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Goodman & Gilman: Las bases farmacológicas de la terapéutica, 14e
CAPÍTULO 1: Descubrimiento de fármacos: de las plantas medicinales al diseño de
fármacos asistido por computadora
Michael K. Gilson; Laurence L. Brunton
INTRODUCCIÓN
La primera edición de la obra de Goodman & Gilman, publicada en 1941, ayudó a organizar el campo de la farmacología, dándole validez intelectual y
una identidad académica. Esa edición comenzó de la siguiente manera: “El tema de la farmacología es amplio; abarca el conocimiento de los orígenes,
propiedades físicas y químicas, compuestos, acciones fisiológicas, absorción, distribución, excreción y usos terapéuticos de los fármacos. Un fármaco
puede definirse en términos generales como cualquier sustancia química que afecte el protoplasma de organismos vivos y pocas sustancias
escaparían a la inclusión bajo esta definición”. En la práctica, un agente químico o biológico se considera un fármaco legal solo si ha sido aprobado
como tal por una agencia reguladora nacional, como la U.S. Food and Drug Administration (FDA) o la European Medicines Agency; estos compuestos
aprobados son el objeto de estudio de esta obra.
Los primeros nueve capítulos de este libro, Principios Generales, proporcionan los fundamentos para las definiciones de farmacología y fármacos
al explorar los mecanismos fisiológicos, bioquímicos y moleculares de la acción de los medicamentos. Esta sección revisa la invención, desarrollo y
regulación de los fármacos, así como la forma en que estos actúan en los sistemas biológicos, es decir, la farmacodinámica, farmacocinética (incluido
el transporte y el metabolismo de fármacos), la influencia del microbioma gastrointestinal y la farmacogenética, con breves revisiones sobre
farmacovigilancia, toxicidad e intoxicación de los medicamentos. Las secciones subsiguientes tratan sobre el uso de clases específicas de fármacos
como agentes terapéuticos en seres humanos. Este capítulo es una introducción a los productos farmacéuticos, su desarrollo y las actividades de la
industria farmacéutica y el gobierno en torno al descubrimiento, producción y uso de agentes terapéuticos. Los procesos de descubrimiento e
invención de fármacos han cambiado de manera sustancial con el progreso general de las ciencias biomédicas, la llegada y mejora del diseño de
fármacos asistido por computadora y los avances técnicos en bioquímica y biología molecular. A continuación se revisan algunas de estas mejoras
tecnológicas.
ABREVIATURAS
Abreviaturas
ADME: absorción, distribución, metabolismo y excreción
BLA: solicitud de licencia para productos biológicos
CADD: descubrimiento de fármacos asistido por computadora
SUPR: biblioteca de compuestos codificados con DNA
DHHS: U.S. Department of Health and Human Services
DMPK: metabolismo y farmacocinética de fármacos
FBDD: descubrimiento de fármacos basado en fragmentos
FDA: U.S. Food and Drug Administration
GPU: unidad de procesamiento de gráficos
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CAPÍTULO 1: Descubrimiento de fármacos: de las plantas medicinales al diseño de fármacos asistido por computadora, Michael K. Gilson;
Laurence
L. Brunton de alta densidad
HDL: lipoproteínas
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HMG­CoA: 3­hidroxi­3­metilglutaril coenzima A
fármacos asistido por computadora y los avances técnicos en bioquímica y biología molecular. A continuación se revisan algunas de estas mejoras
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tecnológicas.
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ABREVIATURAS
Abreviaturas
ADME: absorción, distribución, metabolismo y excreción
BLA: solicitud de licencia para productos biológicos
CADD: descubrimiento de fármacos asistido por computadora
SUPR: biblioteca de compuestos codificados con DNA
DHHS: U.S. Department of Health and Human Services
DMPK: metabolismo y farmacocinética de fármacos
FBDD: descubrimiento de fármacos basado en fragmentos
FDA: U.S. Food and Drug Administration
GPU: unidad de procesamiento de gráficos
VHC: Virus de la hepatitis C
HDL: lipoproteínas de alta densidad
HMG­CoA: 3­hidroxi­3­metilglutaril coenzima A
HTS: detección de alto rendimiento
IND: nuevo fármaco en fase de investigación clínica
LDL: lipoproteína de baja densidad
mRNA: RNA mensajero
NDA: solicitud para un nuevo fármaco
NIH: National Institutes of Health
NME: moléculas nuevas
PDUFA: Prescription Drug User Fee Act
SBDD: diseño de fármacos basado en estructuras
SiRNA: RNA pequeño de interferencia
DESDE PLANTAS MEDICINALES HASTA DISEÑO DE FÁRMACOS ASISTIDO POR COMPUTADORA
Experiencias iniciales con plantas
La fascinación humana (y en ocasiones la obsesión) con los productos químicos que alteran la función biológica es antigua y comienza con la gran
experiencia con las plantas y dependencia de estas. Como la mayor parte de las plantas están sujetas por sus raíces, muchas producen compuestos de
defensa que los animales aprenden a evitar y que los seres humanos pueden aprender a utilizar. Así, el prior de un convento árabe apreció el café
(cafeína) después de notar el comportamiento de las cabras que brincaban y jugueteaban toda la noche luego de comer las bayas de la planta del café;
las mujeres trataron de realzar su belleza usando un extracto de la belladona, una planta mortífera, Atropa belladonna (“señora hermosa”), que
contiene abundante atropina, la cual produce dilatación pupilar; la hierba china ma huang (efedrina) se utilizó como estimulante; los pueblos
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indígenas
de1:América
del Sur utilizaron
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paralizar
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CAPÍTULO
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al diseño
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por computadora,
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que contiene
morfina (del griego Morpheus, el dios de los sueños), se ha utilizado durante mucho tiempo para aliviar el dolor y para el control de la
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diarrea.McGraw
La morfina
propiedades
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bien
conocidas,
al igual
que
otros productos
naturales psicoactivos, como la nicotina, la cocaína y el
etanol. Téngase en cuenta que estos compuestos no se derivan de la búsqueda ni del conocimiento previo de un objetivo farmacológico. Más bien, el
La fascinación humana (y en ocasiones la obsesión) con los productos químicos que alteran la función biológica es antigua y comienza con la gran
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experiencia con las plantas y dependencia de estas. Como la mayor parte de las plantas están sujetas por sus
raíces, muchasDE
producen
compuestos
de
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defensa que los animales aprenden a evitar y que los seres humanos pueden aprender a utilizar. Así, el priorAccess
de un
convento
árabe apreció el café
(cafeína) después de notar el comportamiento de las cabras que brincaban y jugueteaban toda la noche luego de comer las bayas de la planta del café;
las mujeres trataron de realzar su belleza usando un extracto de la belladona, una planta mortífera, Atropa belladonna (“señora hermosa”), que
contiene abundante atropina, la cual produce dilatación pupilar; la hierba china ma huang (efedrina) se utilizó como estimulante; los pueblos
indígenas de América del Sur utilizaron el curare para paralizar y matar animales a los que cazaban para alimentarse y el jugo de la amapola (opio),
que contiene morfina (del griego Morpheus, el dios de los sueños), se ha utilizado durante mucho tiempo para aliviar el dolor y para el control de la
diarrea. La morfina posee propiedades adictivas bien conocidas, al igual que otros productos naturales psicoactivos, como la nicotina, la cocaína y el
etanol. Téngase en cuenta que estos compuestos no se derivan de la búsqueda ni del conocimiento previo de un objetivo farmacológico. Más bien, el
descubrimiento de fármacos en el pasado a menudo era el resultado de observaciones fortuitas de los efectos de extractos de plantas o sustancias
químicas individuales en animales o en seres humanos. Los medicamentos fueron seleccionados con base en el efecto, sin comprender el mecanismo
de acción que conocemos hoy en día. En el siglo XX, la búsqueda de productos naturales se amplió, impulsado en parte por el descubrimiento de
antibióticos, como la penicilina y las cefalosporinas, que los hongos y bacterias producen para competir entre ellos.
¿Descubrimiento o invención de fármacos?
La frase descubrimiento de fármacos tiene sentido para los compuestos terapéuticos obtenidos de plantas y otros organismos. Sin embargo, hoy en
día solo una fracción de los nuevos fármacos introducidos cada año se descubre en la naturaleza. En su lugar, la mayor parte de los fármacos no se
descubren, sino que son compuestos totalmente nuevos, optimizados de forma cuidadosa tomando en consideración muchos criterios a través de
una interacción entre diseño y experimentación. En ese sentido, los nuevos fármacos de hoy son más inventados que descubiertos.
El modelo actual para el desarrollo de fármacos nació de la química orgánica sintética, que surgió en la industria de los tintes a finales del siglo XIX y ha
continuado floreciendo. Los tintes son compuestos de colores con afinidad selectiva entre los diferentes tejidos biológicos. El estudio de estas
interacciones estimuló a Paul Ehrlich a postular la existencia de receptores químicos en los tejidos que interactuaban con los tintes y los “fijaban”. De
manera similar, Ehrlich pensó que receptores singulares en los microorganismos o parásitos podrían reaccionar de forma específica con ciertos tintes
y que tal selectividad podría respetar tejidos sanos. La obra de Ehrlich culminó con la invención de la arsfenamina en 1907, patentada como
“Salvarsán”, lo que sugiere la esperanza de que el producto químico sería la salvación de la Humanidad. Este y otros compuestos orgánicos derivados
del arsénico se utilizaron para tratar la sífilis hasta el descubrimiento de la penicilina. Gerhard Domagk demostró que otro tinte, prontosil (la primera
sulfonamida con utilidad clínica), era notablemente eficaz en el tratamiento de infecciones estreptocócicas, dando inicio de esta manera a la
quimioterapia antimicrobiana. La colaboración de la farmacología con la química por un lado, y la medicina clínica por el otro, ha sido un factor
importante que ha contribuido al tratamiento eficaz de las enfermedades, en especial desde mediados del siglo XX.
Desde el principio, los nuevos compuestos podían ser probados por sus actividades solo en organismos enteros. Por ejemplo, de esta forma se
descubrió la indometacina, un fármaco antiinflamatorio no esteroideo (Brune y Hinz, 2004). En los últimos 70 años, los investigadores han comenzado
a entender con mayor detalle los mecanismos celulares y moleculares de las enfermedades. Como resultado de esta investigación biomédica básica,
es posible realizar pruebas iniciales de compuestos in vitro, utilizando estudios celulares y moleculares. Por ejemplo, podrían buscarse las respuestas
celulares que ocurren como consecuencia de la inhibición de una proteína involucrada en un proceso patológico. En este escenario, probando
bastantes compuestos elegidos en forma apropiada, podría desarrollarse por lo menos una comprensión parcial sobre qué tipos de compuestos
tienen mayor probabilidad de ser activos y entonces utilizar esta información para dirigir un programa para su síntesis química y pruebas hacia
compuestos cada vez más potentes.
En el decenio de 1980, se hizo práctico determinar estructuras tridimensionales de alta resolución de moléculas orgánicas complejas e incluso
moléculas más grandes como las proteínas, utilizando y refinando las técnicas de cristalografía de rayos X iniciadas por Hodgkin, Kendrew y Perutz a
mediados del siglo XX. Ya se sabía que muchos fármacos actuaban al unirse estrechamente a una proteína relacionada con la enfermedad y al modular
de esta forma su función biológica (p. ej., mediante inhibición o activación), pero los detalles atómicos de estas interacciones continuaban siendo un
misterio. Como consecuencia, la única manera de avanzar en un proyecto de descubrimiento de fármacos había sido sintetizando y probando un
compuesto tras otro. Ahora, al contar con la estructura tridimensional de las proteínas, sería de esperarse que pudiera diseñarse un compuesto que
se uniera con afinidad alta a una cavidad de la proteína de interés, en la que ajustaría casi a la perfección, por ejemplo, en el sitio activo de una enzima.
Por lo tanto, la cristalografía de proteínas permitió el diseño de fármacos basados en estructuras (SBDD, structure­based drug design), donde la
estructura tridimensional del objetivo del fármaco se utiliza para guiar la creación de compuestos que se unan en forma estrecha, a menudo
denominados ligandos.
Casi al mismo tiempo, dio inicio el avance rápido de la tecnología informática. Esto aceleró el procesamiento de datos necesario para pasar de
patrones de difracción de rayos X a estructuras de proteínas (es decir, coordenadas atómicas tridimensionales) y permitió la visualización interactiva
de estructuras de proteínas complejas formadas por miles de átomos. También abrió nuevas perspectivas en el descubrimiento de fármacos asistido
por computadora (CADD, computer­aided drug discovery), lo que incluye el uso de simulaciones moleculares para modelar las interacciones físicas de
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compuestos
y proteínas
y el desarrollo
de herramientas
para codificar,
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y farmacológicos.
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CAPÍTULO 1:
Descubrimiento
de fármacos:
de las plantas
medicinales
al diseño
de fármacos
asistido
computadora,
Michael K.
automatización
y la miniaturización han aumentado en forma notable el rendimiento experimental, en especial mediante la detección robótica de alto
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rapidez
cientos de miles de compuestos con un costo relativamente
bajo en análisis de actividad celular o molecular. Hoy en día, el entusiasmo por el poder de la inteligencia artificial motiva esfuerzos de amplio alcance
denominados ligandos.
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Casi al mismo tiempo, dio inicio el avance rápido de la tecnología informática. Esto aceleró el procesamiento
de datos
para pasar de
patrones de difracción de rayos X a estructuras de proteínas (es decir, coordenadas atómicas tridimensionales) y permitió la visualización interactiva
de estructuras de proteínas complejas formadas por miles de átomos. También abrió nuevas perspectivas en el descubrimiento de fármacos asistido
por computadora (CADD, computer­aided drug discovery), lo que incluye el uso de simulaciones moleculares para modelar las interacciones físicas de
compuestos y proteínas y el desarrollo de herramientas para codificar, archivar, compartir y analizar datos químicos y farmacológicos. En paralelo, la
automatización y la miniaturización han aumentado en forma notable el rendimiento experimental, en especial mediante la detección robótica de alto
desempeño (HTS, high­throughput screening), en el que se pueden probar con rapidez cientos de miles de compuestos con un costo relativamente
bajo en análisis de actividad celular o molecular. Hoy en día, el entusiasmo por el poder de la inteligencia artificial motiva esfuerzos de amplio alcance
para aplicar estas tecnologías al descubrimiento de fármacos.
La siguiente sección trata con mayor detalle el proceso de descubrimiento de fármacos, centrándose en los llamados fármacos de moléculas
pequeñas, compuestos orgánicos con pesos moleculares normalmente inferiores a 500 Da, que tradicionalmente han sido el tipo de fármaco más
común. En las secciones siguientes se mencionan fármacos biológicos, como anticuerpos y otras biomoléculas de diseño.
Identificación del objetivo farmacológico
Hoy en día, la mayor parte de los proyectos de descubrimiento de fármacos de moléculas pequeñas surgen de investigaciones básicas que implican
una macromolécula específica, por lo general una proteína, como un participante clave en una enfermedad y además, sugiere que una molécula
pequeña que se une a esta macromolécula podría utilizarse para el tratamiento de la enfermedad. La macromolécula se convierte así en un posible
objetivo farmacológico. Muchos fármacos de moléculas pequeñas son inhibidores (antagonistas), que actúan reduciendo la actividad de su objetivo
farmacológico macromolecular. Los ejemplos incluyen las estatinas, que reducen la síntesis de colesterol al unirse e inhibir la enzima 3­hidroxi­3­
metilglutaril coenzima A reductasa (HMG­CoA) y los antibióticos β­lactámicos, que destruyen las bacterias al inhibir las enzimas que participan en la
síntesis de las paredes celulares bacterianas. Sin embargo, algunas moléculas pequeñas son activadoras (agonistas) más que inhibidoras. Los
fármacos activadores suelen dirigirse a proteínas cuya función normal implica la señalización celular, como los receptores hormonales. Por ejemplo,
el fármaco para el asma salbutamol produce broncodilatación mediante la unión y activación de los receptores β­adrenérgicos en el músculo liso
bronquial, con lo que imita el efecto de la adrenalina (epinefrina; cap. 10).
Se han identificado objetivos farmacológicos de muchas maneras posibles (Hughes et al., 2011). Por ejemplo, se desconocía sobre cuáles enzimas
actuaban los antibióticos β­lactámicos y fueron descubiertas precisamente porque estas enzimas se encuentran unidas por estos antibióticos
naturales. Por el contrario, el objetivo farmacológico de las estatinas, la HMG­CoA reductasa, se identificó por la identificación de las vías de síntesis
del colesterol (Tobert, 2003) y esta información se utilizó para ayudar a descubrir las primeras estatinas. De la misma forma, a medida que los
investigadores han determinado las funciones reguladoras de las proteína cinasas humanas (enzimas que modifican la actividad de otras proteínas
mediante la unión covalente de grupos fosfatados a sus cadenas laterales, que contienen grupos hidroxilo), se han dirigido cinasas específicas para el
descubrimiento de fármacos de moléculas pequeñas (Cohen et al., 2021). Muchos inhibidores de cinasa son fármacos anticancerosos que actúan al
inhibir las proteína cinasas que aceleran la proliferación celular. Algunas de estas cinasas dirigidas llevan mutaciones anormales asociadas con cáncer
que las hacen hiperactivas, por lo que su inhibición devuelve sus actividades reguladoras a la normalidad. El ejemplo pionero de este escenario es el
fármaco imatinib, que inhibe una proteína cinasa mutante asociada al cáncer, la tirosina cinasa Bcr­Abl, la cual se utiliza para el tratamiento de la
leucemia mielógena crónica (Buchdunger et al., 2002).
En los últimos años, los avances tecnológicos que permiten la experimentación genómica han abierto nuevos métodos para la identificación de
posibles objetivos farmacológicos (Lindsay, 2003; Paananen y Fortino, 2020). La secuenciación rápida y de bajo costo del genoma facilita la realización
de estudios de asociación genómica, en los que las variaciones en la susceptibilidad a una enfermedad en muchas personas se correlacionan con
alteraciones en genes específicos; esto conduce a sugerencias para la elaboración de productos genéticos (p. ej., proteínas), que pueden ser objetivos
farmacológicos adecuados. La creciente disponibilidad de datos genómicos de los pacientes en el contexto del expediente clínico electrónico
probablemente abrirá nuevas oportunidades para el análisis de datos que apoyen el descubrimiento de objetivos farmacológicos en los próximos
años. También se ha vuelto habitual medir las cantidades de ácido ribonucleico mensajero (mRNA, messenger ribonucleic acid) transcritas a partir de
miles de genes en forma simultánea (el transcriptoma) y cuantificar miles de proteínas traducidas (proteómica). Al comparar tales datos entre, por
ejemplo, células cancerosas y células normales, se pueden identificar proteínas transcritas o presentes en concentraciones altas o disminuidas en un
estado patológico. El análisis de datos (mining data) sobre estas proteínas obtenidas de fuentes como bases de datos biomédicos, artículos científicos
y patentes y su integración con los datos de la proteómica pueden sugerir ciertas proteínas como posibles objetivos farmacológicos.
Un método totalmente diferente comienza con el uso de instrumentación y robótica de alto rendimiento para analizar una gran cantidad de moléculas
pequeñas (una biblioteca química) para la actividad biológica en una detección fenotípica (Swinney y Lee, 2020), que podría utilizar microscopia
automatizada y análisis de imágenes para determinar qué compuestos producen los efectos biológicos deseados, como la activación de un gen
específico en células humanas cultivadas o la muerte de un microorganismo parásito en cultivos. Se pueden utilizar varios métodos para el análisis
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inverso
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que destruían al parásito del paludismo Plasmodium falciparum cultivando estos organismos en concentraciones cada vez mayores
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del compuesto
protozoarios
resistentes
usando
métodos
genómica y proteómica para determinar qué genes eran
diferentes. Las proteínas codificadas por estos genes pueden convertirse en posibles objetivos farmacológicos (Flannery et al., 2013).
y patentes y su integración con los datos de la proteómica pueden sugerir ciertas proteínas como posibles objetivos farmacológicos.
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by: gran cantidad de moléculas
Un método totalmente diferente comienza con el uso de instrumentación y robótica de alto rendimiento para
analizar
pequeñas (una biblioteca química) para la actividad biológica en una detección fenotípica (Swinney y Lee, 2020), que podría utilizar microscopia
automatizada y análisis de imágenes para determinar qué compuestos producen los efectos biológicos deseados, como la activación de un gen
específico en células humanas cultivadas o la muerte de un microorganismo parásito en cultivos. Se pueden utilizar varios métodos para el análisis
inverso (es decir, para determinar cómo funcionan las moléculas pequeñas activas). Por ejemplo, se identificaron posibles objetivos farmacológicos
de compuestos que destruían al parásito del paludismo Plasmodium falciparum cultivando estos organismos en concentraciones cada vez mayores
del compuesto para seleccionar protozoarios resistentes y luego usando métodos de genómica y proteómica para determinar qué genes eran
diferentes. Las proteínas codificadas por estos genes pueden convertirse en posibles objetivos farmacológicos (Flannery et al., 2013).
Validación de objetivos
Después de que se ha identificado un objetivo farmacológico para una molécula con potencial terapéutico, se justifica realizar investigaciones
adicionales para validarlo buscando pruebas más sólidas de que una molécula pequeña que se une y modula tratará realmente la enfermedad (Jones,
2016; Lansdowne, 2018; véase el recuadro 1–1). Por ejemplo, el hecho de que una proteína sea más abundante en las células cancerosas que las
células normales no demuestra de ninguna manera que sea un objetivo farmacológico adecuado. En cambio, esto podría ser una correlación más que
una causa, por lo que se necesitan más investigaciones para identificar cuál es su participación. En consecuencia, con la validación de objetivos
farmacológicos tiene como meta “reducir el riesgo” de un proyecto al disminuir la probabilidad de que un compuesto cuidadosamente desarrollado
para actuar sobre la proteína que representa el objetivo farmacológico fracase en los estudios clínicos, ya sea porque alcanzar el objetivo
farmacológico no influya en la enfermedad como se esperaba o porque el compuesto genera toxicidad no anticipada, lo que se conoce como toxicidad
en el objetivo farmacológico o basada en su mecanismo.
RECUADRO 1–1. Validación del objetivo farmacológico: La lección de la leptina
Los sistemas biológicos suelen contener elementos redundantes o pueden alterar la expresión de elementos regulados por medicamentos para
compensar el efecto farmacológico. En general, cuanto más importante es la función, mayor es la complejidad del sistema. Por ejemplo, muchos
mecanismos controlan la alimentación y el apetito, por ello ha sido difícil encontrar fármacos para controlar la obesidad. El descubrimiento de la
hormona leptina, que suprime el apetito, se basó en mutaciones en ratones que causan pérdida de la leptina o de su receptor; cualquier tipo de
mutación ocasiona una gran obesidad tanto en ratones como en personas. Así, la leptina parecía ser una oportunidad maravillosa para tratar este
padecimiento. Sin embargo, en la investigación, se descubrió que los individuos obesos tienen altas concentraciones circulantes de leptina y
parecen insensibles a su acción.
No existen criterios absolutos para la validación de objetivos farmacológicos ni existe un único método. Un método consiste en utilizar una sonda
química, una molécula pequeña que se une al objetivo farmacológico y a continuación estudiar sus efectos biológicos (Quinlan y Brennan, 2021). Este
método requiere que dicha sonda esté disponible y los campos de la genética química (Stockwell, 2000) y la quimiogenómica (Bredel y Jacoby, 2004)
tienen como objetivo crear sondas químicas selectivas para tantas proteínas del genoma humano como sea posible. Otro método consiste en realizar
desactivación genética a través de un RNA pequeño de interferencia (siRNA, small interfering RNA) para bloquear la producción de la proteína que
representa el objetivo farmacológico, imitando así el efecto de un inhibidor de la actividad de la proteína. A veces se puede obtener información
adicional sobre la función biológica de una molécula con potencial terapéutico estudiando ratones modificados genéticamente, incluidos los ratones
con inactivación génica, en los que se ha desactivado por completo la codificación genética para el objetivo farmacológico y en ratones transgénicos,
en los que la expresión del gen estudiado se coloca bajo el control de un promotor que puede activarse alimentando a los animales con un compuesto
específico, como la tetraciclina (Lindsay, 2003).
Objetivo farmacológico para una molécula con potencial terapéutico
Es importante saber si el posible objetivo farmacológico es susceptible de interactuar con una molécula con potencial terapéutico. Es decir, si puede,
en principio, unirse a una molécula pequeña con suficiente afinidad. Si la proteína ha sido objeto de un esfuerzo previo de descubrimiento de
fármacos, puede encontrarse información de la unión a moléculas pequeñas en una base de datos pública, como BindingDB (Gilson et al., 2016),
PubChem (Kim et al., 2021) o ChEMBL (Gaulton et al., 2012) o en un artículo o patente cuyos datos aún no han sido incluidos en estas bases de datos.
También se puede comprobar el Protein Data Bank (Berman et al., 2000; Berman y Gierasch, 2021) para conocer la estructura por cristalografía del
compuesto estudiado, lo que puede ayudar a localizar una cavidad de unión adecuada para la pequeña molécula que se va a desarrollar como
fármaco. Esto es efectivo para las enzimas metabólicas y los receptores que han evolucionado para unirse a pequeñas moléculas de sustrato y
transmisores. Muchas proteínas pertenecen a familias, tales como las proteína cinasas, cuyos miembros tienen propiedades similares (p. ej., una
cavidad de unión de ATP), de modo que si un miembro de una familia es susceptible de convertirse en una molécula con potencial terapéutico,
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propensos
a convertirse
en un objetivo
farmacológico.
Se están
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para investigar de forma sistemática todos los objetivos
farmacológicos codificados en el genoma humano que pudieran interactuar con una molécula con potencial terapéutico (Nguyen et al., 2017; Finan et
PubChem (Kim et al., 2021) o ChEMBL (Gaulton et al., 2012) o en un artículo o patente cuyos datos aún no han sido incluidos en estas bases de datos.
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También se puede comprobar el Protein Data Bank (Berman et al., 2000; Berman y Gierasch, 2021) para conocer
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compuesto estudiado, lo que puede ayudar a localizar una cavidad de unión adecuada para la pequeña molécula
que se
fármaco. Esto es efectivo para las enzimas metabólicas y los receptores que han evolucionado para unirse a pequeñas moléculas de sustrato y
transmisores. Muchas proteínas pertenecen a familias, tales como las proteína cinasas, cuyos miembros tienen propiedades similares (p. ej., una
cavidad de unión de ATP), de modo que si un miembro de una familia es susceptible de convertirse en una molécula con potencial terapéutico,
entonces es muy probable que los otros también lo sean. Por el contrario, los receptores de las proteínas a menudo tienen grandes superficies de
unión relativamente planas, en lugar de pequeñas cavidades para la unión adecuada de fármacos de molécula pequeña; por lo tanto, son menos
propensos a convertirse en un objetivo farmacológico. Se están realizando esfuerzos para investigar de forma sistemática todos los objetivos
farmacológicos codificados en el genoma humano que pudieran interactuar con una molécula con potencial terapéutico (Nguyen et al., 2017; Finan et
al., 2017; Hopkins y Groom, 2002) y para obtener mejor información sobre sitios que antes se consideraban no susceptibles de ser utilizados como
posibles objetivos terapéuticos (Dang et al., 2017).
La validación final de un posible objetivo farmacológico es el desarrollo exitoso de un fármaco nuevo que funciona al interactuar con él. Ese fármaco
novedoso se denomina primero en su clase. Un fármaco de este tipo es una verdadera innovación y puede representar un avance médico, por lo que
podría esperarse que cada proyecto de investigación de fármacos busque una molécula que sea la primera en su clase. De hecho, las empresas
farmacéuticas suelen participar en proyectos menos innovadores y más predecibles mediante el desarrollo de la imitación de fármacos contra
objetivos farmacológicos que ya están plenamente validados por un fármaco primero en su clase. Tales proyectos tienen como objetivo mejorar el
fármaco primero en su clase a través, por ejemplo, de una mayor potencia, menos efectos secundarios o una dosificación más conveniente (p. ej.,
fármaco oral en lugar de intravenoso) con la meta de llegar a producir un nuevo fármaco considerado el mejor de su clase. Por ejemplo, la lovastatina
de Merck comenzó a funcionar como la primera estatina, la primera de una clase de fármacos que reducen el colesterol mediante la inhibición de la
enzima HMG­CoA reductasa (cap. 37); pero otras estatinas, como la atorvastatina, también han logrado un enorme éxito comercial.
Más allá de los objetivos farmacológicos de proteína única
Una serie de fármacos, ya sea por accidente o por diseño, afectan a múltiples objetivos farmacológicos proteínicos, un fenómeno llamado
polifarmacología (Peters, 2013). Este fenómeno es común cuando el objetivo farmacológico pertenece a una familia de proteínas con sitios de unión
similares. Por ejemplo, el efecto fisiológico pleno de un antagonista adrenérgico está determinado por sus acciones en la familia de tipos y subtipos de
receptores adrenérgicos. Del mismo modo, muchos inhibidores de la proteína cinasa inhiben múltiples cinasas, cada una de ellas en un grado
diferente. Hay casos en los que actuar sobre varios objetivos farmacológicos resulta fructífero, como inhibir reacciones secuenciales en serie. La
modulación de varias proteínas en una única vía bioquímica o red de señalización supera la redundancia de un sistema biológico robusto y por lo
tanto, conduce a una mayor eficacia en comparación con la modulación de una sola proteína. Un solo compuesto puede, alternativamente, actuar
sobre dos objetivos farmacológicos completamente diferentes en vías diferentes, aunque esto es más difícil de lograr sin la creación de compuestos
más grandes. El análisis de sistemas moleculares complejos en relación con la acción de los fármacos se denomina farmacología de sistemas.
La polifarmacología no siempre es beneficiosa; de hecho, puede conducir a efectos tóxicos. Algunos de los efectos no deseados de un fármaco se
denominarán efectos adversos o incluso respuestas perjudiciales importantes a los fármacos. Por ejemplo, varios compuestos prometedores en un
inicio han demostrado unirse e inhibir hERG, un tipo de conducto de K+ del corazón que media la repolarización (la corriente IKr; véase el capítulo 34);
la inhibición de hERG puede conducir a arritmias potencialmente letales. Por lo tanto, el conducto hERG se ha convertido en un objetivo farmacológico
que debe evitarse de manera estricta en los proyectos relacionados con el descubrimiento de fármacos (Garrido et al., 2020).
Algunos fármacos de moléculas pequeñas no se unen a las proteínas en lo absoluto. Por ejemplo, los fármacos antineoplásicos con platino, como el
carboplatino, destruyen las células neoplásicas al unirse mediante enlaces covalentes al ácido desoxirribonucleico (DNA, deoxyribonucleic acid); los
antibióticos aminoglucósidos bloquean la síntesis de proteínas bacterianas al unirse al RNA dentro del ribosoma bacteriano y los antivirales análogos
de nucleósidos se incorporan al DNA viral en lugar de los nucleósidos normales y luego bloquean su replicación. El medicamento sugammadex tiene
un propósito y un mecanismo inusuales. Los pacientes quirúrgicos a menudo reciben anestesia general y rocuronio, un relajante neuromuscular no
despolarizante que evita los movimientos involuntarios del músculo estriado durante los procedimientos quirúrgicos (cap. 13). El sugammadex, una
molécula más grande, con forma de copa, se une y fija al rocuronio. Por lo tanto, la inyección de sugammadex reduce con rapidez la concentración de
rocuronio libre en la sangre y revierte la parálisis cuando se completa un procedimiento.
Unión de proteínas y fármacos: Afinidad y regulación alostérica
Un fármaco exitoso con una proteína como objetivo farmacológico debe unirse a su objetivo con afinidad alta, de modo que incluso una pequeña
dosis del fármaco producirá una concentración de sangre lo suficientemente alta como para unirse a una gran fracción de la proteína a la que va
dirigida. Si la afinidad fuera baja, entonces sería necesaria una concentración alta del fármaco para que una fracción sustancial de los sitios del
objetivo farmacológico se ocupen y sería necesario administrar una dosis elevada del fármaco, lo que se acompaña de inconvenientes y un riesgo
creciente de efectos
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una molécula pequeña por una proteína por lo general se informa como la constante de disociación, es
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al fármaco; cuanto menor sea esta concentración, mayor será la afinidad (fig. 3–3). Los proyectos de diseño de fármacos suelen buscar una constante
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de disociación del orden de 10−9 mol/L (1 Nm); un “fármaco nanomolar” de este tipo se suele dosificar en miligramos a gramos por día. Un fármaco
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Un fármaco exitoso con una proteína como objetivo farmacológico debe unirse a su objetivo con afinidad alta, de modo que incluso una pequeña
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dosis del fármaco producirá una concentración de sangre lo suficientemente alta como para unirse a una gran fracción de la proteína a la que va
dirigida. Si la afinidad fuera baja, entonces sería necesaria una concentración alta del fármaco para que una fracción sustancial de los sitios del
objetivo farmacológico se ocupen y sería necesario administrar una dosis elevada del fármaco, lo que se acompaña de inconvenientes y un riesgo
creciente de efectos adversos. La afinidad de una molécula pequeña por una proteína por lo general se informa como la constante de disociación, es
decir, la concentración de moléculas de fármaco libre en la solución en la que 50% de la proteína que representa el objetivo farmacológico se ha unido
al fármaco; cuanto menor sea esta concentración, mayor será la afinidad (fig. 3–3). Los proyectos de diseño de fármacos suelen buscar una constante
de disociación del orden de 10−9 mol/L (1 Nm); un “fármaco nanomolar” de este tipo se suele dosificar en miligramos a gramos por día. Un fármaco
exitoso también debe mostrar un alto grado de especificidad para la proteína sobre la que actuará, lo que significa que el fármaco no interactúa con
otras proteínas que podrían conducir a efectos secundarios no deseados y toxicidad. En algunos casos, la eficacia de un fármaco puede verse influida
no solo por la afinidad, sino también por las constantes de velocidad cinética de unión y disociación de fármacos y proteínas, que determinan el
tiempo de permanencia del fármaco en su receptor (Copeland, 2016).
La mayor parte de los fármacos se unen a las proteínas objetivo a través de interacciones intermoleculares de atracción que no implican un enlace
químico covalente. Estas interacciones no covalentes suelen incluir:
Puentes de hidrógeno, en el cual un átomo electronegativo con un átomo de hidrógeno unido, como un grupo hidroxilo, comparte parcialmente
su hidrógeno con un átomo electronegativo en la otra molécula
Interacciones de atracción electrostática entre átomos de carga opuesta, tales como entre un ácido carboxílico con carga negativa que pertenece
al fármaco y la cadena lateral de arginina de una proteína con carga positiva
El efecto hidrófobo, en el cual partes no polares o “lípidicas” del fármaco y de la proteína se asocian entre sí para reducir su exposición energética
desfavorable al agua, de la misma manera que las gotitas de aceite se fusionan en el aderezo para ensaladas
Fuerzas de dispersión (la parte de atracción de las interacciones de van der Waals), que son interacciones de atracción de corto alcance entre los
dipolos eléctricos instantáneos que resultan de las fluctuaciones constantes de nubes de electrones atómicos con carga negativa alrededor de
núcleos atómicos con carga positiva
Estas fuerzas de atracción necesitan superar la tendencia entrópica del fármaco y la proteína a separarse, a causa de la energía térmica. De forma
inevitable, también hay fuerzas que se oponen a la unión y que deben ser superadas por las fuerzas de atracción. Por ejemplo, existe un mayor
consumo de energía para la eliminación de agua de los grupos químicos polares del ligando y de la proteína a medida que se unen. Por lo tanto, la
afinidad global de una interacción entre fármaco y proteína refleja un equilibrio delicado y difícil de predecir entre las interacciones de atracción y de
repulsión.
Los fármacos de moléculas pequeñas no se unen a las superficies exteriores relativamente lisas de las proteínas a las que van dirigidas, sino que se
pliegan al unirse a cavidades en la proteína (fig. 1–4). Esta disposición estructural hace posible formar las interacciones físicas extensas y de corto
alcance que se necesitan para mantener estrechamente unidas dos moléculas. Las cavidades a las que se unen las moléculas con potencial
terapéutico (es decir, las cavidades a las que se unen las moléculas pequeñas) suelen estar disponibles en enzimas cuyos sustratos son moléculas
pequeñas y en receptores que se unen a hormonas de moléculas pequeñas y transmisores. Sin embargo, muchas proteínas carecen de una cavidad
cóncava y por lo tanto es difícil o imposible la creación de fármacos de moléculas pequeñas. En tales casos, se puede considerar el desarrollo de una
proteína terapéutica, por ejemplo, un anticuerpo de diseño que se dirija a la proteína de interés. Debido a que las proteínas son grandes, pueden
formarse interacciones físicas extensas, de corto alcance, incluso con la superficie exterior relativamente plana de la proteína sobre la que se quiere
actuar y por lo tanto, pueden lograr una afinidad de unión adecuada donde un fármaco de molécula pequeña no podría. Estas consideraciones
también ayudan a explicar por qué es difícil desarrollar un fármaco de molécula pequeña que bloquee una interacción entre proteínas: la unión entre
proteínas implica por lo general un número grande de interacciones en una interfaz de unión relativamente plana entre las dos proteínas y una
molécula pequeña no puede conseguir la fijación suficiente en una superficie con estas características.
Téngase en cuenta que un fármaco no solo debe unirse a su objetivo farmacológico, sino que también debe tener el efecto deseado sobre él. Si el
objetivo es inhibir una enzima, entonces un fármaco que se una al sitio activo debe lograr esto con facilidad al bloquear la asociación de la enzima con
las moléculas del sustrato. Por el contrario, cuando el objetivo farmacológico es un receptor de superficie celular, una molécula pequeña podría
interactuar en el sitio agonista, pero sin inducir un cambio conformacional de activación y por lo tanto podría funcionar como un antagonista o
agonista inverso (cap. 3). Un fármaco también puede inhibir la función de una proteína al unirse en una cavidad fuera del sitio activo y por lo tanto,
modificar la conformación tridimensional de la proteína sobre la que se quiere actuar; esto es un efecto alostérico. Tal fármaco no solo debe unirse en
la cavidad adecuada, sino también inducir el cambio conformacional deseado. El efavirenz y la nevirapina, utilizadas en el tratamiento del VIH­sida,
son inhibidores no nucleósidos de la transcriptasa inversa que actúan en forma alostérica para inhibir la transcripción del RNA a DNA virales (fig. 65–
5). De manera2023­12­29
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con sitios alostéricos en los receptores GABAA (fig. 16–11) y otros receptores de asa de cistina (Cys)
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CAPÍTULO 1: Descubrimiento de fármacos: de las plantas medicinales al diseño de fármacos asistido por computadora, Michael K. Gilson;
para modular la función del receptor y del conducto. La regulación alostérica también puede ofrecer una estrategia refinada para dirigir una sola
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Así, al diseñar
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proteínas relacionadas con sitios activos similares, los miembros probablemente tendrán otras regiones de su estructura que son más variables y
las moléculas del sustrato. Por el contrario, cuando el objetivo farmacológico es un receptor de superficie celular, una molécula pequeña podría
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interactuar en el sitio agonista, pero sin inducir un cambio conformacional de activación y por lo tanto podría
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agonista inverso (cap. 3). Un fármaco también puede inhibir la función de una proteína al unirse en una cavidad
del
modificar la conformación tridimensional de la proteína sobre la que se quiere actuar; esto es un efecto alostérico. Tal fármaco no solo debe unirse en
la cavidad adecuada, sino también inducir el cambio conformacional deseado. El efavirenz y la nevirapina, utilizadas en el tratamiento del VIH­sida,
son inhibidores no nucleósidos de la transcriptasa inversa que actúan en forma alostérica para inhibir la transcripción del RNA a DNA virales (fig. 65–
5). De manera similar, varios ligandos interactúan con sitios alostéricos en los receptores GABAA (fig. 16–11) y otros receptores de asa de cistina (Cys)
para modular la función del receptor y del conducto. La regulación alostérica también puede ofrecer una estrategia refinada para dirigir una sola
enzima de una familia de enzimas similares. Así, al diseñar un fármaco, podría aprovecharse el hecho de que, incluso dentro de una familia de
proteínas relacionadas con sitios activos similares, los miembros probablemente tendrán otras regiones de su estructura que son más variables y
posiblemente únicas. Diseñar un ligando pequeño que se una a tal sitio podría producir un fármaco que sea un modificador alostérico bastante
selectivo para la función enzimática. Este método se está utilizando para seleccionar las fosfatasas proteínicas (Mullard, 2018).
Unos pocos fármacos de moléculas pequeñas reaccionan químicamente con las proteínas sobre las que actúan formando enlaces covalentes
irreversibles, en lugar de depender por completo de las atracciones no covalentes antes mencionadas. Tales fármacos con unión covalente se unen a
un grupo químico específico de la proteína sobre la que actúan, a menudo una cadena lateral reactiva de aminoácidos en el sitio catalítico de una
enzima. En principio, los fármacos con unión covalente deben requerir dosis más pequeñas y con menos frecuencia, porque un fármaco unido por
enlace covalente no se disociará de la proteína a medida que la concentración de fármaco libre disminuya con el paso del tiempo después de una
dosis (pero téngase en cuenta que algunos compuestos que contienen boro forman enlaces covalentes reversibles [Diaz y Yudin, 2017]). Los
desarrolladores de fármacos tienden a evitar los fármacos covalentes porque poseen grupos químicamente reactivos que corren el riesgo de
reaccionar no solo con el objetivo deseado, sino también con otras proteínas y biomoléculas, con la posibilidad de causar efectos biológicos no
deseados. Sin embargo, la selectividad se puede lograr por interacciones no covalentes específicas entre el fármaco y la proteína que desplazan el
compuesto a una ubicación y conformación donde se prepara para formar el enlace covalente deseado.
El enlace covalente se ha utilizado para dirigir e inhibir con éxito a un miembro de la familia RAS GTPasa (KRAS G12C) que con anterioridad se
consideraba como no susceptible de ser utilizado como objetivo terapéutico. Como resultado de tal posicionamiento dirigido, el fármaco
antineoplásico sotorasib gana potencia y especificidad al formar un enlace covalente con una cadena lateral de cisteína presente en una forma
mutante oncógena de KRAS pero no en el gen KRAS normal (Lanman et al., 2020).
ENFOQUES EXPERIMENTALES PARA EL DESCUBRIMIENTO DE FÁRMACOS
Una vez identificado el objetivo farmacológico, el siguiente paso importante en un proyecto de descubrimiento de fármacos es el surgimiento de una
molécula con potencial terapéutico, una molécula pequeña que se una con alta afinidad y especificidad al objetivo, que tiene el efecto deseado en él y
cumple otros criterios para un fármaco seguro y eficaz (Hefti, 2008). Algunos de estos criterios se refieren a la farmacocinética: ¿Qué tan bien se
absorberá el compuesto si se administra por vía oral? ¿Qué tan bien se distribuye a los órganos y tejidos en que ejercerá sus efectos? ¿Con qué rapidez
y mediante qué mecanismos se elimina? ¿Se metaboliza en un metabolito activo? Estas propiedades a menudo se agrupan como absorción,
distribución, metabolismo y excreción (ADME) o metabolismo y farmacocinética de fármacos (DMPK, drug metabolism and pharmacokinetics).
También es esencial confirmar que el compuesto no muestra toxicidad en las pruebas. Tanto la farmacocinética como la toxicidad pueden estudiarse
en un inicio in vitro. Por ejemplo, existen métodos in vitro que examinan la facilidad con que el compuesto entra en las células (cap. 4) y la
probabilidad de que las enzimas hepáticas (cap. 5) modifiquen la estructura química del compuesto. Los compuestos también se pueden estudiar in
vitro en busca de evidencia de toxicidad y efectos mutágenos. Sin embargo, los estudios in vitro no pueden modelar completamente las complejidades
de un organismo vivo; todavía son necesarios los estudios en animales para reducir las posibilidades de que un compuesto sea problemático cuando
se administre por primera vez a seres humanos. Por ejemplo, la toxicidad suele valorarse mediante el seguimiento a largo plazo de la salud de dos
especies de animales, por lo general un roedor (normalmente ratón) y un no roedor (a menudo un conejo), cuando se administra el compuesto. Una
molécula con buen potencial terapéutico debe cumplir con algunos criterios no biológicos. En particular, debe ser compatible con síntesis a gran
escala y purificación de alto grado a un costo aceptable y debe ser posible crear una presentación farmacéutica (p. ej., una tableta o una inyección) que
sea suficientemente hidrosoluble y estable.
Se han desarrollado tecnologías refinadas para acelerar el proceso de generación de moléculas con potencial terapéutico clínico. Estos se centran en
el descubrimiento o diseño de compuestos que se unen con alta afinidad (ligandos fuertes) a la proteína que representa el objetivo terapéutico. Se ha
avanzado menos en el diseño de la seguridad y la farmacocinética favorable. Estas propiedades plantean desafíos más complejos, porque van mucho
más allá de cómo una molécula pequeña y una proteína interactúan entre sí y en su lugar implican las interacciones de la molécula pequeña con miles
de biomoléculas diferentes en un sistema vivo. Las tecnologías para el descubrimiento de ligandos son tanto experimentales como computacionales y
en diferentes escenarios se aplican diferentes métodos. Las siguientes subsecciones se refieren a métodos amplios, pero no son integrales. Obsérvese
también que varios acercamientos pueden ser usados en forma combinada, así que las distinciones hechas aquí son en última instancia algo
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CAPÍTULO 1: Descubrimiento de fármacos: de las plantas medicinales al diseño de fármacos asistido por computadora, Michael K. Gilson;
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Química
farmacológica
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La química orgánica sintética permanece en el corazón del descubrimiento de fármacos de moléculas pequeñas, donde se especializa y se le conoce
el descubrimiento o diseño de compuestos que se unen con alta afinidad (ligandos fuertes) a la proteína que representa el objetivo terapéutico. Se ha
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avanzado menos en el diseño de la seguridad y la farmacocinética favorable. Estas propiedades plantean desafíos
más complejos,
van mucho
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más allá de cómo una molécula pequeña y una proteína interactúan entre sí y en su lugar implican las interacciones
de la
de biomoléculas diferentes en un sistema vivo. Las tecnologías para el descubrimiento de ligandos son tanto experimentales como computacionales y
en diferentes escenarios se aplican diferentes métodos. Las siguientes subsecciones se refieren a métodos amplios, pero no son integrales. Obsérvese
también que varios acercamientos pueden ser usados en forma combinada, así que las distinciones hechas aquí son en última instancia algo
artificiales.
Química farmacológica
La química orgánica sintética permanece en el corazón del descubrimiento de fármacos de moléculas pequeñas, donde se especializa y se le conoce
como química farmacológica. Los químicos farmacólogos suelen formar parte de un equipo de proyecto que incluye, entre otros, biólogos,
especialistas en estudios clínicos y químicos computacionales; su papel es reducir los conceptos químicos a la práctica mediante la síntesis y
purificación de compuestos que en última instancia pueden conducir a un nuevo fármaco. Además de proporcionar la experiencia necesaria para
sintetizar compuestos de interés, también ayudan a guiar el diseño y la selección de los compuestos que se van a fabricar. Una consideración clave es
la complejidad de la síntesis de un compuesto, o “accesibilidad sintética”, que debe equilibrarse con el nivel de interés en el compuesto. Por ejemplo,
puede ser difícil generar estereoisómeros puros de compuestos con múltiples átomos de carbono quiral y ciertas estructuras químicas pueden
sintetizarse solo a través de complejas síntesis de múltiples pasos. Un compuesto que es demasiado difícil de hacer o purificar no solo hará más lento
el esfuerzo de investigación, sino que también puede conducir a un fármaco que es demasiado costoso de fabricar.
Los químicos farmacólogos también informan sobre el proceso de diseño del fármaco proporcionando información sobre las propiedades de varios
grupos químicos que podrían incorporarse a este, como las interacciones de atracción o de repulsión que pueden formarse con la proteína a la que va
dirigido el fármaco, su susceptibilidad a los cambios metabólicos tras la administración, la posibilidad de formar de manera espontánea enlaces
covalentes no deseados con biomoléculas y su influencia en la capacidad del compuesto para cruzar la barrera hematoencefálica (que puede ser
deseable o indeseable, dependiendo del objetivo del proyecto). Esta experiencia entra en juego, por ejemplo, cuando un compuesto se une bien a su
objetivo farmacológico, pero se metaboliza con rapidez por el hígado en un producto inactivo. En este contexto, el químico farmacólogo puede
intentar sustituir la parte del compuesto que se metaboliza por un “bioisóstero”, un grupo químico diferente con una forma y capacidad similares
para interactuar con la proteína, pero con menor susceptibilidad a la modificación metabólica. En términos generales, décadas de experiencia han
llevado a la creación de una serie de reglas generales para lo que hace que un compuesto se “parezca a un fármaco” y que se conoce como la “regla de
los cinco” (Lipinski, et al., 2001). Estas pueden ser guías útiles durante los proyectos de descubrimiento de fármacos, pero también hay muchas
excepciones a las reglas (Zhang et al., 2007).
Detección de alto rendimiento (HTS, high­throughput screening)
Si no se sabe nada sobre la estructura de la proteína sobre la que se pretende actuar y qué pequeñas moléculas pueden unirse a ella, es común
recurrir a la detección de alto rendimiento (HTS), en el que se analizan miles o millones de compuestos mediante automatización y robótica (Wildley et
al., 2017). Se extraen pequeñas muestras de cada compuesto de una biblioteca de productos químicos almacenada y se depositan en placas con
capacidad para múltiples muestras para su análisis. A menudo se debe invertir un esfuerzo considerable para diseñar un estudio clínico que funcione
de forma fiable en miniatura y sin la intervención del usuario. La mayor parte proporcionan una lectura óptica, como un cambio de luminiscencia,
fluorescencia o color, ya que estos pueden medirse de forma eficaz con un lector óptico. Los compuestos examinados pueden variar desde parte de la
vasta colección de compuestos internos que una importante compañía farmacéutica ha reunido a lo largo de los años hasta un conjunto más pequeño
comprado a un proveedor comercial. Una biblioteca de detección suele estar diseñada para una aplicación concreta. Por ejemplo, se pueden comprar
bibliotecas clasificadas por su actividad contra las proteína cinasas, bibliotecas con grupos reactivos que pueden formar enlaces covalentes con la
proteína y bibliotecas diseñadas para muestrear una amplia gama de compuestos a través de una alta diversidad química. Un compuesto elegido al
azar de una biblioteca de cribado tiene una probabilidad muy baja (normalmente de 0.1% o menos) de tener actividad contra un determinado objetivo
(Shun et al., 2011), y las mediciones de HTS están sujetas a error experimental. Por lo tanto, muchos de los compuestos que parecen activos en una
detección inicial son positivos falsos, por lo que es esencial realizar un análisis cuidadoso de los datos y llevar a cabo pruebas confirmatorias.
Incluso los compuestos con resultados positivos en una detección de alto rendimiento distan mucho de ser fármacos. Su afinidad por el objetivo
farmacológico es por lo general de órdenes de magnitud demasiado pequeños, pueden carecer de la especificidad deseada y no cumplen con los
criterios necesarios de metabolismo, farmacocinética o de seguridad. Sin embargo, ofrecen un punto inicial en el desafío de encontrar una molécula
potente con potencial terapéutico. El siguiente paso es comprar (por catálogo) o sintetizar (química farmacológica) compuestos similares que en
última instancia dan una imagen de cómo varios cambios en la estructura química influyen en la actividad contra el objetivo farmacológico (relaciones
de actividad­estructura, o SAR [structure­activity relationships]) y otras propiedades (fig. 1–1). Esta información se utiliza para guiar la síntesis de
cientos de compuestos con propiedades que mejoran de manera gradual. Las moléculas iniciales más prometedoras (compuestos líderes) sirven
como puntos de partida para una mejora adicional (optimización de una molécula líder), con la idea de mejorar la molécula con potencial terapéutico,
tal vez acompañada
de varios
derivados
en caso de que la molécula original no tenga la utilidad terapéutica esperada.
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Figura
1–1 L. Brunton
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Relación estructura­actividad: estructuras básicas y sustitutos. Cinco inhibidores de la familia de enzimas de aldehído deshidrogenasa tienen una
potente con potencial terapéutico. El siguiente paso es comprar (por catálogo) o sintetizar (química farmacológica) compuestos similares que en
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última instancia dan una imagen de cómo varios cambios en la estructura química influyen en la actividad contra
el objetivo DE
farmacológico
(relaciones
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de actividad­estructura, o SAR [structure­activity relationships]) y otras propiedades (fig. 1–1). Esta información
se utiliza para guiar la síntesis de
cientos de compuestos con propiedades que mejoran de manera gradual. Las moléculas iniciales más prometedoras (compuestos líderes) sirven
como puntos de partida para una mejora adicional (optimización de una molécula líder), con la idea de mejorar la molécula con potencial terapéutico,
tal vez acompañada de varios productos derivados en caso de que la molécula original no tenga la utilidad terapéutica esperada.
Figura 1–1
Relación estructura­actividad: estructuras básicas y sustitutos. Cinco inhibidores de la familia de enzimas de aldehído deshidrogenasa tienen una
estructura química común (negro) mientras que tienen diferentes sustitutos químicos en dos posiciones (rojo, verde). En el cuadro se mencionan los
IC50 (μM) de cada compuesto para tres miembros de la familia de enzimas de aldehído deshidrogenasa: ALDH1A1, ALDH2 y ALDH3A1; es decir, la
concentración de compuesto necesaria para producir inhibición de 50% de cada enzima. Cuanto más bajo sea el IC50, más potente será el compuesto
que inhibe la enzima. Centrándose primero en los compuestos 1, 2 y 3, se puede observar que agregar un átomo halógeno cada vez más voluminoso
(Cl, Br) en el anillo de seis miembros tiende a reducir la potencia del compuesto contra ALDH1A1 y ALDH3A1, pero a aumentarla contra ALDH2. Al
observar los compuestos 1, 4 y 5, se puede ver que al agregar sustitutos aromáticos no polares cada vez más voluminosos, en el nitrógeno se reduce
poco la potencia contra ALDH1A1; al inicio mejora, pero más tarde afecta la potencia contra ALDH2 y mejora de forma consistente la potencia contra
ALD3A1. Tales patrones pueden guiar el diseño de nuevos compuestos con la potencia y selectividad deseadas. Por ejemplo, las sustituciones en los
compuestos 3 y 4 reducen cada uno su potencia contra ALDH1A1 mientras aumentan su potencia contra ALDH2, por lo que no es sorprendente que el
compuesto 6, que combina ambos sustitutos, tenga una potencia particularmente baja contra ALDH1A1 y una alta potencia contra ALDH2. Nótese que
este tipo de razonamiento solo puede ofrecer guías generales; sus predicciones no siempre se confirman en experimentos. Datos extraídos de Kimble­
Hill et al., 2014.
Descubrimiento de fármacos basado en fragmentos
Incluso una detección a gran escala podría no proporcionar resultados útiles (Keserü y Makara, 2009). Este resultado se vuelve comprensible cuando
uno reconoce que el número de compuestos orgánicos estables, del tamaño de un fármaco, se encuentra en el orden de 1060 (Reymond et al., 2010),
así que una detección de incluso 106 compuestos apenas representa una mínima parte del inmenso espacio químico. Esta gran cantidad se origina de
las diversas combinaciones de las formas de conectar varias subestructuras químicas, tales como anillos de benceno, grupos hidroxilo y alcanos
cíclicos. Para tener una buena unión, un compuesto debe contar con múltiples subestructuras colocadas de forma que se creen interacciones
favorables con los grupos complementarios en la cavidad donde ocurre la unión. Si un compuesto químico tiene dos sitios de unión adecuados para
el objetivo farmacológico, pero un tercer componente es inapropiado o se encuentra en el sitio incorrecto, podría no ocurrir la unión con el objetivo
farmacológico. Esta perspectiva motivó otro método de descubrimiento de medios de unión, el descubrimiento de fármacos basados en fragmentos
(FBDD, fragment­based drug discovery) (Erlanson, 2012; Lamoree y Hubbard, 2017). En el FBDD, se descomponen conceptualmente compuestos del
tamaño de los fármacos en sus subestructuras (fragmentos) y se analizan subestructuras simples contra el objetivo farmacológico. Aunque tales
moléculas (fragmentos) pueden unirse de manera débil, tales estudios pueden identificar un pequeño conjunto de subestructuras químicas que son
adecuadas para el objetivo farmacológico y luego se pueden comprar o sintetizar compuestos más grandes ensamblados a partir de estos
componentes. Cuando se utiliza la cristalografía de rayos X (Patel et al., 2014) o la espectroscopia de resonancia magnética nuclear (Shuker et al., 1996)
para detectar o analizar la unión de fragmentos, normalmente se dispone de información específica sobre dónde se une cada fragmento a la proteína.
Esta información puede utilizarse para unir compuestos diseñados que coloquen los fragmentos apropiados en los lugares adecuados para la cavidad
de fijación a la proteína (unión de fragmentos) o para optimizar y ampliar un fragmento seleccionado (aumento de tamaño de fragmentos). De esta
manera, el FBDD evita la gran cantidad de combinaciones de posibles compuestos producidos a partir de varios componentes químicos y permite a los
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centrarse con
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compuestos
hechos de un solo subconjunto productivo de componentes químicos. El fármaco vemurafenib,
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de la cinasa
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como
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el primer caso de éxito del FBDD (Bollag et al., 2012).
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Tecnologías experimentales emergentes
componentes. Cuando se utiliza la cristalografía de rayos X (Patel et al., 2014) o la espectroscopia de resonancia magnética nuclear (Shuker et al., 1996)
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para detectar o analizar la unión de fragmentos, normalmente se dispone de información específica sobre dónde se une cada fragmento a la proteína.
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Esta información puede utilizarse para unir compuestos diseñados que coloquen los fragmentos apropiados en los lugares adecuados para la cavidad
de fijación a la proteína (unión de fragmentos) o para optimizar y ampliar un fragmento seleccionado (aumento de tamaño de fragmentos). De esta
manera, el FBDD evita la gran cantidad de combinaciones de posibles compuestos producidos a partir de varios componentes químicos y permite a los
investigadores centrarse con rapidez en compuestos hechos de un solo subconjunto productivo de componentes químicos. El fármaco vemurafenib,
que se dirige a una mutación oncógena de la cinasa B­Raf se desarrolló con una estrategia de aumento de tamaño de fragmentos y se identificó como
el primer caso de éxito del FBDD (Bollag et al., 2012).
Tecnologías experimentales emergentes
La dificultad y el costo de descubrir fármacos, junto con la necesidad del mercado y la necesidad humana de nuevos medicamentos, han impulsado la
innovación continua en las tecnologías de descubrimiento de fármacos. Por ejemplo, las bibliotecas de compuestos codificados con DNA (DEL, DNA­
encoded compound libraries) amplían en forma notable el número de compuestos que pueden analizarse, en comparación con la HTS convencional
(Halford, 2017). A diferencia de una biblioteca tradicional de compuestos identificados por HTS, en la que cada uno de ellos se guarda en su propio
contenedor o en un vial independiente, un DEL es una mezcla de compuestos en un único contenedor y puede incluir muchos más compuestos, miles
de millones e incluso billones. Cada compuesto único de la mezcla está unido por enlace covalente a una molécula pequeña del DNA correspondiente,
que sirve como etiqueta de identificación. Tales bibliotecas pueden ser sintetizadas y etiquetadas con los métodos de química de combinación, donde
una mezcla de compuestos se divide en múltiples porciones, cada porción es modificada con un paso químico diferente y sus etiquetas de DNA son
modificadas en consecuencia, después las porciones son mezcladas de nuevo. Este proceso se repite hasta que la síntesis se completa. Para la
detección de compuestos activos con DEL, se puede inmovilizar el objetivo farmacológico de interés en una superficie sólida, se expone la superficie a
la mezcla de DEL y a continuación, se lava la superficie para eliminar todos los compuestos de DEL que no se han unido de manera firme al objetivo
farmacológico. Los compuestos se retiran del objetivo farmacológico mediante un lavado más intensivo y se identifican los compuestos activos
mediante la secuenciación de las etiquetas de DNA que portan.
Otra tecnología emergente, a veces denominada estudios clínicos en caja de Petri (Alpeeva et al., 2017; Fermini et al., 2018; Strauss y Blinova, 2017),
tiene como objetivo predecir los efectos de un compuesto en seres humanos con mayor precisión de lo que es posible con cultivos celulares estándar
o modelos animales. Este método implica la creación de tipos celulares específicos de interés a partir de células madre humanas pluripotenciales y su
uso para crear organoides tridimensionales en cultivo (Fligor et al., 2018; Liu et al., 2021; Sato y Clevers, 2013) o estructuras de tejidos artificiales a
través de bioimpresión tridimensional (Ferrer y Simeonov, 2017). Estas estructuras in vitro relativamente intrincadas prometen resumir mejor las
propiedades de los tejidos correspondientes in vivo y pueden utilizarse para analizar compuestos para identificar la actividad y las propiedades
metabólicas del fármaco, así como la farmacocinética y metabolismo del compuesto y su toxicidad.
DESCUBRIMIENTO DE FÁRMACOS ASISTIDO POR COMPUTADORA
La mejora en la tecnología de la información ha permitido a la comunidad investigadora almacenar y desplazar grandes cantidades de información,
escribir y mantener software complejo y realizar cálculos a una velocidad y escala sin precedentes. Estas capacidades de mejora continua se utilizan de
diversas formas para apoyar y acelerar el descubrimiento de fármacos. Así pues, la informática química permite la creación de bases de datos
compactas de información sobre cientos de millones de compuestos y la recuperación rápida de datos químicos para un compuesto específico o para
compuestos similares en su estructura química (Willett et al., 1998), mientras que en la Internet están fácilmente disponibles bases de datos sobre
productos químicos (Gaulton et al., 2012; Gilson et al., 2016; Kim et al., 2021), macromoléculas (Benson et al., 1994; Berman et al., 2000; Berman y
Gierasch, 2021; UniProt Consortium, 2015), vías macromoleculares (Croft et al., 2014; Ogata et al., 2000; Oughtred et al., 2021; Wishart et al., 2020) y
otras bases de datos de fácil acceso para investigadores de todo el mundo. Estos datos son útiles por derecho propio y también apoyan el desarrollo y
el análisis de modelos informáticos utilizados en el descubrimiento de fármacos.
En paralelo, los aumentos exponenciales en la velocidad de las computadoras, medidos como el número de operaciones matemáticas ejecutadas por
segundo, han hecho posibles simulaciones moleculares más detalladas y en mayor número. De forma ideal, un químico computacional podría diseñar
un compuesto, entregar el diseño a un químico farmacólogo para sintetizarlo y el compuesto debería unirse con el objetivo farmacológico con
afinidad nanomolar. Cuando este nivel de precisión se vuelve factible, se puede ir más allá y calcular la afinidad de una molécula con potencial
terapéutico con todas las proteínas humanas conocidas para verificar las interacciones no deseadas. Este nivel de precisión no es posible hoy en día,
pero los métodos existentes tienen valor predictivo y el creciente poder informático puede hacer que esta visión se pueda lograr en los próximos años.
Los métodos para predecir las interacciones de una molécula pequeña con una proteína pueden dividirse en métodos basados en ligando y basados
en la estructura, como se explica más adelante.
Uso de la similitud química para descubrir ligandos dirigidos
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de información
más extensa sobre los ligandos para el objetivo
farmacológico a partir de esfuerzos previos de descubrimiento de fármacos y esta información puede utilizarse para guiar un nuevo proyecto. Como
pero los métodos existentes tienen valor predictivo y el creciente poder informático puede hacer que esta visión se pueda lograr en los próximos años.
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Los métodos para predecir las interacciones de una molécula pequeña con una proteína pueden dividirse en métodos basados en ligando y basados
en la estructura, como se explica más adelante.
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Uso de la similitud química para descubrir ligandos dirigidos
Si la proteína sobre la que se actuará es una enzima con un sustrato de molécula pequeña o es un receptor de una molécula pequeña (p. ej.,
histamina), entonces, los compuestos similares en estructura química al sustrato o al transmisor pueden estar activos contra el objetivo y por lo tanto,
pueden resultar útiles para el diseño del fármaco (fig. 1–2). Puede disponerse de información más extensa sobre los ligandos para el objetivo
farmacológico a partir de esfuerzos previos de descubrimiento de fármacos y esta información puede utilizarse para guiar un nuevo proyecto. Como
se señaló antes, incluso si ya se ha desarrollado un fármaco para un objetivo farmacológico, todavía puede haber espacio para un fármaco del mismo
grupo con mejores propiedades, como una dosificación oral menos frecuente o menos efectos secundarios. En las publicaciones médicas está
disponible una gran cantidad de información que apoya el descubrimiento de fármacos basados en ligandos, patentes y bases de datos públicas
(Gaulton et al., 2012; Gilson et al., 2016; Kim et al., 2019).
Figura 1–2
Uso de la similitud química para desarrollar ligandos. A . Estatinas. Las estatinas inhiben la 3­hidroxi­3­metilglutaril coenzima A reductasa (HMG­CoA
reductasa), la enzima que limita la velocidad en la síntesis de colesterol. Estos inhibidores se utilizan ampliamente para reducir las concentraciones de
colesterol en la sangre (cap. 37). La mevastatina es un producto natural que inspiró el desarrollo de las tres estatinas aprobadas por la FDA que se
muestran aquí. Cada compuesto tiene una parte inferior policíclica ligada a un grupo funcional hidroxiácido común, que también puede existir como
lactona cíclica. B . Inhibidores SGLT. Los transportadores de sodio­glucosa (SGLT) facilitan la entrada de glucosa en el tubo digestivo (SGLT1) y en el
riñón (SGLT2). El producto natural florizina inhibe ambos SGLT en diversos grados. Las modificaciones de la estructura de la florizina llevaron a los
cuatro inhibidores de SGLT2 relativamente específicos aprobados por la FDA, las gliflozinas, que se muestran aquí. Las gliflozinas disminuyen la
reabsorción renal de glucosa, reduciendo así las concentraciones de glucosa en la sangre y por lo tanto se utilizan para tratar la diabetes tipo 2 (cap.
51). Cada compuesto tiene un grupo funcional de glucosa (excepto ertugliflozina, que tiene un grupo funcional similar a la glucosa), sensible para
compuestos que interactúan con transportadores que unen la glucosa. Los grupos funcionales que contienen fenilo dotan a cada inhibidor de
diversas actividades contra cada una de las dos formas de proteínas, como se muestra en el cuadro. Las actividades se muestran como IC50, la
concentración del fármaco (nM) que reduce la actividad del transportador en 50%. Datos adaptados de Fediuk et al. (2020) y Wright (2021).
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Las mediciones de similitud química resumen las estructuras químicas detalladas de los compuestos en características que pueden ser calculadas y
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comparadas entre las diferentes moléculas. Un método calcula la huella molecular de un compuesto, que indica si existen varias subestructuras
51). Cada compuesto tiene un grupo funcional de glucosa (excepto ertugliflozina, que tiene un grupo funcional similar a la glucosa), sensible para
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compuestos que interactúan con transportadores que unen la glucosa. Los grupos funcionales que contienen fenilo dotan a cada inhibidor de
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diversas actividades contra cada una de las dos formas de proteínas, como se muestra en el cuadro. Las actividades se muestran como IC50, la
concentración del fármaco (nM) que reduce la actividad del transportador en 50%. Datos adaptados de Fediuk et al. (2020) y Wright (2021).
Las mediciones de similitud química resumen las estructuras químicas detalladas de los compuestos en características que pueden ser calculadas y
comparadas entre las diferentes moléculas. Un método calcula la huella molecular de un compuesto, que indica si existen varias subestructuras
moleculares (Muegge y Mukherjee, 2016). Otras mediciones de similitud eliminan tales detalles y en su lugar calculan y comparan las formas generales
de las dos moléculas y los campos eléctricos que generan (Bajorath, 2017). En un tercer método, la forma molecular se deja de lado y en cambio se
calculan decenas o cientos de descriptores cuantitativos para cada compuesto. Los ejemplos incluyen descriptores simples, como el peso molecular o
el número de anillos aromáticos y otros más complejos, como los momentos eléctricos dipolares y cuadripolares. Si se considera a los descriptores
como coordenadas cartesianas en un espacio multidimensional, se puede cuantificar la similitud de dos moléculas en términos de lo cerca que están
en este espacio descriptor (Wale et al., 2008).
Las mediciones de similitud como estas permiten la detección virtual, una alternativa computacional rápida y económica a la HTS experimental (fig. 1–
3). En este método, cada compuesto de una biblioteca química, un gran conjunto de compuestos disponibles o sintetizables, se analiza por su
similitud con uno o más ligandos conocidos de la proteína sobre la que se pretende actuar. Los compuestos con mayor similitud se valoran en un
estudio clínico experimental y las moléculas con potencial terapéutico confirmado se vuelvan elegibles para una mayor optimización química. Este
método es más relevante cuando no se ha determinado la estructura tridimensional de la proteína. Cuando se conoce la estructura, se aplican
métodos potentes basados en la estructura.
Figura 1–3
Detección virtual. A . Detección virtual de compuestos basado en conceptos de similitud química. Utilizando las mediciones de similitud disponibles,
los compuestos de una base de datos (verde) se prueban por análisis computarizado para determinar la similitud química con los ligandos conocidos
(sitios de fijación) de la proteína estudiada. Los compuestos que se encuentran por arriba del umbral de similitud se consideran posibles ligandos y,
por lo tanto, se analizan de manera experimental para valorar su unión a la proteína estudiada. Los que resultan inactivos se desechan, mientras que
los “activos” son sometidos a rondas iterativas de optimización de ligando donde se definen las relaciones estructura­actividad y se utilizan para guiar
el diseño de nuevos
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datos (verde) se analizan por computadora; es decir, se ajusta el sitio de unión con la proteína estudiada de estructura tridimensional
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conocida. Los compuestos cuyas interacciones estabilizadoras calculadas con el sitio de unión se encuentran por arriba del umbral de similitud se
consideran posibles ligandos y por lo tanto, se analizan de manera experimental para la valorar la unión a la proteína estudiada. Los inactivos se
Detección virtual. A . Detección virtual de compuestos basado en conceptos de similitud química. Utilizando las mediciones de similitud disponibles,
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los compuestos de una base de datos (verde) se prueban por análisis computarizado para determinar la similitud
química con
conocidos
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(sitios de fijación) de la proteína estudiada. Los compuestos que se encuentran por arriba del umbral de similitud se consideran posibles ligandos y,
por lo tanto, se analizan de manera experimental para valorar su unión a la proteína estudiada. Los que resultan inactivos se desechan, mientras que
los “activos” son sometidos a rondas iterativas de optimización de ligando donde se definen las relaciones estructura­actividad y se utilizan para guiar
el diseño de nuevos compuestos por los químicos farmacólogos. Cuando se encuentran compuestos suficientemente activos, estos se convierten en
moléculas con potencial terapéutico en fase inicial. B . Detección virtual de compuestos basado en el acoplamiento proteína­ligando. Los compuestos
de una base de datos (verde) se analizan por computadora; es decir, se ajusta el sitio de unión con la proteína estudiada de estructura tridimensional
conocida. Los compuestos cuyas interacciones estabilizadoras calculadas con el sitio de unión se encuentran por arriba del umbral de similitud se
consideran posibles ligandos y por lo tanto, se analizan de manera experimental para la valorar la unión a la proteína estudiada. Los inactivos se
desechan, mientras que los “activos” se someten a rondas iterativas de optimización de ligando. Esto suele implicar el uso de la estructura de la
proteína para diseñar nuevos compuestos que pueden formar mejores interacciones con el sitio de unión y resolver las estructuras de la proteína por
cristalización con los compuestos seleccionados para determinar si los compuestos diseñados se unen como se esperaba y para guiar más rondas de
diseño químico y de síntesis. En esta etapa también se pueden utilizar métodos computacionales avanzados, como cálculos de energía libre basados
en simulación. Cuando se encuentran compuestos suficientemente activos, estos se convierten en moléculas con potencial terapéutico en fase inicial.
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La estructura
tridimensional detallada de una proteína abre una serie de métodos computacionales adicionales para diseñar una molécula pequeña
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que se una al objetivo con alta afinidad (fig. 1–4). La aplicabilidad de tales métodos de diseño de fármacos basado en la estructura (SBDD, structure­
based drug design) ha crecido de manera continua, debido a los aumentos rápidos en la potencia de cómputo y al desarrollo de tecnologías que hacen
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Diseño del fármaco basado en la estructura
La estructura tridimensional detallada de una proteína abre una serie de métodos computacionales adicionales para diseñar una molécula pequeña
que se una al objetivo con alta afinidad (fig. 1–4). La aplicabilidad de tales métodos de diseño de fármacos basado en la estructura (SBDD, structure­
based drug design) ha crecido de manera continua, debido a los aumentos rápidos en la potencia de cómputo y al desarrollo de tecnologías que hacen
que sea más fácil y rápida la identificación de las estructuras de las proteínas. Un ejemplo es el uso de sincrotrones (p. ej., el Advanced Photon Source
at Argonne National Laboratory) para generar haces de rayos X de alta calidad para su uso en cristalografía de rayos X de proteínas. Otro es el
desarrollo de métodos para resolver las estructuras de las proteínas unidas a la membrana, como los conductos iónicos y los receptores de la
superficie celular. Estos pueden ser posibles objetivos farmacológicos de alta calidad porque un fármaco no necesitaría entrar en la célula para
acceder a ellos y porque regulan muchos procesos celulares. Sin embargo, sus estructuras eran virtualmente imposibles de resolver hasta que se
desarrollaron métodos en los últimos años para hacer crecer cristales tridimensionales a partir de ellas. Desde al menos el decenio de 1980, la
promesa de avances en los métodos de SBDD ha inspirado la fundación de múltiples empresas.
Figura 1–4
Estructura cristalina de la proteasa del virus de la inmunodeficiencia humana 1 (proteasa VIH­1) con el inhibidor de la proteasa darunavir unido en el
sitio activo. Estructuras tubulares coloreadas: la estructura de la proteína de la enzima, un dímero simétrico compuesto de dos subunidades idénticas,
donde el color indica la estructura secundaria (amarillo, hoja β; rojo, hélice α; azul, giro; blanco, ninguno). Gris translúcido: superficie total de la
proteína, incluyendo átomos de cadena lateral y de la estructura básica. Bola y copa: darunavir en el sitio activo en forma de túnel, con átomos
coloreados por elemento (gris, carbono; rojo, oxígeno; azul, nitrógeno), con átomos de hidrógeno omitidos por simplicidad. Los puentes de
hidrógeno importantes se muestran como líneas verdes punteadas y el oxígeno de una molécula de agua enlaza el fármaco y la proteína, que se
muestra como una esfera de color rojo. Atomic coordinates from Protein Data Bank (Wang et al., 2011).
El campo de la química física se encarga de calcular la afinidad de unión de dos moléculas en el agua (Gilson y Zhou, 2007). De forma ideal, uno podría
usar soluciones numéricas de la ecuación de Schrödinger para obtener la función de onda electrónica para el compuesto, la proteína estudiada y el
solvente acuoso, para cualquier conformación dada del sistema (es decir, dadas las coordenadas cartesianas de todos los átomos). A partir de la
función de onda, podría calcularse la fuerza instantánea en cada átomo. Con este método de cálculo de las fuerzas atómicas, se podría simular el
sistema atómico en detalle, calculando el trabajo reversible de extraer de forma gradual el compuesto del sitio de unión de proteínas a medida que
todos los átomos se agitan, se ajustan y se desplazan debido al movimiento térmico (Feynman et al., 1963). Este trabajo reversible equivale a la energía
libre de unión, ΔG0, que está relacionada de manera directa con la constante de disociación, KD:
Ecuación 1­1
Esto sería un cálculo masivo prohibitivo con la tecnología informática existente. Sin embargo, los investigadores han creado aproximaciones rápidas a
tal cálculo ideal, cada uno con sus propias fortalezas y debilidades en términos de exactitud, rango de aplicabilidad y potencia de cómputo requerida
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(fig. 1–5).
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Figura 1–5
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Métodos computacionales basados en la física para estimar las afinidades de unión de proteína­ligando. Estos métodos proporcionan una estimación
libre de unión, ΔG0, que está relacionada de manera directa con la constante de disociación, KD:
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Ecuación 1­1
Esto sería un cálculo masivo prohibitivo con la tecnología informática existente. Sin embargo, los investigadores han creado aproximaciones rápidas a
tal cálculo ideal, cada uno con sus propias fortalezas y debilidades en términos de exactitud, rango de aplicabilidad y potencia de cómputo requerida
(fig. 1–5).
Figura 1–5
Métodos computacionales basados en la física para estimar las afinidades de unión de proteína­ligando. Estos métodos proporcionan una estimación
de la constante de asociación, KA, para la unión de un ligando, L, a una proteína de estructura tridimensional conocida, P, para formar un complejo
proteína­ligando, PL, que se mantiene unido por interacciones no covalentes tales como puentes de hidrógeno y el efecto hidrofóbico. La ecuación
relaciona KA con la energía libre estándar de unión ΔG0, la constante de los gases R y la temperatura absoluta T, además relaciona la energía libre de
unión con la concentración estándar C0 y los integrales de configuración del complejo proteína­ligando (ZPL), la proteína no unida (ZP) y el ligando no
unido (ZL). A medida que cada molécula tiene más conformaciones de baja energía (PL, P, L), aumenta el valor correspondiente de Z. Por lo tanto, si el
complejo proteína­ligando puede acceder a más conformaciones de baja energía que la proteína y el ligando separados, la constante de equilibrio
será grande, favoreciendo la unión. El cálculo directo de estas integrales de configuración es un reto computacional; sin embargo, los investigadores
han creado diversos métodos computacionales, que van desde métodos rápidos y aproximados que se espera sean menos precisos, hasta métodos
más detallados y exigentes que suelen ser más precisos (Gilson y Zhou, 2007). El acoplamiento, que se revisa en el texto, está en el extremo rápido del
espectro; trata a la proteína como si fuera rígida, junto con otras aproximaciones. Los cálculos de energía libre, también discutidos en el texto, están
en el extremo lento del espectro; tratan a la proteína y el ligando como si fueran flexibles. En el centro del espectro se encuentran la mecánica
molecular generalizada de Born/ área de superficie (MMGBSA) (Srinivasan et al., 1998), la mecánica molecular de Poisson­Boltzmann/área de
superficie (MMPBSA) (Gouda et al., 2003) y métodos de análisis mínimo (Chen et al., 2010). Estos utilizan varios métodos para estimar de forma directa
las integrales de configuración, ZPL, ZP y ZL. Por ejemplo, los métodos de análisis mínimo buscan conformaciones de baja energía de la proteína, el
ligando y el complejo; estima sus contribuciones individuales a Z y suma estas contribuciones para proporcionar una estimación global de la
configuración integral.
Una aproximación importante utilizada en el modelado molecular es el campo de fuerza o función potencial, un modelo matemático para las fuerzas
atómicas que pueden analizar órdenes de magnitud más rápido que resolver la ecuación de Schrödinger (Dauber­Osguthorpe y Hagler, 2019). Los
campos de fuerza a menudo contienen parámetros apropiados ajustados para dar concordancia con las soluciones de referencia de la ecuación de
Schrödinger. Con la disponibilidad de un campo de fuerza, resulta práctico utilizar simulaciones moleculares para estimar las energías libres de unión
a proteínas y ligando (Tembe y McCammon, 1984; Kollmann, 1993; Gilson et al., 1997; Simonson et al., 2002). Tales métodos de energía libre se
encuentran entre los más precisos disponibles para predecir las afinidades de unión de proteína con ligando (Schindler et al., 2020) y su uso por la
comunidad encargada del descubrimiento de fármacos ha sido posible por la aceleración de simulaciones moleculares en unidades de procesamiento
gráfico (GPU, graphics processing units) (Salomon­Ferrer R, et al., 2013). Sin embargo, incluso con las GPU, las simulaciones son demasiado lentas
para reemplazar una detección experimental de alto rendimiento de millones de compuestos. En cambio, las simulaciones se usan más a menudo
para ayudar a los químicos farmacéuticos a decidir qué variaciones químicas de un compuesto prometedor inicial vale la pena sintetizar y analizar. Las
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Descubrimiento
de también
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de fármacosque
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Bruntonque se podría formar una nueva cavidad de unión como resultado de los desplazamientos térmicos de las proteínas, es posible
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a proteínas y ligando (Tembe y McCammon, 1984; Kollmann, 1993; Gilson et al., 1997; Simonson et al., 2002). Tales métodos de energía libre se
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encuentran entre los más precisos disponibles para predecir las afinidades de unión de proteína con ligando
(Schindler et al.,
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comunidad encargada del descubrimiento de fármacos ha sido posible por la aceleración de simulaciones moleculares
en unidades de procesamiento
gráfico (GPU, graphics processing units) (Salomon­Ferrer R, et al., 2013). Sin embargo, incluso con las GPU, las simulaciones son demasiado lentas
para reemplazar una detección experimental de alto rendimiento de millones de compuestos. En cambio, las simulaciones se usan más a menudo
para ayudar a los químicos farmacéuticos a decidir qué variaciones químicas de un compuesto prometedor inicial vale la pena sintetizar y analizar. Las
simulaciones moleculares rápidas también se utilizan para explorar las diversas conformaciones que una proteína puede adoptar. Por ejemplo, si una
simulación muestra que se podría formar una nueva cavidad de unión como resultado de los desplazamientos térmicos de las proteínas, es posible
diseñar un fármaco que se una a este sitio no reconocido hasta ahora.
Otro método computacional, el acoplamiento molecular (Guedes et al., 2014; Huang, 2010; Meng, 2011), es lo suficientemente rápido como para
sustituir (o complementar) una detección experimental de alto rendimiento a gran escala. En el acoplamiento, la mayor parte o toda la proteína se
mantiene rígida y el software intenta un gran número de diferentes ubicaciones y conformaciones (posiciones) de una pequeña molécula en el sitio de
unión del objetivo farmacológico, buscando la que tenga energía más baja y por lo tanto, sea más estable. Como el acoplamiento excluye tantas
contribuciones conocidas a la energía libre de la unión (p. ej., flexibilidad de proteínas y entropía), el modelo de energía por lo general debe ser
ajustado contra los datos experimentales de la unión para hacerlo más predictivo. El modelo resultante se denomina a menudo puntuación de
acoplamiento, para diferenciarlo de un verdadero campo de fuerza. Los cálculos de acoplamiento se utilizan normalmente para HTS virtuales (fig. 1–
3), en los que miles o millones de compuestos de una biblioteca de productos químicos se ajustan con rapidez al sitio de unión de la proteína objetivo.
Decenas o cientos de los compuestos que puntúan mejor pueden entonces ser sometidos a cálculos más detallados o probados de forma
experimental. Aunque no todos los compuestos con buenas puntuaciones presentarán fijación, la fracción de fijación normalmente se enrique en
relación con la biblioteca de productos químicos en su conjunto. Además, las posiciones de unión predichas pueden proporcionar una visión
mecanicista y servir como puntos de partida para simulaciones moleculares (Guest et al., 2022; Heinzelmann y Gilson, 2021). Las funciones de
puntuación ajustadas de manera empírica que se utilizan en el acoplamiento también se pueden utilizar para guiar la edición química manual de un
fijador conocido con un software gráfico de modelado molecular. Por ejemplo, se puede editar de forma manual un compuesto existente en el
contexto de una representación tridimensional de la cavidad de unión para diseñar un nuevo compuesto que llegue a una cavidad vecina y forme
interacciones hidrófobas estabilizadoras y puentes de hidrógeno con la proteína. Este trabajo interactivo puede ser auxiliado por tecnologías de
visualización y manipulación inmersivas, como la realidad virtual.
Inteligencia artificial en el descubrimiento de fármacos
Las redes neuronales profundas han demostrado su poder en tareas de inteligencia artificial de gran alcance, como el reconocimiento de imágenes y
la traducción de idiomas; ahora los investigadores están explorando su uso en el descubrimiento de fármacos. Estos métodos pueden ser entrenados
a partir de datos existentes, tales como en colecciones existentes de datos de unión proteína­molécula pequeña, los resultados de la biblioteca de
compuestos codificados con DNA (DEL) y estructuras de proteínas, para permitir la predicción directa de la unión proteína­molécula pequeña y el
diseño automatizado de ligandos para la proteína estudiada. También pueden apoyar el descubrimiento de fármacos de otras maneras, por ejemplo,
prediciendo las estructuras tridimensionales de las proteínas (AlQuraishi, 2021; Baek et al., 2021; Jumper et al., 2021), las energías de las moléculas en
función de la conformación (Smith et al., 2017) y las propiedades moleculares como si un compuesto es soluble en agua (Francoeur y Koes, 2021). Sin
duda la inteligencia artificial y el aprendizaje automático desempeñarán un papel cada vez mayor en el descubrimiento de fármacos en los próximos
años.
DISEÑO DE MOLÉCULAS GRANDES COMO FÁRMACOS: EL AUMENTO DE LOS
BIOFARMACÉUTICOS
Las moléculas grandes son cada vez más importantes como agentes terapéuticos. Por ejemplo, los oligonucleótidos no codificantes se utilizan para
bloquear la transcripción o traducción de genes, al igual que los siRNA y los mRNA modificados (como en varias vacunas contra el SARS­CoV­2
[síndrome respiratorio agudo grave por coronavirus 2]). Las proteínas importantes utilizadas con fines terapéuticos incluyen anticuerpos
monoclonales, enzimas y hormonas peptídicas. Los tratamientos con proteínas eran poco comunes antes de la aparición de la tecnología de DNA
recombinante, excepto por las pocas hormonas peptídicas que podían aislarse y purificarse. La insulina se introdujo en la medicina clínica para el
tratamiento de la diabetes después de los experimentos de Banting y Best en 1921. Las insulinas purificadas a partir del páncreas porcino o bovino
tienen actividad en seres humanos, aunque en ocasiones ocurren problemas por la presencia de anticuerpos contra las proteínas extrañas. La
hormona del crecimiento, usada para tratar el enanismo hipofisario, muestra una especificidad de especie más estricta. Solo la hormona humana
puede ser utilizada después de la purificación de las hipófisis obtenidas durante la autopsia y tal uso se acompañaba de riesgos (algunos pacientes
que recibieron la hormona humana desarrollaron la enfermedad de Creutzfeldt­Jakob (el equivalente humano de la enfermedad de las vacas locas),
una enfermedad neurológica degenerativa letal causada por proteínas priónicas que contaminaron la preparación del fármaco.
Los tratamientos con proteínas ahora utilizan preparaciones purificadas de proteínas humanas (o humanizadas) gracias a la clonación de genes, la
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expresión del gen clonado en bacterias o en células eucariotas y las técnicas de producción a gran escala. Las proteínas raras pueden ser Page
producidas
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CAPÍTULO 1: Descubrimiento de fármacos: de las plantas medicinales al diseño de fármacos asistido por computadora, Michael K. Gilson;
en
grandes
cantidades
y
se
reducen
las
reacciones
inmunitarias.
Las
proteínas
se
pueden
diseñar,
personalizar
y
optimizar
mediante
técnicas
de
Laurence L. Brunton
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ingeniería
genética.
hormona del crecimiento, usada para tratar el enanismo hipofisario, muestra una especificidad de especie más estricta. Solo la hormona humana
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puede ser utilizada después de la purificación de las hipófisis obtenidas durante la autopsia y tal uso se acompañaba de riesgos (algunos pacientes
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que recibieron la hormona humana desarrollaron la enfermedad de Creutzfeldt­Jakob (el equivalente humano de la enfermedad de las vacas locas),
una enfermedad neurológica degenerativa letal causada por proteínas priónicas que contaminaron la preparación del fármaco.
Los tratamientos con proteínas ahora utilizan preparaciones purificadas de proteínas humanas (o humanizadas) gracias a la clonación de genes, la
expresión del gen clonado en bacterias o en células eucariotas y las técnicas de producción a gran escala. Las proteínas raras pueden ser producidas
en grandes cantidades y se reducen las reacciones inmunitarias. Las proteínas se pueden diseñar, personalizar y optimizar mediante técnicas de
ingeniería genética.
Las proteínas utilizadas con fines terapéuticos incluyen hormonas, factores de crecimiento (p. ej., eritropoyetina, factor estimulante de colonias de
granulocitos), citocinas y diversos anticuerpos monoclonales utilizados en el tratamiento del cáncer y las enfermedades autoinmunitarias (cap. 38, 39
y 40, 45 y 72). Los anticuerpos monoclonales murinos se pueden “humanizar” (sustituyendo las secuencias de aminoácidos de ratón por las de seres
humanos). Otro método consiste en la genomanipulación de ratones sustituyendo genes murinos críticos por sus equivalentes humanos, de tal
manera que producen anticuerpos completamente humanos. El tratamiento con proteínas se administra por vía parenteral y sus receptores u
objetivos farmacológicos deben ser accesibles desde el espacio extracelular.
Utilizando algunas de las estrategias antes descritas, las proteínas y péptidos terapéuticos sin anticuerpos se pueden optimizar en cuanto a
estabilidad, actividad y orientación a tipos de células particulares. Se están desarrollando péptidos terapéuticos, en especial en el área de la
interrupción de interacciones entre proteínas donde las grandes superficies de contacto pueden dificultar la acción de moléculas pequeñas. Los
métodos computacionales están resultando muy útiles en el diseño de tratamientos con péptidos (Belvisi et al., 2021). Las proteínas terapéuticas
suelen ser copias muy similares a proteínas naturales que están mejoradas para tener alta estabilidad (tanto durante la fabricación como después de
la administración), para evitar una degradación rápida, para obtener una inmunogenicidad baja y tener una potencia alta cuando se administran a un
paciente. Las estrategias incluyen la optimización de la expresión de la secuencia genética de una proteína en múltiples hospedadores, la exploración
de estructuras similares a la proteína de interés y mutaciones (aleatorias y racionales), la introducción de modificaciones postraduccionales y la
exploración de modificaciones biológicas como la fusión con macromoléculas (Dellas et al., 2021). Las estrategias de conjugación (p. ej., pegilación)
pueden utilizarse para mejorar las propiedades farmacocinéticas de las proteínas terapéuticas (Moncalvo et al., 2020). La lista de proteínas diseñadas
en años recientes que no son anticuerpos incluye fármacos para el tratamiento de cánceres, gota, coagulopatías y hemofilia, enfermedades
metabólicas hereditarias, trastornos de almacenamiento lisosómico, insuficiencia pancreática exocrina, insuficiencias de hormonas y factores de
crecimiento y degeneración macular, entre otros trastornos. El número de proteínas y péptidos terapéuticos no aprobados por la FDA está creciendo
con rapidez (véase una base de datos de proteínas y péptidos aprobados por la FDA en la dirección electrónica
https://webs.iiitd.edu.in/raghava/thpdb/index.html; Usmani et al., 2017). Algunas proteínas terapéuticas se administran en forma tópica o por vía oral,
pero la mayor parte se administran por inyección. Sin embargo, esto está cambiando con el desarrollo de sistemas de liberación liposómica de
fármacos, que se administran por vía parenteral, pero que pueden administrarse por inhalación, por vía ocular y tópica.
SOLICITUD DE NUEVOS FÁRMACOS EN FASE DE INVESTIGACIÓN CLÍNICA
Antes de que una molécula con potencial terapéutico pueda ser administrada a seres humanos en un estudio clínico, el patrocinador debe presentar
una solicitud de nuevo fármaco en investigación (IND, Investigational New Drug), la cual es una solicitud a la FDA para obtener permiso para usar el
fármaco en la investigación en seres humanos (véase más adelante la sección Estudios clínicos). La IND describe la justificación y las pruebas
preliminares de la eficacia en los sistemas experimentales, así como en farmacología, toxicología, química, fabricación, etc. También describe el plan
(protocolo) para investigar el fármaco en seres humanos. La FDA tiene 30 días para revisar la solicitud de la IND, momento en que la agencia puede
rechazarla, solicitar más datos o permitir que se realicen pruebas clínicas iniciales.
ESTUDIOS CLÍNICOS
Participación de la FDA
La FDA, una agencia reguladora federal del U.S. Department of Health and Human Services (DHHS), es responsable de proteger la salud pública
garantizando la seguridad, eficacia y seguridad de los fármacos para uso en medicina veterinaria y en seres humanos, los productos biológicos,
dispositivos médicos y alimentos, productos para uso cosmético y productos que emiten radiaciones en el territorio estadounidense (FDA, 2018). La
FDA también es responsable de favorecer la salud pública ayudando a acelerar las innovaciones que hacen que los medicamentos y los alimentos sean
más eficaces, seguros y asequibles, ayudando a las personas que necesitan utilizar medicamentos y alimentos para mejorar su salud, para que
obtengan información precisa y basada en datos científicos.
La primera legislación relacionada con los fármacos en Estados Unidos, la Federal Pure Food and Drugs Act de 1906, se refería solo al transporte
interestatal de2023­12­29
alimentos y9:10
fármacos
adulterados
o mal etiquetados. Las motivaciones para la regulación federal incluyeron a las “medicinas de
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CAPÍTULO
1:
Descubrimiento
de
fármacos:
de
las
plantas
medicinales
al diseño
de fármacos
asistido
por
Michael
Gilson;
patente” y su adulteración, publicados por el periodista
S. H. Adams
(a través
de artículos
en Colliers
Weekly
) y computadora,
la novela The Jungle
deK.
Upton
Sinclair
Laurence L. Brunton
(Law, 2004). En la ley de 1906, no había obligación de establecer la eficacia o seguridad de los medicamentos. Esta ley fue enmendada en 1938 después
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de la muerte de más de 100 niños por “elixir de sulfanilamida”, una solución de sulfanilamida en dietilenglicol, un disolvente excelente pero altamente
dispositivos médicos y alimentos, productos para uso cosmético y productos que emiten radiaciones en el territorio estadounidense (FDA, 2018). La
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FDA también es responsable de favorecer la salud pública ayudando a acelerar las innovaciones que hacen que los medicamentos y los alimentos sean
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más eficaces, seguros y asequibles, ayudando a las personas que necesitan utilizar medicamentos y alimentos para mejorar su salud, para que
obtengan información precisa y basada en datos científicos.
La primera legislación relacionada con los fármacos en Estados Unidos, la Federal Pure Food and Drugs Act de 1906, se refería solo al transporte
interestatal de alimentos y fármacos adulterados o mal etiquetados. Las motivaciones para la regulación federal incluyeron a las “medicinas de
patente” y su adulteración, publicados por el periodista S. H. Adams (a través de artículos en Colliers Weekly) y la novela The Jungle de Upton Sinclair
(Law, 2004). En la ley de 1906, no había obligación de establecer la eficacia o seguridad de los medicamentos. Esta ley fue enmendada en 1938 después
de la muerte de más de 100 niños por “elixir de sulfanilamida”, una solución de sulfanilamida en dietilenglicol, un disolvente excelente pero altamente
tóxico y el ingrediente de los anticongelantes. La aplicación de la ley fue confiada a la FDA, que comenzó a solicitar estudios de toxicidad, así como la
realización de solicitudes para aprobación de un nuevo fármaco (NDA, New Drug Application) (véase la sección La realización de estudios clínicos, más
adelante) antes de que un fármaco pudiera ser distribuido. Aunque había que demostrar la seguridad de un nuevo fármaco, no se requería prueba de
su eficacia.
En el decenio de 1960 se introdujo en Europa la talidomida, un fármaco hipnótico sin ventajas obvias sobre otros. La investigación epidemiológica
estableció que este medicamento, tomado en etapas iniciales del embarazo, causó una epidemia de un defecto congénito poco frecuente y grave, la
focomelia, en la cual se presenta malformación de las extremidades. En reacción a esta catástrofe, el Congreso de Estados Unidos aprobó las
enmiendas de Harris­Kefauver a la Food, Drug, and Cosmetic Act en 1962. Estas enmiendas establecieron el requisito de la prueba de eficacia, así como
la documentación de la seguridad relativa en términos de la relación riesgo­beneficio para la entidad patológica que se va a tratar (cuanto más grave
sea la enfermedad, mayor será el riesgo aceptable). Hoy en día, la FDA enfrenta un enorme desafío, en especial en vista de la creencia generalizada de
que su misión no puede ser cumplida con los recursos asignados por el Congreso. Además, el daño causado por efectos adversos imprevistos por el
consumo de fármacos no es el único riesgo de un sistema imperfecto; el daño también ocurre cuando el trámite retrasa la aprobación de un nuevo
fármaco con efectos beneficiosos importantes.
La realización de estudios clínicos
Los estudios clínicos de fármacos se diseñan para adquirir información sobre las propiedades farmacocinéticas y farmacodinámicas de una molécula
con potencial terapéutico en seres humanos y para establecer la eficacia y seguridad del fármaco antes de su venta en Estados Unidos. Los U.S.
National Institutes of Health (NIH) de Estados Unidos identifican siete principios éticos que deben satisfacerse antes de que inicie un estudio clínico
(NIH, 2021):
1. Utilidad social y clínica
2. Validez científica
3. Selección justa de los sujetos
4. Consentimiento informado
5. Relación riesgo­beneficio favorable
6. Revisión independiente
7. Respeto por los sujetos incluidos en el estudio
Los estudios clínicos regulados por la FDA por lo general se realizan en cuatro fases. Las fases I a III están diseñadas para establecer la seguridad y la
eficacia. Los estudios clínicos y encuestas después de la comercialización de fase IV reúnen datos adicionales de poblaciones más grandes y un mayor
número de dosis administradas. Esta fase proporciona información sobre nuevas indicaciones, riesgos y dosis y esquemas óptimos, como se
menciona en el capítulo 8. En el cuadro 1–1 y en la figura 1–6 se resumen las características importantes de cada fase de los estudios clínicos; se
observa el desgaste en cada etapa sucesiva durante un proceso relativamente largo y costoso. Cuando se completan los estudios clínicos iniciales de
fase III, el patrocinador (por lo general una compañía farmacéutica) solicita a la FDA la aprobación para comercializar el medicamento; esta solicitud se
denomina NDA o BLA (solicitud para la autorización de fármacos). Estas solicitudes contienen información completa, incluyendo formularios de
reporte de casos individuales de los cientos o miles de individuos que han recibido el fármaco durante las pruebas de fase III. Las solicitudes son
revisadas por equipos de especialistas y en casos complejos la FDA puede solicitar la colaboración de paneles de expertos externos.
CUADRO 1–1
CARACTERÍSTICAS TÍPICAS DE LAS FASES DE LOS ESTUDIOS CLÍNICOS EXIGIDOS POR LA FDA ANTES DE LA COMERCIALIZACIÓN DE NUEVOS
FÁRMACOS*
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CAPÍTULO 1: Descubrimiento de fármacos: de las plantas medicinales al diseño de fármacos asistido por computadora, Michael K. Page
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Laurence L. Brunton
FASE IV ESTUDIOS
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I PRIMERO
SERESReserved.FASE
II PRIMERO
ESTUDIO
CLÍNICO MULTICÉNTRICO DE
HUMANOS
PACIENTES
FASE III
DESPUÉS DE LA
fase III, el patrocinador (por lo general una compañía farmacéutica) solicita a la FDA la aprobación para comercializar el medicamento; esta solicitud se
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denomina NDA o BLA (solicitud para la autorización de fármacos). Estas solicitudes contienen información completa, incluyendo formularios de
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reporte de casos individuales de los cientos o miles de individuos que han recibido el fármaco durante las pruebas de fase III. Las solicitudes son
revisadas por equipos de especialistas y en casos complejos la FDA puede solicitar la colaboración de paneles de expertos externos.
CUADRO 1–1
CARACTERÍSTICAS TÍPICAS DE LAS FASES DE LOS ESTUDIOS CLÍNICOS EXIGIDOS POR LA FDA ANTES DE LA COMERCIALIZACIÓN DE NUEVOS
FÁRMACOS*
FASE I PRIMERO EN SERES
FASE II PRIMERO EN
ESTUDIO CLÍNICO MULTICÉNTRICO DE
HUMANOS
PACIENTES
FASE III
10 a 100 participantes
50 a 500 participantes
De unos cientos a unos miles de participantes
FASE IV ESTUDIOS
DESPUÉS DE LA
COMERCIALIZACIÓN
Varios miles de
participantes
Por lo general voluntarios sanos; en
Pacientes­sujetos que reciben el
Pacientes­sujetos que reciben el fármaco
Pacientes en
ocasiones en pacientes con
fármaco experimental
experimental
tratamiento con un
enfermedades avanzadas o poco
fármaco aprobado
frecuentes
Estudios abiertos
Seguridad y tolerabilidad
Asignación al azar y con grupo
Asignación al azar y con grupo testigo (el grupo
testigo (el grupo testigo puede
testigo puede recibir placebo) o podría no
Estudios abiertos
recibir placebo); puede ser un
incluirse un grupo testigo; puede ser un estudio
estudio ciego
ciego
Eficacia e intervalo de dosificación
Confirmación de la eficacia en una población más
Efectos adversos,
grande
apego terapéutico,
interacciones
farmacológicas
1 a 2 años
2 a 3 años
3 a 5 años
No hay una duración
fija
De 10 a 15 millones de dólares
De 20 a 40 millones de dólares
estadounidenses
estadounidenses
Tasa de éxito: 50%
Tasa de éxito: 30%
50 a 150 millones de dólares
Variable
Tasa de éxito: 25% a 50%
—
* Los costos de las diferentes fases de los estudios clínicos varían mucho según el área terapéutica del fármaco, el tamaño y la complejidad del estudio, si este debe
demostrar la ausencia de inferioridad con respecto a los fármacos existentes, etc.
El costo global del desarrollo de una nueva entidad molecular (NME), desde el laboratorio hasta la aprobación de la FDA, se estima entre 1 000 y 4 000 millones de
dólares.
Figura 1–6
Fases, plazos y desgaste que caracterizan el desarrollo de nuevos fármacos. Consulte también el cuadro 1–1.
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Figura 1–6
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Fases, plazos y desgaste que caracterizan el desarrollo de nuevos fármacos. Consulte también el cuadro 1–1.
En virtud de las disposiciones de la Prescription Drug User Fee Act (PDUFA, promulgada en 1992 y renovada cada 5 años, la más reciente en 2017), las
compañías farmacéuticas proporcionan una porción significativa del presupuesto de la FDA a través de tarifas a los usuarios, un esfuerzo legislativo
para acelerar el proceso de revisión de fármacos al proporcionar más recursos. El PDUFA también amplió el programa de seguridad de medicamentos
de la FDA y aumentó los recursos para revisar la publicidad de medicamentos en televisión. Bajo el PDUFA, la revisión toma de 6 a 10 meses después de
que un NDA es presentado a la FDA. Durante este tiempo, se realizan varias funciones de revisión, lo que incluye reuniones del comité asesor,
correcciones, inspecciones de instalaciones de fabricación y revisiones de nombres de marca (FDA, 2013). Antes de que un fármaco sea aprobado para
su comercialización, la compañía y la FDA deben acordar el contenido de la “etiqueta” (prospecto de envase), la información oficial de prescripción. En
este prospecto de envase se describen las indicaciones aprobadas para el uso del fármaco y la información clínica farmacológica, incluidas la dosis,
reacciones adversas y las advertencias y precauciones especiales (a veces incluidas en una “alerta”). Los materiales promocionales utilizados por las
compañías farmacéuticas no pueden diferir de la información contenida en el prospecto de envase. Es importante destacar que el médico no está
obligado por el prospecto de envase; un médico en Estados Unidos puede prescribir un fármaco para cualquier propósito que considere razonable.
Sin embargo, los terceros pagadores (compañías de seguros, Medicare, etc.) por lo general no reembolsarán a un paciente el costo de un fármaco
utilizado para una indicación “no autorizada”, a menos que el nuevo uso esté respaldado por un compendio legal (p. ej., el American Hospital
Formulary Service–Drug Information [AHFS­DI]). Además, un médico está expuesto a demandas si ocurren efectos adversos como consecuencia del
uso no aprobado de un fármaco.
Determinación de “seguridad” y “eficacia”
Para demostrar ante la FDA la eficacia de un fármaco es necesario realizar “investigaciones adecuadas y bien controladas”, que por lo general se
interpretan como la realización de dos estudios clínicos de repetición que suelen tener un diseño con asignación al azar, doble ciego y con grupo
testigo con placebo (o con otro fármaco), aunque no siempre se realizan de esta forma. ¿Es el placebo adecuado para el grupo testigo? La World
Medical Association’s Declaration of Helsinki (World Medical Association, 2013) desalienta el uso de grupo testigo con placebo cuando se dispone de
un tratamiento alternativo para la comparación, ya que existe la preocupación de que los participantes asignados al grupo testigo recibirían placebo,
con lo que se les negaría el tratamiento durante la realización del estudio clínico. ¿Qué se debe medir en los estudios clínicos? En un estudio clínico
sencillo, se mide un parámetro que sea fácil de cuantificar (un criterio de valoración secundario o sustituto), que se cree que es predictivo de los
resultados clínicos relevantes, en los grupos tratados con fármacos y placebo. Algunos ejemplos de criterios de valoración alternativos son el
colesterol de lipoproteínas de baja densidad (LDL, low­density lipoprotein) como predictor de infarto de miocardio, bajas concentraciones de
lipoproteínas de alta densidad (HDL, high­density lipoprotein) como predictor de reducción del riesgo de infarto de miocardio (recuadro 1–2), la
densidad mineral ósea como predictor de fracturas, o la hemoglobina A1c como predictor de las complicaciones de la diabetes mellitus. Los estudios
clínicos más estrictos exigen la demostración de la reducción de la incidencia de infarto de miocardio en los pacientes que toman una molécula con
potencial terapéutico en comparación con los que toman un inhibidor de la HMG­CoA reductasa (estatina) u otro agente reductor del colesterol LDL, o
bien, la reducción de la incidencia de fracturas en comparación con los que toman un bisfosfonato. El uso de criterios de valoración sustitutos reduce
de manera significativa el costo y el tiempo requeridos para completar los estudios clínicos, pero hay muchos factores atenuantes, incluyendo la
importancia del criterio de valoración que trataría la molécula con potencial terapéutico en estudio.
RECUADRO 1–2. Una sorpresa tardía en la búsqueda de un éxito de ventas
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El torcetrapib
incrementa9:10
las concentraciones
de colesterol HDL. Las concentraciones más elevadas de colesterol HDL se asocian estadísticamente
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con menor
Laurence
L. incidencia
Brunton de infarto de miocardio (representa un criterio de valoración indirecto). La administración clínica de torcetrapib provocó un
aumento
significativo
la mortalidad
porTerms
eventos
poniendo
fin•aAccessibility
una trayectoria de desarrollo de 15 años y 800 millones de
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dólares. En este caso, la aprobación del fármaco con base en este criterio de valoración indirecto habría sido un error (Cutler, 2007). Un análisis por
potencial terapéutico en comparación con los que toman un inhibidor de la HMG­CoA reductasa (estatina) u otro agente reductor del colesterol LDL, o
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bien, la reducción de la incidencia de fracturas en comparación con los que toman un bisfosfonato. El uso de criterios de valoración sustitutos reduce
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de manera significativa el costo y el tiempo requeridos para completar los estudios clínicos, pero hay muchos factores atenuantes, incluyendo la
importancia del criterio de valoración que trataría la molécula con potencial terapéutico en estudio.
RECUADRO 1–2. Una sorpresa tardía en la búsqueda de un éxito de ventas
El torcetrapib incrementa las concentraciones de colesterol HDL. Las concentraciones más elevadas de colesterol HDL se asocian estadísticamente
con menor incidencia de infarto de miocardio (representa un criterio de valoración indirecto). La administración clínica de torcetrapib provocó un
aumento significativo de la mortalidad por eventos cardiovasculares, poniendo fin a una trayectoria de desarrollo de 15 años y 800 millones de
dólares. En este caso, la aprobación del fármaco con base en este criterio de valoración indirecto habría sido un error (Cutler, 2007). Un análisis por
computadora sugirió una explicación sobre los mecanismos para este fracaso (Xie et al., 2009).
Algunas de las dificultades están bien ilustradas por las experiencias con ezetimiba, un fármaco que inhibe la absorción de colesterol en el tubo
digestivo y reduce las concentraciones de colesterol LDL en la sangre, en especial cuando se utiliza en combinación con una estatina. Se asumió que la
reducción del colesterol LDL era un criterio de valoración sustituto apropiado para conocer la eficacia de la ezetimiba para reducir el infarto de
miocardio y el accidente cerebrovascular; el fármaco fue aprobado con base en esta información. De forma sorprendente, un estudio clínico posterior
(ENHANCE) demostró que la combinación de ezetimiba y estatina no reducía el grosor de las capas íntima y media de las arterias carótidas (una medida
más directa de la acumulación de colesterol subendotelial) en comparación con la estatina sola, a pesar del hecho de que la combinación de
medicamentos redujo más las concentraciones de colesterol LDL que cualquier otro de los fármacos solos (Kastelein et al., 2008). Los críticos del
estudio clínico ENHANCE argumentaron que los pacientes en el estudio tenían hipercolesterolemia familiar, habían sido tratados con estatinas
durante años y no tenían engrosamiento de la arteria carótida al inicio del estudio. ¿Debería haber sido aprobada la ezetimiba? ¿Debemos volver a la
medición de los criterios clínicos reales (p. ej., infarto de miocardio) antes de aprobar fármacos que reducen el colesterol mediante mecanismos
novedosos? Los costos involucrados en tales estudios clínicos tan extensos y costosos deben ser solventados de alguna manera (véase más adelante).
Un estudio de seguimiento de 7 años que incluyó a más de 18 000 pacientes (ENHANCE­IT) reivindicó la decisión de utilizar ezetimiba (Jarcho y Keaney,
2015). Este fármaco tomado junto con una estatina redujo de manera significativa la incidencia de infarto de miocardio y accidente cerebrovascular en
pacientes con alto riesgo.
Ningún fármaco es seguro en su totalidad; en ciertas dosis todos los fármacos producen efectos indeseados en por lo menos algunas personas.
Muchos efectos graves e indeseables de los fármacos ocurren con tan poca frecuencia, tal vez solo una vez en varios miles de pacientes, que no se
detectan en las poblaciones relativamente pequeñas (unos pocos miles) en el estudio clínico estándar de fase III (cuadro 1–1). Detectar y verificar que
tales efectos poco frecuentes tienen relación con el uso del fármaco podría llegar a requerir la administración del medicamento a decenas o cientos de
miles de personas durante los estudios clínicos, lo que añadiría enormes gastos y tiempo al desarrollo del fármaco y retrasaría el acceso a
tratamientos potencialmente beneficiosos. En general, el verdadero espectro y la incidencia de los efectos adversos se conocen solo después de que
un medicamento es liberado en el mercado más amplio y utilizado por un gran número de personas (estudios de fase IV, vigilancia posterior a la
comercialización). Los costos del desarrollo y los precios de los fármacos podrían reducirse de manera sustancial si el público estuviera dispuesto a
aceptar más riesgos. Esto requiere cambiar la manera en que pensamos sobre la responsabilidad de una compañía farmacéutica por daños causados
por un efecto no deseado de un fármaco que no fue detectado en estudios clínicos considerados adecuados por la FDA. ¿Aceptaría el público un
fármaco con efectos no deseados graves, incluyendo la muerte, si su efecto terapéutico fuera único y valioso? Tales dilemas no son simples y pueden
convertirse en temas de gran debate.
Existen varias estrategias para detectar reacciones adversas después de la comercialización de un fármaco. Los métodos formales para la estimación
de la magnitud de una respuesta adversa a un fármaco incluyen los estudios de seguimiento o en cohortes de pacientes que reciben un fármaco
determinado; el estudio de casos y testigos, en el que se compara la frecuencia del uso de fármacos en casos con respuestas adversas con la de los
testigos; además de metaanálisis de estudios realizados antes y después de la comercialización. La notificación voluntaria de acontecimientos
adversos ha demostrado ser una forma eficaz de generar una señal temprana de que un fármaco puede estar causando una reacción adversa (Aagard
y Hansen, 2009). Los informes se originan de los médicos tratantes, alertas médicas y terceros pagadores (administradores de farmacias, compañías
de seguros); los consumidores también desempeñan papeles importantes. Otras fuentes útiles son las enfermeras, los farmacéuticos y los estudiantes
de estas disciplinas. Además, los comités hospitalarios de farmacia y terapéutica y los comités de calidad de la atención médica se encargan con
frecuencia de supervisar las reacciones adversas a los fármacos en pacientes hospitalizados. En Estados Unidos, la FDA patrocina MedWatch, un
programa de información sobre seguridad de medicamentos y notificación de eventos adversos. La página electrónica de MedWatch
(http://www.fda.gov/Safety/MedWatch/default.htm) proporciona formularios sencillos para informar y enumera las alertas de seguridad recientes
sobre fármacos específicos. En Estados Unidos, además del acceso en línea, puede establecerse comunicación al número telefónico 800­FDA­1088.
Los profesionales de la salud también pueden ponerse en contacto con el fabricante, quien está legalmente obligado a presentar informes ante la
FDA.
