Glyfos y Glyfos Ultra

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GLIFOSATO - MANUAL TECNICO
GLIFOSATO
Herbicida no selectivo de Cheminova
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Contenido
Antecedentes ............................................................................................................................ 4
Propiedades Físicas y Químicas................................................................................................. 5
Perfil toxicológico y ecotoxicológico .......................................................................................... 5
Comportamiento ambiental ....................................................................................................... 7
Modo de acción ......................................................................................................................... 7
Absorción y traslocación............................................................................................................ 9
Absorción vía cutícula ............................................................................................................ 9
Factores ambientales y de la planta que afectan a la absorción y traslocación ................... 11
Humedad ambiental y del suelo....................................................................................... 11
Temperatura .................................................................................................................... 12
Efecto del estado de desarrollo........................................................................................ 12
Uso de mojantes................................................................................................................. 13
Calidad del agua de pulverización ....................................................................................... 13
Sulfato amónico ............................................................................................................... 13
Manganeso. Interferencias............................................................................................... 14
Uso de Glifosato ...................................................................................................................... 14
uso de dosis reducidas de glifosato......................................................................................... 14
Resistencia a Glifosato ............................................................................................................ 15
Mecanismos de resistencia .................................................................................................. 15
Desarrollo de resistencia a Glifosato................................................................................... 16
Apéndice 1: Resistencia de adventicias a Glifosato ...................................................... 17
Cola de caballo (Conyza canadensis)................................................................................... 17
Eleusine indica ..................................................................................................................... 17
Ray-gras (Lolium multiflorum)............................................................................................. 17
Vallico (Lolium rigidum)....................................................................................................... 18
Llantén menor (Plantago lanceolata)................................................................................... 18
Conyza bonariensis .............................................................................................................. 18
Amaranthus palmeri ............................................................................................................ 18
Ambrosia artemisiifolia ........................................................................................................ 18
Apéndice 2: Biología y control de malas hierbas perennes ......................................... 19
Elymus repens ..................................................................................................................... 19
Descripción ...................................................................................................................... 19
Distribución ...................................................................................................................... 19
Daños............................................................................................................................... 19
Opciones de control ......................................................................................................... 20
Cardo (Cirsium arvense) ...................................................................................................... 22
Descripción ...................................................................................................................... 22
Distribución ...................................................................................................................... 22
Daños............................................................................................................................... 22
Opciones de control ......................................................................................................... 23
Acedera (Rumex sp) ............................................................................................................ 24
Descripción ...................................................................................................................... 24
Distribución ...................................................................................................................... 25
Daños............................................................................................................................... 25
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Opciones de control ......................................................................................................... 25
Fallopia japonica .................................................................................................................. 25
Descripción ...................................................................................................................... 25
Distribución ...................................................................................................................... 26
Daños............................................................................................................................... 26
Opciones de control ......................................................................................................... 26
Apéndice 3: CULTIVOS RESISTENTES A GLIFOSATO.................................................... 28
Soja (Glycine max) .............................................................................................................. 28
Algodón (Gossypium hirsutum) ........................................................................................... 28
Maíz (Zea mays) .................................................................................................................. 29
Colza (Brassica napus)......................................................................................................... 30
BIBLIOGRAFÍA e información adicional.......................................................................... 31
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ANTECEDENTES
Glifosato fue descrito como herbicida en1971, y actualmente es el herbicida más utilizado y conocido
del mundo. Se trata de un herbicida de amplio espectro, no selectivo y sistémico. Efectivo para matar
todo tipo de plantas, incluyendo gramíneas, perennes y leñosas. Glifosato es absorbido principalmente
a través de las hojas, pero también de tallos inmaduros o zonas verdes. Después de absorbido, es
transportado por toda la planta, actuando sobre varios sistemas enzimáticos inhibiendo el metabolismo
de varios aminoácidos en lo que es conocido como la ruta del ácido shikímico. Esta ruta existe en
plantas superiores y microorganismos pero no en animales. Las plantas tratadas con Glifosato mueren
lentamente en los días o semanas siguientes y gracias al movimiento sistémico la muerte alcanza a
todas las partes de la planta.
El Glifosato – Ácido Fosfonometiliminodiacético- es aminado dando lugar a varias sales diferentes de
Glifosato, siendo las más habituales las que siguen: Isopropilamina, Amónica, Potásica y Sódica.
Actualmente existe una amplia gama de formulaciones comercializadas en todo el mundo, basadas en
las sales antes citadas, siendo la marca más conocida RoundUp de Monsanto. In 1987, Cheminova
decidió producir Glifosato y desarrolló un proceso propio para producirlo, generando en paralelo la
documentación necesaria para registrarlo. La comercialización comenzó 6 años después con el
lanzamiento de Glyfos®, marca principal de la formulación 360 g/L SL basada en la sal
isopropilamina. Desde entonces Glyfos® ha sido introducido en más de 50 países y sigue siendo uno
de los productos de Cheminova más vendidos. Posteriormente Cheminova ha desarrollado otras
formulaciones, basadas en una nueva técnica (Envision Technology®) con concentraciones variables
(360g/L SL y a 450g/L SL) con un perfil medioambiental más favorable y otras (680g/kg gránulos
comercializada en algunos países como Glyfos® Dakar y Glyfos® Supreme, también con 450g/L SL).
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PROPIEDADES FÍSICAS Y QUÍMICAS
Nombre común:
Glifosato
Denominación química:
N-(fosfonometil)glycina
CAS No.:
Glifosato [1071-83-6]
Fórmula empírica:
C3H8NO5P Glifosato
Estado físico:
Sólido cristalino
Color:
Blanco
Densidad a 20°C:
1.705 g/cc
Punto de descomposición:
~ 235 ºC
Punto de fusión:
189.5 ºC
Presión de vapor:
1.31 x 10-5 Pa a 25°C
Ingrediente activo puro
En agua a 20°C (pH 2):
10.5 ±0.2 g/L
En disolventes orgánicos a 20°C:
Solubilidad:
Acetona:
0.078 g/L
Diclorometano
0.233 g/L
Etilacetato
0.012 g/L
Tolueno
0.036 g/L
Hexano
0.026 g/L
Metanol
0.231 g/L
n-octanol
0.020 g/L
Propam-2-ol
0.020 g/L
PERFIL TOXICOLÓGICO Y ECOTOXICOLÓGICO
La toxicología de Glifosato, tanto de la material activa como de sus formulados ha sido investigada
profundamente a lo largo de 30 años. Tanto la materia activa como sus metabolitos se consideran
generalmente productos de toxicidad baja, tanto aguda como crónica, para humanos.
Esta baja toxicidad de Glifosato se puede explicar por su modo de acción. Realiza su actividad
herbicida inhibiendo la formación de aminoácido aromáticos en las plantas, en una vía metabólica que
se encuentra en las plantas y algunas algas, pero nunca en vertebrados.
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Toxicidad aguda
Toxicidad crónica y subcrónica
Mutagenicidad
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Species
Test
Result
Rata (M,H)
Oral
LD50: >5000 mg/kg pv
Rata (M,H)
Dermal
LD50 >2000 mg/kg pv
Rata (M,H)
Inhalation (4h)
LC50: >5 mg/L aire
Conejo (M,H)
Irritación ocular
Irritante
Rata/Conejo
Irritación cutánea
No irritante
Rata (M,H)
Oral 90 días
150 (NOAEL)
Rata (M,H)
Dermal 21 días
>1000 (NOAEL)
Glifosato no es mutagénico. No hay evidencia de mutagenicidad en la batería de
ensayos en vivo y en vitro realizados. ("Ames test", "In vitro moUso lymphoma cell
test" y "in vivo moUso micronucleus test").
Especies
Test
Resultado
Mamíferos
Toxicidad aguda
LD50: > 2000 mg/kg pv
Aves
Toxicidad aguda
LD50: > 2000 mg/kg pv
Aves
Toxicidad alimentaria
LC50: > 4640 ppm
Aves
Toxicidad reproductiva
200 ppm (NOEC)
Mamíferos
Toxicidad oral (90 días)
150 mg/kg pv/day
(NOAEL/NOEL)
Peces
Toxicidad aguda
EC50: > 1000 mg/L
Peces
Toxicidad a largo plazo
917 mg/L (NOEC)
Invertebrados
Toxicidad crónica
455 mg/L (NOEC)
Algas
Toxicidad crónica
EC50: 72.9 mg/L
Plantas acuáticas
Toxicidad a largo plazo
EC50: 53.6 mg/L
Toxicidad oral aguda
LD50: 100 µg as/abeja
Toxicidad aguda por
contacto
LD50: > 100 µg as/abeja
Vertebrados terrestres
Perfil ecotoxicológico
Organismos acuáticos
Abejas
Los perfiles toxicológico y ecotoxicológico de las tablas anteriores, se refieren a la materia activa. Los
datos sobre las diferentes formulaciones está disponible en la información técnica y folletos de las
mismas.
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COMPORTAMIENTO AMBIENTAL
Una vez aplicado, el Glifosato está sometido a diferentes fuerzas que producen la inactivación y la
degradación de la molécula. Cuando entra en contacto con las partículas del suelo queda adsorbido a
ellas, pertiendo su capacidad fitotóxica. Por eso se pueden plantar o sembrar cultivos muy poco
después de realizada la aplicación. El grado de unión a las partículas del suelo depende de su
contenido en arcillas y materia orgánica. Por eso se adsorbe mucho más en suelos arcillosos que en
arenosos, pero en realidad el factor más relevante es la capacidad de adsorción de Fosfatos mucho
más que la capacidad de adsorción total. Como el fosfato,el Glifosato se liga a cationes previamente
adsorbidos por el suelo, formando un complejo adsorbente-catión-Glifosato, razón por lo que la
presencia de cationes de Calcio, Magnesio o Manganeso aumentan la adsorción de Glifosato.
