Manual de Procedimientos Unidad Medicina Transfusional

Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
1 de 81
Manual de Procedimientos
de Unidad de Medicina
Transfusional
Elaborado por:
Paulina Garrido
Tecnólogo Médico
Yuliza Olivero
Tecnólogo Médico
Visado por:
Aprobado por:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
2 de 81
ÍNDICE
1.
INTRODUCCIÓN ...................................................................................... 5
2.
OBJETIVO ............................................................................................... 5
3.
ALCANCE ................................................................................................ 5
4.
RESPONSABLE ........................................................................................ 5
5.
DEFINICIONES ....................................................................................... 6
6.
DESARROLLO .......................................................................................... 7
6.1. TOMA DE MUESTRAS UNIDAD DE MEDICINA TRANSFUSIONAL ................. 7
6.2. DETERMINACION DE GRUPO SANGUINEO ABO/RH EN ADULTO ................ 8
6.2.1. GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH ADULTO EN GEL ....................................... 8
6.2.2. GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH ADULTO EN TUBO .................................. 12
6.3. DETERMINACION DE GRUPO SANGUINEO ABO/RH EN RECIEN NACIDO . 14
6.3.1. GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH RECIEN NACIDO CON PRUEBA DE
ANTIGLOBULINA DIRECTA (TCD) EN GEL ...................................................... 14
6.3.2. GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH RECIEN NACIDO EN TUBO ...................... 18
6.4. DETERMINACIÓN VARIANTE D DÉBIL (Du) ............................................. 19
6.4.1. DETERMINACIÓN VARIANTE D DÉBIL (Du) EN GEL .............................. 19
6.4.2. DETERMINACIÓN VARIANTE D DÉBIL (Du) EN TUBO ........................... 21
6.5. TEST DE COOMBS DIRECTO (TCD) .......................................................... 23
6.5.1. TEST DE COOMBS DIRECTO (TCD) EN GEL ........................................... 23
6.5.2. TEST DE COOMBS DIRECTO (TCD) EN TUBO ......................................... 24
6.6. TEST DE COOMBS INDIRECTO (TCI) EN GEL ........................................... 26
6.7. PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD .............................................................. 28
6.7.1. PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD EN GEL ............................................... 28
6.7.2. PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD EN TUBO ............................................ 31
6.8. CONTROL DE CALIDAD INTERNO ............................................................ 32
6.9. PROTOCOLO DE INGRESO Y DESPACHO DE SOLICITUDES DE
TRANSFUSIÓN ............................................................................................... 34
6.9.1. INGRESO DE SOLICITUD DE TRANSFUSIÓN EN PROGRAMA E-DELPHYN
...................................................................................................................... 35
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
3 de 81
6.9.2. REGISTRO DE GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH Y DETECCIÓN DE
ANTICUERPOS IRREGULARES PARA PACIENTES CON SOLICITUD DE
TRANFUSIÓN EN PROGRAMA E-DELPHYN ...................................................... 38
6.9.3. REGISTRO DE PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD EN PROGRAMA EDELPHYN ....................................................................................................... 41
6.9.4. REGISTRO DE PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD EN SISTEMA
INFORMATICO DEL LABORATORIO INFINITY ................................................ 44
6.9.5. REGISTRO DE ENVÍO DE HEMOCOMPONENTES PARA SER
TRANSFUNDIDOS EN PROGRAMA E-DELPHYN ............................................... 45
6.9.6. CONFIRMACIÓN DE TRANFUSIÓN DE HEMOCOMPONENTES EN
PROGRAMA E-DELPHYN ................................................................................. 49
6.10. PROCEDIMIENTOS RELACIONADOS CON LA TRANSFUSION .................. 51
6.10.1. CONTROL A,B,O Y Rh PRE-TRANSFUSIONAL EN SALA ........................ 51
6.10.2. CHEQUEO PERSONAL DE ENFERMERÍA ............................................... 52
6.10.3. CONSIDERACIONES GENERALES DURANTE LA ADMINISTRACIÓN DE
UN HEMOCOMPONENTE ................................................................................. 53
6.10.4. FINALIZACIÓN DE LA TRANSFUSIÓN ................................................. 54
6.11. GESTION STOCK DE HEMOCOMPONENTES ............................................ 55
6.11.1. SOLICITUD DE HEMOCOMPONENTES EN PROGRAMA E-DELPHYN ...... 55
6.11.2. RECEPCIÓN DE HEMOCOMPONENTES EN PROGRAMA E-DELPHYN ...... 59
6.11.3. CONFIRMACIÓN DE GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH DE UNIDADES DE
GLÓBULOS ROJOS .......................................................................................... 64
6.12. ELIMINACIÓN DE HEMOCOMPONENTES NO APTOS PARA TRANSFUSIÓN
...................................................................................................................... 67
6.12.1. CRITERIOS PARA DEFINIR PRODUCTOS NO APTOS PARA
TRANSFUSIÓN ............................................................................................... 69
6.13. CONTROL DE TEMPERATURA DE ALMACENAMIENTO DE
HEMOCOMPONENTES ..................................................................................... 71
7.
BIBLIOGRAFÍA ..................................................................................... 71
8.
ANEXOS ................................................................................................ 72
Anexo 1: Planilla de registro de Estudio inmunohematológico. ...................... 72
Anexo 2: Planilla de registro Estudios de Compatibilidad. ............................. 73
Anexo 3: Planilla de registro de controles inmunohematología. .................... 74
Anexo 4: Solicitudes de transfusión. .............................................................. 75
Anexo 5: Protocolo de Reacciones Adversas Transfusionales. ....................... 77
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
4 de 81
Anexo 6: Planilla de registro de Temperatura de transporte de los
componentes sanguíneos. ............................................................................. 78
Anexo 7: Planilla de registro de eliminación de componentes sanguíneos. .... 79
Anexo 8: Planilla de registro de temperatura de equipos. ............................. 80
9.
INDICADOR A EVALUAR ....................................................................... 81
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
5 de 81
1. INTRODUCCIÓN
La Unidad de Medicina Transfusional (UMT), es una Unidad de Apoyo Clínico
Hospitalario, la cual debe asegurar que sus actividades se realicen dentro de los
protocolos establecidos, para asegurar una atención de calidad y oportuna a los usuarios.
Además, debe cumplir con los requerimientos de los diferentes servicios entorno a la
terapia transfusional de forma segura.
2. OBJETIVO
Estandarizar los procesos técnicos y administrativos llevados a cabo dentro de la
unidad.
Describir las técnicas inmunohematológicas realizadas tanto a los pacientes que se
realizan exámenes de rutina, como a aquellos pacientes que se someterán a terapia
transfusional.
3. ALCANCE
Unidad de Medicina Transfusional, Hospital Pitrufquén.
4. RESPONSABLE
Tecnólogo Médico de Unidad de Medicina Transfusional: Responsable de realizar
todas las técnicas y procedimientos descritos en este manual.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
6 de 81
5. DEFINICIONES
Almacenamiento: Sistema que permite guardar por un período que corresponde a la
vida media de un producto sanguíneo en condiciones adecuadas a cada uno de ellos.
Hemocomponente o Componente sanguíneo: Constituyente terapéutico de la
sangre (glóbulos rojos, leucocitos, plaquetas, plasma, crioprecipitados) que se puede
preparar mediante la centrifugación, filtración, congelación y descongelación, de acuerdo
a un procedimiento validado.
Reacción adversa a la transfusión (RAT): Respuesta inesperada del paciente en
relación con la transfusión de sangre o de sus componentes. Se pueden agrupar en tres
categorías: Leve, Moderadamente severa y Riesgo Vital según gravedad de síntomas y
signos.
UMT: Unidad de Medicina Transfusional
Stock: número total de unidades de componentes sanguíneos listos para su uso,
almacenados en condiciones adecuadas cada uno de ellos.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
7 de 81
6. DESARROLLO
6.1.TOMA DE MUESTRAS UNIDAD DE MEDICINA TRANSFUSIONAL
Examen Solicitado
Muestra
Grupo Sanguíneo ABO/Rh
Tubo tapa lila (con anticoagulante EDTA)
Test de Coombs Directo
Test de Coombs Indirecto
Pruebas de Compatibilidad
Adulto
Pediátrico
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
8 de 81
6.2.DETERMINACION DE GRUPO SANGUINEO ABO/RH EN ADULTO
6.2.1.GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH ADULTO EN GEL
La determinación de Grupo Sanguíneo ABO/Rh en Adulto, se realiza mediante
Microtécnica de aglutinación en gel utilizando
la tarjeta “ID-Card ABO/D + Reverse
Grouping”, la cual permite realizar clasificación directa o hemática, por medio de los
sueros anti-A y Anti-B, y clasificación inversa o sérica, empleando hematíes reactivos
con especificidad para detectar presencia o ausencia de isoaglutininas anti-A y anti-B.
