entofauna asociadad a fases edescomposicion de sus scrofa en 2015,Trujillo tesis

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UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO
IC
AS
FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS
EN
CI
A
S
BI
OL
OG
ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE CIENCIAS
BIOLÓGICAS
Entomofauna asociada a las fases de descomposición del cadáver de Sus scrofa
CI
domestica L. Trujillo, 2015.
TESIS
TE
CA
DE
PARA OPTAR EL TÍTULO DE:
BIÓLOGO
AUTOR:
BI
BL
IO
Br. JOSÉ CARLOS VILLANUEVA VILLALVA
ASESOR:
Ms.C. ROBERTO RODRÍGUEZ RODRÍGUEZ
TRUJILLO
2016
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OG
Dr. ORLANDO GONZALES NIEVES
IC
AS
AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO
EN
CI
A
S
BI
OL
Rector
Dr. RUBEN CÉSAR VERA VELIZ
BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
Vicerrector Académico
Dr. WEYDER PORTOCARRERO CARDENAS
Vicerrector de Investigación.
ii
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IC
AS
AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS
OG
Dr. MARCO LEONCIO SALAZAR CASTILLO
BI
OL
Decano
EN
CI
A
S
Dr. SANTOS ENRIQUE PADILLA SAGÁSTEGUI
TE
CA
DE
CI
Profesor Secretario
Dr. MANUEL ROBERTO RODRÍGUEZ LACHERRE
BI
BL
IO
Director de la Escuela Académico Profesional de Ciencias Biológicas
iii
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PRESENTACIÓN
IC
AS
Señores miembros del jurado dictaminador en cumplimiento con las
disposiciones reglamentarias vigentes para la obtención de grados y títulos de la
Escuela Académico Profesional de Ciencias Biológicas, Facultad de Ciencias
OG
Biológicas de la Universidad Nacional de Trujillo; someto a vuestra consideración y
OL
criterio el presente informe de tesis titulado: Entomofauna asociada a las fases
de descomposición del cadáver de Sus scrofa domestica L. Trujillo. 2015; con
Trujillo, Marzo del 2016
_____________________________________
Br. JOSE CARLOS VILLANUEVA VILLALVA
BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
EN
CI
A
S
BI
lo cual pretendo cumplir con los requisitos para optar el título de biólogo.
iv
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IC
AS
MIEMBROS DEL JURADO DICTAMINADOR
OG
________________________________________
EN
CI
A
S
BI
PRESIDENTE
OL
Dr. GASPAR AYQUIPA AYCHO
________________________________________
SECRETARIO
BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
Ms.C. JOSÉ LUIS POLO CORRO
________________________________________
Ms.C. ROBERTO RODRÍGUEZ RODRÍGUEZ
VOCAL
v
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APROBACIÓN
IC
AS
Los profesores que suscriben, miembros del jurado examinador, declaran que
el presente informe de Tesis titulado: Entomofauna asociada a las fases de
con
los
requisitos
formales
y
fundamentales,
siendo
APROBADO
por
BI
OL
UNANIMIDAD.
OG
descomposición del cadáver de Sus scrofa domestica L. Trujillo, 2015., ha cumplido
EN
CI
A
S
________________________________________
Dr. GASPAR AYQUIPA AYCHO
DE
CI
PRESIDENTE
________________________________________
SECRETARIO
BI
BL
IO
TE
CA
Ms.C. JOSÉ LUIS POLO CORRO
________________________________________
Ms.C. ROBERTO RODRÍGUEZ RODRÍGUEZ
VOCAL
vi
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CERTIFICACIÓN DEL ASESOR
IC
AS
El que suscribe, en calidad de profesor asesor de la tesis Entomofauna
asociada a las fases de descomposición del cadáver de Sus scrofa domestica L.
OG
Trujillo, 2015.
OL
CERTIFICA:
BI
Que la investigación ha sido desarrollada en conformidad con los objetivos
S
propuestos en su perfil académico y que el informe ha sido revisado y acoge las
EN
CI
A
observaciones y sugerencias alcanzadas.
Por lo tanto autorizo al Br. José Carlos Villanueva Villalva a continuar con los
______________________________
IO
TE
CA
DE
CI
trámites de reglamento correspondientes.
BI
BL
Ms.C. Roberto Rodríguez Rodríguez
vii
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IC
AS
DEDICATORIA
EN
CI
A
S
BI
OL
OG
A mis padres por ser los pilares
fundamentales en todo lo que soy, por
su apoyo incondicional en todo
momento con sus grandes esfuerzos y
por aconsejarme siempre para lograr
lo mejor en mi vida profesional.
TE
CA
DE
CI
A mi novia y hermanos por la
comprensión, cariño y apoyo
brindado durante el tiempo de mi
vida universitaria
BI
BL
IO
A mis amigos que compartimos
momentos inolvidables y nos
apoyamos mutuamente durante
nuestra vida universitaria,
alentándonos a cumplir nuestros
objetivos.
viii
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AS
AGREDECIMIENTO
Al Ms.C. Roberto Rodríguez Rodríguez, profesor principal del Departamento de
Ciencias Biológicas, Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional de Trujillo.
OG
Por su asesoramiento, dirección y apoyo constante en la presente investigación.
OL
A mis padres por ser grandes ejemplos de perseverancia y constancia lo cual siempre
BI
me han inculcado así como sus valores y motivación que me han permitido ser una persona
S
de bien; pero más que nada, por su amor. También por el esfuerzo y la confianza que
EN
CI
A
depositaron en mí para poder lograr consolidar mi profesión.
A mi hermana Brenda por el apoyo sincero y motivador, que siempre tuvo palabras de
aliento en momentos complicados, también a mi hermano Blgo. Arturo Villanueva Villalva,
CI
por su asesoramiento constante y por su infinita ayuda, paciencia y en la investigación
DE
realizada.
TE
CA
A mi abuela, tíos, primos y sobrinos, por creer en mí y apoyarme directa o
indirectamente desde el inicio de mi vida universitaria.
IO
A mi novia Diana, por su paciencia y amor brindado durante todos estos años, así como
BI
BL
por el apoyo moral en la realización del presente trabajo.
A los profesores miembros del jurado dictaminador por su apoyo mostrado con sus
aportes y sugerencias en la realización de la presente tesis y a todos los profesores de la
Facultad de Ciencias Biológicas por sus enseñanzas y conocimientos que me impartieron
durante mi formación académico profesional.
ix
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Al Blgo. Luis Alberto Figueroa Reynoso del Departamento de Entomología del Museo
de Historia Natural de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos por abrirme las puertas
IC
AS
desinteresadamente de las instalaciones de dicha institución, además de su ayuda y asesoría
en el presente trabajo.
OG
A mis amigos de la Escuela de Ciencias Biológicas, Promoción XLIX , por su amistad
OL
sincera y honesta con quienes compartimos buenos y malos momentos, y que seguiremos
BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
EN
CI
A
S
BI
siempre en contacto.
x
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IC
AS
RESUMEN
El trabajo tuvo como finalidad determinar la entomofauna cadavérica asociada al
OG
cadáver de Sus scrofa domestica L., la duración de las fases de descomposición,
la categorización ecológica y diversidad insectil. Se usó un lechón de 3 meses de
OL
edad y 6 Kg de peso, sacrificado por una estocada al corazón y expuesto en una
BI
jaula de 1 x 1 x 0,7 m colocada en el campus de la Universidad Nacional de Trujillo
S
ubicada a 8°06’58.75’’ S 79°02’26.72’’ O a 34 msnm. Se registraron datos de
EN
CI
A
temperatura y humedad relativa, se colectaron los insectos para su determinación,
se registraron los periodos de las fases de descomposición y se asignaron a sus
categorías ecológicas. Se usaron los Índices de Margalef, Simpson, Shannon
La entomofauna encontrada fue de los órdenes Diptera,
CI
Wiener y Pielou.
DE
Coleoptera, Hymenoptera y Dermaptera; en Diptera destacó la familia Calliphoridae
y en Coleoptera la familia Dermestidae. Se determinaron 17 familias y 32 especies
TE
CA
que se agruparon en: necrófagos, necrófilos, omnívoros y accidentales con
abundancias relativas de 80,57%; 17,45%; 0,55% y 1,43% respectivamente. La
IO
diversidad de la entomofauna cadavérica es baja tanto en riqueza, dominancia y
BI
BL
equidad.
Palabras clave: Entomología cadavérica, Sucesión entomológica.
xi
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ABSTRACT
IC
AS
The work was aimed at determining the cadaverous entomofauna associated to the
corpse of Sus scrofa domestica l., the duration of the phases of decomposition, the
OG
ecological categorization and insect diversity. It was used a sucker from 3 months of
age and 6 Kg of weight, sacrificed by a blow to the heart and exhibited in a cage of
OL
1 x 1 x 0.7 m placed on the campus of the National University of Trujillo located at
BI
8° 06' 58.75" S 79° 02' 72" W to 34 metres above sea level. Temperature and
S
relative humidity were recorded, insects were collected for their determination, and
EN
CI
A
periods of the stages of decomposition were recorded and were assigned to their
ecological categories. The Indices of Margalef, Simpson, Shannon Wiener and
Pielou were used. The entomofauna found was in the orders Coleoptera,
CI
Hymenoptera, Diptera and Dermaptera; in Diptera highlighted the Calliphoridae
DE
family and Coleoptera Dermestidae family. Determined 17 families and 32 species
that were grouped in: ghouls, necrophilous, omnivores and accidental with
TE
CA
abundances of 80, 57%; 17, 45%; 0, 55% and 1, 43%, respectively. The diversity of
the cadaverous entomofauna is both low in richness, dominance, and equity.
BI
BL
IO
Key words: mortis Entomology, Entomological succession.
xii
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ÍNDICE
IC
AS
AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO ..................... ii
AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS ...................... iii
OG
PRESENTACIÓN.................................................................................................... iv
OL
MIEMBROS DEL JURADO DICTAMINADOR ....................................................... vi
BI
APROBACIÓN....................................................................................................... vii
S
CERTIFICACIÓN DEL ASESOR ........................................................................... vii
EN
CI
A
DEDICATORIA ..................................................................................................... viii
AGREDECIMIENTO ............................................................................................... ix
CI
RESUMEN .............................................................................................................. xi
I.
DE
ABSTRACT ........................................................................................................... xii
INTRODUCCIÓN .............................................................................................. 1
TE
CA
II. MATERIAL Y METODOS................................................................................. 4
1. Establecimiento del experimento ................................................................ 4
IO
2.Conservación del material biológico y determinación de las fases de
BI
BL
descomposición ............................................................................................ 5
3. Determinación taxonómica de la entomofauna cadavérica ......................... 5
4. Análisis de diversidad de la entomofauna cadavérica ................................. 7
xiii
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III.
RESULTADOS ............................................................................................. 18
1. Insectos determinados, abundancia relativa y
IC
AS
porcentaje de ocurrencia ........................................................................ 18
2. Fases de descomposición cadavérica .....................................................16
OG
3. Categorías ecológicas de las especies determinadas .............................24
OL
4. Entomofauna por fase de descomposición ..............................................24
BI
5. Análisis de diversidad de la entomofauna cadavérica .............................26
S
IV. DISCUSIÓN.....................................................................................................36
EN
CI
A
V. CONCLUSIONES............................................................................................40
VI. RECOMENDACIONES ...................................................................................42
CI
VII. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS ...............................................................43
BI
BL
IO
TE
CA
DE
ANEXOS ................................................................................................................49
