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11 G7 Acides titulable volatil frutas carrera Quispe 1

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UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS
Universidad del Perú. Decana de América
FACULTAD DE QUÍMICA E ING. QUÍMICA
EP ING. AGROINDUSTRIAL
ANÁLISIS DE LOS PRODUCTOS AGROINDUSTRIALES
QA1041
Frutas y verduras
Acidez titulable, volátil y
ácido tartárico
PROFESOR:
➔
Oscar Santisteban
INTEGRANTES:
➔
➔
Quispe Flores, Cristian
Carrera García, Carmela
ÁCIDO TARTÁRICO
La cantidad de ácido presente en un vino puede afectar directamente su color y sabor, y puede servir para
equilibrar los componentes más dulces o más astringentes del vino. Este equilibrio es desafiante ya que
demasiado ácido puede hacer que el vino sea agrio o agudo, mientras que muy poco puede hacer
que un vino sea plano o flácido. La acidez adecuada en el vino es importante para hacer que el vino sea
estable, agradable al paladar, con un refrescante acompañamiento para la comida. El nivel de ácido adecuado de
un vino terminado puede variar según el estilo deseado de los vinos, con vinos más dulces que requieren niveles
ligeramente más altos de acidez para mantener un equilibrio adecuado con sus componentes más dulces.
Las concentraciones de ácido tartárico en el vino varían normalmente de 1.5 a 4.0 g / L. Esta
concentración de ácido no debe confundirse con la acidez total o titulable de los vinos, que a menudo también se
expresan como contenido de ácido tartárico. Aunque el ácido tartárico es el ácido predominante presente, hasta el
60% de la acidez total, otros como el ácido málico, cítrico y varios ácidos volátiles contribuyen significativamente
a la acidez total.
DETERMINACIÓN DE ÁCIDO
TARTÁRICO
PRINCIPIO
El contenido de ácido tartárico en el jugo de uva
se determina por HPLC (usando detección
ultravioleta). Las separaciones se realizan en
una columna de exclusión de iones.
REACTIVOS
Utilice sólo reactivos de grado
analítico reconocido y solo agua de
acuerdo con al menos el grado 1 de EN
ISO 3696: 1995
➔ Ácido sulfúrico, c(H2SO4) =
0,005 mol/L.
➔
Solución estándar de ácido
tartárico. Se disuelve una
cantidad determinada de ácido
tartárico en agua. La
concentración debe ser de
aproximadamente 500 mg / L.
APARATOS
Aparatos de laboratorio habituales y, en particular, los siguientes:
➔ Cromatografía líquida de alta resolución.
➔ Detector ultravioleta (UV), capaz de medir a una longitud de onda
de 210 nm
➔ Horno de columna, capaz de mantener una temperatura de 40 ° C
➔ Columna de separación: columna de exclusión iónica de
copolímero de divinilbenceno-estireno sulfonado en forma de
hidrógeno, tamaño de partículas típico de 10 um, (300 mm x 7,8
mm) con una precolumna de catión H+.
➔ Filtro de membrana, de tamaño de poro 0,45 um
PREPARACIÓN DE LA MUESTRA DE PRUEBA
Normalmente, los productos no se pretratarán, sin embargo, la dilución puede ser necesaria y su análisis por
este método se hará sobre una base volumétrica, expresándose los resultados por litro de muestra. El análisis
de productos concentrados también puede realizarse sobre una base volumétrica, después de diluir a una
densidad relativa conocida. En este caso se indicará la densidad relativa. Sobre la base de una muestra
pesada y teniendo en cuenta el factor de dilución para el análisis, los resultados también pueden expresarse
por kilogramo de producto. En productos con una viscosidad alta y / o un contenido muy alto de células (por
ejemplo, pulpa), la determinación sobre la base de una muestra de ensayo pesada es el procedimiento
habitual.
Diluya los jugos de uva de 1 a 20 volúmenes (concentraciones de 1 a 100) y utilícelos directamente para el
análisis HPLC después de filtrarlos a través de un filtro de membrana. (cuando se utilizan muestras
congeladas, asegúrese de que no haya sedimentos en la muestra antes de la dilución).
Diluciones
PREPARACIÓN DE SOLUCIONES DE CALIBRACIÓN
Prepare las soluciones de calibración en el rango de 100 mg / L a 500 mg / L de ácido
tartárico utilizando soluciones adecuadas de la solución estándar de ácido tartárico. Utilice
las soluciones como se describe en el siguiente punto.