La tarjeta ID-Card ABO/D + Reverse Grouping posee 6 pocillos o microtubos:
Microtubo
Microtubo
Microtubo
Microtubo
Microtubo
Microtubo
1
2
3
4
5
6
Anti suero
Anti suero
Anti suero
Control
Gel neutro
Gel neutro
anti -A1
anti-B
anti-RhD
negativo
para prueba
para prueba
inversa con
inversa con
GR A1
GR B
Reactivos adicionales:
-
ID-Diluent 1: Solución de bromelina modificada para suspensión de eritrocitos. Ó
ID-Diluent 2: Solución de LISS modificada para suspensión de eritrocitos.
-
Hematíes para Prueba inversa: ID-DiaCell A1 y B en una suspensión al 0,8%.
Otros materiales necesarios:
-
ID-Dispenser
-
Micropipetas
-
Puntas para micropipetas
-
Tubos de suspensión
-
ID-Working table
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
-
ID-Incubator 37°C
-
ID- Centrifuge
9 de 81
Procedimiento:
1.- Centrifugar muestra 5 minutos por 3500 rpm.
2.- Preparar Suspensión de eritrocitos de la muestra en estudio, con ID-Diluent en una
concentración al 5%: 500 ul de ID-Diluent + 25 ul de concentrado de eritrocitos.
3.- Identificar la tarjeta ID-Card con el número o nombre de identificación del paciente.
4.- Retirar la lámina de sellado manteniendo la ID-Tarjeta en posición vertical.
5.- Pipetear 50 ul de ID-DiaCell A1 en el microtubo 5.
6.- Pipetear 50 ul de ID-DiaCell B en el microtubo 6.
7.- Pipetear 50 ul de plasma de paciente en cada uno de los microtubos 5 y 6.
8.- Pipetear 10 o 12,5 ul de la suspensión de eritrocitos del paciente en los microtubos
1–4.
9.- Centrifugar la tarjeta ID-Card durante 10 minutos en la ID-Centrifuge.
10.- Leer y registrar las reacciones en Cuadernillo “Estudio Inmunohematológico” (Anexo
1).
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
10 de 81
Interpretación de los resultados:
Resultado Positivo: Los eritrocitos aglutinados forman una línea roja sobre la
superficie del gel o aparecen dispersos en el gel. (Fig. 1)
Resultado Negativo: Sedimento compacto de eritrocitos en el fondo del microtubo.
(Fig. 1)
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
11 de 81
Figura 1
Tabla de reacciones ABO:
Anti-A1
Anti-B
GR A1
GR B
Grupo
sanguíneo
+++ a ++++
negativo
negativo
+ a ++++
A
negativo
+++ a ++++
+ a ++++
negativo
B
+++ a ++++
+++ a ++++
negativo
negativo
AB
negativo
negativo
+ a ++++
+ a ++++
O
* Las reacciones más débiles que +++ con los antisueros Anti-A1 y Anti-B pueden indicar
subgrupos de A o de B. Para una interpretación correcta debe realizarse una prueba
completa de determinación de grupo (anti-A, anti-B, anti-AB). En presencia de antígenos
de expresión débil o muy débil la reacción puede ser negativa.
Tabla de reacciones RhD:
+++ a ++++
RhD Positivo
± a ++*
RH D débilmente Positivo
negativo*
RhD Negativo
* Las reacciones débiles, las trazas, ± o negativas, deben estar sujetas a una ampliación
del estudio para distinguir entre los tipos D parciales y D débiles mediante prueba de
antiglobulina indirecta.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
12 de 81
Importante: el microtubo ctl debe mostrar una reacción negativa. Si el ctl da positivo,
la determinación del grupo sanguíneo no es válida.
Observaciones:
1.- El control negativo (ctl) siempre debe mostrar una reacción negativa. Si el control
negativo da resultado positivo, proceder del modo siguiente:
•
Lavar inicialmente los eritrocitos con NaCl al 0,9% (o ID-Diluent 2) antes de
preparar la suspensión de eritrocitos al 5%.
2.- En el grupo inverso o grupo sérico, una incubación de al menos 10 minutos a
temperatura ambiente (18–25 ºC) antes de centrifugar, favorece la reacción y minimiza
el número de repeticiones por presencia de isoaglutininas débiles.
6.2.2.GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH ADULTO EN TUBO
Materiales necesarios:
-
Tubo Khan de vidrio
-
Suero fisiológico
-
Anti sueros: Anti-A, Anti-B, Anti-D
-
Suspensiones de eritrocitos grupo A1 y grupo B al 5%
-
Centrífuga
-
Pipetas pasteur
Procedimiento:
1.- Centrifugar muestra 5 minutos por 3500 rpm.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
13 de 81
2.- Preparar Suspensión de eritrocitos de la muestra en estudio, con Suero fisiológico en
una concentración al 5% (1 ml Suero fisiológico + 1 gota de concentrado de eritrocitos
de paciente)
3.- Identificar 5 tubos con el número o nombre de identificación del paciente. Además,
rotular de la siguiente forma:
Tubo 1
Tubo 2
Tubo 3
Tubo 4
Tubo 5
A
B
D
GR A
GR B
4.- Pipetear 1 gota de anti suero Anti-A en el tubo 1, 1 gota de anti suero Anti-B en el
tubo 2, 1 gota de anti suero Anti-D en el tubo 3.
5.- Pipetear 1 gota de suspensión de eritrocitos A1 en el tubo 4, 1 gota de suspensión
de eritrocitos B en el tubo 5.
6.- Pipetear 2 gotas de plasma de paciente en los tubos 4 y tubo 5.
7.- Pipetear 1 gota de suspensión de eritrocitos de paciente en los tubos 1, 2 y 3.
8.- Centrifugar todos los tubos a 1000 rpm por 1 min.
10.- Leer y registrar las reacciones en Cuadernillo “Estudio Inmunohematológico” (Anexo
1).
Interpretación de los resultados:
Resultado Positivo: Los eritrocitos aglutinados forman un botón en el fondo del tubo
o aparecen dispersos en el tubo.
Resultado Negativo: Suspensión homogénea de eritrocitos.
* Las reacciones débiles, las trazas, ± o negativas para el Anti-D, deben estar sujetas a
una ampliación del estudio para distinguir entre los tipos D parciales y D débiles
mediante prueba de antiglobulina indirecta.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
14 de 81
6.3.DETERMINACION DE GRUPO SANGUINEO ABO/RH EN RECIEN NACIDO
6.3.1.GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH RECIEN NACIDO CON PRUEBA DE
ANTIGLOBULINA DIRECTA (TCD) EN GEL
La determinación de Grupo sanguíneo ABO/Rh + TCD se realiza mediante
Microtécnica de aglutinación en gel utilizando la tarjeta “ID-Card ABO/Rh for Newborns
DVI+”.
En Recién nacidos sólo se realiza clasificación hemática o directa, ya que los anticuerpos
anti-A y anti-B aparecen después de los primeros 4 o 6 meses de vida. Además, los
antígenos A y B no están totalmente desarrollados, pudiendo no ser detectados, por lo
que la determinación de grupo sanguíneo de los recién nacidos debe confirmarse a los 2
o 4 años de edad, cuando los antígenos A y B están totalmente desarrollados.
La tarjeta ID-Card ABO/Rh for Newborns DVI+ posee 6 pocillos o microtubos:
Microtubo
Microtubo
Microtubo
Microtubo
Microtubo
Microtubo
1
2
3
4
5
6
Anti suero
Anti suero
Anti suero
Anti suero
Control
Antiglobulina
anti -A1
anti-B
anti-AB
anti RhD
negativo
humana
antiIgG+C3d
Reactivos adicionales:
-
ID-Diluent 2: Solución de LISS modificada para suspensión de eritrocitos.
Otros materiales necesarios:
-
ID-Dispenser
-
Micropipetas
-
Puntas para micropipetas
-
Tubos de suspensión
-
ID-Working table
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
-
ID-Incubator 37°C
-
ID- Centrifuge
15 de 81
Procedimiento:
1.- Centrifugar muestra 5 minutos por 3500 rpm.
