UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS Universidad del Perú. Decana de América FACULTAD DE QUÍMICA E ING. QUÍMICA EP ING. AGROINDUSTRIAL ANÁLISIS DE LOS PRODUCTOS AGROINDUSTRIALES QA1041 Frutas y verduras Acidez titulable, volátil y ácido tartárico PROFESOR: ➔ Oscar Santisteban INTEGRANTES: ➔ ➔ Quispe Flores, Cristian Carrera García, Carmela ÁCIDO TARTÁRICO La cantidad de ácido presente en un vino puede afectar directamente su color y sabor, y puede servir para equilibrar los componentes más dulces o más astringentes del vino. Este equilibrio es desafiante ya que demasiado ácido puede hacer que el vino sea agrio o agudo, mientras que muy poco puede hacer que un vino sea plano o flácido. La acidez adecuada en el vino es importante para hacer que el vino sea estable, agradable al paladar, con un refrescante acompañamiento para la comida. El nivel de ácido adecuado de un vino terminado puede variar según el estilo deseado de los vinos, con vinos más dulces que requieren niveles ligeramente más altos de acidez para mantener un equilibrio adecuado con sus componentes más dulces. Las concentraciones de ácido tartárico en el vino varían normalmente de 1.5 a 4.0 g / L. Esta concentración de ácido no debe confundirse con la acidez total o titulable de los vinos, que a menudo también se expresan como contenido de ácido tartárico. Aunque el ácido tartárico es el ácido predominante presente, hasta el 60% de la acidez total, otros como el ácido málico, cítrico y varios ácidos volátiles contribuyen significativamente a la acidez total. DETERMINACIÓN DE ÁCIDO TARTÁRICO PRINCIPIO El contenido de ácido tartárico en el jugo de uva se determina por HPLC (usando detección ultravioleta). Las separaciones se realizan en una columna de exclusión de iones. REACTIVOS Utilice sólo reactivos de grado analítico reconocido y solo agua de acuerdo con al menos el grado 1 de EN ISO 3696: 1995 ➔ Ácido sulfúrico, c(H2SO4) = 0,005 mol/L. ➔ Solución estándar de ácido tartárico. Se disuelve una cantidad determinada de ácido tartárico en agua. La concentración debe ser de aproximadamente 500 mg / L. APARATOS Aparatos de laboratorio habituales y, en particular, los siguientes: ➔ Cromatografía líquida de alta resolución. ➔ Detector ultravioleta (UV), capaz de medir a una longitud de onda de 210 nm ➔ Horno de columna, capaz de mantener una temperatura de 40 ° C ➔ Columna de separación: columna de exclusión iónica de copolímero de divinilbenceno-estireno sulfonado en forma de hidrógeno, tamaño de partículas típico de 10 um, (300 mm x 7,8 mm) con una precolumna de catión H+. ➔ Filtro de membrana, de tamaño de poro 0,45 um PREPARACIÓN DE LA MUESTRA DE PRUEBA Normalmente, los productos no se pretratarán, sin embargo, la dilución puede ser necesaria y su análisis por este método se hará sobre una base volumétrica, expresándose los resultados por litro de muestra. El análisis de productos concentrados también puede realizarse sobre una base volumétrica, después de diluir a una densidad relativa conocida. En este caso se indicará la densidad relativa. Sobre la base de una muestra pesada y teniendo en cuenta el factor de dilución para el análisis, los resultados también pueden expresarse por kilogramo de producto. En productos con una viscosidad alta y / o un contenido muy alto de células (por ejemplo, pulpa), la determinación sobre la base de una muestra de ensayo pesada es el procedimiento habitual. Diluya los jugos de uva de 1 a 20 volúmenes (concentraciones de 1 a 100) y utilícelos directamente para el análisis HPLC después de filtrarlos a través de un filtro de membrana. (cuando se utilizan muestras congeladas, asegúrese de que no haya sedimentos en la muestra antes de la dilución). Diluciones PREPARACIÓN DE SOLUCIONES DE CALIBRACIÓN Prepare las soluciones de calibración en el rango de 100 mg / L a 500 mg / L de ácido tartárico utilizando soluciones adecuadas de la solución estándar de ácido tartárico. Utilice las soluciones