Monitoreo y RCP en Cirugía Veterinaria de Especies Menores

UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MANABÍ
FACULTAD DE CIENCIAS VETERINARIAS
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
CIRUGÍA DE ESPECIES MENORES
SEXTO NIVEL “B”
TEMAS:
 MONITOREO DEL PACIENTE
 RCP
INTEGRANTES:





CASQUETE LÓPEZ IVONNE IVETTE
CRESPO MEJÍA NATHALY ESTEFANÍA
DELGADO INTRIAGO GEMA MARÍA
SILVA LÓPEZ HÉCTOR ANDRÉS
PIN MACÍAS MELISSA SELENY
 VÉLEZ LOOR JEFFERSON EFREN
DOCENTE:
DR. NAVARRETE SUAREZ GUSTAVO ADOLFO
FECHA:
10/12/2019
PERIÓDO ACÁDEMICO
OCTUBRE 2019 – FEBRERO 2020
MONITOREO DEL PACIENTE
El monitoreo de la anestesia general es de vital importancia para llevar a cabo
procedimiento seguros. Es la aplicación de técnicas físicas e instrumentales que permiten
observar y vigilar el desarrollo de las variables fisiológicas del paciente durante un
procedimiento anestésico. El monitoreo debe ser continuo, ya que hay ciertas
complicaciones que se presentan repentinamente y pueden tener devastadoras
consecuencias (Bastías, 2007).
OBJETIVOS DEL MONITOREO

Anticipar complicaciones.

Reconocer complicaciones.

Corregir complicaciones.
TIPOS DE MONITOREO.
Existen dos formas de realizar el monitoreo, la básica y la avanzada. La primera
es la que se lleva a cabo con los sentidos del examinador y con instrumental básico, de
uso habitual durante la exploración física, como el fonendoscopio y el termómetro. La
avanzada es la que se realiza mediante instrumentación especializada, como monitores
multiparámetros, oxímetros de pulso, capnógrapos, dopplers, etc (Flores, Grimau, &
Cattaneo, 2010).
EVALUACIÓN MANUAL (básica)
De acuerdo con Banfield (2013) el monitor más importante es el profesional que se
dedica al control del paciente. Esta persona debe controlar activamente al paciente, no
sólo fiarse de los valores proporcionados por el equipo de monitorización. Se deben
evaluar en forma continua y asentar en los registros médicos los siguientes parámetros:

Color de las membranas mucosas (MM).

Tiempo de llenado capilar (TLC).

Frecuencia cardíaca.

Frecuencia respiratoria.

Temperatura.

Auscultación del tórax.
2

Calidad de pulso.

Evaluación del dolor.

Estimación de la profundidad anestésica.
El monitor puede controlar multi-parámetros de medición: el ritmo cardíaco,
respiración, presión arterial, saturación de oxígeno y temperatura. La frecuencia
cardíaca se mide colocando electrodos a cada lado del pecho que detectan los cambios
eléctricos producidos por el corazón. Los mismos electrodos para la detección de la
frecuencia cardiaca se utilizan para detectar la respiración a través de un proceso llamado
neumografía impedancia no invasiva. La presión arterial se mide utilizando la técnica
oscilométrica determinando la sistólica, diastólica y la presión arterial media (Villacís,
2015).
SECCIÓN DE INFORMACIÓN
La sección de información indicada en la parte superior de la pantalla, muestra las
condiciones actuales de los pacientes. La información que, a su vez se encuentra, de
izquierda a derecha en la parte superior es: información de animales, información de
alarmas técnicas, información de la alarma fisiológica, fecha y hora, estado de la red y
estado de la batería (López, 2001).
1. Información del animal
 Número de la cama: Se refiere al número de camas de hospital del paciente.
 Peso del paciente: "> 20 kg", "10 ~ 20 kg" o "10 kg <"
 Nombre del paciente: si el operador no introduce el nombre, esta parte se muestra
"NO NAME".
2. La información de alarmas técnicas: Información actual de la condición del
monitor o sensores.
3. Información de la alarma fisiológica: Aparece cuando los parámetros
fisiológicos del paciente exceden el límite de alarma.
4. Fecha y hora: Actualización de fecha y hora actuales a cada segundo.
5. Red de estado: Estado de la conexión de la red
6. Estado de la batería: Capacidad de la batería.
3
SECCIÓN DE LOS PARÁMETROS
López (2001) explica el significado de los parámetros observados en la pantalla:

FC: frecuencia cardíaca. Unidad: latidos por minuto (ppm).

ST: segmento ST. Unidad: milivoltios (mV)

EV: Los tiempos de la eyaculación constricción ventricular. Unidad: Tiempo/
minuto.

NIBP: Presión sistólica, presión diastólica, la presión media. Unidad: milímetro
de mercurio (mmHg)

SpO2: saturación de oxígeno SpO2. Unidad (%).

