Subido por great_mitita18

4 ANALISIS CLINICOS I 4ta clase

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ANALISIS CLINICOS I:
ETAPA PRE-ANALITICA
Toma de Materiales Microbiológicos –
Condiciones de transporte.
El diagnóstico de las enfermedades infecciosas se basa en el estudio de los
síntomas y signos clínicos, así como en la demostración de la presencia
del agente, de productos o de la huella que éste ha dejado en su
contacto con el sistema inmune del individuo. El diagnóstico clínico es,
en muchos casos, orientador luego de evaluar los datos que ofrecen la
historia clínica y la exploración pero, la confirmación de un diagnóstico
clínico requiere en enfermedades infecciosas el diagnóstico etiológico
que confiere el Laboratorio de Microbiología Clínica.
Toda la información diagnóstica que el laboratorio de microbiología puede
proporcionar, depende de la calidad de la muestra recibida. Por
ello, una toma mal realizada, pobremente recogida o mal
transportada determinará un posible fallo en la recuperación de
los agentes patógenos, que puede inducir a errores diagnósticos, e
incluso a un tratamiento inadecuado del enfermo.
Normas Básicas Generales
Las muestras deben venir acompañadas de su respectiva hoja de pedido
donde deben llenarse todos los datos solicitados por el laboratorio. En
todos los casos es imprescindible:
1) nombre completo,
2) Nº de Cédula de Identidad o Nº de registro,
3) edad,
4) sexo,
5) servicio, policlínica o internación ( piso, sala, cama)
6) tipo de muestra : urocultivo, exudado de herida quirúrgica
de tórax, pus de colección intrabdominal, etc
7) consignar si el paciente recibió antibióticos en los últimos 7
días (si es así anotar nombre del ATB , dosis y vías de
administración).
Los viales, tubos o frascos donde se colocan las muestras deben ser estériles
con tapón hermético. Las muestras se deben obtener antes de iniciar el
tratamiento antibiótico o antiviral.
Cuando esto no es posible, se obtendrán justo antes de la administración de
la dosis del antimicrobiano, o tras 48 hs de finalizado el tratamiento.
Normas Básicas Generales
Hay situaciones en que es conveniente la toma junto a la cama del
enfermo, como en hemocultivos y líquido cefalorraquídeo (LCR),
pero en otras es imprescindible realizarla en el propio
laboratorio como en exudados genitales que requieren una
observación en fresco al microscopio y/o siembra inmediata.
En líneas generales, en todas las localizaciones es necesario que la
toma se efectúe en el sitio exacto de la lesión con las máximas
condiciones de asepsia que eviten la contaminación con
microbios exógenos, que la muestra nunca se ponga en
contacto con antisépticos o desinfectantes, que la toma sea lo
más precoz posible y ”siempre se prefieren los productos
purulentos recogidos por aspiración directa con jeringa
o tejidos sospechosos, a las muestras tomadas con
hisopos o torundas con algodón.”
DEFINICIONES
ESTUDIO MICROBIOLÓGICO.
El estudio bacteriológico y micológico comprende el
examen directo, el cultivo y en aquellos agentes que
se justifica, el antibiograma.

“DIRECTO”.
Es la observación microscópica de la muestra extendida
en un portaobjeto. Puede ser “en fresco” (sin
tinción), ó, con tinción (Gram, Ziehl-Nielsen, Tinta
China, etc). Este procedimiento de tinción, demora
aproximadamente 10 minutos.

DEFINICIONES
CULTIVO.
Es el crecimiento in vitro de microorganismos en medios de cultivos
líquidos y sólidos (agares diferentes), lo que permite el
aislamiento del agente y su identificación posterior. Esta etapa
del procesamiento requiere de una incubación mínima de 18 a
24 hs en estufa a 35ºC. Si el cultivo es puro y el agente lo
amerita se realiza un estudio de sensibilidad a los
antimicrobianos, lo que demora 24 hs más. Los de lento
desarrollo pueden crecer en 7 días y hasta 4 a 8 semanas.
TIOGLICOLATO : Caldo de cultivo para bacterias
anaerobias. Se solicita al Laboratorio de Microbiología.
CARY BLAIR : Medio de transporte para deposiciones.
STUART o AMIES : Medio de transporte para estudio de
bacterias aerobias de todo tipo de muestras.
SABOUREAUD : Medio de cultivo para hongos.
THAYER MARTIN : Medio de cultivo selectivo para
Neisseria gonorrhoeae (Gonococo).