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MEDICINA
PERSONALIZADA
(INDIVIDUALIZADA,
DE PRECISIÓN)
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de estas disciplinas. Además, los comités hospitalarios de farmacia y terapéutica y los comités de calidad de la atención médica se encargan con
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frecuencia de supervisar las reacciones adversas a los fármacos en pacientes hospitalizados. En Estados Unidos,
la FDA patrocina
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programa de información sobre seguridad de medicamentos y notificación de eventos adversos. La página Access
electrónica
de MedWatch
(http://www.fda.gov/Safety/MedWatch/default.htm) proporciona formularios sencillos para informar y enumera las alertas de seguridad recientes
sobre fármacos específicos. En Estados Unidos, además del acceso en línea, puede establecerse comunicación al número telefónico 800­FDA­1088.
Los profesionales de la salud también pueden ponerse en contacto con el fabricante, quien está legalmente obligado a presentar informes ante la
FDA.
MEDICINA PERSONALIZADA (INDIVIDUALIZADA, DE PRECISIÓN)
Las personas que diseñan medicamentos se esfuerzan por “adaptar” el medicamento al paciente individual. Sin embargo, para alcanzar todo el
potencial de este método, se requiere un conocimiento profundo de la considerable heterogeneidad tanto de la población de pacientes como del
proceso patológico que se pretende tratar. ¿Por qué un antidepresivo parece mejorar la depresión en un paciente dado, mientras que otro fármaco
con el mismo mecanismo o muy similar no lo hace? ¿Se trata de una diferencia en la respuesta del paciente al fármaco, en la susceptibilidad del
paciente a los efectos no deseados del fármaco, en la absorción, distribución, metabolismo o excreción o en la causa de la depresión? ¿Qué tanto de
esta variabilidad es atribuible a factores ambientales y posiblemente a sus interacciones con la variabilidad genética específica del paciente? Los
avances recientes, en especial en genética y genómica, proporcionan herramientas poderosas para comprender esta heterogeneidad. La única
herramienta más poderosa para desenredar estos misterios es la capacidad de secuenciar el DNA en forma rápida y económica. El costo de secuenciar
el genoma humano es ahora de menos de 1 000 dólares, casi seis órdenes de magnitud menos en comparación con su precio a inicio del siglo XXI
(National Human Genome Research Institute, 2021). El centro de atención actual está en el análisis complejo de las cantidades enormes de datos que
ahora se obtienen de muchas áreas de individuos, idealmente en combinación con el conocimiento profundo de sus características fenotípicas, en
especial sus antecedentes médicos. Los biomarcadores de la enfermedad que se miden con facilidad son potentes complementos de la información
de la secuenciación del DNA. Se pueden desarrollar pruebas simples de sangre u otras pruebas para controlar el progreso en tiempo real o el fracaso
del tratamiento; muchos de estos ejemplos ya existen. Del mismo modo, las pruebas químicas, radiológicas y genéticas pueden ser útiles no solo para
controlar el tratamiento, sino para predecir el éxito o el fracaso, anticipar los efectos indeseados del tratamiento o apreciar variables farmacocinéticas
que pueden requerir ajustes de la dosis o la elección de los fármacos. Tales pruebas ya desempeñan una función importante en la elección de
medicamentos para la quimioterapia del cáncer, y la lista de medicamentos específicos diseñados para actuar sobre un objetivo farmacológico
mutado en un cáncer específico está creciendo. Esta información también se está volviendo cada vez más útil en la elección de pacientes para estudios
clínicos de fármacos específicos, reduciendo así el tiempo necesario para tales estudios clínicos y su costo, por no decir nada sobre definir mejor a la
población de pacientes que pueden beneficiarse del medicamento. Estos temas importantes se tratan con mayor detalle en el Capítulo 7,
Farmacogenética y en el Capítulo 8, Seguridad de los fármacos después de la comercialización.
CONSIDERACIONES DE POLÍTICA PÚBLICA
La industria farmacéutica opera en una economía capitalista
Los fármacos pueden salvar y prolongar vidas, además de mejorar la calidad de vida de las personas. Sin embargo, en una economía de libre mercado,
el acceso a los fármacos no es equitativo. No es sorprendente que haya tensión entre quienes tienen los derechos sobre los fármacos y quienes los ven
como productos de alta tecnología de una sociedad capitalista. Los que apoyan la posición de los poseedores de los derechos sobre los fármacos
sostienen que el derecho constitucional a la atención sanitaria debería garantizar el acceso a los mismos y critican a las compañías farmacéuticas y a
otras personas que se benefician del negocio de la fabricación y venta de medicamentos. Los partidarios del libre mercado señalan que, sin un motivo
de lucro, sería difícil generar los recursos y la innovación necesarios para el desarrollo de nuevos fármacos. El desarrollo de fármacos es tanto un
proceso científico como político y también un proceso sobre el cual las actitudes pueden cambiar con rapidez. Los críticos de la industria farmacéutica
con frecuencia comienzan desde la posición de que las personas (y los animales) necesitan ser protegidos de empresas y científicos codiciosos y sin
escrúpulos (Angell, 2015; Kassirer, 2005; Ryan y DeSanctis, 2005). En ausencia de una empresa de desarrollo de medicamentos controlada por el
gobierno, nuestro sistema actual depende de compañías farmacéuticas que son propiedad de inversores que, como otras compañías, tienen fines de
lucro y obligaciones con los accionistas. El precio de los fármacos de prescripción causa gran consternación entre los consumidores, en especial
porque muchas aseguradoras buscan controlar los costos al elegir no cubrir ciertos fármacos “de patente” (véase más adelante). Además, en los
últimos años se han introducido en el mercado algunos medicamentos (en especial para el tratamiento del cáncer) a precios que superaron en gran
medida los costos de desarrollo, fabricación y comercialización del producto. Muchos de estos productos fueron descubiertos en laboratorios del
gobierno o en laboratorios universitarios apoyados por subvenciones federales. Estados Unidos es el único país grande que no establece controles
sobre los precios de los medicamentos y donde el precio no influye en el proceso de aprobación de estos. Muchos medicamentos estadounidenses
cuestan mucho más en Estados Unidos que en el extranjero; por lo tanto, los consumidores estadounidenses subsidian los costos de los
medicamentos para el resto del mundo y se sienten irritados por ese hecho. El ejemplo de nuevos fármacos para el tratamiento de la infección por
hepatitis C pone en perspectiva muchas prioridades en conflicto (Recuadro 1–3).
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CAPÍTULO 1: Descubrimiento de fármacos: de las plantas medicinales al diseño de fármacos asistido por computadora, Michael K. Page
Gilson;
RECUADRO
1–3. El costo del tratamiento de la hepatitis C
Laurence
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La infección por el virus de la hepatitis C (VHC) es una enfermedad crónica que afecta a millones de personas. Algunos sufren poco por esta
medida los costos de desarrollo, fabricación y comercialización del producto. Muchos de estos productos fueron descubiertos en laboratorios del
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gobierno o en laboratorios universitarios apoyados por subvenciones federales. Estados Unidos es el únicoUNIVERSIDAD
país grande queDE
no EL
establece
controles
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sobre los precios de los medicamentos y donde el precio no influye en el proceso de aprobación de estos. Muchos
medicamentos
estadounidenses
cuestan mucho más en Estados Unidos que en el extranjero; por lo tanto, los consumidores estadounidenses subsidian los costos de los
medicamentos para el resto del mundo y se sienten irritados por ese hecho. El ejemplo de nuevos fármacos para el tratamiento de la infección por
hepatitis C pone en perspectiva muchas prioridades en conflicto (Recuadro 1–3).
RECUADRO 1–3. El costo del tratamiento de la hepatitis C
La infección por el virus de la hepatitis C (VHC) es una enfermedad crónica que afecta a millones de personas. Algunos sufren poco por esta
enfermedad; muchos otros eventualmente desarrollan cirrosis o carcinoma hepatocelular. ¿Quién debe ser tratado? Se desconoce la respuesta.
Hasta hace poco, el tratamiento preferido para las personas con VHC de genotipo 1 implicaba la administración de interferón durante un año (por
vía parenteral) en combinación con ribavirina y un inhibidor de la proteasa. Los efectos no deseados de este régimen son frecuentes y graves
(algunos mencionan que podrían ser peores a la enfermedad misma); las tasas de curación varían de 50% a 75%. Un tratamiento más reciente
consiste en una tableta oral que contiene una combinación de sofosbuvir y ledipasvir (cap. 63). El tratamiento por lo general requiere la ingestión
diaria de una tableta durante 8 a 12 semanas; las tasas de curación exceden 95% y los efectos secundarios son mínimos.
La controversia rodea el precio del tratamiento, cerca de 1 000 dólares estadounidenses al día. Algunas aseguradoras se negaron a reembolsar este
alto costo, relegando a muchos pacientes a un tratamiento menos efectivo, más tóxico, pero menos costoso. Sin embargo, estos terceros
pagadores han negociado descuentos sustanciales del precio, basados en la disponibilidad de un producto competidor. ¿Es el costo exorbitante?
¿Deberían las aseguradoras, en lugar de los pacientes y sus médicos, tomar decisiones tan importantes?
El incremento continuo y excesivo de los precios de los fármacos y otros gastos sanitarios arruinará el sistema sanitario. La cuestión del costo
apropiado implica complejas consideraciones farmacoeconómicas. ¿Cuáles son los costos relativos de los dos regímenes de tratamiento? ¿Cuáles
son los ahorros de la eliminación de las secuelas graves de la infección crónica por VHC? ¿Cómo se valora cuál es el régimen menos tóxico y más
eficaz y conveniente para este paciente? ¿Cuáles son los márgenes de utilidad de la empresa? ¿Quién debe tomar decisiones sobre los costos y las
opciones de los pacientes para recibir varios tratamientos? ¿Cómo se deben considerar los casos en los que los beneficios son bastante menores (a
diferencia de lo que ocurre con el virus de la hepatitis C), como cuando un fármaco antineoplásico muy costoso prolonga la vida solo por periodos
muy cortos? Un observador astuto (y un crítico de la industria de los precios de muchos fármacos) resumió la situación de la siguiente manera: “un
problema grande e importante; un ejemplo equivocado”.
El proceso de desarrollo de fármacos es largo, costoso y arriesgado (fig. 1–6 y cuadro 1–1). En consecuencia, los fármacos deben tener el precio para
recuperar los costos sustanciales de invención y desarrollo y para financiar los esfuerzos de comercialización necesarios para introducir nuevos
productos a médicos y pacientes. Dependiendo de los métodos de contabilidad para las ventas y la distribución, los fármacos de prescripción
representan 9% a 13% del gasto total en atención médica de Estados Unidos (Conti et al., 2021).
Aunque el aumento de los precios es significativo en ciertas clases de fármacos (p. ej., los agentes antineoplásicos), el precio total de los fármacos de
prescripción está creciendo a un ritmo más lento que otros costos relacionados con la atención a la salud. Incluso reducciones drásticas en los precios
de los fármacos que limitarían de forma grave la invención de nuevos medicamentos no reducirían el presupuesto general de atención sanitaria en
gran medida. ¿Son excesivos los márgenes de beneficios entre las principales empresas farmacéuticas? No hay una respuesta objetiva a esta pregunta.
Las respuestas pragmáticas provienen de los mercados y de las estadísticas de supervivencia de las empresas. El sistema de libre mercado
estadounidense ofrece mayores recompensas para áreas de trabajo en particular riesgosas e importantes y mucha gente argumenta que las
recompensas deberían ser mayores para aquellos que están dispuestos a asumir el riesgo. La industria farmacéutica es sin duda una de las más
arriesgadas:
Los costos de la comercialización de los productos son enormes.
La tasa de éxito del desarrollo de fármacos es baja (lo que representa gran parte del costo).
Tomando en consideración el tiempo prolongado de desarrollo, la protección efectiva de patente para la comercialización de un nuevo fármaco
es de solo una década (véase la sección Propiedad intelectual y patentes).
La regulación es estricta.
La responsabilidad legal por el producto es grande.
La competencia es feroz.
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CAPÍTULO
Descubrimiento
de fármacos:
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plantas medicinales
diseño de fármacos
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Con las 1:
fusiones
y adquisiciones,
el número
en el mundoalfarmacéutico
está disminuyendo.
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Muchos piensan que los precios de los fármacos deberían estar impulsados más por su impacto terapéutico y su necesidad médica, en lugar de por
consideraciones más simples de libre mercado; hay movimientos en esta dirección. Hay muchos componentes y puntos de contención en la
es de solo una década (véase la sección Propiedad intelectual y patentes).
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La regulación es estricta.
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La responsabilidad legal por el producto es grande.
La competencia es feroz.
Con las fusiones y adquisiciones, el número de empresas en el mundo farmacéutico está disminuyendo.
Muchos piensan que los precios de los fármacos deberían estar impulsados más por su impacto terapéutico y su necesidad médica, en lugar de por
consideraciones más simples de libre mercado; hay movimientos en esta dirección. Hay muchos componentes y puntos de contención en la
estimación del valor de un fármaco (Schnipper et al., 2015) y en consecuencia, no existe un método bien aceptado para responder a la pregunta del
valor.
¿Quién paga?
El costo de los fármacos de prescripción es sufragado por los consumidores (“de su bolsillo”), las aseguradoras privadas y los programas de seguros
públicos como Medicare, Medicaid y el State Children’s Health Insurance Program (SCHIP). Algunos de los principales minoristas y farmacias de venta
por correo administradas por aseguradoras privadas ofrecen incentivos al consumidor para la compra de fármacos genéricos y estas iniciativas han
ayudado a contener parte de los gastos domésticos en productos farmacéuticos; sin embargo, en Estados Unidos más de 30% del total de los costos
por fármacos al por menor se pagan con fondos públicos, con dólares de los impuestos. La atención médica en Estados Unidos es más cara que en
cualquier otro sitio, pero no es, en promedio, mejor que en el resto del mundo de forma demostrable. Esta es una forma en la cual el sistema
estadounidense se queda corto con respecto al acceso a los sistemas de salud. Aunque la Patient Protection and Affordable Care Act de 2010
(“Obamacare”) ha reducido el porcentaje de estadounidenses sin seguro de salud a un mínimo histórico, las soluciones prácticas al desafío de
proporcionar atención de salud para todos los que la necesitan deben reconocer la importancia de incentivar la innovación.
Propiedad intelectual y patentes
La invención de fármacos produce propiedad intelectual elegible para la protección de patentes, protección que es enormemente importante para la
innovación. Como señaló Abraham Lincoln, el único presidente de Estados Unidos en tener una patente (para un dispositivo para levantar barcos
sobre bancos de arena, que nunca se produjo comercialmente):
Antes [de las leyes de patentes], cualquier hombre podía usar instantáneamente lo que otro había inventado; de modo que el inventor no tenía
ninguna ventaja especial de su propia invención. El sistema de patentes cambió esto; aseguró al inventor, por un tiempo limitado, el uso exclusivo
de su invención y por lo tanto alimentó el interés en el ingenio, en el descubrimiento y en la producción de cosas nuevas y útiles. (Lincoln, 1859).
El sistema de protección de patentes de Estados Unidos proporciona protección durante 20 años a partir del momento en que se presenta la patente.
Durante este periodo, el propietario de la patente de un fármaco tiene derechos exclusivos para comercializar y vender el fármaco. Cuando la patente
expira, los fármacos genéricos pueden entrar en el mercado. Un producto genérico debe ser equivalente al original en cuanto a actividad terapéutica,
debe contener cantidades iguales del mismo ingrediente químico activo y alcanzar concentraciones iguales en sangre cuando se administra por las
mismas vías. Estos preparados genéricos se venden a menor precio que el fármaco original y sin los enormes costos de desarrollo que soporta el
titular original de la patente. El largo tiempo de desarrollo de fármacos, a menudo más de 10 años (fig. 1–6), reduce el tiempo durante el cual la
protección de patentes funciona según lo previsto. La Drug Price Competition and Patent Term Restoration Act de 1984 (Public Law 98­417,
denominada informalmente Ley Hatch­Waxman) permite al titular de una patente solicitar la ampliación del plazo de esta para compensar los retrasos
en la comercialización causados por los procesos de aprobación de la FDA; no obstante, el nuevo fármaco promedio que se introduce en el mercado
goza ahora de solo entre 10 y 12 años de protección por patente. Algunos argumentan que la protección de patentes para los fármacos debería
acortarse, de modo que una competencia genérica más temprana reduzca los costos de la atención sanitaria. El contraargumento es que los nuevos
fármacos tendrían precios aún más altos para proporcionar una compensación adecuada a las empresas durante un periodo de protección más corto.
Si eso es cierto, alargar la protección de las patentes permitiría en realidad precios más bajos. Recordemos que la protección de patentes vale poco si
se inventa y se comercializa un producto competitivo superior.
Ley Bayh­Dole
La Ley Bayh­Dole (35 U.S.C., Sección 200) de 1980 creó fuertes incentivos para que los científicos financiados por el gobierno federal en centros
médicos académicos abordaran la invención de fármacos con un espíritu empresarial. La ley transfirió los derechos de propiedad intelectual a los
investigadores y a sus respectivas instituciones (en lugar de al gobierno) para fomentar asociaciones con la industria que llevarían nuevos productos
al mercado en beneficio del público. Si bien la necesidad de proteger la propiedad intelectual es por lo general aceptada, este estímulo a las
colaboraciones de investigación entre el sector público y el privado ha dado lugar a preocupaciones acerca de conflictos de intereses por parte de
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científicos y universidades
(Kaiser,
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CAPÍTULO
1: Descubrimiento
de 2009).
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Fármacos
biosimilares
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La Ley Bayh­Dole (35 U.S.C., Sección 200) de 1980 creó fuertes incentivos para que los científicos financiados
por el gobiernoDE
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médicos académicos abordaran la invención de fármacos con un espíritu empresarial. La ley transfirió los derechos de propiedad intelectual a los
investigadores y a sus respectivas instituciones (en lugar de al gobierno) para fomentar asociaciones con la industria que llevarían nuevos productos
al mercado en beneficio del público. Si bien la necesidad de proteger la propiedad intelectual es por lo general aceptada, este estímulo a las
colaboraciones de investigación entre el sector público y el privado ha dado lugar a preocupaciones acerca de conflictos de intereses por parte de
científicos y universidades (Kaiser, 2009).
Fármacos biosimilares
El camino hacia la aprobación de una molécula pequeña sintetizada químicamente que es idéntica a un compuesto aprobado cuya protección de
patente ha expirado es relativamente sencillo. No aplica lo mismo para moléculas grandes (por lo general proteínas), que por lo general se derivan de
un organismo vivo (p. ej., células eucariotas o cultivo bacteriano). La modificación covalente de proteínas (p. ej., glucosilación) o las diferencias
conformacionales pueden influir en la farmacocinética, farmacodinámica, inmunogenicidad u otras propiedades y la demostración de equivalencia
terapéutica puede ser un proceso complejo. En 2010 se promulgó la Biologics Price Competition and Innovation Act como parte de la Affordable Care
Act. La intención era implementar una vía corta de concesión de licencias para ciertos productos biológicos “similares”. La biosimilitud se define como
“que el producto biológico es muy similar a un producto de referencia a pesar de diferencias menores en los componentes clínicamente inactivos” y
que “no hay diferencias clínicamente significativas entre el producto biológico y el producto de referencia en términos de seguridad, pureza y potencia
del producto”. En general, una solicitud de licencia de un fármaco biosimilar debe proporcionar datos satisfactorios de estudios analíticos, estudios
con animales y uno o más estudios clínicos. Sin embargo, la interpretación de este lenguaje ha implicado discusiones interminables y las reglas duras
y rápidas parecen poco probables.
Publicidad de fármacos
En un mundo ideal, los médicos aprenderían todo lo que necesitan saber sobre los fármacos a través de publicaciones médicas y los buenos fármacos
deberían venderse por sí solos. En su lugar, hay publicidad impresa, visitas de representantes médicos y una amplia publicidad directa dirigida al
público (en forma impresa, en la radio y en especial en la televisión). Hay casi 80 000 representantes de ventas de la industria farmacéutica en Estados
Unidos, lo que representa casi 10 veces más que el número de médicos. El número de representantes disminuyó con respecto a los casi 100 000 que
había en 2010, una disminución posiblemente relacionada con una mayor atención a los conflictos de intereses. La cantidad de dinero gastado en la
publicidad de fármacos se aproxima o tal vez incluso supera al dinero gastado en investigación y desarrollo. Las empresas farmacéuticas han sido en
especial vulnerables a las críticas por algunas de sus prácticas de comercialización (Angell, 2015). Los materiales promocionales utilizados por las
compañías farmacéuticas no pueden diferir de la información contenida en el prospecto aprobado por la FDA. Además, debe haber un equilibrio
aceptable entre la presentación de declaraciones terapéuticas para un producto y la revisión de los efectos indeseados. A pesar de tales requisitos, la
publicidad directa al consumidor de medicamentos recetados sigue siendo motivo de controversia y solo se permite en Estados Unidos y Nueva
Zelanda. Canadá permite una forma modificada de publicidad en la que se puede mencionar el producto o la indicación, pero no ambas. La eficacia
del marketing televisado directo es mensurable (Gray et al., 2020; Sullivan et al., 2021) y los médicos ceden con frecuencia, aunque con recelos, a las
peticiones de medicamentos específicos de los pacientes, impulsadas por la publicidad.
El argumento contrario a tal comercialización es que los pacientes son educados por tales esfuerzos de comercialización y por lo tanto son alentados a
buscar atención médica, en especial para enfermedades (p. ej., depresión) para las que podría haber cierto grado de negación (Avery et al., 2012). Una
crítica importante de la comercialización del fármaco implica algunos de los acercamientos desagradables usados para influir en el comportamiento
médico. Los regalos costosos (p. ej., entradas a eventos deportivos) están prohibidos, pero se utilizan mucho las cenas en las que se proporciona
información sobre la prescripción de fármacos. Se paga a un gran número de médicos como “consultores” para hacer presentaciones en tales
entornos. En muchos centros médicos de enseñanza y en varios estados está prohibido por ley que los médicos acepten regalos de las compañías
farmacéuticas, sin importar qué tan pequeños sean. En 2009, la junta directiva de Pharmaceutical Research and Manufacturers of America (PhRMA)
adoptó un Código sobre interacciones con profesionales de la salud mejorado que prohíbe la distribución de artículos no educativos, prohíbe a los
representantes de ventas de la empresa proporcionar comidas de restaurante a los profesionales de la salud (aunque se conceden excepciones
cuando un orador externo realiza la presentación) y exige que las empresas se aseguren de que sus representantes estén informados sobre las leyes y
normativas que rigen las interacciones con los profesionales de la salud.
Preocupaciones sobre la injusticia global
El descubrimiento de fármacos es costoso (véase el cuadro 1–1), y las realidades económicas influyen en la dirección de la investigación farmacéutica.
Por ejemplo, las empresas con inversionistas por lo general no pueden permitirse el lujo de desarrollar productos para enfermedades raras o para
enfermedades que son comunes solo en las regiones del mundo con subdesarrollo económico. Los fondos para inventar medicamentos contra
enfermedades raras o enfermedades que afectan principalmente a los países en desarrollo (p. ej., paludismo, esquistosomiasis y otras enfermedades
parasitarias) a menudo provienen de contribuyentes o filántropos ricos.
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Como
el desarrollo
de nuevos fármacos es tan caro, la inversión del sector privado en innovación farmacéutica se ha centrado en productos que
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de patentes con una economía de libre mercado. En
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consecuencia, existe preocupación sobre el grado en que las leyes de protección de patentes estadounidenses y europeas han restringido el acceso a
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El descubrimiento de fármacos es costoso (véase el cuadro 1–1), y las realidades económicas influyen en la UNIVERSIDAD
dirección de la investigación
farmacéutica.
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Por ejemplo, las empresas con inversionistas por lo general no pueden permitirse el lujo de desarrollar productos para enfermedades raras o para
enfermedades que son comunes solo en las regiones del mundo con subdesarrollo económico. Los fondos para inventar medicamentos contra
enfermedades raras o enfermedades que afectan principalmente a los países en desarrollo (p. ej., paludismo, esquistosomiasis y otras enfermedades
parasitarias) a menudo provienen de contribuyentes o filántropos ricos.
Como el desarrollo de nuevos fármacos es tan caro, la inversión del sector privado en innovación farmacéutica se ha centrado en productos que
tendrán mercados lucrativos en países ricos como Estados Unidos, que combinan la protección de patentes con una economía de libre mercado. En
consecuencia, existe preocupación sobre el grado en que las leyes de protección de patentes estadounidenses y europeas han restringido el acceso a
fármacos que pueden salvar vidas en los países en desarrollo. Para reducir los costos, las compañías farmacéuticas prueban cada vez más sus
medicamentos experimentales fuera de Estados Unidos y en la Unión Europea, en países en desarrollo donde hay menos regulación y acceso más fácil
a un gran número de pacientes. Según el U.S. DHHS, ha habido un aumento de 2 000% en los estudios clínicos de fármacos realizados fuera de Estados
Unidos en los últimos 25 años. Cuando estos fármacos tienen éxito en la obtención de la aprobación de comercialización, los consumidores en los
países donde se llevaron a cabo los estudios clínicos a menudo no pueden pagarlos. Algunos especialistas en ética han argumentado que esta práctica
viola el principio de justicia articulado en el Informe Belmont (DHHS, 1979, pág. 10), que establece que “la investigación no debe involucrar
indebidamente a personas de grupos que probablemente no se encuentren entre los beneficiarios de aplicaciones posteriores de la investigación”.
Un contraargumento es que la realización de estudios clínicos en países en desarrollo también trae con frecuencia la atención médica necesaria a las
poblaciones desatendidas. Este es otro motivo de controversia.
Responsabilidad por los productos
Las leyes de responsabilidad por los productos tienen por objeto proteger a los consumidores de los productos defectuosos. Las compañías
farmacéuticas pueden ser demandadas por diseño o fabricación defectuosos, prácticas promocionales engañosas, violación de los requerimientos
normativos o no advertir a los consumidores de los riesgos conocidos. Las demandas por información insuficiente pueden hacerse contra los
fabricantes de los fármacos, incluso cuando el producto ha recibido la aprobación de la FDA. Con mayor frecuencia, los tribunales han encontrado
responsabilidad de las empresas que venden de forma directa fármacos de prescripción a los consumidores cuando los anuncios no proporcionan
una advertencia adecuada de los posibles efectos adversos. Aunque los pacientes lesionados tienen derecho a buscar remedios legales, los efectos
negativos de las demandas por responsabilidad de productos contra las compañías farmacéuticas pueden ser considerables. En primer lugar, el
miedo a la responsabilidad puede hacer que las compañías farmacéuticas sean cautelosas en exceso con respecto a las pruebas, retrasando así el
acceso al fármaco. En segundo lugar, el costo de los fármacos aumenta para los consumidores cuando las empresas farmacéuticas aumentan la
duración y el número de estudios clínicos que realizan para identificar incluso los riesgos más pequeños y cuando las agencias reguladoras aumentan
el número o la intensidad de las revisiones reglamentarias. En tercer lugar, los costos excesivos de responsabilidad desaniman el desarrollo de los
llamados fármacos huérfanos, productos farmacéuticos que benefician a un pequeño número de pacientes. ¿Deberían las compañías farmacéuticas
ser responsables de no advertir cuando todas las reglas fueron seguidas y el producto fue aprobado por la FDA pero el efecto indeseado no fue
detectado debido a su baja frecuencia o por otro factor de confusión? La única manera de encontrar “todos” los efectos no deseados que puede tener
un medicamento es comercializarlo, para llevar a cabo un “estudio clínico” o un estudio observacional fase IV. Es poco probable que se resuelva esta
diferencia entre el riesgo para los pacientes y el riesgo económico de desarrollar fármacos, excepto cuando se realice caso por caso ante un juez. La
Corte Suprema de Estados Unidos retomó estos temas controversiales en 2009 en el caso Wyeth vs. Levine. Una paciente (Levine) sufrió gangrena de
un brazo después de la administración arterial inadvertida de prometazina, un fármaco para el tratamiento de la náusea, y más tarde perdió la mano.
El médico tenía la intención de administrar el fármaco en inyección intravenosa. La etiqueta aprobada por la FDA recomendaba evitar la
administración intravenosa en bolo, pero no la prohibía de manera expresa. El tribunal estatal y luego la Suprema Corte de Estados Unidos
responsabilizaron tanto al médico como a la compañía por daños y perjuicios. En específico, el tribunal de Vermont determinó que Wyeth, el
fabricante del fármaco no había proporcionado información adecuada y suficiente. Esto significa que la aprobación de la información por la FDA no
protege a una compañía de responsabilidad ni impide que los estados individuales impongan reglamentos más estrictos que los requeridos por el
gobierno federal.
“Fármacos de copia” frente a la verdadera innovación: El desarrollo de nuevos fármacos
Como se mencionó antes, el término “fármaco de copia” describe un producto farmacéutico que suele ser de una estructura similar a un fármaco que
ya está en el mercado. Otros nombres utilizados son medicamentos derivados, modificaciones moleculares y fármacos de seguimiento. En algunos
casos, un fármaco de copia es una molécula diferente desarrollada de forma deliberada por una empresa de la competencia para recuperar
participación contra los medicamentos existentes en el mercado. Cuando el mercado de una clase de fármacos es en especial grande, varias empresas
pueden compartir el mercado y obtener ganancias. Otros fármacos de copia aparecen en forma casual por el desarrollo simultáneo de productos por
parte de varias empresas sin saber qué medicamentos se aprobarán para la venta (Recuadro 1–4). Hay críticas válidas para los fármacos de copia. En
primer lugar, un interés excesivo en las ganancias puede reprimir la verdadera innovación. En segundo lugar, algunos fármacos de copia son más
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sustituir, lo que aumenta los costos de la atención médica sin los correspondientes beneficios para
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fármacos:
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los pacientes. Sin embargo, para algunos pacientes,
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favorece el apego terapéutico. Algunos fármacos de copia también añaden un gran valor desde el punto de vista comercial y médico. Por ejemplo, la
ya está en el mercado. Otros nombres utilizados son medicamentos derivados, modificaciones moleculares y fármacos de seguimiento. En algunos
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casos, un fármaco de copia es una molécula diferente desarrollada de forma deliberada por una empresa de
la competenciaDE
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participación contra los medicamentos existentes en el mercado. Cuando el mercado de una clase de fármacos
en especial
grande, varias empresas
pueden compartir el mercado y obtener ganancias. Otros fármacos de copia aparecen en forma casual por el desarrollo simultáneo de productos por
parte de varias empresas sin saber qué medicamentos se aprobarán para la venta (Recuadro 1–4). Hay críticas válidas para los fármacos de copia. En
primer lugar, un interés excesivo en las ganancias puede reprimir la verdadera innovación. En segundo lugar, algunos fármacos de copia son más
caros que las versiones más antiguas que buscan sustituir, lo que aumenta los costos de la atención médica sin los correspondientes beneficios para
los pacientes. Sin embargo, para algunos pacientes, los fármacos de copia pueden tener mejor eficacia o menos efectos secundarios o favorecer el
apego terapéutico. Por ejemplo, es conveniente un fármaco que se puede tomar una vez al día en lugar de necesitar dosificación más frecuente, lo que
favorece el apego terapéutico. Algunos fármacos de copia también añaden un gran valor desde el punto de vista comercial y médico. Por ejemplo, la
atorvastatina fue la séptima estatina que se introdujo en el comercio y más tarde se convirtió en el fármaco más vendido del mundo. Los críticos
argumentan que las compañías farmacéuticas no son innovadoras y no asumen riesgos, además que el progreso médico se ve frenado por su excesiva
concentración en los fármacos de copia.
RECUADRO 1–4. Un fármaco no tan nuevo
Algunos fármacos de copia son solo formulaciones ligeramente alteradas de un fármaco de una empresa, envasadas y publicitadas como si
realmente ofrecieran algo nuevo. Un ejemplo es el fármaco para la acidez estomacal esomeprazol, comercializado por la misma compañía que
fabrica omeprazol. El omeprazol es una mezcla de dos estereoisómeros; el esomeprazol contiene solo uno de los isómeros y se elimina con menor
rapidez. El desarrollo del esomeprazol creó un nuevo periodo de exclusividad en el mercado, aunque se comercializan versiones genéricas de
omeprazol, al igual que las sustancias químicamente relacionadas de omeprazol/esomeprazol. Tanto el omeprazol como el esomeprazol están
ahora disponibles sin receta, lo que redujo la diferencia de precios.
La figura 1–7 resume algunos de los hechos que subyacen a este y otros argumentos. Solo un número pequeño de nuevas entidades moleculares
(NME, new molecular entities), cerca de dos docenas al año, lograron la aprobación de la FDA entre 1980 y 2016. En los últimos años (de 2017 a 2021), el
número anual de NME aprobadas ha sido de 38 en promedio (y la aprobación de productos biológicos ha sido de 13 al año en promedio). Por lo tanto,
hay un reciente repunte en las NME y solicitudes de licencias para fármacos biológicos aprobadas por la FDA. Sin embargo, de 1980 a 2021, la inversión
anual de la industria en investigación y desarrollo se multiplicó por 45, pasando de 2 mil millones a 91 mil millones. Esta desconexión entre la inversión
en investigación y desarrollo y la aprobación de nuevos fármacos se produjo en un momento en que la química combinatoria estaba floreciendo, se
estaba secuenciando el genoma humano y se estaban desarrollando técnicas de detección altamente automatizadas y las nuevas técnicas de biología
molecular y genética estaban ofreciendo nuevas perspectivas de la fisiopatología de las enfermedades en seres humanos. Se necesitará un aumento
continuo de la productividad para sostener a las empresas farmacéuticas de hoy en día mientras se enfrentan a oleadas de patentes caducadas. Hay
argumentos sólidos de que el desarrollo de fármacos mucho más específicos e individualizados, basados en una nueva generación de técnicas de
diagnóstico molecular y una mejor comprensión de la enfermedad en pacientes individuales mejorará la atención médica y la supervivencia de las
empresas farmacéuticas. Muchos de los avances en genética y biología molecular son todavía nuevos, en particular cuando se miden en el marco
temporal requerido para el desarrollo de fármacos. Además, las técnicas de química computacional y diseño computarizado de fármacos antes
descritas en este capítulo todavía están avanzando y se han integrado al proceso. Cabe esperar que la medicina molecular moderna sostenga el
desarrollo de tratamientos farmacológicos más eficaces y específicos para un espectro cada vez más amplio de enfermedades humanas.
Figura 1–7
El costo de la invención de fármacos está aumentando. ¿Aumenta la productividad en consecuencia? Tally incluye enzimas, anticuerpos, péptidos y
moléculas pequeñas y excluye vacunas y productos sanguíneos. Tomado de: Center for Drug Evaluation and Research, 2022; Congressional Budget
Office, 2021; McClung, 2021; Mullard, 2022.
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Figura 1–7
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El costo de la invención de fármacos está aumentando. ¿Aumenta la productividad en consecuencia? Tally incluye enzimas, anticuerpos, péptidos y
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moléculas pequeñas y excluye vacunas y productos sanguíneos. Tomado de: Center for Drug Evaluation and Research, 2022; Congressional Budget
Office, 2021; McClung, 2021; Mullard, 2022.
Agradecimiento
Suzanne M. Rivera y Alfred Goodman Gilman contribuyeron con este capítulo en la edición anterior de este libro. Hemos conservado parte de su texto
en la edición actual.
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inhibitors: physiology
and pharmacology.
, 2021,
2 :2027–2037.
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35419546]
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CAPÍTULO
1: Descubrimiento
de fármacos:
de las plantas Kidney360
medicinales
al diseño
de fármacos
asistido
por computadora, Michael K. Page
Gilson;
Laurence L. Brunton
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al. DrugHill.
discovery
using
chemical systems
biology:
identification
the protein­ligand
binding network to explain the side effects of CETP
inhibitors. PLoS Comput Biol , 2009, 5 :e1000387. [PubMed: 19436720]
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CAPÍTULO 1: Descubrimiento de fármacos: de las plantas medicinales al diseño de fármacos asistido por computadora, Michael K. Page
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Goodman & Gilman: Las bases farmacológicas de la terapéutica, 14e
CAPÍTULO 2: Farmacocinética: la dinámica de la absorción, distribución,
metabolismo y eliminación de los fármacos
Iain L. O. Buxton
INTRODUCCIÓN
El cuerpo humano restringe el acceso a moléculas extrañas; por lo tanto, para alcanzar su objetivo dentro del cuerpo y tener un efecto terapéutico,
una molécula de un fármaco debe superar varios obstáculos en su trayecto al objetivo farmacológico. Después de la administración, el fármaco debe
absorberse y distribuirse, por lo general a través de los vasos de los sistemas circulatorio y linfático. Además de cruzar las barreras de membrana, el
fármaco debe sobrevivir al metabolismo (sobre todo hepático) y a la eliminación (por vía hepática, renal o a través de las heces). La absorción,
distribución, metabolismo y eliminación de fármacos, son los procesos que estudia la farmacocinética (fig. 2–1). La comprensión de estos procesos y
de las interacciones, así como el empleo de principios farmacocinéticos aumentan la probabilidad de éxito terapéutico y reducen la aparición de
efectos secundarios e interacciones farmacológicas.
Figura 2–1
Interrelación entre la absorción, distribución, unión, metabolismo y excreción de un fármaco y su concentración en sus sitios de acción. No se
representan la posible distribución y unión de metabolitos en relación con sus posibles acciones en los receptores.
La absorción, distribución, metabolismo y excreción de un fármaco implica su paso a través de numerosas membranas celulares. Los mecanismos por
los cuales los fármacos cruzan las membranas y las propiedades fisicoquímicas de las moléculas y membranas que influyen en esta transferencia son
fundamentales para entender el destino de los fármacos en el cuerpo humano. Las características de un fármaco que predicen su desplazamiento y
disponibilidad en los sitios de acción son su tamaño molecular (su peso molecular), sus características estructurales, grado de ionización,
liposolubilidad relativa de sus formas ionizadas y no ionizadas y su unión a proteínas séricas e hísticas. Aunque las barreras físicas al movimiento de
los fármacos pueden ser una sola capa de células (p. ej., epitelio intestinal) o varias capas de células y proteína extracelular asociada (p. ej., piel), la
membrana plasmática es la barrera básica.
ABREVIATURAS
Abreviaturas
ABC: casete de unión a ATP
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ACE: enzima
convertidora
angiotensina
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la curva
tiempo de concentración
la absorción
de fármacos
BBB: barrera hematoencefálica
los fármacos pueden ser una sola capa de células (p. ej., epitelio intestinal) o varias capas de células y proteína extracelular asociada (p. ej., piel), la
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membrana plasmática es la barrera básica.
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ABREVIATURAS
Abreviaturas
ABC: casete de unión a ATP
ACE: enzima convertidora de angiotensina
AUC: área bajo la curva de tiempo de concentración de la absorción y eliminación de fármacos
BBB: barrera hematoencefálica
C L: eliminación
SNC: sistema nervioso central
CNT1: transportador concentrador de nucleósidos 1
C p : concentración plasmática
LCR: líquido cefalorraquídeo
C ss: concentración en estado de equilibrio
CYP: citocromo P450
F : biodisponibilidad
FDA: Food and Drug Administration
GI: gastrointestinal
h : horas
k : constante de velocidad de reacción
MDR1: proteína de resistencia a múltiples fármacos
MEC: concentración mínima efectiva
min: minutos
PLLR: reglas de etiquetado para el embarazo y lactancia
SLC: transportador de soluto
T, t: tiempo
t 1/2: semivida
V : volumen de distribución
V ss: volumen de distribución en estado de equilibrio
PASO DE FÁRMACOS A TRAVÉS DE LAS MEMBRANAS
La membrana plasmática tiene permeabilidad selectiva
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La
membrana
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una bicapa
lipídica
de lípidos
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centro
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CAPÍTULO
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Farmacocinética:
dinámica
de la
absorción,
distribución,
metabolismo
y eliminación
de los fármacos,
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bicapa lipídica
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fase hidrófoba
continua,
sus cabezas
hacia el exterior. Las moléculas lipídicas individuales
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en la bicapa varían según la membrana en particular y pueden desplazarse en sentido lateral y organizarse en microdominios (p. ej., regiones con
esfingolípidos y colesterol, formando balsas lipídicas), lo que proporciona a la membrana fluidez, flexibilidad, organización funcional, alta resistencia
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PASO DE FÁRMACOS A TRAVÉS DE LAS MEMBRANAS
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La membrana plasmática tiene permeabilidad selectiva
La membrana plasmática consiste en una bicapa lipídica de lípidos anfipáticos con sus cadenas de hidrocarburos orientadas hacia el centro de la
bicapa lipídica para formar una fase hidrófoba continua, con sus cabezas hidrófilas orientadas hacia el exterior. Las moléculas lipídicas individuales
en la bicapa varían según la membrana en particular y pueden desplazarse en sentido lateral y organizarse en microdominios (p. ej., regiones con
esfingolípidos y colesterol, formando balsas lipídicas), lo que proporciona a la membrana fluidez, flexibilidad, organización funcional, alta resistencia
eléctrica y relativa impermeabilidad a moléculas muy polares. Las proteínas de membrana incrustadas en la bicapa sirven como puntos de fijación
estructural, receptores, conductos iónicos o transportadores para transducir vías de señalización eléctrica o química y para proporcionar objetivos
selectivos para las acciones farmacológicas. Lejos de ser un mar de lípidos con proteínas flotando al azar, las membranas se encuentran ordenadas y
compartimentalizadas (Banani et al., 2017; Kitamata et al., 2020) con elementos estructurales de andamiaje que se unen al interior de la célula. Las
proteínas de membrana pueden asociarse con caveolina y secuestradas o excluidas de caveolas, o bien, organizadas en dominios de señalización
ricos en colesterol y esfingolípidos que no contengan caveolina u otras proteínas de andamiaje.
Modos de permeación y transporte
La difusión pasiva domina el desplazamiento a través de la membrana de la mayor parte de los fármacos. Sin embargo, los mecanismos de transporte
(transporte activo y difusión facilitada) desempeñan funciones importantes (figs. 2–2 y 4–4).
Figura 2–2
Los fármacos se mueven a través de las barreras celulares y de membrana de diversas maneras. Consulte los detalles en las Figuras 4–1, 4–2, 4–3 y 4–4.
Difusión pasiva
En el transporte pasivo, la molécula del fármaco penetra por lo general por difusión siguiendo su gradiente de concentración en virtud de su
solubilidad en la bicapa lipídica. Dicha transferencia es directamente proporcional a la magnitud del gradiente de concentración a través de la
membrana, al coeficiente de reparto lípidos:agua del fármaco y a la superficie de la membrana expuesta al fármaco. En estado de equilibrio, la
concentración del fármaco no unido es la misma en ambos lados de la membrana si el fármaco no es electrolítico. En el caso de los compuestos
iónicos, las concentraciones en estado de equilibrio dependen del gradiente electroquímico del ion y de las diferencias de pH en la membrana, que
influye en el estado de ionización de la molécula que puede diferir en ambos lados de la membrana y puede atrapar eficazmente el fármaco ionizado
en un lado de la membrana.
Influencia del pH en fármacos ionizables
Muchos fármacos son ácidos o bases débiles que están presentes en solución como la forma no ionizada difusible, liposoluble y la forma ionizada que
es relativamente insoluble en lípidos y poco difusible a través de una membrana. Los grupos ionizables comunes son los ácidos carboxílicos y los
grupos amino (primarios, secundarios y terciarios; las aminas cuaternarias tienen una carga positiva permanente). La distribución transmembrana de
un electrolito débil se ve influida por su pKa y el gradiente de pH a través de la membrana. El pKa es el pH al que la mitad del fármaco (ácido débil o
base electrolítica) está en su forma ionizada. La relación entre el fármaco no ionizado y el ionizado a cualquier pH se puede calcular a partir de la
ecuación de Henderson­Hasselbalch:
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(Ecuación 2–1)
CAPÍTULO
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La ecuación
2–1 relaciona
el pH Reserved.
del medio que
rodea
fármaco
y la constante
de disociación
ácida del mismo (pKa) con la relación entre las formas
protonada (HA o BH+) y no protonada (A− o B), donde
grupos amino (primarios, secundarios y terciarios; las aminas cuaternarias tienen una carga positiva permanente). La distribución transmembrana de
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un electrolito débil se ve influida por su pKa y el gradiente de pH a través de la membrana. El pKa es el pH al que la mitad del fármaco (ácido débil o
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base electrolítica) está en su forma ionizada. La relación entre el fármaco no ionizado y el ionizado a cualquier pH se puede calcular a partir de la
ecuación de Henderson­Hasselbalch:
(Ecuación 2–1)
La ecuación 2–1 relaciona el pH del medio que rodea al fármaco y la constante de disociación ácida del mismo (pKa) con la relación entre las formas
protonada (HA o BH+) y no protonada (A− o B), donde
describe la disociación de un ácido, y
describe la disociación de la forma protonada de una base.
En estado de equilibrio, un fármaco ácido se acumulará en el lado más alcalino de la membrana y un fármaco alcalino en el lado más ácido. Este
fenómeno, conocido como trampa iónica, es un proceso importante en la distribución de fármacos con posible beneficio terapéutico y en el
tratamiento del paciente intoxicado (Ornillo y Harbord, 2020). La figura 2–3 ilustra este efecto y muestra los valores calculados para la distribución de
un ácido débil entre el plasma y la cavidad gástrica.
Figura 2–3
Influencia del pH en la distribución de un ácido débil (pKa = 4.4) entre el plasma y el jugo gástrico separados por una barrera lipídica. Un ácido débil
se disocia en diferentes grados en el plasma (pH 7.4) y en el ácido gástrico (pH 1.4): El pH más alto facilita la disociación; el pH más bajo reduce la
disociación. La forma sin carga (HA) se equilibra a través de la membrana. Los números azules entre corchetes muestran las concentraciones de
equilibrio relativo de HA y A−, según se calcula a partir de la ecuación 2–1.
Los efectos del pH en el reparto transmembrana pueden utilizarse para alterar la excreción de fármacos. En los túbulos renales, el pH de la orina
puede variar en un amplio intervalo, de 4.5 a 8. A medida que el pH de la orina desciende (a medida que aumenta la concentración de H+), los ácidos
débiles (A−) y las bases débiles (B) existirán en mayor medida en sus formas protonadas (HA y BH+); lo contrario es cierto a medida que aumenta el pH,
donde A− y B serán favorecidos. Así, la orina alcalina favorece la excreción de ácidos débiles; la orina ácida favorece la excreción de bases débiles. La
elevación del pH de la orina (mediante la administración de bicarbonato de sodio) favorecerá la excreción urinaria de ácidos débiles como el ácido
acetilsalicílico (pKa cercano a 3.5) y el ácido úrico (pKa cercano a 5.8). Otra consecuencia útil de la ionización del fármaco a pH fisiológico se ilustra por
la relativa falta de efectos sedantes de antagonistas de la histamina H1 de segunda generación (p. ej., loratadina): Los antihistamínicos de segunda
generación son moléculas ionizadas (menos lipófilas, más hidrófilas) que atraviesan mal la barrera hematoencefálica en comparación con los
fármacos de primera generación como la difenhidramina, que ahora se utilizan como ayudas al sueño. También es de destacar que la mayor parte de
las infecciones bacterianas del tracto urinario hacen que la orina se convierta en alcalina, potencialmente alterando el tratamiento (Huang et al., 2020).
Transporte de membrana mediado por transportador
Las proteínas 2023­12­21
en la membrana
movimientos a través de la misma de muchos solutos fisiológicos; estas proteínas también median
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2:
Farmacocinética:
la
dinámica
de
la
absorción,
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de losmediado
fármacos,
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Buxton
desplazamientos transmembrana de fármacos y pueden
ser objetivos
de acción
farmacológica.
El transporte
se identifica
difusión
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facilitada o transporte activo (fig. 2–2; fig. 4–4). Los transportadores de membrana y sus funciones en la respuesta a los fármacos se presentan con
detalle en el capítulo 4.
generación son moléculas ionizadas (menos lipófilas, más hidrófilas) que atraviesan mal la barrera hematoencefálica en comparación con los
fármacos de primera generación como la difenhidramina, que ahora se utilizan como ayudas al sueño. También
es de destacar
la mayor parte
de
UNIVERSIDAD
DE que
EL SALVADOR
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las infecciones bacterianas del tracto urinario hacen que la orina se convierta en alcalina, potencialmente alterando
el tratamiento
(Huang et al., 2020).
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Transporte de membrana mediado por transportador
Las proteínas en la membrana plasmática median movimientos a través de la misma de muchos solutos fisiológicos; estas proteínas también median
desplazamientos transmembrana de fármacos y pueden ser objetivos de acción farmacológica. El transporte mediado se identifica como difusión
facilitada o transporte activo (fig. 2–2; fig. 4–4). Los transportadores de membrana y sus funciones en la respuesta a los fármacos se presentan con
detalle en el capítulo 4.
Difusión facilitada
La difusión facilitada es un proceso de transporte mediado por el transportador en el que la fuerza motriz es el gradiente electroquímico del soluto
transportado; por lo tanto, estos transportadores pueden facilitar el movimiento del soluto dentro o fuera de las células, dependiendo de la dirección
del gradiente electroquímico. La proteína transportadora puede ser muy selectiva para la estructura conformacional específica de un soluto
endógeno o un fármaco cuya tasa de transporte por difusión pasiva a través de la membrana sería de otra manera bastante lenta. Por ejemplo, el
transportador de cationes orgánicos OCT1 (SLC22A1) facilita el desplazamiento de un soluto fisiológico, tiamina (Jensen et al., 2020) y fármacos, lo
que incluye metformina, que se utiliza en el tratamiento de la diabetes tipo 2. El capítulo 4 describe a OCT1 y a otros miembros de la superfamilia
humana de transportadores SLC.
Transporte activo
El transporte activo se caracteriza por requerir energía, por la capacidad para desplazar un soluto contra un gradiente electroquímico, por la
capacidad de saturación, selectividad e inhibición competitiva por compuestos transportados en forma simultánea. Na+/K+­ATPasa es un ejemplo
importante de un mecanismo de transporte activo, que exporta simultáneamente tres iones de sodio a cambio de dos iones de potasio utilizando ATP
como sustrato energético. La digoxina es un inhibidor importante de la Na+/K+­ATPasa utilizado en el tratamiento de la insuficiencia cardiaca (cap. 29).
Un grupo de transportadores activos primarios, la familia ABC, hidroliza ATP para exportar sustratos a través de membranas. Por ejemplo, la
glucoproteína P, también llamada ABCB1 o MDR1, exporta compuestos voluminosos neutros o catiónicos de las células; sus sustratos fisiológicos
incluyen hormonas esteroides como la testosterona y la progesterona. MDR1 exporta también muchos fármacos, lo que incluye digoxina y muchos
otros fármacos (cuadro 4–4). La glucoproteína P en el enterocito limita la absorción de algunos fármacos administrados por vía oral exportando
compuestos a la luz del tubo digestivo después de su absorción (Gessner et al., 2019). Los transportadores ABC realizan una función similar en las
células de la barrera hematoencefálica, con lo que reduce de manera eficaz la acumulación neta de algunos compuestos en el cerebro (caps. 4 y 17).
Por el mismo mecanismo, la glucoproteína P también puede conferir resistencia a algunos quimioterapéuticos para el tratamiento del cáncer (caps. 69
a 73).
Los miembros de la superfamilia SLC pueden mediar el transporte activo secundario utilizando la energía electroquímica almacenada en un gradiente
(por lo general Na+) para desplazar solutos biológicos y fármacos a través de las membranas. Por ejemplo, la proteína de intercambio Na+/Ca2+ (SLC8 o
NCX) utiliza la energía almacenada en el gradiente de Na+ establecido por Na+/K+­ATPasa para exportar Ca2+ citosólico y mantenerlo a un nivel basal
bajo, de casi 100 nM en la mayor parte de las células. SLC8 es por lo tanto un cotransportador bidireccional, utilizando el flujo interior de Na+ para
impulsar un flujo exterior de Ca2+. SLC8 también ayuda a mediar los efectos inotrópicos positivos de digoxina y otros glucósidos cardiacos que inhiben
la actividad de Na+/K+­ATPasa y, por lo tanto, reducen la fuerza motriz para la extrusión de Ca2+ del miocito cardiaco ventricular. Otros
cotransportadores SLC son cotransportadores unidireccionales, en los que la fuerza que favorece el desplazamiento de iones y solutos tienen la
misma dirección. El CNT1 (SLC28A1), impulsado por el gradiente de Na+, favorece el desplazamiento de los nucleósidos de pirimidina y de los fármacos
quimioterapéuticos antineoplásicos gemcitabina y citarabina hacia las células. DAT, NET y SERT, transportadores para los neurotransmisores
dopamina, norepinefrina y serotonina, respectivamente, son transportadores activos secundarios que también dependen de la energía almacenada
en el gradiente transmembrana de Na+. Estos cotransportadores unidireccionales coordinan el desplazamiento del Na+ y del neurotransmisor en la
misma dirección (hacia la neurona). DAT, NET y SERT son también los objetivos de los fármacos activos en el SNC utilizados para tratar la depresión, la
ansiedad o ambos. Los miembros de la superfamilia SLC son activos en el transporte de fármacos en el tubo digestivo, hígado y riñón, entre otros
sitios y desempeñan una función importante en el depósito de fármacos (Liu, 2019).
Transporte paracelular
En el compartimiento vascular, el paso paracelular de solutos y líquido a través de los espacios intercelulares es lo suficientemente grande, de forma
que la transferencia pasiva a través del endotelio capilar y venular poscapilar por lo general se ve limitada por el flujo sanguíneo. La evidencia de este
fenómeno se puede ver con facilidad en el edema en regiones declive que se forma en los tobillos de pacientes con insuficiencia cardiaca. Los
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capilares
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y varios tejidos epiteliales
estrechas
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el movimiento
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defármacos,
los fármacos
et al.,Page
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CAPÍTULO
Farmacocinética:
la dinámicatienen
de la uniones
absorción,
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Iain(Spector
L. O. Buxton
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ABSORCIÓN DE FÁRMACOS, BIODISPONIBILIDAD Y VÍAS DE ADMINISTRACIÓN
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Transporte paracelular
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En el compartimiento vascular, el paso paracelular de solutos y líquido a través de los espacios intercelulares es lo suficientemente grande, de forma
que la transferencia pasiva a través del endotelio capilar y venular poscapilar por lo general se ve limitada por el flujo sanguíneo. La evidencia de este
fenómeno se puede ver con facilidad en el edema en regiones declive que se forma en los tobillos de pacientes con insuficiencia cardiaca. Los
capilares del SNC y varios tejidos epiteliales tienen uniones estrechas que limitan el movimiento paracelular de los fármacos (Spector et al., 2015).
ABSORCIÓN DE FÁRMACOS, BIODISPONIBILIDAD Y VÍAS DE ADMINISTRACIÓN
Absorción y biodisponibilidad
La absorción es el desplazamiento de un fármaco desde su lugar de administración hacia el compartimiento central (p. ej., el torrente sanguíneo; fig.
2–1). Para las formas de dosificación sólidas, la absorción requiere primero la disolución de la tableta o cápsula, con lo que se libera el fármaco. Salvo
en casos de síndromes de malabsorción, el médico se preocupa sobre todo de la biodisponibilidad más que de la absorción (Tran et al., 2013).
La biodisponibilidad describe el grado fraccional en que una dosis administrada del fármaco alcanza su sitio de acción o un líquido biológico (por lo
general, la circulación sistémica) desde el cual el fármaco tiene acceso a su sitio de acción. Un fármaco administrado por vía oral debe absorberse
primero en el tubo digestivo, pero la absorción neta puede limitarse por las características de la forma de dosificación, por las propiedades
fisicoquímicas del fármaco, por el ataque metabólico en el intestino y por el transporte a través del epitelio intestinal y hacia la circulación portal. El
fármaco absorbido pasa a través del hígado, donde el metabolismo y la excreción biliar pueden ocurrir antes de que la fármaco alcance la circulación
sistémica. En consecuencia, una cantidad menor a la dosis administrada puede alcanzar la circulación sistémica y distribuirse a los sitios de acción del
fármaco. Si la capacidad metabólica o excretora del hígado y del intestino para el fármaco es grande, la biodisponibilidad se reducirá sustancialmente
(efecto de primer paso). Esta disminución de la disponibilidad depende del sitio anatómico desde el que se produce la absorción; por ejemplo, la
administración IV por lo general permite que todo el fármaco alcance la circulación sistémica. Otros factores anatómicos, fisiológicos y patológicos
pueden influir en la biodisponibilidad (descritos más adelante en este capítulo) y la vía de administración de fármacos debe elegirse con base en la
comprensión de estas condiciones. Podemos definir la biodisponibilidad F como:
(Ecuación 2–2)
donde 0 < F ≤ 1.
Los factores que modifican la biodisponibilidad también se aplican a los profármacos, en cuyo caso la disponibilidad es consecuencia de procesos
metabólicos que producen la forma activa del fármaco.
Vías de administración
En el cuadro 2–1 se comparan algunas características de las principales vías de administración empleadas para obtener el efecto sistémico de los
fármacos.
CUADRO 2–1
ALGUNAS CARACTERÍSTICAS DE LAS VÍAS COMUNES DE ADMINISTRACIÓN DE FÁRMACOSa
RUTA Y
BIODISPONIBILIDAD
PATRÓN DE ABSORCIÓN
UTILIDAD ESPECIAL
LIMITACIONES Y PRECAUCIONES
Se evita la absorción
Útil en situaciones de urgencia
Aumento en el riesgo de efectos
(F )
Intravenoso
adversos
F = 1 por definición
Efectos inmediatos potenciales
Permite la valoración de la dosis
Como regla, debe inyectarse en
solución con lentitud
Apto para grandes volúmenes y
Por lo general es útil para la administración
No es adecuado para soluciones
sustancias irritantes, o mezclas
de proteínas de alto peso molecular y
oleosas o sustancias poco solubles
fármacos peptídicos
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CAPÍTULO 2: Farmacocinética: la dinámica de la absorción, distribución, metabolismo y eliminación de los fármacos, Iain L. O. BuxtonPage 6 / 39
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0.75
F
Rápida
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Adecuado
algunas
suspensiones poco
No es adecuado para grandes
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solubles y para la instilación de implantes de
liberación lenta
volúmenes
Vías de administración
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En el cuadro 2–1 se comparan algunas características de las principales vías de administración empleadas para obtener el efecto sistémico de los
fármacos.
CUADRO 2–1
ALGUNAS CARACTERÍSTICAS DE LAS VÍAS COMUNES DE ADMINISTRACIÓN DE FÁRMACOSa
RUTA Y
BIODISPONIBILIDAD
PATRÓN DE ABSORCIÓN
UTILIDAD ESPECIAL
LIMITACIONES Y PRECAUCIONES
Se evita la absorción
Útil en situaciones de urgencia
Aumento en el riesgo de efectos
(F )
Intravenoso
adversos
F = 1 por definición
Efectos inmediatos potenciales
Permite la valoración de la dosis
Como regla, debe inyectarse en
solución con lentitud
Subcutánea 0.75 < F
Apto para grandes volúmenes y
Por lo general es útil para la administración
No es adecuado para soluciones
sustancias irritantes, o mezclas
de proteínas de alto peso molecular y
oleosas o sustancias poco solubles
complejas, diluidas
fármacos peptídicos
Rápida para soluciones acuosas
Adecuado para algunas suspensiones poco
No es adecuado para grandes
solubles y para la instilación de implantes de
volúmenes
<1
liberación lenta
Intramuscular 0.75 <
Lento y sostenido en las
Posible dolor o necrosis por sustancias
preparaciones de depósito
irritantes
Rápida para soluciones acuosas
F<1
Adecuado para volúmenes moderados,
Debe evitarse durante el tratamiento
vehículos oleosos y algunas sustancias
anticoagulante
irritantes
Lento y sostenido en las
Adecuado para administración por el propio
Puede interferir con la interpretación
preparaciones de depósito
paciente (p. ej., insulina)
de ciertas pruebas diagnósticas (p. ej.,
creatina cinasa)
Administración oral
Variable, depende de muchos
Más conveniente y económico; por lo general
0.05 < F < 1
factores (véase el texto)
más seguro
Requiere la participación del paciente
Biodisponibilidad potencialmente
variable e incompleta
aVéase el texto para una revisión más completa y para otras vías
Administración oral
La ingestión oral es el método más común de administración de fármacos. También es el más seguro, conveniente y económico. Sus desventajas
incluyen la absorción limitada de algunos fármacos a causa de sus características físicas (p. ej., baja hidrosolubilidad o mala permeabilidad de la
membrana), vómito como resultado de irritación de la mucosa gastrointestinal, destrucción de algunos fármacos por enzimas digestivas o bajo pH
gástrico, irregularidades en la absorción o propulsión en presencia de alimentos u otros fármacos y la necesidad de cooperación por parte del
paciente. Además, los fármacos en el tubo digestivo pueden ser metabolizadas por las enzimas del microbioma intestinal, mucosa o hígado antes de
que obtengan acceso a la circulación general. El microbioma intestinal comprende > 1 000 especies; su alteración puede afectar la progresión de la
enfermedad y los resultados terapéuticos (cap. 6 y Ding et al., 2020).
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físico del fármaco (solución, suspensión o forma de dosificación sólida); hidrosolubilidad y la concentración del fármaco en el lugar de absorción. En
el caso de los fármacos administrados en forma sólida, la tasa de disolución puede limitar su absorción. Como la mayor parte de la absorción de
fármacos en el tubo digestivo ocurre por difusión pasiva, la absorción se favorece cuando el fármaco está en forma no ionizada, más lipófila. Con base
incluyen la absorción limitada de algunos fármacos a causa de sus características físicas (p. ej., baja hidrosolubilidad o mala permeabilidad de la
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membrana), vómito como resultado de irritación de la mucosa gastrointestinal, destrucción de algunos fármacos
por enzimas
o bajo pH
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gástrico, irregularidades en la absorción o propulsión en presencia de alimentos u otros fármacos y la necesidad
de cooperación
por parte del
paciente. Además, los fármacos en el tubo digestivo pueden ser metabolizadas por las enzimas del microbioma intestinal, mucosa o hígado antes de
que obtengan acceso a la circulación general. El microbioma intestinal comprende > 1 000 especies; su alteración puede afectar la progresión de la
enfermedad y los resultados terapéuticos (cap. 6 y Ding et al., 2020).
La absorción en el tubo digestivo está mediada por factores como el área superficial de absorción; el flujo sanguíneo al sitio de absorción; el estado
físico del fármaco (solución, suspensión o forma de dosificación sólida); hidrosolubilidad y la concentración del fármaco en el lugar de absorción. En
el caso de los fármacos administrados en forma sólida, la tasa de disolución puede limitar su absorción. Como la mayor parte de la absorción de
fármacos en el tubo digestivo ocurre por difusión pasiva, la absorción se favorece cuando el fármaco está en forma no ionizada, más lipófila. Con base
en el concepto de reparto del pH (fig. 2–3), se podría predecir que los fármacos que son ácidos débiles se absorberían mejor en el estómago (pH 1 a 2)
que en la porción proximal del intestino delgado (pH 3 a 6) y ocurriría lo contrario para bases débiles. Sin embargo, el área superficial del estómago es
relativamente pequeña y el epitelio gástrico suele estar cubierto por una capa de moco. Por el contrario, las vellosidades de la porción proximal del
intestino delgado proporcionan una superficie extremadamente grande (casi 200 m2). En consecuencia, la tasa de absorción de un fármaco en el
intestino será mayor que la del estómago, incluso si el fármaco está predominantemente ionizado en el intestino y en gran medida no ionizado en el
estómago. Por lo tanto, cualquier factor que acelere el vaciamiento gástrico (decúbito lateral derecho) por lo general aumentará la tasa de absorción
del fármaco, mientras que cualquier factor que retrase el vaciamiento gástrico tendrá el efecto opuesto. La tasa de vaciamiento gástrico se ve influida
por numerosos factores, lo que incluye el contenido calórico de los alimentos; volumen, osmolalidad, temperatura y pH del líquido ingerido; variación
diurna e individual; estado metabólico (reposo o ejercicio) y la temperatura ambiental. El vaciamiento gástrico se ve influido en las mujeres por los
efectos de los estrógenos (en comparación con los varones, el vaciamiento es más lento para las mujeres premenopáusicas y las que toman
tratamiento de reemplazo de estrógenos).
Los fármacos que son destruidos por las secreciones gástricas y el pH bajo o que causan irritación gástrica a veces se administran en forma de
dosificación con un recubrimiento entérico que previene la disolución en el contenido gástrico ácido. Las cubiertas entéricas son útiles para fármacos
que pueden causar irritación gástrica y para que fármacos como la mesalamina alcancen sus sitios de acción en el íleon y el colon (fig. 55–4).
Preparaciones de liberación controlada
La tasa de absorción de un fármaco administrado como tableta u otra forma de dosificación oral sólida depende en parte de su tasa de disolución en
los líquidos del tubo digestivo. Esta es la base para las preparaciones farmacéuticas de liberación controlada, liberación prolongada, liberación
sostenida y acción prolongada que están diseñadas para producir una absorción lenta y uniforme del fármaco durante 8 h o más. Las ventajas
potenciales de estas preparaciones son la reducción de la frecuencia de administración en comparación con las formas de dosificación
convencionales (a menudo con una mejor conformidad por parte del paciente), el mantenimiento de un efecto terapéutico durante la noche y la
disminución de la incidencia e intensidad de los efectos indeseables (por la amortiguación de las concentraciones máximas del fármaco) y
concentraciones no terapéuticas del fármaco (por la eliminación de la reducción en la concentración) que a menudo ocurren después de la
administración de las formas de dosificación de liberación inmediata. Las formas de dosificación de liberación controlada son más apropiadas para
fármacos con semividas cortas (t1/2 < 4 h) o en grupos de pacientes seleccionados, como los que reciben fármacos antiepilépticos o antipsicóticos
(Bera, 2014). Las mujeres también se han beneficiado de la anticoncepción hormonal de acción prolongada producida por dispositivos de liberación
controlada implantados (Friend, 2016) o de administración VO (Conley et al., 2006).
Administración sublingual
La absorción de la mucosa oral tiene especial importancia para ciertos fármacos a pesar de que la superficie disponible es pequeña. El drenaje venoso
de la boca entra directamente en la vena cava superior, evitando así la circulación portal. Como consecuencia, un fármaco administrado por vía
sublingual y absorbido en ese sitio está protegido del metabolismo rápido intestinal y hepático de primer paso. Por ejemplo, la nitroglicerina
sublingual (cap. 31) tiene eficacia con rapidez porque es no iónica, tiene alta liposolubilidad y no está sujeta al efecto de primer paso antes de llegar al
corazón y a las regiones del sistema circulatorio donde la nitroglicerina actúa para aliviar la isquemia miocárdica.
Inyección parenteral
La inyección parenteral de fármacos (no a través del tubo digestivo) tiene ventajas distintas sobre la administración VO. En algunos casos, la
administración parenteral es esencial para la administración de un fármaco en su forma activa, como en el caso de anticuerpos monoclonales y
vacunas. La disponibilidad suele ser más rápida, extensa y predecible cuando un fármaco se administra por vía inyectable; la dosis efectiva se puede
administrar con mayor precisión con dosis exactas; esta vía es adecuada para la administración de dosis de carga de fármacos antes del inicio de la
dosis de mantenimiento oral (por ejemplo, digoxina). En el tratamiento de urgencia y cuando un paciente está inconsciente, no coopera o no puede
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necesario el tratamiento parenteral. La administración parenteral también tiene desventajas: debe
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La inyección parenteral de fármacos (no a través del tubo digestivo) tiene ventajas distintas sobre la administración VO. En algunos casos, la
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administración parenteral es esencial para la administración de un fármaco en su forma activa, como en el caso
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vacunas. La disponibilidad suele ser más rápida, extensa y predecible cuando un fármaco se administra porAccess
vía inyectable;
la dosis efectiva se puede
administrar con mayor precisión con dosis exactas; esta vía es adecuada para la administración de dosis de carga de fármacos antes del inicio de la
dosis de mantenimiento oral (por ejemplo, digoxina). En el tratamiento de urgencia y cuando un paciente está inconsciente, no coopera o no puede
retener nada administrado por VO, puede ser necesario el tratamiento parenteral. La administración parenteral también tiene desventajas: debe
mantenerse la asepsia, en especial cuando se administran fármacos a lo largo del tiempo (p. ej., administración IV o intratecal); puede ocurrir dolor en
el sitio de la inyección y a veces es difícil para los pacientes aplicarse ellos mismos los fármacos inyectables.
Las principales vías de administración parenteral son IV, subcutánea e intramuscular. La absorción de sitios subcutáneos e intramusculares se
produce por difusión simple a lo largo del gradiente del depósito de fármacos hacia el plasma. La tasa se ve limitada por el área de las membranas
capilares absorbentes y por la solubilidad de la sustancia en el líquido intersticial. Los conductos acuosos relativamente grandes en la capa endotelial
explican la difusión indiscriminada de moléculas independientemente de su liposolubilidad. Moléculas más grandes, como las proteínas, obtienen
acceso con lentitud a la circulación por medio de conductos linfáticos. Los fármacos administrados en la circulación sistémica por cualquier vía,
excluyendo la vía intraarterial, están sujetos a la posible eliminación del primer paso en el pulmón antes de su distribución al resto del cuerpo. Los
pulmones también sirven como filtro para partículas que pueden administrarse por vía IV y proporcionan una vía de eliminación para sustancias
volátiles.
Intravenosa
Los factores que limitan la absorción se evitan mediante la inyección intravenosa de fármacos en solución acuosa, porque la biodisponibilidad es
completa (F = 1) y la distribución es rápida. Además, la administración de fármacos se controla y se logra con una precisión e inmediatez que no es
posible mediante ningún otro procedimiento. Ciertas soluciones irritantes se pueden administrar solo de esta manera porque el fármaco, cuando se
inyecta con lentitud, se diluye en gran medida en la sangre.
La administración IV tiene ventajas y desventajas. Las reacciones desfavorables pueden ocurrir si se alcanzan con rapidez altas concentraciones de un
fármaco en plasma y en los tejidos. Existen circunstancias terapéuticas para las que se recomienda administrar un fármaco mediante inyección en
bolo (p. ej., activador hístico del plasminógeno) y otras circunstancias en las que se recomienda una administración más lenta o prolongada del
fármaco (p. ej., antibióticos). La administración IV de fármacos justifica una determinación cuidadosa de la dosis y supervisión estrecha de la
respuesta del paciente; una vez que se inyecta el fármaco, a menudo no hay vuelta atrás. Las inyecciones IV repetidas dependen de la capacidad de
mantener una vena permeable. Los fármacos en un vehículo oleoso, que causan precipitación de los constituyentes de la sangre o que producen
hemólisis de los eritrocitos, y las combinaciones de fármacos que causan precipitados, no deben administrarse por vía IV.
Subcutánea
La inyección en un sitio subcutáneo se puede hacer solo con fármacos que no irritan el tejido; de lo contrario, se puede presentar dolor intenso,
necrosis y esfacelación de los tejidos. La tasa de absorción después de la inyección subcutánea de un fármaco es por lo general constante y lenta, lo
que proporciona un efecto sostenido. Además, la alteración del período durante el cual se absorbe un fármaco puede variar intencionadamente,
como se logra con la insulina inyectable utilizando el tamaño de partícula, la formación de complejos proteínicos y el pH. La incorporación de un
agente vasoconstrictor en solución con un fármaco inyectable por vía subcutánea también retrasa la absorción. La absorción de fármacos
implantados bajo la piel en forma de preparaciones sólidas se produce con lentitud durante un período de semanas o meses; algunas hormonas (p.
ej., anticonceptivos) se administran de manera eficaz de esta manera.
Intramuscular
La absorción de fármacos en solución acuosa después de la inyección intramuscular depende de la tasa de flujo sanguíneo al sitio de la inyección y
puede ser relativamente rápida. La absorción puede ser modulada hasta cierto punto por la temperatura local, masaje o el ejercicio. Por lo general, la
tasa de absorción después de la inyección de una preparación acuosa en el músculo deltoides o vasto externo es más rápida que cuando la inyección
se hace en el glúteo mayor. La tasa es particularmente más lenta para las mujeres después de la inyección en el glúteo mayor, una característica
atribuida a la distribución diferente de la grasa subcutánea en los varones y mujeres y porque la grasa tiene una perfusión relativamente baja. Ocurre
absorción lenta y constante en un sitio intramuscular si el fármaco se inyecta en solución oleosa o se suspende en varios vehículos de depósito.
Intraarterial
En ocasiones, un fármaco se inyecta directamente en una arteria para restringir su efecto en un tejido u órgano en particular, como en el tratamiento
de tumores hepáticos y cánceres de cabeza y cuello. A veces se administran fármacos con fines diagnósticos por esta vía (p. ej., albúmina sérica
humana marcada con tecnecio). La administración intraarterial inadvertida puede causar complicaciones graves y requiere un tratamiento cuidadoso
(Ellis et al., 2015).
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CAPÍTULO 2: Farmacocinética: la dinámica de la absorción, distribución, metabolismo y eliminación de los fármacos, Iain L. O. BuxtonPage 9 / 39
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Intratecal
La barrera hematoencefálica y la barrera entre la sangre y el líquido cefalorraquídeo a menudo impiden o retrasan la entrada de fármacos al SNC,
Intraarterial
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En ocasiones, un fármaco se inyecta directamente en una arteria para restringir su efecto en un tejido u órgano en particular, como en el tratamiento
de tumores hepáticos y cánceres de cabeza y cuello. A veces se administran fármacos con fines diagnósticos por esta vía (p. ej., albúmina sérica
humana marcada con tecnecio). La administración intraarterial inadvertida puede causar complicaciones graves y requiere un tratamiento cuidadoso
(Ellis et al., 2015).
Intratecal
La barrera hematoencefálica y la barrera entre la sangre y el líquido cefalorraquídeo a menudo impiden o retrasan la entrada de fármacos al SNC,
reflejando la actividad de la glucoproteína P (MDR1) y de otros transportadores para exportar xenobióticos del SNC. Por lo tanto, cuando se desean
efectos locales y rápidos de los fármacos sobre las meninges o el eje cefalorraquídeo, como en la anestesia espinal, los fármacos a veces se inyectan
directamente en el espacio subaracnoideo en la columna vertebral. Los tumores cerebrales o las infecciones graves del SNC también pueden tratarse
mediante la administración directa de fármacos intraventriculares, cada vez más mediante el uso de dispositivos especializados de reservorio de larga
duración (De Andrés et al., 2020). Las inyecciones en el LCR y en el espacio epidural se revisan en capítulos sobre analgesia y anestesia local (caps. 24 y
25, respectivamente).
Absorción pulmonar
Los fármacos gaseosos y volátiles pueden inhalarse y absorberse a través del epitelio pulmonar y las mucosas del aparato respiratorio. El acceso a la
circulación es rápido por esta vía porque el área de la superficie pulmonar es grande. Además, se pueden atomizar las soluciones de fármacos y
pueden inhalarse gotas finas en el aire (aerosol). Las ventajas son la absorción casi instantánea de un fármaco en la sangre, evitando la degradación
de primer paso hepático y en el caso de la enfermedad pulmonar, la aplicación local del fármaco en el sitio de acción deseado (cap. 24 y 44), como el
uso a corto plazo del óxido nítrico inhalado para la hipertensión pulmonar en recién nacidos casi a término y a término, así como en adultos (cap. 35).
Aplicación tópica
Mucosas
Los fármacos se aplican a las mucosas de la conjuntiva, nasofaringe, orofaringe, vagina, colon, uretra y vejiga sobre todo por sus efectos locales. La
absorción de estos sitios es por lo general excelente y puede proporcionar ventajas para la inmunoterapia porque la vacunación en las superficies
mucosas proporciona la base para generar inmunidad protectora tanto en los compartimientos inmunitarios de la mucosa como en los sistémicos
debido a la presencia de células que presentan antígenos en los tejidos subyacentes de la mucosa como el estrato córneo (Li et al., 2020).
Ojos
Los fármacos oftálmicos aplicados por vía tópica se utilizan sobre todo por sus efectos locales (cap. 69). El uso de lentes de contacto y de dispositivos
oftálmicos impregnados con fármacos permite aplicar los fármacos en el sitio en que se necesitan.
Piel: absorción transdérmica
La absorción de fármacos capaces de penetrar la piel intacta depende de la superficie sobre la que se aplican y de su liposolubilidad (cap. 70). La
absorción sistémica de los fármacos se produce con mayor facilidad a través de la piel erosionada, quemada o denudada. Los efectos tóxicos son el
resultado de la absorción a través de la piel de sustancias muy liposolubles (p. ej., un insecticida liposoluble en un disolvente orgánico). La absorción a
través de la piel puede incrementarse al suspender el fármaco en un vehículo oleoso y frotando la preparación resultante en la piel. Para facilitar la
absorción se puede utilizar la hidratación de la piel con un apósito oclusivo. Cada vez se dispone más de parches tópicos de liberación controlada, con
nicotina para el tratamiento de la abstinencia del tabaco, escopolamina para la cinetosis, nitroglicerina para la angina de pecho, testosterona y
estrógenos para el tratamiento de sustitución hormonal, varios estrógenos y progestágenos para el control de la natalidad y fentanilo para la
analgesia.
Administración rectal
Casi 50% del fármaco que se absorbe en el recto no pasará a través del hígado, con lo que se reduce el metabolismo hepático de primer paso. Sin
embargo, la absorción rectal puede ser irregular e incompleta y ciertos fármacos pueden causar irritación de la mucosa rectal. En ciertas situaciones
clínicas, la administración rectal puede ser deseable, como en el uso de opioides en cuidados paliativos.
Métodos novedosos de suministro de fármacos
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de los
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Las endoprótesis
farmacoactivas la
y otros
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están utilizando para la aplicación local de fármacos con el fin de llevar al máximo la eficacia y reducir la exposición sistémica. Los avances recientes en
la administración de fármacos incluyen el uso de polímeros y nanopartículas biocompatibles para la administración de fármacos (Lee et al., 2018;
Administración rectal
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Casi 50% del fármaco que se absorbe en el recto no pasará a través del hígado, con lo que se reduce el metabolismo hepático de primer paso. Sin
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embargo, la absorción rectal puede ser irregular e incompleta y ciertos fármacos pueden causar irritación de la mucosa rectal. En ciertas situaciones
clínicas, la administración rectal puede ser deseable, como en el uso de opioides en cuidados paliativos.
Métodos novedosos de suministro de fármacos
Las endoprótesis farmacoactivas y otros dispositivos, como los parches de administración de fármacos con microagujas (Waghule et al., 2019), se
están utilizando para la aplicación local de fármacos con el fin de llevar al máximo la eficacia y reducir la exposición sistémica. Los avances recientes en
la administración de fármacos incluyen el uso de polímeros y nanopartículas biocompatibles para la administración de fármacos (Lee et al., 2018;
Santos et al., 2018).
BIOEQUIVALENCIA
Los productos farmacéuticos se consideran equivalentes farmacéuticos si contienen los mismos ingredientes activos y son idénticos en potencia o
concentración, forma de dosificación y vía de administración. Dos productos farmacéuticos equivalentes se consideran bioequivalentes cuando las
tasas y el grado de biodisponibilidad del ingrediente activo en los dos productos no son significativamente diferentes bajo condiciones de prueba
adecuadas e idénticas. La disponibilidad de formulaciones genéricas de fármacos de marca ha aumentado el acceso y la asequibilidad a estos. La
bioequivalencia ha hecho posible que los farmacéuticos proporcionen estas alternativas cuando no estén restringidas por la elección del médico. Sin
embargo, los tribunales no siempre han considerado que los fármacos genéricos y de marca sean legalmente equivalentes o han permitido que el
farmacéutico elija la sustitución genérica (Sacks et al., 2021).
DISTRIBUCIÓN DE FÁRMACOS
No todos los tejidos son iguales
Tras la absorción o administración sistémica en el torrente sanguíneo, un fármaco se distribuye en líquidos intersticiales e intracelulares en función
de las propiedades fisicoquímicas del mismo, la frecuencia de administración de fármacos a órganos y compartimentos individuales y las diferentes
capacidades de esas regiones para interactuar con el fármaco. El gasto cardiaco, el flujo sanguíneo regional, la permeabilidad capilar y el volumen
hístico afectan la tasa de administración y la cantidad de fármaco distribuido en los tejidos (cuadro 2–2 y fig. 2–4). Al inicio, el hígado, el riñón, el
cerebro y otros órganos bien perfundidos reciben la mayor parte del fármaco; la llegada de este a los músculos, a la mayor parte de las vísceras, la piel
y la grasa es más lenta. Esta segunda fase de distribución puede requerir de minutos a varias horas antes de que la concentración del fármaco en el
tejido esté en equilibrio con la de la sangre. La segunda fase también implica una fracción mucho mayor de la masa corporal (p. ej., músculo) que la
fase inicial y por lo general representa la mayor proporción de la distribución extravascular. Con excepciones como el cerebro, la difusión del fármaco
en el líquido intersticial ocurre con rapidez debido a la naturaleza muy permeable del endotelio capilar. Por lo tanto, la distribución en los tejidos se
determina mediante el coeficiente de reparto del fármaco entre la sangre y un tejido en particular.
CUADRO 2–2
DISTRIBUCIÓN DEL FLUJO SANGUÍNEO EN VARONES DE 70 KG EN REPOSO
RIÑÓN
CORAZÓN
HÍGADO
CEREBRO
MÚSCULO ESTRIADO
GRASA
RESTO
Σ
Flujo sanguíneo (mL/min)
1100
250
1500
800
900
250
500
5500
Masa (kg)
0.3
0.3
2.6
1.3
34
10
21.5
70
Flujo/masa (mL/min/kg)
3667
833
654
615
26
25
23
% Gasto cardiaco
20
4.5
31
14.5
16.4
4.5
9.1
100
Figura 2–4
Redistribución. Las curvas representan la distribución del tiopental, un anestésico barbitúrico, en diferentes compartimentos corporales tras una
única dosis IV rápida. Obsérvense los saltos y cambios de escala en ambos ejes. La concentración de tiopental en su sitio de acción en el tejido
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encefálico refleja
estrechamente
la concentración
plasmática del fármaco. La tasa de acumulación en los diversos compartimentos del cuerpo
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depende del flujo sanguíneo regional; el gradode
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refleja las diferentes
capacidades
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lento de la eliminación para reducir la cantidad de un fármaco disponible. La aparición del efecto anestésico de esta dosis única de tiopental depende
de la redistribución, no del metabolismo. El fármaco se repartirá en los depósitos hísticos a medida que se llevan a cabo metabolismo y la eliminación
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Figura 2–4
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Redistribución. Las curvas representan la distribución del tiopental, un anestésico barbitúrico, en diferentes compartimentos corporales tras una
única dosis IV rápida. Obsérvense los saltos y cambios de escala en ambos ejes. La concentración de tiopental en su sitio de acción en el tejido
encefálico refleja estrechamente la concentración plasmática del fármaco. La tasa de acumulación en los diversos compartimentos del cuerpo
depende del flujo sanguíneo regional; el grado de acumulación refleja las diferentes capacidades de los compartimentos y el efecto constante pero
lento de la eliminación para reducir la cantidad de un fármaco disponible. La aparición del efecto anestésico de esta dosis única de tiopental depende
de la redistribución, no del metabolismo. El fármaco se repartirá en los depósitos hísticos a medida que se llevan a cabo metabolismo y la eliminación
del fármaco. Su agotamiento en los compartimentos corporales seguirá el mismo orden que la acumulación, en función de su perfusión.
Unión a proteínas plasmáticas
Muchos fármacos circulan en el torrente sanguíneo unidos a proteínas plasmáticas y se han observado avances en tratamientos basados en
preparaciones que toman en consideración la unión del fármaco a las proteínas. La albúmina es un importante portador de fármacos ácidos; la
glucoproteína ácida α1 se une a los fármacos con pH alcalino. La unión inespecífica a otras proteínas plasmáticas por lo general ocurre en un grado
mucho menor. La unión es por lo general reversible. Además, ciertos fármacos pueden unirse a proteínas que funcionan como proteínas
transportadoras de hormonas específicas, como la unión de estrógenos o testosterona a la globulina transportadora de hormonas sexuales o la unión
de la hormona tiroidea a la globulina transportadora de tiroxina. La unión a los fármacos y proteínas también puede verse influida por los alimentos,
bebidas, productos herbolarios y por los complementos dietéticos (López­Yerena et al., 2020).
La fracción del fármaco total en plasma que está unido a proteínas está determinada por la concentración del fármaco, la afinidad de los sitios de
unión para la fármaco y la concentración de los sitios de unión disponibles. Para la mayor parte de los fármacos, el intervalo terapéutico de las
concentraciones plasmáticas es limitado; por lo tanto, el grado de unión y la fracción no unida a proteínas son relativamente constantes. La extensión
de la unión a las proteínas plasmáticas también puede verse afectada por factores relacionados con la enfermedad (p. ej., hipoalbuminemia). Las
alteraciones que dan origen a respuesta inflamatoria de fase aguda (p. ej., cáncer, artritis, infarto de miocardio, enfermedad de Crohn) conducen a
aumento de las concentraciones de glucoproteína ácida α1 y a una mayor unión de fármacos alcalinos. Los cambios en la unión a proteínas causadas
por estados patológicos e interacciones farmacológicas tienen relevancia clínica, sobre todo en un subgrupo pequeño de fármaco denominados
como de alta eliminación y con intervalo terapéutico estrecho que se administran por vía IV, como en el caso de la lidocaína. Cuando se producen
cambios en la unión a proteínas plasmáticas en los pacientes, el fármaco no unido se equilibra con rapidez en todo el cuerpo y solo se producirá un
cambio significativo transitorio en la concentración plasmática del fármaco no unido a proteínas. Solo los fármacos que muestran una relación casi
instantánea entre la concentración plasmática libre y el efecto (p. ej., antiarrítmicos) mostrarán un efecto mensurable. Por lo tanto, las
concentraciones plasmáticas del fármaco libre solo mostrarán cambios significativos cuando la administración de fármacos o la eliminación de
fármaco libre ocurre como consecuencia del metabolismo o del transporte activo. Una situación similar ocurre cuando se agrega un nuevo fármaco
que puede competir con un fármaco existente por los sitios de unión a proteínas plasmáticas. La competencia por los sitios de unión puede hacer que
un fármaco eleve de forma transitoria la concentración de otro fármaco que se une con menor avidez a las proteínas, pero las concentraciones del
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fármaco en estado
de equilibrio
cambiarán
a menos que cambie la eliminación. Un problema más común que se produce por competencia de
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de losmedidas
fármacos,
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fármacos para los sitios de unión a proteínas plasmáticas
es la interpretación
errónea de las
concentraciones
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fármacos
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la mayor parte de los análisis no distinguen el fármaco libre del fármaco unido a proteínas.
La unión de un fármaco a las proteínas plasmáticas limita su concentración en los tejidos y en su sitio de acción porque solo el fármaco libre está en
cambio significativo transitorio en la concentración plasmática del fármaco no unido a proteínas. Solo los fármacos que muestran una relación casi
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instantánea entre la concentración plasmática libre y el efecto (p. ej., antiarrítmicos) mostrarán un efecto mensurable.
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tanto,
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concentraciones plasmáticas del fármaco libre solo mostrarán cambios significativos cuando la administración
fármacos
o la eliminación de
fármaco libre ocurre como consecuencia del metabolismo o del transporte activo. Una situación similar ocurre cuando se agrega un nuevo fármaco
que puede competir con un fármaco existente por los sitios de unión a proteínas plasmáticas. La competencia por los sitios de unión puede hacer que
un fármaco eleve de forma transitoria la concentración de otro fármaco que se une con menor avidez a las proteínas, pero las concentraciones del
fármaco en estado de equilibrio no cambiarán a menos que cambie la eliminación. Un problema más común que se produce por competencia de
fármacos para los sitios de unión a proteínas plasmáticas es la interpretación errónea de las concentraciones medidas de fármacos en plasma, ya que
la mayor parte de los análisis no distinguen el fármaco libre del fármaco unido a proteínas.
La unión de un fármaco a las proteínas plasmáticas limita su concentración en los tejidos y en su sitio de acción porque solo el fármaco libre está en
equilibrio entre las membranas celulares. En consecuencia, una vez alcanzado el equilibrio de distribución, la concentración del fármaco libre en el
líquido intracelular es la misma que en el plasma, excepto cuando se trata de transporte activo mediado por transportador. La unión de un fármaco a
las proteínas plasmáticas limita la filtración glomerular del fármaco y también puede limitar el transporte y metabolismo de los fármacos.
Unión a tejidos
Muchos fármacos se acumulan en los tejidos a concentraciones más altas en comparación con la que alcanzan en los líquidos extracelulares y en la
sangre. La unión de los fármacos a los tejidos suele ocurrir con componentes celulares como proteínas, fosfolípidos o proteínas nucleares y por lo
general es reversible. Una fracción grande del fármaco en el cuerpo puede permanecer unida de esta manera y servir como depósito que prolonga la
acción del fármaco en ese mismo tejido o en un sitio distante que se alcanza a través de la circulación. Dicha unión y acumulación de tejidos también
puede producir toxicidad local (p. ej., renal y ototoxicidad asociada con los aminoglucósidos). La acumulación intracelular de fármacos
antimicrobianos tiene implicaciones clínicas, tanto terapéuticas como toxicológicas (Pea, 2018).
SNC, barrera hematoencefálica y líquido cefalorraquídeo
Las células del endotelio capilar encefálico tienen uniones estrechas continuas; por lo tanto, la penetración de fármacos en el cerebro depende del
transporte transcelular en lugar de paracelular. Las características únicas de las células del endotelio capilar encefálico y las células gliales
pericapilares que constituyen el barrera hematoencefálica se describen en detalle en el capítulo 17 y en el capítulo 4 se describen algunos aspectos
específicos de las proteínas transportadoras que desplazan los fármacos dentro y fuera del SNC. En el plexo coroideo se encuentra una barrera
sangre­líquido cefalorraquídeo, formada por células epiteliales que se unen por uniones estrechas. La liposolubilidad de las moléculas de un fármaco
no ionizadas y no unidas a proteínas es un determinante importante de su absorción por el cerebro; cuanto más lipófilo sea un fármaco, más probable
será que cruce la barrera hematoencefálica. En general, la función de la barrera hematoencefálica se mantiene bien; sin embargo, la inflamación
meníngea y encefálica aumenta la permeabilidad local.
Hueso
Los antibióticos del grupo de las tetraciclinas (y otros fármacos quelantes de iones metálicos divalentes) y los metales pesados pueden acumularse en
el hueso por adsorción en la superficie de cristales óseos y su eventual incorporación en estructura cristalina. El hueso puede convertirse en
reservorio para la liberación lenta de fármacos tóxicos como el plomo o el radio; por lo tanto, sus efectos pueden persistir mucho después de que la
exposición haya cesado. La destrucción local de la médula ósea también puede ocasionar reducción del flujo sanguíneo y prolongación del efecto
reservorio a medida que el agente tóxico se aísla de la circulación; esto puede mejorar aún más el daño local directo al hueso. Ocurre un círculo
vicioso, por lo que cuanto mayor es la exposición al agente tóxico, más lenta es su tasa de eliminación. La adsorción del fármaco en la superficie de los
cristales óseos y su incorporación en la estructura cristalina tienen ventajas terapéuticas para el tratamiento de la osteoporosis como en el uso de
fosfonatos (Black y Rosen, 2016).
La grasa como reservorio
Muchos fármacos liposolubles se almacenan por solución física en la grasa neutra. En los pacientes con obesidad, el contenido de grasa corporal
puede ser de hasta 50% e incluso en los individuos magros, la grasa constituye 10% del peso corporal; por lo tanto, la grasa puede servir como
reservorio para los fármacos y toxinas liposolubles. La grasa es un reservorio bastante estable porque tiene un flujo sanguíneo relativamente bajo.
También puede complicar el tratamiento farmacológico al actuar como reservorio para fármacos para el tratamiento de enfermedades infecciosas
como el VIH y al limitar el acceso a fármacos relativamente no lipófilos (Couturier y Lewis, 2018).
Redistribución
La terminación del efecto del fármaco después de la suspender la administración de un fármaco por lo general ocurre por metabolismo y excreción,
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puede ser resultado
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terminar el efecto del fármaco sobre todo cuando un fármaco muy
liposoluble
que actúa sobre
el cerebro
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cardiovascular
se administra
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con rapidez por vía IV o por inhalación. Tal es el caso del anestésico intravenoso tiopental, un fármaco liposoluble. Debido a que el flujo sanguíneo al
cerebro es alto y el tiopental cruza con facilidad la barrera hematoencefálica, este fármaco alcanza su concentración máxima en el cerebro con rapidez
También puede complicar el tratamiento farmacológico al actuar como reservorio para fármacos para el tratamiento de enfermedades infecciosas
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como el VIH y al limitar el acceso a fármacos relativamente no lipófilos (Couturier y Lewis, 2018).
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Redistribución
La terminación del efecto del fármaco después de la suspender la administración de un fármaco por lo general ocurre por metabolismo y excreción,
pero también puede ser resultado de la redistribución del fármaco de su sitio de acción a otros tejidos o sitios. La redistribución es un factor en
terminar el efecto del fármaco sobre todo cuando un fármaco muy liposoluble que actúa sobre el cerebro o el aparato cardiovascular se administra
con rapidez por vía IV o por inhalación. Tal es el caso del anestésico intravenoso tiopental, un fármaco liposoluble. Debido a que el flujo sanguíneo al
cerebro es alto y el tiopental cruza con facilidad la barrera hematoencefálica, este fármaco alcanza su concentración máxima en el cerebro con rapidez
después de su administración IV. Más tarde, las concentraciones plasmáticas y cerebrales disminuyen a medida que el tiopental se redistribuye a otros
tejidos, como los músculos y, por último, al tejido adiposo. Esta redistribución es el mecanismo por el cual se termina el efecto anestésico del tiopental
(fig. 2–4); su eliminación real del cuerpo es bastante lenta (t1/2 de eliminación después de una dosis única de 3 a 8 h). La concentración del fármaco en
el cerebro sigue a la del plasma porque hay poca unión del fármaco a los componentes cerebrales. Por lo tanto, tanto el inicio como el término de la
anestesia con tiopental son relativamente rápidos y ambos están relacionados directamente con la concentración del fármaco en el cerebro.
Transferencia placentaria de fármacos
La liposolubilidad, el grado de unión plasmática y el grado de ionización de ácidos y bases débiles son determinantes generales importantes en la
transferencia de fármacos a través de la placenta. La placenta funciona como una barrera selectiva para proteger al feto contra los efectos nocivos de
los fármacos. Los miembros de la familia de transportadores ABC limitan la entrada de fármacos y otros xenobióticos hacia la circulación fetal a través
de la expulsión vectorial desde la placenta hasta la circulación materna (fig. 2–2 y cap. 4). El plasma fetal es ligeramente más ácido que el de la madre
(pH 7 a 7.2 en comparación con 7.4, respectivamente), por lo que se produce la retención de fármacos alcalinos. El punto de vista de que la placenta es
una barrera absoluta a los fármacos es inexacto, en parte porque también están presentes varios transportadores hacia la circulación fetal (Tetro et
al., 2018). Hasta cierto punto, el feto está expuesto a todos los fármacos que toma la madre.
La transferencia de fármacos a través de la placenta es de suma importancia ya que los fármacos pueden causar anomalías en el feto en desarrollo;
por lo tanto, es primordial que durante el embarazo se usen fármacos con base en evidencia científica. La FDA solía clasificar los fármacos utilizados
durante el embarazo en las categorías A a D y X, pasando de A (sin evidencia de riesgo fetal; por ejemplo, ácido fólico, levotiroxina) a D (evidencia
positiva de riesgo fetal, pero se puede utilizar si es absolutamente necesario; por ejemplo, alprazolam, losartán) y a X (los riesgos de su uso superan
cualquier beneficio; tales fármacos no deben usarse durante el embarazo; por ejemplo, estatinas, metotrexato). En 2015, la FDA estableció un nuevo
sistema de etiquetado, la Pregnancy and Lactation Labeling Rule (PLLR). La PLLR reemplaza los códigos de letras con un código sobre 1) embarazo, 2)
lactancia y 3) problemas que afectan a mujeres y varones en edad fértil, con la intención de permitir una mejor y más específica asesoría del paciente y
una toma de decisiones informada para mujeres embarazadas que requieren tratamiento farmacológico (Dinatale, 2016; Pernia y Demaagd, 2016). Los
médicos en Estados Unidos parecen estar adoptando el nuevo sistema con lentitud (Namazy et al., 2020).
METABOLISMO DE LOS FÁRMACOS
Algunos principios del metabolismo y eliminación
Los numerosos fármacos terapéuticos que son lipófilos no pasan con facilidad al ambiente acuoso de la orina. El metabolismo de fármacos y otros
xenobióticos en metabolitos más hidrófilos es esencial para su eliminación renal del cuerpo, así como para la terminación de su actividad biológica y
farmacológica.
Desde el punto de vista de la farmacocinética, los tres aspectos esenciales del metabolismo de los fármacos son los siguientes:
Cinética de primer orden. Para la mayor parte de los fármacos en sus intervalos de concentración terapéutica, la cantidad de fármaco
metabolizado por unidad de tiempo es proporcional a la concentración plasmática del fármaco (Cp) y la fracción de fármaco eliminada por el
metabolismo es constante (es decir, cinética de primer orden).
Cinética de orden cero. Para algunos fármacos, como el etanol y el difenilhidantoinato, la capacidad metabólica se satura a las
concentraciones habitualmente empleadas y el metabolismo de los fármacos se convierte en cinética de orden cero; es decir, se metaboliza una
cantidad constante de fármaco por unidad de tiempo. La cinética de orden cero también puede ocurrir con concentraciones altas (tóxicas) a
medida que se satura la capacidad de metabolizar fármacos.
Enzimas biotransformadoras inducibles. Los principales sistemas de metabolización de fármacos son enzimas inducibles de amplio
espectro con algunas variaciones genéticas predecibles. Los fármacos que son sustratos comunes para una enzima metabolizadora pueden
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En general, las reacciones metabolizadoras de fármacos generan metabolitos más polares e inactivos que se excretan con facilidad. Sin embargo, en
algunos casos se generan metabolitos con actividad biológica potente o propiedades tóxicas. Muchos de los sistemas enzimáticos que transforman
concentraciones habitualmente empleadas y el metabolismo de los fármacos se convierte en cinética de orden cero; es decir, se metaboliza una
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cantidad constante de fármaco por unidad de tiempo. La cinética de orden cero también puede ocurrir con concentraciones altas (tóxicas) a
medida que se satura la capacidad de metabolizar fármacos.
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Enzimas biotransformadoras inducibles. Los principales sistemas de metabolización de fármacos son enzimas inducibles de amplio
espectro con algunas variaciones genéticas predecibles. Los fármacos que son sustratos comunes para una enzima metabolizadora pueden
interferir con el metabolismo de la otra o bien, un fármaco puede inducir o mejorar el metabolismo del fármaco mismo o de otros fármacos.
En general, las reacciones metabolizadoras de fármacos generan metabolitos más polares e inactivos que se excretan con facilidad. Sin embargo, en
algunos casos se generan metabolitos con actividad biológica potente o propiedades tóxicas. Muchos de los sistemas enzimáticos que transforman
los fármacos en metabolitos inactivos también generan metabolitos biológicamente activos de compuestos endógenos, como en la biosíntesis de
esteroides. La biotransformación de fármacos se produce sobre todo en el hígado e implica reacciones de fase 1 (oxidación, reducción o reacciones
hidrolíticas y las actividades de las enzimas CYP) y reacciones de fase 2 (conjugaciones del producto de fase 1 con una segunda molécula que genera
un compuesto polar) y pasos subsiguientes que involucran transportadores que eliminan conjugados hacia el medio extracelular del que se excretan.
Otros órganos con una capacidad significativa de metabolización de fármacos incluyen el tubo digestivo, riñones y pulmones. Las enzimas
metabolizadoras de fármacos, en especial CYP, son inducibles por algunos fármacos y son inhibidas por fármacos y sustratos competidores y se ven
afectadas por enfermedades (Coutant y Hall, 2018). Las diferencias étnicas y de género desempeñan una función crítica en la respuesta a los fármacos
debido a factores como la composición corporal, así como la expresión y actividad de las enzimas metabolizadoras de fármacos (Farkouh et al., 2020).
El capítulo 5 (Metabolismo farmacológico) cubre en detalle la enzimología básica del metabolismo farmacológico. Los capítulos 4 (Transportadores de
membrana y respuesta a fármacos), 6 (Microbioma GI y respuesta a fármacos) y 7 (Farmacogenética) presentan aspectos relacionados con el
metabolismo de fármacos. Entender el metabolismo de un fármaco dado y cómo otros fármacos pueden afectar ese metabolismo es crucial para un
buen tratamiento farmacológico y el futuro de la medicina personalizada.
Profármacos
Los profármacos son compuestos inactivos desde el punto de vista farmacológico que se convierten a sus formas activas por el metabolismo. Diseñar
profármacos con la forma activa como plantilla puede incrementar la cantidad de compuestos activos que llegan a su sitio de acción. Los profármacos
inactivos se convierten con rapidez en metabolitos con actividad biológica, a menudo por la hidrólisis de un enlace éster o amida. Tal es el caso de una
serie de inhibidores de la ACE empleados en el tratamiento de la hipertensión arterial. El enalapril, por ejemplo, es relativamente inactivo hasta que se
convierte al enalaprilat diácido por la actividad de la esterasa (cap. 30).
Farmacogenética
Para una serie de áreas terapéuticas, la farmacogenética clínica, el estudio del impacto de las variaciones genéticas o genotipos de individuos en su
respuesta a fármacos o metabolismo de fármacos, permite un mejor tratamiento de individuos o grupos (Ramamoorthy et al., 2015; cap. 7).
EXCRECIÓN DE FÁRMACOS
Los fármacos se eliminan del cuerpo sin modificaciones o como metabolitos. Los órganos excretores, excluidos los pulmones, eliminan los
compuestos polares de manera más eficiente que las sustancias con alta liposolubilidad. Por lo tanto, los fármacos liposolubles no se eliminan con
facilidad hasta que se metabolizan en compuestos más polares. El riñón es el órgano más importante para excretar fármacos y sus metabolitos. La
excreción renal del fármaco sin cambios es una vía importante de eliminación para 25% a 30% de los fármacos administrados a los seres humanos. Las
sustancias excretadas en las heces son sobre todo fármacos ingeridos por VO o metabolitos de fármacos excretadas en la bilis o secretadas
directamente en el tubo digestivo y no se reabsorben. La excreción pulmonar es importante sobre todo para la eliminación de gases anestésicos (cap.
24).
La excreción de fármacos en la leche materna es importante porque los fármacos excretados pueden afectar al lactante (con baja masa corporal y
capacidad poco desarrollada para metabolizar xenobióticos). A la fecha no se cuenta con suficiente información para que el médico guíe a las madres
lactantes en los peligros potenciales de la excreción de fármacos en la leche materna. Se estima que entre 50% y 70% de las madres lactantes en
Estados Unidos toman algún tipo de fármaco; sin embargo, tan solo 15% de los fármacos aprobados en fecha reciente proporcionan información
sobre la lactancia materna (Byrne y Spong, 2019). La información más completa sobre los fármacos a los que los lactantes pueden estar expuestos a la
leche materna se puede encontrar en LactMed®, una base de datos de fármacos y otros productos químicos a los que pueden estar expuestas las
madres lactantes; la base de datos está disponible en la National Library of Medicine Bookshelf. A medida que la PLLR de la FDA incremente su uso
general, dicha información está cada vez más disponible como parte requerida de la información sobre fármacos en los anexos de los paquetes.
Excreción renal
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La excreción de fármacos y metabolitos en la orina implica tres procesos distintos: filtración glomerular, secreción tubular activa y reabsorción
tubular
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pasiva
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plasmática del fármaco; solo se filtra el fármaco no unido a proteínas. En el túbulo renal proximal, la secreción tubular activa mediada por
transportador también puede añadir fármaco al líquido tubular (figs. 4–3 y 4–4 y cap. 29). De hecho, la mayor parte de los fármacos no entran en el
leche materna se puede encontrar en LactMed®, una base de datos de fármacos y otros productos químicos a los que pueden estar expuestas las
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madres lactantes; la base de datos está disponible en la National Library of Medicine Bookshelf. A medida que la PLLR de la FDA incremente su uso
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general, dicha información está cada vez más disponible como parte requerida de la información sobre fármacos en los anexos de los paquetes.
Excreción renal
La excreción de fármacos y metabolitos en la orina implica tres procesos distintos: filtración glomerular, secreción tubular activa y reabsorción tubular
pasiva (fig. 2–5). La cantidad de fármaco que entra en la luz tubular por filtración depende de la tasa de filtración glomerular y del grado de unión
plasmática del fármaco; solo se filtra el fármaco no unido a proteínas. En el túbulo renal proximal, la secreción tubular activa mediada por
transportador también puede añadir fármaco al líquido tubular (figs. 4–3 y 4–4 y cap. 29). De hecho, la mayor parte de los fármacos no entran en el
túbulo renal por filtración glomerular sino por secreción tubular. La secreción tubular involucra transportadores de fármacos alcalinos (p. ej.,
amilorida, dopamina, histamina) y portadores de fármacos ácidos (p. ej., furosemida, penicilina, indometacina) (fig. 4–10 y 4–11). La penicilina se
excreta con rapidez del cuerpo (t1/2 = 30 min), en gran parte a través de la secreción tubular, con eliminación de la mayor parte de la dosis inyectada en
2 h. El fármaco de la luz tubular puede reabsorberse en la circulación sistémica. En los túbulos renales, en especial en el túbulo contorneado distal, las
formas no ionizadas de ácidos y bases débiles se someten a una reabsorción pasiva neta. Las células tubulares son menos permeables a las formas
ionizadas de electrolitos débiles; por lo tanto, la reabsorción pasiva de estas sustancias depende del pH (fig. 2–3). Cuando la orina tubular se hace más
alcalina, los ácidos débiles se ionizan en gran medida y se excretan más con rapidez y en mayor medida; a la inversa, la acidificación de la orina
reducirá la ionización fraccional y la excreción de ácidos débiles. Los efectos de cambiar el pH de la orina son opuestos para bases débiles. En el
tratamiento de la intoxicación por fármacos, la excreción de algunos fármacos puede acelerarse mediante una alcalinización o acidificación
adecuadas de la orina.
Figura 2–5
Manipulación renal de fármacos. Los fármacos pueden filtrarse de la sangre en el glomérulo renal, secretarse en el túbulo proximal, reabsorberse del
líquido tubular distal hacia la circulación sistémica y acumularse en la orina. Los transportadores de membrana (OAT, OCT, MDR1 y MRP2, entre otros)
median la secreción en el túbulo proximal (véanse las figs. 4–12 y 4–13 para más detalles). La reabsorción de compuestos en el líquido tubular distal
(por lo general ácidos) es sensible al pH: Los fármacos ionizables están sujetos a la retención iónica; alterar el pH urinario para favorecer la ionización
puede mejorar la excreción de moléculas con carga (fig. 2–2).
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medios farmacológicos.
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efecto
terapéutico
de
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secretada en la orina por los transportadores de aniones orgánicos OAT1 y OAT3; el fármaco ácido probenecid compite con la penicilina al nivel de
OAT1 y OAT3, con lo que disminuye la excreción y prolongando las concentraciones efectivas del antibiótico. El probenecid también puede afectar la
líquido tubular distal hacia la circulación sistémica y acumularse en la orina. Los transportadores de membrana (OAT, OCT, MDR1 y MRP2, entre otros)
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median la secreción en el túbulo proximal (véanse las figs. 4–12 y 4–13 para más detalles). La reabsorción de compuestos en el líquido tubular distal
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(por lo general ácidos) es sensible al pH: Los fármacos ionizables están sujetos a la retención iónica; alterar el pH urinario para favorecer la ionización
puede mejorar la excreción de moléculas con carga (fig. 2–2).
La excreción y reabsorción de fármacos pueden a veces ser modificadas por medios farmacológicos. Por ejemplo, la administración conjunta de
fármacos que compiten eficazmente por la secreción tubular de penicilina puede prolongar el efecto terapéutico de este antibiótico. La penicilina es
secretada en la orina por los transportadores de aniones orgánicos OAT1 y OAT3; el fármaco ácido probenecid compite con la penicilina al nivel de
OAT1 y OAT3, con lo que disminuye la excreción y prolongando las concentraciones efectivas del antibiótico. El probenecid también puede afectar la
manipulación renal del ácido úrico. El ácido úrico es excretado en la orina por el riñón a través de la interacción de los procesos de filtración, secreción
y reabsorción. El probenecid también inhibe URAT1, el transportador de ácido úrico que se encuentra en la superficie apical de las células tubulares
renales y facilita la reabsorción de ácido úrico de la orina (Tan et al., 2016). La prevención de la reabsorción del ácido úrico (p. ej., mediante la
administración de probenecid) favorece la excreción de ácido úrico, un efecto útil en el tratamiento de la hiperuricemia (gota). Estas acciones de
probenecid se tratan con mayor detalle en los capítulos sobre uricosúricos y antibióticos β­lactámicos (caps. 42 y 58, respectivamente).
En los adultos mayores, la función renal disminuye gradualmente en casi 1% anual. Los cambios en la excreción renal para los fármacos eliminados
sobre todo por vía renal se verán afectados, lo que da origen a un aumento de las concentraciones máximas de los fármacos y una mayor duración del
efecto. Por lo tanto, los pacientes de edad avanzada pueden requerir ajustes de fármacos (O’Mahony, 2020); la FDA publica una guía útil
(https://www.fda.gov/drugs/guidance­compliance­regulatory­information/guidances­drugs).
Existe insuficiente conocimiento sobre los efectos del embarazo, por sí mismo sobre la farmacocinética. Si bien se ha encontrado una mayor
eliminación de fármacos en varios casos, las alteraciones asociadas en las respuestas y resultados clínicos, o la falta de estos, siguen siendo en gran
medida desconocidas. En los recién nacidos, la función renal es baja en comparación con la masa corporal, pero madura con rapidez en los primeros
meses después del nacimiento. La iniciativa PLLR debería aportar más información a este sentido.
Excreción biliar y fecal
Los transportadores presentes en la membrana canalicular del hepatocito (fig. 4–6) secretan activamente fármacos y metabolitos en la bilis. En última
instancia, los fármacos y metabolitos presentes en la bilis se liberan en el tubo digestivo durante el proceso digestivo. Más tarde, los fármacos y
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metabolitos pueden
ser reabsorbidos
desde el intestino, que, en el caso de metabolitos conjugados como glucurónidos, puede requerir
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hidrólisis enzimática por acción de la microflora
La circulación
enterohepática
es extenso, puede
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presencia de un fármaco (o toxina) y sus efectos dentro del cuerpo antes de su eliminación por otras vías. Para interrumpir el ciclo enterohepático, se
pueden administrar sustancias por VO que se unan a metabolitos excretados en la bilis (véase el cap. 37, Farmacoterapia en dislipidemias, en la
meses después del nacimiento. La iniciativa PLLR debería aportar más información a este sentido.
Excreción biliar y fecal
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Los transportadores presentes en la membrana canalicular del hepatocito (fig. 4–6) secretan activamente fármacos y metabolitos en la bilis. En última
instancia, los fármacos y metabolitos presentes en la bilis se liberan en el tubo digestivo durante el proceso digestivo. Más tarde, los fármacos y
metabolitos pueden ser reabsorbidos en el cuerpo desde el intestino, que, en el caso de metabolitos conjugados como glucurónidos, puede requerir
hidrólisis enzimática por acción de la microflora intestinal. La circulación enterohepática, si es extenso, puede prolongar significativamente la
presencia de un fármaco (o toxina) y sus efectos dentro del cuerpo antes de su eliminación por otras vías. Para interrumpir el ciclo enterohepático, se
pueden administrar sustancias por VO que se unan a metabolitos excretados en la bilis (véase el cap. 37, Farmacoterapia en dislipidemias, en la
sección de fijadores de ácidos biliares y ezetimiba). Las excreciones biliares y los fármacos no absorbidos se eliminan en las heces.
Excreción por otras vías
La excreción de fármacos en el sudor, saliva y lágrimas es cuantitativamente poco importante. Debido a que la leche es más ácida que el plasma, los
compuestos alcalinos pueden estar ligeramente concentrados en este líquido; por el contrario, la concentración de compuestos ácidos en la leche es
menor que en el plasma. Los compuestos no electrolíticos (p. ej., etanol y urea) entran con facilidad en la leche materna y alcanzan la misma
concentración que en el plasma, independientemente del pH de la leche (Rowe et al., 2015). La leche materna también puede contener metales
pesados derivados de exposiciones ambientales. La administración de fármacos a mujeres que amamantan debe acompañarse de la precaución
general que el lactante estará expuesto al fármaco o a sus metabolitos. La insuficiencia de datos dificulta la comprensión completa de este problema.
La iniciativa PLLR y el uso de modelos farmacocinéticos en el desarrollo de fármacos preclínicos en lugar de pruebas convencionales en animales para
la excreción de fármacos en la leche materna mejorarán la orientación necesaria en este sentido (Anderson, 2018). Aunque la excreción en el cabello y
la piel es cuantitativamente poco importante, los métodos sensibles de detección de fármacos en estos tejidos tienen importancia forense.