2.- Preparar Suspensión de eritrocitos de la muestra en estudio, con ID-Diluent 2 en una
concentración al 0,8%: 1000 ul de ID-Diluent 2 + 10 ul de concentrado de eritrocitos.
3.- Identificar la tarjeta ID-Card con el número o nombre de identificación del paciente.
4.- Retirar la lámina de sellado manteniendo la ID-Tarjeta en posición vertical.
5.- Pipetear 50 ul de la suspensión de hematíes en los 6 microtubos de la tarjeta IDCard.
6.- Centrifugar la tarjeta ID-Card durante 10 minutos en la ID-Centrifuge.
7.- Leer y registrar las reacciones en Cuadernillo “Estudio Inmunohematológico” (Anexo
1).
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
16 de 81
Interpretación de los resultados:
Resultado Positivo: Los eritrocitos aglutinados forman una línea roja sobre la superficie
del gel o aparecen dispersos en el gel.
Resultado Negativo: Sedimento compacto de eritrocitos en el fondo del microtubo.
Tabla de reacciones ABO:
Anti-A1
Anti-B
Anti-AB
Grupo
sanguíneo
+ a ++++
negativo
+ a ++++
A
negativo
+ a ++++
+ a ++++
B
+ a ++++
+ a ++++
+ a ++++
AB
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
negativo
17 de 81
negativo
negativo
O
* En presencia de antígenos de expresión débil o muy débil la reacción puede ser
negativa.
Tabla de reacciones RhD:
+++ a ++++
RhD Positivo
± a ++*
RH D débilmente Positivo
negativo*
RhD Negativo
* Las reacciones débiles, las trazas, ± o negativas, deben estar sujetas a una ampliación
del estudio para distinguir entre los tipos D parciales y D débiles mediante prueba de
antiglobulina indirecta.
Importante: el microtubo ctl debe mostrar una reacción negativa. Si el ctl da positivo,
la determinación del grupo sanguíneo no es válida.
Observaciones:
1.- El control negativo (ctl) siempre debe mostrar una reacción negativa. Si el control
negativo da resultado positivo, proceder del modo siguiente:
•
Lavar un mínimo de 3 veces los eritrocitos con NaCl al 0,9% (o ID-Diluent 2)
antes de preparar la suspensión de eritrocitos al 0,8%.
2.- Si el control ctl permenece todavía positivo, no se puede asegurar la interpretación
de los resultados del grupo sanguíneo ABO y RhD y será necesario ampliar el estudio.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
18 de 81
6.3.2.GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH RECIEN NACIDO EN TUBO
Materiales necesarios:
-
Tubo Khan de vidrio
-
Suero fisiológico
-
Anti sueros: Anti-A, Anti-B, Anti-AB y Anti-D
-
Centrífuga
-
Pipetas pasteur
Procedimiento:
1.- Centrifugar muestra 5 minutos por 3500 rpm.
2.- Lavar un volumen de concentrado de eritrocitos con suero fisiológico, 3 veces.
3.- Preparar suspensión de los eritrocitos lavados, con suero fisiológico en una
concentración al 5% (1 ml de suero fisiológico + 1 gota de eritrocitos lavados).
4.- Identificar 4 tubos con el número o nombre de identificación del paciente. Además,
rotular de la siguiente forma:
Tubo 1
Tubo 2
Tubo 3
Tubo 4
A
B
AB
D
5.- Pipetear 1 gota de anti suero Anti-A en el tubo 1, 1 gota de anti suero Anti-B en el
tubo 2, 1 gota de anti suero Anti-AB en el tubo 3 y 1 gota de anti suero Anti-D en el
tubo 4.
6.- Pipetear 1 gota de suspensión de eritrocitos de paciente en los tubos 1, 2, 3 y 4.
7.- Centrifugar todos los tubos a 1000 rpm por 1 min.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
19 de 81
8.- Leer y registrar las reacciones en Cuadernillo “Estudio Inmunohematológico” (Anexo
1).
Interpretación de los resultados:
Resultado Positivo: Los eritrocitos aglutinados forman un botón en el fondo del tubo
o aparecen dispersos en el tubo.
Resultado Negativo: Suspensión homogénea de eritrocitos.
* Las reacciones débiles, las trazas, ± o negativas para el Anti-D, deben estar sujetas a
una ampliación del estudio para distinguir entre los tipos D parciales y D débiles
mediante prueba de antiglobulina indirecta.
6.4.DETERMINACIÓN VARIANTE D DÉBIL (Du)
6.4.1.DETERMINACIÓN VARIANTE D DÉBIL (Du) EN GEL
La determinación de la variante D débil se realiza mediante Microtécnica de
aglutinación en gel utilizando la tarjeta “LISS/Coombs”, en casos de que obtengan
reacciones débiles, trazas, ± o negativas, para el anti RhD.
Los microtubos presentes en el gel contienen el reactivo antiglobulina humana (AHG)
poliespecífico, el cual permite detectar la presencia de anticuerpos anti antígeno RhD
presentes en la superficie de los eritrocitos, sensibilizados in vitro luego de una
incubación de 15 minutos a 37°C con antisuero comercial anti-RhD.
Reactivos adicionales:
-
ID-Diluent 2: Solución de LISS modificada para suspensión de eritrocitos.
Código
Versión
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
-
Primera
20 de 81
Anti suero anti D (IgG/IgM)
Otros materiales necesarios:
-
ID-Dispenser
-
Micropipetas
-
Puntas para micropipetas
-
Tubos de suspensión
-
ID-Working table
-
ID-Incubator 37°C
-
ID- Centrifuge
Procedimiento:
1.- Centrifugar muestra 5 minutos por 3500 rpm.
2.- Preparar Suspensión de eritrocitos de la muestra en estudio, con ID-Diluent 2 en una
concentración al 0,8%: 1000 ul de ID-Diluent 2 + 10 ul de concentrado de eritrocitos.
3.- Identificar el microtubo a utilizar de la tarjeta ID-Card con el número o nombre de
identificación del paciente.
4.- Retirar la lámina de sellado del microtubo que se va a utilizar, manteniendo la IDTarjeta en posición vertical.
5.- Pipetear 50 ul de la suspensión de eritrocitos en el microtubo correspondiente.
6.- Pipetear 25 ul de Anti suero anti D en el microtubo correspondiente.
7.- Incubar la tarjeta ID-Card por 15 minutos a 37°C en el ID-Incubator.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
21 de 81
8.- Centrifugar la tarjeta ID-Card durante 10 minutos en la ID-Centrifuge.
9.- Leer y registrar las reacciones en Cuadernillo “Estudio Inmunohematológico” (Anexo
1).
Interpretación de los resultados:
Resultado Positivo: Los eritrocitos aglutinados forman una línea roja sobre la superficie
del gel o aparecen dispersos en el gel.
Resultado Negativo: Sedimento compacto de eritrocitos en el fondo del microtubo
6.4.2.DETERMINACIÓN VARIANTE D DÉBIL (Du) EN TUBO
Materiales necesarios:
-
Tubo Khan de vidrio
-
Suero fisiológico
-
Anti Suero Anti-D
-
Solución LISS (Gamma LO-ION)
-
Antisuero anti globulina humana
-
Centrífuga
-
Pipetas Pasteur
-
Baño termorregulable a 37°C
Procedimiento:
1.- Centrifugar muestra 5 minutos por 3500 rpm.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
22 de 81
2.- Preparar suspensión de eritrocitos de la muestra en estudio, con suero fisiológico en
una concentración al 5% (1 ml Suero fisiológico + 1 gota de concentrado de eritrocitos
de paciente).
3.- Pipetear en tubo de vidrio: 1 gota de anti suero Anti-D + 1 gota de suspensión de
eritrocitos del paciente + 1 gota de Solución LISS.
4.- Incubar tubo en baño termorregulable a 37°C por 15 min.
5.- Lavar tubo 3 veces con suero fisiológico. Centrifugando a 3500 rpm por 5 min.
6.- Pipetear 1 gota de anti suero anti globulina humana en el tubo.
7.- Centrifugar todos los tubos a 1000 rpm por 1 min.
8.- Leer y registrar las reacciones en Cuadernillo “Estudio Inmunohematológico” (Anexo
1).