xiv
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INTRODUCCIÓN
IC
AS
I.
La muerte de un ser vivo trae consigo una serie de cambios y
OG
transformaciones fisicoquímicas que constituyen a este cuerpo sin vida en un
“ecosistema” dinámico y único al que se asocian una serie de organismos
OL
necrófagos, necrófilos, omnívoros y accidentales que se van sucediendo en el
BI
tiempo, de acuerdo al avance de la descomposición del cadáver (Smith, 1996;
S
Magaña, 2001). Los artrópodos son usualmente los primeros y más importantes
EN
CI
A
invertebrados en colonizar un cadáver animal y humano, y siguen una sucesión
predecible en cadáveres animales. Mediante la determinación de los insectos
presentes y sus estados de vida, es posible estimar cuanto tiempo el cuerpo ha
CI
estado muerto y donde ocurrió la muerte del cadáver, pudiendo determinar el
DE
intervalo Post Mortem o IPM (Iannacone, 2003).
Uno de los casos más conocidos donde se hace uso de la entomología forense
TE
CA
como herramienta de cálculo del IPM, lo realizó en Francia Bergeret en el año de
1855. En tanto el primer libro sobre el tema fue “La fauna de los cadáveres” de
IO
Mégnim en 1894, en el cual, el autor incluye fundamentos teóricos así como
BI
BL
descripciones de insectos (Pujol-Luz et al., 2008).
En Brasil, uno de los trabajos más notables relacionados con la fauna
cadavérica es el realizado por Freire en 1908, quien presento la primera colección
de insectos necrófagos asociados a cadáveres humanos y pequeños animales
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(Pujol-Luz et al., 2008); así también en 1908 Roquette-Pinto describió la fauna
cadavérica de Rio de Janeiro. Estos dos trabajos fueron las bases del estudio de la
IC
AS
fauna asociada a los cadáveres en el Neotrópico (Pujol et al., 2008).
En Colombia, en Medellín para establecer la fauna necrófaga se empleó un
OG
cadáver de cerdo obteniendo 7 órdenes y 27 familias de insectos (Wolff et al., 2001).
Barreto et al. (2002); en Cali, determinaron que el orden Diptera con las especies
OL
Chrysomya rufifacies (Macquart), Cochliomyia macellaria Fabricius, Chrysomya
BI
megacephala (Fabricius), y el orden Coleoptera con la familia Silphidae con su
EN
CI
A
S
especie Oxelytrum discicolle (Brullé) estaban asociados con cadáveres humanos.
En Argentina, en Buenos aires, Centeno et al. (2002); utilizaron carcasas de
cerdos domésticos ubicados bajo techo y a cielo abierto, para estudiar la
CI
composición faunística de artrópodos durante el año, obteniendo que la
descomposición a cielo abierto fue más rápida y la abundancia de artrópodos fue
DE
mayor.
TE
CA
En Perú, William Dale (1995) determinó las moscas de la familia Calliphoridae
de la costa central peruana; Por su parte Iannacone (2003), describió a la fauna
asociada a cadáveres de cerdos en la provincia constitucional del Callao,
BI
BL
IO
constituyéndose en referente para este campo en el país.
En La Libertad, en Trujillo Zapata (2014), realizó el primer registro del
califorido Lucilia sericata para la ciudad de Trujillo, insecto necrófago presente en la
entomofauna asociada a cadáveres en la costa de esta región, esta investigación lo
realizo en base a la descomposición de hígado de vacuno.
2
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Es importante el estudio de la entomofauna asociada a cadáveres en campo
abierto, por ello una variable para tomar en cuenta es el tipo de patrón de invasión
IC
AS
del cuerpo, partiendo desde algunas especies de insectos que siempre están
presentes hasta otras que desaparecen y vuelven a aparecer más tarde (Smith,
OG
1996).
En países sudamericanos como Argentina, Venezuela, Brasil y Colombia se
OL
vienen desarrollando experimentos en cadáveres de varios tipos de animales con el
BI
fin de conocer mejor la sucesión ecológica y biológica de los insectos necrófagos.
S
Actualmente en el Perú son muy escasos los trabajos de entomología forense que
EN
CI
A
se centran en la descripción de los patrones ecológicos de la entomofauna presente
durante la descomposición cadavérica en distintos ecosistemas. Esto hace
necesario el estudio de dicha disciplina, pues en las ciencias forenses es muy difícil
CI
establecer una relación de insectos propios de cada región debido principalmente a
DE
la gran diversidad de especies y hábitat de nuestro país.
TE
CA
Este trabajo tuvo como finalidad determinar la entomofauna cadavérica
asociada al cadáver de Sus scrofa domestica L., así como la duración de las fases
BI
BL
.
IO
de descomposición, su categorización ecológica y diversidad insectil.
3
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II.
MATERIAL Y METODOS
IC
AS
1. Establecimiento del experimento
Se usó un lechón de Sus scrofa domestica “cerdo” de 6 kg de peso y 3 meses
OG
de edad. Este ejemplar fue obtenido en el mercado “La Hermelinda” en el distrito de
Florencia de Mora, en la Provincia de Trujillo, en el departamento de La Libertad.
OL
El cerdo fue sacrificado mediante una estocada dirigida del cuello al corazón,
BI
luego fue colocado en posición lateral sobre una malla de acero de abertura de 2
S
cm y de área de 1 m², debajo de la cual se colocó una manta de plástico amarillo de
EN
CI
A
las mismas dimensiones. Luego el cuerpo se puso dentro de una jaula de 1 x 1 x
0,7 m, hecha con el mismo tipo de malla (Anexo 1), la cual fue colocada en el
O a 34 msnm (Anexo 2).
CI
campus de la Universidad Nacional de Trujillo ubicada a 8°06’58.75’’ S 79°02’26.72’’
DE
Se realizaron dos colectas diarias, para abarcar los primeros estadios de
TE
CA
descomposición del cadáver. Luego se procedió a realizar colectas interdiarias
durante un mes, y finalmente se realizó una colecta semanal. Este criterio de colecta
va acorde con la disminución de la diversidad de insectos por el avance de la
IO
descomposición, siendo más baja en la fase de Esqueletización (Barros de Souza
BI
BL
et al., 2008). También se registraron los datos de Temperatura ambiental y corporal
así como humedad relativa, mediante un termohigrometro digital (Anexo 3 y 4).
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2. Conservación del material biológico y determinación de las fases de
descomposición
IC
AS
Los ejemplares colectados fueron conservados en alcohol al 70% en frascos de
vidrio de penicilina debidamente etiquetados. (Márquez, 2005; Triplehorn & Johnson,
OG
2005).
OL
Para establecer las fases de descomposición se utilizó las denominación descrita
BI
por Gomes (1997), basadas en Bonnet (1978), que es la división más utilizada por la
medicina legal en países neotropicales (Oliveira-Costa, 2007), donde se clasifica en
EN
CI
A
S
Fresca, Cromática, Enfisematosa, Colicuativa y Esqueletización.
3. Determinación taxonómica de la entomofauna cadavérica
CI
Para la determinación taxonómica, previamente se procedió a separar las
especies en morfotipos luego para la determinación a nivel de familia se utilizó las
DE
claves taxonómicas especializadas (Triplehorn y Johnson, 2005 y Rafael, 2012).
TE
CA
Para la determinación de especies y géneros se realizó mediante el uso de las
siguientes claves:
IO
Orden Diptera
BI
BL
Las familias Calliphoridae, Sarcophagidae, Muscidae, Fanniidae, Piophilidae,
Phoridae, se determinaron mediante las claves taxonómicas de:
Amat
(2008), Whitworth (2006), Buenaventura et al (2009), Domínguez
(2007); Barros et al (2002), Barros et al (2008), y Brown et al (2009).
5
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Orden Coleoptera
IC
AS
Las familias Dermestidae, Cleridae, Histeridae, Tenebrionidae, Nitidulidae y
Scarabaeidae, se determinaron mediante las claves taxonómicas y registros
OG
de:
OL
Ciro et al (2008), Almeida et al (2009), Degaller et al (2012), Aballay et al
(2013), Marcuzzi (1949), Watt (1974), Carrasco (1987), Cline et al (2015),
S
BI
Kirejtshuk (2008), Delgado et al (2000), Ratcliffe et al (2015).
EN
CI
A
Orden Hymenoptera
Las familias Chalcididae y Vespidae, se determinaron mediante las claves
DE
Orden Dermaptera
CI
taxonómicas de Fernández et al (2006).
Familia Anisolabididae y Labiduridae, se determinaron por comparación con
TE
CA
los especímenes depositados en la colección científica de dermápteros del
IO
Museo de Historia Natural de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos.
BI
BL
Las especies determinadas fueron verificadas en el Museo de Historia Natural de la
Universidad Nacional Mayor de San Marcos en Lima por el entomólogo especialista
Blgo. Luis Alberto Figueroa Reynoso, mediante claves especializadas y comparaciones
con los especímenes de la colección científica de dicha institución (Anexo 5 y 6).
6
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3. Análisis de diversidad de la entomofauna cadavérica
Para el análisis de los resultados se evaluó, la diversidad de tipo alfa de las
IC
AS
especies de importancia cadavérica asociadas al cuerpo de Sus scrofa, usando para
esto, índices de riqueza específica y de abundancia proporcional (dominancia y
Índices de riqueza específica
OL
a.
OG
equidad) de especies. Según Moreno (2001) son:
Índice de Margalef (D)
𝑺−𝟏
𝒍𝒏 𝑵
S
-
BI
Número de especies obtenido por un censo de la comunidad.
EN
CI
A
𝑫𝑴𝒈 =
Donde:
S= Número de especies.
CI
N= Número total de individuos.
DE
Los valores fluctúan entre cero y diez. Siendo valores excepcionalmente
b.
TE
CA
altos entre 6 y 9.
Índices de abundancia proporcional
IO
Aquellos que toman en cuenta el valor de importancia de cada especie, e índices
BI
BL
de heterogeneidad, aquellos que además del valor de importancia de cada
especie consideran también el número total de especies en la comunidad.
7
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i.
Índices de dominancia
Los índices basados en la dominancia son parámetros inversos al
IC
AS
concepto de uniformidad o equidad de la comunidad. Toman en cuenta
la representatividad de las especies con mayor valor de importancia sin
Índice de Simpson (λ)
BI
OL
-
OG
evaluar la contribución del resto de las especies.
Donde:
EN
CI
A
S
λ = ∑ 𝑃𝑖 2
Pi = Abundancia proporcional de la especie i, es decir, el número
CI
de individuos de la especies i dividido entre el número total
DE
de individuos de la muestra.
Los valores del índice fluctúan entre uno y dos, mientras más
TE
CA
cercano este a dos indica menor dominancia de una especie en
IO
la comunidad.
4.2.2 Índices de Equidad
BI
BL
Algunos de los índices más reconocidos sobre diversidad se basan
principalmente en el concepto de equidad, ósea en la homogeneidad de
especies dentro de una comunidad.
8
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Índice de Shannon-Wiener (H´)
IC
AS
𝑯′ = ∑ 𝒑𝒊 𝒍𝒏 𝒑𝒊
Donde:
OG
Pi = Abundancia proporcional de la especie i, es decir, el número de
individuos de la especies i dividido entre el número total de
OL
individuos de la muestra.
BI
Los valores para este índice fluctúan entre 0 a 2, donde valores por
S
encima de dos indica una mayor incertidumbre de a que especie
EN
CI
A
pertenecerá un individuo escogido al azar en una comunidad.
CI
- Índice de Pielou (J´)
𝐻′
𝐻′𝑚𝑎𝑥
TE
CA
Dónde:
DE
𝐽′ =
H’max = ln (S).
IO
Los valores para este índice son de 0 a 1, donde valores cercanos a uno
BI
BL
o iguales a uno indican que las poblaciones de las especies son
igualmente abundantes.
Así mismo se evaluó la abundancia relativa y el porcentaje de ocurrencia en las
especies encontradas, según Moreno (2001), pueden calcularse:
9
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Abundancia relativa (% AR)
𝐴𝑅 =
𝑛𝑖
𝑥 100
𝑁
IC
AS
-
Dónde:
OG
ni= Número de individuos de la especie.
Porcentaje de ocurrencia (%fi)
BI
-
OL
N= Número total de individuos.
S
𝒋
EN
CI
A
f𝑖 = 𝒌𝒊 𝒙100
Dónde:
CI
ji = Puntos de muestreo donde se encontró la especie.
TE
CA
DE
k= Puntos de muestreos totales.
Para la asignación de las categorías ecológicas se utilizó el sistema de clasificación
propuesto por Leclercq
(1978), quien categoriza a la entomofauna forense en
BI
BL
IO
necrófagos, necrófilos, omnívoros y accidentales u oportunistas (Magaña, 2001).
10
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RESULTADOS
IC
AS
III.
1. Insectos determinados, abundancia relativa y porcentaje de ocurrencia
OG
En la Tabla 1 se observa un número de 32 especies pertenecientes a
OL
17 familias y 4 órdenes. El orden Diptera contiene a un 47 % del total de
BI
especies colectadas, seguido por el orden Coleoptera con 38 % y los órdenes
Orden Diptera: En la familia Calliphoridae se determinó a Cochliomyia
EN
CI
A

