Subido por Maria Victoria Negrete

18 Implementacion acciones salud animal

Anuncio
Confederación Nacional de Organizaciones Ganaderas
Programa Integral de Capacitación 2013
Prestador de Servicios Profesionales
Consorcio Técnico del Noreste de México, A.C.
Plan de Desarrollo Empresarial para Productores y Organizaciones Ganaderas
Plan de formación para productores
Implementar las acciones de salud animal para prevenir mortalidad y mejorar los
parámetros productivos en el hato
Dr. Ramiro Avalos Ramírez
Dr. J. Rubén Cervantes Vega
Directorio
Confederación Nacional de Organizaciones Ganaderas
Consejo Directivo
Oswaldo Chazaro Montalvo
Presidente
MVZ. Freddy Priego Priego
Secretario
MVZ. Salvador Álvarez Moran
Tesorero
Comisión de Innovación y Transferencia de Tecnología
Ing. Antonio Manuel García González
Resultado de aprendizaje
Implementar las acciones de salud animal para prevenir mortalidad y mejorar los
parámetros productivos en el hato.
Contenido
Sanidad y rentabilidad
Bioseguridad pecuaria
Calendario de vacunación
Calendario de desparasitación
Control de Brucelosis
Control de Tuberculosis
Sanidad y Rentabilidad
La rentabilidad de toda explotación pecuaria es afectada por una gran cantidad de
factores, entre los que destacan la nutrición, la genética, el medio ambiente y la
salud de los animales. Dentro de esta última condición, las enfermedades
infecciosas representan una de las principales causas de pérdida económica al
sector ganadero ya sea por provocar infecciones subclinicas (no hay síntomas de
enfermedad), clínicas y muerte del animal. Si bien existen diversas estrategias
para el manejo y control de las enfermedades infecciosas que van desde la
administración racional de sustancias antimicrobianas (antibióticos) ó eliminación
de los animales persistente o severamente afectados la práctica de la vacunación
es una de las alternativas con mayor costo-beneficio, principalmente en aquellos
ranchos o regiones en los cuales los índices de prevalencia son de moderados a
altos ó carentes de medidas de bioseguridad. No obstante, el diseño e
implementación de plan de vacunación es una tarea compleja dado que implica no
solo saber si el agente infeccioso está presente (endémico) en el rancho, sino
también se deben de conocer aspectos fundamentales de la biología misma de la
enfermedad, es decir la naturaleza del agente causal (Virus, Bacteria,
Protozoario), características de la infección-enfermedad (aguda, latente, crónica,
persistente), Hospedadores o animales susceptibles(vacas, aves, perros, etc..),
modos de transmisión (directa, indirecta -insectos, utensilios-) hasta la condición
fisiológica del o los animales que se pretenden vacunar. Por otro lado, es
necesario de considerar si existe vacuna disponible en el mercado, su costo, vía
de administración y cuidados en su manejo. La presencia o ausencia de
enfermedades en el rancho obedece a una intrincada red de eventos sucesivos en
los cuales participan no solo los agentes causales, animales y el medio ambiente
sino también el propio productor ó manejador del rancho mediante sus acciones.
La pérdida de becerros antes del nacimiento o del destete, así como la infertilidad,
diarrea, septicemia, enfermedad respiratoria, falta de productividad y muerte de los
animales en forma general nos indican falta o irregularidades en las prácticas de
manejo. La aplicación de criterios válidos y un esquema integral que contenga los
aspectos básicos de la nutrición (incluida la suplementación con vitaminas y
minerales) y de la sanidad y salud animal nos ayudaran en gran medida a
disminuir las posibilidades de aparición de enfermedades en el rancho. Como ha
sido señalado con anterioridad, la vacunación es una herramienta más que los
ganaderos disponen para evitar la aparición de enfermedades en el rancho y
mantener sanos sus animales. En breve, involucra la aplicación artificial de
microorganismos (virus, bacterias, protozoarios, etc..) o fracciones de estos,
generados en el laboratorio, incapaces de provocar enfermedad (atenuados ó
muertos) pero con la propiedad de inducir un estado de resistencia ó inmunidad
contra aquellos agentes infecciosos virulentos causantes de enfermedad.
Mediante esta práctica, en conjunción con otros componentes de la bioseguridad
pecuaria, se pueden controlar y erradicar aquellos agentes infecciosos que por su
naturaleza provocan fuertes pérdidas a la economía del productor del sistema
vaca-becerro. No obstante, antes de decidir cómo, cuándo, a quien y con qué
vacunar es necesario tener en cuenta algunos aspectos básicos que involucran
esta actividad. Entre otras consideraciones, es importante tener en cuenta que,
por diversos motivos en la región una proporción alta de productores no incluyen
en su manejo la vacunación de sus animales y en aquellos casos en los cuales se
practica la vacunación esta se realiza sin tomar en cuenta algunos parámetros
básicos para realizar esta actividad. La presencia, prevalencia é incidencia de las
enfermedades en el rancho o región es otra de las características que se deben de
tomar en consideración en conjunción con las características agroecológicas de la
zona. El estado fisiológico del animal (embrión, feto, neonatos, becerros, adultos,
preñez, animales viejos, etc..), el tipo de hato (cerrado ó abierto), la época del año
(antes del empadre, antes de las lluvias y/o, invierno, primavera, etc..), el tipo de
vacuna (inactiva, activa modificada, subunidades de antígenos, etc..), el costo,
método y esquema de vacunación conformarían variables adicionales para realizar
esta actividad. Este último, debería de ser analizado, comprendido y debe de
realizarse en función del tipo de vacuna (inactivada, activa) y su potencia, ruta de
administración, inmunidad ó exposición previa, necesidad de revacunación y
equipo e instalaciones apropiadas así como personal capacitado.
Bioseguridad pecuaria
La bioseguridad involucra todas aquellas actividades y acciones que son llevadas
a cabo para evitar la introducción de agentes infecciosos o productos de ellos
hacia un área o grupo de animales. Usualmente si algún agente infeccioso o sus
productos ya se encuentran presentes todas las acciones para evitar su
diseminación entre los animales de una zona o lugar se conoce como biocontención. La bioseguridad aplicada a los sistemas pecuarios implica el uso de
herramientas disponibles para evitar la introducción, diseminación, control y
erradicación de agentes infecciosos y sus productos tanto en animales domésticos
como silvestres. Este concepto ha emanado de la modernización de los procesos
tecnológicos para generar animales, productos y subproductos de los mismos
inocuos y seguros tanto para animales como para humanos. La bioseguridad en el
rancho puede establecerse a varios niveles según el riesgo que cada productor o
administrador del rancho desee aceptar para sus animales. Dado que no todos los
agentes infecciosos o factores causantes de enfermedad están presentes en un
área ó región, que su naturaleza es heterogénea y que cada rancho es diferente,
las herramientas o procesos para aplicar la bioseguridad dependerán de la
situación particular de cada uno de estos elementos. Una consideración
importante cuando se define el nivel de bioseguridad que se desea tener es
estimar el impacto potencial de la infección-enfermedad
y sus consecuencias
económicas. Es decir, no todos los agentes infecciosos tienen la misma habilidad
para generar enfermedad y por consiguiente variarán los efectos económicos a
corto, mediano y largo plazo. Se ha propuesto hasta seis niveles de bioseguridad
en las unidades de producción con respecto a permitir la introducción de animales
en cada unidad. Esto es, hato estrictamente cerrado (libre de patógenos
específicos), hato en donde la salida y reentrada de los animales del mismo del
mismo u otros ranchos no se permite, hatos que no se permite la entrada de
animales de otra fuente pero se permite la reentrada de animales del mismo
rancho, hatos en donde se aplica cuarentena y permite la entrada de animales de
otras fuentes que cuentan con registros de salud y pruebas de laboratorio, hatos
que permiten la entrada de animales de otro origen con registros de salud y
pruebas de laboratorio pero no se aplica cuarentena ó aislamiento y hato donde se
permite la entrada de animales de otras fuentes sin conocer el estado de salud, sin
análisis de laboratorio y que no se practica la cuarentena. Si bien, la principal
fuente de entrada para patógenos hacia el rancho son los mismos bovinos, ya sea
incubando una enfermedad de reciente adquisición o de forma latente o
persistente, otras formas de dispersión deben de tenerse en cuenta y van desde el
uso de semen y embriones hasta alimentos (forraje, concentrados), agua,
animales silvestres (aves, venados, coyotes, ratas) o “callejeros” (bovinos u otros
rumiantes que deambulan libres entre los ranchos), garrapatas y otros insectos
chupadores, vehículos de transporte, trabajadores, visitantes ó mascotas con
acceso a otros ranchos.
Los ganaderos debe de tener una visión empresarial a mediano y largo plazo para
asegurase que se establezca el nivel adecuado de bioseguridad que su rancho
necesita. En este sentido el establecimiento de medidas de bioseguridad es una
inversión que requiere tiempo dinero y esfuerzo. De acuerdo al nivel de
bioseguridad y salud del hato que el ganadero esté dispuesto a obtener será la
inversión tanto económica, de tiempo y de recursos humanos.
Inmunidad e inmunización
El sistema inmunológico de los animales domésticos está constituido por una serie
de factores y mecanismos que de manera colectiva defienden al organismo del
ataque y colonización de agentes infecciosos. La multiplicación sin control de los
agentes infeccioso ya sea bacterias, virus, parásitos conduce a la enfermedad. Si
bien existen varios tipos de infecciones ( desde las subclínicas hasta las que
causan evidente daño clínico) la aparición de la enfermedad es de origen
multifactorial que acompaña una pobre o exacerbada respuesta del sistema
inmunológico. Los mecanismos defensivos en el animal operan de forma
inespecífica (inmunidad innata) o especifica (inmunidad adquirida). La inmunidad
innata no es especifica hacia un antígeno o agente infeccioso ni requiere estimulo
previo para operar y usualmente es la primera línea de protección e incluye
barreras físicas como la piel, epitelio, moco, diarrea, etc.., enzimas, sistema
complemento, inflamación, fagocitosis y la ausencia de receptores. La inmunidad
adquirida o específica es llevada a cabo mediante la actividad ó estímulos de
linfocitos y otras células accesorias con citocinas en conjunción con anticuerpos.
