ACTAS DE HORTICULTURA Nº 60 Expresión diferencial de genes dioxigenasa de ruptura de carotenoides en calabacín (Cucurbita pepo) C.I. González Verdejo1, A. Obrero1, B. Román1, S. Nadal1, P. Gómez2 1 2 IFAPA, Centro IFAPA Alameda del Obispo, Área de Mejora y Biotecnología, 14080 Córdoba, España. IFAPA, Centro IFAPA La Mojonera, Área de Mejora y Biotecnología, 04745, Almería, España. Palabras clave: dioxigenasa de corte de carotenoides, 9-cis epoxicarotenoide dioxigenasa, PCR cuantitativa. Resumen El desarrollo de nuevas frutas y hortalizas con mayores contenidos en carotenoides es un objetivo deseable por sus beneficios sobre la salud. Diversos estudios indican que la baja acumulación de estos compuestos puede deberse a la presencia de enzimas involucradas en la ruptura oxidativa de los mismos y que conducen a su degradación. En consecuencia, los genes que codifican para dichas enzimas son claros candidatos a estudiar y caracterizar. Por ello, el objetivo del presente trabajo es la identificación y el análisis de la expresión de genes implicados en la ruptura oxidativa de los carotenoides en calabacín (Cucurbita pepo). Los genes de interés seleccionados codifican para enzimas dioxigenasas de ruptura de carotenoides (CCDs) que catalizan la ruptura oxidativa de carotenoides generando estrigolactonas y varios derivados volátiles, y para enzimas 9-cis epoxicarotenoide dioxigenasas (NCED) que se caracterizan por su implicación en la biosíntesis de ácido abcísico (ABA). El estudio se llevó a cabo utilizando tres variedades contrastantes de calabacín respecto al color de la piel, a partir de tejidos de órganos vegetativos y del fruto en distintos estadios de desarrollo. En esta comunicación se exponen los principales resultados obtenidos sobre el aislamiento y estudio transcripcional de genes CCDs y NCEDs en calabacín. Ello permitirá establecer la relación entre los genes implicados en la biosíntesis vs degradación de estos compuestos, contribuyendo a elucidar los mecanismos moleculares que conducen a la acumulación de carotenoides en este cultivo. INTRODUCCION El contenido en carotenoides en frutas y hortalizas puede estar influenciado por la presencia de enzimas dioxigenasa de ruptura de carotenoides. Estas enzimas intervienen en reacciones oxidativas que conducen a la ruptura de las cadenas hidrocarbonadas de carotenoides y generan compuestos apocarotenoides. Entre los apocarotenoides presentes en plantas destacan hormonas con importantes funciones biológicas como el ABA y las estrigolactonas, así como apocarotenoides volátiles responsables de aromas (Giuliano et al., 2003). Dentro de las enzimas dioxigenasas de ruptura de carotenoides se diferencian dos subfamilias dependiendo del sustrato carotenoide y de la posición de ruptura. Las enzimas CCDs que generan estrigolactonas y varios derivados volátiles y las NCEDs que se caracterizan por su implicación en la biosíntesis de ABA. La posible relación entre la expresión de genes que codifican para estas enzimas y la baja acumulación de 88 MEJORA GENÉTICA VEGETAL carotenoides en el fruto ha sido recientemente estudiada en diversas plantas (Kato et al., 2006; Campbell et al., 2010; Brandi et al., 2011). En este sentido, ante la sospecha de que enzimas de degradación podrían encontrarse actuando e impidiendo la acumulación de carotenoides en el fruto de calabacín, nuestros estudios se han orientado hacia el estudio transcripcional de genes CCD (CCD1 y CCD4) y NCED (NCED1, NCED2, NED3 y NCED9). Ya que los valores de degradación de carotenoides no tienen sentido per se y la información no es completa si no se consideran los valores de biosíntesis, los resultados del presente trabajo fueron comparados con aquellos obtenidos para los genes de la ruta biosintética de estos compuestos (Obrero et al., 2012). MATERIAL Y METODOS Para que fuera posible comparar la expresión de los genes de biosíntesis y de degradación de carotenoides, se ha empleado el mismo material utilizado en el trabajo de Obrero et al. 2012. La extracción de ARN y síntesis de ADNc se llevaron a cabo a partir de hoja, flor, ovario y diferentes estadios de fruto. Se seleccionaron los tres cultivares de calabacín contrastantes respecto a la acumulación de pigmento C. pepo ssp ovifera 'Scallop' (blanco), C. pepo ssp pepo 'MU-CU16' (verde) y C. pepo ssp pepo. 