La degradación del Glifosato en el suelo es principalmente microbiana, degradándose a CO2. La tasa
de degradación está correlacionada con el asa de respiración del suelo, indicador a su vez de la
actividad microbiana. Ésta varía considerablemente entre diferentes suelos, dependiendo de muchos
factores asociados a la composición de los suelos. La vida media de Glifosato varía mucho, desde
menos de dos semanas a periodos mucho más prolongados, dependiendo mucho de la adsorción y la
actividad microbiana. Habitualmente hay una fuerte degradación inicial, seguida por una
descomposición mucho más lenta posterior. Se supone que la degradación más fuerte corresponde al
Glifosato menos fuertemente adsorbido, mientras que la actividad microbiana sobre el fuertemente
adsorbido es mucho más dificultosa, dejando restos que pueden llegar a años, pero en situación
completamente inactiva.
El primer metabolito de Glifosato es el ácido aminometilfosfónico (AMPA). La degradación del AMPA es
habitualmente más lenta que la de Glifosato, probablemente porque su adsorción a las partículas del
suelo es más fuerte que el Glifosato.
Esta gran afinidad del Glifosato y del AMPA para ligarse a las partículas del suelo, da como resultado
una movilidad muy baja en el mismo. El producto apenas se lixivia desde el suelo. (Vereecken, 2005).
MODO DE ACCIÓN
Glifosato es un herbicida de amplio espectro, sistémico y no selectivo, que básicamente inhibe la ruta
del ácido shikímico en las plantas. Esta ruta es el primer paso en la síntesis de los aminoácidos
aromáticos en las plantas. Esencial para esta síntesis es el enzima 5-enolpiruvilshikimato-3-fostato
sintetasa (EPSPS). Este enzimaúnicamente está presente en las plantas y algunas bacterias, lo que le
convierte en un excelente objetivo de la acción del Glifosato.
Glifosato es un competidor por los mismos sitios que el enzima, bloqueando de esa forma la biosíntesis
de los aminoácidos aromáticos y algunos otros, esenciales todos ellos para la vida de la planta.
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Skimate sintetasa (EPSPS)
Sintesis aminoácidos
Skimate sintetasa (EPSPS)
Glifosato
Sintesis aminoácidos aromáticos inhibida
Figura 1. Glifosato se liga al enzima skimate sintetasa (EPSPS) y bloquea la biosíntesis de los
aminoácidos aromáticos.
Cuadro 1. Inhibición de EPSPS sintetasa por Glifosato
La mayor parte de los aminoácidos se sintetizan a través de la ruta del ácido shikímico. Esta ruta liga el
metabolismo de los hidratos de Carbono a la biosíntesis de un número considerable de compuestos
aromáticos en las plantas. En una secuencia de siete reacciones enzimáticas, la D-eritrosa 4-fosfato
(E4P) es transformado en shikimato y corismato y posteriormente en los aminoácidos Ttiptófano, Tirosina
y Fenilalanina. Uno de los siete enzimas es el 5- enolpiruvilshikimato-3-fostato sintetasa (EPSPS), que
es el punto objetivo del Glifosato en la planta.
A pesar de que Glifosato es un inhibidor no-fotosintético per se, hay evidencias empíricas basadas en
cambios observados en clorofila fluorescente en el Fotosistema II (PSII), que indican que Glifosato
afecta el sisema fotosintético de las plantas. Al inhibir el enzima EPSPS hay un desvío de Carbono del
ciclo de Calvin a la ruta del ácido shikímico. Este desvío reduce la fotosíntesis, que se hace visible unos
días después de la aplicación.
Glifosato inhibe, además, la síntesis del compuesto aromático plastoquinona (PQ), uno de los
componentes del protector transporte cíclico de electrones en el Fotosistema I (PSI) de las plantas. El
transporte cíclico de electrones es un mecanismo protector que puede ponerse en marcha como
respuesta al estrés fotoinhibidor producido por la actividad del Glifosato.
Queda claro, pues, que la actividad del Glifosato es bastante compleja, y que incluye la inhibición de la
síntesis de aminoácidos, la fotoinhibición del sistema fotosintético y la interrupción consecuente de
procesos protectores vitales. Todo ello contribuye a que la presencia de Glifosato sea una catástrofe
vital para la planta, y sea por ello un excelente herbicida, sin efectos en otros organismos.
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Glucosa
Glifosato
Aminoácidos
aromáticos
EPSPS
E4P
F6P
R5P
H2O
PSII
PQ
Rub
CO2
PSI
Membrana
tilacoide
ABSORCIÓN Y TRASLOCACIÓN
Glifosato es un herbicida sistémico de postemergencia que entra normalmente a través de las hojas y
tallos verdes. No se considera la raíz como vía de entrada al producirse la inactivación del producto en
el suelo por adsorción y formación de complejos iones metálicos del suelo que impide su absorción por
la planta. Además las raíces tienen una capacidad bastante limitada para absorber Glifosato. La
penetración comienza inmediatamente, en cuanto las gotas de pulverización son depositadas sobre la
superficie foliar. En pulverización normal el agua es el medio de soporte, mientras que eñn los casos
de aplicaciones ULV puede serlo el aceite.
Absorción vía cutícula
El movimiento a través de la cutícula se produce mayoritariamente por difusión, y
considera el gradiente de concentración como un elemento determinante de
penetración. Al evaporarse parte del disolvente de las gotitas de pulverización,
aumenta, por lo que se acelera la penetración. También influyen otros factores
composición química de la cutícula, su grosor y forma contribuyen a crear diferencias
por esa razón se
la velocidad de
la concentración
entre los que la
entre plantas.
Glifosato penetra en la cutícula a través de la ruta hidrofílica. Podríamos considerar la cutícula como
una esponja en la que la cutina es el material de la esponja y los poros están rellenos de cera. Ésta se
expande en situaciones de humedad y crea grietas y poros a través de los que penetra el caldo de
pulverización. Como la cutina necesita agua para hincharse, esta ruta hidrofílica depende mucho de las
condiciones de humedad. En condiciones de sequía la cutícula se mantiene compacta, mientras que
con humedad suficiente la ruta se abre al paso del agua y también del Glifosato. Además en
condiciones de humedad ambiental las gotas de pulverización tardan más en secarse y por lo tanto la
interacción entre gotas y cutícula es más prolongada.
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Cutícula
Parénquima en
empalizada
Mesofilo esponjoso
(Tejido interior)
Epidermis superior (haz)
(tejido dérmico)
Xilema y Floema
(Tejidos vasculares)
Epidermis inferior
(tejido dérmico)
Figura . Sección foliar tridimensional con las dos capas superficiales (Cutícula y epidermis)
Transporte de la epidermis al floema
La penetración de Glifosato a través de la cutícula es rápida, mientras que la penetración posterior en
los tejidos interiores (células del mesofilo), por difusión pasiva, es más lenta. El movimiento
simplástico del Glifosato se produce por traslocación célula a célula vía plasmodesmata, los puentes
que unen la mayoría de las células. Aunque el movimiento de Glifosato es preferentemente
simplástico, hay suficiente movimiento apoplástico como para considerar al producto de sistemia en
ambos sentidos, o sistemia completa. Además la ruta apoplástica en la pared de células adyacentes es
importante, hasta el punto de que gran parte del Glifosato alcanza el floema a través de esa ruta
apoplástica.
Entrada al Floema
Glifosato penetra en el floema mezclado con productos de la fotosíntesis de las células mesofílicas. El
producto se distribuye en el floema siguiendo un patrón similar a estos “fotoasimilados”. El sentido de
transporte es desde los lugares de producción de azúcares a los puntos de crecimiento de la planta,
como meristemos, hojas en desarrollo, raíces o frutos. La velocidad de paso al floema depende de la
tasa de fotosíntesis. Por eso se conseguirá un trransporte óptimo de Glifosato no alterando la
producción fotosintética en el mesofilo. Cuando se aplican inhibidores de la fotosóintesis antes o al
mismo tiempo que Glifosato, el transporte del mismo se reduce considerablemente.
El transporte en las membranas celulares debe tener una velocidad similar a la de traslocación en el
floema. De esa forma se evita una concentración de Glifosato que sea tóxica para las células
mesofílicas, que rompería el tránsito de productos de síntesis al floema. Para optimizar la situación, la
planta debe estar en condiciones óptimas de crecimiento, sin estrés hídrico ni excesiva humedad.
Como se ve, es importante que Glifosato no dañe inicialmente las membranas celulares, dado que el
tránsito a través de ellas es necesario para alcanzar el floema y distribuirse por la planta. Los
aumentos en la tasa de absorción se traducen generalmente en aumentos consiguientes de
traslocación del herbicida desde las hojas al resto de la planta. (revisado por Caseley y Coupland
1985).
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0 horas: Se aplican 2 mcg de
Glifosato se mueve rápidamente en la
Glifosato en una hoja.
planta de forma ascendente.
48 horas: Glifosato se reparte por
toda la planta y comienza la
destrucción de la misma
Figura 4. Absorción y traslocación de Glifosato después de la aplicación
Factores ambientales y de la planta que afectan a la absorción y traslocación
El éxito en el control de las malas hierbas, depende de la absorción y traslocación del herbicida, que a
su vez depende de la interacción entre las características de la mala hierba, el caldo herbicida y las
condiciones ambientales.
Figura 5. Efecto de la humedad relativa en la absorción y traslocación de Glifosato-C14
(Wills G.D., 1978).
