Guía de tratamiento antimicrobiano basado en resultados de FilmArray BCID2 (panel de hemocultivos/sepsis) NOMBRE DE LA INSTITUCIÓN Autores: Introducción: El laboratorio clínico de NOMBRE DE LA INSTITUCIÓN usa una prueba molecular aprobada por la FDA y el INVIMA para la detección temprana de patógenos y genes de resistencia en botellas de hemocultivo positivas, llamada el Panel FilmArray BCID2. Esta prueba de PCR múltiple para identificar patógenos (bacterias, hongos) y genes de resistencia a los antimicrobianos, acortando el tiempo a identificación del patógeno y a tratamiento dirigido. Si bien la identificación del patógeno y de la presencia o ausencia de los mecanismos de resistencia puede orientar el tratamiento, la prueba molecular no arroja un antibiograma completo y por lo tanto no se substituye a las pruebas de cultivo convencionales, que arrojan un resultado 24 a 72h después de la prueba molecular. El tratamiento dirigido por la prueba molecular debe por lo tanto basarse en el resultado de la prueba de FilmArray pero también en la epidemiología local e institucional de las infecciones del torrente sanguíneo. El comité de infecciones de NOMBRE DE LA INSTITUCIÓN diseñó la presente guía de recomendación de tratamientos antimicrobianos con base a las guías nacionales de sepsis y de candidemia, y a la epidemiología local de nuestra institución y de la población que atendemos, con fin de brindar un apoyo a la toma de decisión clínica frente al resultado de la prueba molecular. Buenas prácticas de toma de muestra y recomendaciones de buenas prácticas: Se recomienda esperar la positividad de la segunda botella si el informe reporta estructuras de tipo cocos en racimos (posible Staphylococcus coagulasa-negativo contaminante), mientras que se puede solicitar la prueba molecular desde la primera botella positiva si se reportan bacilos o levaduras. Si el paciente presenta hemocultivos positivos de catéter y de sangre periférica, el panel BCID2 se hará a partir de la botella positiva de sangre periférica. BOTELLA ANAEROBICA. Número de Botellas. Solicitud de la prueba: La prueba se puede solicitar apenas se reporte el informe preliminar de positividad de la botella de hemocultivos (resultado crítico reportado por teléfono al servicio) y hasta 24 horas después de este reporte. Al momento del reporte crítico, el laboratorio tiene la responsabilidad de preguntar al servicio si se requiere el montaje de la prueba BCID2 con la botella positiva. La solicitud debe acompañarse del formato Mipres (CUPS 908859 - IDENTIFICACIÓN SIMULTÁNEA DE MÚLTIPLES PATÓGENOS). Los criterios de los pacientes candidatos a la realización del panel BCID2 son: Tabla 1: Patógenos y genes de resistencia detectados por el Panel BCID2: Bacteria Gram-Positivas Levaduras Gen de resistencia Candida albicans CTX-M (BLEE) Enterococcus faecium Bacterias Gramnegativas Complejo Acinetobacter calcoaceticus-baumannii Bacteroides fragilis Candida auris Listeria monocytogenes Enterobacterales Candida glabrata Staphylococcus spp. Candida krusei - Staphylococcus aureus - Complejo Enterobacter cloacae - Escherichia coli - Staphylococcus epidermidis - Klebsiella aerogenes Candida tropicalis KPC (Carbapenemasa a serina) OXA-48 (Carbapenemasa a serina) IMP (Carbapenemasa metalobetalactamasa) NDM (Carbapenemasa metalobetalactamasa) VIM (Carbapenemasa metalobetalactamasa) - Staphylococcus lugdunensis - Klebsiella oxytoca Cryptococcus neoformans/gattii Streptococcus spp. - Streptococcus agalactiae - Klebsiella pneumoniae - Proteus - Streptococcus pneumoniae - Salmonella - Streptococcus pyogenes - Serratia marscecens Enterococcus faecalis Candida parapsilopsis Haemophilus influenzae Neisseria meningitidis Pseudomonas aeruginosa Stenotrophomonas maltophilia Cambios de terapia Los cambios de terapia se deben hacer a la luz de la presentación clínica del paciente, del resultado de la prueba molecular, y de las posibles interacciones o contraindicaciones. En la medida del posible, se debería cambiar la terapia a la opción recomendada por la presente guía, y suspender el cubrimiento empírico de patógenos descartados por la prueba molecular: cubrimiento antiPseudomonas y anti-Staphylococcus aureus meticilinorresistente (MRSA) en particular. Algunas infecciones son frecuentemente polimicrobianas (infección intra-abdominal, paciente politraumatizado…) y