FARMACOCINÉTICA CLÍNICA
La farmacocinética clínica relaciona los efectos farmacológicos de un fármaco y la concentración del fármaco en un compartimiento corporal accesible
(p. ej., en sangre o plasma) a medida que cambian en el tiempo. En la mayor parte de los casos, la concentración del fármaco en sus sitios de acción
estará relacionada con la concentración del fármaco en la circulación sistémica (fig. 2–1). El efecto farmacológico resultante puede ser el efecto clínico
deseado o un efecto adverso o tóxico. La farmacocinética clínica intenta proporcionar:
Una relación cuantitativa entre la dosis y el efecto
Un marco dentro del cual interpretar las mediciones de la concentración de fármacos en líquidos biológicos y su ajuste a través de cambios en la
dosificación para beneficio del paciente
La importancia de la farmacocinética en la atención al paciente se basa en la mejora de la eficacia terapéutica y en la prevención de efectos indeseados
que pueden lograrse mediante la aplicación de sus principios cuando se eligen y modifican los regímenes de dosificación.
Los siguientes son los cuatro parámetros más importantes que rigen la eliminación de los fármacos:
1. Biodisponibilidad, la fracción de un fármaco absorbida en la circulación sistémica
2. Volumen de distribución, una medida del espacio aparente en el cuerpo disponible para contener el fármaco basado en cuánto se administra en
comparación con lo que se encuentra en la circulación sistémica
3. Depuración, una medida de la eficiencia del cuerpo en la eliminación de fármacos de la circulación sistémica
4. Semivida de eliminación (t1/2 de eliminación), una medida de la tasa de eliminación del fármaco de la circulación sistémica
Eliminación
La depuración es el concepto más importante a considerar al diseñar un régimen racional para la administración de fármacos a largo plazo. El médico
por lo general desea mantener las concentraciones de un fármaco en estado de equilibrio dentro de un intervalo terapéutico o rango asociado con
eficacia terapéutica y un mínimo de efectos tóxicos para un fármaco determinado. Suponiendo una biodisponibilidad completa, la concentración del
fármaco en estado de equilibrio en el cuerpo se logrará cuando la tasa de eliminación del fármaco sea igual a la velocidad de administración del
fármaco. Así,
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(Ecuación
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donde CL es la depuración del fármaco de la circulación sistémica (en unidades de volumen/tiempo) y Css es la concentración del fármaco en estado de
equilibrio (en unidades de masa/volumen). Cuando se conoce la concentración deseada del fármaco en estado de equilibrio en plasma o sangre, la
por lo general desea mantener las concentraciones de un fármaco en estado de equilibrio dentro de un intervalo terapéutico o rango asociado con
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eficacia terapéutica y un mínimo de efectos tóxicos para un fármaco determinado. Suponiendo una biodisponibilidad completa, la concentración del
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fármaco en estado de equilibrio en el cuerpo se logrará cuando la tasa de eliminación del fármaco sea igual a la velocidad de administración del
fármaco. Así,
(Ecuación 2–3)
donde CL es la depuración del fármaco de la circulación sistémica (en unidades de volumen/tiempo) y Css es la concentración del fármaco en estado de
equilibrio (en unidades de masa/volumen). Cuando se conoce la concentración deseada del fármaco en estado de equilibrio en plasma o sangre, la
tasa de depuración del fármaco dictará la frecuencia con la que se tiene que administrar el fármaco.
Conocer la depuración de un fármaco es útil porque su valor para un fármaco en particular suele ser constante en el intervalo de las concentraciones
que se encuentran en la clínica. Esto es cierto porque las enzimas metabolizadoras y los transportadores por lo general no están saturados; por lo
tanto, la tasa absoluta de eliminación del fármaco es en esencia una función lineal de su concentración en el plasma (cinética de primer orden), donde
se elimina una fracción constante del fármaco presente en el cuerpo por unidad de tiempo. Si los mecanismos para la eliminación de un determinado
fármaco se saturan, la cinética se aproxima al orden cero (el caso del etanol y el difenilhidantoinato en dosis altas), en cuyo caso se elimina una
cantidad constante del fármaco por unidad de tiempo.
Con la cinética de primer orden, la depuración (CL) variará con la concentración del fármaco (C), a menudo de acuerdo con la ecuación 2–4:
(Ecuación 2–4)
donde Km representa la concentración a la que se alcanza la mitad de la tasa máxima de eliminación (en unidades de masa/volumen) y νm es igual a la
tasa máxima de eliminación (en unidades de masa/tiempo). Por lo tanto, la depuración se obtiene en unidades de volumen eliminado del
fármaco/tiempo. Esta ecuación es análoga a la ecuación de Michaelis­Menten para la cinética enzimática.
La depuración de un fármaco es su tasa de eliminación por todas las vías, normalizada para la concentración del fármaco C en algún líquido biológico
donde se puede realizar la medición:
(Ecuación 2–5)
Por lo tanto, cuando la depuración es constante, la tasa de eliminación de fármacos es directamente proporcional a la concentración del fármaco. La
depuración indica el volumen del líquido biológico, como la sangre o el plasma, del que se tendría que retirar completamente el fármaco para tener en
cuenta la depuración por unidad de peso corporal (p. ej., mL/min/kg). La depuración se puede definir más a fondo como depuración de sangre CLb,
depuración de plasma CLp o depuración basado en la concentración de fármaco no unido a proteínas CLu, dependiendo de la medición realizada (Cb,
Cp o Cu). La depuración del fármaco por varios órganos es aditiva. La eliminación del fármaco de la circulación sistémica puede ocurrir como resultado
de procesos que ocurren en el riñón, hígado y en otros órganos. La división de la tasa de eliminación por cada órgano por una concentración de
fármaco (p. ej., concentración plasmática) dará la depuración respectiva para ese órgano. En conjunto, estas mediciones independientes de la
depuración equivaldrán a la depuración sistémica:
(Ecuación 2–6)
Cualquier alteración significativa en la función renal o hepática puede ocasionar una disminución de la depuración para aquellos fármacos con un
depuración renal o hepática alta. La depuración sistémica se puede determinar en estado de equilibrio mediante la ecuación 2–3. Para una dosis única
de un fármaco con biodisponibilidad de 1 y cinética de eliminación de primer orden, la depuración sistémica puede determinarse a partir del
equilibrio de masas y la integración de la ecuación 2–5 con el tiempo:
(Ecuación 2–7)
El área bajo la curva (AUC) total describe la concentración medida del fármaco en la circulación sistémica en función del tiempo (de cero a infinito),
como en la figura 2–10, imagen A.
Ejemplos de depuración
La depuración plasmática del antibiótico cefalexina es de 4.3 mL/min/kg; 90% del fármaco se excreta sin cambios en la orina. Para un varón de 70 kg, la
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depuración plasmática
sería
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y la depuración renal representa 90% de esta eliminación. En otras palabras, el riñón es capaz de excretar
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cefalexina a una velocidad tal que el fármaco se
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90% de la depuración total). Debido a que por lo general se asume que la depuración permanece constante en un paciente estable desde el punto de
vista médico (p. ej., no hay disminución aguda de la función renal), la tasa de eliminación de la cefalexina dependerá de la concentración del fármaco
El área bajo la curva (AUC) total describe la concentración medida del fármaco en la circulación sistémica en función del tiempo (de cero a infinito),
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como en la figura 2–10, imagen A.
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Ejemplos de depuración
La depuración plasmática del antibiótico cefalexina es de 4.3 mL/min/kg; 90% del fármaco se excreta sin cambios en la orina. Para un varón de 70 kg, la
depuración plasmática sería de 301 mL/min y la depuración renal representa 90% de esta eliminación. En otras palabras, el riñón es capaz de excretar
cefalexina a una velocidad tal que el fármaco se extrae por completo (se elimina) de alrededor de 270 mL de plasma cada minuto (depuración renal =
90% de la depuración total). Debido a que por lo general se asume que la depuración permanece constante en un paciente estable desde el punto de
vista médico (p. ej., no hay disminución aguda de la función renal), la tasa de eliminación de la cefalexina dependerá de la concentración del fármaco
en el plasma (ecuación 2–5).
El antagonista del receptor β­adrenérgico propranolol se elimina de la sangre a una velocidad de 16 mL/min/kg (o 1 600 mL/min en un varón de 100
kg), casi exclusivamente por vía hepática. Así, el hígado puede eliminar la cantidad de propranolol contenida en 1 600 mL de sangre en 1 min, casi igual
que el flujo sanguíneo hepático total (cuadro 2–2). De hecho, la depuración plasmática de algunos fármacos excede la tasa de flujo sanguíneo a este
órgano. A menudo, esto es así porque el fármaco se reparte con facilidad dentro y fuera de los eritrocitos (RBC) y la velocidad con la que se entrega el
fármaco al órgano que lo eliminará es considerablemente más elevada de lo esperado con base en las concentraciones plasmáticas. La relación entre
la depuración plasmática (Clp) y la depuración sanguínea (Clb; todos los componentes de la sangre) en estado de equilibrio está dada por
(Ecuación 2–8)
Por lo tanto, la depuración sanguínea puede estimarse al dividir la depuración plasmática entre la relación de concentración en sangre/plasma del
fármaco, obtenida a partir del conocimiento del hematocrito (H = 0.45) y la relación de concentración de eritrocitos/plasma. En la mayor parte de los
casos, la depuración sanguínea será menor que el flujo sanguíneo hepático (1.5 a 1.7 L/min) o, si la excreción renal está involucrada, la suma de los
flujos de sangre a cada órgano que participa en la eliminación. Por ejemplo, la depuración plasmática del inmunomodulador tacrolimús es de casi 2
L/min, más del doble de la tasa de flujo plasmático hepático, e incluso excede el flujo sanguíneo del órgano a pesar de que el hígado es el sitio
predominante del metabolismo extenso de este fármaco. Sin embargo, después de tener en cuenta la extensa distribución de tacrolimús en los
eritrocitos, su eliminación de la sangre es de solo unos 63 mL/min y en realidad es un fármaco con un depuración bastante baja, no es un producto de
depuración alta, como podría esperarse si se considera solo el valor de la depuración plasmática. La depuración de la sangre por metabolismo puede
exceder el flujo sanguíneo del hígado, lo que indica el metabolismo extrahepático. En el caso del antagonista del receptor β1 esmolol, el valor de la
depuración sanguínea (11.9 L/min) es mayor que el gasto cardiaco (casi 5.5 L/min) porque el fármaco se metaboliza eficazmente por acción de las
esterasas presentes en los eritrocitos.
Una nueva definición de depuración es útil para comprender los efectos de las variables patológicas y fisiológicas sobre la eliminación de fármacos, en
particular con respecto a un órgano individual. La tasa de presentación del fármaco al órgano es el producto del flujo sanguíneo Q y la concentración
arterial del fármaco CA y la tasa de salida del fármaco del órgano es el producto del flujo sanguíneo y la concentración venosa del fármaco CV. La
diferencia entre estas tasas en estado de equilibrio es la tasa de eliminación de fármacos por ese órgano:
(Ecuación 2–9)
Al dividir la ecuación 2–8 entre la concentración de un fármaco que entra en el órgano que llevará a cabo la eliminación, CA, se produce una expresión
para la depuración del fármaco por el órgano en cuestión:
(Ecuación 2–10)
La expresión (CA – CV)/CA en la ecuación 2–10 puede denominarse la relación de extracción E del fármaco. Aunque no se emplean en la práctica médica
general, los cálculos de la proporción o proporciones de extracción de un fármaco son útiles para modelar los efectos de la enfermedad de un
determinado órgano metabolizador en la depuración y para el diseño de las propiedades terapéuticas ideales de los fármacos en desarrollo.
Depuración hepática (C LH )
Para un fármaco que se elimina eficientemente de la sangre mediante procesamiento hepático (metabolismo o excreción de fármaco en la bilis), la
concentración del fármaco en la sangre que sale del hígado será baja, la proporción de extracción se acercará a la unidad y la depuración del fármaco
de la sangre se2023­12­21
verá limitado
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hepático (800 a 1 500 mL/min). Los fármacos que son eliminados eficientemente por el hígado (p.
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metabolismo
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de losyfármacos,
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Buxton
ej., los fármacos con depuraciones sistémicas > 6 mL/min/kg,
diltiazem
, imipramina,ylidocaína,
morfina
propranolol
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tasa de eliminación no por procesos intrahepáticos, sino por la velocidad a la que pueden ser transportados en la sangre hacia el hígado.
Los modelos farmacocinéticos indican que cuando la capacidad del órgano para metabolizar y eliminar el fármaco es grande en comparación con la
determinado órgano metabolizador en la depuración y para el diseño de las propiedades terapéuticas ideales de los fármacos en desarrollo.
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Depuración hepática (C LH )
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Para un fármaco que se elimina eficientemente de la sangre mediante procesamiento hepático (metabolismo o excreción de fármaco en la bilis), la
concentración del fármaco en la sangre que sale del hígado será baja, la proporción de extracción se acercará a la unidad y la depuración del fármaco
de la sangre se verá limitado por el flujo sanguíneo hepático (800 a 1 500 mL/min). Los fármacos que son eliminados eficientemente por el hígado (p.
ej., los fármacos con depuraciones sistémicas > 6 mL/min/kg, como diltiazem, imipramina, lidocaína, morfina y propranolol) están restringidas en su
tasa de eliminación no por procesos intrahepáticos, sino por la velocidad a la que pueden ser transportados en la sangre hacia el hígado.
Los modelos farmacocinéticos indican que cuando la capacidad del órgano para metabolizar y eliminar el fármaco es grande en comparación con la
tasa de presentación del fármaco al órgano, la depuración se aproximará al flujo sanguíneo del órgano. Por el contrario, cuando la capacidad de
metabolización del fármaco es pequeña en comparación con la tasa de presentación del fármaco, la depuración será proporcional a la fracción del
fármaco en sangre no unido a proteínas (funb) y al depuración intrínseca del fármaco (CLint), donde la depuración intrínseca representa la unión del
fármaco a los componentes de la sangre y los tejidos o la capacidad intrínseca del hígado para eliminar un fármaco en ausencia de limitaciones
impuestas por el flujo sanguíneo (Guner y Bowen, 2013). Por lo tanto, la depuración hepática será:
(Ecuación 2–11)
Depuración renal
La depuración renal de un fármaco ocasiona su aparición en la orina. Al considerar la depuración de un fármaco a través del riñón, se debe tomar en
cuenta la filtración glomerular, la secreción, reabsorción y el flujo sanguíneo glomerular (fig. 2–5). La tasa de filtración de un fármaco depende del
volumen de líquido que se filtra en el glomérulo y de la concentración de fármaco no unido a proteínas en plasma (porque el fármaco unido a
proteínas no se filtra). La tasa de secreción del fármaco en el líquido tubular es el factor más importante para determinar la excreción renal. La
secreción dependerá de los transportadores involucrados en la secreción activa, que se verán afectados por la unión del fármaco a las proteínas
plasmáticas, el grado de saturación de estos transportadores, la velocidad de suministro del fármaco al sitio de su excreción y la presencia de
fármacos que puedan competir por estos transportadores. Además, se deben considerar los procesos de reabsorción de fármacos del líquido tubular
de vuelta al torrente sanguíneo, como ocurre con el ácido úrico. La depuración renal se verá afectada por los cambios en la unión de proteínas, el flujo
sanguíneo y el estado funcional de las nefronas.
El ácido acetilsalicílico demuestra la interacción entre la absorción renal y la secreción. Este fármaco tiene un efecto bimodal en el manejo renal del
ácido úrico: las dosis altas de ácido acetilsalicílico (> 3 g/día) son uricosúricas (tal vez mediante el bloqueo de la reabsorción de ácido úrico), mientras
que las dosis bajas (1 a 2 g/día) causan retención de ácido úrico (quizá a través de la inhibición de la secreción de ácido úrico). El ácido acetilsalicílico
en dosis bajas, que está indicada para la profilaxis de eventos cardiovasculares, puede causar cambios en la función renal y el tratamiento del ácido
úrico en adultos mayores.
Distribución
Volumen de distribución
El volumen de distribución V relaciona la cantidad de fármaco en el cuerpo con la concentración de fármaco C en la sangre o el plasma, dependiendo
del líquido medido. Este volumen no necesariamente se refiere a un volumen fisiológico identificable, sino al volumen de líquido que se necesitaría
para contener todo el fármaco en el cuerpo a la misma concentración medida en la sangre o el plasma:
o
(Ecuación 2–12)
Considérese a V como un volumen imaginario porque el valor V para muchos fármacos excede el volumen conocido de todos los compartimientos
corporales (Recuadro 2–1). Por ejemplo, el valor de V para el antipalúdico cloroquina, un fármaco muy lipófilo, es de casi 15 000 L, mientras que el
volumen de agua corporal total es de casi 42 L en un varón de 70 kg. El beneficio de determinar V es entender la distribución del fármaco al cuerpo
lejos del torrente sanguíneo como una indicación de su distribución a los sitios de acción.
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RECUADRO2:
2–1
¿Los valores de la
V son
mayores
que
cualquierdistribución,
volumen fisiológico?
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de la
absorción,
metabolismo y eliminación de los fármacos, Iain L. O. Buxton
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Para muchos fármacos, la ecuación 2–12 proporcionará valores V que excedan cualquier volumen fisiológico. Por ejemplo, si 500 mcg del glucósido
cardiaco digoxina se añaden al cuerpo de un sujeto de 70 kg, se observaría una concentración plasmática de casi 0.75 ng/mL. Al dividir la cantidad
(Ecuación 2–12)
Considérese a V como un volumen imaginario porque el valor V para muchos fármacos excede el volumen conocido
de todosDE
losEL
compartimientos
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corporales (Recuadro 2–1). Por ejemplo, el valor de V para el antipalúdico cloroquina, un fármaco muy lipófilo,
es de casi 15 000 L, mientras que el
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volumen de agua corporal total es de casi 42 L en un varón de 70 kg. El beneficio de determinar V es entender la distribución del fármaco al cuerpo
lejos del torrente sanguíneo como una indicación de su distribución a los sitios de acción.
RECUADRO 2–1 ¿Los valores de V son mayores que cualquier volumen fisiológico?
Para muchos fármacos, la ecuación 2–12 proporcionará valores V que excedan cualquier volumen fisiológico. Por ejemplo, si 500 mcg del glucósido
cardiaco digoxina se añaden al cuerpo de un sujeto de 70 kg, se observaría una concentración plasmática de casi 0.75 ng/mL. Al dividir la cantidad
de fármaco en el cuerpo entre la concentración plasmática, se obtiene un volumen de distribución de digoxina de casi 667 L o un valor de
aproximadamente 15 veces mayor que el volumen total del cuerpo de un varón de 70 kg. De hecho, la digoxina se distribuye en forma preferente al
músculo y al tejido adiposo y se une a sus receptores específicos, la Na+/K+­ATPasa, dejando una cantidad muy pequeña de fármaco en el plasma a
medir. Por lo tanto, el volumen de distribución de un fármaco puede reflejar la medida en que está presente en los tejidos extravasculares y no en el
plasma. Por el contrario, un valor pequeño para V puede indicar la permanencia del fármaco en el torrente sanguíneo deseable en el tratamiento de
las leucemias. Muchas preparaciones de fármacos más recientes encapsulan uno o más fármacos en liposomas o nanopartículas diseñadas para
regular la distribución de los fármacos (Filipczak et al., 2020). Por lo tanto, V puede variar ampliamente dependiendo de los grados relativos de
unión a los sitios receptores de alta afinidad, proteínas plasmáticas e hísticas, el coeficiente de reparto del fármaco en la grasa, la acumulación en
tejidos poco perfundidos y estrategias diseñadas como la encapsulación. El volumen de distribución de un fármaco determinado puede variar
según la edad, el sexo, la composición corporal y la presencia de enfermedades en el paciente. Por ejemplo, el agua corporal total de los niños < 1
año es de 75% a 80% del peso corporal, mientras que la de los varones adultos es de 60% y en mujeres de 55%.
En el caso de los fármacos que se unen ampliamente a las proteínas plasmáticas pero que no se unen a los componentes del tejido, el volumen de
distribución se acercará al volumen plasmático, ya que el fármaco unido a las proteínas plasmáticas es mensurable en el análisis de medición para la
mayor parte de los fármacos. Por el contrario, ciertos fármacos tienen altos volúmenes de distribución, aunque la mayor parte de los fármacos en la
circulación están ligados a la albúmina porque estos fármacos se secuestran en otras partes del cuerpo.
El volumen de distribución definido en la ecuación 2–12 considera el cuerpo como un único compartimiento homogéneo. En este modelo de un solo
compartimiento, toda la administración de fármacos se produce directamente en el compartimiento central y la distribución del fármaco es
instantánea en todo el volumen V. La depuración del fármaco de este compartimiento sigue una cinética de primer orden, como se define en la
ecuación 2–5; es decir, la cantidad de un fármaco eliminada por unidad de tiempo depende de la cantidad (concentración) de un fármaco en el
compartimiento corporal en ese momento. La figura 2–6A y la ecuación 2–9 describen la disminución de la concentración plasmática con el tiempo
para un fármaco introducido en este compartimiento central:
Figura 2–6
Curvas de concentración plasmática/tiempo tras la administración IV de un fármaco (500 mg) a un paciente de 70 kg. A . Las concentraciones de
fármacos se miden en plasma a intervalos de 2 h tras su administración. El gráfico semilogarítmico de la concentración plasmática Cp en comparación
con el tiempo sugiere que el fármaco se elimina de un solo compartimiento siguiendo una cinética de primer orden (ecuación 2–13) con una t1/2 de 4 h
(k = 0.693/t1/2 = 0.173 h1). El volumen de la distribución V podrá determinarse a partir del valor de Cp obtenido por extrapolación al tiempo cero. El
volumen de distribución (véase la ecuación 2–12) para el modelo de un compartimiento es de 31.3 L, o 0.45 L/kg (V = dosis/C0p). La holgura para este
fármaco es de 90 mL/min; para un modelo de un compartimiento, CL=kV. B . Muestreo antes de las 2 h indica que el fármaco sigue la cinética
multiexponencial. La disposición del terminal t1/2 es de 4 h, el espacio libre es de 84 mL/min (consulte la ecuación 2–7) y Vss es de 26.8 L (consulte la
ecuación 2–14). El volumen de distribución inicial o “central” del fármaco (V = dosis/C0p) es de 16.1 L. El ejemplo indica que la cinética de múltiples
compartimientos puede pasarse por alto cuando se omite el muestreo en etapas tempranas. En este caso particular, solo hay un error de 10% en la
estimación de eliminación cuando se desconocen las características de múltiples compartimientos. Para muchos fármacos, la cinética de múltiples
compartimientos puede observarse durante períodos de tiempo significativos y si no se tiene en cuenta la fase de distribución, se pueden producir
errores significativos en las estimaciones de depuración y en las predicciones de dosis adecuadas.
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compartimientos puede pasarse por alto cuando se omite el muestreo en etapas tempranas. En este caso particular, solo hay un error de 10% en la
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estimación de eliminación cuando se desconocen las características de múltiples compartimientos. Para muchos fármacos, la cinética de múltiples
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compartimientos puede observarse durante períodos de tiempo significativos y si no se tiene en cuenta la fase de distribución, se pueden producir
errores significativos en las estimaciones de depuración y en las predicciones de dosis adecuadas.
(Ecuación 2–13)
donde k es la constante de velocidad de eliminación que refleja la fracción de fármaco extraída del compartimiento por unidad de tiempo. Esta
constante de velocidad tiene relación inversamente proporcional con la t1/2 del fármaco [kt1/2 = ln 2 = 0.693]. El modelo idealizado de un
compartimiento no describe la concentración plasmática todo el tiempo. Ciertos reservorios de tejido pueden diferenciarse del compartimiento
central y la concentración de fármaco parece disminuir de una manera que puede describirse mediante múltiples términos exponenciales (fig. 2–6B).
Tasas de distribución
En muchos casos, todos los grupos de tejidos con relaciones similares de perfusión/reparto se equilibran básicamente a la misma velocidad, de forma
que solo se observa una fase aparente de distribución (disminución inicial rápida de la concentración de fármaco inyectado por vía IV, como se
observa en la fig. 2–6B). En esencia, el fármaco comienza en un volumen “central” (fig. 2–1), que consiste en depósitos en plasma y tejidos que
alcanzan un estado de equilibrio con rapidez y luego se distribuye a un volumen “final”, en cuyo punto las concentraciones plasmáticas disminuyen en
forma lineal logarítmica a una velocidad constante k (fig. 2–6B). El modelo de múltiples compartimientos para la eliminación de un fármaco se puede
considerar como si la sangre y los órganos magros muy perfundidos tales como corazón, cerebro, hígado, pulmón y riñones se agruparan como un
solo compartimiento central, mientras que los tejidos perfundidos más con lentitud tales como músculo, piel, grasa y hueso se comportan como el
compartimiento final (compartimiento hístico).
Si el flujo sanguíneo a ciertos tejidos cambia en un individuo, las tasas de distribución de fármacos a estos tejidos también cambiarán. Los cambios en
el flujo sanguíneo pueden hacer que algunos tejidos que originalmente se encontraban en el volumen “central” se equilibren con lentitud suficiente,
por lo que solo aparecen en el volumen “final”. Esto significa que los volúmenes centrales parecerán variar con los estados patológicos que causan
alteración del flujo sanguíneo regional (como se observa en pacientes con cirrosis hepática). Después de una dosis en bolo IV, las concentraciones de
fármacos en plasma pueden ser más altas en individuos con mala perfusión (p. ej., estado de choque) en comparación con individuos con mejor
perfusión. Estas concentraciones sistémicas más altas pueden a su vez causar concentraciones más altas (y mayores efectos) en tejidos como el
cerebro y el corazón, cuya perfusión por lo general alta no se ha reducido. Por lo tanto, el efecto de un fármaco en varios sitios de acción puede variar
dependiendo de la perfusión de estos sitios.
Volúmenes de múltiples compartimientos
En la cinética de múltiples compartimientos, un término del volumen de distribución es útil en especial cuando se va a determinar el efecto de los
estados patológicos sobre la farmacocinética. El volumen de distribución en estado de equilibrio Vss representa el volumen en el que un fármaco
parece estar distribuido en estado de equilibrio si el fármaco estuviera presente en ese volumen a la misma concentración que en el líquido medido
(plasma o sangre). El Vss también puede apreciarse como se muestra en la ecuación 2–14, donde VC es el volumen de distribución del fármaco en el
compartimiento central y VT es el término de volumen del fármaco en el compartimiento de tejidos:
(Ecuación 2–14)
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Concentración
en estado ladedinámica
equilibrio
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La ecuación 2–3 (tasa de dosificación = CL · Css) indica que finalmente se logrará una concentración en estado de equilibrio cuando se administre un
fármaco a una velocidad constante. En este punto, la eliminación de fármacos (el producto de la depuración y la concentración; ecuación 2–5) igualará
ss
C
compartimiento central y VT es el término de volumen del fármaco en el compartimiento de tejidos:
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(Ecuación 2–14)
Concentración en estado de equilibrio
La ecuación 2–3 (tasa de dosificación = CL · Css) indica que finalmente se logrará una concentración en estado de equilibrio cuando se administre un
fármaco a una velocidad constante. En este punto, la eliminación de fármacos (el producto de la depuración y la concentración; ecuación 2–5) igualará
la tasa de disponibilidad de fármacos. Este concepto también se extiende a la dosificación intermitente regular (p. ej., 250 mg de fármaco cada 8 h).
Durante cada intervalo entre dosis, la concentración de fármaco aumenta con la absorción y disminuye con la eliminación. En estado de equilibrio,
todo el ciclo se repite de forma idéntica en cada intervalo (fig. 2–7). La ecuación 2–3 todavía se aplica a la dosificación intermitente, pero describe la
concentración media de fármacos en estado de equilibrio durante un intervalo entre las dosis. Obsérvese la ampliación de esta idea para calcular la Css
durante la administración en goteo continuo de fármacos IV, como se explica en la leyenda de la figura 2–7.
Figura 2–7
Relaciones farmacocinéticas fundamentales para la administración repetida de fármacos. La línea roja representa patrón de acumulación de fármacos
durante la administración repetida de un fármaco a intervalos iguales en su semivida de eliminación. Con la absorción instantánea, cada dosis
añadiría 1 unidad de concentración a Cp al momento de la administración y, a continuación, la mitad de esa cantidad se eliminaría antes de la
administración de la siguiente dosis, lo que daría lugar a la oscilación de Cp entre 1 y 2 después de cuatro o cinco semividas de eliminación. Sin
embargo, esta simulación más realista utiliza una tasa de absorción de fármacos que no es instantánea, pero es 10 veces más rápida que la
eliminación; el fármaco se elimina a lo largo del proceso de absorción, lo que hace que después de cada dosis se alcance el nivel máximo en sangre.
Con la administración repetida, la Cp alcanza un estado de equilibrio, oscilando alrededor de la línea azul en 1.5 unidades. La línea azul muestra el
patrón durante la administración de la dosis equivalente mediante goteo IV continuo. Las curvas se basan en el modelo de un compartimiento. La
concentración media del fármaco en estado de equilibrio Css es:
donde la tasa de dosificación es la dosis por intervalo de tiempo y es dosis/T, F es la biodisponibilidad fraccionada y CL representa la depuración.
Obsérvese que la sustitución de la velocidad de administración por goteo para [F ⋅ dosis/T] proporciona la concentración en estado de equilibrio
durante la administración en goteo intravenoso continuo (F = 1 con la administración intravenosa).
Semivida
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La t1/2 es
el tiempo
que
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concentración
plasmática
fármaco
en reducirse
50%. Para el modelo de un compartimiento que se muestra en la
figura 2–6A, la t1/2 puede determinarse con facilidad mediante la inspección de los datos y utilizarse para tomar decisiones sobre la dosis del fármaco.
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Semivida
La t1/2 es el tiempo que tarda la concentración plasmática del fármaco en reducirse en 50%. Para el modelo de un compartimiento que se muestra en la
figura 2–6A, la t1/2 puede determinarse con facilidad mediante la inspección de los datos y utilizarse para tomar decisiones sobre la dosis del fármaco.
Sin embargo, como se indica en la figura 2–6B, las concentraciones de fármacos en plasma suelen seguir un patrón de disminución de múltiples
componentes.
Semivida, volumen de distribución y eliminación
Al utilizar la farmacocinética para calcular la dosis de fármacos en la enfermedad, tenga en cuenta que la t1/2 cambia en función de la depuración y del
volumen de distribución:
(Ecuación 2–15)
Esta t1/2 refleja la disminución de las concentraciones sistémicas de fármacos durante un intervalo de dosificación en estado de equilibrio, como se
muestra en la figura 2–7.
Semivida terminal
Con una dosificación prolongada (o con altas concentraciones de fármacos), un fármaco puede penetrar más allá del compartimiento central en
compartimentos corporales “profundos” o secundarios que se equilibran con lentitud con el plasma. Cuando se detiene la dosificación, el fármaco se
eliminará inicialmente del plasma, como sería de esperarse. Entonces la concentración disminuirá a un punto en el cual comienza la difusión neta de
los compartimientos secundarios y este equilibrio lento producirá una prolongación de la semivida del fármaco, conocida como la semivida terminal.
Comparación de la t1/2 terminal con la t1/2 en estado de equilibrio
Ejemplos de fármacos con diferencias marcadas en la t1/2 terminal en comparación con la t1/2 en estado de equilibrio incluyen la gentamicina y la
indometacina. La gentamicina tiene una t1/2 de 2 a 3 h después de una sola administración, pero una t1/2 terminal de 53 h porque el fármaco se
acumula en espacios como el parénquima renal (donde esta acumulación puede ocasionar efectos tóxicos). La circulación enterohepática
probablemente causa el valor terminal de 120 h de la indometacina (en comparación con el valor en estado de equilibrio de 2.4 h). Los anestésicos IV
ofrecen un buen ejemplo; muchos tienen semividas sensibles a la situación clínica; estos fármacos, con semividas cortas después de dosis IV únicas,
muestran semividas más largas en proporción con la duración de la exposición cuando se usan en la anestesia de mantenimiento (fig. 21–2).
La depuración es la medición de la capacidad del organismo para eliminar un fármaco. Así pues, a medida que disminuye la depuración, debido a un
proceso patológico, por ejemplo, la t1/2 aumentará mientras el volumen de distribución permanezca inalterado. Alternativamente, el volumen de
distribución puede cambiar, pero la depuración permanece constante o ambas pueden cambiar. Por ejemplo, la t1/2 del diazepam aumenta con la
edad; sin embargo, esto no refleja un cambio en la depuración, más bien un cambio en el volumen de distribución. Del mismo modo, los cambios en la
unión de un fármaco a proteínas (p. ej., hipoalbuminemia) pueden afectar su depuración así como su volumen de distribución, lo que conduce a
cambios impredecibles en la t1/2 en función de la enfermedad. La t1/2 definida en la ecuación 2–15 proporciona una aproximación del tiempo
necesario para alcanzar el estado de equilibrio después de que se inicie o se cambie un régimen de dosificación (p. ej., cuatro semividas para alcanzar
casi 94% de un nuevo estado de equilibrio).
Extensión y tasa de absorción
Biodisponibilidad
Es importante distinguir entre la cantidad de fármaco que se administra y la cantidad de fármaco que finalmente alcanza la circulación sistémica. La
disolución y absorción del fármaco puede ser incompleta; algún fármaco puede destruirse antes de entrar a la circulación sistémica, en especial por el
metabolismo hepático de primer paso. El efecto de primer paso es extenso para muchos fármacos orales que entran en la vena porta y pasan
directamente al hígado. La fracción de una dosis F que se absorbe y escapa de la eliminación de primer paso mide la biodisponibilidad del fármaco;
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En el caso de algunos fármacos, el metabolismo extenso de primer paso impide su uso como fármaco oral (p. ej., lidocaína, naloxona), mientras que
otros fármacos, aunque pueden administrarse por VO, deben administrarse por medios que eviten el metabolismo hepático (p. ej., trinitrato de
Biodisponibilidad
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by:la circulación sistémica. La
Es importante distinguir entre la cantidad de fármaco que se administra y la cantidad de fármaco que finalmente
alcanza
disolución y absorción del fármaco puede ser incompleta; algún fármaco puede destruirse antes de entrar a la circulación sistémica, en especial por el
metabolismo hepático de primer paso. El efecto de primer paso es extenso para muchos fármacos orales que entran en la vena porta y pasan
directamente al hígado. La fracción de una dosis F que se absorbe y escapa de la eliminación de primer paso mide la biodisponibilidad del fármaco;
por lo tanto, 0 < F ≤ 1 (ecuación 2–2).
En el caso de algunos fármacos, el metabolismo extenso de primer paso impide su uso como fármaco oral (p. ej., lidocaína, naloxona), mientras que
otros fármacos, aunque pueden administrarse por VO, deben administrarse por medios que eviten el metabolismo hepático (p. ej., trinitrato de
glicerilo) o puede administrarse tomando en consideración el gran efecto de primer paso (p. ej., propranolol). Para otros fármacos, el grado de
absorción puede ser muy bajo, reduciendo así la biodisponibilidad. Cuando los fármacos se administran por una vía sujeta a una eliminación
significativa de primer paso o a una absorción incompleta, las ecuaciones presentadas con anterioridad que contienen los términos dosis o tasa de
dosificación (véanse las ecuaciones 2–3, 2–7 y 2–13) también debe incluir el término de biodisponibilidad F de forma que se utilice la dosis o la tasa de
dosificación disponibles (Recuadro 2–2). Por ejemplo, la ecuación 2–2 se modifica a
(Ecuación 2–16)
donde el valor de F se encuentra entre 0 y 0.85.
RECUADRO 2–2. A pesar de la mala absorción, algunos fármacos con baja biodisponibilidad son eficaces por VO
El valor de F varía ampliamente para los fármacos administrados por VO y aún se puede lograr un tratamiento exitoso para algunos fármacos con
valores de F tan bajos como 0.03 (p. ej., etidronato y aliskiren).
El aliskiren es el primer inhibidor directo de renina que se administra por VO, aprobado para el tratamiento de la hipertensión; su biodisponibilidad
es de 2.6%. El etidronato, un bisfosfonato utilizado para estabilizar la matriz ósea en el tratamiento de la enfermedad de Paget y la osteoporosis,
tiene una biodisponibilidad igualmente baja de 0.03, lo que significa que solo 3% del fármaco aparece en el torrente sanguíneo después de la
administración VO. En estos casos, el tratamiento VO sigue siendo útil, aunque la dosis administrada del fármaco por kilogramo sea mayor que la
que necesaria por vía parenteral.
Tasa de absorción
La tasa de absorción puede ser importante con un fármaco administrado como una sola dosis, como un fármaco que induce el sueño y que debe
actuar en un intervalo de tiempo razonable y lograr concentraciones efectivas en sangre que se mantiene durante un tiempo adecuado. Sin embargo,
con la dosificación periódica y repetida, en términos generales no influye la tasa de absorción del fármaco en la concentración media del fármaco en
plasma en estado de equilibrio, siempre que el fármaco sea estable antes de ser absorbido; sin embargo, la tasa de absorción puede seguir influyendo
en la farmacoterapia. Si un fármaco se absorbe con rapidez (p. ej., una dosis administrada como un bolo IV) y tiene un pequeño volumen “central”, la
concentración del fármaco inicialmente será alta. Luego disminuirá a medida que el fármaco se distribuye a su volumen “final” (más grande) (fig. 2–
6B). Si el mismo fármaco se absorbe con mayor lentitud (p. ej., por administración en goteo lento), se distribuirá una cantidad significativa del fármaco
mientras se administra y las concentraciones máximas serán más bajas y ocurrirán en etapa tardía. Las preparaciones orales de liberación controlada
están diseñadas para proporcionar una tasa de absorción lenta y sostenida para producir fluctuaciones más pequeñas en el perfil de tiempo de
concentración plasmática durante el intervalo de dosificación en comparación con formulaciones de liberación más inmediata. Debido a que los
efectos beneficiosos y no tóxicos de los fármacos se basan en el conocimiento del intervalo ideal o deseado de concentración plasmática, mantener
ese intervalo al tiempo que se evitan grandes oscilaciones entre las concentraciones máxima y mínima puede mejorar el resultado terapéutico.
Farmacocinética no lineal
La falta de linealidad en la farmacocinética (cambios en parámetros como la depuración, el volumen de distribución y la t1/2 en función de la dosis o la
concentración del fármaco) suele estar causada por la saturación de la unión a proteínas, el metabolismo hepático o el transporte renal activo del
fármaco.
Unión saturable a proteínas
A medida que aumenta la concentración molar de las moléculas de fármacos pequeños, la fracción no ligada finalmente también debe aumentar (a
medida que todos
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cuando las concentraciones de fármacos en plasma están en el intervalo de decenas a cientos de
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con una relación
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baja,
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CAPÍTULO
Farmacocinética:
la dinámica
de la absorción,
distribución,
metabolismo
y eliminación
de los fármacos, Iainintrínseca
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saturación
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a medida que aumenten las concentraciones de fármacos; t1/2
puede permanecer constante (ecuación 2–15). Para tal fármaco, Css no aumentará linealmente a medida que aumente la velocidad de administración
concentración del fármaco) suele estar causada por la saturación de la unión a proteínas, el metabolismo hepático o el transporte renal activo del
fármaco.
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Unión saturable a proteínas
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A medida que aumenta la concentración molar de las moléculas de fármacos pequeños, la fracción no ligada finalmente también debe aumentar (a
medida que todos los sitios de unión se saturan cuando las concentraciones de fármacos en plasma están en el intervalo de decenas a cientos de
microgramos por mililitro). En el caso de un fármaco metabolizado por el hígado con una relación de depuración­extracción intrínseca baja, la
saturación de la unión plasmática a proteína ocasionará que tanto V como CL aumenten a medida que aumenten las concentraciones de fármacos; t1/2
puede permanecer constante (ecuación 2–15). Para tal fármaco, Css no aumentará linealmente a medida que aumente la velocidad de administración
de fármacos. En el caso de fármacos que se eliminan con altas relaciones intrínsecas de eliminación y extracción, Css puede permanecer linealmente
proporcional a la tasa de administración de fármacos. En este caso, la depuración hepática no cambiará y el incremento en V aumentará la semivida de
eliminación al reducir la fracción del fármaco total en el cuerpo que llega al hígado por unidad de tiempo. La mayor parte de los fármacos se
encuentran entre estos dos extremos.
Eliminación saturable
En el caso de la eliminación saturable, la ecuación de Michaelis­Menten (ecuación 2–4) describe por lo general la ausencia de linealidad. Sin duda,
todos los procesos activos son saturables, pero parecerán ser lineales si los valores de las concentraciones de los fármacos encontradas en la práctica
son iguales o inferiores a Km para ese proceso (Recuadro 2–3). Cuando las concentraciones de fármacos superan la Km, se observa cinética no lineal. El
metabolismo saturable hace que el metabolismo oral de primer paso sea menor de lo esperado (mayor biodisponibilidad fraccional), lo que ocasiona
un aumento fraccional mayor en Css que el aumento fraccionario correspondiente en la tasa de administración del fármaco; básicamente, la tasa de
entrada de fármacos en la circulación sistémica excede la tasa máxima posible de metabolismo de fármacos y la eliminación se convierte en cinética de
orden cero. Las principales consecuencias de la saturación del metabolismo o del transporte son las opuestas a las de la saturación de la unión a
proteínas. La saturación de la unión a proteínas llevará a un aumento de la depuración porque esta aumenta a medida que se incrementan las
concentraciones de fármacos, mientras que la saturación del metabolismo o el transporte puede disminuir la depuración.
RECUADRO 2–3 Metabolismo saturable: Difenilhidantoinato:
El anticonvulsivo difenilhidantoinato es un fármaco para el cual el metabolismo puede saturarse por concentraciones del fármaco en el intervalo
terapéutico. Los factores que contribuyen a esto son la semivida y la depuración variables del difenilhidantoinato; una concentración efectiva que
varía puede saturar los mecanismos de depuración, de manera que la Css puede estar saturando los mecanismos de depuración o estar muy por
arriba o por debajo de ese valor. La t1/2 de difenilhidantoinato es de 6 a 24 h. Para la depuración, la Km (5 a 10 mg/L) suele estar cerca del extremo
inferior del intervalo terapéutico (10 a 20 mg/L). Para algunos individuos, en especial niños pequeños y recién nacidos que reciben tratamiento
urgente para convulsiones, Km puede ser tan bajo como 1 mg/L. Consideremos un caso extremo de un adulto de 70 kg en el que la concentración
ideal (Css) es de 15 mg/L, Km es de 1 mg/L y la tasa máxima de eliminación, νm (del Apéndice I) es de 5.9 mg/kg por día o 413 mg/día por 70 kg. Al
sustituir en la ecuación 2–17:
En este caso, la tasa de dosificación está justo por debajo de la capacidad de eliminación. Si la tasa de dosificación varía al alza en 10% (a 387 + 38.7
o casi 426 mg/día), la tasa de dosificación excedería la capacidad de eliminación en 13 mg/día y la Cp de difenilhidantoinato comenzaría un ascenso
lento a concentraciones tóxicas a causa de la acumulación. Por el contrario, si la tasa de dosificación varía a la baja en 10% (a 387 – 38.7 o casi 348
mg/día), la Css conseguida sería de 5.4 mg/L, una reducción drástica a un nivel por debajo del intervalo terapéutico.
Considérese un Km más común, 8 mg/L, de tal manera que el Css ideal de 15 mg/L esté más lejos de saturar la capacidad de eliminación. En un sujeto
de 70 kg (νm = 413 mg/día), estos datos requieren una tasa de dosificación de solo 269 mg/día. Un aumento de esta tasa en 10% (a 296 mg/día) no
saturaría la capacidad de eliminación, sino que llevaría a una Css = 20.2 mg/L. Una variación descendente de 10% en la tasa de dosificación (a 242
mg/día) producirá una Css = 11.3 mg/L, una disminución mucho menos drástica que la antes mencionada y aún en el intervalo terapéutico.
Puede ser difícil considerar todas las variables, la predicción y el control de la dosis de forma tan precisa (error < 10%). Por lo tanto, para los
pacientes en los que la concentración ideal de difenilhidantoinato es ≥ 10 veces superior a la Km, es común alternar entre tratamiento ineficaz y
toxicidad, por lo que es esencial una vigilancia estrecha y puede ser apropiado realizar una valoración farmacocinética para establecer o revisar la
dosis.
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Otros fármacos que muestran saturación del metabolismo en o cerca de las concentraciones comúnmente empleadas incluyen ácido
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acetilsalicílico, fluoxetina, verapamilo y etanol.
entrada de fármacos en la circulación sistémica excede la tasa máxima posible de metabolismo de fármacos y la eliminación se convierte en cinética de
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orden cero. Las principales consecuencias de la saturación del metabolismo o del transporte son las opuestas a las de la saturación de la unión a
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proteínas. La saturación de la unión a proteínas llevará a un aumento de la depuración porque esta aumenta a medida que se incrementan las
concentraciones de fármacos, mientras que la saturación del metabolismo o el transporte puede disminuir la depuración.
RECUADRO 2–3 Metabolismo saturable: Difenilhidantoinato:
El anticonvulsivo difenilhidantoinato es un fármaco para el cual el metabolismo puede saturarse por concentraciones del fármaco en el intervalo
terapéutico. Los factores que contribuyen a esto son la semivida y la depuración variables del difenilhidantoinato; una concentración efectiva que
varía puede saturar los mecanismos de depuración, de manera que la Css puede estar saturando los mecanismos de depuración o estar muy por
arriba o por debajo de ese valor. La t1/2 de difenilhidantoinato es de 6 a 24 h. Para la depuración, la Km (5 a 10 mg/L) suele estar cerca del extremo
inferior del intervalo terapéutico (10 a 20 mg/L). Para algunos individuos, en especial niños pequeños y recién nacidos que reciben tratamiento
urgente para convulsiones, Km puede ser tan bajo como 1 mg/L. Consideremos un caso extremo de un adulto de 70 kg en el que la concentración
ideal (Css) es de 15 mg/L, Km es de 1 mg/L y la tasa máxima de eliminación, νm (del Apéndice I) es de 5.9 mg/kg por día o 413 mg/día por 70 kg. Al
sustituir en la ecuación 2–17:
En este caso, la tasa de dosificación está justo por debajo de la capacidad de eliminación. Si la tasa de dosificación varía al alza en 10% (a 387 + 38.7
o casi 426 mg/día), la tasa de dosificación excedería la capacidad de eliminación en 13 mg/día y la Cp de difenilhidantoinato comenzaría un ascenso
lento a concentraciones tóxicas a causa de la acumulación. Por el contrario, si la tasa de dosificación varía a la baja en 10% (a 387 – 38.7 o casi 348
mg/día), la Css conseguida sería de 5.4 mg/L, una reducción drástica a un nivel por debajo del intervalo terapéutico.
Considérese un Km más común, 8 mg/L, de tal manera que el Css ideal de 15 mg/L esté más lejos de saturar la capacidad de eliminación. En un sujeto
de 70 kg (νm = 413 mg/día), estos datos requieren una tasa de dosificación de solo 269 mg/día. Un aumento de esta tasa en 10% (a 296 mg/día) no
saturaría la capacidad de eliminación, sino que llevaría a una Css = 20.2 mg/L. Una variación descendente de 10% en la tasa de dosificación (a 242
mg/día) producirá una Css = 11.3 mg/L, una disminución mucho menos drástica que la antes mencionada y aún en el intervalo terapéutico.
Puede ser difícil considerar todas las variables, la predicción y el control de la dosis de forma tan precisa (error < 10%). Por lo tanto, para los
pacientes en los que la concentración ideal de difenilhidantoinato es ≥ 10 veces superior a la Km, es común alternar entre tratamiento ineficaz y
toxicidad, por lo que es esencial una vigilancia estrecha y puede ser apropiado realizar una valoración farmacocinética para establecer o revisar la
dosis.
Otros fármacos que muestran saturación del metabolismo en o cerca de las concentraciones comúnmente empleadas incluyen ácido
acetilsalicílico, fluoxetina, verapamilo y etanol.
La figura 2–8 presenta curvas hipotéticas que muestran los efectos de la alteración del metabolismo/eliminación en las concentraciones de fármacos
plasmáticos en función de la dosificación de fármacos.
Figura 2–8
Efecto de la alteración de la eliminación en las concentraciones en estado de equilibrio de un fármaco en el compartimiento central. La línea azul
representa el efecto de la dosis sobre el nivel terapéutico de un fármaco administrado una vez al día y eliminado por metabolismo hepático y por
excreción renal. Se muestra en color verde el efecto del aumento en la tasa de eliminación, vm, como podría observarse con la administración
concurrente de fármacos que inducen el metabolismo (p. ej., difenilhidantoinato, rifampicina). El efecto de un aumento en Km para la eliminación,
como podría verse con la administración simultánea de inhibidores de CYP hepático (p. ej., fluconazol, fluoxetina), se muestra en color naranja. La
línea roja representa el efecto de la cirrosis hepática, de la insuficiencia renal o de ambas, tal como se puede encontrar en un paciente de edad
avanzada. Una t1/2 significativamente prolongada provocaría un rápido desarrollo de toxicidad.
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concurrente de fármacos que inducen el metabolismo (p. ej., difenilhidantoinato, rifampicina). El efecto de un aumento en Km para la eliminación,
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como podría verse con la administración simultánea de inhibidores de CYP hepático (p. ej., fluconazol, fluoxetina), se muestra en color naranja. La
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línea roja representa el efecto de la cirrosis hepática, de la insuficiencia renal o de ambas, tal como se puede encontrar en un paciente de edad
avanzada. Una t1/2 significativamente prolongada provocaría un rápido desarrollo de toxicidad.
El difenilhidantoinato ofrece un buen ejemplo clínico de cómo el metabolismo alterado puede modificar el resultado clínico del tratamiento
farmacológico. El difenilhidantoinato es un fármaco antiepiléptico ampliamente utilizado en el tratamiento de la epilepsia focal y el estado epiléptico y
es eficaz en el control de las crisis epilépticas focales con y sin la generalización tónico­clónica y en el estado epiléptico (cap. 20). Casi 90% del
metabolismo del difenilhidantoinato se lleva a cabo a través de CYP2C9. Los polimorfismos genéticos del CYP2C9 pueden reducir el metabolismo del
difenilhidantoinato en 25% a 50% en los pacientes. La distribución de frecuencia de alelos polimorfismos CYP2C9 en pacientes con epilepsia en todo el
mundo oscila entre 4.5% y 13.6%, siendo menos frecuente en afroamericanos y asiáticos. El difenilhidantoinato tiene un intervalo terapéutico
estrecho y un perfil farmacocinético no lineal. Las alteraciones en el metabolismo del difenilhidantoinato pueden tener implicaciones clínicas
significativas que causan efectos adversos frecuentes y más graves que requieren la interrupción del tratamiento, a pesar de la eficacia clínica. En el
cuadro 2–3 se resumen algunas de estas alteraciones y en el Recuadro 2–3 se utiliza el ejemplo de difenilhidantoinato para presentar cuestiones que
deben considerarse cuando el metabolismo de un fármaco puede ser saturado por las concentraciones plasmáticas de fármacos dentro de un
intervalo terapéutico estrecho y el monitoreo y ajuste de la dosis se vuelve crítico.
CUADRO 2–3
ENFERMEDADES QUE MODIFICAN EL METABOLISMO DEL DIFENILHIDANTOINATO
CYP2C9
ENFERMEDAD O TRASTORNO
EJEMPLOS
Aumento de
Inducción enzimática
Administración simultánea de fenobarbital, rifampicina o carbamazepina
Cirrosis hepática
Disminución de la actividad enzimática: Presencia de cualquiera de los 2 polimorfismos CYP2C9
Vmáx.
Disminución
de Vmáx
Aumento de
significativos en la clínica
Inhibición competitiva
Km
Administración simultánea de antidepresivos (p. ej., fluoxetina), antimicrobianos (p. ej.,
cloranfenicol) u otros, lo que incluye cimetidina
Disminución
Disminución de la unión a
de Km
proteínas plasmáticas
Hipoalbuminemia, competencia por la unión (p. ej., ácido valproico o salicilatos)
Km, a la cual tasa de metabolismo [del fármaco] = 50% de Vmáx; Vmáx, tasa máxima de metabolismo.
Css se puede calcular sustituyendo la ecuación 2–4 (con C = Css) en la ecuación 2–3 y resolviendo la concentración de estado de equilibrio:
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2–17) Hill. All Rights Reserved. Terms of Use • Privacy Policy • Notice • Accessibility
A medida que la tasa de dosificación se acerca a la tasa de eliminación máxima νm, el denominador de la ecuación 2–17 se acerca a cero y Css aumenta
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Km, a la cual tasa de metabolismo [del fármaco] = 50% de Vmáx; Vmáx, tasa máxima de metabolismo.
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Css se puede calcular sustituyendo la ecuación 2–4 (con C = Css) en la ecuación 2–3 y resolviendo la concentración de estado de equilibrio:
(Ecuación 2–17)
A medida que la tasa de dosificación se acerca a la tasa de eliminación máxima νm, el denominador de la ecuación 2–17 se acerca a cero y Css aumenta
desproporcionadamente. Como la saturación del metabolismo no debe tener ningún efecto en el volumen de distribución, la depuración y la tasa
relativa de eliminación de fármacos disminuyen a medida que aumenta la concentración; por lo tanto, la curva de tiempo log Cp es cóncava hacia abajo
hasta que el metabolismo se desature lo suficiente, de forma que se observe la eliminación con cinética de primer orden (fig. 2–9).
Figura 2–9
Parámetros farmacocinéticos comparativos con eliminación de cinética de primer orden y de orden cero. Las líneas negras representan las relaciones
bajo cinética de eliminación de primer orden. Las líneas rojas punteadas indican los efectos de la transición a una región de eliminación saturada
(cinética de orden cero).
Por lo tanto, durante la saturación del metabolismo, no es aplicable el concepto de una t1/2 constante. En consecuencia, cambiar la tasa de
dosificación de un fármaco con metabolismo no lineal es difícil e impredecible porque el estado de equilibrio resultante se alcanza más con lentitud y,
lo que es más importante, el efecto es desproporcionado con la modificación de la tasa de dosificación.
En la figura 2–9 se comparan los efectos de la cinética de eliminación de primer orden y de orden cero sobre parámetros farmacocinéticos
importantes.
Diseño y optimización de regímenes de dosificación
Intervalo terapéutico
La intensidad del efecto de un fármaco está relacionada con su concentración (por lo general Cp) por arriba de una concentración efectiva mínima,
mientras que la duración del efecto del fármaco refleja el tiempo que la concentración del fármaco está por arriba de este valor (fig. 2–10). Estas
consideraciones, en general, se aplican tanto a los efectos farmacológicos deseados como a los indeseados (adversos); como resultado, existe un
intervalo terapéutico que refleja un intervalo de concentración que proporciona eficacia sin toxicidad inaceptable. Después de la administración de
una sola dosis, un periodo de retardo precede al inicio del efecto del fármaco, después del cual la magnitud del efecto aumenta hasta un máximo y
luego disminuye; si no se administra una dosis posterior, el efecto finalmente desaparece a medida que se elimina el fármaco. Esta evolución a lo largo
del tiempo refleja los cambios en la concentración del fármaco según lo determinado por la farmacocinética de su absorción, distribución y
eliminación.
Figura 2–10
A . Características temporales del efecto del fármaco y su relación con el intervalo terapéutico (p. ej., dosis única, administración oral). Existe un
retraso antes de que la concentración plasmática del fármaco Cp supere la concentración efectiva mínima (MEC) para el efecto deseado, MECdeseada.
Tras el inicio de la respuesta, la intensidad del efecto aumenta a medida que el fármaco continúa siendo absorbido y distribuido. Esto alcanza un
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punto máximo,
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la eliminación
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fármaco provoca una disminución en Cp y en la intensidad del efecto. El efecto desaparece cuando la
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concentración
del
fármaco
disminuye
por debajo
MEC• deseada
. La
duración
de la• acción
de un fármaco está determinada por el período de tiempo
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durante el cual las concentraciones superan la MECdeseada. También existe una MEC para cada respuesta adversa (MECadversa) y si la concentración del
Figura 2–10
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A . Características temporales del efecto del fármaco y su relación con el intervalo terapéutico (p. ej., dosis única, administración oral). Existe un
retraso antes de que la concentración plasmática del fármaco Cp supere la concentración efectiva mínima (MEC) para el efecto deseado, MECdeseada.
Tras el inicio de la respuesta, la intensidad del efecto aumenta a medida que el fármaco continúa siendo absorbido y distribuido. Esto alcanza un
punto máximo, tras el cual la eliminación del fármaco provoca una disminución en Cp y en la intensidad del efecto. El efecto desaparece cuando la
concentración del fármaco disminuye por debajo de la MECdeseada. La duración de la acción de un fármaco está determinada por el período de tiempo
durante el cual las concentraciones superan la MECdeseada. También existe una MEC para cada respuesta adversa (MECadversa) y si la concentración del
fármaco excede esto, se producirán efectos tóxicos. El objetivo terapéutico es obtener y mantener concentraciones dentro del intervalo terapéutico
para la respuesta deseada con un mínimo de toxicidad. La respuesta del fármaco por debajo de la MECdeseada será subterapéutica; por arriba de la
MECadversa, aumentará la probabilidad de toxicidad. El AUC (rojo claro) se puede utilizar para calcular la depuración (ecuación 2–7) para la eliminación
con cinética de primer orden. El AUC también se utiliza como medida de la biodisponibilidad (definida como 100% para un fármaco administrado por
vía IV). La biodisponibilidad es inferior a 100% para los fármacos administrados por VO, debido sobre todo a la absorción incompleta y al metabolismo
y eliminación de primer paso. El cambio de la dosis del fármaco desplaza la curva hacia arriba o hacia abajo en la escala de Cp y se utiliza para modular
el efecto del fármaco, como se muestra en la imagen B.
B . Efectos de alteraciones en la absorción, eliminación y dosificación y el perfil temporal de una sola dosis VO. La curva en color verde es la misma que
la que se muestra en la imagen A. El aumento de la dosis (línea azul) disminuye el periodo de retraso y prolonga la duración de la eficacia del fármaco,
pero con el riesgo de aumentar la probabilidad de efectos adversos. A menos que el fármaco no sea tóxico (p. ej., penicilinas), aumentar la dosis no es
una estrategia útil para incrementar la duración de la acción si el aumento coloca las concentraciones del fármaco cerca de la MECadversa. En su lugar,
se debe administrar otra dosis de fármaco, con horario para mantener las concentraciones dentro del intervalo terapéutico (fig. 2–7). Una mayor tasa
de absorción de la dosis (línea naranja) reduce el periodo de retraso, conduce a un Cp máximo en un periodo menor, pero acorta la duración de acción
(tiempo por arriba de la MECdeseada). Al aumentar la tasa de eliminación de la dosis se reduce el valor máximo de Cp y se reduce el tiempo de Cp >
MECdeseada.
Consideraciones similares se aplican después de la dosificación múltiple asociada con el tratamiento a largo plazo y determinan la cantidad y la
frecuencia de la administración del fármaco para lograr un efecto terapéutico óptimo. En general, el límite inferior del intervalo terapéutico de un
fármaco es casi igual a la concentración del fármaco que produce alrededor de la mitad del mayor efecto terapéutico posible y el límite superior del
intervalo terapéutico es tal que no más de 5% a 10% de los pacientes experimentarán un efecto tóxico. Para algunos fármacos, esto puede significar
que el límite superior del intervalo no es más del doble del límite inferior. Por supuesto, estas cifras pueden ser muy variables y algunos pacientes
pueden beneficiarse en gran medida de concentraciones de fármacos que exceden el intervalo terapéutico, mientras que otros pueden sufrir una
toxicidad significativa con valores mucho más bajos (p. ej., digoxina).
Para un número limitado de fármacos, se mide con facilidad algún efecto del fármaco (p. ej., presión arterial, glucosa en la sangre) y se puede utilizar
para optimizar la dosis mediante un método de ensayo y error. Incluso en un caso ideal, surgen ciertas cuestiones cuantitativas, como la frecuencia
con la que se cambia la dosis y la cantidad. Estos por lo general pueden ser resueltos con reglas simples que se basan en los principios presentados (p.
ej., cambiar la dosis en no más de 50% y no más a menudo que cada tres o cuatro semividas para asegurar que se alcance una concentración cercana
al estado de equilibrio). Algunos fármacos tienen poca toxicidad relacionada con la dosis y normalmente se desea la máxima eficacia. En tales casos,
las dosis muy superiores al promedio requerido asegurarán la eficacia (si esto es posible) y prolongarán la acción del fármaco. Esta estrategia de
“dosis máxima” se suele utilizar para las penicilinas. Para muchos fármacos, los efectos terapéuticos son difíciles de medir (o el fármaco se administra
con fines profilácticos); por lo tanto, la toxicidad del fármaco y la falta de eficacia son peligros potenciales, en especial si el índice terapéutico es
estrecho. En estas circunstancias, las dosis deben valorarse cuidadosamente y la dosis del fármaco se ve limitada por la toxicidad en lugar de la
eficacia.
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lo tanto,2:
el Farmacocinética:
objetivo terapéutico
es mantener
lasabsorción,
concentraciones
de fármacos
en estado
de equilibrio
del intervalo
terapéutico.
Cuando
no
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CAPÍTULO
la dinámica
de la
distribución,
metabolismo
y eliminación
dedentro
los fármacos,
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se conocen
las concentraciones
asociadas con
el intervalo
es suficiente
entender
que la eficacia y la toxicidad dependen de la concentración
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y de cómo la dosis y la frecuencia de administración del fármaco afectan las concentraciones sanguíneas del fármaco. Sin embargo, para un pequeño
número de fármacos para los que hay una pequeña diferencia (dos a tres veces) entre las concentraciones que resultan en eficacia y toxicidad (p. ej.,
las dosis muy superiores al promedio requerido asegurarán la eficacia (si esto es posible) y prolongarán la acción del fármaco. Esta estrategia de
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“dosis máxima” se suele utilizar para las penicilinas. Para muchos fármacos, los efectos terapéuticos son difíciles de medir (o el fármaco se administra
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con fines profilácticos); por lo tanto, la toxicidad del fármaco y la falta de eficacia son peligros potenciales, en especial si el índice terapéutico es
estrecho. En estas circunstancias, las dosis deben valorarse cuidadosamente y la dosis del fármaco se ve limitada por la toxicidad en lugar de la
eficacia.
Por lo tanto, el objetivo terapéutico es mantener las concentraciones de fármacos en estado de equilibrio dentro del intervalo terapéutico. Cuando no
se conocen las concentraciones asociadas con el intervalo deseado, es suficiente entender que la eficacia y la toxicidad dependen de la concentración
y de cómo la dosis y la frecuencia de administración del fármaco afectan las concentraciones sanguíneas del fármaco. Sin embargo, para un pequeño
número de fármacos para los que hay una pequeña diferencia (dos a tres veces) entre las concentraciones que resultan en eficacia y toxicidad (p. ej.,
digoxina, teofilina, lidocaína, aminoglucósidos, ciclosporina, tacrolimús, sirolimús, warfarina y algunos anticonvulsivos), se ha definido un intervalo
de concentración plasmática asociado con un tratamiento eficaz. En estos casos, se elige una concentración deseada (ideal) en estado de equilibrio
del fármaco (por lo general en plasma) asociada con la eficacia y la toxicidad mínima y se calcula una dosis que se espera que alcance este valor. Más
tarde se miden las concentraciones de los fármacos y la dosis se ajusta si es necesario (se describe más adelante en el capítulo).
Dosis de mantenimiento
En la mayor parte de las situaciones clínicas, los fármacos se administran en una serie de dosis repetitivas o en goteo continuo para mantener una
concentración de fármaco en estado de equilibrio asociada con el intervalo terapéutico. El principal objetivo es calcular la dosis de mantenimiento
adecuada. Para mantener el estado de equilibrio o la concentración ideal elegidas, la tasa de administración de fármacos se ajusta de forma que los
ingresos sean equiparables con las pérdidas. Esta relación se expresa aquí en términos de la concentración ideal deseada:
(Ecuación 2–18)
Si el médico elige la concentración deseada de un fármaco en plasma y conoce la depuración y la biodisponibilidad de dicho fármaco en un paciente
determinado, se puede calcular la dosis y el intervalo de dosificación adecuados (Recuadro 2–4).
RECUADRO 2–4 Cálculo de la dosis de digoxina en la insuficiencia cardiaca
La digoxina VO debe utilizarse como dosis de mantenimiento para “digitalizar” de manera gradual a un paciente de 63 años de edad y 84 kg con
insuficiencia cardiaca congestiva. Se selecciona una concentración plasmática en estado de equilibrio de 0.7 a 0.9 ng/mL como objetivo
conservador con base en el conocimiento previo de la acción del fármaco en pacientes con insuficiencia cardiaca para mantener en el intervalo de
0.5 a 1 ng/mL o por debajo de esta cifra (Bauman et al., 2006). La depuración de creatinina de este paciente (CLCr) fue de 56 mL/min/84 kg; sabiendo
que la depuración de digoxina puede estimarse consultando la información para este fármaco en el Apéndice I: CL = 0.88 ClCr + 0.33 mL/min/kg. Así,
Para este paciente de 84 kg:
Sabiendo que la biodisponibilidad VO de digoxina es de 70% (F = 0.7) y con una Cp ideal de 0.75 ng/mL, se puede utilizar la ecuación 2–18 para
calcular una dosis adecuada para este paciente de 84 kg:
En la práctica, la tasa de dosificación se redondea al tamaño de dosis oral más cercana, 0.125 mg/día, lo que daría como resultado una Css de 0.79
ng/mL (0.75 × 125/119 o utilizando la ecuación 2–16). La digoxina es un ejemplo bien identificado de un fármaco que es difícil de dosificar, tiene un
índice terapéutico bajo (casi 2 a 3) y tiene un gran coeficiente de variación para la ecuación de depuración en pacientes con insuficiencia cardiaca
(52%); la concentración sanguínea eficaz en un paciente puede ser tóxica o ineficaz en otro individuo. Por lo tanto, la vigilancia del estado clínico de
los pacientes (edema de tobillos con deterioro o de aparición reciente, incapacidad para dormir en una posición recostada, disminución de la
tolerancia al ejercicio), ya sea realizada mediante el seguimiento de la salud en el hogar o visitas regulares al médico, es esencial para evitar
resultados indeseados (cap. 33).
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CAPÍTULO 2: Farmacocinética: la dinámica de la absorción, distribución, metabolismo y eliminación de los fármacos, Iain L. O. Buxton
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Intervalo para dosificación intermitente
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(Ecuación 2–18)
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Si el médico elige la concentración deseada de un fármaco en plasma y conoce la depuración y la biodisponibilidad de dicho fármaco en un paciente
determinado, se puede calcular la dosis y el intervalo de dosificación adecuados (Recuadro 2–4).
RECUADRO 2–4 Cálculo de la dosis de digoxina en la insuficiencia cardiaca
La digoxina VO debe utilizarse como dosis de mantenimiento para “digitalizar” de manera gradual a un paciente de 63 años de edad y 84 kg con
insuficiencia cardiaca congestiva. Se selecciona una concentración plasmática en estado de equilibrio de 0.7 a 0.9 ng/mL como objetivo
conservador con base en el conocimiento previo de la acción del fármaco en pacientes con insuficiencia cardiaca para mantener en el intervalo de
0.5 a 1 ng/mL o por debajo de esta cifra (Bauman et al., 2006). La depuración de creatinina de este paciente (CLCr) fue de 56 mL/min/84 kg; sabiendo
que la depuración de digoxina puede estimarse consultando la información para este fármaco en el Apéndice I: CL = 0.88 ClCr + 0.33 mL/min/kg. Así,
Para este paciente de 84 kg:
Sabiendo que la biodisponibilidad VO de digoxina es de 70% (F = 0.7) y con una Cp ideal de 0.75 ng/mL, se puede utilizar la ecuación 2–18 para
calcular una dosis adecuada para este paciente de 84 kg:
En la práctica, la tasa de dosificación se redondea al tamaño de dosis oral más cercana, 0.125 mg/día, lo que daría como resultado una Css de 0.79
ng/mL (0.75 × 125/119 o utilizando la ecuación 2–16). La digoxina es un ejemplo bien identificado de un fármaco que es difícil de dosificar, tiene un
índice terapéutico bajo (casi 2 a 3) y tiene un gran coeficiente de variación para la ecuación de depuración en pacientes con insuficiencia cardiaca
(52%); la concentración sanguínea eficaz en un paciente puede ser tóxica o ineficaz en otro individuo. Por lo tanto, la vigilancia del estado clínico de
los pacientes (edema de tobillos con deterioro o de aparición reciente, incapacidad para dormir en una posición recostada, disminución de la
tolerancia al ejercicio), ya sea realizada mediante el seguimiento de la salud en el hogar o visitas regulares al médico, es esencial para evitar
resultados indeseados (cap. 33).
Intervalo para dosificación intermitente
En general, las fluctuaciones marcadas en las concentraciones de fármacos entre las dosis. Si la absorción y la distribución fueran instantáneas, las
fluctuaciones en las concentraciones de fármacos entre dosis se regirían por completo por la t1/2 de eliminación del fármaco. Si el intervalo de
dosificación T se eligió para ser igual a la t1/2, entonces la fluctuación total sería del doble; esto es a menudo una variación tolerable. Las
consideraciones farmacodinámicas modifican esto. Si un fármaco es relativamente no tóxico, de forma que se pueda tolerar con facilidad una
concentración varias veces la necesaria para el tratamiento, se puede utilizar la estrategia de dosis máxima y el intervalo de dosificación puede ser
mucho más largo que la t1/2 de eliminación (para comodidad del paciente). El t1/2 de la amoxicilina es de casi 2 h, pero la dosificación cada 2 h sería
poco práctica. En cambio, la amoxicilina suele administrarse en dosis grandes cada 8 o 12 h.
Para algunos fármacos con un intervalo terapéutico estrecho, puede ser importante estimar las concentraciones máximas y mínimas que se
producirán para un intervalo de dosificación determinado. La concentración mínima en estado de equilibrio Css,min puede determinarse
razonablemente mediante:
(Ecuación 2–19)
donde k es igual a 0.693 dividido entre la t1/2 plasmática de relevancia clínica y T es el intervalo de dosificación. El término e−KT es la fracción de la
última dosis (corregida para la biodisponibilidad) que permanece en el cuerpo al final de un intervalo de dosificación.
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Para los fármacos que siguen la cinética multiexponencial (administrados por VO), la estimación de la concentración máxima en estado de equilibrio
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Css,max implica un conjunto de parámetros para la distribución y absorción (Recuadro 2–5). Si estos términos son ignorados para la dosificación oral
múltiple, uno puede estimar con facilidad una concentración máxima en estado de equilibrio omitiendo el término e−KT en el numerador de la
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(Ecuación 2–19)
donde k es igual a 0.693 dividido entre la t1/2 plasmática de relevancia clínica y T es el intervalo de dosificación. El término e−KT es la fracción de la
última dosis (corregida para la biodisponibilidad) que permanece en el cuerpo al final de un intervalo de dosificación.
Para los fármacos que siguen la cinética multiexponencial (administrados por VO), la estimación de la concentración máxima en estado de equilibrio
Css,max implica un conjunto de parámetros para la distribución y absorción (Recuadro 2–5). Si estos términos son ignorados para la dosificación oral
múltiple, uno puede estimar con facilidad una concentración máxima en estado de equilibrio omitiendo el término e−KT en el numerador de la
ecuación 2–19 (ecuación 2–20 en el Recuadro 2–5). Debido a la aproximación, la concentración máxima prevista de la ecuación 2–20 será mayor que la
observada en la realidad.
RECUADRO 2–5 Estimación de las concentraciones máximas y mínimas de digoxina en la sangre
En el paciente de 84 kg con insuficiencia cardiaca congestiva que se analiza en el Recuadro 2–4, se calculó una dosis de mantenimiento oral de 0.125
mg de digoxina por 24 h para lograr una concentración plasmática media de 0.79 ng/mL durante el intervalo de dosificación. La digoxina tiene un
índice terapéutico estrecho y las concentraciones plasmáticas ≤ 1.0 ng/mL por lo general se asocian con la eficacia y la toxicidad mínima. ¿Cuáles
son las concentraciones plasmáticas máximas y mínimas asociadas con este régimen? En primer lugar, se requiere una estimación del volumen de
distribución de digoxina basada en datos farmacocinéticos (apéndice I).
o 497 L en este paciente de 84 kg.
La combinación de este valor con el de la depuración de digoxina proporciona una estimación de la eliminación de digoxina t1/2 en el paciente
(ecuación 2–15).
En consecuencia, la constante fraccionaria de la eliminación k es igual a 0.22 días−1 (0.693/3.1 días). Las concentraciones plasmáticas de digoxina
máximas y mínimas pueden predecirse en función del intervalo de dosificación. Con T = 1 días (es decir, 0.125 mg administrados todos los días),
(Ecuación 2–20)
(Ecuación 2–21)
Por lo tanto, las concentraciones plasmáticas fluctuarían de manera mínima con respecto a la concentración en estado de equilibrio de 0.79 ng/mL,
dentro del intervalo terapéutico recomendado de 0.5 a 1.0 ng/mL.
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Dosis de
carga Hill. All Rights Reserved. Terms of Use • Privacy Policy • Notice • Accessibility
Como se ha señalado, la administración repetida de un fármaco con más frecuencia que su eliminación completa dará lugar a la acumulación del
Css,max implica un conjunto de parámetros para la distribución y absorción (Recuadro 2–5). Si estos términos son ignorados para la dosificación oral
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múltiple, uno puede estimar con facilidad una concentración máxima en estado de equilibrio omitiendo el término e−KT en el numerador de la
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ecuación 2–19 (ecuación 2–20 en el Recuadro 2–5). Debido a la aproximación, la concentración máxima prevista de la ecuación 2–20 será mayor que la
observada en la realidad.
RECUADRO 2–5 Estimación de las concentraciones máximas y mínimas de digoxina en la sangre
En el paciente de 84 kg con insuficiencia cardiaca congestiva que se analiza en el Recuadro 2–4, se calculó una dosis de mantenimiento oral de 0.125
mg de digoxina por 24 h para lograr una concentración plasmática media de 0.79 ng/mL durante el intervalo de dosificación. La digoxina tiene un
índice terapéutico estrecho y las concentraciones plasmáticas ≤ 1.0 ng/mL por lo general se asocian con la eficacia y la toxicidad mínima. ¿Cuáles
son las concentraciones plasmáticas máximas y mínimas asociadas con este régimen? En primer lugar, se requiere una estimación del volumen de
distribución de digoxina basada en datos farmacocinéticos (apéndice I).
o 497 L en este paciente de 84 kg.
La combinación de este valor con el de la depuración de digoxina proporciona una estimación de la eliminación de digoxina t1/2 en el paciente
(ecuación 2–15).
En consecuencia, la constante fraccionaria de la eliminación k es igual a 0.22 días−1 (0.693/3.1 días). Las concentraciones plasmáticas de digoxina
máximas y mínimas pueden predecirse en función del intervalo de dosificación. Con T = 1 días (es decir, 0.125 mg administrados todos los días),
(Ecuación 2–20)
(Ecuación 2–21)
Por lo tanto, las concentraciones plasmáticas fluctuarían de manera mínima con respecto a la concentración en estado de equilibrio de 0.79 ng/mL,
dentro del intervalo terapéutico recomendado de 0.5 a 1.0 ng/mL.
Dosis de carga
Como se ha señalado, la administración repetida de un fármaco con más frecuencia que su eliminación completa dará lugar a la acumulación del
fármaco hasta alcanzar el estado de equilibrio o cerca de él (fig. 2–7). Cuando se administra una dosis constante, alcanzar un nivel de fármaco en
estado de equilibrio (la concentración terapéutica deseada) llevará de cuatro a cinco veces la eliminación. Este periodo puede ser demasiado largo
cuando el tratamiento requiere una respuesta terapéutica más inmediata. En tal caso, se puede emplear una dosis de carga, una o una serie de dosis
administradas al inicio del tratamiento con el objetivo de alcanzar con rapidez la concentración ideal. La dosis de carga se calcula como
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(Ecuación 2–22)
Considere el caso para el tratamiento de arritmias con lidocaína, por ejemplo. La t1/2 de lidocaína es por lo general de 1 a 2 h. Las arritmias
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Como se ha señalado, la administración repetida de un fármaco con más frecuencia que su eliminación completa
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acumulación
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fármaco hasta alcanzar el estado de equilibrio o cerca de él (fig. 2–7). Cuando se administra una dosis constante, alcanzar un nivel de fármaco en
estado de equilibrio (la concentración terapéutica deseada) llevará de cuatro a cinco veces la eliminación. Este periodo puede ser demasiado largo
cuando el tratamiento requiere una respuesta terapéutica más inmediata. En tal caso, se puede emplear una dosis de carga, una o una serie de dosis
administradas al inicio del tratamiento con el objetivo de alcanzar con rapidez la concentración ideal. La dosis de carga se calcula como
(Ecuación 2–22)
Considere el caso para el tratamiento de arritmias con lidocaína, por ejemplo. La t1/2 de lidocaína es por lo general de 1 a 2 h. Las arritmias
encontradas después del infarto de miocardio pueden ser mortales y no se puede esperar cuatro semividas (4–8 h) para lograr una concentración
terapéutica de lidocaína por administración IV del fármaco a la velocidad requerida para alcanzar esta concentración. Por lo tanto, el uso de una dosis
de carga de lidocaína en la unidad de cuidados coronarios es estándar. El uso de una dosis de carga también tiene desventajas significativas. Primero,
el individuo particularmente sensible puede estar expuesto abruptamente a una concentración tóxica de un fármaco que puede tomar mucho tiempo
para disminuir (es decir, t1/2 largo).
Las dosis de carga tienden a ser grandes y a menudo se administran parenteralmente y con rapidez. Esto puede ser particularmente peligroso si se
producen efectos tóxicos debido a las acciones de los fármacos en sitios en rápido equilibrio con el plasma. Esto ocurre porque la dosis de carga
calculada sobre la base de Vss posterior a la distribución del fármaco se limita al principio dentro del volumen de distribución “central” inicial y menor.
Por lo tanto, normalmente es aconsejable dividir la dosis de carga en una serie de dosis fraccionarias más pequeñas que se administran durante un
periodo de tiempo (Recuadro 2–6). Como alternativa, la dosis de carga debe administrarse vía IV continua durante un periodo de tiempo utilizando
bombas de administración computarizadas.
RECUADRO 2–6 Dosis de carga de digoxina
En el paciente de 84 kg antes descrito, la acumulación de digoxina a un nivel estable efectivo fue gradual cuando se administró una dosis de
mantenimiento diaria de 0.125 mg (durante al menos 12.4 días, con base en una t1/2 = 3.1 días). Se podría obtener una respuesta más rápida (si se
considera necesario) utilizando una estrategia de dosis de carga y la ecuación 2–22. La elección de una Cp ideal de 0.9 ng/mL (el valor Css,max
calculado en el Recuadro 2–5 y por debajo del máximo recomendado de 1 ng/mL):
Utilizando dosis estándar, se utilizaría una dosis de carga de 0.625 mg administrada en dosis divididas. Para evitar la toxicidad, esta dosis de carga
VO se administraría en una dosis inicial de 0.25 mg seguida de una dosis de 0.25 mg de 6 a 8 h más tarde, con una supervisión cuidadosa del
paciente y la dosis final de 0.125 mg se administraría de 6 a 8 h más tarde. La estrategia de carga equivalente se puede lograr administrando
digoxina en inyección IV.
VIGILANCIA DE FÁRMACOS TERAPÉUTICOS
El uso principal de las concentraciones medidas de fármacos (en estado de equilibrio) es refinar la estimación de CL/F para el paciente que se está
tratando, utilizando la ecuación 2–16 después de los despejes pertinentes:
(Ecuación 2–23)
La nueva estimación de CL/F para un paciente individual se puede utilizar en la ecuación 2–18 para ajustar la dosis de mantenimiento para lograr la
concentración deseada (Recuadro 2–7).
RECUADRO 2–7 Ajuste de la dosis en estado de equilibrio
Si un fármaco sigue una cinética de primer orden, las concentraciones media, mínima y máxima en estado de equilibrio tienen relación lineal con la
dosis y la tasa de dosificación (ecuaciones 2–16, 2–19 y 2–20). Por lo tanto, la relación entre las concentraciones medidas y deseadas se puede
utilizar para ajustar la dosis, de acuerdo con los tamaños de dosis disponibles:
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(Ecuación
2–24)Hill. All Rights Reserved. Terms of Use • Privacy Policy • Notice • Accessibility
Por ejemplo, considere que el paciente antes descrito recibió 0.125 mg de digoxina cada 24 h. Si la concentración mínima en estado de equilibrio
medida fuera de 0.35 ng/mL en lugar del nivel previsto de 0.7 ng/mL, un cambio práctico y apropiado en el régimen de dosificación sería aumentar
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(Ecuación 2–23)
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La nueva estimación de CL/F para un paciente individual se puede utilizar en la ecuación 2–18 para ajustar la dosis de mantenimiento para lograr la
concentración deseada (Recuadro 2–7).
RECUADRO 2–7 Ajuste de la dosis en estado de equilibrio
Si un fármaco sigue una cinética de primer orden, las concentraciones media, mínima y máxima en estado de equilibrio tienen relación lineal con la
dosis y la tasa de dosificación (ecuaciones 2–16, 2–19 y 2–20). Por lo tanto, la relación entre las concentraciones medidas y deseadas se puede
utilizar para ajustar la dosis, de acuerdo con los tamaños de dosis disponibles:
(Ecuación 2–24)
Por ejemplo, considere que el paciente antes descrito recibió 0.125 mg de digoxina cada 24 h. Si la concentración mínima en estado de equilibrio
medida fuera de 0.35 ng/mL en lugar del nivel previsto de 0.7 ng/mL, un cambio práctico y apropiado en el régimen de dosificación sería aumentar
la dosis diaria en 0.125 mg a 0.25 mg de digoxina diaria
Se deben tener en cuenta los detalles prácticos asociados con la vigilancia terapéutica de fármacos. La primera de ellas se refiere al tiempo de
muestreo para la medición de la concentración del fármaco.
El propósito del muestreo durante el estado de equilibrio supuesto es modificar la estimación de CL/F y por lo tanto la elección de la dosis. Las
concentraciones tempranas después de la absorción no reflejan la depuración. Están determinados sobre todo por la tasa de absorción, el volumen
de distribución “central” (en lugar del estado de equilibrio) y la tasa de distribución, todas ellas características farmacocinéticas que prácticamente no
tienen importancia en la elección de la dosis de mantenimiento a largo plazo. Cuando el objetivo de la medición es el ajuste de la dosis, la muestra
debe tomarse justo antes de la siguiente dosis planificada, cuando la concentración se encuentre en su valor mínimo.
Si no está claro si se están logrando concentraciones eficaces de fármaco, una muestra tomada poco después de una dosis puede ser útil. Por otro
lado, si la preocupación es si una depuración baja (como la que ocurre en individuos con insuficiencia renal) puede causar acumulación del fármaco,
las concentraciones medidas justo antes de la siguiente dosis revelarán tal acumulación y son considerablemente más útiles que la concentración
máxima.
Se recomienda determinar las concentraciones máxima y mínima. Estos dos valores pueden ofrecer una imagen más completa del comportamiento
del fármaco en un paciente específico (en especial si se obtiene durante más de un periodo de dosificación) y pueden apoyar mejor el modelado
farmacocinético para ajustar el tratamiento.
Se debe recordar que cuando se administra una dosis constante, se alcanza el estado de equilibrio después de cuatro a cinco semividas de
eliminación. Si se obtiene una muestra demasiado pronto después de comenzar la dosis, no reflejará el estado de equilibrio ni la depuración con
precisión. En tales casos, la primera muestra debe tomarse después de dos t1/2 (75% de la Css esperada) suponiendo que no se haya administrado
ninguna dosis de carga. Si la concentración ya supera 90% de la concentración media esperada en estado de equilibrio, la tasa de dosificación debe
reducirse a la mitad; se obtiene otra muestra en dos t1/2 y la dosis se reducirá de nuevo a la mitad si esta muestra excede las concentraciones ideales.
Si la primera concentración no es demasiado alta, la dosis inicial continúa. Incluso si la concentración es inferior a lo esperado, suele ser razonable
esperar a que se alcance el estado de equilibrio después de dos semividas adicionales y, a continuación, se ajusta la dosis como se describe en el
Recuadro 2–7.
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role of drug transporters
in drug
its clinicalmetabolismo
significance. Adv
Exp Med Biol
2019,
1141 :1–12.
31571163]
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CAPÍTULO
2: Farmacocinética:
la dinámica
de ladisposition
absorción,and
distribución,
y eliminación
de,los
fármacos,
Iain [PubMed:
L. O. Buxton
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López­Yerena A, et al. Insights into the binding of dietary phenolic compounds to human serum albumin and food­drug interactions. Pharmaceutics ,
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CAPÍTULO 2: Farmacocinética: la dinámica de la absorción, distribución, metabolismo y eliminación de los fármacos, Iain L. O. Buxton
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Goodman & Gilman: Las bases farmacológicas de la terapéutica, 14e
CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica
David R. Manning; Donald K. Blumenthal
ABREVIATURAS
Abreviaturas
AC: adenilil ciclasa
ACE: enzima convertidora de angiotensina
ACh: acetilcolina
AKAP: proteína de fijación cinasa A
AMPA: ácido α­amino­3­hidroxi­5­metil­4­isoxazol propiónico
AMPK: proteína cinasa activada por AMP
AngII: angiotensina II
ANP: péptido natriurético auricular
AP­1: proteína­1 activadora (factor de transcripción)
Apaf­1: factor 1 de la proteasa activadora de la apoptosis
A T G: gen de autofagia
A T1 R : receptor para angiotensina subtipo 1
BNP: péptido natriurético cerebral
CaM: calmodulina
CAR: receptor constitutivo para androstano
CNP: péptido natriurético tipo C
CYP: citocromo P450
DAG: diacilglicerol
DHFR: dihidrofolato reductasa
EC50: concentración efectiva media máxima
E D50: dosis efectiva media máxima
EGF: factor de crecimiento epidérmico
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eNOS: NOS 2023­12­21
endotelial (NOS3)
CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
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EPAC:McGraw
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de intercambio
activada por
AMP cíclico
ER: retículo endoplásmico
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EC50: concentración efectiva media máxima
E D50: dosis efectiva media máxima
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EGF: factor de crecimiento epidérmico
eNOS: NOS endotelial (NOS3)
EPAC: proteína de intercambio activada por AMP cíclico
ER: retículo endoplásmico
FBP: fructosa 1,6­bisfosfato
FXR: receptor farnesoide X (receptor para ácidos biliares)
GABA: ácido γ­aminobutírico
GC: guanilil ciclasa
GEF: factor de intercambio de nucleótido de guanina
GnRH: hormona liberadora de gonadotropina
GPCR: receptor acoplado con proteína G
GRK: GPCR cinasa
HMG­CoA: hidroximetilglutaril­coenzima A
HRE: elemento de respuesta hormonal
5HT: 5­hidroxitriptamina (serotonina)
IFN: interferón
IL: interleucina
iNOS: NOS inducible (NOS2)
I P3 : inositol 1,4,5­trisfosfato
JAK: cinasa Janus
JNK: extremo amino terminal de la cinasa c­Jun
K i : afinidad de un antagonista competitivo
K i r: canal rectificador de entrada de K+
L D50: dosis letal media máxima
LKB1: cinasa hepática B1
LXR: receptor hepático X
MAPK: proteína cinasa activada por mitógeno
MLCK: cinasa de cadena ligera de la miosina
mTOR: blanco mecanicista (o de mamíferos) de la rapamicina, una proteína cinasa
mTORC: complejo de blanco mecanicista (o de mamíferos) del complejo de rapamicina
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NAM: modulador alostérico negativo
CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
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NE: norepinefrina
NF­κB : factor nuclear ­κB
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MLCK: cinasa de cadena ligera de la miosina
mTOR: blanco mecanicista (o de mamíferos) de la rapamicina, una proteína cinasa
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mTORC: complejo de blanco mecanicista (o de mamíferos) del complejo de rapamicina
NAM: modulador alostérico negativo
NE: norepinefrina
NF­κB : factor nuclear ­κB
NMDA: N­metil­D­aspartato
nNOS: NOS neuronal
NO: óxido nítrico
NOS: NO sintasa
NPR: receptor para péptido natriurético
NSAID: fármaco antiinflamatorio no esteroideo
PAMP: patrón molecular relacionado con un patógeno
PDE: nucleótido cíclico fosfodiesterasa
PAM: modulador alostérico positivo
PDGF: factor de crecimiento derivado de las plaquetas
PI3K: fosfatidilinositol 3­cinasa
PIP2 : fosfatidilinositol 4,5­bisfosfato
PK: proteína cinasa, p. ej., PKA, PKB (también conocida como Akt), PKC
PLC: fosfolipasa C
PPAR: receptor activado por el proliferador de peroxisoma
PTB: unión con fosfotirosina
PXR: receptor para pregnano X
RAR: receptor para ácido retinoico
RGS: regulador de la señalización de la proteína G
RhoGEF: factor de intercambio de nucleótido de RhoA guanina
RIP1: proteína 1 de interacción con receptor
ROCK: proteína cinasa relacionada con Rho
RXR: receptor retinoide X
SERM: modulador selectivo del receptor para estrógenos
sGC: guanilil ciclasa soluble
SH2: homología 2 de Src
SMAC: segundo activador de caspasa derivado de la mitocondria
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
SMN1:McGraw
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de supervivencia
de la neurona
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S T A T : transductor de señal y activador de transcripción
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SERM: modulador selectivo del receptor para estrógenos
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sGC: guanilil ciclasa soluble
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SH2: homología 2 de Src
SMAC: segundo activador de caspasa derivado de la mitocondria
SMN1: proteína de supervivencia de la neurona motora
S T A T : transductor de señal y activador de transcripción
TGF­β: factor de crecimiento transformador β
TLR: receptor de tipo toll
TNF­α: factor de necrosis tumoral α
TNFR: receptor de TNF­α
TOR: objetivo de la rapamicina
TRAIL: ligando inductor de apoptosis relacionado con TNF
TRP: potencial receptor transitorio
VEGF: factor de crecimiento endotelial vascular
VSMC: célula de músculo liso vascular
CONCEPTOS FARMACODINÁMICOS
La farmacodinámica es el estudio de las acciones bioquímicas, celulares y fisiológicas de los fármacos, incluidos los mecanismos moleculares por los
cuales se realizan estas acciones. La mayor parte de los fármacos tiene una molécula pequeña que interactúa con entidades macromoleculares u
objetivos farmacológicos, intrínsecos al cuerpo o a los patógenos. Los objetivos farmacológicos incluyen receptores para factores endocrinos y
paracrinos; enzimas, conductos iónicos activados por voltaje, transportadores de membrana y, sobre todo para patógenos, estructuras relevantes
para la viabilidad y replicación celulares. Por tanto, los objetivos farmacológicos pueden localizarse en cualquier parte sobre o dentro de una célula,
incluidos la membrana de la superficie celular, el citosol y el núcleo o por completo, en el compartimiento extracelular. En concordancia con la
naturaleza de estos objetivos farmacológicos, los fármacos casi siempre alteran el ritmo o magnitud de procesos celulares o fisiológicos intrínsecos,
en lugar de crear fenómenos biológicos nuevos.
Entre los nuevos fármacos aprobados por la FDA (U.S. Food and Drug Administration), una proporción cada vez mayor, que promedió 25% en los
últimos cinco años (fig. 1–7), son productos biológicos terapéuticos. La FDA los define (en las Therapeutic Biologics Applications) como:
Anticuerpos monoclonales para uso in vivo.
Citocinas, factores de crecimiento, enzimas, inmunomoduladores y trombolíticos.
Proteínas diseñadas para uso terapéutico que se extraen de animales o microorganismos, incluidas versiones recombinantes de estos productos
y otras formas de inmunoterapia distintas a las vacunas.
A menudo se hace una distinción entre estos productos, que con frecuencia son proteínas y los fármacos de molécula pequeña, cuyo número es
mucho mayor. Los objetivos farmacológicos en el caso de los anticuerpos monoclonales y ciertas proteínas recombinantes incluyen mediadores
inflamatorios, inhibidores de puntos de verificación inmunitaria y moléculas de la superficie celular (caps. 39, 42, 44 y 72). A los virus con
modificaciones genéticas (p. ej., virus oncolíticos) y los microorganismos también se les considera productos biológicos y son objeto de
investigaciones en curso como vectores recombinantes para prospectos de vacunas (cap. 40).
Otra dimensión importante de la farmacodinámica es la genoterapia. La genoterapia utiliza virus como vectores para reponer los genes defectuosos
que causan enfermedades debilitantes o letales o puede introducir otros genes por completo. Los ejemplos recién aprobados de la genoterapia
incluyen tratamientos de una forma congénita de retinoblastoma y de atrofia muscular espinal con proteínas (RPE65 [proteína específica del epitelio
retiniano de 65
kDa, retinal2:3
epithelium­specific
65­kDa protein] y SMN1 [supervivencia de neurona motora 1, survival motor neuron 1],
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CAPÍTULO
3: Farmacodinámica:
mecanismos
moleculares
de la acción
Davidadeno­associated
R. Manning; Donald
Blumenthal
respectivamente)
introducidas mediante
vectores
virales relacionados
con farmacológica,
los adenovirus (AAV,
virusK.
). La
inserción de un
receptor
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para antígeno quimérico anti­CD19 en los linfocitos T para el tratamiento de la leucemia linfoblástica aguda de linfocitos B utiliza un vector lentiviral
(cap. 72). La genoterapia también tiene la capacidad de desactivar genes, por ejemplo, en el tratamiento de la amiloidosis hereditaria mediada por
transtiretina con patisirán e inotersén, dos RNA cortos de interferencia (siRNA, short interfering RNA) dirigidos a la transtiretina. La omisión de exones
investigaciones en curso como vectores recombinantes para prospectos de vacunas (cap. 40).
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Otra dimensión importante de la farmacodinámica es la genoterapia. La genoterapia utiliza virus como vectores
para reponer los genes defectuosos
que causan enfermedades debilitantes o letales o puede introducir otros genes por completo. Los ejemplos recién aprobados de la genoterapia
incluyen tratamientos de una forma congénita de retinoblastoma y de atrofia muscular espinal con proteínas (RPE65 [proteína específica del epitelio
retiniano de 65 kDa, retinal epithelium­specific 65­kDa protein] y SMN1 [supervivencia de neurona motora 1, survival motor neuron 1],
respectivamente) introducidas mediante vectores virales relacionados con los adenovirus (AAV, adeno­associated virus). La inserción de un receptor
para antígeno quimérico anti­CD19 en los linfocitos T para el tratamiento de la leucemia linfoblástica aguda de linfocitos B utiliza un vector lentiviral
(cap. 72). La genoterapia también tiene la capacidad de desactivar genes, por ejemplo, en el tratamiento de la amiloidosis hereditaria mediada por
transtiretina con patisirán e inotersén, dos RNA cortos de interferencia (siRNA, short interfering RNA) dirigidos a la transtiretina. La omisión de exones
es otra faceta de la genoterapia, ejemplificada por el tratamiento de ciertas formas de distrofia muscular de Duchenne con el oligonucleótido no
codificante eteplirsén. El sistema para edición del genoma CRISPR­Cas9 (repeticiones palindrómicas cortas regularmente intercaladas agrupadas,
clustered regularly interspersed short palindromic repeats/proteína 9 relacionada con CRISPR) tiene un potencial considerable para permitir formas
de edición muy dirigidas. Los fármacos también pueden actuar mediante regulación epigenética. Por ejemplo, el tazemetostat, usado en el
tratamiento del carcinoma epitelioide, es un inhibidor de la histona metiltransferasa EZH2 recién aprobado. Está claro que las fronteras entre la
farmacología, la inmunología y la genética se superponen.
Los capítulos electrónicos de la Sección X de la versión en línea de esta obra, actualizados cada trimestre, proporcionan al lector revisiones de las
aprobaciones nuevas y notables de la FDA, incluidos fármacos que son los primeros en su clase y tratamientos novedosos (véase AccessMedicine.com
o AccessPharmacy.com; seleccionar Goodman & Gilman).
Objetivos farmacológicos
Las acciones de la mayor parte de los fármacos pueden adjudicarse a sus interacciones con un número relativamente pequeño de clases de proteínas.
En los seres humanos, estas clases son receptores para factores endocrinos y paracrinos; enzimas; conductos iónicos activados por voltaje y otros
conductos iónicos aparte de los receptores, y transportadores de membrana (fig. 3–1). Entre estos, los receptores y las enzimas son los objetivos de la
mayor parte de los fármacos que se usan con fines terapéuticos hoy en día y son el objeto de revisión en este capítulo. En este capítulo se revisan los
conductos iónicos activados por voltaje, así como en los capítulos 16 y 25. Los transportadores de membrana son tema del capítulo 4.
Figura 3–1
Objetivos farmacológicos en seres humanos. Se muestran las categorías de los objetivos farmacológicos expresados en los seres humanos como
porcentaje del número total de objetivos. Las categorías principales son receptores para factores endocrinos y paracrinos, enzimas, conductos
iónicos activados por voltaje (más unos cuantos conductos iónicos aparte de los clasificados como receptores) y transportadores de membrana.
“Otros” incluye DNA, RNA y ribosomas, las propias moléculas de señalización, proteínas que interactúan con enzimas y proteínas estructurales. La
fuente de estos datos es Rask­Andersen et al. (2011), con adaptaciones acordes con las diferenciaciones en este capítulo entre conductos iónicos y
transportadores de membrana. El lector también puede consultar Imming et al. (2006) y Santos et al. (2017). La figura no toma en cuenta los objetivos
farmacológicos microbianos. Los fármacos entre los 100 más prescritos en Estados Unidos en 2018 (fuente: CliniCalc) para receptores incluyen: para
GPCR, antagonistas del receptor AT1, salbutamol, carvedilol, tramadol y otros opioides, tamsulosina y otros agonistas de los receptores adrenérgicos
α, atenolol, clopidogrel, propranolol, ciclobenzaprina, ranitidina, loratadina y otros antagonistas del receptor H1 para histamina, clonidina y otros
agonistas de los receptores α2, buspirona, latanoprost y sumatriptán; para conductos iónicos activados por ligando, alprazolam y otras
benzodiazepinas y moduladores positivos del receptor GABAA y ondansetrón; para receptores de tirosina cinasa, varias formas de insulina; para
receptores hormonales nucleares, levotiroxina, fluticasona y otros agonistas glucocorticoides, estradiol y otros agonistas del receptor para
estrógenos, noretindrona y otros agonistas del receptor para progesterona, ergocalciferol, espironolactona y fenofibrato. Los fármacos para
enzimas incluyen lisinoprilo y otros inhibidores de la ACE, atorvastatina y otros inhibidores de la HMG­CoA reductasa, metformina, ibuprofeno y otros
NSAID, warfarina, alopurinol, finasterida, apixabán y sitagliptina. Los fármacos para conductos iónicos activados por voltaje y otros conductos
iónicos incluyen amlodipino, gabapentina y otros anticonvulsivos que inhiben los conductos de calcio activados por voltaje neuronales, glipizida y
otros activadores del conducto de K+ regulado por ATP, lamotrigina y otros anticonvulsivos que inhiben los conductos de sodio activados por voltaje y
diltiazem. Los fármacos para transportadores de membrana incluyen omeprazol y otros inhibidores de la bomba de protones, hidroclorotiazida,
sertralina y otros inhibidores de la recaptación de monoaminas, digoxina y furosemida.
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
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iónicos incluyen amlodipino, gabapentina y otros anticonvulsivos que inhiben los conductos de calcio activados por voltaje neuronales, glipizida y
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otros activadores del conducto de K+ regulado por ATP, lamotrigina y otros anticonvulsivos que inhiben los conductos de sodio activados por voltaje y
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diltiazem. Los fármacos para transportadores de membrana incluyen omeprazol y otros inhibidores de la bomba de protones, hidroclorotiazida,
sertralina y otros inhibidores de la recaptación de monoaminas, digoxina y furosemida.
Algunos fármacos operan por medio de múltiples mecanismos y el conocimiento de sus acciones continúa en evolución. Por ejemplo, desde hace
mucho tiempo se sabe que las anfetaminas son inhibidores competitivos del transportador de la dopamina, pero ahora se reconoce que además
actúan mediante el desplazamiento de la dopamina de las reservas vesiculares y su acción en el receptor relacionado con aminas traza TAAR1 (caps. 15
y 16). La metformina ejerce sus acciones hipoglucémicas en gran medida a través de la proteína cinasa dependiente de AMP (AMP­dependent protein
kinase) y por inhibición de la glicerol fosfato deshidrogenasa mitocondrial, pero es muy probable que tenga mecanismos adicionales (cap. 51). Las
acciones hipolipidémicas de la niacina se logran a través de uno o más receptores acoplados con proteína G (GPCR, G protein­coupled receptors) en
los adipocitos, pero también mediante la inhibición de la diacilglicerol aciltransferasa en los hepatocitos, entre otras acciones (cap. 37). El mecanismo
por el cual los estrógenos actúan en ciertas situaciones va más allá de los receptores nucleares para los GPCR en la superficie celular (cap. 48). Hay que
notar que los múltiples mecanismos por los que un fármaco puede actuar también son elementos muy importantes de las respuestas farmacológicas
adversas no intencionales.
Las acciones de algunos fármacos no requieren objetivos farmacológicos por sí mismos. Los hidróxidos de aluminio y magnesio reducen el ácido
gástrico por acción química, neutralizan el H+ y elevan el pH gástrico. La metenamina logra un efecto antibacteriano dependiente del formaldehído en
el pH urinario (cap. 57). El manitol actúa por mecanismo osmótico para producir cambios en la distribución del agua a fin de fomentar la diuresis,
catarsis, expansión del volumen circulante en el compartimiento vascular o reducción del edema cerebral. Los quelantes se usan en casos de
intoxicación aguda con metales (caps. 9 y 76). Sin embargo, algunas diferencias de los objetivos biológicos son cuestión de perspectiva. Los
captadores de ácidos biliares reducen el colesterol plasmático por inhibición del reciclaje de los ácidos biliares en la luz intestinal; los ácidos biliares
no son los “objetivos farmacológicos”, tal como se definen en este capítulo, pero una clave del mecanismo por el que los captadores de ácidos biliares
actúan es en realidad consecuencia de la eliminación de la represión de la 7α­hidroxilasa, que bien podría ser considerada un objetivo farmacológico.
Un gran número de fármacos se unen con la albúmina sérica, una proteína importante para la presión oncótica y el transporte de los ácidos grasos
libres en la corriente sanguínea. Los fármacos que se unen con la albúmina suelen ser ácidos orgánicos. Aun así, la albúmina no puede ser
considerada como objetivo de los fármacos en ningún sentido farmacodinámico, ya que la unión del fármaco no se asocia con alguna acción
terapéutica. Por la misma razón, tampoco la glucoproteína ácida α1, una proteína sérica que se une con bases orgánicas, puede ser clasificada como
un objetivo farmacológico. Es más apropiado considerar las interacciones de los fármacos con estas proteínas en el contexto de la farmacocinética, ya
que la unión impide la distribución de los fármacos en los tejidos (cap. 2). De igual manera, la redistribución de los fármacos lipófilos como el tiopental
en el tejido adiposo (fig. 2–4), tan importante para la forma en que el cuerpo procesa los anestésicos generales, es campo de la farmacocinética, ya que
la partición del fármaco carece de efecto farmacodinámico en un objetivo farmacológico.
Receptores
Los farmacólogos a menudo definen un receptor como una proteína que reconoce una molécula de señalización endógena al organismo; es decir, un
factor endocrino, paracrino, autocrino o yuxtacrino (recuadro 3–1) y que traduce ese reconocimiento en un fenómeno celular significativo. Los
receptores incluyen receptores acoplados con proteína G (GPCR, G protein­coupled receptor), conductos iónicos activados por ligando, receptores
vinculados con enzima (catalíticos), otros receptores relacionados con la membrana y receptores nucleares. Muchos receptores reconocen las señales
en la superficie celular; otros, como los receptores nucleares, reconocen las que pasan a través de la membrana celular. El término ligando se usa para
cualquier molécula que se une con un receptor, sea endógena o no.
RECUADRO 3–1. Tipos de moléculas de señalización intercelular
Factor 2023­12­21
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que se libera a la circulación para producir efectos distantes al punto de liberación. También se le
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la acción farmacológica,
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conoce3:como
hormona. Al principio,
las hormonas
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consideradas
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se les considera “endocrinos”.
Factor paracrino: mensajero químico que se libera de una célula para ejercer efectos en una célula vecina. Los neurotransmisores, citocinas,
receptores incluyen receptores acoplados con proteína G (GPCR, G protein­coupled receptor), conductos iónicos activados por ligando, receptores
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vinculados con enzima (catalíticos), otros receptores relacionados con la membrana y receptores nucleares. Muchos receptores reconocen las señales
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en la superficie celular; otros, como los receptores nucleares, reconocen las que pasan a través de la membrana celular. El término ligando se usa para
cualquier molécula que se une con un receptor, sea endógena o no.
RECUADRO 3–1. Tipos de moléculas de señalización intercelular
Factor endocrino: mensajero químico que se libera a la circulación para producir efectos distantes al punto de liberación. También se le
conoce como hormona. Al principio, las hormonas eran consideradas producto de una glándula sin conducto, pero ahora a numerosos
órganos se les considera “endocrinos”.
Factor paracrino: mensajero químico que se libera de una célula para ejercer efectos en una célula vecina. Los neurotransmisores, citocinas,
morfógenos y muchos factores de crecimiento tienen efectos paracrinos.
Factor autocrino: mensajero químico que realiza acciones en la misma célula de la cual se libera. Muchos factores endocrinos y paracrinos
también tienen funciones en la señalización autocrina al ejercer retroalimentación negativa o positiva sobre su propia liberación, funciones
que tienen importancia especial en la señalización neuronal y de citocinas.
Factor yuxtacrino: mensajero químico que permanece fijo en la célula en que se produce y ejerce acciones en una célula yuxtapuesta. El
mecanismo por el que un linfocito T y una célula presentadora de antígenos establecen una “sinapsis” inmunitaria es un ejemplo de
señalización yuxtacrina.
Agonismo se refiere a la capacidad de un ligando para activar un receptor. Si un ligando se une con el mismo sitio que la molécula de señalización
endógena para producir la activación, se dice que este, como la molécula endógena, es un agonista ortostérico. Si, por el contrario, el ligando se une
con un sitio diferente para producir la activación, se le identifica como agonista alostérico. Los ligandos que producen una respuesta máxima para una
población de receptores determinada son agonistas plenos, mientras los que producen una respuesta, pero no una respuesta máxima a pesar de
ocupar por completo esa población, son agonistas parciales. El uso de “respuesta” en lugar de “activación del receptor” para definir el agonismo total
y parcial es pragmático. Es difícil determinar lo que constituye una conformación o un conjunto de conformaciones activadas de un receptor; es más
fácil medir las respuestas subsiguientes. Existe una salvedad importante en ambos casos: cualquier jerarquización de ligandos acorde con el
agonismo para un receptor determinado puede cambiar con el tejido y respuesta específicos que se miden; es decir, el ordenamiento según el
agonismo, que más tarde se describe en términos de eficacia, puede estar en función del contexto. El contexto se discute con más detalle en la sección
Agonismo selectivo.
El antagonismo al nivel del receptor se relaciona con la propiedad de un ligando, casi siempre un ligando exógeno (es decir, un fármaco) o toxina para
bloquear la acción de un agonista. Muchos antagonistas son de naturaleza ortostérica y competitiva; es decir, se unen con el mismo sitio del receptor
que usa el agonista endógeno y lo hacen en forma reversible. Unos cuantos antagonistas se unen de manera irreversible. El clopidogrel y el prasugrel,
que inhiben la activación plaquetaria como antagonistas del subtipo P2Y12 del receptor para ADP (cap. 36), son ejemplos de inhibidores irreversibles.
Numerosos antagonistas ortostéricos son relativamente neutros en el sentido de que tienen poco o ningún efecto por sí mismos en la actividad basal
del receptor; su efecto se vuelve notable solo en presencia de un agonista. Otros antagonistas son agonistas inversos, como se explica más adelante.
Existen formas de antagonismo que operan de manera independiente del receptor. El antagonismo químico implica la neutralización de un agonista
mediante su introducción en complejos físicos. Adalimumab y infliximab, usados en el tratamiento de varios trastornos autoinmunitarios (caps. 39 y
55), se unen con firmeza al factor de necrosis tumoral α (TNF­α, tumor necrosis factor α) y antagonizan sus acciones. El bevacizumab, usado en el
tratamiento de ciertos cánceres y trastornos oculares, antagoniza la acción del factor de crecimiento del endotelio vascular (VEGF, vascular endotelial
growth factor) por un proceso similar de formación de complejos (cap. 72).
El antagonismo funcional es la inhibición de la acción de un agonista distal al receptor. El uso de epinefrina para contrarrestar la anafilaxia es un
ejemplo de antagonismo funcional. La epinefrina aumenta la concentración de AMP cíclico dentro de las células de músculo liso bronquiolar, lo que a
su vez inhibe la cinasa de la cadena ligera de miosina y así disminuye la respuesta contráctil generada por la histamina, el tromboxano A2 y otras
sustancias liberadas por los mastocitos (cap. 43).
El antagonismo farmacocinético es el impedimento de la absorción o distribución o la intensificación de la eliminación de un fármaco terapéutico,
como se explica en el capítulo 2.
Muchos receptores presentan al menos una actividad constitutiva mínima; es decir, actividad en ausencia de un ligando, producto del equilibrio
termodinámico normal entre las conformaciones activa e inactiva. El agonismo inverso se refiere a la supresión de esta actividad mediante ligandos y a
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tales
ligandos
les denomina agonistas
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estos actúan
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supresión,
puede
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los
agonistas
inversos
de
los
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neutros.
En
un
nivel
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ortostérico, ambos pueden ser considerados antagonistas con acción agonista parcial o plena.
sustancias liberadas por los mastocitos (cap. 43).
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El antagonismo farmacocinético es el impedimento de la absorción o distribución o la intensificación de la eliminación de un fármaco terapéutico,
como se explica en el capítulo 2.
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Muchos receptores presentan al menos una actividad constitutiva mínima; es decir, actividad en ausencia de un ligando, producto del equilibrio
termodinámico normal entre las conformaciones activa e inactiva. El agonismo inverso se refiere a la supresión de esta actividad mediante ligandos y a
tales ligandos se les denomina agonistas inversos; estos actúan mediante la estabilización de los receptores en una conformación inactiva. Según el
nivel de actividad constitutiva y el grado de supresión, puede ser difícil distinguir los agonistas inversos de los antagonistas neutros. En un nivel
ortostérico, ambos pueden ser considerados antagonistas con acción agonista parcial o plena.
Las acciones de los agonistas plenos, agonistas parciales, antagonistas neutros y agonistas inversos son fáciles de organizar con un modelo de dos
estados de la actividad del receptor, en el cual el equilibrio entre los estados inactivo y activo de una población de cualquier receptor determinado
bascula hacia uno u otro lado (o no, en el caso de los antagonistas neutros) por los ligandos (fig. 3–2). Existen modelos más elaborados para explicar
lo que parece ser un gran número de estados funcionales de los GPCR, ya sean intrínsecos o dependientes de las proteínas con las cuales interactúan
los receptores (Weiss y Kobilka, 2018).
Figura 3–2
Modelo de dos estados de la actividad del receptor. En este modelo, el receptor R puede existir en conformaciones activa (Ra, mostrada como un
hexágono) e inactiva (Ri, mostrada como un cuadrado) en equilibrio termodinámico. El equilibrio en ausencia de fármaco o ligandos endógenos (una
“respuesta” establecida de manera arbitraria en “100” unidades en la gráfica a la izquierda e indicada entre paréntesis en la presentación de los
estados del receptor a la derecha) constituye lo que se conoce a menudo como actividad “basal” o “constitutiva”, términos que conllevan cierto nivel
de actividad del receptor, aunque bajo. Los fármacos que se unen con un estado individual del receptor o con ambos estados al mismo tiempo pueden
influir en el equilibrio entre estas dos formas de R y el efecto neto de los fenómenos controlados por el receptor. El eje de las ordenadas en la gráfica, a
la izquierda, es la respuesta del receptor producida por Ra, la conformación activa del receptor (p. ej., estimulación de la adenilil ciclasa [AC] por una
conformación activa del receptor adrenérgico β). Si un fármaco L (L, por ligando) se une con Ra con cierto grado de selectividad respecto a Ri,
producirá una respuesta positiva; mientras mayor sea la selectividad por Ra, mayor será la respuesta. La diferencia en selectividad distingue a los
agonistas plenos de los parciales. Sin embargo, es probable que ningún agonista “pleno” desvíe por completo el equilibrio a la derecha. Si L tiene la
misma afinidad por Ri que por Ra, no alterará el equilibrio basal entre ellos y, por lo tanto, no tendrá efecto en la actividad basal; este es el caso de un
antagonista neutral. Si el fármaco se une de manera selectiva con Ri, entonces la influencia neta y la cantidad de Ra disminuirán. Si existe suficiente Ra
para producir una respuesta basal observable y L se une de manera selectiva con Ri, esa respuesta basal será inhibida; L será entonces un agonista
inverso. En sistemas en que la actividad basal no es observable, los agonistas inversos parecen comportarse como antagonistas neutros, lo que ayuda
a explicar por qué hasta hace poco no se habían apreciado las propiedades de los agonistas inversos y el número de agentes descritos antes como
antagonistas competitivos. La imagen de la derecha representa los equilibrios con concentraciones de saturación de L; no se muestra si los ligandos
se unen por ajuste inducido o por selección conformacional.