S
Hymenoptera y Dermaptera con 6 % cada uno.
macellaria Fabricius con 21,13 %, del total de individuos colectados,
constituyéndose en la segunda especie más abundante durante las colectas.
CI
También se determinó a Chrysomya albiceps (Wiedemann), Chrysomya
DE
rufifacies (Macquart), Chrysomya megacephala (Fabricius), Sarconesia
chlorogaster Wiedemann y Lucila sericata (Meigen), con una abundancia
TE
CA
relativa de 8,38; 1,3; 1,02; 0,2 y 0,27 % respectivamente. En la familia
Sarcophagidae se determinó a Sarcodexia sp, Titanogrypa sp, Sarcophaga
BI
BL
IO
sp, Tricharaea sp y Helicobia sp (Tabla 1).

Orden Coleoptera: Se determinó dentro de la familia Dermestidae a
Dermestes maculatus De Geer, representando un 30,67 % del total de
individuos colectados, esta especie fue de mayor abundancia durante las
colectas. También se determinó a las especies Dermestes frischii Kugelann
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y Dermestes peruvianus Castelnau con 1,36 y 2,66 % respectivamente. En
la familia Cleridae se determinó a Necrobia rufipes (De Geer) y Necrobia
IC
AS
ruficolis (Fabricius) con un 8,79 y 0,27 % respectivamente de abundancia
relativa. En la familia Histeridae se determinó a Saprinus sp, Euspilotus sp y
a Euspilotus decoratus (Erichson) con un 3,34; 4,23 y 0,27% de abundancia
OG
relativa respectivamente (Tabla 1).
OL
De las 32 taxas evaluadas según su porcentaje de ocurrencia, 3 fueron
BI
considerados constantes (> 50 % de las colectas), 14 comunes (10 % - 50 %
S
de las colectas) y 15 raros (< 10 % de las colectas). Las tres taxas constantes
EN
CI
A
fueron en orden decreciente: D. maculatus, Necrobia rufipes (De Geer) y
Piophila casei (Linnaeus) con 91,11; 68,89 y 51,11% de porcentaje de
ocurrencia respectivamente. De las 15 especies consideradas como
CI
comunes, resaltan Euspilotus sp, Dermestes peruvianus, Dermestes frischii,
DE
Titanogrypa sp., Chrysomia albiceps y Cochlyomyia macellaria con 42,22;
33,33; 31,11; 28,89; 28,89 y 24,44% de porcentaje de ocurrencia
TE
CA
respectivamente. Entre las especies consideradas como raras destacan:
Brachymeria sp, Lucilia sericata y Megaselia scalaris Loew con 8,89; 6,67 y
BI
BL
IO
4,44% de abundancia relativa respectivamente. (Tabla 1).
12
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Tabla 1. Abundancia relativa (AR %), porcentaje de ocurrencia (P.O %) de la
entomofauna asociada a la descomposición del cadáver de Sus scrofa
ORDEN
FAMILIA
IC
AS
domestica L. Trujillo, 2015.
ESPECIE
A.R%
P.O %
21,13
24,44 c
0,27
6,67 r
1,3
11,11 c
8,38
28,89 c
Sarconesia chlorogaster
0,2
6,67 r
Chrysomya megacephala
1,02
15,56 c
Sarcodexia sp
Lucilia sericata
FANNIDAE
PHORIDAE
28,89 c
Sarcophaga sp
0,41
8,89 r
Tricharaea sp
0,2
6,67 r
Helicobia sp
0,14
4,44 r
Musca domestica
3,95
22,22 c
Fannia canicularis
2,45
24,44 c
Megaselia scalaris
0,14
4,44 r
3,95
51,11 C
Dermestes maculatus
30,67
91,11 C
Dermestes frischii
1,36
31,11 c
Dermestes peruvianus
2,66
33,33 c
Necrobia rufipes
8,79
68,89 C
Necrobia ruficolis
0,27
8,89 r
Saprinus sp
3,34
22,22 c
Euspilotus decoratus
0,27
8,89 r
Euspilotus sp
4,23
42,22 c
Aphodius pseudolividus
0,48
17,78 c
Psammetichus costatus
0,2
6,67 r
Ammophorus peruvianus
0,2
8,89 r
Parahelops pubescens
0,41
6,67 r
Carpophilus sp
0,14
2,22 r
VESPIDAE
Polistes sp
0,55
13,33 c
CHALCIDIDAE
Brachymeria sp
0,27
8,89 r
LABIDURIDAE
Labiduria riparia
0,14
2,22 r
Euborellia annulipes
0,14%
4,44 r
Piophila casei
CI
PIOPHILIDAE
OL
24,44 c
1,09
BI
1,23
Titanogrypa sp
SARCOPHAGIDAE
MUSCIDAE
Chrysomya albiceps
S
DIPTERA
47%
Chrysomya rufifacies
EN
CI
A
CALLIPHORIDAE
OG
Cochliomyia macellaria
DE
DERMESTIDAE
TE
CA
CLERIDAE
COLEOPTERA
38 %
HISTERIDAE
BI
BL
IO
SCARABAEIDAE
HYMENOPTERA
6%
DERMAPTERA 6%
TENEBRIONIDAE
PROMECHEILIDAE
(=PERIMYLOPIDAE)
NITIDULIDAE
ANISOLABIDIDAE
C: Constantes; c: Comunes y r: raro.
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Polistes sp
Carpophilus sp
Parahelops pubescens
Ammophorus peruvianus
Psammetichus costatus
Aphodius pseudolividus
CA
S
Brachymeria sp
0,14%
0,14%
0,27%
0,55%
0,14%
0,41%
0,20%
0,20%
0,48%
4,23%
Euspilotus sp
Euspilotus decoratus
0,27%
3,34%
Saprinus sp
Necrobia ruficolis
GI
Labiduria riparia
BI
OL
O
Euborellia annulipes
0,27%
8,79%
Necrobia rufipes
Dermestes frischii
AS
2,66%
1,36%
Dermestes peruvianus
Dermestes maculatus
0,14%
Musca domestica
Titanogrypa sp
Sarcodexia sp
Chrysomya megacephala
Sarconesia chlorogaster
CI
DE
Sarcophaga sp
0,14%
0,20%
0,41%
1,09%
1,23%
1,02%
0,20%
A
Helicobia sp
Tricharaea sp
8,38%
Chrysomya albiceps
Lucilia sericata
1,30%
0,27%
Cochliomyia macellaria
0,00%
BL
IO
Chrysomya rufifacies
EN
2,45%
3,95%
Fannia canicularis
TE
C
Megaselia scalaris
30,67%
CI
3,95%
Piophila casei
5,00%
10,00%
21,13%
15,00%
20,00%
25,00%
30,00%
BI
Fig.1. Abundancia relativa de las especies encontradas en el cadáver de Sus scrofa domestica L. en Trujillo, 2015.
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35,00%
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CA
S
GI
BI
OL
O
8,89%
42,22%
24,44%
22,22%
11,11%
6,67%
10,00%
DE
15,56%
28,89%
24,44%
A
6,67%
91,11%
51,11%
CI
4,44%
6,67%
8,89%
68,89%
EN
4,44%
CI
33,33%
31,11%
AS
22,22%
8,89%
TE
C
0,00%
4,44%
2,22%
8,89%
13,33%
2,22%
6,67%
8,89%
6,67%
17,78%
20,00%
BL
IO
Euborellia annulipes
Labiduria riparia
Brachymeria sp
Polistes sp
Carpophilus sp
Parahelops pubescens
Ammophorus peruvianus
Psammetichus costatus
Aphodius pseudolividus
Euspilotus sp
Euspilotus decoratus
Saprinus sp
Necrobia ruficolis
Necrobia rufipes
Dermestes peruvianus
Dermestes frischii
Dermestes maculatus
Piophila casei
Megaselia scalaris
Fannia canicularis
Musca domestica
Helicobia sp
Tricharaea sp
Sarcophaga sp
Titanogrypa sp
Sarcodexia sp
Chrysomya megacephala
Sarconesia chlorogaster
Chrysomya albiceps
Chrysomya rufifacies
Lucilia sericata
Cochliomyia macellaria
28,89%
24,44%
30,00%
40,00%
50,00%
60,00%
70,00%
80,00%
90,00%
100,00%
BI
Fig.2. Porcentaje de ocurrencia de las especies encontradas en el cadáver de Sus scrofa domestica L. en Trujillo, 2015.
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2. Fases de descomposición cadavérica
En las Figs.3 y 4, se observan la duración y el estado de las fases y
IC
AS
etapas de descomposición, respectivamente, del cadáver de S. scrofa
domestica L. En estas fases se observa:
OG
 Fresca: Tuvo una duración de 1 día. No se observó ningún cambio
OL
externo en el cadáver (Fig. 4.A).
BI
 Cromática: Tuvo una duración de 1 día. Se observó la presencia de
una mancha verde tenue a la altura de la fosa iliaca derecha, también
EN
CI
A
S
el inicio del hinchamiento del cadáver.
 Enfisematosa: Tuvo una duración de 2 días. Se observó el cadáver
hinchado y la presencia de “burbujas” de gas en algunas cavidades
DE
(Fig.4.B).
CI
naturales del cadáver como boca y ano así como en la herida.
Para fines prácticos de la investigación las fases fresca, cromática y
TE
CA
enfisematosa, se consideraron como una sola, esto debido a su poca
BI
BL
IO
duración y a la baja diversidad de especies insectiles de cada una.
 Fase Colicuativa: Esta inició con el deshinchamiento del cadáver
hasta la exposición de algunos huesos. Tuvo una duración de 74
días. Se caracterizó por el desecamiento de piel y tejidos, ausencia
de órganos blandos como ojos (Fig.4. C).
16
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 Fase de Esqueletización: Tuvo una duración de 134 días. Se
observó la exposición del esqueleto, observándose primero en las
IC
AS
partes con menos tejido muscular como son cabeza y extremidades
BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
EN
CI
A
S
BI
OL
OG
(Fig.4. D).
17
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TE
C
A
DE
CI
EN
CI
AS
BI
OL
O
GI
CA
S
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BI
BL
IO
Fig.3. Duración de las fases de descomposición del cadáver de Sus scrofa domestica L. Trujillo, 2015.
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TE
CA
DE
CI
EN
CI
A
S
BI
OL
OG
IC
AS
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IO
Fig.4. Estados de las fases de descomposición del cadáver de Sus scrofa domestica
BI
BL
L. Trujillo, 2015: A. Fase Fresca; B. Fase Cromática y Enfisematosa; C. Fase
Colicuativa; D. Fase de Esqueletización.
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3. Categorías ecológicas de las especies determinadas
IC
AS
De los 1 467 ejemplares adultos procedentes de las colectas en
campo, las especies encontradas fueron agrupadas en 4 categorías
ecológicas necrófagos, necrófilos, omnívoros y accidentales u oportunistas
OG
con 80,57; 17,45; 0,55 y 1,43% de abundancia relativa respectivamente
1 182, 256, 8, 21 individuos para cada categoría
OL
además con
BI
respectivamente (Tabla 2).
S
En las especies necrófagas la más abundante fue Dermestes
EN
CI
A
maculatus con un 38,07 % seguido de Cochliomyia macellaria con 26.23 %
del total de especímenes de esta categoría.
En las especies necrófilas destacó Necrobia rufipes con 50,39 %
DE
categoría.
CI
seguido de Euspilotus sp con 24,22 % del total de especímenes de esta
TE
CA
Como especie omnívora se encontró sólo a Polistes sp con un total de
8 especímenes.
IO
Como especies accidentales destacan Aphodius pseudolividus
BI
BL
Balthasar y Ammophorus peruvianus Guérin-Méneville con 33,33 y 28,57 %
de abundancia relativa respectivamente.
20
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Tabla 2. Categorías ecológicas encontradas en el cadáver de Sus scrofa domestica
CI
IO
TE
CA
DE
Necrobia rufipes
Necrobia ruficolis
NECROFILOS
Brachymeria tibialis
(PREDADORES Y Euspilotus decoratus
PARASITOIDES)
Euspilotus sp
17.45 %
Saprinus sp
Euborellia annulipes
Labiduria riparia
Subtotal de individuos
OMNIVOROS
Polistes sp
0.55 %
Subtotal de individuos
Psammetichus costatus
ACCIDENTALES/
Ammophorus peruvianus
OPORTUNISTAS
Parahelops pubescens
1.43 %
Carpophilus sp
Aphodius pseudolividus
Subtotal de individuos
TOTAL DE INDIVIDUOS
OG
450
20
39
310
4
19
123
3
15
18
16
6
3
2
36
58
2
58
OL
EN
CI
A
S
Dermestes maculatus
Dermestes frischii
Dermestes peruvianus
Cochliomyia macellaria
Lucilia sericata
Chrysomya rufifacies
Chrysomya albiceps
Sarconesia chlorogaster
NECROFAGOS
Chrysomya megacephala
80.57 %
Sarcodexia sp
Titanogrypa sp
Sarcophaga sp
Tricharaea sp
Helicobia sp
Fannia canicularis
Musca domestica
Megaselia scalaris
Piophila casei
Subtotal de individuos
BI
BL
Abundancia
relativa
(%)
38,07
1,69
3,30
26,23
0,34
1,61
10,41
0,25
1,27
1,52
1,35
0,51
0,25
0,17
3,05
4,91
0,17
4,91
1182
N°
Especímenes
ESPECIES
BI
CATEGORIA
IC
AS
L. en Trujillo, 2015.
129
4
4
4
62
49
2
2
50,39
1,56
1,56
1,56
24,22
19,14
0,78
0,78
256
8
100
8
3
6
3
2
7
14,29
28,57
14,29
9,52
33,33
21
1467
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Musca domestica; 4,91%
Megacelia scarlaris; 0,17%
Fannia canicularis; 3,05%
Piophila
casei;
4,91%
Helicovia sp; 0,17%
Tricharaea sp; 0,25%
Sarcophaga sp; 0,51%
Titanogrypa sp; 1,35%
Chrysomia
megacephala; 1,27%
Dermestes maculatus;
38,07%
Sarconesia chlorogaster;
0,25%
Chrysomia albiceps ; 10,41%
OG
Chrysomia rufifacies ; 1,61%
IC
AS
Sarcodexia sp; 1,52%
OL
Lucilia sericata ; 0,34%
Cochliomyia macellaria;
26,23%
BI
Dermestes frishii; 1,69%
EN
CI
A
S
Dermestes peruvianus; 3,30%
Fig. 5. Porcentaje de abundancia delas especies necrófagas asociadas al cadáver
de Sus scrofa domestica L. Trujillo, 2015.
Euborellia
annulipes; 0,78%
DE
CI
Labiduria riparia;
0,78%
TE
CA
Saprinus sp;
19,14%
Necrobia rufipes;
50,39%
BI
BL
IO
Euspilotus sp;
24,22%
Euspilotus
decoratus; 1,56%
Brachymeria sp;
1,56%
Necrobia
ruficolis; 1,56%
Fig.6. Porcentaje de abundancia de las especies necrófilas asociadas al cadáver de
Sus scrofa domestica L. Trujillo, 2015.
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OG
IC
AS
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BI
OL
Polistes sp ;
100,00%
S
Fig.7. Porcentaje de abundancia de las especies Omnívoras asociadas al cadáver
DE
CI
EN
CI
A
de Sus scrofa domestica L. Trujillo, 2015.
Psametichus
costatus;
14,29%
BI
BL
IO
TE
CA
Aphodius
pseudolividus;
33,33%
Ammophorus
peruvianus ;
28,57%
Carpophilus
sp; 9,52%
Parahelops
pubescens;
14,29%
Fig.8. Porcentaje de abundancia de las especies accidentales asociadas al cadáver
de Sus scrofa domestica L. Trujillo, 2015.
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4. Entomofauna por fase de descomposición
Durante el desarrollo de las colectas se encontraron que las especies
IC
AS
se distribuyeron en las fases de descomposición como se muestra en la