en estos casos aunque el aislamiento de un patógeno en hemocultivos puede orientar el tratamiento, se debe conservar el cubrimiento de patógenos que pueden estar presentes en el foco de la infección. Una vez obtenidos los resultados definitivos del cultivo (antibiograma completo) 24 a 72h después del resultado de la prueba molecular, se debe revisar si se pueden hacer nuevos ajustes al tratamiento antimicrobiano, priorizando siempre: el cubrimiento adecuado del patógeno, la biodisponibilidad del antimicrobiano en relación a la fuente de infección, la función renal y hepática y la terapia de reanimación, el uso de antimicrobianos de estrecho espectro, y la posibilidad de cambio a terapia oral para los esquemas de larga duración. Es importante destacar también que en el paciente séptico, además del tratamiento antimicrobiano, se debe hacer un enfoque en la identificación y en el control de la fuente de infección, siempre que se encuentre en un sitio que puede ser intervenido por cirugía. Tabla 2: Tratamiento dirigido basado en el resultado del Panel BCID2 Patógeno detectado Enterococcus faecium VanA/B no detectado Enterococcus faecium VanA/B detectado (VRE). Terapia Recomendada Bacterias Gram-positivas Vancomicina Daptomicina* + **ampicilina a altas dosis. Daptomicina* + ***otro agente activo. Linezolid + *** otro agente activo. Comentarios y epidemiología La frecuencia de aislamientos resistentes a vancomicina en nuestro medio puede ser tan alta como 50% 1, no obstante, si el aislamiento no cuenta con detección de los genes VanA/B la terapia estándar es vancomicina por encima de otras opciones como daptomicina o linezolid que solo se indicarían si existiera una contraindicación para el empleo de vancomicina 2. La mayoría de aislamientos son resistentes a penicilina. La resistencia a vancomicina es un aspecto de preocupación creciente en nuestro medio 1. En escenarios de infecciones graves como endocarditis se prefiere la terapia de combinación 2. *Se recomienda dosis de daptomicina (8 a 12 mg/kg/día). **La combinación con altas dosis de ampicilina (24 a 30 gramos día) se puede continuar si el aislamiento cuenta con una MIC ≤64 μg/mL. ***En aislamiento con una MIC >64 μg/mL a ampicilina se debe buscar la combinación Enterococcus faecalis VanA/B no detectado Ampicilina +/- *(ceftriaxona o gentamicina) Enterococcus faecalis VanA/B detectado (VRE) Daptomicina* + **otro agente potencialmente activo. Listeria monocytogenes Ampicilina +/- Gentamicina Staphylococcus aureus mecA/C no detectado Oxacilina o cefazolina con un agente activo (v.gr. gentamicina, tigeciclina, ciprofloxacina, rifampicina, doxiciclina). La amplia mayoría de aislamientos son sensibles a ampicilina 1. *En endocarditis se recomienda terapia de combinación de ampicilina con ceftriaxona o gentamicina 2,3. La presencia de resistencia a vancomicina es muy infrecuente en E. faecalis 1. *Se recomienda dosis de daptomicina (8 a 12 mg/kg/día) 2,3. **En endocarditis se recomienda terapia de combinación. Existen reportes de numerosos esquemas de combinación con agentes potencialmente activos (ampicilina, gentamicina, ceftaroline, linezolid, tigeciclina, rifampicina, fosfomicina IV, ciprofloxacina) 2,3 . Se prefiere terapia de combinación en meningitis y endocarditis. Agentes alternativos trimetoprim sulfametoxazol o meropenem. Vancomicina es activa in vitro, pero su empleo clínico ha conducido a fracasos terapéuticos. Las cefalosporinas no son activas, el uso de terapia empírica inapropiada se ha asociado a incremento de mortalidad 4. No se ha logrado demostrar la superioridad de alguno de estos agentes antimicrobianos sobre el otro, la amplia mayoría de evidencia proviene de estudios retrospectivos y Staphylococcus aureus mecA/C detectado Vancomicina o Daptomicina. Staphylococcus lugdunensis mecA/C no detectado Staphylococcus lugdunensis mecA/C detectado Oxacilina o cefazolina Staphylococcus epidermidis mecA/C no detectado Staphylococcus epidermidis mecA/C detectado Vancomicina o Daptomicina Oxacilina o cefazolina Vancomicina o Daptomicina Streptococcus agalactiae Penicilina cristalina o ampicilina Streptococcus pyogenes Penicilina cristalina o ampicilina Streptococcus pneumoniae Ceftriaxona + macrólido o vancomicina no de experimentos clínicos controlados 5-7. Considerar la fuente de la bacteriemia. En aislamientos de SARM