Interpretación de los resultados:
Resultado Positivo: Los eritrocitos aglutinados forman un botón en el fondo del tubo
o aparecen dispersos en el tubo.
Resultado Negativo: Suspensión homogénea de eritrocitos.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
23 de 81
6.5.TEST DE COOMBS DIRECTO (TCD)
6.5.1.TEST DE COOMBS DIRECTO (TCD) EN GEL
El test de Coombs Directo se realiza mediante Microtécnica de aglutinación en gel
utilizando la tarjeta “LISS/Coombs”. Los microtubos presentes en el gel contienen el
reactivo antiglobulina humana (AHG) poliespecífico, el cual detecta la presencia de IgG
y/o C3d presentes en la superficie de los eritrocitos, sensibilizados in vivo.
Reactivos adicionales:
-
ID-Diluent 2: Solución de LISS modificada para suspensión de eritrocitos.
Otros materiales necesarios:
-
ID-Dispenser
-
Micropipetas
-
Puntas para micropipetas
-
Tubos de suspensión
-
ID-Working table
-
ID- Centrifuge
Procedimiento:
1.- Centrifugar muestra 5 minutos por 3500 rpm.
2.- Preparar Suspensión de eritrocitos de la muestra en estudio, con ID-Diluent 2 en una
concentración al 0,8%: 1000 ul de ID-Diluent 2 + 10 ul de concentrado de eritrocitos.
3.- Identificar la tarjeta ID-Card con el número o nombre de identificación del paciente.
4.- Retirar la lámina de sellado manteniendo la ID-Tarjeta en posición vertical.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
24 de 81
5.- Pipetear 50 ul de la suspensión de eritrocitos en el microtubo correspondiente.
6.- Centrifugar la tarjeta ID-Card durante 10 minutos en la ID-Centrifuge.
7.- Leer y registrar las reacciones en Cuadernillo “Estudio Inmunohematológico” (Anexo
1).
Interpretación de los resultados:
Resultado Negativo: Sedimento compacto de eritrocitos en el fondo del microtubo.
Resultado Positivo: Los eritrocitos aglutinados forman una línea roja sobre la
superficie del gel o aparecen dispersos en el gel.
Reacciones:
Reacción negativa: Indica la ausencia de anticuerpos IgG o C3d detectables en los
eritrocitos. Informar como TCD negativo.
Reacción positiva: (± a ++++): Indica que los eritrocitos del paciente están
sensibilizados, recubiertos con anticuerpos IgG, C3d o ambos. Informar como TCD
positivo.
6.5.2.TEST DE COOMBS DIRECTO (TCD) EN TUBO
Materiales necesarios:
-
Tubo Khan de vidrio
-
Suero fisiológico
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
25 de 81
-
Solución LISS (Gamma LO-ION)
-
Antisuero anti globulina humana
-
Centrífuga
-
Pipetas Pasteur
-
Baño termorregulable a 37°C
Procedimiento:
1.- Centrifugar muestra 5 minutos por 3500 rpm.
2.- Si la muestra corresponde a un Recién Nacido, se debe lavar un volumen de
concentrado eritrocitos, 3 veces con Suero Fisiológico, centrifugando 3 min. A 3500 rpm.
3.- Preparar suspensión de eritrocitos de la muestra en estudio, con suero fisiológico en
una concentración al 5% (1 ml Suero fisiológico + 1 gota de concentrado de eritrocitos
de paciente).
4.- Pipetear en tubo de vidrio: 1 gota de suspensión de eritrocitos del paciente + 1 gota
de anti suero anti globulina humana.
5.- Centrifugar todos los tubos a 1000 rpm por 1 min.
6.- Leer y registrar las reacciones en Cuadernillo “Estudio Inmunohematológico” (Anexo
1).
Interpretación de los resultados:
Resultado Positivo: Los eritrocitos aglutinados forman un botón en el fondo del tubo
o aparecen dispersos en el tubo.
Resultado Negativo: Suspensión homogénea de eritrocitos.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
26 de 81
6.6.TEST DE COOMBS INDIRECTO (TCI) EN GEL
El Test de Coombs Indirecto (TCI) se realiza mediante Microtécnica de aglutinación
en gel utilizando la tarjeta “LISS/Coombs”, para la detección de anticuerpos irregulares
presentes en el plasma del paciente.
Se utilizan eritrocitos diana de origen comercial, los cuales tiene una dotación antigénica
adecuada. Se incuba el plasma en estudio con los eritrocitos diana por 15 minutos a
37°C.
Los microtubos presentes en el gel contienen el reactivo antiglobulina humana (AHG)
poliespecífico, el cual permite detectar la presencia de aloanticuerpos de la muestra en
estudio, presentes en la superficie de los eritrocitos diana sensibilizados in vitro.
Reactivos adicionales:
-
ID-Diluent 2: Solución de LISS modificada para suspensión de eritrocitos.
-
ID-DiaCell I y II: Eritrocitos diana de origen comercial.
Otros materiales necesarios:
-
ID-Dispenser
-
Micropipetas
-
Puntas para micropipetas
-
Tubos de suspensión
-
ID-Working table
-
ID-Incubator 37°C
-
ID- Centrifuge
Procedimiento:
1.- Centrifugar muestra 5 minutos por 3500 rpm.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
27 de 81
2.- Identificar los microtubos de tarjeta ID-Card que se van a utilizar con el número o
nombre de identificación del paciente. Rotular un primer microtubo con “I”, un segundo
microtubo con “II” y un tercer microtubo como “Autocontrol”.
3.- Retirar la lámina de sellado de los microtubos a utilizar, manteniendo la ID-Tarjeta
en posición vertical.
4.- Pipetear 50 ul de ID-DiaCell I en el primer microtubo, pipetear 50 ul de ID-DiaCell II
en el segundo microtubo y pipetear 50 ul de suspensión de eritrocitos de paciente al
0,8% (1000 ul de ID-Diluent 2 + 10 ul de concentrado de eritrocitos de paciente) en el
microtubo autocontrol.
6.- Pipetear 25 ul de plasma de paciente en los microtubos I, II y autocontrol.
7.- Incubar la tarjeta ID-Card por 15 minutos a 37°C en el ID-Incubator.
8.- Centrifugar la tarjeta ID-Card durante 10 minutos en la ID-Centrifuge.
9.- Leer y registrar las reacciones en Cuadernillo “Estudio Inmunohematológico” (Anexo
1).
Interpretación de los resultados:
Resultado Negativo: Sedimento compacto de eritrocitos en el fondo del microtubo
Resultado Positivo: Los eritrocitos aglutinados forman una línea roja sobre la superficie
del gel o aparecen dispersos en el gel.
Reacciones:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
28 de 81
DiaCell I
DiaCell II
Autocontrol
Interpretación
negativo
negativo
negativo
TCI negativo
± a ++++
negativo
negativo
TCI positivo
negativo
± a ++++
negativo
TCI positivo
± a ++++
± a ++++
negativo
TCI positivo
± a ++++*
± a ++++*
± a ++++*
Reacción no
específica
* Si uno o ambos panel de eritrocitos diana presenta una reacción positiva más intensa
que el autocontrol, deben realizarse pruebas adicionales en la muestra del paciente para
estudiar la posibilidad de un aloanticuerpo subyacente.
6.7. PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD
6.7.1. PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD EN GEL
Las pruebas de compatibilidad se realizan mediante Microtécnica de aglutinación
en gel utilizando la tarjeta “LISS/Coombs”, para la detección de anticuerpos irregulares
presentes en el plasma del paciente receptor que pudieran reaccionar contra los
eritrocitos del donante.
Se incuba el plasma del paciente receptor con los eritrocitos del donante por 15 minutos
a 37°C.
Los microtubos presentes en el gel contienen el reactivo antiglobulina humana (AHG)
poliespecífico, el cual permite detectar la presencia de aloanticuerpos de la muestra en
estudio, presentes en la superficie de los eritrocitos del donante sensibilizados in vitro.
Reactivos adicionales:
-
ID-Diluent 2: Solución de LISS modificada para suspensión de eritrocitos.
Otros materiales necesarios:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
-
ID-Dispenser
-
Micropipetas
-
Puntas para micropipetas
-
Tubos de suspensión
-
ID-Working table
-
ID-Incubator 37°C
-
ID- Centrifuge
29 de 81
Procedimiento:
1.- Centrifugar muestra del paciente receptor 5 minutos por 3500 rpm.
