± 0,5 °C por 21 h ± 3 horas
respectivamente.
Prueba Oxidasa
7.3.8 Colocar de 2 a 3 gotas o disco reactivo de oxidasa en un papel filtro , con un aplicador de madera
transferir una colonia del agar triptona de soya al papel filtro.
7.3.9 Esperar 30 segundos y observar la aparición de un color azul-morado, esto se considera como
reacción positiva.
Prueba de indol
7.3.10 Agregar de 0,2 ml a 0,3 ml de reactivo de Kovacs al tubo de caldo triptófano.
7.3.11 Si se observa el desarrollo de un color rojo en la superficie del caldo indica la presencia de indol.
7.4 Reporte de resultados
7.4.1
Contar todas las colonias que dan una reacción oxidasa negativa como bacterias coliformes
7.4.2
Contar todas las colonias que dan una reacción oxidasa negativa y producción de indol como
Escherichia coli.
7.4.3
Registrar los resultados en el formulario IA-MBA-PE-009-RE-008 Hoja de trabajo
7.4.4
Reportar el n° colonias confirmadas como E.coli en 100 ml
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7.5 Control de Calidad
7.5.1
Se deben como control positivo una cepa de E.coli.
7.5.2
La concentración del inóculo del control positivo debe estar aproximadamente entre 30 a 100 ufc
para 100 ml.
7.5.3
El control de calidad de los medios de cultivo utilizados se debe llevar a cabo de acuerdo al
procedimiento SEG-PE-005 Control de medios.
7.6 Puntos Críticos de Control
Control de temperaturas de los incubadores, se debe mantener el registro de la temperatura óptima de
cada equipo, así como las medidas correctivas en caso de alguna variable según IA-MBA-PO-004
Control de Equipo.
8. Anexos
No aplica
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