Como se indicó antes en el caso de los agonistas inversos, lo que define un ligando como antagonista en el ámbito operativo a veces puede ser asunto
de semántica. Si uno se enfoca en los ligandos ortostéricos por el momento, los agonistas inversos pueden antagonizar las acciones de los agonistas
parciales y plenos. Un agonista parcial antagonizará las acciones de un agonista pleno o de un agonista inverso para el caso, obstruyendo de manera
similar el sitio de unión. La dualidad de agonismo y antagonismo de los agonistas parciales tiene relevancia terapéutica. La vareniclina, usada en el
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tratamiento de la adicción a la nicotina, es un agonista parcial en el receptor nicotínico α4β2; se afirma que bloquea al menos parcialmentePage
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
acciones
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suficiente
como
agonista
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parcial
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los deseos intensos por la nicotina (cap. 13). Es probable que la buprenorfina opere por un principio similar en el tratamiento del abuso y abstinencia
de opioides (cap. 23). El aripiprazol es un agonista parcial usado en el tratamiento de la psicosis; inhibe la activación del receptor D2 mediante la
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Como se indicó antes en el caso de los agonistas inversos, lo que define un ligando como antagonista en el ámbito
operativo
a veces puede ser asunto
de semántica. Si uno se enfoca en los ligandos ortostéricos por el momento, los agonistas inversos pueden antagonizar las acciones de los agonistas
parciales y plenos. Un agonista parcial antagonizará las acciones de un agonista pleno o de un agonista inverso para el caso, obstruyendo de manera
similar el sitio de unión. La dualidad de agonismo y antagonismo de los agonistas parciales tiene relevancia terapéutica. La vareniclina, usada en el
tratamiento de la adicción a la nicotina, es un agonista parcial en el receptor nicotínico α4β2; se afirma que bloquea al menos parcialmente las
acciones de la nicotina proveniente de productos que la contienen, pero tiene actividad suficiente como agonista nicotínico parcial para amortiguar
los deseos intensos por la nicotina (cap. 13). Es probable que la buprenorfina opere por un principio similar en el tratamiento del abuso y abstinencia
de opioides (cap. 23). El aripiprazol es un agonista parcial usado en el tratamiento de la psicosis; inhibe la activación del receptor D2 mediante la
dopamina endógena, pero también produce una activación ligera que es importante (cap. 19). Ciertos antagonistas selectivos del receptor β1 (p. ej.,
pindolol y acebutolol) en realidad son agonistas parciales cuya “actividad simpaticomimética intrínseca” evita la bradicardia profunda y el
inotropismo negativo (cap. 14).
Los ligandos de receptores también incluyen los moduladores alostéricos, tanto positivos como negativos. Estos se describen en la sección
Modulación alostérica de la función del receptor.
Enzimas
Las enzimas son objetivos farmacológicos importantes por dos razones esenciales. Primera, las enzimas tienen funciones muy variadas y selectivas en
procesos esenciales para la vida. Segunda, los mecanismos de catálisis y de regulación alostérica están bien definidos y por lo tanto, son susceptibles
de manipulación farmacológica. Las enzimas que son objetivos farmacológicos casi siempre son las que limitan el ritmo del proceso metabólico de
interés o que son necesarias para este. Por ejemplo, la hidroximetilglutaril­coenzima A (HMG­CoA) reductasa, que participa en la síntesis de colesterol,
es inhibida con estatinas (cap. 37); la enzima convertidora de angiotensina (ACE, angiotensin­converting enzyme) en la síntesis de angiotensina II, que
se antagoniza con los inhibidores de la ACE (cap. 30); la ciclooxigenasa en la síntesis de prostaglandinas, que se inhibe con ácido acetilsalicílico
(acetilsalicilato) y otros antiinflamatorios no esteroideos (NSAID, nonsteroidal anti­inflammatory drugs; cap. 42), y la dihidrofolato reductasa en la
síntesis del nucleótido timidilato, que se inhibe con metotrexato (cap. 70).
La mayor parte de los fármacos que tienen enzimas como objetivos farmacológicos pueden dividirse a grandes rasgos en inhibidores reversibles e
irreversibles del proceso catalítico. Los inhibidores reversibles se unen con la enzima en una manera que bien puede describirse como constantes de
encendido y apagado que sirven para establecer un equilibrio químico dinámico (fig. 3–3). La mayor parte de estos inhibidores son competitivos, ya
que la unión del inhibidor y el sustrato con la enzima es mutuamente excluyente. Otros son no competitivos o acompetitivos. La inhibición no
competitiva se refiere a un mecanismo en que el inhibidor se une con la enzima sin importar que esté unido el sustrato, mientras la inhibición
acompetitiva es aquella en que la unión del inhibidor requiere la unión conjunta del sustrato. Tanto en la inhibición no competitiva como en la
acompetitiva, la enzima a la que se unen el sustrato y el inhibidor es menos capaz de catalizar la reacción que con el sustrato solo.
Figura 3–3
Inhibición enzimática reversible. Se muestran las tres formas diferentes de inhibición reversible de las enzimas. E, enzima; S, sustrato; I, inhibidor; P,
producto. Se recomienda al lector una excelente monografía publicada por Copeland (2013) que trata sobre la inhibición enzimática, tanto reversible
como irreversible, en un contexto farmacológico.
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
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Figura 3–3
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Inhibición enzimática reversible. Se muestran las tres formas diferentes de inhibición reversible de las enzimas. E, enzima; S, sustrato; I, inhibidor; P,
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producto. Se recomienda al lector una excelente monografía publicada por Copeland (2013) que trata sobre la inhibición enzimática, tanto reversible
como irreversible, en un contexto farmacológico.
Los inhibidores enzimáticos irreversibles forman enlaces covalentes estables con la enzima, lo que altera la actividad catalítica, casi siempre por el
resto de la vida de la enzima. El ácido acetilsalicílico, que acetila las ciclooxigenasas cerca del sitio catalítico, es un inhibidor irreversible de la
conversión del ácido araquidónico en las prostaglandinas G2 y H2, los primeros intermediarios en la síntesis de una variedad de prostanoides (cap. 41).
Los inhibidores irreversibles también incluyen los basados en el mecanismo, a menudo denominados sustratos de suicidio. Estos inhibidores son
reconocidos por la enzima como un sustrato, pero durante el proceso catalítico, casi siempre en el estado de transición, se convierten en
intermediarios capaces de atacar a la enzima. Los organofosforados, que inhiben de manera irreversible la acetilcolinesterasa por fosforilación, son
un ejemplo de esta inhibición irreversible basada en el mecanismo (cap. 12). El omeprazol, un inhibidor de la H+/K+ ATPasa gástrica, es otro ejemplo
(cap. 53). La heparina, un anticoagulante, potencia la capacidad del sustrato suicida endógeno, la antitrombina, para inhibir de manera irreversible la
trombina y el factor Xa (cap. 36).
No todos los fármacos que actúan en las enzimas son inhibidores. Los nitratos orgánicos, por ejemplo, activan la guanilil ciclasa soluble. En este caso,
el óxido nítrico (NO), un producto de la transformación enzimática de los nitratos orgánicos, se combina con el hem de la enzima para lograr su
activación. El aumento consecuente en el GMP cíclico intracelular es la base para la vasodilatación inducida por NO (cap. 31).
Conductos iónicos
Los cambios en el flujo de iones a través de la membrana plasmática, que ocurre a través de conductos iónicos, son fenómenos reguladores vitales en
las células, tanto excitables como no excitables. Estos cambios se superponen a los gradientes electroquímicos, de manera notable a los que generan
el potencial eléctrico de la membrana en la superficie celular, que se establece mediante transportadores iónicos para Na+, K+, Ca2+ y Cl−. Por ejemplo,
la Na+/K+­ATPasa consume ATP celular para bombear Na+ fuera de la célula y K+ hacia el interior de la célula. Los gradientes electroquímicos
establecidos de esta manera son usados por los tejidos excitables, como nervio y músculo, para generar y transmitir impulsos eléctricos a través de
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no excitables
para impulsar fenómenos bioquímicos y secretores y por todas las células para mantener diversos
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procesos de cotransporte unidireccional y cotransporte bidireccional (figs. 2–2 y 4–4).
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Los seres humanos expresan cerca de 230 conductos iónicos (Jegla et al., 2009). Estos conductos se dividen en familias con base en los iones que
Los cambios en el flujo de iones a través de la membrana plasmática, que ocurre a través de conductos iónicos,
son fenómenos
reguladores
vitales
en
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las células, tanto excitables como no excitables. Estos cambios se superponen a los gradientes electroquímicos,
manera
notable a los que generan
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el potencial eléctrico de la membrana en la superficie celular, que se establece mediante transportadores iónicos para Na+, K+, Ca2+ y Cl−. Por ejemplo,
la Na+/K+­ATPasa consume ATP celular para bombear Na+ fuera de la célula y K+ hacia el interior de la célula. Los gradientes electroquímicos
establecidos de esta manera son usados por los tejidos excitables, como nervio y músculo, para generar y transmitir impulsos eléctricos a través de
conductos iónicos; por las células no excitables para impulsar fenómenos bioquímicos y secretores y por todas las células para mantener diversos
procesos de cotransporte unidireccional y cotransporte bidireccional (figs. 2–2 y 4–4).
Los seres humanos expresan cerca de 230 conductos iónicos (Jegla et al., 2009). Estos conductos se dividen en familias con base en los iones que
conducen, su estructura molecular y su método de activación. Se subdividen según sus propiedades de conducción, incluida su cinética de activación
y desactivación. Los que tienen relevancia farmacológica son los conductos iónicos activados por voltaje, por proteína G y por ligando. Los conductos
iónicos activados por voltaje se describen aquí; los activados por proteína G y por ligando se describen en la sección Mecanismos de acción
farmacológica mediada por receptores.
Los conductos iónicos activados por voltaje son sensibles a los cambios en el potencial electroquímico a través de una membrana y se activan con la
despolarización de la membrana. Cualquier introducción a la farmacodinámica debe prestar atención a ellos: son objetivos farmacológicos de enorme
importancia; muchos ocurren después de la activación del receptor por factores endocrinos y paracrinos, como los neurotransmisores, y ofrecen
contexto para comprender todos los demás tipos de conductos. Además, las mutaciones en los conductos iónicos activados por voltaje pueden causar
enfermedades (llamadas conductopatías) que incluyen varios trastornos convulsivos (cap. 20), otras enfermedades neurológicas y arritmias cardiacas
(cap. 34).
Conductos de Na+ activados por voltaje
Los conductos de Na+ activados por voltaje permiten la propagación de potenciales de acción enérgicos que despolarizan la membrana de las células
nerviosas y musculares desde su potencial de reposo aproximado de −70 mV, dependiente de la célula, hasta un potencial de +20 mV en unos cuantos
milisegundos. La activación de estos conductos que inicia el avance del potencial de acción suele ocurrir en respuesta a una despolarización
localizada producida por conductos catiónicos activados por ligando en neuronas y músculo estriado y por conductos de Ca2+ tipo L activados en el
nodo sinoauricular del corazón; la propagación del potencial de acción se logra mediante la activación secuencial de los propios conductos de Na+.
Los conductos de Na+ activados por voltaje tienen tres subunidades, una subunidad α formadora del poro y dos subunidades reguladoras β (Catterall
et al., 2020). La subunidad α es una única proteína de 260 kDa que contiene cuatro dominios, cada uno consistente en hélices que cruzan la membrana
seis veces (S1­S6) y se disponen en forma seudotetramérica para constituir un poro selectivo para el ion Na+ (figs. 3–4A y 25–2). Las subunidades β son
proteínas de 36 kDa que cruzan la membrana una vez. Un asa extracelular entre los segmentos S5 y S6 de la subunidad α, llamada asa formadora de
poro o asa P, se sumerge de nuevo en el poro y, combinada con residuos de las asas P correspondientes de los otros dominios, constituye un filtro de
selectividad para el ion Na+. Cuatro hélices más alrededor del poro (una hélice S4 de cada uno de los dominios) contienen un conjunto de aminoácidos
cargados que forman el sensor de voltaje y hacen que el poro se abra con voltajes de membrana más positivos, los cuales inician la activación.
Figura 3–4
Conductos de Na+, Ca2+ y K+ dependientes de voltaje. Los conductos dependientes del voltaje producen cambios rápidos en la permeabilidad iónica en
los axones y las dendritas, así como para el acoplamiento excitación­secreción que induce la liberación de neurotransmisores en los sitios
presinápticos. A . Estructura de los conductos de Ca2+ y de Na+. La subunidad α de los conductos de Ca2+ y de Na+ consiste en cuatro sub­subunidades
o segmentos (denominados I a IV), cada uno con seis dominios transmembrana (TM) hidrófobos (cilindros azules). Las regiones hidrófobas que
conectan TM5 y TM6 en cada segmento se asocian para formar el poro del conducto. El segmento 4 de cada dominio incluye el sensor de voltaje.
(Adaptada con autorización de Catterall W. Neuron 2000, 26:13–25. © Elsevier). B . Diversidad estructural de los conductos de K+. Entrante rectificadora,
Kir: la subunidad básica de la proteína del conducto de K+ de entrada rectificadora Kir tiene la configuración general de TM5 y TM6 de un segmento de
la subunidad α mostrado en la imagen A. Cuatro de estas subunidades se ensamblan para crear el poro. Conducto de K+ sensible al voltaje, Kv: las
subunidades α del conducto de K+ sensible al voltaje Kv y el conducto de K+ de activación rápida KA comparten una estructura de seis cruces parecida
en su configuración general a un solo segmento de la estructura del conducto de Na+ y Ca2+, con seis dominios TM. Cuatro de estos se ensamblan para
formar el poro. Las subunidades β reguladoras (citosólicas) pueden alterar las funciones del conducto Kv. C . Ensamble de múltiples subunidades de
conductos de Ca2+. Los conductos de Ca2+ tienen un requerimiento variable de varias proteínas auxiliares pequeñas (α2, β, γ y δ); las subunidades α2 y
δ están unidas con un puente de disulfuro. De igual manera, también existen subunidades reguladoras para los conductos de Na+. D. Gradientes
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iónicos a través de la membrana de una célula nerviosa de mamífero. El riñón es el principal regulador del ambiente iónico extracelular. ElPage
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
activo
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cationes
y
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permeabilidades
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relativas
de
los
conductos
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mantienen
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ambiente
intracelular.
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esta
figura,
los
números
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debajo de los diversos iones son las concentraciones en estado de reposo en mM; las letras grandes en negritas de los elementos indican la
localización de la concentración más alta del ion; las flechas rojas y verdes indican la dirección de los gradientes eléctrico y de concentración. En
subunidades α del conducto de K+ sensible al voltaje Kv y el conducto de K+ de activación rápida KA comparten una estructura de seis cruces parecida
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en su configuración general a un solo segmento de la estructura del conducto de Na+ y Ca2+, con seis dominios TM. Cuatro de estos se ensamblan para
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formar el poro. Las subunidades β reguladoras (citosólicas) pueden alterar las funciones del conducto Kv. C . Ensamble de múltiples subunidades de
conductos de Ca2+. Los conductos de Ca2+ tienen un requerimiento variable de varias proteínas auxiliares pequeñas (α2, β, γ y δ); las subunidades α2 y
δ están unidas con un puente de disulfuro. De igual manera, también existen subunidades reguladoras para los conductos de Na+. D. Gradientes
iónicos a través de la membrana de una célula nerviosa de mamífero. El riñón es el principal regulador del ambiente iónico extracelular. El transporte
activo de cationes y las permeabilidades selectivas relativas de los conductos iónicos mantienen el ambiente intracelular. En esta figura, los números
debajo de los diversos iones son las concentraciones en estado de reposo en mM; las letras grandes en negritas de los elementos indican la
localización de la concentración más alta del ion; las flechas rojas y verdes indican la dirección de los gradientes eléctrico y de concentración. En
estado de reposo, los conductos de Na+ están cerrados, los conductos de K+ están abiertos y el potencial de membrana se aproxima al potencial de
Nernst para K+. La abertura de los conductos de Na+ causa la despolarización. Por el contrario, el gradiente de K+ es tal que el aumento en la
permeabilidad al K+ produce hiperpolarización. Los cambios en la concentración intracelular de Ca2+ (conductos de Ca2+ vía de entrada y movilización
del Ca2+ secuestrado en la célula) afectan múltiples procesos celulares y son cruciales para la liberación de neurotransmisores. El Cl− fluye a través de
los conductos de la membrana, una gran fracción de los cuales se activan por GABA o glicina. La activación de neuronal los receptores GABAA casi
siempre conduce a la entrada neta de Cl−, lo que produce hiperpolarización de la membrana e inhibición de la despolarización. El potencial de
equilibrio para el Cl− es relativamente cercano al potencial de reposo de la membrana y los pequeños cambios en el Cl− celular, el potencial de
membrana y las actividades de los transportadores de Cl− (p. ej., KCC2 y NKCC1) pueden influir en los desplazamientos del Cl− a través de la membrana.
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Los conductos de Na+ activados por voltaje en las neuronas que perciben el dolor (nocicepción) son objetivos farmacológicos de los anestésicos
los conductos de la membrana, una gran fracción de los cuales se activan por GABA o glicina. La activación de neuronal los receptores GABAA casi
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siempre conduce a la entrada neta de Cl−, lo que produce hiperpolarización de la membrana e inhibición deUNIVERSIDAD
la despolarización.
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equilibrio para el Cl− es relativamente cercano al potencial de reposo de la membrana y los pequeños cambios en el Cl− celular, el potencial de
membrana y las actividades de los transportadores de Cl− (p. ej., KCC2 y NKCC1) pueden influir en los desplazamientos del Cl− a través de la membrana.
Los conductos de Na+ activados por voltaje en las neuronas que perciben el dolor (nocicepción) son objetivos farmacológicos de los anestésicos
locales, como la lidocaína y la tetracaína, que bloquean el poro e inhiben la despolarización; de esta manera impiden la transmisión relevante para la
sensación dolorosa (fig. 25–3). También son objetivos farmacológicos de ciertos antiepilépticos (cap. 20) y antiarrítmicos (cap. 34). Catterall et al.
(2020) publicaron una amplia descripción del bloqueo dependiente de estado con estos fármacos (la dependencia de estos fármacos del potencial de
membrana en reposo y la frecuencia del potencial de acción). Los conductos también son objetivos farmacológicos de las toxinas marinas naturales,
como la tetrodotoxina, saxitoxina y diversas conotoxinas.
Conductos de Ca2+ activados por voltaje
Los conductos de Ca2+ activados por voltaje tienen una estructura bastante similar a la de los conductos de Na+, con una subunidad α grande (cuatro
dominios de 6 hélices que cruzan la membrana) y subunidades reguladoras auxiliares (p. ej., subunidades β y α2δ; figs. 3–4C y 16–2) (Catterall et al.,
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de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
menudo permiten la traducción, mediante la entrada de Ca2+, de los potenciales de acción en respuestas intracelulares. Existen tres tipos generales de
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conductos de Ca2+. Los conductos de Ca2+ de tipo L se expresan en células de músculos cardiaco, liso y estriado, así como en células de tejidos
endocrinos, donde participan en el acoplamiento excitación­contracción y en la secreción. Las corrientes conducidas por los conductos de Ca2+ tipo L
Conductos de Ca2+ activados por voltaje
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Los conductos de Ca2+ activados por voltaje tienen una estructura bastante similar a la de los conductos de Na+, con una subunidad α grande (cuatro
dominios de 6 hélices que cruzan la membrana) y subunidades reguladoras auxiliares (p. ej., subunidades β y α2δ; figs. 3–4C y 16–2) (Catterall et al.,
2020). Los conductos de Ca2+ pueden ser componentes sustanciales de un potencial de acción, como en las células marcapaso del corazón, pero más a
menudo permiten la traducción, mediante la entrada de Ca2+, de los potenciales de acción en respuestas intracelulares. Existen tres tipos generales de
conductos de Ca2+. Los conductos de Ca2+ de tipo L se expresan en células de músculos cardiaco, liso y estriado, así como en células de tejidos
endocrinos, donde participan en el acoplamiento excitación­contracción y en la secreción. Las corrientes conducidas por los conductos de Ca2+ tipo L
pueden requerir una despolarización potente y son de larga duración (de ahí la “L” como identificador del tipo). Estos conductos se bloquean con
dihidropiridinas, como la nifedipina y por diltiazem y verapamilo, fármacos usados con frecuencia para tratar hipertensión, angina y ciertas arritmias
cardiacas (caps. 31, 32 y 34). Los conductos de Ca2+ tipos P/Q, N y R se expresan sobre todo en neuronas y participan en la liberación de
neurotransmisores. También requieren una despolarización fuerte para activarse. Los conductos tipo T se expresan en neuronas y en células de
músculos cardiaco y liso. Las corrientes generadas por el flujo iónico a través de estos conductos se activan por despolarizaciones débiles y son
transitorias. Estos conductos facilitan la despolarización del marcapasos cardiaco. También se encuentran en las neuronas talámicas, donde la
corriente amplifica las oscilaciones en el potencial de membrana, una oscilación es lo que se observa en una convulsión de ausencia (cap. 20); la
etosuximida y el valproato son antiepilépticos usados para inhibir los conductos de tipo T. Los conductos de Ca2+ tipo L son modulados por la
fosforilación mediante la proteína cinasa A (PKA, protein kinase A), mientras los conductos tipos P/Q, N y R están modulados en un punto más
proximal mediante los GPCR, como se explica más adelante (Mecanismos de acción farmacológica mediados por un receptor).
Conductos de K+ activados por voltaje
Los conductos de K+ activados por voltaje son los más numerosos de la familia de conductos iónicos activados por voltaje (Gutmann et al., 2005; Wulff
et al., 2009). Estos conductos son tetrámeros de cuatro subunidades KVα similares o idénticas de seis cruces transmembrana que en conjunto forman
un poro de conductancia con capacidad de percibir el voltaje (fig. 3–4B). Existen 40 genes humanos KVα que se distribuyen en 12 subfamilias. Los
conductos regulan la onda y el patrón de los potenciales de acción (Attali et al., 2019). Varios fármacos antiarrítmicos, como la amiodarona y el sotalol,
modulan estos conductos en forma directa o indirecta y casi siempre junto con otros conductos iónicos activados por voltaje (cap. 34). Un mecanismo
común por el cual los fármacos prolongan los potenciales de acción en el corazón y causan arritmias es la inhibición de una corriente rectificadora
tardía específica generada por hERG, un conducto más a menudo denominado KV11.1 (el producto de KCNH2; cap. 34).
Especificidad de las respuestas farmacológicas
El grado en que un fármaco logra una acción buscada en relación con otras acciones es conocido como especificidad o selectividad de acción. La
afinidad de un fármaco por su blanco molecular tiene importancia obvia, ya que una interacción de alta afinidad reduce la probabilidad de efectos
fuera del objetivo farmacológico con concentraciones terapéuticas. La especificidad depende también de otros factores. Uno es la medida en que el
sitio donde interactúa el fármaco es exclusivo de ese objetivo farmacológico. La conservación de sitios ortostéricos entre los subtipos de receptores
muscarínicos dificulta la actividad farmacológica en algún subtipo específico (cap. 11). Además, ciertos receptores o enzimas en apariencia dispares
tienen sitios de unión ortostéricos con un origen ontológico común. Este es el caso de los receptores muscarínicos y el receptor H1 para histamina,
como se manifiesta en los efectos atropínicos de los antihistamínicos típicos (cap. 43). Aclarado esto, un ejemplo de sitio ortostérico en el cual se ha
tenido cierto éxito en lograr una especificidad de objetivo farmacológico relativamente alta es el sitio de unión para ATP de las proteína cinasas, para
el cual existen cerca de 800 genes diferentes en el genoma humano, muchos de los cuales participan en la patogenia del cáncer (cap. 71). El imatinib
actúa en el sitio de unión de ATP de la Bcr­Abl proteína cinasa y se usa para tratar la leucemia mieloide crónica; el imatinib fue el primer inhibidor de la
proteína cinasa dirigido a una proteína cinasa específica que recibió la aprobación de la FDA (Cohen et al., 2021).
La especificidad de acción también puede depender del grado en que el objetivo farmacológico se distribuye entre los tejidos. Es casi seguro que un
objetivo expresado en uno o solo en unos cuantos tejidos favorezca un grado más alto de especificidad terapéutica que uno que se expresa en todo el
cuerpo, ya que los efectos farmacológicos en este último caso ocurrirían en tejidos que muy probablemente sean irrelevantes para el fenómeno
patológico. La forma en que el fármaco mismo se distribuye entre los tejidos, un concepto importante en la farmacocinética, también influye en su
especificidad de acción. Los antagonistas del receptor opioide μ que se limitan a la periferia, como la metilnaltrexona, a diferencia de la naloxona o la
naltrexona, tienen poco efecto en las acciones analgésicas (centrales) de los opioides (cap. 23).
Ningún fármaco es del todo específico en cuanto a su acción. La desviación de un alto grado de especificidad puede ser ventajosa en ciertas
circunstancias. Por ejemplo, la sedación que ejercen los antihistamínicos típicos puede ser una acción secundaria bienvenida para el bloqueo
periférico de la histamina en el tratamiento del prurito. Sin embargo, lo más frecuente es que las acciones no deseadas de un fármaco pueden ser una
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el daño físico o psicológico (al grado de convertirse en fenómenos farmacológicos adversos).
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En ocasiones, la “promiscuidad” no es del fármaco, sino del objetivo farmacológico. El conducto K 11.1 (hERG) contiene un sitio que puede interactuar
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con diversas moléculas de estructuras distintas. La prolongación del intervalo QT con la consecuente taquicardia ventricular polimorfa en entorchado
especificidad de acción. Los antagonistas del receptor opioide μ que se limitan a la periferia, como la metilnaltrexona, a diferencia de la naloxona o la
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naltrexona, tienen poco efecto en las acciones analgésicas (centrales) de los opioides (cap. 23).
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Ningún fármaco es del todo específico en cuanto a su acción. La desviación de un alto grado de especificidad puede ser ventajosa en ciertas
circunstancias. Por ejemplo, la sedación que ejercen los antihistamínicos típicos puede ser una acción secundaria bienvenida para el bloqueo
periférico de la histamina en el tratamiento del prurito. Sin embargo, lo más frecuente es que las acciones no deseadas de un fármaco pueden ser una
molestia o algo peor cuando estos efectos aumentan el daño físico o psicológico (al grado de convertirse en fenómenos farmacológicos adversos).
En ocasiones, la “promiscuidad” no es del fármaco, sino del objetivo farmacológico. El conducto KV11.1 (hERG) contiene un sitio que puede interactuar
con diversas moléculas de estructuras distintas. La prolongación del intervalo QT con la consecuente taquicardia ventricular polimorfa en entorchado
(torsades de pointes) es un efecto grave de muchos fármacos que actúan fuera del objetivo farmacológico. Ahora la FDA requiere que todos los
nuevos fármacos sean valorados para conocer su capacidad de unirse con el conducto KV11.1 y prolongar el intervalo QT.
Para complicar más el problema de la especificidad, algunos fármacos se administran como mezclas racémicas de estereoisómeros, cada uno de los
cuales puede tener una farmacodinámica y propiedades farmacocinéticas diferentes. El fármaco antiarrítmico sotalol es un buen ejemplo. Aunque los
enantiómeros D y L de sotalol son equipotentes como antagonistas de los conductos de K+, el enantiómero L es un antagonista adrenérgico β mucho
más potente. Múltiples fármacos que al principio estaban disponibles como mezclas racémicas ahora se encuentran en formas de un solo
estereoisómero, lo que a menudo resalta las diferencias en las propiedades de los enantiómeros por separado.
La conversión metabólica de un fármaco en uno o más metabolitos que conservan la actividad también es un factor de confusión para la especificidad.
Los metabolitos activos casi siempre difieren del compuesto original en eficacia, pero algunos tienen también diferencias cualitativas en sus acciones.
Aparte de los profármacos, a menudo se les reconoce como metabolitos tóxicos e incluyen, por ejemplo, la normeperidina, un metabolito de la
meperidina que es probable causante de estimulación del sistema nervioso central (SNC) (cap. 23) y la N­acetil­p­benzoquinona imina, un metabolito
del paracetamol que produce necrosis hepática y renal (cap. 5).
Aditividad y sinergismo: isobologramas
Los fármacos con diferentes mecanismos de acción a menudo se usan en combinación para lograr efectos aditivos y sinérgicos positivos. Tales
interacciones de dos compuestos pueden permitir el uso de menores concentraciones de cada uno, lo que reduce los efectos adversos dependientes
de la concentración. El sinergismo positivo se refiere a los efectos “superaditivos” de fármacos usados en combinación, cuando el efecto de los dos
fármacos juntos es mayor que la suma de sus efectos individuales. Los fármacos usados en combinación también pueden tener sinergismo negativo o
efectos subaditivos, cuando la eficacia de la combinación es menor de lo que se esperaría si los efectos fueran aditivos. Los isobologramas, como el
mostrado en la figura 3–5, ofrecen una representación cuantitativa del sinergismo positivo y negativo. La base para el uso de isobologramas fue
desarrollada y revisada por Tallarida (2012) y se explica en el pie de la figura 3–5. El uso de isobologramas para identificar las posibles interacciones
farmacodinámicas sinérgicas de varios fármacos anticonvulsivos diferentes en un modelo de ratón fue demostrado por Metcalf et al. (2018).
Figura 3–5
Isobolograma que muestra el efecto aditivo y sinergia de una combinación farmacológica. El isobolograma muestra la línea de efecto aditivo de 50%
obtenido con una combinación de dos fármacos (las concentraciones de fármaco A están en el eje x, las del fármaco B están en el eje y) que tienen
efectos similares, pero diferentes mecanismos de acción. La intersección de la línea de adición (efecto de 50%) con el eje x es la EC50 para A, mientras la
intersección en el eje y es la EC50 para B. Si la combinación de A y B muestra un sinergismo positivo (“superaditividad”), entonces 50% del efecto con
una combinación de los dos fármacos caerá en algún punto debajo de la línea de efecto aditivo, mientras el sinergismo negativo (“subaditividad”)
caerá por arriba de la línea de efecto aditivo. Las líneas de efecto aditivo para diferentes porcentajes de efectos (p. ej., 90% de efecto) son paralelas a la
línea de 50% de efecto aditivo. El isobolograma puede usarse para calcular las concentraciones de dos fármacos necesarias para obtener un efecto
determinado cuando se usan combinados. Una explicación completa del concepto y la utilidad de los isóbolos puede consultarse en Tallarida (2012).
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una combinación de los dos fármacos caerá en algún punto debajo de la línea de efecto aditivo, mientras el sinergismo negativo (“subaditividad”)
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caerá por arriba de la línea de efecto aditivo. Las líneas de efecto aditivo para diferentes porcentajes de efectos (p. ej., 90% de efecto) son paralelas a la
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línea de 50% de efecto aditivo. El isobolograma puede usarse para calcular las concentraciones de dos fármacos necesarias para obtener un efecto
determinado cuando se usan combinados. Una explicación completa del concepto y la utilidad de los isóbolos puede consultarse en Tallarida (2012).
Atenuación de las respuestas farmacológicas
La regulación de la retroalimentación es una característica definitoria de los sistemas biológicos. Una célula o un organismo pueden percibir las
acciones de un fármaco como una perturbación de la homeostasis e intentar contrarrestar tales acciones para restaurar el estado de equilibrio
mediante mecanismos moleculares y fisiológicos. Los mecanismos incluyen los ejercidos por el sistema nervioso simpático y el sistema renina­
angiotensina­aldosterona (caps. 29 y 32), entre muchos otros ciclos de retroalimentación celular y sistémica. La taquicardia refleja mediada por el
sistema nervioso simpático es una respuesta frecuente a los vasodilatadores usados para reducir la presión arterial, como las dihidropiridinas,
hidralazina y nitratos orgánicos, lo que en ocasiones requiere la administración de un β­bloqueador para amortiguar el aumento de la frecuencia
cardiaca (caps. 31, 32 y 33).
Taquifilaxia y desvanecimiento son términos superpuestos para una reducción de la respuesta a un fármaco con la aplicación repetida o con el
tiempo, respectivamente. Por lo general, los dos términos tienen una connotación fisiológica. Aunque no es necesario implicar algún mecanismo
(Neubig et al., 2003), los procesos subyacentes incluyen modulación de la expresión y función del objetivo farmacológico, respuestas de mecanismos
homeostáticos hísticos superpuestos y, en casos extremos, mecanismos de resistencia franca a tratamientos contra el cáncer o patógenos. La
desensibilización también se refiere a la atenuación de la respuesta, pero por lo general al nivel del objetivo farmacológico mismo. A menudo se
distingue la desensibilización de la regulación descendente, la pérdida de un objetivo farmacológico con la exposición prolongada al ligando, aunque
las dos pueden tener mecanismos muy relacionados.
En particular, la desensibilización y la regulación descendente de los GPCR han sido bien comprendidas. La desensibilización homóloga se refiere a
una reducción relativamente rápida en la respuesta de un GPCR a un agonista como consecuencia de una interacción entre los dos. Una forma de
desensibilización homóloga incluye la fosforilación de los GPCR mediante cinasas del receptor acoplado con proteína G (GRK, G protein­coupled
receptor kinase) con la implicación subsiguiente de arrestinas e interiorización de receptores, como se explica en la sección Desensibilización
mediada por GRK y arrestina. Existen otras formas de desensibilización homóloga, incluidas las mediadas por proteína cinasas, con o sin arrestinas y
que implican otras formas de interiorización. La desensibilización heteróloga se refiere a un decremento en la respuesta de un receptor a un agonista
como resultado de la activación de una vía receptor­señalización diferente, por lo general mediante un agonista distinto. La fosforilación de
receptores mediante PKA y PKC tiene un sitio prominente en la desensibilización heteróloga, igual que otras modificaciones posteriores a la
traducción, como la ubiquitinación y la palmitoilación (Patwardhan et al., 2021). Aunque la desensibilización de los GPCR permite un grado variable de
reciclaje desde los endosomas, predispone a los receptores a la regulación a la baja mediante degradación lisosómica.
Aunque por lo general se considera que la desensibilización y la regulación descendente amortiguan la eficacia de los agonistas, en algunos casos
tienen utilidad terapéutica. Se cree que los mecanismos por los cuales los inhibidores selectivos de la recaptación de serotonina (SSRI, selective
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postsinápticos
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serotonina (cap. 18). La reducción del receptor para hormona liberadora de gonadotropina (GnRH, gonadotropin­releasing hormone) mediante la
señalización sostenida lograda con congéneres de la GnRH es la base de la utilidad de estos fármacos en el tratamiento de la pubertad precoz
receptores mediante PKA y PKC tiene un sitio prominente en la desensibilización heteróloga, igual que otras modificaciones posteriores a la
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traducción, como la ubiquitinación y la palmitoilación (Patwardhan et al., 2021). Aunque la desensibilización de los GPCR permite un grado variable de
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reciclaje desde los endosomas, predispone a los receptores a la regulación a la baja mediante degradación lisosómica.
Aunque por lo general se considera que la desensibilización y la regulación descendente amortiguan la eficacia de los agonistas, en algunos casos
tienen utilidad terapéutica. Se cree que los mecanismos por los cuales los inhibidores selectivos de la recaptación de serotonina (SSRI, selective
serotonine reuptake inhibitors) atenúan la depresión, implican la reducción de receptores autoinhibidores 5HT1A, 5HT1D y 5HT7 y receptores
postsinápticos 5HT2A, mientras otros receptores serotoninérgicos conservan su capacidad de respuesta a las concentraciones ahora más elevadas de
serotonina (cap. 18). La reducción del receptor para hormona liberadora de gonadotropina (GnRH, gonadotropin­releasing hormone) mediante la
señalización sostenida lograda con congéneres de la GnRH es la base de la utilidad de estos fármacos en el tratamiento de la pubertad precoz
dependiente de GnRH (cap. 46).
El fenómeno de supersensibilidad refleja también un proceso de adaptación, a menudo una adaptación a la supresión prolongada de la señalización
del receptor y que por lo general se manifiesta como una mayor expresión del receptor. Es más notable cuando un inhibidor o antagonista se
interrumpe de manera súbita. Se ha planteado que la supersensibilidad relacionada con el receptor dopaminérgico D2 explica la tolerancia a los
antipsicóticos (cap. 19) y la mayor capacidad de respuesta adrenérgica β de los pacientes físicamente activos que, después de un tratamiento
prolongado con un β­bloqueador, suspenden este fármaco de manera súbita (cap. 14). La supersensibilidad también es fácil de observar en ciertos
receptores postsinápticos para neurotransmisores en caso de desnervación crónica.
La atenuación de la respuesta a los fármacos que inhiben enzimas puede relacionarse con un aumento en la expresión del objetivo farmacológico. La
inhibición que ejercen las estatinas de la HMG­CoA reductasa se contrarresta, aunque de manera incompleta, con un aumento sustancial en la
concentración de la enzima mediante formas autorreguladoras de la transcripción génica y menor degradación de la proteína.
La atenuación de la respuesta farmacológica, sin importar su objetico farmacológico, puede ser resultado de la expresión autoinducida de las enzimas
que degradan el fármaco, un fenómeno farmacocinético. La inducción de CYP3A4 (citocromo P450 isoforma 3A4) mediante carbamazepina es un
ejemplo típico: después de una sola dosis, la semivida (t1/2) de la carbamazepina es cercana a 36 h; después de la administración repetida, la t1/2
disminuye a la mitad.
El término resistencia farmacológica se usa casi exclusivamente en relación con el tratamiento antimicrobiano y oncológico y se refiere a la capacidad
del patógeno o de la célula para evitar la destrucción por el fármaco. El abuso de antimicrobianos conduce a la selección de cepas microbianas
resistentes a los antibióticos, un problema crítico en la medicina humana y en la crianza de animales para producción de alimentos. Los mecanismos
frecuentes de resistencia antimicrobiana, descritos con detalle en el capítulo 56, son:
Reducción de la entrada del fármaco al patógeno o célula.
Incremento de la exportación del fármaco fuera del patógeno o célula.
Alteración de las proteínas donde el fármaco ejerce su efecto.
Desarrollo de vías alternativas para evitar las que inhibe el fármaco.
Liberación de enzimas que modifican o destruyen el fármaco.
En las células neoplásicas, uno de varios mecanismos de resistencia al metotrexato, un inhibidor competitivo de la dihidrofolato reductasa (DHFR), es
el incremento de la enzima mediante amplificación génica o modificación de la regulación génica (cap. 70). Otros mecanismos de resistencia al
metotrexato incluyen alteración del transporte farmacológico hacia las células debido a la baja expresión del portador de folato reducido, menor
retención intracelular del fármaco debido a disminución de la poliglutamilación y aumento en la expresión de un transportador de salida y producción
de formas alteradas de DHFR que tienen menor afinidad por el metotrexato.
Interacciones farmacodinámicas
Aunque los fármacos pueden usarse en combinación para lograr un efecto terapéutico aditivo o sinérgico, las combinaciones también se utilizan para
el tratamiento de varias enfermedades que se presentan en forma simultánea. En cualquier caso, deben considerarse las interacciones
farmacológicas. El término interacciones, como suele usarse, no se relaciona con las interacciones terapéuticas, sino con las interacciones de los
fármacos que tienen la capacidad de causar efectos adversos. La comprensión de las bases de tales interacciones brinda el contexto para prevenirlas.
Con mayor frecuencia, las interacciones farmacológicas se enmarcan dentro de una perspectiva farmacocinética en la que un fármaco altera la
absorción, distribución, metabolismo o eliminación (ADME) de otro. Las interacciones farmacocinéticas se describen en el capítulo 2. Las de
naturaleza farmacodinámica
descrito
menos. Quizá el tipo de interacción farmacodinámica más frecuente se relaciona con la sedación. Un gran
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número de fármacos tienen acciones sedantes y,moleculares
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prolongación del intervalo QTc, en la cual la administración concurrente de dos fármacos que prolongan este intervalo conlleva una mayor
el tratamiento de varias enfermedades que se presentan en forma simultánea. En cualquier caso, deben considerarse las interacciones
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farmacológicas. El término interacciones, como suele usarse, no se relaciona con las interacciones terapéuticas, sino con las interacciones de los
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fármacos que tienen la capacidad de causar efectos adversos. La comprensión de las bases de tales interacciones brinda el contexto para prevenirlas.
Con mayor frecuencia, las interacciones farmacológicas se enmarcan dentro de una perspectiva farmacocinética en la que un fármaco altera la
absorción, distribución, metabolismo o eliminación (ADME) de otro. Las interacciones farmacocinéticas se describen en el capítulo 2. Las de
naturaleza farmacodinámica se han descrito menos. Quizá el tipo de interacción farmacodinámica más frecuente se relaciona con la sedación. Un gran
número de fármacos tienen acciones sedantes y, ya sea por formas aditivas o sinérgicas de su efecto, la combinación de tales compuestos puede
producir sedación excesiva, pérdida del estado de alerta e incluso la muerte. Otro tipo de interacción farmacológica farmacodinámica es la
prolongación del intervalo QTc, en la cual la administración concurrente de dos fármacos que prolongan este intervalo conlleva una mayor
probabilidad de causar taquicardia ventricular polimorfa que cualquiera de esos compuestos solo.
Otras interacciones farmacodinámicas son más selectivas o idiosincrásicas. Por ejemplo, los nitratos vasodilatadores producen dilatación mediante la
elevación del GMP cíclico dependiente de NO en el músculo liso vascular, mientras que el sildenafilo, tadalafilo y vardenafilo ejercen sus efectos en la
vasculatura por inhibición de la fosfodiesterasa (PDE) 5, que hidroliza el GMP cíclico hasta 5′GMP. Por lo tanto, la administración simultánea de un
donador de NO (p. ej., nitroglicerina) con un inhibidor de PDE5 puede producir vasodilatación intensa con hipotensión potencialmente catastrófica. La
warfarina tiene un estrecho margen entre la inhibición terapéutica del desarrollo del coágulo y las complicaciones hemorrágicas y está sujeta a
numerosas interacciones farmacológicas importantes, tanto farmacocinéticas como farmacodinámicas. Las alteraciones en el consumo de vitamina K
pueden tener una influencia significativa en la farmacodinámica de la warfarina y obligar al cambio de dosis; los antibióticos que alteran la flora
intestinal reducen la síntesis bacteriana de vitamina K, lo que intensifica el efecto de la warfarina y la administración simultánea de NSAID y warfarina
aumenta el riesgo de hemorragia de tubo digestivo en casi cuatro veces en comparación con el uso de warfarina sola.
¿Qué ocurre con la farmacocinética y la farmacodinámica en los extremos de la vida?
La mayor parte de los fármacos se valora en adultos jóvenes y de edad madura. Los datos de niños y ancianos son relativamente escasos. No obstante,
los parámetros farmacocinéticos y farmacodinámicos en los extremos de la edad pueden diferir mucho de los obtenidos del adulto prototípico, lo que
obliga a evitar ciertos fármacos o a modificar mucho la dosis o el régimen posológico a fin de obtener el efecto clínico deseado en forma segura. Hay
diversos recursos que revisan la farmacología neonatal y pediátrica. Respecto a los ancianos, la American Geriatrics Society publica los Beers Criteria
for Potentially Inappropriate Medication Use in Older Adults, que es una lista explícita de fármacos que deben evitarse en los adultos de edad
avanzada, fármacos que deben evitarse o usarse en menores dosis en el paciente geriátrico con hipofunción renal e interacciones farmacológicas
específicas y entre los fármacos y la enfermedad que son dañinas para esta población.
Medicina de precisión: una perspectiva farmacodinámica
El propósito de la medicina de precisión es comprender la constitución genética, el ambiente y el estilo de vida de un individuo a fin de optimizar las
estrategias para prevenir y tratar la enfermedad. Desde la perspectiva de la farmacodinámica, la clave de esta tarea es la identificación de
biomarcadores u otros sustitutos que anticipen una respuesta, ya sea terapéutica o adversa, a un fármaco determinado. Hasta ahora se ha puesto un
énfasis abrumador en los biomarcadores genéticos, en parte por la facilidad relativa de la secuenciación del DNA. La clasificación de tales
biomarcadores es el terreno de la farmacogenética y la farmacogenómica, que se describen en el capítulo 7. Es casi un hecho que la epigenética, el
estudio de modificaciones y cambios en la estructura de la cromatina superpuestos a la secuencia del DNA, resultará ser igual de importante, sobre
todo en relación con el ambiente y el estilo de vida.
Hasta ahora, los ejemplos de biomarcadores genéticos tienen que ver sobre todo con cambios singulares en la estructura del DNA mediante
mutaciones somáticas y polimorfismos en nucleótidos individuales o estructurales. Algunos ejemplos apropiados de biomarcadores relativos a la
efectividad terapéutica son la mutación V600E en Raf­B, necesaria para el tratamiento del melanoma con vemurafenib; la sobreexpresión del receptor
HER2/neu, necesaria para el tratamiento del cáncer mamario con trastuzumab y la presencia necesaria del cromosoma Philadelphia para el
tratamiento de la leucemia mielógena crónica con imatinib (cap. 71). Los panoramas de múltiples polimorfismos y mutaciones, cuyo efecto funcional
individual no siempre se conoce, también son importantes. Por ejemplo, una “carga mutacional” alta y neoantígenos específicos del tumor
relacionados con el reconocimiento de los linfocitos T se vinculan con el grado de beneficio clínico obtenido con el bloqueo de CTLA4 (proteína 4
relacionada con el linfocito T citotóxico) en el melanoma (Snyder et al., 2014).
Las pruebas genéticas requeridas que se relacionan con la disminución de efectos adversos muy dañinos incluyen las del polimorfismo del alelo del
antígeno leucocítico humano B*1502 antes de administrar carbamazepina a pacientes de origen asiático y la prueba para deficiencia de glucosa­6­
fosfato deshidrogenasa antes de administrar rasburicasa a pacientes de ascendencia africana o mediterránea. Las pruebas para la variante
polimórfica AA del complejo 1 de la vitamina K epóxido reductasa (junto con variantes polimórficas de CYP2C9) ofrecen una guía para la posología
inicial de warfarina. ¿Por qué? Porque la dosis óptima varía hasta más de 10 veces entre los pacientes, con consecuencias significativas para las dosis
demasiado altas (complicaciones hemorrágicas) o demasiado bajas (formación de coágulos).
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
Las perspectivas farmacocinéticas relativas a la medicina de precisión y a la farmacogenética/ farmacogenómica en general se presentan en el capítulo
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7. La Pharmacogenomics Knowledge Base (PharmGKB) y la información de los fármacos de la FDA/European Medicines Agency proporcionan guías
farmacodinámicas y farmacocinéticas.
Las pruebas genéticas requeridas que se relacionan con la disminución de efectos adversos muy dañinos incluyen las del polimorfismo del alelo del
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antígeno leucocítico humano B*1502 antes de administrar carbamazepina a pacientes de origen asiático y la
prueba para deficiencia
de glucosa­6­
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fosfato deshidrogenasa antes de administrar rasburicasa a pacientes de ascendencia africana o mediterránea.
Las
pruebas
para la variante
polimórfica AA del complejo 1 de la vitamina K epóxido reductasa (junto con variantes polimórficas de CYP2C9) ofrecen una guía para la posología
inicial de warfarina. ¿Por qué? Porque la dosis óptima varía hasta más de 10 veces entre los pacientes, con consecuencias significativas para las dosis
demasiado altas (complicaciones hemorrágicas) o demasiado bajas (formación de coágulos).
Las perspectivas farmacocinéticas relativas a la medicina de precisión y a la farmacogenética/ farmacogenómica en general se presentan en el capítulo
7. La Pharmacogenomics Knowledge Base (PharmGKB) y la información de los fármacos de la FDA/European Medicines Agency proporcionan guías
farmacodinámicas y farmacocinéticas.
Relaciones concentración­respuesta y dosis­respuesta
Los términos usados más a menudo para describir la capacidad de un fármaco para lograr un efecto son eficacia y potencia. Estos términos pueden
analizarse a partir de la valoración de la relación entre la concentración o la dosis de un fármaco y la(s) respuesta(s) inducida(s). Por lo general, las
curvas de concentración­respuesta o dosis­respuesta se trazan, como se hace aquí, para los efectos de los agonistas a través de receptores, pero son
extensibles a todos los objetivos farmacológicos. El enfoque de estas curvas tiende a concentrarse en los individuos y no en las poblaciones o en las
células, tejidos o muestras experimentales, de tal forma que se optimice la variabilidad. Las poblaciones son más fáciles de analizar mediante curvas
binarias de concentración­efecto o dosis­efecto (véase la siguiente sección).
La curva de concentración­respuesta o de dosis­respuesta en relación con los receptores muestra el efecto observado de un agonista en función de su
concentración en el compartimiento del receptor o de la dosis administrada a un individuo. La figura 3–6 muestra una curva de concentración­
respuesta, casi siempre graficada como se presenta en la figura 3–6B. La colocación y forma exactas de la curva dependerán de la afinidad del fármaco
por el receptor, el grado en que la población de receptores pueda exceder al número necesario para una respuesta máxima (receptores de reserva) y
de efectos cooperadores. Las respuestas que se ajustan a la relación mostrada comparten la propiedad de ser matemáticamente continuas, a
diferencia de las de naturaleza binaria, descritas más adelante.
Figura 3–6
Curva de concentración­respuesta. A . La respuesta seleccionada a un agonista “D” en función de la concentración del agonista se grafica como
porcentaje de la respuesta máxima al agonista. La concentración de agonista que produce 50% de la respuesta máxima se expresa como EC50
(concentración efectiva, indexada a 50% de la respuesta máxima). B . La forma hiperbólica de la curva en la imagen A se vuelve sigmoidea cuando se
grafica de manera semilogarítmica. El intervalo de concentraciones necesario para presentar por completo la relación dosis­respuesta (casi 3
unidades log10 [10]) es demasiado amplio para ser útil en el formato lineal de la figura 3–6A; por lo tanto, la mayor parte de las curvas de dosis­
respuesta usan log [fármaco] en el eje x, como en la figura 3–6B. La forma sigmoidea tiene tres características notables: umbral, pendiente y asíntota
máxima.
Algunos agonistas inducen una respuesta en un intervalo de concentraciones y suprimen la misma respuesta en un intervalo más alto. En general se
desconoce la base de esta relación bifásica, en ocasiones denominada hormesis; sin embargo, es posible que sea el origen de algunas respuestas
farmacológicas adversas (fig. 9–2).
Al nivel molecular, la eficacia se relaciona con la capacidad de un ligando para unirse con el receptor y favorecer un cambio en la conformación de este
que induzca la respuesta distal medida. Las diferencias en eficacia entre ligandos son más fáciles de valorar en concentraciones de saturación de los
ligandos cuando los receptores estudiados están ocupados por completo y se obtiene la respuesta máxima para cada ligando. Esto se muestra en la
figura 3–7A, donde las asíntotas relativas a los efectos máximos de los fármacos y, por tanto, sus eficacias difieren. Los agonistas total y parcial difieren
en eficacia; un antagonista neutral, que no tiene efecto en la conformación del receptor, tiene una eficacia de cero.
Figura 3–7
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CAPÍTULO
3: cuantificar
Farmacodinámica:
mecanismos
moleculares
la acción
farmacológica,
David AR.
Manning;
Blumenthal
Dos formas de
el agonismo.
1 . Se valora
la eficacia de
relativa
de dos
agonistas (fármaco
, fármaco
B) Donald
para un K.
tipo
de receptor determinado
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en la misma célula o tejido con base en una comparación de respuestas. La respuesta asintótica del fármaco A es dos veces mayor a la del fármaco B;
por tanto, el fármaco A es dos veces más eficaz que el fármaco B. 2 . La EC50 del fármaco C es un décimo de la del fármaco D; por tanto, el fármaco C es
que induzca la respuesta distal medida. Las diferencias en eficacia entre ligandos son más fáciles de valorar en concentraciones de saturación de los
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ligandos cuando los receptores estudiados están ocupados por completo y se obtiene la respuesta máximaUNIVERSIDAD
para cada ligando.
se muestra en­ UES
la
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figura 3–7A, donde las asíntotas relativas a los efectos máximos de los fármacos y, por tanto, sus eficacias difieren.
Los agonistas total y parcial difieren
en eficacia; un antagonista neutral, que no tiene efecto en la conformación del receptor, tiene una eficacia de cero.
Figura 3–7
Dos formas de cuantificar el agonismo. 1 . Se valora la eficacia relativa de dos agonistas (fármaco A, fármaco B) para un tipo de receptor determinado
en la misma célula o tejido con base en una comparación de respuestas. La respuesta asintótica del fármaco A es dos veces mayor a la del fármaco B;
por tanto, el fármaco A es dos veces más eficaz que el fármaco B. 2 . La EC50 del fármaco C es un décimo de la del fármaco D; por tanto, el fármaco C es
10 veces más potente que el fármaco D.
La potencia es la expresión de la actividad de un fármaco en términos de la concentración o cantidad necesaria para producir un efecto definido
(Neubig et al., 2003). A menudo se usa la media de la concentración efectiva (EC50) o de la dosis efectiva (ED50). En este caso, se dice que un fármaco
cuya curva de concentración­respuesta se sitúa a la izquierda de otra, como en la figura 3–7B, es más potente, al margen de las diferencias en las
respuestas máximas. Por otra parte, la idea de un “efecto definido” en la acepción anterior se presta a otras interpretaciones de potencia; por
ejemplo, las no basadas en la EC50 o la ED50, sino en las concentraciones o dosis necesarias para alcanzar un efecto terapéutico absoluto o
determinado. En cualquier caso, la potencia no se refiere al efecto máximo obtenible.
Las diferencias de eficacias y potencias entre dos o más fármacos que operan a través de un receptor determinado pueden cambiar según la respuesta
medida y el contexto celular. El contexto puede referirse a la proximidad relativa de los efectores subsiguientes, a las conformaciones del receptor
reconocidas de manera diferencial en distintas células, a que los receptores sean limitantes para la respuesta medida y a las respuestas adaptativas.
Además, la traducción de eficacia de un plano molecular a uno fisiológico o clínico, en el cual el efecto terapéutico deseado es la principal
preocupación, puede ser un proceso riesgoso. El efecto terapéutico a menudo ocurre mucho después de los cambios en la conformación del receptor
y representa una integración de acciones y reacciones en células, tejidos y mecanismos homeostáticos superpuestos. Asimismo, la variabilidad entre
seres humanos en términos de respuesta es un factor de confusión (véase más adelante). Además, no puede decirse que aunque un antagonista no
tenga un efecto en un receptor por sí mismo, carezca de efecto in vivo si bloquea las acciones de un agonista endógeno, lo que bien podría
considerarse una respuesta terapéutica mensurable.
Variabilidad farmacodinámica: individual y poblacional
Los individuos presentan variaciones en la magnitud de su respuesta a la misma concentración de un mismo fármaco y es posible que un individuo
determinado no siempre responda de la misma manera al mismo fármaco. Los factores que generan esta variabilidad no han sido comprendidos del
todo, pero son de naturaleza farmacocinética y farmacodinámica (fig. 3–8). Por lo tanto, estos factores pueden cambiar en relación con el estado
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fisiológico y 3:
fisiopatológico,
por ejemplo
con el embarazo,
la edad
las funciones
cardiovascular,
hepática
o renal.
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CAPÍTULO
Farmacodinámica:
mecanismos
moleculares
de layacción
farmacológica,
David R.
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variabilidad,
los objetivos
moleculares
de losTerms
fármacos
a menudo
aumentan
o se reducen
por factores endógenos o exógenos, incluso por la
administración anterior o concurrente de otro fármaco.
Variabilidad farmacodinámica: individual y poblacional
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Los individuos presentan variaciones en la magnitud de su respuesta a la misma concentración de un mismo fármaco y es posible que un individuo
determinado no siempre responda de la misma manera al mismo fármaco. Los factores que generan esta variabilidad no han sido comprendidos del
todo, pero son de naturaleza farmacocinética y farmacodinámica (fig. 3–8). Por lo tanto, estos factores pueden cambiar en relación con el estado
fisiológico y fisiopatológico, por ejemplo con el embarazo, la edad y las funciones cardiovascular, hepática o renal. Para complicar más el aspecto de la
variabilidad, los objetivos moleculares de los fármacos a menudo aumentan o se reducen por factores endógenos o exógenos, incluso por la
administración anterior o concurrente de otro fármaco.
Figura 3–8
Factores que influyen en la respuesta a una dosis prescrita de fármaco.
Los datos sobre la correlación de la concentración farmacológica con la respuesta terapéutica y la toxicidad para una población deben interpretarse
dentro de este contexto de variabilidad. Por lo general, las curvas de concentración­respuesta y dosis­respuesta descritas antes, que intentan reducir
la variabilidad, serán suficientes. La potencia y eficacia en una población deben considerarse mediante curvas binarias de concentración­efecto o
dosis­efecto (fig. 3–9). La respuesta binaria significa que un individuo responda o no a una concentración o dosis determinada del fármaco; cuando se
usa la concentración del fármaco en lugar de la dosis, casi siempre se refiere a la plasmática. En caso de fenómenos biológicos que son binarios en sí
mismos (p. ej., la conciencia, una convulsión o la muerte), la respuesta es solo la presencia del fenómeno. En caso de criterios de valoración que son
un continuo matemático (p. ej., presión arterial, intensidad del dolor, concentración plasmática de la glucosa, PCO2), un cambio de magnitud
especificada constituye una respuesta binaria. En cualquier caso, el número o porcentaje de individuos que responde de esta forma binaria se grafica
en función de la concentración o dosis del fármaco. La concentración o dosis necesarias para producir una respuesta especificada en 50% de la
población es la EC50 o ED50.
Figura 3–9
Curvas binarias de concentración­respuesta y dosis­respuesta. A . Distribución por frecuencia y curva de concentración­respuesta. Se realizó un
experimento en 100 sujetos, en los que se determinó la concentración plasmática del fármaco que producía una respuesta binaria en cada individuo,
en este caso, hipnosis. Se graficó el número de sujetos que respondieron a cada concentración, lo que produjo una distribución de frecuencia
logarítmica­normal (barras de color morado). Cuando se suma la distribución normal por frecuencia, se obtiene la distribución por frecuencia
acumulativa, una curva sigmoidea que es una curva concentración­respuesta (barras rojas, línea roja). B . Curvas binarias de dosis­respuesta. Se
inyectaron a animales varias dosis de un fármaco, luego se identificaron las respuestas y se graficaron. El índice terapéutico, el cociente entre la LD50 y
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la
ED50, es un3:indicador
de la selectividad
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para producir
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Farmacodinámica:
mecanismos
moleculares
de la acción
farmacológica,
R. Manning;
K.Véase
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una explicación
Curvas binarias de concentración­respuesta y dosis­respuesta. A . Distribución por frecuencia y curva de concentración­respuesta. Se realizó un
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experimento en 100 sujetos, en los que se determinó la concentración plasmática del fármaco que producíaUNIVERSIDAD
una respuesta binaria
cada individuo,
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en este caso, hipnosis. Se graficó el número de sujetos que respondieron a cada concentración, lo que produjo una distribución de frecuencia
logarítmica­normal (barras de color morado). Cuando se suma la distribución normal por frecuencia, se obtiene la distribución por frecuencia
acumulativa, una curva sigmoidea que es una curva concentración­respuesta (barras rojas, línea roja). B . Curvas binarias de dosis­respuesta. Se
inyectaron a animales varias dosis de un fármaco, luego se identificaron las respuestas y se graficaron. El índice terapéutico, el cociente entre la LD50 y
la ED50, es un indicador de la selectividad de un fármaco para producir los efectos deseados en relación con su letalidad. Véase el texto para obtener
una explicación más amplia.
En estudios preclínicos de los fármacos, la media de la dosis letal (lethal dose, LD50) se determina en animales de experimentación (fig. 3–9B). El índice
LD50/ED50 en animales es una indicación del índice terapéutico en seres humanos, un término que refleja la selectividad del fármaco para producir los
efectos deseados frente a los efectos adversos. Otro término, el intervalo terapéutico, es el rango de concentraciones o dosis de fármaco que tienen
eficacia terapéutica con toxicidad mínima (figs. 2–11 y 3–10). La concentración o dosis de un fármaco necesaria para producir un efecto terapéutico en
la mayor parte de la población casi siempre se superpone en cierta medida con la necesaria para producir toxicidad en parte de la población. Por
tanto, un intervalo terapéutico definido para una población expresa un intervalo de concentraciones o dosis que tienen una elevada probabilidad de
eficacia y baja probabilidad de efectos adversos, pero no garantiza la eficacia ni la seguridad para ningún individuo particular. Por tanto, el uso del
intervalo terapéutico para optimizar la dosis de un fármaco en un paciente determinado debe complementarse con la vigilancia de los efectos del
fármaco mediante marcadores clínicos y sustitutos apropiados.
Figura 3–10
Relación del intervalo terapéutico de las concentraciones farmacológicas con los efectos terapéuticos y adversos en la población. El eje de las
ordenadas es lineal, el de las abscisas es logarítmico. Este intervalo terapéutico particular representa la diferencia en las concentraciones
farmacológicas que inducen una respuesta terapéutica en 50% de los pacientes y efectos adversos en 10%.
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Farmacodinámica antimicrobiana
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Figura 3–10
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Relación del intervalo terapéutico de las concentraciones farmacológicas con los efectos terapéuticos y adversos en la población. El eje de las
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ordenadas es lineal, el de las abscisas es logarítmico. Este intervalo terapéutico particular representa la diferencia en las concentraciones
farmacológicas que inducen una respuesta terapéutica en 50% de los pacientes y efectos adversos en 10%.
Farmacodinámica antimicrobiana
En la farmacología antimicrobiana, las macromoléculas que cubren necesidades metabólicas, replicativas y estructurales distintas a las del
hospedador destacan como objetivos farmacológicos. Estos permiten la toxicidad selectiva (del microorganismo, no del hospedador humano). Un
buen ejemplo es la inhibición de la síntesis de ácido fólico mediante una combinación de una sulfonamida con trimetoprim (cap. 57). Un gran número
de microorganismos deben sintetizar ácido fólico, mientras las células de mamíferos requieren el ácido fólico ya formado que obtienen de la dieta. Las
sulfonamidas bloquean la síntesis del ácido dihidropteroico, un precursor del ácido dihidrofólico, mediante inhibición competitiva de la enzima
dihidropteroato sintasa, cuyo sustrato normal es el ácido para­aminobenzoico. El trimetoprim bloquea la conversión subsiguiente del ácido
dihidrofólico en ácido tetrahidrofólico mediante inhibición competitiva de la DHFR. Aunque esta última conversión es necesaria en las células de los
mamíferos, el trimetoprim tiene una afinidad varios miles de veces mayor por la reductasa microbiana.
Las diferencias entre microorganismos y hospedador explotables en farmacología son abundantes. Entre los numerosos ejemplos adicionales están
la producción del cofactor hem en los plasmodios causantes del paludismo, que constituye la base para las acciones terapéuticas de la artemisinina,
las quinolinas y la cloroquina (cap. 66), los componentes del transporte electrónico de ciertos protozoarios y bacterias que tienen un potencial de
oxidorreducción negativo particular que conduce a la activación del metronidazol (caps. 57 y 67), un conducto de Cl− activado por glutamato
encontrado solo en los invertebrados, que se usa como objetivo farmacológico para las avermectinas (cap. 68); la pared celular bacteriana, cuya
síntesis es el objetivo farmacológico de los β­lactámicos, glucopéptidos y lipopéptidos (cap. 58); la subunidad ribosómica 30S peculiar de las bacterias,
el objetivo farmacológico de los aminoglucósidos y las tetraciclinas (caps. 59 y 60); la subunidad ribosómica 50S, también peculiar de las bacterias, el
objetivo farmacológico del cloranfenicol, macrólidos, lincosamidas y oxazolidinonas (cap. 60); los reordenamientos topológicos únicos del enrollado
del DNA representados por los requerimientos de DNA girasa y topoisomerasa IV, los objetivos farmacológicos de los antibióticos quinolonas (cap. 57);
la composición única de las membranas celulares de los protozoarios, hongos y bacterias, cuyos elementos son el objetivo farmacológico de la
anfotericina B, polimixina, daptomicina e isoniazida (caps. 59, 61 y 65); las formas virales de la timidilato cinasa y la DNA polimerasa, relevantes para las
acciones del aciclovir y ganciclovir (cap. 62), y enzimas y estructuras particulares de la replicación retroviral, objetivo farmacológico de los inhibidores
de fusión, desenrollamiento, transcripción inversa y la liberación y maduración virales (caps. 62, 63 y 64).
MECANISMOS DE ACCIÓN FARMACOLÓGICA MEDIADOS POR UN RECEPTOR
La investigación de los receptores en términos de sus identidades y propiedades ha sido fundamental en el desarrollo de la farmacología como
disciplina. La mayor parte de los fármacos de uso terapéutico se dirige a receptores o a ligandos que los receptores reconocen. Debido a esto y a que
los conductos iónicos activados por voltaje, transportadores y enzimas reciben mayor atención en otros capítulos de este libro o en otras fuentes, el
resto del capítulo se enfocará sobre todo en receptores y en particular en los mecanismos por los cuales los receptores median la acción
farmacológica.
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Aspectos
cuantitativos
las interacciones
con• los
receptores
Unión y ocupación fraccional
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La investigación de los receptores en términos de sus identidades y propiedades ha sido fundamental en el desarrollo de la farmacología como
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disciplina. La mayor parte de los fármacos de uso terapéutico se dirige a receptores o a ligandos que los receptores reconocen. Debido a esto y a que
los conductos iónicos activados por voltaje, transportadores y enzimas reciben mayor atención en otros capítulos de este libro o en otras fuentes, el
resto del capítulo se enfocará sobre todo en receptores y en particular en los mecanismos por los cuales los receptores median la acción
farmacológica.
Aspectos cuantitativos de las interacciones farmacológicas con los receptores
Unión y ocupación fraccional
Las reacciones que describen la interacción de un fármaco o de manera más general el ligando L, con un receptor se ilustran en la ecuación 3–1. La
primera reacción es la formación reversible del complejo ligando­receptor LR. La segunda, dependiendo de la naturaleza del ligando, es la conversión
del complejo en LR*, en la que el receptor asume una conformación capaz de generar una respuesta biológica:
(Ecuación 3–1)
La afinidad del ligando por el receptor, R, ignorando la conversión momentánea en LR*, depende del avance o constante de la tasa de asociación, k+1 y
el inverso o constante de la tasa de disociación, k−1. La concentración de LR en cualquier instante determinado es igual a la tasa de su formación, k+1[L]
[R], menos la tasa de su disociación, k−1[LR]. En equilibrio, donde [LR] no cambia:
(Ecuación 3–2)
El índice entre las constantes de las tasas de disociación y de asociación, k−1/k+1 define lo que se conoce como constante de disociación en equilibrio,
KD. Por tanto, con un ligero reordenamiento de los términos y en equilibrio:
(Ecuación 3–3)
Una KD numéricamente baja significa una elevada afinidad del ligando por el receptor, mientras una KD elevada indica baja afinidad. En la práctica, las
diferencias en las afinidades de compuestos similares muy a menudo reflejan diferencias en las constantes de la tasa de disociación. También hay que
notar que la constante de afinidad o constante de asociación en equilibrio, KA, es el recíproco de la constante de disociación en equilibrio (es decir, KA
= 1/KD).
Dado que la concentración del receptor libre es igual a la del receptor total, Rt, menos el receptor unido con el ligando y asumiendo que la
concentración del fármaco no se altera por la unión con el receptor, la ecuación 3–3 puede reordenarse para describir la ocupación fraccional o f, que
es el índice entre [LR] y [Rt] como función de la concentración del ligando:
(Ecuación 3–4)
La ecuación 3–4 describe una relación hiperbólica (fig. 3–11). En este caso, KD se revela como una “constante de posicionamiento”; es decir, KD es la
concentración del ligando que produce una ocupación media máxima del receptor. Esto se deriva del ajuste de la ocupación fraccional en la ecuación
3–4 en 0.5 (es decir, 50% de ocupación).
Figura 3–11
Ocupación fraccional del receptor. Se presenta la unión de un ligando, expresado como ocupación fraccional, con una población de receptores
homogéneos como función de la concentración de ligando. En este ejemplo, la constante de disociación en equilibrio, KD, es 0.1 μM. La KD, definida
como el índice k−1/k+1, es igual a la concentración de ligando que mantiene una ocupación media máxima; puede verse de manera gráfica como una
constante de posición. Si el ligando tuviera mayor afinidad (es decir, menor KD), la curva se desplazaría a la izquierda. Si el ligando tuviera una menor
afinidad (es decir, mayor KD), la curva se desplazaría a la derecha.
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homogéneos como función de la concentración de ligando. En este ejemplo, la constante de disociación en equilibrio, KD, es 0.1 μM. La KD, definida
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como el índice k /k , es igual a la concentración de ligando que mantiene una ocupación media máxima; puede
verse de manera
como una
−1
+1
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constante de posición. Si el ligando tuviera mayor afinidad (es decir, menor KD), la curva se desplazaría a la izquierda. Si el ligando tuviera una menor
afinidad (es decir, mayor KD), la curva se desplazaría a la derecha.
Aunque la derivación de la ocupación fraccional es correcta para la formación de complejos de L con R y también es apropiada para el
comportamiento de un antagonista para el cual no ocurre transición a LR*, la conversión a LR* en el caso de un agonista resulta en una mayor
ocupación fraccional de lo que predeciría la KD sola. Esto se debe a que existe más ligando unido al receptor del que puede explicar el LR o dicho de
otra manera, la conversión en LR* desplaza el equilibrio a la derecha. Con los GPCR, la unión de LR* con una proteína G para formar el llamado
complejo ternario distorsiona aún más el equilibrio.
Si los receptores unidos con ligando son limitantes respecto a la respuesta medida final en todo el intervalo de ocupación, la KD y la concentración del
fármaco que produce el efecto medio máximo (EC50) serán casi iguales, pese a los efectos de LR* en la unión. Sin embargo, debido a la amplificación
distal, muchos sistemas de señalización pueden alcanzar una respuesta biológica total con solo una fracción de los receptores ocupados. En este
caso, la EC50 se desplaza a la izquierda de la KD y se dice que existe un exceso de receptores o que existen receptores de repuesto.
Cuantificación del antagonismo
Los patrones característicos de antagonismo se relacionan con ciertos mecanismos de bloqueo del receptor. Uno es el antagonismo competitivo
directo, en el que un fármaco con afinidad por un receptor, pero que carece de eficacia intrínseca, compite con el agonista por el sitio ortostérico. El
patrón característico de tal antagonismo es una desviación paralela a la derecha de la curva de concentración­respuesta o dosis­respuesta del
agonista sin cambio en la respuesta máxima (fig. 3–12A). La magnitud del desplazamiento a la derecha depende de la concentración del antagonista y
su afinidad por el receptor (Schild, 1957). Un antagonista competitivo en concentraciones suficientemente altas respecto al agonista puede reducir la
respuesta casi a cero; sin embargo, el antagonismo aún es superable.
Figura 3–12
Mecanismos de antagonismo del receptor. El efecto logrado por un agonista no modulado por un antagonista se muestra en cada panel con la curva
verde. A . El antagonismo competitivo ocurre cuando el agonista A y el antagonista I compiten por el mismo sitio de unión en el receptor. Las curvas de
respuesta para el agonista se desplazan a la derecha en forma dependiente de la concentración del antagonista, de manera que la EC50 para el
agonista aumenta (p. ej., L vs L′, L″ y L′″). B . El antagonismo irreversible ocurre cuando el antagonista forma un enlace covalente con el receptor, en
este ejemplo, en el mismo sitio que el agonista, lo que produce depresión progresiva de la respuesta máxima conforme la concentración del
antagonista aumenta; al principio, el desplazamiento a la derecha en la EC50 sugeriría cierto grado de receptores de repuesto. No es necesario que el
antagonismo ocurra en el sitio ortostérico y en ocasiones el antagonismo en realidad es seudoirreversible, en cuyo caso el antagonista no forma un
enlace covalente, pero se disocia con mucha lentitud.
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
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este ejemplo, en el mismo sitio que el agonista, lo que produce depresión progresiva de la respuesta máxima conforme la concentración del
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antagonista aumenta; al principio, el desplazamiento a la derecha en la EC50 sugeriría cierto grado de receptores de repuesto. No es necesario que el
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antagonismo ocurra en el sitio ortostérico y en ocasiones el antagonismo en realidad es seudoirreversible, en cuyo caso el antagonista no forma un
enlace covalente, pero se disocia con mucha lentitud.
Otros mecanismos de bloqueo del receptor son el antagonismo seudoirreversible y el antagonismo irreversible, en los que una vez que el antagonista
se une al receptor, ya sea por mecanismos no covalentes o covalentes, respectivamente, se disocia con mucha lentitud o no se disocia. Ambos tipos de
antagonistas producirán el patrón de antagonismo mostrado en la figura 3–12B. Las formas seudoirreversible e irreversible de antagonismo no son
superables.
La mayor parte de los antagonistas ortostéricos del receptor son de tipo competitivo. Podrían escribirse expresiones matemáticas de la ocupación
fraccional del receptor por un agonista, f y por el agonista en presencia de un antagonista competitivo, f+I.
Para el agonista solo, la ocupación fraccional se obtiene de la ecuación 3–4 desarrollada antes:
Para el agonista más el antagonista, deben considerarse primero dos equilibrios. El primero es el equilibrio ya descrito entre el agonista, L y el
receptor, R y se resume aquí como la ecuación 3–5.
(Ecuación 3–5)
El segundo es el equilibrio entre el antagonista, definido como el inhibidor I y R.
(Ecuación 3–6)
La ocupación fraccional por el agonista L en presencia de I se define como:
(Ecuación 3–7)
La concentración de agonista necesaria para alcanzar una ocupación fraccional designada en presencia del antagonista, [L′] será mayor que la
concentración del agonista necesaria para alcanzar la misma ocupación fraccional en ausencia del inhibidor [L]. Usando las ecuaciones 3–5 y 3–6 y
aplicando ciertos arreglos algebraicos al lado derecho de la ecuación 3–7, la ocupación fraccional en presencia del inhibidor competitivo, f+I, puede
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expresarse en
de L′, KD, Kmecanismos
CAPÍTULO
3: términos
Farmacodinámica:
moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
i e I:
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(Ecuación 3–7)
La concentración de agonista necesaria para alcanzar una ocupación fraccional designada en presencia del antagonista, [L′] será mayor que la
concentración del agonista necesaria para alcanzar la misma ocupación fraccional en ausencia del inhibidor [L]. Usando las ecuaciones 3–5 y 3–6 y
aplicando ciertos arreglos algebraicos al lado derecho de la ecuación 3–7, la ocupación fraccional en presencia del inhibidor competitivo, f+I, puede
expresarse en términos de L′, KD, Ki e I:
(Ecuación 3–8)
Si se asume que se obtienen respuestas iguales de ocupaciones fraccionales del receptor iguales tanto en ausencia como en presencia de un
antagonista, puede establecerse que las ocupaciones fraccionales igualan a las concentraciones del agonista determinadas por medios
experimentales ([L] y [L′]) que generan respuestas equivalentes, como se muestra en la figura 3–12A. Por tanto,
(Ecuación 3–9)
(Ecuación 3–10)
Al simplificar se obtiene
(Ecuación 3–11)
en la que todos los valores se conocen, salvo el de Ki. Por consiguiente, puede obtenerse la Ki para un antagonista competitivo reversible sin conocer
la KD para el agonista y sin necesidad de definir la relación precisa entre el receptor y la respuesta.
Modulación alostérica de la función del receptor
Algunos fármacos interactúan con receptores por mecanismos alostéricos, en los cuales la unión del fármaco en un sitio diferente al sitio ortostérico
puede alterar la afinidad del receptor por el agonista ortostérico y también puede alterar la capacidad del agonista ortostérico para inducir o
estabilizar los cambios conformacionales equivalentes a la activación. A estos fármacos se les denomina moduladores alostéricos. Algunos patrones
de modulación alostérica se presentan en la figura 3–13. El cinacalcet es un modulador alostérico positivo (PAM, positive allosteric modulator) que
intensifica las acciones del Ca2+ en el receptor sensible al calcio (cap. 52). Las benzodiacepinas y los barbitúricos también son PAM; potencian las
acciones del ácido γ­aminobutírico (GABA, γ­aminobutyric acid) en el receptor GABAA (fig. 16–11 y cap. 22). El maraviroc es un modulador alostérico
negativo (NAM, negative allosteric modulator) que bloquea la unión de la proteína gp120 de la envoltura exterior de HIV con el receptor para
quimiocina CCR5 y, por tanto, impide la fusión y entrada de HIV a los macrófagos y los linfocitos T CD4+ (fig. 64–7). El ticagrelor y el cangrelor también
son NAM; bloquean las acciones de la unión del ADP con el sitio ortostérico en los receptores plaquetarios P2Y12 (cap. 36). La modulación alostérica no
está limitada a los receptores. Los moduladores alostéricos también pueden actuar en conductos iónicos activados por voltaje, incluidos los
conductos de Ca2+ tipo L y tipo T. Por ejemplo, la dihidropiridina antagonista de los conductos de Ca2+ amlodipino modula de manera alostérica la
unión de diltiazem y Ca2+ al poro del conducto de Ca2+ tipo L al hacer que el conducto simule la conformación del estado inactivo. Hay que señalar que
el diltiazem puede ejercer un bloqueo directo y también modulación alostérica de la unión del Ca2+ en el poro del conducto (Tang et al., 2019).
Figura 3–13
Modulación alostérica. A . Curvas de concentración­respuesta para un agonista ortostérico en ausencia y presencia de dos moduladores alostéricos
positivos (PAM). Para mayor claridad, se asume la ocupación máxima de la población de receptores por los PAM. El PAM X desplaza la EC50 del agonista
a la izquierda (es decir, aumenta la potencia del agonista), mientras el PAM Y aumenta la Emax para el agonista (incrementa la eficacia). Nótese que
ninguno de los moduladores tiene efecto alguno en ausencia del agonista, lo que implica que no son agonistas alostéricos. B . Curvas de
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concentración­respuesta
para un agonista
ortostérico
en ausencia
presencia
de concentraciones
de un modulador
alostérico
negativo
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica:
mecanismos
moleculares
de la yacción
farmacológica,
David R.ascendentes
Manning; Donald
K. Blumenthal
(NAM). En
este caso,
tieneReserved.
un efecto negativo
la EC
, reduciendo
potencia y la eficacia.
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50 y la Emax
Figura 3–13
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Modulación alostérica. A . Curvas de concentración­respuesta para un agonista ortostérico en ausencia y presencia
de dos moduladores alostéricos
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positivos (PAM). Para mayor claridad, se asume la ocupación máxima de la población de receptores por los PAM. El PAM X desplaza la EC50 del agonista
a la izquierda (es decir, aumenta la potencia del agonista), mientras el PAM Y aumenta la Emax para el agonista (incrementa la eficacia). Nótese que
ninguno de los moduladores tiene efecto alguno en ausencia del agonista, lo que implica que no son agonistas alostéricos. B . Curvas de
concentración­respuesta para un agonista ortostérico en ausencia y presencia de concentraciones ascendentes de un modulador alostérico negativo
(NAM). En este caso, el NAM tiene un efecto negativo en la EC50 y la Emax, reduciendo la potencia y la eficacia.
A pesar del pequeño número de moduladores alostéricos reconocidos hasta ahora, se realizan grandes esfuerzos para el desarrollo de aquellos que
distinguen los subtipos de receptor en los cuales los sitios ortostéricos están muy conservados, como se explica en el capítulo 1 (véase Unión proteína­
fármaco: afinidad y alosterismo) y en el capítulo 11 la información sobre los receptores muscarínicos. Ya que numerosos moduladores alostéricos
positivos no tienen actividad por sí mismos, sino que condicionan al receptor a la activación por el agonista endógeno, tienen la ventaja de conservar
el patrón espacial y temporal de la activación del receptor cuando están presentes (Foster y Conn, 2017).
Clases de receptores relevantes para las acciones farmacológicas
Los receptores celulares relevantes para el tratamiento incluyen los GPCR, conductos iónicos activados por ligando, receptores vinculados con
enzimas (catalíticos), otros receptores de la membrana superficial y los receptores nucleares (cuadro 3–1).
CUADRO 3–1
RECEPTORES CELULARES RELEVANTES PARA LA TERAPÉUTICA
CLASES
SUBCLASES O
FAMILIAS
LIGANDOS FISIOLÓGICOS
TRANSDUCTORES, EFECTOS PRINCIPALES O IONES
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Receptores
acoplados 2:3 PAdhesión
Numerosos factores endocrinos y
Proteínas G
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mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
con proteína G (GPCR)a
Frizzled
paracrinos, pero también otros tipos
Gs: adenilil ciclasas (estimulación)
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Glutamato
Rodopsina
de ligandos
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Gi: adenilil ciclasas (inhibición), conducto de K+ rectificador
tardío (estimulación), conducto de Ca2+ tipo N activado por
RECEPTORES CELULARES RELEVANTES PARA LA TERAPÉUTICA
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CLASES
SUBCLASES O
FAMILIAS
LIGANDOS FISIOLÓGICOS
TRANSDUCTORES, EFECTOS PRINCIPALES O IONES
Proteínas G
Receptores acoplados
Adhesión
Numerosos factores endocrinos y
con proteína G (GPCR)a
Frizzled
paracrinos, pero también otros tipos
Gs: adenilil ciclasas (estimulación)
Glutamato
de ligandos
Gi: adenilil ciclasas (inhibición), conducto de K+ rectificador
Rodopsina
tardío (estimulación), conducto de Ca2+ tipo N activado por
Secretina
voltaje (inhibición)
Gq: fosfolipasa C­β (estimulación)
G12/13: Rho GEF (estimulación)
Arrestinas: MAP cinasas, tirosina cinasas no receptoras, factores
de transcripción
Conductos iónicos
Glutaminérgico
Glutamato
activados por ligandob
Na+ y K+ principalmente, pero también Ca2+ en ciertas
circunstancias
Colinérgico
ACh
Na+, K+, Ca2+
P2X
ATP
Na+, K+, Ca2+
5­HT3
5­HT3
Na+, K+, Ca2+
TRP
Muchos ligandos
Na+, Ca2+, Mg2+
GABAA
GABA
Cl−
Glicina
Glicina
Cl−
Receptores vinculados
Receptores de
Insulina, PDGF, EGF, VEGF, factores
Proteínas con SH2 y dominios PTB
con enzima (catalíticos)
tirosina cinasa
de crecimientod
Receptores de
Familia TGF­β
SMAD
Péptidos natriuréticos
GMP cíclico
JAK/STAT, tirosina cinasas solubles
nicotínico
serina cinasa
GC unido con
membrana
Otros receptores de la
Receptores de
Interleucinas y otras citocinas,
membrana superficial
citocinas
hormona del crecimiento, prolactina
Receptores
PAMP
TIRAP, TRAM
TNF­α
TRADD, RIP­1, TRAF2
Receptores de
Corticoesteroides, hormonas
Coactivadores
esteroides
sexuales
de la célula
semejantes a toll
Receptores para
TNFα
Receptores nuclearesc
(subfamilia 3)
Receptores no
Tiroxina, ácido retinoico,
Coactivadores, correpresores
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hidroxicolesteroles, ácidos biliares,
CAPÍTULO 3: Farmacodinámica:
mecanismos
(subfamilias
1, 2, 4– moleculares
vitamina Dde la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
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6)
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Receptores nuclearesc
Receptores de
Corticoesteroides, hormonas
esteroides
sexuales
Coactivadores
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(subfamilia 3)
Receptores no
Tiroxina, ácido retinoico,
esteroides
hidroxicolesteroles, ácidos biliares,
(subfamilias 1, 2, 4–
vitamina D
Coactivadores, correpresores
6)
SMAD, una concatenación de SMA (fenotipo de gusano pequeño de C. elegans) y MAD (Mothers Against Decapentaplegic en Drosophila); TIRAP, proteína adaptadora
que contiene dominio para receptor de interleucina 1­toll; TRADD, dominio de muerte relacionada con el receptor para TNF; TRAF2, factor 2 relacionado con el
receptor para TNF; TRAM, molécula adaptadora relacionada con TRIF, en la que TRIF es interferón β inductor de adaptador que contiene el dominio TIR y TIR es el
receptor para interleucina 1­toll.
aLas familias de GPCR se enumeran según el sistema GRAFS (Fredriksson et al., 2003), que se basa en análisis filogenéticos del genoma humano; existen otros
sistemas de clasificación. Es importante señalar que cada familia de GPCR contiene un gran número de receptores que responden a agonistas y se comunican con
transductores distintos al nombre de la familia. Véase la figura 3–14 y su pie de figura.
b Los receptores glutaminérgicos incluyen los receptores AMPA, de cainato y NMDA. Existen numerosas permutaciones de cada uno de estos subtipos y de otras
subclases de conductos iónicos activados por ligando debido a la diversidad de combinaciones en la composición de subunidades. Los conductos iónicos activados
por ligandos internos no se enumeran con fines de brevedad, pero se describen en el texto.
cEn general, los receptores nucleares se agrupan en seis subfamilias. El cuadro agrupa las subfamilias en dos clases principales: los receptores de esteroides y
receptores de no esteroides, igual que lo hace la IUPHAR/BPS Guide to Pharmacology, disponible en: https://www.guidetopharmacology.org/.
dLa lista incluye solo una selección de los muchos agonistas diferentes.
La activación de los receptores por agonistas desencadena diversos fenómenos subcelulares proximales. Uno de estos conjuntos de fenómenos,
iniciado sobre todo por los GPCR a través de las proteínas G como transductores, es la generación o movilización de segundos mensajeros. Los
segundos mensajeros son pequeñas moléculas intracelulares y a veces interdependientes que incluyen los nucleótidos cíclicos AMP cíclico y GMP
cíclico, NO, trifosfato de inositol (IP3), diacilglicerol (DAG) y Ca2+. Los GPCR y de manera más directa conductos iónicos activados por ligando, también
inician cambios en la permeabilidad de la membrana para uno o más iones, en particular Na+, K+, Ca2+ y Cl−. Los cambios en la permeabilidad generan
modificaciones en el potencial eléctrico a través de la membrana celular y, por tanto, en el grado de excitabilidad de la célula. Otras acciones son
atribuibles a los receptores que tienen actividad enzimática intrínseca, como las tirosina cinasas receptoras. La fosforilación de la tirosina favorece la
interacción estable de las proteínas fosforiladas, incluidos los receptores mismos por autofosforilación, con proteínas que contienen homología 2 de
Src (SH2) y dominios para unión con fosfotirosina (PTB, phosphotyrosine­binding); los cambios en la conformación de las proteínas interactuantes y
el propio proceso de andamiaje propagan la señal interna. Los receptores sin actividad enzimática intrínseca también pueden lograr interacciones
estables con proteínas mediante cambios conformacionales autoinducidos o inducidos por la fosforilación mediante proteína cinasas distintas al
receptor. Esto es lo que ocurre con las citocinas y los receptores tipo toll en su interacción con proteínas adaptadoras, con los receptores nucleares
con coactivadores y correpresores y con los GPCR con las arrestinas. Otro mecanismo importante para la actividad del receptor es la transcripción.
Aunque todos los fenómenos mencionados pueden influir en la transcripción, los receptores hormonales nucleares interactúan en forma directa con
elementos reguladores de la transcripción.
Se tiende a pensar en un receptor activado como uno que induce una sola cadena lineal de fenómenos. Esto es cierto en algunos casos, pero casi
siempre es más realista visualizar los fenómenos en vías múltiples y ramificadas. Muchos GPCR interactúan con dos o más proteínas G que tienen
diferentes acciones distales y con transductores distintos de las proteínas G, como las arrestinas. Las señales de múltiples vías con frecuencia se
integran dentro de la célula que responde y existe abundante comunicación cruzada entre múltiples vías de señalización. Por ejemplo, las vías que
emplean el AMP cíclico y Ca2+ están integradas en la mayor parte de los tejidos excitables, mientras la concentración de AMP cíclico es controlada por
los GPCR y la del Ca2+ intracelular por conductos iónicos activados por ligando o por voltaje o por otros GPCR. En los miocitos cardiacos, la activación
de la vía receptor β1­Gs­adenilil ciclasa (AC)­AMP cíclico­PKA intensifica la contractilidad cardiaca mediante el incremento en la entrada vía de Ca2+ a
través de conductos de Ca2+ activados por voltaje y movilización de Ca2+ desde las reservas intracelulares a través del receptor para rianodina; por lo
tanto, tanto el AMP cíclico como el Ca2+ son señales positivas para la contracción en los miocitos cardiacos. Por el contrario, las células de músculo liso
integran estas señales de manera diferente: en el músculo liso, el Ca2+ es una señal contráctil, pero un aumento del AMP cíclico induce relajación a
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través de la fosforilación
proteínas
la señalización del Ca2+, como la cinasa de la cadena ligera de la miosina (MLCK, myosin light chain
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
kinase
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Señalización transmembrana por GPCR y proteínas G
los GPCR y la del Ca2+ intracelular por conductos iónicos activados por ligando o por voltaje o por otros GPCR. En los miocitos cardiacos, la activación
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de la vía receptor β1­Gs­adenilil ciclasa (AC)­AMP cíclico­PKA intensifica la contractilidad cardiaca mediante el incremento en la entrada vía de Ca2+ a
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través de conductos de Ca2+ activados por voltaje y movilización de Ca2+ desde las reservas intracelulares a través del receptor para rianodina; por lo
tanto, tanto el AMP cíclico como el Ca2+ son señales positivas para la contracción en los miocitos cardiacos. Por el contrario, las células de músculo liso
integran estas señales de manera diferente: en el músculo liso, el Ca2+ es una señal contráctil, pero un aumento del AMP cíclico induce relajación a
través de la fosforilación de proteínas que median la señalización del Ca2+, como la cinasa de la cadena ligera de la miosina (MLCK, myosin light chain
kinase).
Señalización transmembrana por GPCR y proteínas G
En términos generales, los agonistas en la superficie celular interactúan con los GPCR que se acoplan con las proteínas G en la hoja interna de la
membrana, que a su vez interactúan con efectores en situación similar o presentes en el citosol. A continuación se consideran estos elementos
individuales de la señalización transmembrana. El estudio de la señalización a través de los GPCR y las proteínas G ha sido reconocido con varios
premios Nobel (recuadro 3–2).
RECUADRO 3–2. Terreno fértil
Las investigaciones sobre la señalización celular mediante GPCR, proteínas G y nucleótidos cíclicos han obtenido varios premios Nobel en fisiología
o medicina y en química. Los trabajos iniciales sobre la señalización celular incluyeron los relacionados con la regulación del metabolismo del
glucógeno, a partir de los logros de Gerty y Carl Cori, quienes compartieron el Premio Nobel de Fisiología o Medicina de 1947 “por su
descubrimiento del trayecto de la conversión catalítica del glucógeno”. Earl Sutherland, quien descubrió el AMP cíclico, ganó el Premio Nobel de
Fisiología o Medicina de 1972 “por sus descubrimientos referentes a los mecanismos de acción de las hormonas”. En 1992, Edmond Fischer y Edwin
Krebs ganaron “por sus descubrimientos concernientes a la fosforilación reversible de las proteínas como mecanismo regulatorio biológico”. Dos
años más tarde, Alfred Goodman Gilman y Martin Rodbell ganaron “por su descubrimiento de las proteínas G y el papel de estas proteínas en la
transducción de señales en las células”. Tres farmacólogos, Robert Furchgott, Louis Ignarro y Ferid Murad, compartieron el Premio Nobel de
Fisiología o Medicina de 1998 “por sus descubrimientos referentes al óxido nítrico como molécula de señalización en el aparato cardiovascular” y
en 2000, Arvid Carlsson, Paul Greengard y Eric Kandel compartieron el galardón “por sus descubrimientos referentes a la transducción de señales
en el sistema nervioso”. En 2012, Robert Lefkowitz y Brian Kobilka ganaron el Premio Nobel de Química “por sus estudios de los receptores
acoplados con la proteína G”. En verdad es un campo de estudio fértil.
Receptores acoplados con proteína G
Los GPCR son una gran familia de receptores (fig. 3–14) que tienen siete hélices α transmembrana. De los más de 800 GPCR expresados por el genoma
humano, cerca de 130 son objetivos de fármacos terapéuticos, ya sean agonistas o antagonistas (Sriram e Insel, 2018). El resto incluyen receptores
“huérfanos” (alrededor de 130) a los que aún no se adjudican ligandos endógenos y funciones; receptores sensores (alrededor de 420), la mayor parte
de los cuales es de tipo olfatorio, aunque también es probable que tengan otras funciones, y receptores aún no estudiados. Los GPCR suelen situarse
en la membrana de la superficie celular, aunque no siempre es así. Reconocen un gran número de factores endocrinos y paracrinos, así como
estímulos visuales, olfatorios y gustativos. Los GPCR usan proteínas G, arrestinas o ambos como transductores en la cara citoplásmica de la
membrana. Muchas células contienen varias docenas de GPCR diferentes y de cientos a miles de copias de cada uno. La variedad, accesibilidad,
especificidad, distribución y relevancia de los GPCR para la enfermedad los hacen objetivos farmacológicos importantes.
Figura 3–14
La superfamilia de GPCR humanos. Los GPCR humanos son el objetivo farmacológico de cerca de 30% de los fármacos comercializados. Este
dendrograma, elaborado usando las similitudes de secuencia dentro de la región de siete dominios transmembrana, identifica los GPCR por sus
nombres en la base de datos UniProt. Existen más de 825 GPCR humanos, que pueden subdividirse en grupos codificados por color nombrados por
las letras mayúsculas en el borde externo del dendrograma (el número de miembros del grupo está entre paréntesis). Estos grupos pueden
subdividirse además con base en su similitud de secuencia. La gran clase Rodopsina se subdivide en cuatro grupos amplios: α, β, δ y γ. Los receptores
olfatorios constituyen la fracción más grande de la clase Rodopsina de los GPCR, con 422 miembros. Los receptores en el dendrograma que los
lectores encontrarán con frecuencia incluyen AA2AR, receptor para adenosina A2A; ACM3, receptor muscarínico para acetilcolina M3; ADRB1, receptor
adrenérgico β1; AGTR1, receptor para angiotensina AT1; CNR1, receptor cannabinoide CB1; CXCR4, receptor para quimiocina CXC4; DRD2, receptor
dopamina D2; EDNRA, receptor para endotelina ETA; FPR1, receptor f­Met­Leu­Phe; GCGR, receptor para glucagón; GRM1, mGluR1 receptor
metabotrópico para glutamato; HRH1, receptor para histamina H1; 5HT2B, el receptor para serotonina 5HT2B; OPRM, receptor opioide μ; RHO,
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rodopsina; SMO,
homólogo suavizado;
S1PR1, receptor
para esfingosina­1­fosfato
S1P1, también
conocido
como
EDG1K.
; TSHR,
receptor para
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CAPÍTULO
3: Farmacodinámica:
mecanismos
moleculares
de la acción farmacológica,
David R.
Manning;
Donald
Blumenthal
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tirotropina (TSH); y VIPR1, receptor para péptido intestinal vasoactivo V . Los detalles de los datos en el dendrograma están disponibles en la GPCR
1
Network (http://gpcr.usc.edu). Existe información adicional sobre los GPCR en la IUPHAR/BPS Guide to Pharmacology
olfatorios constituyen la fracción más grande de la clase Rodopsina de los GPCR, con 422 miembros. Los receptores en el dendrograma que los
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lectores encontrarán con frecuencia incluyen AA2AR, receptor para adenosina A2A; ACM3, receptor muscarínico para acetilcolina M3; ADRB1, receptor
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adrenérgico β1; AGTR1, receptor para angiotensina AT1; CNR1, receptor cannabinoide CB1; CXCR4, receptor para quimiocina CXC4; DRD2, receptor
dopamina D2; EDNRA, receptor para endotelina ETA; FPR1, receptor f­Met­Leu­Phe; GCGR, receptor para glucagón; GRM1, mGluR1 receptor
metabotrópico para glutamato; HRH1, receptor para histamina H1; 5HT2B, el receptor para serotonina 5HT2B; OPRM, receptor opioide μ; RHO,
rodopsina; SMO, homólogo suavizado; S1PR1, receptor para esfingosina­1­fosfato S1P1, también conocido como EDG1; TSHR, receptor para
tirotropina (TSH); y VIPR1, receptor para péptido intestinal vasoactivo V1. Los detalles de los datos en el dendrograma están disponibles en la GPCR
Network (http://gpcr.usc.edu). Existe información adicional sobre los GPCR en la IUPHAR/BPS Guide to Pharmacology
(http://www.guidetopharmacology.org). (Reproducida con autorización de Angela Walker, Vsevolod Katrich, and Raymond Stevens of the GPCR
Network at the University of Southern California, como se elaboró Yekaterina Kadyshevskaya para el laboratorio Stevens.)
Subtipos de GPCR
Con frecuencia, un agonista endógeno (p. ej., un factor endocrino o paracrino) es reconocido por dos o más GPCR. Estos receptores son definidos
como subtipos de receptor. Por ejemplo, la acetilcolina es reconocida por cinco subtipos de receptores muscarínicos (M), del M1 al M5; la histamina,
por cuatro subtipos de receptor, H1 a H4; la 5­hidroxitriptamina (5HT) o serotonina, por al menos 10 subtipos, etc. En realidad, la existencia de subtipos
de receptores es más la regla que la excepción. En un principio identificados mediante estudios de unión con ligandos endógenos y sintéticos, el
número ha aumentado mediante análisis genómicos.
Aunque los subtipos de receptor reconocen un agonista endógeno determinado, pueden diferir entre ellos en varios aspectos importantes. En primer
lugar, los subtipos a menudo presentan diferencias en su afinidad por los ligandos endógenos o sintéticos (los subtipos pueden distinguirse por
medios farmacológicos). En segundo lugar, los subtipos pueden tener una distribución diferente entre las células o tejidos y la distribución de un solo
subtipo puede ser más bien restringida. Por lo tanto, la acción de un fármaco en un subtipo determinado puede disminuir la aparición de efectos
adversos. Los subtipos del receptor adrenérgico β son un buen ejemplo. Los agonistas del receptor adrenérgico β2 como la terbutalina se usan para
inducir broncodilatación en el tratamiento del asma con la esperanza de reducir los efectos colaterales cardiacos causados por la estimulación del
receptor adrenérgico cardiaco β1 (cap. 14). Por el contrario, el uso de agonistas selectivos del receptor β1 en pacientes tratados por hipertensión o
angina (caps. 14, 31 y 32) disminuye la probabilidad de broncoconstricción.
Los subtipos de receptor también pueden diferir respecto a las proteínas G (u otros transductores) con los que interactúan. Por ejemplo, los
2+
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receptores muscarínicos
1, M3 y M5 se acoplan con la proteína G Gq, con aumentos consecuentes en el Ca intracelular; los receptores M2 y M4 se
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acoplan
con Gi y reducen
la actividad
de la adenilil
que disminuye
acumulación
intracelular de AMP cíclico) y en diversas células excitables
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activan los conductos de K+ rectificadores de entrada e inhiben los conductos de Ca2+ activados por voltaje.
adversos. Los subtipos del receptor adrenérgico β son un buen ejemplo. Los agonistas del receptor adrenérgico β2 como la terbutalina se usan para
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inducir broncodilatación en el tratamiento del asma con la esperanza de reducir los efectos colaterales cardiacos
causados por
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receptor adrenérgico cardiaco β1 (cap. 14). Por el contrario, el uso de agonistas selectivos del receptor β1 enAccess
pacientes
tratados por hipertensión o
angina (caps. 14, 31 y 32) disminuye la probabilidad de broncoconstricción.
Los subtipos de receptor también pueden diferir respecto a las proteínas G (u otros transductores) con los que interactúan. Por ejemplo, los
receptores muscarínicos M1, M3 y M5 se acoplan con la proteína G Gq, con aumentos consecuentes en el Ca2+ intracelular; los receptores M2 y M4 se
acoplan con Gi y reducen la actividad de la adenilil ciclasa (lo que disminuye la acumulación intracelular de AMP cíclico) y en diversas células excitables
activan los conductos de K+ rectificadores de entrada e inhiben los conductos de Ca2+ activados por voltaje.
Proteínas G
Los GPCR se acoplan con las proteínas heterotriméricas reguladoras de unión con GTP o proteínas G. Al activarse por los GPCR ocupados con un
agonista, las proteínas G activan o inhiben diversas enzimas y conductos iónicos; por tanto, las proteínas G son transductores en el proceso de
transducción transmembrana de señales. La estructura de una proteína G es la de un heterotrímero con subunidades α, β y γ (fig. 3–15). Con base en
las similitudes de la estructura primaria entre las subunidades α (Strathmann y Simon, 1991), las proteínas G se clasifican en cuatro familias (cuadro 3–
2): las familias Gs, Gi (a veces Gi/o), Gq y G12 (en ocasiones G12/13). Cada una tiene de dos a 10 miembros que realizan actividades con mayor o menor
frecuencia, según las propiedades diferenciales de los tipos celulares respectivos. Toda célula del cuerpo contiene uno o más miembros de cada
familia. Un GPCR determinado puede acoplarse con proteínas G de una o dos familias y en algunos casos con más.
Figura 3–15
La vía básica GPCR­proteína G­efector. En general, se cree que el GPCR y el heterotrímero de proteína G, en ausencia de un ligando activador (“Basal”),
forman un complejo en la membrana superficial de la célula, en la que GDP se une con la subunidad Gα. Después de la unión de un ligando activador
“L” con el receptor, el receptor y la subunidad α de la proteína G experimentan un cambio conformacional que conduce al intercambio de GDP por
GTP y la disociación de ambos complejos y la proteína G en la Gα monomérica y subunidades heterodiméricas Gβγ. La subunidad Gα unida con GTP y
el dímero Gβγ se unen y regulan a los efectores, de manera individual o en coordinación. El sistema regresa al estado basal con la hidrólisis de GTP
mediante la subunidad α, una reacción que puede intensificarse en gran medida mediante el regulador de proteínas de señalización de proteína G
(RGS, regulator of G­protein signaling). Las descripciones detalladas de estas vías de señalización se incluyen en todo el texto en relación con las
acciones terapéuticas de los fármacos que influyen en ellas. La interacción física entre el GPCR inactivo y la proteína G se ha postulado en el modelo de
complejo ternario, pero no se ha demostrado de manera explícita en ningún caso, salvo en varios GPCR y proteínas G. El dímero βγ está fijado a la
membrana mediante una modificación geranilgeranilo. No se muestran las modificaciones lipídicas para la mayor parte de las subunidades α, en
particular la palmitoilación y la miristoilación.
CUADRO 3–2
FAMILIAS DE PROTEÍNAS G HETEROTRIMÉRICAS
FAMILIA
SUBUNIDADES α
Gs
αs (formas corta y larga)
αolf
Gi (o Gi/o2023­12­21
)
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αt1, αt2
αg
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CUADRO 3–2
FAMILIAS DE PROTEÍNAS G HETEROTRIMÉRICAS
FAMILIA
SUBUNIDADES α
Gs
αs (formas corta y larga)
αolf
Gi (o Gi/o)
αi1, αi2, αi3
αoA, αoB
αt1, αt2
αg
αz
Gq
αq
α11, α14, α15, α16
G12 (o G12/13)
α12, α13
Las proteínas G que sirven como transductores de los GPCR son heterotrímeros αβγ. Existen muchos subtipos de subunidades α, β y γ, pero una proteína G casi
siempre se define por su subunidad α. Por ejemplo, la proteína G que contiene la subunidad α11 es G11. Con base en la homología estructural primaria entre las
subunidades α, las proteínas G se clasifican en cuatro familias.
Respecto al fenómeno de transducción, un GPCR activado por agonista induce el intercambio de GDP por GTP en la subunidad α del heterotrímero de
proteína G, lo que ocasiona la disociación de la subunidad α del heterodímero βγ. Las acciones de la proteína G en un objetivo enzimático o conducto
iónico se logran a través de la subunidad monomérica α sola, el heterodímero βγ solo y, en ocasiones, a través de ambas actuando en forma
coordinada. La inversión de la proteína G activada a una configuración heterotrimérica se produce con la hidrólisis del GTP mediante la subunidad α y
por la recombinación de esta subunidad con el heterodímero βγ.
La activación de miembros de la familia Gs por lo general equivale a la activación de adenilil ciclasa y un aumento en el AMP cíclico celular. La activación
de miembros de la familia Gi se relaciona con la inhibición de adenilil ciclasa y la activación de los conductos de K+ rectificadores de entrada y la
inhibición de los conductos de Ca2+ activados por voltaje. La transducina, un miembro de la familia Gi, se acopla con la rodopsina en los segmentos
externos de la retina y con los conos y activa una fosfodiesterasa selectiva para el GMP cíclico (fig. 74–9). La activación de miembros de la familia Gq
conduce a la activación de la fosfolipasa C­β y a la consecuente liberación de DAG y IP3. El DAG y el IP3 inician diversos efectos subsiguientes: el IP3
moviliza el Ca2+ de las reservas intracelulares, lo que activa múltiples fenómenos dependientes del Ca2+; el Ca2+ y el DAG son cofactores esenciales en la
activación de la PKC. Los dos miembros de la familia G12, G12 y G13, activan la proteína G monomérica RhoA a través de factores de intercambio de
nucleótidos de guanina selectivos para RhoA (GEF, guanine nucleotide exchange factors). Sin embargo, las proteínas G de la familia G12 y las de todas
las demás familias de la proteína G tienen un número de objetivos farmacológicos mucho mayor a los aquí mencionados.
Desensibilización mediada por GRK y arrestina
Los GPCR están sujetos a varias formas de desensibilización después de la exposición a agonistas. Una de las mejor caracterizadas es una
desensibilización homóloga iniciada por la fosforilación del receptor activado por una o más cinasas del GPCR específico (GRK, GPCR­specific kinases)
(fig. 3–16) (DeWire et al., 2007). La fosforilación ocurre en residuos específicos de serina o treonina en la parte citosólica del receptor, a menudo en el
extremo carboxilo terminal. La especificidad por la fosforilación del receptor activado depende de la conformación del receptor y, para algunas GRK,
de la atracción de la GRK a la membrana celular interior mediante subunidades βγ heterodiméricas liberadas con la activación de las proteínas G.
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CAPÍTULO
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Figura 3–16
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Acciones duales de la arrestina. En un principio, las arrestinas fueron clasificadas en el contexto de la desensibilización del receptor relacionada con la
señalización por proteína G. La activación de una arrestina requiere fosforilación del GPCR mediante una GRK. La atracción y en especial la unión de la
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Los GPCR están sujetos a varias formas de desensibilización después de la exposición a agonistas. Una de las
mejor caracterizadas
una
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desensibilización homóloga iniciada por la fosforilación del receptor activado por una o más cinasas del GPCR específico (GRK, GPCR­specific kinases)
(fig. 3–16) (DeWire et al., 2007). La fosforilación ocurre en residuos específicos de serina o treonina en la parte citosólica del receptor, a menudo en el
extremo carboxilo terminal. La especificidad por la fosforilación del receptor activado depende de la conformación del receptor y, para algunas GRK,
de la atracción de la GRK a la membrana celular interior mediante subunidades βγ heterodiméricas liberadas con la activación de las proteínas G.
Figura 3–16
Acciones duales de la arrestina. En un principio, las arrestinas fueron clasificadas en el contexto de la desensibilización del receptor relacionada con la
señalización por proteína G. La activación de una arrestina requiere fosforilación del GPCR mediante una GRK. La atracción y en especial la unión de la
arrestina con el “centro” del GPCR dificulta por medios estéricos la activación ulterior de la proteína G. La activación también induce un cambio en la
conformación de la arrestina que equivale a la funcionalidad de un adaptador, a la activación franca de intermediarios de señalización o a ambos y por
lo tanto, la señalización subsiguiente. Lo que se manifiesta es que la señalización lograda por la activación de proteínas G al inicio se integra con la
señalización producida más tarde por la arrestina. Los aspectos temporal y subcelular (p. ej., endosómico) de la señalización no se muestran en esta
figura, pero se explican en el texto. Adaptada a partir de Lefkowitz y Shenoy (2005).
La fosforilación del receptor conduce a la activación de arrestinas. Entre las diversas arrestinas, la β1 y β2 tienen una expresión amplia. La arrestina
atraída se une de manera conjunta con la fosforilación del extremo carboxilo terminal y las porciones expuestas del centro transmembrana del GPCR
activado. Esta interacción de arrestina con el GPCR interrumpe la interacción del receptor con la proteína G, con lo que termina la señalización de la
proteína G. La arrestina atraída también se une con elementos citoesqueléticos, lo que favorece la interiorización del receptor para su reciclaje a la
membrana o su destrucción lisosómica. Algunos GPCR, designados receptores de clase A, interactúan solo de manera transitoria con las arrestinas
(DeWire et al., 2007). Otros, designados receptores clase B, interactúan de manera estable. Una interacción estable se relaciona con una menor tasa de
reciclaje hacia la superficie celular.
Arrestinas como transductores
Un hecho muy importante es que aunque las arrestinas tienen la capacidad de desplazar las proteínas G de los GPCR, sirven como transductores por sí
mismas (DeWire et al., 2007). La unión de una arrestina con un GPCR fosforilado activado induce un cambio en la conformación de la arrestina. La
arrestina “activada” puede servir como andamiaje, un paso esencial en la activación de ciertas proteína cinasas activadas por mitógeno (MAPK,
mitogen­activated protein kinases). Los efectores para las arrestinas incluyen las MAPK (ERK1/2, JNK3 y p38), las tirosina cinasas no receptoras como
Src, ciertos miembros de la superfamilia Ras de proteínas de unión con GTP (p. ej., ARF6 y RhoA) y el factor nuclear κB (NF­κB). Las arrestinas que
tienen uniones estables con los GPCR de clase B pueden emitir señales en la profundidad del citoplasma desde vesículas endocíticas. Además, las
arrestinas pueden emitir señales dentro del núcleo, ya que tanto la β­arrestina 1 como la 2 contienen señales de localización nuclear.
A menudo se postula que la activación de las proteínas G y las arrestinas ocurre de manera secuencial y que las proteínas G preceden a las arrestinas.
Las interacciones entre las proteínas G y los efectores en esta situación se limitarían a la superficie interna de la membrana plasmática y las de las
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arrestinas podrían extenderse a mayor profundidad dentro de la célula, dependiendo del receptor. Aun así, la señalización a través de lasPage
proteínas
G
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por
algunos
GPCR
se
mantiene
y
diversos
datos
biofísicos
para
la
señalización
mediada
por
G
indican
que
los
GPCR
de
clase
B,
las
proteínas
G
y
las
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s
arrestinas pueden existir como megacomplejos que persisten en las vesículas endocíticas (Cahill et al., 2017; Thomsen et al., 2016). El vínculo de la
arrestina con el GPCR en dicho complejo se da a través del extremo carboxilo terminal del receptor solo, no del centro transmembrana. La importación
Src, ciertos miembros de la superfamilia Ras de proteínas de unión con GTP (p. ej., ARF6 y RhoA) y el factor nuclear κB (NF­κB). Las arrestinas que
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tienen uniones estables con los GPCR de clase B pueden emitir señales en la profundidad del citoplasma desde vesículas endocíticas. Además, las
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arrestinas pueden emitir señales dentro del núcleo, ya que tanto la β­arrestina 1 como la 2 contienen señales de localización nuclear.
A menudo se postula que la activación de las proteínas G y las arrestinas ocurre de manera secuencial y que las proteínas G preceden a las arrestinas.
Las interacciones entre las proteínas G y los efectores en esta situación se limitarían a la superficie interna de la membrana plasmática y las de las
arrestinas podrían extenderse a mayor profundidad dentro de la célula, dependiendo del receptor. Aun así, la señalización a través de las proteínas G
por algunos GPCR se mantiene y diversos datos biofísicos para la señalización mediada por Gs indican que los GPCR de clase B, las proteínas G y las
arrestinas pueden existir como megacomplejos que persisten en las vesículas endocíticas (Cahill et al., 2017; Thomsen et al., 2016). El vínculo de la
arrestina con el GPCR en dicho complejo se da a través del extremo carboxilo terminal del receptor solo, no del centro transmembrana. La importación
temporal y espacial de la transducción de la señal del GPCR dentro de los compartimientos subcelulares casi siempre resulta significativa.