2.- Identificar los microtubos de tarjeta ID-Card que se van a utilizar con el número o
nombre de identificación del paciente, rotular cada microtubo con el número de la bolsa
de glóbulos rojos a estudiar, además un microtubo como “autocontrol”.
3.- Retirar la lámina de sellado de los microtubos a utilizar, manteniendo la ID-Tarjeta
en posición vertical.
4.- Preparar una suspensión de los eritrocitos del donante al 0,8%: 1000 ul de ID-Diluent
2 + 20 ul de sangre de la tubuladura de la bolsa a transfundir.
5.- Pipetear 50 ul de suspensión de los eritrocitos del donante en el microtubo
correspondiente.
6.- Pipetear 50 ul de suspensión de eritrocitos de paciente receptor al 0,8% (1000 ul de
ID-Diluent 2 + 10 ul de concentrado de eritrocitos de paciente) en el microtubo
autocontrol.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
30 de 81
7.- Pipetear 25 ul de plasma de paciente en el microtubo del donante y en el microtubo
del autocontrol.
8.- Incubar la tarjeta ID-Card por 15 minutos a 37°C en el ID-Incubator.
9.- Centrifugar la tarjeta ID-Card durante 10 minutos en la ID-Centrifuge.
10.- Leer y registrar las reacciones en Cuadernillo “Estudios de Compatibilidad” (Anexo
2).
Interpretación de los resultados:
Resultado Negativo: Sedimento compacto de eritrocitos en el fondo del microtubo.
Resultado Positivo: Los eritrocitos aglutinados forman una línea roja sobre la superficie
del gel o aparecen dispersos en el gel.
Reacciones:
Reacción negativa: Indica que los glóbulos rojos del donante son compatibles con el
receptor.
Reacción positiva: Indica incompatibilidad de los glóbulos rojos del donante con el
receptor, debido a la presencia de anticuerpos dirigidos contra antígenos existentes en
los eritrocitos del donante.
Importante:
Guardar respaldo de la muestra del paciente receptor, junto con un segmento de la
tubuladura de la unidad de Glóbulos rojos compatibilizada para ser transfundida, en el
Refrigerador de respaldo de muestras de la UMT.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
31 de 81
6.7.2.PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD EN TUBO
Materiales necesarios:
-
Tubo Khan de vidrio
-
Suero fisiológico
-
Solución LISS (Gamma LO-ION)
-
Antisuero anti globulina humana
-
Centrífuga
-
Pipetas Pasteur
-
Baño termorregulable a 37°C
Procedimiento:
1.- Centrifugar muestra del paciente receptor 5 minutos por 3500 rpm.
2.- Preparar suspensión de eritrocitos de la unidad de sangre a transfundir, a partir de
la tubuladura, con suero fisiológico en una concentración al 5% (1 ml Suero fisiológico
+ 1 gota eritrocitos de la unidad de sangre).
3.- Pipetear en tubo de vidrio: 1 gota de suspensión de eritrocitos de la unidad de sangre
+ 1 gota de plasma de paciente receptor + 1 gota de Solución LISS.
4.- En un segundo tubo pipetear: 1 gota de suspensión de eritrocitos de paciente
receptor al 5% (1 ml suero fisiológico + 1 gota de concentrado de eritrocitos) + 1 gota
de plasma del paciente receptor + 1 gota de Solución LISS. Este tubo será el autocontrol.
5.- Incubar los tubos en baño termorregulable a 37°C por 15 min.
6.- Lavar tubo 3 veces con suero fisiológico. Centrifugando a 3500 rpm por 5 min.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
32 de 81
7.- Pipetear 1 gota de anti suero anti globulina humana en cada tubo.
8.- Centrifugar todos los tubos a 1000 rpm por 1 min.
9.- Leer y registrar las reacciones en Cuadernillo “Estudios de Compatibilidad” (Anexo
2).
Interpretación de los resultados:
Resultado Positivo: Los eritrocitos aglutinados forman un botón en el fondo del tubo
o aparecen dispersos en el tubo.
Resultado Negativo: Suspensión homogénea de eritrocitos.
Importante:
Guardar respaldo de la muestra del paciente receptor, junto con un segmento de la
tubuladura de la unidad de Glóbulos rojos compatibilizada para ser transfundida, en el
Refrigerador N°1 de UMT.
6.8.CONTROL DE CALIDAD INTERNO
El control de calidad interno se realiza a las tarjetas de geles:
-
ID-Card ABO/D + Reverse Grouping
-
ID-Card ABO/Rh for Newborns DVI+
-
LISS/Coombs
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
33 de 81
Este control se lleva a cabo cada vez que se abre una nueva caja, de tal manera que se
asegure el correcto funcionamiento de los geles y los procesos realizados por el
Tecnólogo Médico.
Materiales necesarios:
-
ID-Diluent 2: Solución de LISS modificada para suspensión de eritrocitos
-
DiaMed Basic QC: Control 1 y Control 2
-
ID-Dispenser
-
Micropipetas
-
Puntas para micropipetas
-
Tubos de suspensión
-
ID-Working table
-
ID-Incubator 37°C
-
ID- Centrifuge
Procedimiento:
1.- Homogenizar controles 1 y 2. Centrifugar un volumen de cada control a 3500 rpm
por 5 min.
2.- Procesar el material control 1 y 2 de la misma forma que las muestras de paciente,
según el gel a controlar.
3.- Registrar resultados planilla de registro de “CONTROLES INMUNOHEMATOLOGÍA”
(Anexo 3), que se encuentra en el archivador de “REGISTROS UNIDAD DE MEDICINA
TRANSFUSIONAL”.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
34 de 81
6.9.PROTOCOLO DE INGRESO Y DESPACHO DE SOLICITUDES DE
TRANSFUSIÓN
Al momento de recibir el formulario de “Solicitud de Transfusión” (Anexo 4), se deben
corroborar que tenga todos los datos mínimos requeridos:
-
Nombre paciente
-
RUT paciente
-
Fecha
-
Hora
-
Servicio
-
Edad
-
Diagnóstico
Junto con los motivos que justifiquen la transfusión; hemoglobina, hematocrito,
Recuento plaquetas, Tiempo de Protrombina (TP) y/o Tiempo de tromboplastina parcial
activada (TTPA). Y si corresponde a:
-
Hemorragia Digestiva
-
Pérdida de volemia >20%
-
Anemia Crónica sintomática sin rendimiento a terapias específicas
-
Anemia preoperatoria sintomática
-
Anemia aguda sintomática
-
Compromiso Cardio respiratorio
Además, si el paciente tuvo transfusiones previas y si en alguna de estas ha tenido
reacciones adversas.
En “Producto y Cantidad”, el Médico Solicitante debe especificar qué hemocomponente
es el que solicita y la cantidad respectiva. Y en el caso de Glóbulos rojos, debe indicar el
nivel de prioridad de la solicitud de transfusión, para que el Tecnólogo Médico a cargo
de UMT cumpla con el tiempo de respuesta solicitado:
Transfusión Inmediata sin pruebas de compatibilidad: Dentro de 10 minutos.
Transfusión Inmediata con pruebas de compatibilidad: Dentro de 1 hora.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
35 de 81
Transfusión de Urgencia: Dentro de 4 horas.
Transfusión de Rutina: Dentro de las 24 hrs.
Transfusión Programada: Médico tratante indica fecha y hora de transfusión.
Se debe ingresar la solicitud en el Sistema informático del Laboratorio “Infinity”, como
“Pruebas de Compatibilidad” y luego se debe ingresar en el programa de Medicina
Transfusional “E-Delphyn”.
El Tecnólogo Médico de UMT está facultado para rechazar una solicitud si ésta contiene
datos incompletos o incongruentes, avisando de esta situación al médico tratante,
residente o de turno correspondiente.
Consideraciones especiales:
* En caso de solicitud de transfusión de extrema urgencia, debido a que el paciente se
encuentra en riesgo vital, pueden ser solicitadas vía telefónica, y se despachará lo
solicitado sin orden de transfusión y sin muestra para pruebas de compatibilidad, previa
información y autorización del médico tratante.
Después de controlada la emergencia, es obligación solicitar la orden de transfusión por
escrito al médico tratante y también obtener una muestra para el estudio completo del
receptor.
6.9.1.INGRESO DE SOLICITUD DE TRANSFUSIÓN EN PROGRAMA EDELPHYN
Para ingresar una solicitud de transfusión en el programa E-Delphyn se deben
seguir los siguientes pasos:
1.- Iniciar sesión.