ANÁLISIS HPLC
Inyecte las soluciones de calibración y las muestras en un sistema HPLC con las siguientes
condiciones:
Eluyente: 0,005 mol / L de ácido sulfúrico
Columna: columna de separación
Flujo: 0,6 ml / min (para evitar una presión alta, el flujo debe aumentarse lentamente de 0,2 ml / min a
0,6 ml / min durante el equilibrado)
Longitud de onda: 210 nm
Volumen de inyección: normalmente 15 uL
Duración: 20 min
Tiempo de retención: aproximadamente 10 min para ácido tartárico
Temperatura: 40 ° C
CÁLCULO
Calcule el contenido de ácido tartárico en la muestra utilizando la curva de calibración basada
en la altura del pico.
Tenga en cuenta el factor de dilución y la relación del valor con la masa o el volumen. Si un
producto concentrado se ha diluido a una concentración única, informe la densidad relativa de la
concentración única, Informe la concentración de ácido tartárico en gramos por litro con un
decimal
ACIDEZ VOLÁTIL
La acidez volátil se debe a los ácidos grasos de la serie acética que se encuentra en el vino.
Se excluye de la acidez volátil los ácidos láctico y succínico, lo mismo que el ácido carbónico y el anhídrido
sulfuroso libre y combinado (12,13).
La determinación exacta de la acidez volátil de los vinos es una de las realizadas habitualmente por los
elaboradores; el elaborador de vinos necesita conocer la cantidad de la acidez volátil presente por al menos, tres
razones: estar dentro de los límites legales, seguir el desarrollo de la acidez volátil durante el
almacenamiento y como una medida de posible deterioro (12,14).
ÁCIDOS VOLÁTILES EN
PRODUCTOS DE FRUTAS
La acidez volátil (AV) es el conjunto de ácidos grasos de la serie acética que se hallan
en el vino libres o combinados formando sales. El más importante es el ácido acético.
El olor desagradable a “picado” de algunos vinos es debido principalmente al ácido
acético y al acetato de etilo. El nivel sensorial de estos compuestos es del orden de 0,6
g/L para el ácido acético y 0,1 g/L para el acetato de etilo.
FUNDAMENTO
Separación de los ácidos volátiles (acético, fórmico, propiónico y butírico) por arrastre
con vapor de agua y valoración posterior con NaOH en presencia de FT.
PROCEDIMIENTO
Disuelva 10 g de muestra, diluya a 25 mL y destile al vapor como en 964.08C. 1 ml de
álcali 0,1 N = 0,0060 g de HOAc.
APARATO DE DESTILACIÓN DE VAPOR
1.
2.
3.
4.
Agregue aproximadamente 600 mL de H2O hervida a la cámara
exterior del destilador.
Pipetee 25 ml de muestra recién preparada en la cámara interior y
tápela.
Hierva el agua durante 3 minutos con el brazo abierto. Cerrar y
destilar aproximadamente 300 ml en erlenmeyer.
Añada 0,5 ml de fenolftaleína al destilado y valore rápidamente con
NaOH 0,1 N hasta que el rosa persista durante 15 segundos.
Exprese los resultados como:
g HOAc / 100 mL = mL NaOH 0.1N X 0.006 X 4.
COBRE DESTILADOR ELÉCTRICO Alambique eléctrico en efectivo
EQUIPO
Consta de cámara exterior, cámara interior, sifón, llave de paso de 2 vías, elec, calentador de
bobina y entrada-salida de vidrio en “T” para H2O. Todas las partes son de Pyrex. Los
residuos en la cámara interior después de la destilación se eliminan automáticamente por
vacío. acción cuando se corta la corriente. La adición de H2O a través del embudo sobre la
llave de paso proporciona un baño de rociado automático a la cámara interior y desagües de
desechos a través de la salida en vidrio "T". La llave de paso bidireccional permite la
introducción de la muestra, sirve como ventilación de escape para el CO2 y permite la
introducción de H2O de lavado. (Disponible en VWR Scientific)
PROCEDIMIENTO
1.
Agregue H20 y pipetee la muestra como en (a). Enjuague el embudo con
aproximadamente 5 ml de H2O. Destilar aproximadamente 300 ml en erlenmeyer.
2.
Valorar y expresar los resultados como en (a).
(Desconecte el serpentín de calentamiento inmediatamente y vacíe aún abriendo el tubo de
drenaje y la llave de paso del tubo interior. Enjuague aún con dos porciones de 10-15 ml de
H2O agregando a través del embudo; evacue cada porción a través del tubo de drenaje).