Agonismo selectivo
El modelo de dos estados para la actividad del receptor es una simplificación conveniente y útil, pero los GPCR pueden existir en diversas
conformaciones activas, algunas de las cuales tienen capacidad para comunicarse de manera diferencial con elementos distales de la transducción. El
agonismo selectivo se refiere a la propiedad de un agonista para estabilizar una conformación de un receptor respecto a otra y, por tanto, pone en
curso una serie distintiva de fenómenos celulares. El concepto del agonismo selectivo surgió primero en la activación diferencial de proteínas G, por
ejemplo, Gi frente a Gq y Gi frente a G12, dependiendo del agonista. Más tarde se reconocieron las diferencias entre la señalización de la proteína G y de
la arrestina (Smith et al., 2018) y se encontró que ciertos agonistas estabilizan las conformaciones que emiten señales principalmente a través de las
proteínas G, mientras otros estabilizan las conformaciones que emiten señales a través de las arrestinas (fig. 3–17).
Figura 3–17
Agonismo selectivo. Una forma de agonismo selectivo es la que se relaciona con la activación diferencial de proteínas G y arrestinas. Un solo GPCR
puede asumir cualquier número de conformaciones (no mostradas de manera expresa) que se estabilizan de manera diferenciada mediante ligandos
activadores. Una o más de estas conformaciones puede traducirse en la activación tanto de la proteína G como de la arrestina (izquierda), solo de la
proteína G (intermedio) o solo de la arrestina (derecha). En este sentido, la selectividad del ligando predispone al GPCR hacia un esquema de
señalización particular. Véase el texto respecto a otras formas de selectividad.
Por ejemplo, desde hace tiempo el carvedilol es clasificado como antagonista del receptor adrenérgico β. Sin embargo, además de antagonizar la
activación de Gs a través del receptor β, el complejo carvedilol­receptor también activa la arrestina (Wisler et al., 2007). Por tanto, desde el punto de
vista de la señalización de la arrestina, el carvedilol es un agonista. ¿Pueden manipularse las dos vías por separado? ¿Pueden distinguirse los efectos
terapéuticos y adversos con base en la vía que activen? Los esfuerzos para el descubrimiento de fármacos buscan responder estas preguntas,
sintetizando supuestos agonistas selectivos, en especial con efecto en los GPCR para los opioides (cap. 23), dopamina (cap. 15) y angiotensina (cap.
30).
Considérense las acciones analgésicas de los opioides. Una hipótesis que se está valorando es que las acciones analgésicas de los opioides a través del
receptor opioide μ se ejercen a través de proteínas G y que la señalización mediante la arrestina β­2 media muchas de las respuestas adversas a los
opiáceos (p. ej., depresión respiratoria, tolerancia, dependencia). Un estudio sobre la acción de los opiáceos en animales con eliminación del gen de
arrestina β­2 [βarr2(­/­)] reportó la potenciación de la analgesia por morfina y reducción de los efectos colaterales (Raehal et al., 2005). El desarrollo de
la recién aprobada oliceridina, diseñada como agonista selectivo del receptor μ, se basa en esta premisa (Markham, 2020). Algunos hallazgos iniciales
fueron prometedores, pero los datos subsiguientes sobre varios supuestos agonistas selectivos no respaldaron una separación tan clara entre los
efectos antinociceptivos y los adversos (Gillis et al., 2020a) y pusieron en duda la afirmación de que la oliceridina produce una mayor separación entre
los efectos deseados y los adversos (cap. 23). Además, se han planteado y refutado otras explicaciones de la selectividad aparente (p. ej., agonismo
intrínseco bajo y amplificación diferencial de la señal en las vías de la proteína G y la arrestina) (Azevedo Neto et al., 2020; Gillis et al., 2020b; Stahl y
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Bohn, 2021).3:
Hay
que estar al pendiente.
Los agonistas
selectivos
podrían
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mayor
grado Donald
de especificidad
en la señalización
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moleculares
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inducida
por fármacos
través de
los GPCR. Terms of Use • Privacy Policy • Notice • Accessibility
Es preciso hacer una diferenciación entre el agonismo selectivo o selectividad por ligando, como se explica aquí y la selectividad del receptor y la
arrestina β­2 [βarr2(­/­)] reportó la potenciación de la analgesia por morfina y reducción de los efectos colaterales (Raehal et al., 2005). El desarrollo de
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la recién aprobada oliceridina, diseñada como agonista selectivo del receptor μ, se basa en esta premisa (Markham,
2020). Algunos
hallazgos iniciales
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fueron prometedores, pero los datos subsiguientes sobre varios supuestos agonistas selectivos no respaldaron
separación
tan clara entre los
efectos antinociceptivos y los adversos (Gillis et al., 2020a) y pusieron en duda la afirmación de que la oliceridina produce una mayor separación entre
los efectos deseados y los adversos (cap. 23). Además, se han planteado y refutado otras explicaciones de la selectividad aparente (p. ej., agonismo
intrínseco bajo y amplificación diferencial de la señal en las vías de la proteína G y la arrestina) (Azevedo Neto et al., 2020; Gillis et al., 2020b; Stahl y
Bohn, 2021). Hay que estar al pendiente. Los agonistas selectivos podrían ofrecer ventajas por un mayor grado de especificidad en la señalización
inducida por fármacos a través de los GPCR.
Es preciso hacer una diferenciación entre el agonismo selectivo o selectividad por ligando, como se explica aquí y la selectividad del receptor y la
selectividad del sistema (Smith et al., 2018). La selectividad del receptor es la predisposición de un receptor hacia la señalización por una proteína G u
otra o a través de una proteína G frente a una arrestina. Ciertos receptores emiten señales solo a través de la arrestina; en tanto, puede hacerse que
otros (mediante una mutación) emitan señales solo a través de proteínas G. La selectividad del sistema es la diferencia entre las células en cuanto a la
expresión de transductores, efectores y proteínas distales, muy enfocada para los sistemas que tienen una diferencia sustancial entre la expresión de
una proteína G respecto a una arrestina. Como siempre, pero en especial con el surgimiento de selectividad como concepto, es importante recordar
que la eficacia depende del contexto en que se valora.
Formas proximales de señalización mediante GPCR a través de proteínas G
Los segundos mensajeros regulados por GPCR a través de proteínas G incluyen nucleótidos cíclicos, DAG, IP3 y (mediante IP3) Ca2+. Otras formas de
señalización importantes son los conductos iónicos activados por proteína G y la proteína G monomérica RhoA.
AMP cíclico
El AMP cíclico se sintetiza por acción de la enzima adenilil ciclasa, para la cual existen nueve isoformas unidas con la membrana y una isoforma soluble
en los mamíferos (Dessauer et al., 2017; Hanoune y Defer, 2001). Todas las isoformas unidas con la membrana se activan mediante la subunidad α de
Gs. La inhibición de la enzima activada por Gi se atribuye por lo general a la liberación del heterodímero βγ y al secuestro consecuente de αs; sin
embargo, el heterodímero y αi pueden tener acciones directas e idiosincrásicas, según la isoenzima de adenilil ciclasa (Taussig et al., 1994). El AMP
cíclico generado por adenilil ciclasa tiene dos objetivos farmacológicos principales en la mayor parte de las células: la proteína cinasa dependiente de
AMP cíclico (PKA) y los GEF regulados por AMP cíclico, denominados EPAC (proteínas de intercambio activadas por AMP cíclico, exchange proteins
activated by cyclic AMP) (Cheng et al., 2008; Roscioni et al., 2008). El factor de transcripción CREB (proteína de unión con elemento de respuesta al AMP
cíclico; cyclic AMP response element­binding protein) se activa mediante la fosforilación de PKA y establece un vínculo entre los aumentos transitorios
del AMP cíclico celular y la regulación transcripcional (Mayr y Montminy, 2001; Sands y Palmer, 2008). En células con funciones especializadas, el AMP
cíclico puede tener objetivos farmacológicos adicionales, como los conductos iónicos activados por nucleótido cíclico (CNG, cyclic nucleotide­gated) y
los conductos regulados por nucleótidos cíclicos activados por hiperpolarización (HCN, hiperpolarization­activated cyclic nucleotide­gated) (Wahl­
Schott y Biel, 2009) y PDE regulados por nucleótido cíclico. Para conocer las generalidades de la acción de los nucleótido cíclicos y una perspectiva
histórica, véase Beavo y Brunton (2002). Más adelante se presenta una descripción del GMP cíclico (Guanilil ciclasas).
PKA
La holoenzima PKA consta de dos subunidades catalíticas (C) unidas de manera reversible con un dímero de subunidades reguladoras inhibidoras (R)
para formar un complejo heterotetramérico (R2C2). En respuesta a un aumento en el AMP cíclico celular, cuatro moléculas de AMP cíclico se unen con
el complejo R2C2, dos con cada subunidad R, lo que produce un cambio conformacional en las subunidades R que elimina el dominio inhibidor del
dominio catalítico de la subunidad C y deriva en su activación. Las subunidades C activas fosforilan residuos de serina y treonina en los sustratos
proteínicos superficiales. Existen múltiples isoformas de PKA; la clonación molecular reveló isoformas α y β de ambas subunidades reguladoras (RI y
RII), así como tres isoformas de la subunidad C, Cα, Cβ y Cγ. Las subunidades R tienen diferente localización subcelular y afinidad de unión con el AMP
cíclico, lo que da lugar a holoenzimas PKA con diferentes umbrales de activación (Taylor et al., 2008). La función y especificidad de la PKA también está
modulada por la localización subcelular mediada por proteínas de anclaje de cinasa A (AKAP, A­kinase anchoring proteins). En realidad, ahora se
reconoce que la compartimentalización de los componentes de señalización del AMP cíclico (incluidos los componentes descritos más adelante, así
como los GPCR, adenilil ciclasa, fosfodiesterasas y fosfatasas proteínicas) dentro de signalosomas multiproteínicos a escala nanométrica es un factor
esencial para las respuestas celulares normales al AMP cíclico (Brunton et al., 1981; revisado por Zaccolo et al., 2020).
EPAC
La EPAC, también conocida como GEF de AMP cíclico, es una nueva proteína de señalización dependiente del AMP cíclico (Schmidt et al., 2013). La EPAC
sirve como GEF regulado por el AMP cíclico para la familia de pequeñas Ras GTPasas (en especial la Rap GTPasa pequeña), que catalizan el intercambio
de GTP por GDP, con lo que activan la pequeña GTPasa. Las dos isoformas de EPAC, EPAC1 y EPAC2, difieren en su morfología y expresión hística.
Ambas isoformas de EPAC son proteínas de múltiples dominios que contienen un dominio regulador de unión con AMP cíclico, un dominio catalítico y
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dominios que
su localización
intracelular.
En comparación
confarmacológica,
EPAC2, EPAC1 contiene
dominioDonald
adicional
unión con el AMP
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afinidad en
extremo
terminal.
La expresión
de EPAC1
y EPAC2
está regulada
de manera diferenciada durante el desarrollo y en
diversas enfermedades. EPAC2 puede fomentar la secreción de insulina estimulada por incretina en las células pancreáticas β mediante la activación
de Rap1 (fig. 51–3). Las sulfonilureas, fármacos orales usados para tratar la diabetes mellitus tipo 2, pueden actuar en parte mediante la activación de
esencial para las respuestas celulares normales al AMP cíclico (Brunton et al., 1981; revisado por Zaccolo et al., 2020).
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EPAC
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La EPAC, también conocida como GEF de AMP cíclico, es una nueva proteína de señalización dependiente del
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cíclico
sirve como GEF regulado por el AMP cíclico para la familia de pequeñas Ras GTPasas (en especial la Rap GTPasa pequeña), que catalizan el intercambio
de GTP por GDP, con lo que activan la pequeña GTPasa. Las dos isoformas de EPAC, EPAC1 y EPAC2, difieren en su morfología y expresión hística.
Ambas isoformas de EPAC son proteínas de múltiples dominios que contienen un dominio regulador de unión con AMP cíclico, un dominio catalítico y
dominios que determinan su localización intracelular. En comparación con EPAC2, EPAC1 contiene un dominio adicional de unión con el AMP cíclico
de baja afinidad en el extremo amino terminal. La expresión de EPAC1 y EPAC2 está regulada de manera diferenciada durante el desarrollo y en
diversas enfermedades. EPAC2 puede fomentar la secreción de insulina estimulada por incretina en las células pancreáticas β mediante la activación
de Rap1 (fig. 51–3). Las sulfonilureas, fármacos orales usados para tratar la diabetes mellitus tipo 2, pueden actuar en parte mediante la activación de
EPAC2 en las células β y por aumento de la liberación de insulina.
PDE
Las fosfodiesterasas (PDE) de nucleótidos cíclicos hidrolizan el enlace 3′,5′­fosfodiéster cíclico en el AMP cíclico y el GMP cíclico, con lo que terminan la
acción del nucleótido cíclico. Las PDE forman una superfamilia de más de 50 proteínas diferentes (Conti y Beavo, 2007). Las especificidades por
sustrato de las diferentes PDE incluyen las específicas para la hidrólisis del AMP cíclico y la hidrólisis de GMP cíclico, así como algunas que hidrolizan
ambos nucleótidos cíclicos. Las actividades de las PDE están reguladas por transcripción génica, así como por nucleótidos cíclicos, Ca2+­calmodulina e
interacciones con otras proteínas de señalización como las arrestinas y las proteína cinasas. Algunas PDE están localizadas en complejos de
señalización específicos mediante AKAP y otras proteínas del andamiaje. Las PDE (sobre todo las isoformas PDE3) son objetivos farmacológicos para
el tratamiento de enfermedades como el asma (cap. 44), diversas enfermedades cardiovasculares (caps. 31, 32 y 33) y dermatitis atópica (cap. 75),
entre otras. Los inhibidores de PDE5 (p. ej., sildenafilo) se usan en el tratamiento de la enfermedad pulmonar obstructiva crónica (figs. 44–4 y 44–5) y la
disfunción eréctil (fig. 49–6).
D A G / I P3 / C a2 +
La activación de los GPCR acoplados con Gq (y en ocasiones con Gi) conduce a la atracción de una isoforma de fosfolipasa C (PLC), PLCβ­2, a la
membrana plasmática. La PLC activada hidroliza un fosfolípido menor de la membrana, el fosfatidilinositol 4,5­bisfosfato (PIP2), para generar dos
señales intracelulares, DAG y IP3. El DAG activa en forma directa algunos miembros de la familia PKC. El IP3 difunde al retículo endoplásmico (ER,
endoplasmic reticulum), donde activa al receptor para IP3 en la membrana del retículo endoplásmico, lo que induce la liberación del Ca2+ almacenado.
Esto aumenta muchas veces la concentración de Ca2+ en el citoplasma en segundos y activa enzimas dependientes de Ca2+ como algunas de las PKC y
enzimas sensibles a Ca2+/calmodulina, entre ellas la PDE1 y una familia de PK sensibles a Ca2+/calmodulina (p. ej., fosforilasa cinasa, MLCK y CaM
[calmodulina] cinasas II y IV) (Hudmon y Schulman, 2002). No puede restarse importancia a las funciones del Ca2+ como segundo mensajero. El Ca2+ es
fundamental para la regulación de diversos procesos metabólicos y para la secreción, contracción, expresión génica y actividad eléctrica a través de la
membrana.
Conductos iónicos activados por proteína G
Entre los diversos tipos de conductos iónicos regulados en forma directa por proteínas G, los conductos de rectificadores de entrada del K+ (Kir) han
cobrado mayor importancia. El subconjunto de conductos Kir activados por los GPCR está formado por complejos homotetraméricos y
heterotetraméricos de dos subunidades helicoidales transmembrana de la subfamilia Kir3 (Hibino et al., 2010) (fig. 3B). Estas subunidades se expresan
en grados variables en las neuronas, miocitos auriculares y células endocrinas, entre otras células. Los conductos se activan por el heterodímero βγ
liberado de Gi, tal vez mediante la unión de PIP2 intensificada por βγ. Es probable que la selectividad por Gi, entre otras proteínas G que también
contienen βγ, se relacione con complejos preformados entre los conductos y el heterotrímero Gi.
Los conductos Kir ayudan a estabilizar el potencial de reposo de la membrana superficial de la célula. Como el potencial de membrana de reposo casi
siempre es positivo al potencial de equilibrio del K+, el conducto activado conduce una corriente neta de salida y, por tanto, hiperpolariza la
membrana, lo que vuelve a las células menos capaces de responder a estímulos despolarizantes. En las neuronas, los conductos que contienen la
subunidad Kir3 pueden activarse con acetilcolina, adenosina, dopamina, cannabinoides, GABA (a través del receptor GABAB), serotonina,
somatostatina y opioides. Se ha puesto gran atención a la inhibición postsináptica lograda por los opioides mediante conductos Kir regulados por
proteína G, tanto en neuronas centrales como en las periféricas, como base para las acciones analgésicas de estos compuestos. La señalización por el
conducto Kir regulado por proteína G se relaciona con respuestas conductuales a varios fármacos de abuso, psicoestimulantes y etanol (Luján et al.,
2014).
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CAPÍTULO
3: Farmacodinámica:
mecanismos
moleculares
acción colinérgico
farmacológica,
David R.MManning;
Donald K. Blumenthal
El descenso de
la frecuencia cardiaca
por acetilcolina
a través de
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receptor
muscarínico
2 también se logra en parte a través de conductos
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que contienen la subunidad Kir3. Estos conductos son un componente importante de la respuesta del corazón al tono parasimpático. Los conductos
que contienen la subunidad Kir3 en el corazón también responden a la adenosina a través de los receptores A1 de adenosina; la adenosina se usa
subunidad Kir3 pueden activarse con acetilcolina, adenosina, dopamina, cannabinoides, GABA (a través del receptor GABAB), serotonina,
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somatostatina y opioides. Se ha puesto gran atención a la inhibición postsináptica lograda por los opioidesAccess
mediante
conductos Kir regulados por
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proteína G, tanto en neuronas centrales como en las periféricas, como base para las acciones analgésicas de estos compuestos. La señalización por el
conducto Kir regulado por proteína G se relaciona con respuestas conductuales a varios fármacos de abuso, psicoestimulantes y etanol (Luján et al.,
2014).
El descenso de la frecuencia cardiaca por acetilcolina a través del receptor colinérgico muscarínico M2 también se logra en parte a través de conductos
que contienen la subunidad Kir3. Estos conductos son un componente importante de la respuesta del corazón al tono parasimpático. Los conductos
que contienen la subunidad Kir3 en el corazón también responden a la adenosina a través de los receptores A1 de adenosina; la adenosina se usa
como tratamiento para detener pronto las taquiarritmias supraventriculares (cap. 34).
Los miembros de la familia Gi también regulan los conductos de Ca2+ activados por voltaje. Los conductos mejor estudiados en este contexto son los
formados con subunidades CaV2; es decir, los conductos de los tipos P/Q, N y R, en contraste con los de tipos L y T (Proft y Weiss, 2015). De nuevo, la
regulación se logra mediante el heterodímero βγ, que inhibe la actividad del conducto. Los conductos neuronales que contienen la subunidad CaV2
tienen localización presináptica y su inhibición se manifiesta por la inhibición de la liberación del neurotransmisor. Por ejemplo, los opioides no solo
suprimen la activación neuronal mediante la activación de los conductos de K+ rectificadores de entrada, sino que también inhiben la liberación de los
neurotransmisores por la inhibición de los conductos de Ca2+ activados por voltaje en la terminación presináptica. Todos los agonistas endógenos y
los fármacos que actúan a través de los GPCR vinculados con Gi/o en el SNC pueden activar estas acciones moleculares y el efecto neurológico preciso
depende del tipo y la localización de la neurona.
Activación de RhoA
La activación de miembros de la familia G12/13 siempre se relaciona con la activación de RhoA, un miembro importante de la superfamilia Ras de
proteínas G monoméricas de bajo peso molecular (alrededor de 21 kDa). RhoA controla fenómenos relativos a la forma, migración y contracción de la
célula, logrados en mayor medida mediante la proteína cinasa relacionada con Rho (ROCK, Rho­associated protein kinase). La acción de RhoA a través
de ROCK y otras proteína cinasas también regula la expresión de numerosos genes (Yu y Brown, 2015). La importancia de RhoA para los fenómenos de
interés farmacológico se ilustra en las acciones de la angiotensina II (Ang II) en las células de músculo liso vascular en relación con la hipertensión,
como se explica en la sección Los sistemas fisiológicos deben integrar múltiples señales. La activación de RhoA, junto con fenómenos activados por Gq
y arrestina, también está implicada en el crecimiento y proliferación de miocardiocitos y células de músculo liso vascular, así como en anormalidades
vinculadas con la progresión de la insuficiencia cardiaca (Balakumar y Jagadeesh, 2014; caps. 30 y 33). La activación de RhoA mediante la trombina es
la base para el cambio de forma y activación de las plaquetas en la hemostasia. Los inhibidores de ROCK son de interés en el tratamiento de la
hipertensión pulmonar (cap. 35), patologías que incluyen broncoconstricción (cap. 44), disfunción eréctil (cap. 49) y aumento de la presión intraocular
en pacientes con glaucoma de ángulo abierto o hipertensión ocular (cap. 74). El netarsudilo, aprobado por la FDA para el tratamiento de estos
trastornos oculares, es el primer inhibidor de ROCK en su clase para uso terapéutico.
La familia G12/13 activa Rho a través de la interacción de la subunidad α de G12 o G13 con uno de varios factores de intercambio de nucleótido de
guanina RhoA (RhoGEF, RhoA guanine nucleotide exchange factors), cada uno con un dominio regulador de la señalización de proteína G (RGS,
regulator of G protein signaling). Los GEF facilitan el intercambio de GDP por GTP y, en consecuencia, la activación de proteínas G de bajo peso
molecular como RhoA; los dominios RGS interactúan con subunidades α de proteína G heterotrimérica activada para acelerar la hidrólisis de GTP,
aunque a menudo están contenidos en las proteínas que tienen funciones de señalización subsiguientes (Ross y Wilkie, 2000). En ciertas células, la
activación de RhoA puede lograrse mediante Gi y Gq y también a través de RhoGEF que contienen RGS.
Conductos iónicos activados por ligando
Conductos activados por neurotransmisores excitadores e inhibidores
Los principales conductos iónicos activados por ligando en el sistema nervioso son los activados por neurotransmisores excitadores o inhibidores.
Los activados por neurotransmisores excitadores conducen Na+ y K+ de manera inespecífica y en ocasiones, Ca2+ e incluyen los receptores colinérgicos
nicotínicos, receptores glutaminérgicos (subtipos AMPA [ácido α­amino­3­hidroxi­5­metil­4­isoxazol propiónico], cainato y NMDA [N­metil­D­
aspartato]) y ciertos receptores purinérgicos y serotoninérgicos. Los conductos activados por neurotransmisores inhibidores conducen Cl− y son los
receptores GABAA y de glicina. La activación de conductos por neurotransmisores excitadores e inhibidores es el origen de la mayor parte de
fenómenos relevantes para la transmisión sináptica por las neuronas, tanto en el SNC como en la periferia. Estos conductos iónicos activados por
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ligando son pentámeros
subunidades
cada una es una proteína grande con cuatro dominios transmembrana (fig. 3–18).
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Figura 3–18
Estructura del receptor nicotínico para acetilcolina. A . Una representación esquemática de una subunidad receptora nicotínica de ACh, una de las
Los activados por neurotransmisores excitadores conducen Na+ y K+ de manera inespecífica y en ocasiones,UNIVERSIDAD
Ca2+ e incluyen DE
los receptores
colinérgicos
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nicotínicos, receptores glutaminérgicos (subtipos AMPA [ácido α­amino­3­hidroxi­5­metil­4­isoxazol propiónico],
cainato y NMDA [N­metil­D­
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aspartato]) y ciertos receptores purinérgicos y serotoninérgicos. Los conductos activados por neurotransmisores inhibidores conducen Cl− y son los
receptores GABAA y de glicina. La activación de conductos por neurotransmisores excitadores e inhibidores es el origen de la mayor parte de
fenómenos relevantes para la transmisión sináptica por las neuronas, tanto en el SNC como en la periferia. Estos conductos iónicos activados por
ligando son pentámeros de subunidades distintivas; cada una es una proteína grande con cuatro dominios transmembrana (fig. 3–18).
Figura 3–18
Estructura del receptor nicotínico para acetilcolina. A . Una representación esquemática de una subunidad receptora nicotínica de ACh, una de las
cinco que constituyen el pentámero receptor. Presenta las cuatro fracciones helicoidales transmembrana con los dominios extracelulares de los
extremos carboxilo y amino terminales. B . La estructura del receptor nicotínico vista desde la perspectiva de la unión neuromuscular. La conductancia
se logra a través del poro del eje central, definido por la disposición seudosimétrica de subunidades receptoras. C . Vista longitudinal del mismo
receptor como se describió en fecha reciente mediante microscopia electrónica, con la subunidad γ eliminada; se muestran solo los iones
despolarizantes (Na+ y Ca2+). Véase el capítulo 13 para más detalles.
El receptor nicotínico para acetilcolina (ACh) es un ejemplo ilustrativo de un conducto iónico activado por un ligando excitador. Las isoformas de este
conducto se expresan en el SNC, en los ganglios del sistema nervioso autónomo y en la unión neuromuscular. El conducto es un pentámero que en las
neuronas consta de dos a cinco subunidades α (derivadas de los subtipos α2­α10) y hasta tres subunidades β (derivadas de los subtipos β2­β4) y, en la
unión neuromuscular, consiste en dos subunidades α1, una β1, una δ y una γ (embrión) o una ε (adulto). Cada subunidad del receptor contiene un
gran dominio extracelular en el extremo amino terminal, cuatro hélices que cruzan la membrana (una de las cuales ayuda a recubrir el poro en el
complejo ensamblado) y un asa interna entre las hélices 3 y 4 que forma el dominio intracelular del conducto (fig. 3–18). La ACh se une en las interfaces
de las subunidades α (p. ej., en las interfaces α/α o α/β). Las diferentes composiciones de las subunidades explican la capacidad de los antagonistas
competitivos como el rocuronio para inhibir el receptor en la unión neuromuscular sin tener efecto en el receptor ganglionar o del SNC. Esta
propiedad se aprovecha para producir relajación muscular durante la cirugía con efectos colaterales mínimos sobre el sistema nervioso autónomo
(cap. 13). El poro que se abre en el conducto mide cerca de 3 nm, mientras el diámetro de un ion Na+, K+ o Ca2+ es de apenas 0.3 nm o menos y por esta
razón el conducto no tiene la extremada selectividad iónica encontrada en la mayor parte de los conductos activados por voltaje. El paso de iones Na+,
K+ y Ca2+ tiene un efecto neto de despolarización.
El receptor pentamérico GABAA que contiene subunidades α, β y γ conduce Cl− cuando se activa mediante GABA. Con un potencial de equilibrio para el
Cl− cercano a −65 mV, la activación del receptor no suele causar hiperpolarización de la membrana, pero impide la generación y propagación de
potenciales de acción. El receptor GABAA es el objetivo farmacológico para las benzodiacepinas y barbitúricos, entre muchos otros fármacos. La
multiplicidad de isoformas de cada una de las subunidades constituyentes de estos conductos iónicos pentaméricos explica la farmacología distintiva
de estos receptores.
Conductos activados por ligandos intracelulares
Existe una categoría de conductos iónicos activados por ligandos intracelulares: el conducto de Ca2+ sensible a IP3, que induce la liberación de Ca2+
desde el retículo endoplásmico; los conductos iónicos activados por nucleótidos cíclicos, que permiten la conductancia no selectiva de cationes, y el
“receptor” para sulfonilurea (SUR1), que se relaciona con el conducto Kir6.2 para regular la corriente de K+ activada por ATP en las células β del
páncreas. Este último conducto, o conducto KATP, es el objetivo farmacológico de hipoglucemiantes orales como las sulfonilureas y las meglitinidas,
que estimulan la liberación de insulina de las células β pancreáticas y se usan para tratar la diabetes tipo 2 (cap. 51).
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Conductos
con potencial
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Los conductos catiónicos con potencial receptor transitorio (TRP, transient receptor potential) participan en diversos procesos sensitivos, incluida la
Existe una categoría de conductos iónicos activados por ligandos intracelulares: el conducto de Ca2+ sensible a IP3, que induce la liberación de Ca2+
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desde el retículo endoplásmico; los conductos iónicos activados por nucleótidos cíclicos, que permiten la conductancia no selectiva de cationes, y el
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“receptor” para sulfonilurea (SUR1), que se relaciona con el conducto Kir6.2 para regular la corriente de K+ activada por ATP en las células β del
páncreas. Este último conducto, o conducto KATP, es el objetivo farmacológico de hipoglucemiantes orales como las sulfonilureas y las meglitinidas,
que estimulan la liberación de insulina de las células β pancreáticas y se usan para tratar la diabetes tipo 2 (cap. 51).
Conductos con potencial receptor transitorio
Los conductos catiónicos con potencial receptor transitorio (TRP, transient receptor potential) participan en diversos procesos sensitivos, incluida la
nocicepción, la sensibilidad al calor y al frío, la mecanocepción y la percepción de compuestos químicos como la capsaicina y el mentol. La
superfamilia consta de 28 conductos en seis familias (Moran, 2018). La mayor parte de los conductos TRP son homotetrámeros; cada monómero
consiste en seis hélices transmembrana (S1­S6) con un asa formadora de poro entre S5 y S6 y grandes regiones intracelulares en las terminaciones
amino y carboxilo intracelulares. Los conductos TRP son más bien no selectivos con respecto a la conductancia de los cationes, por lo general
conducen Na+ y Ca2+ y a veces Mg2+. Dos científicos que realizaron un trabajo original sobre los conductos TRP, David Julius y Ardem Patapoutian,
compartieron el Premio Nobel de Fisiología o Medicina de 2021 “por sus descubrimientos de receptores para la temperatura y el tacto” (Latorre y Diaz­
Franulic, 2021).
Hay fármacos en desarrollo para tratar enfermedades hereditarias relacionadas con mutaciones en el conducto TRP y para tratar dolor, prurito y
trastornos cutáneos y respiratorios (Bamps et al., 2021). Se dispone de formulaciones de capsaicina, un agonista del receptor TRPV1, para alivio de
ciertas formas de dolor, incluida la neuralgia posherpética.
Receptores vinculados con enzimas (catalíticos)
Receptores de tirosina cinasa
Los receptores de tirosina cinasa incluyen receptores para hormonas como la insulina; factores de crecimiento como el factor de crecimiento
epidérmico (EGF, epidermal growth factor), factor de crecimiento derivado de las plaquetas (PDGF, platelet­derived growth factor), factor de
crecimiento nervioso (NGF), factor de crecimiento de los fibroblastos (FGF) y VEGF y las efrinas. Excepto por el receptor de insulina, consistente en
cadenas polipeptídicas α y β (cap. 51), estos receptores son cadenas polipeptídicas sencillas. Cada uno tiene un gran domino extracelular rico en
cisteína, un segmento transmembrana corto y una región intracelular que contiene uno o dos dominios de proteína tirosina cinasa. La activación de
receptores para factor de crecimiento casi siempre sustenta la supervivencia, proliferación y diferenciación de las células. La activación de los
receptores efrina sustenta la angiogénesis neuronal, así como la migración y la guía axónicas.
La unión del ligando induce la dimerización del receptor y la fosforilación cruzada de los residuos de tirosina dentro de las ahora regiones
intracelulares proximales, en particular en los dominios mismos de cinasa, para intensificar su actividad, pero también en segmentos fuera de estos
dominios. Los residuos de fosfotirosina constituyen sitios de llegada en el receptor para las proteínas que contienen dominios SH2 y PTB. Hay más de
100 de estas proteínas, que son enzimas y adaptadores, codificadas en el genoma humano.
Las enzimas atraídas a menudo se fosforilan y activan a su vez. Estas incluyen PLCγ, cuya actividad aumenta la concentración intracelular de Ca2+ y
activa la PKC y las isoformas α y β de la fosfatidili​nositol 3­cinasa (PI3K). La PI3K se une en forma directa con el receptor fosforilado mediante los
dominios SH2 o de manera indirecta a través del sustrato 1 del receptor para insulina (IRS­1, insulin receptor substrate­1); se activa y aumenta la
concentración de fosfatidilinositol 3,4,5­trisfosfato (PIP3), con la consecuente activación de PKB (también conocida como Akt). La PI3K también puede
activarse de manera directa con la proteína Ras de unión con GTP. La PKB puede regular a mTOR (blanco mecanicista/de mamífero para la rapamicina;
mechanistic/mammalian target of rapamycin), que es proximal a varias vías de señalización (fig. 3–19A; véase también la sección Autofagia, más
adelante) y la proteína Bad, que es importante en la apoptosis (fig. 3–25; véase también la sección sobre Apoptosis, más adelante).
Figura 3–19
Dos eventos que ocurren después de la activación de receptores de tirosina cinasa. A . La activación de la vía mTOR. La señalización a través de esta vía
fomenta el crecimiento, proliferación y supervivencia de las células mediante una red compleja de vías de señalización (Guri y Hall, 2016). La
señalización mTOR está cobrando importancia en la inmunodepresión y la farmacoterapia contra el cáncer y los inhibidores de la señalización mTOR
se incluyen en ocasiones como tratamiento adjunto. B . La activación del receptor de EGF. La estructura extracelular del receptor sin ligando (a)
contiene cuatro dominios (I­IV), que experimentan un reacomodo significativo cuando se unen dos moléculas de EGF. En (b), los cambios
conformacionales conducen a la activación de los dominios citoplásmicos de la tirosina cinasa y a la fosforilación de la tirosina de las regiones
intracelulares para formar sitios para unión de SH2. (c) La molécula adaptadora Grb2 unida con Sos mediante dos dominios llamados SH3 se une con
los residuos de tirosina fosforilados y activa la cascada Ras­MAPK. Ras está unida a la superficie interna de la membrana plasmática, por lo general
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mediante una fracción farnesilo. La traslocación de Sos a la superficie interna de la membrana ocurre mediante la unión de Grb2 con un receptor
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SH2. La traslocación
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a Ras
unido a la membrana y así fomenta la activación de Ras.
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señalización mTOR está cobrando importancia en la inmunodepresión y la farmacoterapia contra el cáncer y los inhibidores de la señalización mTOR
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se incluyen en ocasiones como tratamiento adjunto. B . La activación del receptor de EGF. La estructura extracelular
del receptor
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ligando (a) ­ UES
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contiene cuatro dominios (I­IV), que experimentan un reacomodo significativo cuando se unen dos moléculas
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EGF. En
conformacionales conducen a la activación de los dominios citoplásmicos de la tirosina cinasa y a la fosforilación de la tirosina de las regiones
intracelulares para formar sitios para unión de SH2. (c) La molécula adaptadora Grb2 unida con Sos mediante dos dominios llamados SH3 se une con
los residuos de tirosina fosforilados y activa la cascada Ras­MAPK. Ras está unida a la superficie interna de la membrana plasmática, por lo general
mediante una fracción farnesilo. La traslocación de Sos a la superficie interna de la membrana ocurre mediante la unión de Grb2 con un receptor
activado a través de un dominio SH2. La traslocación coloca a Sos en proximidad a Ras unido a la membrana y así fomenta la activación de Ras.
Los adaptadores son proteínas sin actividad enzimática que tienen funciones accesorias, a menudo la de aproximar mucho entre sí a las posibles
proteínas interactuantes. Por ejemplo, Grb2 es un adaptador ya unido a Sos, un GEF que puede activar a Ras (fig. 3–19B). A su vez, la activación de Ras
conduce a la activación de una cascada de proteína cinasa denominada vía Ras­MAPK. La activación de la vía MAPK es una de las principales rutas
usadas por los receptores para factor de crecimiento para emitir señales al núcleo y estimular el crecimiento celular. Las mutaciones oncógenas que
dan lugar a receptores para factor de crecimiento y Ras con activación constitutiva también pueden activar la vía MAPK e impulsar la proliferación
tumoral. Los fármacos antineoplásicos que actúan en la vía MAPK y la actividad de la proteína tirosina cinasa de los factores de crecimiento oncógenos
son en la actualidad agentes importantes en el tratamiento de varias formas de cáncer (cap. 69 y 71).
Receptores de cinasas de serina y treonina
La familia de ligandos del factor transformador del crecimiento β (TGF­β), que incluye diferentes formas de TGF­β y proteínas morfógenas óseas (BMP,
bone morphogenic proteins), activa receptores que son análogos a los receptores de cinasas de serina y treonina, pero tienen función de cinasa de
serina y treonina. Los ligandos se unen y estabilizan un complejo heteromérico de dos receptores en la superficie celular de tipo I y dos de tipo II. Los
seres humanos expresan siete receptores de tipo I y cinco de tipo II, que interactúan de manera diferenciada con miembros de la familia TGF­β
(Derynck y Budi, 2019). Los cambios inducidos por ligando en la conformación, por la proximidad o por ambas permiten que los receptores tipo II
fosforilen a los receptores de tipo I en los residuos de serina y treonina y que activen la señalización subsiguiente mediante los SMAD (fig. 3–20). Están
en desarrollo fármacos que inhiben la señalización del ligando TGF­β y son de particular interés en el tratamiento del cáncer y la fibrosis.
Figura 3–20
Señalización a través de receptores heteroméricos tipo I y tipo II mediante miembros de la familia TGF­β. Los ligandos TGF­β estabilizan la estructura
de un receptor heteromérico consistente en dos receptores tipo I y dos tipo II. Los receptores tipo II catalizan luego la fosforilación de los receptores
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tipo
I en los residuos
de serina, lo que
les permitemoleculares
interactuar ydefosforilar,
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CAPÍTULO
3: Farmacodinámica:
mecanismos
la acciónde
farmacológica,
David R.deManning;
K. número
Blumenthal
por
receptor”
(rSmad).
Los
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luego
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donde
regulan
los
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de la transcripción. Smad7 (y Smad6) son Smad inhibidores. Derynck y Budi (2019) revisaron las variaciones y la dinámica de la asociación de los
receptores tipo I y tipo II, las modificaciones posteriores a la traducción relevantes para su estabilidad, la señalización no Smad a través de estos
en desarrollo fármacos que inhiben la señalización del ligando TGF­β y son de particular interés en el tratamiento del cáncer y la fibrosis.
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Figura 3–20
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Señalización a través de receptores heteroméricos tipo I y tipo II mediante miembros de la familia TGF­β. Los ligandos TGF­β estabilizan la estructura
de un receptor heteromérico consistente en dos receptores tipo I y dos tipo II. Los receptores tipo II catalizan luego la fosforilación de los receptores
tipo I en los residuos de serina, lo que les permite interactuar y fosforilar, de nuevo en los residuos de serina, a cualquier número de Smad “activados
por receptor” (rSmad). Los rSmad fosforilados se unen con Smad4, un Smad efector, para translocarse luego al núcleo, donde regulan los fenómenos
de la transcripción. Smad7 (y Smad6) son Smad inhibidores. Derynck y Budi (2019) revisaron las variaciones y la dinámica de la asociación de los
receptores tipo I y tipo II, las modificaciones posteriores a la traducción relevantes para su estabilidad, la señalización no Smad a través de estos
receptores y el uso de receptores alternativos mediante ligandos semejantes a TGF­β.
Guanilil ciclasas
La síntesis de GMP cíclico intracelular se logra mediante receptores en la superficie celular activados por ligando con actividad guanilil ciclasa (GC)
intrínseca o mediante GC soluble (sGC) (fig. 3–21). Los receptores en la superficie celular son para péptidos natriuréticos; el sGC responde al NO. Los
efectos subsiguientes del GMP cíclico son realizados por múltiples isoformas de PKG, conductos iónicos activados por GMP cíclico y por PDE
modulados por GMP cíclico que degradan el AMP cíclico.
Figura 3–21
Vías de señalización de GMP cíclico. La formación GMP cíclico está regulada por receptores en la superficie celular con actividad intrínseca de guanilil
ciclasa y por sus formas solubles. Los receptores en la superficie celular responden a los péptidos natriuréticos como el ANP con un aumento del GMP
cíclico. El sGC responde al NO generado a partir de la L­arginina mediante la NOS. Los efectos celulares del GMP cíclico son realizados por la PKG y por
PDE reguladas por GMP cíclico. En este diagrama, el NO se produce mediante una NOS dependiente de Ca2+/calmodulina en una célula endotelial
adyacente. A lo largo del texto, las descripciones detalladas de estas vías de señalización se relacionan con las acciones terapéuticas de fármacos que
influyen en estas vías.
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
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cíclico. El sGC responde al NO generado a partir de la L­arginina mediante la NOS. Los efectos celulares del GMP cíclico son realizados por la PKG y por
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PDE reguladas por GMP cíclico. En este diagrama, el NO se produce mediante una NOS dependiente de Ca2+/calmodulina en una célula endotelial
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adyacente. A lo largo del texto, las descripciones detalladas de estas vías de señalización se relacionan con las acciones terapéuticas de fármacos que
influyen en estas vías.
Receptores transmembrana con actividad intrínseca de guanilil ciclasa
Los péptidos natriuréticos son pequeños ligandos peptídicos liberados de células en los tejidos cardiacos, el sistema vascular y otros tejidos más. Los
péptidos son: 1) péptido natriurético auricular (ANP, atrial natriuretic peptide), liberado de gránulos de almacenamiento auriculares después del
aumento del volumen intravascular o estimulación con hormonas presoras; 2) péptido natriurético cerebral (BNP, brain natriuretic peptide),
sintetizado y liberado en grandes cantidades del tejido ventricular en respuesta a la sobrecarga de volumen, y 3) péptido natriurético tipo C (CNP, C­
type natriuretic peptide), sintetizado en el cerebro, células endoteliales y condrocitos y liberado como respuesta a factores de crecimiento y fuerzas de
corte sobre las células del endotelio vascular (Potter et al., 2009). Los principales efectos fisiológicos de estas hormonas son reducir la presión arterial
(ANP, BNP), disminuir la hipertrofia y fibrosis cardiacas (BNP) y estimular el crecimiento de huesos largos (CNP). Los receptores para los péptidos
natriuréticos son el receptor para péptido natriurético (NPR, natriuretic peptide receptor) A, que responde a ANP y BNP y NPR­B, que responde a CNP.
Se cree que el NPR­C funciona como receptor de eliminación, al retirar el exceso de péptido natriurético de la circulación. El capítulo 29 incluye una
descripción extensa de los efectos de los péptidos natriuréticos y de las vías implicadas. La nesiritida, un agonista sintético del BNP y el sacubitrilo, un
inhibidor de una enzima (neprilisina) que degrada el ANP y el BNP, se usan en el tratamiento de la insuficiencia cardiaca.
sGC, un receptor/enzima citosólico que responde a un factor paracrino permeable en la membrana, NO
El NO se produce de manera local en las células mediante la óxido nítrico sintasa (NOS, nitric oxide synthase). Existen tres formas de NOS: NOS
neuronal (nNOS o NOS1), NOS endotelial (eNOS o NOS3), NOS inducible (iNOS o NOS2). Las tres formas tienen una expresión amplia, pero son de
especial importancia para el aparato cardiovascular, pues se encuentran en los miocitos, las células del músculo liso vascular, las células endoteliales,
las células hematopoyéticas y las plaquetas. El Ca2+ celular elevado actúa a través de la CaM y ejerce una activación intensa de nNOS y eNOS; la forma
inducible (iNOS) es menos sensible al Ca2+, pero su síntesis puede multiplicarse por estímulos inflamatorios, como la endotoxina, TNF­α, interleucina
(IL)­1β e interferón (IFN) γ.
La NOS produce NO al catalizar la oxidación del nitrógeno del grupo guanidino de la L­arginina, con lo que se produce L­citrulina y NO. El NO activa el
sGC, que es un heterodímero αβ que contiene un dominio protoporfirina­IX hem. El NO se une con el dominio hem en concentraciones nanomolares
bajas y produce un aumento de 200 a 400 veces en la Vmax de la enzima, lo que eleva el GMP cíclico celular (Murad, 2006).
En el músculo liso vascular, la activación de PKG conduce a la vasodilatación mediante la inhibición de la liberación de Ca2+ desde las reservas
intracelulares mediada por la inhibición de IP3, lo que fosforila los conductos de Ca2+ activados por voltaje para inhibir la entrada de Ca2+; esto
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fosforila a fosfolambano, un modulador de la bomba sarcoplásmica de Ca2+, lo que conduce a una recaptación más rápida de Ca2+ hacia las reservas
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
+ activado por Ca2+, lo que causa hiperpolarización de la membrana celular; ello cierra los
intracelulares;
esto
su vez
fosforila
y abre elTerms
conducto
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conductos de Ca2+ tipo L y reduce el flujo de Ca2+ al interior de la célula, lo cual fosforila y, por tanto, inhibe la cinasa de la cadena ligera de la miosina, y
fosforila y así activa a la fosfatasa de la cadena ligera de la miosina.
La NOS produce NO al catalizar la oxidación del nitrógeno del grupo guanidino de la L­arginina, con lo que se produce L­citrulina y NO. El NO activa el
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sGC, que es un heterodímero αβ que contiene un dominio protoporfirina­IX hem. El NO se une con el dominio
hem en concentraciones
nanomolares
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bajas y produce un aumento de 200 a 400 veces en la Vmax de la enzima, lo que eleva el GMP cíclico celular (Murad,
2006).
En el músculo liso vascular, la activación de PKG conduce a la vasodilatación mediante la inhibición de la liberación de Ca2+ desde las reservas
intracelulares mediada por la inhibición de IP3, lo que fosforila los conductos de Ca2+ activados por voltaje para inhibir la entrada de Ca2+; esto
fosforila a fosfolambano, un modulador de la bomba sarcoplásmica de Ca2+, lo que conduce a una recaptación más rápida de Ca2+ hacia las reservas
intracelulares; esto a su vez fosforila y abre el conducto de K+ activado por Ca2+, lo que causa hiperpolarización de la membrana celular; ello cierra los
conductos de Ca2+ tipo L y reduce el flujo de Ca2+ al interior de la célula, lo cual fosforila y, por tanto, inhibe la cinasa de la cadena ligera de la miosina, y
fosforila y así activa a la fosfatasa de la cadena ligera de la miosina.
Los fármacos que activan el sGC son los nitratos orgánicos (nitroglicerina, dinitrato de isosorbida y ­5­monitrato de isosorbida), que producen NO y
gas NO inhalado, todo lo cual se usa en el tratamiento de la angina estable (cap. 31). El NO también se usa como fármaco tocolítico (cap. 48) y en el
tratamiento de los recién nacidos de término y casi de término con hipertensión pulmonar persistente e insuficiencia respiratoria hipoxémica aguda
(cap. 35). Los fármacos recién aprobados riociguat y vericiguat se usan también para tratar la hipertensión pulmonar (cap. 35); el riociguat sensibiliza
el sGC al NO endógeno y también estimula la enzima en forma directa.
La contraparte de la activación del sGC es la inhibición de la PDE selectiva para el GMP cíclico (es decir, la PDE5). Su inhibición se logra con los fármacos
sildenafilo, vardenafilo, tadalafilo y avanafilo. Los inhibidores de PDE5 se usan en el tratamiento de la disfunción eréctil (cap. 49) y la hipertensión
pulmonar (cap. 35).
Otros receptores en la membrana superficial celular
Vía del receptor JAK­STAT
Las citocinas (interleucinas, interferones, eritropoyetina y factores estimulantes de colonias) y ciertas hormonas (p. ej., hormona del crecimiento y
prolactina) emiten señales a elementos de transcripción a través de transductores de señal y activadores de la transcripción o STAT (signal
transducers and activators of transcription). Aunque no todos, la mayor parte de los receptores forman un complejo con múltiples subunidades
consistentes en subunidades separadas para unión de ligando y para transducción de señales. Los receptores no tienen actividad enzimática
intrínseca; en cambio, cada uno se relaciona con una tirosina cinasa intracelular distintiva llamada cinasa Janus o JAK (fig. 3–22A). La dimerización u
oligomerización del receptor inducida por un ligando aproxima al menos dos JAK, lo que ocasiona su transfosforilación y la fosforilación de los
extremos citoplásmicos de los receptores. Los STAT son atraídos a los receptores mediante sus dominios SH2 y a su vez se fosforilan por efecto de las
JAK. Los STAT fosforilados se translocan como dímeros al núcleo para regular la transcripción en forma directa. La vía completa se denomina vía JAK­
STAT. Existen cuatro JAK y siete STAT en los mamíferos que, según el tipo de célula y señal, se combinan de manera diferenciada para regular la
transcripción génica.
Figura 3–22
Señalización por otros receptores en la membrana superficial de la célula. A . Señalización de citocina a través de JAK/STAT. La dimerización inducida
por citocina de los receptores para citocina (se muestra en el esquema) da lugar a la fosforilación cruzada y activación de las JAK relacionadas. A su
vez, estas tirosina cinasas fosforilan al receptor, lo que conduce a la atracción de STAT mediante sus dominios SH2 y también a su fosforilación. La
fosforilación induce la dimerización de STAT. Los STAT fosforilados y dimerizados se translocan al núcleo para actuar en forma directa como factores
de transcripción. Ya se cuenta con inhibidores de JAK efectivos por vía oral, los JAKinibs, para usarlos como inmunomoduladores (véase el texto). B .
Señalización por receptores tipo toll. La dimerización inducida por PAMP de un TLR, en este caso en la membrana superficial de la célula, atrae
TIRAP/MAL a los dominios dimerizados TIR citosólicos del receptor. TIRAP/MAL activa múltiples copias de MyD88 (proteína 88 de diferenciación
mieloide) y las serina cinasas de la familia IRAK (cinasa relacionada con el receptor de interleucina­1), que atraen a la E3 ubiquitina liasa, el factor
relacionado con el receptor para TNF (TRAF, TNF receptor associated factor) 6. TRAF6 inicia fenómenos que conducen a la activación de NF­κB y AP­1 y
a la glucólisis, entre otros fenómenos dependientes de cada célula. SMOC se refiere al agregado de estas proteínas como centro de organización
supramolecular. Existen otros SMOC, dependiendo de la identidad y localización subcelular del TLR. C . Señalización mediante TNF­α a través de
TNFR1. La señalización mostrada es la relevante a la activación de NF­κB; existen otras actividades. La señalización inicia con la formación de
homotrímeros TNFR1 estabilizados por TNF­α (se muestra la forma soluble). El TNFR1 activado activa la proteína de muerte relacionada con TNFR tipo
1 (TRADD), que a su vez activa a la proteína­1 de interacción con el receptor (RIP1) cinasa y TRAF2. RIP1 y TRAF2 producen la activación de NF­κB al
fomentar la fosforilación mediante la cinasa 1 activada por TGF­β (TAK1), lo que causa degradación dependiente de la ubiquitina del inhibidor de NF­
κB, IKK (IκB cinasa); ello permite que el heterodímero p50/p65 se transloque al núcleo y active la transcripción de genes inflamatorios. El TNFR2
activado (no mostrado) activa en forma directa a TRAF2, entre otras proteínas. TRAF2 también induce la activación de la cinasa JNK, relevante para la
activación de los factores de transcripción c­Jun, AP­1 y ATF­2. Wajant y Siegmund (2019) analizan la señalización por TNF­α a través de los dos
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receptores.
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homotrímeros TNFR1 estabilizados por TNF­α (se muestra la forma soluble). El TNFR1 activado activa la proteína de muerte relacionada con TNFR tipo
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1 (TRADD), que a su vez activa a la proteína­1 de interacción con el receptor (RIP1) cinasa y TRAF2. RIP1 y TRAF2
producen la activación
de NF­κB al­ UES
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fomentar la fosforilación mediante la cinasa 1 activada por TGF­β (TAK1), lo que causa degradación dependiente
de la ubiquitina
del inhibidor de NF­
κB, IKK (IκB cinasa); ello permite que el heterodímero p50/p65 se transloque al núcleo y active la transcripción de genes inflamatorios. El TNFR2
activado (no mostrado) activa en forma directa a TRAF2, entre otras proteínas. TRAF2 también induce la activación de la cinasa JNK, relevante para la
activación de los factores de transcripción c­Jun, AP­1 y ATF­2. Wajant y Siegmund (2019) analizan la señalización por TNF­α a través de los dos
receptores.
Diversas citocinas que usan las vías JAK­STAT se emplean en la clínica, incluidos aldesleucina (una IL­2 recombinante) en el adenocarcinoma renal y el
melanoma metastásicos (cap. 72), IFN­α pegilado en la hepatitis viral (cap. 63), sargramostim (un factor estimulante de colonias de granulocitos­
macrófagos recombinante) para estimular la mielopoyesis, oprelvecina (una IL­11 recombinante) para estimular la maduración de los megacariocitos
y formas recombinantes de eritropoyetina para estimular la producción de eritrocitos (cap. 45). Los antagonistas del receptor incluyen dupilumab
(receptor para IL­4) para la dermatitis atópica, ustekinumab (receptores de IL­12 y IL­13) para la psoriasis en placa y la artritis psoriásica (cap. 75) y
pegvisomant (receptor recombinante pegilado para la hormona del crecimiento) en el tratamiento del exceso de hormona del crecimiento (cap. 46).
Hay varios inhibidores de JAK (conocidos como JAKinibs) que inhiben la unión de ATP con el dominio catalítico de JAK y se usan como
inmunomoduladores (cap. 39), en especial en el tratamiento de la colitis ulcerosa (cap. 55), psoriasis (cap. 75), mielofibrosis, policitemia vera y
enfermedad de injerto contra hospedador (cap. 71).
Receptores tipo toll
La señalización relacionada con el sistema inmunitario innato se realiza en parte por una familia de 10 receptores tipo toll (TLR, toll­like receptors) que
solo cruzan la membrana una vez. Estos receptores tienen una amplia expresión en los macrófagos, monocitos, células dendríticas y linfocitos
citolíticos naturales (cap. 38). Los TLR contienen un dominio grande para unión con ligando extracelular y una región citoplásmica carente de
actividad enzimática
intrínseca,
contiene
un dominio “TIR” que media las interacciones entre proteínas.
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Los ligandos
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TLRAll
constituyen
productos
microbianos
a menudo
como patrones moleculares relacionados con patógeno
(PAMP, pathogen­associated molecular patterns), que incluyen lipopolisacáridos, lipoproteínas bacterianas, RNA monocatenario y bicatenario, DNA
monocatenario que contiene CpG no metilado y DNA ribosómico bacteriano. Los TLR que detectan ácidos nucleicos se expresan en los endosomas; los
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Receptores tipo toll
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La señalización relacionada con el sistema inmunitario innato se realiza en parte por una familia de 10 receptores tipo toll (TLR, toll­like receptors) que
solo cruzan la membrana una vez. Estos receptores tienen una amplia expresión en los macrófagos, monocitos, células dendríticas y linfocitos
citolíticos naturales (cap. 38). Los TLR contienen un dominio grande para unión con ligando extracelular y una región citoplásmica carente de
actividad enzimática intrínseca, pero que contiene un dominio “TIR” que media las interacciones entre proteínas.
Los ligandos para TLR constituyen productos microbianos conservados a menudo referidos como patrones moleculares relacionados con patógeno
(PAMP, pathogen­associated molecular patterns), que incluyen lipopolisacáridos, lipoproteínas bacterianas, RNA monocatenario y bicatenario, DNA
monocatenario que contiene CpG no metilado y DNA ribosómico bacteriano. Los TLR que detectan ácidos nucleicos se expresan en los endosomas; los
otros están presentes en la superficie de la célula. La activación de los TLR produce una respuesta inflamatoria ante los patógenos, consistente sobre
todo en la producción de citocinas inflamatorias mediante incremento de la transcripción génica y diversos cambios celulares específicos.
El primer paso en la activación de los TLR por los ligandos es la dimerización de los receptores en homodímeros o heterodímeros (fig. 3–22B). La
dimerización atrae proteínas adaptadoras, que a su vez inducen el ensamble de un centro organizador supramolecular. Las proteínas en el andamiaje
incluyen proteína cinasas relevantes para la activación de los factores de transcripción NF­κB, proteína­1 activadora (AP­1, activating protein 1) e IRF­3,
así como de la glucólisis (Fitzgerald y Kagan, 2020).
Los agonistas para los TLR, en especial TLR3, TLR7, TLR8 y TLR9, han generado interés como modificadores inmunitarios en la quimioterapia para el
cáncer, como adyuvantes en vacunas utilizando agonistas tumorales específicos y, de manera tentativa, como profilaxis viral (Vanpouille­Box et al.,
2019). El imiquimod es un agonista de TLR7 aprobado para el tratamiento de la queratosis actínica, el carcinoma basocelular superficial y las verrugas
genitales y anales. Las vacunas recombinantes del virus herpes zóster y el virus de la hepatitis B están formuladas con agonistas de TLR4 y TLR9,
respectivamente. En la actualidad se investigan los antagonistas de los TLR para el tratamiento de enfermedades autoinmunitarias.
Receptores de TNF­α
Existen dos receptores principales para TNF­α (TNFR), TNFR1 y TNFR2; ambos son proteínas que cruzan una vez la membrana. TNFR1 es el que tiene
expresión más amplia y media la apoptosis inducida por TNF (véase la sección Apoptosis, más adelante); sin embargo, la señalización es más relevante
para la producción de citocinas inflamatorias, sobre todo mediante la activación del factor de transcripción NF­κB. La figura 3–22C resume la
señalización a través de TNFR1 hasta NF­κB. Los anticuerpos monoclonales humanizados contra TNF­α, como infliximab y adalimumab, son
importantes en el tratamiento de la artritis reumatoide y la enfermedad de Crohn.
Receptores hormonales nucleares
Los receptores hormonales nucleares en los seres humanos constituyen una superfamilia de 48 receptores que responden a ligandos capaces de
cruzar la membrana celular. Los receptores de esteroides (familia 3; cuadro 3–3) son un subgrupo que comprende los receptores para andrógenos,
estrógenos, glucocorticoides, mineralocorticoides y progesterona. Otros subgrupos cuyos receptores tienen capacidad para formar heterodímeros
con receptores de retinoide X (RXR) (familias 1 y 2) son los receptores para metabolitos lipídicos, xenobióticos, vitamina D y hormonas tiroideas. En
estas familias se incluyen los receptores que median la inducción de enzimas metabolizadoras de fármacos, como CYP3A4 (fig. 5–13). Los receptores
de otros subgrupos más tienen funciones desconocidas, algunas al parecer independientes de un ligando (Evans y Mangelsdorf, 2014). Las isoformas
de todos los receptores se generan mediante sitios de transcripción o de inicio de traducción alternos y corte y empalme diferencial del RNA.
CUADRO 3–3
RECEPTORES NUCLEARES HORMONALESa
LIGANDOS
F A M I L I Ab
RECEPTORES
1A
Receptores para hormona tiroidea:
Tiroxina (T4) y hormona
THR­α y THR­β
tiroidea
Receptores para ácido retinoico: RARα,
Tretinoína y alitretinoína
Tretinoína, tazaroteno, adapaleno (RARβ, γ), alitretinoína, etretinato,
RARβ y RARγ
derivadas de vitamina A
acitretina
Receptores activados por el
Leucotrieno B (PPARα),
Fibratos (PPARα), tiazolidinedionas (PPARγ)
1B
1C
FISIOLÓGICOS
EJEMPLOS DE AGENTES TERAPÉUTICOSc
Levotiroxina, liotironina
proliferador
PPARα,
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2:3 de
P peroxisoma:
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15­Desoxi­Δ12,14­PGJ
2
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PPARβ/δ y PPARγ
(PPAR
),
numerosos
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γ
ácidos grasos y
eicosanoides, entre otros
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de otros subgrupos más tienen funciones desconocidas, algunas al parecer independientes de un ligando (Evans y Mangelsdorf, 2014). Las isoformas
de todos los receptores se generan mediante sitios de transcripción o de inicio de traducción alternos y corte
y empalme diferencial
del RNA.
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CUADRO 3–3
RECEPTORES NUCLEARES HORMONALESa
LIGANDOS
F A M I L I Ab
RECEPTORES
1A
Receptores para hormona tiroidea:
Tiroxina (T4) y hormona
THR­α y THR­β
tiroidea
Receptores para ácido retinoico: RARα,
Tretinoína y alitretinoína
Tretinoína, tazaroteno, adapaleno (RARβ, γ), alitretinoína, etretinato,
RARβ y RARγ
derivadas de vitamina A
acitretina
Receptores activados por el
Leucotrieno B (PPARα),
Fibratos (PPARα), tiazolidinedionas (PPARγ)
proliferador de peroxisoma: PPARα,
15­Desoxi­Δ12,14­PGJ
1B
1C
PPARβ/δ y PPARγ
EJEMPLOS DE AGENTES TERAPÉUTICOSc
FISIOLÓGICOS
Levotiroxina, liotironina
2
(PPARγ), numerosos
ácidos grasos y
eicosanoides, entre otros
1H
Receptores hepáticos semejantes al
Hidroxicolesteroles (LXR),
receptor X: receptor hepático X (LXR) y
ácidos biliares (FXR)
Ácido obeticólico (FXR)
receptor farnesoide X (FXR)
1I
Receptores para vitamina D (VDR),
Vitamina D (VDR), 17β­
Calcitriol (VDR), calcipotrieno (VDR)
receptor de pregnano X (PXR) y
estradiol (PXR) y una
Nota: PXR y CAR se activan por una amplia variedad de fármacos que
receptor constitutivo de androstano
amplia variedad de
inducen las CYP, enzimas de fase 2 y transportadores de fármacos.
(CAR)
compuestos exógenos
(PXR y CAR)
2B
3A
3C
Receptores de retinoide X: RXRα, RXRβ
Alitretinoína derivada de
y RXRγ
vitamina A
Bexaroteno, alitretinoína
Receptores de estrógenos: ERα y ERβ
Estriol (ERα), estrona
Estrógenos; moduladores selectivos del receptor de estrógenos
(ERα)
(SERM) tamoxifeno, raloxifeno y toremifeno
Receptores de 3­cetosteroides:
Dihidrotestosterona y
Ésteres de testosterona (AR) y los antagonistas flutamida,
receptor androgénico (AR), receptor de
testosterona (AR),
bicalutamida, nilutamida y enzalutamida (AR); hidrocortisona,
glucocorticoides (GR), receptor
cortisol y corticosterona
prednisona y dexametasona (GR); los antagonistas espironolactona
mineralocorticoide (MR) y receptor de
(GR), aldosterona (MR),
y eplerenona (MR); progesterona, ésteres de progesterona y 19­nor
progesterona (PR)
progesterona (PR)
esteroides (PR)
aSe enlistan los receptores de los cuales se sabe que se activan con ligandos fisiológicos, con escepción de CAR, que se incluye en virtud de su importancia (junto
con la de PXR) para el procesamiento de xenobióticos.
b La nomenclatura de las familias y ligandos fisiológicos se tomó de Alexander et al., 2019.
cSe enumeran ejemplos de fármacos cuyas acciones terapéuticas están mediadas por uno o más miembros de la familia indicada, a menos que se especifique lo
contrario. Si es específico para un miembro particular de la familia, se indica entre paréntesis.
Los receptores hormonales nucleares constan de cinco o seis dominios, nombrados de la A a la F, con base en las regiones de secuencia y función
conservadas (fig. 3–23A). El extremo amino terminal del dominio A/B contiene una región de activación transcripcional (AF­1). Esta región está poco
conservada entre los receptores y a menudo se le considera autónoma. Sin embargo, puede controlarse mediante ligandos, dependiendo del receptor
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y es un objetivo para la modificación posterior a la traducción. El dominio C es el dominio de unión con el DNA. Este dominio está muy conservado
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entre
receptores,
de los
elementosTerms
que contribuyen
a la especificidad
del •elemento
de respuesta hormonal (HRE, hormone response
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element) (véase más adelante). El dominio D es la región bisagra entre el dominio de unión con DNA y el dominio E, el dominio de unión con ligando y
realiza numerosas funciones. Además de presentar un sitio de unión para el ligando, el dominio E participa en la dimerización del receptor y
cSe enumeran ejemplos de fármacos cuyas acciones terapéuticas están mediadas por uno o más miembros de la familia indicada, a menos que se especifique lo
contrario. Si es específico para un miembro particular de la familia, se indica entre paréntesis.
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Los receptores hormonales nucleares constan de cinco o seis dominios, nombrados de la A a la F, con base en las regiones de secuencia y función
conservadas (fig. 3–23A). El extremo amino terminal del dominio A/B contiene una región de activación transcripcional (AF­1). Esta región está poco
conservada entre los receptores y a menudo se le considera autónoma. Sin embargo, puede controlarse mediante ligandos, dependiendo del receptor
y es un objetivo para la modificación posterior a la traducción. El dominio C es el dominio de unión con el DNA. Este dominio está muy conservado
entre los receptores, aparte de los elementos que contribuyen a la especificidad del elemento de respuesta hormonal (HRE, hormone response
element) (véase más adelante). El dominio D es la región bisagra entre el dominio de unión con DNA y el dominio E, el dominio de unión con ligando y
realiza numerosas funciones. Además de presentar un sitio de unión para el ligando, el dominio E participa en la dimerización del receptor y
proporciona superficies para la unión de coactivadores y correpresores. También contiene una región para activación transcripcional dependiente de
ligando (AF­2). Cuando existe, el dominio F puede servir como sitio para la modificación posterior a la traducción.
Figura 3–23
Estructura y activación de un receptor hormonal nuclear. A . La estructura del dominio de un receptor hormonal nuclear (según Moore et al., 2006). Las
funciones de los dominios A al F se describen en el texto. B . Se muestra un receptor hormonal nuclear como dímero con un RXR. Cuando un agonista
(triángulo amarillo) y un coactivador se unen, se produce un cambio conformacional en la hélice 12 (barra negra) y se estimula la transcripción génica.
Los receptores de esteroides existen como monómeros en ausencia de un agonista. Los monómeros se encuentran en el citosol, en complejos con
proteínas chaperonas, aunque algunos pueden encontrarse también en el núcleo (caps. 48 y 50). Al unirse con un agonista, los receptores forman
homodímeros y los que están en el citosol se translocan al núcleo. Los homodímeros activados se unen con HRE, que en este caso son dos
repeticiones de seis nucleótidos invertidos separados por tres nucleótidos y son específicos para la identidad del homodímero. Los homodímeros
activados se relacionan al mismo tiempo con coactivadores, un grupo diverso de proteínas que producen la remodelación de la cromatina y las
modificaciones posteriores a la traducción de la maquinaria transcripcional general para facilitar la transcripción. Es probable que varios de los
receptores de esteroides tengan mecanismos de acción más allá del plano genómico. En el caso del receptor para estrógenos, una pequeña fracción
del receptor se relaciona con la membrana plasmática y, junto con un GPCR (GPER/GPR30), puede mediar las acciones rápidas de los estrógenos.
Los receptores que pueden unirse con RXR existen en el núcleo como homodímeros o heterodímeros (con RXR), al margen del agonista. Aquellos que
pueden funcionar como homodímeros o como heterodímeros con RXR incluyen los RXR mismos, los receptores tiroideos, receptores de vitamina D y
receptores de ácido retinoico (RAR). Los que requieren heterodimerización con RXR son los receptores activados por el proliferador de peroxisoma
(PPAR, peroxisome proliferator­activated receptors), receptor hepático X (LXR, liver X receptor), receptor farnesoide X (FXR, farnesoid X receptor),
receptor de pregnano X (PXR, pregnane X receptor) y el receptor constitutivo de androstano (CAR, constitutive androstane receptor). Los receptores
diméricos se unen con dos “medios sitios” de seis nucleótidos en tándem, cuya secuencia y espaciado dependen del dímero. En ausencia de un
agonista, algunos de los receptores se encuentran relacionados con correpresores para mantener el DNA condensado y para inhibir la transcripción
(fig. 3–23B). Los agonistas para los heterodímeros fomentan el intercambio de los correpresores unidos por coactivadores. Algunos heterodímeros de
RXR son permisivos o sea que pueden activarse por ligandos para RXR o para el receptor nuclear compañero; otros son no permisivos, lo que significa
que se activan solo por el ligando para el receptor nuclear acompañante (Evans y Mangelsdorf, 2014).
Un receptor hormonal nuclear unido con un agonista a menudo activa un gran número de genes para ejecutar un programa de diferenciación celular
o regulación metabólica. La actividad de un receptor en una célula determinada depende no solo del ligando, sino también de la proporción entre
coactivadores2023­12­21
y correpresores
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complejo.
Se cree que los moduladores selectivos del receptor para estrógenos (SERM, selective estrogen
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mecanismos
moleculares
acción
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receptor modulators) como el tamoxifeno y el raloxifeno (cap.de
48)laatraen
coactivadores
o correpresores,
dependiendo
de Blumenthal
la célula.
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Los medios por los cuales los agonistas de los receptores nucleares (en particular los de los glucocorticoides) ejercen acciones antiinflamatorias son
de una complejidad considerable, más allá del modelo tradicional de activación génica (Hardy et al., 2020). Sobresalen los mecanismos de
(fig. 3–23B). Los agonistas para los heterodímeros fomentan el intercambio de los correpresores unidos por coactivadores. Algunos heterodímeros de
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RXR son permisivos o sea que pueden activarse por ligandos para RXR o para el receptor nuclear compañero; otros son no permisivos, lo que significa
que se activan solo por el ligando para el receptor nuclear acompañante (Evans y Mangelsdorf, 2014).
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Un receptor hormonal nuclear unido con un agonista a menudo activa un gran número de genes para ejecutar un programa de diferenciación celular
o regulación metabólica. La actividad de un receptor en una célula determinada depende no solo del ligando, sino también de la proporción entre
coactivadores y correpresores atraídos al complejo. Se cree que los moduladores selectivos del receptor para estrógenos (SERM, selective estrogen
receptor modulators) como el tamoxifeno y el raloxifeno (cap. 48) atraen coactivadores o correpresores, dependiendo de la célula.
Los medios por los cuales los agonistas de los receptores nucleares (en particular los de los glucocorticoides) ejercen acciones antiinflamatorias son
de una complejidad considerable, más allá del modelo tradicional de activación génica (Hardy et al., 2020). Sobresalen los mecanismos de
transrepresión que socavan las acciones de NF­κB y AP­1. La transrepresión puede incluir la competencia entre receptores nucleares diméricos y NF­
κB y AP­1 por los coactivadores, expresión aumentada de proteínas por los receptores diméricos que interfiere con la activación de tales factores de
transcripción y unión con los receptores diméricos para elementos de respuesta negativa (es decir, inhibición en cierta forma directa de la expresión
génica).
Enfermedades resultantes de la disfunción del receptor y de la vía
La alteración de los receptores y sus vías de señalización subsiguiente pueden ser causa de enfermedad. La pérdida de un receptor en un sistema de
señalización muy especializado puede causar un trastorno fenotípico (p. ej., la deficiencia del receptor de andrógenos y el síndrome de feminización
testicular; cap. 49). Las deficiencias en vías de señalización muy utilizadas tienen efectos amplios, como se observa en la miastenia grave (debido a la
alteración autoinmunitaria de la función del receptor colinérgico nicotínico; cap. 13) y en algunas formas de diabetes mellitus resistente a la insulina
(como resultado del agotamiento autoinmunitario de las células productoras de insulina y la interferencia con la función del receptor para insulina;
cap. 51). Las mutaciones en los GPCR causan diversas enfermedades monógenas (Schöneberg y Liebscher, 2021). Lo mismo sucede con mutaciones en
los conductos TRP (Moran, 2018). Ahora se sabe que muchas formas de cáncer surgen por mutaciones que resultan en actividad constitutiva de
receptores para factor de crecimiento y enzimas distales en la señalización de la vía Ras­MAPK o en la pérdida de supresores tumorales y otras
proteínas que regulan la proliferación celular (cap. 72).
Los polimorfismos frecuentes en los receptores y proteínas subsiguientes a la activación del receptor también pueden generar variabilidad en las
respuestas terapéuticas en poblaciones de pacientes de distintos orígenes geográficos y étnicos (Johnson, 2019).
VÍAS INTRÍNSECAS REGULADAS POR NUTRIENTES, ENERGÍA Y DAÑO CELULAR
Además de la regulación extrínseca a la célula del crecimiento celular mediado por factores de crecimiento y citocinas, las vías intrínsecas celulares
surgidas durante la evolución temprana de los eucariotas regulan el crecimiento y supervivencia celulares mediante la percepción de la disponibilidad
de nutrientes y del estado energético celular. Estas ancestrales vías sensoras de nutrientes consisten en la vía de la proteína cinasa activada por AMP
(AMPK, AMP­activated protein kinase) y la vía del objetivo de rapamicina (TOR, target of rapamycin), que actúan en oposición para controlar el
crecimiento celular y el proceso de autofagia (González et al., 2020). La autofagia es una vía de degradación intracelular que es importante para la
supervivencia de la célula durante situaciones de agresión o daño celulares. La muerte celular programada (apoptosis) también tiene una regulación
doble por factores extrínsecos que incluyen el TNF­α, el ligando Fas y el ligando inductor de apoptosis relacionado con el TNF (TRAIL, TNF­related
apoptosis­inducing ligand), así como por vías intrínsecas que perciben el daño celular. El desarrollo y renovación de órganos requiere un equilibrio
entre el crecimiento y supervivencia de la población celular y la muerte y eliminación de las células y tanto la autofagia como la apoptosis son
importantes para la función normal del tejido y la célula. Sin embargo, las vías anormales de autofagia o apoptosis participan en diversos procesos
patológicos y la modificación farmacológica de estas vías puede tener relevancia terapéutica en tales enfermedades, incluidas las neurodegenerativas
y cánceres resistentes a fármacos y radiación.
Vías AMPK y TOR
La AMPK es una proteína cinasa de serina/treonina que existe como complejo heterotrimérico consistente en una subunidad α catalítica y
subunidades reguladoras β y γ. La activación natural de AMPK ocurre en el citoplasma y se activa por lesión energética (aumento celular en los índices
AMP:ATP o ADP:ATP) a través de la unión de AMP o ADP con sitios alostéricos en la subunidad γ de AMPK (fig. 3–24). La unión de AMP/ADP con estos
sitios es antagonizada por el ATP. La activación natural de AMPK también requiere fosforilación mediante LKB1 (cinasa B1 hepática) en Thr172 en el
asa de activación del dominio cinasa de AMPK.
Figura 3–24
Vías que regulan la proliferación celular, supervivencia celular y la autofagia. Los principales reguladores de la proliferación y crecimiento celulares
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(procesos anabólicos) y los que se oponen a la supervivencia (procesos catabólicos) y la autofagia son las vías de señalización de crecimiento
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extrínsecas
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y
vías
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glucosa
y
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celular.
Las
vías
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señalización
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conducen a la activación de mTORC1 (recuadros verdes) fomentan procesos anabólicos e inhiben la autofagia (recuadros rojos), mientras la agresión
celular causada por privación de nutrientes intensifica los procesos catabólicos y la autofagia mediante la activación de AMPK (recuadros rojos). Estas
sitios es antagonizada por el ATP. La activación natural de AMPK también requiere fosforilación mediante LKB1 (cinasa B1 hepática) en Thr172 en el
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asa de activación del dominio cinasa de AMPK.
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Figura 3–24
Vías que regulan la proliferación celular, supervivencia celular y la autofagia. Los principales reguladores de la proliferación y crecimiento celulares
(procesos anabólicos) y los que se oponen a la supervivencia (procesos catabólicos) y la autofagia son las vías de señalización de crecimiento (vías
extrínsecas) y vías intrínsecas reguladas por aminoácidos, glucosa y agresión celular. Las vías de señalización por factores de crecimiento que
conducen a la activación de mTORC1 (recuadros verdes) fomentan procesos anabólicos e inhiben la autofagia (recuadros rojos), mientras la agresión
celular causada por privación de nutrientes intensifica los procesos catabólicos y la autofagia mediante la activación de AMPK (recuadros rojos). Estas
vías interactúan no solo entre sí, sino también con otras vías que incluyen las de la apoptosis, como se describe en el texto. Véase la figura 39–2
respecto al efecto de los inhibidores de mTOR como inmunodepresores. Los FOXO de mamíferos (FOXO 1, 3, 4 y 6) son una subclase de factores de
transcripción Forkhead que funcionan sobre todo como activadores de la transcripción, con efectos en numerosas funciones celulares que incluyen la
apoptosis y la resistencia farmacológica; la señalización de la insulina y factores de crecimiento pueden inhibir la actividad de FOXO. Hay vías de
señalización adicionales no mostradas aquí que regulan el factor EB de transcripción (TFEB).
La activación no natural de AMPK ocurre por la privación de glucosa, liberación de Ca2+ del ER o aumento de Ca2+ en el núcleo. La activación de AMPK
como respuesta a la privación de glucosa (la vía lisosómica) es independiente de los cambios en los índices entre nucleótidos de adenina y está
mediada por la aldolasa, la enzima glucolítica que se une con fructosa 1,6­bisfosfato (FBP) y que la convierte en triosa fosfato. La privación de glucosa
conduce al agotamiento de 1,6­bisfosfato, lo que altera las interacciones de la aldolasa con el complejo v­ATPasa en la superficie del lisosoma; esto a
su vez fomenta las interacciones de LKB1 con el lisosoma, las cuales conducen a la fosforilación y activación de la AMPK relacionada con el lisosoma.
La activación no natural de AMPK por de Ca2+ en el citoplasma y el núcleo está mediada por CaMKK2 (cinasa 2 de la cinasa dependiente de
Ca2+/calmodulina [Ca2+/calmodulin­dependent kinase kinase­2]) como respuesta a la liberación dependiente de IP3 de Ca2+ desde el retículo
endoplásmico (activación citoplásmica) o a aumentos en el Ca2+ nuclear causados por daño al DNA (activación en el núcleo).
La AMPK activada fosforila más de 60 productos que a su vez activan vías catabólicas y desactivan vías anabólicas (biosintéticas), con efectos generales
agudos de aumento en la síntesis de ATP, reducción del consumo de ATP e inhibición del crecimiento celular (González et al., 2020). Un objetivo
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farmacológico importante de la AMPK es el complejo 1 del blanco mecanicista o de mamíferos para la rapamicina (mTORC1, mechanistic or
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TOR es una proteína cinasa de serina/treonina que se identificó por primera vez en levaduras mutantes que eran resistentes a los efectos inhibidores
La activación no natural de AMPK por de Ca2+ en el citoplasma y el núcleo está mediada por CaMKK2 (cinasa 2 de la cinasa dependiente de
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Ca2+/calmodulina [Ca2+/calmodulin­dependent kinase kinase­2]) como respuesta a la liberación dependiente
de IP3 de Ca2+DE
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endoplásmico (activación citoplásmica) o a aumentos en el Ca2+ nuclear causados por daño al DNA (activación en el núcleo).
La AMPK activada fosforila más de 60 productos que a su vez activan vías catabólicas y desactivan vías anabólicas (biosintéticas), con efectos generales
agudos de aumento en la síntesis de ATP, reducción del consumo de ATP e inhibición del crecimiento celular (González et al., 2020). Un objetivo
farmacológico importante de la AMPK es el complejo 1 del blanco mecanicista o de mamíferos para la rapamicina (mTORC1, mechanistic or
mammalian target of rapamycin complex 1), que se desactiva con la fosforilación de AMPK.
TOR es una proteína cinasa de serina/treonina que se identificó por primera vez en levaduras mutantes que eran resistentes a los efectos inhibidores
del crecimiento de la rapamicina. La rapamicina (sirolimús) y sus diversos compuestos estructural o mecanicistamente relacionados (everolimús,
temsirolimús) se describen con más detalle en el capítulo 39. En los seres humanos existen dos formas de mTOR con estructura y función diferentes: el
complejo 1 de mTOR (mTORC1) y el complejo 2 de mTOR (mTORC2); solo mTORC1 se inhibe con rapamicina. mTORC1 está bajo regulación intrínseca
por aminoácidos que producen la translocación de mTORC1 del citosol a los lisosomas y bajo regulación extrínseca por los factores de crecimiento
que activan la proteína G pequeña RHEB (homólogo de Ras enriquecido en el cerebro) en la superficie de los lisosomas. La figura 3–24 resume algunos
de los detalles de la regulación de mTORC1 y AMPK, así como los procesos anabólicos y catabólicos de la célula.
Autofagia
La autofagia es una vía catabólica de numerosos pasos, muy conservada y regulada de manera estricta, en la cual el contenido celular (incluidas
proteínas proclives a la agregación, organelos como las mitocondrias y peroxisomas y agentes infecciosos) son captados dentro de vesículas de doble
membrana conocidas como autofagosomas y luego son entregados a los lisosomas, donde se produce la fusión y el contenido del fagosoma es
degradado por proteasas lisosómicas (Bento et al., 2016). Las funciones de autofagia son eliminar el contenido celular dañado y proporcionar a las
células los sustratos para la obtención de energía y la biosíntesis en condiciones de agresión celular e inanición. La autofagia tiene una función
protectora importante en diversas enfermedades, incluidas las neurodegenerativas causadas por proteínas proclives a la agregación (p. ej.,
enfermedades de Alzheimer, Parkinson y Huntington) y ciertas enfermedades infecciosas (Salmonella typhi y Mycobacterium tuberculosis). Los genes
relacionados con la autofagia también pueden participar en la supresión tumoral; una capacidad autofágica disminuida se relaciona con un mal
pronóstico en los tumores cerebrales. Sin embargo, en los cánceres mamario, ovárico y prostático la autofagia puede funcionar como promotor
tumoral e intensifica la supervivencia de las células metastásicas en sitios con nutrientes limitados.
La autofagia está bajo el control directo de genes relacionados con la autofagia (conocidos como ATG, AuTophaGy genes). Se han identificado más de
30 ATG en células eucariotas y las proteínas ATG funcionan en varios pasos de la autofagia, incluida la inducción del empaque del cargamento,
formación de la vesícula, fusión de la vesícula con los lisosomas y degradación del contenido vesicular. La autofagia está regulada en mayor medida a
nivel celular por vías de señalización mediadas por el estrés y de factores de crecimiento que integran los resultados de la señalización mediante
mTORC1 y AMPK, como se describió antes (fig. 3–24). El mTORC1 activado inhibe la autofagia y la AMPK puede fomentarla.
Apoptosis
La apoptosis es un mecanismo altamente regulado de reacciones bioquímicas que conduce al redondeamiento de la célula, encogimiento del
citoplasma, condensación del núcleo y su contenido y cambios en la membrana celular que al final conducen a la presentación de fosfatidilserina en la
superficie exterior de la célula. La fosfatidilserina es reconocida como signo de la apoptosis por los macrófagos, que rodean y fagocitan a la célula
moribunda. Durante este proceso, la membrana de la célula apoptósica permanece intacta y la célula no libera su material citoplásmico o nuclear. Por
tanto, a diferencia de la muerte celular por necrosis, el proceso apoptósico no inicia una respuesta inflamatoria. Las alteraciones en las vías
apoptósicas están implicadas en el cáncer, enfermedades neurodegenerativas y enfermedades autoinmunitarias. Por lo tanto, el mantenimiento o la
restauración de las vías apoptósicas normales es la meta de grandes esfuerzos de desarrollo farmacológico para tratar enfermedades que implican
vías apoptósicas mal reguladas. La resistencia a diversos fármacos quimioterapéuticos contra el cáncer se relaciona con alteración funcional de las
vías apoptósicas.
Dos vías importantes de señalización inducen la apoptosis, la cual puede iniciarse por señales externas que tienen características en común con las de
los ligandos como TNF­α o por una vía interna activada por el daño al DNA, proteínas mal plegadas o ausencia de factores de supervivencia celular (fig.
3–25). El programa apoptósico es ejecutado por una familia grande de proteasas de cisteína llamadas caspasas. Las caspasas son proteasas
citoplásmicas muy específicas que están inactivas en células normales, pero que se activan con las señales apoptósicas.
Figura 3–25
Dos vías que conducen a la apoptosis. La apoptosis puede iniciarse por ligandos externos como TNF, ligando Fas o TRAIL, que se unen con receptores
transmembrana específicos (mitad izquierda de la figura: la vía externa). La activación conduce a la trimerización del receptor y la unión de moléculas
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adaptadoras, 2023­12­21
como TRADD,2:3
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intracelular. Los adaptadores atraen a la caspasa 8 y la activan, lo que da lugar a la división y
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activación de la caspasa efectora, la caspasa 3, que
activa la víadedelalaacción
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que lleva a la apoptosis.
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puede iniciarse por una vía
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intrínseca regulada por miembros de la familia Bcl­2 como Bax y Bcl­2. Bax se activa por el daño al DNA o por proteínas malformadas a través de p53
(mitad derecha de la figura). La activación de esta vía conduce a la liberación del citocromo c de las mitocondrias y a la formación de un complejo con
citoplásmicas muy específicas que están inactivas en células normales, pero que se activan con las señales apoptósicas.
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Figura 3–25
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Dos vías que conducen a la apoptosis. La apoptosis puede iniciarse por ligandos externos como TNF, ligando Fas o TRAIL, que se unen con receptores
transmembrana específicos (mitad izquierda de la figura: la vía externa). La activación conduce a la trimerización del receptor y la unión de moléculas
adaptadoras, como TRADD, al dominio de muerte intracelular. Los adaptadores atraen a la caspasa 8 y la activan, lo que da lugar a la división y
activación de la caspasa efectora, la caspasa 3, que activa la vía de la caspasa que lleva a la apoptosis. La apoptosis también puede iniciarse por una vía
intrínseca regulada por miembros de la familia Bcl­2 como Bax y Bcl­2. Bax se activa por el daño al DNA o por proteínas malformadas a través de p53
(mitad derecha de la figura). La activación de esta vía conduce a la liberación del citocromo c de las mitocondrias y a la formación de un complejo con
Apaf­1 y caspasa 9. La caspasa 9 se activa en el complejo e inicia la apoptosis mediante la activación de la caspasa 3. La vía externa o la intrínseca
pueden superar a las proteínas inhibidoras de la apoptosis (IAP), que de otra manera mantienen controlada la apoptosis.
La vía de señalización de la apoptosis externa o extrínseca, también llamada vía del receptor de muerte, puede activarse por ligandos como TNF, el
ligando Fas o TRAIL. Los receptores para TNF (receptor de TNF), el ligando Fas (Fas o Apo­1) y TRAIL (receptor de TRAIL) son receptores
transmembrana sin actividad enzimática, similares a la organización del receptor para TNF descrito antes. Al unirse con TNF, el ligando Fas o TRAIL, los
receptores sensibles forman un homotrímero, experimentan un cambio conformacional y atraen proteínas adaptadoras al dominio de muerte del
receptor. Las proteínas adaptadoras atraen luego a RIP1 (proteína 1 de interacción con el receptor; receptor­interacting protein 1) y la caspasa 8 para
formar un complejo que resulta en la activación de la caspasa 8. La activación de la caspasa 8 conduce a la activación de la caspasa 3, que inicia el
programa apoptósico. Los pasos finales de la apoptosis son realizados por las caspasas 6 y 7, que conducen a la degradación de enzimas, proteínas
estructurales y a la fragmentación del DNA características de la muerte celular (fig. 3–25).
La vía interna de la apoptosis puede activarse por señales como el daño al DNA, lo que aumenta la transcripción del gen p53, e implica daño a las
mitocondrias por parte de miembros proapoptósicos de la familia de proteínas Bcl­2. Esta familia incluye miembros proapoptósicos como Bax, Bak y
Bad, que causan daño a la membrana mitocondrial. También existen miembros Bcl­2 antiapoptósicos, como Bcl­2, Bcl­X y Bcl­W, que sirven para
inhibir el daño mitocondrial y son reguladores negativos del sistema. Cuando existe daño al DNA se activa la transcripción de p53 y la célula se detiene
en un punto de revisión del ciclo celular hasta que el daño se repara. Si no es posible reparar el daño, se inicia la apoptosis mediante miembros
proapoptósicos de Bcl­2, como Bax, el cual se activa, se transloca a las mitocondrias, supera a las proteínas antiapoptósicas e induce la liberación del
citocromo c y una proteína llamada SMAC (segundo activador de la caspasa derivado de las mitocondrias, second mitochondria­derived activator of
caspase). El SMAC se une e inactiva a las proteínas inhibidoras de apoptosis (IAP, inhibitor of apoptosis proteins), que en condiciones normales
previenen la activación de la caspasa. El citocromo c se combina en el citosol con otra proteína, Apaf­1 (factor 1 de proteasa activadora de la apoptosis,
apoptotic activating protease factor 1) y con la caspasa 9. Este complejo induce la activación de la caspasa 9 y al final, la activación de la caspasa 3. Una
vez activada, la caspasa 3 activa a su vez las mismas vías que la vía externa descrita antes, lo que lleva al desdoblamiento de proteínas, elementos del
citoesqueleto y de las proteínas reparadoras del DNA, con la condensación subsiguiente del DNA y vesiculación de la membrana, todo lo cual conduce
al final a la muerte celular y a la fagocitosis por parte de los macrófagos.
LOS SISTEMAS FISIOLÓGICOS DEBEN INTEGRAR MÚLTIPLES SEÑALES
Considérese la pared vascular de una arteriola (fig. 3–26). Varios tipos de células interactúan en este sitio, incluidas células de músculo liso vascular
(VSMC, vascular smooth muscle cells), células endoteliales, plaquetas y neuronas posganglionares simpáticas. La contractilidad de las células de
músculo liso vascular en la arteriola es el punto focal de formas de regulación locales y sistémicas relacionadas con la resistencia vascular. La
regulación local
mediante 2:3
sustancias
adenosina, CO2 y ácido láctico puede reducir la contractilidad de las células de músculo liso vascular y,
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
por tanto, fomenta el flujo sanguíneo local. La regulación sistémica de la homeostasis de la presión arterial ocurre por señalización endocrina,
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paracrina y neuronal.
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LOS SISTEMAS FISIOLÓGICOS DEBEN INTEGRAR MÚLTIPLES SEÑALES
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Considérese la pared vascular de una arteriola (fig. 3–26). Varios tipos de células interactúan en este sitio, incluidas células de músculo liso vascular
(VSMC, vascular smooth muscle cells), células endoteliales, plaquetas y neuronas posganglionares simpáticas. La contractilidad de las células de
músculo liso vascular en la arteriola es el punto focal de formas de regulación locales y sistémicas relacionadas con la resistencia vascular. La
regulación local mediante sustancias como la adenosina, CO2 y ácido láctico puede reducir la contractilidad de las células de músculo liso vascular y,
por tanto, fomenta el flujo sanguíneo local. La regulación sistémica de la homeostasis de la presión arterial ocurre por señalización endocrina,
paracrina y neuronal.
Figura 3–26
Interacción de múltiples sistemas de señalización que regulan las VSMC. Es esencial comprender que la actividad contráctil de las VSMC se basa en el
grado en que se forsforila la miosina y en particular la cadena ligera de la miosina (MLC). La miosina con cadena ligera fosforilada es capaz de
interactuar con los filamentos de actina para generar fuerza. Nótese que el grado de fosforilación es un equilibrio entre la MLC cinasa, que fosforila a
la MLC y la MLC fosfatasa, que desfosforila la MLC. La imagen presenta un compuesto de una VSMC; la relajación como respuesta a la epinefrina es más
adecuada en las VSMC en la vasculatura del músculo estriado. Véase el texto para obtener una explicación detallada de la señalización.
La activación del sistema nervioso simpático regula el tono de las VSMC en parte mediante la liberación de norepinefrina (NE, norepinephrine) desde
las neuronas posganglionares simpáticas. La norepinefrina se une con los receptores adrenérgicos α1 en las células de músculo liso vascular, lo que
activa la vía Gq­PLC­IP3­Ca2+. El Ca2+ se une y activa la CaM, que a su vez activa la cinasa de cadena ligera de miosina (MLCK). La MLCK fosforila las
cadenas ligeras de la miosina, lo que aumenta la actividad contráctil de las células de músculo liso vascular. La adrenalina liberada de la médula
suprarrenal activa la misma vía en la vasculatura de la mayor parte de los tejidos; sin embargo, en la vasculatura del músculo estriado la adrenalina se
une con los receptores adrenérgicos β2 y así activa la vía Gs­AC­AMP cíclico, igual que la histamina a través del receptor H2. El incremento del AMP
cíclico inhibe la MLCK mediante la fosforilación mediada por la PKA y produce un decremento en la contracción de las células de músculo liso vascular.
La activación diferencial de los receptores α1 frente a los β2 por la adrenalina constituye la base para la desviación del flujo sanguíneo de las vísceras y
la piel al músculo estriado en la respuesta de “luchar o huir”.
La activación del sistema renina­angiotensina­aldosterona, que es una respuesta a la disminución de la presión arterial o la pérdida de volumen de
líquido, produce angiotensina II (AngII). La unión de AngII con el receptor AT1 en las células de músculo liso vascular moviliza el Ca2+ almacenado a
través de la vía Gq­PLC­IP3­Ca2+ y aumenta la contractilidad de las dichas células, en parte por los mismos medios que la norepinefrina. No obstante, el
receptor AT1 activado por AngII también implica a G12/13 y, como consecuencia, activa la proteína G monomérica RhoA. RhoA activa la ROCK, la cual
fosforila e inhibe a la fosfatasa de la cadena ligera de la miosina. Por tanto, el aumento de la cadena ligera de la miosina fosforilada y, por ende, de la
actividad contráctil, es producto de las dos vías. Como se indicó, la activación de RhoA a través de G12/13 y los fenómenos iniciados por Gq y la arrestina
también están implicados en el crecimiento y proliferación de las células de músculo liso vascular.
La contracción de estas células se contrarresta con mediadores que fomentan la relajación y que incluyen NO, péptido natriurético auricular y, en la
vasculatura del músculo estriado, la adrenalina. El NO se forma en las células endoteliales por acción de la eNOS cuando se activa la vía Gq­PLC­IP3­
Ca2+, por ejemplo, a través de los receptores histaminérgicos H1 para la histamina y a través de iNOS cuando se induce esa isoforma (p. ej., con
citocinas proinflamatorias). El NO formado en el endotelio difunde hacia las células de músculo liso vascular y activa a la guanilil ciclasa soluble, la cual
cataliza la formación de GMP cíclico y conduce a la activación de PKG y la fosforilación tanto de MLCK como de la fosfatasa de la cadena ligera de la
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miosina para inhibir y estimular, respectivamente, sus actividades e inducir la relajación. La PKG también inhibe la liberación de Ca2+ mediada
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
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• Notice
desde las
reservas
intracelulares
y activa un conducto
de K•+ Privacy
para inhibir,
a través
de •laAccessibility
hiperpolarización, la actividad del conducto de Ca2+ tipo L, lo
que reduce la entrada de Ca2+ (no se muestra). Las concentraciones intracelulares de GMP cíclico también aumentan con la activación de los
La contracción de estas células se contrarresta con mediadores que fomentan la relajación y que incluyen NO, péptido natriurético auricular y, en la
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vasculatura del músculo estriado, la adrenalina. El NO se forma en las células endoteliales por acción de la eNOS cuando se activa la vía Gq­PLC­IP3­
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Ca2+, por ejemplo, a través de los receptores histaminérgicos H1 para la histamina y a través de iNOS cuando se induce esa isoforma (p. ej., con
citocinas proinflamatorias). El NO formado en el endotelio difunde hacia las células de músculo liso vascular y activa a la guanilil ciclasa soluble, la cual
cataliza la formación de GMP cíclico y conduce a la activación de PKG y la fosforilación tanto de MLCK como de la fosfatasa de la cadena ligera de la
miosina para inhibir y estimular, respectivamente, sus actividades e inducir la relajación. La PKG también inhibe la liberación de Ca2+ mediada por IP3
desde las reservas intracelulares y activa un conducto de K+ para inhibir, a través de la hiperpolarización, la actividad del conducto de Ca2+ tipo L, lo
que reduce la entrada de Ca2+ (no se muestra). Las concentraciones intracelulares de GMP cíclico también aumentan con la activación de los
receptores transmembrana para péptido natriurético mediante ANP y BNP, que se liberan de las células auriculares cardiacas y los miocardiocitos,
respectivamente, como respuesta a la sobrecarga de volumen.
Como consecuencia de la variedad de vías que afectan el tono arteriolar, un paciente con hipertensión puede ser tratado con uno o varios fármacos
que alteren la señalización a través de estas vías. Los fármacos usados a menudo para tratar la hipertensión incluyen antagonistas del receptor
adrenérgico β1 para reducir la secreción de renina, el primer paso en la síntesis de AngII; un inhibidor directo de la renina (aliskiren), inhibidores de la
ACE (p. ej., enalaprilo) para reducir la conversión de AngI en AngII, los bloqueadores del receptor para angiotensina subtipo 1 (AT1R) (p. ej., losartán)
para bloquear la unión de AngII con los AT1R en las VSMC, bloqueadores adrenérgicos α1 para impedir la unión de NE con las VSMC, nitroprusiato de
sodio para aumentar las cantidades de NO producidas y bloqueadores del conducto de Ca2+ (p. ej., nifedipina) para bloquear la entrada de Ca2+ a las
células de músculo liso vascular. Los antagonistas del receptor adrenérgico β1 también bloquearían el aumento de la frecuencia cardiaca y la presión
arterial mediado por el reflejo barorreceptor, que intentaría contrarrestar la disminución en la presión arterial producida por el tratamiento. Los
inhibidores de la ACE también inhiben la degradación de un péptido vasodilatador, la bradicinina (cap. 43). Por tanto, las elecciones y mecanismos son
complejos y el tratamiento apropiado para un paciente determinado depende de muchas consideraciones, incluidas la causa de hipertensión en ese
individuo, los posibles efectos colaterales del fármaco, la eficacia en una persona específica y el costo.
VÍAS DE SEÑALIZACIÓN Y ACCIÓN FARMACOLÓGICA
En todo este texto, las vías de señalización celular ocupan un lugar prominente para explicar las acciones de los agentes terapéuticos. No todas las vías
se mencionaron o se revisaron por completo en este capítulo. Para ayudar a los lectores a encontrar más información sobre la señalización y los sitios
de acción importantes, el cuadro 3–4 enumera figuras relevantes que aparecen en otros capítulos.
CUADRO 3–4
RESUMEN: SITIOS IMPORTANTES DE ACCIÓN FARMACOLÓGICA
RECEPTOR/VÍA
TÍTULO DE LA FIGURA
Proteínas de transporte farmacológico
Principales mecanismos por los cuales los transportadores median las respuestas
NÚMERO DE LA
FIGURA
Figura 4–3
farmacológicas adversas
CYP, metabolismo de fármacos
Localización de las CYP en la célula
Figura 5–2
Receptores nucleares
Inducción del metabolismo farmacológico por la transducción de señal mediada por
Figura 5–14
un receptor nuclear
Microbioma GI
Vía de un fármaco administrado por vía oral
Figura 6–1
Variante de CYP
Efectos del corte y pegado variante en CYP3A5 en la PK
Figura 7–3
Neurotransmisión general
Pasos implicados en la neurotransmisión excitatoria e inhibidora
Figura 10–3
Exocitosis
Base molecular de la exocitosis: acoplamiento y fusión de las vesículas sinápticas con
Figura 10–4
las membranas neuronales
Neurotransmisión colinérgica
Una unión neuroefectora colinérgica típica
Figura 10–6
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CAPÍTULO
3: Farmacodinámica:
moleculares
de la acción
farmacológica,
David R. Manning; Donald K. Blumenthal
Neurotransmisión
adrenérgica mecanismos
Una
unión neuroefectora
adrenérgica
típica
Figura 10–8
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AChE y su inhibición
Pasos involucrados en la hidrólisis de ACh por la AChE y en la inhibición y reactivación
de la enzima
Figura 12–2
Neurotransmisión general
Pasos implicados en la neurotransmisión excitatoria e inhibidora
Figura 10–3
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Exocitosis
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Base molecular de la exocitosis: acoplamiento y fusión de las vesículas
sinápticas con
Figura 10–4
las membranas neuronales
Neurotransmisión colinérgica
Una unión neuroefectora colinérgica típica
Figura 10–6
Neurotransmisión adrenérgica
Una unión neuroefectora adrenérgica típica
Figura 10–8
AChE y su inhibición
Pasos involucrados en la hidrólisis de ACh por la AChE y en la inhibición y reactivación
Figura 12–2
de la enzima
Transmisión en la NMJ
Perspectiva farmacológica de la placa motora terminal
Figura 13–4
Efectos α y β /sistema CV
Efectos comparativos de la infusión intravenosa de NE, EPI e INE.
Figura 14–2
β­bloqueadores y vasodilatación
Mecanismos subyacentes a las acciones de los β­bloqueadores vasodilatadores en los
Figura 14–4
vasos sanguíneos
Neurotransmisión serotoninérgica
Una sinapsis serotoninérgica
Figura 15–4
Neurotransmisión dopaminérgica
Una sinapsis dopaminérgica
Figura 15–9
Conductos catiónicos sensibles al voltaje
Conductos de Na+, Ca2+ y conductos de K+ sensibles al voltaje
Figura 16–2
Neurotransmisión
Liberación, acción y desactivación del transmisor
Figura 16–4
Conductos iónicos activados por ligando
Conductos iónicos pentaméricos activados por ligando
Figura 16–6
Receptor NMDA
Sitios de unión farmacológica en el receptor NMDA
Figura 16–9
Receptor GABAA
Sitios de unión farmacológica en el receptor GABAA
Figura 16–11
Señalización de la histamina
Vías de transducción de señal para los receptores de histamina
Figura 16–12
Acciones de los antidepresivos
Sitios de acción de los antidepresivos en las terminaciones nerviosas noradrenérgicas y
Figura 18–1
serotoninérgicas
Acción de la ketamina
Mecanismos propuestos para los efectos antidepresivos de la ketamina.
Figura 18–2
Conducto de Na+
Desactivación del conducto de Na+ intensificado por un fármaco anticonvulsivo
Figura 20–2
Receptor/conducto GABAA
Algunos fármacos anticonvulsivos intensifican la transmisión sináptica de GABA
Figura 20–3
Conducto de Ca2+ tipo T
Reducción de la corriente por los conductos de Ca2+ tipo T inducida por fármaco
Figura 20–4
anticonvulsivo
Señalización opioide
Esquema simplificado de la señalización del receptor opioide
Figura 23–2
Señalización catiónica
Estructura y función de los conductos de Na+ activados por voltaje
Figura 25–2
Acción de un anestésico local en los
Una visión estructural de la interacción de un anestésico local con un conducto de Na+
Figura 25–3
conductos de Na+
activado por voltaje
Cannabinoides
Síntesis y señalización de los cannabinoides
Figuras 26–2,
2 6 – 3, 2 6 – 4
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Diuréticos
y mecanismos
deacción
acción de
los diuréticos David R. Manning; Donald K. Blumenthal
Figura 29–5
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CAPÍTULO
3: Farmacodinámica: mecanismosSitios
moleculares
de la
farmacológica,
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Señalización de la aldosterona
Mecanismo diurético de los antagonistas de la aldosterona
Figura 29–6
Acción de un anestésico local en los
conductos de Na+
Una visión estructural de la interacción de un anestésico local con un conducto de Na+
activado por voltaje
Figura 25–3
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Cannabinoides
Síntesis y señalización de los cannabinoides
Figuras 26–2,
2 6 – 3, 2 6 – 4
Diuréticos
Sitios y mecanismos de acción de los diuréticos
Figura 29–5
Señalización de la aldosterona
Mecanismo diurético de los antagonistas de la aldosterona
Figura 29–6
Señalización de ANP
Transporte de Na+ en el túbulo colector medular interno y su regulación
Figura 29–7
Señalización del receptor V1
Mecanismo de acoplamiento del receptor V1­efector
Figura 29–11
Señalización del receptor V2
Mecanismo de acoplamiento del receptor V2­efector
Figura 29–12
Señales que regulan la liberación de
Mecanismos por los cuales la mácula densa regula la liberación de la renina
Figura 30–3
Sistema renina­angiotensina
Esquema de los brazos opositores en el RAS
Figura 30–4
Señales que regulan la presión arterial
Principios de la regulación de la presión arterial y su modificación con fármacos
Figura 32–3
Acoplamiento E­C
Acoplamiento de excitación­contracción cardiaca y fármacos inotrópicos positivos
Figura 33–6
Señalización NO/cGMP en la PAH
Estimulantes de la señalización NO/cGMP
Figura 35–3
Señalización de cAMP en la PAH
Agonistas del receptor de membrana que aumentan el cAMP
Figura 35–4
señalización PLC en la PAH
Agonistas del receptor de membrana que inhiben la activación de la fosfolipasa C
Figura 35–5
Señalización del endotelio­músculo liso
Interacciones entre el endotelio y el músculo liso vascular en la PAH
Figura 35–7
Señalización agregante
Adhesión y agregación plaquetarias
Figura 36–1
Señalización coagulante
Principales reacciones en la coagulación sanguínea
Figura 36–2
Señalización fibrinolítica
Fibrinólisis
Figura 36–3
Coagulación sanguínea y su prevención
Sitios de acción de fármacos antiplaquetarios
Figura 36–7
LDLR y endocitosis
Regulación del ciclo vital del receptor de LDL
Figura 37–5
Activación del linfocito T
Activación de linfocito T: puntos de control de coestimulación y coinhibición
Figura 38–3
Ligandos del receptor del linfocito T
Señalización TCR y su modulación mediante correceptores y anticuerpos
Figura 38–4
Respuesta inflamatoria de leucocitos
La respuesta inflamatoria del leucocito
Figura 38–6
Señalización del linfocito T
Activación del linfocito T y sitios de acción de los fármacos inmunodepresores
Figura 39–2
Señalización de esfingosina­1­fosfato
Formación de S1P y acción en S1P1R; fingolimod y su metabolito activo.
Figura 39–3
Receptores prostanoides
Receptores prostanoides y sus principales vías de señalización
Figura 41–1
Señalización eicosanoide
Receptores eicosanoides humanos
Cuadro 41–4
renina
(TCR)
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Acción3:
delFarmacodinámica:
probenecid; transporte
de
Perspectiva
farmacológica
del transporte
renal deDavid
urato yR.
suManning;
inhibición con
fármacos.
Figura 42–2
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CAPÍTULO
mecanismos
moleculares
de la acción
farmacológica,
Donald
K. Blumenthal
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Señalización inflamatoria; asma
Mecanismo de acción antiinflamatoria de los corticoesteroides en el asma
Figura 44–7
Señalización de esfingosina­1­fosfato
Formación de S1P y acción en S1P1R; fingolimod y su metabolito activo.
Figura 39–3
Receptores prostanoides
Receptores prostanoides y sus principales vías de señalización
Señalización eicosanoide
Receptores eicosanoides humanos
Cuadro 41–4
Acción del probenecid; transporte de
Perspectiva farmacológica del transporte renal de urato y su inhibición con fármacos.
Figura 42–2
Señalización inflamatoria; asma
Mecanismo de acción antiinflamatoria de los corticoesteroides en el asma
Figura 44–7
Receptor de la hormona de crecimiento
Mecanismos de acción de la GH y la PRL y del antagonismo de GHR
Figura 46–5
Señalización del receptor de oxitocina
Sitios de acción de la oxitocina y los fármacos tocolíticos en el miometrio uterino
Figura 46–8
Señalización del receptor de estrógenos
Mecanismo de acción molecular del ER nuclear
Figura 48–4
Guanilil ciclasa soluble y PDE5
Mecanismo de acción de los inhibidores de PDE5 en el cuerpo cavernoso
Figura 49–6
Receptor glucocorticoide (GR)
Mecanismos de regulación transcripcional por GR
Figura 50–8
Secreción de insulina
Regulación de la secreción de insulina en la célula β pancreática
Figura 51–3
Receptor de insulina
Vías de señalización de la insulina
Figura 51–4
Receptor de FGF
Complejo FGF23­FGFR­Klotho
Figura 52–4
Receptores H2 y de gastrina; secreción
Perspectiva farmacológica de la secreción gástrica y su regulación: la base para el
Figura 53–1
gástrica
tratamiento de los trastornos acidopépticos
receptores EP2 y EP4; transportadores
Mecanismo de acción de fármacos que alteran la secreción y absorción epitelial
iónicos GI; cAMP, cGMP
intestinales
Señalización emética
Perspectiva farmacológica de los estímulos eméticos
Figura 54–6
Receptor EGF
Acción dirigida en el EGFR en cáncer
Figura 71–1
Receptores para factor de crecimiento
Vía de señalización de la célula cancerosa y objetivos farmacológicos
Figura 71–2
Cinasas de linfocito B
Inhibidores de señalización en B células
Figura 71–4
Señalización de mTOR, AMPK, factor de
Advertencia mTOR: efecto de la rapamicina en la señalización del factor de crecimiento
Figura 71–5
Genes inducibles por hipoxia
Acción dirigida en genes sensibles al oxígeno e inducibles por hipoxia
Figura 71–6
Señalización apoptósica
El mimetismo de BH3 aumenta la apoptosis
Figura 71–10
Estructura de IgG1
Elementos IgG1 relevantes para su uso en el tratamiento del cáncer.
Figura 72–1
Receptor de EGF
Acción dirigida de un anticuerpo y dominios de EGFR (HER1).
Figura 72–2
Señalización linfocito T/ APC
Acción dirigida en puntos de verificación inmunitaria
Figura 72–3
Receptor de IL­2
Una perspectiva farmacológica de los receptores, vías de señalización e inhibidores de
Figura 72–4
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Figura 41–1
urato
(GHR)
Figura 54–4
crecimiento
IL­2
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Linfocitos
T CAR
del receptor
para antígeno
quimérico (CAR)
delR.linfocito
T mediante
Figura 72–6
CAPÍTULO
3: Farmacodinámica:
mecanismosActivación
moleculares
de la acción
farmacológica,
David
Manning;
DonaldunK. Blumenthal
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antígeno
blanco
en células
cancerosas.
Rodopsina
Perspectiva farmacológica de la señalización del fotorreceptor
Figura 74–9
Señalización linfocito T/ APC
Acción dirigida en puntos de verificación inmunitaria
UNIVERSIDAD DE EL SALVADOR ­ UES
Figura 72–3
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Receptor de IL­2
Una perspectiva farmacológica de los receptores, vías de señalización e inhibidores de
Figura 72–4
IL­2
Linfocitos T CAR
Activación del receptor para antígeno quimérico (CAR) del linfocito T mediante un
Figura 72–6
antígeno blanco en células cancerosas.
Rodopsina
Perspectiva farmacológica de la señalización del fotorreceptor
Figura 74–9
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
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CAPÍTULO 3: Farmacodinámica: mecanismos moleculares de la acción farmacológica, David R. Manning; Donald K. Blumenthal
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receptors
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Goodman & Gilman: Las bases farmacológicas de la terapéutica, 14e
CAPÍTULO 4: Transportadores de membrana y respuestas a los fármacos
INTRODUCCIÓN
Los transportadores son proteínas de membrana que se encuentran en todos los organismos. Estas proteínas controlan la entrada de iones
esenciales y nutrientes, así como la salida de desechos celulares, toxinas ambientales, fármacos y otros xenobióticos (fig. 4–1); con base en sus
funciones esenciales en la homeostasis celular, cerca de 2 000 genes del genoma humano, casi 7% del número total de genes, codifican para
transportadores o proteínas relacionadas con ellos. Las funciones de los transportadores de membrana pueden ser activas (necesitan energía) o
facilitadas (de equilibrio, no necesitan energía). Cuando analizan el transporte de los fármacos, los farmacólogos casi siempre se centran en los
transportadores de dos superfamilias principales: los transportadores ABC y SLC (Nigam, 2015).
Figura 4–1
Transportadores de membrana en vías farmacocinéticas. Los transportadores de membrana (T) participan en vías farmacocinéticas (absorción,
distribución, metabolismo y excreción de fármacos) y en consecuencia establecen las concentraciones sistémicas de los fármacos. Estas últimas
suelen originar los efectos terapéuticos y secundarios de los fármacos.
La mayor parte de las proteínas ABC (ATP binding cassette [casete de unión a ATP]) son transportadores activos primarios que dependen de la
hidrólisis del trifosfato de adenosina (ATP, adenosine triphosphate) para el bombeo activo de sus sustratos a través de las membranas. Entre los
transportadores mejor conocidos de la superfamilia ABC están la glucoproteína P (P­gp, codificada por ABCB1, también denominado MDR1) y el
regulador transmembrana de la fibrosis quística (CFTR, codificado por ABCC7).
La superfamilia SLC (solute carrier [portador de soluto]) comprende genes que codifican proteínas de transporte facilitado y transportadores activos
secundarios acoplados con iones. Se han identificado 65 familias SLC con cerca de 460 transportadores en el genoma humano (Pizzagalli et al., 2021).
Muchos transportadores SLC sirven de objetivo farmacológico o participan en la absorción y distribución de los fármacos. Los transportadores SLC
muy bien identificados son el transportador de serotonina SERT (serotonin transporters) y el transportador de dopamina DAT (dopamine transporter)
y ambos son objetivos terapéuticos de los antidepresivos.