2.- Ir a “Pacientes” → Registro de peticiones:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
36 de 81
3.- Ingresar RUT del paciente en el recuadro “Número”:
4.- Si el paciente ha sido transfundido previamente, aparecen sus datos completos junto
con el grupo sanguíneo. Si el paciente no tiene transfusiones previas, no aparece registro
de grupo sanguíneo. Seleccionar el ícono “Añadir” que se encuentra en la parte inferior
de la pantalla y se ingresa a la siguiente ventana:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
37 de 81
5.- Completar todos los datos solicitados en la primera parte: RUT, Apellidos, Nombre,
Fecha de nacimiento, Edad, Sexo. En la segunda parte completar sólo lo siguiente:
- Origen:
➢
Hospitalizado → HP-HOS
➢
Urgencia → HP-UR
- Servicio
- Diagnóstico
- Motivo
- Prioridad
- Componente sanguíneo
- Número de Unidades
- Transfusiones previas
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
38 de 81
6.- Seleccionar el ícono “Grabar”, que se encuentra en la parte inferior de la pantalla.
Se despliega la siguiente ventana:
7.- Seleccionar el ícono “Numero” para que el programa le asigne un número de muestra
correlativo. Completar los siguientes datos:
- Fecha muestra
- Hora
Y seleccionar el ícono “Grabar”.
6.9.2.REGISTRO DE GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH Y DETECCIÓN DE
ANTICUERPOS IRREGULARES PARA PACIENTES CON SOLICITUD DE
TRANFUSIÓN EN PROGRAMA E-DELPHYN
Una vez que la solicitud de transfusión fue registrada en el programa E-Delphyn, se
debe ingresar el Grupo Sanguíneo ABO/Rh y Detección de Anticuerpos irregulares, de la
siguiente forma:
1.- Ir al menú de “Pacientes” → Laboratorio → Resultados por Muestra:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
39 de 81
2.- Seleccionar la Sección de Inmunohematología, ingresar el número de muestra
correlativo que asignó de manera automática el programa al momento del ingreso de la
solicitud de transfusión, tal como se detalla en el punto 6.9.1. de este manual,
seleccionar el ícono “Buscar”, que se encuentra en la parte inferior de la pantalla:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
40 de 81
3.- Ingresar los resultados de grupo sanguíneo ABO/Rh y detección de Anticuerpos
irregulares (DAI). Seleccionar el ícono “Grabar” y luego “Validar muestra”:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
41 de 81
6.9.3.REGISTRO DE PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD EN PROGRAMA EDELPHYN
Luego de realizar las Pruebas de Compatibilidad para el paciente receptor, se deben
ingresar en el programa E-Delphyn de la siguiente forma:
1.- Ir al Menú “Pacientes” → Reserva de Unidades:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
42 de 81
2.- Ingresar el RUT del paciente receptor, y seleccionar el ícono “Buscar”:
3.- Seleccionar el ícono “Reservar”, ubicado en la parte inferior de la pantalla:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
43 de 81
4.- Seleccionar el ícono “Añadir” que se encuentra en la parte inferior de la pantalla:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
44 de 81
5.- Completar todos los datos solicitados en la ventana siguiente y luego “Grabar”.
-
Prueba cruzada: Si
-
Técnica: Si se realizó en gel o en tubo
-
Componente sanguíneo: El código del concentrado de Glóbulos rojos es GR027
-
Unidad número: Es el número de la unidad de Glóbulos rojos
-
Resultado de la prueba: Si resultó compatible o no
6.9.4.REGISTRO DE PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD EN SISTEMA
INFORMATICO DEL LABORATORIO INFINITY
Además de registrar las pruebas de compatibilidad en el programa E-Delphyn, se
deben registrar en el sistema informático del laboratorio para validación de la solicitud
del examen “Prueba de Compatibilidad”.
Ingresar como un comentario lo siguiente:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
45 de 81
-
Tipo de hemocomponente
-
Grupo sanguíneo ABO/Rh
-
Número de hemocomponente
-
Resultado de la Prueba de Compatibilidad: Negativo o Positivo
Si no se realizan pruebas de compatibilidad como en el caso de las unidades de Plasma
Fresco Congelado o Plaquetas, sólo se ingresa:
-
Tipo de hemocomponente
-
Grupo sanguíneo ABO/Rh
-
Número de hemocomponente
6.9.5.REGISTRO DE ENVÍO DE HEMOCOMPONENTES PARA SER
TRANSFUNDIDOS EN PROGRAMA E-DELPHYN
El envío de Hemocomponentes para ser transfundidos debe ser registrado en el
programa E-Delphyn de la siguiente manera:
1.- Ir al menú de “Pacientes” → Envío de Unidades a transfundir:
2.- Ingresar el RUT del paciente a transfundir y seleccionar el ícono “Buscar”, ubicado
en la parte inferior de la pantalla:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
46 de 81
3.- Se ingresa al historial del paciente, seleccionar la Solicitud de transfusión
correspondiente, y seleccionar el ícono “Enviar”, ubicado en la parte inferior de la
pantalla:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
47 de 81
4.- En la ventana siguiente se debe seleccionar el ícono “Añadir”, para ingresar el
hemocomponente a enviar:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
48 de 81
5.- Ingresar todos los datos solicitados, y seleccionar el ícono “Grabar”:
-
Destino: Servicio al cual se enviará el hemocomponente
-
Retirada por: Iniciales del primer nombre, segundo apellido y tercer apellido del
Tecnólgo Médico que realiza el envío.
-
Componente
sanguíneo:
El
código
del
hemocomponente.
Concentrado de Glóbulos Rojos Leucorreducidos es GR027.
-
Unidad número: El número del hemocomponente.
Por
ejemplo;
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
49 de 81
6.9.6.CONFIRMACIÓN DE TRANFUSIÓN DE HEMOCOMPONENTES EN
PROGRAMA E-DELPHYN
Luego de que finaliza la administración de un hemocomponente, el Tecnólogo Médico
debe dejar registro del proceso en el programa E-Delphyn de la siguiente manera:
1.- Ingresar al Menú “Paciente” → Confirmación de la transfusión:
2.- Completar los datos solicitados; componente enviado, unidad número, volumen
transfundido, si se devolvió el envase vacío y si se devolvió el Control Transfusional.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
50 de 81
En inicio transfusión se ingresa la fecha, hora de inicio y las iniciales del Tecnólogo
Médico que instaló el hemocomponente. En final transfusión se ingresa la fecha, hora
de finalización y las iniciales del Tecnólogo Médico que retiró el hemocomponente.
Además, si hubo una reacción adversa durante la transfusión, se debe registrar en el
ícono “Incidente”.
Finalmente se selecciona el ícono “Grabar” que se encuentra en la parte inferior de la
pantalla:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
51 de 81
6.10.PROCEDIMIENTOS RELACIONADOS CON LA TRANSFUSION
Una vez que el Tecnólogo Médico despacha el hemocomponente desde de la UMT,
este debe ser trasladado en el cooler de transfusiones, el cual debe contener:
-
Contenedor cortopunzante
-
Tórulas de algodón limpio
-
Guantes
-
Bajadas
-
Alcohol al 70°
-
Lancetas
-
Antisueros Anti-A, Anti-B y Anti-D
-
Láminas de portaobjetos
Además de ir acompañado con la Solicitud de transfusión, para verificar datos del
paciente y la pauta del Protocolo de Reacciones Adversas Post transfusionales (Anexo
5).
6.10.1.CONTROL A,B,O Y Rh PRE-TRANSFUSIONAL EN SALA
Responsable:
Tecnólogo Medico de turno de UMT será el responsable de realizar la
reclasificación a cada paciente previo a la instalación de cada hemocomponente. Y según
las necesidades del Servicio del Laboratorio durante su turno, puede ir acompañado del
Técnico Paramédico de turno para que este lo asista en las actividades.
Procedimiento:
1.- Ubicar al paciente en la sala respectiva, corroborando su identificación por medio de
la pizarra que se encuentra sobre la camilla en caso de los pacientes hospitalizados en
el Servicio de Medicina y Maternidad, por medio del letrero que se encuentra en la
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
52 de 81
entrada de la sala individual de cada paciente del Servicio de UPC, y en el caso del
Servicio de Urgencia, según indique el personal de Enfermería. Además, si el paciente
está consciente, solicitar su identidad de manera verbal.
