Subido por Mariana Alvarado

Manual de Laboratorio. Hospital Dr. HHA Temuco 2011

Anuncio
MANUAL DE
LABORATORIO
[Dirigido a Servicios Clínicos y Toma de muestra del
Hospital Dr. Hernán Henríquez Aravena de Temuco]
2011
LABORATORIO CLÍNICO
Código: APL 1.2
Edición: Primera
Fecha : 30 junio 2011
Página: 2 de 245
Vigencia: Junio 2013
Código Identificación
APL 1.2
Número Edición
Primera
Fecha Elaboración
Marzo 2011
Fecha Revisión
Junio 2011
Vº Bº Unidad de Calidad
y Seg. del Paciente
Elaborado Por:
Revisado Por:
Aprobado Por:
Autores
Sr. Pablo Ibarra Avila.
Dra. Alicia Anderson Merino EU Claudia Salazar
TM. Andrés San Martín Unidad de Calidad y seguridad
Rivera
del paciente.
Colaboradores
TM. Paulina Barraza
BQ. Marcela González
TM. María Inés Henríquez
TM. Vijna Illesca
TU. Luisa Millaqueo
TM. Andrea Morales
TM. Eglia Morales
TM. Osvaldo Muñoz
TM. Carlos Pinela
TM. Patricia Reydet
TM. Nora Tapia
Fecha:
Marzo 2011
Director
Dr. Manuel Vial
Subdirector médico
Fecha:
Junio 2011
Fecha:
2
TABLA DE CONTENIDO
INTRODUCCION ................................................................................................................................. 9
OBJETIVOS ........................................................................................................................................ 9
DESCRIPCIÓN DE LA UNIDAD DE LABORATORIO CLÍNICO Y SU ORGANIZACIÓN INTERNA ................... 10
HORARIOS DE ATENCION .............................................................................................................................10
LABORATORIO DE RUTINA...........................................................................................................................10
LABORATORIO DE URGENCIA 24 HORAS .....................................................................................................11
ENTREGA DE HORA PARA TOMA DE MUESTRA...........................................................................................11
TOMA DE MUESTRA ...................................................................................................................................11
ENTREGA DE RESULTADOS AMBULATORIOS...............................................................................................11
ARANCEL DE EXÁMENES ..............................................................................................................................11
FORMULARIO DE SOLICITUDES DE EXÁMENES ............................................................................................11
POLÍTICAS DE CALIDAD DE LA UNIDAD DE LABORATORIO ................................................................. 12
Tiempo de respuesta exámenes de Urgencia .............................................................................................12
Tiempo de respuesta exámenes de bacteriologia .......................................................................................12
REPORTE DE VALORES CRITICOS .................................................................................................................13
PLAN DE CALIDAD............................................................................................................................ 17
EXÁMENES QUE REALIZA EL LABORATORIO ...................................................................................... 20
SANGRE, HEMATOLOGIA ................................................................................................................................................................ 20
SANGRE, EXAMENES BIOQUIMICOS ............................................................................................................................................... 20
SANGRE, HORMONAS ..................................................................................................................................................................... 21
LISTA DE EXAMENES DE URGENCIA .................................................................................................. 25
EXÁMENES DERIVADOS A OTROS ESTABLECIMIENTOS: .................................................................... 27
BIOSEGURIDAD EN LA TOMA DE MUESTRAS..................................................................................... 33
BIOSEGURIDAD DEL PACIENTE ....................................................................................................................33
BIOSEGURIDAD DEL PERSONAL ...................................................................................................................33
USO DE BARRERAS PROTECTORAS: .............................................................................................................33
ÁREA DE TRABAJO Y EQUIPAMIENTO: ........................................................................................................33
ELIMINACIÓN DE MATERIAL CORTOPUNZANTE..........................................................................................33
BIOSEGURIDAD EN TRANSPORTE DE MUESTRAS............................................................................... 34
Condiciones generales de transporte:.........................................................................................................34
TRANSPORTE EN CORREO NEUMATICO: .....................................................................................................34
REGLAS GENERALES DE TOMA DE MUESTRA .................................................................................... 35
SOLICITUD DE EXÁMENES DE LABORATORIO ..............................................................................................35
MATERIAL DE TOMA DE MUESTRA ..............................................................................................................35
TIPOS DE TUBOS PARA TOMA DE MUESTRA ................................................................................................35
ANTICOAGULANTES PARA TOMA DE MUESTRA DE SANGRE ......................................................................35
TIPOS DE TUBOS PARA OBTENCION DE MUESTRA SANGUINEA .................................................................35
3
MEZCLA POR INVERSIÓN .............................................................................................................................36
ORDEN DE EXTRACCIÓN ..............................................................................................................................36
INDICACIONES GENERALES PREVIO A TOMA MUESTRAS EXAMENES DE SANGRE ......................................37
INSTRUCCIONES A PACIENTES PARA TOMA DE EXAMENES DE LABORATORIO ...........................................38
CONDICIONES GENERALES PARA TOMA DE MUESTRA .............................................................................38
CURVAS DE GLICEMIA O INSULINA..............................................................................................................38
CONDICIONES PARA LA TOMA DE MUESTRA DE NIVELES DE DROGAS TERAPÉUTICAS .............................38
CONDICIONES PARA LA TOMA DE MUESTRA DE PROLACTINA ..................................................................38
ANTÍGENO PROSTÁTICO ESPECÍFICO Y LIBRE ..............................................................................................38
CONDICIONES PARA LA TOMA DE MUESTRA DE ORINA COMPLETA, SEDIMENTO DE ORINA Y
UROCULTIVO EN MUJERES ..........................................................................................................................39
CONDICIONES PARA LA TOMA DE MUESTRA DE ORINA COMPLETA, SEDIMENTO Y/O UROCULTIVO DE
PRIMERA MICCIÓN EN HOMBRES ...............................................................................................................39
INDICACION EXAMEN ORINA DE 24 HRS. ....................................................................................................39
INDICACION EXAMEN ORINA DE 12 HRS. ....................................................................................................40
ROTAVIRUS - INSTRUCTIVO PARA TOMA DE MUESTRA ..............................................................................40
TEST DE GRAHAM ........................................................................................................................................41
INSTRUCTIVO PARA TOMA DE MUESTRA DE EXAMEN PARASITOLOGICO SERIADO (TMT O PAFS) ...........41
HEMORRAGIA OCULTA EN DEPOSICIÓN .....................................................................................................41
LEUCOCITOS FECALES ..................................................................................................................................42
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRA ....................................................................................... 43
ASPECTOS GENERALES PARA CUALQUIER MUESTRA ..................................................................................43
Tranquilidad del paciente ............................................................................................................................................................ 43
Comprobación de la documentación, de los tubos y las etiquetas respectivas ........................................................................... 43
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE EN PACIENTES HOSPITALIZADOS .................................................... 44
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE EN PACIENTES AMBULATORIOS...................................................... 52
TOMA DE MUESTRA DE ORINA ........................................................................................................ 57
TOMA DE MUESTRA DE DEPOSICIONES Y OTROS PARASITOLOGICOS ................................................ 58
TOMA DE MUESTRAS PARA CULTIVO ............................................................................................... 60
INTRODUCCION: ..........................................................................................................................................60
GENERALIDADES EN LA TOMA DE MUESTRAS PARA CULTIVOS ..................................................................................................... 60
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS RESPIRATORIAS: ....................................................................62
LAVADO BRONQUIOALVEOLAR (LBA) ............................................................................................................................. 62
MINILAVADO BRONQUIOALVEOLAR (MiniLBA) .............................................................................................................. 62
ASPIRADO ENDOTRAQUEAL (AET) .................................................................................................................................. 63
ASPIRADO NASOFARINGEO (ANF) ................................................................................................................................... 63
MUESTRA DE EXPECTORACIÓN ....................................................................................................................................... 64
MUESTRA DE SECRECION FARINGEA .............................................................................................................................. 64
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRA DE HEMOCULTIVOS Y CATÉTERES VENOSOS CENTRALES (CVC)65
TOMA DE MUESTRAS DE HEMOCULTIVOS: .................................................................................................................... 65
MUESTRAS PARA CULTIVO DE CATÉTERES VENOSOS CENTRALES .................................................................................. 68
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRA DE ORINA PARA CULTIVO .......................................................69
PROCEDIMIENTO DE TOMA DE MUESTRAS DE LÍQUIDO CEFALORRAQUIDEO ...........................................71
PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS DE CAVIDADES SEROSAS ..................................................72
4
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE TRACTO GENITAL ............................................................72
MUESTRAS DEL TRACTO GENITAL MASCULINO .............................................................................................................. 72
MUESTRAS DEL TRACTO GENITAL FEMENINO ................................................................................................................ 73
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE TRACTO GASTROINTESTINAL ..........................................74
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS OCULARES ............................................................................75
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS OTICAS ..................................................................................76
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE PIEL Y TEJIDOS BLANDOS ................................................76
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS PARA INFECCIÓN ARTICULAR, OSEA Y DE MEDULA OSEA ...78
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE AGUAS DE DIALISIS..........................................................79
MUESTRAS PARA ESTUDIO DE TUBERCULOSIS. ................................................................................. 80
CAUSAS DE RECHAZO DE MUESTRAS ................................................................................................ 83
RECHAZO ADMINISTRATIVO ...............................................................................................................................83
RECHAZO TÉCNICO ...........................................................................................................................................83
Hemólisis: ....................................................................................................................................................84
Burbujas de aire...........................................................................................................................................84
Coágulos ......................................................................................................................................................84
recomendaciones para mantener "frescas" las muestras: ......................................................................85
LISTA ALFABETICA DE EXAMENES DE LABORATORIO CON DETALLE DE INFORMACION TÉCNICA......... 86
ÁCIDO LÁCTICO PLASMÁTICO Bioquímica ........................................................................................................................ 86
ÁCIDO LÁCTICO LCR Bioquímica ....................................................................................................................................... 87
ÁCIDO ÚRICO PLASMÁTICO Bioquímica ........................................................................................................................... 88
ÁCIDO ÚRICO ORINA AISLADA Bioquímica ....................................................................................................................... 89
ÀCIDO URICO URINARIO DE 24 HORAS Bioquímica .......................................................................................................... 90
ACIDO VALPROICO, NIVELES DE Bioquímica ..................................................................................................................... 91
ADENOSINDEAMINASA (ADA) Inmunología ...................................................................................................................... 92
ALBÚMINA SÉRICA Bioquímica ......................................................................................................................................... 93
ALBUMINA ORINA Y LCR Bioquímica ................................................................................................................................ 94
ALFA 1 ANTITRIPSINA AAT Inmunología ............................................................................................................................ 95
ALFAFETOPROTEINA (AFP) Inmunología ........................................................................................................................... 96
AMILASA EN SANGRE Bioquímica ..................................................................................................................................... 97
AMILASA URINARIA ORINA AISLADA Bioquímica.............................................................................................................. 97
AMILASA URINARIA DE 24 HORAS Bioquímica ................................................................................................................. 99
AMONIO PLASMÁTICO Bioquímica ................................................................................................................................. 100
ANTICUERPOS ANTI CARDIOLIPINAS (ACA) Inmunología ................................................................................................ 101
ANTICUERPOS ANTI CENTROMERO Inmunología ............................................................................................................ 102
ANTICUERPOS ANTI CITOPLASMA DE NEUTRÓFILOS (ANCA) Inmunología .................................................................... 103
ANTICUERPOS ANTI DNA Inmunología ............................................................................................................................ 104
ANTICUERPOS ANTI ENA Inmunología ............................................................................................................................ 105
ANTICUERPOS ANTI ESTREPTOLISINA O ASO Inmunología ............................................................................................. 106
ANTICUERPOS ANTI GLIADINICOS IgG - IgA Inmunología ................................................................................................ 107
ANTICUERPOS ANTI MITOCONDRIAL AMA Inmunología ................................................................................................ 108
ANTICUERPOS ANTI MUSCULO LISO ASMA Inmunología ................................................................................................ 109
ANTICUERPOS ANTI NUCLEARES ANA Inmunología ........................................................................................................ 110
ANTICUERPOS ANTI PEROXIDASA TIROIDEA Anti-TPO Inmunología ............................................................................... 111
ANTICUERPOS ANTIPLAQUETARIOS AAP Inmunología ................................................................................................... 112
ANTICUERPOS ANTI TIROGLOBULINA Anti-Tg Inmunología ............................................................................................ 112
ANTICUERPOS ANTI TRANSGLUTAMINASA IgA Inmunología ......................................................................................... 113
ANTIGENO CA-125 (CA-125) Inmunología ....................................................................................................................... 114
ANTIGENO CA 19-9 (CA 19-9) Inmunología ..................................................................................................................... 115
ANTIGENO CARCINO EMBRIONARIO CEA Inmunología .................................................................................................. 116
5
ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO FRACCION LIBRE (PSA LIBRE) Inmunología ....................................................... 117
ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO – TOTAL
(PSA TOTAL) Inmunología ................................................................. 118
BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE KOCH CONTENIDO GASTRICO TBC ............................................................................... 118
BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE KOCH EXPECTORACION TBC ......................................................................................... 119
BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE KOCH LIQUIDOS TBC .................................................................................................... 120
BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE KOCH ORINA TBC.......................................................................................................... 120
BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE KOCH TEJIDOS (ganglio, biopsia de diferentes tejidos) TBC ......................................... 121
BETA HCG, HORMONA GONADOTROFINA CORIONICA Bioquímica ............................................................................... 122
BETA 2 MICROGLOBULINA Inmunología ......................................................................................................................... 123
BILIRRUBINA TOTAL Y DIRECTA Bioquímica .................................................................................................................... 124
BORDETELLA PERTUSSIS IgG - IgA Inmunología .............................................................................................................. 125
BRUCELLA, ANTICUERPOS IgM –IgG Inmunología ........................................................................................................... 126
CALCIO Bioquímica ......................................................................................................................................................... 127
CALCIO IONICO Bioquímica ............................................................................................................................................. 128
CALCIO URINARIO MUESTRA AISLADA Bioquímica ......................................................................................................... 129
CALCIO URINARIO DE 24 HORAS Bioquímica .................................................................................................................. 130
CARBAMAZEPINA, NIVELES DE Bioquímica ..................................................................................................................... 131
CHLAMYDIA PNEUMONIAE AC IgM Inmunología ............................................................................................................ 131
CISTICERCOSIS Inmunología ............................................................................................................................................ 132
CITOMEGALOVIRUS IgG – IgM Inmunología ................................................................................................................... 132
COLESTEROL EN LIQUIDOS BIOLOGICOS ....................................................................................................................... 133
COLESTEROL TOTAL Bioquímica...................................................................................................................................... 133
COLESTEROL- HDL Bioquímica ........................................................................................................................................ 134
COLINESTERASA Bioquímica ........................................................................................................................................... 135
COMPLEMENTO C3 – C4 Inmunología ............................................................................................................................ 136
COPROCULTIVO Microbiologia......................................................................................................................................... 137
CORTISOL Bioquímica ..................................................................................................................................................... 138
CORTISOL, ORINA 24 HORAS Bioquímica ........................................................................................................................ 139
CREATINKINASA TOTAL (CK TOTAL) Bioquímica ............................................................................................................. 140
CREATINKINASA MB (CK MB) Bioquímica ....................................................................................................................... 141
CREATININA EN SUERO Bioquímica ................................................................................................................................ 142
CREATININA URINARIA MUESTRA AISLADA Bioquímica ................................................................................................. 143
CREATININA CLEARENCE CORREGIDO DE Bioquímica ................................................................................................... 144
CUERPOS CETÓNICOS EN SANGRE Y ORINA Bioquímica ................................................................................................. 145
CULTIVO CORRIENTE Microbiología ................................................................................................................................. 146
DENSIDAD URINARIA Orinas .......................................................................................................................................... 147
DHEA-S (SULFATO DE DESHIDROEPIANDROSTERONA) Bioquímica ................................................................................ 148
DIGOXINA, NIVELES DE Inmunología ............................................................................................................................... 149
DIMERO-D Coagulación ................................................................................................................................................. 150
ELECTROFORESIS DE PROTEINAS SERICAS Inmunología.................................................................................................. 151
ELECTROFORESIS DE PROTEINAS ORINA Inmunología .................................................................................................... 151
ELECTROLITOS PLASMATICOS Bioquímica ...................................................................................................................... 152
ELECTROLITOS URINARIOS Bioquímica ........................................................................................................................... 153
EPSTEIN BARR VIRUS, Ac. IgM (ANTI VCA IgM) Inmunologia........................................................................................... 154
EOSINÓFILOS NASALES Hematología .............................................................................................................................. 155
ESTRADIOL Bioquímica ................................................................................................................................................... 156
FACTOR REUMATOIDEO Inmunología ............................................................................................................................. 157
FENITOINA, NIVELES DE Bioquímica ............................................................................................................................... 158
FENOBARBITAL, NIVELES DE Bioquímica ........................................................................................................................ 158
FERRITINA Inmunología ................................................................................................................................................... 159
FIBRINOGENO PLASMATICO, DETERMINACION CUANTITATIVA DE Coagulación .......................................................... 160
FIERRO Bioquímica.......................................................................................................................................................... 161
FIERRO Y TIBC (CAPACIDAD TOTAL DE FIJACIÓN DE FIERRO) Bioquímica....................................................................... 162
FOSFATASA ALCALINA (ALP) Bioquímica......................................................................................................................... 163
FÓSFORO Bioquímica ...................................................................................................................................................... 164
FÓSFORO URINARIO MUESTRA AISLADA Bioquímica ..................................................................................................... 165
6
FÓSFORO URINARIO DE 24 HORAS Bioquímica .............................................................................................................. 166
FSH, HORMONA FOLICULO ESTIMULANTE Bioquímica .................................................................................................. 167
GAMMA-GLUTAMILTRANSPEPTIDASA (GGT) Bioquímica............................................................................................... 168
GASES EN SANGRE Bioquímica ....................................................................................................................................... 169
GLUCOSA EN SANGRE Bioquímica .................................................................................................................................. 170
GLUCOSA EN ORINA AISLADA Bioquímica ............................................................................................................. 171
GLUCOSA EN ORINA DE 24 HORAS Bioquímica.............................................................................................................. 172
HANTA VIRUS TEST RAPIDO Bioquímica ......................................................................................................................... 173
HAPTOGLOBINA Inmunología ......................................................................................................................................... 174
HEMOCULTIVO Microbiología.......................................................................................................................................... 175
HEMOGLOBINA GLICOSILADA (HBA1C) Bioquímica ......................................................................................................... 175
HEMOGRAMA Hematología ............................................................................................................................................ 176
HEMOPHILUS INFLUENZAE TIPO B, ANTICUERPOS ANTI Inmunología............................................................................ 177
HEMORRAGIAS OCULTAS Parasitologia .......................................................................................................................... 177
HEPATITIS A, ANTICUERPOS IgM Inmunología ................................................................................................................ 178
HEPATITIS B, ANTIGENO DE SUPERFICIE Inmunología .................................................................................................... 179
HEPATITIS B, TEST RAPIDO Bioquímica ........................................................................................................................... 180
HEPATITIS C, ANTICUERPOS Inmunología ....................................................................................................................... 181
HEPATITIS C, TEST RAPIDO Bioquímica ........................................................................................................................... 182
HERPES SIMPLE 1 VIRUS, SEROLOGIA IgG Inmunologia .................................................................................................. 183
HERPES SIMPLE 2 VIRUS, SEROLOGIA IgG Inmunologia .................................................................................................. 184
HIDATIDOSIS IgG Inmunología ...................................................................................................................................... 185
HIV, COMBO ANTIGENO - ANTICUERPO Inmunología ..................................................................................................... 185
HIV TEST RAPIDO Bioquímica.......................................................................................................................................... 186
HTLV I/II, ANTICUERPOS Bioquímica ............................................................................................................................... 187
INFLUENZA tipo A y B, TEST RAPIDO Bioquímica ............................................................................................................ 188
INMUNOELECTROFORESIS DE SANGRE, CADENAS LIVIANAS Inmunología ..................................................................... 189
INMUNOELECTROFORESIS DE ORINA, CADENAS LIVIANAS Inmunología ........................................................................ 189
INMUNOELECTROFORESIS DE SANGRE, CADENAS PESADAS Inmunología ..................................................................... 190
INMUNOELECTROFORESIS DE ORINA, CADENAS PESADAS Inmunología ........................................................................ 190
INMUNOGLOBULINA IgA – IgM – IgG Inmunología ......................................................................................................... 191
IgE TOTAL Inmunología ................................................................................................................................................... 192
INSULINA Bioquímica ...................................................................................................................................................... 193
INSULINEMIA, CURVA DE (2 MUESTRAS) Bioquímica ..................................................................................................... 194
ION CLORO Bioquímica ................................................................................................................................................... 195
LACTATO DESHIDROGENASA (LDH) Bioquímica.............................................................................................................. 195
LACTATO DESHIDROGENASA (LDH) LIQUIDOS BIOLOGICOS Bioquímica ...................................................................... 196
LH, HORMONA LUTEINIZANTE Bioquímica ..................................................................................................................... 197
LIPASA Bioquímica .......................................................................................................................................................... 198
LÍQUIDO ASCÍTICO, CITOQUÍMICO DE Bioquímica.......................................................................................................... 199
LÍQUIDO CEFALORRAQUIDEO, CITOQUÍMICO DE Bioquímica ........................................................................................ 200
LÍQUIDO PLEURAL, CITOQUÍMICO DE Bioquímica .......................................................................................................... 201
LÍQUIDO PLEURAL, pH Bioquímica .................................................................................................................................. 202
LÍQUIDO SINOVIAL, CITOQUÍMICO DE Bioquímica ......................................................................................................... 203
LITIO, NIVELES PLASMÁTICOS DE Bioquímica ................................................................................................................. 204
MAGNESIO Bioquímica ................................................................................................................................................... 205
MAGNESIO ORINA AISLADA Bioquímica ......................................................................................................................... 206
MAGNESIO ORINA 24 HORAS Bioquímica....................................................................................................................... 207
MICROHEMAGLUTINACIÓN ANTI Treponema pallidum (MHA TP) Serología ................................................................ 208
MIELOGRAMA Hematología ............................................................................................................................................ 209
MICROALBUMINURIA AISLADA Bioquímica .................................................................................................................... 210
MICROALBUMINURIA DE 24 HORAS Bioquímica ............................................................................................................ 211
MYCOPLASMA, ANTICUERPOS IgM –IgG Inmunología .................................................................................................... 212
NITROGENO UREICO SANGUINEO (BUN) Bioquímica ..................................................................................................... 213
ORINA COMPLETA Orinas .............................................................................................................................................. 214
PARASITOLÓGICO SERIADO DE DEPOSICIONES Parasitología ......................................................................................... 215
7
PARASITOLÓGICO EN CONTENIDO DUODENAL Parasitología ........................................................................................ 215
PARATOHORMONA INTACTA (PTH INTACTA) Bioquímica .............................................................................................. 216
PERFIL CRITICO Bioquímica ............................................................................................................................................. 216
PERFIL LIPIDICO Bioquímica ............................................................................................................................................ 218
pH y BENEDICT EN DEPOSICIONES Parasitología ........................................................................................................... 219
PRE ALBUMINA Inmunología........................................................................................................................................... 220
PROGESTERONA TOTAL Bioquímica ............................................................................................................................... 221
PROTEINA C REACTIVA (PCR) Bioquímica ....................................................................................................................... 222
PROTEÍNAS TOTALES SÉRICAS Bioquímica ...................................................................................................................... 223
PROTEINURIA AISLADA Bioquímica ................................................................................................................................ 224
PROTEINURIA DE 24 HORAS Bioquímica ......................................................................................................................... 225
PROLACTINA Bioquímica................................................................................................................................................. 226
PRUEBA DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA ORAL (PTGO) Bioquímica ............................................................................... 227
RECUENTO RETICULOCITOS Hematología ....................................................................................................................... 228
ROTAVIRUS, DEPOSICIONES PARA BUSQUEDA DE Inmunología ..................................................................................... 229
RUBEOLA, ANTICUERPOS IgG Inmunología ..................................................................................................................... 230
RUBEOLA, ANTICUERPOS IgM Inmunología .................................................................................................................... 230
SCREENING METABÓLICO Serología .............................................................................................................................. 231
SEDIMENTO URINARIO Orinas ....................................................................................................................................... 232
T3 HORMONA TRIYODOTIRONINA Bioquímica ............................................................................................................... 233
T4 LIBRE, HORMONA TETRAYODOTIRONINA LIBRE Bioquímica ..................................................................................... 234
TSH, HORMONA TIROESTIMULANTE Bioquímica............................................................................................................ 234
TEST DE GRAHAM Parasitología...................................................................................................................................... 235
TEST DE MUCOPOLISACARIDOSIS (TEST DE BERRY) Serología ....................................................................................... 236
TEST DE NITROPRUSIATO Serología ............................................................................................................................... 236
TEST DEL SUDOR Serología ............................................................................................................................................ 237
TESTOSTERONA TOTAL Bioquímica ................................................................................................................................ 238
TIEMPO DE PROTROMBINA (PT) Coagulación ................................................................................................................ 239
TIEMPO DE SANGRÍA Coagulación .................................................................................................................................. 240
TIEMPO DE TROMBOPLASTINA PARCIAL ACTIVADA (TTPA) Coagulación....................................................................... 241
TOXOPLASMA GONDII, ANTICUERPOS IgG Inmunología ................................................................................................. 242
TOXOPLASMA GONDII, ANTICUERPOS IgM................................................................................................................... 243
TRANSAMINASA GLUTÁMICO OXALOACÉTICO (GOT), TRANSAMINASA GLUTÁMICO PIRÚVICO (GPT) Bioquímica ...... 244
TRIGLICÉRIDOS Bioquímica ............................................................................................................................................. 245
VARICELLA – ZOSTER, VIRUS Inmunología ..................................................................................................................... 246
VDRL EN SUERO Serología.............................................................................................................................................. 247
VDRL EN LCR Serología ................................................................................................................................................... 248
VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN GLOBULAR (VHS) Hematología .................................................................................. 249
VIRUS RESPIRATORIOS, ANTIGENOS POR IFI ADV, VRS, IA, IB, PI-1, PI-2, PI-3, METAPNEUMOVIRUS Inmunología ....... 250
ANEXO Nº 1: FORMULARIO SOLICITUD INSTITUCIONAL .......................................................................................251
ANEXO Nº 2: FORMULARIO SOLICITUD EXAMEN VIH ...........................................................................................252
ANEXO Nº 3: FORMULARIO SOLICITUD EXAMEN BACTERIOLOGICO TBC ..................................................................253
DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA ....................................................................................................................254
8
INTRODUCCION
El Manual de Exámenes de Laboratorio y Toma de Muestras ha sido confeccionado como un elemento
de apoyo para los servicios clínicos, de manera de conocer el funconamiento interno y lograr la mejor utilización
del recurso diagnóstico que el laboratorio aporta.
Se han incorporado las Normas de Procedimientos del Ministerio de Salud que tienen relación con el
manejo de fluidos corporales de alto riesgo y desecho de material cortopunzante; así como también, aspectos
administrativos e indicaciones generales que permiten un manejo adecuado de las muestras que serán
procesadas en el laboratorio clínico.
Al final del manual se ha incorporado un apartado con la descripción de todas las técnicas realizadas en
el laboratorio, que incluye los requerimientos de la muestra, tiempos de respuesta y valores de referencia.
Este manual se encontrará disponible con todas sus actualizaciones en el sitio web del Hospital.
(http://www.hhha.cl/)
OBJETIVOS
Conocer el funcionamiento general del Laboratorio.
Conocer los exámenes disponibles tanto en rutina como en turno de 24 horas.
Conocer las normas del laboratorio del hospital en cuanto a:
o Condiciones del paciente para realizar examen.
o Tipo de frasco o tubo, utilización de anticoagulante, jeringa heparinizada, etc.
o Cantidad de sangre requerida.
o Datos complementarios del paciente, en algunos exámenes se solicita por ejemplo, el
peso, la talla, la edad, la temperatura, etc.
o Obtener de manera correcta la muestra.
Conocer el horario de recepción de muestras en laboratorio y los exámenes que son
considerados de urgencia y que se pueden enviar las 24 horas del día.
Constatar la correcta rotulación de los frascos y adjuntar la orden de solicitud al ser enviadas las
muestras al laboratorio.
Informar al personal encargado del transporte de las muestras, sobre las medidas de seguridad
en el manejo de estas, uso de receptáculo plástico tapado y frascos en posición vertical,
evitando que se destapen o volteen, no utilizar frascos con tapón de algodón.
Al recibir el informe de los resultados, interpretarlos y controlarlos por médico residente o
tratante, si se presentan valores alterados.
Obtener prioritariamente los exámenes de urgencia y preocuparse del control de los resultados.
9
DESCRIPCIÓN DE LA UNIDAD DE LABORATORIO
CLÍNICO Y SU ORGANIZACIÓN INTERNA
La Unidad de laboratorio clínico del Hospital Dr Hernán Henríquez Aravena de Temuco comprende tanto
el área de laboratorio como la toma de muestra.
El Laboratorio se encuentra ubicado en el séptimo piso del Edificio Nuevo y la toma de muestra se
encuentra ubicada en la planta baja del CDT.
Organizacionalmente se encuentra estructurado en distintas secciones de trabajo, cuyo encargado y
teléfonos se detallan a continuación:
AREA
Secretaría
ENCARGADO
Srta Roxanna Rocha
Srta Rubidia Olivero
FONO
459021
Jefatura
Supervisión
Bacteriología
Bioquímica
Hematología y Coagulación
Inmunología
Orinas
Serología
Toma de muestra
Tuberculosis
Dra Alicia Anderson
TM María Inés Henríquez
TM Patricia Reydet
BQ Marcela González
TM Christian Pailañir
QF Jaime Inostroza
BQ Marcela González
TM Marcela Alvarez
TM María Inés Henríquez
TM Rafael Riffo
458750
458731
459022
459015
459024
459030
459026
459016
459018
459019
HORARIOS DE ATENCION
LABORATORIO DE RUTINA
La unidad de laboratorio clínico funciona en horario hábil para la recepción de muestras y
procesamiento de los exámenes de pacientes ambulatorios o para exámenes no considerados dentro de la
cartera de exámenes de urgencia.
Horario de lunes a viernes de 8.00 a 16.50 hrs.
10
LABORATORIO DE URGENCIA 24 HORAS
Para la recepción y procesamiento de exámenes de pacientes hospitalizados y de urgencia durante las
24 horas del día (ver exámenes considerados de urgencia en página 25.
ENTREGA DE HORA PARA TOMA DE MUESTRA
En el caso de requerir toma de muestra los pacientes ambulatorios deben acudir a pedir hora a la Toma
de Muestra, mostrando su carnet de identidad y comprobante de hora de atención en policlínico.
Horario de lunes a viernes de 10.00 a 16.40 hrs
TOMA DE MUESTRA
Lunes a viernes desde las 8.00 hasta las 16.30 hrs.
ENTREGA DE RESULTADOS AMBULATORIOS
Horario de lunes a viernes de 10.30 a 16.40 hrs
Se entregan resultados presentando el carnet de identidad del paciente.
A excepción de exámenes de carácter confidencial (Ver página 14)
ARANCEL DE EXÁMENES
El Hospital como integrante de la red pública aplica aranceles de FONASA en Modalidad Institucional.
Los usuarios FONASA C, FONASA D, Isapre y particulares deberán cancelar en cualquier caja del establecimiento
previo a la atención.
FORMULARIO DE SOLICITUDES DE EXÁMENES
Sólo se reciben muestras que vengan con el formulario institucional de solicitud de exámenes (ver anexo
Nº 1, página 253).
La solicitud de examen de VIH y examen bacteriológico de TBC tienen un formulario especial de uso
obligatorio. (ver anexos Nº2 y 3 respectivamente, páginas 252 y 253)
El laboratorio clínico se reserva el derecho de rechazar órdenes incompletas, ilegibles o que no vengan
en formulario institucional.
11
POLÍTICAS DE CALIDAD DE LA UNIDAD DE LABORATORIO
TIEMPO DE RESPUESTA
El tiempo de respuesta se define como el tiempo transcurrido entre la recepción de la muestra en
el laboratorio y que el examen se ha validado en el sistema informático, por lo que se encuentra disponible. El
laboratorio ha definido los tiempos de respuesta para cada examen que realiza, cuyo detalle puede visualizarse
en el listado alfabético por examen (ver página 86 en adelante).
TIEMPO DE RESPUESTA EXÁMENES DE URGENCIA
Tipo de examen
Exámenes de urgencia disponibles
24 horas (ver página 11 )
Perfil crítico
Hemograma automatizado
Pruebas de coagulación
Gases arteriales
Procedencia
Servicios de urgencia adulto, urgencia
infantil y urgencia obstétrica.
Pabellón y unidades de paciente crítico
Pabellón
Pabellón
Cualquier procedencia
Tiempo de respuesta
2 horas
30 minutos
30 minutos
30 minutos
60 minutos
TIEMPO DE RESPUESTA EXÁMENES DE BACTERIOLOGIA
El tiempo de respuesta de exámenes bacteriológicos depende del tipo de muestra, del desarrollo
bacteriano y del tipo de bacteria (s) aislada(s).
Los tiempos de respuesta que nuestro Laboratorio compromete son los siguientes:
TIEMPO DE RESPUESTA (días hábiles)
Negativo
Urocultivo
Hemocultivo
Líquidos Orgánicos
Líq peritoneal de peritoneodiálisis
Tejidos
Secreciones
Coprocultivos
1
5
3
5
7
2
2
Cultivo de Hongos
VRE
Agua de diálisis
15
2
2
Positivo
2o+
Microorg complejo
3
Hasta 4
3
3 o más
3
Hasta 4
3
3
4 o más
4 o más
2
3
Hasta 4
Positivo para salmonella, shigella, yersinia o vibrio: 2 días
Búsqueda ECEH 15 días o más (derivado a ISP)
3
3
2
1 Microorganismo
2
2
2
12
REPORTE DE VALORES CRITICOS
De acuerdo a la política institucional de calidad y seguridad de los pacientes el Laboratorio clínico cuenta
con un procedimiento de notificación de valores críticos para pacientes hospitalizados y de los servicios de
urgencia, definidos de acuerdo a la situación de riesgo y necesidad de intervención terapéutica oportuna.
Cuando un resultado de examen es lo suficientemente desviado de la condición normal como para
poner en riesgo la vida del paciente si no se comienza un tratamiento en forma inmediata, el tecnólogo médico
del laboratorio responsable del examen deberá avisar telefónicamente al médico o enfermera tratante,
EXCEPTO si el resultado previo del examen del paciente ya presentó nivel crítico y fue reportado.
Se han definido los siguientes valores críticos en nuestro establecimiento:
Valores críticos cuantitativos:
Analito
Amilasa
Bilirrubina total (RN)
BUN
Calcio
CK total
Cloro
Creatininemia
Fósforo
Glucosa
Magnesio
Potasio
Sodio
PCO2 arterial
pH arterial
pH venoso
PO2 arterial
Hematocrito
Hemoglobina
Leucocitos
Plaquetas
Blastos
Bioquímica
Valor crítico mínimo
------< 6 mg/dL
--< 80 mEq/L
--< 1 mg/dL
< 40 mg/dL
< 1 mg/dL
<2,8 mEq/L
< 125 mEq/L
Bioquímica de gases
< 20 mm Hg
< 7,1
< 7,1
< 40 mm Hg
Hematología
< 15%
< 5 g/dL
3
< 1.500/mm **
3
< 20.000/mm
Valor crítico máximo
> 500 U/L
> 20 mg/dL
> 100 mg/dL
> 13 mg/dL
> 500 U/L
> 125 mEq/L
> 7 mg/dL *
--> 400 mg/dL
--> 6 mEq/L
> 152 mEq/L
> 65 mm Hg
> 7,59
>7.6
---
> 1.000.000/mm
Presencia
3
Coagulación
Protrombina
TTPA
INR > 5
> 120 seg
Fármacos
Fenitoína
Fenobarbital
Carbamazepina
Litio
Acido Valproico
> 40 ug/mL
> 60 ug/mL
> 20 ug/mL
> 1,6 mEq/L (> 2 mmol/L)
> 150 ug/mL
* Excepto caso de paciente con insuficiencia renal crónica y ** Excepto caso de paciente en quimioterapia.
13
Valores críticos (cualitativos) del área de microbiología:
Hemocultivo positivo (2, 3, 4)
Tinción de Gram o cultivo positivo (+) de LCR
Tinción de Gram o cultivo positivo (+) de líquidos estériles (peritoneal, pleural, etc.)
Tinción de Gram o cultivo positivo (+) de muestras de pabellón.
Enfermedad invasiva por Neisseria meningitidis
Cultivo o aislamiento positivo para: Corynebacterium diphteriae, Bordetella pertussis, Neisseria
gonorrhoeae (en regiones no genitales)
Detección positiva de antígenos:
Cryptococcus
Streptococcus grupo B
Haemophilus influenzae B
Neisseria meningitidis
Streptococcus pneumoniae
Tinción acidoresistente o cultivo positivo para Mycobacterium tubeculosis
CONFIDENCIALIDAD DE RESULTADOS
Para asegurar la confidencialidad de los resultados el laboratorio ha dispuesto las siguientes
políticas:
No se entregan resultados de exámenes por teléfono.
En el caso de pacientes ambulatorios: los resultados de exámenes se entregan sólo al paciente o a quien
este autorice, siempre que presente el carnet de identidad del paciente.
En pacientes hospitalizados los resultados se entregan a un funcionario del servicio clínico de
procedencia del paciente.
En el caso de exámenes de VIH, los resultados se entregan sólo al paciente o al médico solicitante.
Existe también una categoría de confidencial los siguientes exámenes en la web de laboratorio:
VIH
Hepatitis C
Hepatitis B
Sífilis VDRL
Para poder acceder a esta información en la web debe acceder el médico con su clave personal.
CONSENTIMIENTO INFORMADO
De acuerdo a la Ley 19.779 y el Reglamento del examen para la detección del Virus de
Inmunodeficiencia Humana Decreto Nº 182 de 2005 del Minsal, el laboratorio SOLO procesa examen para
determinar presencia de virus de inmunodeficiencia humana (VIH) si la muestra se acompaña del
consentimiento informado donde viene codificado el paciente, con firma y nombre del médico tratante.
14
PARTICIPACIÓN EN PROGRAMA EXTERNO DE EVALUACIÓN DE LA CALIDAD
Cada año el laboratorio se incorpora en el PEEC realizado por el Instituto de Salud Pública (ISP).
Nuestra participación incluye los siguientes programas:
Bacteriología
Serología de sífilis
Micobacterias
Serología de VIH
Serología de Hepatitis B
Serología de Hepatitis C
Virus respiratorio
Inmunología básica (factor reumatoideo y proteína c reactiva)
Inmunología de proteínas ( igg ea. Ief)
Autoinmunidad (AAN, antiDNA)
Marcadores tumorales (CA 125, CEA, AFP, Ca 19-9)
Inmunoglobulina e total
Anticuerpos anti ENA
Hemoglobinometría (Hb)
Coagulación (PT + TTPK)
Morfología sanguínea
Recuento de reticulocitos
Coproparasitológico
Serologia de hidatidosis
Serologia toxoplasmosis
Quimica sanguinea.
Quimica orina cualitativa
Hormonas tiroideas (T3, TSH y T4 libre)
Orina cuantitativa
Hemoglobina glicosilada
Hormonas de la reproducción (LH, FSH)
Colinesterasa
REGISTROS
De acuerdo a Reglamento de Laboratorios Clínicos en revisión que modifica y actualiza DTO. Nº 433 DE 1993:
todos los registros de muestras e informes deberán conservarse durante un período de 5 años.
15
SISTEMA INFORMÁTICO PARA VISUALIZACIÓN DE RESULTADOS
Los resultados de exámenes de laboratorio se encuentran disponibles vía web en la página www.hhha.cl
Sistemas Locales.
Cada servicio tiene una contraseña general con la que puede visualizar e imprimir todos los resultados
excepto aquellos confidenciales.
Pueden acceder a visualizar todos los exámenes incluidos los confidenciales, los médicos del
establecimiento, quienes debe solicitar clave al laboratorio, enviando un correo electrónico a
[email protected] con su nombre completo, RUT y servicio clínico.
16
PLAN DE CALIDAD
La unidad de laboratorio se encuentra desarrollando e implementando un programa de control de
calidad y aseguramiento de la calidad, con el objetivo de otorgar un servicio consistente, de alta calidad y costo
efectivo a nuestros clientes, que satisfaga y supere los requerimientos de las entidades acreditadoras.
Dentro de nuestro quehacer y como una manera de evidenciar problemas e implementar mejorías
tenemos un Plan de Calidad 2011 que involucra el seguimiento de indicadores en distintos niveles de los
procesos que afectan al laboratorio:
Indicadores preanalíticos
% Rechazo de muestras por causa y por servicio clínico: indicadores que buscan mejorar el uso
eficiente de los recursos hospitalarios, día cama, insumos, etc
Periodicidad de análisis: trimestral
Responsable: supervisor de laboratorio
o
o
o
o
Nº de rechazos de muestra por lipemia/número total de muestras
Nº de rechazos de muestra por hemólisis/número total de muestras
Nº de rechazos de muestras por nivel inadecuado/número total de muestras
Nº de rechazos de muestra por servicio clínico XX/número total de muestra del servicio
clínico XX
% Muestra única de hemocultivos: indicador que también busca mejorar la eficiencia en el uso de
recursos, en este caso de alto costo para el hospital.
Periodicidad de análisis: semestral
Responsable: TM Vijna Illesca
Indicadores analíticos
% de control de calidad interno satisfactorio
% de Test con coeficiente de variación mayor que el rango valor establecido para cada técnica analítica
al año/ total de Test al año.
Umbral: 90%
Responsable: BQ Marcela González
17
% Control de calidad externo satisfactorio
o Nº de analitos controlados en el PEEC con resultado satisfactorio/Nº total de analitos
controlados en el PEEC.
Umbral: 90%
Periodicidad de análisis: semestral
Responsable de medición: BQ Marcela González
Indicadores post analíticos
% Cumplimiento de reporte de VALORES CRÍTICOS CUALITATIVOS Y CUANTITATIVOS
Dentro de nuestras prioridades se encuentra el aviso telefónico al médico tratante o enfermera
responsable del paciente ante cualquier examen con resultado que involucre un riesgo vital para el paciente.
o
Nº de exámenes con valor crítico avisado al servicio clínico al mes/Nº total de exámenes
por valor crítico al mes
Umbral: 100%
Periodicidad de análisis: mensual
Responsable de medición: Jefe laboratorio
% Urocultivos con desarrollo polimicrobiano por servicio
o Nº de urocultivos con desarrollo polimicrobiano por servicio clínico XX/Nº total de
urocultivos por servicio clínico XX
Umbral: depende de línea base
Periodicidad de análisis: trimestral
Responsable de medición: TM Vijna Illesca
% Hemocultivos contaminados por servicio
o Nº de hemocultivos contaminados por servicio clínico XX/Nº total de hemocultivos por
servicio clínico XX
Umbral: depende de línea base
Periodicidad de análisis: trimestral
Responsable de medición: TM Vijna Illesca
% Cultivos de Koch contaminados por muestras y por tubos
18
o
o
Nº de cultivos contaminados por muestras recibidas al año/Nº total de cultivos de koch
anuales
Nº de cultivos contaminados por tubos al año/Nº total de cultivos de koch anuales.
Umbral: <5%
Periodicidad de análisis: anual
Responsable de medición: TM Rafael Riffo
% Cumplimiento tiempos de respuesta de exámenes de servicios de urgencia
o
Nº de exámenes de servicios de urgencia con TAT < de 2 horas/Nº total de exámenes de
servicios de urgencia
Umbral: 90%
Periodicidad de análisis: mensual
Responsable de medición: Jefe Laboratorio
% Cumplimiento tiempos de respuesta de perfil crítico
o Nº de perfiles críticos validados en <30 minutos/Nº total de perfiles críticos
Umbral: 90%
Periodicidad de análisis: mensual
Responsable de medición: Jefe Laboratorio
% Cumplimiento tiempos de respuesta de exámenes de pabellón
o
Nº de hemogramas y pruebas de coagulación de pabellón validados en <30 minutos/Nº
total de hemogramas y pruebas de coagulación de pabellón
Umbral: 90%
Periodicidad de análisis: mensual
Responsable de medición: Jefe laboratorio
19
EXÁMENES QUE REALIZA EL LABORATORIO
A continuación se detallan todas las prestaciones del Laboratorio Clínico:
CODIGO
GLOSA
SANGRE, HEMATOLOGIA
03-01-003
Mielograma
03-01-010
Células del lupus, cada muestra
03-01-021
Fibrinógeno
03-01-026
Ferritina
03-01-027
Fibrinógeno, productos de degradación
03-01-028
Fierro sérico
03-01-029
Fierro, capacidad de fijación del
03-01-035
Haptoglobina cuantitativa
03-01-041
Hemoglobina glicosilada
03-01-045
Hemograma
03-01-048
Hemosiderina medular
03-01-054
Carboxihemoglobina
03-01-059
Protrombina e INR
03-01-068
Recuento de reticulocitos
03-01-072
Sangría, tiempo de
03-01-082
Transferrina
03-01-085
Tromboplastina, tiempo parcial
03-01-086
Velocidad de eritrosedimentación
SANGRE, EXAMENES BIOQUIMICOS
03-02-004
Acido láctico
03-02-005
Acido úrico
03-02-035
Acido Valproico, nivel plasmático
03-02-060
Albúmina
03-02-008
Amilasa
03-02-010
Amonio
03-02-012
Bilirrubina total
03-02-013
Bilirrubina total y conjugada
03-02-015
Calcio
03-02-016
Calcio iónico
03-02-035
Carbamazepina, nivel plasmático
03-02-067
Colesterol total
03-02-068
Colesterol HDL
03-02-021
Colinesterasa en plasma o sangre total
03-02-023
Creatinina
20
03-02-024
03-02-025
03-02-026
03-02-030
03-02-032
03-02-034
03-02-035
03-02-035
03-02-035
03-02-040
03-02-042
03-02-045
03-02-046
03-02-047
03-02-048
03-02-050
03-02-053
03-02-055
03-02-056
03-02-057
03-02-075
03-02-060
03-02-061
03-02-076
03-02-063
03-02-063
03-02-064
Creatinina, Clearence
Creatinquinasa CK - MB miocárdica
Creatinquinasa CK - total
Deshidrogenasa láctica total (LDH)
Electrolitos plasmáticos
Perfil Lipídico
Digoxina, nivel plasmático
Fenitoína, nivel plasmático
Fenobarbital, nivel plasmático
Fosfatasas alcalinas totales
Fósforo
Gamma glutamiltranspeptidasa (GGT)
Gases y equilibrio ácido base en sangre
Glucosa
Glucosa, Prueba de Tolerancia
Adenosindeaminasa
Lipasa
Litio
Magnesio
Nitrógeno ureico y/o úrea
Perfil bioquímico
Proteínas totales o albúminas, c/u
Proteínas, electroforesis
Perfil Hepático)
Transaminasas, oxalacética (GOT/AST)
Transaminasas Pirúvica (GPT/ALT)
Triglicéridos
SANGRE, HORMONAS
03-03-006
Cortisol
03-03-008
Dehidroepiandrosterona
03-03-014
Gonadotrofina coriónica, sub-unidad beta
03-03-015
Hormona folículo estimulante (FSH)
03-03-016
Hormona luteinizante (LH)
03-03-017
Insulina
03-03-031
Insulina, curva
03-03-018
Parathormona
03-03-019
Progesterona
03-03-020
Prolactina (PRL)
03-03-022
Testosterona
03-03-024
Tiroestimulante (TSH)
03-03-026
Tiroxina libre (T4L)
03-03-028
Triyodotironina (T3)
21
03-03-030
03-05-001
03-05-003
03-05-004
03-05-005
03-05-005
03-05-005
03-05-005
03-05-084
03-05-005
03-05-005
03-05-005
03-05-007
03-05-007
03-05-007
03-05-181
03-05-008
03-05-009
03-05-070
03-05-070
03-05-170
03-05-170
03-05-010
03-05-012
03-05-012
03-05-020
03-05-022
03-05-023
03-05-027
03-05-027
03-05-027
03-05-028
03-02-059
03-05-031
03-05-031
03-05-032
03-06-001
03-06-002
03-06-004
03-06-005
03-06-007
03-06-008
03-06-009
Estradiol
Alfa -1- antitripsina
Alfa fetoproteínas
ENA screening
Anticuerpos anti centrómero
ANCAP
ANCAc
Anticuerpos anti DNA
Anticuerpos anti Cardiolipina (ACA)
Anticuerpos anti mitocondriales
Anticuerpos anti músculo liso
Anticuerpos anti nucleares (ANA)
Anticuerpos anti peroxidasa (TPO)
Anticuerpos anti plaquetarios
Anticuerpos anti tiroglobulinas
Anticuerpo anti transglutaminasa (TTG)
Antiestreptolisina O
Antígeno carcinoembrionario (CEA)
Antígeno prostático específico total
Antígeno prostático específico libre
Antígeno Ca 125
Antígeno Ca 19-9
Beta-2-microglobulina
Complemento C3
Complemento C4
Factor reumatoídeo
Inmunoelectroforesis cadenas livianas
Inmunoelectroforesis cadenas pesadas
Inmunoglobulinas IgA
Inmunoglobulinas IgG
Inmunoglobulinas IgM
Inmunoglobulinas IgE
Prealbúmina
Proteína C reactiva nefelometría
Proteína C reactiva por técnicas turbidimétricas
Proteínas Bence Jones por electroforesis
Baciloscopía orina o líquidos
Baciloscopía expectoración
Examen directo al fresco
Tinción de Gram
Coprocultivo
Cultivo corriente
Hemocultivo aerobio
22
03-06-011
03-06-014
03-06-015
03-06-016
03-06-018
03-06-021
03-06-023
03-06-026
03-06-034
03-06-037
03-06-041
03-06-041
03-06-042
03-06-045
03-06-046
03-06-047
03-06-048
03-06-051
03-06-052
03-06-057
03-06-059
03-06-061
03-06-061
03-06-061
03-06-061
03-06-069
03-06-069
03-06-069
03-06-069
03-06-069
03-06-069
Urocultivo
Campylobacter, Yersinia, Vibrio, c/u
Difteria
Neisseria gonorrhoeae (gonococo)
Cultivo para bacilo de Koch,
Neisseria meningitidis (meningococo)
Mycoplasma
Antibiograma
Clamidias pneumoniae
Mycoplasma IgG, IgM, c/u.
Treponema pallidum FTA - ABS
Treponema pallidum MHA-TP
V.D.R.L.
Coproparasitario seriado Cryptosporidium
Coproparasitario seriado Fasciola
Coproparasitario seriado Isospora
Coproparasitológico seriado Teleman
Graham, examen de
Gusanos macroscópicos, diagnóstico de
Tenias Diagnostico
Coproparasitológico seriado PAFS
ELISA Chagas IgG
ELISA Cisticercosis IgG en suero y LCR
ELISA hidatidosis IgG
ELISA toxoplasmosis IgG e IgM
Anticuerpos citomegalovirus IgG, IgM
Anticuerpos herpes simple I IgG, IgM
Anticuerpos herpes simple II IgG, IgM
Anticuerpos rubéola IgG, IgM
Anticuerpos varicela-zoster
Anticuerpos Epstein Barr
03-06-069
03-06-069
03-06-169
03-06-070
Anticuerpos Hanta IgM
Anticuerpos HTLV I/II
Anticuerpos H.I.V.
Antígenos virus respiratorios (adenovirus, influenza A,
influenza B, parainfluenza 1, parainfluenza 2,
parainfluenza 3 y metapneumovirus por IFI
Rotavirus
Virus sincicial, por IFI
Virus hepatitis A, anticuerpos IgM del
Virus hepatitis B, antígeno superficie
Virus hepatitis C, anticuerpos (anti HCV)
Test del sudor
03-06-170
03-06-270
03-06-074
03-06-079
03-06-081
03-07-007
23
03-08-001
03-08-001
03-08-004
03-08-005
03-08-010
03-08-011
03-08-013
03-08-014
03-08-015
03-08-018
03-08-022
03-08-026
03-08-035
03-09-004
03-09-006
03-09-007
03-09-008
03-09-010
03-09-011
03-09-012
03-09-013
03-09-015
03-09-016
03-09-018
03-09-019
03-09-020
03-09-022
03-09-025
03-09-026
03-09-027
03-09-028
03-09-029
03-09-030
Azúcares reductores (Fehling)
Test de Benedict
Hemorragias ocultas
Leucocitos fecales
Citológico
Directo al fresco, incluye trichomonas)
Eosinófilos, recuento de
Físico-químico)
Glucosa
Proteínas totales o albúmina
Indice IgG/albúmina
Amilasa
Creatinina
Acido úrico cuantitativo
Amilasa cuantitativa
Aminoáciduria cualitativo
Calcio cuantitativo
Creatinina cuantitativa
Cuerpos cetónicos
Electrolitos
Microalbuminuria cuantitativa
Fósfaturia
Glucosuria
Melanogenuria (test de cloruro férrico)
Mucopolisacáridos
Nitrógeno ureico o urea cuantitativo
Orina completa
Osmolalidad
Osmolaridad
Porfirinas, c/u
Proteinuria
Proteínas de Bence-Jones prueba térmica
Urobilinógeno (cuantitativo)
24
LISTA DE EXAMENES DE URGENCIA
Disponibilidad las 24 horas para pacientes hospitalizados y de urgencia.
GLOSA
Acido láctico
Acido úrico
Acido Valproico, nivel plasmático
Amilasa
Bilirrubina total
Bilirrubina total y conjugada
Calcio
Calcio iónico
Carbamazepina, nivel plasmático
Carboxihemoglobina
Citológico Y Citoquímico líquidos
Colinesterasa en plasma o sangre total
Coprocultivo
Creatinina
Creatinquinasa CK - MB miocárdica
Creatinquinasa CK - total
Cultivos corrientes
Electrolitos plasmáticos
Fenitoína Niveles plasmáticos
Fenobarbital Niveles plasmáticos
Fosfatasas alcalinas totales
Fósforo
Gases y equilibrio ácido base en
sangre
Glucosa
Gonadotrofina coriónica, sub-unidad
beta
Hanta IgM Anticuerpos
Hemocultivo aerobio
Hemograma automatizado
Hemograma con frotis
H.I.V. AnticuerposTest Rápido
Nitrógeno ureico y/o úrea
Orina completa
OBSERVACIONES
SOLO OBSTETRICIA
SOLO SE RECIBE MUESTRA. PROCESO
EN DIA HABIL
SOLO SIEMBRA DE MUESTRA
SOLO SE RECIBE MUESTRA. PROCESO
EN DIA HABIL
SOLO SE RECIBE MUESTRA. PROCESO
EN DIA HABIL
SOLO SERVICIO URGENCIA OBSTETRICO
SOLO RECIEN NACIDOS CON RIESGO DE
SEPSIS Y SOSPECHA DE HANTA.