secundarios a un foco neumónico considerar como alternativa linezolid en los casos en los que vancomicina se encuentre contraindicada 8-11. La frecuencia de resistencia a meticilina es baja (<5% de los aislamientos). Incluso muchos aislamientos son sensibles a penicilina. A pesar de ser un Staphylococcus coagulasa negativo cuenta con alta patogenicidad (endocarditis en un 6% a 27% de los casos de bacteriemia) por lo que siempre de considerarse su tratamiento 12. La mayoría de aislamientos en nuestro medio son resistentes a meticilina 1. Considerar la posibilidad de contaminación si 1 sola botella es positiva13. La resistencia a penicilina es sumamente infrecuente, pero ha sido reportada en algunas regiones del mundo 14. Considere adición de clindamicina en casos de choque tóxico15. La susceptibilidad de Streptococcus beta hemolítico del grupo A la penicilina es universal. Considere adición de clindamicina en casos de choque tóxico14. La terapia de combinación es preferida, especialmente en pacientes críticamente enfermos16-18. La combinación con macrólido está indicada en casos de bacteriemia secundaria a foco neumónico19. La combinación con vancomicina está indicada ante sospecha de meningitis16. La susceptibilidad de Streptococcus pneumoniae a betalactámicos cuenta con puntos de corte diferenciados para aislamientos meníngeos y no meníngeos, una terapia de des-escalamiento puede indicarse una vez se disponga del reporte de susceptibilidad20-21. Bacterias Gram-negativas (sin genes de resistencia detectado) Complejo Acinetobacter Meropenem +/- tigeciclina. Las tasas de resistencia a calcoaceticus-baumannii carbapenemes son altas en nuestro medio1. El principal mecanismo de resistencia a carbapenemes son carbapenemasas 22-23 (la mayoría testeadas por el panel). La adición de tigeciclina puede considerarse en pacientes críticos22-24, los aislamientos productores de betalactamasas tipo GES podrían ser resistentes a carbapenemes y no ser identificados por el panel. Las tasas de susceptibilidad in vitro a tigeciclina son muy altas en nuestro medio1, pero una monoterapia con tigeciclina debería evitarse por asociarse a peores desenlaces25. Se podría considerar monoterapia con meropenem si las tasas de resistencia en su institución son inferiores a 15% y/o el paciente no se encuentra críticamente enfermo. Bacteroides fragilis Múltiples antibióticos ofrecen Usualmente participa en cubrimiento para esta especie: infecciones polimicrobianas. metronidazol, ampicilina Las terapias citadas dan un sulbactam, piperacilina cubrimiento adecuado para tazobactam, carbapenemes, esta especie. clindamicina. Enterobacterales (Sin especie detectada) Ceftriaxona o carbapenemes. Complejo Enterobacter cloacae Cefepime o carbapenemes. Escherichia coli Ceftriaxona o carbapenemes. Klebsiella aerogenes Cefepime o carbapenemes. Klebsiella oxytoca Ceftriaxona o carbapenemes. Klebsiella pneumoniae Ceftriaxona o carbapenemes. Proteus spp. Cefepime Considere inicio empírico de un carbapenem si su paciente se encuentra críticamente enfermo26. La probabilidad de resistencia a oximinocefalosporinas puede ser >20% en nuestro medio1. Considere inicio empírico de un carbapenem si su probabilidad de resistencia a cefepime es >10% o si el paciente se encuentra críticamente enfermo26. Considere inicio empírico de un carbapenem si su paciente se encuentra críticamente enfermo26. La probabilidad de resistencia a oximinocefalosporinas puede ser cercana a 20% en nuestro medio1. Considere inicio empírico de un carbapenem si su probabilidad de resistencia a cefepime es >10% o si el paciente se encuentra críticamente enfermo26. Considere inicio empírico de un carbapenem si su paciente se encuentra críticamente enfermo26. La probabilidad de resistencia a oximinocefalosporinas puede ser >20% en nuestro medio1. Considere inicio empírico de un carbapenem si su paciente se encuentra críticamente enfermo26. La probabilidad de resistencia a oximinocefalosporinas puede ser >20% en nuestro medio1. Considere inicio empírico de un carbapenem si la tasa de resistencia en su institución es >10% o su paciente se encuentra críticamente enfermo26. Salmonella spp. Cefepime Serratia marcescens Cefepime o carbapenemes. Haemophilus influenzae Ampicilina sulbactam Neisseria meningitidis Ceftriaxona Pseudomonas aeruginosa Carbapenemes +/- amikacina Considere