Componentes volátiles de frutas exóticas de Brasil
Resultados
Resumen
El sabor es uno de los principales atributos de los
alimentos y viene dado por una combinación de
moléculas volátiles presentes en la matriz. Este
artículo revisa las características generales y
usos y se centra en la composición volátil de
frutas exóticas brasileñas seleccionadas: cereza
brasileña (Eugenesia uniflora), la acerolamalpighia
glabra L., malpighia punicifolia L., malpighia
emarginata DC.), Yaca (Artocarpus heterophyllus),
Fruta estrella (Averrhoa carambola) y frutos de los
géneros Annona (chirimoya, guanábana, ananá,
etc.) y frutas de los géneros Spondias (S. purpurea,
S. mombin y S. tuberosa). Esta es una información
importante para la industria de los aromas, que
utiliza diferentes compuestos aromáticos para la
formulación de fragancias y aromas para uso en
alimentos, cosméticos y perfumes.
https://doi.org/10.1016/j.foodres.2011.01.012
Ácidos volátiles en frutas tropicales: chirimoya (Annona cherimolia, Mill.), guayaba (psidium
guajava, L.), mango (Mangifera indica, L., var. Alphonso), papaya (Carica papaya
Resumen
Los
ácidos
volátiles
extraídos
por
pentano/diclorometano (2 + 1) de pulpas de
frutas
tropicales
fueron
identificados
y
determinados por cromatografía capilar de
gases (HRGC) y cromatografía de gases capilares
combinada-espectrometría de masas utilizando
el modo EI- y CI (HRGC-EI/CIMS). En la
chirimoya (A. cherimolia, Mill.) se caracterizaron 47
ácidos; los compuestos principales fueron el ácido
hexanoico (3 mg/kg) y octanoico (1 mg/kg).
Cincuenta y un ácidos fueron identificados en
guayaba (P. guajava, L.), 54 en mango (M, indica, L.,
var. Alphonso) y 56 en papaya (C. papaya, L.). El
ácido (E)-cinnamoico (0,4 mg/kg) y el ácido
(Z)-3-hexenoico (0,2 mg/kg) se determinaron como
componentes principales de la guayaba; en el mango
se establecieron como componentes principales el ácido
5-hidroxi-(Z)-7-decenoico (2 mg/kg) y el ácido
3-hidroxioctanoico (1,1 mg/kg) y en la pulpa de
papaya el ácido butanoico (1,2 mg/kg).
Ácidos volátiles identificados en los
bosques tropicales (como ésteres
metílicos; HRGC-EI / CIMS; norma
internacional,
ácido
2,2-dimetilpentano).
Rangos
de
concentración (p.g / kg pulpa): <50 (+);
50-100 (++); ; 100-500 (+++); > 500 (+
+ + +)
Método oficial AOAC 942.15 Acidez
(titulable) de productos de frutas
Primera acción 1942
A. Método indicador
La acidez titulable puede expresarse convencionalmente en g de
ácido por 100 g por 100 mL de producto, según corresponda,
utilizando el factor apropiado para el ácido; para el ácido málico utilice
0,067 como factor; ácido oxálico, 0,045; ácido cítrico monohidrato,
0,070; ácido tartárico, 0,075; ácido sulfúrico, 0,049; ácido acético,
0,060; ácido láctico, 0.090.
(a) Soluciones incoloras o ligeramente coloreadas.
Diluir hasta aproximadamente 250 mL, con H2O neutralizado o
recién hervido, 10 g de jugo preparado, 920.149 (a) (ver 37.1.07), o 25
ml de solución preparada, 920.149 (b)o (C) (ver 37.1.07). Valorar con
álcali 0,1 M, utilizando 0,3 ml de fenolftaleína por cada 100 ml de
solución que se titula, hasta que el color rosado persista durante 30
s. Informe como ml de álcali 0,1 M / 100 go 100 ml de material
original.
(B) Soluciones muy coloreadas
Diluya la muestra de prueba de peso con H2O
neutralizado y valorar hasta justo antes del punto final
con álcali 0,1 M, utilizando 0,3 ml de fenolftaleína por cada
100 ml de solución que se titula. Transferir el volumen
medido (2 o 3 ml) de solución a aproximadamente 20 ml
de H2O neutralizado en vaso de precipitados pequeño.