DIALISIS DE URGENCIA Y TRANSPLANTE
25
Proteína C reactiva
Proteinuria
Pruebas de coagulación (PT y TTPK)
Transaminasas, oxalacética (GOT/AST)
Transaminasas Pirúvica (GPT/ALT)
Urocultivo
Virus hepatitis B, antígeno superficie
Test rápido
Virus hepatitis C, anticuerpos Test
rápido
Virus respiratorios (adenovirus,
influenza A, influenza B, parainfluenza
1, parainfluenza 2, parainfluenza 3 y
metapneumovirus por IFI
SOLO MUESTRAS ARO
SOLO SIEMBRA DE MUESTRA
DIALISIS DE URGENCIA Y TRANSPLANTE
DIALISIS DE URGENCIA Y TRANSPLANTE
SOLO EN EPOCA CAMPAÑA DE
INVIERNO
26
EXÁMENES DERIVADOS A OTROS ESTABLECIMIENTOS:
HORARIO DE RECEPCIÓN DE
MUESTRAS A DERIVAR
NOMBRE EXAMEN
LABORATORIO REFERENCIA
CONDICIONES DE DERIVACION DE MUESTRAS
Acido metilmalónico,
ácido Orótico,
cromatografía de
axucares.
Determinaciones
cualitativas de
INTA
Laboratorio de enfermedades
metabólicas.
Universidad de Chile
José Pedro Alessandri N º
5540. INTA
Macul - Santiago
Tomar 10 a 15ml. de orina fresca y enviar
inmediatamente al Laboratorio.
Adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario autorizada
Certificado de FONASA.
El laboratorio envía
Muestra de orina fresca a 4ºC en hielo.
Solicitud de gasto extraordinario autorizada
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
Resultado en 2 semanas.
Ácidos Orgánicos en
orina
INTA
Laboratorio de enfermedades
metabólicas.
Universidad de Chile
José Pedro Alessandri N º
5540. INTA
Macul - Santiago
Muestra de orina (6 a 10 ml).
Este examen se realiza en USA, en el laboratorio del Dr. T.
Law.
Para su cancelación se requiere de un cheque dólar por
un monto de US$140 a nombre de Children´s Hospital
Boston, Lab. Medicine.
Por concepto de envío de la muestra se solicitan $50.000
que deben ser cancelados en efectivo o cheque
nominativo a Courier DHL. Cualquier consulta llamar a
9781543.
Enviar muestra congelada.
Lunes a Jueves hasta las
12:00hrs
Acilcarnitinas Perfil de
INTA
Laboratorio de enfermedades
metabólicas.
Universidad de Chile
José Pedro Alessandri N º
5540. Macul - Santiago
Tomar muestra 4 a 5 gotas de sangre seca de talón o
vena periférica en papel filtro.
Se debe adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Certificado de FONASA.
El Laboratorio envía:
Muestras a temperatura ambiente.
Solicitud de gasto extraordinario.
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
Resultado en 1 semana.
Aminoacidemia
INTA
Laboratorio de enfermedades
metabólicas.
Universidad de Chile
José Pedro Alessandri N º
5540. INTA
Macul - Santiago
Paciente mínimo 3 horas de ayuno.
Tomar 1 ml de sangre sin anticoagulante.
Adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Certificado de FONASA.
El laboratorio envía
Suero congelado embalado con refrigerantes para
mantener a 4ºC.
Solicitud de gasto extraordinario
Lunes a Jueves hasta las
12:00hrs
Resultado en 1 semana.
Aminoaciduria
INTA
Laboratorio de enfermedades
metabólicas.
Universidad de Chile
José Pedro Alessandri N º
5540. INTA
Macul - Santiago
Tomar 10 a 15ml. de orina fresca
Adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Certificado de FONASA.
El laboratorio envía
Muestra congelada
Solicitud de gasto extraordinario
Lunes a Jueves hasta las
12:00hrs
Resultado 1 semana
Resultados en 20 días
hábiles.
27
Bandas oligoclonales en
LCR y suero.
Pontificia Universidad
Católica de Chile Marcoleta
Nº 350. 1º piso.
Santiago
Tomar 3 ml LCR en tubo sin anticoagulante (tapa roja) y 2
ml. sangre en tubo sin anticoagulante (tapa roja).
Adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Certificado de FONASA.
El laboratorio envía
Muestras refrigeradas a 4 ºC
Solicitud de gasto extraordinario
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
Bartonella de
Hessenlae
Pontificia Universidad
Católica de Chile
Dr. Luis Rodríguez
Jefe de laboratorio
Marcoleta Nº 352 1º piso
Santiago
Tomar 1 tubo de sangre sin anticoagulante (tapa roja).
Adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Certificado de FONASA.
El laboratorio envía
Muestras refrigeradas a 4 ºC
Solicitud de gasto extraordinario
Lunes a Jueves hasta las
14:00 hrs.
Brucelosis Serología
Instituto Salud Pública
Sección Bacteriología
Av Maratón Nº1000
Santiago
Tomar 2 Tubos de sangre sin anticoagulante (tapa roja)
Adjuntar
Formulario de ISP.
Certificado de FONASA
Boleta de recaudación en caso de FONASA C o D
Laboratorio envía muesta de suero a temperatura
ambiente.
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs.
Carnitina Total Libre y
esterificada.
INTA
Laboratorio de enfermedades
metabólicas.
Universidad de Chile
José Pedro Alessandri N º
5540. INTA
Macul - Santiago
1 cc de sangre venosa en tubo sin anticoagulante.
Enviar plasma congelado
(-20ºC).
El paciente debe tener 3 horas de ayuno.
Adjuntar solicitud de gasto extraordinario para
beneficiarios FONASA B, C, D.
Lunes a Jueves hasta las
12:00hrs
Resultado en 2 semanas.
Citomegalovirus
Antigenemia
Pontificia Universidad
Católica de Chile
Dr. Luis Rodríguez
Jefe de laboratorio
Marcoleta Nº 352 1º piso
Santiago
Tomar 1 tubo con EDTA (tapa lila) 4ml. adulto o 2 ml
infantil. ( Si el paciente está neutropénico (mínimo 800
células volumen requerido 10 mL)
Enviar de inmediato al laboratorio.
NUNCA congelar.
Adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Certificado de FONASA.
El laboratorio envía
Muestra refrigerada a 4 ºC.
Solicitud de gasto extraordinario
Lunes a Jueves hasta las
14:00hrs.
Laboratorio Clínico Biología
Molecular
Centro Médico San Joaquin,
Pontificia Universidad
Católica de Chile
Vicuña Mackenna Nº 4686. 1º
Piso
San Joaquin,Santiago
Hisopado Rectal ó deposición en tubo estéril sin medio
de transporte.
Se debe adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Certificado de FONASA.
El Laboratorio envía:
Muestras a temperatura ambiente.
Solicitud de gasto extraordinario.
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
Inmunofluorescencia
Indirecta (IFI)
anticuerpos IgG
IFI
Escherichia coli
Verotoxina PCR 1 y 2
28
Espectrometría de
masa
INTA
Laboratorio de enfermedades
metabólicas.
Universidad de Chile
José Pedro Alesandri Nº
5540. INTA
Macul - Santiago
Tomar 5 a 6 gotas de sangre en papel filtro de recién
nacido. Envolver en papel oscuro. Enviar a temperatura
ambiente.
Todo paciente debe cancelar este examen en
Recaudación $31.500. Y presentar boleta para derivación
de examen.
Adjuntar solicitud de examen y solicitud de gasto
extraordinario firmado por médico tratante y Dirección.
Laboratorio de Nutrición.
Pontificia Universidad
Católica de Chile
Marcoleta Nº 352. 1º pìso.
Santiago
Muestra de deposición (tamaño nuez) en Frasco tapa roja
sin líquido.
Adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario autorizada
Certificado de FONASA.
El Laboratorio envía:
Muestra
Solicitud de gasto extraordinario.
Lunes a Miércoles hasta las
11:00 hrs.
HANTAVIRUS
Confirmación
Instituto Salud Pública
Dr. Eleacer Villagra.
Laboratorio de Virología
Av. Marathon Nº 1000
Santiago
Tubo Bioquímico (Tapa roja largo).
Se debe faxear formulario de notificación con el
resultado de test rápido a fono -551302 / 551318.
El laboratorio envía:
Tubo congelado con hielo, aislado en bolsa cerrada.
Formulario de Notificación
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
Resultado en 25 días hábiles
Hepatitis B Anticore
Laboratorio de
Gastroenterología
Hosp. Clínico Universidad de
Chile
Santos Dumont Nº999
3º piso. Sector D.
Santiago
Tomar 1 tubo de sangre sin anticoagulante Tapa roja),
idealmente en ayunas.
Adjuntar
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Boleta de recaudación
FONASA código 03-06-076 $7.550)
Particular $12.750.
Laboratorio envía:
Muestra de suero refrigerado.
Solicitud gasto extraordinario.
Lunes a Miércoles hasta las
12:00 hrs
Hepatitis B Carga viral,
Antigeno E y
anticuerpo E.
Laboratorio de
Gastroenterología Hosp.
Clínico Universidad de Chile
Santos Dumont Nº999
3º piso. Sector D.
Santiago
Tomar 2 tubos de sangre sin anticoagulante (tapa roja).
Adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Certificado de FONASA.
El laboratorio envía
5 a 6 ml. de suero congelado
Solicitud de gasto extraordinario
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
Hepatitis C PCR,
Genotipo, carga viral
Laboratorio de
Gastroenterología Hospital
Clínico Universidad de Chile.
Santos Dumont Nº 999. 3er
piso. Sector D.
Independencia. Santiago.
Tomar 1 tubo de sangre sin anticoagulante, tapa roja de 8
ml en adultos y de 5 ml en niños.
Se debe adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario autorizado
Certificado de FONASA.
El Laboratorio envía:
2 a 3 ml. de suero congelado en niños y 4 ml en adultos
Adjuntar solicitud de gasto extraordinario
Lunes a Jueves hasta las
12:00hr
Esteatocrito
Método de Forget
Lunes a Jueves hasta las
14:00hrs.
Resultado en 10 días hábiles.
Retirar en secretaría
Laboratorio
29
Histocompatibilidad
para transplante
Instituto Salud Pública
Sección Histocompatibilidad
Avda. Marathon Nº 1000
Santiago.
Adulto: 2 tubos de sangre con EDTA de mínimo 8 ml.
Niño: 2 tubos de sangre con EDTA de mínimo 4 ml.
Adjuntar Formulario ISP “Solicitud exámenes
histocompatibilidad para transplante progenitores
hematopoyéticos”
Laboratorio envía muestras a temperatura ambiente.
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
HIV Carga viral
Laboratorio Diagnóstico
Molecular
Facultad de Medicina Campus
San Andrés. Universidad
Católica de la Santísima
Concepción.
Alonso de Rivera 2850,
Concepción
Tomar 1 tubo de sangre con EDTA 6 ml (tubo lila).
Señalar hora de toma de muestra y enviar de inmediato
al laboratorio.
Adjuntar Formulario de Carga Viral que debe indicar
código del paciente (el cual consiste el la inicial del
primer nombre, los dos apellidos, la fecha de nacimiento,
los tres últimos dígitos del Rut y el dígito identificador),
nombre y firma del médico solicitante del examen,
además la fecha y la hora de la toma de muestra.
Lunes a Miércoles hasta las
10:00 hrs
Dr Marcelo Bustamante
Laboratorio Diagnóstico
Molecular
Facultad de Medicina Campus
San Andrés Universidad
Católica de la Santísima
Concepción
Alonso de Rivera 2850,
Concepción
Tomar 1 tubo de sangre con EDTA 6 ml (tubo lila).
Señalar hora de toma de muestra y enviar de inmediato
al laboratorio.
Adjuntar Formulario de CD4 que debe indicar el código
del paciente (el cual consiste el la inicial del primer
nombre, los dos apellidos, la fecha de nacimiento, los
tres últimos dígitos del Rut y el dígito identificador),
nombre y firma del médico solicitante del examen,
además la fecha y la hora de la toma de muestra.
Lunes a Miércoles hasta las
10:00 hrs
HIV Genotipo
Laboratorio de Medicina
Molecular Hospital Clínico
Universidad de Chile. Santos
Dumont 999 Santiago
Tomar 1 tubo de sangre con EDTA de 8 ml adulto o 5 ml
en niños
Enviar Plasma congelado a -80ºC
Solicitud de examen
Solicitud gasto extraordinario
Certificado FONASA
Boleta de recaudación en caso de FONASA C o D.
Lunes a miércoles hasta las
10.00 hrs AM
HIV PCR Pediátrico
Instituto Salud Pública
Sección Virología
Av Maratón Nº1000
Santiago
Tomar 1 tubo de 3 ml de sangre con EDTA (lila)
Adjuntar:
Formulario de ISP para PCR pediátrico que debe indicar el
código del paciente (el cual consiste el la inicial del
primer nombre, los dos apellidos, la fecha de nacimiento,
los tres últimos dígitos del Rut y el dígito identificador),
nombre, firma y timbre del médico solicitante.
Lunes a Miércoles hasta las
10:00 hrs.
Resultado en 25 días hábiles
HLA – B27 Tipificación
Instituto Salud Pública
Recepcion de Muestras
Avda. Marathon Nº 1000
Santiago.
Solicitar hora antes de enviar muestra al fono Red Minsal
255204
Tomar 2 Tubos con EDTA de 6 ml.(tapa lila)
Adjuntar:
Solicitud de examen
Certificado FONASA
Boleta de recaudación en caso de FONASA C o D.
Laboratorio envía muestra refrigerada.
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
Hospital del Salvador
Laboratorio Hematología
Av. Salvador 364
Santiago.
Tomar 2 a 3 tubos con EDTA (Tapa lila). En algunos casos
se envía 1 jeringa y placas con muestra de sangre
periferica.
Adjuntar:
Solicitud de examen
Formulario de Estudio Inmunofenotipo
Certificado FONASA
Enviar a temperatura ambiente.
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
Resultado se recepciona a
través de correo electrónico.
Método NucliSens
EasyQ HIV-1
HIV CD4
Citometría de flujo
PCR alelo-específica
Inmunofenotipo
30
Leptospira
Instituto Salud Pública
Laboratorio Leptospira
Sección espiroquetas
Av Maratón Nº 1000
I.S.P
Santiago
Tomar 5 a 8 ml. de sangre en tubo bioquímico (tapa roja).
Adjuntar:
Solicitud de examen
Formulario ISP firmado por médico tratante
http://www.ispch.cl/formularios/frm_exa/nuevos%20sec
cion%20espiroquetas/fmuestrassospechadeleptosporosis
.pdf
Certificado de FONASA.
Laboratorio envía:
Suero refrigerado
Formulario ISP
Certificado FONASA
Leucemia Examen de
Biología Molecular
PCR T9/22
PCR T15/17
Mutación JAK2 V617F
Laboratorio Hematología
Sección Biología Molecular
Hospital del Salvador
Av. Salvador 364 Providencia
Santiago.
Tomar 2 Tubos con EDTA (Tapa Lila).
Adjuntar
Solicitud de examen
Formulario de Estudio Molecular.
Certificado de FONASA
El Laboratorio envía la muestra a temperatura ambiente.
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
7 días hábiles
Resultado se recepciona a
través de correo electrónico
Leucemia FISH
cromosoma 22
Laboratorio de Citogenética.
Pontificia Universidad
Católica de Chile
Av. Marcoleta Nº 350. 1º
Piso.
Santiago.
Se debe solicitar hora antes de enviar muestra al fono 025525376 ó 02-3548515.
Tomar mínimo 2ml. de sangre en tubo tapa verde con
heparina de sodio.
Adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario autorizada
Certificado FONASA.
El Laboratorio envía:
Muestra refrigerada.
Solicitud de gasto extraordinario.
Lunes a Jueves hasta las
12:00hrs
Resultado 15 días hábiles.
Metrotexate, niveles
plasmáticos
Pontificia Universidad
Católica de Chile Av.
Marcoleta Nº 350. 1º Piso.
Santiago.
En paciente con tratamiento con heparina, tomar la
muestra antes de iniciar la terapia. Verificar que la orden
de atención lleve la dosis diaria en mg, antecedentes de
la última dosis (hora y mg), y la hora en que se realizó la
toma de muestra al paciente. Verificar documentos
solicitado.
Tubo tapa roja protegido de la luz. No usar tubos con gel
separador.
Micobacterium TBC
PCR en LCR
Pontificia Universidad
Católica de Chile Av.
Marcoleta Nº 350. 1º Piso.
Santiago.
Tomar LCR 1 a 3 ml. en frasco estéril y seco.
Orina 5 a 10 ml en frasco estéril
Trasladar de inmediato al laboratorio.
Se debe adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Certificado de FONASA.
El Laboratorio envía:
Muestras refrigeradas.
Solicitud de gasto extraordinario
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
Resultado en 4 días hábiles.
Mucolipidosis.
Screening
INTA
Laboratorio de
enfermedades.
Universidad de Chile
metabólicas.
José Pedro Alessandri N º
5540. INTA
Macul - Santiago
Tomar 1 tubo de sangre sin anticoagulante.
Se debe adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Certificado de FONASA.
El Laboratorio envía:
Suero congelado
Solicitud de gasto extraordinario
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs
Polarización de la
fluorescencia,
Inmunoensayo
cuantitativo
Lunes a Jueves hasta las
12:00hrs
Resultado en 7 días hábiles.
Resultado en 3 semanas.
31
Rubeola
Sarampion
Instituto de Salud Pública al
laboratorio de Virología,
Av Maratón Nº1000
Santiago
Tubo tapa roja sin anticoagulante
Llevar de inmediato al laboratorio
Adjuntar
Formulario Vigilancia Sarampión Rubéola
INTA
Laboratorio de citogenética
molecular.
Universidad de Chile
Av. Libano Nº 5524. INTA
Santiago
Sangre venosa en tubo con EDTA (Tapa lila).
Se debe adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario autorizado.
Certificado de FONASA.
El Laboratorio envía:
Muestras a temperatura ambiente.
Solicitud de gasto extraordinario.
Test Molecular para X
frágil.
INTA
Laboratorio de citogenética
molecular.
Universidad de Chile
Av Libano Nº 5524 INTA
Santiago
1 Tubo con EDTA (Tapa lila).
Se debe adjuntar:
Solicitud de examen
Solicitud de gasto extraordinario
Certificado de FONASA.
El Laboratorio envía:
Muestras a temperatura ambiente.
Solicitud de gasto extraordinario.
Lunes a Jueves hasta las
12:00hrs
Resultado en 45 días hábiles.
Toxocara
Instituto Salud Pública
Laboratorio de Parasitología
Av. Maratón Nº 1000
Santiago
Tomar 1 tubo de hemograma y 1 tubo bioquímico.
Adjuntar formulario ISP firmado por médico tratante
(formulario para eosinofilias sanguíneas
http://www.ispch.cl/formularios/formularios09/F/parasit
ologia/6.pdf) y certificado de FONASA.
Laboratorio envía:
Suero congelado
Copia de resultado de hemograma
Formulario ISP
Certificado FONASA
Lunes a Miércoles hasta las
12:00 hrs.
Resultado en 7 días hábiles.
Retirar resultado en
secretaría de Laboratorio.
Test de Metilación
PCR molecular, test de
metilación específico
ELISA. Confirmación
por Westernblot.
Vancomicina, niveles
plasmáticos
Lunes a Jueves hasta las
12:00 hrs.
Resultados en 7 días hábiles
Lunes a Jueves hasta las
14:00 hrs.
Resultado en 10 días hábiles
En paciente con tratamiento con heparina, tomar la
muestra antes de iniciar la terapia. Verificar que la orden
de atención lleve la dosis diaria en mg, antecedentes de
la última dosis (hora y mg), y la hora en que se realizó la
toma de muestra al paciente. Verificar documentos
solicitados.
Tomar 1 tubo de sangre sin anticoagulante (tapa roja
32
BIOSEGURIDAD EN LA TOMA DE MUESTRAS
BIOSEGURIDAD DEL PACIENTE
Verifique si el paciente está preparado para tomarse el examen e indague de situaciones que
aumentan riesgo de reacciones adversas: nerviosismo, ayuno prolongado, terapia anticoagulante,
quimioterapia, sobrecarga de glucosa.
Informe al paciente acerca del procedimiento que le va a realizar y solicite su consentimiento verbal.
Si es un paciente ambulatorio, antes de despedirlo verifique que el lugar de la punción ha dejado de
sangrar y preocúpese que esté en condiciones de irse caminando, especialmente si es un paciente
que no anda acompañado.
BIOSEGURIDAD DEL PERSONAL
USO DE BARRERAS PROTECTORAS:
Actividad
Elemento de Protección Personal
Tomar exámenes de sangre,
orina o deposiciones
Guantes y lavado de manos
Tomar muestras de líquidos
biológicos, tejidos o aspirado
nasofaríngeo.
Lavado de manos, guantes,
delantal , lentes y mascarilla
facial
ÁREA DE TRABAJO Y EQUIPAMIENTO:
Disponer previamente y de manera ordenada todos los elementos necesarios para la toma de
muestra, separar áreas de trabajo limpia y contaminada.
Disponer de depósitos de cartón (cajas de bioseguridad) o plásticos para eliminar agujas de punción.
ELIMINACIÓN DE MATERIAL CORTOPUNZANTE.
Debe ponerse especial precaución en esta etapa, que conlleva mayor riesgo de accidentes
cortopunzantes.
Soltar la aguja con pinzas, no tocar con las manos.
33
Eliminar las agujas directamente en las cajas de bioseguridad sin recapsular.
Eliminar jeringa y aguja completa sin separarlas.
Una vez llenas las cajas, sellarlas y enviarlas al incinerador.
BIOSEGURIDAD EN TRANSPORTE DE MUESTRAS
CONDICIONES GENERALES DE TRANSPORTE:
Capacitar al personal que transporta las muestras acerca de los riesgos involucrados en la actividad
que realiza.
Transportar las muestras en recipientes cerrados.
No se deben manipular las muestras y si es necesario hacerlo USAR guantes.
Entregar las muestras al personal adiestrado.
TRANSPORTE EN CORREO NEUMATICO:
SOLO enviar muestras contenidas en material de plástico y con selle hermético. NUNCA enviar muestras
en tubos o frascos de vidrio.
Al preparar una bala, embalar muestra en bolsa de plástico sellada. La orden de examen o cualquier otro
papel debe ir separada de la muestra.
Se rechazarán las muestras derramadas o con solicitud de examen embalada junto a la muestra.
Al retirar las muestras de la bala USO OBLIGATORIO de guantes.
34
REGLAS GENERALES DE TOMA DE MUESTRA
SOLICITUD DE EXÁMENES DE LABORATORIO
La solicitud de exámenes del laboratorio debe realizarse haciendo uso del formulario institucional (ver
anexo Nº 1, página 251) y DEBE incluir los siguientes datos:
Nombre completo del paciente
Cuenta Corriente
Fecha de Nacimiento
Servicio Clínico, Consultorio, Hospital.
Diagnóstico
Exámenes solicitados
Previsión
RUT (en caso de recién nacidos incluir número
de ficha clínica si no tiene RUT)
Tipo de Muestra y sitio anatómico de origen
cuando corresponda (ej.: LCR, líquido pleural,
etc.)
Nombre y firma del Médico solicitante
Fecha
Debe estar escrita con letra legible para evitar errores de identificación, interpretación de exámenes y
extravío de resultados.
MATERIAL DE TOMA DE MUESTRA
Materiales: Todo material de uso venoso o intra-arterial debe ser estéril y de un solo uso. No se debe
usar material desechable reesterilizado.
Verificar fecha de expiración previo a uso.
TIPOS DE TUBOS PARA TOMA DE MUESTRA
ANTICOAGULANTES PARA TOMA DE MUESTRA DE SANGRE
Existen múltiples factores involucrados en el proceso de coagulación de la sangre. Los
anticoagulantes son sustancias que previenen la formación de coágulos. Existen diferentes tipos de ellos en
sólidos y líquidos. Debe seleccionarse siempre el anticoagulante apropiado según el estudio a realizar.
TIPOS DE TUBOS PARA OBTENCION DE MUESTRA SANGUINEA
35
Color de tapa
ADITIVO
MODO DE ACCION
INDICACIONES
USO
Ninguno
Coagulación de sangre y
separación de suero
mediante centrifugación
Mezclar por inversión 5 veces
Química sanguínea,
inmunología,
serología
Citrato de sodio
Remueve el calcio mediante
la formación de sales.
Mezclar por inversión 4 veces.
Requiere completar nivel de
llenado
Pruebas de
Coagulación,
Tapa verde
Heparina de
sodio o heparina
de litio
Inactiva trombina y
tromboplastina
Mezclar por inversión 8 a 10
veces
Química sanguínea,
estudio de linfocitos
Tapa verde claro
Tubo con
heparina de litio
y gel separador
heparina de litio; el plasma
se separa del resto de la
muestra por el gel del
fondo del tubo.
Mezclar por inversión 8 a 10
veces
Química sanguínea,
estudio de linfocitos
Tapa Lila
EDTA
Remueve el calcio de la
muestra mediante la
formación de sales.
Mezclar por inversión 8 a 10
veces
Requiere completar nivel de
llenado
Hematología y
banco de sangre
Agente antiglicolítico,
preserva la glucosa durante
5 días
Mezclar por inversión 8 a 10
veces.
Requiere completar nivel de
llenado
Medición de Glucosa
Tapa roja y/o amarilla
Tapa celeste
Tapa gris
Fluoruro de
sodio
MEZCLA POR INVERSIÓN
La mezcla adecuada de la muestra con el anticoagulante es por inversión, según se muestra en la figura.
ORDEN DE EXTRACCIÓN
36
Si se realizan varias extracciones al mismo tiempo, es importante extraer en primer lugar las muestras
estériles para hemocultivo, después las muestras que no requieren aditivos, seguidas de las muestras de
coagulación y finalmente, las muestras que precisan tubos con aditivos.
Orden de Extracción
Tipo de tubo
Tubo sin aditivos (suero)
Color
1
Tubo con citrato (coagulación)
2
Ttubo con citrato (VHS)
3
Tubo con heparina (cariotipo)
4
Tubo con EDTA (hemograma)
5
Tubo con oxalato-fluor
6
INDICACIONES GENERALES PREVIO A TOMA MUESTRAS EXAMENES DE SANGRE
Explicar al paciente acerca de la indicación médica del examen, dando instrucciones respecto a la
preparación, necesidad de ayuno, tipo de régimen y objetivos del examen.
Constatar que el paciente está en las condiciones requeridas para el examen (ayunas u otra) En general
los exámenes de sangre se toman en ayunas, pues la ingesta de alimentos puede hacer variar los resultados de
algunos exámenes (Ej: glicemia basal)
Una vez tomadas las muestras deben ser enviadas a la brevedad al laboratorio, ya que éstas continúan
con su metabolismo, al permanecer a temperatura ambiente, produciéndose alteración de los valores reales del
paciente.
No deben utilizarse frascos que merezcan dudas, sin tapas, sucios o con cantidad insuficiente de
anticoagulante.
Al tomar la muestra de sangre, evitar la formación de espuma sanguinolenta, ya que esta
favorece la coagulación y la hemólisis.
Se debe vaciar suavemente la sangre por las paredes del frasco, esta acción evita la hemólisis de la
muestra, situación que al ocurrir podría alterar los valores reales del paciente.
En la actualidad se utilizan tubos para exámenes sellados al vacío, en los cuales viene indicada la
cantidad de muestra requerida, estos se puncionan cuidadosamente en el tapón de goma y se llenan por
gradiente de presión con la cantidad de sangre determinada, no siendo necesario realizar presión con el émbolo
de la jeringa. En este caso hay que tener la precaución de retirar suavemente la jeringa, evitando acercarla
demasiado al rostro, pues se pueden producir pequeñas pulverizaciones de sangre y penetrar en la conjuntiva
ocular.
37
INSTRUCCIONES A PACIENTES PARA TOMA DE EXAMENES DE LABORATORIO
CONDICIONES GENERALES PARA TOMA DE MUESTRA
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
Llegar completamente en ayunas al Laboratorio Clínico.
El ayuno ideal es de 10 a 12 horas.
No fumar antes ni durante la realización de exámenes de laboratorio.
No ingerir bebidas alcohólicas tres días antes de la realización de los exámenes de Laboratorio.
Si está tomando algún medicamento, debe informar en la toma de la muestra el nombre de la
droga y la dosis que está tomando.
Anote la droga(Fármaco)………………………………………que esta tomando
Si se ha realizado un examen de radiología con medio de contraste, NO se realice ningún examen
del Laboratorio hasta después de tres días.
No realice ninguna actividad física (trotar, ejercicios) antes de la realización de los exámenes.
Citación…………………./……………………/ 2011
CURVAS DE GLICEMIA O INSULINA
1.
2.
3.
4.
Disponer de tiempo suficiente (tres horas) para permanecer en reposo en el laboratorio.
Estar completamente en ayuno el día del examen.
La noche anterior al día del examen se puede ingerir alimentos hasta las 7:00 p.m.
El paciente debe hacerse presente al día siguiente a las 8:00 a.m., en el laboratorio para el inicio
del examen.
5. No debe fumar antes ni durante la realización del examen.
CONDICIONES PARA LA TOMA DE MUESTRA DE NIVELES DE DROGAS TERAPÉUTICAS
1. Informar en el laboratorio los nombres y las dosis de los medicamentos que está tomando.
2. Idealmente, cuando el paciente usa drogas terapéuticas, se debe tomar la muestra una hora antes
de la próxima dosis y/o cuando lo solicite el médico tratante.
CONDICIONES PARA LA TOMA DE MUESTRA DE PROLACTINA
1. Venir al laboratorio con un ayuno de 8 horas, 2 horas después de haberse levantado.
2. Evitar situaciones de estrés.
3. Tener abstinencia sexual de 2 días, antes de realizar el examen.
ANTÍGENO PROSTÁTICO ESPECÍFICO Y LIBRE
38
1. La toma de la muestra de sangre debe ser practicada antes de una biopsia prostática, masaje
prostático o prostatectomía, o 10 días después de realizados estos procedimientos.
2. Tener abstinencia sexual de 2 días, antes de realizar el examen.
CONDICIONES PARA LA TOMA DE MUESTRA DE ORINA COMPLETA, SEDIMENTO DE
ORINA Y UROCULTIVO EN MUJERES
INSTRUCTIVO PARA TOMA DE MUESTRA
1. Lávese las manos
2. Humedezca dos motas de algodón con agua y dos motas con jabón
3. Lávese los genitales separando los labios, con un algodón embebido en agua jabonosa limpiando
de adelante hacia atrás una sola vez, luego deseche el algodón en receptáculo de deshechos
4. Repita el procedimiento con el segundo algodón con agua jabonosa
5. Enjuáguese con las motas de algodón embebidas en agua, procediendo de igual forma; o con la
ducha sacando completamente el jabón
6. Séquese con un apósito estéril
7. Colóquese un tampax, si procede; o una mota de algodón haciendo taponamiento vaginal, para
impedir contaminación
8. Elimine el primer chorro de orina en el W.C. y, sin cortar la micción, reciba el segundo chorro de
orina en un frasco estéril de boca ancha, sacando previamente las dos tapas. Llenar hasta la mitad
9. Tape el frasco con precaución, evitando contaminar la muestra y/o derramarla
10. Si obtiene la muestra de orina en su casa, debe traer el frasco estéril entregado por el Laboratorio
en una bolsa con hielo antes de 2 horas.
11. Informe si está tomando algún medicamento (antibióticos o analgésicos).
CONDICIONES PARA LA TOMA DE MUESTRA DE ORINA COMPLETA, SEDIMENTO Y/O
UROCULTIVO DE PRIMERA MICCIÓN EN HOMBRES
INSTRUCTIVO PARA TOMA DE MUESTRA
1. Lávese las manos.
2. Humedezca dos motas de algodón con agua y dos motas con jabón líquido.
3. Retire la piel anterior del pene y lave la zona con las motas de algodón embebidas en jabón, en
sentido circular y en una sola dirección; deseche los algodones utilizados.
4. Enjuáguese con las motas de algodón embebidas en agua. NO TOQUE LA ZONA ASEADA.
5. Seque con un apósito limpio (si es para urocultivo, el apósito debe ser estéril).
6. Reciba el primer chorro de orina en el frasco que le fue proporcionado por el Laboratorio,
llenándolo hasta la mitad; tape el frasco con precaución, evitando contaminar la muestra y/o
derramarla.
7. Si obtiene la muestra de orina en su casa, debe traer el frasco solicitado al Laboratorio
previamente, en una bolsa con hielo, antes de 2 horas.
8. Informe si está tomando algún medicamento (analgésico, antibióticos).
INDICACION EXAMEN ORINA DE 24 HRS.
39
1. El día previo al examen, a una hora determinada, de preferencia al levantarse, debe vaciar la
vejiga orinando a fondo y botar esa orina.
2. De ahí en delante de juntar TODA la orina de cada micción durante las 24 horas siguientes en un
envase limpio y seco (ejemplo botella desechable de bebida de tres litros).
3. La última micción debe hacerse a la misma hora que comenzó la recolección y esta se añade a lo
recolectado. Por ejemplo: si usted vació su vejiga a las 8:00 AM, botando la orina, debe orinar
nuevamente a las 8:00 AM del día siguiente incorporando esta al envase.
4. Durante el periodo de recolección de orina, usted debe ingerir 1 ½ litros de agua de la llave, salvo
que su médico tratante disponga de lo contrario.
5. Toda la orina recolectada durante el periodo completo debe guardarse refrigerada.
6. Debe llevar TODA la orina recolectada ANTES DE DOS HORAS al Laboratorio.
7. Etiquetar los receptáculos con nombre completo; Fecha; hora de inicio de recolección de orina;
hora de última orina incluida.
Pegar esta información en el receptáculo de Orina.
________________________________________________________________
Nombre Completo:………………………………………………………………………………………..
Rut:…………………………..
Comenzar a las……………… hrs. del día ……/…../………….. Eliminando esta orina en W.C.
Incluir en el bidón o botella la orina de las ………………………hrs. del día siguiente……/……/……
INDICACION EXAMEN ORINA DE 12 HRS.
1. Comenzar a las 19:00 hrs. Del dia…/……/………eliminando esta orina en w.c.
2. Juntar orina en bidon o botella limpia (enjuagar solo con agua, sin detergente ni cloro, dejar estilar
boca abajo dia ante) resto del dia y toda la noche.
3. Incluir en bidon o botella la orina de las 07:00 hrs. AM del dia siguiente …./…/………
4. Si es mujer, debe hacer en una bacinica e ir vaciando en bidon o botella y luego enjuagar bacinica
solo con agua y secar con nova cada vez.
5. Hacer vida normal, no tomar mas ni menos agua.
6. Toda la orina recolectada durante el periodo completo debe guardarse refrigerada.
7. Debe llevar TODA la orina recolectada ANTES DE DOS HORAS al Laboratorio.
8. Etiquetar el bidón o botella con nombre completo; Fecha; hora de inicio de recolección de orina;
hora de ultima orina incluida.
Pegar esta información en el receptáculo de Orina.
________________________________________________________________
Nombre Completo:………………………………………………………………………………………..
Rut:…………………………..
Incluir en el bidon o botella la orina de las ………………………hrs. del dia siguiente……/……/……
ROTAVIRUS - INSTRUCTIVO PARA TOMA DE MUESTRA
40
Tipo de muestra: Deposición
1. Obtener la muestra por eliminación espontánea.
2. Depositar la muestra en un frasco limpio.
3. La cantidad mínima requerida es ½ cucharadita de té.
4. Recolección de muestra de deposición de pañal.
5. Sacar con la espátula de madera, la desposición más superficial y abundante que contenga el
pañal.
6. Se debe obtener la muestra, ojalá recién emitida, para evitar que ésta sea absorbida por el pañal.
7. Sacar mínimo 1/3 de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha.
8. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, agregar en ésta cubos de hielo.
9. La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención.
TEST DE GRAHAM
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
INSTRUCTIVO PARA TOMA DE MUESTRA
Instructivo previo al procedimiento:
La aplicación de esta técnica debe ser efectuada por una persona que no sea el paciente.
No se deben aplicar pomadas o polvos-talco en la región anal durante la noche anterior.
La toma de muestra se debe efectuar a primera hora de la mañana, antes de bañarse, orinar y/o
defecar.
Efectúe la técnica durante cinco días seguidos, utilizando una placa diferente cada mañana.
Procedimiento:
Desprenda de la placa de vidrio la tira de papel celofán (scotch transparente).
Aplique varias veces la tira de papel celofán, por el lado engomado, en todos los alrededores del
ano y entre las nalgas.
Pegue el scotch bien estirado en la placa de vidrio.
Si detecta "pidulle", colóquelo entre el papel celofán (scotch) y la placa de vidrio.
Cada día, coloque la placa de vidrio en el envase correspondiente, hasta completar los cinco.
Escriba en el envase, con letra muy clara, el nombre, los dos apellidos y la edad del paciente.
INSTRUCTIVO PARA TOMA DE MUESTRA DE EXAMEN PARASITOLOGICO SERIADO
(TMT O PAFS)
Tipo de muestra :Deposición
1. El paciente debe obrar (defecar) en un recipiente limpio y seco, sin mezclar con orina. Si es
lactante, tomar del pañal la muestra recién emitida.
2. Coloque una porción del tamaño de una nuez dentro del frasco y mezcle con el líquido que
contiene, hasta obtener una emulsión homogénea utilizando la paleta que lleva la caja
proporcionada por el Laboratorio.
3. Las muestras deben obtenerse día por medio hasta completar las tres. En caso de no poder
obtener las muestras día por medio, puede saltarse uno o dos días y traerlas cuando complete la
última muestra recién emitida.
HEMORRAGIA OCULTA EN DEPOSICIÓN
INSTRUCTIVOS PARA LA TOMA DE MUESTRA
41
TIPO DE MUESTRA: DEPOSICIÓN
Requisitos:
1. No recolectar muestra hasta 3 días de terminado el periodo menstrual
2. No recolectar muestra hasta 3 días de terminado sangramiento por hemorroides, hematuria
(sangre en orina)
3. Evitar el consumo de aspirina, vitamina C o antiinflmatorio 7 dias antes y durante la recoleccion de
la muestra, excepto si su médico tratante le de otras indicaciones.
Recoleccion de la muestra :
1. El paciente debe obrar defecar en un recipiente limpio y seco, sin mezclar con orina.
2. Coloque una porción del tamaño de una nuez dentro del frasco proporcionado por el laboratorio
3. Las muestras son recepcionadas en la Unidad de Laboratorio de 8:00-15:30 PM
LEUCOCITOS FECALES
INSTRUCTIVOS PARA LA TOMA DE MUESTRA
TIPO DE MUESTRA: DEPOSICIÓN
1. Obtener la muestra por eliminación espontánea.
2. Depositar la muestra en un frasco limpio, entregado por la sección de Toma de Muestra.
3. La muestra debe ser trasladada al Laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su
obtención.
4. Cantidad mínima requerida, ½ cucharadita de té.
5. Recolección de muestra de deposición de pañal.
6. Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga el pañal.
7. Se debe obtener la muestra, ojala recién emitida para evitar que ésta sea absorbida por el pañal.
8. Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por el
Laboratorio. Taparlo con sus dos tapas y meterlo en una bolsa plástica, agregar en ésta cubos de
hielo.
9. La muestra debe ser trasladada al Laboratorio, antes de dos horas de su obtención.
42
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRA
ASPECTOS GENERALES PARA CUALQUIER MUESTRA
Identificación del paciente
El enfermero debe asegurarse de que la obtención de la muestra será de la persona indicada en la orden
de examen.
Los siguientes pasos constituyen un método para asegurar la identificación del paciente.
En la Toma de muestra Ambulatoria:
Pedir al paciente que diga su nombre completo y que lo deletree si es un nombre poco
frecuente.
Comparar este nombre con el que figura en el de la orden de examen y en las etiquetas de los
tubos.
En pacientes hospitalizados:
Al entrar en la habitación, identificarse ante el paciente y decirle que se ha venido a extraerle
sangre para realizar algunas pruebas de laboratorio.
Pedir al paciente que diga su nombre completo y que lo deletree si es poco frecuente.
Si el paciente no puede contestar, buscar en brazalete.
COMPROBACIÓN DE SÍ EL PACIENTE ESTÁ EN AYUNAS
Algunas pruebas requieren que el paciente esté en ayunas o que elimine ciertos alimentos de su dieta
antes de la extracción. La duración y el tipo de restricciones dietéticas varían con cada prueba. Estas
restricciones son necesarias para asegurar unos resultados precisos de las pruebas.
TRANQUILIDAD DEL PACIENTE
El enfermero debe ganarse la confianza del paciente y asegurarle que, aunque la punción venosa será
ligeramente dolorosa, durará poco. Nunca debe decirse a los pacientes que “esto no dolerá”, y debe
advertírseles cuándo la aguja penetra la piel para evitar que se asusten.
COMPROBACIÓN DE LA DOCUMENTACIÓN, DE LOS TUBOS Y LAS ETIQUETAS RESPECTIVAS
Debe comprobarse si se han seleccionado los tipos y tamaños de tubos apropiados, tarea que se facilita
al estar los tapones de los tubos codificados con colores. (ver orden adecuado de extracción de sangre según
tipo de anticoagulante).
El etiquetado de los tubos debe realizarse DESPUES de obtener las muestras y
43
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE EN PACIENTES
HOSPITALIZADOS
Procedimientos descritos por EU Marcela Valenzuela, gestión del cuidado.
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE POR PUNCION VENOSA PERIFERICA
DEFINICION:
Consiste en introducir en un vaso sanguíneo (venoso) un catéter o aguja para obtener una
de sangre con fin diagnóstico.
muestra
OBJETIVO:
Obtener muestra de sangre para exámenes de laboratorio.
MATERIALES:
Carro de toma de exámenes con:
Jeringas de 10 cc, 20 cc.
Tórulas
Alcohol al 70%
Ligadura
Guantes de procedimientos
Tela adhesiva
Caja de bio-seg
Bolsa de desechos
Tubos de exámenes
Hansaplast
PROCEDIMIENTO
ACTIVIDADES
FUNDAMENTO
1. Reúna el material y llévelo a la unidad del paciente
2. Explique el procedimiento al paciente si éste está
consciente con lenguaje claro.
Disminuye ansiedad del paciente y
logramos su colaboración.
3. Lávese las manos y colóquese guantes de
procedimientos.
Evita IIH
4. Acomode al paciente, coloque la extremidad elegida
sobre superficie plana acojinando la articulación
Permite una punción certera.
44
adyacente y elija el vaso a puncionar.
5. Coloque la ligadura por encima del vaso elegido, lo más Permite que la vena se palpe o se vea
arriba posible.
con más facilidad.
6. Pincele la piel en un radio de 5 cm con alcohol 70%,
siempre desde distal a proximal con movimiento
ascendente.
Evita IIH
7. Fije la vena con ayuda de una de sus manos. Solicite al
paciente que apriete su mano.
Evita error en la punción
8. Inserte la aguja con el bisel hacia arriba, puncione la
vena y observe el reflujo de sangre.
9. Mantenga fija la aguja durante la extracción.
Aspire en forma suave.
Evita ruptura del vaso
Evitará hemólisis de sangre.
10. Desligue, continúe aspirando y retirando la aguja al
mismo tiempo.
11. Realice presión sobre el sitio de punción con tórula
seca y selle con tela o hansaplast.
Permite cohibir sangramiento.
12. Llene los tubos de exámenes, cuidando de completar
nivel de llenado y mezclar por inversión los tubos
Obtener muestra con proporción
adecuada de anticoagulante y evitar
que muestra se coagule.
13. Rotule los tubos con nombre y procedencia al lado del
paciente.
Evita errores de identificación de
muestras.
14. Retírese guantes, lávese las manos, retire el material y
registre en hoja de enfermería.
CONSIDERACIONES DE ENFERMERIA
Tenga siempre presente las precauciones universales.
Elija venas de grueso calibre
De preferencia venas de las extremidades superiores
Elija con calma el vaso que va a puncionar.
Dese el tiempo de acomodar a su paciente de modo que le facilite la punción
45
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE POR VIA VENOSA CENTRAL
DEFINICION:
Consiste en obtener una muestra de sangre para exámenes de laboratorio a través de un catéter
instalado en una vena central (yugular, subclavio, femoral o percutaneo).
OBJETIVO:
Obtener sangre con fines diagnósticos.
MATERIALES:
Carro de toma de exámenes con
Guantes estériles
Tórulas
Solución desinfectante
Jeringas
Agujas
Suero fisiológico en ampollas
Tapas amarillas
Apósitos 10 x 10
Tubos
PROCEDIMIENTO:
ACTIVIDADES
FUNDAMENTO
1. Reúna el material y llévelo a la unidad del paciente.
2. Explique el procedimiento al paciente con lenguaje
claro
Diminuye ansiedad del paciente
3. Lávese las manos.
Previene IIH
4. Observe cuantos lúmenes tiene el catéter y elija uno
de ellos de preferencia el proximal
5. Desinfecte la llave de tres pasos o tapas del lúmen
elegido con alcohol al 70%
6. Detenga momentáneamente las soluciones que estén
perfundiendo por este lumen.
7. Instale jeringa sin aguja y aspire 5 cc de sangre y
elimínela.
Previene IIH
Permite obtener muestra fidedigna.
Permite obtener sangre sin residuos de
las infusiones que pasan por el catéter.
46
8. Proceda ahora con otra jeringa a aspirar la cantidad de
sangre que necesita para los exámenes y entréguela al
ayudante.
Cerciorarse de que el ayudante usa guantes para la
manipulación de la jeringa y tubos.
Prevención de accidentes con fluidos
corporales de alto riesgo.
9. El ayudante procederá a llenar los tubos, cuidando de
respectar el nivel de llenado marcado y de mezclar por
inversión los tubos.
Obtener muestra óptima en su
proporción muestra/anticoagulante y
también evitar coagulación de la
muestra
Evite formación de coágulos en lumen y
mantiene permeabilidad del catéter.
10. Lave el lumen utilizado pasando 10 cc de solución
fisiológica
11. Reinicie las infusiones o fleboclisis.
12. Rotule los tubos al lado del pacientecon nombre y
procedencia, envíe a laboratorio.
13. Retírese los guantes, lávese las manos, registre en hoja
de enfermería.
CONSIDERACIONES DE ENFERMERIA
Recuerde precauciones universales durante el procedimiento.
No “destape” catéteres ocluidos.
En catéteres de mas de un lumen, rotule lumen ocluido y selle con tela para no ser usado.
Recuerde usar lumen proximal para toma de exámenes.
Recuerde cebar lumen por el cual tomó exámenes para mantener permeabilidad.
Si no esta pasando soluciones, lave el lumen y cierre el clamp, esto evitará que se tape.
47
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE POR PUNCION ARTERIAL
DEFINICION:
Consiste en puncionar una arteria para obtener una muestra de sangre arterial. Las arterias elegidas
deben ser de preferencia de las extremidades superiores (radial o humeral)
OBJETIVO
Obtener sangre arterial para exámenes de laboratorio.
MATERIALES
Guantes de procedimientos
Torulas
Alcohol 70%
Jeringas
Jeringa de gases
Hansaplast
Torulas gasas estériles
Tubos para exámenes
Hielo
Caja de transporte de exámenes.
PROCEDIMIENTO
ACTIVIDADES
FUNDAMENTO
1. Reúna el material y llévelo a la unidad del paciente.
2. Explique el procedimiento al paciente en lenguaje
comprensible.
Disminuye ansiedad al paciente.
3. Lávese las manos y colóquese guantes de
procedimiento.
Evita IIH
4. Elija la arteria a puncionar (realice test de allen si
utiliza arteria radial)
Permite verificar circulación colateral
5. Palpe pulso y proceda a puncionar en ángulo de 45º,
aspire la cantidad de sangre necesaria.
6. Retire la aguja aspirando y presione el sitio de punción
Evita hematomas.
48
durante 5 minutos, compruebe que se haya cohibido el
sangramiento, deje gasa estéril.
7. Llene los tubos, teniendo especial precaución en
respetar los niveles marcados en los tubos.
Mezclar tubos por inversión
Obtener muestra óptima con
proporción adecuada de
muestra/anticoagulante.
Evita coagulación de la muestra.
8. Rotule tubos con nombre y procedencia, al lado del
paciente y envíe a laboratorio
Evita errores de rotulación o de cambios
de muestras.
9. Retire el material y lávese las manos.
Evite IIH
10. Registre en hoja de enfermería
CONSIDERACIONES DE ENFERMERIA
Recuerde precauciones universales durante el procedimiento.
Elija área libre de erosiones cutáneas, con buena circulación.
Tenga presente que se trata de una técnica de alto riesgo por la cercanía de nervios que se relacionan
con la sensibilidad y motricidad de la extremidad.
No olvide que es dolorosa.
49
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE POR CATETER ARTERIAL
DEFINICION:
Consiste en obtener una muestra de sangre arterial para exámenes de laboratorio a través de un catéter
instalado en una arteria.
OBJETIVO:
Obtener sangre arterial para exámenes de laboratorio.
Evaluar gasometría del paciente
Evaluar efecto de oxigenoterapia
MATERIALES:
Carro de exámenes con
Jeringas de gases
Jeringas.
Torulas
Alcohol
Tapones amarillos
Gasas estériles
Guantes de procedimiento
Apósitos
Tela adhesiva
Hielo
Caja de bio seg
PROCEDIMIENTO
ACTIVIDADES
FUNDAMENTO
1. Reúna el material y llévelo a la unidad del paciente.
2. Explique el procedimiento en lenguaje claro.
Disminuye el estrés y ansiedad del
paciente.
3. Lávese las manos y colóquese guantes de
procedimientos.
Previene IIH
50
4. Proceda a desinfectar llave tres pasos con alcohol 70%.
5. Abra la llave de tres pasos entre la jeringa y la arteria,
aspire 5 cc de sangre y elimínela
La primera aspiración es una mezcla de
sangre y suero por esto se debe
eliminar, así obtendremos exámenes
fidedignos.
6. Luego aspire la cantidad de sangre que necesita para
los exámenes indicados.
7. Flashee y lave la línea arterial, para ello tire de la cola
del transductor hasta que el sistema quede limpio de
sangre
Recuerde que el suero del transductor
debe estar presurizado a 300mmHg
para realizar efectivamente el flasheo
del sistema.
8. Compruebe que la curva de presión invasiva aparezca
en el monitor y realice punto cero si procede.
9. Operador auxiliar debe:
-
Lavarse las manos y usar guantes de procedimiento.
Llenar los tubos de exámenes
Colocar la jeringa de gases en hielo
Rotular y enviar frascos con el nombre del paciente y
procedencia a laboratorio
10. Retire el material, lávese las manos y registre en hoja
de enfermería.
CONSIDERACIONES DE ENFERMERIA
Recuerde precauciones universales durante el procedimiento.
Utilice técnica aséptica
Los gases arteriales son lábiles a temperatura ambiental por ello se deben enviar pronto al laboratorio y
en recipiente con hielo (col-hot).
La aspiración de sangre por el catéter debe ser suave para no hemolizar la muestra.
51
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE EN PACIENTES
AMBULATORIOS
Procedimientos descritos por TM MARIA INES HENRIQUEZ, SUPERVISORA LABORATORIO CLINICO
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE VENOSA
Procedimiento:
Toma de Muestra sangre venosa con tubos al vacío
Objetivo:
Obtención de muestra de sangre venosa periférica
Descripción
del
procedimiento:
Selección del sitio de la vena La mayoría de los procedimientos de punción venosa en adultos utilizan las
donde se va a realizar la venas situadas en el brazo. La vena cubital media o mediana del codo es la
punción
que se utiliza con más frecuencia, porque es grande está cercana a la piel y
es la menos dolorosa para el paciente.
Si la vena no es muy visible ni palpable, realice un suave masaje en el
antebrazo (si es el caso), con movimientos desde la muñeca hacia el codo.
Observe siempre las dos extremidades superiores (brazos), para elegir el
mejor sitio de punción.
Ligadura
El uso de la liga provoca estasis del retorno venoso, que a su vez aumenta
la prominencia de las venas y facilita su punción. Normalmente se utiliza
una tira de goma elástica, de 1,25 cm de ancho y 45 cm de largo. La tira de
goma debe enrollarse bien ajustada alrededor del brazo del paciente, con
el extremo recogido bajo la última vuelta, comenzando entre 7,5 y 10 cm
por encima del lugar de la extracción, porque tiene tendencia a pellizcar la
piel. Para que los resultados de las pruebas sean válidos, no debe dejarse
nunca el compresor en el brazo más de 2 minutos.
Limpieza de la zona de punción
Se empapa un algodón con alcohol al 70% y se aplica con un movimiento
circular, desde el centro de la zona hacia fuera. Se deja secar la piel para
evitar la producción de hemólisis en la muestra de sangre y la sensación de
escozor que experimenta el paciente cuando se le pincha.
Inspección de la aguja y tubo
de vacío
Se coloca la aguja en el soporte del tubo de vacío, enroscándose en este
último hasta que esté apretada con ayuda de su funda. Esta no debe
quitarse hasta que el enfermero este listo para extraer la sangre, evitando
así la contaminación de la aguja. Cuando todo esté preparado, se extrae la
aguja de su funda y se examina especialmente la zona de la punta, para
determinar si el extremo está doblado y si el orificio de apertura está libre
de partículas que pudieran obstruir el flujo de la sangre.
Localizar vena y fijarla para facilitar la punción.
Punción y extracción
52
La vena se pincha con el bisel de la aguja mirando hacia arriba. Se
recomienda un ángulo de entrada con respecto al plano de la superficie de
15 grados.
Debe mantenerse el tubo de vacío con una mano, mientras que la otra lo
empuja hacia el interior del soporte.
El extremo posterior de la aguja pincha entonces el tapón y activa el vacío
para extraer la sangre.
El tubo debe llenarse hasta que se agote el vacío y cese el flujo de sangre,
asegurando de esta manera una relación correcta entre anticoagulante y
sangre.
Tras llenarse, se saca el tubo del soporte, la válvula de cierre recubre la
punta posterior de la aguja, haciendo que cese el flujo de sangre hasta que
se inserte el siguiente tubo.
Después de extraer el tubo, debe mezclarse inmediatamente la sangre con
el anticoagulante, invirtiendo el tubo tres o cuatro veces. La inversión debe
hacerse suavemente, para evitar la hemólisis.