como se describe en el siguiente punto. ANÁLISIS HPLC Inyecte las soluciones de calibración y las muestras en un sistema HPLC con las siguientes condiciones: Eluyente: 0,005 mol / L de ácido sulfúrico Columna: columna de separación Flujo: 0,6 ml / min (para evitar una presión alta, el flujo debe aumentarse lentamente de 0,2 ml / min a 0,6 ml / min durante el equilibrado) Longitud de onda: 210 nm Volumen de inyección: normalmente 15 uL Duración: 20 min Tiempo de retención: aproximadamente 10 min para ácido tartárico Temperatura: 40 ° C CÁLCULO Calcule el contenido de ácido tartárico en la muestra utilizando la curva de calibración basada en la altura del pico. Tenga en cuenta el factor de dilución y la relación del valor con la masa o el volumen. Si un producto concentrado se ha diluido a una concentración única, informe la densidad relativa de la concentración única, Informe la concentración de ácido tartárico en gramos por litro con un decimal ACIDEZ VOLÁTIL La acidez volátil se debe a los ácidos grasos de la serie acética que se encuentra en el vino. Se excluye de la acidez volátil los ácidos láctico y succínico, lo mismo que el ácido carbónico y el anhídrido sulfuroso libre y combinado (12,13). La determinación exacta de la acidez volátil de los vinos es una de las realizadas habitualmente por los elaboradores; el elaborador de vinos necesita conocer la cantidad de la acidez volátil presente por al menos, tres razones: estar dentro de los límites legales, seguir el desarrollo de la acidez volátil durante el almacenamiento y como una medida de posible deterioro (12,14). ÁCIDOS VOLÁTILES EN PRODUCTOS DE FRUTAS La acidez volátil (AV) es el conjunto de ácidos grasos de la serie acética que se hallan en el vino libres o combinados formando sales. El más importante es el ácido acético. El olor desagradable a “picado” de algunos vinos es debido principalmente al ácido acético y al acetato de etilo. El nivel sensorial de estos compuestos es del orden de 0,6 g/L para el ácido acético y 0,1 g/L para el acetato de etilo. FUNDAMENTO Separación de los ácidos volátiles (acético, fórmico, propiónico y butírico) por arrastre con vapor de agua y valoración posterior con NaOH en presencia de FT. PROCEDIMIENTO Disuelva 10 g de muestra, diluya a 25 mL y destile al vapor como en 964.08C. 1 ml de álcali 0,1 N = 0,0060 g de HOAc. APARATO DE DESTILACIÓN DE VAPOR 1. 2. 3. 4. Agregue aproximadamente 600 mL de H2O hervida a la cámara exterior del destilador. Pipetee 25 ml de muestra recién preparada en la cámara interior y tápela. Hierva el agua durante 3 minutos con el brazo abierto. Cerrar y destilar aproximadamente 300 ml en erlenmeyer. Añada 0,5 ml de fenolftaleína al destilado y valore rápidamente con NaOH 0,1 N hasta que el rosa persista durante 15 segundos. Exprese los resultados como: g HOAc / 100 mL = mL NaOH 0.1N X 0.006 X 4. COBRE DESTILADOR ELÉCTRICO Alambique eléctrico en efectivo EQUIPO Consta de cámara exterior, cámara interior, sifón, llave de paso de 2 vías, elec, calentador de bobina y entrada-salida de vidrio en “T” para H2O. Todas las partes son de Pyrex. Los residuos en la cámara interior después de la destilación se eliminan automáticamente por vacío. acción cuando se corta la corriente. La adición de H2O a través del embudo sobre la llave de paso proporciona un baño de rociado automático a la cámara interior y desagües de desechos a través de la salida en vidrio "T". La llave de paso bidireccional permite la introducción de la muestra, sirve como ventilación de escape para el CO2 y permite la introducción de H2O de lavado. (Disponible en VWR Scientific) PROCEDIMIENTO 1. Agregue H20 y pipetee la muestra como en (a). Enjuague el embudo con aproximadamente 5 ml de H2O. Destilar aproximadamente 300 ml en erlenmeyer. 