Humedad ambiental y del suelo
Siempre que sea factible, las aplicaciones de Glifosato deberían hacerse en condiciones humedas, p.ej.
por la mañana temprano. Las condiciones de humedad elevada incrementan claramente la absorción
foliar de Glifosato (figura 6). Además, con humedad relativa alta, el secado de las gotitas se retarda, la
hidratación de la cutícula aumenta y la interacción cutícula gota se prolonga. Se recomienda una
humedad relativa del 70% para obtener la máxima eficacia.
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Generalmente, la humedad elevada en el suelo, facilita también la absorción de Glifosato. En esas
condiciones de mayor humedad, la planta aumenta la fotosíntesis, la traslocacción de productos de la
fotosíntesis y en paralelo la traslocación del Glifosato. Por igual razón Glifosato es menos efectivo
cuando se aplica en condiciones de baja humedad, por la menor absorción y transporte, siendo
especialmente problemático cuando queremos destruir plantas con rizomas y otros elementos que
requieren un transporte muy activo hasta ellos.
Temperatura
Las condiciones de temperatura afectan al desarrollo de la planta, a su tamaño y aspecto e incluso a
detalles morfológicos como el desarrollo de la cutícula. También afecta la temperatura a la
transpiración, clave en la situación de hidratación de la planta y de la cutícula. En general la absorción
y traslocación d elos herbicidas de aplicación foliar aumenta con la temperatura hasta un determinado
nivel. Sin embargo en el caso de Glifosato parece que no se encuentra una correlación entre las
condiciones de temperatura y la absorción y traslocación. Hay algún estudio que demuestra máximo
efecto fitotóxico en Briza maxima, una gramínea, cuando se aplicaba después de producirse una
helada otoñal, porque la absorción y traslocación se hacía sin que el herbicida causara daño a las
plantas. Pero había que hacerlo en unas determinadas condiciones, nunca después de un periodo
continuo de frío (Davis et al. 1978, Davis y Fawcett 1978). Se vio también que heladas fuertes (por
debajo de -4ºC) conducen a menores eficacias, porque se dañan los tejidos vasculares (Floema y
xilema) y por lo tanto al distribución de Glifosato en la planta no se produce de forma adecuada.
(Devine y Bandeen 1983).
Efecto del estado de desarrollo
No parece haber una relación directa entre el estado de desarrollo de las plantas y la absorción y
traslocación de Glifosato. Hay factores tales como la retención de herbicida, relaciones fuentesumidero o condiciones ambientales que afectan al proceso. Sin embargo está establecido que en la
mayor parte de las perennes es necesario un desarrollo foliar grande para obtener un buen control con
Glifosato. En el caso, por ej, de Elymus repens, (Agropiron), la aplicación en estado de 4 hojas es
mucho más eficaz que cuando se hace con 3 ó 2.
Figura 6. Eficacia sobre el rebrote foliar y crecimiento del rizoma en Agropiron (Elymus repens)
después de una aplicación de Glifosato en diferentes estados de desarrollo.
Las plantas sin órganos perennes como rizomas o estolones se controlan mejor en estados de
desarrollo muy temprano, dado que es el momento en el que se concentran en los puntos de
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crecimiento de tallos y raíces. En plantas anuales, de hoja ancha o gramíneas, se ve una relación
directa entre el desarrollo y la dosis de Glifosato necesaria para controlarla, que aumenta con el
tiempo.
Uso de mojantes
La cantidad de Glifosato depositada sobre la hoja depende del ángulo de contacto entre las gotas de
pulverización y la superficie foliar, siendo más efectivo cuanto menor sea el ángulo. Este ángulo de
contacto viene determinado por las características hidrofóbicas de las ceras presentes en la superficie
de la cutícula. Cuando existe una capa gruesa de ceras en la superficie, el ángulo de contacto tiende a
ser grande y la deposición menor. Pero la deposición del herbicida esta condicionada también por la
tensión superficial de la gota de pulverización. Añadiendo un surfactante el ángulo de contacto se
reduce, aumentando la superficie de contacto con la hoja con las gotas de pulverización.
Figura 7. La adición de un surfactante reduce el ángulo de contacto y
aumenta por lo tanto el contacto entre la gota de pulverización y la hoja.
Al evaporarse el líquido aumenta la concentración de Glifosato, además de la tensión superficial y el
pH, y puede producirse cristalización del Glifosato, lo que impediría la absorción. Se puede prevenir la
cristalización del producto mediante los adyuvantes adecuados, que tienen efectos positivos sobre la
absorción, además de mantener al Glifosato disuelto. Es el papel que cumplen frecuentemente las
aminas grasas etoxiladas utilizadas frecuentemente en las formulaciones de Glifosato, que aumentan
claramente la retención y absorción de Glifosato.
Calidad del agua de pulverización
La presencia de iones en el agua de pulverización puede afectar la eficacia de Glifosato. Se considera
agua dura, cuando tiene presencia elevada de minerales como Calcio(Ca), Magnesio (Mg), Sodio (Na),
o Hierro (Fe). Estos minerales, con carga positiva, forman sales, que si están en concentración elevada
resultan antagonistas e interfieren la actividad de Glifosato. La carga positiva es atraída por la carga
negativa del Glifosato, formándose complejos sal-Glifosato que no penetran con facilidad en la planta a
través de la cutícula. La influencia de las sales antagonistas parece independiente del pH pero sí
parece más importante a concentraciones bajas de Glifosato. Se ha visto también que el efecto
antagonista se reduce al reducir el volumen de caldo utilizado, probablemente por la redución paralela
de cationes presentes al haber poco agua.
Sulfato amónico
El mencionado antagonismo causado por Calcio y otros iones presentes en el agua de pulverización
puede ser corregido con el uso de sulfato amónico (AMS) que forma una sal estable de Glifosato
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amónico y precipita el Calcio como sulfato cálcico. Además la adición de sulfato amónico altera la
morfología de la gota de pulverización y previene o retrasa la cristalización del Glifosato sobre la
superficie foliar, aumentando la capacidad de penetración de Glifosato a través de la cutícula.
También se pueden resolver los problemas del agua dura mediante la adición de más aminas grasas
etoxiladas cuando la concentración de iones Calcio no es muy alta (< 5 mM), frente a una mejor
corrección con sulfato amónico para concentraciones elevadas (unos 10 mM). (Blondel et al. 1999,
Gauvrit 2003).
Manganeso. Interferencias
Las mezclas en tanque de Glifosato y fertilizantes con Manganeso (Lignina deMn y quelato deMn) dan
lugar a una menor eficacia en el control de hierbas a causa de la formación de complejos de sales
insolubles que no se absorben con rapidez por la cutícula. En la mayoría de los casos se resuelve el
problema aumentando las dosis de herbicida, pero hay otras vías: La mejor es hacer aplicaciones
sepoaradas de Glifosato y fertilizantes con Manganeso, realizando la aplicación del fertilizante
previamente. Cuando no sea posible hacer la separación, se puede mejorar el resultando aplicando un
quelato Mn-EDTA (Mn-etilen-diamino-tetraacetato) que parece no tener influencia en la acción de
Glifosato (Bernards et al. 2005a, Bernards et al. 2005b).
USO DE GLIFOSATO
Glifosato se usa para controlar un gran número de malas hierbas, anuales, bianuales y perennes,;
gramíneas, de hoja ancha, juncos, etc; tanto en situaciones agrícolas como en no cultivo. En el caso
de cultivos leñosos, frutales, olivar, cítriocos, viñas, viveros, cafetos, coníferas, etc, se utiliza en una
parte del terreno, unas veces en la línea de plantación, y otras en las calles; en otras muchas, como
cereales, soja, maiz, etc, en presiembra, para preparar el lecho de siembra y evitar la competencia
temprana de las malas hierbas. En situaciones de no cultivo, bordes de cultivos, etc, el uso tiene por
objeto mantener limpio de hierba o reducir su presencia durante ciertos periodos. Incluso se utiliza
para regular el crecimiento o adelantar la cosecha en caña de azucar y en cacahuetes.
USO DE DOSIS REDUCIDAS DE GLIFOSATO
La reducción de la eficacia que se observa cuando se reduce la dosis de Glifosato se explicamuy bien
cuando vemos la curva de respuesto de una aplicación de Glifosato 36% a Agropyron repens en la
Figura 8. La figura recoge la respuesta en condiciones buenas, normales o malas para el control
específico de esta hierba. Aplicando el producto a 3 L/ha, la eficacia no merma si se hace en
condiciones buenas, baja algo en condiciones normales y cuando son malas el control baja del 50% y
es inaceptable. Hay que tener cuidado pues con aplicar la experiencia de reducir dosis obtenida en
unas coircunstancias a otras que son diferentes.
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Figura 8. Variada respuesta de dosis diferentes de Glifosato, según condiciones.
RESISTENCIA A GLIFOSATO
La resistencia a un herbicida es la “capacidad heredada” de unas determinadas plantas para sobrevivir
a una exposición a dosis normales que habitualmente causarían la muerte a una hierba de su misma
especie tipo “salvaje”, no modificada. Hay resistencia natural al Glifosato en algunas malas hierbas,
aunque no era un problema de gran importancia hasta el desarrollo de especies cultoivadas con
resistencia incorporada al Glifosato. Muchas especies con esta “resistencia natural” han ocupado
nichos que antes ocupaban hierbas sensibles, y el problema es especialemente importante en los
campos de cultivos resistentes a Glifosato. El término utilizado es “Inversión de flora”, y se da siempre
que un herbicida se utiliza de forma continuada en un mismo lugar. Pero además de la inversión de
flora propiamente dicha, se han producido biotipos resistentes de especies inicialmente sensibles
cuando se ha aplicado Glifosato de forma continuada en las zonas de cultivos resistentes.