2.- Constatar indicación de la transfusión en ficha clínica.
3.- Realizar lavado de manos clínico según normas de IAAS.
4.- Preparar material de reclasificación.
5.- Colocar gotas de los antisueros anti-A, anti-B y anti-RhD en la lámina de vidrio.
6.- Puncionar dedo del paciente para la reclasificación, y colocar las gotas de sangre
respectivas en cada gota de antisuero.
6.10.2.CHEQUEO PERSONAL DE ENFERMERÍA
La Enfermera(o) a cargo del paciente debe completar el check list del Protocolo
Reacciones Adversas Transfusionales, junto al paciente y el Tecnólogo Médico de UMT
que instala el hemocomponente.
Debe chequear lo siguiente:
-
Chequeo de grupo y RH tanto de unidad como paciente
-
Chequeo de etiqueta del paciente en la unidad a transfundir
-
Chequeo de la vía venosa para la transfusión
Esto debe ser completado con un tic y la firma en el VB° por parte de la Enfermera(o) a
cargo.
Importante:
* La instalación de la vía venosa destinada para la transfusión es responsabilidad del
personal de Enfermería.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
53 de 81
6.10.3. CONSIDERACIONES GENERALES DURANTE LA ADMINISTRACIÓN
DE UN HEMOCOMPONENTE
1.- Toda transfusión debe ser administrada por una vía venosa exclusiva y únicamente
con un equipo de administración con filtro para microagregados que proporciona UMT.
2.- La única solución compatible con un hemocomponente es el suero fisiológico. Si por
la vía a utilizar se está administrando otra solución, ésta se debe lavar con suero
fisiológico previo y posterior a la transfusión.
3.- El calibre de la bránula a utilizar dependerá del paciente y de la velocidad que se
requiera pasar la transfusión.
4.- Explicar al paciente (si está consciente) en qué consiste y cuánto durará el
procedimiento, que debe estar lo más tranquilo posible para cuidar el sitio de punción.
Indicar además que podrían aparecer síntomas incómodos tales como: calor, picazón,
escalofríos, ahogos, dolor del brazo etc. Instándole a que avise rápidamente al personal
de su sala si presenta alguno de estos u otros síntomas molestos o inesperados.
5.- El tiempo aproximado de duración de la transfusión, desde que se inicia la
administración del hemocomponente hasta que se finaliza es de:
-
Glóbulos Rojos : 2 a 4 horas
-
Plaquetas : 20 - 30 minutos.
-
Plasma fresco congelado : 30 minutos.
6.- En el caso que la transfusión se suspenda por cualquier motivo, el profesional
responsable del paciente debe avisar a UMT y devolver el hemocomponente, para su
eliminación o almacenamiento según normas establecidas.
7.- Monitorear la transfusión será responsabilidad compartida del Servicio a cargo del
paciente junto al personal de UMT. El personal de Enfermería es responsable de realizar
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
54 de 81
el control de los signos vitales del paciente durante la transfusión, con el objetivo vigilar
el desarrollo de alguna reacción adversa a la transfusión:
-
Presión arterial
-
Temperatura
-
Frecuencia cardiaca
6.10.4.FINALIZACIÓN DE LA TRANSFUSIÓN
Una vez que el Tecnólogo Médico retira el hemocomponente, se debe registrar en
ficha clínica del paciente los siguientes datos:
-
Transfusión de: Tipo de hemocomponente/ Grupo ABO-Rh de la unidad/ N° de la
unidad
-
Prueba de compatibilidad: Resultado de la Prueba de Compatibilidad
-
Volumen suminitrado: ml
-
Hora de Inicio:
-
Hora de Término:
-
Tecnólogo Médico: Nombre y firma
Además, el Tecnólogo Médico debe completar el Protocolo Reacciones Adversas
Transfusionales, y registrar hora de inicio, hora de término, y si hubo o no alguna
reacción adversa. Junto con su nombre y firma.
Finalmente se archivan la Solicitud de transfusión, el informe de las Pruebas de
compatibilidad validadas en el sistema informático del laboratorio y el Protocolo de
Reacciones Adversas Transfusionales, en el archivador de Transfusiones ubicado en la
UMT.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
55 de 81
6.11.GESTION STOCK DE HEMOCOMPONENTES
Diariamente el Tecnólogo Médico de UMT debe revisar el stock de Hemocomponentes
disponibles. El pedido semanal de hemocomponentes realizado al Banco de Sangre del
Hospital Hernán Henríquez Aravena, corresponde los días Jueves en la mañana.
Considerando un stock semanal, establecido al día 31 de Mayo de 2019:
-
8 Unidades de Glóbulos Rojos O(+)
-
4 Unidades de Glóbulos Rojos A(+)
-
2 Unidades de Glóbulos Rojos B(+)
Además de las unidades de Plasma Fresco Congelado, que se solicitan según
requerimiento y disponibilidad.
Es responsabilidad exclusiva del Tecnólogo Médico de Banco de Sangre del Hospital
Hernán Henríquez Aravena, el cumplimiento del total del pedido semanal realizado,
según su stock disponible.
En caso de solicitud de hemocomponentes en otros días, se realiza previo acuerdo con
Tecnólogo Médico del Banco de Sangre en horario hábil, o el Tecnólogo Médico de UMT
del Hospital Hernán Henríquez Aravena en horario inhábil.
Para el traslado de hemocomponentes se debe preparar el cooler específico para esto,
con unidades refrigerantes y el trazador de temperatura.
Junto con realizar el pedido de hemocomponentes en el programa E-Delphyn, el
Tecnólogo
Médico
que
realiza
el
pedido,
debe
enviar
correo
electrónico
a
[email protected], detallando lo que solicitó.
6.11.1.SOLICITUD DE HEMOCOMPONENTES EN PROGRAMA E-DELPHYN
La solicitud de hemocomponentes en el programa E-Delphyn se realiza de la
siguiente manera:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
56 de 81
1.- Ingresar al menú “Distribución” → Petición de Unidades:
2.- En la ventana siguiente, seleccionar el ícono “Nuevo”, ubicado en parte inferior de la
pantalla:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
57 de 81
3.- En la ventana siguiente, completas los datos requeridos, y luego seleccionar el ícono
“Enviar”:
-
Componente sanguíneo
-
Grupo sanguíneo
-
Cantidad solicitada
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
58 de 81
4.- Luego se despliega una ventana donde se debe completas los datos requeridos:
-
Centro Peticionario: UMT-Hospital de Pitrufquen
-
Centro Distribuidor:
o
Banco de Sangre – Hosp. Hernán Aravena (En caso de realizar pedido en
horario hábil)
o
UMT- Hospital Hernán Henríquez Aravena (En caso de realizar pedido en
horario inhábil)
-
Fecha pedido
-
Prioridad
-
Responsable
Código
Versión
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
-
Primera
59 de 81
Observaciones
5.- Finalmente se genera un archivo PDF que se debe imprimir para archivarlo en el
archivador “GESTIÓN DE UNIDADES”, ubicado en la sección de UMT.
6.11.2. RECEPCIÓN DE HEMOCOMPONENTES EN PROGRAMA E-DELPHYN
Una vez que se reciben los hemocomponentes, el Tecnólogo Médico de UMT debe
corroborar las unidades recibidas con la planilla despachada desde el Banco de Sangre
del Hospital Hernán Henríquez Aravena. Se debe registrar en dicha planilla hora de
recepción, recibido por y temperatura del trazador.