(En esta dilución adicional, el color del jugo de fruta se
vuelve tan pálido que se ve fácilmente el color de la
fenolftaleína). Si la prueba muestra que no se alcanza el
punto final, vierta la porción extra diluida nuevamente en
la solución original, agregue más álcali y continúe la
titulación hasta el punto final. Comparando diluciones
en pequeños vasos de precipitados, se pueden
observar fácilmente las diferencias producidas por unas
gotas de álcali 0,1M.
H2O hervida,
neutralizada
Dilucion a 50 mL
3mL/100 mL
muestra
B. Método de electrodo de vidrio
- Acción final 1980
Antes de usarlo, compruebe el aparato con soluciones
tampón estándar, 964,24 (ver A.1.04) y Tabla 964,24 (ver
A.1.04). Enjuague el electrodo de vidrio en H2O varias veces
hasta que la lectura sea de aproximadamente pH 6. Sumerja
los electrodos en la muestra de prueba contenida en el vaso
de precipitados. (La muestra de prueba debe valorar entre 10 y
50 ml de NaOH 0,1 M y estar contenida en un volumen inicial
de 100 a 200 ml). Revuelva moderadamente. Agregue álcali
bastante rápido hasta cerca de pH 6. Luego agregue álcali
lentamente a pH 7. Una vez alcanzado el pH 7, termine la
titulación agregando álcali 0.1M 4 gotas a la vez, y registre el
volumen total y la lectura de pH después de cada adición.
(Agregue gotas enteras, para que la fracción de gota no quede
en la punta de la bureta). Continúe titulando≥4 gotas más
allá de pH 8.1, e interpolar datos de fortificación
correspondientes a pH 8.1. Los valores de pH utilizados para la
interpolación deben estar en el rango de 8,10.± 0,2.
https://doi.org/10.1080/11358120209487729
RESUMEN
Se separaron y cuantificaron los ácidos orgánicos de albaricoque de Marruecos (Prunus armeniaca L.) var. Canino por
HPLC. Se obtuvieron buenos cromatogramas acoplando 3 columnas RP18 de 25 cm de longitud. La fase móvil se ajustó a un
pH óptimo de 2,15. La absorbancia a 210 nm, medida con un detector de diodos UV, se usó para la cuantificación. El método
es cuantitativo, con recuperaciones en el intervalo 95,7-103,5%. El estudio de reproducibilidad dio coeficientes de variación
menores de 3,2 %. El procedimiento propuesto se puede considerar un método rápido para la determinación de ácidos
orgánicos en albaricoque con una satisfactoria reproducibilidad.
RESUMEN
El objetivo de este estudio fue estimar un nivel de ácidos cítrico y tartárico en néctares de
frutas (n = 17) y jugos (n = 13) disponibles en el mercado croata. Para el análisis se
utilizó HPLC de fase inversa con detector UV / Vis ajustado a 214 nm. La fase móvil fue
tampón fosfato (50 mM, pH = 2,80) a una velocidad de flujo de 0,5 ml min – 1. El método fue lineal
(r2 = 0,9999). LoD fue de 0.01 g L – 1, LoQ fue de 0.03 g L – 1 y la variabilidad intradiaria junto
con la intradiaria fue de hasta 3%. El nivel de ácidos cítrico y tartárico en néctares de frutas varió de
1,26 a 4,42 g L – 1 y de 0,68 a 0,86 g L – 1, respectivamente, y en jugos de frutas varió de 3,03 a
7,67 g L – 1 y de 3,09 a 4,68 g L– 1, respectivamente. Se detectó un nivel más alto de ácido cítrico
en jugos de frutas que en néctares de frutas (p <0.05; prueba U de MannWhitney). Seis jugos de
frutas contenían un nivel más alto de ácido cítrico permitido por la regulación de la UE, lo que
implica la importancia de monitorear las concentraciones de ambos ácidos en los productos
alimenticios.