ABREVIATURAS
Abreviaturas
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ABC: casete 2023­12­21
de unión con2:4
ATP
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ABCC:McGraw
familia CHill.
de casetes
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unión con ATP
ACE: enzima convertidora de angiotensina
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ABREVIATURAS
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Abreviaturas
ABC: casete de unión con ATP
ABCC: familia C de casetes de unión con ATP
ACE: enzima convertidora de angiotensina
AUC: área bajo la curva de concentración­tiempo
BBB: barrera hematoencefálica
BCRP: proteína de resistencia del cáncer mamario
BSEP: bomba exportadora de sales biliares
CAR: receptor constitutivo de androstano
CFTR: regulador transmembrana de la fibrosis quística
C Lint,all: depuración intrínseca hepática general
C Lmet: depuración metabólica
CPT­11: clorhidrato de irinotecán
Cryo­EM: microscopia crioelectrónica
CSF: líquido cefalorraquídeo
D A : dopamina
D A T : transportador de la dopamina
FDA: U.S. Food and Drug Administration
FXR: receptor farnesoide X
GABA: ácido γ­aminobutírico
G A T : transportador para la recaptación de GABA
GI: gastrointestinal
GLUT: transportador de glucosa
GSH, GSSG: glutatión reducido y oxidado
HCV: virus de la hepatitis C
HIV: virus de inmunodeficiencia humana
HMG­CoA: 3­hidroxi­3­metilglutaril coenzima A
HNF4α: factor nuclear hepático 4 α
5HT: serotonina
α­KG: α­cetoglutarato
L A T : transportador de aminoácidos grandes
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CAPÍTULO 4: Transportadores de membrana y respuestas a los fármacos, Kathleen M. Giacomini; Yuichi Sugiyama
LeuT:McGraw
transportador
leucina
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M A O : monoaminooxidasa
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HNF4α: factor nuclear hepático 4 α
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5HT: serotonina
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α­KG: α­cetoglutarato
L A T : transportador de aminoácidos grandes
LeuT: transportador de leucina
M A O : monoaminooxidasa
MATE1: proteína 1 de extrusión de múltiples fármacos y toxinas
MDMA: 3,4­metilenedioximetanfetamina
M F S : superfamilia de facilitadores principales
MRP: proteína de resistencia a múltiples fármacos
NBDs: dominios de unión con nucleótido
NE: noradrenalina
NET: transportador de norepinefrina
NME: nueva entidad molecular
NTCP: polipéptido cotransportador de Na+­taurocolato
OAT1: transportador 1 de aniones orgánicos
OCT1: transportador 1 de cationes orgánicos
OCTN: transportador nuevo de cationes orgánicos
O S Tα/β: heterodímero α/β transportador de solutos orgánicos
PAH: p­aminohipurato
PBPK: farmacocinética basada en la fisiología
PGE2 : prostaglandina E2
Pgp: glucoproteína P
PPARα: receptor α activado por el proliferador del peroxisoma
PXR: receptor de pregnano X
RAR: receptor de ácido retinoico
RFC: portador de folato reducido
RXR: receptor retinoide X
SERT: transportador de serotonina
SHP1: fosfatasa 1 que contiene el dominio de la región 2 de homología de Src
SLC: portador de soluto
SNP: polimorfismo de un solo nucleótido
SSRI: inhibidor selectivo de la recaptación de serotonina
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SXR: receptor
esteroide X
CAPÍTULO
4: Transportadores
de membrana y respuestas a los fármacos, Kathleen M. Giacomini; Yuichi Sugiyama
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T M D : dominio transmembrana
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SHP1: fosfatasa 1 que contiene el dominio de la región 2 de homología de Src
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SLC: portador de soluto
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SNP: polimorfismo de un solo nucleótido
SSRI: inhibidor selectivo de la recaptación de serotonina
SXR: receptor esteroide X
T M D : dominio transmembrana
URAT1: transportador 1 de ácido úrico
XOI: inhibidor de la xantina oxidasa
TRANSPORTADORES DE MEMBRANA EN LAS RESPUESTAS TERAPÉUTICAS DE LOS
FÁRMACOS
Farmacocinética
Los transportadores que son importantes en la farmacocinética casi siempre se localizan en los epitelios intestinal, renal y hepático, donde participan
en la absorción selectiva y eliminación de sustancias endógenas y xenobióticos, incluidos los fármacos. Los transportadores actúan de manera
conjunta con las enzimas que metabolizan los fármacos para eliminarlos a estos y sus metabolitos (fig. 4–2). Además, los transportadores de varios
tipos de células median la distribución de los fármacos en tejidos específicos (objetivos farmacológicos). Por el contrario, los transportadores también
sirven de barrera protectora en determinados órganos y tipos de células particulares. Por ejemplo, la glucoproteína P en la barrera hematoencefálica
protege al sistema nervioso central (SNC) de varios fármacos con estructuras diversas mediante sus mecanismos de salida.
Figura 4–2
Transportadores hepáticos de fármacos. Los transportadores de membrana (óvalos rojos con flechas) actúan de manera conjunta con las enzimas
metabolizadoras de fármacos de la fase 1 y fase 2 en el hepatocito para mediar la captación y salida de los fármacos y sus metabolitos.
Farmacodinámica: los transportadores como objetivos farmacológicos
Los transportadores de membrana son el objetivo de muchos fármacos que se utilizan en la clínica. El SERT (SLC6A4) es objetivo de un grupo
importante de fármacos antidepresivos, los inhibidores selectivos de la recaptación de serotonina (SSRI, selective serotonin reuptake inhibitors).
Otros transportadores de la recaptación de neurotransmisores sirven de objetivo farmacológico para antidepresivos tricíclicos, varias anfetaminas
(incluidos los fármacos similares a la anfetamina que se utilizan en el tratamiento del trastorno de déficit de la atención en niños) y anticonvulsivos.
Estos transportadores también pueden participar en la patogenia de trastornos neuropsiquiátricos, como las enfermedades de Alzheimer y
Parkinson. Un inhibidor del transportador de monoamina vesicular VMAT2 (SLC18A2), la tetrabenazina, ha recibido aprobación para el tratamiento
sintomático de la enfermedad de Huntington; es probable que el efecto de la tetrabenazina en el tratamiento de la corea se relacione con su capacidad
para agotar las reservas de aminas biógenas al inhibir su captación en las vesículas de almacenamiento mediante VMAT2. Los transportadores que no
son neuronales también son objetivos potenciales del fármaco (p. ej., transportadores de colesterol en la enfermedad cardiovascular,
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transportadores
de nucleósidos
cáncer,
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CAPÍTULO 4: Transportadores de membrana y respuestas a los fármacos, Kathleen M. Giacomini; Yuichi Sugiyama
en la hipertensión).
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En fecha reciente, la FDA aprobó los primeros fármacos en su clase que inhiben los transportadores de Na+­glucosa de la familia SLC5 (SGLT1 y SGLT2)
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Estos transportadores también pueden participar en la patogenia de trastornos neuropsiquiátricos, como las
enfermedadesDE
deEL
Alzheimer
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Parkinson. Un inhibidor del transportador de monoamina vesicular VMAT2 (SLC18A2), la tetrabenazina, ha Access
recibido
aprobación
para el tratamiento
sintomático de la enfermedad de Huntington; es probable que el efecto de la tetrabenazina en el tratamiento de la corea se relacione con su capacidad
para agotar las reservas de aminas biógenas al inhibir su captación en las vesículas de almacenamiento mediante VMAT2. Los transportadores que no
son neuronales también son objetivos potenciales del fármaco (p. ej., transportadores de colesterol en la enfermedad cardiovascular,
transportadores de nucleósidos en cáncer, transportadores de glucosa en síndromes metabólicos y cotransportadores de Na+­Cl− de la familia SLC12
en la hipertensión).
En fecha reciente, la FDA aprobó los primeros fármacos en su clase que inhiben los transportadores de Na+­glucosa de la familia SLC5 (SGLT1 y SGLT2)
para el tratamiento de la diabetes tipo 2. Estos fármacos, las gliflozinas, que incluyen canagliflozina, dapagliflozina y empagliflozina, reducen la
reabsorción renal de glucosa, lo que facilita la eliminación de esta en el riñón. Los tres fármacos se prescriben como tratamiento de segunda línea
para la diabetes sin control suficiente. La dapagliflozina ha resultado útil para tratar el deterioro de la función renal en pacientes con nefropatía
crónica, sin importar la presencia o ausencia de la diabetes (Heerspink et al., 2020). La dapagliflozina también se usa en el tratamiento de la
insuficiencia cardiaca con disminución de la fracción de expulsión (cap. 33).
Además, los transportadores renales para ácido úrico, como URAT1 (SLC22A12) (Nakata et al., 2020) y GLUT9 (SLC2A9) son un sitio de acción de
fármacos que están en estudio clínico para el tratamiento de la gota cuando se utilizan con un inhibidor de la xantina oxidasa (XOI, xanthine oxidase
inhibitor). Estos fármacos son uricosúricos y actúan por inhibición selectiva de la absorción renal de ácido úrico.
Las mutaciones en la proteína CFTR (regulador de la conducción transmembrana de la fibrosis quística, cystic fibrosis transmembrane conduction
regulator, o ABCC7) del conducto aniónico (cloro) transmembrana activado, disminuyen la función de esa proteína y hacen que las secreciones en los
pulmones y otros tejidos sean viscosas. Los fármacos dirigidos a CFTR pueden modular e intensificar su función en pacientes con fibrosis quística. El
primer fármaco de la clase, ivacaftor, se usa para el tratamiento de pacientes que tienen la mutación codificante CFTR­p.G551D. El ivacaftor, llamado
potenciador, aumenta la probabilidad de que el conducto mutante de cloro, CFTR­p.G551D, se mantenga en estado abierto. Otros fármacos, llamados
correctores (p. ej., tezacaftor, elexacaftor), intensifican el tránsito y la inserción de proteínas CFTR mutantes en la membrana plasmática. Ahora se
usan combinaciones de potenciadores y correctores de CFTR mutantes para pacientes con fibrosis quística que son homocigóticos o heterocigóticos
para la mutación frecuente por deleción CFTR­p.F508del (Gramegna et al., 2020).
Resistencia farmacológica
Los transportadores de membrana desempeñan una función central en el desarrollo de la resistencia a fármacos antineoplásicos, antivirales y
anticonvulsivos. La disminución de la captación de fármacos, como los antagonistas del folato, análogos de nucleósidos y complejos con platino, está
mediada por la disminución en la expresión de los transportadores de entrada indispensables para que estos compuestos ingresen al tumor. El
incremento de la salida de compuestos hidrófobos es un mecanismo de resistencia antineoplásica en análisis celulares de resistencia. La expresión
excesiva de la proteína 4 de resistencia a múltiples fármacos (MRP4) guarda relación con la resistencia a análogos de nucleósidos antivirales (Aceti et
al., 2015). Pgp (MDR1, ABCB1) y BCRP (ABCG2) pueden tener una expresión excesiva en células tumorales después de exponerse a fármacos
oncológicos citotóxicos y están implicados en la resistencia a estos compuestos, exportan los fármacos antineoplásicos, reducen su concentración
intracelular y vuelven a las células resistentes a los efectos citotóxicos de los fármacos. La modulación de la expresión y actividad de MDR1 para regular
la resistencia farmacológica podría ser un complemento útil en la farmacoterapia (Seelig, 2020).
TRANSPORTADORES DE MEMBRANA Y REACCIONES ADVERSAS A LOS FÁRMACOS
Los transportadores como controladores de la introducción y expulsión regulan la exposición de las células a carcinógenos químicos, toxinas
ambientales y fármacos. Por tanto, los transportadores tienen funciones cruciales en la toxicidad celular de estos compuestos. Las respuestas
farmacológicas adversas mediadas por un transportador casi siempre pueden clasificarse en tres categorías (fig. 4–3).
Disminución de la captación o excreción en órganos blanco
Aumento de la captación o disminución de la salida en los órganos blanco
Transporte alterado de compuestos endógenos en órganos blanco
Figura 4–3
Principales mecanismos por los que los transportadores median las respuestas adversas a los fármacos. Se ilustran tres casos. El dibujo a la izquierda
de cada ejemplo ilustra el mecanismo; el dibujo a la derecha muestra el efecto resultante en las concentraciones de los fármacos. (Dibujo superior).
Aumento de las
concentraciones
plasmáticas
del fármaco por una disminución de la captación, eliminación, o ambas, en los órganos encargados de la
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CAPÍTULO
Transportadores
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eliminación,4:
como
el hígado y losde
riñones.
(Dibujo
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aumento de la captación o una disminución de la salida del fármaco. (Dibujo inferior). Aumento de la concentración plasmática de un compuesto
endógeno (p. ej., un ácido biliar) debido a un fármaco que inhibe la entrada del compuesto endógeno al órgano eliminador. El diagrama también
puede representar el aumento de la concentración del compuesto endógeno en el órgano blanco debido a la inhibición de su salida por un fármaco.
Figura 4–3
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Principales mecanismos por los que los transportadores median las respuestas adversas a los fármacos. Se ilustran tres casos. El dibujo a la izquierda
de cada ejemplo ilustra el mecanismo; el dibujo a la derecha muestra el efecto resultante en las concentraciones de los fármacos. (Dibujo superior).
Aumento de las concentraciones plasmáticas del fármaco por una disminución de la captación, eliminación, o ambas, en los órganos encargados de la
eliminación, como el hígado y los riñones. (Dibujo intermedio). Incremento tóxico de la concentración del fármaco en los órganos debido a un
aumento de la captación o una disminución de la salida del fármaco. (Dibujo inferior). Aumento de la concentración plasmática de un compuesto
endógeno (p. ej., un ácido biliar) debido a un fármaco que inhibe la entrada del compuesto endógeno al órgano eliminador. El diagrama también
puede representar el aumento de la concentración del compuesto endógeno en el órgano blanco debido a la inhibición de su salida por un fármaco.
Los transportadores expresados en el hígado y los riñones, así como las enzimas metabólicas, son factores esenciales que determinan la presencia de
los fármacos en la sangre circulante, lo que afecta la exposición y por tanto la toxicidad para todos los órganos (fig. 4–3, imagen superior). Por
ejemplo, después de la administración oral de un inhibidor de la 3­hidroxi­3­metilglutaril­coenzima A reductasa (HMG­CoA) (p. ej., pravastatina), la
captación hepática eficaz del fármaco SLC en el primer paso mediante el polipéptido transportador de aniones orgánicos OATP1B1 aumenta al
máximo los efectos de tales compuestos en la HMG­CoA reductasa. La captación mediante OATP1B1 también reduce al mínimo el escape de los
fármacos a la circulación sistémica, donde pueden inducir respuestas adversas, como miopatía del músculo estriado.
Los transportadores que se expresan en tejidos que pueden ser objeto de toxicidad farmacológica (p. ej., encéfalo) o en las barreras de los mismos
(como la barrera hematoencefálica [BBB, blood­brain barrier]) pueden controlar de manera muy estricta las concentraciones locales de los fármacos y
de esta forma controlar la exposición de estos tejidos a los fármacos (fig. 4–3, dibujo central). Por ejemplo, las células endoteliales de la barrera
hematoencefálica están adheridas por uniones estrechas y algunos transportadores de salida se expresan en la cara luminal (la dirigida hacia la
sangre), lo que restringe la penetración de compuestos al encéfalo. Las interacciones de la loperamida y la quinidina son un buen ejemplo del control
que ejerce el transportador en la exposición farmacológica en este sitio. La loperamida es un opioide periférico utilizado en el tratamiento de la
diarrea y es sustrato de la glucoproteína P (Pgp), lo que previene la acumulación de loperamida en el SNC. La inhibición de la salida en la barrera
hematoencefálica mediada por la glucoproteína P incrementa la concentración de loperamida en el SNC y potencia los efectos secundarios. En
realidad, la administración conjunta de loperamida y quinidina, un inhibidor potente de la glucoproteína P, causa depresión respiratoria importante,
un evento adverso grave de la loperamida. La Pgp también se expresa en el intestino, donde su inhibición reduce la expulsión intestinal de
loperamida, lo que aumenta su concentración sistémica y contribuye al aumento en la concentración en el SNC.
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En ocasiones,
toxicidad inducida
fármacos
se debe a una
modificación
la distribución
por concentración
hística, mediada por los Page 6 / 39
CAPÍTULO
4:laTransportadores
de por
membrana
y respuestas
a los
fármacos, en
Kathleen
M. Giacomini;
Yuichi Sugiyama
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transportadores
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Por ejemplo,
biguanidas
), empleadas en el tratamiento de la diabetes mellitus tipo 2,
pueden causar acidosis láctica, un efecto secundario letal. Las biguanidas son sustratos de los transportadores 1 de cationes orgánicos (OCT1, organic
cation transporters) (SLC22A1), que tiene una expresión intensa en el hígado; de OCT2 (SLC22A2), expresado en el riñón; y de OCT3 (SLC22A3) en los
que ejerce el transportador en la exposición farmacológica en este sitio. La loperamida es un opioide periférico utilizado en el tratamiento de la
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diarrea y es sustrato de la glucoproteína P (Pgp), lo que previene la acumulación de loperamida en el SNC. La
inhibición de laDE
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en la barrera ­ UES
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hematoencefálica mediada por la glucoproteína P incrementa la concentración de loperamida en el SNC y potencia
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efectos secundarios. En
realidad, la administración conjunta de loperamida y quinidina, un inhibidor potente de la glucoproteína P, causa depresión respiratoria importante,
un evento adverso grave de la loperamida. La Pgp también se expresa en el intestino, donde su inhibición reduce la expulsión intestinal de
loperamida, lo que aumenta su concentración sistémica y contribuye al aumento en la concentración en el SNC.
En ocasiones, la toxicidad inducida por fármacos se debe a una modificación en la distribución por concentración hística, mediada por los
transportadores que incorporan el fármaco. Por ejemplo, las biguanidas (metformina), empleadas en el tratamiento de la diabetes mellitus tipo 2,
pueden causar acidosis láctica, un efecto secundario letal. Las biguanidas son sustratos de los transportadores 1 de cationes orgánicos (OCT1, organic
cation transporters) (SLC22A1), que tiene una expresión intensa en el hígado; de OCT2 (SLC22A2), expresado en el riñón; y de OCT3 (SLC22A3) en los
adipocitos y el músculo estriado. En animales de experimentación que carecen de OCT1, disminuyen mucho la captación hepática de las biguanidas y
el desarrollo de acidosis láctica. Estos resultados indican que la captación hepática de biguanidas mediada por OCT1 y la captación en tejidos como los
riñones y músculo estriado mediante otros OCT tienen una función importante en la facilitación de las concentraciones hísticas de biguanidas y por
tanto, del desarrollo de acidosis láctica (Wang et al., 2003), que podría ser resultado de la alteración de la función mitocondrial inducida por la
biguanida y el aumento consecuente en el flujo glucolítico (Dykens et al., 2008). Las biguanidas se exportan mediante el transportador MATE1 y la
inhibición de esta salida con diversos fármacos, incluidos los inhibidores de la tirosina cinasa, intensifica su toxicidad (DeCorter et al., 2012).
Los transportadores 1 de aniones orgánicos (OAT1, organic anion transporter 1) (SLC22A1), OCT1 y OCT2 son otros ejemplos de toxicidad relacionada
con el transportador. El OAT1 se expresa sobre todo en los riñones y causa la secreción tubular renal de compuestos aniónicos. Los sustratos de
OAT1, como la cefaloridina (un antibiótico β­lactámico) y el adefovir y cidofovir (antivirales), causan toxicidad renal. La expresión exógena de OCT1 y
OCT2 intensifica la sensibilidad de las células tumorales al efecto citotóxico de oxaliplatino para OCT1 y de cisplatino y oxaliplatino para OCT2 (Zhang
et al., 2006a). La toxicidad renal del cisplatino es modulada por el OCT2 presente en la membrana basolateral del túbulo proximal, así como por
transportadores de la familia SLC47, MATE1 (SLC47A1) y MATE2 (SLC47A2) en la membrana apical (Harrach and Ciarimboli, 2015).
Los fármacos pueden modular los transportadores de ligandos endógenos y por tanto tienen efectos adversos (fig. 4–3, dibujo inferior). Por ejemplo,
los ácidos biliares son captados sobre todo por el polipéptido cotransportador para Na+­taurocolato (NTCP, Na+­taurocholate cotransporting
polypeptide) y excretados en la bilis por la bomba de exportación de sales biliares (BSEP, bile salt export pump, ABCB11). La bilirrubina es captada por
OATP1B1 y se conjuga con ácido glucurónico; el glucurónido de bilirrubina se excreta en la bilis mediante MRP2 (ABCC2) y se transporta a la sangre
mediante MRP3. El glucurónido de bilirrubina en la sangre es recaptado al hígado mediante OATP1B1. La inhibición de estos transportadores con
fármacos puede causar colestasis o hiperbilirrubinemia.
Además del mecanismo para controlar las concentraciones plasmática e hística de los xenobióticos, los transportadores pueden actuar a través de
mecanismos más complicados que median las reacciones farmacológicas adversas. Por ejemplo, la Pgp participa en la expulsión de citocinas
inflamatorias de los linfocitos T y las células dendríticas. Hay que señalar que los ratones con deleción génica de Pgp pueden desarrollar inflamación
espontánea relacionada con el carcinoma hepatocelular (Seelig, 2020). Por tanto, los moduladores de Pgp pueden alterar la regulación de las
respuestas inmunitarias.
Los transportadores de captación y salida determinan las concentraciones plasmáticas e hísticas de los compuestos endógenos y xenobióticos, lo que
influye en la toxicidad sistémica o local específica de los fármacos.
MECANISMOS BÁSICOS DEL TRANSPORTE DE MEMBRANA
Transportadores y conductos
Tanto los conductos como los transportadores facilitan la penetración de iones inorgánicos y compuestos orgánicos a través de las membranas. Los
recientes avances tecnológicos en la cristalografía por rayos X y la microscopia crioelectrónica han generado numerosas estructuras nuevas de
conductos iónicos que permiten la comprensión de los mecanismos subyacentes a su función (Thompson y Baenziger, 2020). En general, los
conductos iónicos tienen dos clases arquetípicas: aquellos activados por voltaje y conductos activados por ligando. En ambos modelos, el conducto
forma un poro cerrado que controla el paso de iones conforme se desplazan a través del poro y de la membrana (Isacoff et al., 2013). La compuerta
puede estar controlada por voltaje o por unión con un ligando, lo que da lugar a dos estados principales, abierto y cerrado, que son fenómenos
estocásticos. Solo en el estado abierto, los conductos actúan como poros que permiten el flujo de los iones seleccionados en favor de sus gradientes
electroquímicos. Después de abrirse, los conductos suspenden la conducción de iones en función del tiempo, ya sea porque regresan a su estado
cerrado o porque se desactivan. Como se indicó antes, los fármacos llamados potenciadores (p. ej., ivacaftor) aumentan la probabilidad de que un
conducto se encuentre en estado abierto. Por el contrario, los transportadores forman complejos intermedios con el sustrato (soluto) y a
continuación, un cambio conformacional del transportador induce la translocación del sustrato al otro lado de la membrana. Como consecuencia, la
cinética del movimiento del soluto difiere entre los transportadores y los conductos. Las constantes de las velocidades de recambio de conductos
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típicos son 10
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de membrana y respuestas a los fármacos, Kathleen M. Giacomini; Yuichi Sugiyama
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complejos
intermedios
compuestos
específicos
), el transporte
de membrana mediado por transportadores se
caracteriza por la susceptibilidad a la saturación y la inhibición por análogos de los sustratos, como se describe en la sección “Cinética del transporte”.
estocásticos. Solo en el estado abierto, los conductos actúan como poros que permiten el flujo de los iones seleccionados en favor de sus gradientes
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electroquímicos. Después de abrirse, los conductos suspenden la conducción de iones en función del tiempo,
ya sea porqueDE
regresan
a su estado­ UES
Access
Provided by:la probabilidad de que un
cerrado o porque se desactivan. Como se indicó antes, los fármacos llamados potenciadores (p. ej., ivacaftor
) aumentan
conducto se encuentre en estado abierto. Por el contrario, los transportadores forman complejos intermedios con el sustrato (soluto) y a
continuación, un cambio conformacional del transportador induce la translocación del sustrato al otro lado de la membrana. Como consecuencia, la
cinética del movimiento del soluto difiere entre los transportadores y los conductos. Las constantes de las velocidades de recambio de conductos
típicos son 106 a 108 s−1, en tanto que las de los transportadores son, cuando mucho, 101 a 103 s−1. Debido a que un transportador particular forma
complejos intermedios con compuestos específicos (denominados sustratos), el transporte de membrana mediado por transportadores se
caracteriza por la susceptibilidad a la saturación y la inhibición por análogos de los sustratos, como se describe en la sección “Cinética del transporte”.
Los mecanismos básicos involucrados en el transporte de solutos a través de la membrana plasmática comprenden la difusión pasiva, la difusión
facilitada y el transporte activo; este último puede subdividirse en transporte primario y secundario, que se muestran en la figura 4–4.
Figura 4–4
Clasificación de los mecanismos de transporte de membrana. Los círculos rojos muestran el sustrato. Su tamaño es directamente proporcional a su
concentración. Las flechas señalan la dirección del flujo. Los cuadros negros corresponden al ion que proporciona la fuerza de impulso para el
transporte (su tamaño es directamente proporcional a la concentración del ion). Los óvalos azules señalan las proteínas transportadoras.
Difusión pasiva
La difusión simple de un soluto a través de la membrana plasmática consta de tres procesos: separación de la fase acuosa de la fase lipídica, difusión a
través de la capa doble de lípidos y nueva partición dentro de la fase acuosa del lado opuesto. La difusión de cualquier soluto (incluidos los fármacos)
ocurre siguiendo un gradiente de potencial electroquímico del soluto.
Difusión facilitada
Los transportadores de membrana pueden facilitar la difusión de iones y compuestos orgánicos a través de la membrana plasmática. La difusión
facilitada es una forma de transporte por la membrana mediado por transportadores y para el que no se necesita gasto de energía. Igual que en la
difusión pasiva, el transporte de compuestos ionizados y no ionizados por la membrana plasmática se lleva a cabo siguiendo su gradiente de potencial
electroquímico. En consecuencia, se logrará un equilibrio cuando los potenciales electroquímicos del compuesto sean iguales en ambos lados de la
membrana.
Transporte activo
El transporte activo es la forma de transporte de membrana que necesita gasto de energía. Es el transporte de solutos en contra de sus gradientes
electroquímicos, lo que permite la concentración de solutos en el interior de la membrana plasmática y la creación de energía potencial en el gradiente
electroquímico formado. El transporte activo es muy importante en la captación y salida de fármacos y otros solutos. Según la fuerza impulsora, el
transporte activo puede subdividirse en transporte activo primario y transporte activo secundario; en el primero, la hidrólisis de ATP se acopla en
forma directa con el transporte del soluto, mientras que en segundo el transporte usa la energía de un gradiente electroquímico existente establecido
mediante un proceso que utiliza ATP para desplazar el soluto contra su gradiente electroquímico. A su vez, el transporte activo secundario se
subdivide en cotransporte unidireccional y cotransporte bidireccional. El cotransporte unidireccional describe el desplazamiento del ion impulsor y el
soluto transportado en el mismo sentido. El cotransporte bidireccional ocurre cuando el ion impulsor y el soluto transportado se mueven en sentidos
contrarios, como cuando el intercambiador de sodio­calcio (SLC8A1) transporta 3Na+ hacia el espacio intracelular y 1 Ca2+ hacia el espacio extracelular
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de un miocito2023­12­21
cardiaco ventricular
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Transporte activo primario
El transporte de membrana que se acopla directamente con la hidrólisis de ATP se denomina transporte activo primario. Los transportadores ABC son
transporte activo puede subdividirse en transporte activo primario y transporte activo secundario; en el primero, la hidrólisis de ATP se acopla en
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forma directa con el transporte del soluto, mientras que en segundo el transporte usa la energía de un gradiente
electroquímico
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mediante un proceso que utiliza ATP para desplazar el soluto contra su gradiente electroquímico. A su vez, Access
el transporte
subdivide en cotransporte unidireccional y cotransporte bidireccional. El cotransporte unidireccional describe el desplazamiento del ion impulsor y el
soluto transportado en el mismo sentido. El cotransporte bidireccional ocurre cuando el ion impulsor y el soluto transportado se mueven en sentidos
contrarios, como cuando el intercambiador de sodio­calcio (SLC8A1) transporta 3Na+ hacia el espacio intracelular y 1 Ca2+ hacia el espacio extracelular
de un miocito cardiaco ventricular (fig. 4–4).
Transporte activo primario
El transporte de membrana que se acopla directamente con la hidrólisis de ATP se denomina transporte activo primario. Los transportadores ABC son
ejemplos de transportadores activos primarios. En las células de los mamíferos, los transportadores ABC median la salida unidireccional de solutos a
través de las membranas biológicas. Otro ejemplo del transporte activo primario que establece el gradiente entrante de Na+ y el saliente de K+ a través
de la membrana plasmática se encuentra en todas las células de los mamíferos, es la Na+,K+­ATP­asa.
Transporte activo secundario
En el transporte activo secundario, el transporte a través de una membrana biológica de un soluto S1 contra su gradiente de concentración utiliza la
energía del transporte de otro soluto S2 en favor de su gradiente de concentración. Según la dirección del transporte del soluto, los transportadores
activos secundarios se clasifican como cotransportadores unidireccionales o cotransportadores bidireccionales. Por ejemplo, usando el gradiente de
concentración de Na+ dirigido hacia el espacio intracelular a través de la membrana plasmática que mantiene la Na+,K+­ATP­asa, el desplazamiento
entrante de 3Na+ puede impulsar el movimiento saliente de 1Ca++ mediante el intercambiador Na+/Ca++, NCX. Este es un ejemplo de cotransporte
bidireccional, o transporte por intercambio, en el que el transportador desplaza S2 y S1 en sentidos opuestos. Los cotransportadores unidireccionales
transportan S2 y S1 en el mismo sentido, como en el transporte de glucosa hacia el cuerpo desde la luz del intestino delgado mediante el transportador
de Na+­glucosa SGLT1 (fig. 4–4).
CINÉTICA DEL TRANSPORTE
El flujo de un sustrato (velocidad de transporte) a través de una membrana biológica por procesos mediados por transportadores se caracteriza por la
saturabilidad. La relación entre el flujo v y la concentración del sustrato S en un proceso mediado por transportadores se determina con la ecuación
de Michaelis­Menten:
(Ecuación 4–1)
donde Vmax es la velocidad máxima de transporte y es proporcional a la densidad de los transportadores sobre la membrana plasmática y Km es la
constante de Michaelis, que representa la concentración de sustrato en la que el flujo es la mitad del valor Vmax. Km es una aproximación de la
constante de disociación del sustrato del complejo intermedio. Los valores de Km y Vmax pueden determinarse mediante el examen del flujo con
distintas concentraciones del sustrato. Al reorganizar la ecuación 4–1 se obtiene
(Ecuación 4–2)
Graficar v/S frente a v es un método conveniente para obtener los valores Vmax y Km, la gráfica de Eadie­Hofstee (fig. 4–5): la pendiente es –1/Km y la
intercepción con la x es Vmax.
Figura 4–5
Gráfica de Eadie­Hofstee de los datos de transporte. Las líneas negras muestran la curva hiperbólica de concentración­dependencia (v vs S, dibujo
izquierdo) y la transformación de Eadie­Hofstee de los datos de transporte (v/S vs v, dibujo derecho) de un sistema de transporte sencillo. Las líneas
azules muestran el transporte en presencia de un inhibidor competitivo (inhibición superable; alcanza la misma Vmax). Las líneas rojas muestran el
sistema en presencia de un inhibidor competitivo que reduce el número de sitios transportadores a la mitad, pero deja la Km de los sitios funcionales
sin cambios. La participación de múltiples transportadores con distintos valores de Km produce una gráfica de Eadie­Hofstee curva. En términos
algebraicos, la gráfica de Eadie­Hofstee de los datos cinéticos es equivalente a la gráfica Scatchard de los datos de unión en equilibrio (cap. 3).
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azules muestran el transporte en presencia de un inhibidor competitivo (inhibición superable; alcanza la misma Vmax). Las líneas rojas muestran el
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sistema en presencia de un inhibidor competitivo que reduce el número de sitios transportadores a la mitad, pero deja la Km de los sitios funcionales
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sin cambios. La participación de múltiples transportadores con distintos valores de Km produce una gráfica de Eadie­Hofstee curva. En términos
algebraicos, la gráfica de Eadie­Hofstee de los datos cinéticos es equivalente a la gráfica Scatchard de los datos de unión en equilibrio (cap. 3).
El transporte de un sustrato a través de la membrana mediado por transportadores también se caracteriza por la inhibición de otros compuestos. La
forma de inhibición puede clasificarse en uno de tres tipos: competitiva, no competitiva y sin competencia. La inhibición competitiva ocurre cuando
los sustratos y los inhibidores comparten un sitio de unión común en el transportador, lo que produce un incremento del valor aparente de Km en
presencia del inhibidor. El flujo de un sustrato en presencia de un inhibidor competitivo es
(Ecuación 4–3)
donde I es la concentración del inhibidor y Ki es la constante de inhibición. En la inhibición no competitiva se supone que el inhibidor tiene un efecto
alostérico en el transportador, no inhibe la formación de un complejo intermedio de sustrato y transportador, pero sí inhibe el proceso subsiguiente
de traslocación.
(Ecuación 4–4)
En la inhibición sin competencia se supone que los inhibidores forman un complejo solo con un complejo intermedio del sustrato y el transportador e
inhiben la translocación subsiguiente.
(Ecuación 4–5)
ESTRUCTURA Y MECANISMO DE LOS TRANSPORTADORES
Las predicciones de la estructura secundaria de las proteínas transportadoras de membrana basadas en el análisis hidropático indican que los
transportadores de membrana de las superfamilias SLC y ABC son proteínas que abarcan varias veces la membrana. Las estructuras cristalinas
emergentes se agregan a las ideas sobre los mecanismos de transporte mediante estas proteínas.
Transportadores ABC
La superfamilia ABC consiste en 49 genes y cada uno contiene una o dos regiones ABC conservadas. La región ABC es un dominio catalítico central de
estas proteínas que se unen e hidrolizan ATP; además, las proteínas utilizan la energía para el transporte ascendente de sus sustratos a través de la
membrana. En células eucariotas, casi todos los genes ABC transportan compuestos del citoplasma al exterior o hacia un compartimiento intracelular
(p. ej., retículo endoplásmico, mitocondrias y peroxisomas). Los transportadores ABC en las células procariotas participan en la captación de
compuestos esenciales que no pueden obtenerse mediante difusión pasiva (p. ej., azúcares, vitaminas y metales).
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Estudios recientes que usaron microscopia crioelectrónica (cryo­EM, cryo­electron microscopy) mejoraron la comprensión de la estructura y la
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función de los transportadores ABC. En general, estos transportadores se organizan de manera simétrica con dos componentes principales, un
dominio de unión con nucleótido (NBD, nucleotide­binding domain) y un dominio transmembrana (TMD, transmembrane domain), cada uno
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La superfamilia ABC consiste en 49 genes y cada uno contiene una o dos regiones ABC conservadas. La región
ABC es un dominio
catalítico
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estas proteínas que se unen e hidrolizan ATP; además, las proteínas utilizan la energía para el transporte ascendente
deby:sus sustratos a través de la
membrana. En células eucariotas, casi todos los genes ABC transportan compuestos del citoplasma al exterior o hacia un compartimiento intracelular
(p. ej., retículo endoplásmico, mitocondrias y peroxisomas). Los transportadores ABC en las células procariotas participan en la captación de
compuestos esenciales que no pueden obtenerse mediante difusión pasiva (p. ej., azúcares, vitaminas y metales).
Estudios recientes que usaron microscopia crioelectrónica (cryo­EM, cryo­electron microscopy) mejoraron la comprensión de la estructura y la
función de los transportadores ABC. En general, estos transportadores se organizan de manera simétrica con dos componentes principales, un
dominio de unión con nucleótido (NBD, nucleotide­binding domain) y un dominio transmembrana (TMD, transmembrane domain), cada uno
relacionado con una función (Lusvarghi et al., 2020). Los NBD en el lado citoplásmico se consideran los dominios motores de los transportadores ABC
y contienen fracciones conservadas (p. ej., fracción Walker­A, fracción de firma ABC) que participan en la unión e hidrólisis del ATP. Las estructuras
cristalinas de los cuatro transportadores ABC muestran un pliegue conservado y dos NBD que están en contacto entre sí. El mecanismo compartido
por estos transportadores parece implicar la unión del ATP con los NBD, lo que luego activa una conformación de los transportadores de cara al
exterior. La disociación de los productos de la hidrólisis del ATP parece generar una conformación de cara al interior. Los TMD participan en el
reconocimiento y traslocación de sustratos. Los TMD de la Pgp se forman a partir de una sola cadena peptídica, mientras que los TMD de BCRP se
forman a partir de un homodímero. En 1992 se propuso un modelo de flopasa para la salida mediada por Pgp y más tarde se validó (Seelig, 2020). En
resumen, las moléculas anfifílicas constituyen los sustratos de la Pgp; un sustrato anfifílico divide del ambiente acuoso intracelular a la bicapa lipídica
adyacente, donde se une con el transportador. Con la hidrólisis del ATP, el complejo transportador­sustrato cambia de conformación y el sustrato es
liberado hacia la región externa de la bicapa; luego, el sustrato se divide en el compartimiento extracelular acuoso. Se supone que se hidroliza una
molécula de ATP por cada molécula de fármaco transportada. Con la disociación de los productos de la hidrólisis, el transportador regresa a su
conformación de cara al interior, lo que permite la unión del ATP y el sustrato para repetir el ciclo (fig. 4–6). Aunque algunos transportadores de la
superfamilia ABC solo contienen un motivo ABC, forman homodímeros (BCRP/ABCG2) o heterodímeros (ABCG5 y ABCG8) que muestran una función de
transporte.
Figura 4–6
Modelo de función de transportador ABC. El transportador acepta una molécula de soluto en la superficie de la membrana citoplásmica cuando sus
NBD nucleotídicos están cargados por completo con ATP. La hidrólisis secuencial de las moléculas de ATP produce un cambio estérico y conduce a la
translocación y liberación del soluto en la superficie exterior de la membrana. El intercambio de ADP por ATP en ambos NBD completa el ciclo y
restaura el sistema a fin de que esté listo para transportar otra molécula de soluto.
Transportadores SLC
La superfamilia SLC de transportadores comprende un grupo diverso que incluye conductos, facilitadores y transportadores activos secundarios
(Hediger et al., 2013). Aunque su estructura es diversa, la mayor parte de los transportadores comparten ciertas características estructurales. Por
ejemplo, todos tienen dominios transmembrana (TMD), la mayor parte de ellos tiene entre siete y 12 TMD (Garibsingh y Schlessinger, 2019; Pizzagalli
et al., 2021). Las estructuras cristalinas revelan que los TMD tienen una seudosimetría y los pliegues de la proteína SLC se incluyen en dos grupos
principales, MFS y LeuT. Se han cristalizado varios miembros de la familia SLC2, transportadores de glucosa (GLUT) y se ha visto que tienen pliegues
MFS (superfamilia de facilitadores principales). Los transportadores frecuentes de la familia SLC22 también tienen el pliegue MFS, lo que implica que
tienen dos seudorrepeticiones de seis TMD. Las dos seudorepeticiones sirven como un mecanismo interruptor basculante que alterna el sitio de
unión con el sustrato hacia la superficie intracelular o extracelular de la membrana plasmática (fig. 4–7). Una vez que el sustrato se une con un sitio
accesible (p. ej., en el lado extracelular), los TMD cambian, exponen el sitio de unión a la otra superficie y liberan el sustrato. El ciclo de transporte es el
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sustrato se una y sea transportado en el sentido opuesto. Este mecanismo requiere que la unión de diferentes sustratos (los sustratos “de salida” y
“de entrada”) sea mutuamente excluyente; es decir, existe un solo sitio de unión que se reorienta. Otro plegamiento frecuente es el pliegue LeuT, que
et al., 2021). Las estructuras cristalinas revelan que los TMD tienen una seudosimetría y los pliegues de la proteína SLC se incluyen en dos grupos
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principales, MFS y LeuT. Se han cristalizado varios miembros de la familia SLC2, transportadores de glucosaUNIVERSIDAD
(GLUT) y se ha visto
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tienen pliegues
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MFS (superfamilia de facilitadores principales). Los transportadores frecuentes de la familia SLC22 tambiénAccess
tienen
el pliegue
MFS, lo que implica que
tienen dos seudorrepeticiones de seis TMD. Las dos seudorepeticiones sirven como un mecanismo interruptor basculante que alterna el sitio de
unión con el sustrato hacia la superficie intracelular o extracelular de la membrana plasmática (fig. 4–7). Una vez que el sustrato se une con un sitio
accesible (p. ej., en el lado extracelular), los TMD cambian, exponen el sitio de unión a la otra superficie y liberan el sustrato. El ciclo de transporte es el
siguiente: el sustrato llega al sitio de unión del sustrato en un lado de la membrana; la unión al sustrato induce cambios estructurales en la proteína
transportadora, lo que reorienta la abertura del sitio de unión al lado contrario. El sustrato se disocia del sitio de transporte, lo que permite que otro
sustrato se una y sea transportado en el sentido opuesto. Este mecanismo requiere que la unión de diferentes sustratos (los sustratos “de salida” y
“de entrada”) sea mutuamente excluyente; es decir, existe un solo sitio de unión que se reorienta. Otro plegamiento frecuente es el pliegue LeuT, que
forma un cúmulo basculante o un poro cerrado (Garibsingh y Schlessinger, 2019; Pizzagalli et al., 2021). Los transportadores de las familias SLC5 y
SLC6 tienen el pliegue LeuT, que funciona de una manera un poco distinta al interruptor basculante. En resumen, existen dos seudorrepeticiones de
cinco TMD y solo un brazo permite el acceso alternado del sitio de unión a las superficies intracelular o extracelular de la membrana plasmática. El otro
brazo es estacionario (fig. 4–7). Los sustratos de SLC incluyen especies iónicas y no iónicas, así como diversos xenobióticos y fármacos.
Figura 4–7
Dos modelos de acceso alternado de transporte de membrana. El poro cerrado representa un modelo que incluye dos dominios, un dominio
estacionario y uno móvil que experimenta una reorganización semejante a una bisagra para liberar el sustrato en el lado intracelular. El sustrato se
muestra como una esfera y el relámpago representa un activador, como el sodio. Este modelo se aplica para algunos transportadores SLC
dependientes de sodio. El interruptor basculante representa el modelo por el cual funcionan las proteínas de la superfamilia facilitadora principal
(MFS), como Lac Y. Este ejemplo describe el transporte facilitado de glucosa por GLUT2.
TRANSPORTE VECTORIAL
El transporte asimétrico a través de una monocapa de células polarizadas, como las epiteliales y endoteliales de los capilares cerebrales, se denomina
transporte vectorial (fig. 4–8). Este transporte es importante para la absorción de nutrientes y ácidos biliares en el intestino, así como en la absorción
intestinal de los fármacos (de la sangre hacia la luz). El transporte vectorial desempeña una función muy importante en la excreción hepatobiliar y
urinaria de los fármacos de la sangre hacia la luz. Además, se necesita transporte vectorial para la salida de fármacos procedentes del encéfalo a través
de las células endoteliales cerebrales y las células epiteliales del plexo coroideo. Los transportadores ABC median solo el flujo unidireccional, en tanto
que los transportadores SLC median la captación o la salida de fármacos. En cuanto a los compuestos lipófilos con permeabilidad de membrana
suficiente, los transportadores ABC solos pueden realizar el transporte vectorial sin la ayuda de transportadores de entrada. Con aniones y cationes
orgánicos relativamente hidrófilos, se necesitan transportadores coordinados de captación y salida en las membranas plasmáticas polarizadas a fin
de lograr el movimiento vectorial de solutos a través de un epitelio. Una configuración típica implica un transportador activo primario o secundario en
una membrana y un transportador pasivo en la otra. Los sustratos comunes de transportadores coordinados se transfieren con eficiencia a través de
la barrera epitelial.
Figura 4–8
Flujo transepitelial y transendotelial. El flujo transepitelial o transendotelial de fármacos necesita diferentes transportadores en las dos superficies de
la barrera epitelial o endotelial. Este diagrama representa el transporte por el intestino delgado (absorción), el riñón y el hígado (eliminación) y los
capilares cerebrales que constituyen la barrera hematoencefálica.
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CAPÍTULO 4: Transportadores de membrana y respuestas a los fármacos, Kathleen M. Giacomini; Yuichi Sugiyama
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Figura 4–8
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Flujo transepitelial y transendotelial. El flujo transepitelial o transendotelial de fármacos necesita diferentes transportadores en las dos superficies de
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la barrera epitelial o endotelial. Este diagrama representa el transporte por el intestino delgado (absorción), el riñón y el hígado (eliminación) y los
capilares cerebrales que constituyen la barrera hematoencefálica.
En el hígado se localizan en la membrana sinusoidal (hacia la sangre) varios transportadores con diferentes especificidades de sustrato. Estos
transportadores participan en la captación de ácidos biliares, aniones orgánicos anfipáticos y cationes orgánicos hidrófilos hacia el interior de los
hepatocitos. De manera similar, transportadores ABC en la membrana canalicular llevan estos compuestos hacia la bilis. Múltiples combinaciones de
transportadores para la captación (OATP1B1, OATP1B3, OATP2B1) y para la salida (MDR1, MRP2 y BCRP) participan en el transporte transcelular
eficiente de una gran variedad de compuestos en el hígado mediante el uso de un sistema celular modelo denominado “células con transfección
doble” que expresa tanto el transportador de captación como el de salida a ambos lados. En muchos casos, la superposición de especificidades de
sustratos entre transportadores de captación (familia OATP) y transportadores de salida (familia MRP) hace que el transporte vectorial de los aniones
orgánicos sea muy eficiente. También hay sistemas de transporte similares en el intestino, túbulos renales y células endoteliales de los capilares
cerebrales (fig. 4–8).
Es posible regular en forma transcripcional la expresión de transportadores en respuesta a un tratamiento farmacológico y estados fisiopatológicos,
lo que da por resultado la inducción o disminución del ácido ribonucleico mensajero (mRNA, messenger ribonucleic acid) de los transportadores.
Estudios recientes describen funciones importantes de los receptores nucleares tipo II que forman heterodímeros con el receptor para ácido 9­cis­
retinoico (RXR) en la regulación de enzimas que metabolizan fármacos y transportadores (cuadro 5–4, figs. 3–23, 5–13 y 5–14; véase también Urquhart
et al., 2007). Tales receptores incluyen PXR (NR1I2), CAR (NR1I3), FXR (NR1H4), PPARα y RAR. Excepto por CAR, todos son receptores nucleares activados
por ligando que, como los heterodímeros con RXR, se unen con elementos específicos en las regiones intensificadoras de los genes de interés. CAR
tiene actividad transcripcional constitutiva antagonizada por agonistas inversos, como el androstenol y el androstanol e inducida por los barbitúricos.
PXR, también llamado SXR en los seres humanos, se activa por esteroides sintéticos y endógenos, ácidos biliares y fármacos, como clotrimazol,
fenobarbital, rifampicina, sulfinpirazona, ritonavir, carbamazepina, fenitoína, sulfadimidina, paclitaxel e hiperforina (un constituyente de la hierba de
San Juan) (Guo y Zhou, 2015). La potencia de los activadores de PXR varía entre las especies, por lo que es probable que los roedores no sean un
modelo para los efectos en seres humanos. Existe una superposición de sustratos entre CYP3A4 y Pgp; además, PXR media la inducción conjunta de
CYP3A4 y Pgp, lo que sustenta su sinergia en la desintoxicación eficiente. Estudios recientes en hepatocitos humanos tratados con un activador de PXR
sugirieron que los niveles de expresión de las enzimas de la familia CYP aumentan mucho más que los de transportadores de las familias SLC o ABC
(Smith et al., 2014). En el cuadro 4–1 se resumen los efectos de la activación farmacológica de los receptores nucleares tipo II en la expresión de los
transportadores (Amacher, 2016).
CUADRO 4–1
Regulación de la expresión de transportadores mediados por receptores nucleares en seres humanos
Transportador
Factor de transcripción
Ligando
Efecto
MDR1 (P­gp)
PXR
Rifampicina
↑ Actividad transcripcional
↑ Expresión en duodeno
↓ Biodisponibilidad oral de digoxina
↓ AUC del talinolol
↑ Expresión en hepatocito primario
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Hierba
de San Juan
Expresión
en duodeno
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fármacos,
Kathleen M. Giacomini; ↑Yuichi
Sugiyama
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↓ Biodisponibilidad oral de digoxina
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↓ Biodisponibilidad oral de digoxina
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↓ AUC del talinolol
↑ Expresión en hepatocito primario
Hierba de San Juan
↑ Expresión en duodeno
↓ Biodisponibilidad oral de digoxina
MRP2
BCRP
CAR
Fenobarbital
↓ Expresión en hepatocito primario
PXR
Rifampicina
↑ Expresión en duodeno
Rifampicina/hiperforina
↑ Expresión en hepatocito primario
FXR
GW4064/ quenodesoxicolato
↑ Expresión en HepG2­FXR
CAR
Fenorbarbital
↑ Expresión en hepatocito
PXR
↑ Expresión en hepatocito primario
CAR
MRP3
PXR
Rifampicina
↑ Expresión en hepatocito
OATP1B1
SHP1
Ácido cólico
Efecto indirecto en HNF1α
PXR
Rifampicina
↑ Expresión en hepatocito
FXR
Quenodesoxicolato
↑ Expresión en hepatocito
FXR
Quenodesoxicolato
↑ Expresión en células de hepatoma
PXR
Rifampicina
↓ Expresión en hepatocito
PXR
Rifampicina
↓ Expresión en hepatocito
HNF4α
Berberina
↑ Expresión en hepatocito
BSEP
FXR
Quenodesoxicolato
↑ Actividad de trascripción
OSTα/β
FXR
Quenodesoxicolato/ GW4064
↑ Actividad de trascripción
Quenodesoxicolato
↑ Expresión en biopsias ileales
OATP1B3
OCT1
CAR, receptor constitutivo para androstano; FXR, receptor farnesoide X; HNF1α, factor nuclear 1α del hepatocito; PXR, receptor pregnano X; SHP1, componente
pequeño del heterodímero 1.
La metilación del ácido desoxirribonucleico (DNA, deoxyribonucleic acid) es un mecanismo subyacente al control epigenético de la expresión génica.
Hay informes de que la expresión hística selectiva de los transportadores se logra mediante la metilación del DNA (se inactiva en los tejidos sin los
transportadores), así como por la transactivación en los tejidos que expresan los transportadores. Los transportadores sometidos a control
epigenético en el hígado y el riñón incluyen OATP1B1, OATP1B3, OCT2, OAT1 y OAT3. Otros transportadores que están sujetos a la regulación
epigenética en diversas líneas celulares incluyen MDR1 y BCRP en la superfamilia ABC y OCT1, OCT3 y OCTN2 en la familia SLC22 (Hirota et al., 2017).
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CAPÍTULO
4: Transportadores
membrana y respuestas a los fármacos,
Kathleen M. Giacomini;
Yuichi Sugiyama
SUPERFAMILIAS
DE de
TRANSPORTADORES
EN EL GENOMA
HUMANO
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La superfamilia SLC
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La metilación del ácido desoxirribonucleico (DNA, deoxyribonucleic acid) es un mecanismo subyacente al control epigenético de la expresión génica.
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Hay informes de que la expresión hística selectiva de los transportadores se logra mediante la metilación del DNA (se inactiva en los tejidos sin los
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transportadores), así como por la transactivación en los tejidos que expresan los transportadores. Los transportadores sometidos a control
epigenético en el hígado y el riñón incluyen OATP1B1, OATP1B3, OCT2, OAT1 y OAT3. Otros transportadores que están sujetos a la regulación
epigenética en diversas líneas celulares incluyen MDR1 y BCRP en la superfamilia ABC y OCT1, OCT3 y OCTN2 en la familia SLC22 (Hirota et al., 2017).
SUPERFAMILIAS DE TRANSPORTADORES EN EL GENOMA HUMANO
La superfamilia SLC
La superfamilia SLC incluye 65 familias y representa cerca de 458 genes del genoma humano, cuyos productos son proteínas que abarcan toda la
membrana, algunas de ellas relacionadas con enfermedades genéticas (cuadro 4–2) (Pizzagalli et al., 2021). Varios sustratos, incluidos iones
inorgánicos y orgánicos, interactúan con transportadores SLC. Son transportadores muy selectivos que interactúan con moléculas de estructura
similar, como los transportadores de la familia SLC6 que interactúan con monoaminas específicas, incluidas dopamina (DAT, SLC6A2) y noradrenalina
(NET, SLC6A3). Por otra parte, existen transportadores que aceptan una amplia variedad de sustratos de diversos tipos químicos, como los
transportadores de iones orgánicos de la familia SLC22. A diferencia de los transportadores ABC que dependen de la hidrólisis del ATP para trasladar
de manera activa sus sustratos, los transportadores SLC son en su mayor parte facilitadores, aunque algunos son transportadores activos
secundarios (fig. 4–4). El conocimiento de la superfamilia SLC continúa en crecimiento; desde la edición anterior de esta obra se han identificado 13
nuevas familias SLC, que representan 63 genes.
CUADRO 4–2
Superfamilia de transportadores de solutos en seres humanos
Sustratos
Gen
Familia
farmacológicos
seleccionados
SLC1
Transportadores de glutamato y aminoácidos
Ejemplos de enfermedades relacionadas en el ser
humano
Aminoaciduria dicarboxílica
neutros de baja­Km
SLC2
Transportador facilitador de GLUT
SLC3
Subunidades pesadas de los transportadores de
Síndrome de Fanconi­Bickel
Melfalán
Cistinuria clásica tipo I
aminoácidos heteroméricos
SLC4
Transportador de bicarbonato
SLC5
Cotransportador de Na+ y glucosa
Dapagliflozina
Síndrome de malabsorción de glucosa y galactosa
SLC6
Transportador de neurotransmisores dependiente
Paroxetina, fluoxetina
Síndrome de deficiencia cerebral de creatina
Intolerancia a la proteína lisinúrica
Acidosis tubular renal distal
de Na+ y Cl−
SLC7
Transportador de aminoácidos catiónicos
Melfalán
SLC8
Intercambiador de Na+/Ca2+
Dimetilarginina asimétrica
SLC9
Intercambiador de Na+/H+
Diuréticos tiazídicos
Nefrolitiasis hipofosfatémica
SLC10
Cotransportador de Na+ y sales biliares
Benzodiazepina
Malabsorción de sales biliares
SLC11
Transportador de iones metálicos acoplados a H+
Hemocromatosis hereditaria
SLC12
Familia de cotransportadores de cationes
Síndrome de Gitelman
electroneutros­Cl−
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+
SLC13 2023­12­21
Cotransportador
sulfato/carboxilato­Na
Sulfato, conjugados de
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cisteína
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SLC14
Transportador de urea
Grupo sanguíneo de antígeno Kidd
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SLC11
Transportador de iones metálicos acoplados a H+
Hemocromatosis hereditaria
SLC12
Familia de cotransportadores de cationes
Síndrome de Gitelman
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electroneutros­Cl−
SLC13
Cotransportador de sulfato/carboxilato­Na+
Sulfato, conjugados de
cisteína
SLC14
Transportador de urea
SLC15
Cotransportador de H+­oligopéptidos
Valaciclovir
SLC16
Transportador de monocarboxilato
Salicilato, T3/T4,
Grupo sanguíneo de antígeno Kidd
Hipoglucemia hiperinsulinémica familiar 7
atorvastatina
SLC17
Transportador de glutamato vesicular
SLC18
Transportador de aminas vesiculares
Reserpina
Síndromes miasténicos
SLC19
Transportador de folato/tiamina
Metotrexato
Anemia que responde a tiamina
SLC20
Cotransportador de fosfato­Na+ tipo III
SLC21
Transportador de aniones orgánicos
Pravastatina
Síndrome de Rotor, hiperbilirrubinemia
SLC22
Transportador de iones orgánicos
Pravastatina, metformina
Deficiencia sistémica primaria de carnitina
SLC23
Transportador de ascorbato dependiente de Na+
Vitamina C
SLC24
Intercambiador de Na+/(Ca2+­K+)
Ceguera nocturna estacionaria congénita tipo 1D
SLC25
Transportador mitocondrial
Miocardiopatía hipertrófica familiar
SLC26
Intercambiador multifuncional de aniones
SLC27
Transportador de ácidos grasos
SLC28
Transportador de nucleósidos acoplado a Na+
Gemcitabina, cladribina
SLC29
Transportador facilitado de nucleósidos
Dipiridamol, gemcitabina
SLC30
Salida de cinc
SLC31
Transportador de cobre
Cisplatino
SLC32
Transportador vesicular de aminoácidos inhibitorios
Vigabatrina
SLC33
Transportador de acetil­CoA
Cataratas congénitas
SLC34
Cotransportador de Na+­fosfato tipo II
Raquitismo hipofosfatémico
SLC35
Transportador de nucleósidos­carbohidrato
Deficiencia de adhesión leucocítica tipo II
SLC36
Transportador de aminoácidos acoplado a H+
Enfermedad por almacenamiento de ácido siálico
(SLCO)
Salicilato, ciprofloxacina
Displasia epifisaria múltiple 4
Síndrome de ictiosis y prematuridad
Hipermanganesemia con distonía
d­serina, cicloserina
Iminoglicinuria
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SLC37 2023­12­21
Intercambiador
azúcar­fosfato/fosfato
Glucogenosis
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SLC38
Transportador de aminoácidos acoplado a Na+
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SLC35
Transportador de nucleósidos­carbohidrato
SLC36
Transportador de aminoácidos acoplado a H+
SLC37
Intercambiador de azúcar­fosfato/fosfato
SLC38
Transportador de aminoácidos acoplado a Na+
SLC39
Transportador de iones metálicos
Acrodermatitis enteropática
SLC40
Transportador basolateral de hierro
Hemocromatosis tipo IV
SLC41
Transportador de magnesio similar a MgtE
SLC42
Rh amonio T
SLC43
Transportador de aminoácidos similar al sistema L
Deficiencia de adhesión leucocítica tipo II
Access Provided by:
d­serina, cicloserina
Iminoglicinuria
Glucogenosis
Regulador de Rh nulo
Riboflavina
Albinismo oculocutáneo tipo 4
independiente de Na+
SLC44
Familia de transportadores similares a colina
Neurodegeneración de inicio en la infancia con ataxia,
atrofia óptica y alteración cognitiva, CONATOC
SLC45
Familia del cotransportador de H+/carbohidrato
Variación en la pigmentación de piel, pelo, ojos
SLC46
Familia del transportador de folato
Malabsorción de folato
SLC47
Familia de extrusión de múltiples fármacos y toxinas
(MATE)
SLC48
Familia del transportador de hem
SLC49
Familia del transportador relacionado con FLVCR
SLC50
Transportadores de salida de carbohidratos
SLC51
Transportadores de moléculas derivadas de
esteroides
SLC52
Familia del transportador de la riboflavina
Deficiencia de riboflavina, síndrome de Brown­Vialetto­
Van Laere
SLC53
Portadores de fosfato
SLC54
Portadores de piruvato mitocondrial
SLC55
Intercambiadores mitocondriales de catión/protón
SLC56
Sideroflexinas
SLC57
Familia del transportador de magnesio semejante a
NiPA
SLC58
Familia del transportador de magnesio semejante a
MagT
SLC59
Familia de cotransportadores unidireccionales de
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lisofosfatidilcolinade
dependientes
CAPÍTULO 4: Transportadores
membranadeysodio
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SLC60
Transportadores de glucosa
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NiPA
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SLC58
Familia del transportador de magnesio semejante a
Access Provided by:
MagT
SLC59
Familia de cotransportadores unidireccionales de
lisofosfatidilcolina dependientes de sodio
SLC60
Transportadores de glucosa
SLC61
Familia del transportador de molibdato
SLC62
Transportadores de pirofosfato
SLC63
Transportadores de esfingosina­fosfato
SLC64
Intercambiadores de Ca2+/H+ de Golgi
SLC65
Transportadores de colesterol tipo NPC
aa, aminoácido; Exch, intercambiador; T, transportador; T3/T4, hormona tiroidea.
Los roles fisiológicos de los transportadores SLC son importantes y diversos. Por ejemplo, los transportadores de las familias SLC1, SLC3, SLC6, SLC7,
SLC25 y SLC36, que se expresan en el intestino y el riñón, entre otros órganos, transportan diversos aminoácidos críticos para la síntesis de proteínas y
para la homeostasis energética. La glucosa y otros azúcares interactúan con los transportadores de las familias SLC2, SLC5 y SLC50 para la absorción,
eliminación y distribución celular. Las proteínas de las familias SLC11, SLC30, SLC39 y SLC40 transportan zinc, hierro y otros metales. Los miembros de
las familias SLC19, SLC46 y SLC52 transportan vitaminas hidrosolubles. Los transportadores de la familia SLC6 desplazan neurotransmisores a través
de la membrana plasmática; los integrantes de la familia SLC18 transportan neurotransmisores hacia las vesículas de almacenamiento.
Desde el punto de vista farmacológico, los transportadores SLC se han caracterizado por su función en la absorción, eliminación y distribución hística
de los fármacos, además de ser mediadores de las interacciones farmacológicas. Resulta notable que los transportadores de la familia de aniones
orgánicos portadores de soluto (SLCO, solute carrier organic anion) interactúan con diversos sustratos, incluidos estatinas y fármacos antidiabéticos.
Los transportadores de la familia SLC22 interactúan con fármacos aniónicos y catiónicos, incluidos muchos antibióticos y antivirales, para mediar la
secreción renal activa. Los transportadores SLC son proteínas de interés cada vez más frecuentes para el tratamiento de las enfermedades humanas.
Más de 100 transportadores SLC se relacionan con trastornos monógenos, por tanto, pueden ser un sitio útil de acción en el tratamiento de
enfermedades raras (Lin et al., 2015). Varios trastornos monógenos relacionados con mutaciones en los transportadores SLC se descubren en los
programas de detección neonatal, incluida la deficiencia de transportador de carnitina, un trastorno autosómico recesivo causado por mutaciones en
SLC22A5 (OCTN2). Muchos polimorfismos de un solo nucleótido (SNP, single nucleotide polymorphism) en los transportadores SLC han alcanzado un
nivel de relevancia importante en estudios que buscan la relación entre la enfermedad humana y el genoma. De manera notable, los polimorfismos en
SLC30A8 se relacionan con diabetes mellitus tipo 1 y los polimorfismos en SLC22A4 y SLC22A5 se relacionan con enfermedad intestinal inflamatoria.
Un estimado de 30% de los transportadores SLC en el genoma humano permanece huérfano; esto significa que ellos o sus ortólogos de especie
directa no tienen sustratos conocidos. Los esfuerzos recientes en la biología de los transportadores se enfocan en descubrir los sustratos de estos
transportadores y varios estudios han tenido éxito: se descubrió que SLC22A24 transporta conjugados de esteroides y participa en la homeostasis
esteroidea; SLC22A15 es un transportador de zwitterión que transporta zwitteriones endógenos y xenobióticos como la ergotioneína y la gabapentina
(Yee et al., 2019, 2020).
Superfamilia ABC
Los siete grupos de transportadores ABC son esenciales para muchos procesos celulares; las mutaciones en al menos 13 de los genes de los
transportadores ABC causan o contribuyen a trastornos genéticos en el ser humano (cuadro 4–3) (Arana y Altenberg, 2019). Además de conferir
resistencia a múltiples fármacos, un aspecto farmacológico importante de estos transportadores es la exportación de xenobióticos procedentes de los
tejidos sanos. En particular, MDR1/ABCN1, MRP2/ABCC2 y BCRP/ABCG2 participan en la disposición farmacológica general.
CUADRO 4–3
Superfamilia de casetes de unión de ATP (ABC)
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N ú m eReserved.
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Gen
Familia
de
miembros
Ejemplos de enfermedades relacionadas en el ser humano
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Los siete grupos de transportadores ABC son esenciales para muchos procesos celulares; las mutaciones en al menos 13 de los genes de los
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transportadores ABC causan o contribuyen a trastornos genéticos en el ser humano (cuadro 4–3) (Arana y Altenberg, 2019). Además de conferir
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resistencia a múltiples fármacos, un aspecto farmacológico importante de estos transportadores es la exportación de xenobióticos procedentes de los
tejidos sanos. En particular, MDR1/ABCN1, MRP2/ABCC2 y BCRP/ABCG2 participan en la disposición farmacológica general.
CUADRO 4–3
Superfamilia de casetes de unión de ATP (ABC)
Número
Gen
Familia
de
Ejemplos de enfermedades relacionadas en el ser humano
miembros
ABCA
ABC A
12
Enfermedad de Tangier (defecto en el transporte del colesterol; ABCA1), síndrome de Stargardt (defecto en el
metabolismo del retinal; ABCA4)
ABCB
ABC B
11
Síndrome de linfocitos desnudos tipo I (defecto en la presentación de antígeno; ABCB3 y ABCB4), colestasis
intrahepática progresiva familiar tipo 3 (defecto en la secreción de lípidos biliares; MDR3/ ABCB4), anemia
sideroblástica con ataxia ligada al cromosoma X (posible defecto en la homeostasis mitocondrial del hierro; ABCB7),
colestasis intrahepática familiar progresiva tipo 2 (defecto en la excreción biliar de ácidos biliares; BSEP/ABCB11).
ABCC
ABC C
13
Síndrome de Dubin­Johnson (defecto en la excreción biliar de glucurónido de bilirrubina; MRP2/ ABCC2),
seudoxantoma (mecanismo desconocido; ABCC6), fibrosis quística (defecto en la regulación de los conductos del
cloro; ABCC7), hipoglucemia hiperinsulinémica persistente de la infancia (defecto en la regulación de la conductancia
rectificadora de potasio hacia el interior de potasio en células B pancreáticas; SUR1/ABCC8)
ABCD
ABC D
4
Adrenoleucodistrofia (un posible defecto en el transporte o catabolismo peroxisómico de ácidos grasos de cadena
muy larga; ABCD1)
ABCE
ABC E
1
ABCF
ABC F
3
ABCG
ABC G
5
Sitosterolemia (defecto en la excreción biliar e intestinal de fitoesteroles; ABCG5 y ABCG8)
Distribución hística de transportadores ABC relacionada con fármacos
El cuadro 4–4 resume la distribución de los transportadores ABC humanos relacionados con fármacos en los tejidos participantes en la absorción,
eliminación o distribución de fármacos, junto con información sobre sus sustratos típicos. MDR1 (ABCB1), MRP2 (ABCC2) Y BCRP (ABCG2) se expresan
en la cara apical del epitelio intestinal, donde sirven para expulsar xenobióticos, lo que incluye muchos fármacos administrados por vía oral. MRP3
(ABCC3) se expresa en la cara basal de las células epiteliales.
CUADRO 4–4
Transportadores ABC que participan en la absorción, distribución y excreción de fármacos
NOMBRE
Distribución
en los
SUSTRATOS
tejidos
MDR1
Características: compuestos neutros o catiónicos voluminosos (muchos xenobióticos) Etopósido, doxorrubicina, vincristina; diltiazem,
(ABCB1)
verapamilo; indinavir, ritonavir, eritromicina, ketoconazol; testosterona, progesterona; ciclosporina, tacrolimús; digoxina, quinidina,
Hígado, riñón,
fexofenadina, loperamida
intestino,
BBB, BTB, BPB
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Características:
anfífilos
con carga
negativa
vincristina
(con
GSH), metotrexato;
conjugado GSH de LTC4, ácido etacrínico; glucurónido
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(ABCC1)
Ubicuo
de estradiol, bilirrubina; 3­sulfato de estrona; saquinavir; grepafloxacina; folato, GSH, GSSG.
MDR1
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EL SALVADOR
Características: compuestos neutros o catiónicos voluminosos (muchos xenobióticos) Etopósido,
doxorrubicina,DE
vincristina;
diltiazem, ­ UES
(ABCB1)
Access
Provided by: digoxina, quinidina,
verapamilo; indinavir, ritonavir, eritromicina, ketoconazol; testosterona, progesterona; ciclosporina,
tacrolimús;
Hígado, riñón,
fexofenadina, loperamida
intestino,
BBB, BTB, BPB
MRP1
Características: anfífilos con carga negativa vincristina (con GSH), metotrexato; conjugado GSH de LTC4, ácido etacrínico; glucurónido
(ABCC1)
de estradiol, bilirrubina; 3­sulfato de estrona; saquinavir; grepafloxacina; folato, GSH, GSSG.
Ubicuo
MRP2
Características: anfífilos de carga negativa Metotrexato, vincristina; conjugados GSH de LTC4, ácido etacrínico; glucurónidos de
(ABCC2)
estradiol, bilirrubina; sulfato de taurocolato; estatinas, antagonistas de los receptores AngII, temocaprilato; indinavir, ritonavir; GSH,
Hígado, riñón,
GSSG
intestino, BPB
MRP3
Características: anfífilos de carga negativa Etopósido, metotrexato; conjugados GSH de LTC4, PGJ2; glucurónidos de estradiol,
(ABCC3)
etopósido, morfina, paracetamol, himecromona, harmol; conjugados de sulfatos de sales biliares; glucocolato, taurocolato; folato; ácido
Hígado, riñón,
folínico.
intestino
MRP4
Características: análogos de nucleótidos 6­mercaptopurina, metotrexato; glucurónido de estradiol; sulfato de
(ABCC4)
dehidroepiandrosterona; AMP/GMP cíclico; furosemida, triclorometiazida; adefovir, tenofovir; cefazolina, ceftizoxima; folato, ácido folínico,
Ubicuo,
taurocolato (con GSH).
incluso BBB y
BCSFB
MRP5
Características: análogos de nucleótidos 6­mercaptopurina; AMP/GMP cíclico; adefovir
(ABCC5)
Ubicuo
MRP6
Características: doxorrubicina,b etopósido,b conjugado GSH de LTC4; BQ­123 (antagonista de pentapéptido cíclico en el receptor ETA
(ABCC6)
para endotelina)
Hígado, riñón
BCRP(MXR)
Características: compuestos neutros y aniónicos. Metotrexato, mitoxantrona, camptotecinas, SN­38, topotecán, imatinib; glucurónidos
(ABCG2)
de 4­metilumbeliferona, estradiol; conjugados de sulfato de dehidroepiandrosterona, estrona; nitrofurantoína, fluoroquinolonas;
Hígado,
pitavastatina, rosuvastatina; colesterol, estradiol, dantroleno, prazosina, sulfasalazina, ácido úrico, alopurinol, oxipurinol
intestino, BBB
MDR3
Características: fosfolípidos
(ABCB4)
Hígado
BSEP
Características: sales biliares
(ABCB11)
Hígado
ABCG5,
Características: esteroles vegetales
ABCG8
Hígado,
intestino
a La distribución hística se refiere a los tejidos que participan en la absorción, distribución y eliminación del fármaco.
b
Indica sustratos
y fármacos
resistencia (la citotoxicidad con incremento de la resistencia casi siempre se debe a la acumulación del fármaco).
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Aunque MDR3
(ABCB4), BSEP (ABCB11),
ABCG5 y ABCG8
no participan
de manera
directa
en la disposición
de fármacos,
inhibición tiene efectos secundarios
CAPÍTULO
4: Transportadores
de membrana
y respuestas
a los
fármacos,
Kathleen
M. Giacomini;
YuichisuSugiyama
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desfavorables.
Los transportadores ABC son fundamentales para la excreción vectorial de los fármacos en la orina o bilis y se expresan en los tejidos polarizados de
intestino
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a La distribución hística se refiere a los tejidos que participan en la absorción, distribución y eliminación del fármaco.
b Indica sustratos y fármacos citotóxicos con mayor resistencia (la citotoxicidad con incremento de la resistencia casi siempre se debe a la acumulación del fármaco).
Aunque MDR3 (ABCB4), BSEP (ABCB11), ABCG5 y ABCG8 no participan de manera directa en la disposición de fármacos, su inhibición tiene efectos secundarios
desfavorables.
Los transportadores ABC son fundamentales para la excreción vectorial de los fármacos en la orina o bilis y se expresan en los tejidos polarizados de
los riñones e hígado: MDR1, MRP2 y MRP4 (ABCC4) en la membrana del borde en cepillo del epitelio renal; MDR1, MRP2 y BCRP en la membrana
canalicular biliar de los hepatocitos; MRP3 y MRP4 en la membrana sinusoidal de los hepatocitos. Algunos transportadores ABC se expresan de
manera específica en el lado luminal de las células endoteliales o en las epiteliales, donde forman barreras para la entrada libre de compuestos
tóxicos a los tejidos: la barrera hematoencefálica (MDR1 y MRP4 en el lado luminal de las células endoteliales de los capilares cerebrales), el MRP1 en la
barrera hematorraquídea (sangre­líquido cefalorraquídeo), el MRP4 en el lado hemático basolateral del epitelio del plexo coroideo, el MRP1 en la
membrana basolateral de la barrera hematotesticular de las células de Sertoli del ratón y MDR1 en varios tipos de células del testículo humano y en la
barrera hematoplacentaria: MDR1, MRP2 y BCRP en el lado materno luminal y MRP1 en el lado fetal antiluminal de los trofoblastos placentarios. BCRP
se expresa en la membrana apical del epitelio de la glándula mamaria y experimenta una inducción intensa durante la lactancia.
Familia MRP/ABCC
Los sustratos de los transportadores de la familia MRP/ABCC son en su mayor parte aniones orgánicos (cuadro 4–4). Tanto MRP1 como MRP2 aceptan
conjugados de glutatión y glucurónido, conjugados sulfatados de ácidos biliares y aniones orgánicos no conjugados de naturaleza anfipática (cuando
menos una carga negativa y cierto grado de hidrofobicidad). También transportan fármacos antineoplásicos neutros o catiónicos, como alcaloides de
la vinca y antraciclinas, tal vez por un mecanismo de cotransporte o cotransporte unidireccional con glutatión reducido. El MRP3 también tiene una
especificidad de sustrato similar a la de MRP2, pero con una afinidad de transporte menor para conjugados de glutatión que MRP1 y MRP2. MRP3
retorna a la circulación sales biliares tóxicas y glucurónidos de bilirrubina. MRP4 acepta las moléculas con carga negativa, incluidos compuestos
citotóxicos (p. ej., 6­mercaptopurina y metotrexato), nucleótidos cíclicos, antivirales (p. ej., adefovir y tenofovir), diuréticos (p. ej., furosemida y
triclormetiazida) y cefalosporinas (p. ej., ceftizoxima y cefazolina). El glutatión permite a MRP4 aceptar el taurocolato y leucotrieno B4. La especificidad
de MRP5 es más reducida por sustratos y acepta fármacos análogos de nucleótidos y algunos fármacos importantes en la clínica contra el virus de
inmunodeficiencia humana (VIH). No se han identificado sustratos que expliquen el mecanismo de la enfermedad relacionada con MRP6, el
seudoxantoma.
BCRP/ABCG2
BCRP reconoce moléculas neutras y con carga negativa, lo que incluye compuestos citotóxicos (p. ej., topotecán, flavopiridol y metotrexato),
conjugados sulfatados de fármacos y hormonas (p. ej., sulfato de estrógenos), antibióticos (p. ej., nitrofurantoína y fluoroquinolonas), estatinas (p. ej.,
pitavastatina y rosuvastatina) y compuestos tóxicos encontrados en alimentos normales [fitoestrógenos, 2­amino­1­metilfenilimidazo[4,5­b]piridina
(PhIP) y feoforbida A, un catabolito de la clorofila]. Además, se han relacionado variantes genéticas en el transportador con la disposición del ácido
úrico, los XOI alopurinol y oxipurinol, hiperuricemia y gota.
Actividades fisiológicas de los transportadores ABC
La relevancia fisiológica de los transportadores ABC se ilustra de forma amplia en estudios realizados en animales con eliminación génica o de
pacientes con defectos genéticos en estos transportadores. Muchos transportadores ABC participan en la disposición de xenobióticos. Por ejemplo,
los ratones con deficiencia funcional de MDR1 son viables y fértiles y no presentan anormalidades fenotípicas evidentes aparte de su hipersensibilidad
a los efectos tóxicos de los fármacos. También existen datos notables sobre MRP1, MRP4, BCRP y BSEP. Se ha concluido lo siguiente: la ausencia
completa de los transportadores ABC relacionados con fármacos no es letal y puede permanecer oculta en ausencia de alteraciones exógenas
causadas por alimentos, fármacos o toxinas. Sin embargo, debe evitarse la inhibición de los transportadores ABC más importantes en términos
fisiológicos (en especial los que tienen relación directa con las enfermedades genéticas descritas en el cuadro 4–3) para disminuir la incidencia de
efectos colaterales farmacológicos.
Transportadores ABC en la absorción y eliminación de fármacos
Con respecto a la medicina clínica, MDR1 es el transportador ABC más importante identificado hasta ahora. La exposición sistémica a la digoxina oral
disminuye con la administración simultánea de rifampicina (un inductor de MDR1) y guarda una relación negativa con la expresión de la proteína
MDR1 en el intestino humano. MDR1 también se expresa en la membrana del borde en cepillo del epitelio renal y su función puede vigilarse con el uso
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de
digoxina (>70%
se excreta en de
la orina).
Todosylos
inhibidores
de fármacos,
MDR1 (p. ej.,
quinidina
verapamilo,Yuichi
valspodar
, espironolactona, claritromicina
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CAPÍTULO
4: Transportadores
membrana
respuestas
a los
Kathleen
M., Giacomini;
Sugiyama
ritonavirMcGraw
) reducen
mucho
la excreción
de digoxina
Los
fármacos
conPolicy
un intervalo
reducido (p. ej., digoxina, ciclosporina, tacrolimús)
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deben usarse con mucha cautela si hay posibilidades de que surjan interacciones farmacológicas basadas en MDR1.
Transportadores ABC en la absorción y eliminación de fármacos
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Con respecto a la medicina clínica, MDR1 es el transportador ABC más importante identificado hasta ahora. La exposición sistémica a la digoxina oral
disminuye con la administración simultánea de rifampicina (un inductor de MDR1) y guarda una relación negativa con la expresión de la proteína
MDR1 en el intestino humano. MDR1 también se expresa en la membrana del borde en cepillo del epitelio renal y su función puede vigilarse con el uso
de digoxina (>70% se excreta en la orina). Todos los inhibidores de MDR1 (p. ej., quinidina, verapamilo, valspodar, espironolactona, claritromicina y
ritonavir) reducen mucho la excreción de digoxina. Los fármacos con un intervalo terapéutico reducido (p. ej., digoxina, ciclosporina, tacrolimús)
deben usarse con mucha cautela si hay posibilidades de que surjan interacciones farmacológicas basadas en MDR1.
En el intestino, MRP3 puede mediar la absorción intestinal junto con los transportadores de captación. MRP3 media la salida sinusoidal en el hígado, lo
que disminuye la eficacia de la excreción biliar desde la sangre y la excreción de los metabolitos formados dentro de la célula, en particular los
conjugados glucurónidos. Por tanto, la disfunción de MRP3 acorta la t½ de eliminación. Los sustratos de MRP4 también pueden transportarse
mediante OAT1 y OAT3 en la membrana basolateral de las células epiteliales renales. Es probable que el proceso que restringe la velocidad en la
secreción tubular renal sea el proceso de captación en la superficie basolateral. La disfunción de MRP4 incrementa la concentración renal, pero tiene
poco efecto en la concentración sanguínea.
La BCRP intestinal también tiene una función crucial en la absorción de fármacos y es el sitio de varias interacciones farmacológicas de importancia
clínica. Considérese el caso de la administración concurrente de rosuvastatina y ciclosporina. La rosuvastatina es sustrato tanto de BCRP como de
OATP1B1 y la ciclosporina los inhibe a ambos. La inhibición de BCRP por la ciclosporina reduce la salida e intensifica la absorción de rosuvastatina en
el tubo digestivo, donde la expresión de BCRP es abundante en la membrana apical de los epitelios intestinales. La inhibición de OATP1B1 por la
ciclosporina reduce la captación hística de rosuvastatina. El resultado general es un aumento en la concentración plasmática sistémica de
rosuvastatina, que puede incrementar la susceptibilidad a la miopatía inducida por estatinas. La eficacia dependerá del efecto neto en la
concentración hepática de rosuvastatina, explicado tanto por la concentración más alta en la vena porta (por inhibición de BCRP) como por la menor
captación hepática debida a la inhibición de OATP1B1.
TRANSPORTADORES QUE INTERVIENEN EN LA FARMACOCINÉTICA
Los transportadores farmacológicos tienen una función preponderante en la farmacocinética (fig. 4–1 y cuadro 4–4). Los transportadores en el hígado
y los riñones son muy importantes para la eliminación de fármacos de la sangre y por tanto, para su metabolismo y excreción.
Transportadores hepáticos
La captación hepática de aniones orgánicos (p. ej., fármacos, leucotrienos y bilirrubina), cationes y sales biliares está mediada por los transportadores
del tipo SLC en la membrana basolateral (sinusoidal) de los hepatocitos: OATP (SLCO) y OAT (SLC22), OCT (SLC22) y NTCP (SLC10A1), respectivamente.
Estos transportadores median la captación por mecanismos de transporte facilitado o transporte activo secundario.
Los transportadores ABC como MRP2, MDR1, BCRP, BSEP y MDR3 en la membrana canalicular biliar de los hepatocitos median la salida (excreción) de
fármacos y sus metabolitos, sales biliares y fosfolípidos contra un marcado gradiente de concentración del hígado a la bilis. El transporte activo
secundario está impulsado por la hidrólisis de ATP.
El transporte vectorial de los fármacos de la sangre circulante a la bilis mediante un transportador de captación (familia OATP) y un transportador de
salida (MRP2, BCRP, MDR1) es importante para determinar la exposición farmacológica en la sangre circulante y el hígado. Además, hay muchos otros
transportadores de captación y salida en el hígado (fig. 4–9).
Figura 4–9
Transportadores en el hepatocito que participan en la captación y el flujo de los fármacos a través de la membrana sinusoidal y la salida de los
fármacos hacia la bilis a través de la membrana canalicular. Véase el texto para comentarios más amplios de los transportadores que se muestran.
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CAPÍTULO 4: Transportadores de membrana y respuestas a los fármacos, Kathleen M. Giacomini; Yuichi Sugiyama
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Figura 4–9
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Transportadores en el hepatocito que participan en la captación y el flujo de los fármacos a través de la membrana sinusoidal y la salida de los
fármacos hacia la bilis a través de la membrana canalicular. Véase el texto para comentarios más amplios de los transportadores que se muestran.
Los siguientes ejemplos ilustran la importancia del transporte vectorial para determinar la exposición farmacológica en la sangre circulante y el hígado
y la función de los transportadores en las interacciones farmacológicas.
Inhibidores de la HMG­CoA reductasa
Las estatinas son fármacos que reducen el colesterol y producen inhibición reversible de la HMG­CoA reductasa, que cataliza un paso que disminuye la
velocidad en la biosíntesis de colesterol (cap. 37). La mayor parte de las estatinas en la forma ácida es sustrato de los transportadores de captación,
por lo que son captadas de manera eficiente en el hígado e ingresan a la circulación enterohepática (fig. 4–9). En este proceso, los transportadores de
captación hepática como OATP1B1, además de los transportadores de salida, como MRP2, actúan de manera conjunta para producir transporte
vectorial transcelular de sustratos dobles. La eficaz captación hepática de primer paso de estas estatinas mediante OATP1B1 les ayuda a ejercer su
efecto farmacológico y también reduce al mínimo la distribución sistémica del fármaco, lo que disminuye también los efectos secundarios en el
músculo liso. El polimorfismo genético de OATP1B1 también afecta la función de este transportador (Meyer zu Schwabedissen et al., 2015).
Fármacos contra el virus de la hepatitis C
El tratamiento farmacológico contra el virus de la hepatitis C (HCV, hepatitis C virus) ha tenido grandes avances con el descubrimiento de los antivirales
de acción directa. La respuesta virológica sostenida, un indicador del efecto terapéutico, supera 90% y ahora es posible curar las infecciones por
hepatitis C (Hong et al., 2020). Varios inhibidores de la proteasa HCV NS3/4A, como simeprevir, glecaprevir y grazoprevir, tienen una farmacocinética
no lineal en dosis terapéuticas, al menos en parte debido a la saturación de la captación hepática mediada por OATP1B (Hong et al., 2020; Snoeys et al.,
2016). Es posible que la saturación de otros componentes, como los transportadores ABC y las enzimas CYP, también contribuya a la farmacocinética
no lineal. La exposición de estos fármacos contra HCV aumenta de manera notoria cuando se administran junto con una dosis única de rifampicina o
ciclosporina A, lo que sugiere la presencia de interacciones farmacológicas mediadas por OATP1B (Hong et al., 2020; Snoeys et al., 2016). La
probabilidad de interacciones farmacológicas de los compuestos contra HCV es mayor con los inhibidores de la proteasa NS5A que con los inhibidores
de la polimerasa NS5B (Hong et al., 2020). La mayor parte de las interacciones farmacológicas con relevancia clínica es predecible con base en las
propiedades farmacocinéticas conocidas de los transportadores y enzimas. Los inhibidores de NS5A y los inhibidores de la polimerasa NS5B no son
sustratos de OATP1B, pero se sabe que tienen interacciones farmacológicas porque inhiben OATP1B (Hong et al., 2020).
Gemfibrozilo, pemafibrato
El gemfibrozilo es un activador de los receptores α activados por proliferador del peroxisoma (PPARα) que se usa para reducir las concentraciones de
colesterol (cap. 37). El fármaco puede intensificar la toxicidad (miopatía) de varias estatinas con la dosis terapéutica de 600 mg (c/12 h) por un
mecanismo que afecta a un transportador (OATP1B) y una enzima metabolizadora de fármacos (CYP2C8). El gemfibrozilo se metaboliza hasta 1­O­β­
glucurónido de gemfibrozilo. El compuesto original y su glucurónido inhiben la captación de las formas ácidas activas de las estatinas hacia los
hepatocitos mediante OATP1B1; por su mecanismo, el glucurónido también es un potente inhibidor de CYP2C8, una enzima que metaboliza estatinas
como la cerivastatina. El resultado neto es que la administración concurrente de una estatina y gemfibrozilo aumenta la concentración plasmática de
la estatina y un incremento concomitante en su toxicidad.
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Por fortuna, 4:
noTransportadores
todos los fibratosde
causan
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por estos mecanismos.
El pemafibrato
pertenece
a la clase de los fibratos (modulador
CAPÍTULO
membrana
y respuestas
a los fármacos,
Kathleen M. también
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selectivo
de PPARα)
tiene
perfiles
de eficacia
y seguridad
a los de
otros fibratos
convencionales debido a su alta selectividad por PPARα.
Como el gemfibrozilo, el pemafibrato es sustrato de OATP1B y las enzimas CYP. Sin embargo, el pemafibrato es efectivo en concentraciones
plasmáticas muchos menores que el gemfibrozilo y su dosis terapéutica es de 0.1 mg; por tanto, el pemafibrato no aumenta la exposición hística a las
colesterol (cap. 37). El fármaco puede intensificar la toxicidad (miopatía) de varias estatinas con la dosis terapéutica de 600 mg (c/12 h) por un
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mecanismo que afecta a un transportador (OATP1B) y una enzima metabolizadora de fármacos (CYP2C8). ElUNIVERSIDAD
gemfibrozilo seDE
metaboliza
hasta 1­O­β­
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by: las estatinas hacia los
glucurónido de gemfibrozilo. El compuesto original y su glucurónido inhiben la captación de las formas ácidas
activas
hepatocitos mediante OATP1B1; por su mecanismo, el glucurónido también es un potente inhibidor de CYP2C8, una enzima que metaboliza estatinas
como la cerivastatina. El resultado neto es que la administración concurrente de una estatina y gemfibrozilo aumenta la concentración plasmática de
la estatina y un incremento concomitante en su toxicidad.
Por fortuna, no todos los fibratos causan toxicidad por estos mecanismos. El pemafibrato también pertenece a la clase de los fibratos (modulador
selectivo de PPARα) y tiene perfiles de eficacia y seguridad superiores a los de otros fibratos convencionales debido a su alta selectividad por PPARα.
Como el gemfibrozilo, el pemafibrato es sustrato de OATP1B y las enzimas CYP. Sin embargo, el pemafibrato es efectivo en concentraciones
plasmáticas muchos menores que el gemfibrozilo y su dosis terapéutica es de 0.1 mg; por tanto, el pemafibrato no aumenta la exposición hística a las
estatinas (sustratos típicos de OATP1B). Por otra parte, la exposición sanguínea a pemafibrato aumenta más de 10 veces con una dosis única de
rifampicina o ciclosporina A, lo que sugiere la presencia de interacciones farmacológicas por inhibición de los OATP1B hepáticos (Park et al., 2021).
Irinotecán (CPT­11)
El clorhidrato de irinotecán (CPT­11) es un potente antineoplásico, pero los efectos tóxicos gastrointestinales tardíos, como la diarrea intensa,
dificultan su uso seguro. Después de la administración intravenosa, el CPT­11 se convierte en SN­38, un metabolito activo, por efecto de la
carboxiesterasa. SN­38 es captado después por OATP1B y se conjuga con ácido glucurónico en el hígado. Después, SN­38 y el glucurónido SN­38 se
excretan a la bilis mediante MRP2, por lo que entra al tubo digestivo y ejerce sus efectos adversos (Toshimoto et al., 2017). La inhibición de la excreción
biliar de SN­38 y su glucurónido mediada por MRP2 por la administración concurrente de probenecid reduce la diarrea causada por el fármaco en
sistemas experimentales y podría ser útil en seres humanos (Horikawa et al., 2002). Para obtener más detalles, véanse las figuras 5–6, 5–8 y 5–9.
Bosentán
El bosentán es un antagonista de la endotelina que se administra para tratar la hipertensión arterial pulmonar. Es captado en el hígado por OATP1B1 y
OATP1B3 y luego se metaboliza por la acción de CYP2C9 y CYP3A4. La captación hepática mediada por el transportador puede ser determinante para la
eliminación del fármaco y la inhibición de la captación hepática por la acción de la ciclosporina y rifampicina modifica su farmacocinética. La
saturación de la captación hepática mediada por OATP1B explica la farmacocinética no lineal del bosentán después de dosis terapéuticas (Sato et al.,
2018).
Temocaprilo y otros inhibidores de la ACE
El temocaprilo es un inhibidor de la ACE (cap. 30). Su metabolito activo, el temocaprilato, se excreta tanto en la bilis como en la orina por vía hepática y
renal, respectivamente, mientras que otros inhibidores de la ACE se excretan en mayor medida por vía renal. Una característica especial del
temocaprilo entre los inhibidores de la ACE es que la concentración plasmática del temocaprilato permanece casi sin cambios incluso en pacientes con
insuficiencia renal. Sin embargo, el área bajo la curva (AUC, area under the curve) de las concentraciones plasmáticas de enalaprilato y otros
inhibidores de la ACE aumenta mucho en pacientes con trastornos renales. El temocaprilato es un sustrato doble de la familia OATP y de MRP2,
mientras que otros inhibidores de la ACE no son sustratos adecuados para MRP2 (aunque son captados en el hígado por acción de la familia OATP).
Tomando en cuenta estos hallazgos, es probable que la afinidad por MRP2 predomine para determinar la excreción biliar de un conjunto de
inhibidores de la ACE. Por tanto, se espera que los fármacos que se excretan tanto en la bilis como en la orina en igual medida muestren diferencias
interindividuales mínimas en su farmacocinética.
Antagonistas del receptor para angiotensina II
Los antagonistas del receptor para angiotensina II se usan en el tratamiento de la hipertensión, actúan en los receptores AT1 expresados en el músculo
liso vascular, túbulo proximal, células medulares suprarrenales y en otros sitios. Para la mayor parte de estos fármacos, la captación hepática y la
excreción biliar son factores importantes en su farmacocinética y sus efectos farmacológicos. El telmisartán es captado por los hepatocitos humanos
por un mecanismo saturable, sobre todo por OATP1B3 (Ishiguro et al., 2006). Por otra parte, los OATP 1B1 y 1B3 explican la captación hepática de
valsartán y olmesartán, aunque no están claras las contribuciones relativas de cada transportador. Los estudios que usan células con doble
transfección con transportadores de captación hepática y transportadores de excreción biliar han aclarado que MRP2 tiene la función más importante
en la excreción biliar de valsartán y olmesartán.
Repaglinida, nateglinida y glibenclamida
La repaglinida es un análogo del antidiabético meglitinida. Aunque se elimina casi por completo por metabolismo mediado por las CYP2C8 y CYP3A4,
la captación hepática mediada por transportador es uno de los determinantes de su tasa de eliminación. En sujetos con OATP1B1 (SLCO1B1) con el
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e ha observado
cambio
en la farmacocinética de la repaglinida (Niemi et al., 2005). El polimorfismo genético en
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CAPÍTULO 4: Transportadores de membrana y respuestas a los fármacos, Kathleen M. Giacomini; Yuichi Sugiyama
SLCO1B1
521T>CHill.
altera
farmacocinética
la nateglinida
la glibenclamida
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sugiere que OATP1B1 es determinante de su eliminación,
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aunque después son metabolizadas por CYP2C9, CYP3A4 y otras (Zhang et al., 2006b).
en la excreción biliar de valsartán y olmesartán.
Repaglinida, nateglinida y glibenclamida
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La repaglinida es un análogo del antidiabético meglitinida. Aunque se elimina casi por completo por metabolismo mediado por las CYP2C8 y CYP3A4,
la captación hepática mediada por transportador es uno de los determinantes de su tasa de eliminación. En sujetos con OATP1B1 (SLCO1B1) con el
genotipo 521CC e ha observado un cambio significativo en la farmacocinética de la repaglinida (Niemi et al., 2005). El polimorfismo genético en
SLCO1B1 521T>C altera la farmacocinética de la nateglinida y la glibenclamida, lo que sugiere que OATP1B1 es determinante de su eliminación,
aunque después son metabolizadas por CYP2C9, CYP3A4 y otras (Zhang et al., 2006b).
Transportadores renales
Transporte de cationes orgánicos
En el túbulo proximal se secretan cationes orgánicos con estructuras diferentes. Muchos cationes orgánicos secretados son compuestos endógenos
(p. ej., colina, N­metilnicotinamida y dopamina [DA]) y la secreción renal ayuda a eliminar las concentraciones excesivas de estas sustancias. Otra
función de la secreción de cationes orgánicos es librar al cuerpo de xenobióticos, entre los cuales se incluyen muchos fármacos con carga positiva, sus
metabolitos (p. ej., cimetidina, ranitidina, metformina, vareniclina y trospio) y toxinas del medio ambiente (p. ej., nicotina y paraquat). Los cationes
orgánicos que se secretan por vía renal pueden ser hidrófobos o hidrófilos. Los fármacos que son cationes orgánicos hidrófilos por lo general tienen
peso molecular < 400 Da; la figura 4–10 muestra un modelo actual de su secreción en el túbulo proximal de la nefrona e incluye a los transportadores
descritos a continuación.
Figura 4–10
Transportadores secretores de cationes orgánicos en el túbulo proximal. OC, catión orgánico. Véase el texto para obtener los detalles de los
transportadores mostrados.
Para el flujo transepitelial de un compuesto (p. ej., secreción), este debe cruzar dos membranas, una después de la otra: la membrana basolateral que
da hacia la sangre y la membrana apical que da hacia la luz tubular. Los cationes orgánicos parecen cruzar la membrana basolateral en el túbulo
proximal humano gracias a dos transportadores diferentes de la familia SLC22: OCT2 (SLC22A2) y OCT3 (SLC22A3). Los cationes orgánicos se
transportan a través de esta membrana en favor de un gradiente electroquímico.
El transporte de cationes orgánicos de la luz tubular a través de la membrana apical ocurre mediante un intercambio entre un protón electroneutro y
un catión orgánico que está mediado por transportadores de la familia SLC47, lo que incluye miembros de la familia de proteínas de extrusión de
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múltiples
fármacos
y toxinas (MATE).
Los transportadores
de la
familia
MATE, asignados
a laGiacomini;
membranaYuichi
apicalSugiyama
del túbulo proximal, parecen
tener
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CAPÍTULO
4: Transportadores
de membrana
y respuestas
a los
fármacos,
Kathleen M.
funciónMcGraw
muy importante
en el desplazamiento
de cationes
hidrófilos
de la•célula
tubular a la luz. Además, los transportadores catiónicos
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orgánicos nuevos (OCTN, novel organic cation transporters), situados en la membrana apical, parecen contribuir al flujo de cationes orgánicos a
través del túbulo proximal. En los seres humanos, este grupo incluye OCTN1 (SLC22A4) y OCTN2 (SLC22A5). Estos transportadores bifuncionales no
da hacia la sangre y la membrana apical que da hacia la luz tubular. Los cationes orgánicos parecen cruzar la membrana basolateral en el túbulo
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proximal humano gracias a dos transportadores diferentes de la familia SLC22: OCT2 (SLC22A2) y OCT3 (SLC22A3). Los cationes orgánicos se
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transportan a través de esta membrana en favor de un gradiente electroquímico.
El transporte de cationes orgánicos de la luz tubular a través de la membrana apical ocurre mediante un intercambio entre un protón electroneutro y
un catión orgánico que está mediado por transportadores de la familia SLC47, lo que incluye miembros de la familia de proteínas de extrusión de
múltiples fármacos y toxinas (MATE). Los transportadores de la familia MATE, asignados a la membrana apical del túbulo proximal, parecen tener una
función muy importante en el desplazamiento de cationes orgánicos hidrófilos de la célula tubular a la luz. Además, los transportadores catiónicos
orgánicos nuevos (OCTN, novel organic cation transporters), situados en la membrana apical, parecen contribuir al flujo de cationes orgánicos a
través del túbulo proximal. En los seres humanos, este grupo incluye OCTN1 (SLC22A4) y OCTN2 (SLC22A5). Estos transportadores bifuncionales no
solo participan en la secreción de cationes orgánicos, sino también en la reabsorción de carnitina. En el modo de recaptación, los transportadores
funcionan como cotransportadores de Na+ y dependen del gradiente de este ion dirigido hacia el interior por la Na+,K+­ATP­asa para llevar la carnitina
de la luz tubular a la célula. En el modo secretor, los transportadores parecen funcionar como intercambiadores de protones­cationes orgánicos. Es
decir, los protones se desplazan de la luz tubular al interior celular a cambio de los cationes orgánicos, que se desplazan del citosol a la luz tubular. El
gradiente protónico entrante (de la luz tubular al citosol) se mantiene por medio de los transportadores de la familia SLC9, que son intercambiadores
de Na+/K+­ (NHE, cotransportadores bidireccionales). De los dos pasos comprendidos en el transporte secretor, el transporte a través de la membrana
luminal parece reducir la velocidad.
OCT2 (SLC22A2)
Los ortólogos de OCT2 del ser humano, el ratón y la rata se expresan en abundancia en los riñones humanos y en cierta medida en el tejido neuronal,
como el plexo coroideo. En los riñones, OCT2 se localiza en el túbulo proximal, en los túbulos distales y los colectores. En el túbulo proximal, OCT2 se
limita a la membrana basolateral. El transporte mediado por OCT2 del modelo de cationes orgánicos 1­metil­4­fenilpiridinio (MPP+) y tetraetilamonio
(TEA) es electrógeno, y tanto OCT2 como OCT1 pueden mantener el intercambio de catión orgánico por catión orgánico. Por lo regular, OCT2 acepta
una amplia variedad de cationes orgánicos monovalentes con peso molecular <400 Da. OCT2 también se encuentra en los tejidos neuronales, pero los
neurotransmisores tipo monoaminas tienen baja afinidad por OCT2.
OCT3 (SLC22A3).
OCT3 se localiza en repeticiones con OCT1 y OCT2 en el cromosoma 6. Los estudios de distribución hística sugieren que el OCT3 humano se expresa en
el hígado, riñón, intestino, placenta, músculo estriado y tejido adiposo, aunque en el riñón parece expresarse en mucho menor abundancia que OCT2
y en el hígado es menos abundante que OCT1. Al igual que OCT1 y OCT2, OCT3 parece sostener el transporte de cationes orgánicos sensible al
potencial electrógeno. OCT3 participa tanto en la eliminación renal como en la absorción intestinal de metformina.
OCTN1 (SLC22A4)
Parece que OCTN1 actúa como intercambiador de catión orgánico­protón. La entrada de modelos de cationes orgánicos mediada por OCTN1 aumenta
con un pH alcalino, en tanto que la salida se incrementa por un gradiente protónico que favorece la entrada. OCTN1 contiene un motivo de secuencia
para unión con nucleótido y el transporte de sus sustratos parece estimularse con el ATP celular. OCTN1 también puede funcionar como
intercambiador de un catión orgánico por otro. OCTN1 funciona como transportador bidireccional dependiente de pH y ATP en la membrana apical de
las células epiteliales de los túbulos renales y parece ser importante para el transporte renal de gabapentina.
OCTN2 (SLC22A5)
OCTN2 es un transportador bifuncional; actúa como transportador de carnitina dependiente de Na+ y como transportador de catión orgánico
independiente de Na+. El transporte de cationes orgánicos mediante OCTN2 es sensible al pH, lo que sugiere que puede actuar como intercambiador
de cationes orgánicos. El transporte de L­carnitina mediante OCTN2 es un proceso electrógeno dependiente de Na+. Las mutaciones de OCTN2 pueden
resultar en una reabsorción renal insuficiente de carnitina y parecen ser la causa de la deficiencia sistémica primaria de carnitina (Tamai, 2013).
MATE1 Y MATE2­K (SLC47A1 Y SLC47A2)
Los integrantes de la familia de proteínas de extrusión de múltiples fármacos y toxinas MATE1 y MATE2­K interactúan con distintos cationes orgánicos
hidrófilos, como el antidiabético metformina, el antagonista H2 cimetidina y el antineoplásico topotecán. Además de los compuestos catiónicos, los
transportadores también reconocen algunos aniones, como los antivirales aciclovir y ganciclovir. Los zwitteriones cefalexina y cefradina son sustratos
específicos de MATE1. El herbicida paraquat, un compuesto de amonio bicuaternario, nefrotóxico para los seres humanos, es un sustrato potente de
MATE1. MATE1 y MATE2­K se localizaron en la membrana apical del túbulo proximal. MATE1 también se expresa en la membrana canalicular del
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hepatocito, pero
no MATE2­K.
Estos
transportadores
parecen ser los cotransportadores bidireccionales buscados durante mucho tiempo para
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protones
y
cationes
orgánicos
en
la
membrana
apical
del túbulo
proximal;
decir, un
gradiente protónico en sentido opuesto puede impulsar el
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movimiento de los cationes orgánicos gracias a MATE1 o MATE2­K. Aunque los antibióticos levofloxacina y ciprofloxacina son inhibidores potentes, no
experimentan traslocación ni por MATE1 ni por MATE2­K.
Los integrantes de la familia de proteínas de extrusión de múltiples fármacos y toxinas MATE1 y MATE2­K interactúan
con distintos
orgánicos
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hidrófilos, como el antidiabético metformina, el antagonista H2 cimetidina y el antineoplásico topotecán. Además
de losby:compuestos catiónicos, los
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transportadores también reconocen algunos aniones, como los antivirales aciclovir y ganciclovir. Los zwitteriones cefalexina y cefradina son sustratos
específicos de MATE1. El herbicida paraquat, un compuesto de amonio bicuaternario, nefrotóxico para los seres humanos, es un sustrato potente de
MATE1. MATE1 y MATE2­K se localizaron en la membrana apical del túbulo proximal. MATE1 también se expresa en la membrana canalicular del
hepatocito, pero no MATE2­K. Estos transportadores parecen ser los cotransportadores bidireccionales buscados durante mucho tiempo para
protones y cationes orgánicos en la membrana apical del túbulo proximal; es decir, un gradiente protónico en sentido opuesto puede impulsar el
movimiento de los cationes orgánicos gracias a MATE1 o MATE2­K. Aunque los antibióticos levofloxacina y ciprofloxacina son inhibidores potentes, no
experimentan traslocación ni por MATE1 ni por MATE2­K.
Polimorfismos de OCT y MATE
OCT1 tiene la mayor cantidad de polimorfismos de aminoácidos, seguido de OCT2 y OCT3. Estudios recientes sugieren que las variantes genéticas de
OCT1 y OCT2 se relacionan con alteraciones en la eliminación renal y la respuesta al antidiabético metformina. Los miembros de MATE tienen menos
polimorfismos de aminoácidos; sin embargo, estudios recientes sugieren que las variantes en la región no codificante de SLC47A1 y SLC47A2 se
relacionan con variación en la respuesta a metformina.
Transporte de aniones orgánicos
Al parecer, la principal función de la secreción de aniones orgánicos es eliminar xenobióticos del organismo. Los prospectos de sustratos tienen
diversas estructuras e incluyen fármacos que son ácidos débiles (p. ej., pravastatina, captoprilo, p­aminohipurato [PAH] y penicilinas) y toxinas (p. ej.,
ocratoxina). Los transportadores de aniones orgánicos desplazan aniones hidrófobos e hidrófilos, pero también interactúan con cationes y
compuestos neutros.
La figura 4–11 muestra un modelo actual del flujo transepitelial de los aniones orgánicos en el túbulo proximal. Dos transportadores principales en la
membrana basolateral median el flujo de aniones orgánicos desde el líquido intersticial a la célula tubular: OAT1 (SLC22A6) y OAT3 (SLC22A8). Desde
el punto de vista energético, los aniones orgánicos hidrófilos se transportan a través de la membrana basolateral contra un gradiente electroquímico,
con intercambio de α­cetoglutarato intracelular, que se desplaza en favor de su gradiente del citosol a la sangre. El gradiente de α­cetoglutarato con
dirección saliente se mantiene al menos en parte por un transportador basolateral de Na+­dicarboxilato (NaDC3), usando el gradiente de Na+
establecido por la Na+,K+­ATP­asa. El transporte de aniones orgánicos de bajo peso molecular mediante los transportadores clonados OAT1 y OAT3
puede fomentarse con α­cetoglutarato; el transporte acoplado de α­cetoglutarato y aniones orgánicos de bajo peso molecular (p. ej., PAH) ocurre en
vesículas aisladas en la membrana basolateral. La farmacología molecular y la biología molecular de los OAT se sometió a revisión (Srimaroeng et al.,
2008).
Figura 4–11
Transportadores secretores de aniones orgánicos en el túbulo proximal. Dos transportadores primarios en la membrana basolateral median el flujo
de aniones orgánicos del líquido intersticial a la célula tubular: OAT1 (SLC22A6) y OAT3 (SLC22A8). Los aniones orgánicos hidrófilos se transportan a
través de la membrana basolateral contra un gradiente electroquímico a cambio de cetoglutarato α intracelular, el cual se desplaza en favor de su
gradiente de concentración del citosol hacia la sangre. El gradiente que favorece la salida del cetoglutarato α se mantiene, al menos en parte, mediante
un transportador de captación de Na+­dicarboxilato basolateral (NaDC3). El gradiente de Na+ que impulsa NaDC3 se mantiene mediante la Na+,K+­ATP­
asa. OA, anión orgánico; a­KG, cetoglutarato α.
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través de la membrana basolateral contra un gradiente electroquímico a cambio de cetoglutarato α intracelular, el cual se desplaza en favor de su
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gradiente de concentración del citosol hacia la sangre. El gradiente que favorece la salida del cetoglutarato α se mantiene, al menos en parte, mediante
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un transportador de captación de Na+­dicarboxilato basolateral (NaDC3). El gradiente de Na+ que impulsa NaDC3 se mantiene mediante la Na+,K+­ATP­
asa. OA, anión orgánico; a­KG, cetoglutarato α.
Es motivo de controversia el mecanismo que permite el transporte de los aniones orgánicos en la membrana apical desde el citosol de la célula tubular
a la luz tubular. OAT4 puede servir como transportador en la membrana luminal para los aniones orgánicos, pero el desplazamiento de sustratos
mediante este transportador puede impulsarse por el intercambio con α­cetoglutarato, lo que sugiere que OAT4 podría funcionar durante la
reabsorción y no durante la secreción de los aniones orgánicos. NaPT1, en un principio clonado como transportador de fosfato, puede sustentar el
transporte de baja afinidad de los aniones orgánicos hidrófilos, como PAH. MRP2 y MRP4, transportadores de resistencia a múltiples fármacos de la
familia C de casetes de unión con ATP (ABCC, ATP binding cassette family C, ABCC), pueden interactuar con algunos aniones orgánicos y pueden
bombearlos de manera activa del citosol de las células tubulares a la luz tubular.
OAT1 (SLC22A6)
Las isoformas de mamíferos de OAT1 se expresan sobre todo en los riñones y en menor medida en el encéfalo y el músculo estriado. Los estudios
inmunohistoquímicos sugieren que OAT1 se expresa en la membrana basolateral del túbulo proximal en los seres humanos, con mayor abundancia
en el segmento intermedio, S2 (fig. 25–1). Con base en la reacción en cadena de la polimerasa cuantitativa, OAT1 se expresa a un tercio de OAT3. OAT1
exhibe un transporte saturable de aniones orgánicos como el PAH. Este transporte se estimula en forma cruzada por otros aniones orgánicos, como α­
cetoglutarato. Por tanto, la diferencia de potencial negativo interno impulsa la salida del dicarboxilato α­cetoglutarato, que a su vez favorece la
entrada de monocarboxilatos, como el PAH. Los esteroides sexuales regulan la expresión de OAT1 en el riñón. Por lo general, OAT1 transporta aniones
orgánicos de peso molecular bajo, que pueden ser endógenos (p. ej., PGE2 y urato) o exógenos (fármacos y toxinas ingeridos). Algunos compuestos
neutros también son transportados por OAT1 con menor afinidad (p. ej., cimetidina).
OAT2 (SLC22A7)
OAT2 se encuentra en riñones e hígado. En los riñones, el transportador se localiza en la membrana basolateral del túbulo proximal. OAT2 funciona
como transportador para nucleótidos, en particular nucleótidos como el GMP cíclico, para los que existe un transportador facilitador bidireccional
(Cropp et al., 2008). Los estudios celulares indican que OAT2 funciona tanto para la entrada como para la salida de nucleótidos de guanina. OAT2
transporta aniones orgánicos como PAH y metotrexato con baja afinidad, PGE2 con alta afinidad y algunos compuestos neutros, pero con menor
afinidad (p. ej., cimetidina).
OAT3
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El OAT3 humano se limita a la membrana basolateral del túbulo proximal. Esta proteína consiste en dos variantes, una de las cuales transporta una
amplia variedad de aniones orgánicos, incluido PAH, sulfato de estrona y muchos fármacos (p. ej., pravastatina, cimetidina, 6­mercaptopurina y
metotrexato) (Srimaroeng et al., 2008). La variante más larga no sustenta el transporte. Las especificidades de OAT3 y OAT1 se superponen, aunque
como transportador para nucleótidos, en particular nucleótidos como el GMP cíclico, para los que existe un transportador facilitador bidireccional
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(Cropp et al., 2008). Los estudios celulares indican que OAT2 funciona tanto para la entrada como para la salida de nucleótidos de guanina. OAT2
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transporta aniones orgánicos como PAH y metotrexato con baja afinidad, PGE2 con alta afinidad y algunos compuestos neutros, pero con menor
afinidad (p. ej., cimetidina).
OAT3 (SLC22A8)
El OAT3 humano se limita a la membrana basolateral del túbulo proximal. Esta proteína consiste en dos variantes, una de las cuales transporta una
amplia variedad de aniones orgánicos, incluido PAH, sulfato de estrona y muchos fármacos (p. ej., pravastatina, cimetidina, 6­mercaptopurina y
metotrexato) (Srimaroeng et al., 2008). La variante más larga no sustenta el transporte. Las especificidades de OAT3 y OAT1 se superponen, aunque
sus parámetros cinéticos difieren: el sulfato de estrona es transportado por ambos, pero la afinidad de OAT3 es mucho mayor; OAT1 transporta
cimetidina (un antagonista del receptor H2) con alta afinidad.
OAT4 (SLC22A11)
En los seres humanos, OAT4 se expresa en la placenta y los riñones (en la membrana luminal del túbulo proximal). El transporte de aniones orgánicos
a través de OAT4 puede estimularse por los transgradientes de α­cetoglutarato, lo que sugiere que OAT4 podría participar en la reabsorción de
aniones orgánicos de la luz tubular hacia la célula (fig. 4–11). La especificidad de OAT4 incluye los modelos compuestos de sulfato de estrona y PAH,
así como zidovudina, tetraciclina y metotrexato. En conjunto, los estudios sugieren que OAT4 podría participar, no en el flujo secretor de los aniones
orgánicos, sino en su reabsorción.
Otros transportadores de aniones
URAT1 (SLC22A12) es un transportador específico de los riñones confinado a la membrana apical del túbulo proximal. URAT1 es el encargado principal
de la reabsorción de urato y media el transporte electroneutro de este anión que puede estimularse por los gradientes de Cl—. NPT1 (SLC17A1) se
expresa en la membrana luminal del túbulo proximal y en el encéfalo. NPT1 transporta PAH, probenecid y penicilina G. Parece implicado en el flujo de
salida de aniones orgánicos de la célula tubular a la luz e interactúa con el ácido úrico. La figura 42–2 presenta el transporte renal de urato.
Se considera que MRP2 (ABCC2) es el principal transportador para la salida de muchos conjugados farmacológicos, como los conjugados con
glutatión, a través de la membrana canalicular del hepatocito. Sin embargo, también se encuentra en la membrana apical del túbulo proximal, donde
se cree que participa en la salida de aniones orgánicos hacia la luz tubular. En general, MRP2 transporta compuestos más grandes y voluminosos que
la mayor parte de los transportadores de aniones orgánicos de la familia SLC22. MRP4 (ABCC4), situado en la membrana apical del túbulo proximal,
transporta una amplia variedad de aniones conjugados, como conjugados glucurónido y glutatión. Parece que MRP4 interactúa con fármacos, como
metotrexato, análogos cíclicos de nucleótidos y antivirales análogos de nucleósidos. BCRP (ABCG2) se localiza en la membrana apical del túbulo
proximal y el duodeno y participa en la secreción de ácido úrico y de los XOI alopurinol y oxipurinol.