FP: Frecuencia del pulso. Unidad: pulsos/ minuto.

La tasa de respiración: Unidad: respiraciones / minuto (BRPM.)

T: la temperatura del cuerpo. Unidad: grados centígrados (℃).
PREPARACIÓN DEL ANIMAL
Sala (2014) manifiesta sencillos pasos para la preparación:
1. Se prepara la piel del paciente en un primer momento antes de colocar el electrodo.
Una buena señal en el electrodo proporciona el monitor con información válida
para el tratamiento de datos.
2. Limpiar la piel con el jabón y el agua (no utilizar el éter y el alcohol puro, porque
este tipo de cosas puede aumentar la impedancia de la piel). Rasguñar la piel seca
para aumentar el flujo de la sangre capilar, y retirar la grasa. Si es necesario, afeitar
el vello en donde se coloca el electrodo.
3. Colocar el electrodo en el cuerpo del paciente.
MONITORIZACIÓN DEL PLANO ANESTÉSICO
El monitoreo de la anestesia general es de vital importancia para llevar a cabo
procedimientos seguros. Debemos tener en cuenta que, al realizar una anestesia general,
lo que se produce técnicamente es una intoxicación farmacológica del sistema nervioso
central, sistema que controla de forma inmediata y directa, las funciones de las que
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depende la vida del organismo. Por esta razón resulta fundamental vigilar de manera
exhaustiva las variables fisiológicas del paciente (Flores, Grimau, & Cattaneo, 2010).
La combinación de la respuesta motora y del sistema nervioso autónomo son la base
de la monitorización de la profundidad anestésica. La evaluación de la profundidad
anestésica se realiza evaluando las variables fisiológicas, la respuesta al estímulo
quirúrgico (respuesta motora, hemodinámica y respiratoria), y evaluando algunos reflejos
como el pupilar y palpebral, el tono muscular y la posición del ojo entre otros (Acevedo,
Gutierrez, & Ortega, 2016).
Para cada sección, Bastídas, et al (2012), explican la función de cada una de ellas:
Respuesta a la estimulación quirúrgica: Es uno de los parámetros más indicativos
para evaluar la profundidad anestésica. Cuando el paciente se encuentra en un nivel
anestésico superficial, la percepción del dolor, aunque no consciente, provoca respuestas
como movimientos musculares espontáneos o pequeñas contracciones musculares. Estas
respuestas motoras generalmente van acompañadas por aumentos en la frecuencia
respiratoria, y en algunos casos de aumento en la respuesta hemodinámica que se traduce
en elevaciones bruscas de la frecuencia cardiaca y la presión arterial. Por el contrario, en
planos anestésicos adecuados (quirúrgicos) o profundos, estas respuestas en función al
estímulo quirúrgico, no existen (Bastías et al, 2012).
Variables fisiológicas: Un paciente en un plano anestésico superficial puede tener
las variables fisiológicas dentro del rango considerado normal o incrementado, uno en un
plano quirúrgico, normales o levemente disminuidas (considerado normal), mientras que
un animal en un plano anestésico profundo, estará con sus variables por debajo de los
considerados normales para le especie. Cabe destacar que la función respiratoria se ve
deprimida antes que la cardiovascular en planos anestésicos profundos. También es
importante mencionar que frecuencias elevadas NO siempre indican planos superficiales.
A modo de ejemplo un animal puede tener una frecuencia cardiaca alta producto de una
depresión respiratoria importante producto de un plano anestésico profundo (Bastídas et
al, 2012).
Tono muscular: Se evalúa mediante la resistencia a la apertura mandibular. Esta
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resistencia es alta en planos superficiales, moderada en plano quirúrgicos y ausente en
planos profundos (Bastídas et al, 2012).
Posición del ojo: Presenta posición central tanto en planos superficiales como
profundos y una posición ventromedial en planos quirúrgicos (Bastídas et al, 2012).
Reflejo palpebral: Este se encuentra presente en planos superficiales. En planos
quirúrgicos se encuentra ausente, al igual que en planos profundos (Bastídas et al, 2012).
Tamaño y reflejo pupilar: En planos superficiales presenta un tamaño normal, que
va aumentando de tamaño hasta presentarse muy dilatada en planos anestésicos
profundos. Lo mismo ocurre con el reflejo pupilar, tiene una respuesta normal en planos
anestésicos superficiales, disminuida en planos quirúrgicos y ausente en planos
profundos. La premedicación con atropina invalida la utilidad de esta evaluación en el
inicio del acto quirúrgico (Bastídas et al, 2012).
Movimientos deglutorios: No son esperables en planos quirúrgicos ni profundos.
Monitoreo de la temperatura: El objetivo es tener una temperatura de 37,7 a
39,1 °C (100 a 102,5 °F). La conservación proactiva de la temperatura corporal es mejor
que las técnicas de recalentamiento reactivas. La hipotermia es común después de los 30
minutos de cirugía, debe evitarse activamente y manejarse en forma proactiva, para
mantener normal la temperatura corporal del animal en todo momento (Banfield, 2013).
De acuerdo con Sala (2014):
Monitorización del ECG: El ECG sirve para monitorear la actividad eléctrica de
calor del cuerpo, y muestra la forma de onda eléctrica del corazón y el ritmo cardíaco en
el monitor. La colocación de los electrodos de ECG es la siguiente:
1. La RA (brazo derecho) electrodo - bajo la subclavia, cerca del hombro derecho.
2. Los Ángeles (brazo izquierdo) electrodo - bajo la subclavia, cerca del hombro
izquierdo.
3. El (pierna izquierda) LL electrodo - abdomen izquierdo.
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4. El RL (pierna derecha) de los electrodos - abdomen derecho.
5. La V (pecho) de los electrodos - en el pecho.
Monitoreo para la respiración: Cuando el paciente respira, la impedancia del
pecho va a cambiar con la respiración. El monitor obtiene la señal de aliento a través del
valor de la impedancia torácica de la RA y los electrodos en LL colocados en el pecho.
Después de amplificar la señal de la impedancia entre los electrodos, la onda de la
respiración se mostrará en la pantalla. La colocación del Electrodos es igual como se
conectan los electrodos al corazón (Sala, 2014).
Monitoreo SpO2: El objetivo del monitoreo de la oxigenación es asegurar una
correcta entrega de oxígeno a los tejidos. La oximetría de pulso ayuda a evaluar la
capacidad de los pulmones de suministrar oxígeno y es un indicador indirecto de la
presión parcial de oxígeno en la sangre (PO2) disponible para la perfusión de los tejidos
(Flores, Grimau, & Cattaneo, 2010).
Los valores normales de oxígeno en la sangre arterial, se encuentran entre 80 y
110 mm Hg/90 a 100 mm Hg. Para la colocación, se conecta el sensor al sitio apropiado
de la lengua del paciente (Sala, 2014).
Medición NIBP: Esta técnica de medición de tensión arterial no invasiva de la
máquina es el método de vibración, este tipo de base técnica de medición tiene un límite
determinado en función del objeto de la diferencia métrica. El usuario debe realizar la
medición en caso de tener estas situaciones:

El movimiento del paciente: Si el animal se mueve, tiembla o convulsiona.

Arritmia: Irregulares del corazón.

Máquina corazón-pulmón.

Variación de presión: por ejemplo, mientras en la medición de la presión arterial
al cambiar la presión sanguínea de los animales rápida.

Grave shock: como el animal está en el choque grave o hipotermia

La frecuencia cardíaca exorbitantes o menos: La frecuencia cardíaca es inferior
a 40bpm (latido del corazón / minuto) y es superior a 240bpm (latido del corazón
/ minuto), no se puede llevar a cabo la medición de la presión arterial.
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
Animales obesos: La grasa demasiado gruesa puede reducir la precisión de la
medición.
RCP
La resucitación cardiopulmonar (RCP) es una combinación de compresiones del
pecho (llamado también masaje cardiaco) y respiración artificial. Se usa cuando no se
puede sentir o escuchar los latidos del corazón y cuando el animal no respira (Gónzales,
2017).
Martínez (2018), indica que la RCP en animales se refiere a una serie de
compresiones del pecho y respiraciones artificiales realizadas en un animal inconsciente.
Antes de llevar a cabo la RCP, se debe tomar en cuenta que es una maniobra que puede
tener complicaciones en un animal saludable y sólo debe ser llevada a cabo cuando sea
absolutamente necesario. Nunca dar RCP a un animal que presente comportamiento
extraño, descoordinación, o espuma en el hocico.
El animal debe estar inconsciente; una mascota débil que se ha colapsado pero que
está consciente no necesita RCP, y podría morder debido al miedo o al dolor, o ambos. Y
algo muy importante: La RCP no es efectiva en animales que presentan paro cardíacorespiratorio debido a enfermedades crónicas, como cáncer o problemas del corazón
(Sánchez, 2019).
La frecuencia respiratoria en perros es de 10-30 y su frecuencia cardiaca de 70-100 / 60-180.
La frecuencia respiratoria en gatos es de 20-42 y su frecuencia cardiaca es de 140-220
Para realizar el RCP se debe intercalar 5 respiraciones por cada 15 compresiones
para perros medianos y grandes, y 3 respiraciones por cada 10 compresiones
para perros pequeños y gatos. Continuando así hasta que el perro o gato respondan y
puedan respirar de manera independiente (Del Rio, 2015).
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PASOS BÁSICOS DE RCP PARA PERROS Y GATOS
1) Determinar si el animal está inconsciente.
Si está inconsciente, no responderá; las pupilas se dilatarán, no habrá respiración,
las encías estarán azulosas y el latido cardíaco será muy débil o inexistente. Colocar
rápidamente a la mascota de lado sobre una superficie firme, como una acera o una mesa.
De haber latidos, alineamos la cabeza y cuello con la columna vertebral. Procedemos a
revisar sus fosas nasales y garganta; ayudándonos de una linterna, extraemos cualquier
elemento que le esté bloqueando la entrada/salida de aire si lo hubiera, como un trozo de
hueso, un trozo de una galleta o una bolita (Sánchez, 2019).
Si el objeto que obstruye el paso del aire no está visible, realizar la maniobra de
Heimlich de la siguiente forma (Martínez, 2019):
1.
Colocar al perro o gato de cabeza hacia abajo con su espalda recargada
sobre nuestro pecho.
2.
Abrazar al animal con nuestro puño dentro de la otra mano, justo abajo de
sus costillas (en el caso de gatos solamente apretar esa misma zona con una mano)
3.
Con los dos brazos darle 5 «abrazos de oso» o apretar, en el abdomen.
Realizar cada abrazo enérgicamente.
4.
Detenernos y observar si el objeto ya está visible en la tráquea y retirarlo.