Mecanismos de resistencia
El mecanismo por el que una planta resiste a un herbicida se basa generalmente en una reducción de
la absorción y traslocación a los puntos de acción, destoxificación rápida del herbicida o modificación
morfológica de los puntos de acción del herbicida. Las hierbas pueden ser resistente por un
mecanismo o varios de los mencionados. Sin embargo nohay una explicación totalmente satisfactoria
para todos los mecanismos deresistencia al Glifosato, a pesar de las múltiples investigaciones
realizadas. Esta dificultad existe, por ejemplo, en el caso de resistencia de vallico (Lolium rigidum). La
resistencia parece realcionada con el transporte de la materia activa, y algún experimento ha
demostrado que había una reducción de eficacia a causa de un transporte mucho más elevado hacia
las hojas, mientras que en los tipos sensibles se acumulaba en la raíz (Lorraine-Colwill et al. 2003). El
enzima EPSPS parece estar también involucrado en este fenómenop de resistencia. Se ha demostrado
que la actividad del EPSPS en vallico resistente era hasta tres veces más activo que en los biotipos
normales. (Baerson et al. 2002a). La resistencia en Agropiron (Eleusine indica) ha sido relacionada con
una mutación del lugar de acción en el enzima EPSPS (Baerson et al. 2002a). mientras que la
resistencia en Conyza parecía más relacionada con la traslocación. (Feng et al. 2004).
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Desarrollo de resistencia a Glifosato
Antes de la introducción de los cultivos modificados genéticamente, resistentes a Glifosato, el producto
se aplicaba habitualmente mezclado o alternado con otros herbicidas, lo que reducía la presión de
selección de hierbas resistentes. Es la situación en los países en los que estos cultivos tolerantes no
están autorizados. En tal situaci´n se ha considerado que Glifosato es un herbicida con bajo riesgo de
generar resistencia. La primera vez que se publicó una resistencia a Glifosato fue con Lolium rigidum
en 1996 en Australia (Powles et al. 1998), aproximadamente 20 años después de la introducción del
herbicida. Por el contrario, recientemente, en países con cultivos resistentes a Glifosato se ha
encontrado una evolución más rápida de ciertas hierbas de biotipos sensibles a resistentes a Glifosato.
En 2006 había ya 11 especies con resistencia reconocida según el organismo que está haciendo el
seguimiento de este importante problema. (The International Survey de Herbicida Resistant Weeds).
Se puede actualizar la información en la dirección:
www.weedscience.com
Manejo de la resistencia de las malas hierbas
Los principios a tener en cuenta para un manejo racional de las malas hierbas, son los de alternar
herbicidas con diferente modo de acción, Glifosato en mezcla con otros productos en los tratamientos
de presiembra y el uso cuando sea posible de otro herbicida en postemergencia para eliminar las
hierbas que hayan sobrevivido al tratamiento con Glifosato. Es además importante seguir la
recomendación de alternar cultivos y realizar, cuando proceda, las labores mecánicas que pueden
suponer un método alternativo. Es importante, cuando estén autorizados los cultivos tolerantes a
Glifosato, alternarlos con cultivares no tolerantes que requerirán del uso de herbicidas con
mecanismos de acción diferentes. Es muy importante seguir estas recomendaciones para evitar la
extensión generalizada de hierbas resistentes que inutilizaría el producto como herbicida.
Resumimos a continuación las recomendaciones para retrasar en lo posible la presencia de resistencias
en una explotación o zona:
•
Alternar Glifosato con otros herbicidas residuales o de distinto modo de acción cuando el
cultivo requiera más de una aplicación herbicida.
•
Rotar cultivos resistentes a Glifosato con otros que no lo sean y requieran del uso de otros
herbicidas o métodos de control de hierbas.
•
Evitar la utilización de dosis reducidas de Glifosato y otros herbicidas que permita sobrevivir a
los biotipos más tolerantes.
•
Evaluar cualquier situación que muestre una reducción de eficacia.
•
En el caso de cultivos resistentes, utilizar al principio un herbicida residual de preemergencia,
y mantener el Glifosato para el uso durante el desarrollo del cultivo.
Para información adicional sobre hierbas específicas, consultar Apéndice 1.
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APÉNDICE 1: RESISTENCIA DE ADVENTICIAS A GLIFOSATO
Cola de caballo (Conyza canadensis)
Se trata de una especie dicotiledonea anual nativa de Norte América. La resistencia a esta mala hierba fue
confirmada en Delaware en el año 2000 y, desde entonces, los biotipos resistentes a Glifosato han sido descritos
en varios estados norteamericanos incluyendo Tennessee donde las variedades resistentes afectaron a unas
80.000 ha de algodón y 80.000 ha de soja (Boerboom 2001, Koger y Reddy 2005). El biotipo resistente descrito
en Delaware ha evolucionado después de emplear Glifosato como único método de control durante 3 años en
cultivos de soja resistente a este herbicida. Así, dos aplicaciones de 1,6 kg ia/ha de Glifosato no fueron capaces
de controlar esta mala hierba, y las plántulas mostraron de 8 a 13 veces mayor resistencia en comparación con
los biotipos sensibles, independientemente de que el Glifosato fuera aplicado como isopropilamina o como sal
diamónica (Koger et al. 2004, Van Gessel 2001).
Eleusine indica
Se trata de una graminea anual que se encuentra entre las diez malas hierbas más preocupantes del mundo. En
Malasia es especialmente dañina en hortícolas y plantaciones de frutales. Los bajos precios de Glifosato han
estimulado el uso inapropiado de este herbicida por parte de muchos agricultores malasianos, que han
incrementado el empleo realizando aplicaciones más frecuentes y con dosis más altas. El primer biotipo
resistente a Glifosato, denominado “Teluk Intan”, fue identificado en 1997 en una parcela de árboles frutales en
Malasia. La resistencia de este biotipo evolucionó tras de un uso abusivo durante tres años de Glifosato,
mostrándose de 8 a 12 veces más resistente a Glifosato. Por otra parte, también se controló inadecuadamente
este biotipo, llegando a aplicar dosis superiores a 5,76 kg ia/ha (Lee y Ngim 2000).
Ray-gras (Lolium multiflorum)
Fueron agricultores chilenos los que, en 1999, vieron que Glifosato mostraba un control muy bajo sobre
poblaciones de ray-gras en parcelas de frutales. La resistencia evolucionó en una región donde el Glifosato había
sido aplicado un media de 3 veces al año, a dosis entre 1,08 y 1,44 kg ia/ha y durante los 8-10 años anteriores.
Esta resistencia fue medida evaluando por un lado la dosis necesaria para reducir la longitud de brotes
(experimento en placa petri) y, por otro, el peso fresco (ensayos de respuesta a dosis) al 50%. Los experimentos
en placa petri demostraron que los biotipos resistentes de ray-gras eran de 5 a 6 veces más resistentes a
Glifosato, mientras que en los ensayos de respuesta a dosis 2 de los biotipos eran de 2 a 4 veces más resistentes
(Perez y Kogan 2002). La resistencia a Glifosato en ray-gras ha sido también descrita en Brasil, donde el biotipo
resistente no mostró reducción de materia seca apicando Glifosato a 1,44 kg ia/ha (Roman et al. 2003).
Finalmente, esta resistencia ha sido también descrita en una parcela de avellanos en Oregon, dónde glifosato fue
aplicado varias veces al año durante 15 años. Este biotipo en concreto mostró ser 5 veces más resistente a
Glifosato que un biotipo considerado sensible (Perez-Jones et al. 2005).
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Vallico (Lolium rigidum)
Aunque el cultivo como pasto de Lolium está ampliamente extencido en muchas zonas del mundo, su presencia
en cultivos pues provocar drásticas reducciones de los rendimientos si no se controla adecuadamente. El primer
caso de resistencia a Glifosato fue descrita en 1996 en Australia, donde el Glifosato era aplicado reiteradamente
para el control en presiembra de malas hierbas (Pratley et al. 1996). En 1997, se encontraron biotipos de 7 a 11
veces más resistentes a Glifosato en parcelas en las que se había tratado durante los últimos 15 años con 2 ó 3
aplicaciones anuales (Powles et al. 1998). Biotiopos hasta 100 veces más resistentes han sido descritos en
poblaciones de vallico en California (Simarmata et al. 2001). Los datos experimentales sugieren que esta
resistencia a Glifosato puede estar debida a algún regulador del desarrollo. Así, en unas poblaciones sometidas a
repetidas aplicaciones de Glifosato durante 15 años, la resistencia relativa, es decir, la resistencia de un
determinado biotipo comparada con la de un biotipo considerado susceptible, se incrementó 7 veces en el
estadio de 2 hojas mientras que en el ahijado ésta se incremento hasta 12 veces (Pratley et al. 1999).
Llantén menor (Plantago lanceolata)
En una parcela de viñedo en Sudáfrica se observó un control bajo de Glifosato en el año 2003. La eficacia de
Glifosato fue baja incluso empleando dosis de 7,20 kg ia/ha (Cairns 2005a).
Conyza bonariensis
En el año 2003 en una parcela de frutales en Sudáfrica se vió un control bajo contra esta hierba, incluso cuando
se aplicó al doble de la dosis que recomendaba la etiqueta 2,16 kg ia/ha. (Cairns 2005b). En España, biotipos
resistentes fueron descritos en parcelas de olivo y cítricos en las que se empleaban técnicas de no laboreo y con
empleo tradicional de Glifosato. El factor de resitencia en este caso, basado en la determinación I50 (inhibición
del 50%), fue de más de 10 veces para la mayoría de biotipos resistentes (Urbano 2005).
Amaranthus palmeri
El primer caso de Resistencia fue descrito en Georgia (EEUU) en el año 2005, en una parcela de algodón
(Anonymous 2005).
Ambrosia artemisiifolia
La Resistencia fue descrita en soja resistente a Glifosato en el estado de Missouri (EEUU) en el año 2004
(Nandula et al. 2005).