un carbapenem si la proporción de aislamientos resistentes a oximinocefalosporinas en su institución es >10% y su paciente se encuentra críticamente enfermo26. Considere inicio empírico de un carbapenem si su probabilidad de resistencia a cefepime es >10% o si el paciente se encuentra críticamente enfermo26. La frecuencia de aislamientos resistentes a cefepime puede ser superior a 20% en nuestro medio1. Considere el uso empírico de ceftriaxona en enfermedad que amenaza la vida o ante sospecha de meningitis. La resistencia a oximinocefalosporinas permanece infrecuente. Ceftolozano tazobactam sería una alternativa competente, pero solo cuenta con aprobación INVIMA para infección intrabdominal e IVU, de momento no en bacteriemia. La tasa de resistencia a carbapenemes puede ser >20% en nuestro medio1. El uso de la combinación con amikacina puede aumentar la probabilidad de cubrimiento empírico apropiado27-31, considérelo si su tasa de resistencia a carbapenemes es >15% y/o el paciente se encuentra críticamente enfermo. Una terapia de combinación no es necesaria una vez establecida la susceptibilidad a un betalactámico, su continuidad puede asociarse a peores desenlaces como toxicidad26,32-33 . Stenotrophomonas Considere tratamientos maltophilia alternativos como Trimetoprim sulfa tigeciclina+/-quinolona en pacientes alérgicos a las sulfas. Bacteria Gram-negativas (con gen de resistencia detectado) Enterobacteria con gen Ceftazidime avibactam Ceftazidime-avibactam, detectado: proporciona actividad contra KPC o OXA-48 Enterobacterales que producen KPC y se considera el estándar de cuidado actualmente 26,34-36. Si se identifica una enzima similar a OXA-48 también se prefiere ceftazidima-avibactam. En ambos casos cefiderocol es una alternativa (aún no disponible en nuestro medio) 26 . Enterobacteria con gen Ceftazidime avibactam + Si se identifica una metalo detectado: aztreonam enzima se prefiere la NDM, VIM o IMP combinación ceftazidimaavibactam + aztreonam26,37. Cefiderocol es una alternativa (aún no disponible en nuestro medio) 26. Enterobacteria con gen Carbapenem La familia de las CTX-M no son detectado: las única BLEE que circulan en CTX-M (BLEE). nuestro medio, pero son prevalentes. Su detección en un aislamiento de hemocultivos implica la necesidad de uso de un carbapenem 26. Pseudomonas aeruginosa con Ceftazidime avibactam +/Pseudomonas aeruginosa gen detectado: Polimixina B o Amikacina cuenta con la posibilidad de KPC o OXA-48 tener múltiples mecanismos de resistencia, la sola evidencia de un perfil de detección genómica de carbapenemasas no permite anticipar susceptibilidad a una combinación primaria de ceftazidime/avibactam, frecuentemente se reportan aislamientos pan resistentes. Una terapia de combinación Pseudomonas aeruginosa con gen detectado: NDM, VIM o IMP Ceftazidime avibactam +/Polimixina B o Amikacina Pseudomonas aeruginosa con gen detectado: CTX-M (BLEE) Carbapenem Acinetobacter spp. con gen detectado: KPC o OXA-48 NDM, VIM o IMP CTX-M (BLEE) Polimixina B + Tigeciclina +/carbapenem o altas dosis de ampicilina sulbactam. no es necesaria una vez establecida la susceptibilidad a un betalactámico, su continuidad puede asociarse a peores desenlaces como toxicidad 26,33. Pseudomonas aeruginosa cuenta con la posibilidad de tener múltiples mecanismos de resistencia, la sola evidencia de un perfil de detección genómica de carbapenemasas no permite anticipar susceptibilidad a una combinación primaria de ceftazidime/avibactam + aztreonam, frecuentemente se reportan aislamientos pan resistentes. Una terapia de combinación no es necesaria una vez establecida la susceptibilidad a un betalactámico, su continuidad puede asociarse a peores desenlaces como toxicidad 26,33 . La familia de las CTX-M no son las única BLEE que circulan en nuestro medio, pero son prevalentes. Su detección en un aislamiento de hemocultivos implica la necesidad de uso de un carbapenem26. Es un escenario de difícil decisión, las opciones terapéuticas en nuestro medio son de momento escasas22-23. El estudio AIDA no mostró beneficio de la terapia de combinación38, no obstante, es difícil establecer susceptibilidad a polimixinas de manera confiable. Ante las opciones limitadas se considera prudente la terapia de combinación empírica hasta obtener pruebas de susceptibilidad antimicrobiana. Candida albicans