Esta respuesta es específica del antígeno (inmunogeno) o agente infecciosos que
le dio origen o estímulo y es el tipo de inmunidad que se intenta establecer en el
animal mediante el uso de vacunas. La respuesta inmune adquirida puede
dividirse en tres fases que son el reconocimiento (la identificación los agentes
infecciosos como ajeno al cuerpo - antígenos ó inmunogenos- su procesamiento y
presentación a linfocitos), la activación (los linfocitos estimulados por el antígeno
proliferan generando poblaciones de linfocitos específicos del antígeno, amplifican
la respuesta y se diferencian el células que eliminaran al antígeno), la efectora (los
linfocitos activados ejecutan funciones que conducen al eliminación del agente
infeccioso, incluye la producción de anticuerpos por parte de linfocitos B y la
actividad de linfocitos T citotoxicos). Dependiendo de la constitución anatómica y
fisiológica del animal y de estímulos previos de su sistema inmune la duración de
las tres fases varía pero en su conjunto la respuesta ocurre entre 2 y 4 semanas
después de la exposición a la sustancia extraña ó agente infeccioso. Cuando a un
animal se le administra una vacuna lo que se pretende es crear un estado inmuneinmunización- en contra de los componentes (antígenos o agentes infecciosos) de
la vacuna para que de esta manera en una exposición subsecuente en contra del
agente infeccioso virulento el animal resista la infección y no se enferme. Debido
a que el sistema inmune requiere de tiempo para responder a la vacunación es
bien importante vacunar en el tiempo adecuado según la etapa fisiológica del
animal y el nivel de riesgo de presencia de infecciones y enfermedades. Para ello
es menester contar con un calendario de manejo en el cual se incluyan las
vacunas de mayor relevancia en la zona de ubicación del rancho así como las
desparasitaciones internas y externas acorde a la región. La administración de
microminerales y vitaminas en la dieta o inyectadas deberá de tomarse en cuanta
para asegurar una adecuada respuesta inmunológica y así una mejor salud del
animal.
Calendario de vacunación
Se ha reportado en todo el País, la alta prevalencia de enfermedades
reproductivas. En estudios parciales efectuados en establos seleccionados, se han
encontrado anticuerpos en contra de la rinotraqueitis infecciosa bovina, la diarrea
viral bovina, neosporosis y leucosis bovina y en algunos ranchos de ganado
productor de carne con problemas de baja producción ganadera, se ha detectado
que es alta la presencia de piroplasmosis, anaplasmosis, leptospirosis, diarrea
viral bovina, rinotraquitis infecciosa y neosporosis, considerando a estas como las
principales enfermedades que afectan a la reproducción serán revisadas
brevemente.
Rinotraqueitis Infecciosa Bovina, IBR o Herpesvirus Bovino 1.
Es un virus cosmopolita y es uno de los agentes infecciosos considerados como
los de mayor impacto económico para el ganadero debido a sus fuertes
repercusiones negativas sobre la producción. La presencia de este virus limita la
rentabilidad del rancho no solo por sus efectos sobre los animales son también por
restricciones de tipo comercial que se imponen a los ranchos y áreas infectadas.
El virus es altamente contagioso para los bovinos de cualquier edad. Una vez que
ocurre la infección este virus permanece en estado ¨latente¨ en tejido nervioso
(raíces de los nervios trigémino y sacro). Los animales infectados con el BoHV-1
pueden mostrarse clínicamente sanos, o sea no hay síntomas de enfermedad, de
tal forma que se puede adquirir animales infectados que posteriormente al
incorporarlos al rancho pueden diseminar el virus hacia animales susceptibles.
Cuando los animales afectados muestran síntomas el rango puede ser muy
amplio. Las diversas formas clínicas pueden abarcan desde la Rinotraqueitis
Infecciosa Bovina (“IBR”), la Vulvovaginitis Pustular Infecciosa (“IPV”), la
Balanopostitis (“IPB”) ó hasta conjuntivitis, infertilidad /aborto, enteritis y encefalitis.
El BHV-1 ha sido dividido en los subtipos 1 (BHV1.1), 2a (BHV1.2a) y 2b
(BHV1.2b). No obstante, se considera que todos pertenecen a un mismo grupo o
tipo antigénico (serotipo). Es decir es el mismo virus pero diferentes formas de
presentarse. El BHV1.1 comprende a los virus “clásicos” que han sido
relacionados a infecciones respiratorias causando la Rinotraqueitis Infecciosa
Bovina (IBR); no obstante se han reportado aislados de este subtipo como causa
de abortos. Por otra parte, el BHV1.2a se ha encontrado como causante de IBR,
IPV, IPB y abortos; mientras que BHV1.2b se ha detectado en infecciones
respiratorias así como en el síndrome de IPV/IPB, pero no en abortos. En
infecciones respiratorias se considera al BHV1b de menor “agresividad” que el
subtipo BHV1.1. Este virus se trasmite de forma directa con relativa facilidad
gracias a la gran cantidad virus infecciosos que salen de los animales afectados
principalmente de secreciones respiratorias, oculares y del tracto genital (de forma
importante en semen).
No obstante, estas secreciones pueden contaminar
diversos utensilios (Guantes de palpación, sujetadores nasales, empleados para el
manejo de los animales por lo que el virus también puede diseminarse de forma
indirecta entre los animales gracias a la intervención humana. El periodo de
incubación de la enfermedad es variable de entre 2 y 7 días, pero depende del
subtipo (cepa), sitio de entrada, inmunidad previa (si el animal fue vacunado o se
infectó y se recuperó) y factores estresantes, entre otros. En hatos susceptibles
no inmunes y expuestos al virus se ha demostrado que entre un 25 y 60% de la
vacas pueden abortar después de exponerse al virus, independientemente del
periodo de preñez. Otra proporción de vacas, y especialmente vaquillas, pueden
resultar con infertilidad o muerte del embrión si adquieren la infección al momento
de la cruza dado que el virus puede provocar inflamación del útero y de ovarios.
Estudios previos y actuales en la región noreste de México han mostrado que la
seroprevalencia de este virus es alta en esta zona. El diagnóstico molecular del
virus basado en la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) se aplica con
cierta rutina en el Noreste de México. En el Departamento de Virología de la
Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la UANL y en el Laboratorio
Central Regional de Monterrey, A.C., el virus ha sido detectado en semen,
secreciones vaginales, de prepucio y respiratorias de diversos hatos del sistema
vaca cría. Un estudio, realizado en la región Noreste de México entre el año 2005
y 2007 ha detectado que 165 hatos del sistema vaca-becerro no vacunados contra
BHV-1 de Nuevo León (45), Coahuila (25), Tamaulipas (18) y la Huasteca
Potosina (10) resultaron seropositivos al virus. No obstante los rangos de
seroprevalencia variaron de 20 a 76%. Esto significa que prácticamente todos
hatos analizados no vacunados muestran anticuerpos contra el BHV-1 lo cual
implica que el virus está ampliamente difundido en la zona y que eventualmente
puede constituirse en brotes de abortos, infertilidad ó problemas respiratorios de
forma individual o colectiva, dependiendo de la situación particular de cada hato,
de la zona geográfica y de la infección concomitante con otros patógenos, entre
otros.
Virus de la Diarrea Viral Bovina
El agente etiológico de la diarrea viral bovina pertenecen a las especies BVDV-1 y
BVDV-2 agrupados dentro del género Pestivirus en la familia Flaviviridae, estas
dos especies se han establecido de acuerdo a las diferencias genotípicas y
antigénicas de los virus. Así mismo se ha dividido estas dos especies en
subgrupos, así en BVDV-1 se han encontrado hasta 11 subgrupos genéticos y
para BVDV-2 solamente 3 subgrupos. El genoma del virus es de RNA de cadena
sencilla polaridad positiva, mide 12.3 Kb aproximadamente. Los viriones miden de
40 a 60 nm de diámetro y tienen forma esférica. De acuerdo al efecto que puede
causar el virus sobre el cultivo celular se ha clasificado en dos biotipos, virus
citopático (cp) y virus no citopatico (ncp).
La transmisión del virus en un hato está influenciada por la presencia de animales
persistentemente infectados (PI), animales con afección aguda y de las prácticas
sanitarias que se realicen en los hatos. Se han reportado seroprevalencias que
oscilan entre 60 y 85% para ganado de carne y bajo el mismo sistema han
descrito una prevalencia para animales PI entre 0.5% y 2%. En sistemas semiintensivo con pastoreo en praderas del trópico en ganado de carne se ha descrito
una prevalencia de 14% en el estado de Yucatán. En el estado de Nuevo León se
ha descrito una prevalencia que oscila entre 28.5 y 67.8% para el sistema vacacría que se desarrolla en explotaciones de tipo semi-intensivo.
La transmisión del virus dentro de un hato se presenta por la introducción de
animales con infección aguda, animales PI, semen y embriones contaminados con
el virus, hembras gestantes con un producto PI y uso de vacunas con virus vivo en
hembras gestantes. El tiempo de seroconversión de los animales susceptibles con
la presencia de un animal PI en el hato lo han estimado en 2 meses, mientras que
la seroconversión tras la introducción de animales con afección aguda se lleva
aproximadamente 5 meses. La transmisión entre hatos se presenta cuando se
comparten pastas o agostaderos con otros hatos, préstamos de sementales y
utensilios, participación en ferias.
Los efectos en la reproducción bovina son
variados y dependen muchos factores. Todos son adversos para la producción.
Después de una infección aguda con BVDV existe una disfunción ovárica en las
hembras (reducción de los ciclos del estro), disminución significativa de la calidad
de los folículos, reducción de la actividad del cuerpo lúteo y reducción de las
oleadas foliculares; se ha sugerido que estos cambios obedecen a la elevación de
la concentración del cortisol en la sangre, que se observa en los periodos de
viremia y que están involucrados directamente con la alteración en la
retroalimentación sobre la secreción de las hormonas. Otros efectos observados
en la disfunción folicular están involucrados con la capacidad del virus para
intervenir en el descenso sobre la concentración en sangre de estradiol, además
de intervenir en los procesos antes descritos, también influye en el desarrollo
adecuado de un ciclo estral. En los órganos que comprenden el sistema
reproductivo del macho se han asilado partículas virales, lo que compromete la
función de los mismos; de tal forma que, se presenta anormalidades en los
espermatozoides, disfunciones en la motilidad y baja producción de semen. Otro
efecto importante es la presencia de abortos y la producción de animales PI; en el
primero de los casos muchos autores han reportado el tiempo en que se puede
presentar, sin embargo es de suma importancia ubicar las factores de riesgo para
que este acontecimiento no suceda y de la misma forma con los animales PI .
Leptospirosis
La enfermedad es causada por bacterias gram negativas, pertenecen a la familia
de las Spiroquetas, poseen forma delgada, helicolidal, son organismos móviles,
con una longitud entre 10 y 20 µm; tienen un genoma de aproximadamente 5,000
Kb. La composición de lipopolisacáridos es similar a otras bacterias gram
negativas, pero tienen baja actividad endo-tóxica; son bacterias aerobias
obligadas con un crecimiento óptimo a temperaturas entre 28 a 30° C; el medio
donde crecen debe ser enriquecido con vitaminas B 2 y B12, ácidos grasos de
cadena larga y sales de amonio. La clasificación taxonómica de este grupo de
bacterias se basa en diferencias serológicas y genéticas; la primera clasificación
obedece a diferencias antigénicas observadas en ensayos de aglutinación,
teniendo que, el género Leptospira se divide en 2 grandes especies: Leptospira
interrogans y Leptospira biflexa, en la primer especie se agrupan todas aquellas
bacterias patógenas, existiendo a la fecha 200 serovares y en la segunda especie
se agrupan aquellas bacterias saprofitas, existiendo 60 serovares; los serovares
que están antigenicamente relacionados se agrupan en serogrupos; la
clasificación genética se basa en diferencias genéticas entre los aislados, de esta
forma, existen a la fecha 16 “genomoespecies”.