Ocasionalmente, algún tubo defectuoso no tiene vacío. Si un tubo no se
llena y la aguja está dentro de la vena, debe utilizarse otro tubo. Si un tubo
comienza a llenarse y se para de repente, debe moverse la aguja
ligeramente hacia delante o hacia atrás; normalmente, este ajuste basta
para recuperar el flujo de sangre. Sino, se da media vuelta a la aguja y se
afloja el compresor, que quizás esté demasiado apretado. No se
recomienda hurgar con la aguja porque esto duele al paciente. Si no
funciona ninguno de estos procedimientos, debe sacarse la aguja y utilizar
otro punto diferente.
Soltar Ligadura y retiro de Después de realizada la extracción de sangre, el paciente puede abrir su
aguja
mano y se libera la liga, lo que permite que se normalice la circulación
sanguínea y se reduzca la hemorragia en el lugar de la punción.
Aplicar un algodón seco sobre la aguja, que se saca entonces suavemente y
con cuidado.
Los pacientes sujetos a tratamiento anticoagulante necesitan con
frecuencia más tiempo para cortar la hemorragia.
La aguja se quita de la camisa con una pinza y se desecha en un
contenedor de material cortopunzante.
Al finalizar el procedimiento, indíquele al paciente que debe hacer presión
en el sitio punzado por lo menos durante cinco minutos. Coloque
finalmente una banda adhesiva sobre la herida de la punción.
Si el sangrado no se detiene, aplique presión constante sobre la herida
durante 10 minutos más. Si el Problema aún no se soluciona, comuníquese
Etiquetar las muestras
con su superior inmediato o directamente con el médico tratante.
Enviar de inmediato al
laboratorio.
Ventajas del vacío
Se obtiene muestras con óptima relación de sangre/anticoagulante.
Se evita hemólisis
53
Procedimiento:
Toma de Muestra sangre venosa con jeringa o mariposa
Objetivo:
Obtención de muestra de sangre venosa periférica
Indicación
Suele usarse para venas difíciles.
Punción con sistema al vacío frustra.
Descripción
Selección del sitio de la vena La mayoría de los procedimientos de punción venosa en adultos utilizan las
donde se va a realizar la venas situadas en el brazo. La vena cubital media o mediana del codo es la
punción
que se utiliza con más frecuencia, porque es grande está cercana a la piel y
es la menos dolorosa para el paciente.
Si la vena no es muy visible ni palpable, realice un suave masaje en el
antebrazo (si es el caso), con movimientos desde la muñeca hacia el codo.
Observe siempre las dos extremidades superiores (brazos), para elegir el
mejor sitio de punción.
Ligadura
El uso de la liga provoca estasis del retorno venoso, que a su vez aumenta
la prominencia de las venas y facilita su punción. Normalmente se utiliza
una tira de goma elástica, de 1,25 cm de ancho y 45 cm de largo. La tira de
goma debe enrollarse bien ajustada alrededor del brazo del paciente, con
el extremo recogido bajo la última vuelta, comenzando entre 7,5 y 10 cm
por encima del lugar de la extracción, porque tiene tendencia a pellizcar la
piel. Para que los resultados de las pruebas sean válidos, no debe dejarse
nunca el compresor en el brazo más de 2 minutos.
Limpieza de la zona de Se empapa un algodón con alcohol al 70% y se aplica con un movimiento
punción
circular, desde el centro de la zona hacia fuera. Se deja secar la piel para
evitar la producción de hemólisis en la muestra de sangre y la sensación de
escozor que experimenta el paciente cuando se le pincha.
Inspección de la aguja y tubo de vacío
Se coloca la aguja capsulada en la jeringa, enroscándose hasta que esté
apretada. La funda no debe quitarse hasta que el enfermero este listo para
extraer la sangre, evitando así la contaminación de la aguja. Cuando todo
esté preparado, se extrae la aguja de su funda y se examina especialmente
la zona de la punta, para determinar si el extremo está doblado y si el
orificio de apertura está libre de partículas que pudieran obstruir el flujo de
la sangre.
Punción y extracción
Coger la jeringa con su mano derecha, y utilizar el índice de su mano
izquierda para palpar la vena. Después de localizarla hay que mantener el
dedo sobre la vena y guiar a la aguja hasta este punto. Entonces, hay que
tirar suavemente del émbolo. Tan pronto como la sangre comience a fluir
en la jeringa no hay que volver a mover la aguja.
Tras llenarse, se saca el tubo del soporte, la válvula de cierre recubre la
punta posterior de la aguja, haciendo que cese el flujo de sangre hasta que
54
se inserte el siguiente tubo.
Después de extraer el tubo, debe mezclarse inmediatamente la sangre con
el anticoagulante, invirtiendo el tubo tres o cuatro veces. La inversión debe
hacerse suavemente, para evitar la hemólisis.
Ocasionalmente, algún tubo defectuoso no tiene vacío. Si un tubo no se
llena y la aguja está dentro de la vena, debe utilizarse otro tubo. Si un tubo
comienza a llenarse y se para de repente, debe moverse la aguja
ligeramente hacia delante o hacia atrás; normalmente, este ajuste basta
para recuperar el flujo de sangre. Sino, se da media vuelta a la aguja y se
afloja el compresor, que quizás esté demasiado apretado. No se
recomienda hurgar con la aguja porque esto duele al paciente. Si no
funciona ninguno de estos procedimientos, debe sacarse la aguja y utilizar
otro punto diferente.
Soltar Ligadura y retiro de Después de realizada la extracción de sangre, el paciente puede abrir su
aguja
mano y se libera la liga, lo que permite que se normalice la circulación
sanguínea y se reduzca la hemorragia en el lugar de la punción.
El enfermero debe aplicar un algodón seco sobre la aguja, que se saca
entonces suavemente y con cuidado.
El algodón se mantiene firmemente sobre el lugar de la punción unos
minutos. Los pacientes sujetos a tratamiento anticoagulante necesitan con
frecuencia más tiempo para cortar la hemorragia.
La aguja se quita de la jeringa y se desecha en un contenedor de material
cortopunzante.
Al finalizar el procedimiento, indíquele al paciente que debe hacer presión
en el sitio punzado por lo menos durante cinco minutos. Coloque
finalmente una banda adhesiva sobre la herida de la punción.
Si el sangrado no se detiene, aplique presión constante sobre la herida
durante 10 minutos más. Si el Problema aún no se soluciona, comuníquese
con sus superior inmediato o directamente con el medico tratante.
Etiquetar las muestras
Enviar de inmediato al laboratorio
Limitaciones
Llenado inapropiado de los tubos
No hay que quitar los tapones para llenar los tubos de vacío con la jeringa.
Hay que pinchar el diafragma del tapón de goma del tubo apropiado y
permitir que entre lentamente la cantidad de sangre adecuada. No debe
forzarse nunca la entrada de sangre en el tubo. Si el tubo no se llena,
puede empujarse suavemente el émbolo de la jeringa, una técnica
extremadamente importante.
55
Procedimiento:
Manejo de paciente con reacción adversa a punción venosa
Objetivo:
Indicación
Descripción del
procedimiento:
Reacciones vasovagales con pérdida de conocimiento, hipotensión,
náuseas, vómitos y pérdida de control de esfínteres.
Retire inmediatamente la aguja del lugar de la punción.
Sostenga al apaciente con fuerza para evitar que caiga y se golpee.
Solicite ayuda.
Coloque sobre la herida de la punción, un apósito, algodón o gasa
con sostenida presión, para evitar que siga sangrando.
Puede acostar al paciente en el suelo o en una camilla y deben
levantarse sus piernas (Posición de Trendelemburg).
Coloque un algodón impregnado con alcohol frente a la nariz del
paciente.
Permita que el paciente tenga buena ventilación. Abra el cuello de
su camisa y desajuste la corbata si es el caso.
El paciente por si solo sabrá cuando podrá incorporarse.
Si las circunstancias lo permiten, haga medición de la presión
sanguínea.
56
TOMA DE MUESTRA DE ORINA
Procedimiento:
ORINA DE SEGUNDO CHORRO
Indicaciones:
Hacer un buen aseo genital.
Orinar primera porción en el WC.
La segunda porción de orina o segundo chorro depositarlo en un frasco limpio
y seco o en frasco estéril.
Cerrarlo bien y llevar al laboratorio.
Procedimiento:
RECOLECCION DE ORINA DE 24 HORAS
Indicaciones:
Tomar y registrar en la solicitud del examen la hora de inicio de toma de
muestra (8 horas AM).
Día de inicio de la recolección: 8 horas vaciar la vejiga, pedirle al paciente que
orine y eliminar la muestra.
En un envase grande (2 litros ó mas) el paciente debe ir depositando toda la
orina de las siguientes 24 horas, incluyendo la que tomó a las 8 horas del
segundo día de recolección.
Mantener el recipiente en un lugar fresco o refrigerado.
Llevar al Laboratorio toda la muestra de orina recolectada.
Registrar al reverso de la solicitud de examen:
Hora y fecha de inicio de la recolección.
Hora y fecha del término de la recolección.
Edad del pacientePeso corporal Talla del paciente.
57
TOMA DE MUESTRA DE DEPOSICIONES Y OTROS
PARASITOLOGICOS
Procedimiento:
Indicaciones:
MUESTRA PARA REACCION DE BENEDICT
Estudio de pacientes con sospecha de sd malabsorción
Deposición en frasco limpio y seco.
Llevar inmediatamente al Laboratorio No debe pasar más de dos horas de tomada
la muestra.
Procedimiento:
Indicaciones:
HEMORRAGIA OCULTA
Estudio de pacientes con sospecha de hemorragia digestiva
Tomar una muestra de deposición del tamaño de una nuez, en un frasco limpio y
seco. Previamente hacer régimen blando y blanco por tres días. No comer carnes,
chocolates, comidas con condimentos, no tomar laxantes, aspirina ni purgantes.
Procedimiento:
Indicaciones:
COPROPARASITOLOGICO SERIADO
Estudio de pacientes con sospecha de enteroparasitosis
Se debe retirar en el laboratorio el material para recolectar las muestras, que
consta de 1 frasco plástico con tapa hermética con fijador PAF, además de un
instructivo para el paciente.
Se obtiene tres muestras de deposición recién emitida día por medio, que se
incorporan sucesivamente al mismo frasco.
La cantidad de deposición debe ser equivalente a una cucharadita de té
mezclando con el líquido que contiene el frasco.
Poner las tres muestras en el mismo frasco y llevar al laboratorio.
Si en la deposición se observan parásitos macroscópicos deben ser colocados en
un frasco con agua de la llave.
Procedimiento:
Indicaciones:
COPROPARASITOLOGICO SERIADO, PARA FASCIOLA HEPATICA
Estudio de pacientes con sospecha de enteroparasitosis específica por fasciola hepática
Se debe retirar en el laboratorio el material para recolectar las muestras, que
consta de 3 frascos plásticos con tapa hermética con fijador PAF, además de un
instructivo para el paciente.
58
Se obtiene 10 muestras de deposición recién emitida día seguidos, que se
incorporan sucesivamente al mismo frasco.
La cantidad de deposición debe ser equivalente a una cucharadita de té mezclando
con el líquido que contiene el frasco.
Poner las 10 muestras distribuidas en los 3 frascos y llevar al laboratorio.
Si en la deposición se observan parásitos macroscópicos deben ser colocados en un
frasco con agua de la llave.
Procedimiento:
Indicaciones:
COPROPARASITOLOGICO SERIADO PARA CRIPTOSPORIDIUM
Estudio de pacientes con sospecha de enteroparasitosis específica por cryptosporidium
Toma de muestra igual que examen coproparasitológico o en frasco limpio 1
muestra de deposición fresca.
Procedimiento:
Indicaciones:
ROTAVIRUS Y ADENOVIRUS EN DEPOSICION:
Estudio de pacientes con sospecha de rotavirus o adenovirus
De una muestra recien emitida, tomar una cantidad similar a una cucharadita de
té y colocar en un frasco limpio, enviarlo lo más pronto posible al Laboratorio , o
conservar en refrigerador a 4° C.
Procedimiento:
Indicaciones:
LEUCOCITOS FECALES
Estudio de pacientes con sospecha de diarrea bacteriana
De una muestra recien emitida, tomar una cantidad similar a una cucharadita de
té y colocar en un frasco limpio, enviarlo lo más pronto posible al Laboratorio , o
conservar en refrigerador a 4° C.
Procedimiento:
Indicaciones:
TEST DE GRAHAM
Estudio de pacientes con sospecha de Enterobius vermicularis
La noche previa a la toma del examen realizar aseo con agua tibia y jabón en la
región anal. La muestra se toma en la mañana, antes de obrar y sin efectuar aseo.
Despegar la tira de scotch de la placa de vidrio y pasar este por la cara engomada
en la zona perianal presionando suavemente. El papel engomado se vuelve a
pegar en la placa de vidrio evitando arrugas. Debe efectuarse durante 5 mañanas
seguidas.
59
TOMA DE MUESTRAS PARA CULTIVO
INTRODUCCION:
En la recuperación de microorganismos causantes de infección, lo más importante es la recolección de la
muestra para el estudio microbiológico.
Esta recolección consta de los siguientes pasos:
Seleccionar el sitio anatómico más adecuado para tomar la muestra
Usar la técnica más apropiada
Poner la muestra recolectada en un envase que favorezca la viabilidad de los microorganismos
causantes del proceso infeccioso, y que evite la filtración o derrame de la muestra, como forma
de protección para el personal que la manipulará posteriormente
Enviar la muestra en forma rápida y expedita al laboratorio, y en el caso que esto no sea posible,
asegurarse que sea almacenada a la temperatura y en los medios de transporte adecuados
Una muestra mal recolectada puede inducir a error en el aislamiento del microorganismo etiológico
real, y la recuperación de contaminantes puede llevar a indicar un tratamiento de antibiótico incorrecto. La
calidad del trabajo realizado en el laboratorio no puede ser superior a la calidad de la muestra recibida.
OBJETIVO: Obtener una muestra de acuerdo a la localización, que permita un óptimo rendimiento del
examen bacteriológico, libre de contaminación.
Dirigido a:
Médicos que solicitan y realizan el procedimiento de toma de muestras
Enfermeras (os) que realizan o ayudan en la toma de muestras
Técnicos Paramédicos
Otros profesionales
Alumnos de pre y postgrado
Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento
GENERALIDADES EN LA TOMA DE MUESTRAS PARA CULTIVOS
La muestra debe ser tomada con máximas precauciones de asepsia, usando el instrumental adecuado y
estéril.
La muestra debe ser representativa del proceso infeccioso, es decir, debe tomarse del sitio de infección,
evitando la contaminación con tejido adyacente, órganos o secreciones.
Se debe obtener una cantidad suficiente de muestra, según el número de exámenes requeridos, y debe
ponerse en receptáculos adecuados y estériles.
Una vez obtenida la muestra, ésta debe enviarse al laboratorio a la brevedad (en medios de transporte
adecuados si el caso lo requiere), debido a que algunos microorganismos tienen baja resistencia a las
condiciones ambientales y en otras muestras (orina) la temperatura ambiente favorece la multiplicación
bacteriana, induciendo a error en el recuento de colonias.
60
En lo posible, para que la muestra tenga un valor significativo, ésta debe obtenerse antes de la
administración de antibióticos. Esto es especialmente importante en el aislamiento de Streptococcus beta
hemolítico (muestras faríngeas), Neisseria gonorrhoeae (cultivos genitourinarios), Haemophilus influenzae y
Neisseria meningitidis (L.C.R.).
Si el enfermo ya está en tratamiento con antibióticos, idealmente éstos deberán suspenderse por un
plazo mínimo de 4 veces la vida media del fármaco y posteriormente tomar la muestra.
La muestra debe rotularse en forma adecuada e ir acompañada de una solicitud de examen, en la que se
anotará, en forma legible:
- Nombre completo del paciente
- Edad o Fecha de nacimiento
- Nº ficha clínica
- Cuenta corriente (si está hospitalizado)
- Nº de RUT
- Procedencia (si es hospitalizado, indicar servicio; o si es ambulatorio)
- Tipo de muestra
- Fecha y hora en que se recolectó la muestra
- Examen solicitado
- Diagnóstico clínico o agente etiológico probable
- Si hay tratamiento antibiótico previo o actual, tratamientos concomitantes
- Nombre y firma del médico
- Otras observaciones (si se trata de una repetición, si es un control, técnica usada en la
Obtención de la muestra, etc.)
Estos datos son fundamentales en el procesamiento de la muestra, ya que permiten una mejor
orientación en la búsqueda del agente etiológico.
61
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS RESPIRATORIAS:
LAVADO BRONQUIOALVEOLAR (LBA)
Procedimiento:
Toma de Lavado bronquioalveolar
Definición:
Indicaciones:
Descripción del procedimiento:
Muestra de secreción del árbol respiratorio inferior obtenida por
fibroboncoscopia.
Sospecha de patología endobronquial y pulmonar
Estudio citológico, histológico y bacteriológico de patología
pulmonar.
Proceder a realizar la fibrobroncoscopía con técnica aséptica, por
el clínico.
Registrar.
MINILAVADO BRONQUIOALVEOLAR (MiniLBA)
Procedimiento:
Toma de Minilavado bronquioalveolar (MiniLBA)
Definición:
Muestra de secreción del árbol respiratorio inferior obtenida a través
del tubo endotraqueal
Sospecha de Neumonia asociada a ventilación mecánica
Indicaciones:
Descripción
procedimiento:
del
Deben ser tomados con técnica aséptica, a través del
tuboendotraqueal.
El tubo endotraqueal debe ser aspirado previo al procedimiento
La sonda de aspiración debe ser lo suficientemente larga para que
pueda impactar en un bronquio.
La sonda de aspiración se llenará con solución fisiológica antes de
introducir.
Posteriormente se insertará esta sonda a través del tubo endotraqueal
hasta que se impacte en un bronquio. Si se desea aspirar secreciones de
un pulmón en particular, se deberá colocar al paciente decúbito lateral
del lado que se quiere aspirar
Una vez impactada la sonda se deben introducir de 5, 10 a 20 ml. De
solución salina 0.9%. La cantidad se determinará si el paciente es
neonato, niño o adulto
Después de instilar se debe colocar el kit de aspiración en la sonda y
aspirar hasta obtener la muestra que no debería ser menor de 5 ml.
Desconectar el kit de aspiración y tapar
Etiquetar las muestras
Enviar de inmediato al laboratorio especificando que se trata de un mini
LBA ya que el proceso de esta muestra es distinto al de otras.
El nivel de corte utilizado es de 104 ufc/ml.
62
ASPIRADO ENDOTRAQUEAL (AET)
Procedimiento:
Definición:
Indicaciones:
Descripción
procedimiento:
Toma de Aspirado Endotraqueal (AET)
Muestra de secreción del árbol respiratorio inferior obtenida a través
del tubo endotraqueal
Todo paciente con sospecha de Neumonia asociada a ventilación mecánica
(NAVM ), conexión a ventilación mecánica más de 48 horas y presencia de
criterios clínicos radiológicos, en el cual no se hayan efectuado cambios de
tratamiento antimicrobiano durante las últimas 72 horas.
del
La muestra debe ser obtenida con técnica aséptica.
El procedimiento debe ser realizado por profesional capacitado en
procedimientos sobre la vía aérea.
Se debe aspirar el tubo endotraqueal antes de obtener la muestra
Se obtiene introduciendo sonda de aspiración por el tubo endotraqueal y
conectar al otro extremo a un colector o trampa estéril
No se debe instilar suero fisiológico con el fin de facilitar la recolección ya
que se diluye la muestra (recuerde que se trata de un cultivo cuantitativo).
Si las secreciones son espesas, se deben aplicar aspiraciones intermitentes
hasta conseguir la muestra.
La muestra debe ser enviada inmediatamente a sección bacteriología de la
Unidad de Laboratorio Clínico.
Se debe especificar claramente en solicitud de examen:
Examen solicitado: CULTIVO CUANTITATIVO ASPIRADO ENDOTRAQUEAL.
El nivel de corte utilizado es de 106 ufc/ml.
ASPIRADO NASOFARINGEO (ANF)
Procedimiento:
Definición:
Indicaciones:
Descripción
del
procedimiento:
Toma de Aspirado Nasofaringeo (ANF)
Muestra de secreción del árbol respiratorio superior obtenida mediante la
aspiración de secreciones de la nasofaringe
Sospecha de infecciones por Bordetella pertussis y estudio de virus
respiratorios
Tomar el examen con técnica aséptica
Conectar un extremo de la tapa de dos salidas a la bomba o red de
aspiración
Conectar el extremo de diámetro menor a la sonda de alimentación
Insertar la sonda en la fosa nasal del paciente aproximadamente 8 cms
Retirar la sonda, repetir el procedimiento en la otra fosa nasal
Aspirar aproximadamente un volumen de 4-5 ml de Buffer tampón PBS frío a
través de la sonda para arrastrar toda la secreción
Cambiar la tapa al tubo recolector, anotar los datos del paciente o etiquetar
Enviar de inmediato al Laboratorio con hoja de solicitud de examen.
63
Si no puede ser enviada de inmediato al laboratotio, guardar
refrigerado el tubo con la muestra, el tiempo máximo es de 24 hrs, luego
debe ser enviado al Laboratorio para su procesamiento.
MUESTRA DE EXPECTORACIÓN
Procedimiento:
Toma de muestra de expectoración
Definición:
Muestra de secreción del árbol respiratorio superior obtenida mediante la
expectoración de secreciones por el paciente
Sospecha de infecciones por B.pertussis y estudio de virus respiratorios
Indicaciones:
Descripción
procedimiento:
del
El paciente debe lavarse los dientes y realizar enjuagues con agua para
limpiar la cavidad oral, con el objeto de eliminar los restos de partículas
de alimentos y los gérmenes saprófitos de la cavidad bucal.
En lo posible tomar la primera expectoración de la mañana, mediante
tos espontánea o provocada eliminar la expectoración en una caja de
boca ancha.
El paciente debe ser asistido en el momento de la obtención de la
muestra
La muestra debe ser enviada de inmediato al laboratorio
En la orden de exámen solicitar Gram directo
Evaluación: Si en el Gram se observa más de 10 células epiteliales por
campo, indica que hay contaminación orofaríngea y se debe considerar
la muestra no representativa, repetirla con buena técnica.
MUESTRA DE SECRECION FARINGEA
Procedimiento:
Toma de muestra de Secreción Faríngea.
Definición:
Muestra de secreción o exudado faríngeo mediante tórula o hisopo
Indicaciones:
Sospecha de infección faringoamigdaliana
Descripción
procedimiento:
del
Buena iluminación y exposición de la faringe del paciente
Deprimir la lengua con bajalengua
Frotar la tórula contra la pared posterior de la faringe y las amígdalas
tocando cualquier exudado.
Evitar tocar la lengua, úvula y pared de la boca
Depositar la tórula dentro de un tubo estéril
Enviar de inmediato al laboratorio
64
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRA DE HEMOCULTIVOS Y CATÉTERES VENOSOS
CENTRALES (CVC)
TOMA DE MUESTRAS DE HEMOCULTIVOS:
Procedimiento:
Objetivo:
Responsables
cumplimiento:
Definiciones
clasificación:
Indicaciones:
Toma de Hemocultivos
Obtener una muestra de sangre que permita un óptimo rendimiento del
examen, libre de contaminación.
de Médicos que lo solicitan
Enfermeras, Matronas, Tecnólogos médicos
Técnicos Paramédicos
Otros profesionales
Alumnos de pre y postgrado
Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento
y HEMOCULTIVO: Es un examen microbiológico que permite la
detección en el laboratorio, de una bacteremia o fungemia y permite
adecuar la terapia antimicrobiana de acuerdo al microorganismo aislado y
a la sensibilidad in vitro que éste presente, ya que la terapia,
generalmente se inició en forma empírica.
CLASIFICACIÓN DE LOS HEMOCULTIVOS:
Para pacientes adultos o pediátricos
Según la toma de la muestra pueden ser hemocultivos periféricos o
centrales (obtenidos a través de catéter venoso central).
Según el tipo de microorganismo que se esté investigando (aerobios
o anaerobios)
Según la metodología del sistema de hemocultivos en métodos
manuales, semiautomatizados o automatizados.
Sospecha de bacteremia o fungemia en pacientes con o sin foco
aparente de infección.
Sospecha de infección del SNC.
Lactante menor de 3 meses con hipertermia (mayor de 39.5)
Síndrome febril de más de 4 días de evolución, sin foco clínico evidente.
Pleuroneumonias.
Paciente inmunodeprimido, con fiebre
Sospecha clínica de septicemia.
Cardiopatía, con fiebre, sin foco clínico evidente.
Osteoartritis aguda.
Celulitis facial en niño menor de 5 años.
65
Pielonefritis
Oportunidad e intervalo Lo ideal es tomar la muestra inmediatamente previa al alza febril, sin
de la toma de muestras embargo este momento no se puede predecir pero muchas veces coincide
con un período de calofríos del paciente.
Los hemocultivos se pueden obtener al mismo tiempo de diferentes sitios
de punción, sin fijar plazos de tiempo entre ellos, sobre todo en pacientes
que requieren inicio inmediato de antimicrobianos.
La muestra debe obtenerse por punción periférica (venosa o arterial),
siempre por una nueva punción
Debe ser la primera muestra que debe obtenerse si existe indicación de
otros exámenes.
En pacientes con terapia antimicrobiana la muestra debe tomarse
inmediatamente antes de la próxima dosis de antimicrobiano.
Se deben obtener los 2 hemocultivos en un periodo máximo de 24 horas.
Medidas para evitar la
Utilizar técnica aséptica estricta en la toma de la muestra, es esencial
contaminación de las
para evitar contaminación
muestras:
Realizar lavado de piel del paciente con agua y jabón.
Utilización de antiséptico aplicando en forma excéntrica desde el sitio
de punción elegido
En el caso de los sistemas manuales que no son sellados, se debe
destapar el frasco para inocular la muestra, este procedimiento tiene
riesgo de contaminación por lo que se debe tener máxima precaución
en no tocar las paredes exteriores ni interiores de la botella con la aguja
ó jeringa
La mascarilla se utilizará en caso que el operador esté cursando un
estado gripal, pero se debe mantener la disciplina en cuanto a no hablar
mientras se inocula la muestra
Se acepta un porcentaje de contaminación que varía entre un 2 a 3%
Esta contaminación se atribuye principalmente a una contaminación
durante la toma de muestraLa tasa de contaminación de los
hemocultivos, constituye un indicador de calidad
La decisión final del significado clínico de un hemocultivo positivo,
depende en última instancia de la presentación clínica y del curso de
la enfermedad en un paciente determinado.
El Laboratorio evaluará y emitirá un informe semestral, dando a
conocer, el porcentaje de contaminación de los hemocultivos tomados
en cada Servicio.
Número y volumen de Se ha demostrado que en un episodio bacterémico la positividad de dos o
las muestras:
tres muestras para hemocultivo no tiene diferencia significativa por lo que
se recomienda tomar 2 muestras tanto en adultos como en niños.
Si se sospecha endocarditis infecciosa, se recomienda tomar 2
hemocultivos, si éstos están negativos a las 24 hrs., obtener un segundo
set de 2 hemocultivos más
No se debe tomar una muestra de sangre para hemocultivo en forma
aislada, dado que disminuye la positividad y complica la evaluación de
contaminación.
66
Descripción
procedimiento:
Las recomendaciones son obtener el máximo de volumen que la botella
sea capaz de tolerar manteniendo la relación 1:5 a 1:10 entre la muestra y
el volumen del medio de cultivo
Esta dilución permite neutralizar las propiedades bactericidas de la sangre
y de los agentes antimicrobianos que puedan estar presentes en la
muestra.
Para la gran mayoría de los sistemas automatizados este volumen es de 10
ml para adultos y es variable para los niños según la edad:
Recién nacidos: 1-2 ml
Lactantes de 1 mes a 2 años: 2-3 ml
Niños mayores de 2 años y <12 años: 3-5 ml
Adolescentes: 10 ml
Adultos: 10 ml
Las muestras se deben mantener a temperatura ambiente, nunca
refrigerar
La incubación a 35ºC debe realizarse lo antes posible, pudiendo darse
como máximo de tiempo 2 hrs desde que se tomó la muestra.
del El procedimiento se realiza con Técnica aséptica:
Reuna el material
Examine cada frasco antes de usar en busca de indicios de
daño, contaminación o deterioro como: derrames, turbidez,
decoloración u oscurecimiento o el tampón hinchado o hundido, si es
así, el frasco se debe devolver.
En el momento de la toma de muestra, el frasco de cultivo debe
estar a temperatura ambiente.
Explique el procedimiento al paciente
Realizar lavado de manos clínico con jabón antiséptico.
Colocar guantes de procedimiento o manoplas en caso de riesgo de
contacto con sangre.
Prepare la zona a puncionar lave la piel con tórulas con agua y jabón
antiséptico desde el centro a la periferia
Desinfectar la zona a puncionar con Alcohol 70%, excepto en los
recién nacidos donde se debe usar clorhexidina
Se debe esperar que el antiséptico se seque para que ejerza su acción
residual
La punción debe ser efectuada con guantes, que deben ser estériles
cuando se requiere palpar nuevamente la vena
Extraer la muestra
Inocular la muestra, previo descontaminar el tapón de goma de la
botella con alcohol y esperar que seque.
En el caso de los sistemas manuales que no son sellados, se debe
destapar el frasco para inocular la muestra
Eliminar material cortopunzante en contenedor ad-hoc
Rotular muestras (no escriba en el código de barras) consigne:
Nombre completo del paciente
Fecha, hora y servicio o unidad
67
Vía de obtención de la muestra: periférico, por CVC, etc
N° de muestra I o II
Registrar el procedimiento
Mantención y transporte de las botellas
Mantener a temperatura ambiente
Enviar rápidamente al laboratorio
Nunca refrigerar
Transportar a temperatura ambiente
La incubación a 35ºC debe realizarse lo antes posible, pudiendo darse
como máximo de tiempo 2 hrs desde que se tomó la muestra.
Indicadores de calidad:
Nº de hemocultivos contaminados por servicio/ Nº de Hemocultivos
Contaminación
de tomados por servicio X 100
Hemocultivos
Estándar o umbral de 2 a 3% de contaminación de hemocultivos
evaluación
Bibliografía:
Manual de Procedimientos MINSAL 1990
Manual de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias
MINSAL 1993.
MUESTRAS PARA CULTIVO DE CATÉTERES VENOSOS CENTRALES
Procedimiento:
Definición:
Indicaciones:
Descripción
procedimiento:
Toma de Muestras de CVC
Cultivo de punta de CVC: cultivo que se toma al retirar el CVC cortando
una porción de la punta para cultivo
Pacientes con catéter venoso central que presente fiebre 38º C., sin foco
aparente que la explique con o sin infección a nivel de la inserción del
CVC.
del Cuando se retira el CVC: Método semicuantitativo de Maki
Lavado clínico de manos.
Uso de guantes estériles:
Instalar campo estéril.
Cerrar la conexión del catéter.
Limpiar la piel donde se inserta el catéter con alcohol de 70º.
Con una pinza y tijera estéril cortar punto que fija el catéter a la piel y
traccionar suavemente hacia el exterior.
Cortar con tijera estéril 3 cm de la punta del catéter, partiendo
desde algunos milímetros bajo el nivel subcutáneo del catéter.
Guardar la punta del catéter en un tubo estéril de boca ancha.
Enviar al Laboratorio antes de 2 horas.
Tomar en forma paralela 2 hemocultivos periféricos al paciente
(diferentes sitios de punción) para documentar bacteriemia.
Interpretación:
Si el recuento de colonias es menos de 15 (15 UFC) se interpreta como
68
una contaminación del catéter al momento de retirarlo.
Si el recuento es igual o superior a 15 (15 UFC) se interpreta como una
colonización significativa del catéter.
Cultivo sitio de inserción CVC:
Hacer aseo superficial con gasa y suero fisiológico o agua destilada estéril
Exprimir desde los bordes para obtener secreción con una tórula
Enviar al laboratorio.
Nota: No tomar muestra de sitio de inserción en ausencia de signos
inflamatorios locales sugerentes de infección.
Cuando permanece el C.V.C.:
En el caso que el catéter no es retirado, se recomienda efectuar el tiempo
diferencial de la positividad de los hemocultivos.
Este método se puede realizar sólo en laboratorios que dispongan de
sistemas automatizados.
Tiempo diferencial de los hemocultivos:
Preparación de la piel, lavado por arrastre con jabón antiséptico.
Lavado clínico de manos con jabón antiséptico, uso de guantes estériles.
Extraer 1 hemocultivo a través de catéter central y luego un
hemocultivo de vena periférica.
Rotular cada una de ellas y enviar al laboratorio.
Interpretación:
Se ha señalado como indicativo de bacteriemia relacionada a CVC un
tiempo diferencial de 2 horas a favor del hemocultivo central con respecto
del periférico.
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRA DE ORINA PARA CULTIVO
Procedimiento:
Toma de Muestras de Urocultivos
Descripción de la norma
Preferentemente se debe obtener la primera orina de la mañana (ya
que se trata de una muestra más concentrada). De no ser posible, el
paciente debe abstenerse de orinar durante las tres horas previas al
examen.
No forzar la ingestión de líquidos, ya que con ello se diluye la orina,
alterando el recuento.
Volumen recomendado a recolectar: 25 a 50 ml
Volumen mínimo: 3 ml
Se debe tomar la muestra siempre previo aseo genital
Una vez obtenida la muestra debe procesarse antes de 2 horas
Indicaciones:
Pacientes con sospecha de infección urinaria
69
Clasificación
descripción
procedimiento:
y Orina de segundo chorro; Recolección de orina en mujeres adultas:
del
Tener un frasco estéril proporcionado por el laboratorio
Tener a lo menos 3 horas de retención de orina
Separar los labios genitales y mantener los pliegues separados
Realizar higiene genital con agua sola o con jabón neutro
Enjuagar con abundante agua
Secar sin friccionar
Colocar tampón vaginal
Destapar el frasco estéril cuidando de no tocar las partes internas
Comenzar la micción descartando el primer chorro
Sin cortar el chorro de orina, colocar el frasco recolector obteniendo la
porción media de la orina
Tapar el frasco y rotular
Enviar al laboratorio.
Toma de muestra en varones adultos:
Tener un frasco estéril proporcionado por el laboratorio
Tener a lo menos 3 horas de retención de orina
Lavar con jabón la cabeza del pene empezando por la abertura uretral
previa retracción del prepucio
Enjuagar con agua y secar suavemente
Destapar el frasco recolector en el momento de la micción
Sin tocar con los dedos la parte interior
Recolectar la muestra eliminando el primer chorro
Depositar la muestra media del chorro
Rotular muy bien el frasco
Enviar al laboratorio.
Orina obtenida mediante recolector pediátrico:
Realizar aseo prolijo con agua y jabón
Aplicar el recolector para obtener la muestra
Tener la precaución de cambiar el recolector cada 30 minutos
Enviar la muestra al laboratorio
Orina obtenida a través de catéter vesical permanente:
Generalmente los catéteres vesicales están colonizados ya a las 48 hrs de
instalados y los microorganismos aislados no necesariamente son el
agente causal de la infección urinaria.
Toma de muestra pacientes con sonda vesical instalada hace 24 horas:
Limpiar la superficie externa del catéter con alcohol 70%, esperar que se
seque para que ejerza su acción.
Efectuar punción en ángulo de 30º
Pinzar el catéter en el momento de tomar la muestra
Depositar la orina en un frasco estéril
Enviar de inmediato al laboratorio.
70
Toma de muestra en pacientes con sonda vesical instalada hace 24 más
de horas:
Cambiar la sonda antes de proceder a tomar la muestra de orina
Tomar ésta al conectar la bolsa recolectora
Depositar en un frasco estéril
Enviar de inmediato al laboratorio
Punción vesical:
Es el método de referencia para la obtención de orina a cultivar ya que
evita la contaminación con flora uretral; sin embargo, se reserva para
casos especiales por ser un procedimiento invasor.
Cateterización vesical transitoria:
Se considera una alternativa a la punción vesical pero es también un
procedimiento invasor y
puede generar arrastre
retrógrado
de microorganismos.
Transporte de la muestra:
La orina es un buen medio de cultivo que permite la multiplicación de los
microorganismos incrementando el recuento bacteriano, por lo que las
muestras deben procesarse antes de las 2 horas de obtenidas.
PROCEDIMIENTO DE TOMA DE MUESTRAS DE LÍQUIDO CEFALORRAQUIDEO
Procedimiento:
Toma de muestra de Líquido cefalorraquídeo (LCR)
Definición:
Muestra de LCR obtenida por punción lumbar
Indicaciones:
Sospecha de infección meníngea
Descripción
procedimiento:
del
Lavar la región lumbar del paciente con agua y jabón.
Realizar lavado con agua y jabón antiséptico y posteriormente
antisepsia de la piel mediante la realización de movimientos
concéntricos que van desde el lugar donde se realiza la punción hacia
fuera.
Esperar tiempo de latencia del antiséptico.
Proceder a la punción lumbar con técnica aséptica, por el clínico.
Recolectar el L.C.R. en tres tubos estériles. Utilizar el segundo tubo para
el estudio microbiológico ya que el primero tiene más posibilidades de
contaminarse con flora cutánea. El otro tubo se utiliza para efectuar
estudio citológico, bioquímico, antígenos capsulares, etc.
La cantidad de L.C.R. afecta directamente la sensibilidad del diagnóstico
bacteriológico. En general cantidades de 1-3 ml del L.C.R. para el
estudio microbiológico son adecuadas, pero si es necesario determinar
71
antígenos capsulares (látex) debe enviarse otro tubo con una cantidad
similar de L.C.R.
En aquellos casos en que se obtiene escasa cantidad de muestra, se
debe consultar al clínico, acerca de cual de los estudios que se realizan
con el L.C.R., reviste mayor importancia para el paciente
El transporte se debe realizar lo más pronto posible, en tubos estériles,
ya que la mayoría de los microorganismos causantes de meningitis son
sensibles a los cambios de temperatura y desecación.
PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS DE CAVIDADES SEROSAS
Procedimiento:
Definición:
Toma de muestra de Líquido pleural, peritoneal, pericárdico, sinovial,
etc.
Muestra de cavidades serosas que se obtiene por punción.
Indicaciones:
Sospecha de infección meníngea
Descripción
procedimiento:
del El líquido pleural, peritoneal, pericárdico, sinovial, etc., se obtienen
generalmente por punción cutánea, por lo tanto, se debe realizar un
riguroso aseo y antisépsia de la zona que se va a puncionar, para evitar la
contaminación de la muestra con la flora flora cutánea y minimizar el
riesgo de infección del paciente asociado al procedimiento. La muestra
debe ser obtenida por un médico experimentado en la técnica y un
asistente, ambos vestidos con ropa estéril, guantes y mascarilla.
Se recomienda usar jeringa heparinizada para tomar muestras de L.
articular o L. pleural que contengan gran cantidad de proteínas, enviar 1-3
cc. del líquido
Con respecto a los L. Ascíticos se ha observado una mayor positividad si se
envía 5-8 ml en matraz de hemocultivos de adulto.
TRANSPORTE:
Una vez que el clínico ha obtenido la muestra, en tubos estériles o jeringa,
debe ser conducida a la brevedad posible al laboratorio, a temperatura
ambiente
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE TRACTO GENITAL
MUESTRAS DEL TRACTO GENITAL MASCULINO
Procedimiento:
Toma de muestra de Tracto genital masculino
Definición:
Muestra de secreción uretral o balanoprepucial masculino.
Indicaciones:
Sospecha de infección del tracto genital masculino
72
Descripción del
procedimiento:
Secreción uretral:
Debe ser matinal antes de orinar
Aseo genital con agua y jabón.
Si existe secreción abundante, tomar la muestra con tórula desde el inicio de la
uretra posterior.
Si no se ve secreción, introducir una tórula fina unos 2 a 3 cm dentro de la uretra
y rotar suavemente en ambos sentidos, tomar 2 tórulas, una para Gram y otra
para cultivo.
Si existe secreción escasa:
Obtener orina de 1er chorro, de primera micción matinal en frasco de urocultivo
Enviar antes de 15 minutos al laboratorio y registrar en solicitud de examen la
búsqueda de N. gonorrhoeae.
Balanoprepucial:
Realizar aseo genital con agua y jabón
Retraer el prepucio
Tomar con tórula estéril desde el surco balanoprepucial
Enviar al laboratorio.
MUESTRAS DEL TRACTO GENITAL FEMENINO
Procedimiento:
Toma de muestra de Tracto genital femenino
Indicaciones:
Sospecha de infección del tracto genital femenina
Descripción del
procedimiento:
Glándula de Bartholino, para búsqueda de:
Bacterias aerobias
N .gonorrhoeae
Aseo vulvar con agua y jabón
Pincelar con povidona yodada
Puncionar con técnica aséptica y aspirar pus
Eliminar el aire de la jeringa y sellarla
Enviar de inmediato al laboratorio.
S. vaginal para búsqueda de:
Candida spp
Gardnerella vaginalis
Streptococcus agalactiae
Listeria
Colocar espéculo sin lubricante
Introducir tórula estéril seca
Tomar muestra de secreción
Enviar al laboratorio.
Cervix uterino para búsqueda de
N. gonorrhoeae
73
Colocar espéculo
Limpiar con gasa la secreción vaginal y mucus del cérvix
Introducir tórula en endocérvix y rotarla para obtener exudado
Enviar de inmediato al laboratorio.
Loquios:
No se deben cultivar loquios obtenidos desde la vagina, ya que la
contaminación con secreción vaginal los hace no representativos de
procesos endometriales
Fondo de saco de Douglas, para búsqueda de:
-Bacterias aerobias
-N. gonorrhoeae
Limpiar con gasa estéril el fondo de saco vaginal posterior
Desinfectar con povidona yodada
Puncionar con jeringa estéril y aspirar
Enviar al laboratorio.
S. uretral para búsqueda de:
-N. gonorrhoeae
Aseo perineal como en urocultivo.
Introducir tórula fina y rotar.
Enviar de inmediato al laboratorio.
Orina para búsqueda de:
N. gonorrhoeae
Aseo perineal como en anterior.
Tomar muestra de orina del 1er chorro (10 ml) y primera orina de la
mañana con técnica aséptica.
Llevar de inmediato al laboratorio y registrar en solicitud de examen la
búsqueda de N. gonorrhoeae.
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE TRACTO GASTROINTESTINAL
Procedimiento:
Toma de muestra de Coprocultivos
Definición:
Indicaciones:
Diagnóstico etiológico de diarrea aguda bacteriana:
Mediante cultivo:
Salmonella spp. Shigella spp.
Yersinia enterocolitica
E.coli enterohemorrágica
74
V.cholerae
Mediante tinción de Gram de deposiciones:
Campylobacter spp.
Mediante detección de toxina:
Clostridium difficile
Descripción del
procedimiento:
Toma de muestra
La muestra de deposición debe tomarse al comienzo del proceso
agudo, no se recomienda realizar coprocultivos en pacientes con más de
3 días de hospitalización, debe estar sin tratamiento antibiótico previo.
Idealmente deposición recién emitida, incluyendo productos patológicos
(mucus, pus, sangre) en un frasco limpio.
Se puede obtener de dos formas, especialmente en niños:
1.
Sonda rectal: Se debe emplear una sonda nelaton fina y se aspira
con jeringa.
2.
Hisopado rectal: Introducir tórula en el recto y rotarla suavemente
para obtener materia fecal, ésta debe ser enviada en medio de transporte
Cary-Blair.
Para pesquisa de toxina A de C. difficile se debe obtener
aproximadamente 5 cc de deposición en un frasco limpio (sin fijador) que
proporciona el laboratorio.
En caso de hospitalización por diarrea, se tomará sólo una muestra al
ingreso del paciente, ya que se ha demostrado que más de una muestra
no aumenta el rendimiento en forma significativa, pero sí aumenta el
costo.
Se solicita indicar en la orden presencia de sangre en deposiciones.
Criterios de rechazo de una muestra:
orden incompleta
letra ilegible
ausencia de medio de transporte
pacientes hospitalizados más de 72 hrs que han consultado por SDA
Deposición formada.
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS OCULARES
Procedimiento:
Indicaciones:
Descripción
procedimiento:
Toma de muestras oculares
Estudio en pacientes con presencia de secreción ocular u ojo rojo
del Toma de muestra
Tomar la muestra para cultivo antes de la aplicación de anestésico tópico.
Tomar la muestra con extremo cuidado, con la ayuda de otra persona que
75
inmovilice la cabeza del paciente.
Limpiar la superficie externa del ojo con un algodón humedecido en suero
fisiológico estéril o agua destilada estéril
Luego se frota una tórula estéril humedecida en suero estéril, el fondo de
saco conjuntival inferior en dirección hacia el borde interno del ojo
evitando el borde
de las pestañas
Transporte de la muestra:
Enviar la muestra inmediatamente al laboratorio.
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS OTICAS
Procedimiento:
Toma de muestras oticas
Indicaciones:
Estudio de pacientes con sospecha de otitis externa u otitis media
Clasificación
Secreción del conducto auditivo externo: muestra obtenida cuando se
presenta exudado, es mejor recolectar pus con una tórula fina.
Secreción de oído medio: fluido de oído obtenido por Timpanocentesis.
Descripción
procedimiento:
del
Toma de muestra
Otitis externa
Hacer aseo cuidadoso de la piel ( para disminuir flora residente )
Con una tórula estéril y seca, tomar muestras en el mismo sentido del
conducto auditivo
Enviar al laboratorio.
Otitis media
No se recomienda la tórula para estudio de otitis media
El cultivo del canal auditivo externo no refleja la causa de una otitis media,
salvo que la membrana timpánica se haya roto recientemente. En este
caso limpiar el conducto auditivo externo con suero fisiológico estéril
y tomar muestra con tórula fina, sin contaminar con la superficie externa
La muestra de elección es la punción timpánica aspirativa con técnica
aséptica que debe ser tomada por especialista otorrinolaringólogo
Enviar al laboratorio
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE PIEL Y TEJIDOS BLANDOS
Procedimiento:
Indicaciones:
Toma de muestras de piel y tejidos blandos
(Herida, abscesos, quemadura, exudados, etc.)
El diagnóstico de infección, es clínico y se basa en la presencia de
síntomas y signos clínicos en el sitio de la lesión. El cultivo se solicita sólo:
Con diagnóstico de infección, si se requiere confirmar la etiología
con fines epidemiológicos y/o terapéuticos.
Si el clínico decide que el estado del paciente amerita un tratamiento
antibiótico sistémico.
76
Clasificación
La infección puede ser
superficial
profunda,
dependiendo de las
estructuras
comprometidas.
Descripción
del
procedimiento:
Infección superficial: existe compromiso de dermis, epidermis y celular
subcutáneo.
Infección profunda: existe compromiso de además de la fascia y músculo,
pudiendo o no comprometer cavidades u órganos.
Toma de muestras
Lesiones secas: No se recomienda cultivo.
Lesiones costrosas:
Aseo de piel con suero fisiológico
Remover costra
Frotar lesión con tórula humedecida en suero fisiológico estéril.
Absceso cerrado:
No usar tórula
Descontaminar piel con alcohol 70%
Puncionar el absceso, aspirar su contenido con jeringa, mínimo 0.5 ml.
Celulitis:
Descontaminar la piel con alcohol 70%
Inyectar 0.5-1.5 ml de suero fisiológico estéril con aguja Nº 21 o jeringa de
tuberculina y aspirar
Enviar el aspirado en la misma jeringa.
Vesículas:
Descontaminar piel con alcohol
Abrir vesícula con lanceta estéril
Tomar muestra de secreción con tórula humedecida en suero fisiológico
estéril
Colocar en tubo seco estéril.
Remover flora superficial de la piel y exudados con gasa y suero fisiológico
Con una tórula estéril frotar firmemente los márgenes internos del
absceso, en la región más alejada de la piel, pero no del centro mismo del
absceso
Si el contenido es muy fluido extraer con jeringa.
Enviar de inmediato al laboratorio.
Superficies quemadas:
Los cultivos de superficie quemada solo se justifican si hay signos locales
o generales de infección, en tal caso se recomienda hacer biopsia
quirúrgica del tejido para cultivo cuantitativo
Los cultivos rutinarios de vigilancia de superficies quemadas muestran
solamente microorganismos colonizantes, por lo tanto no se justifican.
Ulceras: Si no hay evidencia clínica de infección no deben ser cultivadas.
77
Ulceras infectadas
Las muestras superficiales de úlceras infectadas no deben ser tomadas
con tórula o irrigación con suero fisiológico, ya que inevitablemente
están altamente contaminadas por organismos que forman parte de la
flora comensal de la piel y por organismos patógenos, que no participan
de la infección
Pié diabético:
La muestra adecuada para este tipo de herida es la obtenida por curetaje
Curetaje:
Hacer aseo con suero fisiológico estéril
Debridar el tejido necrótico superficial con hoja de bisturí estéril
Obtener muestra profunda a través de curetaje.
Punción aspirativa:
También son útiles, para este tipo de herida, las muestras obtenidas por
punción aspirativa con jeringa, de abscesos o bulas
Tienen menor sensibilidad ( 50% ) que las obtenidas por curetaje.
Escaras y úlceras tróficas:
No se debe cultivar lesiones superficiales ya que éstas están mal
vascularizadas
Se colonizan y son reservorio de microorganismos intrahospitalarios
No llegan los antimicrobianos sistémicos
Su tratamiento es local con curaciones o aseo quirúrgico.
Si se sospecha que la puerta de entrada de una sepsis sea la escara:
Obtener muestra post aseo superficial con gasa y suero fisiológico
Eliminar el tejido necrótico
Obtener tejido profundo por curetaje o biopsia.
Secreción umbilical:
Tomar sólo en R.N.
Hacer aseo superficial con suero fisiológico
Introducir la tórula en el orificio umbilical y rotar suavemente
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS PARA INFECCIÓN ARTICULAR, OSEA Y DE
MEDULA OSEA
Procedimiento:
Toma de muestras de infecciones articulares y oseas
Indicaciones:
Descripción
procedimiento:
Sospecha de artritis séptica, infección de artroplasía de caderas y osteomielitis
del
Toma de muestras
Líquido articular
Tomar una muestra de líquido articular e inocular directamente en frasco de
78
hemocultivo pediátrico.
Artritis séptica
Si existe sospecha de artritis de etiología tuberculosa, debe tomarse la muestra con
heparina; 1 gota de solución de heparina al 5% estéril, para 5 ml de líquido.
Diagnóstico de infección de artroplastía de cadera
Punción aspirativa: Si existen evidencias clínicas y radiológicas de infección
protésica, la punción aspirativa articular para obtener líquido para cultivo, es una
ayuda valiosa para el estudio diagnóstico (la sensibilidad es de 50 a 70% y
especificidad de 80%).
Tomar una muestra y vaciar en frasco de hemocultivo y enviar a laboratorio.
Nota: Si desea Tinción de Gram, se debe enviar fracción de muestra en jeringa o
frasco estéril.
Osteomielitis aguda
Cultivo intraoperatorio: Se deben tomar tres muestras, de sitios representativos,
como 1 muestra de cápsula articular y 2 de membranas alrededor de los
componentes protésicos, depositar las muestras en frascos de hemocultivo
respectivamente (un frasco con cápsula y otro con las membranas). La tinción de
Gram tiene alta especificidad pero muy baja sensibilidad (98% versus 12%).
Muestra intraoperatoria de tejido sinovial o tejido óseo: Las muestras de tejido
óseo o sinovial, obtenidas por procedimiento quirúrgico, deben ser inoculadas en
frasco tradicional de hemocultivo.
Muestra por punción percutánea: Las muestras osteoarticulares, por punción
percutánea bajo visión radiológicas, deben ser inoculadas en frasco de
hemocultivo.
Nota: en caso de sospecha de bacteremia simultánea, obtener muestra de sangre
para hemocultivos.
Mielocultivo
Tomar la muestra de médula ósea, con técnica aséptica. Inocular un caldo de
hemocultivo pediátrico automatizado
Transporte: Las muestras tomadas, deben ser enviadas inmediatamente al
Laboratorio Central
PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE AGUAS DE DIALISIS
Los controles microbiológicos en los Centros de Diálisis deben hacerse a lo menos semestralmente.
La Unidad de Diálisis, la Unidad de IIH y el Laboratorio de Microbiología han determinado realizar
mensualmente estos controles, estipulando que, el primer jueves de cada mes serán tomadas las muestras y
enviadas al Laboratorio para su procedimiento
79
La Unidad de Hemodiálisis cuenta con 7 máquinas y además, existe una en cada unidad de paciente
crítico (UCI, UCICQ y UTI Adultos)
Cantidad de muestras para cultivo:
1.
2.
Unidad de Hemodiálisis crónico
1 muestra obtenida de agua post filtración de ablandamiento
1 muestra previo entrada a la primera máquina de diálisis (Pre-procedimiento)
1 muestra previo entrada a la última máquina
Unidad Hemodiálisis aguda:
1 muestra en UCI
1 muestra en UTI
1 muestra en UCI CQ
−
Líquido de diálisis (Post procedimiento):
1 muestra para cada máquina o monitor de diálisis (7 en total)
1 muestra al primer paciente del mes que se dialice en UCI adultos
1 muestra al primer paciente del mes que se dialice en UTI adultos
1 muestra al primer paciente del mes que se dialice en UCICQ
Método de obtención de muestra:
−
−
−
−
Abrir la válvula y dejar fluir el agua por 2 minutos
Con técnica aséptica tomar un volumen de 5 ml en frasco estéril que proporcionará el
Laboratorio.
Si se ha sanitizado, se debe hacer flush por toda la línea de agua por 15 minutos previo a la
toma de muestra.
Enviar al Laboratorio
Interpretación:
−
−
El recuento en agua de diálisis no debe exceder 200 UFC/ml
El recuento bacteriano en líquido de diálisis no debe exceder 2000 UFC/ml
Todo recuento superior a estos límites será informado a la brevedad a la Unidad respectiva y al
Comité de Vigilancia en
MUESTRAS PARA ESTUDIO DE TUBERCULOSIS.
Procedimiento:
Indicaciones:
MUESTRA EXPECTORACION PARA ESTUDIO TBC
Diagnóstico en pacientes sintomáticos y control de tratamiento
80
Número de muestras:
Para diagnóstico en pacientes sintomáticos; dos muestras (una inmediata y la
otra matinal en ayuna).
Para control de tratamiento: una muestra mensual, la primera muestra de
control debe ser enviada al mes de iniciado el tratamiento.
Toma de muestra:
Rotular la base del envase con el nombre completo del paciente y procedencia.
Instruir al paciente que produzca el esputo bronquial de las profundidades del
pecho.( inspirar profundamente. Retener un momento la respiración y toser
fuertemente para tomar la muestra).
