Phylum Basidiomycota Docente: Graciela Daniele Micología 2012 Dominios biológicos Cromistas Plantas Alveolados Animales Rodófitas Fungi Cianobacterias Flagelados Bacterias heterotróficas Protistas basales Halófilas Termófilas Filogenia y clasificación del Reino FUNGI Phylum Basidiomycota Subreino Dikarya Phylum Ascomycota Glomeromycota Basidiomycota Phylum Basidiomycota Basidiomycota •Son dicariomicotas •Registro fósil 350 millones años, Carbonífero •Descomponen celulosa y lignina, recicladores de comp. carbonados •Permiten que insectos usen nutrientes •En asociaciones permiten a plantas ocupar habitats marginales •Pocos son liquenizantes •Algunos crecen tipo levaduroides •Tres estados de desarrollo del micelio: 1º 2º y 3º •Micelio formado por hifas septadas •Septos: perforados con poro simple, dolíporo con o sin parentesoma •Micelio somático de algunas especies forma rizomorfos •No todos presentan basidioma •Reproducción sexual y asexual por conidios dónde? sapr ófitos SAPRÓFITOS PARÁSITOS par ásitos líquenes MICELIO micelio micorrícicos MICORRÍCICOS porqué Basidiomycota? esporangio? basidios basidios su ciclo de vida? Agaricus sp. ? micelio primario espora basidio basidiola meiosis cariogamia micelio terciario plasmogamia micelio secundario fíbula? para qué? Para mantener la condición de dicarionte en cada célula hija del micelio 2º diferencias? basidióspora himenio esterigma trama basidio Estructura levaduroide Ustilago sp. Clamidóspora o teleutópora tubo copulador esporidio Tilletia sp. probasidio Clamidóspora o teleutópora ecidiósporas uredóspora hifa receptiva espermacios hoja de Berberis sp. ecidio (ecidiosporofito) teleutoesporofito hoja de gramínea Puccinia sp. telióspora o teleutóspora (dos células) Basidiomycota micelio 3º: basidiomas distintos tipos de himenóforos hifas pigmentos vacuolares en el interior de las hifas hifas ornamentadas con incrustaciones hifas laticíferas e hifas oleíferas esporas Inocybe sp Laccaria sp Cortinarius sp Entoloma sp Hypholoma sp cistidios Reacciones químicas • KOH, Hidróxido de Potasio (5 %) : hidratar y aflojar las hifas, generalmente se utiliza junto con floxina. • Floxina (1 g/100 ml agua): teñir células vivas de rojo para que sea visibles en el microscopio. • Azul de algodón (0,1% de azul de algodón en 60% de ácido láctico, agua 40%): para evaluar cianofilia. • IKI, Reactivo de Melzer (yodo 0,5%, yoduro de potasio 1,5%, hidrato de cloral 22 g, agua 20 ml): evaluar reacción; si la estructura vira a rojiza es dextrinoide, si vira a azulado es amiloide; si no reacciona se dice que es IKI -.