OG
Cuadro 1:
Fresca+ Cromática+ Enfisematosa
OL
La especies que destacaron fueron: Cochliomyia macellaria,
BI
Lucilia sericata, Chrysomia rufifacies, Chrysomia albiceps por
mantenerse presentes durante la duración de estas fases. Aphodius
EN
CI
A
S
pseudolividus se destacó por ser el primer coleóptero en presentarse
en estas fases (Cuadro 1).

CI
Colicuativa:
Las especies que destaco fue Dermestes maculatus por
DE
presentarse desde el inicio de esta fase, hasta el final. También
TE
CA
destacó Labiduria riparia (Pallas) por solo presentare durante un día
en esta fase y durante todo el muestro (Cuadro 1).
BI
BL
IO

Esqueletización:
Se destacaron las especies D. maculatus y Necrobia rufipes
por estar de principio a fin de esta fase. Además destacó Chrysomya
albiceps por ser el único representante de la familia Calliphoridae en
presentarse en esta fase (Cuadro 1).
24
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Cuadro 1. Entomofauna encontrada en las colectas durante 45 días de muestreo por cada fase de descomposición del
BI
BL
IO
TE
C
A
DE
CI
EN
CI
AS
BI
OL
O
GI
CA
S
cadáver de Sus scrofa domestica L. Trujillo, 2015.
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5. Análisis de diversidad de la entomofauna cadavérica
5.1.
Índices de diversidad comunitaria alfa por fase
IC
AS
Los resultados de estos índices se presentan en las Tablas 3, 4 y 5:

OG
5.1.1. Índices de riqueza especifica:
Índice de Margalef
OL
Según este índice la mayor riqueza específica se
categoría
formada
BI
encuentra en la fase colicuativa con 4,52; seguido de la
por
la
fase
Fresca-Cromática-
EN
CI
A
S
Enfisematosa con 2,491 y la fase de Esquelétización
1,758 (Tabla 3).
5.1.2. Índices de abundancia proporcional
Índice de Simpson
CI

DE
La categoría conformada por las fases Fresca-
BI
BL
IO
TE
CA
Cromática-Enfisematosa y la fase Colicuativa presentan

como valores del índice de Simpson a 0,6566 y 0,8342
respectivamente, la fase Esquelética presento un valor de
0,579 para este índice. (Tabla 3).
Índice de Shannon-Wiener
El grado de incertidumbre de las muestras
obtenidas en la categoría compuesta por la fase FrescaCromática- Enfisematosa es de 1,507, para la fase
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Colicuativa el valor es de 2,383 y para la Esqueletización
fue de 1,257 (Tabla 3).