Recalcar al paciente que las muestras deben ser matinales
Informar al paciente que debe depositar dos o tres esputos recogidos
directamente en el envase, cuidando que no se derrame en las manos, ni se
escurra por las paredes exteriores del envase.
Conservación de la muestra
No dejar transcurrir más de 7 días entre la recolección y procesamiento de la
muestra, conservándola siempre en refrigerador protegido de la luz.
Procedimiento:
MUESTRA CONTENIDO GASTRICO PARA ESTUDIO TBC
Indicaciones:
Diagnóstico en pacientes sintomáticos.
Número de muestras:
Dos muestras seriadas.
Toma de muestra:
Envase: Tubo estéril.
Momento de extracción
Por la mañana, estando el paciente en ayuno 12 horas. En lactantes se hará en
momentos previo a su ingestión de leche.
Técnica:
Sondeo gástrico con sonda nasal o bucal adecuado y aspiración con jeringa.
Cantidad:
2-10 ml.
Conservación:
La muestra debe enviarse inmediatamente al Laboratorio.
Procedimiento:
MUESTRA ORINA PARA ESTUDIO TBC
Indicaciones:
Diagnóstico en pacientes sintomáticos y control de tratamiento
Número de muestras:
Para diagnostico: 6 muestras en días seguidos.
Para control de tratamiento: 3 muestras en días seguidos, en forma mensual
mientras dure el tratamiento.
Envase: Frasco estéril.
Cantidad: 100 a 200 mL.
Momento de recolección
Debe recogerse la primera orina de la mañana, orina de segundo chorro. Previo
aseo genital con agua.
81
Conservación:
La muestra debe ser procesada inmediatamente por lo tanto una vez obtenida,
debe ser enviada inmediatamente al Laboratorio.
NOTA: Todas estas muestras deben venir acompañadas del formulario
"Solicitud de Examen Bacteriológico de la Tuberculosis.
Procedimiento:
Indicaciones:
LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO
Diagnóstico en pacientes sintomáticos
La obtención de material esta reservado al personal Médico.
Cantidad y momento de recolección: 1 ml. cuando el Médico tratante crea
conveniente.
Envase: Frasco estéril
Conservación: Enviar en forma inmediata a Laboratorio para ser procesada.
NOTA: Todas estas muestras deben venir acompañadas del formulario
"Solicitud de Examen Bacteriológico de la Tuberculosis.
Procedimiento:
Indicaciones:
LIQUIDO PLEURAL, ASCITICO, ARTICULAR
LAVADO BRONCOALVEOLAR PARA ESTUDIO TBC
Diagnóstico en pacientes sintomáticos.
1.- La obtención de material está reservada al personal Médico.
2.- Número de muestras: las que el Médico tratante crea convenientes.
3.- Envase. Estéril, de capacidad adecuada para la cantidad de la muestra.
4.- Conservación: Enviar en forma inmediata a Laboratorio para ser procesada.
NOTA: Todas estas muestras deben venir acompañadas del formulario
"Solicitud de Examen Bacteriológico de la Tuberculosis.
Procedimiento:
Indicaciones:
MUESTRAS DE TEJIDO: (GANGLIO, BIOPSIAS DE DIFERENTES ÓRGANOS)
Diagnóstico en pacientes sintomáticos.
Colocar un trozo de muestra en un tubo estéril, no mezclar con ningún tipo de
preservante, en caso de ser posible pueden también obtenerse muestras mediante
aspiración por jeringas y transportarlas en forma rápida al laboratorio.
82
CAUSAS DE RECHAZO DE MUESTRAS
RECHAZO ADMINISTRATIVO
Tubos o contenedores de muestras sin identificación
Identificación incorrecta
Información incompleta en solicitud de examen
RECHAZO TÉCNICO
Inmediato
Preparación inapropiada del paciente
Procedimiento de toma incorrecta
Recipiente inadecuado
Volumen incorrecto (en tubos con anticoagulantes)
Almacenamiento inadecuado
Interferentes
Transporte inadecuado en correo neumático
Tiempo prolongado desde toma de muestra
Jeringa de gases no sellada
Jeringa de gases con burbujas de aire
Posterior a recepción
83
Hemólisis
Muestra coagulada
Muestra lipémica
HEMÓLISIS:
La hemólisis es la liberación de la hemoglobina después de la ruptura de los hematíes. Cuando se
produce hemólisis, el suero o plasma adquieren un color entre rosa y rojo.
Entre las causas de hemólisis se cuentan la anemia hemolítica, la enfermedad hepática y las
reacciones postransfusionales.
Otra causa es la manera como se ha extraído la muestra de sangre. En la punción venosa, por
ejemplo, la hemólisis puede producirse:
Si se utiliza una aguja demasiado fina
Si se fuerza el paso de la sangre por la aguja hacia el tubo
Si se agita el tubo con demasiada energía, en lugar de invertirse suavemente
Si se extrae sangre de un hematoma
Si se tira con demasiada fuerza del émbolo de la jeringa
En los microtubos la hemólisis puede producirse:
•
•
Si se dejan residuos de alcohol sobre la piel y se mezclan con la sangre de la muestra.
Si se aprieta demasiado fuerte el talón o el dedo, lo que puede producir una ruptura de los
hematíes.
También puede producirse hemólisis posterior cuando se produce:
•
•
•
Permanencia larga de sangre total en un recipiente
Contaminación de la sangre con detergentes, agua, reactivos residuales en tubos y cristalería
Choque térmico (enfriamiento ó calentamiento excesivo)
BURBUJAS DE AIRE
Las burbujas de aire pueden alterar en gran medida el valor de la pO2, dependiendo de la cantidad y
tamaño de las mismas; cuanto más pequeñas sean las burbujas, mayor será la superficie de contacto con la
sangre, y más rápidamente se producirá la variación.
Una vez obtenida una muestra deben eliminarse inmediatamente las posibles burbujas que haya en
ella, y sellar herméticamente la jeringa con un tapón en el cono. (Hay que retirar la aguja y desecharla).
Las muestras de gases en sangre deben ser anaerobias, por tanto, las que contengan burbujas se
rechazarán.
COÁGULOS
Debe rechazarse cualquier muestra que contenga coágulos. Los coágulos tienden a formarse cuando
se hace difícil realizar una punción y la sangre no se mezcla bien con la heparina o queda estancada en la
aguja.
84
RECOMENDACIONES PARA MANTENER "FRESCAS" LAS MUESTRAS:
Las causas más importantes para las alteraciones de las muestras son:
•
•
•
•
•
•
Metabolismo de las células sanguíneas.
Evaporación.
Reacciones químicas.
Descomposición por factores microbiológicos.
Efecto de la luz.
Difusión de gases.
Las principales recomendaciones para mantener óptimas las muestras serían:
• El transporte rápido y los tiempos de almacenamiento cortos mejoran la fiabilidad de los
resultados del laboratorio.
• Los especimenes y muestras se conservan mejor en refrigeración, con las excepciones a
la regla.
• Los especimenes siempre deben guardarse en contenedores cerrados para evitar la
evaporación. Reducir el contacto con el aire hasta donde sea posible. Si esto no se hace, los
efectos de evaporación producirán un aumento en la concentración/actividad de todos los
componentes no volátiles. Esto aplica particularmente para el caso cuando el volumen de la
muestra es relativamente pequeño y el área de la superficie es relativamente grande.
•
Los agentes de separación (ejemplo, gel) mejoran el rendimiento del suero/plasma y
permiten mantenerlos en los tubos originales.
•
Los contenedores de las muestras que contienen sangre deben mantenerse siempre
verticales, el procedimiento de coagulación se acelera.
•
Evitar guardar sangre entera o total, revisar la información sobre los analitos sensibles.
•
Evitar la glucólisis en muestras para determinar glucosa y lactato. La glucólisis puede ser
evitada utilizando tubos con fluoruro de sodio (tubo tapa gris).
•
Evitar el efecto de la luz, ésta afectará disminuyendo los valores de bilirrubina, vitamina C.
porfirinas, creatincinasa (CK), y ácido fólico.
85
LISTA ALFABETICA DE EXAMENES DE LABORATORIO CON
DETALLE DE INFORMACION TÉCNICA
ÁCIDO LÁCTICO PLASMÁTICO Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Los valores elevados son indicativos de hipoxia celular, se produce en
patologías como alcoholismo, coma hepático, shock, hipernatremia,
diabetes mellitus, neoplasias y peritonitis. Se ve disminuido en
hiponatremia.
RANGOS DE REFERENCIA
: 4.5 – 19.8 mg/dL. (Adultos)
METODO
: Enzimático colorimétrico.
: Debe tener reposo, por lo menos 30 minutos antes de la prueba.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
Evitar el ejercicio intenso el día antes de la prueba.
Se requiere ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Tomar la muestra sin torniquete, indicar al paciente que no cierre y abra
DE TOMA DE MUESTRAS
la mano durante la toma de muestra.
TIPO DE MUESTRA
: Plasma
TIPO DE TUBO
: Plasma
:
Tapa gris de 2 ml. (anticoagulante
fluoruro de sodio), lleno hasta la
marca.
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
RECEPCION Y RECHAZO DE LA :
MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
2 mL. o el volumen que indique el tubo
Los tubos se deben transportar sumergidos parcialmente en agua/hielo
(sin sumergir la tapa del tubo), tapados, en posición vertical, en un
recipiente y dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames. Evitar
la agitación para prevenir la hemólisis.
Máximo 30 minutos desde tomada la muestra.
La muestra se recibe en horario hábil de Lunes a Viernes hasta las 16
horas.
Sólo se recibe en horario de turno en caso de pacientes pediátricos.
La muestra será rechazada en los siguientes casos:
- Tubo mal rotulado o nombre ilegible.
- Tubo de muestra no transportado en condiciones adecuadas
- Muestra hemolizada
Lunes a Viernes dentro del día. En muestras pediátricas 1 hora despúes
de recibida la muestra.
La hemólisis invalida la prueba. Fármacos que interfieren: epinefrina
(altas dosis), etanol, fructosa, glucosa, metilprednisolona, terbutalina
provocan un aumento en la concentración de lactato. Azul de metileno,
morfina provocan una disminución.
86
ÁCIDO LÁCTICO LCR Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
Los valores elevados en LCR indican aumento de la utilización de glucosa
y del metabolismo anaeróbico asociado con disminución de la
oxigenación cerebral, aumento de la presión intracraneal, o ambas. Esta
prueba es auxiliar en el diagnóstico de meningitis y en la identificación de
trastornos del Sistema Nervioso Central.
0-25 mg/dL
Enzimático colorimétrico.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
Explicar al paciente, el procedimiento de extracción de muestra, los
riesgos potenciales, beneficios y las actividades posteriores al
procedimiento. No se requiere ayuno.
Toma de muestra a cargo de un profesional médico. Preguntar si la
prueba está disponible antes de tomar la muestra.
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
:
:
:
Líquido céfalo raquídeo (LCR).
Plasma
:
Tubo de vidrio
0.5 mL. ó el volumen que indique el tubo.
CONDICIONES TRANSPORTE
:
Los tubos se deben transportar sumergidos parcialmente en agua/hielo
(sin sumergir la tapa del tubo), tapados, en posición vertical, en un
recipiente y dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames.
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
RECEPCION Y RECHAZO DE LA :
MUESTRA
Máximo 30 minutos desde tomada la muestra.
La muestra se recibe en horario hábil de Lunes a Viernes hasta las 16.00
horas.
Sólo se recibe en horario de turno en caso de pacientes pediátricos.
La muestra será rechazada en los siguientes casos:
Tubo de muestra mal rotulado o nombre ilegible.
LCR hemáticos con sobrenadante hemolizado.
Condiciones de transporte no adecuados
Lunes a Viernes dentro del día. En muestras pediátricas 1 hora despúes
de recibida la muestra.
La hemólisis invalida la prueba. Fármacos que interfieren: epinefrina
(altas dosis), etanol, fructosa, glucosa, metilprednisolona, terbutalina
provocan un aumento en la concentración de lactato. Azul de metileno,
morfina provocan una disminución.
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
87
ÁCIDO ÚRICO PLASMÁTICO Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Se utiliza para el diagnóstico y tratamiento de numerosos desórdenes
renales y metabólicos, entre los que se incluyen gota, leucemia, psoriasis,
falla renal, mieloma múltiple, linfoma, policitemia, toxemia de embarazo,
entre otros.
RANGOS DE REFERENCIA
: 3.5 – 7.2 mg/dl (hombre)
2.6 - 6.0 mg/dl (mujer)
2.0 – 5.5 mg/dl (niño)
METODO
: Uricasa.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas. Evitar el consumo de café y otros alimentos
ricos en cafeína.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Ninguna recomendación especial.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
Suero
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECEPCION :
Y RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
Tubo tapa verde , lleno hasta la marca
para los servicios de urgencia
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 4mL para pacientes adultos (tubo
tapa roja), 3 mL (tubo tapa verde) para servicios de urgencia.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
Hasta 4 horas desde la toma de muestra.
Las muestras se reciben en horario hábil de Lunes a Viernes hasta las
16.00 horas.
En caso de embarazadas con riesgo obstétrico se reciben las 24 horas.
La muestra será rechazada en los siguientes casos.
Tubo mal etiquetado o nombre ilegible.
Muestra hemolizada
Tubo de muestra quebrado
Dentro del día
Muestras lipémicas y muy hemolizadas invalidan la prueba. Fármacos
que
interfieren:
Bloqueadores
B-adrenérgicos,
cisplatino,
corticosteroides, furosemida, tiazidas, epinefrina, etanol, hidroxiurea,
teofilina, cafeína producen un aumento del ácido úrico sérico.
88
ÁCIDO ÚRICO ORINA AISLADA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Se utiliza para valorar el origen hiper-uricosúrico de los cálculos urinarios.
RANGOS DE REFERENCIA
: 37 – 92 mg/dL
METODO
: Uricasa.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : En caso que el paciente traiga la orina de su domicilio se le informa que
ésta debe ser la primera orina de la mañana.
Para el caso de mujeres se sugiere que no cursen con su período
menstrual o leucorrea al momento de recolectar la orina, en caso
contrario deben cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para
evitar que la orina se contamine.
Antes de la recolección de la orina se procede a un aseo con agua y jabón
de la zona que rodea el meato urinario, posteriormente se seca la zona
evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el primer
chorro de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la
porción final también se elimina.
En el caso de los hombres se le indica que retraiga el prepucio para lavar
con agua y jabón la porción distal del pene que rodea el meato urinario,
posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la
zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media
en el recipiente, la porción final también se elimina.
Si el lactante es niña, colocar la bolsa colectora sobre la zona del periné
fijando la parte adhesiva a la piel. Si el lactante es niño, colocar la bolsa
colectora alrededor del pene. Es necesario revisar periódicamente la
bolsa colectora para verificar su correcta posición. Si antes de media hora
no se ha recogido la muestra o la bolsa colectora se ensucia, hay que
sustituirla, para evitar contaminación fecal. Se puede colocar el pañal
para asegurar la integridad de la bolsa, revisando la presencia de orina en
la bolsa colectora frecuentemente.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Entregar las instrucciones por escrito al paciente ambulatorio.
DE TOMA DE MUESTRAS
Verifique la correcta rotulación de la muestra antes del envío al
Laboratorio.
TIPO DE MUESTRA
: Orina.
TIPO DE TUBO
: Orina
:
Recipiente limpio, tubo de orina proporcionado por el
Laboratorio o bolsa colectora (lactantes sin control de
esfínter).
VOLUMEN MINIMO
: 1 mL.
CONDICIONES TRANSPORTE
: Los frascos o tubos se deben transportar en posición vertical, tapados,
en un contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
Sellar adecuadamente los frascos para transporte en correo neumático.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 4 horas desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
: Muestra mal rotulada o nombre ilegible
ENTREGA RESULTADOS
: Dentro del día
LIMITACIONES
: Medicamentos alteran el resultado: cafeína, aminofilina y vitamina C.
89
ÀCIDO URICO URINARIO DE 24 HORAS Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Se utiliza para valorar el origen hiper-uricosúrico de los cálculos urinarios.
RANGOS DE REFERENCIA
: 250 – 750 mg/24 horas
METODO
: Uricasa.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Para la correcta valoración de los resultados de un análisis efectuado
sobre orina de 24 horas es muy importante que la recolección de la orina
sea completa.
Durante el período de recolección, el paciente debe beber líquidos en
forma normal a menos que haya recibido otra indicación. No debe beber
alcohol.
Los pasos a seguir son los siguientes:
• Orine a las 7:00 Hrs. de la mañana y elimine esta orina
• Recoger, a partir de ese momento, en un recipiente limpio y seco, toda
la orina que elimine a lo largo del día, la noche siguiente, incluyendo la
primera orina de la mañana siguiente.
• Mantener la orina que se va recolectando refrigerada. Una vez
finalizada la recolección identificar cada uno de los envases. La
identificación debe contener el nombre y los dos apellidos del paciente
escritos con letra legible.
• Transportar la orina a la Unidad de Laboratorio Clínico.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verifique la correcta rotulación de la muestra antes del envío al
DE TOMA DE MUESTRAS
Laboratorio.
Si se envía una alícuota de la recolección, registrar volumen total en
solicitud de examen.
TIPO DE MUESTRA
: Orina de 24 horas.
TIPO DE TUBO
: Orina
:
Recipientes limpios y secos.
VOLUMEN MINIMO
: Toda la orina recolectada en 24 horas o una alícuota de 10 mL.
CONDICIONES TRANSPORTE
: Temperatura ambiente.
No usar correo neumático si se envía toda la recolección o alícuota en
tubo de vidrio.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 4 horas desde el término de la recolección de la muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
: Muestra mal rotulada o nombre ilegible
Condiciones inadecuadas de transporte
ENTREGA RESULTADOS
: Dentro del día
LIMITACIONES
: Medicamentos alteran el resultado: cafeína, aminofilina y vitamina C.
90
ACIDO VALPROICO, NIVELES DE Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Droga utilizada como anticonvulsivo de amplio espectro, usado solo o en
combinación con otros fármacos, para el tratamiento de crisis de
ausencias. La detección de niveles es utilizada para el control y
monitoreo del tratamiento de pacientes epilépticos.
RANGOS DE REFERENCIA
: 50 a 100 ug/mL. ( Rango terapéutico)
METODO
: Inmunoanálisis turbidimétrico potenciado con microparticulas
homogéneas.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Tomar la muestra entre 0 y 30 minutos antes de la dosis. Indicar en la
DE TOMA DE MUESTRAS
orden hora de la última dosis de Ácido Valproico u otro medicamento. En
intoxicaciones la toma de muestra es independiente del horario y la
dosis.
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
Suero
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
RECEPCION Y RECHAZO DE :
MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
:
Tubo tapa verde , lleno hasta la marca
para los servicios de urgencia
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 8 mL para pacientes adultos (tubo
tapa roja), 3 mL (tubo tapa verde) para servicios de urgencia.
Temperatura ambiente.
Hasta 4 horas desde la toma de muestra.
Muestra se recibe de Lunes a Viernes hasta las 15.00 horas.
La muestra será rechazada en los siguientes casos:
- Muestra mal rotulada o nombre ilegible
- Muestra hemolizada
- tubo de muestra roto
- Ingesta de dosis terapéutica previa al examen
Dentro del día si muestra ha sido recibida en el laboratorio antes de las
15.00 horas.
La hemólisis, lipemia e ictericia invalidan la prueba.
91
ADENOSINDEAMINASA (ADA) Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: La Adenosindeaminasa (ADA) es un marcador de actividad inmunitaria de
los linfocitos T, sus niveles dependen tanto de las características del
agente etiológico como de las características de la respuesta inmune del
paciente. Niveles elevados de ADA se observan en liquido pleural de
pacientes con pleuresía tuberculosa, también en pacientes con derrames
neoplásicos y paraneumonías, en liquido cefalorraquídeo y en líquido
ascítico valores ↑ son asociados con TBC.
RANGOS DE REFERENCIA
: Suero
: > 21 U/L.
Líquido Pleural : > 28 U/L.
LCR
: > 7.0 U/L.
METODO
: Guisti
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
:
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
:
:
:
Sangre, Líquido Pleural, Líquido Ascítico, LCR, otros líquidos.
Jeringa Heparinizada a Tubo estéril.
0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
Temperatura ambiente.
Enviar al laboratorio antes de 4 horas desde la toma de muestra.
Muestras de sangre se reciben de lunes a viernes hasta las 15.30 horas.
Muestras de líquidos se reciben las 24 horas
Se rechazan muestras purulentas, con hemólisis, lipemia e ictericia
7 días hábiles
RECEPCION Y RECHAZO DE
MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
92
ALBÚMINA SÉRICA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
Es una de las dos principales fracciones proteicas de la sangre. Su función
es mantener la presión oncótica y el transporte de bilirrubina, ácidos
grasos, hormonas y otras sustancias solubles en agua. Aumenta en artritis
reumatoide, embarazo, neumonía, entre otras y disminuye en alcoholismo,
enfermedad de crohn, glomerulonefritis, entre otras.
RANGOS DE REFERENCIA
:
<4 años
>4 y <14 años
>14 y 60 años
>60 años
METODO
:
Verde de bromocresol.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
Ayuno de al menos 8 horas. Consumir una dieta baja en grasas el día antes
del examen.
Evitar la aplicación prolongada de torniquete.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
2.8 - 4.4 g/dL
3.8 - 5.4 g/dL
3.5 - 5.0 g/dL
3.4 - 4.8 g/dL
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Suero
Suero
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
2 mL para pacientes pediátricos, 4 mL para pacientes adultos (tubo tapa
roja).
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
Enviar al laboratorio antes de 4 horas desde la toma de muestra.
Las muestras se reciben de lunes a viernes hasta las 16.00 horas.
Las muestras se rechazarán en los siguientes casos:
- Tubo de muestra mal rotulado o nombre ilegible
- Tubo quebrado
- muestras hemolizadas, lipémicas, ictéricas.
Dentro del día
Fármacos que interfieren: Progesterona ↑
albúmina. Alopurinol,
clorpropamida, cisplatino, estrógenos, ibuprofeno, nitrofurantoína,
anticonceptivos orales, fenitoina, prednisona, ácido valproico,
fenilbutazona, producen ↓de la albúmina.
RECEPCION Y RECHAZO DE :
MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
Tubo tapa roja o amarilla
93
ALBUMINA ORINA Y LCR Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
:
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso
exclusivo de laboratorio)
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
:
La albúmina es la principal proteína plasmática en cuanto a cantidad,
significando normalmente más de la mitad de las proteínas totales. La
albúmina se forma exclusivamente en el hígado y es una proteina de
transporte y fijación de calcio, ácidos grasos, bilirrubina, hormonas,
vitaminas y fármacos.
Orina: hasta 30 mg/L
LCR: hasta 350 mg/L
Determinación cuantitativa de albúmina en suero, orina humana y LCR,
mediante Inmuno nefelometría (BN ProSpec)
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
Sangre ( Suero)
Sangre ( Plasma con Heparina o EDTA)
Orina
LCR
Sangre ( Suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
Sangre (Plasma)
:
Tubo tapa lila (EDTA)
Orina
:
Frasco o tubo estéril
LCR
:
Tubo estéril
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Enviar al laboratorio máximo 2 horas desde tomada la muestra.
En el laboratorio refrigerar la muestra a 2-8 °C hasta por un máximo de 48
horas, en caso contrario congelar a -20 °C o a temperatura inferior. Una
vez descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
Muestras lipémicas o hemolizadas. No deben utilizarse muestras
contaminadas, tratadas por calor o que contengan partículas visibles
1 día hábil.
94
ALFA 1 ANTITRIPSINA AAT Inmunología
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
La alfa 1 – antitripsina es un inhibidor de proteinasa que inhibe
especialmente las serin-proteasas. Tanto el déficit hereditario de alfa 1 –
antitripsina como valores elevados durante la reacción de fase aguda
están asociados a síndromes específicos. Los estados de déficit de alfa 1 –
antitripsina suelen tener causa genética. Las manifestaciones clínicas
evidentes, suponen enfermedades hepáticas y pulmonares. Los valores
elevados de alfa 1 – antitripsina no están causados por defectos genéticos
pero, en la mayoría de los casos, se deben a una reacción de fase aguda
ante una infección o inflamación. En este caso, las concentraciones se
elevan hasta tres veces de la normalidad. También pueden darse valores
elevados durante el embarazo y la siguiente ingestión de ACO.
Normal : 82 – 275 mg/dL
Determinación cuantitativa de alfa 1 – antitripsina por Inmuno
nefelometría (BN ProSpec)
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
:
:
Sangre (suero), Sangre (Plasma)
Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
Sangre (Plasma)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
RECHAZO DE MUESTRAS
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso
exclusivo de laboratorio)
ENTREGA RESULTADOS
:
:
Tubo tapa lila (EDTA)
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Enviar al laboratorio máximo 2 horas desde la toma de muestra.
Las muestras turbias y lipémicas que no puedan aclararse mediante
centrifugación (10 min a 4.000 x g) no deben usarse.
En el laboratorio refrigerar la muestra a 2-8 °C hasta por un máximo de 48
horas, en caso contrario congelar a -20 °C o a temperatura inferior. Una
vez descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
1 día hábil
95
ALFAFETOPROTEINA (AFP) Inmunología
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
La alfafetoproteína se eleva en diferentes enfermedades malignas como
hepatocarcinoma y en tumores de células germinales, elevaciones
discretas se producen en otras neoplasias (pancreas, intestino y pulmón).
Alfafetoproteina es de utilidad para diagnóstico de defecto de tubo neural
en el feto.
Adultos: 0 a 15.0 ng/mL.
El ensayo AxSYM AFP se basa en la tecnología de enzimoinmunoanálisis de
micropartículas (MEIA).
Ayuno de 8 horas antes de la prueba
Evitar hemólisis y contaminación microbiana de la muestra.
Suero
Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente. Preparar y etiquetar adecuadamente de acuerdo
con las normas vigentes.
Máximo 2 horas desde la toma de muestra
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso
exclusivo de laboratorio)
En el laboratorio refrigerar la muestra a 2-8 °C hasta por un máximo de 48
horas, en caso contrario congelar a -20 °C o a temperatura inferior. Una
vez descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
Muestras con hemólisis, lipemia e ictericia.
1 día hábil
Muestras de pacientes con terapia de Anticuerpos Monoclonales pueden
presentar falsos valores por interferencia con el método. La presencia de
Anticuerpos Heterófilos puede interferir en la determinación.
:
:
96
AMILASA EN SANGRE Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
RECEPCION Y RECHAZO DE :
MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
Su determinación es útil en el diagnóstico de pancreatitis aguda,
elevándose sus niveles 2 horas después de inicio de ésta, alcanzando el
máximo a las 24 horas y recuperando sus niveles normales 2 a 3 días
después. Aumenta también en edemas, cáncer pancreático, pulmonar,
cetoacidosis diabética, colecistitis aguda, embarazo ectópico, entre otras.
Disminuye en absceso hepático, caquexia, cirrosis, colitis ulcerosa,
deshidratación, daño renal, alcoholismo, fibrosis quística avanzada,
toxemia del embarazo, entre otras.
25 – 125 U/L (adultos)
Degradación de sustrato EPS.
Ayuno de al menos 8 horas. No ingerir alcohol por lo menos 24 horas antes
de la prueba.
Evitar la hemólisis de la muestra.
Suero
Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
Suero
:
Tubo tapa verde , lleno hasta la marca
para los servicios de urgencia
2 mL para pacientes pediátricos ( tubo tapa roja), 2 a 4 mL para pacientes
adultos (tubo tapa roja), 3 mL (tubo tapa verde) para servicios de urgencia.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
Máximo 4 horas desde la obtención de la muestra.
Las muestras se reciben las 24 horas del día.
La muestra será rechazada en los siguientes casos:
- Tubo de muestra mal rotulado o nombre ilegible.
- Muestra hemolizada y lipémica.
2 Horas en caso de pacientes de servicios de urgencia. Dentro del día en
pacientes hospitalizados.
Fármacos que intefieren: alcohol, captopril, cimetidins, corticosteroies,
estrógenos, furosemida, ibuprofeno, indometacina, ácido mefenámico,
metildopa, nitrofurantoína, anticonceptivos orales, sulfonamidas,
tetraciclina, ácido valproico, producen un aumento de la amilasa sérica.
AMILASA URINARIA ORINA AISLADA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Su determinación es útil en el diagnóstico de pancreatitis aguda, se eleva
varias horas después de indiciado el cuadro y permanece así entre 7 y 10
días después del inicio, debido a esto, es útil al proporcionar evidencia de
97
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
:
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
RECHAZO DE MUESTRA
:
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
pancreatitis, una vez que la amilasa sérica a regresado a sus valores
normales.
2- 34 U/L
Degradación de sustrato EPS.
En caso que el paciente traiga la orina de su domicilio se le informa que
ésta debe ser la primera orina de la mañana.
Para el caso de mujeres se sugiere que no cursen con su período menstrual
o leucorrea al momento de recolectar la orina, en caso contrario deben
cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para evitar que la orina se
contamine.
Antes de la recolección de la orina se procede a un aseo con agua y jabón
de la zona que rodea el meato urinario, posteriormente se seca la zona
evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el primer chorro
de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la porción final
también se elimina.
En el caso de los hombres se le indica que retraiga el prepucio para lavar
con agua y jabón la porción distal del pene que rodea el meato urinario,
posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la
zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media
en el recipiente, la porción final también se elimina.
Si el lactante es niña, colocar la bolsa colectora sobre la zona del periné
fijando la parte adhesiva a la piel. Si el lactante es niño, colocar la bolsa
colectora alrededor del pene. Es necesario revisar periódicamente la bolsa
colectora para verificar su correcta posición (podría salirse y perder la
esterilidad). Si antes de media hora no se ha recogido la muestra o la bolsa
colectora se ensucia, hay que sustituirla, ya que la contaminación con
microbiota fecal es un problema bastante frecuente. Se puede colocar el
pañal para asegurar la integridad de la bolsa, revisando la presencia de
orina en la bolsa colectora frecuentemente.
Verifique la correcta rotulación de la muestra antes del envío al
Laboratorio.
Orina segundo chorro.
Orina
:
Recipiente limpio, Tubo de orina proporcionado
por el Laboratorio o bolsa colectora (lactantes
sin control de esfínter).
5 mL
Temperatura ambiente.
Enviar al laboratorio máximo 4 horas desde la toma de muestra.
La muestra será rechazada en los siguientes casos:
- Tubo de muestra mal rotulado o nombre ilegible.
- Signo de contaminación.
Dentro del día hábil si la muestra se ha recibido antes de las 15.00 hrs
El consumo de alcohol etílico, los anticonceptivos orales y algunos
diuréticos podrían elevar falsamente los resultados de la prueba. La
contaminación por fecas o fluido vaginal invalida la prueba.
98
AMILASA URINARIA DE 24 HORAS Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Su determinación es útil en el diagnóstico de pancreatitis aguda, se eleva
varias horas después de indiciado el cuadro y permanece así entre 7 y 10
días después del inicio, debido a esto, es útil al proporcionar evidencia de
pancreatitis, una vez que la amilasa sérica a regresado a sus valores
normales.
RANGOS DE REFERENCIA
: 24 - 408 U/24 horas
METODO
: Degradación de sustrato EPS.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : No ingerir alcohol por lo menos 24 horas antes de la prueba.
Para la correcta valoración de los resultados de un análisis efectuado sobre
orina de 24 horas es sumamente importante que la recogida de la orina
sea completa.
Durante el período de recolección, el paciente debe beber líquidos en
forma normal a menos que haya recibido otra indicación y no debe beber
alcohol.
Los pasos a seguir son los siguientes:
• Orine a las 7:00 Hrs. de la mañana y elimine esta orina
• Recoger, a partir de ese momento, en un recipiente limpio y seco, toda
la orina que elimine a lo largo del día, la noche siguiente, incluyendo la
primera orina de la mañana siguiente.
• Mantener la orina que se va recolectando refrigerada. Una vez finalizada
la recolección identificar cada uno de los envases. La identificación debe
contener el nombre y los dos apellidos del paciente escritos con letra
legible.
• Transportar la orina a la Unidad de Laboratorio Clínico.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar la correcta rotulación de todos los envases antes del envío al
DE TOMA DE MUESTRAS
Laboratorio. Si el volumen de orina es medido en la Toma de Muestra, se
debe anotar el valor en el formulario de solicitud de examen.
TIPO DE MUESTRA
: Orina de 24 horas
TIPO DE TUBO
: Orina
:
Recipientes limpios y secos.
VOLUMEN MINIMO
: Toda la orina de 24 horas o una alícuota de 10 mL.
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
RECEPCION Y RECHAZO DE :
MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
Tº ambiente.
No utilizar correo neumático para transporte de la recolección completa de
orina o alícuotas en tubo de vidrio.
Máximo 4 horas desde el término de la recolección de la muestra.
Muestras se reciben en horario hábil hasta las 16.00 hrs
Rechazo en caso de muestras mal rotulada o nombre ilegible, recolección o
condiciones de transporte inadecuadas.
Dentro del día hábil si la muestra se ha recibido antes de las 15.00 hrs
El consumo de alcohol etílico, los anticonceptivos orales y algunos
diuréticos podrían elevar falsamente los resultados de la prueba. La
contaminación por fecas o fluido vaginal invalida la prueba.
99
AMONIO PLASMÁTICO Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
Se observa concentraciones elevadas de Amonio en insuficiencias
hepáticas graves, como en el síndrome de Reye, la hepatitis vírica o la
cirrosis.
31 – 123 µg/dl
Determinación enzimático
Se requiere ayuno. No fumar 8 a 10 horas antes de la prueba.
Evitar el estrés y el ejercicio extenuante antes de la prueba.
Recolectar la muestra SIN TORNIQUETE. Evitar la hemólisis de la muestra.
No recolectar durante la hemodiálisis.
Sangre (Plasma)
Sangre (Plasma)
:
Tubo tapa lila (EDTA)
VOLUMEN MINIMO
:
2 mL. o el volumen que indique el tubo.
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
Transportar sumergidos parcialmente en agua/hielo (sin sumergir la tapa
del tubo), tapados, en posición vertical, en un recipiente y dentro de un
contenedor sólido a prueba de derrames. Evitar la agitación para prevenir
la hemólisis.
Máximo 30 minutos desde la toma de la muestra.
Las muestras serán rechazadas en caso de:
Hemólisis
Muestra no transportada en condiciones de T° óptima.
Dentro del día en horario hábil
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
La hemólisis invalida la prueba. Fármacos que interfieren: sales de amonio,
barbitúricos, furosemida, tiazidas, acetazolamida, etanol, ácido valproico,
producen aumento del amonio en sangre. Kanamicina, lactulosa, levodopa,
neomicina, cigarrillo, producen una disminución del amonio en sangre.
100
ANTICUERPOS ANTI CARDIOLIPINAS (ACA) Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: Sospecha o pesquisa de sindrome antifosfolípido primario o secundario en
enfermedades autoinmunes.
Trombofilia y aborto espontáneo en grupos de riesgo.
RANGOS DE REFERENCIA
: IgG <15 unidades
IgA <12 unidades
IgM <12 unidades
METODO
: ELISA
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
VOLUMEN MINIMO
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
Temperatura ambiente.
Transportar antes de 4 horas de tomada la muestra.
RECHAZO DE MUESTRAS
Tubo tapa
amarilla
roja
o
Se rechazan las muestras en caso de muestra lipémica o hemolizada.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
ENTREGA RESULTADOS
Sangre (suero)
Sangre (suero)
:
7 días hábiles.
101
ANTICUERPOS ANTI CENTROMERO Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : La presencia de anticuerpos antinucleares puede ser utilizada en
PRUEBA
conjunción con otros tests serológicos y resultados clínicos para ayudar en
el diagnóstico de Lupus Eritematoso Sistémico (LES) y otras enfermedades
reumáticas o del tejido conectivo.
Está generalmente aceptado que los substratos de líneas celulares son
preferibles a las secciones de órganos ya que estas células de división
rápida tienen niveles más elevados de ciertos antígenos relevantes desde
el punto de vista clínico, incluyendo el centrómero, SS-A(Ro), Scl-70 y
PCNA/Ciclina.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
METODO
: IFI (Ensayo por inmunofluorescencia indirecta) para el screening y la
determinación semicuantitativa de anticuerpos centrómero en suero
humano
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
Tubo tapa roja o
amarilla
VOLUMEN MINIMO
: 0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES
DE : Temperatura ambiente.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Transportar antes de 4 horas de tomada la muestra.
CONDICIONES DE RECHAZO DE
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
MUESTRAS
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
CONDICIONES
DE
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
ALMACENAMIENTO
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
(uso exclusivo de laboratorio)
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
TIEMPO
ENTREGA : 7 días hábiles
RESULTADOS
102
ANTICUERPOS ANTI CITOPLASMA DE NEUTRÓFILOS (ANCA) Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Los test de anticuerpos anticitoplasma del neutrófilo (ANCA) han
PRUEBA
revolucionado el diagnóstico y el tratamiento de las afecciones vasculares
autoinmunes. Los autoanticuerpos pANCA y cANCA han demostrado ser
muy útiles desde el punto de vista clínico y ciertamente interesantes desde
el punto de vista científico a la hora de detectar enfermedades como la
granulomatosis de Wegener (GW) y la glomerulonefritis crescéntica.
El patrón perinuclear p-ANCA se encuentra en pacientes con vasculitis y
glomerulonefritis, estos autoanticuerpos son dirigidos contra varios
antígenos presentes en los gránulos azurófilos de los neutrófilos, siendo su
antígeno blanco principal la Mieloperoxidasa (MPO).
El patrón citoplasmático c-ANCA se debe a anticuerpos que reconocen a
una proteína de ubicación lisosomal llamada Proteinasa 3. Se piensa que
los c-ANCA participan en el mecanismo de la injuria, Granulomatosis de
Weneger.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo <20
Positivo Débil 21 – 30
Positivo de Moderado a Fuerte >30
METODO
: ELISA (Ensayo por inmuno absorción ligado a enzimas) para la detección
semi cuantitativa de autoanticuerpos IgG antimieloperoxidasa (MPO) y la
detección semi cuantitativa de autoanticuerpos anti serinproteasa 3 (PR-3)
en suero humano
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
Tubo tapa roja o
amarilla
VOLUMEN MINIMO
: 0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES
DE : Temperatura ambiente.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Transportar antes de 4 horas de tomada la muestra.
CONDICIONES DE RECHAZO DE
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
MUESTRAS
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
CONDICIONES
DE
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
ALMACENAMIENTO
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
(uso exclusivo de laboratorio)
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
TIEMPO
ENTREGA : 7 días hábiles
RESULTADOS
103
ANTICUERPOS ANTI DNA Inmunología
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Los anticuerpos anti-DNA de doble cadena sólo se dan prácticamente de
forma exclusiva en pacientes con LES y se consideran como un anticuerpo
indicador de esta enfermedad. La presencia de anticuerpos anti-DNA de
doble cadena es un indicador importante del LES; sin embargo, la ausencia
de estos anticuerpos no hace que se pueda descartar el LES en todos los
casos.
Los anticuerpos anti-DNA de doble cadena han sido incluidos en la
Revisión de los Criterios de 1982 para la Clasificación de LES por un
subcomité de la Asociación de Artritis y Reumatismo.
Negativo 0-300 UI/mL
Positivo Moderado 301-800 UI/mL
Positivo Fuerte >801 UI/mL
ELISA (Ensayo por inmuno absorción ligado a enzimas) para la detección
semi cuantitativa de anticuerpos anti-ds DNA (ADN de doble cadena ) en
suero humano
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
:
:
Sangre (suero)
Sangre (suero)
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES
DE :
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRAS
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
TIEMPO
ENTREGA :
RESULTADOS
Tubo tapa
amarilla
roja
o
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
7 días hábiles
104
ANTICUERPOS ANTI ENA Inmunología
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Los anticuerpos de Antígenos Nucleares Extraíbles (ENA) pueden
suministrar información importante en la diagnosis y prognosis a la hora
de evaluar los pacientes que se sospecha que tienen ciertas enfermedades
del tejido conectivo como el LES, la escleroderma, el síndrome de Sjogren
o polimiositis.
Las muestras que dan un resultado negativo en esta prueba de screening
sensible pueden ser consideradas negativas para Sm, RNP, SS-A, SS-B, Scl70 y Jo-1.
Negativo <20
Positivo Débil 20 – 39
Positivo Moderado 40 – 80
Positivo Fuerte >80
ELISA (Ensayo por inmuno absorción ligado a enzimas) para la detección
semi cuantitativa de anticuerpos anti-Sm, anti-RNP, anti-SS-A (60kDa y
52kDa), anti-SS-B, anti-Scl-70 y anti-Jo-1 en suero humano
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
:
:
Sangre (suero)
Sangre (suero)
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES
DE :
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRAS
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
TIEMPO
ENTREGA :
RESULTADOS
Tubo tapa
amarilla
roja
o
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
7 días hábiles
105
ANTICUERPOS ANTI ESTREPTOLISINA O ASO Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Las mediciones de la antiestreptolisina O respaldan el diagnóstico de
PRUEBA
enfermedades causadas por bacterias de la streptococcus (entre otras:
fiebre reumática, escarlatina, amigdalitis, glomérulonefritis) y suministran
información epidemiológica sobre estas enfermedades. Los streptococcus
patógenos están relacionados con impétigo, infección de las vías urinarias,
fiebre reumática, así como también, con enfermedades renales.
RANGOS DE REFERENCIA
: 0-200 UI
METODO
: Determinación cuantitativa de la antiestreptolisina O (ASL) por Inmuno
nefelometría (BN ProSpec)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre ( Suero)
Sangre ( Plasma con Heparina o EDTA)
TIPO DE TUBO
: Sangre ( Suero)
: Tubo tapa roja o
amarilla
Sangre (Plasma)
: Tubo tapa lila (EDTA)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRAS
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente. Máximo de 8 días entre 2 y 8 °C
:
4 horas desde la toma de muestra.
Se rechazan muestras lipémicas que no puedan aclararse mediante
centrifugación (10 min a 4.000 x g)
1 día hábil
:
106
ANTICUERPOS ANTI GLIADINICOS IgG - IgA Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : La enfermedad celíaca y las enteropatías sensibles al gluten son
PRUEBA
afecciones crónicas cuya principal manifestación consiste en la inflamación
y característico aplanamiento histológico de la mucosa que provoca un
síndrome de mala absorción intestinal. La etiología precisa de la
enfermedad sigue siendo desconocida, aunque está claro que la gliadina, o
la fracción soluble en alcohol del gluten de trigo, es el agente tóxico.
Inicialmente, se utilizaba una serie de múltiples biopsias intestinales para
diagnosticar los trastornos celíacos y de tipos similares. Hoy en día, se han
propuesto los tests serológicos para el muestreo de pacientes con
evidencias de enteropatías sensibles al gluten, así como para controlar la
adecuación de la dieta.
Tanto los anticuerpos de la gliadina IgA como de la IgG son detectables en
el suero de pacientes con enteropatías sensibles al gluten. Los anticuerpos
de la gliadina IgG parecen ser marcadores más sensibles pero menos
específicos de la enfermedad en comparación con los anticuerpos de la
clase IgA. Los anticuerpos de la gliadina IgA son menos sensibles pero más
específicos.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo <20
Positivo Débil 20 – 30
De positivo moderado a
Positivo Fuerte >30
METODO
: ELISA (Ensayo por inmuno absorción ligado a enzimas) para la detección
semi cuantitativa de anticuerpos gliadina IgG y la detección semi
cuantitativa de anticuerpos gliadina IgA en suero humano
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
Tubo tapa roja o
amarilla
VOLUMEN MINIMO
: 0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES
DE : Temperatura ambiente.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
CONDICIONES DE RECHAZO DE
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
MUESTRAS
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
CONDICIONES
DE
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
ALMACENAMIENTO
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
(uso exclusivo de laboratorio)
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
TIEMPO
ENTREGA : 7 días hábiles
RESULTADOS
107
ANTICUERPOS ANTI MITOCONDRIAL AMA Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : La presencia de anticuerpos antinucleares puede ser utilizada en
PRUEBA
conjunción con otros tests serológicos y resultados clínicos para ayudar en
el diagnóstico de Lupus Eritematoso Sistémico (LES) y otras enfermedades
reumáticas o del tejido conectivo
Se suelen detectar altos niveles de AMA asociados a la cirrosis biliar
primaria. Se pueden detectar bajas valoraciones de AMA en otros
trastornos hepáticos como la hepatitis crónica activa y la cirrosis
criptogénica.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
METODO
: IFI (ensayo por inmunofluorescencia indirecta) para el screening y la
determinación semicuantitativa de anticuerpos antimitocondria (AMA),
anti músculo liso (ASMA) y anticuerpos parietales gástricos (GPA), anti
membrana basal (MB) en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
Tubo tapa roja o
amarilla
VOLUMEN MINIMO
: 0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES
DE : Temperatura ambiente.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
CONDICIONES DE RECHAZO DE
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
MUESTRAS
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
CONDICIONES
DE
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
ALMACENAMIENTO
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
(uso exclusivo de laboratorio)
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
TIEMPO
ENTREGA : 7 días hábiles
RESULTADOS
108
ANTICUERPOS ANTI MUSCULO LISO ASMA Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : La presencia de anticuerpos antinucleares puede ser utilizada en
PRUEBA
conjunción con otros tests serológicos y resultados clínicos para ayudar en
el diagnóstico de Lupus Eritematoso Sistémico (LES) y otras enfermedades
reumáticas o del tejido conectivo
Se encuentran niveles elevados de ASMA en el suero de un 70% de los
pacientes con hepatitis crónica activa. Además, el 50% de estos pacientes
son ANA positivos, mientras que un 25% presentan valoraciones de AMA
bajas. Pueden observarse valoraciones de ASMA bajas en infecciones
víricas, tumores malignos e individuos normales.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
METODO
: IFI (ensayo por inmunofluorescencia indirecta) para el screening y la
determinación semicuantitativa de anticuerpos antimitocondria (AMA),
anti músculo liso (ASMA) y anticuerpos parietales gástricos (GPA), anti
membrana basal (MB) en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
Tubo tapa roja o
amarilla
VOLUMEN MINIMO
: 0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES
DE : Temperatura ambiente.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
CONDICIONES DE RECHAZO DE
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
MUESTRAS
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
CONDICIONES
DE
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
ALMACENAMIENTO
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
(uso exclusivo de laboratorio)
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
TIEMPO
ENTREGA : 7 días Hábiles
RESULTADOS
109
ANTICUERPOS ANTI NUCLEARES ANA Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : La presencia de anticuerpos antinucleares (ANA) puede ser utilizada en
PRUEBA
conjunción con otros tests serológicos y resultados clínicos para ayudar en
el diagnóstico de Lupus Eritematoso Sistémico (LES) y otras enfermedades
reumáticas o del tejido conectivo.
Está generalmente aceptado que los substratos de líneas celulares son
preferibles a las secciones de órganos ya que estas células de división
rápida tienen niveles más elevados de ciertos antígenos relevantes desde
el punto de vista clínico, incluyendo el centrómero, SS-A(Ro), Scl-70 y
PCNA/Ciclina
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
METODO
: IFI (Ensayo por inmunofluorescencia indirecta) para el screening y la
determinación semicuantitativa de anticuerpos Antinucleares (ANA) en
suero humano
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
Tubo tapa roja o
amarilla
VOLUMEN MINIMO
: 0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES
DE : Temperatura ambiente.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
CONDICIONES DE RECHAZO DE
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
MUESTRAS
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
CONDICIONES
DE
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
ALMACENAMIENTO
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
(uso exclusivo de laboratorio)
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
TIEMPO
ENTREGA : 7 días Hábiles
RESULTADOS
110
ANTICUERPOS ANTI PEROXIDASA TIROIDEA Anti-TPO Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Los antiTPO se encuentran en la mayoría de los casos de tiroiditis de
PRUEBA
Hashimoto, mixedema primario, y enfermedad de Graves Basedow. Se ha
demostrado que el antiTPO aparece en la mayoría de los casos de tiroiditis
postparto y que la presencia de autoanticuerpos al principio del embarazo
estaba asociada a un alto riesgo de hipotiroidismo postparto asintomático.
RANGOS DE REFERENCIA
: Normal : 0 – 12 UI/mL
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la determinación
cuantitativa de los autoanticuerpos IgG antiperoxidasa tiroidea (antiTPO)
en suero.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES
DE :
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRAS
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
TIEMPO
ENTREGA :
RESULTADOS
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
2 días hábiles
111
ANTICUERPOS ANTIPLAQUETARIOS AAP Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Para diagnóstico de Púrpura Trombocitopenia idiopático (PTI) y Púrpura
PRUEBA
Trombocitopénico Autoinmune neonatal
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
METODO
: Platelets Inmmunofixacion fluorescense test ( PFIST)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRAS
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
:
:
2 mL.
Temperatura ambiente.
:
4 horas desde la toma de muestra.
Muestras con hemólisis, lipemia e ictericia invalidan la prueba.
:
15 días hábiles
ANTICUERPOS ANTI TIROGLOBULINA Anti-Tg Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Los anticuerpos antitiroglobulina están asociados a casos de
PRUEBA
hipotiroidismo o hipertiroidismo moderado y se encuentran con
frecuencia en pacientes con otras enfermedades autoinmunitarias, tales
como artritis reumatoide, anemia perniciosa y diabetes tipo I. El anti-Tg se
detecta en el 30-60% de los casos de pacientes con carcinoma tiroideo.
RANGOS DE REFERENCIA
: Normal : 0 – 34 UI/mL
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la determinación
cuantitativa de autoanticuerpos antitiroglobulina de tipo IgG (anti-Tg) en
suero.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES
DE :
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRAS
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
ENTREGA RESULTADOS
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
2 días hábiles
112
ANTICUERPOS ANTI TRANSGLUTAMINASA IgA Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : La presencia de anticuerpos anti-h-tTG IgA puede ser utilizada en
PRUEBA
conjunción con hallazgos clínicos y otras pruebas de laboratorio como
ayuda en el diagnóstico de ciertas enteropatías sensibles al gluten, como la
enfermedad celíaca y la dermatitis herpetiforme.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo 0-30 Ui
METODO
: ELISA (Ensayo por inmuno absorción ligado a enzimas) para la detección
semi cuantitativa de anticuerpos IgA antitransglutaminasa del endomisio
en suero humano
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES
DE :
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRAS
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
TIEMPO
ENTREGA :
RESULTADOS
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
7 días Hábiles
113
ANTIGENO CA-125 (CA-125) Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Las concentraciones de CA 125 en suero son útiles en la monitorización de
PRUEBA
la enfermedad en pacientes con cáncer ovárico epitelial invasivo. Si bien la
obtención de valores de CA 125 en persistente aumento se puede asociar
a enfermedades malignas y a una respuesta pobre a la terapia, los valores
en descenso pueden indicar una respuesta favorable a la terapia.
RANGOS DE REFERENCIA
: Normal : 0 – 35 UI/mL
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la determinación
cuantitativa de CA 125 en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES
DE :
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRAS
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
TIEMPO
ENTREGA :
RESULTADOS
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
1 día hábil
114
ANTIGENO CA 19-9 (CA 19-9) Inmunología
USO PREFERENTE DE LA
: Se trata de un oligosacárido que en el adulto sano están presentes en la
PRUEBA
próstata, glándulas bronquiales y salivares normales. También se
encuentra presente en el meconio, por lo que se le considera como
antígeno oncofetal. Se puede detectar por medio de anticuerpos
monoclonales.
Su interés clínico reside en la monitorización del postoperatorio de cáncer
colorrectal y pancreático y, en general, de carcinomas digestivos. Es menos
sensible que el CEA, pero más específico.
RANGOS DE REFERENCIA
: Normal : < 37 UI/mL
METODO
: Inmunoensayo de Microparticulas Quimioluminiscentes (CMIA), para la
determinación cuantitativa de CA 19-9 en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : No require ayuno
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES DE
:
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRAS
CONDICIONES DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
TIEMPO ENTREGA
RESULTADOS
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2 - 8°C. por un máximo de 7 días, en caso contrario
congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez descongeladas las
muestras deben agitarse suavemente antes de utilizarse. Evitar múltiples
ciclos de congelar/descongelar.
1 día hábil
115
ANTIGENO CARCINO EMBRIONARIO CEA Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: El análisis de CEA puede ser determinante en la monitorización de
pacientes con tumores malignos diagnosticados, en los cuales se observan
concentraciones variables de CEA. Un aumento persistente del CEA
circulante tras el tratamiento es altamente indicativo de la presencia de
metástasis ocultas o enfermedad residual. Un valor de CEA que aumenta
persistentemente puede estar asociado con una afección maligna en
progresión y una mala respuesta al tratamiento. Un valor de CEA en
disminución es generalmente indicativo de un pronóstico favorable y de
una buena respuesta al tratamiento. Los pacientes que tienen
concentraciones bajas de CEA antes del tratamiento pueden mostrar
elevaciones.
RANGOS DE REFERENCIA
: Normal : 0 – 3 ng/mL
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la determinación
cuantitativa del antígeno carcinoembrionario (CEA) en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Sangre (suero)
Sangre (suero)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra.
RECHAZO DE MUESTRAS
Tubo tapa roja o amarilla
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
ENTREGA RESULTADOS
:
:
1 día hábil
116
ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO FRACCION LIBRE (PSA LIBRE) Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: Se utiliza en hombres adultos que presenten valores de PSA total entre 4
ng/ml y 10 ng/ml con clínica negativa. La proporción de PSA libre se puede
utilizar como ayuda para distinguir entre un cáncer de próstata y otra
enfermedad.
El PSA libre SOLO se procesará si el resultado del PSA total se encuentra
entre 4 ng/ml y 10 ng/ml.
RANGOS DE REFERENCIA
: Normal : > 0,19 de razón PSA
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la determinación
cuantitativa del antígeno prostático específico (PSA) libre en suero
humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Sangre (suero)
Sangre (suero)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra.
RECHAZO DE MUESTRAS
Tubo tapa roja o amarilla
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
ENTREGA RESULTADOS
:
:
1 día hábil
117
ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO – TOTAL
(PSA TOTAL) Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: Principalmente se utiliza en la detección del cáncer de próstata utilizado
junto con el tacto rectal en hombres mayores de 50 años. Además como
método auxiliar en el tratamiento de pacientes con cáncer de próstata
RANGOS DE REFERENCIA
: 0 – 4 ng/mL
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la determinación
cuantitativa de PSA total (tanto PSA libre como PSA ligado a alfa-1antiquimotripsina) en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas..
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
:
RECHAZO DE MUESTRAS
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
ENTREGA RESULTADOS
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra.