Los bovinos son portadores
naturales del serovar Hardjo, y la infección por esta cepa se presenta
eventualmente sin signos clínicos aparentes, de tal manera que, continuamente
liberan por la orina al ambiente bacterias. Sin embargo son susceptibles a otros
serovares que están presentes en el medio por excreción de otros animales que
son
portadores.
La
Leptospira
spp.,
son
bacterias
ubicuas
y están
geográficamente relacionadas con ciertos tipos de suelos, así como, la interacción
que guardan con los hospederos naturales, también denominados portadores
asintomáticos que tienen un rol importante en la transmisión, pues contaminan el
medio con grandes cantidades de bacterias por medio de la orina, debido a una
infección crónica que sufren en el epitelio renal con algún serovar. De esta forma
una vez que las bacterias han salido al medio pueden contaminar el agua, comida,
utensilios, comederos; exponiendo así, a un gran número de animales y humanos
susceptibles. La leptospirosis bovina es una enfermedad ampliamente distribuida
en México que tiene una seroprevalencia elevada (49.7 %) y se encuentra
presente en las distintas regiones ecológicas. El contagio está influenciado por
factores climáticos como la humedad y la temperatura, los cuales permiten que la
bacteria sobreviva externo al animal, favoreciendo la transmisión indirecta.
La leptospirosis considerada la epizoodemia más difundida en el mundo, tiene
tanto importancia económica como sanitaria. La repercusión económica más
importante en la explotación, es el falla reproductiva, secuela crónica de la
enfermedad en las vacas reproductoras, que causan mortinatos, abortos o
nacimientos de animales débiles, disminución de la fertilidad, entre otros. Los
estudios seroepidemiológicos sobre leptospirosis bovina en la región Noreste de
México han detectado a esta enfermedad en donde la frecuencia serológica
promedio es de 37.8 % (rango de 31 a 59 %). Las serovariedades con mayor
prevalencia fueron cepa H-89 (hardjo genotipo hardjoprajitno), hardjo, wolffi y
tarassovi. La infección con Leptospira spp., se ha ligado fuertemente a baja
fertilidad, expresada en bajos niveles de concepción, repetición de calores y
abortos que frecuentemente ocurren en 4 a 12 semanas después de una infección
aguda y se han reportado en el 5 y 6 mes de la gestación. Otros efectos que se
han descrito por efecto de la infección es el nacimiento de crías prematuras,
débiles o mortinatos; con respecto a este efecto diversos estudios han encontrado
la presencia de Leptospira spp en tejidos como placenta, hígado, riñones, cerebro
del producto y se cree que el síndrome de nacimiento de crías débiles se debe a
que la bacteria infecta la placenta y en este tejido se monta una inflamación fuerte,
lo cual limita el transporte de nutrientes de la madre al feto
Neospora caninum
Es un protozoario que pertenece al phylum Apicomplexa, familia Sarcocystidae, a
la que también pertenecen Toxoplasma gondii y Sarcocystis.
El ciclo de vida de este parásito comprende un ciclo indirecto, donde la
reproducción sexual (gametogonia) ocurre en el huésped definitivo (HD), mientras
la reproducción asexual (merogonia) ocurre en el huésped intermediario (HI); se
han descrito como HD los carnívoros domésticos y salvajes, empero los
herbívoros domésticos y salvajes e incluso los propios carnívoros juegan el rol de
HI. Dentro del ciclo de vida se reconocen los quistes tisulares que poseen forma
ovalada y miden hasta 100µm de diámetro y se han reconocido en cerebro,
médula espinal, retina y nervios periféricos de los HI, otros estadios son los
ooquistes que tienen forma esférica y poseen un diámetro de 11µm, cada uno de
ellos contiene en su interior dos esporoquistes, los ooquistes se encuentran en las
heces del HD, las que posteriormente contaminarán el medio para que el HI se
infecte y el ciclo siga su curso. Este parásito está relacionado con una afección
neuromuscular en perros y terneros, abortos y mortinatos en bovinos. El ciclo de
este parásito es indirecto, ya que ocurre entre los HD y los HI. En el ciclo se
reconocen tres fases, la primera de ellas se denomina enteroepitelial o intestinal,
en donde el HD ingiere quistes tisulares mediante el consumo de tejido
placentario, muscular, nervioso o piel, en esta fase se desarrolla la reproducción
asexual y sexual del parásito para posteriormente excretar junto con las heces los
ooquistes sin esporular, lo cual lleva un tiempo entre 5 y 17 días después de haber
consumido el HD el quiste tisular. Los rangos de seroprevalencia del parásito en
bovinos de carne bajo un sistema vaca-cría en Nuevo León se han estimado entre
0 a 35%.
Se reconocen dos formas de transmisión por las que el parásito puede
diseminarse en la población bovina, la primera de ellas es la forma vertical
(aparentemente la principal), esta vía se presenta en hembras gestantes cuando
los taquizoitos invaden la placenta y por consiguiente el producto, la situación se
ve favorecida por el descenso en la actividad del sistema inmune en las hebras
gestantes y se acentúa con el progreso de la gravidez, lo repercute directamente
en el aumento de las tasas de infección del feto, de acuerdo a esto, se dice que la
probabilidad de transmisión vertical en hatos con infección latente se incrementa
de un 81 al 100% a partir de la semana 20 de gestación; otros aspectos
importantes sobre la infección de la progenie es el hecho que las madres
infectadas pueden producir a lo largo de su vida descendencia con la misma
condición, hasta hoy este acontecimiento es inconsistente por razones
desconocidas, pero se ha encontrado que un 95% de los becerros afectados
congénitamente nacen sin ninguna afección. La otra forma de transmisión es la
horizontal que puede suceder después del nacimiento o en algún momento de la
vida productiva del animal, en esta alternativa de infección participa activamente el
o los hospederos definitivos, pues al liberar a través del excremento grandes
cantidades de ooquistes infectivos contaminan el medio y aunado a esto que
existan condiciones favorables de manejo para que suceda el ciclo de vida del
parásito; bajo experimentación solo toma 2 a 4 semanas para que un becerro
infectado monte una respuesta inmune frente al parásito y además se observó en
un trabajo la capacidad de los taquizoitos depositados en calostro para infectar a
un becerro, estos hallazgos no se han comprobado abiertamente, pero existe
evidencia de seroconversión a las dos semanas de vida en becerros de madres
seronegativas, sin ningún contacto aparente con las fuentes principales de
contagio y bajo estas condiciones se han encontrado seroconversiones en 1%
anual. Los efectos en la reproducción bovina son variados y pueden ser muy
desastrosos. Algunas investigaciones concluyen que el 42% de las vacas
gestantes en una explotación lechera pueden abortar debido a Neospora
caninum, el riesgo de aborto en vaca seropositivas es de 3 veces más
comparadas con las vacas seronegativas, para las hembras afectadas
congénitamente el riesgo de aborto en su primer parto puede ser de 7 veces más
que en vaquillas sin afección, los mortinatos son otro efecto del parásito, se ha
descrito que las vacas seropositivas están dos veces más en riesgo de producirlos
que las seronegativas, otros efectos observados son el retorno del celo
constantemente, reabsorciones embrionarias, o el nacimiento de animales con
hidrocefalia, y afecciones en la columna vertebral; en los machos se ha
encontrado la presencia del parásito en semen pero no se ha descrito una
anomalía asociada.
Esquema de prevención de enfermedades
Cuando tenemos un hato infectado por las enfermedades que afectan a la
reproducción, la perdida de becerros antes del destete puede ser un grave
problema. En la producción ganadera se está dando a conocer la importancia de
tener en práctica un buen programa de bioseguridad. Aplicar el sentido común y
un esquema integral que incluya la suplementación con minerales y vitaminas, la
aplicación de biológicos veterinarios adecuados y en forma correcta y sencillas
prácticas de limpieza y desinfección, en gran medida eliminaran la mayoría de las
posibilidades de que ocurran enfermedades en el rancho Aunque el concepto de
bioseguridad en los ranchos ganaderos esta en formación, con el propósito de
contribuir a la definición del concepto se revisará un esquema de prevención de
enfermedades en los becerros antes del destete y la definición de algunos de los
términos usados comúnmente.
Se describirá cómo es posible tener éxito en destetar becerros, existen cuatro
periodos que requieren la atención de los productores estos son:
El manejo de la vaca en el último tercio de la preñez,
El-proveer de un cuidado apropiado al becerro durante las primeras 24 horas de
su vida,
Realizar ajustes en las necesidades y vacunaciones (si se requiere)
Preparar al becerro para el destete.
El manejo de la vaca en el último tercio de la preñez
La condición corporal de la vaca es el factor más importante que cuidar al
momento del parto aunque esta condición esta correlacionada con muchos
factores como el intervalo entre partos, producción de leche, peso al destete de la
cría y supervivencia de la cría. Las vacas y vaquillas deben de tener una condición
corporal de entre 5 y 6 al parto y así mantenerse, para asegurar que se preñen ya
que los animales con exceso o déficit de condición corporal tienen problemas
reproductivos. La condición corporal es generalmente el reflejo de la carga animal
o cantidad de animales, adecuada para la superficie del rancho aunque la
presencia de enfermedades o parásitos pueden contribuir a tener una baja
condición corporal, es necesario entonces tener un esquema general de manejo
sanitario de todo el ganado y en el caso específico de las hembras en etapa de
gestación avanzada o último tercio de la preñez, el manejo es delicado y se
deberán de mover lo menos posible para evitar pérdidas por golpes u otras
situaciones similares.
Cuidado apropiado del becerro durante las primeras 24 horas de su vida.
Los becerros deben de nacer en lugares que sean cálidos y secos. Los eventos
que rodean las primeras 24 horas de vida del becerro son muy importantes para la
salud futura del becerro. Como se mencionó anteriormente un manejo apropiado
del becerro comienza con el manejo de las vacas o vaquillas preñadas.
La alimentación con calostro. Los becerros deben de ingerir calostro en las
primeras horas de vida, preferentemente las primeras dos horas.
Inmunización activa. La inmunización activa de la madre es empleada para
aumentar la producción de anticuerpos específicos en calostro y leche, es
importante diseñar un programa de vacunación, con el propósito de controlar las
enfermedades que están causando la mortalidad en las crías.
Figura 1. Becerro débil persistentemente infectado con el virus de la diarrea
Viral Bovina (DVB), note el pelo hirsuto y la postración resultado de la
incapacidad para mantenerse de pie)
Tabla de Esquema de prevención de enfermedades en vacas con
preñez avanzada (7- 9 m).