2. Valorar y expresar los resultados como en (a). (Desconecte el serpentín de calentamiento inmediatamente y vacíe aún abriendo el tubo de drenaje y la llave de paso del tubo interior. Enjuague aún con dos porciones de 10-15 ml de H2O agregando a través del embudo; evacue cada porción a través del tubo de drenaje). Componentes volátiles de frutas exóticas de Brasil Resultados Resumen El sabor es uno de los principales atributos de los alimentos y viene dado por una combinación de moléculas volátiles presentes en la matriz. Este artículo revisa las características generales y usos y se centra en la composición volátil de frutas exóticas brasileñas seleccionadas: cereza brasileña (Eugenesia uniflora), la acerolamalpighia glabra L., malpighia punicifolia L., malpighia emarginata DC.), Yaca (Artocarpus heterophyllus), Fruta estrella (Averrhoa carambola) y frutos de los géneros Annona (chirimoya, guanábana, ananá, etc.) y frutas de los géneros Spondias (S. purpurea, S. mombin y S. tuberosa). Esta es una información importante para la industria de los aromas, que utiliza diferentes compuestos aromáticos para la formulación de fragancias y aromas para uso en alimentos, cosméticos y perfumes. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2011.01.012 Ácidos volátiles en frutas tropicales: chirimoya (Annona cherimolia, Mill.), guayaba (psidium guajava, L.), mango (Mangifera indica, L., var. Alphonso), papaya (Carica papaya Resumen Los ácidos volátiles extraídos por pentano/diclorometano (2 + 1) de pulpas de frutas tropicales fueron identificados y determinados por cromatografía capilar de gases (HRGC) y cromatografía de gases capilares combinada-espectrometría de masas utilizando el modo EI- y CI (HRGC-EI/CIMS). En la chirimoya (A. cherimolia, Mill.) se caracterizaron 47 ácidos; los compuestos principales fueron el ácido hexanoico (3 mg/kg) y octanoico (1 mg/kg). Cincuenta y un ácidos fueron identificados en guayaba (P. guajava, L.), 54 en mango (M, indica, L., var. Alphonso) y 56 en papaya (C. papaya, L.). El ácido (E)-cinnamoico (0,4 mg/kg) y el ácido (Z)-3-hexenoico (0,2 mg/kg) se determinaron como componentes principales de la guayaba; en el mango se establecieron como componentes principales el ácido 5-hidroxi-(Z)-7-decenoico (2 mg/kg) y el ácido 3-hidroxioctanoico (1,1 mg/kg) y en la pulpa de papaya el ácido butanoico (1,2 mg/kg). Ácidos volátiles identificados en los bosques tropicales (como ésteres metílicos; HRGC-EI / CIMS; norma internacional, ácido 2,2-dimetilpentano). Rangos de concentración (p.g / kg pulpa): <50 (+); 50-100 (++); ; 100-500 (+++); > 500 (+ + + +) Método oficial AOAC 942.15 Acidez (titulable) de productos de frutas Primera acción 1942 A. Método indicador La acidez titulable puede expresarse convencionalmente en g de ácido por 100 g por 100 mL de producto, según corresponda, utilizando el factor apropiado para el ácido; para el ácido málico utilice 0,067 como factor; ácido oxálico, 0,045; ácido cítrico monohidrato, 0,070; ácido tartárico, 0,075; ácido sulfúrico, 0,049; ácido acético, 0,060; ácido láctico, 0.090. (a) Soluciones incoloras o ligeramente coloreadas. Diluir hasta aproximadamente 250 mL, con H2O neutralizado o recién hervido, 10 g de jugo preparado, 920.149 (a) (ver 37.1.07), o 25 ml de solución preparada, 920.149 (b)o (C) (ver 37.1.07). Valorar con álcali 0,1 M, utilizando 0,3 ml de fenolftaleína por cada 100 ml de solución que se titula, hasta que el color rosado persista durante 30 s. Informe como ml de álcali 0,1 M / 100 go 100 ml de material original. (B) Soluciones muy coloreadas Diluya la muestra de prueba de peso con H2O neutralizado y valorar hasta justo antes del punto final con álcali 0,1 M, utilizando 0,3 ml de fenolftaleína por cada 100 ml de solución que se titula. Transferir el volumen medido (2 o 3 ml) de solución a aproximadamente 20 ml de H2O neutralizado en vaso de precipitados pequeño. (En esta dilución adicional, el color del jugo de fruta se vuelve tan pálido que se ve fácilmente el color de la fenolftaleína). Si la prueba muestra que no se alcanza el punto final, vierta la porción extra diluida nuevamente en la solución original, agregue