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APÉNDICE 2: BIOLOGÍA Y CONTROL DE MALAS HIERBAS PERENNES
Elymus repens
Descripción
Elymus repens syn. Agropyron repens es una adventicia perenne con fuerte tendencia a emitir rizomas. Es una
de las más problemáticas en zonas de clima templado. El tallo es erecto, normalmente llega a ser de más de 1
metro de altura con las hojas de 4 a 30 cm de longitud y de 0,2 a 1,4 cm de ancho. Los rizomas son muy
numerosos y ramificados, en torno a los 3 mm de diámetro y raices fibrosas que llegan a extenderse
horizontalmente hasta un metro, formando una red a 10-20 cm por debajo de la superficie del suelo. Los rizomas
son muy punzantes y pueden llegar a penetrar incluso en los suelos más duros. Los fragmentos de cada rizoma
producen nuevas plantas.
Una planta puede extenderse 3 m al año y originar más de 200 nuevos brotes. Cada tallo normalmente produce
de 20-40 semillas, las cuales permanecen en estado de dormición de 2 a 3 años antes de germinar. La
germinación de estas semillas se produce tanto en otoño como en primavera, y requiere para su germinación
temperaturas alternas (de 15 a 25ºC de variación diaria). Para germinar requiren que el frío no se estratifique.
La temperatura óptima de crecimiento es de 20 a 25ºC, pero es capaz de soportar temperaturas de hasta -42 ºC
y requiere sólo 90 días libres de heladas para germinar. El crecimiento del rizoma es favorecido por las bajas
temperaturas (10 ºC) y los días largos (18 horas), encontrándo casos, en Inglaterra, donde los rizomas han sido
encontrados creciendo en pleno invierno.
Es común de gran variedad de suelos siendo más abundante en suelos sueltos, fértiles y húmedos. Tolera rangos
de pH de 5,2 a 7,8 y, aunque prefiere suelos alcalinos, también se desarrolla bien en suelos salinos. Es
ligeramente tolerante a condiciones sombrías de tal forma que cuando éstas son superiores al 50% disminuye su
vigor. Es cada vez más común de zonas húmedas, campos abandonados, zonas de drenaje y pastos y praderas.
Distribución
Crece en las areas caluroso húmedas del mundo. Es nativa de Eurasia (Europa templada y Asia Central) y fue
introducida en el norte de América a comienzos del Siglo XX. Ha sido descrito en todos los Estados de EEUU y en
Canadá y es considerada como una mala hierba nociva en 28 estados de EEUU, incluyendo Alaska y 5 provincias
canadienses. Además, se puede encontrar en Sudamérica (Argentina y Chile), Norte de Africa, Australis, Nueva
Zelanda e Indonesia.
Daños
Se trata de una mala hierba muy competitiva y dañina. No controlarla correctamente supone una reducción
sustancial de los rendimientos y la consiguiente contaminación originada por sus semillas reduce el valor de la
cosecha. Reduce también la disponibidad de humedad y limita el acceso a los nutrientes por parte del cultivo.
Esta adventicia se desarrolla muy bien al comienzo de la primavera, de tal forma que más tarde compite con
especies que tienen su óptimo de crecimiento con temperaturas más cálidas. Es alelopatica, produce fitotoxinas
que excretan de sus propios brotes y raices y reducen el crecimiento y vigor de plantas con las que compite.
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La densidad minima requerida para causar daños en un cultvo depende de varios factores, incluyendo la
disponibilidad de humedad por parte del suelo. En años secos, densidades moderadas pueden competir de forma
eficaz con el cultivo, provocando la pérdida de rendimiento. El umbral de daños es relativamente bajo. En
rotaciones de cultivos extensivos cada cuatro años, el umbral para que se produzcan daños puede estar en 1
brote/m2, mientras que en monocultivo de cereal puede ser superior a los 10 brotes/m2 (Anonymous 2004).
En ensayos realizados con trigo de inverno en Dinamarca, se han estimado recientemente pérdidas de
rendimientos a partir de bajas densidades de 0,7% brotes/m2, mientras que altas densidades de 100-150
brotes/m2 reducen los rendimientos cerca de un 30% (Kudsk y Mathiassen 2005). En maíz, la pérdida de
rendimiento puede ser del 12 al 58% con densidades de 65-745 brotes/m2 (Young et al. 1984). En soja, un 1755% de reducción puede observarse con densidades de 265-910 brotes/m2 (Young et al. 1982). La acumulación
de brotes del rizoma depende del propio cultivo y de las prácticas culturales. En cereales, menos de la mitad de
los brotes potenciales generalmeente brotan antes de la cosecha, mientras que en cultivos extensivos, como la
remolacha o el maíz, este porcentaje de brotación puede ser incluso mayor (Anonymous 2004).
Opciones de control
El control requiere la eliminacion tanto de la parte aérea como de los rizomas subterráneos, lo cual precisa de la
movilidad de Glifosato hacia las yemas de los rizomas. Las operaciones de control deberían hacerse en aquellos
periodos en los que la adventicia es más debil. Al prinicipio de la primavera, los brotes consumen sus propias
reservas de nutrientes para desarrollarse, con lo que su peso seco decrece hasta alcanzar un mínimo, llamado
punto de compensación, después del cual es la fotosíntesis la que compensa esta pérdida en peso seco.
Normalmente, cuando el tapiz generado por el cultivo sombrea E. repens, esta ganancia de peso seco gracias a
la actividad fotosintética se retrasa, de tal forma que el punto de compensación es sólo superado cuando la
plántula alcanza las 3 ó 4 hojas. Es en este periodo cuando la planta es más vulnerable. Una vez que las
plántulas han desarrollado 5 ó 6 hojas, la planta precisa de un plus nutritivo para recomponer su rizoma y
producir nuevos. A partir de este momento, la planta comienza a ser más vigorosa. Varias publicaciones apuntan
que la aplicación de Glifosato a los brotes de rizoma, en el estado de 3 hojas, resulta menos eficaz comparado
con el tratamiento de plantas más adultas, con estadios de 3-5 ó 5-7 hojas (reviewed por Franz et al. 1997).
Debido a que Glifosato es no selectivo, éste debe ser aplicado antes de la empergencia del cultivo o bien en una
fase en la que el cultivo no sea susceptible. Buenos controles de Agropyron pueden conseguirse con aplicaciones
al final de la primavera, pero su fase de desarrollo durante el cual es más sensible a Glifosato es después de la
fecha de plantación de algunos cultivos. También hay que tener en cuenta que, en el caso de los cereales, los
tratamientos de presiembra no dan un control a largo plazo.
Control antes de la cosecha
Una aplicación antes de cosechar puede aportar a los agricultores el control a largo plazo que ellos precisan. En
el periodo antes de cosechar, después de la floración, las plantas perennes como el E. repens están todavía en
crecimiento activo, moviendo azúcares hacia las raíces con el fin de acumular sustancias de reserva para el
invierno. Así, la mala hierba tiene una gran cantidad de superficie foliar para absorber el herbicida y es, por lo
tanto, bastante sensible a la acción del Glifosato.
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En esta fase tiene un crecimiento activo y por lo menos 3 hojas verdaderas. Así pues, el control de E. repens en
esta fase es, en un año normal, más efectivo que el control en postcosecha con el rastrojo en la parcela. El
momento adecuado para hacer la aplicación es cuando el nivel de humedad del grano es menor del 30%, que
normalmente coincide con el momento ideal para controlar totalmente esta hierba.
La dosis de Glifosato puede ser de 0,72 a 1,44 g ia/ha dependiendo del nivel de infestación. Los resultados en
ensayos de campo muestran un control superior al 90%, medido un año después de la aplicación, cuando se
aplica a esas dosis. Las dosis recomendadas para cereales en tratamientos previos a la cosecha son 0,72 kg
ia/ha (densidad máxima de 25 brotes/m2) y 1,08 kg ia/ha (densidad superior a 05 shoots/m2), con un volumen
de aplicación recomendado de 100-150 L/ha. Si la densidad infectante fuera superior a 75 brotes/m2 es
recomendable subir la dosis a 1,44 kg ia/ha deacuerdo siempre con las recomendaciones de uso de la etiqueta
del producto.
Un bajo volumen de caldo (100-150 L/ha) debe ser empleado siempre, ya que la fitotoxicidad por Glifosato
depende de la concentración de Glifosato presente en las boquillas de pulverización. Dicha pulverización debe
realizarse cuando el contenido medio en humedad del grano sea inferior al 30%, lo cual suele producirse 2 ó 3
semanas antes de la cosecha, teniendo siempre la seguridad de que se cumple con los plazos de seguridad
establecidos en la etiqueta del producto.
Todas las variedades, tanto de invierno como de primavera de colza pueden ser tratadas con Glifosato antes de
la cosecha, cuando el contenido de humedad de la semilla sea inferior al 30%. Aplicar Glifosato a una dosis de
1,44 kg ia/ha ha demostrado control del 95% de E. repens, medido un año después del tratamiento (Grossbard
& Atkinson 1985). Es recomendable emplear dosis de 1,08 kg ia/ha (<75 brotes/m2) a 1,44 kg ia/ha (más de 75
brotes/m2) contra esta mala hierba en cultivos de crucíferas, con 100-150 L/ha de volumen de acuerdo con las
recomendaciones que indican en la etiqueta. Un control adecuado en los momentos previos a la cosecha mejora
el manejo de la misma donde el exceso de cultivo fresco o el laboreo tardío puedan interferir con las operaciones
de cosecha.