Actividad
Producto
Nombre comercial
Control de Garrapata
a)Organofosforados
Asuntol
b) Piretrinas
Butox
c) Amidinas
Tak Tik
Bovitraz
Control de Mosca
a) Fention
Tiguvon
Desparasitación interna
a) Ivermectinas
Ivomec
b) Febendazol
Panacur
Prevención de IBR, DVB, Vacuna inactivada
Horizon 4
PI3 Y VRSB.
Respishield 4
Cattle Master
Triangle 4
Prevención de Leptospirosis
Bacterina
con
cinco Horizon 9 Combinada con
serovariedades *
*
Verificar
Virales
cepas Leptobacterina (sola)
existentes en el rancho
Prevención de Hemophilus Bacterina
Triangle 9 + HS
somnus
Prevención de pierna negra
Bacterina siete vías
Prevención de otras
Vacunas en caso de Scour Guard
E
coli,
Rotavirus, diarreas
Ultrabac 7
Rotavec Corona
Coronavirus
Prevención
de Vacunas en caso de
Tricomoniasis, Vibriosis y infertilidad, piómetras y
Neosporosis
abortos tempranos
NOTA. La mención de nombres comerciales es solo a manera de guía no
implica recomendación o patrocinio en modo alguno.
Desinfección. Una desinfección efectiva requiere que las superficies estén bien
mojadas. Todas las áreas a ser desinfectadas deberán ser previamente limpiadas
para eliminar la materia orgánica presente de lo contrario, existirá una reducción
en la efectividad en la práctica, se recomienda un contacto de al menos 30
minutos para lograr una desinfección apropiada. Usar un programa de
desinfección y bioseguridad con la asesoría de profesionales, el uso del
laboratorio y la aplicación del sentido común puede salvar muchas vidas de
becerros que al final del año podrán ser la diferencia entre perder o ganar dinero el
rancho debe de tener una relación costo beneficios favorables.
Esquema de prevención en Becerros de 4 a 8 m de edad
Actividad
Producto
Nombre comercial
Control de Garrapata
a)Organofosforados
Asuntol
b) Piretrinas
Butox
c) Amidinas
Tak Tik
Control de Mosca
Organofosforados
Tiguvon
Desparasitación interna
a) Ivermectinas
Ivomec
b) Albendazol
Valvazen
Prevención de IBR, DVB, Vacuna inactivada
Horizon 4
PI3 Y VRSB.
Respishield 4
Prevención de Hemophilus Bacterina
Triangle 9 + HS
somnus
Prevención de pierna negra
Bacterina siete vías
Ultrabac 7
Prevención de pasteurelosis
Bacterina
One Shot
NOTA. La mención de nombres comerciales es solo a manera de guía no implica recomendación o patrocinio en
modo alguno.
Tabla.- Causas comunes de aborto en bovinos
Nombre y
Agente
Fuentes del
agente
Historia
Clínica
Etapa en que
Métodos de
ocurre el aborto diagnostico
Prevención y
Control
Muestras
Brucelosis
Brucella abortus
Fetos
Abortados
Aborto,
Becerros
Débiles
Placenta
Retenida
Infertilidad
Infertilidad y
Falla en la
Concepción
6 A 9 Meses
Vacunación de
Hembras de 68 Meses
Feto
Placenta
Sueros
Cultivo a Partir de
Fetos, Placenta,
Contenido Abomasal.
Anticuerpo en Moco
Vaginal
Cultivos y
Anticuerpos
Fluorescentes.
Cultivos Urinarios
Aglutinación
Microscópica En
Suero
Aislamiento a partir
de Feto y Placenta
Vacunación
I.A. con Semen
Tratado con
Antibióticos
Placenta y
Fetos para
Cultivo.
Moco Vaginal
Mantener al
ganado con
alimentos sin
hongos
I.A. de toros no
infectados
Usar toros de 1
a 3 años.
Aislamiento a Partir
de Fluidos Uterinos,
Leche, Placenta Etc.
Aglutinación
Vibriosis
Campilo-bacter
fetus venerealis
Pene y
Prepucio
Infectado
Leptospirosis
Hardjo. Pomona
Vacas
Infectadas,
Cerdos.
Suelo y
Alimento
Mastitis
Ictericia
Anemia
Fiebre
Usualmente en
el Ultimo
Trimestre
Listeriosis
Listeria
monocytogenes
Pájaros
Pescados
Heces y
Leche de
Portadores
Ensilados
Alcalinos
paja o heno
Fiebre,
Depresión y
Placenta
Retenida
La mayoría en
el ultimo
trimestre
Estacional
con la mayor
incidencia en
primavera
Cruza natural
e infertilidad
piometra y
abortos
De cuatro
meses a
termino
Elementos micoticos
a partir de piel o
lesiones pulmonares
Generalmente
en el primer
tercio de la
gestación
Encontrar el parásito
en la descarga
uterina, fluidos o
contenido estomacal
Enfermedad
febril en el
hato antes de
aborto y
becerros
nacidos con
daño cerebral
Comúnmente
después de
un brote de
enfermedad
respiratoria
conjuntival o
de
introducción
de animales
infectados
Todas las
etapas de
gestación
Anticuerpos suero
neutralizantes en
becerros con
anormalidades
oculares
cultivo viral
Vacunación a
hembras de 8
meses
De cuatro
meses a
termino
Anticuerpos
fluorescentes
Vacunar
hembras a los
8 meses de
edad
Hongos
Aspergilus sp
Tricomonas
Trichomona
fetus
Toros
infectados
DVB
Ganado
infectado
RIB
Ganado
infectado
6 A 8 Meses
Bacterinas
Placentas y
Aislar Animales Fetos, Orina
Infectados
y Leche
Sueros
Pareados.
Aislar Animales Placenta y
Infectados
Feto
Placenta y
fetos para
estudios
histológicos
Placenta y
feto en
solución
ringer y
refrigerado.
Placenta y
feto
Suero
Feto y
placenta
sueros
pareados de
la vaca.
Calendario de desparasitación para el control de Hemoparásitos y
Enfermedades Hemoparasitarias en Bovinos Carne.
David Domínguez Díaz, Rubén Cervantes Vega, Antonio Cantú Covarrubias,
Ramiro Ávalos Ramírez, Reymundo Villarreal Mata, Alfredo Cisneros Ayala.
Introducción
La garrapata es un parásito que se alimenta de sangre la mayor parte de su vida,
es vehículo de agentes infecciosos que causan diferentes enfermedades y
adicionalmente se encuentra dispersa en amplias zonas ganaderas del país. Son
de principal interés las garrapatas Boophilus microplus, Boophilus annulatus y
Amblyoma spp., por encontrarse con mayor frecuencia en los hatos de bovinos de
carne, además B. microplus es transmisor de Babesia bigemina, Babesia bovis
causantes de los signos clínicos de piroplasmosis y Anplasma marginale que
origina la anaplasmosis, por otra parte el género Amblyoma spp produce una gran
cantidad de larvas en cada ciclo de vida que al alimentarse causan perdidas de
sangre y por consiguiente baja producción de los bovinos afectados, por su
comportamiento de tres hospederos puede propagar algunas enfermedades.
La ocurrencia de infestaciones por garrapata es resultado de la interacción de
factores climáticos, tipo de garrapata, raza de bovinos, densidad de hato, manejo
del rancho, hatos vecinos, animales silvestres, grado de resistencia a los
ixodicidas y de manejo en cada una de las unidades de producción, así bien, el
tratamiento de las infestaciones tendrá que ser particular tomando en cuenta todos
los elementos antes descritos. Actualmente los productores de bovinos carne en el
estado usan abundantemente productos químicos para realizar baños por
aspersión o inmersión en los periodos que cada ganadero considera adecuados
obedeciendo ó no a la presencia de garrapatas sobre los bovinos, esta práctica se
heredó de la implementación en los setentas del siglo pasado, del plan nacional
para la erradicación de la garrapata y con los avances de la ciencia y evolución en
el control de ésta parasitosis, en la actualidad, no resulta adecuada.
El control integrado de las infestaciones involucra todos los factores ya descritos,
aunque también incluye la prevención como una herramienta que apoyado en el
conocimiento del ciclo vital de las garrapatas, el productor podrá hacer un uso
apropiado de los recursos disponibles para reducir los efectos negativos de estos
parásitos en la producción de bovinos carne.
Ciclo de Vida de la garrapata Boophilus microplus
Al igual que otros géneros de garrapata B. microplus tiene cuatro etapas
evolutivas y son: huevo, larva, ninfa y adulto; además este tipo de garrapata es
reconocida como de un solo hospedero, es decir, todos sus estados evolutivos los
realiza sobre una especie animal, en condiciones ambientales óptimas (25-35 °C y
humedad relativa superior al 60%) el ciclo biológico se completa en 19 a 21 días y
puede originar hasta tres generaciones en un año; en la figura uno se
esquematizan los cambios que experimenta la garrapata a través de su ciclo
biológico.
Para que las garrapatas lleguen a desarrollarse y aseguren su permanencia se
reconocen tres periodos en su ciclo de vida: no parasitario, de encuentro y
parasitario, así tenemos que en el estado no parasitario ó de vida libre se
encuentra la mayor parte de la población de garrapatas y los factores adversos
para su desarrollo en este periodo son ambientales principalmente, de tal manera
que la postura de huevos se realiza hasta en 40 días, mientras que en situaciones
singulares solo toma 3 días o la incubación de los huevos se prolonga hasta 5
meses en circunstancias adversas como una sequía prolongada. La forma de
encuentro se refiere al tiempo en que la larva de la garrapata está lista para
aproximarse al hospedero (bovinos, caballos, ovejas, perros, animales silvestres),
las causas desfavorables para la fase de encuentro también son de índole
ambiental logrando sobrevivir la larva en el agostadero hasta 8 meses, sin
embargo el tipo de vegetación presente en el campo influye en el tiempo de
aproximación, ya que algunos arbustos tienen la capacidad de repeler a las larva
cuando suben, sin embargo, existen oportunidades para la larvas como un alto
número de animales en una pasta o agostadero por desconocimiento del índice de
agostadero del rancho, la falta de descanso de potreros, la raza de los bovinos,
específicamente aquellos de tipo europeo, existen tratamientos alternativos al
empleo de productos químicos como el uso de vacunas que tienen efectos sobre
larvas que se alimentan de sangre, en la figura número dos se muestra una
sinopsis de situaciones predisponentes y favorables para la garrapata en este
estadio; el periodo parasitario hace referencia a los cambios que sufre la garrapata
una vez que se encuentra sobre el hospedero al consumir sangre, para este
tiempo se reconocen más acontecimientos a favor a causa de manejo, para lo cual
se mencionaran ampliamente en los siguientes tópicos.