IC
AS
Índice de Pielou
Las fases Fresca-Cromática-Enfisematosa, la
fase Colicuativa y la Esqueletización presentaron como
OG
valores para este índice a 0,5437; 0,6938; 0,5244
OL
respectivamente. Los valores obtenidos nos indican que
existe homogeneidad de abundancia en todas las fases
5.2.
EN
CI
A
S
BI
(Tabla 3).
Índices de diversidad comunitaria alfa en los órdenes Coleoptera
y Diptera
CI
Se calcularon los índices de diversidad alfa para los órdenes
Coleoptera y Diptera por ser los más representativos presentes en la
DE
entomofauna de importancia forense colectada (Tabla 4 y 5). Estos
TE
CA
índices como su comparación entre órdenes y por cada fase de
descomposición se presentan a continuación:
BI
BL
IO
5.2.1.
Índices de riqueza especifica

Índice de Margalef
La fase Fresca-Cromática-Enfisematosa presento
para el orden Coleoptera el valor de 0,5581 y para Diptera
1,838. En la fase Colicuativa los valores fueron de 1,93
para Coleoptera y 2,351 para Diptera. El valor del índice
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para Coleoptera en la fase Esqueletización fue de 0,8925
y 1,259 para Diptera. Los valores demuestran que el
el trabajo.
índices de abundancia proporcional

Índice de Simpson
OG
5.2.2.
IC
AS
orden Diptera presenta la mayor riqueza de especies en
OL
El valor de este índice en la fase Fresca-CromáticaEnfisematosa para el orden Diptera fue de 0,6328 y para
BI
el orden Coleoptera fue de 0,2778. Para la fase
EN
CI
A
S
Colicuativa los valores fueron 0,8041 y 0,6656 para
Diptera y Coleoptera respectivamente, para la fase de
Esqueletización el valor para Diptera fue 0,5625 y para
CI
Coleoptera 0,5046. Los valores promedios obtenidos para
este índice de los órdenes Coleoptera y Diptera fueron
DE
0,4827 y 0,6665 respectivamente, son estadísticamente
TE
CA
diferentes, resultando mayor para el orden Diptera.
BI
BL
IO

Índice de Shannon-Wiener
El grado de incertidumbre para Diptera fue para
cada fase de descomposición 1,37; 1,981 y 1,117
respectivamente, siendo en la fase Colicuativa donde se
da el valor más alto. En Coleoptera los valores fueron de
0,45; 1,557 y 0,9628 respectivamente, teniendo en la fase
Colicuativa el valor más alto.
28
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
Índice de Pielou
Los valores para Diptera para cada fase fueron 0,5514; 0,7505
IC
AS
y 0, 6941 siendo la fase Colicuativa la que presenta el valor más
alto. En Coleoptera los valores fueron de 0,65; 0,6072; 0,5374
respectivamente para cada fase de descomposición, siendo la
OG
fase Fresca-Cromática-Enfisematosa la que presenta el valor
BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
EN
CI
A
S
BI
OL
más alto.
29
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Tabla 3. Índices de diversidad de tipo alfa por cada fase descomposición del cadáver
IC
AS
de Sus scrofa domestica L. en Trujillo, 2015.
Fresca+ Cromática+
Enfisematosa
Colicuativa
Simpson
0,6566
0,8342
Margalef
2,491
4,52
1,758
Pielou
0,5437
0,6938
0,5244
Shannon
1,507
2,383
1,257
0,579
EN
CI
A
S
BI
OL
OG
Esqueletizacion
Tabla 4. Índices de diversidad de tipo alfa para el orden Coleoptera por cada fase
Fresca+ Cromática+
Enfisematosa
Colicuativa
Esqueletizacion
Simpson
0,2778
0,6656
0,5046
Margalef
0,5581
1,93
0,8925
Pielou
0,65
0,6072
0,5374
Shannon
0,4506
1,557
0,9628
BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
descomposición del cadáver de Sus scrofa domestica L. en Trujillo, 2015.
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OL
OG
IC
AS
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BI
Tabla 5. Índices de diversidad de tipo alfa para el orden Diptera por cada fase
EN
CI
A
S
descomposición del cadáver de Sus scrofa domestica L. en Trujillo, 2015.
Colicuativa
Esqueletizacion
Simpson
0,6328
0,8041
0,5625
Margalef
1,838
2,351
1,259
Pielou
0,5514
0,7505
0,6941
Shannon
1,37
1,981
1,117
BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
Fresca+ Cromática+
Enfisematosa
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CA
S
16
GI
14
BI
OL
O
12
AS
8
EN
CI
6
CI
4
DE
2
0
2
3
4
5
6
7
8
9
10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45
A
1
COLUCUATIVA
TE
C
COMPLEJO
INICIAL
ESQUELETICA
DIAS DE MUESTREO
L. en Trujillo, 2015.
BL
IO
Fig.9. Riqueza de especies de acuerdo a los días de muestreo para la descomposición del cadáver de Sus scrofa domestica
BI
N° DE ESPECIES
10
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IV.
DISCUSIÓN
IC
AS
En la tabla 1, se observa que la fauna entomológica del cadáver de cerdo
estuvo compuesta por una diversidad de insectos de los órdenes Diptera,
OG
Coleoptera, Hymenoptera, Dermaptera; el orden Diptera fue el más predominante
con 6 familias y 15 especies estos resultados coinciden en parte con Carvalho et al
OL
(2000) quien trabajo con cadáveres de cerdos y de humanos, encontrando a los
BI
Diptera con 26 familias y 25 especies. El orden Coleoptera fue el segundo taxón de
S
gran predominancia en familias y especies durante la descomposición del cadáver
EN
CI
A
de cerdo en el presente trabajo Thyssen (2000) considera a estos insectos como
unos de los principales consumidores de la materia en descomposición, esto
probablemente se deba a que muchas familias de este orden utilizan el cadáver
CI
para su alimentación, apareamiento y como depósito de sus huevo (Gennard, 2007).
DE
En la misma tabla se observa que la familia Dermestidae tuvo mayor
abundancia, constituyendo a Dermestes maculatus como la especie más abundante
TE
CA
y predominante , esto no concuerda con Peceros (2011) quien reporta a Musca
domestica como la especie más abundante para su trabajo, esto probablemente se
IO
deba a la ubicación de Huarochirí que se halla a 2 398 msnm aproximadamente, ,
BI
BL
donde realizó su investigación; diferentes a la altitud de 34 msnm del experimento
del presente trabajo; pues posiblemente a determinadas altitudes la fauna insectil
cadavérica es distinta por diversos factores como vegetación, clima entre otros.
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Otra familia que fue más abundante fue Calliphoridae, resaltando la especie
Cochliomyia macellaria, con una abundancia mayor durante las primeras fases de
IC
AS
descomposición, estos resultados concuerdan con los obtenidos por Infante (2003),
pues registra a C. macellaria como la segunda especie más numerosa en su trabajo,
esto probablemente por la similitud de los lugares donde se realizaron ambas
OG
investigaciones, ya que tanto Ica como Trujillo se encuentran ubicados dentro de la
OL
franja costera peruana, que se caracteriza por presentar climas secos.
BI
En la Fig.1 , se observa la duración de las fases de descomposición de Sus
S
scrofa, Fresca, Cromática, Enfisematosa, Colucuativa y Esqueletización con 1, 1, 2,
EN
CI
A
74, 134 días respectivamente, con un periodo total de descomposición de 6 meses
estos resultados no coinciden con lo obtenido por Olaya (2001), quien registra para
la etapa Fresca y Cromática 2 días, la etapa Enfisematosa o Hinchamiento 6 días,
CI
etapa Colicuativa o Licuefacción 9 días y 46 días para la Momificación o
DE
Esqueletización, datos que corresponden al cadáver de un perro y a la vez estarían
relacionados con la ubicación del sistema experimental el cual fue localizado cerca
TE
CA
a densos pastizales con plantas de 70 a 85 cm de alto, lo que pudo influir en la
abundancia de la fauna insectil, ya que Olaya (2001) encontró un aproximado de 42
familias mientras que en la presente investigación solo 17, ya que el lugar donde se
IO
instaló el sistema experimental no cuenta con vegetación densa, pues solo está
BI
BL
rodeada de árboles de Eucaliptus sp “eucalipto” los cuales inhiben el crecimiento de
otra plantas alrededor por el fenómeno de alelopatía.
34
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En la tabla 2,
se muestra las cuatro categorías ecológicas durante los
procesos de descomposición cadavérica, estos son: necrófagas, necrófilas