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
1 día hábil
BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE KOCH CONTENIDO GASTRICO TBC
USO PREFERENTE PRUEBA
: Diagnóstico en pacientes sintomáticos
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
CANTIDAD DE MUESTRA
: 2 muestras seriadas
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
PROCEDIMIENTO
:
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
:
:
:
CONDICIONES DE RECEPCION :
Y RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
Ayuna 12 horas, en lactantes se hará en momentos previo a su ingestión
de leche.
Técnica: Sondeo gástrico con sonda nasal o bucal adecuado y aspiración
con jeringa.
CONTENIDO GASTRICO
Tubo estéril
2-10 ml
Precaución ante derrames.
La muestra debe ser procesada inmediatamente por lo tanto una vez
obtenida, debe ser enviada inmediatamente al Laboratorio.
Muestras se reciben de lunes a viernes en horario hábil.
Todas estas muestras deben venir acompañadas del formulario
"Solicitud de Examen Bacteriológico de la Tuberculosis”, ver anexo Nº 3.
2 días hábiles Baciloscopía
30 a 60 días cultivo de koch
Contaminación de la muestra
118
BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE KOCH EXPECTORACION TBC
USO DE LA PRUEBA
: Diagnóstico en pacientes sintomáticos y control de tratamiento
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
CANTIDAD DE MUESTRAS
: Para diagnóstico en pacientes sintomáticos; dos muestras (una inmediata y
la otra matinal en ayuna).
Para control de tratamiento: una muestra mensual, la primera muestra de
control debe ser enviada al mes de iniciado el tratamiento.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Instruir al paciente que produzca el esputo bronquial de las
profundidades del pecho. “Inspirar profundamente, retener un momento
la respiración y toser fuertemente para tomar la muestra”.
Recalcar al paciente que las muestras deben ser matinales
Informar al paciente que debe depositar dos o tres esputos recogidos,
directamente en el envase, cuidando que no se derrame en las manos, ni
se escurra por las paredes exteriores del envase.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Rotular la base del envase con el nombre completo del paciente y
DE TOMA DE MUESTRAS
procedencia al momento de la entrega.
TIPO DE MUESTRA
: EXPECTORACION
TIPO DE TUBO
: Contenedor negro de boca ancha y cierre hermético. Capacidad 30 a 50
ml
VOLUMEN MINIMO
: 2- 10 ml
CONDICIONES TRANSPORTE
: Transportar envase en caja sellada con nombre, apellidos, tipo de muestra,
procedencia y fecha.
La solicitud de examen debe venir fuera de la caja y NO envolviendo las
muestras.
Proteger de calor excesivo y de luz solar durante traslado.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: No dejar transcurrir más de 7 días entre la recolección y procesamiento de
la muestra, conservándola siempre en refrigerador protegido de la luz.
CONDICIONES DE RECEPCION : Muestras se reciben de lunes a viernes en horario hábil.
Y RECHAZO DE MUESTRA
Todas estas muestras deben venir acompañadas del formulario
"Solicitud de Examen Bacteriológico de la Tuberculosis”, ver anexo Nº 3.
ENTREGA RESULTADOS
: 2 días hábiles Baciloscopía
30 a 60 días cultivo de koch
LIMITACIONES
: Contaminación de la muestra
119
BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE KOCH LIQUIDOS TBC
USO PREFERENTE DE LA : Diagnóstico en pacientes sintomáticos
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
CANTIDAD DE MUESTRA
: La obtención de material esta reservado al personal Médico.
Cantidad y momento de recolección: 1 ml. cuando el Médico tratante crea
conveniente.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
PROCEDIMIENTO
:
TIPO DE MUESTRA
: LCR, LIQUIDO PLEURAL, ASCITICO, ARTICULAR LAVADO BRONCOALVEOLAR
TIPO DE TUBO
: Tubo estéril
VOLUMEN MINIMO
: 1 ml
CONDICIONES
DE : Precaución ante derrames.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: La muestra debe ser procesada inmediatamente por lo tanto una vez
obtenida, debe ser enviada inmediatamente al Laboratorio.
CONDICIONES DE RECEPCION : Muestras se reciben de lunes a viernes en horario hábil.
Y RECHAZO DE MUESTRA
Todas estas muestras deben venir acompañadas del formulario
"Solicitud de Examen Bacteriológico de la Tuberculosis”, ver anexo Nº 3.
TIEMPO
ENTREGA : 2 días hábiles Baciloscopía
RESULTADOS
30 a 60 días cultivo de koch
LIMITACIONES
: Contaminación de la muestra
BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE KOCH ORINA TBC
USO PREFERENTE DE LA : Diagnóstico en pacientes sintomáticos y control de tratamiento
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
CANTIDAD DE MUESTRAS
: Para diagnóstico en pacientes sintomáticos; seis muestras días seguidos
Para control de tratamiento: 3 muestras en días seguidos, en forma
mensual mientras dure el tratamiento.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Debe recogerse la primera orina de la mañana, orina de segundo chorro.
Previo aseo genital con agua.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Entregar frascos de orina estéril rotulados con el nombre completo del
DE TOMA DE MUESTRAS
paciente y procedencia al momento de la entrega.
TIPO DE MUESTRA
: ORINA
TIPO DE TUBO
: Frasco orina estéril con tapa. Capacidad 200 ml
VOLUMEN MINIMO
: 100-200 ml
CONDICIONES
DE : Precaución ante derrames.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: La muestra debe ser procesada inmediatamente por lo tanto una vez
obtenida, debe ser enviada inmediatamente al Laboratorio.
CONDICIONES DE RECEPCION : Muestras se reciben de lunes a viernes en horario hábil.
Y RECHAZO DE MUESTRA
Todas estas muestras deben venir acompañadas del formulario
"Solicitud de Examen Bacteriológico de la Tuberculosis”, ver anexo Nº 3.
TIEMPO
ENTREGA : 2 días hábiles Baciloscopía
RESULTADOS
30 a 60 días cultivo de koch
LIMITACIONES
: Contaminación de la muestra
120
BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE KOCH TEJIDOS (ganglio, biopsia de diferentes tejidos) TBC
USO PREFERENTE DE LA : Diagnóstico en pacientes sintomáticos
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
PROCEDIMIENTO
: Colocar un trozo de muestra en un tubo estéril, con agua destilada. No
mezclar con ningún tipo de preservante, en caso de ser posible pueden
también obtenerse muestras mediante aspiración por jeringas y
transportarlas en forma rápida al laboratorio.
TIPO DE MUESTRA
: TEJIDOS
TIPO DE TUBO
: Tubo estéril
VOLUMEN MINIMO
: 1 ml
CONDICIONES
DE : Precaución ante derrames.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: La muestra debe ser procesada inmediatamente por lo tanto una vez
obtenida, debe ser enviada inmediatamente al Laboratorio.
CONDICIONES DE RECEPCION : Muestras se reciben de lunes a viernes en horario hábil.
Y RECHAZO DE MUESTRA
Todas estas muestras deben venir acompañadas del formulario
"Solicitud de Examen Bacteriológico de la Tuberculosis”, ver anexo Nº 3.
TIEMPO
ENTREGA : 2 días hábiles Baciloscopía
RESULTADOS
30 a 60 días cultivo de koch
LIMITACIONES
: Contaminación de la muestra
121
BETA HCG, HORMONA GONADOTROFINA CORIONICA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: La detección de la β-hCG se utiliza para la confirmación de embarazos,
seguimientos de embarazos anormales (intrauterinos o ectópicos) con
mediciones seriadas cuantitativas de β-hCG. Niveles relativamente bajos
se asocian a embarazos intrauterinos anormales. Niveles elevados de βhCG se encuentran en Mola Hidatiforme y casos de Cario carcinoma.
RANGOS DE REFERENCIA
: Adultos: < 5 mIU/mL.
METODO
: Inmunoensayo de Micropartículas Quimiluminiscentes
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
Ayuno de 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra.
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Suero
Suero
VOLUMEN MINIMO
:
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 4mL para pacientes adultos.
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
Temperatura ambiente
Hasta 4 horas desde la toma de muestra.
CONDICIONES DE RECEPCION :
Y RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
Tubo tapa roja o amarilla
Se reciben las muestras provenientes de servicio urgencia obstétrico,
muestras en que se utiliza como marcador tumoral y descarte de
embarazo antes de un procedimiento o terapia específico.
La muestra será rechazada en los siguientes casos:
- Muestra hemolizada, lipémica o ictérica
- Condiciones de transporte inadecuado
- Diagnóstico rutinario de embarazo
1 día hábil
La hemólisis, lipemia e ictericia invalidan la prueba. Muestras de
pacientes con terapia de Anticuerpos Monoclonales pueden presentar
falsos valores por interferencia con el método. La presencia de Anticuerpos
Heterófilos puede interferir en la determinación.
122
BETA 2 MICROGLOBULINA Inmunología
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
Se produce incremento de concentración sérica de β2 – microglobulina,
debido a un aumento de la actividad del sistema inmune, infecciones o
enfermedades reumáticas, muerte celular o una menor eliminación de los
desechos por daño renal. La concentración sérica de β2 – microglobulina
es por tanto, un marcador sensible de la capacidad de filtración glomerular
de los riñones, sobretodo en niños.
1 – 3 mg/L
Determinación cuantitativa de β2 – microglobulina en suero por Inmuno
nefelometría (BN ProSpec)
Ayuno de 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
Sangre ( Suero)
Sangre ( Plasma con Heparina o EDTA)
Sangre ( Suero)
: Tubo tapa roja o
amarilla
Sangre (Plasma)
: Tubo tapa lila (EDTA)
VOLUMEN MINIMO
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
Temperatura ambiente.
4 horas desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
:
Rechazar muestras turbias y lipémicas
1 día hábil
123
BILIRRUBINA TOTAL Y DIRECTA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Evaluación, clasificación y seguimiento de las ictericias tanto del adulto
como neonatales. La hiperbilirrubinemia se clasifica como conjugada y no
conjugada. La conjugada es hepática, colestásica, cirrosis biliar primaria,
hepatitis, ictericia familiar y la post hepática, por obstrucción biliar por
cálculos, cáncer o malformaciones de la vía biliar. La hiperbilirrubinemia no
conjugada se clasifica en prehepática (estados hemolíticos y hematomas
extensos) y la hepática (síndrome de Gilbert y Crigler-Najjar e ictericia
neonatal).
RANGOS DE REFERENCIA
: Adultos
Bilirrubina total: 0.20- 1. 2 mg/dl.
Bilirrubina directa: 0.1 – 0.5mg/dL
METODO
: Bilirrubina total: Método de sal diazónica.
Bilirrubina directa: Diazo Reacción.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas. Evitar el consumo de alimentos amarillos
(zapallo, zanahoria) tres días antes del examen.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Para la toma de muestra en tubos, evitar el uso prolongado del torniquete
DE TOMA DE MUESTRAS
y la hemólisis de la muestra.
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 4mL para pacientes adultos
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis. Proteger la muestra de la luz.
4 horas desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
:
La muestras hemolizadas y lipémicas serán rechazadas
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
2 horas para pacientes de los servicios de urgencia y dentro del día para
pacientes hospitalizados y ambulatorios.
Medicamentos que alteran el resultado: ácido ascórbico, ácido
acetilsalicílico, clorpromazina, eritromicina entre otros.
124
BORDETELLA PERTUSSIS IgG - IgA Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: La bordetella pertussis pertenece al género de la bordetella, se trata de un
pequeño bacilo cocoide gramnegativo. La bordetella pertussis es la
causante de la tos ferina, una enfermedad infecciosa extendida por todo el
mundo y que se transmite entre las personas mediante infección por
gotitas diminutas. Principalmente afecta a niños en edades comprendidas
entre 0-4 años y en los lactantes presenta un alto grado de mortalidad (60
% de los fallecimientos se producen en el primer año de vida).
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativa
METODO
: ELISA (Ensayo por inmuno absorción ligado a enzimas) para la
determinación cualitativa y semicuantitativa de anticuerpos IgG e IgA en
suero humano
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Sangre (suero)
Sangre (suero)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
RECHAZO DE MUESTRAS
Tubo tapa roja o amarilla
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
ENTREGA RESULTADOS
:
:
1 día hábil
125
BRUCELLA, ANTICUERPOS IgM –IgG Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: El genero Brucella sp., es una infección ocurrida en humanos que
manifiesta con lesiones de piel y mucosas. La enfermedad comienza con
fatiga, insomnio, angina, dolor reumaticos, dolor de cabeza, bronquitis y
gastritis.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
METODO
: ELISA (Ensayo por inmuno absorción ligado a enzimas) para la
determinación cualitativa y semicuantitativa de anticuerpos IgG e IgM de
Brucella en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : No requiere ayunas
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
TIPO DE TUBO
:
Sangre (Suero)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Llevar al laboratorio antes de 4 horas de tomada la muestra
RECHAZO DE MUESTRAS
:
Tubo tapa roja o amarilla
Se rechazan muestras lipémicas o hemolizadas.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
TIEMPO DE RESPUESTA
Sangre (Suero)
:
7 días hábiles
126
CALCIO Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
Hay hipercalcemia debida a tumores malignos e hiperparatiroidismo
primario y hay hipocalcemia por insuficiencia renal, hipoparatiroidismo,
deficiencia de vitamina D e hiperparatiroidismo secundario.
<10 días
7.6 - 10.4 mg/dL
10 días <2 años
9.0 – 11.0 mg/dL
2 y <12 años
8.8 – 10.8 mg/dL
12 años
8.4 – 10.2 mg/dL
o-Cresolftaleína complexona.
Ayuno de al menos 8 horas.
No obtener la muestra durante la hemodiálisis. Evitar el uso prolongado
del torniquete.
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
Suero
Suero
:
Suero
:
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
Tubo tapa roja o amarilla
Tubo tapa verde , lleno hasta la marca
para los servicios de urgencia
2 mL para pacientes pediátricos, 4 mL para pacientes adultos.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
4 horas desde la toma de muestra.
RECEPCION Y RECHAZO DE :
MUESTRA
Recepción las 24 horas del día
La muestra será rechazada en caso de hemólisis o lipemia
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
2 horas para muestras provenientes de servicios de urgencia y dentro del
día para muestras de hospitalizados o ambulatorios.
Fármacos que interfieren: antiácidos alcalinos, andrógenos, sales de calcio,
furosemida, tiazidas, litio, progesterona, PTH, tamoxifeno, vitamina D y A,
aumentan el calcio en sangre. Albuterol, gentamicina, calcitonina,
Carbamazepina, corticosteroides furosemida, estrógenos (pacientes post
menopaúsicas), glucosa, insulina, sales de magnesio, fenitoina, tetraciclina
disminuyen el calcio sérico.
127
CALCIO IONICO Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
:
:
:
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
RECHAZO DE MUESTRA
:
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
:
:
:
Entre el 40 y 50% del calcio total corresponde a calcio iónico, que es la
fracción fisiológicamente activa participando en diferentes procesos como
transmisión del impulso nervioso, proceso de coagulación, cofactor
enzimático y partícipe en la contractilidad muscular. Se puede ver
aumentado en procesos patológicos relacionados con alteraciones de PH,
tumores secretores de PTH, hipertiroidismo, reposo prolongado y
disminuye en hipoparatiroidismo primario, hipernatremia, deficiencia de
vitamina D, hemólisis.
4.36 – 5.2 mg/dl
Potenciometría con electrodo ión selectivo (CCX de Nova biomedical )
El ayuno no es indispensable.
Tomar la muestra evitando el torniquete para prevenir la hemólisis. En
caso contrario el torniquete no se realizará por más de 2 minutos.
Sangre heparinizada
Sangre
:
Jeringa de 1 ml con heparina de litio
Se requiere un volumen mínimo de 0.6 ml de sangre heparinizada y
agitada suavemente, inmediatamente de tomada la muestra.
Mantener la muestra en bolsa con hielo/agua fría con la jeringa
debidamente sellada con tapón de goma adecuado.
Debe ser transportada inmediatamente al laboratorio y ser procesada
antes de 30 minutos o ser conservada hasta 4 hrs. si es mantenida a 4ªC.
La muestra se rechazará en los siguientes casos:
- Condiciones de Tª de transporte no adecuados.
- Muestra coagulada o con burbujas de aire
- Volumen de muestra insuficiente.
Pabellón y servicios críticos en 30 minutos.
Hospitalizados dentro de 2
horas.
Sustancias interferentes: litio e hidroclorotiazida aumentan el calcio iónico
así como déficit de vitamina D, anticonvulsivantes.furosemida y heparina
lo disminuyen.
128
CALCIO URINARIO MUESTRA AISLADA Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Hay hipercalcemia debida a tumores malignos e hiperparatiroidismo
PRUEBA
primario y hay hipocalcemia por insuficiencia renal, hipoparatiroidismo,
deficiencia de vitamina D e hiperparatiroidismo secundario.
RANGOS DE REFERENCIA
: 6.8 – 21.3 mg/dL
METODO
: o-Cresolftaleína complexona
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : En caso que el paciente traiga la orina de su domicilio se le informa que
DE TOMA DE MUESTRAS
ésta debe ser la primera orina de la mañana.
Para el caso de mujeres se sugiere que no cursen con su período menstrual
o leucorrea al momento de recolectar la orina, en caso contrario deben
cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para evitar que la orina se
contamine.
Antes de la recolección de la orina se procede a un aseo con agua y jabón
de la zona que rodea el meato urinario, posteriormente se seca la zona
evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el primer chorro
de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la porción final
también se elimina.
En el caso de los hombres se le indica que retraiga el prepucio para lavar
con agua y jabón la porción distal del pene que rodea el meato urinario,
posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la
zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media
en el recipiente, la porción final también se elimina.
Si el lactante es niña, colocar la bolsa colectora sobre la zona del periné
fijando la parte adhesiva a la piel. Si el lactante es niño, colocar la bolsa
colectora alrededor del pene. Es necesario revisar periódicamente la bolsa
colectora para verificar su correcta posición (podría salirse y perder la
esterilidad). Si antes de media hora no se ha recogido la muestra o la bolsa
colectora se ensucia, hay que sustituirla, ya que la contaminación con
microbiota fecal es un problema bastante frecuente. Se puede colocar el
pañal para asegurar la integridad de la bolsa, revisando la presencia de
orina en la bolsa colectora frecuentemente.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verifique la correcta rotulación de la muestra antes del envío al
DE TOMA DE MUESTRAS
Laboratorio.
TIPO DE MUESTRA
: Orina segundo chorro.
TIPO DE TUBO
: Orina
:
Tubo ensayo estéril o frasco recolector de orina
nuevo
VOLUMEN MINIMO
: 5 mL
CONDICIONES
DE : Temperatura ambiente.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 4 horas desde la toma de muestra.
CONDICIONES DE RECHAZO DE : Las muestras se rechazarán en caso de
MUESTRA
Contenedor reciclado
Traslado inadecuado
TIEMPO
ENTREGA : Dentro del día
RESULTADOS
LIMITACIONES
: Uso de otro tubo u otro contenedor USADO invalida la prueba.
129
CALCIO URINARIO DE 24 HORAS Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Hay hipercalemia debida a tumores malignos e hiperparatiroidismo
PRUEBA
primario y hay hipocalcemia por insuficiencia renal, hipoparatiroidismo,
deficiencia de vitamina D e hiperparatiroidismo secundario.
RANGOS DE REFERENCIA
: 100 – 300 mg/24 horas
METODO
: o-Cresolftaleína complexona
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Para la correcta valoración de los resultados de un análisis efectuado sobre
orina de 24 horas es sumamente importante que la recogida de la orina
sea completa. Durante el período de recolección, el paciente debe beber
líquidos en forma normal a menos que haya recibido otra indicación y no
debe beber alcohol.
Los pasos a seguir son los siguientes:
• Orine a las 7:00 Hrs. de la mañana y elimine esta orina
• Recoger, a partir de ese momento, en un recipiente limpio y seco, toda
la orina que elimine a lo largo del día, la noche siguiente, incluyendo la
primera orina de la mañana siguiente.
• Mantener la orina que se va recolectando refrigerada. Una vez finalizada
la recolección identificar cada uno de los envases. La identificación debe
contener el nombre y los dos apellidos del paciente escritos con letra
legible.
• Transportar la orina a la Unidad de Laboratorio Clínico.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar la correcta rotulación de todos los recipientes antes de enviar la
DE TOMA DE MUESTRAS
muestra al laboratorio. Si el volumen de orina es medido en la Toma de
Muestra, se debe anotar el valor en el formulario de solicitud de examen.
TIPO DE MUESTRA
: Orina de 24 horas.
TIPO DE TUBO
: Orina
:
Recipientes limpios y secos, proporcionados por el
Laboratorio.
VOLUMEN MINIMO
: Toda la orina recolectada en 24 horas o una alícuota de 10 mL.
CONDICIONES
DE : Temperatura ambiente. Guardar la muestra refrigerada hasta que termine
TRANSPORTE
la prueba.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 4 horas desde el término de la recolección de la muestra.
Guardar la muestra refrigerada hasta que termine la prueba.
CONDICIONES DE RECHAZO DE : Las muestra serán rechazadas en los siguientes casos:
MUESTRA
- Muestra mal etiquetada o nombre ilegible
- ordenes de examen o recipientes empapados en orina
TIEMPO
ENTREGA : Dentro del día
RESULTADOS
LIMITACIONES
: El uso de recipientes no adecuados, es decir, no entregados por el
Laboratorio, invalida la prueba por posible contaminación.
130
CARBAMAZEPINA, NIVELES DE Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Droga utilizada como antiepiléptico y para el tratamiento de la neuralgia
PRUEBA
del trigémino, la detección de niveles es utilizada para el control y
monitoreo del tratamiento de pacientes epilépticos.
RANGOS DE REFERENCIA
: Adultos: 4 a 12 µg/ml.
METODO
: Enzimo-inmunoensayo por competición
INSTRUCIONES AL PACIENTE
: Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Tomar la muestra entre 0 y 30 minutos antes de la dosis. Indicar en la
DE TOMA DE MUESTRAS
orden la hora de la última dosis de Carbamazepina o de otros
medicamentos. En intoxicaciones la toma de muestra es independiente del
horario y la dosis.
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
: 2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 4 mL para pacientes adultos.
CONDICIONES
DE : Temperatura ambiente
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Hasta 4 horas desde la toma de muestra.
CONDICIONES DE RECHAZO DE : La muestra será rechazada en caso de hemólisis o lipemia
MUESTRA
TIEMPO
ENTREGA : 1 día hábil
RESULTADOS
LIMITACIONES
: Ingesta de dosis terapéutica previa al examen invalida la prueba.
CHLAMYDIA PNEUMONIAE AC IgM Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Chlamydia pneumoniae, agente infeccioso que presenta una variedad de
PRUEBA
manifestaciones clínicas del tracto respiratorio superior e inferior, como
faringitis, sinusitis, bronquitis aguda y neumonía.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativa
METODO
: ELISA (Ensayo por inmuno absorción ligado a enzimas) para la
determinación cualitativa y semicuantitativa de anticuerpos IgM
específicos para Chlamydia pneumoniae
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
Temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde el término de la recolección de la muestra.
Guardar la muestra refrigerada hasta que termine la prueba.
Las muestras serán rechazadas en caso de lipemia o hemólisis.
CONDICIONES DE RECHAZO DE :
MUESTRA
131
ENTREGA RESULTADOS
CISTICERCOSIS Inmunología
USO PREFERENTE DE LA
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
Dentro del día
:
Sospecha Cistercosis (infección Tenia spp.)
:
:
:
:
Negativo
ELISA
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre y LCR.
:
:
Suero y LCR (Neurocisticercosis)
Suero
: Tubo tapa roja o amarilla
LCR
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
Tubo Esteril
:
:
Suero : 0,5 mL
LCR : 0,2 mL
Temperatura ambiente.
:
:
4 horas desde la toma de muestra
7 días hábiles
:
Con hemólisis, lipemia e ictericia invalidan la prueba.
CITOMEGALOVIRUS IgG – IgM Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : La infección por CMV es generalmente leve y asintomática; sin embargo,
PRUEBA
en las mujeres embarazadas, en los recién nacidos y en los individuos
inmunodeficientes, esta infección puede desarrollar una enfermedad de
importancia clínica.
RANGOS DE REFERENCIA
: IgM: 0 – 0,4 index
IgG: 0 – 15 UA/ml
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la determinación
semicuantitativa de los anticuerpos IgG e IgM frente al citomegalovirus en
suero en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o
amarilla
VOLUMEN MINIMO
: 0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES
DE : Temperatura ambiente.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: 4 horas desde la toma de muestra
RECHAZO DE MUESTRA
: La muestra será rechazada en caso de lipemia y hemólisis.
TIEMPO
ENTREGA : 1 día hábil
RESULTADOS
132
COLESTEROL EN LIQUIDOS BIOLOGICOS Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA
: El colesterol en los líquidos biológicos tiene una presencia constante, como
PRUEBA
lo son también las proteínas, la glucosa, la deshidrogenasa láctica; éstas
últimas han servido para la diferenciación entre exudado y transudado.
Esta prueba diagnóstica probó ser superior a las tradicionales,
demostrando ser más sensible y específica y con una precisión general
mayor.
RANGOS DE REFERENCIA
: Exudado > 60 - Transudado < 60 mg/dL
METODO
: CHOD-PAP
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : No requiere ayuno
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar la hemólisis de la muestra.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Líquido biológico
TIPO DE TUBO
: Tubo estéril.
VOLUMEN MINIMO
: 4 mL para pacientes adultos adulto y pediátrico.
CONDICIONES DE
: Los tubos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
TRANSPORTE
contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: 1 hora desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
: Muestras coaguladas
TIEMPO ENTREGA
: 1 días hábil
RESULTADOS
LIMITACIONES
: La hemólisis invalida la prueba.
COLESTEROL TOTAL Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
:
:
Medición del riesgo de ateroesclerosis, hipercolesterolemia, enfermedad
coronaria entre otros. Se asocia a exámenes como Colesterol HDL,
Colesterol LDL y Triglicéridos.
≤ 200 mg/dL (adultos)
CHOD-PAP.
Ayuno de 12 a 14 horas antes de la prueba. No ingerir alcohol 24 horas
antes de la prueba. Consumir una dieta estable en colesterol tres
semanas antes de la prueba. La cena anterior a la prueba debe ser con
bajo contenido graso y no tener alimentos ricos en colesterol.
Evitar la hemólisis de la muestra.
Suero
Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 4 mL para pacientes adultos.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
4 horas desde la toma de muestra.
Muestras lipémicas, ictéricas y muy hemolizadas.
Dentro del día.
133
COLESTEROL- HDL Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
INSTRUCCIONES
PERSONAL
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Suero
Suero
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
:
:
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 4 mL para pacientes adultos.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
4 horas desde la toma de muestra.
La muestra será rechazada en caso de hemólisis, lipemia o muy ictérica.
Dentro del día
AL :
Medición del riesgo de
ateroesclerosis e hipercolesterolemia,
enfermedad coronaria entre otros. Se asocia a exámenes como
Colesterol total, Colesterol LDL y Triglicéridos.
Hombres : > 35 mg/dL (adultos)
Mujeres : > 40 mg/dL (adultos)
Detergente acelerador selectivo de colesterol oxidasa
Ayuno de 12 a 14 horas antes de la prueba. No ingerir alcohol 24 horas
antes de la prueba. Consumir una dieta estable en colesterol tres
semanas antes de la prueba. La cena anterior a la prueba debe ser con
bajo contenido graso y no contener alimentos ricos en colesterol.
Evitar la hemólisis de la muestra.
:
Tubo tapa roja o amarilla
134
COLINESTERASA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
:
La colinesterasa es una hidrolasa que actúa descomponiendo la
acetilcolina que es utilizada por las células nerviosas para transmitir
estímulos nerviosos. Su determinación se realiza para evaluar la
exposición a insecticidas de órgano fosfatos y riesgos de su toxicidad
como también en ciertas enfermedades hepáticas.
< 40 años 4.3 – 11.2 KU/L
> 40 años 5.3 – 12.9 KU/L
Reducción del hexacianoferrato
No es necesario el ayuno
Tomar muestra venosa evitando la hemólisis.
:
:
Suero
Suero
:
Suero
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
:
:
Tubo tapa roja o amarilla
Tubo tapa verde para servicios de
urgencia
2 ml para pacientes pediátricos y 2-4 ml para paciente adulto.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor a prueba de derrames y
a temperatura ambiente, no agitar para evitar la hemólisis.
4 horas desde la toma de muestra.
La muestra será rechazada en caso de hemólisis.
Dentro del día
135
COMPLEMENTO C3 – C4 Inmunología
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
El sistema del complemento es una parte de la respuesta inmunológica
inespecífica al antígeno. La activación del complemento ocasiona un
gasto en los componentes C3 y C4, de tal manera que de una disminución
en su concentración se pueden sacar conclusiones diagnósticas.
Concentraciones bajas de C3 y C4 en el suero, se observan sobre todo en
Lupus eritematoso sistémico (LES), en algunas formas de
glomérulonefritis membranoproliferativa y en enfermedades por
inmunocomplejos (enfermedad del suero). Los dos componentes del
complemento reaccionan como proteínas de fase aguda, por lo cual,
pueden presentar concentraciones elevadas en el suero en
enfermedades infecciosas.
C3 Hombres
99 - 214 mg/mL
Mujeres y niños:
86 – 206 mg/mL
C4 : Hombres
11 – 51 mg/mL
Mujeres y niños
8 – 55 mg/mL
Determinación cuantitativa de los factores de complemento (C3/C3c y
C4/C4c) en suero por Inmuno nefelometría (BN ProSpec)
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
Sangre ( Suero)
Sangre ( Plasma con Heparina o EDTA)
Sangre ( Suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
Sangre (Plasma)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
:
:
:
:
:
Tubo tapa lila (EDTA)
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
4 horas desde la toma de muestra.
La muestra será rechazada en caso de hemólisis, lipemia o muy ictérica.
1 día hábil
136
COPROCULTIVO Microbiologia
USO DE LA PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES
AL
PERSONAL DE TOMA DE
MUESTRAS
:
:
:
:
:
Diagnóstico etiológico de diarrea aguda bacteriana
Sin desarrollo bacteriano
Cultivo bacteriano en placas con medio de cultivo
La muestra de deposición debe tomarse al comienzo del proceso
agudo
Debe estar sin tratamiento antibiótico previo
Idealmente deposición
recién
emitida, incluyendo productos
patológicos (mucus, pus, sangre) en un frasco limpio.
Para pesquisa de toxina A de C. difficile se debe obtener
aproximadamente 5 cc de deposición en un frasco limpio (sin fijador) que
proporciona el laboratorio.
En caso de hospitalización por diarrea, se tomará sólo una muestra al
ingreso del paciente, ya que se ha demostrado que más de una muestra
no aumenta el rendimiento en forma significativa, pero sí aumenta el
costo.
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
:
:
ENTREGA RESULTADOS
:
Se solicita indicar en la orden presencia de sangre en deposiciones.
DEPOSICION
Tubo con torula en medio de transporte Cary Blair
Frasco estéril en caso de muestra obtenida por sonda rectal
--Transportar a temperatura ambiente.
Inmediato al laboratorio.
Deposición formada
Tórula sin medio de transporte
3 días hábiles
137
CORTISOL Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
INSTRUCCIONES
PERSONAL DE TOMA
MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Suero
Suero
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
:
:
:
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
2 ml para pacientes pediátricos, 4 ml para adultos.
Temperatura ambiente.
2 horas desde la toma de muestra.
Las muestras serán rechazadas en caso de hemólisis, lipemia e ictericia.
También será rechazada una muestra tomada después de las 9 AM.
1 día hábil
Las anfetaminas, cortisona, anticonceptivos orales, etanol, nicotina,
vasopresina, estrógenos incrementan los niveles de cortisol, lo
disminuyen la metirapona, levodopa, dexametasona, carbonato de litio.
Los niveles de cortisol no se modifican con la edad, otras situaciones que
pueden aumentar los niveles de cortisol son la ansiedad grave,
depresión endógena, anorexia nerviosa, alcoholismo, inanición e
insuficiencia renal crónica.
AL :
DE
La medición de Cortisol se utiliza para monitorear directamente la
función adrenocortical e indirectamente la hipo o hiperfunción de la
pituitaria. Niveles elevados de Cortisol son asociados con adenoma
suprarrenal, Enfermedad de Cushing, tumor de la pituitaria. Niveles
disminuidos de Cortisol puede indicar hipofunción a adrenal o un defecto
en la vía metabólica
Antes de las 10 AM: 3.7 ---19.4 ug/dl
Después de las 5 PM:2.9----17.3 ug/dl
Inmunoensayo de de micropartículas /quimioluminiscentes Architect
8200
Ayuno de al menos 8 horas. Por el ritmo circadiano del Cortisol debe
respetarse el horario de toma de muestra (antes de las 9 am).
Evitar hemólisis de la muestra
:
Tubo tapa roja o amarilla
138
CORTISOL, ORINA 24 HORAS Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
:
:
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
:
TIEMPO
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
ENTREGA :
Evaluación de desórdenes adrenocorticales.
ADULTOS: 4.3 - 176 ug./24 hrs.
Imnunoensayo de micropartículas quimioluminiscentes. Architect. 8200
Recolección de orina de 24 hrs sin preservantes. (Ver prueba de
proteinuria de 24 horas).
Si la muestra es llevada a Toma de Muestra y rotulada por el paciente,
asegurarse que correspondan los datos del paciente en el rótulo.
Orina de 24 horas.
Orina
:
Contenedor Esteril
Todo el volumen recolectado para orinas de 24 horas o una alícuota de
10 mL.
Los frascos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
contenedor a temperatura ambiente.
No usar correo neumático para transportar alícuotas en tubos de vidrio.
2 horas desde la toma de muestra.
Las muestras serán rechazadas en los siguientes casos.
Tubo o frasco mal rotulado o con nombre ilegible.
Tubo o frasco transportado en condiciones inadecuadas.
En caso de enviarse una alícuota debe consignarse el volumen en 24 hrs.
2 días hábiles
En pacientes que toman anticonceptivos es posible observar valores
anormalmente elevados. La prednisona y prednisolona interfieren en el
ensayo.
139
CREATINKINASA TOTAL (CK TOTAL) Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : La creatinkinasa en una enzima que se localiza en el tejido muscular y
PRUEBA
cerebral y refleja el catabolismo tisular debido a traumatismo celular.
Esta prueba se realiza para la detección de lesión miocárdica y
esquelética o del sistema nervioso central.
RANGOS DE REFERENCIA
: Hombres 30 ---200 U/L
Mujeres: 29 ---168 U/L
Niños:
0 ---24 U/L
METODO
: NAC activado
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas. No ingerir alcohol 24 horas antes de la
prueba. El ejercicio físico prolongado aumenta el valor de la CK total.
INSTRUCCIONES
AL : Evitar la hemólisis de la muestra.
PERSONAL DE TOMA DE
MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
Suero
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
RECHAZO DE MUESTRA
:
TIEMPO
ENTREGA :
RESULTADOS
:
Tubo tapa verde para los servicios
de urgencia
2 mL para pacientes pediátricos, 4 ml para adultos.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
1 horas desde la toma de muestra.
Las muestras serán rechazadas en caso de hemólisis y la lipemia
2 horas para pacientes de servicios de urgencia. Dentro del día para
pacientes hospitalizados.
140
CREATINKINASA MB (CK MB) Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : La creatinkinasa en una enzima que se localiza en el tejido muscular y
PRUEBA
cerebral y refleja el catabolismo tisular debido a traumatismo celular.
Esta prueba se realiza para la detección de lesión miocárdica y
esquelética o al sistema nervioso central. La fracción MB se encuentra
principalmente en el músculo cardiaco, pero también, en menor
cantidad, en la lengua, diafragma y músculo esquelético. La prueba por
lo general se repite a intervalos de 8 horas para evaluar la evolución de
la lesión.
RANGOS DE REFERENCIA
: < 24 mg/dl.
METODO
: Cinético de isoenzimas. EQUIPO ARCHITECT. 8200
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas antes de la toma de muestra. No ingerir alcohol 24
horas antes de la prueba.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar la hemólisis de la muestra. Indicar, en la orden de examen si la
DE TOMA DE MUESTRAS
condición de ayuno no se ha cumplido.
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
Suero
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
RECHAZO DE MUESTRA
:
TIEMPO
ENTREGA :
RESULTADOS
:
Tubo tapa verde para los servicios de
urgencia
2 mL para pacientes pediátricos, 4mL para pacientes adultos.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
1 hora desde la toma de muestra, como máximo
Las muestras serán rechazadas en caso de hemólisis y la lipemia
2 horas para pacientes de servicios de urgencia. Dentro del día para
pacientes hospitalizados.
141
CREATININA EN SUERO Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
INSTRUCCIONES
PERSONAL DE TOMA
MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
AL :
DE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
RECHAZO DE MUESTRA
:
TIEMPO
ENTREGA :
RESULTADOS
Es un indicador específico de función renal, que muestra el equilibrio
entre la formación y la excreción de creatinina. Los valores son un 20 a
40% mayores en las últimas horas de la tarde que en la mañana. La
Creatinina se eleva en daño renal, en necrosis músculo-esquelética,
trauma, distrofia muscular progresiva, esclerosis lateral amiotrófica,
amiotonía, congestiva, dermatomiosis, miastenia gravis, ayuno
prolongado y acidosis diabética.
Hombres: 0.70 -1.3 mg/dL (adultos)
Mujeres: 0.6---1.1mg/dL (adultos)
Niños : 0.3----0.7 mg/dl
Jaffé cinético.
Ayuno de al menos 8 horas. Evitar el ejercicio 8 horas antes y la ingesta
de carnes rojas 24 horas antes de la prueba.
No obtener la muestra durante la hemodiálisis. Evitar la hemólisis de la
muestra.
Suero
Suero
:
Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
Tubo tapa verde para los servicios de
urgencia
2 mL para pacientes pediátricos, 4 ml para adultos
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
1 hora desde la toma de muestra
Las muestras serán rechazadas en caso de hemólisis y la lipemia
2 horas para pacientes de servicios de urgencia. Dentro del día para
pacientes hospitalizados.
142
CREATININA URINARIA MUESTRA AISLADA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Es un indicador específico de función renal, que muestra el equilibrio
entre la formación y la excreción de creatinina. Los valores son un 20 a
40% mayores en las últimas horas de la tarde que en la mañana. La
Creatinina se eleva en daño renal, en necrosis músculo-esquelética,
trauma, distrofia muscular progresiva, esclerosis lateral amiotrófica,
amiotonía, congestiva, dermatomiosis, miastenia gravis, ayuno
prolongado y acidosis diabética.
RANGOS DE REFERENCIA
: 90 – 300 mg/dl.
METODO
: Jaffé cinetico, EQUIPO ARCHITEC 8200
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : En caso de adultos ver instructivo para paciente, página 39.
Si el lactante es niña, colocar la bolsa colectora sobre la zona del periné
fijando la parte adhesiva a la piel. Si el lactante es niño, colocar la bolsa
colectora alrededor del pene. Es necesario revisar periódicamente la
bolsa colectora para verificar su correcta posición (podría salirse y
perder la esterilidad). Si antes de media hora no se ha recogido la
muestra o la bolsa colectora se ensucia, hay que sustituirla, ya que la
contaminación con microbiota fecal es un problema bastante frecuente.
Se puede colocar el pañal para asegurar la integridad de la bolsa,
revisando la presencia de orina en la bolsa colectora frecuentemente.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verifique la correcta rotulación de la muestra antes del envío al
DE TOMA DE MUESTRAS
Laboratorio.
TIPO DE MUESTRA
: Orina de segundo chorro.
TIPO DE TUBO
: Orina
: Tubo o frasco de orina proporcionado por el laboratorio,
frasco limpio, botellas limpias o bolsa colectora
(lactantes sin control de esfínter).
VOLUMEN MINIMO
: 10 mL.
CONDICIONES
DE : Los tubos, frascos y/o botellas, se deben transportar tapados, en
TRANSPORTE
posición vertical, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames
y a temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 2 horas desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
: Las muestras serán rechazadas en las siguientes condiciones.
Tubo o frasco de orina mal rotulado o con nombre ilegible
Tubo o frasco no transportado en condiciones adecuadas.
Muestra con evidente signo de contaminación.
TIEMPO
ENTREGA : Dentro del día en horario hábil
RESULTADOS
LIMITACIONES
: Medicamentos que alteran el resultado: ácido ascórbico, barbitúricos
entre otros. Otros interferentes son bilirrubina, hemoglobina, lípidos,
proteinas y glucosa elevadas.
143
CREATININA CLEARENCE CORREGIDO DE Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Es un indicador muy específico de la función renal que indica el
equilibrio existente entre la formación y excreción de creatinina.
RANGOS DE REFERENCIA
: 80-120 mLmin/1.73
METODO
: Se utilizan muestras de sangre y orina de 24 horas para determinar la
velocidad a la cual el riñón depura la creatinina de la sangre (cantidad de
sangre depurada en 1 minuto). El valor obtenido mediante una fórmula
matemática, se corrige de acuerdo a un estándar de superficie corporal.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Evitar el ejercicio vigoroso 8 horas antes de la prueba. Ayuno de 8 horas
antes de la recolección de la muestra de sangre.
Para la correcta valoración de los resultados de un análisis efectuado
sobre orina de 24 horas es sumamente importante que la recogida de la
orina sea completa, ver instructivo para recolección orina 24 horas,
página Nº 39)
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
:
:
TIEMPO
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
ENTREGA :
Verificar la correcta rotulación de todos los envases antes del envío al
Laboratorio. Agregar los datos de peso y talla del paciente a la solicitud
de orden de examen.
- Orina de 24 horas o una alícuota de 10 mL.
- Sangre (Suero)
Orina
: Recipientes limpios y secos para la muestra
orina
Suero
: Tubo tapa roja o amarilla
Orina: Toda la orina de 24 horas.
Sangre/ 2 mL para pacientes pediátricos y 4 mL para pacientes adultos.
Temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde el término de la recolección de la muestra.
Las muestras serán rechazadas en las siguientes casos.
- Tubo mal rotulado o con nombre ilegible
- Tubo o frasco no transportado en condiciones adecuadas
- Muestra bemolizada (Suero)
- Recolección inadecuada de orina de 24 hrs.
- Falta de datos del paciente como peso, talla y diuresis correcta de 24
hrs.
Dentro del día
La falta de inclusión de toda la orina de 24 horas proporciona resultados
errados.
144
CUERPOS CETÓNICOS EN SANGRE Y ORINA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Control de la diabetes y de la cetoacidósis producida por la diabetes.
RANGOS DE REFERENCIA
: Sangre: Negativo.
Orina: Negativo.
METODO
: Determinación físico-química.
EQUIPO URISYS 2400
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Sangre: Ayuno de al menos 8 horas.
Orina: En caso que el paciente traiga la orina de su domicilio se le
informa que ésta debe ser la primera orina de la mañana.
Para el caso de mujeres se sugiere que no cursen con su período
menstrual o leucorrea al momento de recolectar la orina, en caso
contrario deben cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para
evitar que la orina se contamine.
Si el paciente es adulto ver instructivo para muestra orina, página 39)
Si el lactante es niña, colocar la bolsa colectora sobre la zona del periné
fijando la parte adhesiva a la piel. Si el lactante es niño, colocar la bolsa
colectora alrededor del pene. Es necesario revisar periódicamente la
bolsa colectora para verificar su correcta posición (podría salirse y
perder la esterilidad). Si antes de media hora no se ha recogido la
muestra o la bolsa colectora se ensucia, hay que sustituirla, ya que la
contaminación con microbiota fecal es un problema bastante frecuente.
Se puede colocar el pañal para asegurar la integridad de la bolsa,
revisando la presencia de orina en la bolsa colectora frecuentemente.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verifique la correcta rotulación de la muestra antes del envío al
DE TOMA DE MUESTRAS
laboratorio.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (Suero) u orina segundo chorro según corresponda.
TIPO DE TUBO
: Orina
: Tubo o frasco de orina proporcionado por el
Laboratorio, frasco limpio, botellas limpias o
bolsa colectora (lactantes sin control de esfínter).
Suero
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
Sangre: Pediatría: 2 mL, Adultos: 2 a 4 ml
Orina: 10 mL.
Los tubos, frascos y/o botellas, se deben transportar tapados, en
posición vertical, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames
y a temperatura ambiente.
2 horas.
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
:
Las muestras seran rechazadas en caso de hemólisis y lipemia.
Dentro del día.
145
LIMITACIONES
:
CULTIVO CORRIENTE Microbiología
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES
AL
PERSONAL DE TOMA DE
MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
:
:
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
ENTREGA RESULTADOS
:
:
La hemólisis y la lipemia invalidan la técnica.
Diagnóstico de infección.
Confirmar la etiología con fines epidemiológicos.
Necesidad de orientar tratamiento antibiótico.
Sin desarrollo bacteriano
Cultivo bacteriano en placas con medio de cultivo
Según tipo de muestra, ver instrucciones en páginas 60 a 78.
Agua diálisis
Bilis
Contenido gástrico
Líquidos
Punta catéter
Tejidos
Aspirado nasofaríngeo
Lavado bronquiolveolar
Expectoración
:
Secreciones
:
Tubo estéril
Tubo de aspirado
Caja baciloscopía
Tórula
1 ml
Transportar tapados, en posición vertical, dentro de un contenedor
sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente.
Inmediato al laboratorio.
Ver tiempos de respuesta de bacteriología en página 12.
146
DENSIDAD URINARIA Orinas
USO PREFERENTE DE
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
LA :
:
:
INSTRUCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
:
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO
RESULTADOS
:
:
:
:
ENTREGA :
Se utiliza para evaluar equilibrio hidrico y la concentración de orina en el
cuerpo.
1.002-1.028
Físico-Químico
EQUIPO. URISYS 2400 o DIRUI H 500
Mantener una dieta balanceada, respetar alguna otra indicación medica.
Seguir indicaciones para recolección de muestra de orina aislada
Orina aislada.
Orina
: Tubo o frasco de orina proporcionado por el Laboratorio,
frasco limpio, botellas limpias o bolsa colectora
(lactantes sin control de esfínter).
Orina: 10 mL.
Los tubos o frascos se deben traer tapados rotulados, en posición
vertical, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a
temperatura ambiente.
2 horas.
Las muestras serán rechazadas en los siguientes casos..
Tubos o frascos mal rotulados o con nombre ilegible
Tubos o frascos transportados en condiciones inadecuadas.
Dentro del día
147
DHEA-S (SULFATO DE DESHIDROEPIANDROSTERONA) Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : El sulfato de deshidroepiandrosterona
(DHEA-S) es el andrógeno
PRUEBA
adrenal más común y actúa como neuroesteroide producido por la
corteza adrenal.
DHEA-S es un excelente indicador de la producción de andrógenos
adrenales. Las concentraciones de DHEA-S disminuyen con la edad y
sirven como factor pronostico de enfermedades graves y de la evolución
de cáncer de mama. Se encuentran niveles elevados en pacientes con
ovario poliquístico y en pacientes con tumores testiculares.
RANGOS DE REFERENCIA
: Mujeres edad
rango ug/dl
11 – 14
8.6 – 169.0
1 5 – 19
6 1. 2 – 493.6
2 0 – 24
134.2 – 407.4
2 5 – 34
9 5. 8 – 511.7
3 5 – 44
7 4. 8 – 410.2
4 5 – 54
5 6. 2 – 282.9
55 – 64
29.7 – 182.2
65 – 70
33.6 – 78.9
Hombres edad
rango ug/dl
11 – 14
16.6 – 242.7
1 5 – 19
45.1 – 385.0
2 0 – 24
283.4 – 539.3
2 5 – 34
167.9 – 591.9
3 5 – 44
139.7 – 484.4
4 5 – 54
136.2 – 447.6
55 – 64
48.6 – 361.8
65 – 70
228.5 – 283.6
Niños edad
rango ug/dl
Menos de 1 semana
24.6 - 302.8
1 a 4 semanas
8.5 – 317.3
1 a 12 meses
31.6 – 214.1
1 a 4 años
32.7 – 276.0
5 a 10 años
24.4 – 209.7
METODO
: Inmunoensayo de micropartículas quimioluminiscentes
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar la hemólisis de la muestra.
TIPO DE MUESTRA
:
Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
: 2 mL. a 4 mL
CONDICIONES TRANSPORTE
: Temperatura ambiente
TIEMPO DE TRANSPORTE
: 2 horas desde la toma de muestra.
148
RECHAZO DE MUESTRA
:
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
DIGOXINA, NIVELES DE Inmunología
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
Hemólisis, lipemia o muy ictérica.
Falta de datos de paciente como edad, sexo y diagnóstico
5 días hábiles
La presencia de anticuerpos heterófilos y factor reumatoideo en la
muestra puede producir interferencia con el análisis de la muestra
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
La digoxina es un potente glucósido cardíaco, ampliamente prescrito para
el tratamiento de pacientes afectados de insuficiencia cardíaca
congestiva, así como de pacientes con ciertos tipos de arritmias
cardíacas. La intoxicación con digoxina es un problema clínico grave y
frecuente. En parte, se debe al hecho de que los glucósidos cardíacos
tienen un estrecho margen terapéutico (una diferencia muy pequeña
entre las concentraciones terapéuticas y las tóxicas en los tejidos). Unido
al estrecho margen terapéutico, hay una marcada variabilidad en la
respuesta del paciente a la misma dosis del fármaco, haciendo, a
menudo, que sean impredecibles las concentraciones séricas del
fármaco.
0,8 – 2,0 ng/mL
Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la determinación
cuantitativa de la digoxina, un fármaco cardiovascular, en suero humano.
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
:
:
Sangre (suero)
Sangre (suero)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO
RESULTADOS
:
DE :
:
:
ENTREGA :
:
Tubo tapa roja o amarilla
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Antes de 2 horas de tomada la muestra.
La muestra serán rechazada en caso de muestra con hemólisis, lipemia o
muy ictérica.
Dentro del día si la muestra se ha recibido antes de las 15.00 hrs
149
DIMERO-D Coagulación
USO PREFERENTE DE LA
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES
AL
PACIENTE
INSTRUCCIONES
AL
PERSONAL DE TOMA DE
MUESTRAS
La prueba
permite realizar evaluaciones de pacientes en los que se
:
sospecha la existencia de coagulación intravascular diseminada o
episodios tromboembólicos, incluida la embolia pulmonar (EP) y
trombosis venosa profunda (TVP).
: y niños: menor de 600 ng/ml.
Adultos
Fluoroinmunoanálisis
:
:
No requiere
ayuno.
La punción
debe ser atraumática, evitando la formación de
:
hematomas, ligadura prolongada y la hemólisis. Se debe evitar la
aspiración de burbujas de aire y la contaminación con líquido tisular.
Si en la toma de muestra un paciente necesita más de un tubo, usar en
2º o 3º lugar el tubo para las pruebas de coagulación.
Si la toma de muestra es única, desechar la primera porción.
Si la extracción se efectúa a través de un catéter, descartar los primeros
20 mL de sangre antes de vaciar al tubo. Se debe realizar una inversión
completa y suave del tubo 10 veces, para mezclar adecuadamente la
sangre y el anticoagulante.
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
: entera o plasma venoso recolectado con K2 EDTA
Sangre
Tubo: tapa lila (anticoagulante K2
EDTA)
2 mL:o según la cantidad que indique el tubo (llenar hasta la marca).
Los tubos
se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
:
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente o en condiciones de refrigeración y
evite las temperaturas extremas.
:
Inmediato
o dentro de 24 horas.
:
Hemólisis,
tiempos de transportes mayores a 24 horas
:
Pabellón:
30 minutos, 2 horas para pacientes hospitalizados. Pacientes
ambulatorios: 24 horas desde su llegada al laboratorio.
Las muestras
hemolizadas y con indicios de coágulo invalidan la prueba.
:
No procesar muestras que no se han separado y congelado a -20 º C
150
dentro de 24 horas.
No procesar muestras recolectadas con otro anticoagulante.
Las muestras refrigeradas y plasmas congelados deben alcanzar la
temperatura ambiente antes de procesar.
ELECTROFORESIS DE PROTEINAS SERICAS Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Neoplasia de Linfocitos B: Mieloma múltiple, Macroglobulinemia de
PRUEBA
Waldestrom, desnutrición, síndrome nefrótico.
RANGOS DE REFERENCIA
: ALBUMINA 3.63 - 4.91 g/dL
ALFA1
0.11 - 0.35 g/dL
ALFA2
0.65 - 1.17 g/dL
BETA
0.74 - 1.26 g/dL
GAMMA
0.58 - 1.74 g/dL
METODO
: Método Helena Laboratorios para la separación y cuantificación de
proteínas por electroforesis en acetato de celulosa. (TITAN III)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 12 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
:
Sangre
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRAS
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
:
:
500 µl de Suero
Temperatura ambiente.
:
4 horas desde la toma de muestra.
Muestras con lipemia e ictericia
7 días hábiles
:
:
Tubo tapa
amarilla
roja
o
ELECTROFORESIS DE PROTEINAS ORINA Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Neoplasia de Linfocitos B: Mieloma múltiple, Macroglobulinemia de
PRUEBA
Waldestrom, desnutrición, síndrome nefrótico.
RANGOS DE REFERENCIA
: Presencia o Ausencia de componente proteico monoclonal.
METODO
: Método Helena Laboratorios para la separación y cuantificación de
proteínas por electroforesis en acetato de celulosa. (TITAN III)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Instrucciones de recolección de orina 24 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar Diuresis (volumen total de orina en 24 horas)
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Orina de 24 horas
TIPO DE TUBO
: Envase recolector de orina 24 horas.
VOLUMEN MINIMO
: 200 ml de orina (tomados de la orina 24 horas).
CONDICIONES
DE : Temperatura ambiente.
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
: 4 horas desde la toma de muestra, (una vez completas las 24 horas de
151
TIEMPO
RESULTADOS
LIMITACIONES
ENTREGA :
:
recolección)
7 días hábiles
No puede ser orina parcial.
ELECTROLITOS PLASMATICOS Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Alteraciones electrolíticas, estudio de hipertensión.
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
: Na: 136– 145 meq/L (adultos)
K 3.4 – 4.7 meq/L (adultos)
C l: 98 – 107meq/L (adultos)
METODO
: Potenciometría indirecta
EQUIPO ARCHITECT 8200 y ARCHITECT 8000
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : No es necesario el ayuno.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar la hemólisis de la muestra. No obtener la muestra durante la
DE TOMA DE MUESTRAS
hemodiálisis.
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
Suero
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO
DE MUESTRA
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
:
Tubo tapa verde lleno hasta la marca
para los servicios de urgencia.
Pediatría: 2 mL
Adultos: 2 a 4 mL
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
Enviar al laboratorio antes de 1 hora de tomada la muestra.
Las muestras seran rechazadas en caso de hemólisis
Pabellón: 30 minutos desde su llegada al laboratorio. Otros servicios
clínicos 2 horas. Pacientes ambulatorios durante el día.