Manejo de las infestaciones por la garrapata B. microplus
El manejo de las infestaciones necesita contar con la prevención, conocimiento del
problema y por consiguiente realizar un tratamiento adecuado a la situación del
rancho en particular, puesto que no existe algún químico o receta eficaz para
todos los ranchos; en el cuadro número uno se enlistan algunos factores
importantes antes de establecer cualquier tratamiento contra las garrapatas.
Factores a considerar antes de establecer un tratamiento
La prevención es una herramienta elemental en cualquier establecimiento
ganadero para evitar la entrada de enfermedades y en el caso de las garrapatas
también es empleada en las situaciones que se apuntan a continuación:
Encerrar por lo menos un mes a los animales de nuevo ingreso en corrales
que no estén en contacto con los animales del rancho, en este punto usted
podrá observar la presencia de garrapatas adultas, pues el encierro permite
que los estados larvarios consuman sangre estando el animal en reposo,
signos de alguna enfermedad tal vez sean evidentes, además conseguirá
que el animal tenga influencia del microclima del rancho.
Antes de poner en marcha algún tratamiento es primordial que usted
conozca el tipo de garrapata y si estas son resistentes, para lo cual una
muestra representativa deberá tomarse usando un 20% de los animales
adultos que tengan más de un año en el rancho. Conociendo el estatus de
las garrapatas se comprará solo los químicos adecuados y se evitaran
perdidas de dinero; en las secciones siguientes la toma de muestras será
revisada con detalle.
Con el desecho de animales no productivos (animales viejos, vacas que no
se cargan, animales enfermizos, becerros con pobre desarrollo, toros con
baja fertilidad) usted hará un uso eficiente de los recursos, pues tiene la
oportunidad de emplear tratamientos alternativos como un programa de
vacunación contra la garrapata que tiene un costo elevado pero puede dar
resultados satisfactorios si se usa adecuadamente.
Toma de muestras
El análisis de resistencia y taxonómico (tipo de garrapata) debe efectuarse por lo
menos dos veces al año y el procedimiento para la toma de muestras es de la
siguiente manera:
1. Encerrar por la tarde (5-7 pm) aproximadamente un 20% de los animales
del rancho que tengan más de un año de estar en el predio, en corrales
donde no tengan mucho movimiento.
2. Por la mañana siguiente (7-8 am) pasar a los animales por una manga de
trabajo y revisar a contra pelo en zonas del cuerpo donde generalmente hay
garrapatas.
3. Recoger estadios (garrapatas chicas) y garrapatas repletas de sangre con
cuidado de no dañar ninguna de sus partes, porque las pruebas así lo
requieren.
4. Es relevante recordar que para la prueba de resistencia los animales no se
hayan bañado con productos químicos en 15 a 20 días o haber aplicado
ivermectina por lo menos un mes previo a la toma de muestras.
5. Para determinar el tipo de garrapata se colocan garrapatas chicas y
grandes en tubos de ensaye con alcohol al 70%, no colocar un número
exagerado de garrapatas en un solo tubo puede emplear varios tubos y
colocar garrapatas de diferentes animales en los tubos.
6. Para la prueba de resistencia se usan garrapatas repletas de sangre en
buen estado en recipientes de doble fondo con perforaciones en la tapa que
se proporcionan en el laboratorio. En el fondo colocar un algodón
humedecido para crear un ambiente húmedo, nunca vierta agua en el
recipiente porque puede matar a las garrapatas, enseguida deposite por lo
menos 20 garrapatas en el otro recipiente y tape, entre más garrapatas
repletas en buen estado pueda mandar será mejor.
7. Selle e identifique el envase con el nombre del rancho y la fecha de la toma
de muestras,
en una hielera se transportan las garrapatas hacia el
laboratorio en el mismo día de la toma de las muestras de preferencia, si
por algún motivo no logra conseguirlo pueden almacenarlas en la parte
inferior del refrigerador y enviarlas lo más pronto posible con un máximo de
hasta en 6 días posteriores a su colecta.
Comportamiento de las Infestaciones
El conocimiento de los periodos en los cuales hay infestaciones fuertes sobre el
ganado nos ayudará a estar preparados para esa situación, además de contar con
la oportunidad de tener opciones de tratamientos efectivos contra la población de
larvas en el campo que como sabemos representa el mayor problema a combatir,
como ejemplo se esquematiza en la figura 4 un comportamiento relativo de las
infestaciones en el estado. En el ciclo biológico de la garrapata se apuntó que a
través del año tiene relativamente tres generaciones y estas se manifiestan con
picos de mayor infestación, estos picos pueden presentarse de forma homogénea
en algunas regiones que comparten un microclima, pero aún así es prescindible
conocer el comportamiento en el propio rancho y esto se puede lograr de la
siguiente manera:
1. Encerrar por la tarde (5-7 pm) aproximadamente un 20% de los animales
del rancho que tengan más de un año de estar en el predio, en corrales
donde no tengan demasiado movimiento; este encierro tiene que realizarse
cada mes y puede formar parte del calendario de manejo.
2. Por la mañana siguiente (7-8 am) pasar a los animales por una manga de
trabajo y revisar a contra pelo en zonas del cuerpo donde generalmente hay
garrapatas.
3. Poner atención a las garrapatas llenas de sangre para contarlas, si la
mayoría de los animales presentan 20 garrapatas por lado o más esto
indica según expertos que el resto del ganado del hato tendrá que bañarse;
este parámetro de 20 garrapatas por lado se llama estabilidad enzótica, que
no es más que el número de garrapatas con las cuales pueden convivir o
subsistir los bovinos del rancho sin generar alguna enfermedad y se
establece por las características climáticas de la zona y por el
comportamiento que presentan las infestaciones de garrapatas, no obstante
este número puede variar cuando existen condiciones por demás
favorables para las garrapatas.
4. Anotar el número de garrapatas por lado de los animales encerrados y
tomar decisiones según el conteo.
Tratamiento
Existen en el mercado muchas opciones de productos disponibles para el
tratamiento de las infestaciones, sin embargo, es importante emplear solo aquellos
que la SAGARPA tiene a bien recomendar pues han pasado por una serie de
pruebas y/o ensayos para garantizar su eficacia; la lista de productos autorizados
es la siguiente:
Como se observó en la lista, los productos químicos se clasifican en cuatro
familias y cada una de ellas tiene un mecanismo de acción particular sobre las
garrapatas que las diferencia, así mismo, presentan un tiempo de vida o de
utilidad característico, además de exhibir un espectro restringido en algunos tipos
de moscas o garrapatas, para lo cual escoger una familia de químicos representa
una decisión que deberá estar sustentada en una análisis de resistencia y
apoyado por un Médico Veterinario en todo momento.
Puntos clave para hacer un uso eficiente de un producto químico
Realizar una prueba de Resistencia y Taxonómica antes de elegir alguno.
Revisar las recomendaciones de DILUCIÓN DEL PRODUCTO; de forma general se
recomienda usar como mínimo 6 litros de producto preparado para bañar mediante
aspersión a los animales adultos y 4 litros para los animales jóvenes.
Antes de verter el producto químico en el baño de inmersión o en el recipiente para
aspersión DEBE diluir el contenido de un bote (litro o la cantidad que se use) de producto
químico en un bote de 20 litros de agua para asegurar una mezcla homogénea y de esta
forma evitar pérdidas de químico sobre las paredes del baño de inmersión o sobre otros
contenedores.
EVITAR usar agua con ALTO CONTENIDO DE SALES para diluir el producto químico,
así como, AGUAS CON ELEVADO CONTENIDO DE MATERIA ORGÁNICA (tierra,
hojas, materia fecal). Para el baño de aspersión se debe EVITAR diluir el producto
químico en recipientes de METAL o aquellos que anteriormente contenían PINTURA, U
OTROS PRODUCTOS QUÍMICOS, designe un recipiente NUEVO de PLÁSTICO solo
para diluir el producto y contenerlo NO lo empleé para otra actividad.
En las cuatro familias de productos químicos se han reportado resistencia por un uso
indiscriminado.
Recordar que el ciclo de la garrapata B. microplus en condiciones óptimas es de 21 días
y se presentan tres generaciones de garrapatas por año aproximadamente.
Ningún producto químico por si mismo puede eliminar todas las generaciones de
garrapatas.
Las AMIDINAS NO TIENEN efecto sobre moscas del cuerno.
Las AMIDINAS requieren de un pH alcalino por encima de 7,12 en el baño de inmersión
por ello se emplea el estabilizador (cal) y una tira indicadora de pH.
Aquellos químicos para uso POUR-ON, solo deberían usarse en vacas gestantes para
evitar golpes en el baño de inmersión o aspersión, o cuando el baño se encuentre
retirado de donde los animales están agostando. En todo caso se recomienda tener
cuidado con la dosificación, ya que por su presentación es fácil cometer errores y con
esto incurrir en resistencia de las garrapatas.
NO MEZCLAR diferentes presentaciones de productos químicos por separado, o en su
defecto hacer mezclas caseras, ya existen mezclas autorizadas que se manejan con
particular precaución.
Todos los bovinos del rancho tienen que bañarse, revisar los demás animales
domésticos (cabras, ovejas, caballos, perros) para la presencia de garrapatas y realizar
un control apropiado para cada caso.
Antes de bañar (aspersión, inmersión) revisar el pronóstico de lluvia para evitar pérdidas
del garrapaticida una vez aplicado.
Evitar el baño de los animales en las horas más calientes del día, pues se pierde
producto químico por evaporación.
Cuando se apliquen Endectocidas (Ivermectinas, Avemectinas) por vía subcutánea se
prefiere usar una aguja por animal por cuestiones de bioseguridad, estas agujas pueden
ser desechables o de acero inoxidable debidamente desinfectadas con alcohol al 70%
(de venta libre en farmacias).
Baño de Aspersión
Este método de tratamiento es empleado con mayor frecuencia por ser práctico y
poco costoso para el ganadero, existen diferentes formatos de este baño como la
mochila aspersora, motobombas de gasolina y baños de aspersión en túnel que
ofrece una ventaja sobre los otros métodos, ya que ahorra agua y producto
químico, el baño de los animales es adecuado como si se tratase de un baño de
inmersión, puede elaborarse de materiales de bajo costo y no requiere de mucho
entrenamiento para ejecutarlo, sin embargo, presenta algunos inconvenientes en
las boquillas aspersoras, pues se tapan con frecuencia con el pelo de los bovinos,
por cada 30 bovinos el agua debe cambiarse por que contiene excremento, pelo,
tierra que afecta la calidad del producto químico preparado, las partes móviles del
equipo pueden ejercer daños físicos a los bovinos si estas no están perfectamente
instaladas.
En términos generales el baño de aspersión es una buena opción cuando el
número de animales a bañar es reducido, pueden emplearse las corraletas ya
existentes en el rancho para realizar el baño, no obstante, es de importancia
revisar los siguientes puntos:
Seguir un orden al tiempo de bañar a los animales (cabeza-lomo-parte media del
cuerpo-extremidades).
Colocar el aspersor a no más de un metro de los animales.