Darle 2 respiraciones artificiales por su nariz manteniendo su hocico cerrado y
observar si el pecho se infla. Si no se logra que el aire pase, repetir la maniobra.
Comprobar el ABC (vía aérea, respiración y circulación) y realiza la respiración
artificial o RCP, si es necesario.
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Si la mascota parece estar inconsciente pero no se está segura(o) de si está
respirando o si hay latido cardíaco, se debe iniciar la RCP de todos modos.
2) Iniciar compresiones cardíacas.
La circulación sanguínea (compresiones al pecho) tiene prioridad sobre la
respiración artificial, ya que la respiración artificial no es efectiva si el corazón no bombea
la sangre. Con la mascota acostada de lado, y con una mano a cada lado del pecho al nivel
de su corazón (el nivel del corazón es donde el codo de la mascota está en contacto con
el lado de su pecho cuando se flexiona su codo y su hombro hacia atrás) comprimir su
pecho (Sánchez, 2019).
En gatos y perros muy pequeños, realizar las compresiones del pecho con una sola
mano, los dedos en un lado del pecho y la palma de la mano en el otro lado, como si
estuviera apretando un juguete para perros que hace ruido. Comprimir el pecho 30 veces
a un ritmo de 2 compresiones por segundo. Se deberá intercalar 5 respiraciones por cada
15 compresiones para perros medianos y grandes, y 3 respiraciones por cada 10
compresiones para perros pequeños y gatos. Comprimir el pecho 30 veces antes de ir al
siguiente paso (Gómez, 2015).
3) Iniciar la respiración artificial.
Halar la lengua del animal fuera de la boca y dejar colgar del costado. Cerrar
suavemente su hocico con nuestra mano, y entonces rodear su nariz con nuestros labios
creando un sello para que no escape el aire (o rodea el hocico completo con nuestra boca
si es un perro pequeño o un gato). Soplar por 2 segundos en las fosas nasales. Hacer una
pausa y repetir una vez más, de modo que proporcione dos respiraciones artificiales en
total (Sánchez, 2019).
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4) Mantener los ciclos de compresión-respiración artificial por varios minutos
Realizar 30 compresiones cardíacas seguidas por dos respiraciones artificiales, y
repetir. Continuar con este método por 10 minutos. Detenerse y revisar cada 2 minutos si
la mascota ya está respirando por sí sola y/o tiene latido cardíaco (Sánchez, 2019).
Recordar ser paciente: en el mejor de los casos, tomará al menos un minuto para
que las compresiones del pecho lleven sangre al corazón con éxito, y podamos notar un
síntoma de mejoría, como, por ejemplo, unas encías rosadas (Gómez, 2015).
Las compresiones del pecho no son tan eficientes para promover la circulación
de la sangre, como lo son las contracciones naturales del corazón. La compresión de
pecho artificial solo produce el 30% de la salida cardíaca producida naturalmente por la
contracción del corazón, por esto se debe ser persistente al realizar los ciclos de
compresión-respiración artificial (Sánchez, 2019).
Llevar a la mascota a una clínica de emergencia más cercana después de 10
minutos de reanimación cardiopulmonar, incluso si se tuvo éxito realizando la técnica.
Los animales que han sufrido un paro cardíaco o respiratorio necesitan atención médica
adicional para asegurar su supervivencia. Cuando se realiza en el momento adecuado con
la técnica adecuada, la RCP puede salvar la vida de una mascota. Lo más importante es
mantener la calma, analizar rápidamente la situación y tomar medidas inmediatas
(Besteiros, 2019).
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