más álcali y continúe la titulación hasta el punto final. Comparando diluciones en pequeños vasos de precipitados, se pueden observar fácilmente las diferencias producidas por unas gotas de álcali 0,1M. H2O hervida, neutralizada Dilucion a 50 mL 3mL/100 mL muestra B. Método de electrodo de vidrio - Acción final 1980 Antes de usarlo, compruebe el aparato con soluciones tampón estándar, 964,24 (ver A.1.04) y Tabla 964,24 (ver A.1.04). Enjuague el electrodo de vidrio en H2O varias veces hasta que la lectura sea de aproximadamente pH 6. Sumerja los electrodos en la muestra de prueba contenida en el vaso de precipitados. (La muestra de prueba debe valorar entre 10 y 50 ml de NaOH 0,1 M y estar contenida en un volumen inicial de 100 a 200 ml). Revuelva moderadamente. Agregue álcali bastante rápido hasta cerca de pH 6. Luego agregue álcali lentamente a pH 7. Una vez alcanzado el pH 7, termine la titulación agregando álcali 0.1M 4 gotas a la vez, y registre el volumen total y la lectura de pH después de cada adición. (Agregue gotas enteras, para que la fracción de gota no quede en la punta de la bureta). Continúe titulando≥4 gotas más allá de pH 8.1, e interpolar datos de fortificación correspondientes a pH 8.1. Los valores de pH utilizados para la interpolación deben estar en el rango de 8,10.± 0,2. https://doi.org/10.1080/11358120209487729 RESUMEN Se separaron y cuantificaron los ácidos orgánicos de albaricoque de Marruecos (Prunus armeniaca L.) var. Canino por HPLC. Se obtuvieron buenos cromatogramas acoplando 3 columnas RP18 de 25 cm de longitud. La fase móvil se ajustó a un pH óptimo de 2,15. La absorbancia a 210 nm, medida con un detector de diodos UV, se usó para la cuantificación. El método es cuantitativo, con recuperaciones en el intervalo 95,7-103,5%. El estudio de reproducibilidad dio coeficientes de variación menores de 3,2 %. El procedimiento propuesto se puede considerar un método rápido para la determinación de ácidos orgánicos en albaricoque con una satisfactoria reproducibilidad. RESUMEN El objetivo de este estudio fue estimar un nivel de ácidos cítrico y tartárico en néctares de frutas (n = 17) y jugos (n = 13) disponibles en el mercado croata. Para el análisis se utilizó HPLC de fase inversa con detector UV / Vis ajustado a 214 nm. La fase móvil fue tampón fosfato (50 mM, pH = 2,80) a una velocidad de flujo de 0,5 ml min – 1. El método fue lineal (r2 = 0,9999). LoD fue de 0.01 g L – 1, LoQ fue de 0.03 g L – 1 y la variabilidad intradiaria junto con la intradiaria fue de hasta 3%. El nivel de ácidos cítrico y tartárico en néctares de frutas varió de 1,26 a 4,42 g L – 1 y de 0,68 a 0,86 g L – 1, respectivamente, y en jugos de frutas varió de 3,03 a 7,67 g L – 1 y de 3,09 a 4,68 g L– 1, respectivamente. Se detectó un nivel más alto de ácido cítrico en jugos de frutas que en néctares de frutas (p <0.05; prueba U de MannWhitney). Seis jugos de frutas contenían un nivel más alto de ácido cítrico permitido por la regulación de la UE, lo que implica la importancia de monitorear las concentraciones de ambos ácidos en los productos alimenticios. Determinaciones cromatográficas (HPLC) de ácidos orgánicos y trans-resveratrol en uvas "Calkarasi" y "Shiraz" durante diferentes etapas de maduración La maduración de la uva es un proceso altamente organizado y programado genéticamente que implica cambios en atributos bioquímicos y físicos específicos. En este artículo, se analizan los cambios en el contenido de trans-resveratrol y ácido orgánico durante en cuatro puntos de tiempo de desarrollo (fase de retraso, curación, madurez y cosecha tardía) de las variedades de uva “Çalkarası” y “Shiraz” cultivadas en la región de Denizli y se analizan los resultados experimentales. son presentados. Se utilizó el método de cromatografía líquida (HPLC) para el análisis del contenido de ácidos orgánicos y trans-resveratrol y los compuestos examinados se separaron completamente en 25 min. Las concentraciones de ácido