Levaduras Equinocandina Candida auris Equinocandina Candida glabrata Equinocandina Candida krusei Equinocandina o Anfotericina B o Voriconazol Candida parapsilopsis Equinocandina Candida tropicalis Equinocandina Un des-escalamiento a fluconazol puede realizarse en pacientes estables (sin vasopresor) y con susceptibilidad demostrada a fluconazol39. Considerar el potencial de brotes de infecciones asociadas a la atención en salud40. Ajuste o desescalamiento debe ser dirigido con base en antifungigrama. Algunos sistemas de identificación automatizada pueden no identificar bien aislamientos de C auris y clasificarlos como otras especies39. Se ha reportado en nuestro medio una frecuencia elevada de aislamientos resistentes a azoles y a anfotericina B, pero no a equinocandinas41-43. Un des-escalamiento a fluconazol puede realizarse en pacientes estables (sin vasopresor) y con susceptibilidad demostrada a fluconazol39. Ajuste o des-escalamiento debe ser dirigido con base en antifungigrama39. Un des-escalamiento a fluconazol puede realizarse en pacientes estables (sin vasopresor) y con susceptibilidad demostrada a fluconazol39. Un des-escalamiento a fluconazol puede realizarse en pacientes estables (sin vasopresor) y con susceptibilidad demostrada a fluconazol39. Cryptococcus neoformans/gattii Anfotericina B + flucitosina Si se descarta meningitis o enfermedad diseminada las alternativas de manejo consideran anfotericina B en monoterapia o fluconazol 44-45. Referencias. 1. Grupo para el Control de la Resistencia Bacteriana en Bogotá (GREBO), boletín No 11, 2018, disponible en: https://www.grupogrebo.org/wp-content/uploads/2020/02/Boletin-11.pdf 2. Arias CA, Contreras GA, Murray BE. Management of multidrug-resistant enterococcal infections. Clin Microbiol Infect. 2010 Jun;16(6):555-62. doi: 10.1111/j.14690691.2010.03214.x. PMID: 20569266; PMCID: PMC3686902. 3. Beganovic M, Luther MK, Rice LB, Arias CA, Rybak MJ, LaPlante KL. A Review of Combination Antimicrobial Therapy for Enterococcus faecalis Bloodstream Infections and Infective Endocarditis. Clin Infect Dis. 2018 Jul 2;67(2):303-309. doi: 10.1093/cid/ciy064. PMID: 29390132; PMCID: PMC6248357. 4. Suárez MM, Bautista RM, Almela M, Soriano A, Marco F, Bosch J, Martínez JA, Bové A, Trilla A, Mensa J. Bacteriemia por Listeria monocytogenes: análisis de 110 casos [Listeria monocytogenes bacteremia: analysis of 110 episodes]. Med Clin (Barc). 2007 Jul 7;129(6):218-21. Spanish. doi: 10.1157/13107920. PMID: 17678604. 5. McDanel JS, Roghmann MC, Perencevich EN, Ohl ME, Goto M, Livorsi DJ, Jones M, Albertson JP, Nair R, O'Shea AMJ, Schweizer ML. Comparative Effectiveness of Cefazolin Versus Nafcillin or Oxacillin for Treatment of Methicillin-Susceptible Staphylococcus aureus Infections Complicated by Bacteremia: A Nationwide Cohort Study. Clin Infect Dis. 2017 Jul 1;65(1):100106. doi: 10.1093/cid/cix287. PMID: 28379314. 6. Davis JS, Turnidge J, Tong S. A large retrospective cohort study of cefazolin compared with flucloxacillin for methicillin-susceptible Staphylococcus aureus bacteraemia. Int J Antimicrob Agents. 2018 Aug;52(2):297-300. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2018.02.013. Epub 2018 Feb 28. PMID: 29499317. 7. Weis S, Kesselmeier M, Davis JS, Morris AM, Lee S, Scherag A, Hagel S, Pletz MW. Cefazolin versus anti-staphylococcal penicillins for the treatment of patients with Staphylococcus aureus bacteraemia. Clin Microbiol Infect. 2019 Jul;25(7):818-827. doi: 10.1016/j.cmi.2019.03.010. Epub 2019 Mar 27. PMID: 30928559. 8. Liu C, Bayer A, Cosgrove SE, Daum RS, Fridkin SK, Gorwitz RJ, Kaplan SL, Karchmer AW, Levine DP, Murray BE, J Rybak M, Talan DA, Chambers HF; Infectious Diseases Society of America. Clinical practice guidelines by the infectious diseases society of america for the treatment of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections in adults and children. Clin Infect Dis. 2011 Feb 1;52(3):e18-55. doi: 10.1093/cid/ciq146. Epub 2011 Jan 4. Erratum in: Clin Infect Dis. 2011 Aug 1;53(3):319. PMID: 21208910. 9. Shorr AF, Kunkel MJ, Kollef M. Linezolid versus vancomycin for Staphylococcus aureus bacteraemia: pooled analysis of randomized studies. J Antimicrob Chemother. 2005 Nov;56(5):923-9. doi: 10.1093/jac/dki355. Epub 2005 Sep 29. PMID: 16195255. 