IC
AS
(Predadoras y Parasitoides), Omnívoras y accidentales u oportunistas, donde los
necrófagos fueron los más abundantes del total de especímenes encontrados lo
cual concuerda con Peceros (2011) quien registra las cuatro categorías ecológicas
OG
y a los necrófagos como los más abundantes en su trabajo, esto debido a que los
OL
necrófagos probablemente han desarrollado mecanismos más desarrollados para
captar las señales químicas que se desprende del cadáver, ya que ellos se
BI
alimentan enteramente de este y la mayoría depende del cadáver para realizar sus
EN
CI
A
S
ciclos de vida.
En el Cuadro 1 se observa la entomofauna presente en las fases de
descomposición, el primer grupo de insectos adultos en llegar al inicio de la
CI
descomposición pertenecieron al orden Diptera con las especies C. macellaria,
DE
Lucilia sericata, Chrysomya rufifacies, Chrysomya megacephala y Fannia
canicularis; lo cual concuerda con lo observado por Iannacone (2003) y Garcés et
TE
CA
al (2004), quienes reportan a C. macellaria como la primera especie en llegar
durante la fase inicial de descomposición, esto probablemente se deba a que esta
especie es más sensible a los gases de nitrógeno y sulfuro provenientes de las
IO
proteínas degradadas en el cadáver (Gines, 2015). Otros dípteros que colonizaron
BI
BL
el cadáver fueron Chrysomya albiceps esta estuvo presente durante todas las fases
de descomposición, Sarconesia chlorogaster, Sarcodexia sp, Titanogrypa sp,
Sarcophaga sp, Tricharaea sp, Helicobia sp, M. domestica, Megaselia scalaris y
Piophila casei, estas se encuentran desde las fases iniciales hasta la colicuativa.
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El segundo grupo en llegar fueron los Coleopteros donde la familia
Scarabaeidae con la especie Aphodius pseudolividus se presentó desde las
IC
AS
primeras fases de descomposición, tal como lo menciona Gennard (2007), seguido
de Saprinus sp quien se presenta casi al final de la fase enfisematosa. La familia
Dermestidae con las especies D. maculatus, Dermestes frischii y Dermestes
OG
peruvianus se presentan desde el inicio de la etapa colicuativa hasta el final del
OL
proceso de descomposición, estos resultados no concuerdan por lo hallado por
Gines (2015), quien solo registra dos especies de las anteriores citadas las cuales
BI
son D. maculatus y D. frischii para las últimas fases, esto probablemente se deba a
EN
CI
A
S
que los Dermestidae son necrófagos estrictos tanto en estado de larva como adulto
y de que tienen predilección por los tejido desecados como piel, cartílagos y tejido
muscular desecado adherido a los huesos (Ciro, 2008).
CI
En las tablas 3,4 y 5 se muestran los valores para los índices de diversidad
DE
encontrada en cada fase de descomposición, se utilizaron los índices de riqueza
de Margalef, dominancia de Simpson, probabilidad de Shannon Wiener y Equidad
TE
CA
de Pielou. Los valores para el índice de Dominancia de Simpson según las fases de
descompoción fueron: Fresca-Cromática-Enfisematosa 0,6566, Colicuativa 0,8342
y la Esqueletización 0,579, en este trabajo el valor de la fase colucuativa se
IO
aproxima a 1 lo que indica que hay una familia predominante, que es la familia
BI
BL
Dermestidae, coincidiendo con Iannacone (2003), quien registra a los Dermestidae
como dominantes también para la fase Colicuativa, explicado por este investigador
a la poca abundancia de especies que encontró en su trabajo. Lo que reafirma que
36
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estos coleopteros por su condición ecológica de necrófagos estrictos siempre están
presentes en estas fases.
IC
AS
El índice de Margalef nos indica la riqueza de especies pero basándose en el
número de individuos, donde los valores para cada fase fue: Fresca-Cromática-
OG
Enfisematosa 1,507; Colicuativa 2,383 y Esqueletización 1,257, estos valores nos
indican que existe una riqueza muy baja puesto que los valores del índice van de 2
OL
a 6 eso indica que la cantidad de individuos en algunas especies es muy baja, esto
BI
concuerda con Iannacone (2003), quien registra niveles bajos de riqueza también
S
en su estudio, probablemente porque la riqueza se ve afectada por factores
EN
CI
A
relacionados al clima, ya que la diversidad faunística
En el índice de Pielou demuestra equidad, ósea la proporcionalidad de
especies dentro del muestreo teniendo como valores para las fases Fresca-
CI
Cromática-Enfisematosa 0,5437, Colicuativa 0.6938 y Esqueletización 0.5244,
DE
observando los valores notamos que la abundancia de especies en las etapas no
es igualmente abundante debido a que los valores no se aproximan a 1, así
TE
CA
coincidiendo con Iannacone (2003), quien registra valores por debajo de 0.4 para
este índice en su estudio, esto probablemente se deba a que la abundancia de
IO
especies encontradas en su trabajo es baja.
BI
BL
El índice de Shannon Wiener presento valores para las fases Fresca-
Cromática-Enfisematosa una incertidumbre de 1,507; en la Colicuativa de 2,383 y
en la Esqueletización de 1,257, lo que demuestra una baja probabilidad en las fases
Fresca-Cromática-Enfisematosa y Esqueletización, en la Colicuativa vemos que el
37
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valor se aproxima a tres, por tanto de una incertidumbre media, es decir una mayor
probabilidad de que un individuo elegido al azar pertenezca a determinada especie,
IC
AS
esto coincide con Iannacone (2003), quien registra valores bajos para estos índices
en las etapas de descomposición de cerdo, esto puede deberse a la zona y el clima
donde se realizó la experimentación, la cual presenta características de
OG
desertificación.
OL
En la Tabla 4, los Coleopteros presentaron claramente valores para los
BI
índices de diversidad y riqueza bajos, asimismo esto indica una baja diversidad de
S
especies. El índice de Simpson por ejemplo nos indica claramente que existe una
EN
CI
A
marcada dominancia en la fase Fresca-Cromática-Enfisematosa, en las otras fases
la dominancia entre especies es tenue o media, entre estas especies dominantes
de Coleopteros resalta D. maculatus estos resultados concuerdan por lo descrito
CI
por Peceros (2011) quien describe a D. maculatus como una de las especies
DE
dominantes en su estudio, probablemente por la baja abundancia de especies de
Dermestidae y coleopteros en general encontrados en su trabajo.
TE
CA
En la Tabla 5, los Dípteros presentaron índices de diversidad y dominancia
similares para las fases de descomposición, pero los índices de diversidad
IO
presentan valores muy por debajo de los limites, lo cual indica que la diversidad es
BI
BL
baja, en el índice de dominancia de Simpson por ejemplo claramente se ve que
existen especies dominantes en las fases de descomposición como es el caso de
C. macellaria esto coincide con Iannacone (2003), quien registra a C .macellaria
como especie dominante para el orden Diptera, esto probablemente debido a ser la
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especie más numerosa en el orden Diptera donde solo registra a 2 especies
incluida C. macellaria.
IC
AS
Finalmente en la Fig. 9, tenemos la riqueza de especies de acuerdo al día de
muestreo donde tenemos que en la etapa colicuativa se presenta el día del
OG
muestreo donde se obtuvo más especies, así mismo en la etapa esquelética se
observa el día con menos cantidad de especies, esto coincide con Barros de Souza
OL
et al. (2008), quien menciona que la diversidad de especies va disminuyendo
BI
conforme avanza el grado de descomposición del cadáver, debido a que el cadáver
S
va perdiendo volumen, por tanto perdida de alimento para las especies de insectos
BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
EN
CI
A
que se alimentan de él.
39
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CONCLUSIONES
IC
AS
V.
La entomofauna encontrada durante la descomposición del cadáver de