tartárico y málico de las variedades Çalkarası y Shiraz variaron de 19,17 g / L a 4,68 g / L; 2,49 g / L a 1,06 g / L; 24,70 g / L a 6,31 g / L y 3,20 g / L a 1,69 g / L, respectivamente. A medida que aumentaba la maduración, se determinó una disminución sostenida en el contenido de transresveratrol. “Shiraz” tuvo el alto contenido de trans-resveratrol, mostrando una disminución del 76% desde la etapa de la fase de rezago hasta la etapa de cosecha tardía, mientras que “Çalkarasi” produjo la baja concentración de trans-resveratrol, mostrando una disminución del 82% desde la primera hasta el último muestreo. Resultados CARACTERIZACIÓN DE AZÚCARES Y ÁCIDOS ORGÁNICOS EN VARIEDADES COMERCIALES DE UVA DE MESA Resultados Resumen La composición del sabor se ha definido como un atributo complejo de la calidad de la fruta, en el que la mezcla de azúcares, ácidos y volátiles juega un papel primordial. En uvas de mesa (Vitis vinifera L.), el dulzor y la acidez son los atributos de sabor más importantes para el consumo fresco. Sin embargo, la mayoría de los estudios disponibles se han realizado en uvas de vinificación, que se cultivan y procesan de manera diferente a las uvas de mesa. Por tanto, el objetivo de este trabajo fue caracterizar los cambios en azúcares y ácidos orgánicos durante el desarrollo de 'Thompson Seedless', 'Red Globe' y 'Crimson Seedless' cultivados en las mismas condiciones agroclimáticas. Cada variedad se muestreó semanalmente desde 2 semanas antes del envero hasta la cosecha comercial. Los azúcares y los ácidos orgánicos se cuantificáron mediante cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) equipada con un detector de dispersión de luz por evaporación (ELSD) y un detector ultravioleta, respectivamente. Los rangos de concentraciones de ácidos y azúcares encontrados en las uvas fueron los siguientes: ácido tartárico, 1.28-7.45 g/L-1; ácido málico, 0.38-29.92 g L-1, trazas de ácido cítrico-1.03 g L-1; fructosa, 0,15-8,74 g (azúcar) 100 g (uva)-1; glucosa, 0,19-8,71 g (azúcar) 100 g (uva)-1 y sacarosa 0,02-0,91 g (azúcar) 100 g (uva)-1. Entre los azúcares, la glucosa fue la más abundante en etapas tempranas y luego disminuyó hasta el período de cosecha, cuando la cantidad de fructosa y glucosa convergió a un promedio de 47% por cada azúcar. A pesar de que los ácidos orgánicos alcanzaron niveles constantes 3-4 semanas antes de la cosecha comercial, hubo diferencias importantes en los perfiles de ácidos orgánicos entre las variedades, con 'Thompson Seedless' mostrando la proporción más baja de ácido tartárico / málico de 1,19. Estas diferencias son un aspecto importante en términos de sabor general. Se observó una reducción en la acidez titulable (TA) cercana al 4% durante el desarrollo de las bayas en las tres variedades. 'Red Globe' fue la variedad que mostró el mayor descenso (Δ = -4,0% de acidez), mientras que 'Crimson Seedless' fue la variedad con la menor caída en TA (Δ = -2,6% de acidez). Desde la 4 semana antes de la cosecha (H-4), los niveles de AT se mantuvieron constantes en las tres variedades estudiadas. Desarrollo y aplicación de un método de cromatografía líquida-espectrometría de masas para la determinación de azúcares y ácidos orgánicos en araza, ceriguela, guayaba, mango y pitanga. Resumen Resultados Se muestra un cromatograma típico de azúcares y ácidos orgánicos, el método propuesto proporciona un breve tiempo de análisis. Las características intrínsecas de muchas frutas tropicales provocan grandes pérdidas poscosecha e impiden su comercialización como frutas frescas. La información sobre su composición es crucial para definir las condiciones de procesamiento e identificar oportunidades de desarrollo de productos. Sin embargo, los métodos analíticos comúnmente utilizados para cuantificar los azúcares y ácidos orgánicos son costosos y requieren mucho tiempo. El análisis simultáneo por cromatografía líquida-ionización por espectrometría de masas por electropulverización (LC-ESIMS / MS) es una técnica muy sensible y reproducible, que permite una cuantificación simultánea precisa en sistemas complejos. Por lo tanto, desarrollamos un método de monitoreo de reacciones múltiples (MRM) LC-ESI-MS / MS utilizando una columna de fase inversa para detectar y cuantificar azúcares y algunos ácidos orgánicos en solo cuatro minutos. Psidium cattleianum), ceriguela (espondia púrpura), mango (Mangifera indica), guayaba (Psidium guajava) y cereza (eugenesia uniflora L.). Todos los frutos presentaron concentraciones similares de glucosa y fructosa, excepto pitanga, que presentó valores más altos. Se cuantificó el contenido de ácidos cítrico, málico y tartárico; algunas frutas se destacaron por su alto contenido en ácidos orgánicos. Finalmente, la guayaba mostró el ácido cítrico como el ácido principal, seguido por el ácido málico y tartárico (Cuadro 5) PREPARACIÓN DE LA MUESTRA Objetivo y aplicación La presente Norma establece el método para determinar la acidez titulable en los productos elaborados a partir de frutas y hortalizas. Reactivos y Materiales Los reactivos que a continuación se indican, deben ser grado analítico. Cuando se mencione agua debe entenderse agua destilada. Reactivos ● Soluciones tampón de pH conocido. ● Solución 0.1N de hidróxido de sodio. Materiales. ● Bureta Graduada de 50 ml. ● Material de Laboratorio. INSTRUMENTOS ● Potenciómetro, con electrodos de vidrio. ● Agitador mecánico o electromagnético Preparación de la muestra Procedimiento 5.1 Se calibra el potenciómetro con las soluciones tampón. 5.2 Se lavan varias veces los electrodos con agua, hasta que la lectura en agua recién hervida y enfriada sea aproximadamente de pH 6.0. 5.3 Dependiendo el tipo de producto se mide la cantidad de muestra que se indica a continuación: 5.3.1 Productos líquidos o productos donde la parte líquida es fácilmente separable: 10 ml de la muestra preparada como se indica en 4.1. 5.3.2 Productos espesos, productos de difícil filtración, frutas y hortalizas frescas, productos congelados y productos secos: 25 ml de la muestra preparada y diluida como se indica en 4.2 y 4.3. Muestra de difícil filtración. 25 mL Calibracion Lavar electrodos con H2O, pH 6.0 en H20 hervida. Muestra de fácil separación. 10mL Procedimiento 5.4 La muestra medida se transfiere a un vaso de precipitados de 400 ml y se diluye aproximadamente a 50 ml con agua recién hervida, enfriada y neutralizada. 5.5 Los electrodos perfectamente lavados se introducen en la muestra agitando con moderación se agrega rápidamente la solución 0.1N de hidróxido de sodio hasta alcanzar un pH cercano a 6.0, luego se continúa agregado lentamente la solución de hidróxido de sodio hasta alcanzar pH 7.0. 5.6 Después de que se ha alcanzado el pH, se termina la titulación agregando el hidróxido de sodio en porciones de 4 gotas a la vez hasta lograr un pH 8.3; (ver A.1) se anota la lectura del pH y el volumen total de hidróxido de sodio gastado después de cada adición. NaHO, 0,1 N, H2O hervida, neutralizada Dilucion a 50 mL Agitacion, introduce electrodos, Agregar NaOH, pH 6 NaHO, 0,1 N, Agregar NaOH, pH 7 NaHO, 0,1 N,(4 gotas) Agregar NaOH, pH 8,3 Expresión de resultados 6.1 Se deduce por interpolación el volumen exacto de solución 0.1N de hidróxido de sodio correspondiente al valor de pH 8.3, promediando los resultados obtenidos por duplicado. 6.2 Los resultados se expresan en mililitros de solución 0.1N de hidróxido de sodio por cada 100 g o 100 ml de producto o bien en gramos del ácido predominante del producto por cada 100 g o 100 ml de éste. 6.3 Miliequivalentes del ácido en términos del cual se expresa la acidez sabiendo que: 1 ml de la solución 0.1N de hidróxido de sodio equivale a: GRACIAS Do you have any questions? [email protected] +91 620 421 838 yourcompany.com CREDITS: This presentation template was created by Slidesgo, including icons by Flaticon, and infographics & images by Freepik Please keep this slide as attribution