Rastrojo
El rastrojo debería ser retirado o al menos distribuido uniformemente sobre la parcela con el fin de permitir los
rebrotes de E. repens y que la aplicación que se realice de Glifosato sea lo más eficaz posible. Para un control
efectivo, este E. repens debería rebrotar unos 15-25 cm de altura, con 3-6 hojas. Deacuerdo con las
recomendaciones de la etiqueta, las aplicaciones de otoño y primavera deben realizarse a unas dosis de 1,08 kg
ia/ha cuando la infestación sea menor de 75 brotes/m2 y de 1,44 kg ia/ha cuando la presencia de E. repens sea
superior a esta cifra, empleando un volumen de caldo de 100-150 L/ha. En primavera, será necesario dejar
crecer la hierba durante al menos 3 semanas antes del tratamiento. Para obtener un control a mayor largo plazo,
es muy importante no arar ni remover los rizomas antes de la aplicación. El momento adecuado normalmente es
a finales de septiembre o inicios de octubre, pero se puede continuar aplicando hasta diciembre siempre y
cuando E. repens sea cada vez mayor, siga fresco y sano.
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Cardo (Cirsium arvense)
Descripción
Cirsium arvense es una planta herbácea y perenne de la familia de las Asteraceae. Es erecta, con tallos
ramificados de 0,5-1,2 m de altura, ligeramente pelosos, y con una extensa raiz rizomatosa. Las hojas son muy
espinosas, en forma de lanza e irregularmente lobuladas, con los márgenes dentados. La reproducción es a partir
de semilla y de yemas que parten de su sistema radicular. Este sistema puede extenderse horizontalmente 4,5 m
o más y en dirección vertical de 1,5 a 4,5 m de profundidad. La planta emerge desde su sistema radicular a
mediados o a finales de la primavera (finales de abril a comienzos de mayo) en forma de rosetas. Florece desde
finales de la primavera a comienzos del verano cuando hay de 14 a 16 horas al día. Cuando existen condiciones
de fotoperiodo inferiores, las nuevas plantas emergidas se mantienen en forma de roseta. Cuando la parte
superior es cortada al cosechar a finales de Julio, los rebrotes permanecen en esta forma de roseta sin alongar
los entrenudos, formando densas agrupaciones con grandes hojas jóvenes.
El cardo puede producir entre 1000 y 1500 semillas por cada floración de cada brote. Las semillas pueden ser
transportadas a largas distancias por medio del agua, animales, ropas, maquinaria agrícola u otros vehículos y
contaminar semillas de cultivos. Aunque el viento puede ayudar a diseminar estas semillas, lo más normal es que
éstas se mantengan junto a la planta madre y que la propagación se realice por otros medios. Las semillas
permanecen viables en el suelo hasta 20 años y la profundidad en el suelo aumenta su longevidad.
El cardo consume la mayor parte de su energía en la reproducción vegetativa. De casi cualquier zona del sistema
radicular pueden originarse nuevos brotes y raíces. Cuando las raices se segmentan debido a las tareas de labor
o por otras causas, en los segmentos cortados se estimula el desarrollo de nuevas plántulas, que suelen aparecer
a los 15 días. Raíces de sólo 6 mm de longitud y 3 mm diámetro también tienen suficiente energía almacenada
para el desarrollo de nuevas plantas.
Por otra parte, estos fragmentos radiculares son capaces de sobrevivir al menos 100 días sin aporte de nuevos
nutrientes vía fotosíntesis. La planta crece en gran variedad de suelos, siendo muy competitiva cuando se trata
de suelos profundos, bien aireados, productivos y también en suelos fríos. También prefiere zonas donde la
humedad del suelo es suficiente siendo menos frecuente en zonas con poca luz o suelos secos.
Distribución
El cardo es originario de regiones templadas de Eurasia. Fue introducida en EEUU a comienzos de 1600 y en
1954 fue declarada dañina en 43 Estados. Hoy en día es una adventicia perenne muy común en Europa, Canadá
y EEUU.
Daños
Se puede encontrar en cultivos, pastos, dehesas y caminos y zonas no cultivadas. Cuando se establece en un
área, sustituye a las plantas originales, modifica la estructura y la composición de las especies de las
comunidades vegetales endémicas, reduciendo la diversidad de la flora y la fauna. En Canada y EEUU es
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considerada una de las más resistentes adventicias de importacia económica, siendo reconocida en los últimos
años como problemática en áreas protegidas.
Es muy competitiva en campos de cereales. Tan solo una densidad de 2,4 plantas/m2 es capaz de reducir el
rendimiento en un 15% y densidades de 30 plantas/m2 lo reducen en un 60-70%. Consecuentemente, las
estrategias de control deben ir encaminadas a reducir las densidades a menos de 1 plantas/m2 para minimizar o
prevenir pérdidas de rendimiento (Carlson y Donald 1988). Por otra parte, el cardo reduce el consumo de
praderas y pastizales por parte del ganado ya que éste suele repeler zonas con altas infestaciones de cardo. Una
sola planta es capaz de colonizar un área de 0,5 a 2 m de diámetro en uno o dos años (Beck 2004).
Opciones de control
Es difícil de controlar por medios mecánicos, ya que puede rehacerse ante cualquier situación de estrés, debido a
que la raíz almacena gran cantidad de nutrientes. Para el control del cardo, por medio de aplicaciones foliares, es
esencial que el herbicida sea capaz de traslocarse a la raíz y que sea absorbido por los brotes de la raíz en
cantidades que sean suficientemente tóxicas. Parece que el estado más sensible de la planta a Glifosato es
cuando se encuentra en estado de roseta durante el mes de agosto. Esto está debido a un aumento en la
capacidad de traslocación de Glifosato a la raíz en esta fase que es cuatro veces superior a cuando se realiza la
aplicación en fase de yema. Se constata pues que un aumento en la capacidad de traslocación de la planta viene
acompañado de la mejora de la eficacia por parte de Glifosato (Hunter 1995, Hunter 1996). Sin embargo, para
prevenir la producción de semillas de cardo, es importante tener una estrategia de control de cara a la
primavera, con la aplicación de un herbicida previo a la aplicación con Glifosato.
Control antes de la cosecha
En el periodo previo a cosechar, después de la floración, las especies perennes como el cardo continúan con su
crecimiento activo, por lo que siguen moviéndose azúcares a las raíces para su almacenamiento invernal. Así
pues, C. arvense tiene mucha superficie foliar con lo que una aplicación de Glifosato en este momento entra en
las hojas y es trasladado rápidamente a las raíces consiguiendo un eficaz control. Se ha demostrado que las
aplicaciones de Glifosato antes de la cosecha (1-2 semanas antes) permiten reducir eficazmente las poblaciones
de C. arvense (Darwent et al. 1994). Glifosato se debe aplicar antes de cosechar, a razón de 0,9 kg ia/ha con un
volumen de caldo de 50 a 100 L/ha, cuando el contenido en humedad del grano sea del 30% o inferior y siempre
según las recomendaciones de la etiqueta. Esto suele ocurrir 1 o 2 semanas antes de la recolección. También es
necesario recordar que Glifosato actúa mejor cuando la mayoría de los cardos se encuentran en crecimiento
activo, es decir, con 4 o 5 hojas verdes. Esta aplicación previa a la recolección no debe hacerse cuando la
cosecha se destina a producción de semillas.
Rastrojo
Según las recomendaciones de la etiqueta, Glifosato puede aplicarse al rastrojo para controlar tanto C. arvense
como otras malas hierbas perennes. Los restos de paja deberían ser retirados o colocados en hileras para
permitir el restablecimiento de las poblaciones adventicias. Así, debe permitirse que C. arvense pueda crecer
hasta los 20 o 25 cm de altura y con crecimiento activo. Conviene recordar que una helada fuerte antes del
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tratamiento puede reducir su eficacia. Por otra parte, en condiciones de sequía, también puede verse disminuida
la eficacia. Si las plantas están marchitas o el contenido en humedad a 30 cm de la superficie del suelo es bajo,
es conveniente retrasar la aplicación de Glifosato hasta que unas lluvias restituyan las condiciones óptimas de
humedad. Una sola aplicación de Glifosato puede no proporcionar el control deseado a largo plazo, pero debe ser
capaz de evitar la mayoría de los rebrotes en la siguiente estación, incluso en tratamientos realizados sobre
poblaciones muy densas (Carlson y Donald 1988).
Barbechos
En zonas donde el barbecho está incluido en la rotación, un metodo de control muy eficaz es el tratamiento a las
rosetas durante el mes de agosto, combinando operaciones de laboreo y tratamientos herbicidas durante el
tiempo de barbecho. Así, cuando las parcelas estén muy pobladas por C. arvense, éstas suelen ser labradas
desde mayo a mediados de julio y a las 4 ó 5 semanas después, durante el mes de agosto, se realiza un
tratamiento con Glifosato sobre las rosetas de C. arvense.
Acedera (Rumex sp)
Descripción
La acedera pertenece al género Rumex el cual incluye aproximadamente 200 especies anuales, bianuales y
perennes dentro de la familia Polygonaceae. Las especies son bastante similares en apariencia y su identificación
en estados iniciales suele ser complicada. Normalmente germina en otoño, pasando el invierno en forma de
roseta. Los tallos florales emergen durante la primavera y las flores, que son poco llamativas, van sobre las hojas
que se agrupan en verticilos. Las flores suelen ser hermafroditas aunque también pueden ser masculinas o
femeninas. Las semillas maduran a lo largo del verano. Los tallos se secan durante el otoño e invierno época que
vuelven a pasar en estado de roseta. La acedera puede rebrotar con facilidad a partir de restos de raíz que
hayan quedado tras una labor. Sólo dos son las especies consideradas dañinas en agricultura: Rumex crispus y
Rumex obtusifolius.