'Parador' (amarillo-naranja). Los cebadores específicos para los genes NCDE1, 2 y 3 fueron diseñados a partir de secuencias disponibles en NCBI para C. pepo mientras que el resto (CCD1, CCD4 y NCED9) se obtuvieron a partir de la base de datos ICuGI que incluye los resultados publicados recientemente del transcriptoma de C. pepo (Blanca et al., 2011). La normalización de la expresión se realizó empleando los genes fosfatasa 2A (PP2A) y el factor de elongación 1% (EF1A) (Obrero et al., 2011). Posteriormente, se determinó la expresión relativa normalizada de los genes candidatos mediante PCR cuantitativa (qPCR) utilizando SYBR green en un equipo Mx3000P (Stratagene). El análisis de los datos se llevó a cabo según el modelo de cuantificación relativa propuesto por Hellemans et al., 2007. RESULTADOS Y DISCUSION Los resultados obtenidos en este estudio indicaron que los genes CCD y NCED no presentan sobreexpresión en ninguno de los óganos de los cultivares analizados, con la excepción de CpCCD1 y CpCCD4. El transcrito de CpCCD1 aumentó sus niveles hasta cinco veces en los estadios de maduración del fruto pero, al igual que ocurre en cítricos (Kato et al., 2006), consideramos que es poco probable que la expresión de este gen afecte a la concentración final de carotenoides en este órgano al no encontrarse diferencias notables en sus niveles entre los cultivares coloreados y el blanco. Sin embargo la enzima CpCCD1 podría estar implicada en la producción de compuestos volatiles como ocurre en otras especies vegetales (Simkin et al., 2004), y, por tanto, en el aroma de la flor de calabacín, pues la antesis de la flor coincide con un aumento en la actividad transcripcional de este gen. Por el contrario, CpCCD4 mostró expresión diferencial entre los tres cultivares, siendo inducido hasta 16 veces más en el fruto de 20 días del cultivar blanco que en el de los coloreados (Fig. 1). Estos resultados concuerdan con los obtenidos en estudios llevados a cabo en melocotón y patata (Campbell et al., 2010; Brandi et al., 2011) donde la actividad de genes ortólogos a CpCCD4 se encuentran controlando la degradación de carotenoides. 89 ACTAS DE HORTICULTURA Nº 60 Si se consideran conjuntamente los resultados correspondientes a los niveles de expresión de los genes de biosíntesis y de degradación de carotenoides podemos concluir que, los genes de la ruta de biosíntesis de carotenoides podrían estar regulando la acumulación de estos pigmentos en el fruto de los cultivares coloreados. Los estudios de expresión de los genes de biosíntesis mostraron que los niveles de transcritos, y en especial los del gen fitoeno sintasa (PSY), fueron más elevados en el fruto amarilloanaranjado del cultivar parador que en el del cultivar verde (Obrero et al., 2012). Sin embargo, la ausencia de color en el cultivar blanco, donde también se expresan los genes carotenogénicos, podría explicarse por la actuación de enzimas que degradan los carotenoides sintetizados e impiden su acumulación en el fruto. Agradecimientos Esta investigación ha sido financiada por el proyecto INIA RTA2011-00044C02-01, fondos FEDER Y FSE (EU). CI. González Verdejo disfruta de un contrato INIA-CCAA (Subprograma DOC-INIA), que podrá ser cofinanciado en un futuro por el FSE. Referencias Blanca, J., Canizares, J., Roig, C., Ziarsolo, P., Nuez, F. y Picó, B. 2011. Transcriptome characterization and high throughput SSRs and SNPs discovery in Cucurbita pepo (Cucurbitaceae). BMC Genom. 12:104. Brandi, F., Bar, E., Mourgues, F., Horváth, G., Turcsi, E., Giuliano, G., Liverani, A., Tartarini, S., Lewinsohn, E. y Rosati, C. 2011. Study of ‘Redhaven’ peach and its white-fleshed mutant suggests a key role of CCD4 carotenoid dioxygenase in carotenoid and norisoprenoid volatile metabolism. BMC Plant Biol. 11:24. Campbell, R., Ducreux, L.J.M., Morris, W.L., Morris, J.A., Suttle, J.C., Ramsay, G., Bryan, G.J., Hedley, P.E. y Taylor, M.A. 2010. The Metabolic and Developmental Roles of Carotenoid Cleavage Dioxygenase4 from Potato. Plant Physiol. 154:656664. Giuliano, G., Al-Babili, S. y von Lintig J. 2003. Carotenoid oxygenases: cleave it or leave it. Trends Plant Sci. 8:145-9. Hellemans, J., Mortier, G., De Paepe, A., Speleman, F. y Vandesompele, J. 2007. qBase relative quantification framework and software for management and automated analysis of real-time quantitative PCR data. Genome Biol. 8:R19 Kato, M., Matsumoto, H., Ikoma, Y., Okuda, H. y Yano, M. 2006. The role of carotenoid cleavage dioxygenases in the regulation of carotenoid profiles during maturation in citrus fruit. J. Exp. Bot. 57: 2153–2164. Obrero, A., Die, J.V., Román, B., Gómez, P., Nadal, S. y González-Verdejo, C.I. 2011. Selection of reference genes for gene expression studies in zucchini using qPCR. J. Agric. Food Chem. 59: 5402-5411. Obrero, A., Die, J.V., Román, B., Gómez, P., Nadal, S. y González-Verdejo, C.I.. 2012. Expresión de genes de la ruta de biosíntesis de carotenoides en calabacín. En este volumen de Actas de Horticultura. Simkin, A., Steven, H. Schwartz, S.H., Auldridge, M., Taylor, M.G. y Klee, H.J. 2004. The tomato carotenoid cleavage dioxygenase 1 genes contribute to the formation of the flavor volatiles b-ionone, pseudoionone, and geranylacetone. Plant J. 40:882– 892. 90 MEJORA GENÉTICA VEGETAL Niveles de transcrito 18 16 Scallop MU-CU16 14 Parador 12 10 8 6 4 2 0 F FA H O E3 M3 E5 M5 E7 M7 E20 M20 Fig. 1. Cuantificación relativa en tres cultivares de calabacín (Scallop, MU-CU16 y Parador) del transcrito CpCCD4 en flor antes de antesis (F), flor en antesis (FA), hoja (H), ovario (O) y fruto (E-exocarpo, Mmesocarpo) de 3, 5, 7 y 20 días. 91