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291262067-Conteo-de-Conidias-Y-BACTERIAS

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UNIVERSIDAD NACIONAL SAN LUIS GONZAGA DE ICA.
FITOPATOLOGIA GENERAL
CONTEO DE CONIDIAS DE
HONGOS
INTRODUCCION
Para realizar esta práctica se hace con la ayuda de un contador de esporas
llamado Hemacitómetro (Improved Neubauer). Y un microscopio biológico
compuesto.
El conteo de esporas se realiza de la siguiente manera: De una o varias cajas
de Petri con micelio bien desarrollado del hongo, se deposita en un matraz
Erlenmeyer con agua destilada estéril. El contenido se licua y forma una
solución concentrada de esporas.
Con una pipeta se toma una alícuota y se deposita en el portaobjeto graduado
del Hemacitometro. Las esporas observadas se contaran en los ocho cuadros
más grandes se suman y se dividen entre ocho y el resultado se multiplica por
10,000, obteniendo así la concentración de esporas por mililitro.
OBJETIVOS:
Tener nociones en técnicas de observación y conteo de conidias.
Conocer el uso de Hemacitómetro (Improved Neubauer) ,asi como su formula.
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UNIVERSIDAD NACIONAL SAN LUIS GONZAGA DE ICA.
FITOPATOLOGIA GENERAL
REVISIÓN DE
LITERATURA
Los hongos son organismos eucariotas, constituyen uno de los mayores grupos
de seres vivos, hasta ahora se han descrito unas 80000 especies pero se
estima que el número real llega al millón y medio de especies, hay muchas
especies que no presentan diferencias morfológicas, sino que son
genéticamente diferentes.
(Cubas, 2007) La micología es la ciencia que se encarga del estudio de los
hongos, tradicionalmente ha sido una disciplina de la botánica, a pesar de que
los análisis filogenéticos indican que los hongos están más relacionados con
los animales que con las plantas.
Sin embargo, los hongos producen esporas sexuales o asexuales para su
reproducción y multiplicación, lo que no ocurre en animales. (Cubas, 2007)
Esporas son los elementos de perpetuación de la especie.
De acuerdo a la morfología reciben distinto nombre: alantospora con forma de
banana, aleuriospora con base plana, dictiospora con septos longitudinales y
transversales, didimospora con un tabique, equinulada como un erizo,
escolescospora como un gusano, estaurospora como una estrella, feospora de
color obscuro, fragmospora con tabiques transversales, fusiforme como un
huso, helicospora como una espiral, hialospora de color claro y translúcido,
planospora móvil, verrucosa con verrugas, zoospora con flagelos.
Las balistosporas son proyectadas violentamente una vez maduras. Las
hipnosporas son aquéllas capaces de permanecer con vida latente por largo
tiempo. (Carrillo, 2003) Las esporas pueden ser de origen asexuado
(mitosporas) o sexuado (meiosporas), y por su ubicación relativa internas
oexternas.
Las mitosporas seoriginan en las estructuras anamórficas y las meiosporas en
las teleomórficas. (Carrillo, 2003) Esporas o conidios más bien grandes,
multicelulares, con tabiques transversales y longitudinales. La forma de los
conidios es característica, varía de claviforme a elipsoidal y frecuentemente
presentan un apéndice apical simple o dividido (de longitud hasta 20 µm).
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Paredes gruesas con la superficie lisa o verrugosa, de color
marrón pálido
3. u oscuro.
A menudo con una pequeña cicatriz en la base. El número de células de los
conidios varía según la especie. (Carrillo, 2003) La cámara de recuento o
cámara de Neubauer es un apárato de precisión hecho de vidrio óptico
especial.
Se utiliza para contar células u otras partículas en suspensiones bajo el
microscopio.
Las cámaras de recuento se utilizan principalmente para el análisis de sangre
(recuento de leucocitos, eritrocitos, trombocitos) y recuento de células en el
liquor. Además las cámaras de recuento sirven para contar bacterias, esperma
y esporas de hongo. (Marienfield, 2007).
CONTEO DE CONIDIAS DE HONGOS
Para determinar el número de conidias por volumen contenidas en una
determinada suspensión ,
Se utiliza un hematocimetro o cámara de Neubauer. El hematocimetro es una
lamina de vidrio que tiene dos camars de 1 mm2 . la superficie cubre un área
total de 9mm2 . adicionalmente ,el cuadro del centro esta subdividido en cinco
por cinco cuadrados agrupados de 0.2 mm de lado y una superficie de
0.04mm2 cada uno.
Los cuadrados del centro a su ves están subdivididos en 16 cuadrados mas
peueños de 0.0025mm2 cada uno. Cinco de estos cuadrados se utilizan para
el conteo de conidias .
Se debe dar especial atención al hecho de que la cámara se encuentra
delimitada por tres líneas blancas entre los cuadrados. Esto es importante para
definir cuales son las conidias que se encuentran en el limite y que deben ser
contadas .
Generalmente se cuentan las conidias que están en la primera línea de arriba y
de la derecha , no asi las conidiasque se encuentran en la línea de abajo y de
la izquierda.
PROCEDIMIENTO:
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1. Preparar una suspensión de conidias en agua destilada
con tween 80 al 0.1%.
2. Con una pipeta pasteur llenar la cámara con la suspensión de conidias y
cubrirla con el cubreobjetos.
3. Observar al microscopio utilizando el aumento conveniente de acuerdo
al tamaño de la estructura (40x es un aumento adecuado).
Cámara NEUBAUER vista al microscopio.
Cuadrado 1
Área = 1 mm x 1mm = 1 mm2
Volumen = 1 mm2 x 0,1 mm = 0,1 mm3 = 1 x 10-4 ml
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GENERAL
Concentración = FITOPATOLOGIA
Total Células
Contadas x 10.000
Número de Cuadrados
Cuadrado 2
Concentración =
Total Células Contadas x 160.000
Número de Cuadrados
Área = 0,25mm x 0,25mm = 0,0625 mm2
Volumen = 0,0625mm2 x 0,1 mm = 6,25 x 10-3 mm3 = 6,25 x 10-6 ml
Cuadrado 3
Concentración =
Total Células Contadas x 250.000
Número de Cuadrados
Área
=
0,2
mm
x
0,2
mm
=
0,04
mm2
Volumen = 0,04mm2 x 0,1 mm = 4 x 10-3 mm3 = 4 x 10-6 ml
Cuadrado 4
1/16th de Cuadrado 3, sólo NEUBAUER improved – rejilla central
Área
=
0,05
mm
x
0,05
mm
=
0,0025
mm2
Volumen = 0,0025mm2 x 0,1 mm = 2,5 x 10-4 mm3 = 2,5 x 10-7 ml
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Concentración =
FITOPATOLOGIA
GENERAL
Total Células
Contadas x 4 x10^6
Número de Cuadrados