Además, se debe registrar en planilla “T° DE TRANSPORTE DE LOS COMPONENTES
SANGUÍNEOS” (Anexo 6), que se encuentra en archivador de “REGISTROS DE UNIDAD
DE MEDICINA TRANSFUSIONAL”:
-
Fecha de recepción
-
Folio de envío
-
T° del trazador
-
Quien recepciona (1 nombre y 2 apellidos)
-
Firma
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
60 de 81
El procedimiento para recepcionar las unidades en el programa E-Delphyn es el
siguiente:
1.- Ir al menú “Distribución” → Entrada de Unidades:
2.- Seleccionar el folio correspondiente de la planilla recibida junto con las unidades, y
seleccionar el ícono “Ver”, ubicado en la parte inferior de la pantalla:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
61 de 81
3.- En la ventana siguiente, seleccionar el ícono “Folio” ubicado en la parte inferior de la
pantalla:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
62 de 81
4.- Se despliega una ventana en la cual se debe confirmar la fecha y hora de recepción,
y luego se selecciona el ícono “Grabar”:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
63 de 81
5.- Al volver a la ventana de “Pedido”, se debe seleccionar el ícono “Unidades” y se
despliega la siguiente ventana, donde se ingresan las unidades, según código y número
de unidad. Una vez que ya se ingresaron todas las unidades, se debe seleccionar el ícono
“Atrás”:
6.- Al volver a la ventana de “Pedido”, se debe seleccionar el ícono “Confirmar” y luego
el ícono “Atrás”:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
64 de 81
6.11.3. CONFIRMACIÓN DE GRUPO SANGUÍNEO ABO/RH DE UNIDADES
DE GLÓBULOS ROJOS
El Tecnólogo Médico debe reclasificar las unidades de glóbulos rojos recibidas, para
confirmar el grupo sanguíneo ABO/Rh. Esta reclasificación se realiza en lámina de vidrio,
utilizando los antisueros Anti-A, anti-B y Anti-RhD y cortando un segmento de la
tubuladura de la unidad.
Una vez que se confirmó el grupo sanguíneo de las unidades recibidas, se debe registrar
en el programa E-Delphyn de la siguiente manera:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
65 de 81
1.- Seleccionar el menú “Distribución” → Buscar Información → Unidades pendientes de
verificar Grupo:
2.- En la ventana siguiente, buscar las unidades pendientes de verificar grupo, por fecha
de entrada, centro distribuidor, y seleccionar el ícono “Buscar”:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
66 de 81
3.- En la ventana siguiente, confirmar el grupo ABO y Rh de cada unidad de glóbulos
rojos, y luego seleccionar el ícono “Grabar”:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
67 de 81
6.12. ELIMINACIÓN DE HEMOCOMPONENTES NO APTOS PARA
TRANSFUSIÓN
Diariamente el Tecnólogo Médico de UMT debe inspeccionar las unidades de
glóbulos rojos almacenadas en el refrigerado N°1 de UMT.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
68 de 81
Al examinar las unidades de glóbulos rojos, se debe verificar la fecha de vencimiento y
NO se debe observar:
-
Presencia de coágulos visibles.
-
Presencia de hemólisis.
-
Cambios de color de los glóbulos rojos (negruzco o verde).
-
Plasmas muy lipémicos, de color café o rojizo.
En el caso de las unidades de plasma fresco congelado, almacenadas en refrigerador a
-30°C, se debe verificar fecha de vencimiento o algún circuito abierto por rotura durante
el almacenamiento.
El Tecnólogo Médico de UMT es responsable de eliminar toda unidad de apariencia
anormal, expiradas o con circuito abierto.
Registrar en la planilla “ELIMINACIÓN DE COMPONENTES SANGUÍNEOS” (Anexo 7), que
se encuentra en archivador de “REGISTROS DE MEDICINA TRANSFUSIONAL”, ubicada
en UMT:
-
Fecha
-
Tipo de hemocomponente
-
N° de unidad
-
Motivo de eliminación
-
Responsable (1 nombre, 2 apellidos)
-
Firma
Además, se debe registrar en programa E-Delphyn indicando motivo de eliminación de
la siguiente manera:
1.- Ir al Menú “Procesado” → Baja de Unidades → Por Unidad:
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
69 de 81
2.- En la ventana siguiente completar los datos solicitados y luego seleccionar el ícono
“Grabar”.
6.12.1.CRITERIOS PARA DEFINIR PRODUCTOS NO APTOS PARA
TRANSFUSIÓN
Expiración:
El TM de Unidad de Medicina Transfusional al comienzo de cada turno deberá constatar
el estado y/o fecha de vencimiento de todos los componentes sanguíneos de los cuales
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
70 de 81
dispone y posteriormente eliminar los hemocomponentes que hayan alcanzado la fecha
de expiración de acuerdo a los siguientes plazos:
-
Unidades de glóbulos rojos que tengan más de 42 días desde la extracción.
-
PFC con más de 1 año desde la extracción.
Circuito abierto no utilizado:
Se considera circuito abierto a los hemocomponentes que hayan tenido abertura en la
tubuladura ya sea para obtener una alícuota o lavar glóbulos rojos, o en la preparación
de los pool de plaquetas.
El TM de Unidad de medicina Transfusional deberá eliminar las unidades de GR o PFC
que tengan más de 24 horas de abierto el circuito.
Los pool de plaquetas después de 4 horas de haberse preparado si no se utilizan deben
eliminarse. Por ello en un pool de plaquetas debe anotarse la hora de preparación en el
transfer o bolsa recolectora.
Descongelamiento:
Eliminar todos los plasmas frescos congelados con circuito cerrado descongelados y que
se mantuvieron a 4ºC por más de 24 horas.
Aspecto:
Producto de la inspección diaria se eliminan todas las unidades de glóbulos rojos que
presenten hemólisis, coágulos visibles, cambio de color o mal aspecto. Por ello los GR
deben ser almacenados de forma vertical con soporte metálico para favorecer la
sedimentación de las células y así observar mejor el sobrenadante.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
71 de 81
Rotura o filtración:
Todo hemocomponente que sufra de rotura y/o filtración debe ser eliminado
inmediatamente de acuerdo a normas de precauciones universales.
6.13. CONTROL DE TEMPERATURA DE ALMACENAMIENTO DE
HEMOCOMPONENTES
El Tecnólogo Médico de UMT es responsable de llevar a cabo un control de
temperatura de los refrigeradores de la sección, donde se almacenan las unidades de
glóbulos rojos y los reactivos, con el objetivo de asegurar productos de calidad, para
brindar una terapia transfusional oportuna y segura.
Diariamente, el Tecnólogo Médico que recibe turno a las 08:00 AM, debe realizar el
registro de las temperaturas de los refrigeradores DOMETIC N°1 y N°2 de UMT, en la
planilla de “REGISTRO DE TEMPERATURA DE EQUIPOS” (Anexo 8).
Se utiliza una planilla por mes, y se archivan en el archivador “REGISTROS UNIDAD DE
MEDICINA TRANSFUSIONAL”, ubicada en la UMT.
La temperatura de los refrigeradores debe estar dentro de un rango de 2-6°C.
7. BIBLIOGRAFÍA
-
Inserto “ID-Cards Diaclon ABO/D + Reverse Grouping”. BIORAD.
Inserto “ID-Card Diaclon ABO/Rh for Newborns DVI+”. BIORAD.
Inserto “ID-Card LISS/Coombs”. BIORAD.
Guías Prácticas Clínicas: Medicina transfusional, Indicación de transfusión.
SOCHIEM. 2017
American Association of Blood Banks, Technical Manual 12, Th edition 1996.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
72 de 81
8. ANEXOS
Anexo 1: Planilla de registro de Estudio inmunohematológico.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
73 de 81
Anexo 2: Planilla de registro Estudios de Compatibilidad.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
74 de 81
Anexo 3: Planilla de registro de controles inmunohematología.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
75 de 81
Anexo 4: Solicitudes de transfusión.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
76 de 81
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
77 de 81
Anexo 5: Protocolo de Reacciones Adversas Transfusionales.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
78 de 81
Anexo 6: Planilla de registro de Temperatura de transporte de los
componentes sanguíneos.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
79 de 81
Anexo 7: Planilla de registro de eliminación de componentes sanguíneos.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
80 de 81
Anexo 8: Planilla de registro de temperatura de equipos.
Código
Versión
Primera
Fecha
Diciembre 2017
Vigencia
Diciembre 2022
Página
81 de 81
9. INDICADOR A EVALUAR
VERIFICADOR
Cumplimiento del Protocolo de Reacciones Adversas
Transfusionales por cada hemocomponente transfundido
INDICADOR
N° de Protocolos de Reacciones Adversas
Transfusionales por cada hemocomponente transfundido
que cumple con; hora de inicio, hora de término y la
ocurrencia de RAT X 100 / N° total de Protocolos de
Reacciones Adversas Transfusionales por cada
hemocomponente transfundido
JUSTIFICACIÓN
META
Seguridad del paciente
>90%
SISTEMA DE
Planillas de Protocolo de Reacciones Adversas
REGISTRO
Transfusionales archivadas en archivador de
transfusiones de UMT
EVALUACION DE
Trimestral
CUMPLIMIENTO
RESPONSABLE
Tecnólogo Médico Encargado de Calidad del Laboratorio