Fármacos que interfieren:
↑ Na: ACTH, esteroides anabólicos, andrógenos, clonidina,
corticosteroides, estrógenos, metildopa, anticonceptivos orales,
fenilbutazona.
↓ Na: Aminoglicósidos, anfotericina B, inhibidores de la ECA, captopril,
carbamazepina, clorpropamida, cisplatino, furosemida, tiazidas,
espironolactona, fluoxetina, heparina, indometacina, oxitocina,
vasopresina, antidepresivos tricíclicos.
↑ K: Inhibidores de la ECA, ciclofosfamida, vincristina, ciclosporina,
epinefrina, heparina, litio, manitol, antiinflamatorios no esteroidales,
espironolactona, tetraciclina.
↓K: Salbutamol, albuterol, aminoglicosídos, amfotericina, cisplatino,
152
corticosteroides, furosemida, tiazidas, EDTA, glucosa, insulina, levodopa,
penicilina G.
↑ Cl: Andrógenos, estrógenos, metildopa, fenilbutazona, tiazidas.
↓ Cl: Bicarbonatos, corticotropina, furosemida, manitol, tiazidas,
teofilina.
ELECTROLITOS URINARIOS Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
Evaluación de la función renal y en general, trastornos del equilibrio
hidroelectrolítico.
Na : 40 -220 mEq/24 horas (adultos)
63-177 mEq/24 horas 10-14 años masculino)
41 -115 mEq/24 horas (< 10 años masculino)
20 - 69 mEq/24 horas (< 10 años femenino)
48 -168 mEq/24 horas (10-14 años femenino)
K : 25- 125 mEq/24 horas (adultos)
Cl: 110-250 mEq/24 horas (adultos)
Potenciometría indirecta.
Para la correcta valoración de los resultados de un análisis efectuado sobre
orina de 24 horas es sumamente importante que la recogida de la orina
sea completa.
Durante el período de recolección, el paciente debe beber líquidos en
forma normal a menos que haya recibido otra indicación y no debe beber
alcohol.
Los pasos a seguir son los siguientes:
• Orine a las 7:00 Hrs. de la mañana y elimine esta orina.
• Recoger, a partir de ese momento, en un recipiente limpio y seco, toda
la orina que elimine a lo largo del día, la noche siguiente, incluyendo la
primera orina de la mañana siguiente.
• Mantener la orina que se va recolectando refrigerada. Una vez finalizada
la recolección identificar cada uno de los envases. La identificación debe
contener el nombre y los dos apellidos del paciente escritos con letra
legible.
• Transportar la orina a la Unidad de Laboratorio Clínico.
Verificar la correcta rotulación de todos los envases antes del envío al
Laboratorio.
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Orina de 24 horas.
Orina
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
Tubo o frasco de orina proporcionado por el
Laboratorio, frasco limpio, botellas limpias o bolsa
colectora (lactantes sin control de esfínter).
Toda la orina de 24 horas o una alícuota de 10 mL.
Enviar los recipientes tapados, en posición vertical, para evitar derrames, a
temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde el término de la recolección de la muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
:
Las muestras serán rechazadas en caso de recolección inadecuada de orina
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
153
ENTREGA RESULTADO
:
LIMITACIONES
:
de 24 hrs.
Dentro del día si muestra se ha recibido antes de las 15.00 hrs
Las determinaciones en muestras de orina aislada no son representativas.
Los electrolitos urinarios son dependientes de la dieta.
EPSTEIN BARR VIRUS, Ac. IgM (ANTI VCA IgM) Inmunologia
USO PREFERENTE DE LA : La infección por EBV (virus de Epstein Barr) es muy común y es transmitida
PRUEBA
por intercambio de saliva que contiene el virus vivo. Luego de la
exposición inicial al virus, hay un periodo de incubación de 1 a 2 meses
previo a la enfermedad clínica. El típico síndrome clínico es la
Mononucleosis Infecciosa (MI). Característicamente el paciente presenta
la triada clásica, fiebre, dolor de faringe y linfadenopatía. En muchos casos,
el clínico debe confirmar su diagnostico de MI con el laboratorio, debido a
la similitud de síntomas con infecciones a Toxoplasmosis o
Citomegalovirus.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
METODO
: ELISA (Ensayo por inmuno absorción ligado a enzimas) para la
determinación cualitativa de anticuerpos clase IgG e IgM al antígeno
cápside del Virus de Epstein Barr en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (Suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (Suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO
RESULTADOS
:
DE :
:
:
ENTREGA :
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Antes de 4 horas de tomada la muestra.
Las muestras seran rechazadas en caso de hemólisis y lipemia.
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles
7 días hábiles
154
EOSINÓFILOS NASALES Hematología
USO PREFERENTE DE LA
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRAS
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
Pesquisa de eosinofilia en cuadros alérgicos.
:
:
:
:
:
:
:
Negativo.
Tinción de Hamsel.
Suspender los antihistamínicos 10 días antes de la toma de la muestra.
Rotular 2 láminas de vidrio (portaobjetos) con el nombre y los dos
apellidos del paciente. Introducir una tórula en una fosa nasal y frotar
contra las paredes. Retirar la tórula y con movimientos rotatorios
presionar la tórula sobre un portaobjetos, extendiendo la muestra sobre la
lámina. Repetir el procedimiento en la otra fosa nasal. Esperar que la
muestra seque al aire.
Secreción nasal.
Lámina de vidrio (portaobjetos).
:
Abundante secreción
Una vez que las láminas estén secas guárdelas en un papel limpio. Evite
que las láminas se quiebren.
Enviar al laboratorio hasta las 12:00 hrs. del día de la toma de muestra.
----48 horas desde la llegada de la muestra al laboratorio.
:
Muestras escasas no pueden ser procesadas.
:
:
:
:
155
ESTRADIOL Bioquímica
USO PREFERENTE
PRUEBA
DE
LA :
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
:
El análisis de los niveles de Estradiol es útil en la evaluación de infertilidad,
irregularidades menstruales y precocidad sexual en las mujeres. Se
encuentra aumento en caso de feminización de niños, tumores
productores
de
estrógenos,
ginecomastia, cirrosis hepática,
hipertiroidismo, también en casos de ovario poliquístico. Se encuentra
disminuido en caso de hipogonadismo primario y secundario.
Adultos:
Hombres : 11.0 a 44.0 pg/mL
Mujeres
Fase Folicular : 21.0 a 251.0 pg/mL
Peak Medio Ciclo : 38.0 a 649.0 pg/mL
Fase Lútea : 21.0 a 312.0 pg/mL
Posmenopáusicas :< 10.0 a 28 pg/mL.
Inmunoensayo de Micropartículas Quimiluminiscentes Equipo Architec
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra.
:
:
Suero
Suero
VOLUMEN MINIMO
:
Pediatría: 2 mL
Adultos: 2 a 4 mL
Temperatura ambiente.
CONDICIONES
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO
RESULTADOS
LIMITACIONES
DE :
:
:
ENTREGA :
:
:
Tubo tapa roja o amarilla
4 horas desde la toma de muestra.
Muestra bemolizada, lipémica o con ictericia
Falta de datos del paciente, como por ejemplo etapa de ciclo.
24 horas.
El diazepam y clomifeno producen elevación del
Estradiol. Los
anticonceptivos orales y el megestrol producen disminución de los niveles
de Estradiol. La presencia de Anticuerpos Heterófilos puede interferir en la
determinación.
156
FACTOR REUMATOIDEO Inmunología
:
USO PREFERENTE
PRUEBA
DE
LA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
Los FR son autoanticuerpos contra la fracción Fc de la IgG Humana que han
sufrido alteraciones en su estructura terciaria. La detección de FR es uno
de los criterios para el diagnóstico de la Artritis Reumatoide (AR). Los FR
desempeñan un papel importante en el diagnóstico diferencial, para
distinguir la AR de otras enfermedades reumáticas. La presencia de
concentraciones elevadas de FR se suele asociar con un curso de la
enfermedad más grave. Asimismo, los FR pueden aparecer con otras
enfermedades reumáticas y no reumáticas, tales como la hepatitis,
endocarditis e infecciones parasitarias o virales, así como con otras
enfermedades autoinmunes.
0 – 20 UI/mL
Determinación cuantitativa de los factores de reumatoides (FR) en suero
por Inmuno nefelometría (BN ProSpec)
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
Sangre ( Suero)
Sangre ( Plasma con Heparina o EDTA)
Sangre ( Suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
Sangre (Plasma)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
:
Tubo tapa lila (EDTA)
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
:
Antes de 4 horas de tomada la muestra
Muestras lipémicas o hemolizadas
1 día hábil
:
157
FENITOINA, NIVELES DE Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
:
:
:
:
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
DE :
:
:
:
Droga utilizada como antiepiléptico, la detección de niveles es utilizada
para el control y monitoreo del tratamiento de pacientes epilépticos (Gran
mal).
Adultos 10-20 ug/ml
Enzimo-inmunoensayo por competición. EQUIPO ARCHITECT 8200
Ayuno de al menos 8 horas.
Tomar la muestra entre 0 y 30 minutos antes de la dosis. Indicar en la
orden hora de la última dosis de Fenitoina o de otros medicamentos. En
intoxicaciones la toma de muestra es independiente del horario y la dosis.
Suero
Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 4 mL para pacientes adultos.
Temperatura ambiente.
4 horas desde la toma de muestra.
Las muestras serán rechazadas en caso de Ingesta de dosis terapéutica
previa al examen (1 hora) y muestras hemolizadas, lipémicas o con ictericia
Dentro del día en horario hábil.
FENOBARBITAL, NIVELES DE Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Droga utilizada como antiepiléptico, la detección de niveles es utilizada
PRUEBA
para el control y monitoreo del tratamiento de pacientes epilépticos
(Ataques y convulsiones generalizadas).
RANGOS DE REFERENCIA
: Adultos: 10 a 40 ug/mL.
METODO
: Enzimo-inmunoensayo por competición. EQUIPO ARCHITECT 8200
INSTRUCIONES AL PACIENTE
: Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar la hemolisis de la muestra.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
Suero
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
DE :
:
:
:
Tubo tapa verde , lleno hasta la marca
para los servicios de urgencia
2 ml pediátricos, 4 ml en adultos.
Los tubos deben ser transportados tapados en posición vertical, dentro de
un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente.
4 horas desde la toma de muestra.
Las muestras serán rechazadas en los siguientes casos.
158
ENTREGA RESULTADOS
FERRITINA Inmunología
USO PREFERENTE DE
PRUEBA
:
LA :
- Tubo mal rotulado o con nombre ilegible.
- Tubo no transportado en condiciones adecuadas.
- Muestras hemolizadas, lipémicas o con ictericia
- Ingesta de dosis terapéutica previa al examen (1 hora).
Dentro del día en horario hábil.
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
La ferritina es una proteína de alta masa molecular, confirmando la
relación directa entre la concentración de ferritina sérica y los depósitos
de hierro en el organismo. La bibliografía reciente sugiere que la ferritina
proporciona medidas más sensibles, específicas y fiables para determinar
una ferropenia en los estados iniciales. Las mediciones de la ferritina sérica
han resultado _tiles en el control de la recarga de los depósitos férricos en
pacientes a los que se les administra hierro de forma oral y para
determinar cuando se puede interrumpir la terapia. En los trastornos
inflamatorios crónicos, las infecciones y en la insuficiencia renal crónica, se
observa un aumento desproporcionado de la concentración de ferritina
sérica en relación con los depósitos férricos.
0,8 – 2,0 ng/mL
Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la determinación
cuantitativa ferritina en suero humano.
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
:
:
Sangre (suero)
Sangre (suero)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
:
:
:
4 horas desde la toma de muestra.
Las muestras serán rechazadas en caso de lipemia o hemólisis.
1 día hábil.
:
Tubo tapa roja o amarilla
159
FIBRINOGENO PLASMATICO, DETERMINACION CUANTITATIVA DE Coagulación
USO PREFERENTE DE LA
: Evaluación de la capacidad de coagulación, estudios de las deficiencias de
PRUEBA
fibrinógeno
como:
afibrinogenemia,
hipofibrinogenemia
y
disfibrinogenemia
congénita,
hipofibrinogenemias
asociadas
a
enfermedades como: CID, fibrinolisis sistémicas, pancreatitis y disfunción
hepática grave. Como proteína de respuesta en fase aguda su aumento
permite evaluar estados inflamatorios, infecciosos traumáticos, embarazos
(estados pretrombóticos). Su relación con el desarrollo de enfermedades
cardiovasculares permite evaluar el riesgo de Arterioesclerosis, IAM,
Accidentes cerebros vasculares.
RANGOS DE REFERENCIA
: Adultos y niños: 180-350 mg/dl
METODO
: Óptico-mecánico.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : No requiere ayuno
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : La punción debe ser sin trauma, evitando la formación de hematomas,
DE TOMA DE MUESTRAS
ligadura prolongada y la hemólisis.
Si la punción es traumática y dura mas de 2 minutos .Tomar nueva
muestra.
Se debe evitar la aspiración de burbujas de aire y la contaminación con
líquido tisular.
La sangre no debe recolectarse de una vía con un cierre heparinizado.
La sangre venosa se debe recolectar con citrato de sodio al 3.2 % en
proporción 1:10
Si en la toma de muestra un paciente necesita más de un tubo, usar en 2º
o 3º lugar el tubo para las pruebas de coagulación.
Si la toma de muestra es única, desechar la primera porción.
Se debe realizar una inversión completa y suave del tubo 10 veces, para
mezclar adecuadamente la sangre y el anticoagulante.
Si observa coagulo se debe rechazar la muestra y tomar una nueva.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre.
TIPO DE TUBO
: Tubo tapa celeste
(anticoagulante
citrato de sodio 3.2 %
VOLUMEN MINIMO
: 2 mL o según la cantidad que indique el tubo (llenar hasta la marca).
CONDICIONES DE
: Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
TRANSPORTE
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente o refrigerada.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Lo antes posible. Máximo 3 horas.
CONDICIONES DE RECHAZO DE : Muestras sobre o bajo nivel no pueden ser procesadas
MUESTRA
Si observa coagulo una vez mezclada se debe rechazar la muestra y tomar
una nueva.
Muestras recolectadas en tubos con heparina.
160
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
FIERRO Bioquímica
USO PREFERENTE
PRUEBA
DE
LA :
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
:
:
:
:
Pabellón: 45 minutos, 45 a 60 minutos para pacientes de los servicios
críticos y otros servicios clínicos. Pacientes ambulatorios: 24 horas desde
su llegada al laboratorio.
Las muestras hemolizadas y coaguladas invalidan la prueba.
Las muestras recolectadas de vías heparinizadas invalidan la prueba.
Disminuye en patologías como anemia ferropénica, artritis reumatoide,
carcinoma, embarazo, etapa post operatoria. Aumenta en patologías
como: anemia aplásica, anemia hemolítica, anemia perniciosa, entre otras.
31-144 µg/dL hombres adultos 25—156 ug/dl mujeres adultos
Ferrozina sin desproteinización
Ayuno de al menos 8 horas.
No obtener la muestra durante la hemodiálisis. Evitar la hemólisis de la
muestra.
Suero
Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 4mL para pacientes adultos.
Los tubos deben ser transportados tapados en posición vertical, dentro de
un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente.
4 horas desde la toma de muestra.
Las muestras serán rechazadas en caso de ingesta de fierro 48 hrs antes
de la prueba o muestra hemolizada o lipémica.
1 día hábil
La vitamina B12 y la ingesta de fierro en las últimas 48 horas antes de la
prueba puede elevar los resultados.
161
FIERRO Y TIBC (CAPACIDAD TOTAL DE FIJACIÓN DE FIERRO) Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Prueba que diferencia la anemia secundaria a deficiencia de hierro de otras
enfermedades relacionadas con variaciones en la oxidación celular. El TIBC
es la cantidad máxima de fierro que puede fijarse a la transferrina, y es útil
para diferenciar la anemia (aumento de los valores) de los trastornos con
inflamación crónica (valores normales).
RANGOS DE REFERENCIA
: 250 – 450 µg/dL hombres
250--400 µg/dl mujeres
METODO
: En esta prueba se agrega fierro al suero del paciente hasta que todos los
sitios de unión a la transferrina están ocupados con fierro. A continuación
se elimina el exceso de fierro y se determina la cantidad total del resto del
fierro (fijado), lo cual permite valorar la capacidad de la transferrina para
fijar el fierro.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 12 horas antes de la prueba.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : No obtener la muestra durante la hemodiálisis. Evitar la hemólisis de la
DE TOMA DE MUESTRAS
muestra.
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
:
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 4mL para pacientes adultos.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
4 horas desde la toma de muestra.
Las muestras serán rechazadas en los siguientes casos.
- Tubo mal rotulado o con nombre ilegible.
- Tubo no transportado en condiciones adecuadas.
- Muestra hemolizadas y lipémicas.
1 día hábil
La vitamina B12 y la ingesta de fierro en las últimas 48 horas antes de la
prueba puede elevar los resultados.
162
FOSFATASA ALCALINA (ALP) Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : La fosfatasa alcalina se encuentra en el hueso, hígado, intestino y placenta,
PRUEBA
se eleva durante períodos de crecimiento óseo, enfermedad hepática y
obstrucción de las vías biliares, en colestasis intra o extrahepática
(hepatitis, cirrosis biliar, drogas hepatotóxicas, colédoco litiasis, carcinoma
de la cabeza del páncreas, carcinoma hepático), en enfermedades óseas
como osteítis, raquitismo, osteomalacia, fracturas de consolidación,
tumores osteoblásticos e hiperparatiroidismo. También puede elevarse en
insuficiencia cardiaca, mononucleosis infecciosa, IM, perforación del
intestino y septicemia.
RANGOS DE REFERENCIA
: Hombres: 40 –150 U/L (adultos)
Mujeres: 40 –150 U/L (adultos)
Niños:
0 -500 U/L
METODO
: p-Nitrofenilfosfato. EQUIPO ARCHITECT 8200
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 10 a 12 horas antes de la prueba.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar el uso prolongado del torniquete y la hemólisis de la muestra.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
Suero
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO DE :
MUESTRA
TIEMPO
RESULTADOS
LIMITACIONES
ENTREGA :
:
:
Tubo tapa verde , lleno hasta la marca
para los servicios de urgencia
2 ml pediátricos, 4 ml en adultos.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
2 horas desde la toma de muestra.
Las muestras serán rechazadas en los siguientes casos.
- Tubo mal rotulado o con nombre ilegible
- Tubo no transportado en condiciones adecuadas
- Muestra Hemolizadas y Lipémicas
2 horas para pacientes de los servicios de urgencia. Pacientes
hospitalizados y ambulatorios durante el día.
La falta de ayuno o la exposición de la muestra a temperaturas ambiente
por tiempos prolongados, producen resultados falsamente elevados.
163
FÓSFORO Bioquímica
USO PREFERENTE
PRUEBA
DE
LA :
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
El fósforo inorgánico constituye solo un tercio del fósforo disponible. Es
importante para la formación ósea, almacenamiento y liberación de
energía, amortiguamiento urinario acido base y en el metabolismo de los
carbohidratos. Aumenta en acidosis respiratoria y láctica, cetoacidosis
diabética, enfermedad renal aguda o crónica entre otras; Disminuye en
alcalosis respiratoria, alcoholismo agudo, desnutrición, diálisis, entre otras.
<10 días
4.5 - 9.0
10 días - <2 años 4.5 - 6.7
2 y <12 años
4.5 - 5.5
12 y <60 años
2.7 - 4.5
60 años
2.8 - 4.1
Molibdato UV, EQUIPO ARCHITECT 8200
Ayuno de al menos 8 horas. Evitar el consumo excesivo de antiácidos y
laxantes/enemas que contengan fosfato de sodio.
No obtener muestras después de la hemodiálisis. Evitar la hemólisis de la
muestra.
Suero
Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
Suero
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO DE :
MUESTRA
TIEMPO
RESULTADOS
LIMITACIONES
ENTREGA :
:
:
Tubo tapa verde , lleno hasta la marca
para los servicios de urgencia
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 4 mL para pacientes adultos.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
Antes de 4 horas desde la toma de muestra.
Las muestras serán rechazadas en los siguientes casos.
- Tubo mal rotulado o con nombre ilegible
- Tubo no transportado en las condiciones adecuadas
- Muestra hemolizadas y lipémicas.
2 horas para pacientes de los servicios de urgencia. Pacientes
hospitalizados y ambulatorios durante el día.
Los valores séricos varían a lo largo del día, siendo los más bajos en la
mañana.
164
FÓSFORO URINARIO MUESTRA AISLADA Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : El fósforo inorgánico constituye sólo un tercio del fósforo disponible. Es
PRUEBA
importante para la formación ósea, almacenamiento y liberación de
energía, amortiguamiento urinario acido base y en el metabolismo de los
carbohidratos. Aumenta en acidosis extra renal, fracturas óseas
(transitoriamente), hiperparatiroidismo; Disminuye en hipoparatiroidismo
o paratiroidectomía, seudoparatiroidismo, entre otras.
RANGOS DE REFERENCIA
: 40 – 140 mg/dL
METODO
: Molibdato UV, EQUIPO ARCHITECT 8200
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Para el caso de mujeres se sugiere que no cursen con su período menstrual
o leucorrea al momento de recolectar la orina, en caso contrario deben
cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para evitar que la orina se
contamine. Antes de la recolección de la orina se procede a un aseo con
agua y jabón de la zona que rodea el meato urinario, posteriormente se
seca la zona evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el
primer chorro de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la
porción final también se elimina.
En el caso de los hombres se le indica que retraiga el prepucio para lavar
con agua y jabón la porción distal del pene que rodea el meato urinario,
posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la
zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media
en el recipiente, la porción final también se elimina.
Si el lactante es niña, colocar la bolsa colectora sobre la zona del periné
fijando la parte adhesiva a la piel. Si el lactante es niño, colocar la bolsa
colectora alrededor del pene. Es necesario revisar periódicamente la bolsa
colectora para verificar su correcta posición (podría salirse y perder la
esterilidad). Si antes de media hora no se ha recogido la muestra o la bolsa
colectora se ensucia, hay que sustituirla, ya que la contaminación con
microbiota fecal es un problema bastante frecuente. Se puede colocar el
pañal para asegurar la integridad de la bolsa, revisando la presencia de
orina en la bolsa colectora frecuentemente.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verifique la correcta rotulación de la muestra antes del envío al
DE TOMA DE MUESTRAS
Laboratorio.
TIPO DE MUESTRA
: Orina de segundo chorro.
TIPO DE TUBO
: Orina
:
Tubo o frasco de orina proporcionado por el
laboratorio, frasco limpio, botellas limpias o
bolsa colectora (lactantes sin control de
esfínter).
VOLUMEN MINIMO
: 10 mL.
CONDICIONES
DE : Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
TRANSPORTE
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
165
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO DE :
MUESTRA
TIEMPO
RESULTADOS
LIMITACIONES
ENTREGA :
:
derrames y a temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde la toma de muestra
Las muestras serán rechazadas en los siguientes casos.
- Tubo o frasco mal rotulado o con nombre ilegible
- Tubo o frasco no transportado en condiciones adecuadas
- Muestra con evidente signo de contaminación.
2 horas para pacientes de los servicios de urgencia. Pacientes
hospitalizados y ambulatorios durante el día.
Tubo u otro contenedor usado que no fuese entregado por el laboratorio
invalidarán la prueba.
FÓSFORO URINARIO DE 24 HORAS Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : El fósforo inorgánico constituye sólo un tercio del fósforo disponible. Es
PRUEBA
importante para la formación ósea, almacenamiento y liberación de
energía, amortiguamiento urinario acido base y en el metabolismo de los
carbohidratos. Aumenta en acidosis extra renal, fracturas óseas
(transitoriamente), hiperparatiroidismo; Disminuye en hipoparatiroidismo
o paratiroidectomía, seudoparatiroidismo, entre otras.
RANGOS DE REFERENCIA
: 0.4– 1.3 gr/24 hrs
METODO
: Molibdato UV, EQUIPO ARCHITECT 8200
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Para la correcta valoración de los resultados de un análisis efectuado sobre
orina de 24 horas es sumamente importante que la recogida de la orina
sea completa.
Durante el período de recolección, el paciente debe beber líquidos en
forma normal a menos que haya recibido otra indicación. No debe beber
alcohol.
Los pasos a seguir son los siguientes:
• Orine a las 7:00 Hrs. de la mañana y elimine esta orina
• Recoger, a partir de ese momento, en un recipiente limpio y seco, toda
la orina que elimine a lo largo del día, la noche siguiente, incluyendo la
primera orina de la mañana siguiente.
• Mantener la orina que se va recolectando refrigerada. Una vez finalizada
la recolección identificar cada uno de los envases. La identificación debe
contener el nombre y los dos apellidos del paciente escritos con letra
legible.
• Transportar la orina a la Unidad de Laboratorio Clínico.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar la correcta rotulación de todos los recipientes antes de enviar la
DE TOMA DE MUESTRAS
muestra al laboratorio.
TIPO DE MUESTRA
: Orina de 24 horas
TIPO DE TUBO
: Orina
: Recipientes limpios, proporcionados por el Laboratorio
VOLUMEN MINIMO
: Toda la orina recolectada en 24 horas o una alícuota de 10 mL.
CONDICIONES
DE : Los recipientes se deben transportar tapados, en posición vertical, dentro
TRANSPORTE
de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 4 horas desde el término de la recolección de la muestra.
CONDICIONES DE RECHAZO DE : Las muestras serán rechazadas en los siguientes casos
MUESTRA
- Recipiente o frasco mal rotulado o con nombre ilegible
- Recipiente o frasco no transportado en condiciones adecuadas.
166
TIEMPO
RESULTADOS
LIMITACIONES
ENTREGA :
:
- Incorrecta recolección de orina de 24 hrs.
2 horas para pacientes de los servicios de urgencia. Pacientes
hospitalizados y ambulatorios durante el día.
Uso de recipientes no entregados por el Laboratorio invalidarán la prueba.
FSH, HORMONA FOLICULO ESTIMULANTE Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : La determinación de esta hormona es útil para conocer la integridad del
PRUEBA
eje hipotálamo-hipofisiario y como ayuda para catalogar las disfunciones
gonadales en primarias o secundarias.
RANGOS DE REFERENCIA
: Adultos:
Hombres : 1.37 a 13.58 mIU/mL
Mujeres
Fase Folicular:
3.35 a 21.63 mIU/mL
Peak Medio Ciclo : 4.97 a 20.82 mIU/mL
Fase Lútea:
1.11 a 13.99 mIU/mL
Postmenopáusicas: 2.58 a 150.53 mIU/mL
METODO
: Inmunoensayo de Micropartículas Quimiluminiscentes EQUIPO ARCHITECT
8200
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas. En lo posible indicar, al personal de toma de
muestra, la etapa del ciclo menstrual en que se encuentra la paciente.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra. En lo posible preguntar, al paciente, la
DE TOMA DE MUESTRAS
etapa del ciclo menstrual en que se encuentra.
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRA
TIEMPO
RESULTADOS
:
:
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 4 mL para pacientes adultos.
Temperatura ambiente.
:
:
Antes de 2 horas desde la toma de muestra
Las muestras serán rechazadas en los siguientes casos.
Tubo mal rotulado o con nombre ilegible
Tubo no transportado en condiciones adecuadas
Muestra hemolizadas, Lipémicas o con alto índice icterico.
1 día hábil
ENTREGA :
167
GAMMA-GLUTAMILTRANSPEPTIDASA (GGT) Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Se observan aumentos importantes en enfermedades hepáticas
PRUEBA
obstructivas y obstrucción post hepática, colestasis intrahepática, cirrosis
biliar primaria, atrasia infantil de vías biliares. Aumentos moderados cursan
en lesiones ocupantes de espacio y mononucleosis infecciosa; detección de
alcoholismo y colestasis durante o inmediatamente después de la
gestación.
RANGOS DE REFERENCIA
: Hombres : 12 – 64 U/L (Adultos).
Mujeres : 9 – 36 U/L (Adultos).
METODO
: Szasz, enzimático colorimétrico. EQUIPO ARCHITECT 8200
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas antes de la prueba y abstinencia de alcohol 24 horas
antes de la prueba.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar la hemólisis de la muestra.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
: Tubo tapa roja o amarilla
Suero
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO :
DE MUESTRA
TIEMPO
RESULTADOS
LIMITACIONES
ENTREGA :
:
:
Tubo tapa verde para
servicios de urgencia
los
2 mL para pacientes pediátricos, 4 mL para pacientes adultos.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
Antes de 2 horas desde la toma de muestra.
Las muestras serán rechazadas en los siguientes casos.
Tubo mal rotulado o con nombre ilegible
Tubo no transportado en condiciones adecuadas
Muestra hemolizadas o Lipémicas
2 horas para pacientes de los servicios de urgencia. Pacientes
hospitalizados y ambulatorios durante el día.
Los medicamentos que aumentan la GGT son: fenitoína, fenitoína sódica,
fenobarbital, glutetimida y matacualona.
168
GASES EN SANGRE Bioquímica
USO PREFERENTE DE
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
LA :
Evaluación de la función respiratoria y metabólica y del estado ácido- base.
:
Parámetros
Gas arterial
Gas venoso
pH
7.35 – 7.45
7.32 – 7.42
PCO2
35 – 45 mmHg
41 – 51 mmHg
PO2
75 - 100 mmHg
40 - 51 mmHg
HCO3
22 – 26 mEq/L
24 - 28 mEq/L
Exceso de bases
-3 a +3
-3 a +3
Saturación de O2
> 95%
40 – 70%
Potenciometría
Debe reposar durante 30 minutos antes de la recolección de la muestra.
Gases arteriales: Las arterias frecuentemente utilizadas para la toma de
muestra son la cubital y radial. Una vez localizada la arteria por palpación,
se elimina la protección de la aguja de la jeringa y se realiza la punción. Al
finalizar la punción, retirar la aguja y tapar con el tapón especial, agitar
suavemente la jeringa para mezclar la sangre con el anticoagulante.
Presionar por unos segundos el lugar de la punción con una gasa o con
algodón para detener la salida de la sangre. Dejar colocado un pequeño
apósito en la zona de punción.
Si se observan burbujas de aire en la jeringa, deben ser eliminadas lo antes
posible. Enviar inmediatamente la muestra al laboratorio.
Gases venosos: Se realiza el mismo procedimiento que para gases
arteriales, siendo la vena cubital la más utilizada.
Sangre arterial o venosa (según indicación médica).
Sangre
:
Jeringa con flush de heparina
1 a 3 mL.
Transportar la jeringa sellada con tapa roja (sin aguja), en un contenedor
refrigerado a 4º C.
Menos de 30 minutos de tomada la muestra.
Muestra sin sello o con coágulos, burbujas y exceso de heparina.
Pabellón 30 minutos y resto máximo 2 horas.
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
:
:
:
:
:
:
:
169
GLUCOSA EN SANGRE Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
Para el diagnóstico y seguimiento de trastornos en el metabolismo de los
hidratos de carbono (diabetes mellitus, hipoglicemia neonatal,
hipoglicemia idiopática).
70 – 105 mg/dL (adultos)
60 – 100 mg/dL (niños)
Enzimático (Hexoquinasa). EQUIPO ARCHITECT 8200
Ayuno de 8 a 12 horas antes de la prueba. No administrar hipoglicemiantes
orales hasta la obtención de la muestra.
Evitar la hemólisis de la muestra.
Suero
Suero
:
Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
Tubo tapa verde para pacientes de
urgencia.
Adultos y pediátricos: 4 mL
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
Máximo 1 hora desde la toma de muestra.
Muestra mal rotulada, no estar en ayunas, hemolizadas, lipémicas.
2 horas para pacientes de los servicios de urgencia. Pacientes
hospitalizados y ambulatorios durante el día.
En pacientes diabéticos, la muestra sanguínea debe obtenerse antes del
tratamiento con insulina o con hipoglicemiantes orales.
170
GLUCOSA EN ORINA AISLADA Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : La glucosuria aparece cuando el nivel de glucosa en la sangre excede la
PRUEBA
capacidad de reabsorción de los túbulos renales; es decir el filtrado
glomerular contiene más glucosa que la que el túbulo puede reabsorber.
La causa más importante de glucosuria es la diabetes mellitus, pero
también se observa en otras patologías como: pancreatitis, trombosis
coronaria, glucosuria alimenticia, cáncer pancreático, dolor, excitación,
hipertiroidismo, tirotoxicosis, gigantismo, acromegalia, síndrome de
Cushing, traumatismo encéfalo craneano.
RANGOS DE REFERENCIA
: 1 – 15 mg/dL. (Adultos).
METODO
: Enzimático (Hexoquinasa). EQUIPO ARCHITECT 8200
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Para el caso de mujeres se sugiere que no cursen con su período menstrual
o leucorrea al momento de recolectar la orina, en caso contrario deben
cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para evitar que la orina se
contamine.
En caso de adultos ver instructivo en página 39.
Si el lactante es niña, colocar la bolsa colectora sobre la zona del periné
fijando la parte adhesiva a la piel. Si el lactante es niño, colocar la bolsa
colectora alrededor del pene. Es necesario revisar periódicamente la bolsa
colectora para verificar su correcta posición (podría salirse y perder la
esterilidad). Si antes de media hora no se ha recogido la muestra o la bolsa
colectora se ensucia, hay que sustituirla, ya que la contaminación con
microbiota fecal es un problema bastante frecuente. Se puede colocar el
pañal para asegurar la integridad de la bolsa, revisando la presencia de
orina en la bolsa colectora frecuentemente.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar la correcta rotulación de la muestra.
TIPO DE MUESTRA
: Primera orina de la mañana, segundo chorro.
CONTENEDOR
:
Frascos o botellas limpias
VOLUMEN MINIMO
: 10 mL.
CONDICIONES
DE : Los tubos, frascos y botellas se deben transportar tapados en posición
TRANSPORTE
vertical, en un contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 1 hora desde la toma de muestra
RECHAZO DE MUESTRA
: Muestra mal rotulada y/o frasco mal sellado
TIEMPO
ENTREGA : Dentro del día hábil.
RESULTADOS
LIMITACIONES
: Carbamazepina, corticosteroides, furosemida, tiazidas, EDTA, carbonato de
litio, ácido nicotínico producen un aumento de la glucosa urinaria.
Aspirina, ácido ascórbico, levodopa, dipirona, disminuyen su [ ] urinaria.
171
GLUCOSA EN ORINA DE 24 HORAS Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: La glucosuria aparece cuando el nivel de glucosa en la sangre excede la
capacidad de reabsorción de los túbulos renales; es decir el filtrado
glomerular contiene más glucosa que la que el túbulo puede reabsorber.
La causa más importante de glucosuria es la diabetes mellitus, pero
también se observa en otras patologías como por ejemplo en la
pancreatitis, trombosis coronaria, glucosuria alimenticia, cáncer
pancreático, dolor, excitación, hipertiroidismo, tirotoxicosis, gigantismo,
acromegalia, síndrome de Cushing, traumatismo encéfalo craneano.
RANGOS DE REFERENCIA
: 0 – 0,5 g/día
METODO
: Enzimático (Hexoquinasa). EQUIPO ARCHITEC 8200
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
Ver instructivo para paciente de recolección orina 24 horas, página 39.
Evitar recolección durante periodo menstrual. Verificar la correcta
rotulación de la muestra.
Si se envía una alícuota de orina al laboratorio, registrar en solicitud de
examen el total de diuresis en ml.
Toda la orina recolectada en 24 horas o una alícuota de 10 mL.
CONTENEDOR
:
Frascos limpios o Botellas limpias con tapa.
VOLUMEN MINIMO
:
Enviar toda la orina recolectada o una alícuota de 10 mL.
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
Los tubos, frascos y botellas se deben transportar tapados en posición
vertical, en un contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
Máximo 2 horas desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
Frasco mal rotulado y mal sellado.
Dentro del día hábil.
Fármacos que interfieren: carbamazepina, corticosteroides, furosemida,
tiazidas, EDTA, carbonato de litio, ácido nicotínico producen un aumento
de la glucosa urinaria. Aspirina, ácido ascórbico, levodopa, dipirona,
disminuyen su concentración urinaria.
172
HANTA VIRUS TEST RAPIDO Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Este ensayo detecta la presencia de anticuerpos anti- Puumala Virus., que
PRUEBA
presenta altísima reactividad cruzada con la cepa Andes, perteneciente a
nuestro país.
RANGOS DE REFERENCIA
: Los resultados pueden ser; Positivo o Negativo.
METODO
: Inmuno ensayo que detecta la presencia de anticuerpos.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas antes de la prueba
INSTRUCCIONES
AL : Se debe tomar la bateria completa de exámenes que contempla;
PERSONAL DE TOMA DE
hemograma con fórmula (tubo tapa lila), test rápido (tubo tapa roja) y tubo
MUESTRAS
para envío a Santiago (10 ml) con el respectivo formulario.
Verificar la correcta rotulación de los tubos.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre
TIPO DE TUBO
: Sangre
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO
DE MUESTRA
TIEMPO
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
3 a 5 mL de sangre
Temperatura ambiente
:
:
30 minutos desde la toma de muestra
Se rechazarán las muestras en los siguientes casos:
- Muestras sin rotular
- Muestras mal rotuladas
- Muestras derramadas o manchadas
2 horas
ENTREGA :
:
Este test no es válido en otros liquidos biológicos como; saliva, LCR y orina.
173
HAPTOGLOBINA Inmunología
USO PREFERENTE DE
PRUEBA
LA :
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
La haptoglobina se fija a la hemoglobina liberada durante la lisis de
eritrocitos. Esta es una proteína de fase aguda y puede alcanzar niveles
muy elevados durante estados inflamatorios.
50 - 320 mg/dL
Determinación cuantitativa de la Haptoglobina en suero humano,
mediante Inmuno nefelometría (BN ProSpec)
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
Sangre ( Suero)
Sangre ( Plasma con Heparina o EDTA)
Sangre ( Suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
Sangre (Plasma)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
:
Tubo tapa lila (EDTA)
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
:
:
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
Muestra mal rotulada, hemolizadas, Lipémicas
3 días hábiles
174
HEMOCULTIVO Microbiología
USO DE LA PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES
AL
PERSONAL DE TOMA DE
MUESTRAS
TIPO DE TUBO
:
:
:
:
:
Sospecha de bacteremia en pacientes con o sin foco aparente de infección.
Sin desarrollo bacteriano.
Cultivo bacteriano en viales de sistema automatizado Bact Alert.
:
Sangre
:
Vial hemocultivo adulto
Médula
Vial hemocultivo pediátrico
Recién nacidos: 1-2 ml
Lactantes de 1 mes a 2 años: 2-3 ml
Niños mayores de 2 años y <12 años: 3-5 ml
Adolescentes: 10 ml
Adultos: 10 ml
Trasladar no refrigerado
Inmediato al laboratorio.
5 días hábiles
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
ENTREGA RESULTADOS
:
:
:
Ver instrucciones en página 65 .
HEMOGLOBINA GLICOSILADA (HBA1C) Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Seguimiento a largo plazo de la glicemia en pacientes con Diabetes
Mellitus. Proporciona una estimación del riesgo de complicaciones micro y
macrovasculares. En su empleo clínico de rutina, por lo general basta en
realizar la prueba cada 3 o 4 meses. En situaciones como la diabetes
gestacional o al modificar el tratamiento puede ser conveniente medir la
HBA1C en intervalos de 2 a 4 semanas.
RANGOS DE REFERENCIA
: No diabéticos : 4-6 %
Diabéticos controlados : 6-8 %
Diabéticos no controlados : hasta 20%
METODO
: La medición de hemoglobina total es colorimétrica y la HbA1c es
Inmunoturbidimétrica.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : No requiere instrucciones específicas.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre
TIPO DE TUBO
: Sangre
:
Tubo tapa lila (anticoagulante EDTA)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
4 mL o el tubo lila hasta la marca.
Los tubos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
175
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
LIMITACIONES
:
:
:
:
Máximo 4 horas desde la toma de muestra.
Muestra mal rotulada y muestra lipémica.
1 día hábil
Cualquier situación que produzca una ↓en la vida media de los eritrocitos
disminuirá los valores de HBA1C.
HEMOGRAMA Hematología
USO DE LA PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
:
:
METODO
:
Diagnóstico de patologías hematológicas, infecciones, hemorragias
Recuento de eritrocitos: Hombre: 4.6 – 6.2 millón/μL Mujer: 4.2 – 5
millón/μL
Hematocrito: Hombre: 39 – 48% Mujer: 36 – 47%
Hemoglobina: Hombre: 13 – 16 g/dL Mujer: 12 – 15.6 g/dL
HCM:
27 – 31 pg
VCM:
82 – 97 fL
CHCM: 32 – 36 g/dL
Recuento absoluto de leucocitos: 4.5 -11.0 miles/µL.
Recuento absoluto de granulocitos: 2.7-7.0 miles /µL.
Recuento absoluto de linfocitos:
1.2-3.5 miles/µL.
Recuento absoluto de monocitos: 4.0-8.0 miles/µL
Fórmula leucocitaria:
Basófilos: 0 – 1% Baciliformes: 0 – 4% Linfocitos:30 – 40%
Eosinófilos: 2 – 4% Segmentados: 40 – 60% Monocitos: 4- 8%
Impedancia: tamaño y recuento celular.
Colorimetría: Hemoglobina.
Fórmula leucocitaria: Microscopía.
Ayuno de al menos 8 horas.
Una vez extraída la muestra, se debe realizar una inversión completa y
suave del tubo 10 veces, para mezclar adecuadamente la sangre y el
anticoagulante.
Sangre.
Tubo tapa lila (anticoagulante
Tubo minicollect
EDTA).
para RN
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
:
:
LIMITACIONES
:
4 mL para pacientes adultos, 2 mL para pacientes pediátricos y 0.5 mL para
RN.
Los tubos se deben transportar en posición vertical, tapados, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
4 horas desde la toma de la muestra.
No se procesan muestras coaguladas y microcoaguladas.
2 horas para servicios de urgencia. Dentro del día para pacientes
hospitalizados y ambulatorios.
La observación microscópica sólo se realiza a pacientes hemato
oncológicos, recién nacidos con sospecha de sepsis, sospecha de
hantavirus y perfiles hematológicos con alarmas de blastos.
176
HEMOPHILUS INFLUENZAE TIPO B, ANTICUERPOS ANTI Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: No repuesta inmune a vacunación con HIB (vacuna Conjugada)
RANGOS DE REFERENCIA
: Suero ≥ 0,15 µg/mL
METODO
: ELISA
: Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
: Sangre
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
: Sangre
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
2 a 8 ml
CONDICIONES TRANSPORTE
:
Temperatura ambiente.
:
Enviar al laboratorio máximo 4 horas desde la toma de muestra.
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
Refrigerar la muestra a 2-8 °C por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20 °C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
RECHAZO DE MUESTRA
Muestras purulentas, con hemólisis, lipemia e ictericia
ENTREGA RESULTADOS
:
30 días corridos.
HEMORRAGIAS OCULTAS Parasitologia
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
:
Para el diagnóstico de hemorragias digestivas.
Negativo.
Inmunocromatografía
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
Ver Instrucciones a paciente para hemorragia oculta, página 41.
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
Verificar que la rotulación de las muestras esté correcta y corresponda al
paciente.
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
:
Deposición fresca.
Frasco limpio, sin aditivos, seco, y de boca ancha con tapa
entregado por el laboratorio.
2 grs cada muestra.
CONDICIONES TRANSPORTE
:
Los
frascos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
177
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
contenedor a temperatura ambiente.
24- 48 horas desde la obtención de la última muestra.
ENTREGA RESULTADOS
:
2 días hábiles
HEPATITIS A, ANTICUERPOS IgM Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: La hepatitis A es a una enfermedad autolimitada y con frecuencia
constituye un trastorno subclínico, especialmente en niños. Los ensayos
para la detección de anticuerpos IgM frente al VHA están indicados como
ayuda en el diagnóstico de infecciones por el virus de la hepatitis A agudas
o recientes (anticuerpos habitualmente presentes entre 6 y 9 meses).
RANGOS DE REFERENCIA
: < 0,80 s/co
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la detección
cualitativa de los anticuerpos IgM frente al virus de la hepatitis A (IgM antiVHA) en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Sangre (suero)
Sangre (suero)
VOLUMEN MINIMO
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES TRANSPORTE
:
Temperatura ambiente.
Enviar al laboratorio máximo 4 horas desde toma de muestra
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
Muestras lipémicas o hemolizadas.
:
2 días hábiles
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
:
Tubo tapa roja o amarilla
178
HEPATITIS B, ANTIGENO DE SUPERFICIE Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: Los ensayos para la detección del HBsAg se utilizan en el pesquisaje de
HBsAg en sangre y productos sanguíneos para evitar la transmisión del
virus de la hepatitis B (VHB) a los receptores de estos productos.
Igualmente, estos ensayos se utilizan para diagnosticar posibles
infecciones por VHB, así como para hacer un seguimiento de los pacientes
ya infectados. De este modo, se puede distinguir entre el paciente con
infección pasada y el paciente que se convierte en portador crónico del
virus
RANGOS DE REFERENCIA
: 0 – 2 S/N
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la detección
cualitativa del antígeno de superficie del virus de la hepatitis B (HBsAg) en
suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Sangre (suero)
Sangre (suero)
VOLUMEN MINIMO
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
Temperatura ambiente.
Enviar al laboratorio máximo 4 horas desde toma de muestra
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
:
:
Tubo tapa roja o amarilla
Muestras lipémicas o hemolizadas.
1 día hábil
Examen confidencial, para visualizar resultado en web de laboratorio se
requiere ingreso de médico con con clave personal.
179
HEPATITIS B, TEST RAPIDO Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
:
:
:
:
El virus de Hepatitis B es responsable de cuadros de hepatitis agudas y
crónicas. Las hepatitis agudas pueden ser asintomáticas o presentar
síntomas de gravedad variable que pueden llegar hasta hepatitis
fulminante en algunos casos, por su parte la hepatitis crónica puede
también ser asintomática o producir lesiones en el hígado de gravedad mas
o menos importante que pueden originar una cirrosis hepática con una
posible evolución hacia un hepatocarcinoma.
Este test está restringido sólo a pacientes con indicación de diálisis
urgente.
Los resultados pueden ser; Positivo o Negativo.
Inmunocromatografía lateral para la detección del antígeno.
Ayuno de 4 horas antes de la prueba.
La correcta rotulación de los tubos.
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Sangre
Sangre
VOLUMEN MINIMO
:
3 a 5 mL de sangre
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
Temperatura ambiente
30 minutos desde la toma de muestra
RECHAZO DE MUESTRA
:
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
Se rechazarán las muestras en los siguientes casos:
Muestras sin rotular
Muestras mal rotuladas
Muestras derramadas o manchadas
2 horas
Examen confidencial, para visualizar resultado en web de laboratorio se
requiere ingreso de médico con con clave personal.
Un resultado negativo en HBs Ag no permite descartar una infección por el
virus de la hepattis B esto puede ocurrir en caso de que la concentración
de HBs Ag sérica sea menor a la sensibilidad analítica del reactivo.
Este test no es válido en otros líquidos biológicos como; saliva, LCR y orina.
:
Tubo tapa roja o amarilla
180
HEPATITIS C, ANTICUERPOS Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: El VHC es un virus que se transmite por vía sanguínea y esta
estrechamente ligado a la transfusión de sangre. En estudios serológicos
con enzimoinmunoanálisis para la detección de anticuerpos frente a
antígenos recombinantes del VHC (anti-VHC) se ha demostrado que el VHC
es el agente causal de la mayoría de las hepatitis no A no B (HNANB)
transmitidas por vía sanguínea, así como de las adquiridas en la
comunidad. La presencia de anti-VHC indica que un individuo puede
haberse infectado por el VHC, que puede ser portador de VHC infeccioso o
que puede transmitir la infección por VHC. Si bien la mayoría de los
individuos infectados permanecen asintomáticos, la infección por VHC
puede producir complicaciones como hepatitis crónica, cirrosis o riesgo
elevado de carcinoma hepatocelular. La instauración del pesquisaje de
anti-VHC en los donantes de sangre mediante EIA ha dado como resultado
una notable disminución del riesgo de hepatitis transmitidas por
transfusión.
RANGOS DE REFERENCIA
: 0 – 1 S/co
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para la detección
cualitativa de los anticuerpos frente al virus de la hepatitis C (anti-VHC) en
suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde toma de muestra
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
Muestras lipémicas o hemolizadas.
1 día hábil
Examen confidencial, para visualizar resultado en web de laboratorio se
requiere ingreso de médico con con clave personal.
:
:
:
:
Sangre (suero)
Sangre (suero)
:
Tubo tapa roja o amarilla
181
HEPATITIS C, TEST RAPIDO Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
:
:
El virus de la Hepatitis C es responsable de cuadros de hepatitis aguda y
crónica aunque la mayoría de las personas que contraen el virus
desarrollan a forma crónica. Dependiendo de los años de exposición al
virus puede llegar a provocar cirrosis.
Este test está restringido sólo a pacientes con indicación de diálisis
urgente.
Los resultados pueden ser; Positivo o Negativo.
Inmuno cromatografía para la detección de anticuerpos anti-HpC.
Ayuno de 4 horas antes de la prueba.
La correcta rotulación de los tubos.
:
:
Sangre
Sangre
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRA
:
:
:
:
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
3 a 5 mL de sangre
Temperatura ambiente
30 minutos desde la toma de muestra
Se rechazarán las muestras en los siguientes casos:
- Muestras sin rotular
- Muestras mal rotuladas
- Muestras derramadas o manchadas
2 horas
Examen confidencial, para visualizar resultado en web de laboratorio se
requiere ingreso de médico con con clave personal.
Factores reumáticos y anticuerpos antinucleares pueden dar resultados
falsos positivos.
Este test no es válido en otros líquidos biológicos como; saliva, LCR y orina.
:
Tubo tapa roja o amarilla
182
HERPES SIMPLE 1 VIRUS, SEROLOGIA IgG Inmunologia
USO DE LA PRUEBA
: Las infecciones por HSV (virus Herpes Simple) se distribuyen por todo el
mundo. Luego de la exposición al virus, el periodo de incubación es de
aproximadamente una semana (2 a 26 días). Los signos incluyen Herpes
labial y genital.
Las infecciones por Herpes en recién nacidos (menos de 6 semanas de
edad) son frecuentemente devastadoras. Sin tratamiento, la mortalidad
excede el 65%. Muchos de los sobrevivientes quedan con secuelas de
desarrollo. La mayor parte de las infecciones se produce durante el parto
cuando el neonato atraviesa un canal del parto infectado.
HSV-1 se transmite principalmente por las secreciones orales a otras áreas
de piel y las infecciones recurrentes son frecuentes. A su entrada en zonas
de la piel, el HSV-1 replica e instiga a una respuesta inflamatoria local. La
primo infección por HSV-1 suele ser asintomática, pero ocasionalmente se
evidencia una irritación leve de las encías, la garganta y/o los ojos.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
METODO
: IFI (Ensayo por inmunofluorescencia indirecta) para la determinación y
valoración de anticuerpos HSV-1 IgG en suero humano
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Enviar al laboratorio máximo 4 horas desde toma de muestra
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
Muestras lipémicas o hemolizadas.
7 días hábiles
183
HERPES SIMPLE 2 VIRUS, SEROLOGIA IgG Inmunologia
USO DE LA PRUEBA
: Las infecciones por HSV (virus Herpes Simple) se distribuyen por todo el
mundo. Luego de la exposición al virus, el periodo de incubación es de
aproximadamente una semana (2 a 26 días). Los signos incluyen Herpes
labial y genital.
Las infecciones por Herpes en recién nacidos (menos de 6 semanas de
edad) son frecuentemente devastadoras. Sin tratamiento, la mortalidad
excede el 65%. Muchos de los sobrevivientes quedan con secuelas de
desarrollo. La mayor parte de las infecciones se produce durante el parto
cuando el neonato atraviesa un canal del parto infectado.
El HSV-2 se transmite principalmente por vía de transmisión sexual. La
primo infección es más común entre los adolescentes, los homosexuales y
prostitutas. La infección por HSV-2 puede afectar el área oral y genital, las
regiones perianal y anal, asociándose con fiebre, malestar y anorexia. Las
lesiones recurrentes de por HSV-2 suelen ser menos graves que las primo
infecciones.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativa
METODO
: IFI (Ensayo por inmunofluorescencia indirecta) para la determinación y
valoración de anticuerpos HSV-2 IgG en suero humano
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
:
:
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Enviar al laboratorio máximo 4 horas desde toma de muestra.
Refrigerar la muestra a 2-8° C por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20° C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
Muestras lipémicas o hemolizadas.
7 días hábiles
184
HIDATIDOSIS IgG Inmunología
USO DE LA PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
RECHAZO DE MUESTRAS
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
:
:
:
:
:
:
:
Sospecha Hidatidosis (infección Echinococcus granulosos)
Negativo
ELISA
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
Suero
Suero
: Tubo tapa roja o amarilla
:
:
:
0,5 mL. a 1,0 mL.
Temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde toma de muestra
Refrigerar la muestra a 2-8 °C por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20 °C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
Muestras lipémicas o hemolizadas.
5 días hábiles
:
HIV, COMBO ANTIGENO - ANTICUERPO Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: Ayuda diagnóstica de infecciones por virus de inmunodeficiencia humana
tipo 1 y 2.
RANGOS DE REFERENCIA
: Menor de 1 S/CO es considerado no reactivo
METODO
: Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas (CMIA) para la
detección del antígeno p24 del VIH y de los anticuerpos frente al virus de
la inmunodeficiencia humana de tipo 1 (grupos M y O) o de tipo 2 (VIH1/VIH-2) en suero o plasma humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar la correcta rotulación de los tubos con el código del paciente.
Verificar uso del formulario de “Solicitud de examen HIV”, ver Anexo Nº2,
página 252.
Verificar que el formulario antes mencionado esté completo, con todos los
datos y firmas del paciente (código, fecha de nacimiento y firma) y del
médico que solicita el análisis (nombre legible y firma)
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde toma de muestra
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
185
RECHAZO DE MUESTRAS
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
:
HIV TEST RAPIDO Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
:
:
:
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
Muestras lipémicas o hemolizadas.
1 día hábil
Examen confidencial, para visualizar resultado en web de laboratorio se
requiere ingreso de médico con con clave personal.
El virus de Inmunodeficiencia Humana (HIV), de los que existen dos
subtipos (HIV1 Y HIV2), ha sido reconocido como el agente etiológico de el
Síndrome de Inmunodeficiencia Adquirida (SIDA).
Este test está restringido a los siguientes casos:
Pacientes en trabajo de parto con un embarazo no controlado, Pacientes
con indicación de diálisis urgente.
Los resultados pueden ser; Positivo o Negativo.