4. Contar las conidias presentes en los cuadrados elegidos (generalmente
se cuentan en los cuadrados de los cuatro angulos y e centro ,o en
forma diagonal empezando por el pimero de la parte superior izquierda .
también se deben contar las conidias que están ubicadas tocando la primera de
las tres líneas que se encuentran circundando el cuadrado,las que se
encuentran en la parte superior y la derecha del cuadrado .se cuentan en total
10 cuadrados ,cinco en cada cámara ( cinco arriba y cinco abajo).
5. Determinar el numero de conidias or ml y el numero total de conidias
utilizando la siguiente formula :
Conidias/ml = de conidias contadas x 25000 x factor de dilución .
Conidias total = conidias/ml x Vol . de la suspensión original de conidias .
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Sector de la cámara de NEUBAUER, que se debe contar.
CARACTERIZACION FISIOLOGICA
Esta carcaterizacion se basa en la evalucaion de rendimiento en numero de
conidias y viabilidad d las mismas(porcentaje de germinación).
Numero de conidias
1. Sembrar 10 ul de suspensión de conidias con una concentración de
106 conidias /ml en medio de PDA y distribuirla uniformemente en la
2.
3.
4.
5.
6.
placa con la ayuda de una espátula de DRIGALSKI .
Incubas a 20°C durante 15 dias .
Realizar diluciones seriadas con un factor de 0.1.
Cartgar la cámara de Neubauer y contar el numero de conidias /ml.
Realizar por los menos cuatro repeticiones por aislamiento .
Realziar los cálculos respectivos para obtener la información.
Viabilidad de conidias
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FITOPATOLOGIA GENERAL
1. Sembrar 5 alicuotas de 5ul de una suspensión de conidias
6
con una concentración de 10 /ml en medio de PDA.
2. Incubar a 20|C durante 24hr.
3. Agregar azul de alctofenol para deterner la germinación y distribuirlo
uniformemente.
4. Cortar la porción de agar conteniendo la alícuota de la suspensión de
conidias y colocarlas sobre una lamina de portaobjetos . cubrir con un
cubre objetos.
5. Registrar el numero de onidiad germinadas (aquellas cuyo tubo
germinativo sea dos veces mayor al diámetro de la conidia.).
6. Por cada asilamiento no se dene hacer menos de cinco repeticiones.
En caso de que el rendimiento sea muy bajo, debido a la perdida de sus
características por ser un aislamiento muy viejo ,se recomienda reactivarlo
en el insecto hospedante.
CONSERVACION DE HONGOS
La conservación de los hongos consiste en mantenerlos viables, eliminando
la necesidad de que piques frecuentes ,impidiendo así las mutaciones en
general, una de cuyas consecuencias es la perdida de virulencia. En la
actualidad existen varios métodos para conservar los hongos por periodos
prolongados, los mismos que implican el uso de material variado.
Existen dos principios de conservación ;
1). Donde se reduce el metabolismo
2). Donde se induce la dormancia de las conidias o esporas.
La reducción del metabolismo ,incluye la conservación mediante bajas
temperaturas ,uso del aceite mineral ,agua esteril ,suelo esteril ,etc.
En la inducción de la dormancia ,se incluye el secado sobre sálica gel, la
liofilizacio y el uso de nitrógeno liquido (la criogenia,o sea el mantenimiento
a temperaturas por debajo del punto de congelación).
Estos últimos métodos requieren de aparatos especiales y de insumos
costosos, por ello hemos considerado en esta publicaion solo los que
pueden estar al alcance de la mayoría de investigadores en regiones en
vías de desarrollo. Hay otros emtodos mas económicos ,como el uso de
aceite mineral ,pero no es seguro porque el hongo puede seguir creciendo
en condiciones de desventaja ,además no esta garantiada su pureza.
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FITOPATOLOGIA GENERAL
CONCLUSIONES :
He podido conocer que el conteo de conidias que se da por medio de la lamina
de vidrio subdividiendo los cuadros que presenta para realizar el conteo.
También Utilizando el Hematocimetro o cámara de Neubauer se puede
establecer un promedio de conidias en suspensión en ml de agua. El método
de recuento en la caja de Neubauer es muy efectivo para establecer un
promedio en este caso de conidias .
RECOMENDACIONES
Al mezclar la muestra de cultivo en el agua procurar revolverla bien para que
esta libere todas las esporas que se encuentran en ella. Tener cuidado al
colocar el agua en la caja Neubauer para que esta no se desborde.
Establecer qué cuadros se van a contar, preferiblemente los de las esquinas y
centro para que sea al azar.
BIBLIOGRAFIA :
1.
http://www.celeromics.com/es/resources/Technical%20Notes/neubauerchamber-cell-concentration/formula-camara-neubauer-concentracion1.php#
2. RENATO ANDRADE CEVALLOS,2013, OBSERVACIÓN Y CONTEO DE
ESPORAS DE HONGOS AISLADOS DEL AMBIENTE AIRE, SUELO,
AGUA. ESCUELA POLITÉCNICA DEL EJÉRCITO CARRERA
INGENIERÍA AGROPECUARIA - SANTO DOMINGO –REPUBLICA
DOMINICANA.
http://es.slideshare.net/tato762/observacin-y-conteo-de-esporas-de-hongosaislados-del-ambiente-aire-suelo-agua
3. PDF:http://es.slideshare.net/jloveuas/manual-micologia
4. VERONICA CAÑEDO,TERESA AMES.2004.CONTEO DE CONIDIAS EN
CAMARA DE NEUBAUER. Manual de Laboratorio para el Manejo de
Hongos Entomopatógenos.CENTRO INTERNACIONAL DE LA
PAPA.LIMA-PERU.
https://books.google.com.pe/books?
id=lFfNuqTeit8C&pg=PA40&lpg=PA40&dq=conteo+de+conidias+en+camara+d
e+neubauer&source=bl&ots=XAF3yKGQg2&sig=FU0n5K9Eszcyfy_IRyBnSqmHUc&hl=es419&sa=X&ved=0CCYQ6AEwAmoVChMI6Lyp8br3yAIVh20mCh2eoARE#v=on
epage&q=conteo%20de%20conidias%20en%20camara%20de
%20neubauer&f=true
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FITOPATOLOGIA GENERAL
CONTEO BACTERIANO
INTRODUCCION
El conteo bacteriano señala la magnitud de la población total bacteriana.
En ese sentido se puede determinar por diversas técnicas que se basan en
algunos de los siguientes tipos de medida:
cuenta celular (directamente al microscopio o mediante un contador
electrónico de partículas o indirectamente con la cuenta de colonias), masa
celular (en forma directa pesando el contenido celular del nitrógeno o
indirectamente por turbidimetría, proporcional al número de células) y actividad
celular (indirectamente relacionando el grado de actividad bioquímica al tamaño
de la población bacteriana).
Existen muchos medios diferenciales, en la práctica rutinaria se usan los
siguientes:

Tipos de conteo bacteriano
Conteo en caja de Petri
Método más usado para contar bacterias. Un caldo de cultivo con
microorganismos es diluido y posteriormente muestras del mismo son
distribuidas en la caja de petri contenedora de agar.
Conteo por filtración
Es realizado cuando la cantidad de bacterias es muy pequeña, como en casos
de lagos y arroyos relativamente puros.
Método del número más probable (NMP)
Es una técnica de estimación estadística basada en el hecho que a mayor
número de bacterias en una muestra, mayor será la dilución necesitada para
reducir la densidad hasta el punto en que ninguna bacteria se le permita crecer
en la serie de tubos de dilución.
Método de turbidez
Para algunos experimentos, es necesario estimar turbidez, ya que es una
forma práctica de monitorizar el crecimiento bacteriano. Como una bacteria se
multiplica en un medio líquido, éste se torna turbio o de aspecto nublado por las
células. El instrumento usado para medir la turbiedad es un espectrofotómetro
(colorímetro.
Determinación del peso seco en las células
Es el método más directo para las mediciones cuantitativas de la masa celular
y probablemente el más fácilmente realizable y reproducible, aunque se debe
aplicar sólo en suspensiones celulares muy densas y las células deben ser
lavadas muy bien para removerles todo material extra. Se utiliza para bacterias
filamentosas y mohos.
OBJETIVOS:
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