R. crispus es una planta perenne con hojas en forma de lanza y tienen un margen ondulado. Las hojas bajas del
tallo suelen ser de 15-22 cm de largo con un largo peciolo mientras que las hojas superiores del tallo son algo
más cortas, de 5 a 8 cm de longitud y con un corto peciolo. El tallo es erecto, de 0,4 a 1,2 m de altura, sólido y
con surcos longitudinales. Varios tallos pueden salir de una misma base, con ramificaciones en la parte superior.
La floración es de junio a julio. Las plantas tienen la capacidad de sobrevivir en un amplio abanico de
condiciones edáficas y climáticas. A menudo crece en cultivos plurianuales, como por ejemplo prados, y en
campos con laboreo reducido. Pero también crece en dunas de arena, gravas y en lugares residuales. La
propagación es por semillas y por medios vegetativos, además de por nuevos brotes a partir de restos de raíz
fragmentados.
Por otra parte, Rumex obtusifolius es perenne y puede ser reconocido por sus largas hojas ovaladas. Las hojas
son de 30 cm de longitud y de hasta 15 cm de ancho, con los márgenes algo ondulado y venas marcadas. El
tallo es asurcado, delgado y erecto de 0,5 a 1,2 m de altura. La floración se produce de mayo a agosto. Las
plantas maduras son capaces de resistir temperaturas muy bajas y sequía, creciendo en un amplio rango de
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suelos, excepto en suelos ácidos (turberas). Es frecuente en jardines, zonas boscosas o residuales, junto a
caminos y vías férreas y en prados húmedos. La propagación es por semillas y los fragmentos de raíces son
capaces de generar nuevos individuos.
Distribución
Tanto R. crispus como R. obtusifolius son originarios de Europa. Hoy en día, están presentes en casi todo el
mundo, pero son más frecuentes en regiones templadas de ambos hemisferios. R. crispus está descrita como el
Rumex más común en Gran Bretaña y es una de las 5 malas hierbas más difundidas en el mundo. R. obtusifolius
aparece desde el Círculo Artico en Noruega hasta el resto de Europa, con la excepción del área Mediterránea.
Esta planta también está establecida en el Norte y Sur de América, Australia y Japón.
Daños
Ambos Rumex son malas hierbas típicas de zonas agrícolas, aunque R. crispus está más asosicado con zonas
labradas y R. obtusifolius es más normal encontrarla en praderas y pastos. La presencia de semillas en cultivos
destinados a la obtención de semillas es problemático, puesto que es muy difícil separar unas semillas de otras.
Además, sirve de planta huésped de una serie de insectos perjudiciales para los cultivos así como de multitud de
nematodos. Históricamente, R. obtusifolius ha sido asociado a mala gestión de praderas y pastos, pero ahora es
un problema generalizado en las zonas de cultivo. En el Reino Unido, ambas especies son malas hierbas
perennes comunes en pastizales de granjas de vacuno. Es normal encontrarla como mala hierba típica de
cultivos de trigo de invierno en zonas de Tennessee.
Opciones de control
Glifosato a dosis de 0,56-1,68 kg ia/ha ha demostrado un control efectivo en plantas de R. crispus en
tratamientos en cultivos de soja resistentes a Glifosato en Mississippi (Scott et al. 1998). Por otra parte,
investigaciones en Louisiana han demostrado que se mejora el control control de R. crispus en algodón si al
tratamiento tradicional con tifensulfuron más tribenuron se le añade Glifosato a dosis de 0,42 a 0,84 kg ia/ha
(Fairbanks et al. 2001). También ha demostrado eficacia en el control de R. obtusifolius. En pastos, se obtiene
un control total a los 30-40 días tras el tratamiento y las adventicias se controlan hasta 12 meses después de la
aplicación. Por otra parte, en estas pruebas también se evaluaron los daños al cultivo: el rendimiento del pasto
se redujo en la primera cosecha 2 meses después de la primera aplicación, pero se recuperó después de 12
meses (Oswald 1980).
Fallopia japonica
Descripción
Fallopia japonica syn. Polygonum cuspidatum tiene crecimiento vertical, es arbustiva y herbácea perenne que
puede crecer hasta los 3 m de altura. Al igual que otras especies de la Familia Polygonaceae, tiene estípulas
membranosas que al soldarse forman una vaina (ócrea) que envuelve al tallo. Las hojas son de unos 15 cm de
largo por 10 de ancho, de ovalada a ligeramente triangulates. Tiene flores blanquecinas, agrupadas en racimos
en las axilas de las hojas. La planta puede soportar multitud de situaciones adversas incluídas condiciones de
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poca luminosidad, altas temperaturas, alta salinidad y sequía. Se encuentra en arroyos, ríos, zonas residuales y
en zonas descuidadas de parques y jardines. Puede convertirse en una plaga invasora con relativa facilidad en
zonas protegidas procedente de zonas agrícolas.
La propagación se produce por métodos vegetativos con ayuda de sus largos y robustos rizomas. En el Reino
Unido, la planta raramente produce semillas viables. En EEUU, las semillas viables son transportadas a nuevas
zonas como contaminante de material vegetal o bien diseminado por el agua y, en menor medida, por el viento.
La propagación es a menudo por fragmentos del tallo y raíces, que son transportados desde la planta madre, ya
sea por medios naturales a lo largo de ríos y cursos de agua, o con la ayuda del hombre, con material vegetal o
entre fragmentos del suelo. Las partes de rizoma viables pueden ser tan pequeñas como apenas 1 cm y los tallos
frescos cortados también pueden regenerarse con relativa facilidad.
Distribución
Es nativa de Japón, Taiwan, China y corea, y esta diseminada en numerosos países. Fue introducida como planta
ornamental en Reino Unido en 1825 y en EEUU a finales del siglo XIX, estando distribuída actualmente a lo largo
de 36 estados.
Daños
F. japonica es capaz de colonizar distintos hábitats y crecer a lo largo de paredes, asfalto u hormigón, siendo
más importante su propagación a lo largo de cursos de agua. Las plantas crecen en extensas manchas, creando
un denso tapiz por el que pueden resistir la competencia de otras especies. Por esta raón, la planta es muy difícil
de controlar una vez que está establecida, siendo considerada una de las principales malas hierbas en EEUU y
Europa y una de las invasoras más importantes en el Reino Unido. En Gales hay ejemplos de edificios afectados
por F. japonica y su presencia disminuye su valor económico. En Dinamarca no es una especie tan intrusiva y es
considerada como una adventicia más dentro del pool de malas hierbas.
Opciones de control
Es recomendable el empleo de Glifosato para el control de esta mala hierba. La aplicación aportará un control
adecuado siempre que se haya realizado un buen control en años anteriores. Glifosato debe aplicarse a dosis de
1,8 kg ia/ha cerca de la floración, que suele producirse en julio o agosto, cuando la mayoría de los nutrientes se
acumulan en el rizoma para aumentar las reservas (Anonymous 2003a, Anonymous 2003b). Es aconsejable
aplicar junto con 0,5% de tensioactivo no-iónico con el fin de penetrar en la cutícula foliar y siempre que la
temperatura ambiente sea superior a los 18 ºC (Remaley 2004).
Un control efectivo puede lograrse con aplicaciones a la planta a 1 m de altura, normalmente a finales de mayo,
con dosis de 1,8 kg ia/ha. A esto le debería acompañar un segundo tratamiento, de nuevo a la dosis de 1,8 kg
ia/ha, ante cualquier rebrote al final de la temporada. Los tratamientos tardíos suelen ser muy efectivos puesto
que Glifosato es transportado hacia el rizoma subterráneo. F. japonica es sensible a heladas, así que las
aplicaciones a final de temporada deberán hacerse con suficiente antelación a estas condiciones frías, durante
las cuales no se produce el transporte antes mencionado.
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Si los tallos son mayores de 1,5 m se deben cortar y permitir que rebroten antes de realizar la aplicación con
Glifosato. En junio esto sucede a las 3 ó 4 semanas pero en el mes de Agosto, los rebrotes suelen ser
insuficientes con lo que es necesario realizar el tratamiento al año siguiente. Las dosis a aplicar en estos casos es
de 1,8 kg ia/ha. Las plantas tratadas llegan a tardar hasta 6 semanas en mostrar síntomas y si no hay signos
visibles de deterioro tras este tiempo, será necesario realizar una nueva aplicación. Si algún tallo muestra
decoloración dentro de las 6 semanas posteriores a la aplicación es que se ha producido daño, con lo que podría
no ser necesaria una nueva aplicación.
Aplicaciones de Glifosato con mochila han demostrado también ser muy eficaces, empleando unas dosis de 1:2
con agua. Este método puede ser útil donde no se puedan tratar vegetación colindante. Otra opción es el
método de “tratamientos corta-tallo” en áreas donde F. japonica esté establecia dentro o alrededor de otras
plantas que no se quieran eliminar. Este tratamiento es efectivo a bajas temperaturas pero siempre y cuando el
suelo no llege a estar congelado. El método consiste en cortar el tallo a unos 5 cm por encima del nivel de suelo
y de inmediato aplicar Glifosato sobre la sección transversal del tallo. Aplicaciones foliares posteriores pueden ser
interesantes para controlar nuevas plántulas y/o rebrotes (Remaley 2004). Si se emplea Glifosato antes de julio o
agosto el herbicida es más efectivo si se inyecta en el hueco de las cañas inmediatamente después del corte. Así,
el Glifosato llegará eficazmente a los rizomas (Anonymous 2003b).