Detección de anticuerpos de HIV1 y HIV2 con un Inmunoensayo basado en
el principio Inmunocromatografía.
Ayuno de 8 horas antes de la prueba
Verificar la correcta rotulación de los tubos con el código del paciente.
Verificar uso del formulario de “Solicitud de examen HIV”, ver Anexo Nº2,
página 252.
Verificar que el formulario antes mencionado esté completo, con todos los
datos y firmas del paciente (código, fecha de nacimiento y firma) y del
médico que solicita el análisis (nombre legible y firma)
Sangre
Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
3 a 5 mL de sangre
Temperatura ambiente
30 minutos desde la toma de muestra
Se rechazarán las muestras en los siguientes casos:
- Muestras sin rotular
- Muestras mal rotuladas
- Muestras derramadas o manchadas
- Muestras sin consentimiento o con consentimiento incompleto.
2 horas
Examen confidencial, para visualizar resultado en web de laboratorio se
requiere ingreso de médico con con clave personal.
Un resultado negativo no puede excluir la posibilidad de infección con HIV.
Pueden ocurrir falsos negativos en los siguientes casos:
En individuos infectados con HIV muy inmuno deprimidos pueden
presentar mediciones de anticuerpos bajo e límite de detección del test.
Pacientes que se encuentran en el período de ventana que tienen niveles
bajos de anticuerpos.
186
HTLV I/II, ANTICUERPOS Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
El virus linfotrópico de células T humano, fue el primer retrovirus
oncogénico humano conocido. Provoca una hemopatía maligna
denominada leucemia/linfoma de células T del adulto (ATL) y desarrolla
también una mielopatía subaguda denominada Paraparesia Espástica
Tropical (TSP) ó mielopatía asociada al HTLV-I (HAM).
Estudios epidemiológicos confirman la presencia de una prevalencia mixta
del HTLV-I y del HTLV-II en distintas poblaciones de alto riesgo, como los
usuarios de drogas intravenosas y los receptores de transfusiones.
Negativo
ELISA (Ensayo por inmuno absorción ligado a enzimas) para la detección de
anticuerpos contra HTLV-I y HTLV-II en suero humano.
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
:
:
Sangre (Suero)
Sangre (Suero)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
:
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde toma de muestra
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
Muestras lipémicas o hemolizadas.
5 días hábiles
:
:
Tubo tapa roja o amarilla
187
INFLUENZA tipo A y B, TEST RAPIDO Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: La enfermedad de la gripe normalmente hace acto de presencia con la
aparición repentina de fiebre, escalofríos, cefalea, mialgias y tos no
productiva.
Este examen, es un análisis diferenciado, que permite distinguir los
antígenos virales de la Influenza A como los de la Influenza B a partir de
una misma muestra procesada, sirviendo para ayuda diagnostica de la
infección por unos de los virus.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativa
METODO
: Prueba cualitativa inmunocromatográfica para la detección directa de los
antígenos de Influenza tipo A y B en muestras de aspirados nasofaríngeos.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Requiere Ayuno
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar recogida de muestras sanguinolentas o con contenido de leche u
DE TOMA DE MUESTRAS
otra sustancia alimenticia.
TIPO DE MUESTRA
: Aspirado Nasofaríngeo
TIPO DE TUBO
: Aspirado Nasofaríngeo
: Tubo o frasco estéril con 5 ml de
PBS
VOLUMEN MINIMO
: 3,0 mL (aspiración mínima)
CONDICIONES TRANSPORTE
: Debe realizarse lo más pronto posible después de la recogida, con medio
de transporte PBS.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 4 horas con refrigeración
Muestras con más de 24 horas de la recogida, sin que sean
adecuadamente refrigeradas.
ENTREGA RESULTADOS **
: **
2 horas para servicios de urgencia.
LIMITACIONES
: No recolectar las muestras en recipientes que contengan suero humano,
detergente o preservativos, ya que puede causar interferente en la
prueba.
**IMPORTANTE: Este examen se encuentra disponible SOLO si ha sido recomendado dentro del algoritmo de
estudio de casos de infección por virus respiratorio por el MINSAL y por lo tanto es variable su disponibilidad
en cada de campaña de invierno. Consultar en laboratorio.
188
INMUNOELECTROFORESIS DE SANGRE, CADENAS LIVIANAS Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: Neoplasia de Linfocitos B: Mieloma múltiple, Macroglobulinemia de
Waldestrom, desnutrición, síndrome nefrótico.
RANGOS DE REFERENCIA
: ALBUMINA 3.63 - 4.91 g/dL
ALFA1
0.11 - 0.35 g/dL
ALFA2
0.65 - 1.17 g/dL
BETA
0.74 - 1.26 g/dL
GAMMA
0.58 - 1.74 g/dL
METODO
: Método Helena Laboratorios para la separación y cuantificación de
proteínas por electroforesis en acetato de celulosa. (TITAN III)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 12 horas antes de la prueba (sangre).
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Sangre
: Tubo tapa roja o
amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
:
500 ul de Suero
Temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde la toma de muestra.
7 días hábiles
Hemólisis, lipemia e ictericia invalidan la prueba.
INMUNOELECTROFORESIS DE ORINA, CADENAS LIVIANAS Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: Neoplasia de Linfocitos B: Mieloma múltiple, Macroglobulinemia de
Waldestrom, desnutrición, síndrome nefrótico.
RANGOS DE REFERENCIA
: Presencia o Ausencia de componente proteico monoclonal.
METODO
: Método Helena Laboratorios para la separación y cuantificación de
proteínas por electroforesis en acetato de celulosa. (TITAN III)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Instrucciones de recolección de orina 24 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar Diuresis (volumen total de orina en 24 horas)
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Orina de 24 horas
TIPO DE TUBO
: Envase recolector de orina 24 horas.
VOLUMEN MINIMO
: 200 ml de orina (tomados de la orina 24 horas).
CONDICIONES TRANSPORTE
: Temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 4 horas desde la toma de muestra, (una vez completas las 24
horas de recolección)
ENTREGA RESULTADOS
: 7 días hábiles
189
LIMITACIONES
:
No puede ser orina parcial.
INMUNOELECTROFORESIS DE SANGRE, CADENAS PESADAS Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: Neoplasia de Linfocitos B: Mieloma múltiple, Macroglobulinemia de
Waldestrom, desnutrición, síndrome nefrótico.
RANGOS DE REFERENCIA
: ALBUMINA 3.63 - 4.91 g/dL
ALFA1
0.11 - 0.35 g/dL
ALFA2
0.65 - 1.17 g/dL
BETA
0.74 - 1.26 g/dL
GAMMA 0.58 - 1.74 g/dL
METODO
: Método Helena Laboratorios para la separación y cuantificación de
proteínas por electroforesis en acetato de celulosa. (TITAN III)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 12 horas antes de la prueba (sangre).
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Sangre
: Tubo tapa roja o
amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
:
500 µl de Suero
Temperatura ambiente.
4 horas desde la toma de muestra.
7 días hábiles
Hemólisis, lipemia e ictericia invalidan la prueba.
INMUNOELECTROFORESIS DE ORINA, CADENAS PESADAS Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: Neoplasia de Linfocitos B: Mieloma múltiple, Macroglobulinemia de
Waldestrom, desnutrición, síndrome nefrótico.
RANGOS DE REFERENCIA
: Presencia o Ausencia de componente proteico monoclonal.
METODO
: Método Helena Laboratorios para la separación y cuantificación de
proteínas por electroforesis en acetato de celulosa. (TITAN III)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Instrucciones de recolección de orina 24 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar Diuresis (volumen total de orina en 24 horas)
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Orina de 24 horas
TIPO DE TUBO
: Envase recolector de orina 24 horas.
VOLUMEN MINIMO
: 200 ml de orina (tomados de la orina 24 horas).
CONDICIONES TRANSPORTE
: Temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 4 horas desde la toma de muestra, (una vez completas las 24
horas de recolección).
ENTREGA RESULTADOS
: 7 días hábiles
LIMITACIONES
: No puede ser orina parcial.
190
INMUNOGLOBULINA IgA – IgM – IgG Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: Las inmunoglobulinas son producidas por las células plasmáticas como
respuesta inmuno humoral al contacto inmunitario con un antígeno.
Después del contacto inicial, en la reacción primaria, se forman los
anticuerpos de clase IgM, seguidos posteriormente por anticuerpos IgG e
IgA. Concentraciones bajas de inmunoglobulinas en sueros se presentan
en estados de inmunodeficiencia primarios, como también en
inmunodeficiencias secundarias, por ejemplo tumores malignos
avanzados, leucemia linfática, mieloma múltiple y macroglobulinemia de
Waldenström. Concentraciones elevadas de Igs en el suero, son
ocasionadas por aumentos policlonales y oligoclonales de las Igs como por
ejemplo, en enfermedades del hígado (hepatitis, cirrosis hepática),
infecciones agudas y crónicas, enfermedades auto inmunitarias, como
también en el cordón umbilical de recién nacidos con infecciones
intrauterinas y perinatales.
: IgG: 850 – 1850 mg/dL
RANGOS DE REFERENCIA
IgA: 47 – 520 mg/dL
IgM: 50 – 236 mg/dL
: Determinación cuantitativa de las inmunoglobulinas (IgG, IgA e IgM) en
METODO
suero humano y IgG Humana en orina y LCR, mediante Inmuno
nefelometría (BN ProSpec)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
: Sangre ( Suero)
TIPO DE MUESTRA
Sangre ( Plasma con Heparina o EDTA)
LCR
TIPO DE TUBO
: Sangre ( Suero)
: Tubo tapa roja o
amarilla
Sangre (Plasma)
: Tubo tapa lila (EDTA)
LCR
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
:
:
:
:
:
Tubo Estéril
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Máximo 2 horas desde tomada la muestra
Muestras lipémicas o hemolizadas
1 día hábil
191
IgE TOTAL Inmunología
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
La Inmunoglobulina IgE es el responsable del cuadro de una alergia de tipo
inmediato. En las enfermedades alérgicas como dermatitis atópica o asma
la concentración de IgE en el suero está, por lo general, correlacionada con
la intensidad de la exposición al alergeno y la severidad de los síntomas
alérgicos. En enfermedades por parásitos se encuentra igualmente un
aumento notorio de la concentración de IgE en el suero. En casos aislados
de mielomas – IgE, aparecen concentraciones extremadamente altas.
0 – 100 UI/mL
Determinación cuantitativa de las inmunoglobulina IgE en suero humano,
mediante Inmuno nefelometría (BN ProSpec)
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
Sangre ( Suero)
Sangre ( Plasma con Heparina o EDTA)
Sangre ( Suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
Sangre (Plasma)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
:
:
:
:
:
Tubo tapa lila (EDTA)
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Máximo 2 horas desde tomada la muestra
Muestras lipémicas o hemolizadas
1 día hábil
192
INSULINA Bioquímica
USO PREFERENTE
PRUEBA
DE
LA :
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
Los niveles de insulina son usados con mayor frecuencia para la evaluación
de hipoglicemia. Las muestras para la determinación de insulina en estos
pacientes deberían tomarse cuando la glucosa sanguínea sea ≤ 50 mg/dL.
Los niveles de Insulina en estos pacientes deberían estar bajo 20 μU/mL.
Niveles más altos sugiere una neoplasia secretora de insulina.
2.7 – 10.4 mg/dl (rango establecidos en individuos con 8 hrs. de ayuno y
glucosa basal <140 mg/dl )
Enzimoinmunoensayo quimioluminiscente de micropartículas.
Una vez tomada la muestra se debe dejar en hielo y enviar
inmediatamente al laboratorio.
No requiere instrucciones específicas.
Sangre
Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
4 mL
Los tubos se deben transportar a temperatura ambiente, tapados, en
posición vertical, en un recipiente y dentro de un contenedor sólido a
prueba de derrames.
30 minutos desde la toma de muestra.
Muestra hemolizadas, mal rotulada
durante el día
Los resultados se afectan si el paciente está en terapia con Insulina.
193
INSULINEMIA, CURVA DE (2 MUESTRAS) Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Los valores de insulina aislada o basal son usados con mayor frecuencia
PRUEBA
para la evaluación de hipoglicemia. Las muestras para la determinación de
insulina en estos pacientes deberían tomarse cuando la glucosa sanguínea
sea 50 mg/dL. Los niveles de insulina en estos pacientes deberían estar
bajo 20 UI/mL. Niveles más altos sugiere una neoplasia secretora de
insulina.
Los niveles de insulina, correlacionados simultáneamente con los de
glucosa, a diferentes tiempos después de la carga de glucosa, se utilizan
para el diagnóstico de trastornos en el metabolismo de la glucosa,
principalmente en la diabetes mellitus.
La respuesta a insulina es dependiente de la edad. Se recomienda
interpretar las concentraciones de insulina del plasma en relación a los
valores de glucosa determinadas simultáneamente.
RANGOS DE REFERENCIA
: Insulina basal: 2.7 – 10.4 Uu/ml en adultos.
Insulina post carga : <60 uU/ml
METODO
: Enzimoinmunoensayo quimioluminiscente de micropartículas. ARCHITEC i
2000
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ver instrucciones de test de sobrecarga de glucosa en página 38.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Respete los tiempos de toma de muestra indicado por el médico.
DE TOMA DE MUESTRAS
La curva de insulinemia no debe realizarse a pacientes que tengan una
glicemia basal ≥ 140 mg/dL.
Primero se debe obtener la muestra basal; inmediatamente después el
paciente debe ingerir la dosis de glucosa, la cual debe disolverse en agua
sin que sobrepase los 300mL e ingerirse en un tiempo máximo de 5
minutos, desde aquí se debe comenzar a tomar el tiempo para las demás
muestras.
Se toma una muestra basal y a los 120 minutos post ingesta de glucosa oral
en agua.
Cantidad de azúcar a ingerir:
Adultos: 75 g en 300 mL de agua.
Niños: 1.75 g por Kg de peso (máximo 75 g)
Rotular cada tubo con el nombre y dos apellidos del paciente indicar en
cada uno claramente el tiempo al que corresponde.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre
TIPO DE TUBO
: Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
2 tubos con 4 mL de sangre cada uno.
Los tubos se deben transportar a temperatura ambiente, tapados, en
posición vertical, en un recipiente y dentro de un contenedor sólido a
prueba de derrames.
194
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
ION CLORO Bioquímica
USO PREFERENTE
RANGOS DE REFERENCIA
:
:
:
:
Máximo 30 minutos desde la toma de muestra.
Muestra hemolizadas, mal rotulada
1 día hábil.
Los resultados se afectan si el paciente está en terapia con Insulina.
:
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
Confirmación de Fibrosis Quística.
Negativo: < 40 mEq/L
Limítrofe: 40 – 60 mEq/L
Positivo: > 60 mEq/L
Coulometría (Cloridómetro digital: titula concentración de ión cloro)
Profesional Enfermera/o a cargo de la toma de muestra, explicará el
procedimiento a los padres o apoderado del paciente (ejemplo: venir
hidratado, no presentar edema, no tener erosiones o sarpullidos en la piel,
etc).
Toma de muestra a cargo de un profesional capacitado (Enfermero/a) para
manejar la toma de muestra con sistema Macroduct®
Sudor (obtenida por estimulación de la sudoración en el antebrazo por
iontoforesis con pilocarpina).
Sistema Macroduct®
15 µL
Una vez tomada la muestra, enviar inmediatamente al laboratorio.
Inmediato
Se realizan los días lunes y miércoles. 24 horas desde su recepción en el
laboratorio.
Volumen inferior a 15 µL.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
:
:
:
:
:
LIMITACIONES
:
LACTATO DESHIDROGENASA (LDH) Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: La LDH se mide principalmente para diagnosticar condiciones en las cuales
hay daño tisular. Se puede encontrar elevada principalmente en hepatitis,
mononucleosis infecciosa, tumores malignos, linfomas, anemias distrofia
muscular, infarto agudo al miocardio, pancreatitis, cirrosis y necrosis del
hígado. Los niveles disminuidos no son clínicamente importantes.
RANGOS DE REFERENCIA
: <5 días
: 290 – 775 U/L
5-10 días
: 545 – 2000 U/L
>10 días a 2 años:180 -430
> 2 a 12 años : 110 – 295
>12 y < 60 años : 100 - 190
METODO
: Lactato/piruvato estandarización IFCC.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas antes de la prueba
INSTRUCCIONES
AL : Evitar la hemólisis de la muestra.
PERSONAL
TIPO DE MUESTRA
: Sangre
TIPO DE TUBO
: Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
4 mL para pacientes adultos adulto y pediátrico.
Los tubos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente. Evitar la agitación para
195
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADO
:
:
:
prevenir la hemólisis.
1 hora desde la toma de muestra.
Muestra hemolizada aunque sea leve.
1 día hábil.
LACTATO DESHIDROGENASA (LDH) LIQUIDOS BIOLOGICOS Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: La LDH se mide principalmente para diagnosticar condiciones en las cuales
hay daño tisular. Se puede encontrar elevada principalmente en hepatitis,
mononucleosis infecciosa, tumores malignos, linfomas, anemias distrofia
muscular, infarto agudo al miocardio, pancreatitis, cirrosis y necrosis del
hígado. Los niveles disminuidos no son clínicamente importantes.
RANGOS DE REFERENCIA
: Exudado > 300 - Transudado < 300 U/L
METODO
: Lactato/piruvato estandarización IFCC.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas antes de la prueba
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar la hemólisis de la muestra.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Líquido biológico
TIPO DE TUBO
: Tubo estéril.
VOLUMEN MINIMO
: 4 mL para pacientes adultos adulto y pediátrico.
CONDICIONES TRANSPORTE
: Los tubos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: 1 hora desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
: Muestras coaguladas
ENTREGA RESULTADOS
: 1 días hábil
LIMITACIONES
: Una leve hemólisis invalida la prueba. Oxalatos y salicilatos inhiben la LDH.
196
LH, HORMONA LUTEINIZANTE Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
:
La determinación de los niveles de LH es esencial para la predicción de la
ovulación, en la evaluación de infertilidad, en el diagnostico de
desordenes gonadal-pituitarios. Los niveles normales en la mujer varían
a lo largo del ciclo reproductor.
La elevación de LH en la mujer se observa en casos de hipofunción
ovárica primaria (Síndrome de Turner), ovario poliquístico y en la
Menopausia, en el hombre elevaciones de la LH se asocia a
hipogonadismo primario o secundario.
Hombres
: 1.14 a 8.75 mIU/mL
Mujeres Fase Folicular : 2.39 a 6.60 mIU/mL
Peak Medio Ciclo
: 9.06 a 74.24 mIU/mL
Fase Lútea
: 0.90 a 9.33 mIU/mL
Posmenopáusicas
: 10.39 a 64.57 mIU/mL.
Inmunoensayo de Micropartículas Quimioluminiscentes.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Ayuno de 8 horas antes de la prueba
Evitar la hemólisis de la muestra.
:
:
Sangre
Sangre
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
:
Tubo tapa roja o amarilla
4 mL para pacientes adultos adulto y pediátrico.
Temperatura ambiente.
1 hora desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
Muestra hemolizadas, mal rotulada, ictericia , lipémico
Durante el día
El clomifeno y la espironolactona provocan aumento de LH. La digoxina,
megestrol, noretindrona, progesterona disminuyen los niveles de LH.
197
LIPASA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
:
La lipasa sérica aumenta rápidamente en pacientes con pancreatitis aguda
y recurrente, absceso pancreático o pseudoquístico, trauma pancreático,
cáncer pancreático, obstrucción del ducto biliar común e ingestión de
drogas tóxicas al páncreas. También aumenta por varias condiciones
inflamatorias de la cavidad abdominal, enfermedades del tracto biliar,
absceso abdominal y falla renal.
Se describe que la lipasa es más específica que la amilasa total en el
diagnóstico de pancreatitis aguda.
8 – 78 U/L
METODO
:
Colorante de quinona.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
No requiere ayuno.
No requiere instrucciones específicas.
:
:
Sangre
Sangre
VOLUMEN MINIMO
:
4 mL para pacientes adultos adulto y pediátrico.
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
Temperatura ambiente.
4 horas desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
:
Muestra hemolizadas, mal rotulada.
1 día hábil.
:
Tubo tapa roja o amarilla
198
LÍQUIDO ASCÍTICO, CITOQUÍMICO DE Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Establecer la causa de acumulación de líquido anormal en el abdomen,
cuya presencia ha sido determinada por el examen físico o radiografía.
RANGOS DE REFERENCIA
: Aspecto
: Transparente.
Color
: Amarillo pálido.
Proteínas
: Exudado > 20 – 25 g/L.
Transudado
: < 20 – 25 g/L.
Glucosa
: hombres : 40 – 70mg/dl
Mujeres : 40 – 70mg/dl
Niños
: 60-80 mg/dl
Recuento celular: hasta 300/µL.
Recuento diferencial: hasta 25% de polimorfonucleares.
METODO
: Macroscópico
Microscópico
Espectrofotométrico (glucosa y proteínas)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 12 horas previo al examen. Vaciar la vejiga inmediatamente
antes de la prueba.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : La paracentesis o punción de la cavidad abdominal, debe ser realizada por
DE TOMA DE MUESTRAS
un médico, en estrictas condiciones de esterilidad, en jeringa heparinizada.
Una vez extraída la muestra se debe trasvasijar a los contenedores
mencionados más adelante.
TIPO DE MUESTRA
: Líquido ascítico.
TIPO DE TUBO
: Tubo de cultivo
VOLUMEN MINIMO
:
5 a 10 mL.
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente.
Menos de 1 hora de tomada la muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
:
Líquidos coagulados, hemorrágicos.
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
Dentro del día. 2 horas en caso de muestras de servicios de urgencia.
La bilis, orina, materia fecal, o sangre del sitio de la punción o de los vasos
sanguíneos puede interferir con el análisis de la muestra.
Los líquidos coagulados o hemorrágicos no se deben procesar.
199
LÍQUIDO CEFALORRAQUIDEO, CITOQUÍMICO DE Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Herramienta útil en el diagnóstico de meningitis bacteriana, micótica,
micobacteriana y amebiana, procesos malignos, hemorragia
subacarnoidea, esclerosis múltiple y trastornos desmielinizantes.
RANGOS DE REFERENCIA
: Aspecto: Claro.
Color: Incoloro.
Proteínas: 15 – 40 mg/dl
Glucosa: hombres: 40-70mg/dl
mujeres: 40-80mg/dl
niños: 60 - 80mg/dl.
Recuento celular: 0 – 5 leucocitos/µL en adultos.
0 – 30 leucocitos/µL en RN.
Recuento diferencial: 0 –
8% polimorfonucleares.
92 – 100% mononucleares.
METODO
: Macroscópico
Microscópico
Espectrofotométrico (glucosa y proteínas)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Sin indicaciones especiales.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : La punción lumbar debe ser realizada por un médico, en estrictas
DE TOMA DE MUESTRAS
condiciones de esterilidad, en jeringa heparinizada. Una vez extraída la
muestra se debe trasvasijar a los contenedores mencionados más
adelante.
TIPO DE MUESTRA
: Líquido cefalorraquídeo.
TIPO DE TUBO
: Tubo de cultivo
VOLUMEN MINIMO
: 3 – 10 mL en cada tubo.
CONDICIONES TRANSPORTE
: Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Si se tarda más de 1 hora en llegar al
laboratorio, la muestra se debe refrigerar y transportar en estas
condiciones.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Transportar inmediatamente al laboratorio.
RECHAZO DE MUESTRA
: Lipemia
ENTREGA RESULTADOS
: Dentro del día. 2 horas en caso de muestras de servicios de urgencia.
LIMITACIONES
: No se pueden procesar las muestras, con lipemia severa, con
hiperproteinemia o hiperglicemia
debido a que estas arrojan
pseudohiponatremia. Muestras hemolizadas alteran los resultados del
Potasio.
200
LÍQUIDO PLEURAL, CITOQUÍMICO DE Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Estudio etiológico del derrame pleural. El exudado resulta de la
PRUEBA
enfermedad pleural, siendo dos los mecanismos de formación del derrame
pleural: aumento en la permeabilidad de los capilares (como en la
neumonía) y obstrucción linfática (como en el linfoma). El transudado
resulta de la alteración en los mecanismos de homeostasis que gobiernan
la formación y absorción del líquido pleural. Ocurre en la disminución de la
presión coloidosmótica del plasma o en el aumento de la presión
hidrostática en la circulación mayor o menor. Ante un Transudado la
actitud debe dirigirse sólo hacia la patología casual (insuficiencia cardiaca,
cirrosis, nefrosis, etc.). Ante un exudado se ha de intentar aclarar la etilogía
de la enfermedad pleural.
RANGOS DE REFERENCIA
: Aspecto: Claro
Color: Amarillo pálido
Proteínas: g/dl
Glucosa: 60-100 mg/dl
Recuento celular: hasta 1000/mm3
Recuento diferencial: hasta 25% de Polimorfonucleares
METODO
: Macroscópico
Microscópico
Glucosa : Hexoquinasa
Proteína cloruro bencetonio
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : No requiere indicaciones especiales.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : La punción pleural o toracocentesis, debe ser realizada por un médico, en
DE TOMA DE MUESTRAS
estrictas condiciones de esterilidad, en jeringa heparinizada.
Una vez extraída la muestra se debe trasvasijar a los contenedores
mencionados más adelante y llevar inmediatamente al laboratorio.
TIPO DE MUESTRA
: Líquido pleural
TIPO DE TUBO
: Tubo de cultivo
VOLUMEN MINIMO
: 3 – 10 mL en cada tubo.
CONDICIONES TRANSPORTE
: Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Una vez extraída la muestra, ésta se debe transportar inmediatamente al
laboratorio.
RECHAZO DE MUESTRA
: Líquido coagulado y muy hemorrágico
ENTREGA RESULTADOS
: Dentro del día. 2 horas en caso de muestras de servicios de urgencia.
201
LÍQUIDO PLEURAL, pH Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
:
:
:
:
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
:
La determinación del valor de pH en líquido pleural es muy útil en la
evaluación de los derrames pleurales. En ausencia de acidosis sanguínea, el
descenso del pH pleural se correlaciona, bien con la disminución de la
glucosa o con el incrementode LDH. Tiene así una gran utilidad en el
diagnóstico diferencial de los exudados, además permite estimar la
evolución y el pronóstico del proceso subyacente. La acidosis del líquido
pleural (pH<7,3) se ha encontrado en la ruptura esofágica (incidencia del
100 % después de 24 h, pH=6,00), empiema (pH=5,5-7,29), pleuresía
reumática (pH=7,00) y con un pH entre 7,00 y 7,29 las pleuresías
pronósticas y terapéuticas en los derrames paraneumónicos y neoplásicos.
En los primeros, un pH<7,10 asociado a glucosa menor de 40 mg/dL y LDH
mayor de 1 000 U/L, es indicación de drenaje para su adecuada resolución.
En los segundos, un pH<7,3 predice una supervivencia corta, elevada
rentabilidad de la biopsia pleural y la citología, y respuesta pobre a la
pleurodesis química.
pH ≥ 7.3
Tira reactiva
No requiere indicaciones especiales.
La punción pleural o toracocentesis, debe ser realizada por un médico, en
estrictas condiciones de esterilidad, en jeringa heparinizada.
Una vez extraída la muestra se debe trasvasijar a los contenedores
mencionados más adelante y llevar inmediatamente al laboratorio.
Líquido pleural
Tubo de cultivo
Jeringa heparinizada.
1 a 3 mL.
Las jeringas se deben transportar tapadas herméticamente, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a 4°C.
Una vez extraída la muestra, ésta se debe transportar inmediatamente al
laboratorio.
Líquido coagulado o muy hemorrágico
Dentro del día. 2 horas en caso de muestras de servicios de urgencia.
202
LÍQUIDO SINOVIAL, CITOQUÍMICO DE Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Su estudio proporciona información útil para el diagnóstico de artritis
supurativa aguda, artritis por ácido úrico (gota) o pirofosfato cálcico
(pseudogota).
También es útil en el diagnóstico diferencial de las artritis: traumática,
reumática, tuberculosa, bacteriana aguda, fiebre reumática, LES, etc.
RANGOS DE REFERENCIA
: Aspecto:
Claro a ligeramente turbio.
Color:
Amarillo pálido.
Glucosa:
60 – 100 mg/dL.
Recuento celular: hasta 200 x µL.
Recuento diferencial PMN: 0 – 20%, MN: 75 – 100%.
METODO
: Macroscópico
Microscópico
Espectrofotométrico (glucosa y proteínas).
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Idealmente ayuno de 6 horas o más para permitir el equilibrio de la
glucosa entre el líquido y el plasma.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : La punción articular o artrocentésis, debe ser realizada por un médico, en
DE TOMA DE MUESTRAS
estrictas condiciones de esterilidad, en jeringa heparinizada.
Una vez extraída la muestra se debe trasvasijar a los contenedores
mencionados más adelante.
TIPO DE MUESTRA
: Líquido articular.
TIPO DE TUBO
: Tubo de cultivo
Jeringa heparinizada.
VOLUMEN MINIMO
: 5 a 10 mL.
CONDICIONES TRANSPORTE
: Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Transportar inmediatamente al laboratorio.
RECHAZO DE MUESTRA
: Líquidos contaminados
Líquido coagulado o muy hemorrágico
ENTREGA RESULTADOS
: Dentro del día 2 horas en caso de muestras de servicios de urgencia.
203
LITIO, NIVELES PLASMÁTICOS DE Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: La medición de niveles de Litio se utiliza en la evaluación de la terapia con
este medicamento. Se ha observado que la respuesta a la terapia ha
mejorado en 2 a 3 veces con la aplicación de una adecuada monitorización
terapéutica. Una baja relación dosis/respuesta y un rango terapéutico
estrecho hacen de esta droga un excelente candidato para aumentar la
eficacia terapéutica a través de la monitorización de sus niveles.
RANGOS DE REFERENCIA
: Terapia de mantenimiento: 0.6 – 1.2 mEq/L
Concentración tóxica: > 1.5 mEq/L
METODO
: Colorimétrico
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : 12 horas post dosis.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Se debe indicar en la orden la hora de toma de muestra, edad del paciente,
DE TOMA DE MUESTRAS
dosis diaria (mg.), última dosis (hora y mg.).
Tiempo habitual de muestreo: 10 – 12 horas después de la última dosis.
Evite la hemólisis. Una vez tomada la muestra se debe enviar
inmediatamente al laboratorio.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre
TIPO DE TUBO
: Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
:
4 mL para pacientes adultos adulto.
Temperatura ambiente.
4 horas desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
:
ENTREGA RESULTADOS
:
Muestra hemolizadas, mal rotulada.
Muestra tomada en tubo de tapa verde con Heparina de Litio.
Se realizan los días miércoles de cada semana.
204
MAGNESIO Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
:
:
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
:
:
Evaluación de alteraciones por malabsorción, pancreatitis, desórdenes de
la depuración renal y control del tratamiento de la toxemia del embarazo.
Valores aumentados se pueden encontrar en la deshidratación,
insuficiencia renal aguda o crónica, diabetes mellitus descompensada,
insuficiencia adrenocortical, enfermedad de Addison, trauma tisular,
hipotiroidismo, LES, mieloma múltiple, pacientes con ingesta de antiácidos
que contienen Magnesio, mujeres en tratamiento con sulfato de Magnesio
por pre-eclampsia o eclampsia. Valores disminuidos se asocian con una
ingesta inadecuada y/o una absorción anómala, pancreatitis aguda,
hipoparatiroidismo y alcoholismo crónico.
1.3 – 2.1 mEq/L
Arsenazo
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar la hemólisis de la muestra y el uso prolongado del torniquete. No
tomar la muestra durante la hemodiálisis.
Sangre
Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
4 mL para pacientes pediátricos, pacientes adultos (servicios de UPC,
Diálisis y transplante renal adulto y pediátrico.
Los tubos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente. Evitar la agitación para
prevenir la hemólisis.
1 hora desde la toma de muestra.
Muestra hemolizadas, mal rotulada.
Dentro del día hábil.
Fármacos que interfieren: Aspirina (terapia prolongada), Litio,
Progesterona, Triamtereno, Vitamina D y sales de Magnesio (antiácidos y
laxantes), provocan un aumento de Magnesio en el suero. Salbutamol,
Aldosterona, Aminoglicósidos, sales de Calcio, Cisplatino, Ciclosporina,
Digoxina, Furosemida, diuréticos
Tiazídicos, Etanol, Glucagón, Insulina (altas dosis en coma diabético)
Anticonceptivos orales y Fenitoina, provocan una disminución de Magnesio
en el suero.
205
MAGNESIO ORINA AISLADA Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Evaluación de alteraciones por malabsorción, pancreatitis, desórdenes de
PRUEBA
la depuración renal y control del tratamiento de la toxemia del embarazo.
Valores aumentados se pueden encontrar en la deshidratación,
insuficiencia renal aguda o crónica, diabetes mellitus descompensada,
insuficiencia adrenocortical, enfermedad de Addison, trauma tisular,
hipotiroidismo, LES, mieloma múltiple, pacientes con ingesta de antiácidos
que contienen Magnesio, mujeres en tratamiento con sulfato de Magnesio
por pre-eclampsia o eclampsia. Valores disminuidos se asocian con una
ingesta inadecuada y/o una absorción anómala, pancreatitis aguda,
hipoparatiroidismo y alcoholismo crónico.
RANGOS DE REFERENCIA
: 3.4 - 11.4 mEq/L
METODO
: Arsenazo
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ver instructivo para pacientes para toma de muestra de orina, página 39.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Preguntar a la paciente sobre su período menstrual o presencia de
DE TOMA DE MUESTRAS
leucorrea al momento de recolectar la orina. En ambos casos se deberá
cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para evitar que la orina se
contamine.
Verificar correcta identificación de la muestra.
TIPO DE MUESTRA
: orina
TIPO DE TUBO
: Frasco orina tapa roja
VOLUMEN MINIMO
: 10 mL para pacientes pediátricos, pacientes adultos (servicios de UPC,
Diálisis y transplante renal adulto y pediátrico.
CONDICIONES TRANSPORTE
: Los frascos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente
TIEMPO DE TRANSPORTE
: 1 hora desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
:
ENTREGA RESULTADOS
: 1 día hábil.
LIMITACIONES
: La hemólisis invalida la prueba. Fármacos que interfieren: Aspirina (terapia
prolongada), Litio, Progesterona, Triamtereno, Vitamina D y sales de
Magnesio (antiácidos y laxantes), provocan un aumento de Magnesio en el
suero. Salbutamol, Aldosterona, Aminoglicósidos, sales de Calcio,
Cisplatino, Ciclosporina, Digoxina, Furosemida, diuréticos
Tiazídicos, Etanol, Glucagón, Insulina (altas dosis en coma diabético)
Anticonceptivos orales y Fenitoina, provocan una disminución de Magnesio
en el suero.
206
MAGNESIO ORINA 24 HORAS Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Evaluación de alteraciones por malabsorción, pancreatitis, desórdenes de
la depuración renal y control del tratamiento de la toxemia del embarazo.
Valores aumentados se pueden encontrar en la deshidratación,
insuficiencia renal aguda o crónica, diabetes mellitus descompensada,
insuficiencia adrenocortical, enfermedad de Addison, trauma tisular,
hipotiroidismo, LES, mieloma múltiple, pacientes con ingesta de antiácidos
que contienen Magnesio, mujeres en tratamiento con sulfato de Magnesio
por pre-eclampsia o eclampsia. Valores disminuidos se asocian con una
ingesta inadecuada y/o una absorción anómala, pancreatitis aguda,
hipoparatiroidismo y alcoholismo crónico.
RANGOS DE REFERENCIA
: 6 - 10 mEq/día
METODO
: Arsenazo
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ver instructivo para paciente de recolección de orina 24 horas, página 39.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar correcta identificación de la muestra.
DE TOMA DE MUESTRAS
Si se envía una alícuota de orina, se debe registrar en solicitud de examen
la diuresis total en ml.
TIPO DE MUESTRA
: Orina de 24 horas
TIPO DE TUBO O FRASCO
: Contenedor de 5 litros que contiene HCl 6 mol/l, por lo que DEBE ser
solicitado al laboratorio.
VOLUMEN MINIMO
: Entregar TODA la orina colectada.
CONDICIONES TRANSPORTE
: Los contenedores se deben transportar tapados en posición vertical y a
temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: 1 hora desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
:
Mal rotulado
Contenedor no apropiado.
ENTREGA RESULTADOS
:
2 días hábiles.
207
MICROHEMAGLUTINACIÓN ANTI Treponema pallidum (MHA TP) Serología
USO DE LA PRUEBA
: Detección de anticuerpos contra el Treponema pallidum.
RANGOS DE REFERENCIA
: No Reactivo
METODO
: Hemoaglutinación pasiva. Test Treponémico.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
: Ayuno de 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar la hemólisis de la muestra.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre.
TIPO DE TUBO
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES DE TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRAS
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
Adultos: 5 mL.
RN y lactantes: 2 mL.
Los tubos se deben transportar verticalmente a temperatura ambiente en
un contenedor o gradilla y enviarla inmediatamente al laboratorio. Si las
muestras no son enviadas el mismo día al laboratorio, deberán ser
centrifugadas, enviar el suero y guardarlas en refrigerador hasta su
envío, dentro de las 72 horas siguientes. Si las muestras se envían por
correo, los tubos plásticos deben estar sellados herméticamente y
conservar la cadena de frío.
Inmediato
Muestras hemolizadas y lipémicas
El examen se realiza el día martes de cada semana.
La técnica de TPHA puede dar lugar a reacciones cruzadas con otras
enfermedades de infecciones treponémicas y a reacciones falsamente
positivas con muestras de pacientes afectos de mononucleosis, lepra,
drogadictos o enfermedades autoinmunes. Ocasionalmente, en estados
iniciales de sífilis, los anticuerpos específicos no pueden ser detectados
por esta técnica.
208
MIELOGRAMA Hematología
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADO
LIMITACIONES
:
:
:
:
Diagnóstico de patologías hematológicas o descarte de patologías
hematológicas no definidas en exámenes de rutina.
Rangos de acuerdo a criterio del hematólogo.
Punción esternal o cresta ilíaca de médula ósea, aspirado y tinción de la
muestra obtenida.
No requiere ayuno.
La punción debe ser realizada por un médico hematólogo.
Médula ósea.
Láminas de vidrio
(portaobjeto).
4 láminas con el extendido de médula ósea.
Las láminas se deben transportar a temperatura ambiente y adosadas al
formulario de solicitud de exámenes.
Durante el día.
No aplica
Depende de médico hematológo responsable del informe.
Depende del operador, cantidad de muestra y extensión del frotis.
209
MICROALBUMINURIA AISLADA Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Constituye un marcador de enfermedad renal temprana que permite
PRUEBA
actuar a fin de evitar la progresión de la enfermedad hacia estados más
avanzados. Las complicaciones en el paciente con diabetes pueden tener
consecuencias graves como la ceguera, infarto del miocardio,
amputaciones y diálisis renal. Todas estas complicaciones pueden
detectarse y tratarse a tiempo si se realizan exámenes periódicos de
microalbuminuria.
La microalbuminuria en muestra aislada de orina debe relacionarse con la
creatininuria
RANGOS DE REFERENCIA
: Razón microalbuminuria(ug)/creatininuria(mg) >30
METODO
: Inmunoturbidimétrico.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Adulto ver Instructivo de toma de muestra orina, página 39.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
:
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
:
:
:
:
:
Preguntar a la paciente sobre su período menstrual o presencia de
leucorrea al momento de recolectar la orina. En ambos casos se deberá
cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para evitar que la orina se
contamine.
Lactante femenino colocar la bolsa colectora sobre la zona del periné
fijando la parte adhesiva a la piel.
Lactante masculino, colocar la bolsa colectora alrededor del pene.
Es necesario revisar periódicamente la bolsa colectora para verificar su
correcta posición (podría salirse y perder la esterilidad).
Si antes de media hora no se ha recogido la muestra o la bolsa colectora se
ensucia, hay que sustituirla, ya que la contaminación con microbiota fecal
es un problema bastante frecuente.
Se puede colocar el pañal para asegurar la integridad de la bolsa, revisando
la presencia de orina en la bolsa colectora frecuentemente.
Verificar la correcta rotulación de la muestra.
Si se envía una alícuota de orina, se debe registrar en solicitud de examen
la diuresis total en ml.
Primera orina de la mañana, segundo chorro
Contenedor con una capacidad de 5 litros otorgado por el laboratorio, que
debe estar limpio y seco.
Para la alícuota usar Tubo estéril de vidrio con tapón de algodón
hidrófobo.
10 mL
Los tubos, frascos y botellas se deben transportar tapados en posición
vertical, en un contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
Máximo 2 horas desde la toma de muestra.
Mal rotulado.
1 día hábil
210
LIMITACIONES
:
Para interpretar los resultados se deben considerar factores que pueden
modificar los niveles de albúmina en la orina, tales como el ejercicio físico,
la infección urinaria, fiebre, etc.
MICROALBUMINURIA DE 24 HORAS Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Constituye un marcador de enfermedad renal temprana que permite
actuar a fin de evitar la progresión de la enfermedad hacia estados más
avanzados. Las complicaciones en el paciente con diabetes pueden tener
consecuencias graves como la ceguera, infarto del miocardio,
amputaciones y diálisis renal. Todas estas complicaciones pueden
detectarse y tratarse a tiempo si se realizan exámenes periódicos de
microalbuminuria.
Cuantificación en orina de 24 horas en mejor marcador en comparación
con microalbuminuria en orina aislada.
RANGOS DE REFERENCIA
: 0 – 30 mg/24hrs
METODO
: Inmunoturbidimétrico.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Para la correcta valoración de los resultados de un análisis efectuado sobre
orina de 24 horas es sumamente importante que la recogida de la orina
sea completa.
Ver instructivo para pacientes para recolección orina 24 horas, página 39.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar la correcta rotulación de todos los recipientes antes de enviar la
DE TOMA DE MUESTRAS
muestra al laboratorio. Si el volumen de orina es medido en la Toma de
muestra, se debe anotar el valor en el formulario de solicitud de
exámenes.
TIPO DE MUESTRA
: Orina de 24 horas
TIPO DE TUBO
: Contenedor Frasco orina tapa roja
VOLUMEN MINIMO
: Toda la orina recolectada en 24 horas o una alícuota de 10 mL.
CONDICIONES TRANSPORTE
: Los tubos, frascos y botellas se deben transportar tapados en posición
vertical, en un contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 2 horas desde la toma de muestra.
CONDICIONES DE RECHAZO DE : Mal rotulado.
MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
: 1 día hábil
LIMITACIONES
: Para interpretar los resultados se deben considerar factores que pueden
modificar los niveles de albúmina en la orina, tales como el ejercicio físico,
la infección urinaria, fiebre, etc.
211
MYCOPLASMA, ANTICUERPOS IgM –IgG Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : El Mycoplasma pneumoniae es un patógeno del tracto respiratorio que se
PRUEBA
adhiere a través de secreciones respiratorias de personas infectadas y con
enfermedades del tracto respiratorio inferior.
Produce principalmente infección respiratoria grave en niños mayores y
adultos jóvenes (neumonía "atípica"), aunque la enfermedad más leve
aparece en lactantes menores y niños pequeños, situación que dificulta en
ocasiones el diagnóstico y por ende el manejo de la misma.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
METODO
: ELISA (Ensayo por inmuno absorción ligado a enzimas) para la
determinación cualitativa y semicuantitativa de anticuerpos IgG e IgM de
Mycoplasma pneumoniae en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (Suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (Suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso
exclusivo de laboratorios)
RECHAZO DE MUESTRAS
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Máximo 2 horas desde tomada la muestra
Centrifugar y separar la muestra si no será procesada en el día.
Refrigerar a 2-8°C por máximo 48 horas o congelar a -20°C o a
temperatura inferior hasta su análisis. Una vez descongeladas las muestras
deben agitarse bien antes de utilizarse.
Muestras lipémicas o hemolizadas.
2 días hábiles
212
NITROGENO UREICO SANGUINEO (BUN) Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Constituye una ayuda diagnóstica para diferenciar entre las diversas causas
PRUEBA
de insuficiencia renal. Indicador muy útil de función de hígado y riñón. La
concentración aumenta con la edad y es mayor en hombres que en
mujeres. Valores aumentados se observa en la insuficiencia renal cuando
el valor del filtrado glomerular se ha reducido 1/5 del normal, en
insuficiencia cardíaca congestiva, shock, hemorragias gastrointestinales,
stress, IAM, enfermedad renal intrínsica aguda o crónica, dieta con alto
contenido proteico. Valores disminuidos se observan en el embarazo,
acromegalia, infancia, daño hepático severo, dieta baja en proteínas y alta
en carbohidratos.
RANGOS DE REFERENCIA
: 8.9 – 25.7 mg/dl
METODO
: Enzimático glutamato deshidrogenada (UV)
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar la hemólisis de la muestra.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre
TIPO DE TUBO
: Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
Sangre
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRA
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
:
Tubo tapa verde (anticoagulante
heparina de litio), llenar hasta la marca
para los servicios de UPC.
4mL para pacientes pediátricos, 4mL para pacientes adultos (tubo tapa
roja), 4 mL (tubo tapa verde) para servicios de UP Critico.
Los tubos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente. Evitar la agitación para
prevenir la hemólisis.
4 horas desde la toma de muestra.
Muestra hemolizadas, Lipémicas, mal rotulada.
2 horas para pacientes de urgencia. Pacientes hospitalizados y
ambulatorios durante el día.
Hemólisis y lipemia invalidan la prueba. Fármacos que interfieren:
Alopurinol, aminoglicósidos, cefalosporinas, cisplatino, furosemida,
indometacina, metotrexato, metildopa, aspirina, anfotericina B,
bacitracina, neomicina, probenecid, vancomicina, rifanpicina, propnolol,
espironolactona, tetraciclina, diuréticos triazídicos, aumentan el BUN.
Cloranfenicol, estreptomicina, disminuyen el BUN.
213
ORINA COMPLETA Orinas
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADO
:
LIMITACIONES
:
:
:
:
:
:
:
:
Afecciones de las vías urinarias y renales, afecciones cardiovasculares,
desequilibrio hidrosalino, trastornos metabólicos y afecciones hepáticas.
Aspecto: Transparente
Urobilinógeno: 0-1 mg/d)
Densidad: 1016 – 1.022 g/ml
pH: 4.8 – 7.4
Glucosuria: 0-15 mg/dL
Nitritos: Negativo
C. Cetónicos: 0-5 mg/dL
eritrocitos 0-5Eri/µl
Proteína: 0 – 10 mg/dl
leucocitos 0-10 Leu/µl
Bilirrubina: 0-0.2mg/dL)
Hemoglobina: Negativo (0-5 eri/µL)
Incluye la determinación físico-química y la observación microscópica
En adultos ver instructivo para paciente en página 39.
Lactante femenino: Colocar la bolsa recolectora sobre la zona del periné,
fijando la parte adhesiva a la piel.
Lactante masculino: Colocar la bolsa recolectora alrededor del pene.
Revisar periódicamente la bolsa recolectora para verificar su correcta
posición (podría salirse y perder esterilidad). Si antes de media hora no se
ha recogido la muestra o la bolsa colectora se ensucia, hay que sustituirla,
para evitar contaminación fecal. Se puede colocar el pañal para asegurar la
integridad de la bolsa, revisando la presencia de orina en la bolsa
recolectora frecuentemente.
Si la muestra es llevada a Toma de Muestras y rotulada por el paciente,
asegurarse que correspondan los datos del paciente en el rótulo.
Primera orina de la mañana, segundo chorro.
Frasco Estéril
10 mL
Temperatura ambiente
Máximo 2 horas desde la toma de muestra.
Frasco mal rotulado, Derrame
2 horas para pacientes de urgencia. Pacientes hospitalizados y
ambulatorios durante el día.
Contaminación de la muestra debido al inadecuado aseo genital.
214
PARASITOLÓGICO SERIADO DE DEPOSICIONES Parasitología
USO PREFERENTE DE LA : Sospecha de cualquier parasitosis intestinal o elementos parasitarios que
PRUEBA
se eliminen con las deposiciones.
RANGOS DE REFERENCIA
: Ausencia de quistes, trofozoitos, ooquistes y huevos de parásitos.
METODO
: PAF-Burrows.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : No debe ingerir en los últimos días antibióticos, purgantes, oleosos,
antiparasitarios, carbón ni bario. Ver instructivo para paciente en página
Nº 41)
La cantidad de muestra no debe ser superior al volumen del fijador.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar que la rotulación de las muestras esté correcta y corresponda al
DE TOMA DE MUESTRAS
paciente.
TIPO DE MUESTRA
: Deposición, sin contaminación con orina.
TIPO DE TUBO
: Frasco plástico con tapa hermética entregado por
el laboratorio con fijador PAF.
VOLUMEN MINIMO
: 5 gr. cada muestra.
CONDICIONES
DE : Los frascos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
TRANSPORTE
contenedor a temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Hasta 24 horas desde la obtención de la última muestra.
TIEMPO
ENTREGA : 3 días hábiles
RESULTADOS
LIMITACIONES
: Para la búsqueda de huevos de Fasciola hepática se deben recolectar 10
muestras seriadas, recolectadas en 10 días seguidos, en lo posible en dos
frascos diferentes.
PARASITOLÓGICO EN CONTENIDO DUODENAL Parasitología
USO PREFERENTE DE LA : Búsqueda de huevos de Fasciola hepática y trofozoitos de Giardia lamblia
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
: No se observa elementos parasitarios.
METODO
: Concentración por centrifugación y observación microscópica.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : No aplica.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Enviar todo el contenido recolectado, procurando no perder muestra.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sondeo duodenal.
TIPO DE TUBO
: Tubo tapa roja.
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
DE :
:
10 mL.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente.
4 horas.
215
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
LIMITACIONES
:
:
2 días hábiles
No se observan
PARATOHORMONA INTACTA (PTH INTACTA) Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : La determinación de la PTH intacta permite discriminar entre pacientes
PRUEBA
con hiperparatiroidismo primario y pacientes hipercalcémicos no
paratiroideo.
RANGOS DE REFERENCIA
: 15.0 – 68.3 pg/mL.
METODO
: Enzimoinmunoensayo Quimioluminiscentes
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Una vez tomada la muestra se debe dejar en un recipiente con agua/hielo
DE TOMA DE MUESTRAS
y enviar inmediatamente al laboratorio.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre
TIPO DE TUBO
: Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
LIMITACIONES
:
:
:
:
PERFIL CRITICO Bioquímica
USO PREFERENTE DE
PRUEBA
LA :
RANGOS DE REFERENCIA
:
4mL para pacientes pediátricos, 4mL para pacientes adultos (tubo tapa
roja), 4 mL (tubo tapa verde) para servicios de UP Critico.
Los tubos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente. Evitar la agitación para
prevenir la hemólisis.
30 minutos desde la toma de muestra.
Muestra hemolizada, Lipémica, mal rotulada.
2 días hábiles
La lipemia, ictericia la hemólisis interfieren con el ensayo.
Evaluación de la función respiratoria, metabólica, porcentaje de glóbulos
rojos y nivel de hemoglobina. Incluye un conjunto de parámetros; PH,
PCO2, PO2, Saturación de O2, Hematocrito, Hemoglobina, Sodio, Potasio,
Cloro, Calcio iónico y Glucosa.
pH:
Hombres:
7,35 – 7,45
Mujeres:
7,35 – 7,44
Niños:
7,34 – 7,44
PCO2:
Hombres:
22– 26 mm/Hg
Mujeres:
32– 45 mm/Hg
Niños:
35- 45 mm/Hg
PO2:
75–100 m/Hg
Saturación de O2:95 – 98 %
Hematocrito:
Hombres:
38 – 52 %
Mujeres:
35 – 47 %
Niños:
32 – 42 %
Hemoglobina:
Hombres:
14 – 17,5 gr/dl
216
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRA
:
:
:
:
Mujeres:
12,3–15,3 gr/dl
Niños:
11 – 15 gr/dl
Sodio:
136–145 mmol/L
Potasio:
3,4 – 4,7 mml/L
Cloro:
98 – 107 mmol/L
Calcio iónico: 4,36 – 5,2 mg/dl
Glucosa:
Hombres:
40 – 70 mg/dl
Mujeres:
40 – 70 mg/dl
Niños:
60 – 80 mg/dl
Amperometría en PO2 y electrodos de ión selectivo para Sodio, Potasio,
Cloro, Calcio iónico, pH y PCO2. EL pH es medido usando una membrana
de vidrio de ión selectivo de hidrógeno. El PCO2 es medido con un sensor
de pH modificado. El PO2 es medido amperométricamante por la
generación de una corriente a la superficie del sensor.
Hematocrito se obtiene por la resistencia eléctrica de la medición de la
muestra de sangre. La hemoglobina es medida por la combinación de la
conductividad y una medición fotométrica.
La medición de glucosa está basada en el nivel de H2O2 producido durante
la reacción enzimática entre las moléculas de glucosa y las de oxígeno en
presencia de la enzima glucosa oxidasa.
Debe reposar durante 30 minutos antes de la recolección de la muestra.
Las arterias frecuentemente utilizadas para la toma de muestra son la
cubital y radial. Una vez localizada la arteria por palpación, se elimina la
protección de la aguja de la jeringa y se realiza la punción, extraer entre
0,6 y 1,0 ml de sangre. Al finalizar la punción retirar la aguja de la jeringa y
tapar con el tapón especial que trae la jeringa, agitar suavemente la jeringa
para mezclar la sangre con el anticoagulante. Presionar por unos segundos
el lugar de punción con una gasa o con algodón para detener la salida de
sangre. Dejar un pequeño aposito en la zona de punción.
Si se observan burbujas de aire en la jeringa deben ser eliminadas lo antes
posible. Enviar inmediatamente la muestra al Laboratorio en un medio
refrigerado (gel refrigerante).
Sangre arterial
Sangre
:
Jeringa heparinizada de 1ml. Debe ser
solicitada al Laboratorio.
Entre 0,6ml y 1,0 ml de sangre
Transportar la jeringa sellada con tapa de goma (o plástica), sin aguja, en
un contenedor refrigerado a 4 grados Celsius.
Menos de 30 minutos desde que se toma la muestra.
Se rechazará y se solicitará nueva muestra en caso de:
- Muestra coagulada
- Jeringa con volumen insuficiente
- Jeringa con burbuja de aire
- Jeringa con aguja
- Jeringa con manguera de mariposa amarrada y cortada
- Jeringa manchada con sangre
- Jeringa sin rotular o mal rotulada.
217
TIEMPO
RESULTADOS
ENTREGA :
PERFIL LIPIDICO Bioquímica
USO PREFERENTE DE
PRUEBA
LA :
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
Pabellón 30 minutos. Paciente de otros servicios criticos, urgencia y otros
servicios clínicos; 60 minutos.