Tener nociones de los diferentes métodos existentes para el conteo
bacteriano.
Conocer y estudiar la parte literaria para que se nos haga más fácil y
tranquilo ejecutarlo en práctica.
REVISION LITERARIA
Replicación bacteriana: fisión binaria o bipartición De una célula madre se
originan dos células hijas idénticas.
Crecimiento ordenado de todos los constituyentes y estructuras celulares.
Aumento exponencial en el número de células.
Tipos de crecimiento
CRECIMIENTO INDIVIDUAL
La bacteria alcanza un tamaño y peso fijo. Constituye el paso previo a la
división celular.
CRECIMIENTO POBLACIONAL
Es el incremento en el número de células como consecuencia del crecimiento y
división célula.
CONTEO DE CELULAS VIABLES



La célula viable es aquella capaz de dividirse y formar una colonia en el
medio de cultivo
Se basa en que cada colonia surge de una simple célula.
Cada colonia contiene una sola especie bacteriana.
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FITOPATOLOGIA GENERAL
El número de bacterias viables por muestra se expresa en :
UNIDADES FORMADORAS DE COLONIAS (UFC).
Representa cada colonia contada y su numero total representa el numero total
de bacterias viables en la muestra.
METODO EXTENDIDO DEN PLACA
Es el método de elección para anaerobios facultativos y cultivo de
microaeroflos.
METODO DE VERTIDO EN PLACA
Esta técnica se usa generalmente para bacterias aerobias obligadas
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Medición del crecimiento Microbiano (bacterias )

Determinación del número de microorganismos en una muestra.

Determinación de la actividad metabólica, biomasa y proteínas.

13
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Útil para la técnica
de vertido en placa
o extensión en
placa.

Se siembra
volumnes
conocidos de
cada dilución .

Luego se incuba
a 35-37°C
durante 24-48
horas
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TECNICAS DE RECUENTO

Finalizado el tiempo de incubación ,se realiza el recuentro .

Se toman en cuenta únicamente aquellas cajas de Petri que tengan entre
30 y 300 colonias.