Se han identificado polimorfismos en OAT1 y OAT3 en diversos grupos étnicos (véase https://www.pharmgkb.org). Un hecho notable es que los
polimorfismos en ABCG2 se han relacionado con una respuesta reducida al alopurinol y al oxipurinol.
TRANSPORTADORES Y FARMACODINÁMICA: ACCIÓN DE LOS FÁRMACOS EN EL ENCÉFALO
Los neurotransmisores de amina biógena se empacan en vesículas dentro de las neuronas presinápticas, se liberan en la sinapsis por la fusión de las
vesículas con la membrana plasmática y luego son captadas de nuevo por las neuronas presinápticas o células postsinápticas (cap. 10 y 16). Los
transportadores que participan en la recaptación de neurotransmisores y la regulación de sus concentraciones en la hendidura sináptica pertenecen a
dos superfamilias importantes, SLC1 y SLC6. Varios transportadores de las dos familias participan en la recaptación de ácido γ­aminobutírico (GABA),
glutamato y de neurotransmisores tipo monoaminas, como noradrenalina (NE), serotonina (5TH) y dopamina (DA). Estos transportadores pueden
servir de objetivo farmacológico para psicofármacos. Los miembros de la familia SLC6 localizados en el encéfalo y que participan en la recaptación de
neurotransmisores en las neuronas presinápticas incluyen el transportador de noradrenalina ([NET, norepinephrine transporters] SLC6A2), el
transportador de dopamina ([DAT, dopamine transporters] SLC6A3), el transportador de serotonina ([SERT, serotonin transporters] SLC6A4) y varios
transportadores de la recaptación de GABA (GAT1, GAT2 y GAT3). Cada uno de estos transportadores parece tener 12 segmentos transmembrana (TM)
y un asa extracelular grande con sitios de glucosilación entre TM3 y TM4.
Los miembros de la familia SLC6 son transportadores activos secundarios que dependen del gradiente de Na+ para transportar sus sustratos al
interior de las células. También se necesita Cl–, aunque en grado variable según el miembro de la familia. Mediante el mecanismo de recaptación, los
transportadores de neurotransmisores de la familia SLC6A regulan la concentración y el tiempo que permanecen los neurotransmisores en la
hendidura sináptica. El grado de captación del transmisor también influye en el almacenamiento vesicular subsiguiente de los transmisores, que
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ocurre mediante
transportadores
de las
SLC17 (glutamato vesicular) y SLC18 (monoamina vesicular). Muchos de los transportadores de las
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familias
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presentes
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plaquetas) y es probable que tengan otras funciones. Además,
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los transportadores pueden actuar en la dirección inversa. Es decir, los transportadores pueden exportar neurotransmisores en forma independiente
de Na+.
y un asa extracelular grande con sitios de glucosilación entre TM3 y TM4.
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Los miembros de la familia SLC6 son transportadores activos secundarios que dependen del gradiente de Na
transportar
sus sustratos al
interior de las células. También se necesita Cl–, aunque en grado variable según el miembro de la familia. Mediante el mecanismo de recaptación, los
transportadores de neurotransmisores de la familia SLC6A regulan la concentración y el tiempo que permanecen los neurotransmisores en la
hendidura sináptica. El grado de captación del transmisor también influye en el almacenamiento vesicular subsiguiente de los transmisores, que
ocurre mediante transportadores de las familias SLC17 (glutamato vesicular) y SLC18 (monoamina vesicular). Muchos de los transportadores de las
familias SLC6, SLC17 y SLC18 están presentes en otros tejidos (p. ej., intestino, riñón y plaquetas) y es probable que tengan otras funciones. Además,
los transportadores pueden actuar en la dirección inversa. Es decir, los transportadores pueden exportar neurotransmisores en forma independiente
de Na+.
Captación de GABA: GAT1 (SLC6A1), GAT3 (SLC6A11), GAT2 (SLC6A13) y BGT1 (SLC6A12)
GAT1 es el transportador de GABA más importante del encéfalo, se expresa en las neuronas GABAérgicas y sobre todo en las neuronas presinápticas.
GAT1 abunda en la neocorteza, cerebelo, ganglios basales, tronco del encéfalo, médula espinal, retina y bulbo olfatorio. GAT3 solo se encuentra en el
encéfalo, en su mayor parte en las células gliales. GAT2 se encuentra en tejidos periféricos, como riñón e hígado y en el plexo coroideo y las meninges
dentro del sistema nervioso central. En términos fisiológicos, parece que GAT1 se encarga de regular la interacción de GABA en los receptores. La
presencia de GAT2 en el plexo coroideo y su ausencia en neuronas presinápticas sugiere que este transportador puede desempeñar una función
primordial en la conservación de la homeostasis de GABA en el líquido cefalorraquídeo. GAT1 es el objetivo farmacológico del antiepiléptico tiagabina
(un derivado del ácido nipecótico), que parece actuar prolongando el tiempo de permanencia de GABA en la hendidura sináptica de las neuronas
GABAérgicas al inhibir la recaptación de GABA. Un cuarto GAT, BGT1, se encuentra en las regiones extrasinápticas del hipocampo y la corteza (Madsen
et al., 2011).
Captación de catecolaminas: NET (SLC6A2)
El NET se expresa en tejidos nerviosos centrales y periféricos y en células cromafines suprarrenales. NET se localiza en forma concurrente con
marcadores neuronales, lo que coincide con una participación en la recaptación de neurotransmisores tipo monoaminas. Este transportador permite
la recaptación de norepinefrina (y de dopamina) hacia las neuronas, lo que limita el tiempo de permanencia sináptica de norepinefrina y termina sus
acciones, reservándola para su empaquetamiento ulterior. El NET es un objetivo farmacológico del antidepresivo desipramina, de otros
antidepresivos tricíclicos y de la cocaína. También es objetivo farmacológico de los antidepresivos inhibidores de la recaptación de serotonina y
noradrenalina (p. ej., duloxetina y venlafaxina), que además actúan sobre SERT (SLC6A4). La intolerancia ortostática, un trastorno familiar poco
frecuente que se caracteriza por una respuesta anormal de la presión arterial y la frecuencia cardiaca a los cambios posturales, se ha relacionado con
una mutación en los transportadores de noradrenalina (NET).
Captación de dopamina: DAT (SLC6A3)
El DAT se localiza principalmente en el encéfalo dentro de las neuronas dopaminérgicas. La principal función de DAT es la recaptación de dopamina,
terminando así sus acciones. Aunque se encuentra en las neuronas presinápticas, en la unión neurosináptica, DAT también es abundante en otras
partes de las neuronas alejadas de la hendidura sináptica. En términos fisiológicos, DAT participa en las diversas funciones que se atribuyen al sistema
dopaminérgico, como el estado de ánimo, el comportamiento, la recompensa y el estado cognitivo. Los fármacos que interactúan con DAT incluyen
cocaína y sus análogos, anfetaminas y la neurotoxina MPTP.
Captación de serotonina: SERT (SLC6A4)
Este transportador es muy importante en la recaptación y depuración de serotonina en el encéfalo. Igual que los otros integrantes de la familia SLC6A,
SERT transporta sus sustratos por un mecanismo acoplado al Na+, depende del Cl– y tal vez del transporte concurrente de K+. Los sustratos de SERT
incluyen serotonina (5­HT), varios derivados de la triptamina y neurotoxinas como 3,4­metilendioximetanfetamina (MDMA, éxtasis) y fenfluramina. El
SERT es el blanco específico de los inhibidores selectivos de la recaptación de serotonina (p. ej., fluoxetina y paroxetina) y uno de los varios blancos de
los antidepresivos tricíclicos (p. ej., amitriptilina). Las variantes genéticas de SERT se han relacionado con varios trastornos neurológicos y de la
conducta. Se desconoce el mecanismo preciso por el que la reducción de la actividad de SERT, ocasionada por una variante genética o un
antidepresivo, afecta el comportamiento, incluso la depresión.
TRANSPORTADORES Y FARMACODINÁMICA: ACCIÓN DE FÁRMACOS ANTIDIABÉTICOS
La glucosa requiere transportadores para cruzar las membranas plasmáticas. Los mecanismos homeostáticos para la glucosa están controlados sobre
todo por los transportadores de glucosa de las familias SLC2 (familia de transportador GLUT facilitado) y SLC5 (familia del cotransportador de sodio y
glucosa). En la2023­12­21
familia SLC,2:4
SLC5A1,
a menudo
conocido como SGLT1, se expresa en el intestino donde media la absorción de la glucosa y en el riñón
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CAPÍTULO
4: Transportadores
deSGLT2
membrana
y respuestas
losmayor
fármacos,
Kathleen
M. Giacomini;
Sugiyama
donde
participa
en la reabsorción.
(SLC5A2)
se expresaaen
medida
en el túbulo
proximal Yuichi
renal, donde
tiene una función casiPage
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la reabsorción de glucosa. En realidad, los pacientes con mutaciones genéticas en SLC5A2 tienen glucosuria intensa, mientras que aquellos con
mutaciones en SLC5A1 tienen solo glucosuria leve. Estas observaciones impulsaron el desarrollo de los inhibidores de SGLT2, las gliflozinas, para
tratar la diabetes tipo 2. Por su acción en SGLT2, las gliflozinas inhiben la reabsorción de glucosa en el riñón, lo que disminuye la concentración
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ANTIDIABÉTICOS
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La glucosa requiere transportadores para cruzar las membranas plasmáticas. Los mecanismos homeostáticos para la glucosa están controlados sobre
todo por los transportadores de glucosa de las familias SLC2 (familia de transportador GLUT facilitado) y SLC5 (familia del cotransportador de sodio y
glucosa). En la familia SLC, SLC5A1, a menudo conocido como SGLT1, se expresa en el intestino donde media la absorción de la glucosa y en el riñón
donde participa en la reabsorción. SGLT2 (SLC5A2) se expresa en mayor medida en el túbulo proximal renal, donde tiene una función casi exclusiva en
la reabsorción de glucosa. En realidad, los pacientes con mutaciones genéticas en SLC5A2 tienen glucosuria intensa, mientras que aquellos con
mutaciones en SLC5A1 tienen solo glucosuria leve. Estas observaciones impulsaron el desarrollo de los inhibidores de SGLT2, las gliflozinas, para
tratar la diabetes tipo 2. Por su acción en SGLT2, las gliflozinas inhiben la reabsorción de glucosa en el riñón, lo que disminuye la concentración
sanguínea sistémica de glucosa en pacientes con diabetes tipo 2. Este efecto inhibidor implica un beneficio particular en pacientes con diabetes tipo 2,
en los que aumentan la expresión de SGLT2 en los riñones y la reabsorción de la glucosa filtrada. Aunque los mecanismos no se comprenden del todo,
la inhibición de la reabsorción de glucosa y por consiguiente, el metabolismo renal de la glucosa parecen contribuir a los beneficios auxiliares de las
gliflozinas en la nefropatía diabética. Los inhibidores de SGLT2 también resultan útiles en el tratamiento de la insuficiencia cardiaca con disminución
de la fracción de expulsión (cap. 33).
LA BARRERA HEMATOENCEFÁLICA: UNA PERSPECTIVA FARMACOLÓGICA
El SNC está bien protegido de los neurotransmisores circulantes, está bien provisto de los nutrientes y de los iones necesarios y es capaz de excluir
muchas toxinas, bacterias y xenobióticos. Este conjunto cuidadoso de condiciones se logra mediante una barrera llamada barrera hematoencefálica
(BBB, blood brain barrier). En el capítulo 17 se describe la BBB con mayor detalle. Desde el punto de vista del transporte de membrana, a continuación
se presenta una breve introducción a la BBB.
La BBB es resultado de las propiedades especializadas de la microvasculatura del SNC, que consiste en células endoteliales que limitan la
permeabilidad y varias células neurales e inmunitarias (Profaci et al., 2020). Desde el punto de vista funcional, la BBB es en parte física, en parte
consecuencia de la permeabilidad selectiva (exportación de moléculas indeseables e importación de moléculas necesarias) y de la destrucción
enzimática de ciertas moléculas que la cruzan mediante enzimas en la barrera. Existen algunas regiones neurosensitivas y neurosecretoras del
cerebro que carecen de la barrera: hipófisis posterior, eminencia media, área postrema, órgano subfornical, órgano subcomisural y lámina terminal.
La parte física de la BBB proviene de la estructura distintiva del endotelio capilar del cerebro y el plexo coroideo. A diferencia de las células
endoteliales de la microvasculatura periférica que tiene espacios entre ellas y permiten el flujo de agua y moléculas pequeñas al espacio intersticial,
las células endoteliales de la BBB tienen uniones estrechas que limitan el flujo paracelular y en general tienen tasas muy bajas de transporte vesicular
(transcitosis), en comparación con el endotelio periférico. Además, la superficie luminal del endotelio del SNC está cubierto por un glucocáliz, que es
más denso que el glucocáliz de la microvasculatura periférica. Este glucocáliz evita la interacción de las moléculas grandes con la célula endotelial
misma. Además, la superficie abluminal está envuelta por una membrana basal, pericitos y los procesos seudopediculares de la astroglía. Las
moléculas lipófilas y los gases como O2 y CO2 pueden difundir con facilidad a través de estas capas desde la sangre hasta el cerebro. Las moléculas
hidrófilas (nutrientes, iones, moléculas con carga, muchos fármacos) no pueden cruzar estas múltiples barreras de membrana por difusión a un ritmo
suficiente.
Por lo tanto, el sistema se basa en la permeabilidad selectiva. Por ejemplo, ciertos transportadores de las dos superfamilias principales, ABC y SLC, se
presentan en abundancia en las células endoteliales de la BBB (Profaci et al., 2020). Los transportadores ABC con mayor expresión en la membrana
luminal incluyen ABCB1 (MDR1) y ABCG2 (BCRP). Estos transportadores (cuadro 4–4) participan en la salida de muchas moléculas pequeñas y
moléculas endógenas, como los esteroides, expulsan sus sustratos a través de la membrana luminal de las células endoteliales de los capilares
cerebrales hacia la sangre, lo que limita la penetración al cerebro. Muchos transportadores de la superfamilia SLC participan en el flujo de nutrientes,
lo que asegura que el cerebro reciba nutrientes como la glucosa (SLC2A1/GLUT1), aminoácidos (SLC7A1 y SLC7A5/LAT1) y ácido fólico (SLC19A1, RFC).
Los productos de rescate metabólico también cruzan la BBB mediante transportadores de la familia SLC16 (SLC16A1 y SLC16A2). Los miembros de la
familia SLC22, incluidos los transportadores de aniones orgánicos (SLC22A6 [OAT1] y SLC22A8 [OAT3]) y los transportadores de cationes orgánicos
(SLC22A1 [OCT1] y SLC22A3 [OCT3]) se expresan en las células endoteliales. Existen sistemas de transporte mediados por receptor para la ferritina y la
insulina y existe un grado bajo de transcitosis (tránsito de vesículas dependiente de caveolina). Por consiguiente, la permeabilidad selectiva de la BBB,
conferida por su conjunto de transportadores, permite que los compuestos necesarios para las funciones ingresen al cerebro, al tiempo que limitan la
entrada de diversos xenobióticos, incluyendo muchos fármacos.
Existe una berrera metabólica para algunos compuestos. Por ejemplo, las catecolaminas circulantes se desactivan por acción de la MAO en las células
endoteliales; por su parte, la MAO endotelial y la dopa descarboxilasa (descarboxilasa de aminoácidos aromáticos; cap. 10) metabolizan la L­dopa en
3,4­dihidroxifenilacetato (de ahí la necesidad de incluir un inhibidor de la dopa descarboxilasa cuando se administra L­dopa para tratar la enfermedad
de Parkinson). La enzima γ­glutamil transpeptidasa de la barrera metabólica divide LTC4, el mediador del leucotrieno producido por la vía de la 5­
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lipoopxigenasa
(cap. 41) y otros aductos
del glutatión.
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CAPÍTULO 4: Transportadores
de membrana
y respuestas a los fármacos, Kathleen M. Giacomini; Yuichi Sugiyama
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¿Qué hay acerca de las moléculas de fármacos? Una vez que llegan a la circulación sistémica, el suministro a la región general del cerebro no es un
problema: el cerebro recibe cerca de 15% del gasto cardiaco (cuadro 2–2). ¿Qué hay acerca del cruce de la BBB? Los fármacos pequeños pueden
entrada de diversos xenobióticos, incluyendo muchos fármacos.
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Existe una berrera metabólica para algunos compuestos. Por ejemplo, las catecolaminas circulantes se desactivan
por acción
de la MAO en las células
endoteliales; por su parte, la MAO endotelial y la dopa descarboxilasa (descarboxilasa de aminoácidos aromáticos; cap. 10) metabolizan la L­dopa en
3,4­dihidroxifenilacetato (de ahí la necesidad de incluir un inhibidor de la dopa descarboxilasa cuando se administra L­dopa para tratar la enfermedad
de Parkinson). La enzima γ­glutamil transpeptidasa de la barrera metabólica divide LTC4, el mediador del leucotrieno producido por la vía de la 5­
lipoopxigenasa (cap. 41) y otros aductos del glutatión.
¿Qué hay acerca de las moléculas de fármacos? Una vez que llegan a la circulación sistémica, el suministro a la región general del cerebro no es un
problema: el cerebro recibe cerca de 15% del gasto cardiaco (cuadro 2–2). ¿Qué hay acerca del cruce de la BBB? Los fármacos pequeños pueden
difundir a través de la BBB en función de su liposolubilidad (coeficiente de reparto aceite/agua). Por tanto, los anestésicos como el óxido nitroso y el
tiopental se desplazan con rapidez a través de esta barrera. Algunos fármacos se parecen a sustratos que son transportados hacia el cerebro (p. ej.,
aminoácidos, nucleósidos) y así logran entrar. LAT1 (SLC7A5) participa en la entrada de varios fármacos, como L­dopa y gabapentina, a través de la
BBB. OAT1 y OAT3, que en general participan en la salida de fármacos del LCR, median la captación de compuestos orgánicos como los antibióticos β­
lactámicos, estatinas y antagonistas de los receptores H2. Por otra parte, los fármacos con carga y de molécula grande en general no penetran con
facilidad al cerebro. Las proteínas de transporte, en especial MDR1, BCRP y MRP4, expulsan de manera activa muchos fármacos; está claro que el
reconocimiento por parte de estos transportadores es una desventaja sustancial para un fármaco usado en el tratamiento de enfermedades del SNC.
Además, existe una investigación en curso que sugiere que los niveles de expresión de MDR1 y BCRP en la BBB pueden modularse en las enfermedades
neurológicas, lo que podría representar un mecanismo patológico importante en ciertas enfermedades neurodegenerativas.
Existen métodos en desarrollo que aprovechan los nuevos avances en nanotecnología para buscar nuevas formas de introducir fármacos al cuerpo:
nanopartículas y liposomas que contienen moléculas activas, fármacos unidos a ferritina y el desarrollo de formas farmacéuticas con lipofilia
adecuada. La investigación biomédica básica está mejorando la comprensión de la función de los receptores nucleares en la regulación de los
transportadores y enzimas farmacológicos en la BBB, así como del desarrollo de la BBB y la interacción de sus componentes celulares y subcelulares
para mantener la función de barrera (Profaci et al., 2020). Kim y Bynoe (2016) publicaron que la activación del receptor para adenosina A2A en un
modelo de barrera endotelial cerebral humana in vitro disminuyó de manera reversible la expresión de Pgp (MDR1), lo que sugiere que los agonistas
del receptor para adenosina A2A podrían ser útiles en la modulación de la permeabilidad de la BBB. Estos estudios y técnicas podrían permitir el
progreso para poner el control de la permeabilidad de la BBB en las manos de los médicos. En el capítulo 17 se revisan las estrategias en desarrollo
para proporcionar una entrada regulada de fármacos al SNC.
EL CONCEPTO DE DEPURACIÓN EXTENDIDA Y LA MODELACIÓN FARMACOCINÉTICA BASADA
EN LA FISIOLOGÍA (PBPK, PHYSIOLOGICALLY BASED PHARMACOKINETIC)
Con base en el “concepto de depuración extendida”, la depuración hepática consiste en algunos procesos intrínsecos, como la captación hepática
PS1, el reflujo de los hepatocitos a la sangre PS2, el metabolismo hepático CLmet y el secuestro biliar PS3 (fig. 4–12) (Shitara et al., 2006, 2013).
La depuración hepática intrínseca general (CLint,all) se expresa:
Figura 4–12
Concepto de depuración extendida: captación hepática, regreso a la sangre, metabolismo y salida hacia la bilis. Los círculos rojos representan los
fármacos originales; los triángulos verdes, sus metabolitos.
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CAPÍTULO 4: Transportadores de membrana y respuestas a los fármacos, Kathleen M. Giacomini; Yuichi Sugiyama
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Figura 4–12
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Concepto de depuración extendida: captación hepática, regreso a la sangre, metabolismo y salida hacia la bilis. Los círculos rojos representan los
fármacos originales; los triángulos verdes, sus metabolitos.
(Ecuación 4–6)
Si la suma de la depuración intrínseca del metabolismo y el secuestro biliar es mucho mayor que la eliminación por reflujo [PS2 << (CLmet + PS3)],
CLint,all se aproxima a PS1 y la captación es un proceso determinado por el ritmo de la depuración intrínseca hepática general. Muchos sustratos
transportados son excretados de manera eficiente a la bilis o sometidos a metabolismo extenso, en lugar de ser regresados a la sangre, por lo que su
depuración por captación a menudo determina su depuración hepática intrínseca general. Si se asume que un fármaco administrado por vía oral se
absorbe por completo en el intestino delgado y se elimina en mayor medida por el hígado, su AUC en sangre basada en el “modelo bien revuelto”
puede describirse así:
(Ecuación 4–7)
en la que fB representa la fracción libre en sangre.
El AUChepática se describe como (Shitara et al., 2013)
(Ecuación 4–8)
Las ecuaciones 4–6 a 4–8 sugieren que si la depuración por captación PS1 disminuye, el AUCsanguínea aumenta en proporción inversa a PS1, mientras
que AUChepática no se altera. Por otra parte, si la captación del fármaco es el proceso determinante del ritmo de la depuración hepática intrínseca
general, el decremento en la función metabólica o en el secuestro biliar aumenta el AUChepática, pero no el AUCsanguínea. Por lo tanto, si los objetivos
moleculares del efecto farmacológico y el efecto adverso inducido por los fármacos se localizan dentro y fuera de los hepatocitos, respectivamente,
como en el caso de las estatinas, disminuye la captación hepática de esos compuestos por interacciones farmacológicas o polimorfismos genéticos de
los transportadores, afectando sobre todo al efecto adverso y no tanto al efecto farmacológico.
Para simular el efecto de las variaciones en las actividades del transportador en la exposición sistémica y hepática de una estatina, que se elimina
sobre todo mediante OATP1B1 y MRP2, se usó un modelo PBPK (Jamei et al., 2014; Watanabe et al., 2009).
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En un modelo
los compartimientos
que representan
tejidos
estánKathleen
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por el flujoYuichi
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para predecir el marco temporal
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y respuestas
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cuerpo. Un modelo
PBPK
obtener
sobre los factores que regulan la exposición sistémica y
la distribución hística de los fármacos y simula el efecto de las variaciones en los parámetros fisiológicos o dependientes del fármaco en la disposición
de este. Los análisis de sensibilidad basados en el modelo PBPK indican que la variación en las actividades de OATP1B1 tendrá un efecto mínimo en la
moleculares del efecto farmacológico y el efecto adverso inducido por los fármacos se localizan dentro y fuera de los hepatocitos, respectivamente,
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como en el caso de las estatinas, disminuye la captación hepática de esos compuestos por interacciones farmacológicas o polimorfismos genéticos de
los transportadores, afectando sobre todo al efecto adverso y no tanto al efecto farmacológico.
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Para simular el efecto de las variaciones en las actividades del transportador en la exposición sistémica y hepática de una estatina, que se elimina
sobre todo mediante OATP1B1 y MRP2, se usó un modelo PBPK (Jamei et al., 2014; Watanabe et al., 2009).
En un modelo PBPK, los compartimientos que representan tejidos reales están conectados por el flujo sanguíneo para predecir el marco temporal de
la disposición del fármaco en el cuerpo. Un modelo PBPK permite obtener mucha información sobre los factores que regulan la exposición sistémica y
la distribución hística de los fármacos y simula el efecto de las variaciones en los parámetros fisiológicos o dependientes del fármaco en la disposición
de este. Los análisis de sensibilidad basados en el modelo PBPK indican que la variación en las actividades de OATP1B1 tendrá un efecto mínimo en la
eficacia terapéutica, pero un gran impacto en el efecto colateral (miopatía) de la pravastatina; ocurrirá lo contrario para las variaciones en las
actividades de MRP2/BCRP: gran efecto en la eficacia y pequeño en el efecto colateral (Watanabe et al., 2009) (fig. 4–13). Estas características ya se
demostraron para algunas estatinas (p. ej., simvastatina y rosuvastatina): la variación farmacogenómica de la actividad de OATP1B1 se acompaña del
riesgo de reacciones adversas, mientras que la variación en los mecanismos de excreción biliar y absorción intestinal genera un cambio en la
respuesta terapéutica (Chasman et al., 2012; SEARCH Collaborative Group, 2008).
Figura 4–13
Análisis de sensibilidad del efecto de los cambios funcionales de la depuración por captación hepática PS1 (A) y la depuración por excreción biliar PS3
(B) en las concentraciones plasmática y hepática de pravastatina (Watanabe et al., 2009). Los análisis de sensibilidad se hicieron con base en el modelo
PBPK, que conectó cinco compartimientos hepáticos secuenciales mediante el flujo sanguíneo para poder usar este modelo con fármacos que tienen
elevada depuración mediada por transportador. Se simularon las concentraciones plasmática y hepática después de la administración oral (40 mg)
con actividades variables de transporte hepático en un intervalo de 1/3 a 3 veces los valores iniciales.
VARIACIÓN GENÉTICA EN LOS TRANSPORTADORES DE MEMBRANA: IMPLICACIONES PARA LA
RESPUESTA CLÍNICA FARMACOLÓGICA
Existen defectos hereditarios en los transportadores SLC (cuadro 4–2) y los transportadores ABC (cuadro 4–3) que causan enfermedad. Sin embargo,
los polimorfismos genéticos más frecuentes en los transportadores de membrana participan en la respuesta farmacológica y están aportando nueva
información sobre la farmacogenética y la farmacología (cap. 7).
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Los estudios4:clínicos
revelan quede
losmembrana
polimorfismos
en tres transportadores,
(BCRP),
SLCO1B1 (OATP1B1)
y SLC22A1 (OCT1), contribuyen
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Transportadores
y respuestas
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variación
interindividual
en la respuesta
a muchos
y debenPolicy
considerarse
el desarrollo de fármacos (Yee et al., 2018). Por ejemplo, un
polimorfismo frecuente de mutación de aminoácido (rs2231142), p.Gln141Lys en BCRP, se relaciona con una respuesta más intensa a la rosuvastatina.
BCRP permite la salida intestinal de la rosuvastatina. El polimorfismo p.Gln141Lys reduce la función de BCRP y así disminuye la salida intestinal de la
VARIACIÓN GENÉTICA EN LOS TRANSPORTADORES DE MEMBRANA: IMPLICACIONES PARA LA
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RESPUESTA CLÍNICA FARMACOLÓGICA
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Existen defectos hereditarios en los transportadores SLC (cuadro 4–2) y los transportadores ABC (cuadro 4–3) que causan enfermedad. Sin embargo,
los polimorfismos genéticos más frecuentes en los transportadores de membrana participan en la respuesta farmacológica y están aportando nueva
información sobre la farmacogenética y la farmacología (cap. 7).
Los estudios clínicos revelan que los polimorfismos en tres transportadores, ABCG2 (BCRP), SLCO1B1 (OATP1B1) y SLC22A1 (OCT1), contribuyen a la
variación interindividual en la respuesta a muchos fármacos y deben considerarse en el desarrollo de fármacos (Yee et al., 2018). Por ejemplo, un
polimorfismo frecuente de mutación de aminoácido (rs2231142), p.Gln141Lys en BCRP, se relaciona con una respuesta más intensa a la rosuvastatina.
BCRP permite la salida intestinal de la rosuvastatina. El polimorfismo p.Gln141Lys reduce la función de BCRP y así disminuye la salida intestinal de la
rosuvastatina y produce un aumento concomitante en la biodisponibilidad del fármaco. El polimorfismo BCRP también se ha relacionado con una
respuesta deficiente al alopurinol en varios estudios de relación con el genoma completo, aunque los mecanismos de la relación se desconocen. Un
polimorfismo frecuente con cambio de aminoácido (rs4149056) en OATP1B1, p.Val174Ala, se acompaña de aumento en la concentración sanguínea de
las estatinas y su toxicidad muscular consecuente (cap. 37), así como la variación interindividual en la farmacocinética del metotrexato y el ticagrelor
(Yee et al., 2018). Múltiples estudios indican que muchas variantes genéticas en los transportadores de la familia SLC22A se relacionan con variación
interindividual en la depuración y respuesta a varios fármacos. Por ejemplo, existen asociaciones significativas entre las variantes con mutación de
aminoácidoo de SLC22A1 (variantes con función reducida) y la concentración sistémica del fármaco antidiabético metformina, el antimigrañoso
sumatriptán, el analgésico opiáceo morfina y el antiemético ondansetrón (Yee et al., 2018). Los transportadores además de OATP1B1, ABCG2 y OCT1
tienen polimorfismos que se han vinculado con variación interindividual en la respuesta farmacológica (Rungtivasuwan et al., 2015). Por ejemplo, la
alteración en la eliminación de tenofovir, un antiviral, se ha relacionado con polimorfismos tanto en ABCC2 (MRP2) como en ABCC4 (MRP4).
TRANSPORTADORES EN LAS CIENCIAS REGULADORAS
Debido a su importancia en la disposición y acción de los fármacos, los transportadores son determinantes principales de la variación en las
respuestas terapéuticas y las reacciones adversas de los fármacos. Como resultado, es probable que los transportadores medien las interacciones
farmacológicas que generan problemas de seguridad. Un ejemplo notable es la interacción entre gemfibrozilo y cerivastatina. El glucurónido de
gemfibrozilo formado en los hepatocitos reduce la captación y metabolismo hepáticos de la cerivastatina; el resultado es una Cp elevada de
cerivastatina. La concentración elevada de la estatina causa miopatías, incluso rabdomiólisis, un efecto adverso que pone en peligro la vida. Esta
interacción dio lugar al retiro del mercado de la cerivastatina, ya que hubo muertes por rabdomiólisis. La FDA en Estados Unidos emitió una guía de
farmacología clínica para la realización de estudios de interacciones farmacológicas durante el desarrollo clínico de los fármacos (FDA, 2020). La guía
presenta información sobre cómo usar los datos in vitro para estudios de transportadores a fin de tomar decisiones sobre la realización de un estudio
clínico de interacciones farmacológicas. Por ejemplo, si una nueva entidad molecular (NME, new molecular entity) inhibe el transporte in vitro de un
sustrato canónico de OCT2 y MATE1 en concentraciones (libres) que tienen relevancia clínica, la guía recomienda que el patrocinador considere
realizar un estudio clínico de interacción farmacológica para confirmar si la NME inhibe la depuración renal de un sustrato de OCT2 y MATE1 (p. ej.,
metformina) in vivo (Nishiyama et al., 2019). Por otra parte, si la NME a concentraciones terapéuticas no inhibe el transporte mediado por OCT2 o por
MATE1 en las pruebas in vitro, la guía no recomienda un estudio clínico. Aunque solo unos cuantos transportadores (OATP1B1, OATP1B3, Pgp, BCRP,
OCT2, MATE1, OAT1 y OAT3) se incluyen en la guía de la FDA, se está realizando una cantidad cada vez mayor de estudios para identificar los
transportadores que median las interacciones farmacológicas clínicas.
Se han identificado varios biomarcadores endógenos como sondas in vivo para varios transportadores farmacológicos hepáticos y renales. Los datos
clínicos disponibles indican la utilidad de los biomarcadores endógenos en estudios de fase I para facilitar la fenotipificación del sujeto y la valoración
de las interacciones farmacológicas (cuadro 4–5) (Chu et al., 2018; Rodrigues et al., 2018). El uso de tales biomarcadores endógenos ofrece beneficios
en la planeación ulterior de estudios clínicos. Los dos biomarcadores endógenos de uso más frecuente son la coproporfirina I para la captación
hepática mediada por OATP1B y la N­metilnicotinamida para los transportadores de captación y excreción renales (OCT2/MATE) (Chu et al., 2018;
Rodrigues et al., 2018). Se ha propuesto un modelo PBPK útil (Yoshikado et al., 2018) y un modelo farmacocinético poblacional (Barnett et al., 2018)
para el biomarcador de OATP1B (coproporfirina I). Los modelos sustentan la traducción del efecto de una nueva entidad química sobre los cambios en
la concentración plasmática de coproporfirina I al efecto de los fármacos de uso clínico (p. ej., estatinas). Por tanto, la modelación puede
complementar las estrategias de valoración de riesgo de interacción farmacológica actuales basadas en los lineamientos de las agencias reguladoras.
CUADRO 4–5
BIOMARCADORES ENDÓGENOS PARA VALORAR EL RIESGO DE INTERACCIÓN FARMACOLÓGICA
TRANSPORTADOR
BLANCO
COMPUESTO
FORMACIÓN
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OATP1B1/OATP1B3
CP­I/III
Producto
intermedio en
la biosíntesis
de hem
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GCDCA­S, GCDCA­G, CDCA­24G
Metabolitos de ácidos biliares
PARÁMETRO PK
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Cmax o AUC
Cmax o AUC
Rodrigues et al., 2018). Se ha propuesto un modelo PBPK útil (Yoshikado et al., 2018) y un modelo farmacocinético poblacional (Barnett et al., 2018)
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para el biomarcador de OATP1B (coproporfirina I). Los modelos sustentan la traducción del efecto de una nueva entidad química sobre los cambios en
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la concentración plasmática de coproporfirina I al efecto de los fármacos de uso clínico (p. ej., estatinas). Por tanto, la modelación puede
complementar las estrategias de valoración de riesgo de interacción farmacológica actuales basadas en los lineamientos de las agencias reguladoras.
CUADRO 4–5
BIOMARCADORES ENDÓGENOS PARA VALORAR EL RIESGO DE INTERACCIÓN FARMACOLÓGICA
TRANSPORTADOR
BLANCO
OATP1B1/OATP1B3
COMPUESTO
FORMACIÓN
PARÁMETRO PK
CP­I/III
Producto intermedio en la biosíntesis de hem
Cmax o AUC
GCDCA­S, GCDCA­G, CDCA­24G
Metabolitos de ácidos biliares
Cmax o AUC
HDA y TDA
Metabolitos de ácidos grasos
Cmax o AUC
Bilirrubina no conjugada /bilirrubina
Metabolitos de hem
Cmax o AUC
Taurina
Aminoácido
CLR
6β­Hidroxicortisol
Metabolito del cortisol
AUC, CLR
GCDCA­S
Metabolitos de ácidos biliares
CLR
Ácido piridóxico
Metabolito de vitamina B6
AUC, CLR
Creatinina
Metabolito de la creatina
AUC, CLR
N­metilnicotinamida
Metabolito de nicotinamida
CLR
N­metiladenosina
Producto de degradación de tRNA, rRNA y snRNA
CLR
conjugadaa
OAT1/OAT3
OCT2/MATE
PK, farmacocinética; CLR, depuración renal; Cmax, concentración máxima; CP, coproporfirina; HDA, hexadecanedioato; TDA, tetradecanedioato; GCDCA­S,
glucoquenodesoxicolato­3­sulfato, un sustrato endógeno sustituto para OATP1B1.
a Cuantificadas como bilirrubinas total y directa en estudios clínicos.
Fuentes: Chu et al., 2018; Miyake et al., 2021; Rodrigues et al., 2018.
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CAPÍTULO
4: Transportadores
de membrana
y respuestas
a los blood­brain
fármacos, Kathleen
M. Giacomini;
Yuichi
Sugiyama
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CAPÍTULO
Transportadores
de membrana
respuestas
a los fármacos,
Kathleen
Yuichi their
Sugiyama
Shitara Y, et4:al.
Clinical significance
of organic yanion
transporting
polypeptides
(OATPs)M.inGiacomini;
drug disposition:
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CAPÍTULO 4: Transportadores de membrana y respuestas a los fármacos, Kathleen M. Giacomini; Yuichi Sugiyama
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CAPÍTULO 5: Metabolismo de los fármacos
Frank J. Gonzalez; Michael Coughtrie
ABREVIATURAS
Abreviaturas
ADR: reacción farmacológica adversa
AHR: receptor de hidrocarburo de arilo
AUC: área bajo la curva de concentración plasmática­tiempo
CAR: receptor constitutivo de androstano
CYP: citocromo P450
EH: epóxido hidrolasa
ER: retículo endoplásmico
F M O : monooxigenasa que contiene flavina
GI: gastrointestinal
GSH y GSSG: glutatión reducido y oxidado
G S T : glutatión­S­transferasa
HGPRT: hipoxantina guanina fosforriltransferasa
HIF: factor inducible por hipoxia
VIH: virus de la inmunodeficiencia humana
INH: hidrazida de ácido isonicotínico (isoniazida)
MAPK: proteína cinasa activada por mitógenos
mEH: epóxido hidrolasa microsómica
6­MP: 6­mercaptopurina
M T : metiltransferasa
NADPH: dinucleótido fosfato de nicotinamida y adenina reducido
NAPQI: N­acetil­p­benzoquinona imina
NAT: N­acetiltransferasa
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PAPS: 3′­fosfoadenosina­5′­fosfosulfato
CAPÍTULO 5: Metabolismo de los fármacos, Frank J. Gonzalez; Michael Coughtrie
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PPAR:McGraw
receptorHill.
activado
por proliferadores
del peroxisoma
PXR: receptor X de pregnano
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NADPH: dinucleótido fosfato de nicotinamida y adenina reducido
NAPQI: N­acetil­p­benzoquinona imina
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NAT: N­acetiltransferasa
PAPS: 3′­fosfoadenosina­5′­fosfosulfato
PPAR: receptor activado por proliferadores del peroxisoma
PXR: receptor X de pregnano
SULT: sulfotransferasa
TPMT: tiopurina metiltransferasa
UDP­GA: uridín­difosfato­ácido glucurónico
UGT: uridín­difosfato­glucuronosiltransferasa
METABOLISMO DE LOS XENOBIÓTICOS
Los seres humanos entran en contacto con miles de sustancias químicas o xenobióticas extrañas (sustancias ajenas al cuerpo) a través de la dieta y la
exposición a contaminantes ambientales. Por fortuna, los seres humanos han desarrollado un sistema para eliminar con rapidez los xenobióticos de
modo que no se acumulen en los tejidos y causen daño. Las plantas son una fuente común de xenobióticos en la alimentación, proporcionando
muchos productos químicos estructuralmente diversos, algunos de los cuales producen pigmentos y otros son toxinas (llamadas fitoalexinas) que
protegen a las plantas contra los depredadores. Un ejemplo común son los hongos venenosos que producen toxinas que son letales para los
mamíferos, incluyendo amanitina, giromitrina, orellanina, muscarina, ácido iboténico, muscimol, psilocibina y coprina. Los animales deben ser
capaces de metabolizar y eliminar tales productos químicos para consumir la vegetación. Mientras que los seres humanos ahora pueden elegir sus
fuentes dietéticas, un animal en estado salvaje no tiene esta oportunidad, como resultado está sujeto a su medio ambiente y a la vegetación que existe
en ese entorno. Por lo tanto, la capacidad de metabolizar sustancias químicas inusuales en plantas y otras fuentes de alimentos es fundamental para
adaptarse a un entorno cambiante y, en última instancia, para la supervivencia de los animales.
Históricamente, los farmacólogos han denominado a las enzimas que metabolizan xenobióticos como enzimas metabolizadoras de fármacos; sin
embargo, estas enzimas también están involucradas en el metabolismo de muchas sustancias químicas extrañas a las que están expuestos los seres
humanos. Por lo tanto, un mejor nombre es enzimas que metabolizan xenobióticos. Numerosas enzimas han evolucionado en animales para
metabolizar productos químicos extraños. Las diferencias dietéticas entre las especies a lo largo de la evolución podrían explicar las variaciones tan
pronunciadas en la complejidad de las enzimas que metabolizan xenobióticos. La diversidad adicional con estos sistemas enzimáticos también se ha
derivado de la necesidad de “eliminar” una serie de productos químicos endógenos que de otra forma serían perjudiciales para el organismo, como
las bilirrubinas, las hormonas esteroides y las catecolaminas.
Muchos de estos compuestos endógenos son eliminados por las mismas enzimas que metabolizan productos xenobióticos u otras estrechamente
relacionadas. Los fármacos xenobióticos, y la capacidad de metabolizar y eliminar fármacos implica las mismas vías enzimáticas y sistemas de
transporte que se utilizan para el metabolismo normal de los componentes de la dieta. Muchos fármacos se derivan de productos químicos que se
encuentran en las plantas, algunos de los cuales se han utilizado en medicina tradicional durante miles de años. De los fármacos de prescripción que
se utilizan hoy en día para el tratamiento del cáncer, algunos también se derivan de plantas (cap. 69 y 73); la investigación de información popular llevó
al descubrimiento de muchos fármacos. La capacidad de metabolizar los xenobióticos, aunque en gran medida beneficiosa, ha hecho que el
desarrollo de fármacos consuma más tiempo y sea más costoso debido en parte a:
Diferencias entre las especies en la expresión de enzimas que metabolizan los fármacos y que, por lo tanto, limitan la utilidad de los modelos
animales para predecir los efectos de los fármacos en los seres humanos
Variaciones individuales en la capacidad de los seres humanos para metabolizar fármacos
Interacciones farmacológicas que involucran enzimas que metabolizan productos xenobióticos
Activación metabólica de productos químicos para formar derivados tóxicos y cancerígenos
Hoy en día, la mayor parte de los xenobióticos a los que están expuestos los seres humanos provienen de fuentes que incluyen contaminación
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ambiental, aditivos
alimentarios,
productos
cosméticos,
agroquímicos,
alimentos
procesados, y fármacos.
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CAPÍTULO
5: Metabolismo
de los
fármacos,
Frank J. Gonzalez;
Michael
Coughtrie
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En general, la mayor parte de los xenobióticos son productos químicos hidrófobos; en ausencia del metabolismo, estos no se eliminarían de manera
eficaz y, por lo tanto, se acumularían en el cuerpo, dando origen a toxicidad potencial. Con pocas excepciones, todos los xenobióticos están sujetos a
Variaciones individuales en la capacidad de los seres humanos para metabolizar fármacos
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Interacciones farmacológicas que involucran enzimas que metabolizan productos xenobióticos
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Activación metabólica de productos químicos para formar derivados tóxicos y cancerígenos
Hoy en día, la mayor parte de los xenobióticos a los que están expuestos los seres humanos provienen de fuentes que incluyen contaminación
ambiental, aditivos alimentarios, productos cosméticos, agroquímicos, alimentos procesados, y fármacos.
En general, la mayor parte de los xenobióticos son productos químicos hidrófobos; en ausencia del metabolismo, estos no se eliminarían de manera
eficaz y, por lo tanto, se acumularían en el cuerpo, dando origen a toxicidad potencial. Con pocas excepciones, todos los xenobióticos están sujetos a
una o varias vías enzimáticas que constituyen la fase 1 de oxidación y la fase 2 de conjugación. Como modelo general, el metabolismo sirve para
convertir estos productos químicos hidrófobos en derivados más hidrófilos que pueden eliminarse fácilmente del cuerpo a través de la orina o la bilis.
Para entrar en las células y llegar a sus sitios de acción, los fármacos por lo general deben poseer propiedades físicas que les permitan desplazarse
siguiendo un gradiente de concentración y a través de las membranas celulares. Muchos fármacos son hidrófobos, una propiedad que permite la
entrada por difusión a través de la bicapa lipídica en la circulación sistémica y luego en las células. Los transportadores en la membrana plasmática
facilitan la entrada de algunos compuestos (cap. 4). Los fármacos hidrófobos son difíciles de eliminar porque, en ausencia de metabolismo, se
acumulan en grasas y en la bicapa de fosfolípidos de la célula. Las enzimas que metabolizan xenobióticos convierten a los fármacos y otros
xenobióticos en derivados más hidrófilos y, por lo tanto, se eliminan con facilidad a través de la excreción en los compartimentos acuosos de los
tejidos y en última instancia en la orina. Los fármacos de alto peso molecular se eliminan principalmente a través de la bilis por el intestino y las heces.
El metabolismo de un fármaco puede comenzar incluso antes de que se absorba. Las bacterias intestinales representan la primera interacción
metabólica entre los fármacos administrados por vía oral y el cuerpo (cap. 6). El microbioma del tubo digestivo puede metabolizar a los xenobióticos;
las diferencias individuales en la composición de la flora intestinal podrían influir en la acción de los fármacos y contribuir a las diferencias en la
respuesta a los mismos. De hecho, las oscilaciones diurnas en las bacterias del tubo digestivo y su capacidad metabólica, superpuestas a las
oscilaciones del reloj genético del hospedador, parecen afectar el destino y el efecto de los fármacos (Fitzgerald et al., 2015).
El proceso por el que se metabolizan los fármacos y que conduce a su eliminación también desempeña una función importante en la disminución de la
actividad biológica de un fármaco. Por ejemplo, el (S)­difenilhidantoinato, un anticonvulsivo utilizado en el tratamiento de la epilepsia es
prácticamente insoluble en agua. El metabolismo por el citocromo P450 (CYP) de la fase 1, seguido por la fase 2 con UGT (uridina difosfato–
glucuronosiltransferasas) produce un metabolito muy hidrosoluble que se elimina con facilidad del cuerpo (fig. 5–1). El metabolismo también finaliza
la actividad biológica de (S)­difenilhidantoinato. Debido a que los conjugados son generalmente hidrófilos, la eliminación a través de la bilis o la orina
depende de las acciones de muchos transportadores de flujo para facilitar el paso a través de las membranas (cap. 4).
Figura 5–1
Metabolismo del difenilhidantoinato. En la fase 1, el CYP facilita la 4­hidroxilación del difenilhidantoinato para producir HPPH. En la fase 2, el grupo
hidroxilo sirve como sustrato para la UGT, que conjuga una molécula de ácido glucurónico utilizando UDP­GA como cofactor. En conjunto, las
reacciones de las fases 1 y 2 convierten una molécula muy hidrófoba en un derivado hidrófilo más grande que se elimina a través de la bilis. HPPH, 5­
(­4­hidroxifenil)­5­fenilhidantoína.
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CAPÍTULO 5: Metabolismo de los fármacos, Frank J. Gonzalez; Michael Coughtrie
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Metabolismo del difenilhidantoinato. En la fase 1, el CYP facilita la 4­hidroxilación del difenilhidantoinato para producir HPPH. En la fase 2, el grupo
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hidroxilo sirve como sustrato para la UGT, que conjuga una molécula de ácido glucurónico utilizando UDP­GA como cofactor. En conjunto, las
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reacciones de las fases 1 y 2 convierten una molécula muy hidrófoba en un derivado hidrófilo más grande que se elimina a través de la bilis. HPPH, 5­
(­4­hidroxifenil)­5­fenilhidantoína.
Mientras que las enzimas que metabolizan xenobióticos facilitan la eliminación de sustancias químicas del cuerpo, estas mismas enzimas también
pueden convertir ciertas sustancias químicas en metabolitos muy reactivos, tóxicos y cancerígenos. Esto ocurre cuando se forma un producto
intermedio inestable que tiene reactividad hacia otros compuestos en la célula. Los productos químicos que pueden ser convertidos por el
metabolismo xenobiótico en derivados que producen cáncer se llaman carcinógenos. Dependiendo de la estructura del sustrato químico, las enzimas
que metabolizan xenobióticos pueden producir metabolitos electrofílicos que reaccionan con macromoléculas celulares nucleófilas como DNA, RNA y
proteínas. Esto puede causar muerte celular y efectos tóxicos en los órganos. La mayor parte de los fármacos y otros xenobióticos que causan
hepatotoxicidad dañan las mitocondrias, lo que lleva a la muerte de los hepatocitos. La reacción de estos electrófilos con el DNA en ocasiones puede
producir cáncer a través de la mutación de oncogenes o de genes supresores de tumores. Por lo general se cree que la mayor parte de los cánceres en
seres humanos se deben a la exposición a sustancias químicas carcinógenas.
Esta actividad potencialmente carcinógena hace de vital importancia las pruebas de seguridad para moléculas elegibles como posibles fármacos. Las
pruebas para detectar la posibilidad de producir cáncer son de especial importancia para los fármacos que se utilizarán para el tratamiento de
enfermedades crónicas. Debido a que cada especie ha evolucionado para obtener una combinación singular de enzimas para el metabolismo de
productos xenobióticos, los modelos en animales no primates (en su mayor parte roedores) no pueden ser utilizados únicamente para probar la
seguridad de los posibles nuevos fármacos dirigidos a ser utilizados en el tratamiento de enfermedades en seres humanos. Sin embargo, las pruebas
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en modelos de2023­12­27
roedores (p.10:36
ej., ratones
ratas)
por lo general pueden identificar posibles carcinógenos. Por fortuna, no hay casos de fármacos con
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CAPÍTULO 5: Metabolismo de los fármacos, Frank J. Gonzalez; Michael Coughtrie
resultados
negativos
en
roedores
pero
que
causen
cáncer
seres humanos,
aunque
algunas sustancias químicas que causan cáncer en roedores no
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se asocian con cáncer en seres humanos. Muchos fármacos citotóxicos utilizados en el tratamiento del cáncer también se acompañan de la posibilidad
de causar cáncer; este riesgo se reduce al mínimo por su uso en periodos cortos, en lugar del uso para tratamientos crónicos contra el cáncer.
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Esta actividad potencialmente carcinógena hace de vital importancia las pruebas de seguridad para moléculas
elegibles como
fármacos.­ Las
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pruebas para detectar la posibilidad de producir cáncer son de especial importancia para los fármacos queAccess
se utilizarán
para el tratamiento de
enfermedades crónicas. Debido a que cada especie ha evolucionado para obtener una combinación singular de enzimas para el metabolismo de
productos xenobióticos, los modelos en animales no primates (en su mayor parte roedores) no pueden ser utilizados únicamente para probar la
seguridad de los posibles nuevos fármacos dirigidos a ser utilizados en el tratamiento de enfermedades en seres humanos. Sin embargo, las pruebas
en modelos de roedores (p. ej., ratones y ratas) por lo general pueden identificar posibles carcinógenos. Por fortuna, no hay casos de fármacos con
resultados negativos en roedores pero que causen cáncer en seres humanos, aunque algunas sustancias químicas que causan cáncer en roedores no
se asocian con cáncer en seres humanos. Muchos fármacos citotóxicos utilizados en el tratamiento del cáncer también se acompañan de la posibilidad
de causar cáncer; este riesgo se reduce al mínimo por su uso en periodos cortos, en lugar del uso para tratamientos crónicos contra el cáncer.
LAS FASES DEL METABOLISMO DE LOS FÁRMACOS
Por tradición, las enzimas que metabolizan xenobióticos han sido catalogadas como
reacciones de la fase 1, que incluyen oxidación, reducción y reacciones hidrolíticas; o
reacciones de la fase 2, en las que las enzimas catalizan la conjugación del sustrato (el producto de la fase 1) con una segunda molécula.
Las enzimas de la fase 1 ocasionan la adición de grupos funcionales, como –OH, –COOH, –SH, –O, ­NH2 (cuadro 5–1). La adición de grupos funcionales
hace poco para incrementar la hidrosolubilidad del fármaco, pero puede alterar en forma notable las propiedades biológicas del mismo. Las
reacciones que ocurren en la fase 1 por acción enzimática por lo general ocasionan inactivación del fármaco. Sin embargo, en ciertos casos el
metabolismo, por lo general la hidrólisis de un enlace éster o amida, ocasiona la bioactivación de un fármaco. Los fármacos inactivos que se someten
al metabolismo para convertirse en fármacos activos se llaman profármacos (Rautio et al., 2018). Los profármacos pueden ser activados por enzimas
bacterianas intestinales, enzimas en la sangre o enzimas intracelulares como el citocromo P450 (CYP), monooxigenasas que contienen flavina (FMO,
flavin­containing monooxygenases) y enzimas hidrolíticas. Ejemplos de profármacos bioactivados por el CYP son el fármaco antitumoral
ciclofosfamida, que sufre bioactivación a un derivado electrófilo que destruye células (cap. 70) y el fármaco antitrombótico clopidogrel, que se activa a
2­oxo­clopidogrel y se metaboliza aún más hasta formar un inhibidor irreversible de los receptores plaquetarios de ADP, P2Y12. A través de las
reacciones de conjugación, las enzimas de la fase 2 producen metabolitos más hidrosolubles, una propiedad que facilita la eliminación de fármacos
de los tejidos, normalmente a través de transportadores de flujo descritos en el capítulo 4. Así, en general, las reacciones de fase 1 tienen como
resultado la inactivación biológica de un fármaco y las reacciones de la fase 2 facilitan la eliminación del fármaco y la inactivación de metabolitos
electrófilos y potencialmente tóxicos producidos por la oxidación.
CUADRO 5–1
ENZIMAS QUE METABOLIZAN PRODUCTOS XENOBIÓTICOS
ENZIMAS
REACCIONES
Enzimas de la fase 1 (CYP, FMO, EH)
Citocromo P450 (P450 o CYP)
Oxidación de carbono y oxígeno, desalquilación, otras
Flavina monooxigenasas (FMO)
Oxidación de nitrógeno, azufre, fósforo
Epóxido hidrolasas (EH)
Hidrólisis de epóxidos
Fase 2, “transferasas”
Sulfotransferasas (SULT)
Adición de sulfato
UDP­glucuronosiltransferasas (UGT)
Adición de ácido glucurónico
Glutatión­S­transferasas (GST)
Adición de glutatión
N­acetiltransferasas (NAT)
Adición de grupo acetilo
Metiltransferasas (MT)
Adición de grupo metilo
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enzimas
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Alcohol deshidrogenasas
Reducción de alcoholes
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reacciones de conjugación, las enzimas de la fase 2 producen metabolitos más hidrosolubles, una propiedad que facilita la eliminación de fármacos
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de los tejidos, normalmente a través de transportadores de flujo descritos en el capítulo 4. Así, en general, las reacciones de fase 1 tienen como
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resultado la inactivación biológica de un fármaco y las reacciones de la fase 2 facilitan la eliminación del fármaco y la inactivación de metabolitos
electrófilos y potencialmente tóxicos producidos por la oxidación.
CUADRO 5–1
ENZIMAS QUE METABOLIZAN PRODUCTOS XENOBIÓTICOS
ENZIMAS
REACCIONES
Enzimas de la fase 1 (CYP, FMO, EH)
Citocromo P450 (P450 o CYP)
Oxidación de carbono y oxígeno, desalquilación, otras
Flavina monooxigenasas (FMO)
Oxidación de nitrógeno, azufre, fósforo
Epóxido hidrolasas (EH)
Hidrólisis de epóxidos
Fase 2, “transferasas”
Sulfotransferasas (SULT)
Adición de sulfato
UDP­glucuronosiltransferasas (UGT)
Adición de ácido glucurónico
Glutatión­S­transferasas (GST)
Adición de glutatión
N­acetiltransferasas (NAT)
Adición de grupo acetilo
Metiltransferasas (MT)
Adición de grupo metilo
Otras enzimas
Alcohol deshidrogenasas
Reducción de alcoholes
Aldehído deshidrogenasas
Reducción de aldehídos
NADPH­quinona oxidorreductasa (NQO)
Reducción de quinonas
mEH, epóxido hidrolasa microsómica; sEH epóxido hidrolasa soluble; NADPH, fosfato de dinucleótido de nicotinamida y adenina reducido; UDP, uridina difosfato.
Las superfamilias de enzimas y receptores con relación evolutiva son comunes en el genoma de los mamíferos. Las superfamilias se designan con
base en una estructura y función similares. Dentro de las superfamilias hay subfamilias de genes más estrechamente relacionadas que por lo general
están localizadas en un cromosoma. Los sistemas enzimáticos que participan en el metabolismo de los fármacos son buenos ejemplos. Las reacciones
de oxidación de la fase 1 se llevan a cabo mediante CYP, flavina monooxigenasas (FMO) y epóxido hidrolasas (EH). El CYP y la FMO están compuestos
por superfamilias y subfamilias codificadas por múltiples genes. Las enzimas de fase 2 incluyen varias superfamilias de enzimas conjugadoras. Entre
las más importantes se encuentran la glutatión­S­transferasa (GST), uridina difosfato glucuronosiltransferasa (UGT), sulfotransferasas (SULT), N­
acetiltransferasas (NAT) y metiltransferasas (MT) (cuadro 5–1).
Las reacciones de conjugación de las enzimas de la fase 2 por lo general requieren que el sustrato tenga átomos de oxígeno (grupos hidroxilo o
epóxido), nitrógeno o azufre que sirvan como sitios aceptores de un radical hidrófilo, como glutatión, ácido glucurónico, sulfato o un grupo acetilo,
que puede conjugarse de manera covalente a un sitio aceptor en el sustrato. El metabolismo del difenilhidantoinato (fig. 5–1) ilustra la secuencia
metabólica de las dos fases. La oxidación por enzimas de la fase 1 añade o expone un grupo funcional, permitiendo que los productos del
metabolismo de dicha fase sirvan como sustratos para las enzimas sintéticas o de conjugación de la fase 2. En el caso de las UGT, el ácido glucurónico
se añade al grupo funcional, formando un metabolito glucurónido que es más hidrosoluble y se excreta por la orina o la bilis. Cuando el sustrato es un
fármaco, estas reacciones suelen convertir el fármaco original en una forma que no es capaz de unirse a su receptor, atenuando así la respuesta
biológica al fármaco.
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Las enzimas que metabolizan xenobióticos se encuentran en la mayor parte de los tejidos del cuerpo, con concentraciones más elevadas en el tubo
que puede conjugarse de manera covalente a un sitio aceptor en el sustrato. El metabolismo del difenilhidantoinato (fig. 5–1) ilustra la secuencia
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metabólica de las dos fases. La oxidación por enzimas de la fase 1 añade o expone un grupo funcional, permitiendo
que los productos
del
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metabolismo de dicha fase sirvan como sustratos para las enzimas sintéticas o de conjugación de la fase 2. En
el caso
deby:las UGT, el ácido glucurónico
se añade al grupo funcional, formando un metabolito glucurónido que es más hidrosoluble y se excreta por la orina o la bilis. Cuando el sustrato es un
fármaco, estas reacciones suelen convertir el fármaco original en una forma que no es capaz de unirse a su receptor, atenuando así la respuesta
biológica al fármaco.
SITIOS DEL METABOLISMO DE FÁRMACOS
Las enzimas que metabolizan xenobióticos se encuentran en la mayor parte de los tejidos del cuerpo, con concentraciones más elevadas en el tubo
digestivo (hígado, intestino delgado y colon). El intestino delgado desempeña una función crucial en el metabolismo de los fármacos. Los fármacos
administrados por vía oral se exponen primero a la flora gastrointestinal que puede metabolizar algunos de ellos (cap. 6). Durante la absorción, los
fármacos se exponen a enzimas que metabolizan xenobióticos en las células epiteliales del tubo digestivo; este es el sitio inicial del metabolismo de los
fármacos. Una vez absorbidos, los fármacos entran en la circulación portal y llegan al hígado, donde pueden sufrir metabolización amplia (“efecto de
primer paso”) antes de entrar en la circulación general. El hígado es el principal “centro de intercambio metabólico” tanto para los productos
químicos endógenos (p. ej., colesterol, hormonas esteroides, ácidos grasos y proteínas) como para los xenobióticos. Los pasos siguientes a través del
hígado ocasionan un mayor metabolismo del fármaco original hasta que el este último es eliminado. Los fármacos mal metabolizados permanecen en
el cuerpo durante periodos de tiempo más prolongados y sus perfiles farmacocinéticos muestran semividas de eliminación mucho más largas que los
fármacos que se metabolizan con rapidez.
Durante el desarrollo de fármacos, los compuestos deseables son aquellos que tienen un perfil farmacocinético favorable y se eliminan en el
transcurso de 24 h después de su administración. Esto permite el uso de una dosis única diaria. Si un compuesto con eficacia favorable no se puede
modificar para mejorar su perfil farmacocinético, se debe utilizar una dosificación cada 12 h o incluso cada 8 h. Otros órganos que contienen de forma
significativa enzimas que metabolizan xenobióticos son los tejidos de la mucosa nasal y el pulmón, que desempeñan una función importante en el
metabolismo de los fármacos administrados en aerosol. Estos tejidos también son la primera línea de contacto con sustancias peligrosas que se
encuentran en el aire.
Dentro de la célula, las enzimas que metabolizan xenobióticos se encuentran en las membranas intracelulares y en el citosol. Los CYP, FMO y EH de la
fase 1 y algunas enzimas conjugadoras de la fase 2, en especial las UGT, se encuentran en el retículo endoplásmico (ER, endoplasmic reticulum) de la
célula (fig. 5–2). El ER consiste en una bicapa de fosfolípidos organizados en tubos y láminas a lo largo del citoplasma. Esta red, que es muy extensa en
los hepatocitos, es donde ocurre la mayor parte del metabolismo de los xenobióticos, tiene una luz interna que es físicamente diferente del resto de
los componentes citosólicos de la célula y tiene conexiones con la membrana plasmática y con la envoltura nuclear. Esta localización en las
membranas es ideal para la función metabólica de estas enzimas. Las moléculas hidrófobas entran en la célula y se incrustan en la capa de lípidos,
donde entran en contacto directo con las enzimas de la fase 1. Una vez que se someten a oxidación, las drogas pueden ser conjugadas directamente
por las UGT (en la luz del retículo endoplásmico) o por las transferasas citosólicas, tales como GST y SULT. El cosustrato de UGT UDP­GA (uridín
difosfato­ácido glucurónico) debe transportarse en la luz del ER, desde donde deben exportarse los conjugados de glucurónido. Después del
metabolismo en el hígado, los metabolitos se transportan a través de la membrana plasmática hacia el torrente sanguíneo y se eliminan a través del
riñón o se transportan hacia la bilis a través de los canalículos biliares, desde los cuales son depositados en el intestino y se eliminan en las heces
(como se muestra para el inhibidor de la topoisomerasa SN­38 en la fig. 5–9). Si un compuesto se eliminará por vía renal o en la bilis depende en parte
de la especificidad del sustrato por los transportadores de membrana y su peso molecular; los compuestos de alto peso molecular se eliminan de
manera prioritaria a través de la bilis.
Figura 5–2
Ubicación del CYP en la célula. Se muestran niveles de detalle microscópicos, expandiendo secuencialmente las áreas dentro de las cajas negras. Los
CYP están integrados en la bicapa de fosfolípidos del retículo endoplásmico. La mayor parte de las enzimas se encuentran en la superficie citosólica
del retículo endoplásmico. Una segunda enzima, la NADPH­CYP oxidorreductasa, transfiere electrones al CYP donde puede oxidar sustratos
xenobióticos en presencia de O2, muchos de los sustratos son hidrófobos y se encuentran disueltos en el retículo endoplásmico. Una sola especie de
NADPH­CYP oxidorreductasa transfiere electrones a todas las isoformas de CYP en el retículo endoplásmico. Cada CYP contiene una molécula de
hierro­protoporfirina IX que funciona para unirse y activar O2. Los sustitutos en el anillo de porfirina son los grupos metilo (M), propionilo (P) y vinilo
(V).
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xenobióticos en presencia de O2, muchos de los sustratos son hidrófobos y se encuentran disueltos en el retículo endoplásmico. Una sola especie de
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NADPH­CYP oxidorreductasa transfiere electrones a todas las isoformas de CYP en el retículo endoplásmico. Cada CYP contiene una molécula de
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hierro­protoporfirina IX que funciona para unirse y activar O2. Los sustitutos en el anillo de porfirina son los grupos metilo (M), propionilo (P) y vinilo
(V).
REACCIONES DE FASE 1
CYP: la superfamilia del citocromo P450
Los CYP son una superfamilia de enzimas, cada una de las cuales contiene una molécula hem unida por enlaces no covalentes a la cadena
polipeptídica (fig. 5–2). Muchas enzimas que utilizan O2 como sustrato para sus reacciones contienen la molécula hem, la cual es un radical que se une
al oxígeno en la hemoglobina. La molécula hem contiene un átomo de hierro en una estructura de hidrocarburos que se une al O2 en el sitio activo del
CYP como parte del ciclo catalítico de estas enzimas. Los CYP utilizan O2 más H+ derivado del cofactor NADPH reducido para realizar la oxidación de
sustratos. El H+ proviene de la enzima NADPH­CYP oxidorreductasa. El metabolismo de un sustrato por un CYP consume una molécula de O2 y produce
un sustrato oxidado y una molécula de H2O como subproducto. Sin embargo, para la mayor parte de los CYP, dependiendo de la naturaleza del
sustrato, la reacción está “desacoplada”, consumiendo más O2 que el sustrato metabolizado y produce lo que se llama oxígeno activado u O2−. Por lo
general, el O2− se convierte en agua por acción de la enzima superóxido dismutasa. Sin embargo, cuando el O2−, también llamado molécula reactiva de
oxígeno (ROS, reactive oxygen species) se eleva por exceso de oxidación y metabolismo de ciertos sustratos, puede causar tensión oxidativa que es
perjudicial para la fisiología celular y se asocia con enfermedades como la cirrosis hepática.
Especificidad y promiscuidad del sustrato
Entre las diversas reacciones llevadas a cabo por los CYP de los mamíferos se encuentran la N­desalquilación, O­desalquilación, hidroxilación
aromática, N­oxidación, S­oxidación, desaminación y deshalogenación (cuadro 5–2). En seres humanos se han identificado 57 CYP individuales. El
metabolismo de los productos químicos xenobióticos presentes en la dieta no es la única función que desempeñan los CYP. Otros miembros de la
familia CYP participan en la síntesis de compuestos endógenos como esteroides, moléculas de señalización de ácidos grasos (p. ej., ácidos
epoxieicosatrienoicos; fig. 5–5) y ácidos biliares.
CUADRO 5–2
REACCIONES PRINCIPALES RELACIONADAS CON EL METABOLISMO DE FÁRMACOS
REACCIÓN
EJEMPLOS
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aromática, N­oxidación, S­oxidación, desaminación y deshalogenación (cuadro 5–2). En seres humanos se han identificado 57 CYP individuales. El
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metabolismo de los productos químicos xenobióticos presentes en la dieta no es la única función que desempeñan los CYP. Otros miembros de la
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familia CYP participan en la síntesis de compuestos endógenos como esteroides, moléculas de señalización de ácidos grasos (p. ej., ácidos
epoxieicosatrienoicos; fig. 5–5) y ácidos biliares.
CUADRO 5–2
REACCIONES PRINCIPALES RELACIONADAS CON EL METABOLISMO DE FÁRMACOS
REACCIÓN
EJEMPLOS
Los CYP que cataliza la síntesis de esteroides y ácidos biliares tiene preferencias específicas de sustrato. Por ejemplo, el CYP que produce estrógenos a
partir de la testosterona, CYP19 o aromatasa, puede metabolizar la testosterona o la androstenediona y no los xenobióticos. Los inhibidores
específicos de la aromatasa, como el anastrozol, se utilizan en el tratamiento de los tumores dependientes de estrógenos (caps. 48 y 73).
La síntesis de los ácidos biliares a partir del colesterol se produce en el hígado, donde después de la oxidación catalizada por el CYP, los ácidos biliares
se conjugan con aminoácidos y se transportan a través de los conductos biliares y la vesícula hasta el intestino delgado. Los ácidos biliares son
emulsionantes que facilitan la eliminación de los fármacos conjugados de alto peso molecular en el hígado y sirven para mejorar la absorción de
ácidos grasos y vitaminas de la dieta. Más de 90% de los ácidos biliares se reabsorben por el intestino y son transportados de nuevo a los hepatocitos
en un proceso estrechamente regulado de transporte enterohepático (González, 2012). Al igual que los CYP que participan en la biosíntesis de
esteroides, los CYP que participan en la producción de ácidos biliares tienen requisitos estrictos de sustrato y no participan en el metabolismo de
xenobióticos o de fármacos.
A diferencia de los CYP que realizan reacciones muy específicas, los CYP que participan en el metabolismo de xenobióticos son promiscuos en su
capacidad para unirse y para metabolizar múltiples sustratos (cuadro 5–2). Como grupo, los CYP que llevan a cabo el metabolismo de los xenobióticos
tienen la capacidad
de metabolizar
un gran
de productos químicos con diferentes estructuras. Esto se debe a que existen diversos tipos de
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5: Metabolismo
delolos
fármacos,
J. CYP
Gonzalez;
Michael
Coughtrie
CYP, con diferentes
isoformas,
cual
hace queFrank
un solo
tenga la
capacidad
para metabolizar muchas sustancias químicas estructuralmente
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diversas. Un solo compuesto también puede ser metabolizado, aunque a diferentes tasas, por diferentes CYP. Además, un CYP puede metabolizar un
solo compuesto en diferentes posiciones de la molécula, y dos CYP pueden realizar el metabolismo de un solo compuesto en distintos sitios de
oxidación.
en un proceso estrechamente regulado de transporte enterohepático (González, 2012). Al igual que los CYP que participan en la biosíntesis de
esteroides, los CYP que participan en la producción de ácidos biliares tienen requisitos estrictos de sustratoUNIVERSIDAD
y no participan en
metabolismo
DEelEL
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xenobióticos o de fármacos.
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A diferencia de los CYP que realizan reacciones muy específicas, los CYP que participan en el metabolismo de xenobióticos son promiscuos en su
capacidad para unirse y para metabolizar múltiples sustratos (cuadro 5–2). Como grupo, los CYP que llevan a cabo el metabolismo de los xenobióticos
tienen la capacidad de metabolizar un gran número de productos químicos con diferentes estructuras. Esto se debe a que existen diversos tipos de
CYP, con diferentes isoformas, lo cual hace que un solo CYP tenga la capacidad para metabolizar muchas sustancias químicas estructuralmente
diversas. Un solo compuesto también puede ser metabolizado, aunque a diferentes tasas, por diferentes CYP. Además, un CYP puede metabolizar un
solo compuesto en diferentes posiciones de la molécula, y dos CYP pueden realizar el metabolismo de un solo compuesto en distintos sitios de
oxidación.
Esta promiscuidad de los CYP se debe a su gran número de sitios de unión al sustrato, una característica que sacrifica las tasas de recambio enzimático
para una amplia especificidad. Los CYP metabolizan los sustratos a una fracción de la tasa de enzimas más típicas que participan en el metabolismo
intermedio y la transferencia de electrones al nivel mitocondrial. Como resultado, los fármacos por lo general tienen semividas que varían de 3 a 30 h,
mientras que los compuestos endógenos tienen semividas del orden de segundos o minutos cuando se administran por vía exógena (p. ej.,
catecolaminas y glucosa). A pesar de que los CYP tienen tasas catalíticas lentas, sus actividades son suficientes para metabolizar los fármacos
administrados en altas concentraciones.
El metabolismo de un fármaco en particular puede atribuirse a menudo a la actividad de un solo CYP. Sin embargo, cuando dos fármacos
administrados en forma simultánea son metabolizados por un solo CYP, compiten por unirse al sitio activo de la enzima. Esto puede ocasionar
inhibición del metabolismo de uno o ambos de los fármacos, lo que conduce al incremento de las concentraciones plasmáticas de dichos fármacos. Si
hay un índice terapéutico estrecho para los fármacos, el aumento de las concentraciones séricas puede provocar efectos tóxicos indeseados. Las
interacciones farmacológicas se encuentran entre las principales causas de reacciones adversas a los fármacos (ADR). El etiquetado de los fármacos
de prescripción proporciona advertencias sobre las interacciones farmacológicas, incluida la identidad del CYP que participa en forma predominante
en el metabolismo de un fármaco en particular. Los estudios preclínicos deben tomar en consideración cualquier fármaco disponible en el comercio
que pueda administrarse en forma simultánea con el fármaco en desarrollo. Por ejemplo, el tratamiento del síndrome X (síndrome metabólico) incluye
estatinas y fármacos antidiabéticos. Si estos fármacos se metabolizan por el mismo CYP, se podrían predecir las interacciones farmacológicas y evitar
las respuestas adversas mediante opciones de fármacos o ajustes de dosis adecuados.
Denominación de los CYP
De las enzimas que metabolizan productos xenobióticos, los CYP son los que han sido estudiados de forma más exhaustiva, ya que participan en la
mayor parte del metabolismo de los fármacos utilizados con fines terapéuticos. Los CYP son complejos y diversos en sus actividades catalítica y de
regulación. La secuenciación del genoma ha revelado la existencia de 102 genes funcionales para CYP y 88 seudogenes en el ratón, además de 57
genes funcionales y 58 seudogenes en los seres humanos. Estos genes se agrupan, con base en la similitud de secuencia de aminoácidos, en una
superfamilia que comprende familias y subfamilias con una creciente similitud de secuencia. Los CYP se denominan con el prefijo CYP seguido de un
número que designa a la familia, una letra designa a la subfamilia y otro número designa la forma de CYP. Por lo tanto, CYP3A4 es la familia 3,
subfamilia A y gen número 4.
Un pequeño número de CYP metaboliza la mayor parte de los fármacos
Un número limitado de CYP de las familias 1, 2 y 3 participan de manera primordial en el metabolismo de xenobióticos en los seres humanos. Doce
CYP: CYP1A1, 1A2, 1B1, 2A6, 2B6, 2C8, 2C9, 2C19, 2D6, 2E1, 3A4 y 3A5 se mencionan repetidamente en las revisiones sobre el metabolismo de los
fármacos en esta obra. Además, debido a que un solo CYP puede metabolizar un gran número de compuestos estructuralmente diversos, estas
enzimas pueden metabolizar en conjunto no solo los productos farmacéuticos, sino también decenas de productos químicos que se encuentran en la
dieta y en el medio ambiente. El hígado contiene grandes cantidades de CYP que metabolizan xenobióticos, garantizando así un metabolismo de
primer paso eficiente para los fármacos. El CYP también se expresa en todo el tubo digestivo y en cantidades más bajas en los pulmones, riñones e
incluso en el sistema nervioso central (SNC).
La expresión de los CYP puede diferir notablemente como resultado de la exposición a inductores por medio de la dieta y el medio ambiente o a través
de diferencias hereditarias individuales en la estructura de los CYP que pueden afectar el metabolismo y la eliminación general de los fármacos. Los
CYP más activos involucrados en el metabolismo de los fármacos son los que pertenecen a las subfamilias CYP2C, CYP2D y CYP3A. El CYP3A4, que se
expresa con mayor densidad en el hígado, participa en el metabolismo de > 50% de los fármacos utilizados en la clínica (fig. 5–3A). Las subfamilias
CYP1A, CYP1B, CYP2A, CYP2B y CYP2E no están implicadas significativamente en el metabolismo de la mayor parte de los fármacos terapéuticos, pero
pueden catalizar la activación metabólica de protoxinas y procarcinógenos que se encuentran en la dieta y el medio ambiente hasta sus metabolitos
reactivos que pueden causar toxicidad y cáncer.
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Figura 5–3
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Fracción de los fármacos utilizados en la clínica y que se metabolizan a través de las principales enzimas de las fases 1 y 2. El tamaño relativo de cada
corte del pastel representa el porcentaje estimado de fármacos metabolizados por las enzimas principales de la fase 1 (A) y la fase 2 (B), con base en
CYP más activos involucrados en el metabolismo de los fármacos son los que pertenecen a las subfamilias CYP2C, CYP2D y CYP3A. El CYP3A4, que se
DE ELLas
SALVADOR
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expresa con mayor densidad en el hígado, participa en el metabolismo de > 50% de los fármacos utilizados UNIVERSIDAD
en la clínica (fig. 5–3A).
subfamilias
Provided
by:fármacos terapéuticos, pero
CYP1A, CYP1B, CYP2A, CYP2B y CYP2E no están implicadas significativamente en el metabolismo de la mayorAccess
parte
de los
pueden catalizar la activación metabólica de protoxinas y procarcinógenos que se encuentran en la dieta y el medio ambiente hasta sus metabolitos
reactivos que pueden causar toxicidad y cáncer.
Figura 5–3
Fracción de los fármacos utilizados en la clínica y que se metabolizan a través de las principales enzimas de las fases 1 y 2. El tamaño relativo de cada
corte del pastel representa el porcentaje estimado de fármacos metabolizados por las enzimas principales de la fase 1 (A) y la fase 2 (B), con base en
estudios publicados en revistas médicas. En algunos casos, más de una sola enzima participa en el metabolismo de un solo fármaco.
Polimorfismo de CYP
De acuerdo con lo valorado tanto en estudios farmacológicos clínicos como por análisis de expresión en muestras de hígado humano, existen grandes
diferencias en los niveles de expresión de cada CYP entre diferentes individuos. Esta gran variabilidad en la expresión de CYP entre individuos se debe
a la presencia de polimorfismos genéticos y a las diferencias en la regulación de los genes (véase más adelante). Varios genes de CYP humanos
presentan polimorfismos, incluyendo CYP2A6, CYP2C9, CYP2C19 y CYP2D6. Los polimorfismos en los CYP contribuyen de manera significativa en las
diferencias entre individuos para metabolizar fármacos y existen diferencias étnicas notables en el alcance de los polimorfismos genéticos. Por
ejemplo, hasta 10% y 25% de los caucásicos y asiáticos, respectivamente, carecen de expresión de CYP2D6 y CYP2C19. El polimorfismo CYP2D6 ha
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llevado al retiro de varios fármacos utilizados en la clínica (p. ej., debrioquina y perhexilina) y al uso más prudente de otros fármacos conocidos
como
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CAPÍTULO 5: Metabolismo de los fármacos, Frank J. Gonzalez; Michael Coughtrie
sustratos
del
CYP2D6
(p.
ej.
,
encainida
y
flecainida
[antiarrítmicos],
desipramina
y
nortriptilina
[antidepresivos]
y
codeína
).
En
el
caso
de
la
codeína,
las
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personas que carecen de la actividad de CYP2D6 presentan efectos analgésicos menores o ningún efecto analgésico debido a la falta de desmetilación
de la codeína a morfina.
De acuerdo con lo valorado tanto en estudios farmacológicos clínicos como por análisis de expresión en muestras de hígado humano, existen grandes
EL individuos
SALVADOR
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diferencias en los niveles de expresión de cada CYP entre diferentes individuos. Esta gran variabilidad en laUNIVERSIDAD
expresión de CYPDE
entre
se ­debe
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a la presencia de polimorfismos genéticos y a las diferencias en la regulación de los genes (véase más adelante).
Varios by:
genes de CYP humanos
presentan polimorfismos, incluyendo CYP2A6, CYP2C9, CYP2C19 y CYP2D6. Los polimorfismos en los CYP contribuyen de manera significativa en las
diferencias entre individuos para metabolizar fármacos y existen diferencias étnicas notables en el alcance de los polimorfismos genéticos. Por
ejemplo, hasta 10% y 25% de los caucásicos y asiáticos, respectivamente, carecen de expresión de CYP2D6 y CYP2C19. El polimorfismo CYP2D6 ha
llevado al retiro de varios fármacos utilizados en la clínica (p. ej., debrioquina y perhexilina) y al uso más prudente de otros fármacos conocidos como
sustratos del CYP2D6 (p. ej., encainida y flecainida [antiarrítmicos], desipramina y nortriptilina [antidepresivos] y codeína). En el caso de la codeína, las
personas que carecen de la actividad de CYP2D6 presentan efectos analgésicos menores o ningún efecto analgésico debido a la falta de desmetilación
de la codeína a morfina.
Se han encontrado variantes alélicas en los genes CYP1B1 y CYP3A4, pero están presentes en bajas frecuencias en seres humanos y parecen no tener
una función importante en los niveles individuales de expresión de estas enzimas. Sin embargo, las mutaciones homocigotas en el gen CYP1B1,
aunque raras, están asociadas con glaucoma congénito primario.
Interacciones farmacológicas
Las diferencias en la tasa de metabolismo de un fármaco pueden deberse a interacciones farmacológicas. A menudo, esto ocurre cuando dos
fármacos (p. ej., una estatina y un antibiótico macrólido o un antimicótico) son administrados en forma simultánea y son metabolizados por la misma
enzima. Como la mayor parte de estas interacciones farmacológicas se deben a los CYP, es importante determinar la identidad del CYP que metaboliza
un fármaco en particular y evitar la administración conjunta de fármacos que son metabolizados por la misma enzima. El ketoconazol, un antimicótico
común, es metabolizado por CYP3A4 y otros CYP y la administración conjunta de ketoconazol con los inhibidores de proteasa contra VIH (virus de
inmunodeficiencia humana), que también son sustratos del CYP3A4, reducen la eliminación de los inhibidores de proteasa y aumentan sus
concentraciones plasmáticas y los riesgos de toxicidad. Si un fármaco tiene un índice terapéutico estrecho, es decir, un rango estrecho entre la
concentración requerida para la eficacia terapéutica y la concentración más baja que causa toxicidad, entonces las interacciones consecuentes con el
fármaco son más probables. Si un fármaco tiene un índice terapéutico estrecho y no se puede evitar la administración simultánea con otros fármacos
que comparten el metabolismo con el CYP, los farmacólogos pueden tratar de modificar el fármaco para eliminar el sitio de oxidación del CYP y
conservar la eficacia del fármaco (afinidad de unión al receptor).
Algunos fármacos son inductores del CYP que no solo pueden aumentar sus propias tasas de metabolismo, sino que también pueden inducir el
metabolismo de otros fármacos administrados en forma simultánea (véase más adelante y la fig. 5–12). Las hormonas esteroides y los productos
herbolarios como la hierba de San Juan (Hypericum perforatum) pueden aumentar los niveles hepáticos de CYP3A4, aumentando así el metabolismo
de muchos fármacos administrados por vía oral. El metabolismo de los fármacos también puede verse influido por la dieta. Los inhibidores e
inductores de CYP en ocasiones se encuentran en los alimentos y pueden influir en la toxicidad y eficacia de un fármaco a través de la inducción o
inhibición de los CYP. Para la mayor parte de los fármacos, la información que se encuentra en el prospecto de envase menciona los CYP que llevan a
cabo su metabolismo y las posibles interacciones farmacológicas. Los componentes que se encuentran en el jugo de toronja (p. ej., naringina,
furanocumarinas) son inhibidores potentes del CYP3A4 y por lo tanto algunos prospectos de envase de los fármacos recomiendan no tomar el
fármaco con jugo de toronja porque podría aumentar la biodisponibilidad de un fármaco.
La terfenadina, un antihistamínico muy utilizado en el pasado, fue retirada del comercio porque su metabolismo fue inhibido por sustratos del
CYP3A4 como eritromicina y jugo de toronja. La terfenadina es en realidad un profármaco que requiere la oxidación por CYP3A4 a su metabolito
activo, y en dosis altas, el compuesto original causaba arritmias. El aumento de las concentraciones plasmáticas del fármaco original ocasiona en
algunos individuos inhibición de CYP3A4, lo que ocasiona taquicardia ventricular potencialmente letal, una respuesta adversa que llevó al retiro de la
terfenadina del comercio. El metabolito CYP3A4 de la terfenadina, fexofenadina, que no es cardiotóxica, se desarrolló como sustituto de la
terfenadina.
Flavinas monooxigenasas
Las flavinas monooxigenasas (FMO) son otra superfamilia de enzimas de la fase 1 que participan en el metabolismo de los fármacos. Al igual que los
CYP, las FMO se expresan en niveles altos en el hígado y se unen al retículo endoplásmico, un sitio que favorece la interacción y el metabolismo con
sustratos de los fármacos hidrófobos. Hay seis familias de FMO; FMO3 es la más abundante en hígado. La FMO3 es capaz de metabolizar la nicotina, así
como a los antagonistas de los receptores H2 (cimetidina y ranitidina), antipsicóticos (clozapina) y antieméticos (itoprida). El N­óxido de trimetilamina
(TMAO) se produce en altas concentraciones, hasta 15% del peso en animales marinos, donde actúa como regulador osmótico. En los seres humanos,
FMO3 normalmente metaboliza TMAO a TMA (trimetilamina), pero una deficiencia genética poco común de FMO3 causa el síndrome de olor a pescado,
en el cual la TMAO no metabolizada se acumula en el cuerpo causando un olor desagradable a pescado con posibles efectos sociales. Esto se puede
controlar limitando el consumo dietético de alimentos que contienen TMAO.
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Se considera que los FMO contribuyen en poca medida al metabolismo de los fármacos y casi siempre producen metabolitos no electrófilos
benignos.
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Además,
las
FMO
no
se
inhiben
fácilmente
y
no
son
inducidas
por
ninguno
de
los
receptores
xenobióticos
(véase
más
adelante);
por
lo
tanto,
a
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diferencia de los CYP, no se esperaría que las FMO participaran en las interacciones farmacológicas. De hecho, esto se ha demostrado comparando las
vías metabólicas de dos fármacos utilizados en el control de la motilidad gástrica: itopida y cisaprida. La itopida se metaboliza por acción de FMO3; la
como a los antagonistas de los receptores H2 (cimetidina y ranitidina), antipsicóticos (clozapina) y antieméticos (itoprida). El N­óxido de trimetilamina
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(TMAO) se produce en altas concentraciones, hasta 15% del peso en animales marinos, donde actúa como regulador
osmótico.
En los
seres humanos,
FMO3 normalmente metaboliza TMAO a TMA (trimetilamina), pero una deficiencia genética poco común deAccess
FMO3Provided
causaby:el síndrome de olor a pescado,
en el cual la TMAO no metabolizada se acumula en el cuerpo causando un olor desagradable a pescado con posibles efectos sociales. Esto se puede
controlar limitando el consumo dietético de alimentos que contienen TMAO.
Se considera que los FMO contribuyen en poca medida al metabolismo de los fármacos y casi siempre producen metabolitos no electrófilos benignos.
Además, las FMO no se inhiben fácilmente y no son inducidas por ninguno de los receptores xenobióticos (véase más adelante); por lo tanto, a
diferencia de los CYP, no se esperaría que las FMO participaran en las interacciones farmacológicas. De hecho, esto se ha demostrado comparando las
vías metabólicas de dos fármacos utilizados en el control de la motilidad gástrica: itopida y cisaprida. La itopida se metaboliza por acción de FMO3; la
cisaprida se metaboliza a través de CYP3A4. Como se predijo, es menos probable que la itopida participe en las interacciones farmacológicas que
presenta la cisaprida. El CYP3A4 participa en las interacciones farmacológicas a través de la inducción y la inhibición del metabolismo, mientras que el
FMO3 no es inducido ni inhibido por ningún fármaco de uso clínico. Es posible que la FMO sea importante en el desarrollo de nuevos fármacos. Podría
diseñarse un compuesto que tentativamente podría ser un fármaco al introducir un sitio de oxidación por FMO con el conocimiento de que
determinadas propiedades metabólicas y farmacocinéticas podrían predecirse con precisión para lograr buena eficacia biológica del fármaco.
Enzimas hidrolíticas
Epóxido hidrolasas
Dos formas de epóxido hidrolasas (EH) llevan a cabo la hidrólisis de epóxidos, la mayor parte de las cuales son producidas por los CYP. La epóxido
hidrolasa soluble (sEH) se expresa en el citosol; la mEH (epóxido hidrolasa microsómica) se localiza en la membrana del retículo endoplásmico. Los
epóxidos son electrófilos muy reactivos producidos por los CYP que pueden unirse a nucleófilos celulares encontrados en proteínas, RNA y DNA, lo
que ocasiona efectos tóxicos y transformación celular. Por lo tanto, las epóxido hidrolasas participan en la desactivación de metabolitos
potencialmente tóxicos.
Hay algunos ejemplos de la influencia de las mEH en el metabolismo de los fármacos. El fármaco antiepiléptico carbamazepina es un profármaco que
se convierte a su derivado farmacológicamente activo carbamazepina­10,11­epóxido, por acción de CYP3A4. Este metabolito se hidroliza eficazmente a
un dihidrodiol por acción de mEH, dando como resultado la desactivación del fármaco (fig. 5–4). La inhibición de la mEH puede provocar una elevación
de las concentraciones plasmáticas del metabolito activo y los efectos secundarios consiguientes. El tranquilizante valnoctamida y el anticonvulsivo
valproato inhiben a las mEH, lo que ocasiona interacciones farmacológicas significativas con la carbamazepina. Esto ha llevado a grandes esfuerzos
para desarrollar nuevos fármacos antiepilépticos, como gabapentina y levetiracetam, que son metabolizados por CYP y no por EH.
Figura 5–4
Metabolismo de carbamazepina por CYP y mEH. La carbamazepina se oxida hasta formar el metabolito farmacológicamente activo carbamazepina­
10,11­epóxido por medio del CYP. El epóxido se convierte en un trans­dihidrodiol por mEH. Este metabolito es biológicamente inactivo y puede
conjugarse con enzimas de la fase 2.
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En general, la sEH complementa la mEH en términos de selectividad de sustrato, con epóxidos que degradan la mEH en sistemas cíclicos y la sEH con
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En general, la sEH complementa la mEH en términos de selectividad de sustrato, con epóxidos que degradan la mEH en sistemas cíclicos y la sEH con
una Vm (velocidad de proceso) alta y Km (cantidad relativa de fármaco) baja para epóxidos de ácidos grasos. Los epóxidos de ácidos grasos son
mediadores químicos de la rama de los CYP de la cascada del ácido araquidónico. De forma simple, podría considerarse como un equilibrio entre las
prostaglandinas, tromboxanos y leucotrienos, por lo general proinflamatorios e hipertensivos. Los epóxidos del ácido araquidónico y del ácido
docosahexaenoico reducen la inflamación, la hipertensión y el dolor, pero por lo general se degradan con rapidez por la acción de sEH a dioles
vecinales que poseen menor actividad biológica (fig. 5–5). Por lo tanto, al inhibir la sEH, se pueden obtener efectos biológicos espectaculares. Los
trabajos recientes se han centrado en el dolor, donde los inhibidores de la sEH reducen tanto el dolor inflamatorio como el neuropático y hacen
sinergia con los fármacos antiinflamatorios no esteroideos (Kodani y Hammock, 2015). En sistemas experimentales, los epóxidos de ácidos grasos
omega­3 y omega­6 presentes en la dieta tienen propiedades antiinflamatorias, moderando la inflamación y la autofagia en tejidos sensibles a la
insulina, efectos que favorecen a los inhibidores de la sEH (Lopez­Vicario et al., 2015).
Figura 5–5
Producción y metabolismo de epóxidos de ácidos grasos omega­3. Los epóxidos de ácidos grasos, tales como el epóxido del ácido graso omega­3
mostrado aquí, tienen diversas propiedades antiinflamatorias y antinociceptivas en los sistemas en los que se realizan los estudios, aunque por lo
general son temporales y se metabolizan a formas dihidroxi menos activas por acción de la sEH. La inhibición de la sEH puede favorecer los efectos
saludables de estos epóxidos.
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Producción y metabolismo de epóxidos de ácidos grasos omega­3. Los epóxidos de ácidos grasos, tales como el epóxido del ácido graso omega­3
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mostrado aquí, tienen diversas propiedades antiinflamatorias y antinociceptivas en los sistemas en los que se realizan los estudios, aunque por lo
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general son temporales y se metabolizan a formas dihidroxi menos activas por acción de la sEH. La inhibición de la sEH puede favorecer los efectos
saludables de estos epóxidos.
Carboxilesterasas
Las carboxilesterasas comprenden una superfamilia de enzimas que catalizan la hidrólisis de sustancias químicas que contienen éster y amida. Estas
enzimas se encuentran tanto en el retículo endoplásmico como en el citosol de muchos tipos de células y están involucradas en la desintoxicación o
activación metabólica de varios fármacos, tóxicos ambientales y carcinógenos. Las carboxilesterasas también catalizan la activación de profármacos a
sus respectivos ácidos libres. Por ejemplo, el profármaco y el agente quimioterapéutico del cáncer irinotecán es un análogo de la camptotecina que se
activa por las carboxilesterasas intracelulares dando lugar al inhibidor potente de la topoisomerasa SN­38 (fig. 5–6). Al igual que la FMO, las
carboxilesterasas no están involucradas en interacciones significativas con fármacos.
Figura 5–6
Metabolismo de irinotecán (CPT­11). El profármaco CPT­11 se metaboliza inicialmente por acción de una carboxilesterasa sérica 2 (CES2) para dar
origen
inhibidor
de la topoisomerasa
SN­38,
que
es el análogo activo de la camptotecina que lentifica el crecimiento del tumor. El SN­38 está sujeto a
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lo que provoca
la pérdida
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biológica yMichael
facilita la
eliminación del SN­38 en la bilis.
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carboxilesterasas no están involucradas en interacciones significativas con fármacos.
Figura 5–6
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Metabolismo de irinotecán (CPT­11). El profármaco CPT­11 se metaboliza inicialmente por acción de una carboxilesterasa sérica 2 (CES2) para dar
origen inhibidor de la topoisomerasa SN­38, que es el análogo activo de la camptotecina que lentifica el crecimiento del tumor. El SN­38 está sujeto a
glucuronidación, lo que provoca la pérdida de actividad biológica y facilita la eliminación del SN­38 en la bilis.
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REACCIONES DE FASE 2: ENZIMAS DE CONJUGACIÓN
Hay un gran número de enzimas conjugadoras de la fase 2, todas las cuales se consideran de naturaleza sintética porque dan lugar a la formación de
metabolitos con mayor masa molecular. Las reacciones de la fase 2 también terminan la actividad biológica del fármaco, aunque hay excepciones.
Para la morfina y el minoxidilo, los conjugados de glucurónido y sulfato, respectivamente, tienen más actividad farmacológica que la molécula
original. Las contribuciones relativas de las diferentes reacciones de la fase 2 al metabolismo de los fármacos se muestran en la figura 5–3B.
Dos de las reacciones de la fase 2, la glucuronidación y la sulfatación, dan lugar a la formación de metabolitos con coeficientes de reparto agua­lípido
significativamente más elevadas. La sulfatación y la glucuronidación terminan la actividad biológica de los fármacos y el cambio en la carga general
aumenta la solubilidad acuosa del metabolito. El incremento hidrófilo facilita el transporte de metabolitos en los compartimentos acuosos de la célula
y el cuerpo. La característica de las reacciones de la fase 2 es la dependencia de las reacciones catalíticas sobre cofactores (o, más correctamente,
sobre el cosustrato): UDP­GA para UGT y 3′­fosfoadenosina­5′­fosfosulfato (PAPS) para SULT, que reaccionan con los grupos funcionales disponibles
en los sustratos. Los grupos funcionales reactivos son a menudo generados por los CYP de la fase 1, aunque hay muchos fármacos (p. ej.,
paracetamol) para los cuales la glucuronidación y la sulfatación ocurren directamente sin metabolismo oxidativo previo. Todas las reacciones de la
fase 2 se realizan en el citosol de la célula, con la excepción de la glucuronidación, que se localiza en el lado luminal del retículo endoplásmico.
Las tasas catalíticas de las reacciones de fase 2 son significativamente más rápidas que las tasas de los CYP. Por lo tanto, si un fármaco está dirigido a la
oxidación de la fase 1 a través del CYP, seguido de una reacción de conjugación de la fase 2, normalmente la tasa de eliminación dependerá de la
reacción de oxidación inicial (fase 1). Como la tasa de conjugación es más rápida y el proceso conduce a un aumento en la hidrofilicidad del fármaco,
por lo general se toman en consideración las reacciones de la fase 2 para asegurar la eliminación y desintoxicación eficientes de la mayor parte de los
fármacos.
Glucuronidación
Entre las reacciones más importantes de la fase 2 en el metabolismo de los fármacos se encuentran las realizadas por las uridina difosfato–
glucuronosiltransferasas (UGT) (fig. 5–3B). Estas enzimas catalizan la transferencia de ácido glucurónico desde el cofactor UDP­GA hasta un sustrato
para formar ácidos β­d­glucopiranoidurónicos (glucurónidos), metabolitos que son sensibles al desdoblamiento por acción de la β­glucuronidasa.
Los glucurónidos pueden formarse en grupos hidroxilo alcohólicos y fenólicos; en radicales carboxilo, sulfurilo y carbonilo y en sitios amino
primarios, secundarios y terciarios en las moléculas. Los sustratos de UGT incluyen cientos de productos farmacéuticos químicamente únicos,
sustancias dietéticas, agentes ambientales, agentes humorales como hormonas circulantes (andrógenos, estrógenos, mineralocorticoides,
glucocorticoides, tiroxina), ácidos biliares, retinoides y bilirrubinas, el producto final del catabolismo de la molécula hem.
En el cuadro 5–2 y en las figuras 5–1 y 5–6 se muestran ejemplos de reacciones de glucuronidación. La diversidad estructural de los fármacos y otros
xenobióticos que se procesan mediante glucuronidación garantiza que muchos agentes terapéuticos clínicamente eficaces se excreten como
glucurónidos.
La UGT se expresa de forma altamente coordinada, específica de los tejidos y a menudo inducible, con la concentración más alta encontrada en el tubo
digestivo y en el hígado. Por peso de tejido, hay un mayor número y concentración de UGT en el intestino delgado que en el hígado, por lo que el
metabolismo de primer paso eficiente desempeña una función importante en la predicción de la biodisponibilidad de muchos fármacos
administrados por vía oral. La formación de glucurónidos y su mayor polaridad puede favorecer su paso hacia la circulación, desde la cual son
excretados en la orina. A medida que los xenobióticos entran en el hígado y son absorbidos por los hepatocitos, la formación de glucurónido
proporciona sustratos para el transporte activo hacia los canalículos biliares y la excreción final como componentes de la bilis (fig. 5–9). Muchos de los
glucurónidos que se excretan en la bilis al final se convierten en sustratos para la β­glucuronidasa microbiana soluble en el colon, lo que da origen a la
formación de ácido glucurónico libre y el sustrato inicial. El colon absorbe activamente agua y diversos compuestos (fig. 54–3); dependiendo de su
solubilidad, el glucurónido o el sustrato original pueden ser reabsorbidos a través de difusión pasiva o por transportadores apicales en el intestino
delgado y el colon
para volver
a entrar
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la circulación
sistémica. Este proceso de recirculación enterohepática causa la recaptación de ácidos biliares
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y puede prolongar la semivida de un xenobiótico conjugado
en el hígado
porque
la excreción final del compuesto se retrasa (fig. 5–8).
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Hay 19 genes humanos que codifican las proteínas UGT. Nueve están codificados por el locus UGT1A en el cromosoma 2q37 (1A1, 1A3, 1A4, 1A5, 1A6,
1A7, 1A8, 1A9 y 1A10), mientras que 10 genes están codificados por la familia de genes UGT2 en el cromosoma 4q13.2 (2A1, 2A2, 2A3, 2B2, 2B4, 2B7,
excretados en la orina. A medida que los xenobióticos entran en el hígado y son absorbidos por los hepatocitos, la formación de glucurónido
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proporciona sustratos para el transporte activo hacia los canalículos biliares y la excreción final como componentes de la bilis (fig. 5–9). Muchos de los
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glucurónidos que se excretan en la bilis al final se convierten en sustratos para la β­glucuronidasa microbiana soluble en el colon, lo que da origen a la
formación de ácido glucurónico libre y el sustrato inicial. El colon absorbe activamente agua y diversos compuestos (fig. 54–3); dependiendo de su
solubilidad, el glucurónido o el sustrato original pueden ser reabsorbidos a través de difusión pasiva o por transportadores apicales en el intestino
delgado y el colon para volver a entrar en la circulación sistémica. Este proceso de recirculación enterohepática causa la recaptación de ácidos biliares
y puede prolongar la semivida de un xenobiótico conjugado en el hígado porque la excreción final del compuesto se retrasa (fig. 5–8).
Hay 19 genes humanos que codifican las proteínas UGT. Nueve están codificados por el locus UGT1A en el cromosoma 2q37 (1A1, 1A3, 1A4, 1A5, 1A6,
1A7, 1A8, 1A9 y 1A10), mientras que 10 genes están codificados por la familia de genes UGT2 en el cromosoma 4q13.2 (2A1, 2A2, 2A3, 2B2, 2B4, 2B7,
2B10, 2B11, 2B15 y 2B17). De estas proteínas, las principales UGT implicadas en el metabolismo de fármacos son UGT1A1, 1A3, 1A4, 1A6, 1A9 y 2B7
(para una lista de fármacos que funcionan como sustratos comunes, véase Rowland et al., 2013). Aunque ambas familias de proteínas están asociadas
con el metabolismo de fármacos y xenobióticos, la familia de proteínas UGT2 parece tener mayor especificidad para la glucuronidación de sustancias
endógenas.
El locus UGT1 en el cromosoma 2 (fig. 5–7) abarca casi 200 kb, con más de 150 kb de regiones de exones de casete de matriz en tándem que codifican
aproximadamente 280 aminoácidos de la porción amino terminal de las proteínas UGT1A. Cuatro exones se ubican en el extremo 3′ del locus; estos
codifican los 245 aminoácidos del extremo carboxilo que se combinan con una de las disposiciones numeradas consecutivamente de los primeros
exones para formar los productos individuales del gen UGT1A. Como los exones 2 a 5 codifican la misma secuencia para cada proteína UGT1A, la
variabilidad en la especificidad del sustrato para cada una de las proteínas UGT1A es el resultado de la divergencia significativa en secuencia
codificada por las regiones del exón 1. La actividad reducida de UGT resultante de mutaciones alélicas en los exones 2 a 5 afecta a todas las proteínas
UGT1A, mientras que las mutaciones que inactivan la región del exón 1 conducen a una reducción de la glucuronidación solo por la proteína UGT1A
afectada. Se han identificado más de 100 variantes alélicas dirigidas a las regiones divergentes del exón 1, muchas de las cuales ocasionan
disminución de la actividad de UGT.
Figura 5–7
Organización del locus UGT1A. La transcripción de los genes UGT1A comienza con la activación de la PolII, que se controla a través de eventos
específicos del tejido. Los exones conservados 2 a 5 se empalman con la secuencia respectiva del exón 1, lo que ocasiona la producción de secuencias
únicas de UGT1A. El locus UGT1A codifica nueve proteínas funcionales.
Desde una perspectiva clínica, la expresión de UGT1A1 asume una función importante en el metabolismo de los fármacos porque la glucuronidación
de bilirrubina por UGT1A1 es el paso limitante de la velocidad de reacción para asegurar la eliminación eficiente de la bilirrubina, y esta tasa puede
verse afectada tanto por la variación genética como por sustratos competitivos (fármacos). La deficiencia en la actividad de CYP1A1 y en la eliminación
de bilirrubinas ocasiona el síndrome de Gilbert, un trastorno autosómico recesivo, pero en ocasiones autosómico dominante, dependiendo del tipo
de mutación que se presente (Strassburg, 2008). La bilirrubina es el producto de degradación del grupo hem, 80% del cual se origina de la
hemoglobina circulante y 20% de otras proteínas que contienen hem, como los CYP. La bilirrubina es hidrófoba, se asocia con la albúmina sérica y
debe metabolizarse mediante glucuronidación para asegurar su eliminación. La incapacidad para metabolizar eficientemente la bilirrubina por
glucuronidación incrementa sus concentraciones séricas y aparece un síntoma clínico llamado hiperbilirrubinemia o ictericia. La expresión tardía del
gen UGT1A1 en recién nacidos es la razón principal de la hiperbilirrubinemia neonatal.
Existen más de2023­12­27
40 lesiones10:36
genéticas
en elIP
gen
que pueden conducir a hiperbilirrubinemia no conjugada hereditaria. El síndrome de Crigler­
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los exones
comunes
UGT1A1
. El síndrome
2 (CN­2)
se distingue
por la detección de cantidades reducidas de glucurónidos
de bilirrubina en las secreciones duodenales y está relacionado con mutaciones promotoras o mutaciones del marco de lectura en el gen UGT1A1 que
conducen a la formación reducida de glucurónidos. El peligro asociado con CN­1 y CN­2 es la acumulación de bilirrubina no conjugada a niveles
hemoglobina circulante y 20% de otras proteínas que contienen hem, como los CYP. La bilirrubina es hidrófoba, se asocia con la albúmina sérica y
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debe metabolizarse mediante glucuronidación para asegurar su eliminación. La incapacidad para metabolizar eficientemente la bilirrubina por
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glucuronidación incrementa sus concentraciones séricas y aparece un síntoma clínico llamado hiperbilirrubinemia o ictericia. La expresión tardía del
gen UGT1A1 en recién nacidos es la razón principal de la hiperbilirrubinemia neonatal.
Existen más de 40 lesiones genéticas en el gen UGT1A1 que pueden conducir a hiperbilirrubinemia no conjugada hereditaria. El síndrome de Crigler­
Najjar tipo 1 (CN­1) se diagnostica como una falta total de glucuronidación de bilirrubina y es el resultado de mutaciones inactivantes en el exón 1 o en
los exones comunes del gen UGT1A1. El síndrome de Crigler­Najjar tipo 2 (CN­2) se distingue por la detección de cantidades reducidas de glucurónidos
de bilirrubina en las secreciones duodenales y está relacionado con mutaciones promotoras o mutaciones del marco de lectura en el gen UGT1A1 que
conducen a la formación reducida de glucurónidos. El peligro asociado con CN­1 y CN­2 es la acumulación de bilirrubina no conjugada a niveles
tóxicos, lo que puede conducir a toxicidad del SNC. Los niños diagnosticados con CN­1 requieren tratamiento amplio e inmediato con luz del espectro
azul para descomponer la bilirrubina circulante; estos pacientes al final requieren trasplante de hígado. Los fármacos que inducen la expresión del
gen UGT1A1, como el fenobarbital, pueden mejorar la glucuronidación y la eliminación de la bilirrubina en pacientes con CN­2. El gen UGT1A1 es el
único gen asociado con el metabolismo xenobiótico que es esencial para la vida, porque existe un requisito absoluto para la eliminación diaria de la
bilirrubina sérica. Las variantes alélicas asociadas con otros genes del metabolismo de xenobióticos (fases 1 y 2) pueden mejorar la enfermedad y la
toxicidad asociadas con el uso de fármacos, pero muestran pocos o ningún efecto fenotípico.
El síndrome de Gilbert es una enfermedad por lo general benigna que está presente en 8% a 23% de la población, con base en la diversidad étnica. Su
diagnóstico clínico se establece cuando existen concentraciones de bilirrubina circulante que son 100% a 300% más altas de lo normal. Cada vez
existen más pruebas epidemiológicas que sugieren que el síndrome de Gilbert puede ser protector contra las enfermedades cardiovasculares,
potencialmente como resultado de las propiedades antioxidantes de la bilirrubina. El polimorfismo genético más común asociado con el síndrome de
Gilbert es una mutación en el promotor del gen UGT1A1, identificado como el alelo UGT1A1* 28, que conduce a una secuencia de promotor A(TA)7TAA
que difiere de la secuencia más común A(TA)6TAA. Los niveles elevados de bilirrubina sérica total se asocian con niveles de expresión
significativamente reducidos de UGT1A1 hepática.
Los sujetos diagnosticados con síndrome de Gilbert pueden estar predispuestos a reacciones adversas a fármacos (cuadro 5–3) como resultado de
una capacidad reducida para metabolizar fármacos por parte de UGT1A1. Si un fármaco sufre metabolismo selectivo por parte de UGT1A1, existirá
competencia por el metabolismo del fármaco con glucuronidación de bilirrubina, lo que da lugar a una hiperbilirrubinemia evidente, así como a una
reducción de la eliminación del fármaco metabolizado. El tranilast [N­(3′4′­desmetoxifenil)­ ácido antranílico] es un fármaco en investigación utilizado
para la prevención de la recidiva de estenosis en pacientes sometidos a revascularización coronaria transluminal (endoprótesis intracoronarias). El
tratamiento con tranilast en pacientes con síndrome de Gilbert puede conducir a hiperbilirrubinemia, así como generar posibles complicaciones
hepáticas que dan origen a aumento de las concentraciones de tranilast.
CUADRO 5–3
EFECTOS TÓXICOS DE LOS FÁRMACOS Y SÍNDROME DE GILBERT
PROBLEMA
CARACTERÍSTICA
Síndrome de Gilbert
UGT1A1* 28 (variante principal en caucásicos)
Reacciones de toxicidad establecidas
Irinotecán, atazanavir
Sustratos de UGT1A1 (¿riesgo potencial?)
Gemfibrozilo,a ezetimiba
Simvastatina, atorvastatina, cerivastatinaa
Etinilestradiol, buprenorfina, fulvestrant
Ibuprofeno, ketoprofeno
a Reacción farmacológica intensa a causa de la inhibición de la glucuronidación (UGT1A1) y CYP2C8 y CYP2C9 cuando ambos fármacos se combinan lo que lleva a la
suspensión de la cerivastatina.
Reproducido con autorización de Strassburg CP. Pharmacogenetics of Gilbert’s syndrome. Pharmacogenomics, 2008, 9:703–715. Copyright © 2008 Future Medicine
Ltd. All rights reserved. Permiso otorgado a través de Copyright Clearance Center, Inc.
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CAPÍTULO 5: Metabolismo de los fármacos, Frank J. Gonzalez; Michael Coughtrie
El síndrome de Gilbert también altera las respuestas de los pacientes al irinotecán. El irinotecán, un profármaco utilizado en la quimioterapia de
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tumores sólidos (cap. 70) es metabolizado a su forma activa, SN­38, por acción de carboxilesterasas hísticas (fig. 5–6). El SN­38 es un potente inhibidor
de la topoisomerasa que es inactivado por UGT1A1 y se excreta en la bilis (fig. 5–8 y 5–9). Una vez en la luz intestinal, el glucurónido SN­38 sufre
reducción de la eliminación del fármaco metabolizado. El tranilast [N­(3′4′­desmetoxifenil)­ ácido antranílico] es un fármaco en investigación utilizado
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para la prevención de la recidiva de estenosis en pacientes sometidos a revascularización coronaria transluminal (endoprótesis intracoronarias). El
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tratamiento con tranilast en pacientes con síndrome de Gilbert puede conducir a hiperbilirrubinemia, así como generar posibles complicaciones
hepáticas que dan origen a aumento de las concentraciones de tranilast.
CUADRO 5–3
EFECTOS TÓXICOS DE LOS FÁRMACOS Y SÍNDROME DE GILBERT
PROBLEMA
CARACTERÍSTICA
Síndrome de Gilbert
UGT1A1* 28 (variante principal en caucásicos)
Reacciones de toxicidad establecidas
Irinotecán, atazanavir
Sustratos de UGT1A1 (¿riesgo potencial?)
Gemfibrozilo,a ezetimiba
Simvastatina, atorvastatina, cerivastatinaa
Etinilestradiol, buprenorfina, fulvestrant
Ibuprofeno, ketoprofeno
a Reacción farmacológica intensa a causa de la inhibición de la glucuronidación (UGT1A1) y CYP2C8 y CYP2C9 cuando ambos fármacos se combinan lo que lleva a la
suspensión de la cerivastatina.
Reproducido con autorización de Strassburg CP. Pharmacogenetics of Gilbert’s syndrome. Pharmacogenomics, 2008, 9:703–715. Copyright © 2008 Future Medicine
Ltd. All rights reserved. Permiso otorgado a través de Copyright Clearance Center, Inc.
El síndrome de Gilbert también altera las respuestas de los pacientes al irinotecán. El irinotecán, un profármaco utilizado en la quimioterapia de
tumores sólidos (cap. 70) es metabolizado a su forma activa, SN­38, por acción de carboxilesterasas hísticas (fig. 5–6). El SN­38 es un potente inhibidor
de la topoisomerasa que es inactivado por UGT1A1 y se excreta en la bilis (fig. 5–8 y 5–9). Una vez en la luz intestinal, el glucurónido SN­38 sufre
desdoblamiento por acción de la β­glucuronidasa bacteriana y vuelve a entrar en la circulación a través de absorción intestinal. Los niveles elevados
de SN­38 en la sangre conducen a efectos tóxicos hematológicos que se caracterizan por leucopenia y neutropenia, así como daño a las células
epiteliales intestinales, lo que provoca ileocolitis aguda potencialmente letal. Los pacientes con síndrome de Gilbert que reciben tratamiento con
irinotecán están predispuestos a los efectos tóxicos hematológicos y gastrointestinales por el incremento de las concentraciones séricas de SN­38, el
resultado neto de la actividad insuficiente de UGT1A y la consiguiente acumulación de un fármaco tóxico en el epitelio del tubo digestivo.