Determinaciones cromatográficas (HPLC) de ácidos orgánicos y trans-resveratrol en uvas
"Calkarasi" y "Shiraz" durante diferentes etapas de maduración
La maduración de la uva es un proceso altamente organizado y programado genéticamente que
implica cambios en atributos bioquímicos y físicos específicos. En este artículo, se analizan los
cambios en el contenido de trans-resveratrol y ácido orgánico durante en cuatro puntos de tiempo de
desarrollo (fase de retraso, curación, madurez y cosecha tardía) de las variedades de uva “Çalkarası”
y “Shiraz” cultivadas en la región de Denizli y se analizan los resultados experimentales. son
presentados. Se utilizó el método de cromatografía líquida (HPLC) para el análisis del contenido de
ácidos orgánicos y trans-resveratrol y los compuestos examinados se separaron completamente en
25 min. Las concentraciones de ácido tartárico y málico de las variedades Çalkarası y Shiraz variaron
de 19,17 g / L a 4,68 g / L; 2,49 g / L a 1,06 g / L; 24,70 g / L a 6,31 g / L y 3,20 g / L a 1,69 g / L,
respectivamente. A medida que aumentaba la maduración, se determinó una disminución sostenida
en el contenido de transresveratrol. “Shiraz” tuvo el alto contenido de trans-resveratrol, mostrando
una disminución del 76% desde la etapa de la fase de rezago hasta la etapa de cosecha tardía,
mientras que “Çalkarasi” produjo la baja concentración de trans-resveratrol, mostrando una
disminución del 82% desde la primera hasta el último muestreo.
Resultados
CARACTERIZACIÓN DE AZÚCARES Y ÁCIDOS
ORGÁNICOS EN VARIEDADES COMERCIALES
DE UVA DE MESA
Resultados
Resumen
La composición del sabor se ha definido como un atributo complejo de la
calidad de la fruta, en el que la mezcla de azúcares, ácidos y volátiles juega
un papel primordial. En uvas de mesa (Vitis vinifera L.), el dulzor y la acidez
son los atributos de sabor más importantes para el consumo fresco. Sin
embargo, la mayoría de los estudios disponibles se han realizado en uvas de
vinificación, que se cultivan y procesan de manera diferente a las uvas de mesa.
Por tanto, el objetivo de este trabajo fue caracterizar los cambios en
azúcares y ácidos orgánicos durante el desarrollo de 'Thompson
Seedless', 'Red Globe' y 'Crimson Seedless' cultivados en las mismas
condiciones agroclimáticas. Cada variedad se muestreó semanalmente
desde 2 semanas antes del envero hasta la cosecha comercial. Los azúcares y
los ácidos orgánicos se cuantificáron mediante cromatografía líquida de
alta resolución (HPLC) equipada con un detector de dispersión de luz por
evaporación (ELSD) y un detector ultravioleta, respectivamente. Los rangos
de concentraciones de ácidos y azúcares encontrados en las uvas fueron los
siguientes: ácido tartárico, 1.28-7.45 g/L-1; ácido málico, 0.38-29.92 g L-1,
trazas de ácido cítrico-1.03 g L-1; fructosa, 0,15-8,74 g (azúcar) 100 g (uva)-1;
glucosa, 0,19-8,71 g (azúcar) 100 g (uva)-1 y sacarosa 0,02-0,91 g (azúcar) 100
g (uva)-1. Entre los azúcares, la glucosa fue la más abundante en etapas
tempranas y luego disminuyó hasta el período de cosecha, cuando la cantidad
de fructosa y glucosa convergió a un promedio de 47% por cada azúcar. A pesar
de que los ácidos orgánicos alcanzaron niveles constantes 3-4 semanas
antes de la cosecha comercial, hubo diferencias importantes en los perfiles de
ácidos orgánicos entre las variedades, con 'Thompson Seedless' mostrando la
proporción más baja de ácido tartárico / málico de 1,19. Estas diferencias son
un aspecto importante en términos de sabor general.
Se observó una reducción en la acidez titulable (TA) cercana al 4% durante el desarrollo de las bayas en las tres
variedades. 'Red Globe' fue la variedad que mostró el mayor descenso (Δ = -4,0% de acidez), mientras que 'Crimson
Seedless' fue la variedad con la menor caída en TA (Δ = -2,6% de acidez). Desde la 4 semana antes de la cosecha
(H-4), los niveles de AT se mantuvieron constantes en las tres variedades estudiadas.
Desarrollo y aplicación de un método de cromatografía líquida-espectrometría de masas
para la determinación de azúcares y ácidos orgánicos en araza, ceriguela, guayaba, mango
y pitanga.
Resumen
Resultados
Se
muestra
un
cromatograma típico
de azúcares y ácidos
orgánicos, el método
propuesto
proporciona un breve
tiempo de análisis.