No bañar en contra del viento.
De forma práctica se pueden bañar adecuadamente con una motomba de gasolina
hasta cuatro animales adultos a la vez en un corral reducido.
Puede utilizar las mangas de manejo para el baño, siempre y cuando estas no
sean de materiales que cubran gran parte del cuerpo de los animales.
Tome su tiempo para bañar, bañar con prisa no es bañar.
Recordar que el éxito del producto químico reside la aplicación de este en una
superficie extensa de la piel para poder absorberse y llegar a la sangre que
consumen las garrapatas.
No dejar áreas sin bañar como orejas, ubre, escroto, parte ventral, inserción de la
cola, área de cuernos y cabeza en general.
A continuación se muestran fotografías de baño de aspersión incorrectas.
Baño de Inmersión
Este tipo de baño es adecuado para bañar un gran número de animales aunque
requiere una inversión para realizar la instalación y las observaciones son las
siguientes:
Revisar que la cantidad de sólidos disueltos no rebase el 25% del contenido
del baño, para lo cual puede tomar una muestra de agua que debe revolver
antes para que la muestra sea homogénea, de preferencia en un recipiente
de un litro dejarla reposar por una hora aproximadamente y revisar los
sólidos, si estos rebasan el parámetro anotado anteriormente es indicativo
que el baño debe limpiarse y reponerse con agua nueva y limpia.
Conocer la capacidad del baño de inmersión, esto lo puede lograr siguiendo
la fórmula que se anota en la figura 6, una vez que conozca este parámetro
es recomendable anotar con pintura indeleble sobre las paredes del baño la
cantidad de litros de agua que corresponde, esto ayudará al correcto
depósito de agua y producto químico.
Revisar con atención las indicaciones del fabricante de los productos
químicos para hacer un buen uso de ello en la primer recarga como en la
siguiente, es de especial precaución el uso de amidinas, pues requieren un
estabilizador (cal) y un pH adecuado para funcionar.
Recordar que es de suma importancia diluir previamente el contenido del
producto químico en un recipiente con agua para asegurar una mezcla
homogénea y posteriormente verte la mezcla sobre el agua del baño de
inmersión.
Control de Brucelosis
Desde el año 1971 existe una Campaña oficial que fue reactivada en 1993.
Figura: Fórmula y diagrama para calcular la capacidad del baño de inmersión.
Existen las instancias oficiales que han caracterizado la enfermedad mediante
estudios para la determinación de la prevalencia estableciéndose las zonas de
riesgo. Se cuenta con biológicos tanto para el diagnóstico como para la profilaxis
de la enfermedad:
Se estableció la dosis reducida de la cepa 19 de B. abortus, para su aplicación en
vacas, se inició el uso de esta modalidad de la vacuna en varios lugares del país;
México es el único país del mundo que produce y expende comercialmente,
además de la dosis para becerras, la dosis para vacas de la vacuna RB51 de B.
abortus.
Igualmente el país está organizado con instancias para operar, ejecutar y evaluar
las actividades tendientes a la constatación de hatos y rebaños, así como la
aplicación sistemática de vacunas. La Dirección General de Salud Animal tiene el
registro de casi 2,000 Médicos Veterinarios Responsables Autorizados en el área
de rumiantes para aplicar los esquemas de erradicación de la enfermedad.
En el año 1994 el Estado de Sonora obtuvo el Reconocimiento de fase de
Erradicación de Brucelosis bovina, en 2002 el Estado de Yucatán ingresó a la fase
de erradicación, la Región Norte del Estado de Sonora fue reconocida como libre
de Brucelosis bovina el 26 de noviembre de 2003.
Durante 2010 se logró el cambio a fase de Erradicación del Estado de Baja
California Sur, la Región “A” del Estado de Campeche, conformada por 10
municipios y la Región denominada “Costas” del Estado de Guerreo, conformada
por 25 municipios.
Las pruebas diagnósticas autorizadas por la SAGARPA son:
- Prueba en tarjeta.
- Prueba de rivanol.
- Prueba de fijación del complemento.
La prueba de tarjeta se efectúa con muestras de suero sanguíneo no bemolizado.
Los resultados de la prueba de tarjeta arrojarán sólo dos clasificaciones:
Positivos
negativos,
Dependiendo de la presencia o ausencia de aglutinación, según sea el caso.
La prueba de rivanol
Se debe realizar sólo en suero de bovino: Con sueros no bemolizados, positivos a
la prueba de tarjeta, los resultados de la prueba de rivanol se clasifican
En sueros positivos y negativos.
Fijación del complemento
Se debe realizar con sueros no bemolizados que hayan resultado positivos a las
pruebas de tarjeta y/o rivanol.
Los resultados clasificarán a los sueros como positivos los títulos mayores a 1/16
en frío o mayores a 1/8 en caliente y negativos.
Procedimiento para la obtención de la constancia de hato libre
Ganado productor de leche y de doble propósito.- En bovinos y caprinos se deben
realizar tres pruebas diagnósticas con resultados negativos, realizadas con
intervalos entre 60 y 90 días entre una y otra prueba.
Ganado productor de carne.- En el bovino, caprino y ovino se deben realizar dos
pruebas diagnósticas con resultados negativos, entre los siguientes 3 a 10 meses
posteriores a la realización de la primera prueba.
La aplicación de las pruebas diagnósticas oficiales en bovinos se realiza en
hembras mayores de 22 meses de edad que recibieron la dosis clásica de vacuna
cepa 19 entre los 3 y 6 meses de edad; en hembras vacunadas con dosis
reducida, únicamente se podrán realizar las pruebas diagnósticas 10 meses
después de la fecha de vacunación; en las hembras nunca antes vacunadas y en
los machos enteros, el muestreo se debe realizar a partir de los 6 meses de edad.
Al finalizar el número de pruebas que correspondan a un determinado hato, si los
resultados fueron negativos, se expedirá la constancia de hato libre de brucelosis,
la cual tendrá una vigencia de 14 meses.
Bibliografía
Norma Oficial Mexicana 041ZOO 1996 Campaña nacional contra la brucelosis en
los animales.
Control de Tuberculosis Bovina
Introducción
La tuberculosis es una enfermedad de transmisión directa e indirecta, febril, de
curso típicamente crónico, que afecta a todos los animales, incluido el hombre. Es
producida por bacterias del género Mycobacterium, el M. Bovis, el complejo M.
avium (constituido por las especies M. avium, M. intracelulare y M. scrofulaceum) y
el M. Tuberculosis. Se caracteriza patológicamente por un granuloma específico
con tendencia a la caseificación.
Costos de la Tuberculosis (Tb).
En México no se tienen estadísticas confiables para estimar la perdida en la
producción ganadera por concepto del virtual cierre de fronteras a la exportación,
del ganado, sin embargo de los datos que se pueden extrapolar de nuestros
vecinos del estado de Texas podemos tomar en cuenta la información que ellos
liberan.
En octubre del 2000, el USDA estimó que los productores de ganado de Texas
(14,000,000 cabezas de Inventario) perderían de 260 a 788 millones de Dólares
en 5 a 10 años, por los costos extra y disminución del valor de sus hatos al no
poder sacar de Texas su ganado. En junio de 2002, Texas, perdió el estatus de
libre de tuberculosis bovina. En 2001 se encontraron 2 de 153,000 hatos
infectados. Estos dos hatos uno lechero y el otro productor de ganado de registro
fueron despoblados y otros 150 hatos cercanos o ligados han sido probados
siendo negativos. Para movilizar ganado fuera de Texas, deben de aretar y probar
más de 1.5 millones de cabezas cada año. En el periodo de 1997 a 2001, se
diagnosticaron en Texas 109 casos de Tb en ganado Mexicano. A partir de
octubre 2002, se endurece la regulación que permite la exportación de ganado a
Texas, especialmente el ganado de cría y de rodeo por el riesgo para el ganado
en Texas, 6 de los toros de rodeo sacrificados en 2001 fueron positivos a Tb.
Patogenia
Se trata de una enfermedad cíclica, que cumple su proceso evolutivo en distintos
períodos, caracterizados por síntomas y lesiones propios para cada uno de ellos.
La evolución de los mismo, está condicionada a diversos factores ligados a:
Huésped (estado inmunitario, edad, nutrición, genética, etc.), al bacilo (número,
virulencia, etc.) y al medio ambiente. La infección ocurre en el 50% de los
expuestos. De los infectados el 10 al 15% desarrollan la enfermedad en forma
activa. Por la ruta aerogena, se necesitan 1 a 2 bacilos para infectar.
Tuberculosis primaria
El primer contacto del bacilo tuberculoso con un organismo sano, origina una
lesión inflamatoria inespecífica. Su localización dependerá de la puerta de entrada
(generalmente respiratoria o digestiva). La asociación entre la lesión inicial en la
puerta de entrada y el nódulo regional constituyen lo que se denomina "complejo
primario". Este tiene una evolución hacia diversas formas:
Hacia la cura: pudiendo dejar o no cicatriz. Hay cura bacteriológica.
Hacia la estabilización (foco latente): en esta forma el proceso evolutivo puede
detenerse No hay cura bacteriológica, ya que hay bacilos virulentos enquistados
en las lesiones.
Hacia la generalización precoz inmediata: esta es la forma resultante de la
diseminación bacilar por vía linfática o hemática a todo el organismo, produciendo
lesiones tuberculosas en diversos órganos, siendo la lesión en los nódulos
linfáticos una constante.
Formación de complejo primario
El bacilo llega a los alvéolos en donde se rodea de macrófagos. Tras la infección
en los alvéolos se recubren de macrófagos, para formar el complejo primario
La generalización precoz aguda: se presenta cuando la resistencia es baja, Son
típicas las lesiones de tuberculosis miliar aguda (pequeños tubérculos, grises o
amarillos). Se presentan en forma más común en pulmón. También puede haber
lesiones exudativas (neumonía, meningitis), con desenlace fatal.
La generalización precoz moderada o lenta: se manifiesta cuando hay resistencia
parcial, Son típicas la tuberculosis nodular y la tuberculosis perlada (lesiones
nodulares).
Tuberculosis secundaria
Son características las lesiones caseosas con formación de úlceras y nódulos.
La diseminación del bacilo no es por vía linfohemática, sino por vía canalicular.
Puede estabilizarse, sin compromiso inmediato de la vida. Pero puede evolucionar
hacia una generalización aguda tardía. Es característica la tuberculosis miliar,
lleva a la muerte.
Inmunopatogenia
Los macrófagos alveolares fagocitan y destruyen a la mayor parte de los bacilos,
transportándolos eventualmente a los nódulos regionales. Se multiplican a nivel
intracelular en forma logarítmica, en macrófagos reclutados del torrente
sanguíneo, destruyéndolos. Liberados nuevamente, atraen por mecanismos
quimiotácticos a monocitos y macrófagos, formándose un tubérculo primario
inicial.