Este numero de colonias es estadísticamente representativo.

Aquellas placas que tengan mas de 300 colonias se reportan como
INCONTABLES.
PARA EL RECUENTRO BACTERIANO SE UTILIZA UN CUENTACOLONIAS.
RECUENTRO CON CUENTACOLONIA
Puede ser contada toda la placa o por cuadrantes
Cuando la carga bacteriana es alta ,se tomna en cuenta un cyadrante con
carga alta ,un cuadrante con carga media y un cuadrante con carga baja.
Se realiza la sumatoria de los tres cuadrantes y se saca el promedio.
Finalmente el promedio se multiplica por 65.
N°. COLONIA =( CA + CM + CB/3)* 65
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FITOPATOLOGIA GENERAL
OBTENCION DE RESULTADOS
Terminado el conteo por cualquier método se debe aplicar siguiendo formula
para obtener el N°. DE UFC/ml o UFC/g.

C
u
a
n
d
o
se
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FITOPATOLOGIA GENERAL



realiza mas de una dilución para cada uno de los parámetros
se garantiza los resultados obtenidos.
Este método disminuye el margen de error y abaliza la calidad de las
pruebas.
Para obtener los resultados por duplicado se aplica la siguiente formula:
EJEMPLO 1.
Dilución A: 5600.0000
Dilución B: 6 000.000
Resultado: 5 600.000 + 6 000.000/2= 5 800.000 UFC/ml FLORA TOTAL.
EJEMPLO 2.
Dilución A: 1 245. 647
Dilución B: 2 340.500
Resultado: 1 245. 647+ 2 340.500/2= 1 793.074UFC/ml FLORA COLIFORME.
MAS Métodos para el conteo de microorganismos
viables
•Cuenta en placa
Vaciado en placa
Extendido en placa
Asa calibrada
Miles y Mirsa
Filtración
•Número más probable (NMP)
Métodos para el conteo de microorganismos totales
•Recuento microscópico
Cuenta de Breed
Cámara de Neubauer
Cámara de Prettof Hausser
 Turbidimetría
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FITOPATOLOGIA GENERAL
Métodos para el conteo de microorganismos viables



Estos métodos se basan en poner en evidencia la presencia de los
microorganismos vivos.
Requieren al menos 24 horas para el cultivo y la interpretación de
resultados.
Se emplean medios de cultivo generales, enriquecidos selectivos y
diferenciales dependiendo de los microorganismos a cuantificar.
Cuenta en placa
Se determina el número de microorganismos en una muestra en relación a las
colonias que forman, las UFC (Unidades Formadoras de Colonias). Se
emplean soluciones diluidas o diluciones de una muestra concentrada para que
cada colonia formada provenga de un solo microorganismo aunque algunas
agrupaciones no pueden ser separadas por las diluciones. Se utilizan
principalmente para la cuantificación de bacterias, levaduras y hongos
filamentosos. Se reporta como:
•UFC ****/unidad de volumen o peso .
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FITOPATOLOGIA GENERAL
Diluciones y cuenta en placa
MILES Y MISRA
Involucra la preparación de diluciones seriadas de una suspensión bacteriana.
Las placas son divididas en sectores separados.
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FITOPATOLOGIA GENERAL
Se inocula cada sector una gota empleando una Pipeta Pasteur
calibrada o bien micropipetas inoculando 0.02mL. Las placas se incuban de 18
a 24 horas a la temperatura adecuada (37ºC).
Se toman en cuenta los sectores donde hay menos de 20 UFC. El número de
bacterias viables se obtiene calculando la media de cada dilución en las
repeticiones realizadas.
ASA CALIBRADA
La utilización de agujas o asas calibradas permite tomar volúmenes pequeños,
que son inoculados en la superficie del agar mediante la técnica de siembra
masiva.
Las colonias son contadas y se multiplican por el factor de dilución del asa
empleada.
El uso más frecuente de esté método es en el urocultivo. Se determinan las
UFC/g o mL de muestra.
FILTRACION
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FITOPATOLOGIA GENERAL
La membrana de celulosa
retiene a los
microorganismos en su
malla con poros de 0.250.45mm. Esta membrana se
transfiere a un medio de
cultivo para el desarrollo de
colonias.
NÚMERO MÁS PROBABLE (NMP)
También llamada técnica de dilución en tubo, proporciona una estimación
estadística de la densidad microbiana presente con base a que la probabilidad
de obtener tubos con crecimiento positivo disminuye conforme es menor el
volumen de muestra inoculado.
Número Más Probable (NMP)
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FITOPATOLOGIA GENERAL
10-19-95 NORMA Oficial Mexicana NOM-112-SSA1-1994, Bienes y servicios.
Determinación de
bacterias coliformes. Técnica del número más probable.
Cochran, W. C. (1950). Estimation of bacterial densities by means of the “most
probablenumber” Biometrics 6, 105-116.
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FITOPATOLOGIA GENERAL
ANALISIS MICROBIOLOGICO DEL AGUA
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FITOPATOLOGIA GENERAL
Métodos para el conteo de microorganismos totales
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FITOPATOLOGIA GENERAL
•Estos métodos se basan en poner en evidencia la presencia de
los microorganismos vivos y muertos los cuales no se pueden distinguir.
•Son rápidos pero se requiere contar en algunos casos con curvas de
calibración.
RECUENTO MICROSCÓPICO
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FITOPATOLOGIA GENERAL
CÁMARAS DE PETROFF-HAUSSER Y DE NEUBAUER
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FITOPATOLOGIA GENERAL
Limitaciones:
•Es muy tedioso, no es
práctico para un gran
número de muestras.
•No es muy sensible, se
necesitan al menos 106
bacterias/mL para que sean
observadas al microscopio.
•No distinguen células vivas
de muertas.
CUENTA DE BREED