Evaluación de riesgo de enfermedad cardiaca y vascular. Los parámetros
que incluidos en el estudio son; Colesterol Total, Colesterol HDL, Colesterol
LDL, Colesterol VLDL, Triglicéridos e índice Colesterol Total / HDL.
Colesterol Total:
Hombres
0 – 200 mg/dl
Mujeres
0 – 170 mg/dl
Niños
0 – 170 mg/dl
Colesterol HDL:
> 39 mg/dl
Colesterol LDL:
0 – 130 mg/dl
Colesterol VLDL:
0 – 30 mg/dl
Triglicéridos:
0 – 200 mg/dl
Indice Colest.T/Colest.HDL
<6
Colesterol Total;
Método enzimático- colorimétrico CHOD-PAP
Colesterol HDL; Método enzimático-colorimétrico CHOD – PAP post
precipitación con Fosfotungstato.
Trigliceridos: Método de Glycerol fosfato oxidasa
Colesterol LDL:Es obtenido mediante la siguiente fórmula;
Colesterol
LDL=Colesterol total –((Trig./5)+Colesterol HDL)).
Colesterol VLDL;
Es obtenido mediante la siguiente fórmula;
Colesterol VLDL= Triglicéridos/5
Ayuno de 12 a 14 horas antes de la prueba. No ingerir alcohol 24 horas
antes de la prueba. Consumir una dieta estable en contenido graso tres
semanas antes de la prueba. La cena anterior a la prueba debe ser con bajo
contenido graso.
Evitar la hemólisis de la muestra, si el tubo es al vacío y no se cuenta con
sistema adecuado de agujas sacar la tapa y vaciar lentamente la muestra
recolectada.
Sangre
Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
2ml para pacientes pediátricos, 2 a 5 ml para pacientes adultos.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
2 horas desde que se extrae la muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
:
Se rechazarán las muestras con hemólisis, con ictericia o lipémicas.
ENTREGA RESULTADOS
:
1 día hábil
218
pH y BENEDICT EN DEPOSICIONES Parasitología
USO PREFERENTE DE LA : Diagnóstico de intolerancia a carbohidratos, estudio del síndrome
PRUEBA
diarreico de evolución prolongada.
RANGOS DE REFERENCIA
: pH: Mayor de 5.
Benedict: Ausencia de sustancias reductoras.
METODO
: pH: Colorimétrico.
Benedict: Benedict
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Se debe recolectar 1 muestra de deposición, sin contaminación con orina,
de aproximadamente 2 gr.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Verificar que la rotulación de la muestra esté correcta y corresponda al
DE TOMA DE MUESTRAS
paciente.
TIPO DE MUESTRA
: Deposición fresca recién emitida, sin contaminación con orina.
TIPO DE TUBO
: Frasco boca ancha con tapa, limpio y seco.
VOLUMEN MINIMO
: 2 gr. de muestra.
CONDICIONES TRANSPORTE
: El frasco se debe transportar tapado en posición vertical, en un
contenedor a temperatura ambiente.
TIEMPO DE TRANSPORTE
: Máximo 4 horas.
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
ENTREGA RESULTADOS
: 48 horas desde su llegada al laboratorio.
LIMITACIONES
: Cualquier sustancia reductora que se encuentre en las heces puede causar
falsos positivos para Test de Benedict.
219
PRE ALBUMINA Inmunología
USO PREFERENTE DE
PRUEBA
LA :
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
La prealbúmina y la RbP se sintetizan en el hígado. La prealbúmina actúa
como proteína ligadora de tiroxina y de RbP. La RbP es la proteína
transportadora de retinol (vitamina A). las concentraciones en suero y
plasma de ambas proteínas refleja la capacidad de síntesis del hígado, y
disminuyen notablemente en caso de malnutrición y otros estados.
Gracias a su corta vida media (aprox. 2 días y doce horas
respectivamente), la prealbúmina y la RbP son idóneas para el seguimiento
del estado nutricional y la eficacia de la nutrición parenteral.
25 – 45 mg/dL
Determinación cuantitativa de prealbúmina (transtirretina) y proteína
ligadora de retinol (RbP) en suero humano, mediante Inmuno
nefelometría (BN ProSpec)
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
Sangre ( Suero)
Sangre ( Plasma con Heparina o EDTA)
Sangre ( Suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
Sangre (Plasma)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
Tubo tapa lila (EDTA)
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
:
Máximo 2 horas desde tomada la muestra
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
1 día hábil
:
:
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles. Deben asimismo evitarse las muestras
lipémicas o hemolizadas.
220
PROGESTERONA TOTAL Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
:
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRA
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
La evaluación clínica de la Progesterona confirma ovulación y función lútea
normal en mujeres no embarazadas. Una inadecuada producción de
progesterona por el cuerpo lúteo puede indicar insuficiencia lútea, lo que
está asociado a infertilidad y a aborto espontáneo.
Hombres
<0,1 – 0,2 ng/ml
Mujeres en fase folicular:
<0,1-0,3 ng/mL.
Mujeres fase lutea:
1,2-15,9 ng/mL.
Mujeres postmenopáusicas:
0,1 – 0,2 ng/ml
Embarazadas primer trimestre:
2,8 – 147,3 ng/ml
Embarazadas segundo trimestre:
22,5 – 95,3 ng/ml
Embarazadas tercer trimestre
27,9 – 242,5 ng/ml
Inmuno análisis Quimioluminiscentes de micropartículas (CMIA).
No requiere preparación especial.
Evitar la hemólisis de la Muestra. Si el tubo es al vacío y no se cuenta con
sistema adecuado de agujas sacar la tapa y vaciar lentamente la muestra
recolectada.
Sangre
Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
:
:
5 mL.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y con unidad refrigerante.
La estabilidad de la muestra es de 1 hora a temperatura ambiente.
1 hora desde la toma de la muestra
Se rechazarán las muestras lipémicas, con hemólisis y con ictericia
:
2 días hábiles
:
Muestras muy ictéricas (Bilirrubina > 20 mg/dL) no se deben procesar.
221
PROTEINA C REACTIVA (PCR) Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
La PCR es miembro de la clase de proteínas de fase aguda y su nivel
aumenta dramáticamente durante los procesos inflamatorios que ocurren
en el cuerpo. Este incremento se debe a un aumento en la concentración
plasmática de IL-6, que es producida por macrófagos, células endoteliales
y linfocitos T, como también lo hacen los adipocitos. Además se ha
demostrado que sus niveles se incrementan en los episodios agudos
coronarios (síndromes coronarios agudos), significando un mal pronóstico
tanto a corto como a largo plazo.
0 - 10 mg/L
Determinación cuantitativa de la Proteína C Reactiva (PCR) en suero
humano, mediante Inmunoturbidimetría (Architect).
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
Sangre ( Suero)
Sangre ( Plasma con Heparina o EDTA)
Sangre ( Suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
Sangre (Plasma)
:
Tubo tapa lila (EDTA)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde toma de muestra
RECHAZO DE MUESTRA
:
Muestra con hemólisis
Muestras Lipémicas
Refrigerar la muestra a 2-8°C. por un máximo de 48 horas, en caso
contrario congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez
descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
Dentro del día para pacientes pediátricos
1 día hábil para adultos
No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles.
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso exclusivo de laboratorio)
222
PROTEÍNAS TOTALES SÉRICAS Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Se utiliza principalmente para evaluar el estado nutricional, síntesis
hepática y la pérdida proteica renal. Valores elevados se encuentran en
mieloma múltiple, deshidratación, hiperglobulinemia, enfermedades
granulomatosas, del colágeno. Valores disminuidos se observan en dietas
bajas en proteínas, desnutrición, malabsorción, enfermedad hepática
severa, quemaduras extensas, alcoholismo crónico, falla cardiaca,
neoplasias, sobrehidratación y enfermedad renal.
RANGOS DE REFERENCIA
: 6,4 – 8,3 mg/dL
METODO
: Colorimétrico (Biuret).
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar la aplicación prolongada del torniquete durante la extracción de la
DE TOMA DE MUESTRAS
muestra.
Evitar hemólisis de la muestra, si el tubo es al vacío y no se cuenta con
sistema adecuado de agujas sacar la tapa y vaciar lentamente la muestra
recolectada.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre
TIPO DE TUBO
: Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
:
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 5 mL para pacientes adultos (tubo
tapa roja).
Los tubos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente. Evitar la agitación para
prevenir la hemólisis.
1 hora desde la toma de muestra.
Se rechazarán las muestras en caso de hemólisis y lipemia
Dentro del día
Fármacos que interfieren: Esteroides anabólicos, corticosteroides,
corticotropina, epinefrina, insulina, progesterona, provocan un aumento
en la concentración sérica. Alopurinol, estrógenos provocan una
disminución.
223
PROTEINURIA AISLADA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
La proteinuria se presenta generalmente en la patología renal que cursa
con un aumento de la permeabilidad del glomérulo como por ejemplo en
las glomérulo nefritis, síndrome nefrótico, píelo nefritis, hipertensión
arterial, carcinomas, proteinuria ortostática, tuberculosis renal, toxemia
del embarazo, diabetes mellitus, gota, estados febriles agudos,
quemaduras por corrientes eléctricas, etc.
Normalmente puede aparecer la llamada proteinuria transitoria de causa
extrarenal, como por ejemplo exceso de ingestión proteica, exposición
prolongada al frío, estados emocionales intensos y después de actividades
físicas excesivas.
0,01 – 0,14g/L.
Turbidimétrica.
Ver Instructivo para pacientes sobre toma de muestra de orina en página
39.
Verifique la correcta rotulación de la muestra antes del envío al
Laboratorio.
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
:
TIPO DE MUESTRA
:
Primera orina de la mañana, segundo chorro.
TIPO DE TUBO
:
Orina
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
10 mL.
Los tubos o frascos deben ser trasladados a la brevedad posible al
laboratorio, bien tapados en posición vertical, en un contenedor o gradilla
a temperatura ambiente.
1 hora desde la toma de muestra.
Se rechazarán las muestras en caso de contaminación con sangre.
1 día hábil.
Falsos positivos pueden deberse a la contaminación con secreción vaginal,
semen, pus, o sangre.
:
Tubo o frasco de orina proporcionado por el
laboratorio, frasco limpio, botellas limpias o
bolsa colectora (lactantes sin control de
esfínter).
224
PROTEINURIA DE 24 HORAS Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : La proteinuria se presenta generalmente en la patología renal que cursa
PRUEBA
con un aumento de la permeabilidad del glomérulo como por ejemplo en
las glomérulo nefritis, síndrome nefrótico, píelo nefritis, hipertensión
arterial, carcinomas, proteinuria ortostática, tuberculosis renal, toxemia
del embarazo, diabetes mellitus, gota, estados febriles agudos,
quemaduras por corrientes eléctricas, etc.
Normalmente puede aparecer la llamada proteinuria transitoria de causa
extra renal, como por ejemplo exceso de ingestión proteica, exposición
prolongada al frío, estados emocionales intensos y después de actividades
físicas excesivas.
RANGOS DE REFERENCIA
: 0 – 0,15 g/24 horas
METODO
: Turbidimétrico.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
Para la correcta valoración de los resultados de un análisis efectuado sobre
orina de 24 horas es sumamente importante que la recogida de la orina
sea completa.
Ver instrucciones para pacientes de muestra de orina 24 horas, página 39.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
Verifique la correcta rotulación de la muestra antes del envío al
Laboratorio. Si el volumen de orina es medido en la Toma de Muestra o en
el servicio clínico, se debe anotar el valor de la diuresis en el formulario de
solicitud de exámenes.
Orina de 24 horas o una alícuota de 10 mL.
Orina
: Contenedor con una capacidad de 5 litros otorgado
por el laboratorio, que debe estar limpio y seco.
Para la alícuota usar Tubo estéril de vidrio con tapón
de algodón hidrófobo.
Toda la orina recolectada en 24 horas o una alícuota de 10 mL.
Mantener la orina que se va recolectando refrigerada. Una vez finalizada la
recolección identificar cada uno de los envases.
Los tubos o frascos deben ser trasladados a la brevedad posible al
laboratorio, bien tapados en posición vertical, en un contenedor o gradilla
a temperatura ambiente.
1 hora desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
:
Se rechazarán las muestras en caso de contaminación con sangre.
ENTREGA RESULTADOS
:
1 día hábil
LIMITACIONES
:
Falsos positivos pueden deberse a la contaminación con secreción vaginal,
semen, pus, o sangre.
225
PROLACTINA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
La deficiencia de prolactina tiene importancia clínica en test adicionales de
función hipofisiaria en pacientes ya diagnosticados de enfermedad
hipofisiaria.
Valores aumentados de prolactina pueden observarse en pacientes que
presentan alteraciones en la fertilidad como anovulación con o sin
irregularidades menstruales, amenorrea y galactorrea. El exceso de
prolactina en varones podría provocar oligoespermia, impotencia o ambas.
3,46 - 19,4 ng/mL.
Inmunoensayo de Micropartículas Quimiluminiscentes (CMIA)
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Ayuno de al menos 8 horas.
Evitar hemólisis de la muestra. Si el tubo es al vacío y no se cuenta con
sistema adecuado de agujas sacar la tapa y vaciar lentamente la muestra
recolectada.
Sangre
Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
:
:
:
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 5 mL para pacientes adultos.
Temperatura ambiente
1 hora desde la toma de muestra
Se rechazarán las muestras en caso de hemólisis, lipemia e ictericia
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
1 día hábil
La prolactina se encuentra elevada en pacientes con tratamiento con
estrógeno, antidepresivos triciclitos, fenotiacianas, haloperidol, metildopa,
butirofenonas cimetidina, metoclopramida, reserpina, y en pacientes con
hipotiroidismo primario. La secreción de prolactina es episódica y se
incrementa con el estrés. La prolactina puede existir en formas
estructurales alternativas (Macroprolactinas) las cuales pueden presentar
niveles variables de actividad fisiológica de la Prolactina. La presencia de
Anticuerpos Heterófilos puede interferir en la determinación.
226
PRUEBA DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA ORAL (PTGO) Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Diagnóstico de diabetes mellitus, intolerancia a la glucosa y diabetes
gestacional.
RANGOS DE REFERENCIA
: Glicemia basal:
Embarazadas
< 105 mg/dL
Hombres, mujeres y niños < 126 mg/dl
Glicemia 120 min:
< 140 mg/dL
METODO
: Enzimático (Hexoquinasa).
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ver instructivo para paciente en página 38.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Respete los tiempos de toma de muestra indicado por el médico.
DE TOMA DE MUESTRAS
La prueba PTGO no debe realizarse a pacientes que tengan una glicemia
basal ≥ 140 mg/dL.
Primero se debe obtener la muestra basal; inmediatamente después el
paciente debe ingerir la dosis de glucosa, la cual debe disolverse en agua
sin que sobrepase los 300mL e ingerirse en un tiempo máximo de 5
minutos, desde aquí se debe comenzar a tomar el tiempo para las demás
muestras.
Dosis de glucosa: Adultos y embarazadas 75 gr. de glucosa
Niños: 1.75 grs/Kg de glucosa sin sobrepasar los 75 grs.
Rotular cada tubo con el nombre y dos apellidos del paciente indicar en
cada uno claramente el tiempo al que corresponde.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (Plasma y Suero).
TIPO DE TUBO
: Plasma
:
Tapa ploma (EDTA fluoruro) para
glicemia basal y
Suero
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
:
Tubo tapa ploma; llenar hasta la marca indicada en el tubo. Tubo tapa roja;
entre 2 y 5 ml de muestra.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
30 minutos.
Se rechazarán las muestras en caso de hemólisis o lipemia
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
Dentro del día hábil
Muestras muy hemolizadas y lipémicas invalidan la prueba.
227
RECUENTO RETICULOCITOS Hematología
USO DE LA PRUEBA
: Evaluación de la actividad eritropoyética de la médula ósea
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
:
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
:
ENTREGA RESULTADOS
:
LIMITACIONES
:
0.2 – 2.0%
Tinción de glóbulos rojos con colorante azul de cresil brillante y
observación microscópica.
:Ayuno de 8 horas.
Una vez extraída la muestra, se debe realizar una inversión completa y
suave del tubo 10 veces, para mezclar adecuadamente la sangre y el
anticoagulante.
Sangre.
Tubo tapa lila (anticoagulante EDTA).
4 mL para pacientes adultos, 2 mL para pacientes pediátricos y 0.5 mL para
RN (tubo minicollect).
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde la toma de muestra
Muestra coagulada
2 horas para pacientes de los servicios críticos, urgencia. 1 día hábil para
pacientes hospitalizados y ambulatorios.
Se debe corregir el recuento en pacientes con anemias severas y además
aumentar el volumen de sangre para realizar la tinción.
228
ROTAVIRUS, DEPOSICIONES PARA BUSQUEDA DE Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: El Rotavirus es la causa más frecuente de gastroenteritis en niños y
jóvenes, también se ha observado en adultos. Este virus se transmite por
contacto fecal-oral. Los principales síntomas de esta gastroenteritis vírica
son diarrea acuosa y vómitos. También puede presentarse dolor de
cabeza, fiebre y dolor de estómago. Por lo general, los síntomas
comienzan 1 o 2 días después de infectarse y pueden durar 3 días.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativa
METODO
: Prueba cualitativa inmunocromatográfica para la determinación de
Rotavirus en muestras de heces.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ver instructive para pacientes, página 40.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar mezclar muestra con otro fluidos biológicos (orina, etc.)
TIPO DE MUESTRA
: Heces
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
:
:
Heces
0,5 mL o 500 mg
:
Tubo o frasco esteril
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
Temperatura ambiente.
Debe realizarse los más pronto posible después de la recogida
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
LIMITACIONES
:
:
1 día hábil
Muestras con más de 24 horas de la recogida. Es recomendable que las
muestras sean recogidas durante la fase aguda de la gastroenteritis,
debido al alto numero de partículas y antígenos virales excretados durante
este periodo.
No recolectar las muestras en recipientes que contengan suero humano,
detergente o preservativos, ya que puede causar interferente en la
prueba.
229
RUBEOLA, ANTICUERPOS IgG Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Tradicionalmente se considera que la infección primaria posnatal de la
PRUEBA
rubéola es una enfermedad leve y autolimitada, que se caracteriza por un
exantema maculo-papuloso, fiebre, decaimiento y linfadenopatías. A
diferencia de las infecciones postnatales, las infecciones primarias
prenatales pueden tener efectos devastadores.
RANGOS DE REFERENCIA
: 0 – 5 UI/Ml
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para determinación
cuantitativa de anticuerpos IgG frente al Virus Rubeola en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES
DE
ALMACENAMIENTO
(uso
exclusivo de laboratorios)
RECHAZO DE MUESTRAS
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Máximo 2 horas desde tomada la muestra
Centrifugar y separar la muestra si no será procesada en el día.
Refrigerar a 2-8°C por máximo 48 horas o congelar a -20°C o a
temperatura inferior hasta su análisis. Una vez descongeladas las muestras
deben agitarse bien antes de utilizarse.
Muestras lipémicas o hemolizadas.
2 días hábiles
RUBEOLA, ANTICUERPOS IgM Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Tradicionalmente se considera que la infección primaria posnatal de la
PRUEBA
rubéola es una enfermedad leve y autolimitada, que se caracteriza por un
exantema maculo-papuloso, fiebre, decaimiento y linfadenopatías. A
diferencia de las infecciones postnatales, las infecciones primarias
prenatales pueden tener efectos devastadores.
RANGOS DE REFERENCIA
: < 0,6 UI/mL
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para determinación
cuantitativa de anticuerpos IgM frente al Virus Rubeola en suero humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
:
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
Sangre (suero)
Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
230
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES
DE :
ALMACENAMIENTO
(uso
exclusivo laboratorio)
RECHAZO DE MUESTRAS
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
:
SCREENING METABÓLICO Serología
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
:
Temperatura ambiente.
Máximo 2 horas desde tomada la muestra
Si el ensayo no se va completar en 8 horas, refrigerar la muestra a 2-8°C.
por máximo de 48 horas, o para enviar las muestras, congelar a -20°C o a
temperatura inferior. Una vez descongeladas las muestras deben agitarse
bien antes de utilizarse.
Muestras lipémicas o hemolizadas.
2 días hábiles
Alteraciones metabólicas
Negativo
Positivo
METODO
:
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
Test de FeCl3 (aminoácidos aromáticos)
Test de benedict (azúcares reductores)
Test 2,4 Dinitrofenilhidrazina (2,4-DNFH) (alfa-cetoácidos)
Primera orina de la mañana.
Tomado por la enfermera en el servicio de pediatría.
:
:
:
:
Orina fresca
Frasco de orina
:
5 mL
Una vez tomada la muestra, enviar inmediatamente al laboratorio.
:
:
Inmediato
1 día hábil
:
No tiene.
231
SEDIMENTO URINARIO Orinas
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
:
:
ENTREGA RESULTADOS
:
Excelente reflejo del parénquima renal y las vías urinarias.
Leucocitos: hasta 5 por campo
Glóbulos rojos hasta 3 por campo
Bacterias: escasas
Células: escasas
Cilindros hialinos: No se observa
Observación microscópica.
Antes de la toma de muestra, el paciente se debe realizar un cuidadoso
aseo de la zona genital con abundante agua y jabón:
Paciente mujer: lavar los genitales, separando cuidadosamente los labios
mayores, con un algodón embebido en agua jabonosa y limpiando de
adelante hacia atrás una sola vez. Elimine el algodón y repita el
procedimiento con otro algodón. Enjuagar con agua eliminando
totalmente el resto de jabón y secar la zona con un paño seco y limpio.
En lo posible evitar recolectar la muestra si está en el período menstrual,
en caso contrario cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para
evitar que la orina se contamine.
Paciente hombre: Retraer la piel anterior del pene (prepucio) y lavar la
zona con algodón embebido en agua jabonosa. Enjuagar con agua y no
tocar la zona aseada. Secar con un paño seco y limpio.
Luego del aseo genital, eliminar el primer chorro de orina y sin cortar la
micción, recolectar el segundo chorro de orina en un frasco, tubo o botella.
Llenar hasta la mitad, tapar el frasco o tubo y rotular con su nombre y dos
apellidos.
Si la muestra es llevada a Toma de Muestra y rotulada por el paciente, se
debe asegurar la correspondencia de los datos del paciente en el rótulo.
Primera orina de la mañana, segundo chorro.
Orina
:
Tubo o frasco de orina proporcionado por el
laboratorio, frasco limpio, botellas limpias o
bolsa colectora (lactantes sin control de
esfínter).
10 mL.
Los tubos, frascos y botellas se deben transportar tapados en posición
vertical, en un contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
1 hora desde la toma de muestra.
Se rechazarán las muestras en los siguientes casos:
- Muestras sin rotular
- Muestras mal rotuladas
- Muestras derramadas
Servicios críticos 2 horas desde su llegada al laboratorio, Hospitalizados: 6
horas, ambulatorios: 8 horas.
232
LIMITACIONES
:
Contaminación de la muestra debido al inadecuado aseo genital. Las
muestras con contaminación vaginal alteran el resultado observándose
generalmente gran cantidad de mucus y células epiteliales.
T3 HORMONA TRIYODOTIRONINA Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Las mediciones de T3 tienen un importante rol en diagnostico de pacientes
con desordenes de función tiroidea, como también en condiciones de
deficiencia de yodo. Los niveles de T3 son mucho menores que las
concentraciones de T4. En general las elevaciones de niveles de T3 se
encuentran en la mayoría de los estados de hipertiroídeos, el estrés y el
ayuno prolongado producen disminución en los niveles de T3 los que caen
rápidamente en el transcurso de 24 a 48 horas. Desde el punto de vista
clínico, las mediciones de la concentración de T3 en suero son
especialmente útiles para el diagnóstico de hipertiroidismo y para el
seguimiento de la terapia para este trastorno.
RANGOS DE REFERENCIA
: Adultos: 0,58 – 1,59 ng/ml
METODO
: Inmunoensayo de Micropartículas Quimiluminiscentes
INSTRUCCIONES AL PACIENTE :
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Ayuno de 8 horas
Evitar hemólisis de la muestra. Si el tubo es al vacío y no se cuenta con
sistema adecuado de agujas sacar la tapa y vaciar lentamente la muestra
recolectada.
Sangre
Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 5 mL para pacientes adultos.
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
Temperatura ambiente
1 hora desde la toma de muestra
RECHAZO DE MUESTRA
:
Se rechazarán las muestras hemolizadas, muy ictéricas o lipémicas
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
1 día hábil
Las anfetaminas incrementan los niveles de T3.
233
T4 LIBRE, HORMONA TETRAYODOTIRONINA LIBRE Bioquímica
USO DE LA PRUEBA
: Los valores de T4 libre son el mejor indicador de una disfunción tiroidea,
desde que esta prueba es menos sensible a los cambios de proteínas de
unión en el suero.
RANGOS DE REFERENCIA
: Adultos: 0.70 a 1.48 ng/dL.
METODO
: Inmunoensayo de Microparticulas Quimiluminiscentes.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra. Si el tubo es al vacío y no se cuenta con
DE TOMA DE MUESTRAS
sistema adecuado de agujas sacar la tapa y vaciar lentamente la muestra
recolectada.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre
TIPO DE TUBO
: Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO MUESTRA
:
:
:
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 5 mL para pacientes adultos (tubo
tapa roja).
Temperatura ambiente
1 hora desde la toma de muestra
Se rechazarán las muestras hemolizadas, ictéricas o lipémicas
ENTREGA RESULTADO
LIMITACIONES
:
:
1 día hábil.
Anticuerpos circulantes anti-T4 pueden interferir en la determinación.
TSH, HORMONA TIROESTIMULANTE Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Esta hormona regula la producción de hormonas tiroideas T3 y T4, por lo
PRUEBA
tanto es de gran utilidad en él diagnostico diferencial de hipotiroidismo y
como ayuda en el monitoreo de terapia tiroídea. Se encuentra disminuida
e incluso indetectable en los hipertiroídeos, En el hipertiroidismo
secundario a tumores se encuentra elevada, Se encuentran valores
elevados en el hipotiroidismo primario y bajo o normal en el
hipotiroidismo pituitario
RANGOS DE REFERENCIA
: Adultos: 0.35 a 4.94 µUI/mL
METODO
: Inmunoensayo de Micropartículas Quimiluminiscentes.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra. Si el tubo es al vacío y no se cuenta con
DE TOMA DE MUESTRAS
sistema adecuado de agujas sacar la tapa y vaciar lentamente la muestra
recolectada.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre
TIPO DE TUBO
: Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 5 mL para pacientes adultos (tubo
tapa roja).
Temperatura ambiente
1 hora desde la toma de muestra
234
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
LIMITACIONES
TEST DE GRAHAM Parasitología
USO PREFERENTE DE LA
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
:
Se rechazarán las muestras hemolizadas, ictéricas o lipémicas
1 día hábil
La presencia de auto anticuerpos anti-TSH interfiere en la determinación
de TSH
:
Para el diagnóstico de Enterobius vermicularis.
:
:
:
VOLUMEN MINIMO
:
Ausencia de huevos de Enterobius vermicularis.
Graham.
Al paciente se le entregará 5 portaobjetos con una cinta adhesiva tipo
“scotch” pegada a lo largo de cada portaobjeto. El paciente no se debe
lavar la zona perianal antes de la obtención de las muestras (en la
mañana). Debe realizar tocaciones perianales con la cinta scotch (por el
lado engomado) sin contaminar con deposiciones, talco o pomadas.
Luego debe colocar la cinta por su lado engomado hacia el portaobjeto y
adherirla a él. Se debe obtener 5 muestras, 1 muestra cada día por 5 días.
Debe envolver cada placa en papel y escribir su nombre y apellidos sobre
éste. (ver instructivo para paciente, página 41)
Verificar que la rotulación de las muestras esté correcta y corresponda al
paciente.
Tocaciones perianales.
Cintas de scotch pegadas sobre las láminas de vidrio (portaobjetos)
entregadas por el laboratorio.
5 láminas.
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
:
A temperatura ambiente
24 desde la obtención de la última muestra.
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
3 días hábiles.
No colocar cremas ni talco en la zona perianal.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
235
TEST DE MUCOPOLISACARIDOSIS (TEST DE BERRY) Serología
USO PREFERENTE DE LA : Para diagnóstico de enfermedad metabólica
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
: Cualitativo
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : No requiere
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Orina
TIPO DE TUBO
: Frasco de orina
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
TEST DE NITROPRUSIATO Serología
USO PREFERENTE DE LA
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
3 mL
Una vez tomada la muestra, enviar inmediatamente al laboratorio.
:
:
Inmediato
1 día hábil.
:
No tiene.
:
Determinar cistinurias, homocistinurias y mercaptolactato.
:
:
:
:
Cualitativo
No requiere
:
:
:
:
Orina
Frasco de orina
:
15 mL
Una vez tomada la muestra, enviar inmediatamente al laboratorio.
:
:
Inmediato
1 día hábil.
:
No tiene.
236
TEST DEL SUDOR Serología
USO PREFERENTE DE
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
LA :
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
:
:
Normal: < 50 mmol/L
Límite: 50 – 80 mmol/L
Alterado: > 80 mmol/L
Screening por Conductividad (Wescor sweat – check)
Profesional Enfermera/o a cargo de la toma de muestra, explicará el
procedimiento a los padres o apoderado del paciente (ejemplo: venir
hidratado, no presentar edema, no tener erosiones o sarpullidos en la piel,
etc)
Toma de muestra a cargo de un profesional capacitado (Enfermero/a) para
manejar la toma de muestra con sistema Macroduct®
Sudor (obtenida por estimulación de la sudoración en el antebrazo por
iontoforesis con pilocarpina).
Sistema Macroduct®
:
15 uL
Una vez tomada la muestra, enviar inmediatamente al laboratorio.
:
:
Inmediato
3 días hábiles. Se realizan los días lunes y miércoles.
:
Volumen inferior a 15 µL. Se debe tener presente que puede haber valores
falsos negativos por; falla técnica; primer mes de vida; edema e
hipoproteinemia (baja de proteínas en la sangre) entre otros. Valores
falsos positivos por: hipotiroidismo, desnutrición, diabetes insípida etc.
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
Para diagnóstico de fibrosis Quística
237
TESTOSTERONA TOTAL Bioquímica
USO PREFERENTE
PRUEBA
DE
LA :
RANGOS DE REFERENCIA
:
Hombres < 50 años
Hombres 50 años
Mujeres en edad fértil
Mujeres con anticonceptivos orales
Mujeres post menopáusica
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
:
:
:
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
Inmuno ensayo de Micropartículas Quimiluminiscentes
No requiere preparación especial
Se debe indicar en el formulario de solicitud de examen la edad y sexo del
paciente.
Sangre
Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRA
:
:
TIEMPO ENTREGA RESULTADo
LIMITACIONES
:
:
:
:
En hombres se utiliza principalmente en la evaluación de; hipogonadismo,
fallo testicular, esterilidad, hipopituitarismo e hiperprolactinemia. En las
mujeres trastornos como; síndrome del ovario poliquístico, hiperplásia
suprarrenal, esterilidad, Hirsutismo, amenorrea, obesidad y virilización
pueden causar cambios en la concentración de testosterona en suero.
La Testosterona circula mayoritariamente unida a proteínas
transportadoras (SHBG) y solo la fracción libre es fisiológicamente activa.
Por lo tanto, condiciones y medicamentos que afectan los niveles de SHBG
modifican también los niveles de Testosterona Total.
1,66 – 8,77 ng/ml
1,56 – 5,63 ng/ml
0,09 – 1,09 ng/ml
0,13 – 0,83 ng/ml
0,12 – 1,30 ng/ml
2- 5 mL. de suero
Los tubos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
Hasta 1 hora desde la toma de muestra.
Se rechazarán las muestras en los siguientes casos:
- Muestras sin rotular
- Muestras mal rotuladas
- Muestras derramadas o manchadas
1 día hábil.
No tiene.
238
TIEMPO DE PROTROMBINA (PT) Coagulación
USO PREFERENTE DE LA : Evaluación de la integridad de la vía extrínseca del sistema de coagulación,
PRUEBA
monitorización de la terapia anticoagulante oral (TAC), control de la
función hepática
RANGOS DE REFERENCIA
: Adultos y niños: 70 – 110%.
METODO
: Óptico-mecánico.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : La punción debe ser atraumática, evitando la formación de hematomas,
DE TOMA DE MUESTRAS
ligadura prolongada y la hemólisis. Se debe evitar la aspiración de burbujas
de aire y la contaminación con líquido tisular.
Si en la toma de muestra un paciente necesita más de un tubo, usar en 2º
o 3º lugar el tubo para las pruebas de coagulación.
Si la toma de muestra es única, desechar la primera porción.
Si la extracción se efectúa a través de un catéter, descartar los primeros 20
mL de sangre antes de vaciar al tubo.
Se debe realizar una inversión completa y suave del tubo 10 veces, para
mezclar adecuadamente la sangre y el anticoagulante.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre.
TIPO DE TUBO
: Tubo tapa celeste (anticoagulante citrato de sodio)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRA
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
2 mL o según la cantidad que indique el tubo (llenar hasta la marca).
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente.
Máximo 2 horas desde la toma de muestra.
Muestras sobre o bajo nivel no pueden ser procesadas
Las muestras hemolizadas, lipémicas y coaguladas invalidan la prueba.
Pabellón: 30 minutos. Servicios de urgencia 2 horas. Dentro del día para
otros servicios clínicos. Pacientes ambulatorios 1 día hábil
El consumo excesivo de vegetales verdes, la diarrea y los vómitos pueden
acortar los tiempos de coagulación.
El alcoholismo o ingesta excesiva de alcohol puede prolongar los tiempos
de coagulación.
239
TIEMPO DE SANGRÍA Coagulación
USO PREFERENTE DE LA :
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
:
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
DE
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
CONDICIONES DE RECHAZO DE
MUESTRA
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Esta prueba se utiliza para valorar principalmente el número y la función
de las plaquetas, así como la función capilar (vasoconstricción).
El tiempo de sangría puede estar alargado en trombocitopenias, púrpuras
trombocitopénicas tanto centrales como periféricas, trombopatías
hereditarias, afibrinogemia, insuficiencia hepática grave con síndrome
hemorrágico, en la enfermedad de Von Willebrand y en tratamientos con
aspirina y antiinflamatorios no esteroidales
Niños: Hasta 9 minutos
Adultos: Hasta 8 minutos
Método de Ivy modificado.
No es necesario el ayuno. Se recomienda tomar un desayuno liviano.
Requiere recuento de plaquetas normal. Este procedimiento es realizado
por profesionales de la Unidad.
Sangre.
No procede.
No procede.
No procede.
No procede
Trombocitopenia. Terapia con aspirina y antiinflamatorios no esteroidales
durante últimos 7 días
Al término del examen.
La técnica se puede realizar en niños mayores de 4 años.
Los antiinflamatorios, aspirinas, antihistamínicos (antialérgicos) pueden
aumentar el Tiempo de Sangría
240
TIEMPO DE TROMBOPLASTINA PARCIAL ACTIVADA (TTPA) Coagulación
USO PREFERENTE DE LA : Evaluación de la integridad de la vía intrínseca del sistema de coagulación.
PRUEBA
Se encuentra alargado en coagulación intravascular diseminada,
disfibrinogenemias, afibrinogenemias, hepatopatías severas, deficiencia de
vitamina K, etc.
Monitorización de la terapia con heparina.
RANGOS DE REFERENCIA
: 23-35 segundos
METODO
: Óptico-mecánico.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : La punción debe ser atraumática, evitando la formación de hematomas,
DE TOMA DE MUESTRAS
ligadura prolongada y la hemólisis. Se debe evitar la aspiración de burbujas
de aire y la contaminación con líquido tisular.
Si en la toma de muestra un paciente necesita más de un tubo, usar en 2º
o 3º lugar el tubo para las pruebas de coagulación.
Si la toma de muestra es única, desechar la primera porción.
Si la extracción se efectúa a través de un catéter, descartar los primeros 20
mL de sangre antes de vaciar al tubo.
Se debe realizar una inversión completa y suave del tubo 10 veces, para
mezclar adecuadamente la sangre y el anticoagulante.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre.
TIPO DE TUBO
: Tubo tapa celeste (anticoagulante citrato de sodio)
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
CONDICIONES DE RECHAZO DE :
MUESTRA
TIEMPO
ENTREGA :
RESULTADOS
2 mL o según la cantidad que indique el tubo (llenar hasta la marca).
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente.
Máximo 2 horas desde la toma de muestra.
Muestras sobre o bajo nivel no pueden ser procesadas
Muestras hemolizadas, lipémicas y coaguladas.
Pabellón: 30 minutos. Servicios de urgencia 2 horas. Dentro del día para
otros servicios clínicos. Pacientes ambulatorios 1 día hábil
241
TOXOPLASMA GONDII, ANTICUERPOS IgG Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Toxoplasma gondii es un parásito obligatoriamente intracelular, capaz de
PRUEBA
infectar a una amplia variedad de huéspedes intermediarios, entre ellos, al
ser humano.
La infección en el adulto sano es frecuentemente asintomática. En aquello
casos con manifestaciones clínicas, el síntoma más común es la
linfadenopatía, que puede estar acompañada de una serie de otros
síntomas que dificultan el diagnóstico diferencial.4,5 En adultos
inmunodeprimidos debido a quimioterapias contra el cáncer o tratamiento
inmunosupresivo y en pacientes con SIDA, se producen infecciones graves
o mortales.
La transmisión transplacentaria del parásito trae como consecuencia la
toxoplasmosis congénita, la cual puede ocurrir durante la infección aguda
adquirida por la madre.
La toxoplasmosis congénita trae como consecuencia una enfermedad
grave generalizada o neurológica en aproximadamente entre el 20% y el
30% de los bebés infectados intrauterinamente; aproximadamente, el 10%
presenta solamente una infección ocular y el resto (aprox. el 70%) son
asintomáticos al nacer. La infección subclínica puede producir un parto
prematuro y los defectos neurológicos, intelectuales y los auditivos
subsiguientes.
RANGOS DE REFERENCIA
: 0 – 2 UI/mL
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para determinación
cuantitativa de anticuerpos IgG frente al Toxoplasma gondii en suero
humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES
DE :
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRAS
CONDICIONES
DE :
ALMACENAMIENTO
(uso
exclusivo de laboratorio
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde toma de muestra.
Muestras lipémicas o hemolizadas.
Guardar las muestras a temperatura ambiente no más de 8 horas. Si el
ensayo no se va completar en 8 horas, refrigerar la muestra a 2-8°C.
Si el ensayo no se va completar entre 48 horas, o para enviar las muestras,
congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez descongeladas las
muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
1 día hábil
242
TOXOPLASMA GONDII, ANTICUERPOS IgM
USO PREFERENTE DE LA : Toxoplasma gondii es un parásito obligatoriamente intracelular, capaz de
PRUEBA
infectar a una amplia variedad de huéspedes intermediarios, entre ellos, al
ser humano.
Los ensayos serológicos específicos para detectar anticuerpos IgM frente
al T. gondii constituyen una ayuda útil para el diagnóstico de la
toxoplasmosis congénita y de la toxoplasmosis aguda adquirida. Las
concentraciones de anticuerpos IgM aumentan rápidamente después de la
infección aguda adquirida y descienden al cabo de varios meses, pero
pueden permanecer en concentraciones detectables durante un año o
más. Debido a que es posible detectar concentraciones persistentes de
IgM durante un largo período de tiempo después del comienzo de la
infección adquirida, la interpretación de un resultado aislado debe
efectuarse con cautela en aquellos casos en que sea decisivo establecer la
fecha de la infección. Esto se aplica al diagnóstico de la infección aguda
por T. gondii durante el embarazo. No es recomendable determinar la
fecha de la infección bas_ndose solamente en los resultados de
anticuerpos IgM detectables frente al T. gondii.
RANGOS DE REFERENCIA
: 0 – 0,5 INDEX
METODO
: Enzimoinmunoanálisis de micropartículas (MEIA) para determinación
cuantitativa de anticuerpos IgM frente al Toxoplasma gondii en suero
humano.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Sangre (suero)
TIPO DE TUBO
: Sangre (suero)
: Tubo tapa roja o amarilla
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES
DE :
TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRAS
CONDICIONES
DE :
ALMACENAMIENTO
(uso
exclusivo de laboratorio)
TIEMPO ENTREGA RESULTADO
:
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde toma de muestra.
Muestras lipémicas o hemolizadas.
Guardar las muestras a temperatura ambiente no más de 8 horas. Si el
ensayo no se va completar en 8 horas, refrigerar la muestra a 2-8°C.
Si el ensayo no se va completar entre 48 horas, o para enviar las muestras,
congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez descongeladas las
muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
1 día hábil.
243
TRANSAMINASA GLUTÁMICO OXALOACÉTICO (GOT), TRANSAMINASA GLUTÁMICO PIRÚVICO (GPT) Bioquímica
USO PREFERENTE DE LA : Para el diagnóstico, pronóstico y valoración de afecciones hepáticas. Estas
PRUEBA
enzimas se elevan significativamente en afecciones agudas, como en
hepatitis y necrosis hepática de diferente etiología y en menor nivel en
cirrosis, ictericia obstructiva, carcinoma metastásico, congestión hepática y
colestasia intrahepática. Puede haber elevación ligera en IAM y
pancreatitis aguda, aunque la elevación de la GOT en el IAM es más
significativa.
RANGOS DE REFERENCIA
: GOT Hombres: 5 - 34U/L, Mujeres:5 – 34 U/L
GPT Hombres < 55 U/L Mujeres : <55 U/L
METODO
: Con medición de NADH a 340 nm sin fosfato de peridoxal
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar el uso prolongado del torniquete y la hemólisis de la muestra.
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
: Suero
TIPO DE TUBO
: Suero
: Tubo tapa roja o amarilla
Suero
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
TIEMPO
ENTREGA
RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
:
:
Tubo tapa verde (anticoagulante Heparina de
Litio), para los servicios de urgencia, diálisis y
transplante renal adulto y pediátrico.
3 mL para pacientes pediátricos, 4mL para pacientes adultos.
Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un
recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de
derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la
hemólisis.
Máximo 4 horas desde la toma de muestra.
Muestra mal rotulada, hemolizadas, Lipémicas.
2 horas para pacientes de los servicios de urgencia, durante el día para
pacientes hospitalizados y ambulatorios.
Fármacos que interfieren: Isoniazida, fenotiazinas, eritromicina, esteroides
anabólicos opiáceos y salicilatos producen un aumento de GOT en el
suero.
244
TRIGLICÉRIDOS Bioquímica
USO PREFERENTE DE
PRUEBA
LA :
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
Evaluación de riesgo de enfermedad cardiaca y vascular.
Valores aumentados se encuentran en las Hiperlipoproteinemias,
obesidad, hepatitis viral, alcoholismo, cirrosis alcohólica, biliar, pancreatitis
aguda y crónica, síndrome nefrótico, falla renal crónica, IAM, trombosis
cerebral, hipotiroidismo, diabetes mellitus, embarazo, stress. Valores
disminuidos se observan en enfermedad pulmonar obstructiva crónica,
hipertiroidismo, lactosuria, malnutrición, síndrome de mala absorción.
0 - 200 mg/dL (Adultos).
Glicerol Fosfato Oxidasa
Ayuno de 12 a 14 horas antes de la prueba. No beber alcohol 24 horas
antes de la toma de muestra.
Evitar la hemólisis de la muestra. Si el tubo es al vacío y no se cuenta con
sistema adecuado de agujas sacar la tapa y vaciar lentamente la muestra
recolectada.
Sangre
Sangre
:
Tubo tapa roja o amarilla
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
:
:
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
2 mL para pacientes pediátricos, 2 a 5 mL para pacientes adultos.
Los tubos se deben transportar tapados en posición vertical, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente. Evitar la agitación para
prevenir la hemólisis.
1 hora desde la toma de muestra.
RECHAZO DE MUESTRA
:
Se rechazarán las muestras en caso de hemólisis.
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
1 día hábil.
La ingesta calórica excesiva y la dieta rica en carbohidratos aumentan los
niveles de triglicéridos séricos. Fármacos que interfieren: ácido ascórbico,
catecolaminas, corticosteroides, ciclosporina, diazepan, diuréticos,
estrógenos, anticonceptivos orales, etanol, retinol, aumentan los niveles
séricos. Ácido ascórbico (en altas dosis), ácido aminosalicílico,
asparaginasa, heparina, niacina disminuyen los niveles séricos.
245
UROCULTIVO Bacteriología
USO PREFERENTE DE LA
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES
AL
PERSONAL DE TOMA DE
MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADO
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Diagnóstico de infección.
Necesidad de orientar tratamiento antibiótico.
Sin desarrollo bacteriano
Cultivo bacteriano en placas con medio de cultivo
Ver instructivo, página 39.
Según tipo de muestra, ver instrucciones en página 69.
Orina
Frasco estéril tapa rosca
5 ml
Transportar tapados, en posición vertical, dentro de un contenedor sólido a
prueba de derrames y a temperatura ambiente.
Inmediato al laboratorio.
Frasco mal sellado, derrame de muestra
3 días hábiles
VARICELLA – ZOSTER, VIRUS Inmunología
USO PREFERENTE DE LA : Determinación del estado inmune, en individuos con alto riesgo en la
PRUEBA
exposición al VZV.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
METODO
: IFI (Ensayo por inmunofluorescencia indirecta) para la determinación y
valoración de anticuerpos VZV IgG en suero humano
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de al menos 8 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
:
TIPO DE TUBO
:
Evitar hemólisis de la muestra de sangre.
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRAS
CONDICIONES
DE :
ALMACENAMIENTO
(uso
exclusivo de laboratorio)
0,5 mL (tubo de 4mL)
Temperatura ambiente.
Máximo 4 horas desde toma de muestra
Muestras lipémicas o hemolizadas.
Guardar las muestras a temperatura ambiente no más de 8 horas. Si el
ensayo no se va completar en 8 horas, refrigerar la muestra a 2-8°C.
Si el ensayo no se va completar entre 48 horas, o para enviar las muestras,
congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez descongeladas las
muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.
7 días hábiles
ENTREGA RESULTADOS
:
Sangre (suero)
Sangre (suero)
:
Tubo tapa roja o amarilla
246
VDRL EN SUERO Serología
USO PREFERENTE DE LA
PRUEBA
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
INSTRUCCIONES AL PERSONAL
DE TOMA DE MUESTRAS
TIPO DE MUESTRA
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES
TRANSPORTE
:
:
:
:
:
:
:
:
DE :
TIEMPO DE TRANSPORTE
:
ENTREGA RESULTADO
:
LIMITACIONES
:
Detección de anticuerpos reagínicos IgG e IgM contra el Treponema
pallidum.
No Reactivo
Floculación en lámina, test no treponémico.
Ayuno de 8 horas.
Aplicar medidas de bioseguridad, utilizar material desechable y estéril
(jeringas, agujas y tubos de recolección), evitar la hemólisis de la muestra.
Rotular tubo con los nombres y los dos apellidos del paciente (norma ISP).
En el caso de los controles sanitarios o epidemiológicos, debe exigirse
cédula de identidad, el cual será anotado en la identificación de la
muestra.
Sangre
: Tubo tapa roja o amarilla
Adulto: 5 mL de sangre RN y Lactantes: 2 mL de sangre
Los tubos se deben transportar verticalmente a temperatura ambiente en
un contenedor o gradilla y enviarla inmediatamente al laboratorio. Si las
muestras no son enviadas el mismo día al laboratorio, deberán ser
centrifugadas, enviar el suero y guardarlas en refrigerador hasta su envío,
dentro de las 72 horas siguientes. Si las muestras se envían por correo, los
tubos plásticos deben estar sellados herméticamente y conservar la
cadena de frío.
24 horas desde la recepción en el laboratorio.Se realizan de lunes a
viernes.
1 día hábil
Examen confidencial. Para visualizar resultado en web debe ingresar el
profesional con clave personal autorizada. (ver página 16)
Muestras hemolizadas, lipémicas o contaminadas invalidan la prueba. No
se puede utilizar muestras de plasma. Reacciones falsas positivas pueden
producirse en poblaciones de usuarios de drogas intravenosas,
embarazadas y enfermedades autoinmunes como artritis y lupus.
247
VDRL EN LCR Serología
USO DE LA PRUEBA
:
RANGOS DE REFERENCIA
METODO
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
:
:
:
INSTRUCCIONES AL PERSONAL :
DE TOMA DE MUESTRAS
Detección de anticuerpos reagínicos IgG e IgM contra el Treponema
pallidum.
No Reactivo
Floculación en lámina, test no treponémico.
Explicar al paciente el procedimiento de extracción de muestra, los riesgos
potenciales, beneficios y las actividades posteriores al procedimiento. No
se requiere ayuno.
Toma de muestra a cargo de un profesional médico. Rotular tubo con los
nombres y los dos apellidos del paciente (norma ISP).
TIPO DE MUESTRA
:
LCR
TIPO DE TUBO
VOLUMEN MINIMO
:
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
ENTREGA RESULTADOS
:
:
LIMITACIONES
:
Tubo estéril de 10 mL
:
Adulto: 1 - 2 mL de LCR
RN y Lactantes: 0.5 mL de LCR
Los tubos se deben transportar verticalmente a temperatura ambiente en
un contenedor o gradilla. Si las muestras no son enviadas el mismo día al
laboratorio, guardarlas en refrigerador hasta su envío, dentro de las 72
horas siguientes.
Inmediato
1 día hábil
Examen confidencial. Para visualizar resultado en web debe ingresar el
profesional con clave personal autorizada. (ver página 16)
Las muestras que estén visiblemente contaminadas se deben descartar.
248
VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN GLOBULAR (VHS) Hematología
USO PREFERENTE DE LA : Indicador de amplio espectro en patologías inflamatorias, inmunológicas,
PRUEBA
infecciosas y tumorales. La VHS se encuentra elevada en situaciones
fisiológicas como el embarazo, menopausia, crecimiento y envejecimiento,
y en patologías como infecciones agudas y crónicas, neoplasias,
gamapatías monoclonales, procesos inflamatorios agudos y crónicos,
anemias intensas, insuficiencia renal, infarto agudo al miocardio, presencia
de crioaglutininas.
Se observa una disminución de la VHS en la policitemia vera, alteraciones
congénitas eritrocitarias, hipofibrinogenemia, insuficiencia cardiaca
congestiva, etc.
Es útil en el seguimiento del curso evolutivo de una patología y para
evaluar la respuesta a tratamientos de ciertas patologías (neoplasias).
RANGOS DE REFERENCIA
: 5 – 15 mm/hora
METODO
: Westergreen modificado
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Ayuno de 12 horas.
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Una vez extraída la muestra, se debe realizar una inversión completa y
DE TOMA DE MUESTRAS
suave del tubo varias veces (10 veces), de tal forma de mezclar
adecuadamente la sangre y el anticoagulante.
TIPO DE MUESTRA
: Sangre.
TIPO DE TUBO
: Tubo citrato tapa negra
VOLUMEN MINIMO
:
CONDICIONES TRANSPORTE
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
RECHAZO DE MUESTRA
ENTREGA RESULTADOS
:
:
:
4 mL para pacientes adultos, 2 mL para pacientes pediátricos y 0.5 mL para
RN.
Los tubos se deben transportar en posición vertical, tapados, en un
contenedor o gradilla a temperatura ambiente.
4 horas desde la toma de la muestra.
No se procesan muestras coaguladas y microcoaguladas.
Dentro del día para pacientes hospitalizados y ambulatorios.
249
VIRUS RESPIRATORIOS, ANTIGENOS POR IFI ADV, VRS, IA, IB, PI-1, PI-2, PI-3, METAPNEUMOVIRUS Inmunología
USO DE LA PRUEBA
: Enfermedad respiratoria aguda en niños, normalmente hace acto de
presencia con la aparición repentina de fiebre, escalofríos, cefalea,
mialgias y tos no productiva.
Este examen, es un análisis diferenciado, que permite distinguir los
antígenos virales de los 7 virus más frecuente de nuestra población, a
partir de una misma muestra procesada, sirviendo para ayuda diagnostica
de la infección por unos de los virus.
RANGOS DE REFERENCIA
: Negativo
METODO
: IFI (Ensayo por inmunofluorescencia indirecta) para la detección e
identificación de infecciones virales respiratorias.
INSTRUCCIONES AL PACIENTE : Requiere Ayuno
INSTRUCCIONES AL PERSONAL : Evitar recogida de muestras sanguinolentas o con contenido de leche u
DE TOMA DE MUESTRAS
otra sustancia alimenticia.
TIPO DE MUESTRA
: Aspirado Nasofaríngeo
TIPO DE TUBO
: Aspirado Nasofaríngeo
: Tubo o frasco estéril con 5 ml de PBS
VOLUMEN MINIMO
CONDICIONES TRANSPORTE
:
:
TIEMPO DE TRANSPORTE
ENTREGA RESULTADOS
LIMITACIONES
:
:
:
3,0 mL (aspiración minima)
Debe realizarse los más pronto posible después de la recogida, con medio
de transporte PBS.
4 horas con refrigeración
1 día hábil
Muestras con más de 24 horas de la recogida, sin que sean
adecuadamente refrigeradas.
No recolectar las muestras en recipientes que contengan suero humano,
detergente o preservativos, ya que puede causar interferente en la
prueba.
250
ANEXO Nº 1: FORMULARIO SOLICITUD INSTITUCIONAL
251
ANEXO Nº 2: FORMULARIO SOLICITUD EXAMEN VIH
252
ANEXO Nº 3: FORMULARIO SOLICITUD EXAMEN BACTERIOLOGICO TBC
253
DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA
1. Manual del Estándar General de Acreditación para Prestadores Institucionales deAtención
Cerrada.
2. Régimen de Garantías Explícitas en Salud Garantía de Calidad. Estándares mínimos de
acreditación para Laboratorios Clínicos Ministerio de Salud Chile Abril 2007.
3. Manual de Normas de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias Hospital Dr.
Hernan Henríquez. Actualización agosto 2008
4. Manual de toma de muestras para enfermedades metabólicas
http://www.inta.cl/cedinta/labmeta/toma_de_muestras.pdf
5. Manual para el diagnóstico bacteriológico de la Tuberculosis normas y guía técnica,
Organización Mundial de la Salud 2008.
6. Samples: from the patient to the Laboratory, WG Guder, 3rd edition
7. Rochester 2010 Test Catalog Laboratory Reference Edition. Mayo Clinic, Mayo Medical
Laboratories.
8. References ranges for Adults and children. Preanalytical considerations. Dr Heil, V, Ehrhardt
Novena Edición, 2008
9. Guide to Lab and Diagnostic Test, Tracey B. Hopkins 2005
10. Insertos técnicas instaladas Architect C8000 Abbott, Architect i2000 Abbott, Axsym Abbott,
Ca 1500 Bering, BN Prospec Bering,
254
Descargar