Normatividad aplicable
La NOM 031 ZOO 1995, Campaña Nacional contra la Tuberculosis Bovina, es de
observancia obligatoria en todo el territorio nacional y tiene por objeto, regular y
establecer los procedimientos, actividades, criterios y estrategias, técnicas y
características para el control y erradicación de la tuberculosis bovina.
Su campo de aplicación serán todas las explotaciones pecuarias que manejen
bovinos, inclusive para aquellas personas que posean únicamente un animal. Para
efectos de esta Norma, se entiende por:
Animal enfermo: Es aquel animal de las especies bovinas del cual se aisló el
Mycobacterium bovis.
Animal expuesto: Es aquel de las especies bovinas que ha tenido contacto con un
animal o animales enfermos de los cuales se aisló el Mycobacterium bovis.
Animal negativo: Es aquel animal que ha sido sujeto a una o varias pruebas
diagnósticas oficiales de tuberculosis y cuyos resultados han sido negativos.
Animal reactor: Es el que ha sido sujeto a una o más pruebas diagnósticas
oficiales de tuberculosis y cuyos resultados han sido positivos.
Constancia de hato libre: Documento oficial otorgado por la Secretaría de
Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación (Secretaría), al
propietario del hato que ha demostrado mediante pruebas de tuberculina, que los
animales se encuentran libres de tuberculosis bovina.
Constancia de hato negativo: Documento oficial otorgado por la Secretaría, al
propietario del hato que ha resultado negativo a una prueba de tuberculina.
Prevalencia: Número de casos de tuberculosis que se presentan en una población
animal, en un área geográfica definida durante un período de tiempo determinado.
Pruebas diagnósticas: Aquellas autorizadas por la Secretaría para la Campaña y
que son:
Prueba de tuberculina:
- en el pliegue caudal
- cervical comparativa
- cervical simple
- Histopatología.
-Aislamiento bacteriológico.
Las tuberculinas autorizadas para efectos de Campaña son:
PPD bovino: elaborado con Mycobacterium bovis cepa AN5, que se utilizará en la
prueba caudal, cervical comparativa y cervical simple.
PPD aviar: elaborado con Mycobacterium avium cepa D4, que será utilizada en la
prueba cervical comparativa.
La tuberculina de PPD aviar debe contener como colorante el rojo de Ponceau,
para distinguirla de la de PPD bovino que no lleva colorante.
Las tuberculinas deben ser transportadas y conservadas en frío a una temperatura
de 4 a 8°C y protegidas de la luz solar directa durante el trabajo de campo, debe
verificarse el lote y fecha de caducidad del producto. Una vez utilizado el antígeno,
deberá desecharse el resto del contenido del envase si no se va a utilizar el mismo
día.
Las técnicas de manejo para la aplicación de tuberculina en el pliegue caudal
consistirán en:
Inmovilización del animal.
Limpieza de la zona donde se aplicará el biológico. Además deberá efectuarse un
minucioso examen de ambos pliegues, anotando cualquier irregularidad que
pueda confundirse con la prueba.
Insertar la aguja en toda su longitud intradérmicamente, haciendo un ángulo de
45°, aplicando 0.1 ml del biológico. En el sitio de la aplicación aparecerá un
pequeño abultamiento.
La interpretación de la prueba caudal se ajustará a lo siguiente:
La lectura se hará por el mismo Médico Veterinario que efectuó la prueba,
mediante la observación y palpación del sitio donde se practicó la inoculación,
realizándose a las 72 horas (± 6 horas) posteriores a la aplicación del biológico, el
médico verificará que se trata de los mismos animales inoculados.
Las reacciones se clasifican como:
Negativa: Cuando no se observe ni se palpe ningún cambio en la piel del sitio de
aplicación.
Reactor: Cuando sea visible y/o palpable cualquier engrosamiento, rubor, calor,
dolor o necrosis en el sitio de aplicación.
La Prueba Cervical Comparativa.
Es la única prueba autorizada para confirmar o descartar animales reactores a la
prueba de pliegue caudal. Se podrá efectuar por única vez dentro de los 10 días
naturales siguientes a la lectura de la prueba caudal; o bien después de
transcurridos 60 días naturales, debiéndose aplicar por un Médico Veterinario
oficial o aprobado, se aplica en hatos o regiones con presencia de Mycobacterium
paratuberculosis y/o Mycobacterium avium. Esta prueba no debe ser utilizada en
hatos cuando el diagnóstico se haya obtenido por el aislamiento de M. bovis de las
muestras de los animales sacrificados.
Para la aplicación de la Tuberculina en la prueba cervical comparativa, se tomarán
en cuenta las siguientes prácticas:
Previo a la realización de la prueba, el Médico Veterinario deberá contar con la
documentación de las pruebas anteriores para verificar la entrada o salida de
animales del hato.
Rasurar el área donde se inoculará la tuberculina en el tercio medio superior del
cuello. El sitio de aplicación superior será cerca de 10 cm debajo de la cresta, el
sitio inferior será aproximadamente de 13 cm debajo de la anterior, esta prueba se
aplica mediante la inoculación intradérmica de 0.1 ml de PPD aviar y 0.1 ml de
PPD bovino. Previo a la inoculación, se levanta un pliegue de piel en el centro de
las áreas rasuradas y se procederá a medir el grosor de éstos, utilizando el
cutímetro. El registro final de las medidas deberá redondearse según el siguiente
criterio: de 6.2 baja a 6.0, 6.3 sube a 6.5; de 6.7 baja a 6.5; de 6.8 sube a 7;
debiendo registrarse los valores en los formatos para prueba cervical comparativa.
El PPD aviar se inocula intradérmicamente en el área rasurada superior y el PPD
bovino en la inferior. La lectura de esta prueba se realizará 72 horas ( 6 horas),
midiendo con el cutímetro el grosor de las reacciones, estas serán anotadas en el
formato oficial de la prueba cervical comparativa, sustrayendo el valor de la
primera lectura al de la segunda; una vez realizada esta operación se procede a
graficar los valores obtenidos tanto de PPD aviar como del bovino y el punto de
intersección dará el resultado de la prueba. De acuerdo a la gráfica oficial se
interpretarán los resultados.
Prueba cervical simple.
Esta prueba se empleará para probar hatos en los que se conoce la existencia de
M. bovis; o bien, para probar ganado que estuvo expuesto directa o indirectamente
con hatos infectados con M. bovis.
Se debe rasurar el área donde se inoculará la tuberculina en el tercio medio
superior del cuello. El sitio de aplicación será aproximadamente 10 cm debajo de
la cresta. Esta prueba se aplica mediante la inoculación intradérmica de 0.1 ml de
PPD bovino en la región media cervical, haciendo la lectura el mismo Médico
Veterinario que aplicó la prueba mediante la observación y palpación del sitio en
donde se practicó, realizándose a las 72 ± 6 horas posteriores a su inoculación.
Las reacciones se clasifican como:
Negativa: Cuando no se observe ni se palpe ningún cambio en la piel del sitio de
aplicación.
Reactor: Cuando sea visible y/o palpable cualquier engrosamiento, rubor, calor,
dolor o necrosis en el sitio de aplicación.
Toma de muestras.
La toma de muestras para estudios histopatológico y bacteriológico se realizará de
la siguiente forma:
Se seleccionarán y tomarán muestras de los siguientes órganos que presenten
lesiones compatibles con tuberculosis o secreciones sugestivas:
Nódulos Linfáticos. Tomando muestras preferentemente de los nódulos de la
cabeza, preescapulares, mediastínicos anteriores y posteriores y bronquiales
derecho e izquierdo. En el caso de tuberculosis miliar tomar muestras de nódulos
mesentéricos.
Pulmones. La lesión tuberculosa puede ser caseosa o calcificada o una cavidad
franca. De este órgano se tomarán muestras de 2 cm por lado de las lesiones
presentes.
Útero en caso de metritis tuberculosa. Se caracteriza por secreción continua de
grandes cantidades de pus amarilla teniendo el aspecto de leche cuajada. Se
tomarán las muestras del órgano y de este exudado.
Otros órganos. También se tomarán muestras de los siguientes órganos cuando
presenten lesiones sugestivas de tuberculosis: bazo, hígado, riñón, médula ósea,
ovarios, testículos y glándula mamaria.
Si el animal es positivo a la prueba de tuberculina y en la necropsia no presenta
cambios que sugieran la infección del animal, entonces se deberán enviar al
laboratorio nódulos de la cabeza como los retrofaríngeos, mandibulares,
parotídeos y las tonsilas faríngeas, así como los mediastínicos y mesentéricos.
Todas las muestras deberán estar perfectamente identificadas, anotando:
Nombre del propietario.
Ubicación de la explotación de origen.
Donde se obtuvo la muestra.
Organo.
Descripción del animal: especie, raza, sexo y edad.
Identificación precisa del animal como arete, marca, u otro.
Nombre, registro y domicilio del Médico Veterinario oficial o aprobado que remite
la muestra.
Destino del canal y vísceras, ya sea decomiso parcial o total.
En el laboratorio las muestras serán sometidas a las pruebas de diagnóstico
bacteriológico o histopatológico.
Diagnóstico bacteriológico.
Examen directo: Mediante la tinción de Ziehl Neelsen o de nueva fucsina para
microorganismos ácido alcohol resistentes en frotis realizados con el material
sospechoso. En caso de ser una muestra positiva, con esta tinción se observarán
bacilos teñidos de color rojo.
Puede utilizarse la microscopía de fluorescencia mediante la tinción con
auraminarodamina, auramina acridina o auramina fenol, que tiñe a la bacteria de
color verde brillante.
Examen indirecto: Cultivo, aislamiento e identificación del Mycobacterium, a través
de la siembra de material sospechoso en medios especiales como Herrolds con y
sin huevo, Middle Brook y Stonebrink, Petragnani, ATS y Lowenstein Jensen.
Diagnóstico histopatológico
Se deberá utilizar la tinción de hematoxilina-eosina. Esta técnica permite identificar
cualquier cambio morfológico de los tejidos, así como la presencia de los
granulomas. Además pueden utilizarse las tinciones de Ziehl Neelsen y nueva
fucsina en cortes o improntas realizados con el material sospechoso.
Forma de envío de muestras para el aislamiento bacteriológico.
Es necesario sumergir los tejidos en solución saturada de borato de sodio, si se
trata de nódulos aparentemente afectados se deberán enviar completos sin grasa;
si se trata de otro tejido, se deberá seleccionar la posible lesión y enviar muestras
no mayores de 2 cm por lado.
Hato libre
Para la obtención de constancia de hato libre, será necesario llevar a cabo los
siguientes pasos:
Ganado Productor de leche y de doble propósito (mixto).- Se deberán realizar tres
pruebas diagnósticas en forma homogénea a la totalidad con resultados negativos,
con intervalos no menores de 60 días naturales ni mayores de 90 entre una y otra
prueba a todos los animales mayores de 15 meses. En hatos lecheros con menos
del 10% de prevalencia, se procederá al sacrificio de los animales reactores, en
aquellos con más del 10%, tendrán la opción de ser enviados a Unidades de
Producción Controlada, en un plazo no mayor de 10 días naturales o instrumentar
esta unidad como tal.