Muestra a evaluar (directa o diluida)
Microscopio
Objetivo micrométrico
Asa calibrada o micropipeta
Portaobjetos
Colorantes de Gram u otros colorantes.
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FITOPATOLOGIA GENERAL
CUENTA DE BREED
EXTRA :USO DEL EQUIPO MICROMETRICO
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FITOPATOLOGIA GENERAL
NEFELOMETRIA (TURBIDIMETRIA)
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FITOPATOLOGIA GENERAL
La turbidez producida por el crecimiento microbiano de
microorganismos unicelulares puede ser medida de acuerdo a la capacidad de
absorber la luz. La muestras a determinar son generalmente translúcidas
cuando no presentan crecimiento microbiano.
Longitud de onda (l)
•Bacterias 540nm
•Protozoarios 580nm
•Levaduras 600nm
TURBIDEZ
La turbidez se determina
por la densidad óptica (DO)
que puede ser expresada
como Absorbancia, % de
Transmitancia o Unidades
Klett (UK).
ESCALA DE MC FARLAND
Klett-Summerson Colorimeter
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FITOPATOLOGIA GENERAL
PESO SECO Y DETERMINACIÓN DE PROTEÍNA

El peso seco (contenido de sólidos) de las células bacterianas que se
encuentran en una suspensión se obtiene por el secado de un volumen en
un horno a 105°C hasta peso constante.

Es útil para grandes volúmenes. La desventaja de este método es que
componentes volátiles de la célula pueden perderse por el secado y puede
existir alguna degradación. La muestra seca puede recobrar humedad
durante el pesado, principalmente si el ambiente tiene una humedad relativa
alta.
La proteína se relaciona al crecimiento, por lo que un incremento en la
cantidad de proteína en el paquete celular indica que hay mayo
concentración de células.

Curva patrón
para la
determinacion de
proteínas por el
método de Lowry
Curva de crecimiento Viables vs Totales
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FITOPATOLOGIA GENERAL
CONCLUSION:
Los diversos métodos que existen para el conteo de células bacterianas , nos
ayuda y facilita en la obtención del número de bacterias viables por muestra se
expresa en :
UNIDADES FORMADORAS DE COLONIAS (UFC).
Todo ello empleado para fines de investigación y análisis .
BIBLIOGRAFIA
1. NATALIA IZURIETA 2011. Laboratorio no. 4 recuento bacteriano.
LABORATORIO DE BACTERIOLOGIA Y MICOLOGIA.
http://es.slideshare.net/nataliaizurieta/laboratorio-no-4-recuentobacteriano-7723447
2. PDF.
http://depa.fquim.unam.mx/amyd/archivero/U4b_MedicionCrecimiento_19
837.pdf
3. WIKIPEDIA .
https://es.wikipedia.org/wiki/Conteo_bacteriano#Determinaci.C3.B3n_dire
cta_por_microscopio
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