Las características intrínsecas de muchas frutas tropicales provocan grandes pérdidas
poscosecha e impiden su comercialización como frutas frescas. La información sobre su
composición es crucial para definir las condiciones de procesamiento e identificar
oportunidades de desarrollo de productos. Sin embargo, los métodos analíticos
comúnmente utilizados para cuantificar los azúcares y ácidos orgánicos son costosos
y requieren mucho tiempo. El análisis simultáneo por cromatografía
líquida-ionización por espectrometría de masas por electropulverización (LC-ESIMS /
MS) es una técnica muy sensible y reproducible, que permite una cuantificación
simultánea precisa en sistemas complejos. Por lo tanto, desarrollamos un método de
monitoreo de reacciones múltiples (MRM) LC-ESI-MS / MS utilizando una
columna de fase inversa para detectar y cuantificar azúcares y algunos
ácidos orgánicos en solo cuatro minutos. Psidium cattleianum), ceriguela
(espondia púrpura), mango (Mangifera indica), guayaba (Psidium guajava) y cereza
(eugenesia uniflora L.). Todos los frutos presentaron concentraciones similares de
glucosa y fructosa, excepto pitanga, que presentó valores más altos. Se cuantificó
el contenido de ácidos cítrico, málico y tartárico; algunas frutas se destacaron
por su alto contenido en ácidos orgánicos.
Finalmente,
la
guayaba mostró el
ácido cítrico como el
ácido
principal,
seguido por el ácido
málico y tartárico
(Cuadro 5)
PREPARACIÓN DE LA MUESTRA
Objetivo y aplicación
La presente Norma establece el método para determinar la
acidez titulable en los productos elaborados a partir de
frutas y hortalizas.
Reactivos y Materiales
Los reactivos que a continuación se indican, deben ser
grado analítico. Cuando se mencione agua debe
entenderse agua destilada.
Reactivos
● Soluciones tampón de pH conocido.
● Solución 0.1N de hidróxido de sodio.
Materiales.
● Bureta Graduada de 50 ml.
● Material de Laboratorio.
INSTRUMENTOS
● Potenciómetro, con electrodos de vidrio.
● Agitador mecánico o electromagnético
Preparación de la muestra
Procedimiento
5.1 Se calibra el potenciómetro con las soluciones tampón.
5.2 Se lavan varias veces los electrodos con agua, hasta que la lectura en agua recién hervida y
enfriada sea aproximadamente de pH 6.0.
5.3 Dependiendo el tipo de producto se mide la cantidad de muestra que se indica a continuación:
5.3.1 Productos líquidos o productos donde la parte líquida es fácilmente separable: 10 ml de la muestra
preparada como se indica en 4.1.
5.3.2 Productos espesos, productos de difícil filtración, frutas y hortalizas frescas, productos congelados
y productos secos: 25 ml de la muestra preparada y diluida como se indica en 4.2 y 4.3.
Muestra de difícil
filtración. 25 mL
Calibracion
Lavar electrodos
con H2O, pH 6.0
en H20 hervida.
Muestra de fácil
separación. 10mL
Procedimiento
5.4 La muestra medida se transfiere a un vaso de precipitados de 400 ml y se diluye aproximadamente
a 50 ml con agua recién hervida, enfriada y neutralizada.
5.5 Los electrodos perfectamente lavados se introducen en la muestra agitando con moderación se
agrega rápidamente la solución 0.1N de hidróxido de sodio hasta alcanzar un pH cercano a 6.0, luego
se continúa agregado lentamente la solución de hidróxido de sodio hasta alcanzar pH 7.0.
5.6 Después de que se ha alcanzado el pH, se termina la titulación agregando el hidróxido de sodio en
porciones de 4 gotas a la vez hasta lograr un pH 8.3; (ver A.1) se anota la lectura del pH y el volumen
total de hidróxido de sodio gastado después de cada adición.
NaHO, 0,1 N,
H2O hervida,
neutralizada
Dilucion a 50 mL
Agitacion, introduce
electrodos,
Agregar NaOH, pH 6
NaHO, 0,1 N,
Agregar NaOH, pH 7
NaHO, 0,1 N,(4 gotas)
Agregar NaOH, pH 8,3
Expresión de resultados
6.1 Se deduce por interpolación el volumen exacto de solución 0.1N de hidróxido de sodio
correspondiente al valor de pH 8.3, promediando los resultados obtenidos por duplicado.
6.2 Los resultados se expresan en mililitros de solución 0.1N de hidróxido de sodio por cada
100 g o 100 ml de producto o bien en gramos del ácido predominante del producto por cada
100 g o 100 ml de éste.
6.3 Miliequivalentes del ácido en términos del cual se expresa la acidez sabiendo que: 1 ml de
la solución 0.1N de hidróxido de sodio equivale a:
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