Subido por COBA CHINGAY FRANZ FREIHERR

TAREA - CARBOHIDRATOS

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UNIVERSIDAD NACIONAL DE CAJAMARCA
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
Escuela Académico Profesional de Ingeniería en Industrias Alimentarias
PRÁCTICA: DETERMINACIÓN DE CARBOHIDRATOS EN ALIMENTOS
I.
INTRODUCCIÓN
Los carbohidratos constituyen la mayor parte de los componentes vegetales. Son
carbohidratos los diferentes azúcares, almidones, celulosa, hemicelulosas, pectinas
y numerosas gomas. Los azúcares como la glucosa, fructosa y sacarosa se
acumulan especialmente en el jugo celular; los almidones son los carbohidratos de
reserva y se encuentran en forma de plastidios; la hemicelulosa y pectinas son los
polisacáridos que conforman el material estructural y las gomas son productos de
desecho. Dada la importancia de estos compuestos se han desarrollado varios
métodos para su determinación: Fehling, Benedict, Somogy, Lane-Enyon,
Hagerdorn-Hensen, etc., pero todos ellos se basan en el mismo principio:
Todos los azúcares con un grupo aldehído libre o un grupo cetónico se clasifican
como azúcares reductores y se transforman fácilmente en enedioles (reductonas) al
calentarlos en soluciones alcalinas; dichos enedioles son altamente reactivos y se
oxidan fácilmente en presencia de oxígeno u otros agentes oxidantes, por lo tanto,
los azúcares en solución alcalina rápidamente reducen iones oxidantes como Ag+,
Hg+, Cu2+ y Fe(CN) 3- y los azúcares se oxidan formando mezclas complejas de
ácidos.
Esta acción reductora es la que se utiliza tanto en las determinaciones cualitativas
como cuantitativas.
Una de las técnicas analíticas más potentes consiste en determinar la cantidad de
una substancia disuelta midiendo la cantidad de radiación absorbida por la misma
es conocida como Espectrofotometría.
II.
OBJETIVOS
- Identificar la presencia de almidón en muestras de alimentos.
III.
FUNDAMENTO TEÓRICO
3.1.
PRUEBA DE LUGOL
3.1.1. Fundamento
La interacción del yodo o yodo potásico con el almidón forma coloraciones azules
oscuras, debido a la ocupación de los espacios libres del glúcido, este es un
glúcido alterado, al cual, sus propiedades físicas son modificadas, como la no
absorción lumínica.
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3.1.2. Método
1. Se toman 2 ml de la solución de muestra, se colocan en un tubo de ensayo.
2. Se agrega 2 gotas de lugol y 1 ml de agua (HARPER COLLEGE, n.d.); o
3. agregar 1 mL de reactivo para un peso de muestra de 100 mg (Girish, Et.Al.,
2009).
3.1.3. Resultados
La formación de un complejo azul oscuro, debido a la adhesión del colorante a
la molécula de azúcar.
Figura 1. Resultado negativo de la prueba de Lugol.
Nota. Tomado de HARPER COLLEGE, n.d.
3.2.
Figura 2. Resultado positivo de la prueba de Lugol.
Nota. Tomado de HARPER COLLEGE, n.d.
PRUEBA DE FEHLING
3.2.1. Fundamento
La prueba hace reducir el cobre (Cu++) por oxidación con los todos los azucares
reductores, siempre que esté en medio alcalino con una presencia de tartrato de
sodio y potasio para permitir la estabilización del cobre (De, Dey y Ghosh, 2010).
3.2.2. Método
Se llevan las dos fracciones del reactivo a un tubo de ensayo; la fracción A es el
sulfato de cobre 7 % disuelto en agua y la fracción B es el Tartrato de potasio 35
% e hidróxido de sodio 10 % diluidos en agua, una vez completado el reactivo
(A:1-2 mL +B:1-2 mL) (UNIVERSIDAD DE LA LAGUNA, n.d.) se mezcla bien y
se adicionan 1- 5 mL de la muestra al tubo de ensayo y se lleva al baño de maría
por 5 minutos (Danmalam, Et. Al., 2009).
3.2.3. Resultado
La reacción positiva forma un precipitado de color rojo ladrillo por la oxidación
del cobre (reducción).
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Figura 3. Coloración positiva (derecha) y negativa (Izquierda) de
Fehling.
Nota. Tomado de University of Oregon (n.d.)
3. MATERIALES Y MÉTODOS
4.1.
Materiales:
- Cápsula de porcelana de 8 cm. de diámetro.
- Agitador de vidrio.
- Piseta.
- Probetas de 100 mL, 250 mL, 1000 mL.
- Beaker de 50, 100 y 250 mL,
- Balanza analítica.
- Pipeta pasteur
Reactivos
- Solución de yodo.
- Yoduro de potasio (Lugol).
Muestras
- Papa
- Embutido.
- Fécula de maíz
- Leche fresca, queso.
- Agua destilada.
4.2.