OG
Sus scrofa domestica L. corresponden a los órdenes Diptera, Coleoptera,
OL
Hymenoptera y Dermaptera.
En el orden Diptera se presentó como familia necrófaga de mayor
BI

S
presencia Calliphoridae seguido por Sarcophagidae, Piophilidae y Fannidae;
EN
CI
A
en el orden Coleoptera la familia Dermestidae fue la de mayor presencia
seguido por Cleridae e Histeridae.
La duración total del periodo de descomposición fue de 6 meses y las
CI

DE
fases: Fresca Cromática, Enfisematosa, Colicuativa, Esqueletización con 1,

TE
CA
1, 2, 74 y 134 días respectivamente.
Se encontraron insectos
necrófagos, necrófilos, omnívoros y
IO
accidentales u oportunistas con 80, 57; 17, 45; 0,55 y 1.43 % de abundancia
BI
BL
respectivamente.
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En la entomofauna por fase de descomposición Cochliomyia

macellaria, se presentó como el primer colonizador y Dermestes maculatus
IC
AS
fue la especie dominante.
La diversidad de la entomofauna cadavérica es baja tanto en riqueza,

BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
EN
CI
A
S
BI
OL
OG
dominancia y equidad.
41
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VI.
Se deben realizar trabajos similares en otros lugares de La Libertad y del
IC
AS

RECOMENDACIONES
Perú, ya que la composición faunística por región es muy distinta y además
OG
porque la información sobre fauna cadavérica es muy escasa en nuestro
OL
país, de esta manera puede ser utilizada como herramienta para la
Se deben realizar trabajos similares en otras estaciones del año para de esta
S