Ganado productor de carne.- Todo el hato mayor de 15 meses será sujeto a dos
pruebas diagnósticas, realizándose con intervalos no menor de 10 meses y no
mayor de 14. Los resultados en ambas pruebas deberán ser negativos.
Para el reporte de los resultados de las pruebas diagnósticas, se deberá utilizar el
dictamen oficial de la prueba de tuberculina.
Personal oficial de la Secretaría, deberá revisar los dictámenes de prueba y enviar
la documentación a la Comisión. que expedirá, cuando así proceda una
constancia de hato negativo, en ganado de carne, cuando se obtengan resultados
negativos en una primera prueba y a solicitud del interesado.
Al finalizar el número de pruebas que correspondan a un determinado hato y si los
resultados fueron negativos, la Comisión expedirá en un plazo no mayor de veinte
días a partir de la recepción de la documentación comprobatoria, la constancia de
hato libre de tuberculosis, la cual tendrá vigencia de 14 meses
La Comisión enviará las constancias a la Delegación que corresponda y ésta, con
el apoyo del Coordinador estatal de la Comisión, se hará cargo de remitirlas a los
interesados. Los propietarios de hatos libres de tuberculosis deberán conservar los
documentos señalados, a fin de que estén disponibles cuando se requiera su
comprobación. Asimismo, será su responsabilidad gestionar oportunamente la
revalidación.
Revalidación de la constancia de hato libre:
Se deberá demostrar con documentos, que todos los animales que ingresaron al
predio en los últimos 16 meses, fueron negativos a la prueba diagnóstica oficial o
que proceden de un hato libre.
Realizar una prueba diagnóstica al 100% del pie de cría de los animales mayores
de 24 meses, con resultados negativos, en un periodo no mayor de 30 días
naturales antes de la fecha de vencimiento de la constancia. En el caso de que se
detecten animales positivos, se cancelará la constancia de hato libre y se
cuarentenará la unidad de producción.
Los animales reactores de un hato serán sacrificados en un rastro autorizado por
la Secretaría, en un periodo no mayor de 10 días naturales posteriores a la
notificación del resultado, de acuerdo a la fase de Campaña, excepto el ganado
lechero especializado en programa de monitoreo de la fase de control.
En el incumplimiento a lo antes mencionado dará lugar a la cuarentena de la
explotación, la que no podrá levantarse, hasta que en un siguiente muestreo
del100% de los animales sujetos a la prueba diagnóstica del hato, realizado en un
periodo no menor de 60 días ni mayor de 90 días naturales y no se identifiquen
animales positivos.
Todos los hatos o lotes en donde se encuentren animales reactores, deberán ser
cuarentenados precautoriamente al momento de la notificación a la Secretaría y se
deberá de programar dentro de los siguientes 30 días naturales una prueba de
todo el hato.
Los animales expuestos deben permanecer en el rancho en donde fueron
encontrados para que les sea practicada la prueba correspondiente. Los reactores
serán enviados a rastro y los negativos podrán permanecer en el rancho para que
les sea practicada otra prueba, a menos que se obtenga el Certificado
Zoosanitario para su movilización, en cuyo caso, debe realizarse directamente a
un rastro autorizado por la Secretaría en donde se practicará el sacrificio
inmediato y la inspección post-mortem.
Los bovinos de 6 a 12 meses expuestos a M. bovis se les practicará la prueba
caudal, los negativos podrán enviarse a corrales o praderas cuarentenarias dentro
del estado. Los reactores deberán identificarse y enviarse rastro autorizado.
Los hatos en donde la infección por M. bovis ha sido confirmada por resultado de
laboratorio, deben permanecer bajo cuarentena hasta que pasen dos pruebas de
tuberculinización con resultados negativos, realizadas a intervalos de 60 a 90 días
naturales y una tercera prueba después de 180 días naturales de efectuada la
primera prueba. Durante estos lapsos, la movilización de estos animales sólo se
podrá realizar directamente al rastro y con el Certificado Zoosanitario
correspondiente.
Los hatos en donde los reactores no presenten lesiones macroscópicas ni
microscópicas y que no haya sido posible encontrar o detectar la evidencia de M.
bovis, podrán liberarse de la cuarentena, una vez que todo el hato haya sido
probado después de 60 días de la última prueba y se obtengan resultados
negativos y la constancia que así lo acredite.
Los animales sospechosos que resulten de la prueba cervical comparativa, deben
ser cuarentenados hasta que se les practique nuevamente la prueba cervical
comparativa y se clasifiquen como negativos; o bien, si se desea movilizar a los
animales directamente para el abasto, serán considerados como positivos por lo
que deberán llevar la identificación correspondiente acompañados del Certificado
Zoosanitario.
Si los animales sospechosos al ser sacrificados no muestran lesiones
macroscópicas ni microscópicas, deberá ser muestreado todo el hato entre los 60
y 90 días naturales siguientes.
Los hatos que por rastreo sean el origen de los animales sospechosos y/o
positivos, deberán ser cuarentenados en forma precautoria y se deberá programar
dentro de los siguientes 30 días naturales una prueba de todo el hato.
El futuro de la Tb
Técnica diagnóstica alternativa
La reacción en cadena de la polimerasa, amplifica el DNA de la bacteria M. Bovis,
lo que permite distinguir la Tb de cualquier otro microorganismo 93% de eficiencia
en 3 días después de recibir las muestras.
Cultivos. Se redujo a una semana el tiempo requerido para el aislamiento.
Vacunas. Se trabaja en varias líneas buscando con DNA que proteja al ganado y
líneas resistentes a la Tb.
Capacitación y actualización. Son las dos vías más efectivas para ayudar a los
productores y veterinarios a que adopten medidas de prevención que minimicen el
riesgo de introducción de enfermedades infecciosas.
Bibliografía
Álvarez-Ojeda, G. y col (2009). Protocolo de bioseguridad y biocontención en un
rancho de China N.L. INIFAP. Desplegable para productores #10.
INIFAP/CIRNE/P-123.
Álvarez-Ojeda, G. y col (2010). Protocolo para implementar medidas de
bioseguridad y biocontención en un rancho de Montemorelos, N.L.; INIFAP.
Desplegable para productores #11. INIFAP/CIRNE/P-130. MX-0-310402-43-03-1312-11.
Avalos-Ramírez, R. y col. (2004). Prevalencia y factores de riesgo asociadas a la
presencia de IBR, DVB, Leptospirosis y Neosporosis en hatos de Nuevo León.
Proyecto Fondos Mixtos CONACYT-NUEVO LEÓN. Clave NL-2004-C05-107.
Avalos-Ramírez, R. Manejo para reducir la incidencia de enfermedades
reproductivas en el sistema vaca-becerro. Cuarto Simposio sistema Vaca-Becerro.
UGRNL. FMVZ-UANL. Cd. Guadalupe N.L. 15-16 mayo 2007.
Cantú, C.A. (2002). Factores asociados a la epidemiología de los principales
problemas reproductivos en bovinos productores de carne en el estado de Nuevo
León (IBR, BVD, Leptospirosis). http://www.unionganaderanl.org.mx
Cervantes Vega, R. y cols. (2011). Sistema de Producción Vaca-Becerro. En
Consorcio Técnico del Noreste de México. Bioseguridad e inocuidad en la cadena
bovinos carne en México. Monterrey, N.L. México. 2011. ISBN: 978-607-9154-004.
Domínguez, D.D. (2006). Detección y diferenciación molecular del virus de la
Diarrea Viral Bovina (BVDV) en el sistema vaca-cría de Nuevo León. Tesis de
Licenciatura. FMVZ-UANL.
Dominguez, D.D. (2008). Seropositividad y factores de riesgo para BVDV, IBR,
Neosporosis y Leptospirosis en hatos del sistema vaca-cría de Nuevo León. Tesis
de Maestría. FMVZ-UANL.
Dubey, J. P., and Lindsay, D. S. (1996). A review of Neospora caninum and
neosporosis. Vet Parasitol 67(1-2), 1-59.
Fray, M. D., Mann, G. E., Clarke, M. C., and Charleston, B. (1999). Bovine viral
diarrhea virus: its effects on estradiol, progesterone and prostaglandin secretion in
the cow. Theriogenology 51(8), 1533-46.
Howard., J. L. Current Veterinary Therapy. Food Animal Practice. Ed. W.B.
Saunders. Philadelphia 1986.
Levett, P. N. (2001). Leptospirosis. Clin Microbiol Rev 14(2), 296-326.
Miller, D. A., Wilson, M. A., and Beran, G. W. (1991). Relationships between
prevalence of Leptospira interrogans in cattle, and regional, climatic, and seasonal
factors. Am J Vet Res 52(11), 1766-8.
Muraira Valdez, J. y Morales Loredo, A. (2012). Comité de Fomento y Protección
Pecuaria del Estado de Nuevo León. Comunicación Personal.
OIE (2004). Infectious bovine rhinotracheitis / infectious pustular vulvovaginitis. In:
Manual of Standards Diagnostic Tests and Vaccines 2004, Edition 5. Office
International des Epizooties. http://www.oie.int
OIE (2004). Bovine Viral Diarrhoea In: Manual of Standards Diagnostic Tests and
Vaccines 2004, Edition 5. Office International des Epizooties. http://www.oie.int
Rocha, T. (1998). A review of leptospirosis in farm animals in Portugal. Rev Sci
Tech 17(3), 699-712.
SAGARPA. www.sagarpa.gob.mx
Salinas, M. J. A., Mora, G.J.J., Zárate, R., J.J., Riojas, V.V.M., Hernández, V.G.,
Dávalos, A.G., Ramírez, R.R., Galán, A.L.C., Ávalos, R.R. (2005). Frecuencia de
anticuerpos contra Neospora caninum en ganado bovino del noreste de México.
Vet. Méx 36(3), 303-311.
Sanderson, M.W. and Gnad, D.P. (2002). Biosecurity for reproductive diseases.
Vet. Clin. Food Anim. 18:79-98.
Smith, D.R. (2006). Veterinary Clinical Epidemiology. Third edition.CRC Press.
Solis-Calderon, J. J., Segura-Correa, V. M., and Segura-Correa, J. C. (2005).
Bovine viral diarrhoea virus in beef cattle herds of Yucatan, Mexico:
seroprevalence and risk factors. Prev Vet Med 72(3-4), 253-62.
Texas Animal Health Comission en www.tahc.state.tx.us/
USAHA WEB www.usaha.org
Valdez Santos, E. (2008). Implementación y evaluación de protocolos de
bioseguridad en dos hatos bovinos del sistema vaca-cría de Nuevo León. Tesis de
Licenciatura. FMVZ-UANL.
Descargar