10. Park HJ, Kim SH, Kim MJ, Lee YM, Park SY, Moon SM, Park KH, Chong YP, Lee SO, Choi SH, Woo JH, Kim YS. Efficacy of linezolid-based salvage therapy compared with glycopeptide- 11. 12. 13. 14. 15. 16. 17. 18. 19. based therapy in patients with persistent methicillin-resistant Staphylococcus aureus bacteremia. J Infect. 2012 Dec;65(6):505-12. doi: 10.1016/j.jinf.2012.08.007. Epub 2012 Aug 14. PMID: 22902942. Caffrey AR, Quilliam BJ, LaPlante KL. Comparative effectiveness of linezolid and vancomycin among a national cohort of patients infected with methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother. 2010 Oct;54(10):4394-400. doi: 10.1128/AAC.0020010. Epub 2010 Jul 26. PMID: 20660681; PMCID: PMC2944576. Non LR, Santos CA. The occurrence of infective endocarditis with Staphylococcus lugdunensis bacteremia: A retrospective cohort study and systematic review. J Infect. 2017 Feb;74(2):179-186. doi: 10.1016/j.jinf.2016.10.003. Epub 2016 Oct 22. PMID: 27777118. Yokoe DS, Anderson DJ, Berenholtz SM, Calfee DP, Dubberke ER, Ellingson KD, Gerding DN, Haas JP, Kaye KS, Klompas M, Lo E, Marschall J, Mermel LA, Nicolle LE, Salgado CD, Bryant K, Classen D, Crist K, Deloney VM, Fishman NO, Foster N, Goldmann DA, Humphreys E, Jernigan JA, Padberg J, Perl TM, Podgorny K, Septimus EJ, VanAmringe M, Weaver T, Weinstein RA, Wise R, Maragakis LL; Society for Healthcare Epidemiology of America (SHEA). A compendium of strategies to prevent healthcare-associated infections in acute care hospitals: 2014 updates. Infect Control Hosp Epidemiol. 2014 Aug;35(8):967-77. doi: 10.1086/677216. PMID: 25026611; PMCID: PMC4223864. Kimura K, Suzuki S, Wachino J, Kurokawa H, Yamane K, Shibata N, Nagano N, Kato H, Shibayama K, Arakawa Y. First molecular characterization of group B streptococci with reduced penicillin susceptibility. Antimicrob Agents Chemother. 2008 Aug;52(8):2890-7. doi: 10.1128/AAC.00185-08. Epub 2008 May 19. PMID: 18490507; PMCID: PMC2493108. Russell NE, Pachorek RE. Clindamycin in the treatment of streptococcal and staphylococcal toxic shock syndromes. Ann Pharmacother. 2000 Jul-Aug;34(7-8):936-9. doi: 10.1345/aph.19095. PMID: 10928407. Baddour LM, Yu VL, Klugman KP, Feldman C, Ortqvist A, Rello J, Morris AJ, Luna CM, Snydman DR, Ko WC, Chedid MB, Hui DS, Andremont A, Chiou CC; International Pneumococcal Study Group. Combination antibiotic therapy lowers mortality among severely ill patients with pneumococcal bacteremia. Am J Respir Crit Care Med. 2004 Aug 15;170(4):440-4. doi: 10.1164/rccm.200311-1578OC. Epub 2004 Jun 7. PMID: 15184200. De la Calle C, Ternavasio-de la Vega HG, Morata L, Marco F, Cardozo C, García-Vidal C, Del Rio A, Cilloniz C, Torres A, Martínez JA, Mensa J, Soriano A. Effectiveness of combination therapy versus monotherapy with a third-generation cephalosporin in bacteraemic pneumococcal pneumonia: A propensity score analysis. J Infect. 2018 Apr;76(4):342-347. doi: 10.1016/j.jinf.2018.01.003. Epub 2018 Jan 31. PMID: 29360520. Garnacho-Montero J, García-Cabrera E, Diaz-Martín A, Lepe-Jiménez JA, Iraurgi-Arcarazo P, Jiménez-Alvarez R, Revuelto-Rey J, Aznar-Martín J. Determinants of outcome in patients with bacteraemic pneumococcal pneumonia: importance of early adequate treatment. Scand J Infect Dis. 2010 Mar;42(3):185-92. doi: 10.3109/00365540903418522. PMID: 20085422. Metlay JP, Waterer GW, Long AC, Anzueto A, Brozek J, Crothers K, Cooley LA, Dean NC, Fine MJ, Flanders SA, Griffin MR, Metersky ML, Musher DM, Restrepo MI, Whitney CG. Diagnosis and Treatment of Adults with Community-acquired Pneumonia. An Official Clinical Practice Guideline of the American Thoracic Society and Infectious Diseases Society of America. Am J Respir Crit Care Med. 2019 Oct 1;200(7):e45-e67. doi: 10.1164/rccm.201908-1581ST. PMID: 31573350; PMCID: PMC6812437. 20. Choi SH, Chung JW, Sung H, Kim MN, Kim SH, Lee SO, Kim YS, Woo JH, Choi SH. Impact of penicillin nonsusceptibility on clinical outcomes of patients with nonmeningeal Streptococcus pneumoniae bacteremia in the era of the 2008 clinical and laboratory standards institute penicillin breakpoints. Antimicrob Agents Chemother. 2012 Sep;56(9):4650-5. doi: 10.1128/AAC.00239-12. Epub 2012 Jun 11. PMID: 22687517; PMCID: PMC3421886. 21. Viasus D, Simonetti AF, Garcia-Vidal C, Niubó J, Dorca J, Carratalà J. Impact of antibiotic deescalation on clinical outcomes in community-acquired pneumococcal pneumonia. J Antimicrob Chemother. 