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APÉNDICE 3: CULTIVOS RESISTENTES A GLIFOSATO
Soja (Glycine max)
Las sojas resistentes a Glifosato fueron lanzadas al mercado en 1996 y en 2005 casi el 80% de las sojas
cultivadas en EEUU eran resistentes a Glifosato. Éste ejerce una excelente actividad para la mayoría de malas
hierbas anuales, bianuales y perennes asociadas a la producción de soja. Una única aplicación de Glifosato en
soja puede no controlar eficazmente algunas especies durante toda la estación, debido a que Glifosato carece de
efecto residual. Así, aplicaciones tempranas de Glifosato pueden ser ineficaces para emergencias tardías
mientras que retrasar la aplicación puede reducir la eficacia en la emergencia de adventicias tempranas que son
las mayoritarias y contra las que es más importante obtener un control satisfactorio. Así, una única aplicación de
Glifosato no suele permitir un control completo de adventicias en soja. Es posible mejorar la persistencia
empleando herbicidas de pre-emergencia seguido de una aplicación de glifosato en post-emergencia, un tankmix de Glifosato con herbicidas que tengan actividad residual con aplicaciones secuenciales de glifosato.
La eficacia de Glifosato ha sido evaluada en diferentes estados de crecimiento de sojas resistente a Glifosato.
Así, Glifosato (0,84 kg/ha) demuestra tener un control más eficaz de Amaranthus hybridus, Chenopodium album
y Panicum dichotomiflorum cuando se aplica desde que el hipocotilo de soja con los cotiledones traspasa la
superficie del suelo hasta la cuarta hoja trifoliar (9-30 días después de la siembra) que cuando la aplicación se
retrasa más allá de la aparición de la sexta hoja trifoliar (43 días después de la siembra)
Algodón (Gossypium hirsutum)
El algodón resistente a Glifosato estuvo comercialmente disponible en 1997. En 2005, el 70% de la superficie
cultivada con algodón en EEUU se realizó con algodón resistente a Glifosato. Los tratamientos en postemergencia siguen siendo un componente clave en los programas de control de malas hierbas en algodón,
debido a la lentitud con la que se producen los primeros estadios del algodón en comparación con otros cultivos
como maíz o soja. Así, el control de malas hierbas es fundamental a las 9-10 semanas después de la siembra de
algodón o mientras que pueda existir competencia con el cultivo. En el algodón convencional, la aplicación de
herbicidas en post-emergencia requiere a menudo de equipos especializados y de mucho tiempo para evitar que
los herbicidas entre en contacto con el cultivo. Con la llegada de los algodones resistentes a glifosato a finales de
los noventa, fue posible incluir Glifosato en las estrategias foliares de control de malas hierbas desde la fase de
cuatro hojas, con aplicaciones a la base de las plantas. Hoy en día, las nuevas variedades de algodón resistente
a Glifosato permiten emplear glifosato durante toda la estación de cultivo.
Sólo con Glifosato se puede realizar el control total de malas hierbas en variedades de algodón resistentes.
Controla numerosas especies de hoja ancha y gramíneas, incluyendo las especies más problemáticas como
Cyperus rotundus y Senna obtusifolia. Sin embargo, por no tener capacidad residual, son necesarios realizar
aplicaciones secuenciales para conseguir controles superiores al 95%, cuando se hacen aplicaciones con
Glifosato solo o bien combinandolo con herbicidas de aplicación al suelo o de post-emergencia. Los herbicidas de
aplicación al suelo son necesarios en raras ocasiones para el control de malas hierbas cuando se realizan
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aplicaciones repetidas de Glifosato, aunque si es cierto que si se opta por su empleo, se reducen el número de
aplicaciones necesarias de Glifosato.
En investigaciones realizadas en 3 lugares diferentes demostraron que la aplicación secuencial con 2-4
aplicaciones de Glifosato a 0,42 kg ia/ha, controlan Ambrosia artemisiifolia, Amaranthus hybridus, Chenopodium
album, Eleusine indica o Ipomoea hederacea con valores de eficacia entre el 94-100% hasta justo antes de la
cosecha de algodón resistente a Glifosato. El control de Glifosato cuando se aplica solo iguala a las eficacias
obtenidas por los programas de control de malas hierbas que incluyen Glifosato en combinación con aplicaciones
de herbicidas en post-emergencia o con residuales aplicados al suelo. No se observó fitotoxicidad en dos de las
tres localidades, mientras que en la tercera la fitotoxicidad encontrada estuvo entre un 0 y un 5% de las parcelas
tratadas. Además, en dos de los tres ensayos, los rendimientos no fueron significativamente diferentes entre los
tratamientos realizados (Askew y Wilcut 1999).
En otra investigación, la aplicación de Glifosato (0,4 kg ia/ha) seguida de aplicaciones de herbicidas de preemergencia, mostraron que se incrementa la eficacia contra Senna obtusifolia, cuando se compara con aplicacar
solo herbicidas de pre-emergencia. La eficacia contra Senna obtusifolia fue mejorada con una segunda aplicación
de Glifosato en post-emergencia, controlando las nuevas emergencias producidas después de la primera
aplicación de Glifosato (Stephenson et al. 2004). Del mismo modo, se ha demostrado que esta segunda
aplicación de Glifosato, realizada después de las aplicaciones de herbicidas de preemergencia + Glifosato,
mejoran el control de Xanthium strumarium y Ipomoea sp. (Culpepper y York 2000).
Maíz (Zea mays)
La superficie de maíz resistente a Glifosato en EEUU se ha incrementado desde 1998 y en 2004 eran alrededor
de las 5 millones de hectáreas, constituyendo aproximadamente el 18% de la superficie total de maíz cultivada
en EEUU. Glifosato proporciona muy buen control de numerosas malas hierbas y con la introducción de
variedades de maíz resistentes a Glifosato se han incrementado las opciones de control de adventicias que tienen
los agricultores, permitiendo incluso la realización de aplicaciones aéreas. Por no tener actividad residual, es
necesaria la aplicación de herbicidas residuales o bien de aplicaciones secuenciales para lograr el control total de
malas hierbas en parcelas de maíz.
A principio y al final de plantaciones de maíz resistente a Glifosato, se ha demostrado que dos aplicaciones de
Glifosato (0,8 kg ia/ha) realizan un excelente control de Setaria faberi, Chenopodium album y Abutilon
theophrasti. Una unica aplicación de Glifosato da menores niveles de eficacia cuando se aplica al principio de la
siembra, debido a la reinfestación de malas hierbas. Con el fin de evitar pérdidas en los rendimientos, las malas
hierbas deben ser controladas antes de que alcancen los 15 cm de altura (Gower et al. 2002).
Numerosos estudios también demuestran que el control temprano de malas hierbas es necesario para reducir las
pérdidas en la producción de maíz. Aplicaciones al suelo de herbicidas pueden reducir la emergencia temprana
de malas hierbas, así que es menor el riesgo por pérdidas de rendimiento cuando se retrasa la aplicación de
Glifosato por motivos meteorológicos o con el fin de controlar emergencias posteriores. Un programa de
tratamientos que incluya Glifosato (1,12 kg ai/ha) y aplicaciones en preemergencia de atrazina, aporta un buen
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control de Eleusine indica, Panicum texanum, Digitaria sanguinalis, Ambrosia artemisiifolia y Cyperus esculentus
(Thomas et al. 2004).
Colza (Brassica napus)
La superficie destinada a colza resistente a Glifosato a aumentado desde su introducción en 1998 y actialmente
son casi 3 millones de hectáreas en EEUU. Aproximadamente el 75% de la colza cultivada en EEUU fue con
variedades resistentes a Glifosato en 2003. La introducción de variedades de colza resistentes a Glifosato ha
mejorado las opciones de los agricultores frente a un mayor espectro de malas hierbas. Además, se ha ampliado
el rango de desarrollo en el que los herbicidas son eficaces, las lesiones al cultivo y los problemas de
antagonismo originados por la mezcla de herbicidas. Además, es posible realizar repetidas aplicaciones de
Glifosato en colzas resistentes, especialmente en sistemas de no laboreo. Los agricultores pueden aplicar
Glifosato antes de la siembra como alternativa al laboreo para el control de malas hierbas emergidas. Una
aplicación en el cultivo puede realizarse hasta que la colza se encuentra en el estado de 6 hojas; aplicaciones
secuenciales de Glifosato pueden ser necesarias en algunos casos para optimizar el control de malas hierbas con
emergencia tardía.
La eliminación de malas hierbas tempranas es muy importante en cultivos de colza. Esto es debido a que
semillas de colza jóvenes no son competitivas frente a una fuerte presión de malas hierbas que pueden ser tener
unos efectos muy perjudiciales en los rendimientos finales. Así, la aplicación temprana de Glifosato es
fundamental para optimizar el control y los rendimientos, sobre todo cuando no se ha aplicado Glifosato antes de
la siembra. Investigaciones apuntan a que cuando la aplicación de Glifosato (0,225-0,45 kg ai/ha) se retrasa
desde la fase de 4 hojas a la de 6, se reducen los rendimientos finales (Harker et al. 2004).
Así, se ha demostrado que los rendimientos más altos de semillas de colza se logran cuando Glifosato se aplica
entre la fase de una a cuatro hojas de colza; solo una pequeña cantidad de malas hierbas estuvieron presentes
en las parcelas en el momento de la recolección después de la aplicación temprana, lo que sugiere que la
cubierta vegetal establecida por la propia colza fue suficiente para prevenir un mayor establecimiento de
adventicias después de esta aplicación temprana de Glifosato (Clayton et al. 2002).
Una vez establecida, la colza forma una densa superficie muy competitiva, por lo que el control de las malas
hierbas no es tan preocupante. Así, pueden no ser necesarias aplicaciones secuenciales de Glifosato cuando éste
se aplica al principio del cultivo. La combinación de pequeñas separaciones entre líneas combinado con elevadas
dosis de siembra, mejora la competitividad frente a malas hierbas y reducen, por lo tanto, la necesidad de
realizar una segunda aplicación de Glifosato.
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