BI
Entomología Forense.
EN
CI
A
manera establecer con mayor precisión la entomofauna de mayor
importancia durante todo el año en los procesos de descomposición, esto
BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
debido a la variación faunística por estación.
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VII.
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
IC
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diagnoses of species of Histeridae (Coleoptera) associated with decaying
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carcasses in Argentina. Zookeys, 261 (1): 61-84.
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Almeida, L. & Mise, K. 2009. Diagnosis and key of tha main families and species of
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ANEXOS
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Anexo 1: Dimensiones de jaula de exclusión. a) Dimensiones de Cobertura
externa. b) Dimensiones de la tapa. d) Dimensiones de la estaca.
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Anexo 2: Lugar de experimentación ubicado a 8°06’58.75’’ S 79°02’26.72’’ O a 34
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msnm. (Fuente Google earth).
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Anexo 3: Promedios de Temperatura ambiental, corporal y humedad relativa de los
T° Amb
T° Corp
1
28,2
33,7
2
28,1
30,5
3
4
5
26
27,5
31,5
30,4
33,1
31,3
6
7
8
9
10
23,3
25,2
25,3
28,9
26
36,1
37,1
31,8
36,1
36,4
11
28,1
OL
68,5
61,5
63,5
49,7
59,5
32,5
52,5
12
30
38,5
52,5
13
27,8
29,5
55
14
15
16
17
18
19
20
21
24,9
23,9
24,9
33,3
30,6
26,5
32,4
24
33,8
27,1
32,3
38,5
42,5
29,5
33,5
26
69
59,5
51,5
52
47
39
45,5
68,5
22
27,4
34,9
58,5
23
24
28,8
24,8
29
33
58,5
67
25
23,5
26,5
62,5
26
25,4
29,6
63
27
25,9
31,5
68
28
26,4
28,2
59
29
30
26,5
22,2
29,5
21,9
39
84
31
24,4
27,1
69
32
33
28,7
25,9
29,3
27,6
49,5
60,5
34
35
36
27,6
25,5
23,9
28,2
25
23,3
52,5
59,5
67
37
38
39
40
41
23,9
20,4
28,4
17,4
23,9
23,1
20,6
28,2
17,4
23,3
67
80
48,5
80
67
42
34,7
26,8
49,5
43
30,9
30,3
40
44
23,8
24,3
68,5
45
21,7
22
66
EN
CI
A
BI
BL
IO
TE
CA
DE
CI
COLICUATIVA
ESQUELETICA
47
47
57
39
52
OG
COMPLEJO INICIAL
H%
IC
AS
DIA DE MUESTREO
BI
FASE DE DESCOMPOSICION
S
45 días de muestro del cadáver de Sus scrofa domestica, Trujillo, 2015.
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GI
Anexo 4. Valores promedios de temperatura y humedad relativa por fase de descomposición para el cadáver Sus scrofa
Fase
BI
OL
O
domestica L. en Trujillo, 2015.
Temperatura (ºC)
AS
Amb
Fresca+ Cromática+
Hinchamiento
DE
Cerdo
EN
Colicuativa
CI
Amb
CI
Cerdo
Amb
A
Esqueletizacion
27.4
47.5
31.9
26.6
58.5
31.0
25.0
61.6
25.2
BI
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TE
C
Cerdo
Humedad Relativa (%)
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Anexo 5: Certificado emitido por el Blgo. Luis Alberto Figueroa Reynoso,
entomólogo especialista del Departamento de Entomología del Museo
de Historia Natural “Javier Prado” de la Universidad Nacional Mayor de
San Marcos, Lima – Perú.
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Anexo 6: Especies verificadas y confirmadas por el Blgo. Luis Alberto Figueroa
Reynoso, entomólogo especialista del Departamento de Entomología del
Museo de Historia Natural “Javier Prado” de la Universidad Nacional
Mayor de San Marcos, Lima – Perú.
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Anexo 7: Lugar donde se instaló el sistema experimental y donde se realizó
el muestreo en el cadáver de Sus scrofa domestica L. Trujillo, 2015.
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Anexo 8: Colecta y toma de datos (derecha) y termohigrometro digital (Izquierda).
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S
Anexo 9: Etiquetado de frascos donde se conservaron los adultos encontrados en
PERÚ: LL. Trujillo. Trujillo.
Campus UNT.
8°06′43″S/
79°01′44″O
34msnm
30.v.2014.
J. Villanueva
O: Diptera.
F: Calliphoridae.
Lucilia sericata
Meigen, 1826.
Det.: Jose Villanueva
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CI
A
el cadáver de Sus scrofa domestica L. Trujillo 2015.
Anexo 10: Etiquetado de insectos adultos en montaje: Izquierda: Adulto montado
con
etiquetas
entomológicas.
Derecha:
Diseño
de
etiquetas
entomológicas de ubicación y determinación.
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Anexo 11: Cochliomyia macellaria Fabricius, 1775; Vista lateral.
Anexo 12: Cochliomyia macellaria Fabricius, 1775; Vista dorsal.
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Anexo 13: Lucilia sericata (Meigen, 1826); Vista lateral.
Anexo 14: Chrysomya rufifacies (Macquart, 1842); Vista lateral.
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Anexo 15: Chrysomya albiceps (Wiedemann, 1819); Vista lateral.
Anexo 16: Sarconesia chlorogaster Wiedemann, 1830; Vista lateral.
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Anexo 17: Chrysomya megacephala (Fabricius, 1794); Vista lateral.
Anexo 18: Chrysomya megacephala (Fabricius, 1794); Vista frontal (nótese las
facetas agrandadas notablemente y la condición holoptica).
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Anexo 19: Sarcodexia sp; Vista lateral.
Anexo 20: Titanogrypa sp; Vista lateral.
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Anexo 21; Sarcophaga sp; Vista lateral.
Anexo 22: Helicobia sp; Vista lateral.
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Anexo 23: Tricharaea sp; Vista lateral.
Anexo 24: Tricharaea sp; Vista dorsal.
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Anexo 25: Musca domestica Linnaeus, 1758; Vista lateral.
Anexo 26: Fannia canicularis (Linnaeus, 1761); Vista lateral
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Anexo 27: Megaselia scalaris Loew, 1866; Vista lateral.
Anexo 28: Piophila casei (Linnaeus, 1758); Vista lateral.
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Anexo 29: Dermestes maculatus De Geer, 1774; Vista dorsal.
Anexo 30: Dermestes maculatus De Geer, 1774; Vista lateral.
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Anexo 31: Dermestes frischii Kugelann, 1792; Vista dorsal.
Anexo 32: Dermestes maculatus Kugelann, 1792; Vista lateral.
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Anexo 33: Dermestes peruvianus Castelnau, 1840; Vista dorsal
Anexo 34: Dermestes peruvianus Castelnau, 1840; Vista lateral.
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Anexo 35: Necrobia rufipes (De Geer, 1775); Vista dorsal.
Anexo 36: Necrobia rufipes (De Geer, 1775); Vista dorsal.
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Anexo 37: Necrobia ruficolis (Fabricius, 1775); Vista dorsal.
Anexo 38: Necrobia ruficolis (Fabricius, 1775); Vista lateral.
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Anexo 39: Saprinus sp; Vista dorsal.
Anexo 40: Saprinus sp; Vista lateral.
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Anexo 41: Euspilotus decoratus (Erichson, 1834); Vista dorsal.
Anexo 42: Euspilotus decoratus (Erichson, 1834); Vista lateral.
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Anexo 43: Euspilotus sp; Vista dorsal.
Anexo 44: Euspilotus sp; Vista lateral.
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Anexo 45: Aphodius pseudolividus Balthasar, 1941; Vista dorsal.
Anexo 46: Aphodius pseudolividus Balthasar, 1941; Vista lateral.
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Anexo 47: Psammetichus costatus Guérin, 1830; Vista dorsal.
Anexo 48: Psammetichus costatus Guérin, 1830; Vista lateral.
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Anexo 49: Parahelops pubescens Waterhouse, 1876; Vista dorsal.
Anexo 50: Parahelops pubescens Waterhouse, 1876; Vista lateral.
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Anexo 51: Ammophorus peruvianus Guérin-Méneville, 1830; Vista dorsal.
Anexo 52: Ammophorus peruvianus Guérin-Méneville, 1830; Vista lateral.
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Anexo 53: Carpophilus sp; Vista dorsal.
Anexo 54: Carpophilus sp; Vista lateral.
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Anexo 55: Polistes sp; Vista lateral.
Anexo 56: Brachymeria sp; Vista lateral.
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Anexo 57: Labiduria riparia (Pallas, 1773); Vista dorsal.
Anexo 58: Labiduria riparia (Pallas, 1773); Vista lateral.
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Anexo 59: Euborellia annulipes (Lucas, 1847); Vista dorsal.
Anexo 60: Euborellia annulipes (Lucas, 1847); Vista lateral.
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Anexo 61: Dípteros posados sobre el cadáver: Izquierda: Cochliomyia macellaria,
Chrysomya albiceps. Derecha: Chrysomya megacephala y Musca
doméstica.
Anexo 62: Colonización de orificios corporales naturales, nótese en la boca las
larvas de dípteros y espuma en la fase Enfisematosa.
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