Figura 5–8
Vías de transporte y exposición de SN­38 a las células del epitelio intestinal. El SN­38 es transportado a la bilis después de la glucuronidación por la
UGT1A1 hepática y UGT1A7 extrahepática. Después del desdoblamiento del glucurónido luminal SN­38 (SN­38G) por acción de la β­glucuronidasa
bacteriana, la reabsorción en las células epiteliales puede ocurrir por difusión pasiva (indicada por las flechas punteadas dirigidas al interior de la
célula) así como por transportadores apicales. El movimiento hacia las células epiteliales también puede ocurrir desde la sangre a través de los
transportadores basolaterales. El SN­38 intestinal puede ser transportado a la luz por medio de la glucoproteína P (Pgp) y la proteína 2 de resistencia a
múltiples fármacos (MRP2) y hacia la sangre a través de la proteína de resistencia a múltiples fármacos (MRP1). La acumulación excesiva de SN­38 en
las células epiteliales intestinales, resultante de la reducción de la glucuronidación, puede conducir a daño celular y toxicidad. (Modificado y
reproducido con autorización de Tukey RH et al. Pharmacogenomics of human UDP­glucuronosyltransferases and irinotecan toxicity. Mol Pharmacol,
2002, 62:446–450. Copyright © 2002 The American Society for Pharmacology and Experimental Therapeutics.)
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CAPÍTULO 5: Metabolismo de los fármacos, Frank J. Gonzalez; Michael Coughtrie
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múltiples fármacos (MRP2) y hacia la sangre a través de la proteína de resistencia a múltiples fármacos (MRP1). La acumulación excesiva de SN­38 en
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las células epiteliales intestinales, resultante de la reducción de la glucuronidación, puede conducir a daño celular y toxicidad. (Modificado y
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reproducido con autorización de Tukey RH et al. Pharmacogenomics of human UDP­glucuronosyltransferases and irinotecan toxicity. Mol Pharmacol,
2002, 62:446–450. Copyright © 2002 The American Society for Pharmacology and Experimental Therapeutics.)
Figura 5–9
Objetivos celulares de SN­38 en la sangre y en tejidos intestinales. La acumulación excesiva de SN­38 puede conducir a toxicidad sanguínea, como
leucopenia y neutropenia, así como daño al epitelio intestinal. Estos efectos tóxicos son notables en individuos que tienen una capacidad reducida
para formar el glucurónido de SN­38, así como en pacientes con síndrome de Gilbert. Se deben considerar los diferentes compartimentos del cuerpo y
tipos de células implicados. (Modificado y reproducido con autorización de Tukey RH et al. Pharmacogenomics of human UDP­
glucuronosyltransferases and irinotecan toxicity. Mol Pharmacol, 2002, 62:446–450. Copyright © 2002 The American Society for Pharmacology and
Experimental Therapeutics.)
Mientras que la mayor parte de los fármacos metabolizados por UGT1A1 compiten por glucuronidación con bilirrubina, los pacientes con síndrome de
Gilbert que son VIH positivos y que reciben tratamiento con inhibidores de la proteasa como atazanavir desarrollan hiperbilirrubinemia puesto que el
fármaco inhibe la función de UGT1A1, aunque atazanavir no es un sustrato para la glucuronidación. La hiperbilirrubinemia grave se puede desarrollar
en pacientes con síndrome de Gilbert que presentan mutaciones inactivadoras enzimáticas en los genes UGT1A3 y UGT1A7. Los efectos secundarios
inducidos por fármacos que se atribuyen a la inhibición de las enzimas UGT pueden ser una preocupación importante y pueden complicarse por la
presencia de mutaciones que inactivan genes.
Sulfatación
Las sulfotransferasas (SULT), localizadas en el citosol, conjugan sulfato derivado de PAPS a hidroxilo y con menor frecuencia, a grupos amino de
compuestos aromáticos y alifáticos. Al igual que todas las enzimas que metabolizan xenobióticos, las SULT metabolizan una amplia variedad de
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sustratos endógenos
y exógenos.
los seres
se han identificado 13 isoformas de SULT; con base en comparaciones de sus secuencias se
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CAPÍTULO 5: Metabolismo de los fármacos, Frank J. Gonzalez; Michael Coughtrie
han
clasificado
en
cuatro
familias:
las
familias
SULT1
(SULT1A1,
1A2,Policy
1A3/4,•1B1,
1C2,
1C3, 1C4, 1E1); SULT2 (SULT2A1, SULT2B1a, SULT2B1b), SULT4
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(4A1) y SULT6 (6A1). Existen grandes diferencias en el complemento expresado de SULT entre especies, lo que hace que sea poco fiable la
extrapolación de los datos sobre la sulfatación de xenobióticos en animales a seres humanos.
presencia de mutaciones que inactivan genes.
Sulfatación
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Las sulfotransferasas (SULT), localizadas en el citosol, conjugan sulfato derivado de PAPS a hidroxilo y con menor frecuencia, a grupos amino de
compuestos aromáticos y alifáticos. Al igual que todas las enzimas que metabolizan xenobióticos, las SULT metabolizan una amplia variedad de
sustratos endógenos y exógenos. En los seres humanos, se han identificado 13 isoformas de SULT; con base en comparaciones de sus secuencias se
han clasificado en cuatro familias: las familias SULT1 (SULT1A1, 1A2, 1A3/4, 1B1, 1C2, 1C3, 1C4, 1E1); SULT2 (SULT2A1, SULT2B1a, SULT2B1b), SULT4
(4A1) y SULT6 (6A1). Existen grandes diferencias en el complemento expresado de SULT entre especies, lo que hace que sea poco fiable la
extrapolación de los datos sobre la sulfatación de xenobióticos en animales a seres humanos.
SULT desempeña una función importante en la homeostasis normal del ser humano. Por ejemplo, SULT2B1b es la forma predominante expresada en
la piel, que participa en la catálisis del colesterol. El sulfato de colesterol es un metabolito esencial para regular la diferenciación de los queratinocitos
y el desarrollo de la piel. El SULT2A1 se expresa en gran medida en la glándula suprarrenal fetal, donde produce grandes cantidades de sulfato de
dehidroepiandrosterona que son necesarias para la biosíntesis placentaria de estrógenos durante la segunda mitad del embarazo. SULT 1A3 y 1A4
(proteínas idénticas producidas a partir de diferentes genes) son altamente selectivas para catecolaminas, mientras que los estrógenos (en particular
17β­estradiol) son sulfatados por SULT1E1. En los seres humanos, existen en forma sulfatada fracciones significativas de catecolaminas circulantes,
estrógenos, yodotironina y dehidroepiandrosterona (DHEA).
Algunas SULT humanas muestran especificidad para un único sustrato, mientras que otras tienen actividad heterogénea. Los miembros de la familia
SULT1 son las principales isoformas involucradas en el metabolismo de xenobióticos; SULT1A1 es la más importante desde el punto de vista
cuantitativo y cualitativo en el hígado (Riches et al., 2009). SULT1A1 muestra una amplia diversidad en su capacidad de catalizar la sulfatación de una
amplia gama de xenobióticos estructuralmente heterogéneos con gran afinidad. Las enzimas de la familia SULT1 se reconocen como SULT fenólica;
catalizan la sulfatación de moléculas fenólicas como paracetamol, minoxidilo y 17α­etinil estradiol. El SULT1B1 es similar al SULT1A1 en su amplia
variedad de sustratos, aunque es mucho más abundante en el intestino que en el hígado. Existen tres enzimas SULT1C en los seres humanos, pero
poco se sabe de su especificidad de sustrato. En roedores, las enzimas SULT1C son capaces de sulfatar el carcinógeno hepático N­OH­2­
acetilaminofluoreno y causan la bioactivación de este y otros carcinógenos relacionados. No está clara su participación en esta vía en seres humanos.
Las enzimas SULT1C se expresan de manera abundante en los tejidos fetales humanos; sin embargo, su número disminuye significativamente en los
adultos. SULT1E cataliza la sulfatación de esteroides endógenos y exógenos y se localiza en el hígado y en tejidos sensibles a hormonas como los
testículos, mamas, glándulas suprarrenales y placenta. En el tubo digestivo alto, los niveles de SULT1A3/4 y SULT1B1 son especialmente abundantes,
mientras que en el hígado adulto no se encuentra SULT1A3/4.
La conjugación de fármacos y xenobióticos se considera sobre todo un paso de desintoxicación, lo que asegura que los metabolitos entren en los
compartimentos acuosos del cuerpo y estén destinados a su eliminación. Sin embargo, el metabolismo de los fármacos a través de la sulfatación a
menudo provoca la generación de metabolitos químicamente reactivos, en donde el sulfato retiene electrones y puede sufrir desdoblamiento
heterolítico, lo que conduce a la formación de un catión electrófilo. La mayor parte de los ejemplos de generación de una respuesta carcinógena,
tóxica o de mutagénesis por sulfatación en estudios clínicos en animales se han documentado con productos químicos derivados del medio ambiente
o de arilaminas mutágenas heterocíclicas alimentarias generadas a partir de carne bien cocida o quemada. Por lo tanto, es importante entender si se
pueden establecer vínculos genéticos asociando polimorfismos conocidos de SULT humana con cánceres que se cree se originan de fuentes
ambientales. Como SULT1A1 es la SULT más abundante en los tejidos humanos y muestra una amplia especificidad de sustrato, los perfiles
polimórficos asociados con este gen y sus asociaciones con varios cánceres humanos son de considerable interés.
Se han identificado polimorfismos del número de copias dentro de los genes SULT1A1, SULT1A3 y SULT1A4, lo que puede ayudar a explicar gran parte
de las variaciones individuales en la expresión y actividad de estas enzimas. El conocimiento de la estructura, las actividades, la regulación y los
polimorfismos de la superfamilia SULT ayudará a comprender los vínculos entre la sulfatación y la susceptibilidad, reproducción y desarrollo del
cáncer. Datos estructurales, resultados de estudios cinéticos y simulaciones de dinámica molecular, están empezando a proporcionar una imagen
más clara de los mecanismos por los cuales SULT expresa un patrón singular de especificidad de sustrato (Tibbs et al., 2015).
Conjugación de glutatión
Las glutatión­S­transferasas (GST) catalizan la transferencia de glutatión a productos electrófilos reactivos, una función que sirve para proteger a las
macromoléculas celulares de la interacción con compuestos electrófilos que contienen heteroátomos electrófilos (–O, –N y –S) y, a su vez, protege el
entorno celular de la lesión (Vaish et al., 2020). El cosustrato en la reacción es glutatión, un tripéptido que consiste en ácido γ­glutámico, cisteína y
glicina (fig. 5–10). El glutatión existe en la célula en forma oxidada (GSSG) y reducida (GSH) y la proporción GSH:GSSG es fundamental para mantener
un ambiente celular en el estado reducido. Además de afectar la conjugación de productos xenobióticos con GSH, una reducción intensa en el
contenido de GSH puede predisponer a las células a sufrir daño oxidativo, un estado que se ha vinculado a una serie de problemas de salud humana.
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Figura 5–10
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El glutatión es un cosustrato en la conjugación de un xenobiótico (X) por acción de GST.
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macromoléculas celulares de la interacción con compuestos electrófilos que contienen heteroátomos electrófilos (–O, –N y –S) y, a su vez, protege el
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entorno celular de la lesión (Vaish et al., 2020). El cosustrato en la reacción es glutatión, un tripéptido que consiste
en ácido γ­glutámico,
cisteína ­y UES
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glicina (fig. 5–10). El glutatión existe en la célula en forma oxidada (GSSG) y reducida (GSH) y la proporción GSH:GSSG
esby:fundamental para mantener
un ambiente celular en el estado reducido. Además de afectar la conjugación de productos xenobióticos con GSH, una reducción intensa en el
contenido de GSH puede predisponer a las células a sufrir daño oxidativo, un estado que se ha vinculado a una serie de problemas de salud humana.
Figura 5–10
El glutatión es un cosustrato en la conjugación de un xenobiótico (X) por acción de GST.
En la formación de conjugados de glutatión, la reacción de GST genera un enlace de tioéter con un fármaco o xenobiótico con un radical de cisteína del
tripéptido. De manera característica, todos los sustratos de GST contienen un átomo electrófilo, son hidrófobos por naturaleza y se asocian con
proteínas celulares. Debido a que la concentración de glutatión en las células es por lo general alta, típicamente 7 μmol/g de hígado o en el intervalo
de 10 mM, muchos fármacos y xenobióticos pueden presentar reacción no enzimática con glutatión. Sin embargo, el GST ocupa hasta 10% de la
concentración total de proteínas hepatocelulares, una propiedad que asegura la conjugación eficiente del glutatión con productos electrófilos
reactivos. La alta concentración de GST también proporciona a las células un sumidero de proteína citosólica, una propiedad que facilita las
interacciones no covalentes y a veces covalentes con compuestos que no son sustratos para la conjugación con glutatión. La reserva citosólica de GST,
en algún momento identificada como ligandina, se une a esteroides, ácidos biliares, bilirrubinas, hormonas celulares y compuestos tóxicos
ambientales, además de formar complejos con otras proteínas celulares.
Hay más de 20 GST humanas que se han dividido en dos subfamilias: la forma citosólica y la forma microsómica. Las principales diferencias en la
función entre el GST microsómico y citosólico residen en la selección de sustratos para la conjugación; Las formas citosólicas tienen mayor
importancia en el metabolismo de fármacos y xenobióticos, mientras que las GST microsómicas son importantes en el metabolismo endógeno de los
leucotrienos y prostaglandinas. Las GST citosólicas comprende siete clases llamadas alfa (GSTA1 y 2), mu (GSTM1 a 5), omega (GSTO1), pi (GSTP1),
sigma (GSTS1), theta (GSTT1 y GSTT2) y zeta (GSTZ1). Aquellos en las clases alfa y mu pueden formar heterodímeros, permitiendo la formación de un
gran número de transferasas activas. Las formas citosólicas de GST catalizan las reacciones de conjugación, reducción e isomerización.
La alta concentración de GSH en las células, así como la abundancia de GST, significa que pocas moléculas reactivas escapan a la desintoxicación. A
pesar de la aparente capacidad excesiva de la enzima y sus equivalentes reductores, siempre existe la preocupación de que algunos reactivos
intermedios eviten la eliminación y, a causa de su electrofilicidad, se unan a los componentes celulares y causen efectos nocivos. La posibilidad para
tal evento se aumenta si GSH se agota o si una forma específica de GST es polimorfa y disfuncional. Aunque es difícil agotar los niveles celulares de
GSH, las sustancias terapéuticas que requieren dosis grandes para ser clínicamente eficaces tienen el mayor potencial para reducir las
concentraciones celulares de GSH.
El paracetamol, que en condiciones normales se metaboliza por glucuronidación y sulfatación, es también un sustrato para el metabolismo oxidativo a
través de CYP2E1 y CYP3A4, que generan el metabolito tóxico N­acetil­p­benzoquinona imina (NAPQI) el cual, en dosis normales, se neutraliza con
facilidad mediante conjugación con GSH. Sin embargo, una sobredosis de paracetamol puede agotar los niveles celulares de GSH y aumentar el
potencial de NAPQI para interactuar con otros componentes celulares, lo que ocasiona toxicidad y muerte celular. La toxicidad por paracetamol, con el
aumento en las concentraciones de NAPQI y la posibilidad de necrosis hepática, puede tratarse de manera dependiente del tiempo y de la
concentración de fármacos mediante la administración de N­acetilcisteína, que repone la GSH agotada, permitiendo la desintoxicación del exceso de
NAPQI antes de que pueda causar más daño celular (fig. 9–4).
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Todas las GST
polimorfas.
(GSTM1*0
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(GSTT1*0
) expresan un fenotipo nulo; por lo tanto, los individuos quePage
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CAPÍTULO
5: son
Metabolismo
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Frank
J. Gonzalez;
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polimorfismos
estos
predispuestos
tóxicos por
fármacos
que
son sustratos selectivos para estas GST. Por ejemplo, el alelo
mutante GSTM1*0 se observa en 50% de la población caucásica y se vincula genéticamente a las neoplasias malignas humanas de pulmón, colon y
vejiga. La actividad nula en el gen GSTT1 se asocia con efectos secundarios adversos y toxicidad en la quimioterapia contra el cáncer con fármacos
través de CYP2E1 y CYP3A4, que generan el metabolito tóxico N­acetil­p­benzoquinona imina (NAPQI) el cual, en dosis normales, se neutraliza con
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facilidad mediante conjugación con GSH. Sin embargo, una sobredosis de paracetamol puede agotar los niveles
celulares deDE
GSH
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potencial de NAPQI para interactuar con otros componentes celulares, lo que ocasiona toxicidad y muerte celular.
La toxicidad
por paracetamol, con el
aumento en las concentraciones de NAPQI y la posibilidad de necrosis hepática, puede tratarse de manera dependiente del tiempo y de la
concentración de fármacos mediante la administración de N­acetilcisteína, que repone la GSH agotada, permitiendo la desintoxicación del exceso de
NAPQI antes de que pueda causar más daño celular (fig. 9–4).
Todas las GST son polimorfas. Los genotipos mu (GSTM1*0) y theta (GSTT1*0) expresan un fenotipo nulo; por lo tanto, los individuos que muestran
polimorfismos en estos locus están predispuestos a efectos tóxicos por fármacos que son sustratos selectivos para estas GST. Por ejemplo, el alelo
mutante GSTM1*0 se observa en 50% de la población caucásica y se vincula genéticamente a las neoplasias malignas humanas de pulmón, colon y
vejiga. La actividad nula en el gen GSTT1 se asocia con efectos secundarios adversos y toxicidad en la quimioterapia contra el cáncer con fármacos
citostáticos; los efectos tóxicos resultan de la eliminación insuficiente de los fármacos a través de la conjugación con GSH. La expresión del genotipo
nulo puede ser de hasta 60% en las poblaciones chinas y coreanas. Por lo tanto, los polimorfismos de GST pueden influir en la eficacia y gravedad de
los efectos secundarios de los fármacos.
Mientras que las GST desempeña una función importante en la desintoxicación celular, sus actividades en los tejidos cancerosos se han relacionado
con el desarrollo de resistencia a los antineoplásicos que son tanto sustratos como no sustratos para las GST. Muchos de estos fármacos son eficaces
porque inician la muerte celular o la apoptosis, procesos que están relacionados con la activación de proteínas cinasas activadas por mitógenos
(MAPK) como JNK y p38. La expresión excesiva de GST se asocia con resistencia a la apoptosis y la inhibición de la actividad de MAPK. En diversos
tumores, las GST se expresan de forma excesiva, lo que reduce la actividad de MAPK y la eficacia de la quimioterapia. Aprovechando las
concentraciones relativamente altas de GST en las células tumorales, la inhibición de la actividad de GST se ha utilizado como una estrategia
terapéutica para modular la resistencia farmacológica al sensibilizar a los tumores a los fármacos antineoplásicos. Un análogo del glutatión, TLK199,
un profármaco que las esterasas plasmáticas convierten en un inhibidor de GST, TLK117, potencia la toxicidad de diferentes fármacos antineoplásicos
(fig. 5–11).
Figura 5–11
Activación de TLK199 a TLK117, un inhibidor de GST.
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(fig. 5–11).
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Figura 5–11
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Activación de TLK199 a TLK117, un inhibidor de GST.
La gran actividad de GST en las células cancerosas ha sido la base para el desarrollo de profármacos que pueden ser activados por GST para formar
productos intermedios electrofílicos. Por ejemplo, TLK286 es un sustrato para las GST que sufre una reacción de β­eliminación, formando un
conjugado de glutatión y una mostaza nitrogenada (fig. 5–12) capaz de producir la alquilación de productos nucleófilos celulares, lo que ocasiona la
destrucción celular y actividad antitumoral (Townsend y Tew, 2003).
Figura 5–12
Generación de la sustancia alquilante reactivo después la conjugación de glutatión a TLK286. La GST interactúa con el profármaco y el análogo de GSH,
TLK286, a través de una tirosina en el sitio activo de la GST. La porción de GSH se muestra en color azul. La interacción favorece la β­eliminación y el
desdoblamiento del profármaco a una sulfona de vinilo y a un fragmento alquilante activo.
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CAPÍTULO 5: Metabolismo de los fármacos, Frank J. Gonzalez; Michael Coughtrie
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Figura 5–12
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Generación de la sustancia alquilante reactivo después la conjugación de glutatión a TLK286. La GST interactúa con el profármaco y el análogo de GSH,
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TLK286, a través de una tirosina en el sitio activo de la GST. La porción de GSH se muestra en color azul. La interacción favorece la β­eliminación y el
desdoblamiento del profármaco a una sulfona de vinilo y a un fragmento alquilante activo.
N ­acetilación
Las NAT citosólicas ocasionan el metabolismo de fármacos y agentes ambientales que contienen un grupo amino aromático o con hidracina (Mitchell,
2020). La adición del grupo acetilo proveniente del cofactor acetil­coenzima A produce un metabolito que es menos soluble en agua porque la amina
susceptible de ionización es neutralizada por la adición covalente del grupo acetilo. Las NAT se encuentran entre las enzimas metabolizadoras de
fármacos xenobióticos más polimorfas en seres humanos.
La identificación de un fenotipo acetilador en seres humanos fue uno de los primeros rasgos hereditarios identificados y fue la causa del desarrollo de
la farmacogenética (cap. 7). Tras el descubrimiento de que la isoniazida (INH, hidrazida de ácido isonicotinico) podría utilizarse para tratar la
tuberculosis, una proporción significativa de los pacientes (5% a 15%) experimentó efectos tóxicos que iban desde parestesias en los dedos hasta
daño al SNC. Después de descubrir que la isoniazida es metabolizada por acetilación y excretada en la orina, los investigadores observaron que los
individuos que experimentaron los efectos tóxicos del fármaco excretaron la mayor proporción de este sin cambios y una pequeña proporción en su
forma acetilada. Los estudios farmacogenéticos llevaron a la clasificación de los acetiladores en “rápidos” y “lentos”; el fenotipo lento predispone a la
aparición de efectos tóxicos (fig. 65–4). Se identificaron los alelos NAT para los acetiladores lentos y rápidos, revelando cambios genéticos que
corresponden al fenotipo de los acetiladores lentos.
Hay dos genes NAT funcionales en seres humanos, NAT1 y NAT2. Se han identificado más de 25 variantes alélicas de NAT1 y NAT2. En los individuos en
los que la acetilación de fármacos está comprometida, se requieren genotipos homocigotos para al menos dos alelos variantes para predisponer al
paciente a un metabolismo más lento de los fármacos. El polimorfismo en el gen NAT2 y su asociación con la acetilación lenta de la isoniazida fue uno
de los primeros genotipos completamente identificados que se demostró afectaban al metabolismo de los fármacos, vinculando así el fenotipo
farmacogenético a un polimorfismo genético. Aunque se han identificado casi tantas mutaciones en el gen NAT1 como en el gen NAT2, la frecuencia de
los patrones de acetilación lenta se atribuye principalmente al polimorfismo en el gen NAT2.
En el cuadro 5–4 se enumeran algunos sustratos de fármacos comunes de la NAT y sus efectos tóxicos conocidos (Meisel, 2002). La relevancia
terapéutica de los polimorfismos de NAT es evitar los efectos tóxicos inducidos por fármacos. La respuesta adversa a un fármaco en un acetilador
lento se asemeja a una sobredosis de drogas o fármacos; por lo tanto, se recomienda reducir la dosis o aumentar el intervalo de dosificación. Los
grupos aromáticos aminados o de hidracina existen en muchas clases de fármacos utilizados en la clínica; si se sabe que un fármaco está sometido al
metabolismo a través de acetilación, es importante determinar el fenotipo del individuo para obtener los mejores resultados terapéuticos. Por
ejemplo, la hidralazina, un fármaco antihipertensivo activo de administración oral (vasodilatador) que en algún momento fue muy utilizado, se
metaboliza por NAT2. La administración de dosis terapéuticas de hidralazina a un acetilador lento puede provocar hipotensión y taquicardia
extremas.
CUADRO 5–4
USOS TERAPÉUTICOS Y EFECTOS ADVERSOS DE SUSTRATOS COMUNES DE N ­ACETILTRANSFERASA
SUSTRATO NAT
USOS TERAPÉUTICOS
EFECTOS SECUNDARIOS
Acebutolol
Carcinoma de corteza suprarrenal,
Somnolencia, debilidad, insomnio
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cáncer mamario
CAPÍTULO 5: Metabolismo de los fármacos, Frank J. Gonzalez; Michael Coughtrie
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Aminoglutetimida
Bloqueo β, arritmias, hipertensión
Torpeza, náusea, mareos, agranulocitosis
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metabolismo a través de acetilación, es importante determinar el fenotipo del individuo para obtener los mejores resultados terapéuticos. Por
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ejemplo, la hidralazina, un fármaco antihipertensivo activo de administración oral (vasodilatador) que en algún momento fue muy utilizado, se
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metaboliza por NAT2. La administración de dosis terapéuticas de hidralazina a un acetilador lento puede provocar hipotensión y taquicardia
extremas.
CUADRO 5–4
USOS TERAPÉUTICOS Y EFECTOS ADVERSOS DE SUSTRATOS COMUNES DE N ­ACETILTRANSFERASA
SUSTRATO NAT
USOS TERAPÉUTICOS
EFECTOS SECUNDARIOS
Acebutolol
Carcinoma de corteza suprarrenal,
Somnolencia, debilidad, insomnio
cáncer mamario
Aminoglutetimida
Bloqueo β, arritmias, hipertensión
Torpeza, náusea, mareos, agranulocitosis
Ácido
Colitis ulcerosa
Fiebre alérgica, prurito, leucopenia
Inotrópico positivo en insuficiencia
Trombocitopenia, arritmias
aminosalicílico
Amrinona
cardiaca
Benzocaína
Anestésico local
Dermatitis, prurito, erupción cutánea, metahemoglobinemia
Cafeína
Síndrome de insuficiencia
Mareos, insomnio, taquicardia
respiratoria neonatal
Clonazepam
Convulsiones, ansiedad
Somnolencia, ataxia, mareos, lenguaje farfullante
Dapsona
Lepra, dermatitis
Hemólisis, metahemoglobinemia, náusea, dermatitis
Hidralazina
Hipertensión (actúa a través de
Hipotensión, efectos de reflejo baroreceptor simpático
vasodilatación)
Isoniazida
Tuberculosis
Neuritis periférica, hepatotoxicidad
Nitrazepam
Insomnio
Mareos, somnolencia
Fenelzina
Depresión (actúa a través de la
Mareos, excitación del SNC, insomnio, hipotensión ortostática, hepatotoxicidad
inhibición de la MAO)
Procainamida
Taquiarritmia ventricular
Hipotensión, bradicardia, lupus eritematoso
Sulfonamidas
Como bacteriostáticos
Hipersensibilidad, anemia hemolítica aguda, supresión reversible de la médula ósea (con sida
o con quimioterapia mielodepresora)
Varios objetivos farmacológicos conocidos para la acetilación, como las sulfonamidas, se han implicado en reacciones idiosincrásicas de
hipersensibilidad; en tales casos, es en especial importante apreciar el fenotipo de acetilación del paciente. Las sulfonamidas se transforman en
hidroxilaminas que interactúan con las proteínas celulares, generando haptenos que pueden provocar respuestas autoinmunitarias, a las que están
predispuestos los acetiladores lentos.
Los patrones específicos de expresión de NAT1 y NAT2 en los tejidos tienen un impacto significativo en el destino del metabolismo de los fármacos y
en la posibilidad de provocar un episodio tóxico. NAT1 tiene expresión ubicua entre la mayor parte de los tejidos humanos, mientras que NAT2 se
encuentra de forma predominante en el hígado y tubo digestivo. Un aspecto característico de NAT1 y NAT2 es la capacidad de formar metabolitos N­
hidroxi­acetilados a partir de hidrocarburos aromáticos bicíclicos, una reacción que conduce a la liberación no enzimática de grupos acetilo y la
generación de iones de nitrenio altamente reactivos. Por lo tanto, se cree que la N­hidroxi acetilación activa ciertos tóxicos ambientales. Por el
contrario, la N2023­12­27
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aminas
bicíclicas es estable y conduce a la eliminación de compuestos tóxicos. Los individuos que son
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acetiladores5:
rápidos
NAT2 son
de metabolizar
desintoxicar
eficazmente
aminas aromáticas bicíclicas a través de la acetilación hepática.
CAPÍTULO
Metabolismo
decapaces
los fármacos,
Frank J. yGonzalez;
Michael
Coughtrie
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embargo,
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(con deficiencia
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aminas
aromáticas
bicíclicas que se convierten en sustratos para la N­oxidación
dependiente de CYP. Estos metabolitos de N­OH se eliminan en la orina. En tejidos como el epitelio vesical, NAT1 se expresa con intensidad y puede
catalizar con eficacia la N­hidroxiacetilación de aminas aromáticas bicíclicas, un proceso que conduce a la desacetilación y la formación de iones de
Los patrones específicos de expresión de NAT1 y NAT2 en los tejidos tienen un impacto significativo en el destino del metabolismo de los fármacos y
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en la posibilidad de provocar un episodio tóxico. NAT1 tiene expresión ubicua entre la mayor parte de los tejidos
humanos, mientras
que NAT2 se­ UES
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encuentra de forma predominante en el hígado y tubo digestivo. Un aspecto característico de NAT1 y NAT2 es la capacidad de formar metabolitos N­
hidroxi­acetilados a partir de hidrocarburos aromáticos bicíclicos, una reacción que conduce a la liberación no enzimática de grupos acetilo y la
generación de iones de nitrenio altamente reactivos. Por lo tanto, se cree que la N­hidroxi acetilación activa ciertos tóxicos ambientales. Por el
contrario, la N­acetilación directa de aminas aromáticas bicíclicas es estable y conduce a la eliminación de compuestos tóxicos. Los individuos que son
acetiladores rápidos NAT2 son capaces de metabolizar y desintoxicar eficazmente aminas aromáticas bicíclicas a través de la acetilación hepática. Sin
embargo, los acetiladores lentos (con deficiencia de NAT2) acumulan aminas aromáticas bicíclicas que se convierten en sustratos para la N­oxidación
dependiente de CYP. Estos metabolitos de N­OH se eliminan en la orina. En tejidos como el epitelio vesical, NAT1 se expresa con intensidad y puede
catalizar con eficacia la N­hidroxiacetilación de aminas aromáticas bicíclicas, un proceso que conduce a la desacetilación y la formación de iones de
nitronio mutágenos, en especial en sujetos con deficiencia de NAT2. Los estudios epidemiológicos han demostrado que los acetiladores lentos están
predispuestos a padecer cáncer vesical si presentan exposición ambiental a aminas aromáticas bicíclicas.
Metilación
En los seres humanos, los fármacos y los xenobióticos pueden someterse a O­, N­ y S­metilación catalizada por metiltransferasas. Los seres humanos
expresan dos COMT, tres N­metil transferasas, una fenol­O­metiltransferasa (POMT), una tiopurina metiltransferasa (TPMT) y una tiol metiltransferasa
(TMT). Todas las metiltransferasas (MT) existe en forma de monómeros y utilizan S­adenosilmetionina (SAM, AdoMet) como donador de grupos
metilo. Con excepción de una firma de secuenciación que se conserva entre las metiltransferasas (MT), existe una similitud limitada entre estas
enzimas, lo que indica que cada MT ha evolucionado para mostrar una función catalítica singular. Aunque la función común entre las MT es la
generación de un producto metilado, la especificidad del sustrato es alta y distingue a cada enzima.
Entre las N­metiltransferasas, la nicotinamida N­metiltransferasa (NNMT) metila la serotonina y el triptófano, así como los compuestos de piridina que
contienen moléculas como la nicotinamida y la nicotina. La feniletanolamina N­metiltransferasa (PNMT) produce la metilación del neurotransmisor
norepinefrina para formar epinefrina; la histamina N­metiltransferasa (HNMT) metaboliza los fármacos que contienen un anillo imidazólico. La
catecol­O­metiltransferasa (COMT), que existe como dos isoformas generadas por el uso alternativo del exón, produce la metilación de
neurotransmisores que contienen un radical catecol, como la dopamina y la norepinefrina y fármacos como la metildopa y el éxtasis (MDMA, 3,4­
metilendioximetanfetamina).
Desde un punto de vista clínico, la MT más importante puede ser la tiopurina metiltransferasa (TPMT), que cataliza la S­metilación de compuestos
sulfhidrilos aromáticos y heterocíclicos, lo que incluye fármacos derivados de la tiopurina como azatioprina (AZA), 6­mercaptopurina (6­MP) y
tioguanina. La azatioprina y la 6­mercaptopurina se utilizan para el tratamiento de la enfermedad intestinal inflamatoria (cap. 55), así como trastornos
autoinmunitarios como el lupus eritematoso sistémico y la artritis reumatoide. La tioguanina se utiliza en el tratamiento de la leucemia mieloide aguda
y la 6­mercaptopurina se utiliza en todo el mundo para el tratamiento de la leucemia linfoblástica aguda infantil (cap. 70). Debido a que la TPMT
participa en la eliminación de la 6­mercaptopurina, una deficiencia genética de TPMT puede ocasionar efectos tóxicos graves en los pacientes que
toman estos fármacos (véase el esquema metabólico en la fig. 55–5). Cuando se administra por vía oral a dosis establecidas en la clínica, la 6­
mercaptopurina actúa como profármaco metabolizado por la hipoxantina guanina fosforiltransferasa (HGPRT) para formar nucleótidos de 6­
tioguanina (6­TGN), que se incorporan al DNA y RNA, lo que interrumpe de la replicación del DNA y la citotoxicidad.
Los efectos secundarios tóxicos surgen cuando la falta de metilación de la 6­mercaptopurina por acción de TPMT causa acumulación del fármaco y la
consiguiente generación de concentraciones tóxicas de 6­TGN. La identificación de los alelos inactivos de TPMT y el desarrollo de una prueba de
genotipificación para identificar portadores homocigotos del alelo defectuoso permiten la identificación de individuos que pueden estar
predispuestos a los efectos secundarios tóxicos del tratamiento con 6­MP. Los ajustes simples en el régimen de dosificación son una intervención que
salva vidas para los pacientes con deficiencias de TPMT.
PARTICIPACIÓN DEL METABOLISMO XENOBIÓTICO EN EL USO SEGURO Y EFICAZ DE LOS
FÁRMACOS
Cualquier xenobiótico que entre en el cuerpo debe ser eliminado a través del metabolismo y la excreción por la orina, bilis o heces. Los mecanismos de
metabolismo y excreción impiden la acumulación de compuestos extraños en el cuerpo que posiblemente causan toxicidad. En el caso de los
fármacos, el metabolismo normalmente provoca la inactivación de su eficacia terapéutica y facilita su eliminación. La tasa y la extensión del
metabolismo pueden determinar la eficacia y toxicidad de un fármaco controlando su semivida biológica. Entre las consideraciones más serias en el
uso clínico de los fármacos se encuentran las reacciones secundarias. Si un fármaco se metaboliza demasiado rápido, pierde con rapidez su eficacia
terapéutica. Esto puede ocurrir si las enzimas específicas involucradas en el metabolismo son demasiado activas o son inducidas por factores
dietéticos o ambientales. Si un fármaco se metaboliza con demasiada lentitud, se puede acumular en el torrente sanguíneo; como consecuencia, se
reduce la eliminación plasmática del fármaco, se eleva el área bajo la curva de concentración­tiempo en plasma (AUC; fig. 2–9) y la exposición al
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fármaco puede
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apropiados. Un aumento en el área bajo la curva a menudo ocurre cuando se inhiben enzimas que
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metabolizan xenobióticos específicos. Tal evento puede ocurrir cuando un individuo está tomando una combinación de agentes terapéuticos y dos o
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más de ellos actúan sobre una enzima específica que participa en el metabolismo de los fármacos; de manera similar, pueden interactuar un fármaco y
un producto dietético. Por ejemplo, el consumo de jugo de toronja puede inhibir el CYP3A4 intestinal, bloqueando el metabolismo de numerosos
fármacos, el metabolismo normalmente provoca la inactivación de su eficacia terapéutica y facilita su eliminación. La tasa y la extensión del
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metabolismo pueden determinar la eficacia y toxicidad de un fármaco controlando su semivida biológica. Entre
las consideraciones
más serias en­ UES
el
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uso clínico de los fármacos se encuentran las reacciones secundarias. Si un fármaco se metaboliza demasiado
rápido,
con rapidez su eficacia
terapéutica. Esto puede ocurrir si las enzimas específicas involucradas en el metabolismo son demasiado activas o son inducidas por factores
dietéticos o ambientales. Si un fármaco se metaboliza con demasiada lentitud, se puede acumular en el torrente sanguíneo; como consecuencia, se
reduce la eliminación plasmática del fármaco, se eleva el área bajo la curva de concentración­tiempo en plasma (AUC; fig. 2–9) y la exposición al
fármaco puede superar los niveles clínicamente apropiados. Un aumento en el área bajo la curva a menudo ocurre cuando se inhiben enzimas que
metabolizan xenobióticos específicos. Tal evento puede ocurrir cuando un individuo está tomando una combinación de agentes terapéuticos y dos o
más de ellos actúan sobre una enzima específica que participa en el metabolismo de los fármacos; de manera similar, pueden interactuar un fármaco y
un producto dietético. Por ejemplo, el consumo de jugo de toronja puede inhibir el CYP3A4 intestinal, bloqueando el metabolismo de numerosos
fármacos. Entre los componentes del jugo de toronja que inhiben el CYP3A4 están la naringina y las furanocumarinas. La inhibición del CYP específico
en el intestino por el consumo dietético de jugo de toronja altera la biodisponibilidad oral de muchas clases de fármacos, como ciertos
antihipertensivos, inmunodepresores, antidepresivos, antihistamínicos y estatinas, entre otros.
Mientras que los factores ambientales pueden alterar los niveles de estado de equilibrio de enzimas específicas o inhibir su potencial catalítico, estos
cambios fenotípicos en el metabolismo de fármacos también se observan clínicamente en grupos de individuos que están genéticamente
predispuestos a efectos farmacológicos secundarios por diferencias farmacogenéticas en la expresión de enzimas que metabolizan xenobióticos (cap.
7). La mayor parte de las enzimas que metabolizan xenobióticos muestran diferencias polimórficas en su expresión, como resultado de cambios
hereditarios en la estructura de los genes. Por ejemplo, la hiperbilirrubinemia puede ocurrir por reducción en la capacidad de glucuronidación de la
bilirrubina circulante por disminución de la expresión del gen UGT1A1 (síndrome de Gilbert). Los fármacos sujetos a glucuronidación por parte de
UGT1A1, como el inhibidor de la topoisomerasa SN­38 (figs. 5–6, 5–8 y 5–9), muestran un aumento del área bajo la curva en individuos con síndrome
de Gilbert porque tales pacientes no pueden metabolizar estos fármacos. La mayor parte de los fármacos quimioterapéuticos contra el cáncer tienen
un índice terapéutico estrecho; por lo tanto, debido a una deficiencia en la eliminación del fármaco, los aumentos en las concentraciones circulantes
de la forma activa pueden dar lugar a efectos tóxicos significativos.
Para casi todas las clases de fármacos se han reportado efectos secundarios. En Estados Unidos, los efectos secundarios relacionados con fármacos
representan un costo anual de alrededor de 100 mil millones de dólares y causan más de 100 000 muertes. Se estima que 56% de los fármacos
relacionados con efectos secundarios son sustratos para enzimas que metabolizan xenobióticos. Debido a que muchos de los CYP y UGT pueden ser
inducidos e inhibidos por fármacos, factores dietéticos y otros agentes ambientales, estas enzimas desempeñan una función importante en la mayor
parte de las reacciones secundarias. Por lo tanto, antes de presentar una New Drug Application (NDA), se debe conocer la vía metabólica del nuevo
fármaco. En la actualidad, es práctica habitual en la industria farmacéutica establecer qué enzimas intervienen en el metabolismo de un compuesto en
estudio para ser un nuevo fármaco e identificar los metabolitos y determinar sus posibles efectos tóxicos. Teniendo en cuenta la importante función
de los CYP en la generación de reacciones farmacológicas adversas, es probable que haya un cambio para evitar las principales vías oxidativas del
metabolismo al desarrollar nuevos fármacos de moléculas pequeñas.
INDUCCIÓN DEL METABOLISMO DE FÁRMACOS
Los xenobióticos pueden influir en el metabolismo de los fármacos activando la transcripción e induciendo la expresión de genes que codifican
enzimas metabolizadoras de fármacos. Por lo tanto, un compuesto extraño puede inducir su propio metabolismo, al igual que ciertos fármacos. Una
posible consecuencia de esto es una disminución plasmática en la concentración de fármacos durante el tratamiento, lo que resulta en pérdida de
eficacia, ya que el metabolismo autoinducido del fármaco excede la tasa a la que el nuevo fármaco entra en el cuerpo. En el cuadro 5–5 se muestra una
lista de ligandos y los receptores a través de los cuales se induce el metabolismo de fármacos. Un receptor particular, cuando es activado por un
ligando, puede inducir la transcripción de una serie de genes específicos. Entre estos genes específicos se encuentran ciertos CYP y transportadores
de fármacos; la inducción de CYP y proteínas transportadoras podría ocasionar interacciones farmacológicas. La figura 5–13 muestra el esquema por
el cual un fármaco puede interactuar con los receptores nucleares para inducir su propio metabolismo.
CUADRO 5–5
RECEPTORES NUCLEARES QUE INDUCEN EL METABOLISMO DE LOS FÁRMACOS
RECEPTOR
LIGANDOS
Receptor de aril hidrocarburos (AHR)
Omeprazol
Receptor constitutivo de androstano (CAR)
Fenobarbital
Receptor de pregnanos X (PXR)
Rifampicina
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farnesoide
X (FXR) Reserved. Terms of Use • Privacy Policy • Notice • Ácidos
biliares
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Receptor de vitamina D (VDR)
Vitamina D
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lista de ligandos y los receptores a través de los cuales se induce el metabolismo de fármacos. Un receptor particular, cuando es activado por un
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ligando, puede inducir la transcripción de una serie de genes específicos. Entre estos genes específicos se encuentran ciertos CYP y transportadores
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de fármacos; la inducción de CYP y proteínas transportadoras podría ocasionar interacciones farmacológicas. La figura 5–13 muestra el esquema por
el cual un fármaco puede interactuar con los receptores nucleares para inducir su propio metabolismo.
CUADRO 5–5
RECEPTORES NUCLEARES QUE INDUCEN EL METABOLISMO DE LOS FÁRMACOS
RECEPTOR
LIGANDOS
Receptor de aril hidrocarburos (AHR)
Omeprazol
Receptor constitutivo de androstano (CAR)
Fenobarbital
Receptor de pregnanos X (PXR)
Rifampicina
Receptor farnesoide X (FXR)
Ácidos biliares
Receptor de vitamina D (VDR)
Vitamina D
Receptor activado por proliferador del peroxisoma (PPAR)
Fibratos
Receptor de ácido retinoico (RAR)
Todos los derivados trans del ácido retinoico
Receptor X retinoide (RXR)
Ácido 9­cis­retinoico
Figura 5–13
Inducción del metabolismo de fármacos por transducción de señales mediada por receptores nucleares. Cuando un fármaco como la atorvastatina
(ligando) entra en la célula, puede unirse a un receptor nuclear como PXR. El PXR forma un complejo con el RXR (receptor X de retinoides), se une al
DNA en genes específicos, recluta al coactivador (que se une a la proteína de unión a la caja TATA, TBP) y activa la transcripción. Entre los genes de PXR
se encuentra el CYP3A4, que puede metabolizar la atorvastatina y disminuir su concentración celular. Por lo tanto, la atorvastatina induce su propio
metabolismo. La atorvastatina se somete a ortohidroxilación y parahidroxilación.
Receptor de aril hidrocarburos
El receptor de aril hidrocarburos (AHR) es miembro de una superfamilia de factores de transcripción con diversas funciones en mamíferos, como
desempeñar un papel regulador en el desarrollo del SNC de mamíferos y modular la respuesta a la tensión química y oxidativa. Esta superfamilia de
factores de transcripción incluye Per (Period) y Sim (Simpleminded), dos factores de transcripción implicados en el desarrollo del SNC y del factor 1α
(HIF1α), HIF2α y su pareja de dimerización HIF1β inducido por hipoxia. En condiciones de hipoxia, una subunidad HIFα citosólica se traslada al núcleo y
forma un dímero con HIF1β; el dímero se une al elemento de respuesta de hipoxia para activar la transcripción del gen.
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El
AHR induce
expresión dede
genes
que codifican
CYP1A1,
CYP1A2Michael
y CYP1B1,
que son capaces de activar metabólicamente carcinógenos químicos,
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CAPÍTULO
5:la
Metabolismo
los fármacos,
Frank
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incluidos
contaminantes
ambientales
y carcinógenos
alimentarios.
estas•sustancias
son inertes a menos que sean metabolizadas por el
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CYP. Por lo tanto, la inducción de estos CYP por un fármaco podría ocasionar un aumento de la toxicidad y carcinogenicidad de los procarcinógenos.
Por ejemplo, el omeprazol, un inhibidor de la bomba de protones utilizado para tratar úlceras gástricas y duodenales (cap. 53), es un ligando para el
El receptor de aril hidrocarburos (AHR) es miembro de una superfamilia de factores de transcripción con diversas funciones en mamíferos, como
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desempeñar un papel regulador en el desarrollo del SNC de mamíferos y modular la respuesta a la tensión química y oxidativa. Esta superfamilia de
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factores de transcripción incluye Per (Period) y Sim (Simpleminded), dos factores de transcripción implicados en el desarrollo del SNC y del factor 1α
(HIF1α), HIF2α y su pareja de dimerización HIF1β inducido por hipoxia. En condiciones de hipoxia, una subunidad HIFα citosólica se traslada al núcleo y
forma un dímero con HIF1β; el dímero se une al elemento de respuesta de hipoxia para activar la transcripción del gen.
El AHR induce la expresión de genes que codifican CYP1A1, CYP1A2 y CYP1B1, que son capaces de activar metabólicamente carcinógenos químicos,
incluidos contaminantes ambientales y carcinógenos alimentarios. Muchas de estas sustancias son inertes a menos que sean metabolizadas por el
CYP. Por lo tanto, la inducción de estos CYP por un fármaco podría ocasionar un aumento de la toxicidad y carcinogenicidad de los procarcinógenos.
Por ejemplo, el omeprazol, un inhibidor de la bomba de protones utilizado para tratar úlceras gástricas y duodenales (cap. 53), es un ligando para el
AHR y puede inducir CYP1A1 y CYP1A2, con las posibles consecuencias de la activación de toxinas o carcinógenos, así como de las interacciones
farmacológicas en pacientes que reciben compuestos que son sustratos para cualquiera de estos CYP.
Receptores nucleares tipo 2
Otro mecanismo importante de inducción se debe a los receptores nucleares tipo 2 que pertenecen a la misma superfamilia que los receptores de
hormonas esteroides. Muchos de estos receptores, identificados con base en su similitud estructural con los receptores de hormonas esteroides,
fueron originalmente llamados receptores huérfanos porque no se conocían ligandos endógenos con los cuales podrían interactuar. Ahora se sabe
que algunos de estos receptores son activados por xenobióticos, incluyendo fármacos. Los receptores nucleares tipo 2 de mayor importancia para el
metabolismo de fármacos y el tratamiento farmacológico incluyen el receptor de pregnano X (PXR), el receptor constitutivo de androstano (CAR) y los
receptores activados por el proliferador del peroxisoma (PPAR).
El PXR fue descubierto porque es activado por el esteroide sintético pregnenolona­16α­carbonitrilo, también es activado por otros fármacos como
antibióticos (rifampicina y troleandomicina), antagonistas de los conductos de Ca2+ (nifedipina), estatinas (mevastatina), antidiabéticos (troglitazona),
inhibidores de la proteasa del VIH (ritonavir), y fármacos contra el cáncer (paclitaxel) (Nicolussi et al., 2020).
La hepatotoxicidad durante el tratamiento antirretroviral constituye un buen ejemplo de la función reguladora de los CYP en la toxicidad de los
fármacos. Los pacientes tratados con el antibiótico rifampicina (para la tuberculosis) o efavirenz (para VIH), seguidos de mezclas que contienen
ritonavir para el VIH, desarrollan hepatotoxicidad con alta frecuencia. El mecanismo de toxicidad parece implicar la activación de los PXR (fig. 5–14). El
metabolismo de ritonavir por CYP3A4 produce metabolitos reactivos que causan tensión fisiológica y toxicidad celular; rifampicina y efavirenz activan
los PXR e inducen altos niveles de CYP3A4; el metabolismo de ritonavir por CYP3A4 incrementa, lo que ocasiona aumento de las concentraciones de
metabolitos hepatotóxicos (Shehu et al., 2019). Esta interacción farmacológica podría reducirse mediante el desarrollo de estrategias para disminuir la
activación de los PXR, disminuir el metabolismo del CYP3A4 o suprimir las vías metabólicas para mejorar el uso seguro de ritonavir en la clínica.
Figura 5–14
Potenciación de la hepatotoxicidad de ritonavir por activadores de hPXR. Ritonavir, un potente inhibidor y sustrato del CYP3A4, se utiliza en el
tratamiento contra el VIH­sida como potenciador farmacocinético de los inhibidores de la proteasa de VIH que también son sustratos del CYP3A4
(cuadro 64–4). El ritonavir se metaboliza en metabolitos reactivos que pueden dañar las células hepáticas y la hepatotoxicidad del ritonavir aumenta
notablemente en pacientes tratados con rifampicina (para tuberculosis) o efavirenz (un inhibidor no nucleósido de la transcriptasa inversa utilizado
para tratar el VIH). La potenciación de la toxicidad del ritonavir farmacoinducida puede explicarse por la activación de hPXR hepática por rifampicina o
efavirenz, que induce niveles elevados de CYP3A4, esto cataliza una mayor producción de metabolitos tóxicos reactivos de ritonavir que causan
sobrecarga fisiológica en el retículo endoplásmico y daño a los hepatocitos (Shehu et al., 2019). Sida, síndrome de inmunodeficiencia adquirida; hPXR,
receptor de pregnano X humano.
La hiperforina, un componente de la hierba de San Juan, un remedio herbolario de venta libre utilizado para la depresión, también activa al PXR. Se
cree que esta activación es la base para el aumento en el fracaso de los anticonceptivos orales en mujeres que toman hierba de San Juan; los PXR
activados son inductores del CYP3A4, que puede metabolizar los esteroides que se encuentran en los anticonceptivos orales, por lo tanto, reducen la
concentración de esteroides por debajo del intervalo de anticoncepción efectiva. Los PXR también inducen la expresión de genes que codifican ciertos
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transportadores
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y UGT.
Así, los PXR pueden facilitar el metabolismo y la eliminación Page
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numerosos
xenobióticos,
a veces
con consecuencias
El receptor nuclear CAR fue descubierto por su capacidad para activar genes en ausencia de un ligando. Los esteroides como el androstanol, el
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La hiperforina, un componente de la hierba de San Juan, un remedio herbolario de venta libre utilizado para
la depresión,
cree que esta activación es la base para el aumento en el fracaso de los anticonceptivos orales en mujeres que toman hierba de San Juan; los PXR
activados son inductores del CYP3A4, que puede metabolizar los esteroides que se encuentran en los anticonceptivos orales, por lo tanto, reducen la
concentración de esteroides por debajo del intervalo de anticoncepción efectiva. Los PXR también inducen la expresión de genes que codifican ciertos
transportadores de fármacos y enzimas de fase 2, lo que incluye SULT y UGT. Así, los PXR pueden facilitar el metabolismo y la eliminación de
numerosos xenobióticos, a veces con consecuencias notables.
El receptor nuclear CAR fue descubierto por su capacidad para activar genes en ausencia de un ligando. Los esteroides como el androstanol, el
antimicótico clotrimazol y la meclizina (antiemético) son agonistas inversos que inhiben la activación génica a través de CAR; el esteroide 5­β­
pregnano­3,20­diona (y probablemente otros compuestos endógenos) y el pesticida 1,4­bis[2­(3,5­dicloropiridiloxi)] benceno son agonistas de CAR
que activan la expresión génica. Los genes inducidos por CAR incluyen aquellos que codifican varios CYP (2B6, 2C9 y 3A4); varias enzimas de fase 2
(incluidas GST, UGT y SULT); y transportadores de fármacos y endobióticos. CYP3A4 es inducido por PXR y CAR; por lo tanto, su nivel está muy influido
por una serie de fármacos y otros xenobióticos. Además de inducir la degradación de los fármacos, CAR y PXR parecen funcionar en el control de
múltiples aspectos de la fisiología hepática, incluyendo la degradación de la bilirrubina, el metabolismo energético y la proliferación celular (Cai et al.,
2021).
Sin duda, PXR y CAR pueden ser activados o inhibidos por una gran variedad de ligandos. Al igual que con las enzimas que metabolizan xenobióticos,
también existen diferencias de especificidad de ligando de estos receptores en diferentes especies. Por ejemplo, las bajas concentraciones
clínicamente relevantes de rifampicina activan al PXR humano, mientras que las concentraciones muy altas del fármaco activan al PXR del ratón o de
rata; la pregnenolona­16α­carbonitrilo activa preferentemente al PXR de ratón y rata, pero no al PXR humano. Paradójicamente, la meclizina activa al
CAR murino pero inhibe la inducción génica por el CAR humano. Estos hallazgos demuestran que la información de los modelos en roedores no
siempre refleja la respuesta de los seres humanos a los fármacos.
La familia de los PPAR está compuesta por tres miembros: α, β/δ y γ. Los PPARα son el objetivo farmacológico de la clase de fibratos para la
hiperlipidemia, lo que incluye el gemfibrozilo y el fenofibrato, fármacos que se prescriben ampliamente. La activación de los PPARα da lugar a la
inducción de genes que codifican enzimas metabolizadoras de ácidos grasos, lo que ocasiona disminución de los triglicéridos séricos. Además, la
activación de estos receptores induce enzimas CYP4 que llevan a cabo la oxidación de ácidos grasos y fármacos con cadenas laterales que contienen
ácidos grasos, como leucotrienos y análogos de araquidonato. Los PPARγ son el objetivo farmacológico de las tiazolidinedionas, fármacos contra la
diabetes tipo 2, lo que incluye rosiglitazona y pioglitazona. PPARγ y PPARβ/δ no inducen enzimas involucradas en el metabolismo de xenobióticos.
Los genes UGT, en particular UGT1A1, son objetivos de AHR, PXR, CAR, PPARα y NRF2 (factor nuclear 2 similar al factor eritroide 2, un importante
regulador transcripcional de genes citoprotectores inducidos por una respuesta antioxidante). Debido a que las UGT son abundantes en el tubo
digestivo e hígado, se espera que la regulación de las UGT mediante la activación inducida por fármacos de estos receptores nucleares desempeñe
una función importante en relación con los parámetros farmacocinéticos de muchos agentes terapéuticos administrados por vía oral.
PARTICIPACIÓN DEL METABOLISMO DE FÁRMACOS EN EL DESARROLLO DE COMPUESTOS
TERAPÉUTICOS
Hay dos elementos fundamentales asociados con el desarrollo exitoso de medicamentos: eficacia y seguridad. Ambos dependen del metabolismo de
fármacos. Es necesario determinar qué enzimas metabolizan un posible nuevo fármaco para predecir si el compuesto puede causar interacciones
farmacológicas o si es susceptible a una marcada variación individual en el metabolismo a causa de polimorfismos genéticos.
Para la determinación del metabolismo, el compuesto en desarrollo que muestra eficacia en modelos preclínicos se somete a análisis utilizando
hepatocitos, hígado o extractos de hígado humanos que contienen todas las enzimas metabolizadoras de fármacos. Tales estudios pueden predecir
cómo los seres humanos metabolizan un fármaco en particular y con ello predecir, en cierta medida, la tasa metabólica. Si un CYP está implicado,
puede utilizarse un perfil de CYP recombinantes para determinar cuál CYP predomina en el metabolismo del fármaco. Si un solo CYP, como CYP3A4, se
encuentra como la única vía enzimática que metaboliza un compuesto que podría ser un fármaco, entonces se puede tomar una decisión sobre la
probabilidad de interacciones farmacológicas. Antes de empezar con estudios clínicos, la estructura de una molécula que podría ser un fármaco
puede modificarse para cambiar los sitios de la molécula que se metabolizan, en particular por el CYP, con el fin de disminuir la posible degradación
rápida y los efectos tóxicos.
Las interacciones se convierten en un problema cuando se administran simultáneamente varios fármacos, por ejemplo, en pacientes de edad
avanzada, que a diario pueden tomar fármacos antiinflamatorios, hipocolesterolemiantes, fármacos para disminuir la presión arterial, antiácidos,
anticoagulantes y fármacos que se venden sin prescripción médica. Un compuesto que podría ser un fármaco puede sufrir metabolismo por acción de
varias CYP, de forma que la variabilidad en los niveles de expresión de un CYP o las interacciones farmacológicas podrían no afectar de forma
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significativa
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farmacocinética.
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Se pueden realizar estudios similares con enzimas de fase 2 y transportadores de fármacos para predecir el destino metabólico de un fármaco.
Además del uso de enzimas recombinantes humanas metabolizadoras de xenobióticos para predecir el metabolismo de los fármacos, también se
rápida y los efectos tóxicos.
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Las interacciones se convierten en un problema cuando se administran simultáneamente varios fármacos, por
ejemplo,
avanzada, que a diario pueden tomar fármacos antiinflamatorios, hipocolesterolemiantes, fármacos para disminuir la presión arterial, antiácidos,
anticoagulantes y fármacos que se venden sin prescripción médica. Un compuesto que podría ser un fármaco puede sufrir metabolismo por acción de
varias CYP, de forma que la variabilidad en los niveles de expresión de un CYP o las interacciones farmacológicas podrían no afectar de forma
significativa su metabolismo y su farmacocinética.
Se pueden realizar estudios similares con enzimas de fase 2 y transportadores de fármacos para predecir el destino metabólico de un fármaco.
Además del uso de enzimas recombinantes humanas metabolizadoras de xenobióticos para predecir el metabolismo de los fármacos, también se
utilizan sistemas basados en receptores humanos o líneas celulares que expresan receptores nucleares para determinar si un compuesto particular
que podría ser un fármaco es un ligando o activador de PXR, CAR o PPARα. Por ejemplo, un fármaco que activa los PXR puede dar lugar a una
eliminación rápida de otros fármacos que son sustratos de CYP3A4, lo que disminuye su biodisponibilidad y eficacia.
Una perspectiva para el futuro cercano es la predicción del metabolismo de los fármacos por análisis informático. Se han determinado las estructuras
de varios CYP, incluidas las de CYP 2A6, 2C9 y 3A4. Estas estructuras pueden utilizarse para predecir el metabolismo de un compuesto que podría ser
un fármaco ajustando la molécula al sitio activo de la enzima y determinando los potenciales de oxidación de los sitios de la molécula. Sin embargo,
las estructuras, determinadas por el análisis de cristalografía con rayos X de complejos enzima­sustrato, son estáticas, mientras que las enzimas son
flexibles; esta distinción vital puede ser limitada. El gran tamaño de los sitios activos del CYP, que les permite metabolizar muchos compuestos
diferentes, también los hace difíciles de modelar. La posibilidad para modelar las interacciones del ligando o del activador con los receptores
nucleares también tienen limitaciones similares a las que se presentan para el CYP.
En el desarrollo de fármacos es indispensable realizar estudios preclínicos para determinar los posibles efectos tóxicos de un compuesto que podría
utilizarse como fármaco. Esto suele llevarse a cabo administrando dosis crecientes del posible fármaco a roedores, por lo general por arriba de la
dosis terapéutica prevista para seres humanos. Se realizan estudios de carcinogenicidad a largo plazo en modelos de roedores para los posibles
fármacos propuestos para su uso a largo plazo en seres humanos, por ejemplo aquellos utilizados para reducir los triglicéridos séricos y colesterol o
para el tratamiento de la diabetes tipo 2. Se vigilan los signos de toxicidad y se valoran los daños en los órganos por estudios histopatológicos post
mortem. Este proceso no proporciona mucha información y puede ser un cuello de botella en el desarrollo de nuevos fármacos.
Se está adoptando una nueva tecnología de detección de alto rendimiento de biomarcadores de toxicidad para el desarrollo de fármacos mediante
análisis metabolómico (Jacob et al., 2019). La metabolómica es la identificación y cuantificación sistemáticas de todos los metabolitos de un
organismo o de una muestra biológica determinada. Las plataformas analíticas, como la resonancia magnética nuclear 1H y la cromatografía líquida o
de gases, junto con la espectrometría de masas y con el análisis de datos quimiométricos y multivariados, permiten determinar y comparar en forma
simultanea miles de productos químicos en líquidos biológicos como suero y orina, así como los componentes químicos de células y tejidos. Esta
tecnología puede detectar la toxicidad de los fármacos en sistemas biológicos completos durante el desarrollo preclínico de fármacos y puede evitar la
necesidad de necropsias y estudios histopatológicos en miles de animales, los cuales son costosos y consumen mucho tiempo.
Utilizando metabolómica, los animales tratados y no tratados con un compuesto que podría ser un fármaco pueden analizarse para detectar la
presencia de uno o más metabolitos en la orina que guarde relación con la eficacia o toxicidad de los fármacos. Los metabolitos en orina brindan
información sobre los efectos tóxicos para el hígado, riñón y SNC, los cuales se han identificado utilizando sustancias químicas tóxicas conocidas. La
información sobre compuestos específicos que están elevados en la orina se puede utilizar para determinar si un fármaco en particular causa
toxicidad y también se pueden emplear en estudios clínicos tempranos para controlar posibles efectos tóxicos. La metabolómica se puede utilizar
para encontrar biomarcadores para la eficacia y toxicidad que pueden ser de utilidad en estudios clínicos para identificar a los pacientes que
responden y los que no responden al tratamiento. El metabolismo de fármacos se puede estudiar en modelos en animales completos y en seres
humanos para determinar los metabolitos de un fármaco o para indicar la presencia de un polimorfismo en el metabolismo farmacológico que podría
indicar un resultado clínico adverso. Por último, con el paso del tiempo podrían desarrollarse biomarcadores a partir de la metabolómica
experimental para la vigilancia sistemática de los signos de toxicidad en pacientes que reciben farmacoterapia.
MODELOS EN ANIMALES PARA EL DESARROLLO PRECLÍNICO DE FÁRMACOS
Las compañías farmacéuticas pueden determinar el CYP humano y otras enzimas que llevan a cabo el metabolismo de un posible fármaco mediante el
uso de herramientas informáticas, estudios in vitro y cultivos celulares descritos antes, con esto se facilita la predicción de las interacciones
farmacológicas que pueden ocurrir en la práctica clínica. Estas técnicas también pueden establecer si un compuesto tiene el potencial de ser
metabólicamente activado hacia un derivado citotóxico o cancerígeno. Con la ayuda de modelos en animales pequeños se puede obtener una
valoración más precisa de cómo se comporta un fármaco en seres humanos, con ello se tiene la ventaja de un mayor rendimiento para el análisis de
muchos derivados de un fármaco potencial. Sin embargo, el CYP de ratón y rata difiere notablemente del CYP que se encuentra en seres humanos. Por
consiguiente, se han desarrollado ratones que expresan CYP humano y los receptores que lo regulan, como PXR (González et al., 2015). También se
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han humanizado
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ratón han
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Los
ratones
que expresan
CYP­PXR humanos pueden ser utilizados para valorar la
estabilidad de los fármacos y su biodisponibilidad antes de iniciar los estudios clínicos de fase I dado que los transportadores de fármacos, enzimas
FMO, EH y enzimas de la fase 2 no muestran grandes diferencias en las actividades de regulación y catalíticas entre especies. Estos ratones que
uso de herramientas informáticas, estudios in vitro y cultivos celulares descritos antes, con esto se facilita la predicción de las interacciones
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farmacológicas que pueden ocurrir en la práctica clínica. Estas técnicas también pueden establecer si un compuesto
tiene elDE
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metabólicamente activado hacia un derivado citotóxico o cancerígeno. Con la ayuda de modelos en animales pequeños se puede obtener una
valoración más precisa de cómo se comporta un fármaco en seres humanos, con ello se tiene la ventaja de un mayor rendimiento para el análisis de
muchos derivados de un fármaco potencial. Sin embargo, el CYP de ratón y rata difiere notablemente del CYP que se encuentra en seres humanos. Por
consiguiente, se han desarrollado ratones que expresan CYP humano y los receptores que lo regulan, como PXR (González et al., 2015). También se
han humanizado las UGT que presentan diferencias entre las especies (Fujiwara et al., 2018). En la mayor parte de los casos, los genes endógenos de
ratón han sido sustituidos por genes humanos correspondientes. Los ratones que expresan CYP­PXR humanos pueden ser utilizados para valorar la
estabilidad de los fármacos y su biodisponibilidad antes de iniciar los estudios clínicos de fase I dado que los transportadores de fármacos, enzimas
FMO, EH y enzimas de la fase 2 no muestran grandes diferencias en las actividades de regulación y catalíticas entre especies. Estos ratones que
expresan genes humanos también pueden utilizarse para estudios de toxicidad y carcinogénesis a largo plazo. Otro modelo que se ha desarrollado es
la estrategia de reemplazar el hígado humano, donde una porción de hígado humano se usa para reemplazar el hígado de ratón (Naratomi et al.,
2019). Sin embargo, este modelo requiere utilizar ratones con inmunodepresión y existe el problema de que cada hígado humano utilizado en el ratón
puede expresar diferentes niveles de CYP a causa de factores genéticos (polimorfismos) y dietéticos (inductores presentes en los alimentos que
consume el donador).
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CAPÍTULO 6: Microbioma gastrointestinal y respuesta a los fármacos
Shirley M. Tsunoda; Pieter C. Dorrestein; Rob Knight
ABREVIATURAS
Abreviaturas
5­ASA: ácido 5­aminosalicílico
cgr: glucosidasas cardiacas
CYP: citocromo P450
F M T : Trasplante de microbiota fecal
FXR: receptor X de farnesoide
GI: gastrointestinal
ICI: inhibidor del punto de verificación inmunitario
LPS: lipopolisacárido
O A T : transportador de aniones orgánicos
OATP: polipéptido orgánico transportador de aniones
PD­1: Proteína de muerte celular programada 1
Pgp: glucoproteína P
PPI: inhibidor de la bomba de protones
PXR: receptor X de pregnano
UGT: uridín­difosfato­glucuronosiltransferasa
EL MICROBIOMA HUMANO
¿Qué es?
El microbioma es el repertorio genético del ecosistema de microorganismos (bacterias, virus incluyendo fagos y a veces arqueobacterias, hongos y
células eucariotas microbianas) que coexisten en un sitio dado dentro de cada ser humano. La microbiota humana consiste en la colección de
microorganismos que existen en un área específica dentro del cuerpo, como la cavidad bucal, esófago, piel, intestino, vagina y otros sitios. La
composición, regulación y dinámica de los microbiomas y microbiotas que habitan estas áreas del cuerpo se individualizan y compartimentan. Los
organismos de la cavidad bucal y del intestino son más diversos que los de otros sitios del cuerpo (Costello et al., 2009; Human Microbiome Project
Consortium, 2012). El establecimiento del microbioma comienza al momento del parto, cuando el bebé hereda microorganismos de la madre y del
medio ambiente.
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la colonización microbiana de los recién nacidos: en los bebés nacidos por cesárea predominan las
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especies bacterianas
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6: Microbioma
gastrointestinal
y respuesta
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al.,
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Después
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el microbioma
se establece
una
firma individual que persiste a largo plazo (Faith et al., 2013),
posiblemente a lo largo de la vida (Maynard et al., 2012). Los genes del microbioma superan con creces el número de genes humanos, con
estimaciones de más de 200 millones de genes microbianos en comparación con 20 000 genes de línea germinal de seres humanos (Qin et al., 2010).
células eucariotas microbianas) que coexisten en un sitio dado dentro de cada ser humano. La microbiota humana consiste en la colección de
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microorganismos que existen en un área específica dentro del cuerpo, como la cavidad bucal, esófago, piel,UNIVERSIDAD
intestino, vaginaDE
y otros
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composición, regulación y dinámica de los microbiomas y microbiotas que habitan estas áreas del cuerpo se
individualizan y compartimentan. Los
organismos de la cavidad bucal y del intestino son más diversos que los de otros sitios del cuerpo (Costello et al., 2009; Human Microbiome Project
Consortium, 2012). El establecimiento del microbioma comienza al momento del parto, cuando el bebé hereda microorganismos de la madre y del
medio ambiente. El tipo de nacimiento afecta a la colonización microbiana de los recién nacidos: en los bebés nacidos por cesárea predominan las
especies bacterianas epidérmicas con predisposición al asma y a las alergias en etapas posteriores de la vida (Bager et al., 2008; Domínguez­Bello et
al., 2010). Después de que el niño es destetado, el microbioma se establece como una firma individual que persiste a largo plazo (Faith et al., 2013),
posiblemente a lo largo de la vida (Maynard et al., 2012). Los genes del microbioma superan con creces el número de genes humanos, con
estimaciones de más de 200 millones de genes microbianos en comparación con 20 000 genes de línea germinal de seres humanos (Qin et al., 2010).
Las células microbianas (sobre todo bacterias intestinales) tienen una proporción aproximada de 1:1 con respecto a las células humanas (Sender et
al., 2016). Aunque por lo general el microbioma de un individuo parece ser estable durante toda su vida, numerosos factores ambientales pueden
alterar la composición microbiana, incluyendo la ubicación geográfica, dieta, estilo de vida y xenobióticos (Human Microbiome Project Consortium,
2012; Kaplan et al., 2019; Kurilshikov et al., 2021). Otras influencias incluyen los ritmos circadianos, la edad y la estación del año.
Más de 90% de las microbiotas intestinales son miembros de dos filos bacterianos, Bacteroidetes y Firmicutes (Turnbaugh et al., 2007). Anteriormente,
se pensaba que los microbiomas intestinales humanos podían clasificarse en “enterotipos” aislados con el enriquecimiento de Bacteroides, Prevotella
o Ruminococcus formando la base para tres enterotipos diferentes. Sin embargo, ahora se piensa que la variabilidad del microbioma intestinal a
través de la población humana probablemente forma un continuo en oposición a los grupos aislados (Jeffery et al., 2012). La variabilidad de persona a
persona en el microbioma intestinal es expansiva y los microbiomas individuales difieren en más de 90% (Parfrey y Knight, 2012).
Enfermedad y microbioma
Aunque los mecanismos están a la espera de su definición, el microbioma intestinal está implicado en numerosos resultados de salud y
enfermedades, lo que incluye enfermedades autoinmunitarias, autismo, enfermedades cardiovasculares, cáncer y enfermedades hepáticas como la
hepatopatía grasa no alcohólica (Gilbert et al., 2016). El National Cancer Institute estima que 16% de todos los cánceres en Estados Unidos se deben de
manera demostrable a componentes del microbioma (por ejemplo, Helicobacter pylori, virus del papiloma humano, hepatitis C). Entre las causas de
ese 16% aún no se cuentan Escherichia coli productora de colibactina, que puede fragmentar el ácido desoxirribonucleico (DNA, deoxyribonucleic
acid) humano (Li et al., 2019) y también inducir cáncer colorrectal. Un desafío para el futuro será determinar si los cambios funcionales en el
microbioma intestinal pueden servir como biomarcadores o dianas para la intervención terapéutica o si el microbioma mismo puede servir como
intervención terapéutica en estados patológicos.
Fármacos y el microbioma
El microbioma intestinal contribuye de forma importante a la variación en la respuesta a los fármacos. Las bacterias intestinales metabolizan
directamente los xenobióticos, afectan de manera indirecta el metabolismo de los fármacos influyendo en las actividades de las enzimas de fase I y
fase II, además los transportadores intestinales de fármacos participan en la circulación enterohepática de estos y en las respuestas
farmacodinámicas (Lam et al., 2019; Tsunoda et al., 2021). En la era actual de la medicina de precisión, comprender cómo y hasta qué punto el
microbioma intestinal interactúa con los fármacos y sus acciones será clave para individualizar el tratamiento. Con su distribución a través del tubo
digestivo, el microbioma intestinal se interconecta con muchos de los productos químicos que se encuentran en la vida diaria, incluyendo ligandos
endógenos, fuentes ambientales, alimentos, sustancias inhaladas y sustancias químicas exógenas como los fármacos. Hay una naturaleza
bidireccional a esta interacción entre los fármacos y la microbiota. Los fármacos alteran el microbioma; se necesita solamente considerar el ejemplo
de los antibióticos que afectan la cantidad y variedad de microorganismos en el intestino. Sin embargo, muchos compuestos no antibióticos pueden
afectar la microbiota intestinal, con 240 fármacos que muestran la inhibición de al menos una cepa bacteriana in vitro (Maier et al., 2018); tal resultado
puede tener implicaciones para la resistencia a los antibióticos de los fármacos identificados de forma tradicional como no antibióticos. Por el
contrario, se sabe que el microbioma puede modificar directamente los fármacos. Los gastroenterólogos dependen de las acciones de la microbiota
intestinal cuando se administra el profármaco sulfasalazina para tratar la enfermedad intestinal inflamatoria. Las bacterias intestinales reducen el
enlace azo de la sulfasalazina, liberando el metabolito sulfapiridina y el fármaco activo 5­aminosalicilato (mesalamina) (fig. 55–3). Estudios recientes
en animales y seres humanos muestran evidencia de metabolismo indirecto por microorganismos intestinales a través de la modificación de la
maquinaria del metabolismo del fármaco del hospedador (Selwyn et al., 2016; Toda et al., 2009b). Los microorganismos intestinales también
participan en la interacción cruzada entre el intestino y el hígado que afecta la circulación enterohepática de fármacos (véase más adelante la sección
sobre la circulación enterohepática).
Intervenciones terapéuticas mediante el microbioma
Una vez que se tenga una comprensión más profunda de lo que constituye un microbioma “sano” y la forma en que los microorganismos regulan y
coordinan la función
y los factores
influyen
en la variabilidad dentro de los individuos y entre ellos, estaremos mejor preparados para diseñar
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intervenciones
terapéuticasgastrointestinal
para manipularyelrespuesta
microbioma
en fármacos,
beneficio de
la salud.
Una de estas
intervenciones,
el trasplante
fecal
CAPÍTULO
6: Microbioma
a los
Shirley
M. Tsunoda;
Pieter
C. Dorrestein;
Rob Knightde microbiota
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(FMT, fecal
microbiota
), se está
utilizando
el área Policy
clínica•para
tratar
colitis por Clostridioides difficile (antes denominado
Clostridium difficile) e implica una drástica remodelación del microbioma de un estado no saludable a un estado similar al del donante sano
(Weingarden et al., 2015). Otros prebióticos, probióticos, postbióticos y microorganismos vivos están siendo estudiados para diversas indicaciones,
participan en la interacción cruzada entre el intestino y el hígado que afecta la circulación enterohepática de fármacos (véase más adelante la sección
sobre la circulación enterohepática).
Intervenciones terapéuticas mediante el microbioma
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Una vez que se tenga una comprensión más profunda de lo que constituye un microbioma “sano” y la forma en que los microorganismos regulan y
coordinan la función y los factores que influyen en la variabilidad dentro de los individuos y entre ellos, estaremos mejor preparados para diseñar
intervenciones terapéuticas para manipular el microbioma en beneficio de la salud. Una de estas intervenciones, el trasplante de microbiota fecal
(FMT, fecal microbiota transplantation), se está utilizando en el área clínica para tratar colitis por Clostridioides difficile (antes denominado
Clostridium difficile) e implica una drástica remodelación del microbioma de un estado no saludable a un estado similar al del donante sano
(Weingarden et al., 2015). Otros prebióticos, probióticos, postbióticos y microorganismos vivos están siendo estudiados para diversas indicaciones,
tales como enfermedad intestinal inflamatoria, autismo (Kang et al., 2017) y fenilcetonuria. La comunidad científica y clínica deberá crear y acordar
nuevas guías para el estudio y aprobación del uso clínico de estos “microorganismos vivos”.
Técnicas para el estudio del microbioma
La capacidad de estudiar el microbioma ha mejorado mucho en las últimas décadas debido al avance de las tecnologías para estudiar e identificar a
los microorganismos. Un avance tecnológico que ha sido fundamental es la capacidad de secuenciar e inventariar el microbioma. En las primeras
etapas del campo del microbioma, el enfoque se centró en la toma de inventarios utilizando ácido ribonucleico ribosómico (rRNA, ribosomal
ribonucleic acid) 16S, permitiendo la información sobre el género. Con un costo reducido y un rendimiento mejorado de la secuenciación, ahora se
está convirtiendo en rutina obtener información sobre las especies mediante la secuenciación metagenómica. El gen rRNA 16S es compartido por
todas las bacterias y arqueobacterias y tiene regiones que pueden ser usadas como sitios de cebado para la reacción en cadena de la polimerasa. Los
microorganismos pueden ser identificados al nivel de la familia, género y a veces cerca de la especie. La tecnología más notable para revolucionar el
campo es el análisis de DNA de mayor resolución y basado en funciones, la metagenómica de escopeta (fig. 6–1), que se está convirtiendo rápidamente
en el método estándar para estudiar el microbioma. La metagenómica de escopeta se basa en la extracción de todo el DNA de una muestra, su
fragmentación en segmentos pequeños, la secuenciación e interpretación de los fragmentos o secuencias “ensambladas” más largas en términos de
los taxones representados (a veces al nivel de especie o de cepa) y las funciones genéticas contenidas en el ensamblaje. Así, además de una resolución
taxonómica más alta, la metagenómica de escopeta ayuda a describir e identificar genes y vías microbianas. Para la información a nivel de expresión,
los metatranscriptomas, la metaproteómica y la metabolómica proporcionan información al nivel de RNA, proteínas y metabolitos, información que se
puede utilizar junto con los análisis basados en DNA. La disponibilidad de modelos murinos gnotobióticos (es decir, ratones sin microbioma) ha
permitido realizar estudios mecanicistas, como introducir especies microbianas únicas o grupos de microorganismos y probar su influencia en
diversos parámetros de enfermedad y farmacoterapia, estudios que proporcionan más información sobre la causalidad de algunos padecimientos.
Figura 6–1
Metagenómica de escopeta.
FARMACOMICROBIÓMICA
Un fármaco administrado por vía oral encuentra muchos obstáculos en el trayecto a la circulación sistémica. Existen barreras fisicoquímicas dentro del
estómago y el intestino delgado que pueden alterar la absorción, metabolizando enzimas como los CYP intestinales y hepáticos (citocromos P450) y
transportadores de membrana como la glucoproteína P (Pgp; MDR1, ABCB1) que puede ser inhibida por solutos competitivos como otros fármacos,
pero también puede interactuar o puede ser inducida por fármacos. El panorama puede volverse complejo, en especial al notar que las bacterias
intestinales pueden modificar los fármacos de formas directa e indirecta modificando los procesos metabólicos del hospedador (fig. 6–2). Dichas
interacciones no se limitan a los agentes administrados por vía oral. Los fármacos administrados por vía parenteral y sus metabolitos pueden llegar al
intestino
a través
de la secreción
biliar
y así
con la microbiota intestinal.
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CAPÍTULO 6: Microbioma gastrointestinal y respuesta a los fármacos, Shirley M. Tsunoda; Pieter C. Dorrestein; Rob Knight
Figura
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Vía de un fármaco administrado por vía oral. Cuando un medicamento se administra por vía oral (1) se encuentra con microorganismos intestinales,
estómago y el intestino delgado que pueden alterar la absorción, metabolizando enzimas como los CYP intestinales y hepáticos (citocromos P450) y
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transportadores de membrana como la glucoproteína P (Pgp; MDR1, ABCB1) que puede ser inhibida por solutos
competitivos
otros fármacos,
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pero también puede interactuar o puede ser inducida por fármacos. El panorama puede volverse complejo,Access
en especial
al notar que las bacterias
intestinales pueden modificar los fármacos de formas directa e indirecta modificando los procesos metabólicos del hospedador (fig. 6–2). Dichas
interacciones no se limitan a los agentes administrados por vía oral. Los fármacos administrados por vía parenteral y sus metabolitos pueden llegar al
intestino a través de la secreción biliar y así interactuar con la microbiota intestinal.
Figura 6–2
Vía de un fármaco administrado por vía oral. Cuando un medicamento se administra por vía oral (1) se encuentra con microorganismos intestinales,
CYP y transportadores como la glucoproteína P en el intestino delgado y colon. En estos procesos se perderá algo del fármaco en las heces. El fármaco
que permanece no metabolizado en el intestino delgado se absorbe y luego viaja a través de la vena porta hasta el hígado, donde encuentra más
transportadores y CYP, por lo que se puede perder más fármaco a causa del metabolismo (2). La cantidad de fármaco que entra en la circulación
sistémica es a menudo una fracción de lo que se ingirió en un inicio (3). Muchos fármacos absorbidos son metabolizados posteriormente en el hígado
y excretados en el tubo digestivo a través de la bilis como conjugados polares con ácido UDP­glucurónico, glutatión o sulfato y no son lo
suficientemente lipófilos para ser reabsorbidos. El microbioma intestinal participa en la desconjugación, hidrolizando glucurónidos y sulfatos y los
hace más lipófilos; los grupos funcionales más lipófilos son reabsorbidos y reingresan a la circulación portal, como si hubieran sido administradas por
vía oral y comienza de nuevo el ciclo. Así, el ciclo enterohepático puede prolongar la semivida de eliminación de un xenobiótico.
Numerosos procesos que actúan sobre un fármaco afectan a la fracción de un este administrado por vía oral que finalmente entra en la circulación
sistémica: el entorno ácido del estómago, el metabolismo en el intestino y el hígado antes de su distribución por todo el cuerpo, las barreras de
membrana y la permeabilidad selectiva, la extrusión de las células intestinales en la luz del tubo digestivo y los efectos del microbioma que pueden
alterar la solubilidad o la identidad química y la eficacia de un fármaco. Esta fracción (fármaco total administrado/fármaco total que realmente alcanza
la circulación sistémica) se denomina biodisponibilidad del fármaco, o F, una fracción que varía entre 0 y 1, 0 < F < 1 (cap. 2).
Los CYP y los transportadores de expulsión de fármacos son los principales impulsores de la biodisponibilidad. La variabilidad de la biodisponibilidad
dentro de los individuos y entre ellos es una de las principales causas del fracaso terapéutico y de los efectos tóxicos. Las enzimas CYP metabolizan
70% a 80% de todos los fármacos comercializados (fig. 5–3). El CYP3A participa en más de 50% del metabolismo de fármacos mediado por CYP. En el
intestino, las enzimas CYP3A metabolizan los sustratos antes de que entren en la circulación portal y la Pgp expulsa los fármacos del intestino,
limitando así la biodisponibilidad. El CYP3A hepático puede metabolizar aún más los sustratos. Teniendo en cuenta el tiempo prolongado que los
fármacos administrados por vía oral pasan en el intestino delgado y colon donde reside la mayor parte del microbioma intestinal, es importante
comprender el impacto de la microbiota intestinal en la eficacia y toxicidad de los fármacos.
El nuevo campo que estudia las interacciones del microbioma con xenobióticos se llama farmacobiómica. Entre las complejidades del estudio de las
contribuciones del microbioma al efecto y toxicidad de los fármacos se encuentran el estado de la enfermedad de un individuo y las características
genéticas, ambientales y del estilo de vida. La variabilidad interindividual en respuesta al tratamiento farmacológico es una de las principales causas
de ineficacia terapéutica y toxicidad, con las consecuentes hospitalizaciones, y aumento de la morbilidad y mortalidad. Se ha avanzado mucho en la
determinación de la variabilidad genética en enzimas metabolizadoras de fármacos, transportadores de fármacos y genes diana de fármacos, lo que
ha dado lugar a guías clínicas para determinados fármacos (Relling y Klein, 2011). Los microorganismos intestinales pueden afectar a los fármacos al
influir en la farmacocinética y en la farmacodinámica. Las bacterias pueden metabolizar los fármacos antes de la absorción, después de la absorción a
través del epitelio intestinal y después de la excreción biliar del hígado, lo que puede alterar o llevar a la reabsorción del fármaco a través de la
circulación enterohepática. El microbioma intestinal puede afectar la actividad de los transportadores (Walsh et al., 2020) y las enzimas
metabolizadoras de fármacos que afectan la farmacocinética de un fármaco. El microbioma también puede ocasionar la bioacumulación de fármacos,
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almacenándolos
sin alterarlos
(Klünemann
2021), reduciendo así la biodisponibilidad de estos en el tubo digestivo. Están surgiendo datos sobre
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6:
Microbioma
gastrointestinal
y
respuesta
a los
Shirley M. Tsunoda;
Pieter C. Dorrestein;
Rob Knight
el efecto del microbioma intestinal en la farmacodinámica
y lafármacos,
compleja interacción
con el eje intestino­cerebro,
así como
con el eje intestino­sistema
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inmunitario. Será importante incorporar la contribución del microbioma intestinal a la eficacia y toxicidad de los fármacos junto con otros factores
como la genética, la edad, el sexo, los ritmos circadianos, la inflamación, enfermedad y fármacos administrados en forma simultánea.
determinación de la variabilidad genética en enzimas metabolizadoras de fármacos, transportadores de fármacos y genes diana de fármacos, lo que
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ha dado lugar a guías clínicas para determinados fármacos (Relling y Klein, 2011). Los microorganismos intestinales
puedenDE
afectar
a los fármacos
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influir en la farmacocinética y en la farmacodinámica. Las bacterias pueden metabolizar los fármacos antesAccess
de laProvided
absorción,
después de la absorción a
través del epitelio intestinal y después de la excreción biliar del hígado, lo que puede alterar o llevar a la reabsorción del fármaco a través de la
circulación enterohepática. El microbioma intestinal puede afectar la actividad de los transportadores (Walsh et al., 2020) y las enzimas
metabolizadoras de fármacos que afectan la farmacocinética de un fármaco. El microbioma también puede ocasionar la bioacumulación de fármacos,
almacenándolos sin alterarlos (Klünemann et al., 2021), reduciendo así la biodisponibilidad de estos en el tubo digestivo. Están surgiendo datos sobre
el efecto del microbioma intestinal en la farmacodinámica y la compleja interacción con el eje intestino­cerebro, así como con el eje intestino­sistema
inmunitario. Será importante incorporar la contribución del microbioma intestinal a la eficacia y toxicidad de los fármacos junto con otros factores
como la genética, la edad, el sexo, los ritmos circadianos, la inflamación, enfermedad y fármacos administrados en forma simultánea.
METABOLISMO DIRECTO DE FÁRMACOS POR MICROORGANISMOS INTESTINALES
El metabolismo bacteriano consiste en distintos tipos de reacciones que difieren en forma significativa del metabolismo del hospedador humano. El
metabolismo bacteriano de los fármacos a menudo ocasiona aumento de la hidrofobicidad de los compuestos, incrementando su liposolubilidad y
potencialmente aumentando su toxicidad, mientras que el metabolismo del hospedador por lo general produce más compuestos hidrofílicos,
disminuyendo su toxicidad y facilitando la excreción. Las modificaciones realizadas por las bacterias incluyen reducción, hidrólisis, hidroxilación,
desalquilación y desmetilación, entre otros. Las bacterias también pueden añadir o eliminar grupos funcionales mediante hidrólisis y desconjugación
(Sousa et al., 2008) (cuadro 6–1). La reducción y la hidrólisis parecen predominar porque estas dos reacciones reflejan las demandas energéticas de
los microorganismos intestinales en gran parte anaerobios. Las reacciones de reducción facilitan la respiración anaeróbica al proporcionar una gama
más amplia de aceptores de electrones disponibles, mientras que la hidrólisis proporciona sustratos para el crecimiento microbiano. Estas
modificaciones metabólicas bacterianas complementan las realizadas por los CYP del hospedador, que incluyen la oxidación con moléculas de
nitrógeno y de azufre, la desalquilación de N­desalquilación o la O­desalquilación, la hidroxilación aromática, la desaminación y la deshalogenación
(Zanger y Schwab, 2013).
CUADRO 6–1
METABOLISMO REPRESENTATIVO DE FÁRMACOS MEDIADOS POR EL MICROBIOMA
MODIFICACIÓN
Reducción
TIPO
Azorreducción
FÁRMACOS DE
EJEMPLO
Sulfasalazina
EFECTO
INDICACIÓN
MICROORGANISMOS
SOBRE LA
ACTIVIDAD
Antiinflamatorio
Muchos; por ejemplo, Bacteroides fragilis,
Activa
Streptococcus faecium, Streptococcus
faecalis
Nitrorreducción
Cloranfenicol
Antibiótico
Escherichia coli, Haemophilus influenzae,
Desactiva
Neisseria meningitides, Bacteroides
fragilis
Reducción
Digoxina
Cardiovascular
Reducción
Fluorouracilo, una vez
Antineoplásico
Eggerthella lenta
Desactiva
Desactiva
que se ha unido a la
ribosa
Reducción de
Omeprazol
sulfóxido
Trastornos
Bacillus megaterium
Desactiva
Comunidades de fibrosis quística
Desconocido
relacionados con el
ácido gástrico
Acilación
Propionilación
Tobramicina
Antibiótico
cultivadas
Acetilación
Aminoglucósidos (p.
Antibiótico
Mycobacterium tuberculosis
Desactiva
ej., kanamicina A)
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Hidroxilación
Simvastatinaa los fármacos,
Antihipolipidémico
Comunidad
intestinal
cultivada
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gastrointestinal y respuesta
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Hidrólisis
Hidrólisis de ésteres
Lovastatina
Antihipolipidémico
Desactiva
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Activa
nitrógeno y de azufre, la desalquilación de N­desalquilación o la O­desalquilación, la hidroxilación aromática, la desaminación y la deshalogenación
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(Zanger y Schwab, 2013).
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CUADRO 6–1
METABOLISMO REPRESENTATIVO DE FÁRMACOS MEDIADOS POR EL MICROBIOMA
MODIFICACIÓN
Reducción
TIPO
Azorreducción
FÁRMACOS DE
EJEMPLO
Sulfasalazina
EFECTO
INDICACIÓN
MICROORGANISMOS
SOBRE LA
ACTIVIDAD
Antiinflamatorio
Muchos; por ejemplo, Bacteroides fragilis,
Activa
Streptococcus faecium, Streptococcus
faecalis
Nitrorreducción
Cloranfenicol
Antibiótico
Escherichia coli, Haemophilus influenzae,
Desactiva
Neisseria meningitides, Bacteroides
fragilis
Reducción
Digoxina
Cardiovascular
Reducción
Fluorouracilo, una vez
Antineoplásico
Eggerthella lenta
Desactiva
Desactiva
que se ha unido a la
ribosa
Reducción de
Omeprazol
sulfóxido
Trastornos
Bacillus megaterium
Desactiva
Comunidades de fibrosis quística
Desconocido
relacionados con el
ácido gástrico
Acilación
Propionilación
Tobramicina
Antibiótico
cultivadas
Acetilación
Aminoglucósidos (p.
Antibiótico
Mycobacterium tuberculosis
Desactiva
Comunidad intestinal cultivada
Desactiva
ej., kanamicina A)
Hidrólisis
Hidroxilación
Simvastatina
Antihipolipidémico
Hidrólisis de ésteres
Lovastatina
Antihipolipidémico
Desglucuronidación
Irinotecán (SN­38­G)
Antineoplásico
Activa
E. coli, Lactobacillus rhamnosus,
Activa
Ruminococcus gnavus, Faecalibacterium
prausnitzii
Desulfatación
Picosulfato sódico
Laxante
Eubacterium rectale
Desactiva
Desfosforilación
5­Fluorouracilo
Antineoplásico
Comunidad intestinal
Activa
Hidrólisis de amidas
Metotrexato
Antimetabolito
Asociación con Firmicutes
Activa
Desacetilación
Diltiazem
Antihipertensivo
Bacteroides thetaiotaomicron
Actividad
reducida
Desmetilación
Desmetilación
Altretamina
Antineoplásico
Cultivo microbiano fecal combinado
Activa
Descarboxilación
Descarboxilación
Levodopa
Enfermedad de
Comunidad intestinal cultivada
Desactiva
Parkinson
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Datos tabulados
extraídos de:
Wilson
y Nicholson,
2017; Guthrie et al., 2019; Letertre et al., 2020; Onuora, 2021; Aura et al., 2011; Swanson, 2015; Pellock y Redinbo,
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CAPÍTULO 6: Microbioma gastrointestinal y respuesta a los fármacos, Shirley M. Tsunoda; Pieter C. Dorrestein; Rob Knight
2017; Biernat et al., 2019; Tsodikov et al., 2014; Jarmusch et al., 2020; Jang et al., 2017; Guo et al., 2020; Zimmermann et al., 2019; Clarke et al., 2019; Guthrie y Kelly,
©2023
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2019; Koppel et al., 2017; Sun et al., 2019.
Desmetilación
Desmetilación
Altretamina
Antineoplásico
Cultivo microbiano fecal combinado
Activa
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Descarboxilación
Descarboxilación
Levodopa
Enfermedad de
Comunidad intestinal
cultivada
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Desactiva
Parkinson
Datos tabulados extraídos de: Wilson y Nicholson, 2017; Guthrie et al., 2019; Letertre et al., 2020; Onuora, 2021; Aura et al., 2011; Swanson, 2015; Pellock y Redinbo,
2017; Biernat et al., 2019; Tsodikov et al., 2014; Jarmusch et al., 2020; Jang et al., 2017; Guo et al., 2020; Zimmermann et al., 2019; Clarke et al., 2019; Guthrie y Kelly,
2019; Koppel et al., 2017; Sun et al., 2019.
Aunque la biotransformación directa de fármacos por bacterias se conoce desde hace más de un siglo, en años recientes hemos apreciado su
naturaleza generalizada, reflejando los avances en las herramientas para identificar estas transformaciones bacterianas. La microbiota intestinal
puede metabolizar de forma directa los fármacos en metabolitos activos, inactivos o tóxicos. Las azorreductasas microbianas son ubicuas a través de
varios filos bacterianos encontrados en el microbioma intestinal. Los efectos terapéuticos de varios profármacos se activan por la reducción del
enlace azo tras la administración oral. Por ejemplo, la sulfasalazina para la colitis ulcerosa se activa por acción de las azorreductasas microbianas
intestinales para formar sulfapiridina y ácido 5­aminosalicílico (5­ASA). El 5­ASA es el fármaco activo que inhibe la inflamación dentro del colon de los
pacientes con colitis ulcerosa. Este fármaco puede ser inactivado por N­acetiltransferasas de arilamina bacteriana. La actividad de estas enzimas
puede variar en un intervalo de 10 veces (Deloménie et al., 2001), lo que conduce a una variabilidad interindividual significativa en el metabolismo y
posiblemente a la eficacia de la sulfasalazina entre los pacientes.
A diferencia de la biotransformación de fármacos humanos, donde las enzimas metabolizadoras de fármacos de fase I y II están bien identificadas,
falta una base de conocimientos completa sobre las bacterias metabolizadoras de fármacos. Sin embargo, el campo está progresando. Mediante una
combinación de incubaciones in vitro de fármacos y metabolómica no dirigida, se demostró que 76 especies bacterianas intestinales metabolizan 176
fármacos no antibióticos que abarcaban diversas indicaciones clínicas (Zimmermann et al., 2019). Han surgido algunos patrones de metabolismo
bacteriano directo. Los aislados bacterianos comparten actividades metabólicas específicas del filo y metabolizan fármacos con grupos funcionales
específicos. Por ejemplo, los fármacos metabolizados por Bacteroidetes contienen grupos de ésteres o amidas que se pueden hidrolizar. Los
fármacos con lactonas o con grupos nitro, azo y urea son más susceptibles al metabolismo microbiano. Además, los resultados sugieren que la
identificación al nivel de la especie es insuficiente para explicar el metabolismo bacteriano y que podría ser necesaria la identificación de marcadores
genéticos directamente asociados con el metabolismo de fármacos enzimáticos microbianos (Zimmermann et al., 2019).
Hasta la fecha, hay pocos ejemplos de metabolismo directo de fármacos por la microbiota intestinal que sean lo suficientemente significativos en la
clínica como para cambiar la eficacia o toxicidad de los fármacos, pero unos pocos de ellos con intervalos terapéuticos estrechos demuestran muy
bien el problema. La digoxina, un glucósido cardiaco, que se utiliza en la clínica para la fibrilación auricular y la insuficiencia cardiaca, es un buen
ejemplo. Los signos de toxicidad por digoxina pueden ocurrir alrededor del doble del nivel requerido para un tratamiento eficaz. Permanecer dentro
de este estrecho intervalo terapéutico requiere la vigilancia de los fármacos terapéuticos y de una valoración cuidadosa de la dosis. En casi 10% de los
pacientes, se producen niveles altos de un metabolito inactivo, la dihidrodigoxina, que conducen a una disminución significativa de la concentración
sistémica del fármaco activo. El microbio intestinal Eggerthella lenta causa la reducción del anillo de lactona α,β­insaturado de digoxina, lo que lleva a
la formación de dihidrodigoxina. Con mayor precisión, solo una cepa específica de E. lenta (DMS2243) reduce el anillo de lactona de digoxina, esta
cepa e induce la expresión de un operón de dos genes y de las reductasas de glucósidos cardiacos (cgr, cardiac glycoside reductases) 1 y 2 (Haiser et
al., 2013). Una dieta rica en arginina inhibe la cgr, mitigando así la reducción bacteriana (Haiser et al., 2013). Esto demuestra la naturaleza altamente
específica de la variabilidad interindividual que puede influir en la eficacia terapéutica de la digoxina. El tacrolimús, un inmunodepresor con un
intervalo terapéutico estrecho, también presenta una variabilidad de la eficacia que está ligada a un miembro de la microbiota Faecalibacterium
prausnitzii. Los pacientes de trasplante de riñón que requerían dosis más altas de tacrolimús tenían microbiomas intestinales ricos en F. prausnitzii,
una bacteria grampositiva no móvil (Lee et al., 2015). La investigación posterior mostró que la incubación del tacrolimús con F. prausnitzii produce un
producto de reducción de tacrolimús que no se encontró cuando se incubó en microsomas hepáticos, lo que sugiere una biotransformación directa y
única del tacrolimús por microorganismos intestinales (Guo et al., 2019).
METABOLISMO INDIRECTO DE FÁRMACOS POR MICROORGANISMOS INTESTINALES
Además de la transformación enzimática directa por parte de los microorganismos intestinales, las bacterias intestinales también pueden afectar de
forma indirecta la biotransformación de fármacos al regular los genes que metabolizan fármacos en el hospedador. Los estudios en animales han
demostrado que la expresión génica, los niveles de proteínas y la actividad de las enzimas metabolizadoras de fármacos están alterados. Por ejemplo,
la expresión génica de Cyp3a (el ortólogo murino del CYP3A humano) tiene una regulación descendente notable tanto en el intestino como en el
hígado de ratones sin microorganismos (Toda et al., 2009b) en comparación con los testigos de tipo silvestre. Esto se correlacionó con la disminución
de la unión nuclear del receptor X de pregnano (PXR), un regulador ascendente de la transcripción de Cyp3a en el hígado (Björkholm et al., 2009). La
“convencionalización” de los ratones sin microorganismos restableció el Cyp3a a niveles cercanos a lo normal (Selwyn et al., 2016). El tratamiento de
ratones convencionales
con
el antibiótico
ciprofloxacina
(una quinolona) redujo la expresión hepática de CYP3A y disminuyó el metabolismo del
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sustrato CYP3A
triazolam; lagastrointestinal
ciprofloxacina no
produjo cambios
en la actividad
en ratones
(Toda et al., 2009a).
Estos
CAPÍTULO
6: Microbioma
y respuesta
a los fármacos,
ShirleydeM.CYP3A
Tsunoda;
Pietersin
C. microorganismos
Dorrestein; Rob Knight
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datos sugieren
microbianos
nucleares como el PXR para reducir la expresión de
enzimas metabolizadoras de fármacos como el CYP3A.
demostrado que la expresión génica, los niveles de proteínas y la actividad de las enzimas metabolizadoras de fármacos están alterados. Por ejemplo,
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DE EL SALVADOR
la expresión génica de Cyp3a (el ortólogo murino del CYP3A humano) tiene una regulación descendente notable
tanto en el intestino
como en el ­ UES
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hígado de ratones sin microorganismos (Toda et al., 2009b) en comparación con los testigos de tipo silvestre.
Esto se correlacionó con la disminución
de la unión nuclear del receptor X de pregnano (PXR), un regulador ascendente de la transcripción de Cyp3a en el hígado (Björkholm et al., 2009). La
“convencionalización” de los ratones sin microorganismos restableció el Cyp3a a niveles cercanos a lo normal (Selwyn et al., 2016). El tratamiento de
ratones convencionales con el antibiótico ciprofloxacina (una quinolona) redujo la expresión hepática de CYP3A y disminuyó el metabolismo del
sustrato CYP3A triazolam; la ciprofloxacina no produjo cambios en la actividad de CYP3A en ratones sin microorganismos (Toda et al., 2009a). Estos
datos sugieren que los microorganismos o productos microbianos pueden unirse a factores nucleares como el PXR para reducir la expresión de
enzimas metabolizadoras de fármacos como el CYP3A.
Otras enzimas y transportadores de fases I y II son alterados por microorganismos intestinales en animales. Los ratones sin microorganismos
presentaron una mayor expresión intestinal de ácido ribonucleico mensajero (mRNA, messenger ribonucleic acid) de las enzimas de fase I alcohol
deshidrogenasa y aldehído deshidrogenasa, la enzima de fase II UDP­glucuronosiltransferasa 1a1 (Ugt1a1), dos transportadores de ácidos biliares (Fu
et al., 2017) y Mdr1b hepático, el ortólogo murino de la MDR humana, el gen que codifica el Pgp (Walsh et al., 2020). Por el contrario, los ratones sin
microorganismos presentaron una disminución de la expresión hepática de la proteína Oatp1a1 (el ortólogo de la OATP1A1 humana), de la proteína
Bcrp1 de resistencia al cáncer mamario (ortólogo de BCRP humano) y del transportador de cationes orgánico Oct1 (ortólogo de OCT1 humano) (Kuno
et al., 2016). Para determinar la relevancia clínica de estos resultados, será importante realizar estudios en seres humanos con los niveles de proteínas
y las actividades de estas enzimas y transportadores.
Los datos humanos disponibles son limitados, pero son coherentes con los datos de los estudios con animales. Un estudio en voluntarios sanos
mostró disminuciones en la actividad de CYP 1A2, 2C19 y 3A4 después de un ciclo de 7 días con cefalosporina cefprozilo (Jarmusch et al., 2020); los
sustratos utilizados fueron cafeína para CYP1A2, omeprazol para CYP2C19 y midazolam para CYP3A4 (cuadro 6–2). El análisis de la comunidad
microbiana mostró una disminución de la diversidad alfa (una medida de la varianza de microorganismos dentro de una muestra dada) y una
correlación entre la pérdida de diversidad alfa y el aumento de la formación de fármacos y metabolitos para los tres sustratos analizados (Jarmusch et
al., 2020). Alterar el microbioma con antibioticoterapia disminuyó de forma moderada la actividad enzimática, lo que sugiere que un microbioma sano
y diverso puede ser necesario para el funcionamiento óptimo de las enzimas metabolizadoras de fármacos. Las investigaciones futuras sobre el
mecanismo de este efecto, así como sobre los de otros antibióticos, pueden proporcionar información clínica adicional aplicable.
CUADRO 6–2
METABOLISMO INDIRECTO DE FÁRMACOS POR MICROORGANISMOS Y SU EFECTO SOBRE PARÁMETROS FARMACOCINÉTICOS
METABOLISMO INDIRECTO
IN
FÁRMACO
ANIMAL/HUMANO
VIVO/IN
VITRO
Paracetamol
Animal
In vivo
EFECTO SOBRE FARMACOCINÉTICA
(MICROBIOMA INTESTINAL INTACTO)
↑ AUC y Cmáx
ENZIMAS
DIVERSIDAD
COMENTARIOS
SULT1A1
NA
El P­cresol compite
(Malfatti et al.,
con el paracetamol
2020)
que se une a SULT1A1
→ impide que el
hospedador elimine el
paracetamol
Cafeína
Humano
In vivo
↓ CL
CYP1A2
↓α↑β
↓ Actividad del CYP
(Jarmusch et
cuando se da
al., 2020)
tratamiento con
cefprozilo
Metformina
Animal
In vivo
↓ Cmax y ↑ semivida
Oct1
NA
Cambios probables en
(Wu et al.,
la farmacocinética
2017)
debidos a ↓ expresión
de Oct1 en el hígado
→ alteración de la
captación hepática de
metformina in vivo
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CAPÍTULO 6: Microbioma gastrointestinal y respuesta a los fármacos, Shirley M. Tsunoda; Pieter C. Dorrestein; Rob Knight
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↓ Cmáx
, AUC, semivida
Cyp3a;
NA
Niveles bajos de
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(Jarmusch et
al., 2020;
Humano
In vivo
↓ CL
Ugt
↓α↑β
actividad de Cyp3a en
ratones GF ↓
(Wu et al.,
la farmacocinética
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EL SALVADOR
debidos
a ↓ expresión ­ UES
2017)
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de Oct1 en el hígado
→ alteración de la
captación hepática de
metformina in vivo
Midazolam
Animal
In vitro
(Jarmusch et
Humano
In vivo
↓ Cmáx, AUC, semivida
Cyp3a;
NA
Niveles bajos de
↓ CL
Ugt
↓α↑β
actividad de Cyp3a en
al., 2020;
ratones GF ↓
Togao et al.,
metabolismo in vivo
2020)
de fármacos
↓ Actividad del CYP
cuando se da
tratamiento con
cefprozilo
Omeprazol
Humano
In vivo
↓ Relación de metabolitos de AUC
CYP2C19
↓α↑β
↓ Actividad del CYP
(Jarmusch et
cuando se da
al., 2020)
tratamiento con
cefprozilo
Progestágenos
Humano
In vivo
MPA tuvo una semivida más larga
CYP450
NA
Es probable que la
(Coombes et
hidroxilación de los
al., 2020)
progestágenos sea
mediada por CYP
Triazolam
Animal
In vivo
↑ de la relación del metabolito sobre el
Cyp3a
(Toda et al.,
fármaco original en ratones sin patógenos
Cyp3a11
del CYP en ratones sin
2009a, 2009b)
específicos en comparación con ratones sin
Cyp3a25
patógenos específicos
microorganismos
NA
↑ Actividad hepática
(Bacteroides y
Escherichia coli)
La administración de
ciprofloxacina a
ratones SPF → ↓ de
forma significativa la
expresión de mRNA de
Cyp3a11
AUC: Área bajo la curva; CL: eliminación; GF: sin microorganismos; MPA, medroxiprogesterona; NA, no aplicable; SPF, sin patógenos específicos.
El analgésico paracetamol proporciona un ejemplo de microorganismos intestinales que alteran el metabolismo hepático de fase II del hospedador
(cuadro 6–2). El paracetamol sufre glucuronidación y las glucuronidasas bacterianas pueden desconjugar el metabolito de glucurónido, permitiendo
la reabsorción del paracetamol original o un metabolismo posterior de los conjugados de sulfato, con glucurónido o con ambos. Con el tratamiento
antibiótico, hay una disminución en el conjugado de sulfato de paracetamol (Malfatti et al., 2020). Además, las bacterias intestinales producen un
metabolito del metabolismo de aminoácidos aromáticos, el p­cresol, que compite con el paracetamol para unirse a la sulfotransferasa (SULT1A1). Los
individuos que producen altos niveles de p­cresol tienen menor capacidad para sulfonatar el paracetamol (Clayton et al., 2009). Por lo tanto, el
tratamiento antibiótico y las altas concentraciones del metabolito bacteriano derivado de p­cresol podrían predisponer a los individuos a los efectos
hepatotóxicos del paracetamol.
CIRCULACIÓN ENTEROHEPÁTICA
La circulación enterohepática se produce cuando los xenobióticos o sustancias endógenas son absorbidos a través de los enterocitos, procesados por
los hepatocitos y luego secretados en la bilis, donde son reabsorbidos por las células intestinales (fig. 6–1). La circulación enterohepática a menudo
puede ir acompañada de conjugación hepática y desconjugación intestinal. Este proceso puede ocurrir de manera continua y da como resultado un
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Microbioma
gastrointestinal
y
respuesta
a los fármacos,
Shirley
Tsunoda; Pieter
C. Dorrestein;
Rob más
Knight
uridina difosfato glucuronosiltransferasas (UTG),
que añaden
un radical de
ácidoM.
glucurónico
para hacer
un metabolito
soluble en agua que se
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excreta con mayor facilidad en orina o bilis. En el intestino, los metabolitos pueden encontrar enzimas bacterianas como la β­glucuronidasa, β­
glucosidasa, demetilasa, la desulfatasa y otras enzimas con actividad inversa de fase II que desdoblan las moléculas pequeñas como los glucurónidos,
CIRCULACIÓN ENTEROHEPÁTICA
UNIVERSIDAD DE EL SALVADOR ­ UES
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La circulación enterohepática se produce cuando los xenobióticos o sustancias endógenas son absorbidos a través de los enterocitos, procesados por
los hepatocitos y luego secretados en la bilis, donde son reabsorbidos por las células intestinales (fig. 6–1). La circulación enterohepática a menudo
puede ir acompañada de conjugación hepática y desconjugación intestinal. Este proceso puede ocurrir de manera continua y da como resultado un
tiempo medio de permanencia prolongado para el sustrato. Muchos fármacos y sustancias endógenas son modificados por enzimas de fase II como la
uridina difosfato glucuronosiltransferasas (UTG), que añaden un radical de ácido glucurónico para hacer un metabolito más soluble en agua que se
excreta con mayor facilidad en orina o bilis. En el intestino, los metabolitos pueden encontrar enzimas bacterianas como la β­glucuronidasa, β­
glucosidasa, demetilasa, la desulfatasa y otras enzimas con actividad inversa de fase II que desdoblan las moléculas pequeñas como los glucurónidos,
lo que hace que el compuesto original esté disponible de nuevo para su reabsorción.
Las β­glucuronidasas se encuentran entre las enzimas microbianas derivadas del intestino más estudiadas. Además de separar los radicales
glucurónido de los fármacos, también descomponen carbohidratos complejos, proporcionando así una fuente de carbono para el crecimiento
bacteriano (Dabek et al., 2008). Los miembros de múltiples filos bacterianos pueden catalizar la hidrólisis de enlaces glucosídicos, incluyendo
Actinobacteria, Bacteroidetes, Firmicutes y Proteobacterias (Pellock y Redinbo, 2017), destacando la distribución filogenética generalizada de este
proceso. Cabe destacar que las β­glucuronidasas de bacterias oportunistas (a diferencia de las bacterias comensales) pueden desempeñar una
función más importante en la toxicidad inducida por xenobióticos (Dashnyam et al., 2018). Un ejemplo clínicamente importante de la función de las β­
glucuronidasas ocurre con el irinotecán, un quimioterapéutico utilizado en el tratamiento del cáncer colorrectal. La diarrea intensa es un efecto
adverso que limita la dosis y que ocurre en casi 50% de los pacientes. El irinotecán es un profármaco metabolizado al compuesto activo SN­38, que
luego sufre glucuronidación en el hígado por acción de UGT1A1. Más tarde, el glucurónido de SN­38 inactivo es secretado en la bilis y reabsorbido por
las células intestinales a través de la circulación enterohepática. El glucurónido de SN­38 se somete a la acción de las β­glucuronidasas bacterianas
intestinales que eliminan el glucurónido, produciendo SN­38 activo. Los niveles intestinales altos de SN­38 causan la diarrea (figs. 5–8 y 5–9). Los
inhibidores de las β­glucuronidasas como la ciprofloxacina pueden ejercer un efecto protector de la diarrea (Kodawara et al., 2016; Wallace et al.,
2010). Otros fármacos metabolizados por las β­glucuronidasas incluyen morfina, estrógenos, ibuprofeno y midazolam. La actividad de las β­
glucuronidasas puede variar con el sexo, la edad y las especies bacterianas (Elmassry et al., 2021); esa variación puede tener consecuencias en la
biodisponibilidad de los fármacos.
Los ácidos biliares, producidos en el hígado, median una significativa interferencia cruzada entre el intestino y el hígado. Los ácidos biliares,
modificados por bacterias en el intestino, son importantes moléculas de señalización que regulan el metabolismo del hospedador. Los
microorganismos pueden modificar los ácidos biliares derivados del hospedador (Gentry EC et al., 2021; Foley et al., 2019). Los microorganismos de
varios géneros, lo que incluye Lactobacillus, Clostridium y Bifidobacterium, pueblan la porción proximal del intestino delgado, donde desconjugan
taurina y glicina mediante la acción de las hidrolasas dedicadas. Otras modificaciones microcatalizadas de los ácidos biliares incluyen la
deshidroxilación (p. ej., la conversión del ácido cólico en ácido desoxicólico) y la epimerización y oxidación de alcoholes. En 2020, se descubrió que la
microbiota también tiene la capacidad de desconjugar diferentes aminoácidos, ampliando enormemente la diversidad de ácidos biliares producidos
por microorganismos (Gentry et al., 2021; Guzior y Quinn, 2021).
Los ácidos biliares logran sus propiedades de señalización al unirse a receptores nucleares como el receptor X de farnesoide (FXR, farnesoid X
receptor) y TGR5, un receptor acoplado a proteínas G activado por ácidos biliares (Pols et al., 2011). La unión de los ácidos biliares a FXR modula CYP3A
(Gner
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