2017 Feb;72(2):547-553. doi: 10.1093/jac/dkw441. Epub 2016 Oct 20. PMID: 27798219. 22. Isler B, Doi Y, Bonomo RA, Paterson DL. New Treatment Options against CarbapenemResistant Acinetobacter baumannii Infections. Antimicrob Agents Chemother. 2018 Dec 21;63(1):e01110-18. doi: 10.1128/AAC.01110-18. PMID: 30323035; PMCID: PMC6325237. 23. Liang CA, Lin YC, Lu PL, Chen HC, Chang HL, Sheu CC. Antibiotic strategies and clinical outcomes in critically ill patients with pneumonia caused by carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii. Clin Microbiol Infect. 2018 Aug;24(8):908.e1-908.e7. doi: 10.1016/j.cmi.2017.10.033. Epub 2017 Nov 3. PMID: 29108947. 24. Lee YT, Kuo SC, Yang SP, Lin YT, Tseng FC, Chen TL, Fung CP. Impact of appropriate antimicrobial therapy on mortality associated with Acinetobacter baumannii bacteremia: relation to severity of infection. Clin Infect Dis. 2012 Jul;55(2):209-15. doi: 10.1093/cid/cis385. Epub 2012 Apr 11. PMID: 22495546. 25. Ni W, Han Y, Zhao J, Wei C, Cui J, Wang R, Liu Y. Tigecycline treatment experience against multidrug-resistant Acinetobacter baumannii infections: a systematic review and metaanalysis. Int J Antimicrob Agents. 2016 Feb;47(2):107-16. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2015.11.011. Epub 2015 Dec 13. PMID: 26742726. 26. Tamma PD, Aitken SL, Bonomo RA, Mathers AJ, van Duin D, Clancy CJ. Infectious Diseases Society of America Guidance on the Treatment of Extended-Spectrum β-lactamase Producing Enterobacterales (ESBL-E), Carbapenem-Resistant Enterobacterales (CRE), and Pseudomonas aeruginosa with Difficult-to-Treat Resistance (DTR-P. aeruginosa). Clin Infect Dis. 2021 Apr 8;72(7):1109-1116. doi: 10.1093/cid/ciab295. PMID: 33830222. 27. Chamot E, Boffi El Amari E, Rohner P, Van Delden C. Effectiveness of combination antimicrobial therapy for Pseudomonas aeruginosa bacteremia. Antimicrob Agents Chemother. 2003 Sep;47(9):2756-64. doi: 10.1128/AAC.47.9.2756-2764.2003. PMID: 12936970; PMCID: PMC182644. 28. Kim YJ, Jun YH, Kim YR, Park KG, Park YJ, Kang JY, Kim SI. Risk factors for mortality in patients with Pseudomonas aeruginosa bacteremia; retrospective study of impact of combination antimicrobial therapy. BMC Infect Dis. 2014 Mar 24;14:161. doi: 10.1186/1471-2334-14-161. PMID: 24655422; PMCID: PMC3994322. 29. Safdar N, Handelsman J, Maki DG. Does combination antimicrobial therapy reduce mortality in Gram-negative bacteraemia? A meta-analysis. Lancet Infect Dis. 2004 Aug;4(8):519-27. doi: 10.1016/S1473-3099(04)01108-9. PMID: 15288826. 30. Díaz-Martín A, Martínez-González ML, Ferrer R, Ortiz-Leyba C, Piacentini E, Lopez-Pueyo MJ, Martín-Loeches I, Levy MM, Artigas A, Garnacho-Montero J; Edusepsis Study Group. Antibiotic prescription patterns in the empiric therapy of severe sepsis: combination of 31. 32. 33. 34. 35. 36. 37. 38. 39. antimicrobials with different mechanisms of action reduces mortality. Crit Care. 2012 Nov 18;16(6):R223. doi: 10.1186/cc11869. PMID: 23158399; PMCID: PMC3672602. Levy MM, Evans LE, Rhodes A. The Surviving Sepsis Campaign Bundle: 2018 update. Intensive Care Med. 2018 Jun;44(6):925-928. doi: 10.1007/s00134-018-5085-0. Epub 2018 Apr 19. PMID: 29675566. Bowers DR, Liew YX, Lye DC, Kwa AL, Hsu LY, Tam VH. Outcomes of appropriate empiric combination versus monotherapy for Pseudomonas aeruginosa bacteremia. Antimicrob Agents Chemother. 2013 Mar;57(3):1270-4. doi: 10.1128/AAC.02235-12. Epub 2012 Dec 21. PMID: 23263001; PMCID: PMC3591924. Tamma PD, Cosgrove SE, Maragakis LL. Combination therapy for treatment of infections with gram-negative bacteria. Clin Microbiol Rev. 2012 Jul;25(3):450-70. doi: 10.1128/CMR.0504111. PMID: 22763634; PMCID: PMC3416487. Shields RK, Nguyen MH, Chen L, Press EG, Potoski BA, Marini RV, Doi Y, Kreiswirth BN, Clancy CJ. Ceftazidime-Avibactam Is Superior to Other Treatment Regimens against CarbapenemResistant Klebsiella pneumoniae Bacteremia. Antimicrob Agents Chemother. 