Metodología
4.2.1. Determinación de almidón en embutidos
Preparación
Disolver 6 g de KI en 70 mL de agua; cuando esté completamente disuelto,
agrega 2 g de yodo metálico, disuelve y lleva a 100 mL.
Procedimiento
1. Pesa 5 g de muestra bien molida y transfiérelo a una cápsula de porcelana.
2. Agrega una cantidad suficiente de agua caliente para que la muestra se
disgregue perfectamente.
3. Deja enfriar.
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4. Agrega unas gotas de la solución de yodo —yoduro y mézclalo con ayuda
de un agitador de vidrio. La aparición de un color azul indica la presencia de
almidón. La presencia del color indica que la muestra de alimento está
adulterada.
5. Compara las observaciones obtenidas y discútelas con tus compañeros.
6. Elabora un reporte y entrégalo a tu profesor.
4.2.2. Determinación de almidón en fécula de maíz
Preparación
Coloque en un beacker una cantidad de fécula de maíz, con una pipeta o jeringa
descartable adicione 30 mL de agua, (en 3 veces) y agite la solución con una
varilla de agitación o cuchara.
Procedimiento
1. Tomar 1 mL de solución preparada en una cápsula de porcelana.
2. Adiciona 4 gotas de reactivo de Lugol, removiendo el contenido.
3. Para observar la reacción usaremos el control negativo, en este caso
glucosa.
Nota. La glucosa es un monosacárido, se espera que de negativo a la prueba.
4.2.3. Determinación de almidón en papa
Preparación
Prepare una muestra de papa cruda en cuadros.
Procedimiento
4. Deposite en un beaker.
5. Adicione 20 gotas de Lugol a lo largo de la muestra
6. Para observar la reacción usaremos el control negativo, en este caso
glucosa.
4. RESULTADOS Y ANÁLISIS
6.1. Diagrama de flujo y esquema de experimentación para cada prueba
6.2. Resultados
6.3. Responda
1. ¿Cuál es el papel que desempeña el almidón en los embutidos?
2. Investiga la cantidad permitida de almidón en embutidos.
3. En el procedimiento de fécula de maíz, comparado con el control
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negativo, que diferencias ves en el ensayo
4. ¿Por qué crees que ocurre esta diferencia? Usa el principio de
reacción.
5. ¿Existe alguna diferencia en la reacción yodo – papa comparado
con la reacción de fécula de maíz? ¿Por qué?
5. CONCLUSIONES
6. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Cifuentes, C. (sf). Manual de Laboratorio Química General. Universidad de
Santander.
Díaz, Jorrín & Bárcena (2014). Reacciones coloreadas para la determinación
cualitativa de azucares.
España.
[Citado el
30
de
octubre de 2014]. Disponible en:
http://www.uco.es/dptos/bioquimicabiolmol/pdfs/20%20REACCIONES%20COLOREADAS%20DE%20AZ%C3
%9ACARES.pdf
Ramírez, J. & Rodríguez, D. (2004). Manual de prácticas de laboratorio de química
II. Ediciones UIS. Colombia.
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8.1.
Anexo: criterios de calificación
Rúbrica de Evaluación
Criterios Para Evaluar el Informe
Tema:
Grupo:
1
Fecha:___/___/_____
PRESENTACIÓN
1.1
Aspectos de Presentación
En general tiene buen aspecto
1.1.1
1.1.2
Tiene buen aspecto y denota orden
1.2
¿Contiene las partes esenciales de un informe?
1.2.1
Introducción
a.
No está presente en el informe
Esta presente con un contenido incompleto del tema del tema y
b.
supera las 200 palabras
Resume el contenido del tema, es breve máximo 200 palabras
c.
1.2.1
Objetivo
No está presente en el informe
a.
Esta presente pero no presenta la característica SMART
b.
Esta presente y presenta la característica SMART
c.
1.2.2
Fundamento teórico
Está presente en el informe pero son incorrectas
a.
Está presente en el informe pero está incompleto
b.
Está presente, completo y correcto
c.
1.2.3
Materiales y métodos
Está presente en el informe pero son incorrectas
a.
Está presente en el informe pero está incompleto
b.
Está presente, completo y correcto
c.
1.2.4
Resultados y Discusión
El análisis esta fuera del tema en cuestión
a.
Presenta el análisis pero incompleto
b.
Realiza un anáilisis completo y acorde al tema en discusión.
c.
1.2.5
Conclusiones
1.2.5
2
a.
Las conclusiones no están presentes en el informe
b.
Las conclusiones están presentes pero no son correctas
c.
Las conclusiones están presentes y de acorde al tema de
desarrollo
Referencias bibliográficas
Las referencias bibliográficas están presentes pero mal
a.
redactadas
Las referencias bibliográficas están bien redactadas
b.
PUNTUALIDAD
¿Presentó el Informe en el día y la hora indicada?
2.1
El informe no se presentó a la hora indicada
2.1.1
El informe fue presentado dentro de la hora y la fecha indicada
2.1.2
CALIFICACIÓN FINAL =
P1
+
Puntualidad
Observaciones:………………………………………………………………………………….…………………………………………………
………………………………………………………………………………………………..………………………………………………………
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