2017 Jul 25;61(8):e00883-17. doi: 10.1128/AAC.00883-17. PMID: 28559250; PMCID: PMC5527595. van Duin D, Lok JJ, Earley M, Cober E, Richter SS, Perez F, Salata RA, Kalayjian RC, Watkins RR, Doi Y, Kaye KS, Fowler VG Jr, Paterson DL, Bonomo RA, Evans S; Antibacterial Resistance Leadership Group. Colistin Versus Ceftazidime-Avibactam in the Treatment of Infections Due to Carbapenem-Resistant Enterobacteriaceae. Clin Infect Dis. 2018 Jan 6;66(2):163-171. doi: 10.1093/cid/cix783. PMID: 29020404; PMCID: PMC5850032. Tumbarello M, Trecarichi EM, Corona A, De Rosa FG, Bassetti M, Mussini C, Menichetti F, Viscoli C, Campoli C, Venditti M, De Gasperi A, Mularoni A, Tascini C, Parruti G, Pallotto C, Sica S, Concia E, Cultrera R, De Pascale G, Capone A, Antinori S, Corcione S, Righi E, Losito AR, Digaetano M, Amadori F, Giacobbe DR, Ceccarelli G, Mazza E, Raffaelli F, Spanu T, Cauda R, Viale P. Efficacy of Ceftazidime-Avibactam Salvage Therapy in Patients With Infections Caused by Klebsiella pneumoniae Carbapenemase-producing K. pneumoniae. Clin Infect Dis. 2019 Jan 18;68(3):355-364. doi: 10.1093/cid/ciy492. PMID: 29893802. Biagi M, Wu T, Lee M, Patel S, Butler D, Wenzler E. Searching for the Optimal Treatment for Metallo- and Serine-β-Lactamase Producing Enterobacteriaceae: Aztreonam in Combination with Ceftazidime-avibactam or Meropenem-vaborbactam. Antimicrob Agents Chemother. 2019 Sep 30;63(12):e01426-19. doi: 10.1128/AAC.01426-19. Epub ahead of print. PMID: 31570403; PMCID: PMC6879249. Paul M, Daikos GL, Durante-Mangoni E, Yahav D, Carmeli Y, Benattar YD, Skiada A, Andini R, Eliakim-Raz N, Nutman A, Zusman O, Antoniadou A, Pafundi PC, Adler A, Dickstein Y, Pavleas I, Zampino R, Daitch V, Bitterman R, Zayyad H, Koppel F, Levi I, Babich T, Friberg LE, Mouton JW, Theuretzbacher U, Leibovici L. Colistin alone versus colistin plus meropenem for treatment of severe infections caused by carbapenem-resistant Gram-negative bacteria: an open-label, randomised controlled trial. Lancet Infect Dis. 2018 Apr;18(4):391-400. doi: 10.1016/S1473-3099(18)30099-9. Epub 2018 Feb 16. PMID: 29456043. Oñate JM, Rivas P, Pallares C, Saavedra CH, Martínez E, Coronell W, E López, Berrio I, ÁlvarezMoreno CA, Roncancio GE, Segura J, Vélez JD, Cortes JA, Parra-Giraldo C, Álvarez JE, Romero AF, Zuluaga I, Camacho G. Colombian consensus on the diagnosis, treatment, and prevention of Candida Spp. disease in children and adults. Infectio 2019; 23(3): 271-304. doi: 10.22354/in.v23i3.792. 40. Escandón P, Chow NA, Caceres DH, Gade L, Berkow EL, Armstrong P, Rivera S, Misas E, Duarte C, Moulton-Meissner H, Welsh RM, Parra C, Pescador LA, Villalobos N, Salcedo S, Berrio I, Varón C, Espinosa-Bode A, Lockhart SR, Jackson BR, Litvintseva AP, Beltran M, Chiller TM. Molecular Epidemiology of Candida auris in Colombia Reveals a Highly Related, Countrywide Colonization With Regional Patterns in Amphotericin B Resistance. Clin Infect Dis. 2019 Jan 1;68(1):15-21. doi: 10.1093/cid/ciy411. PMID: 29788045. 41. Morales-López SE, Parra-Giraldo CM, Ceballos-Garzón A, Martínez HP, Rodríguez GJ, ÁlvarezMoreno CA, Rodríguez JY. Invasive Infections with Multidrug-Resistant Yeast Candida auris, Colombia. Emerg Infect Dis. 2017 Jan;23(1):162-164. doi: 10.3201/eid2301.161497. PMID: 27983941; PMCID: PMC5176232. 42. Berrio I, Caceres DH, Coronell R W, Salcedo S, Mora L, Marin A, Varón C, Lockhart SR, Escandón P, Berkow EL, Rivera S, Chiller T, Vallabhaneni S. Bloodstream Infections With Candida auris Among Children in Colombia: Clinical Characteristics and Outcomes of 34 Cases. J Pediatric Infect Dis Soc. 2021 Mar 26;10(2):151-154. doi: 10.1093/jpids/piaa038. PMID: 32373928. 43. Armstrong PA, Rivera SM, Escandon P, Caceres DH, Chow N, Stuckey MJ, Díaz J, Gomez A, Vélez N, Espinosa-Bode A, Salcedo S, Marin A, Berrio I, Varón C, Guzman A, Pérez-Franco JE, Escobar JD, Villalobos N, Correa JM, Litvintseva AP, Lockhart SR, Fagan R, Chiller TM, Jackson B, Pacheco O. Hospital-Associated Multicenter Outbreak of Emerging Fungus Candida auris, Colombia, 2016. Emerg Infect Dis. 2019 Jul;25(7):1339–46. doi: 10.3201/eid2507.180491. PMID: 31211679; PMCID: PMC6590770. 44. Mourad A, Perfect JR. Present and Future Therapy of Cryptococcus Infections. J Fungi (Basel). 2018 Jul 3;4(3):79. doi: 10.3390/jof4030079. PMID: 29970809; PMCID: PMC6162641. 45. Perfect JR, Dismukes WE, Dromer F, Goldman DL, Graybill JR, Hamill RJ, Harrison TS, Larsen RA, Lortholary O, Nguyen MH, Pappas PG, Powderly WG, Singh N, Sobel JD, Sorrell TC. Clinical practice guidelines for the management of cryptococcal disease: 2010 update by the infectious diseases society of america. Clin Infect Dis. 2010 Feb 1;50(3):291-322. doi: 10.1086/649858. PMID: 20047480; PMCID: PMC5826644.