Muestras – Causas de bajo rendimiento.
A fin de evitar la pérdida de viabilidad y obtener el máximo de
rendimiento de los exámenes microbiológicos se debe acotar
al mínimo el tiempo que media entre la extracción de la
muestra y su posterior siembra en el medio específico del
laboratorio.
Las principales causas del bajo rendimiento de los cultivos se
relacionan con:
1.
2.
3.
Caída del pH.
Caída de la temperatura.
Desecación.
CONDICIONES DE UNA MUESTRA ÓPTIMA





Seleccionar el sitio anatómico representativo de la infección.
Usar técnica aséptica y material estéril en la obtención, para
minimizar contaminación.
Se requiere un volumen pequeño de muestra (1 a 2 ml) ,a
excepción de hemocultivos, líquido ascítico y fluidos para
anaerobios (mínimo 10 ml).
Teniendo presente que la desecación es uno de los factores
que contribuyen a disminuir el rendimiento de los cultivos,
las muestras óptimas son los fluidos y /o tejidos. Las
muestras tomadas con tórula deben ser su introducidas en
un medio de transporte adecuado para mantener la
viabilidad bacteriana.
Envío lo antes posible al laboratorio para siembra e
incubación a temperatura óptima.
TRANSPORTE Y MANTENCIÓN DE
MUESTRAS MICROBIOLÓGICAS
La humedad y el tiempo de transporte es crítico en las muestras
para cultivo ya que el objetivo es lograr mantener vivos los
microorganismos para su crecimiento in vitro. Las muestras
deben procesarse en lo posible, no mas allá de 2 hs de
recolectadas, a excepción de las que se colocan en medios de
transporte, en las cuales los microorganismos sobreviven
tiempos mayores.
ORINA:
Material de envío: Tubo o recipiente estéril tapa hermética.
Transporte: inmediato al laboratorio, de no ser posible
refrigerar hasta 24 hs a 4°C y trasladar en neveras o en cajas
aislantes con hielo.
COPROCULTIVO:
Material de envío: medio de transporte Cary Blair.
Transporte: Mantener y trasladar a temperatura ambiente
hasta por 24 hs.
TRANSPORTE Y MANTENCIÓN DE
MUESTRAS MICROBIOLÓGICAS
SECRECIONES
FARINGEA – NASAL:
Material de envío: Tórula en medio de transporte Stuart o Amies.
Transporte: antes de 2 hs al laboratorio, a temperatura ambiente.
Para diagnóstico de sinusitis, la muestra debe ser tomada mediante
punción por especialista y enviada de inmediato a temperatura
ambiente.
ÓTICA:
Otitis media:
Material de envío: jeringa o tubo estéril muestra obtenida por
punción, tomada por médico especialista (Timpanocentésis).
Transporte: de inmediato a temperatura ambiente.
Otitis crónica:
Material de envío: Tórula en medio de transporte Stuart o Amies.
Transporte: a temperatura ambiente hasta 6 hs.
TRANSPORTE Y MANTENCIÓN DE
MUESTRAS MICROBIOLÓGICAS
EXPECTORACIÓN – ASPIRADOS TRAQUEALES BRONQUIALES:
Material de envío: contenedor estéril o jeringa con aspirado.
Transporte: de inmediato al laboratorio a temperatura
ambiente.
CONJUNTIVAL – CORNEAL:
Material de envío: Tórula en medio de transporte Stuart o
Amies.
Transporte: antes de 2 a 4 hs al laboratorio, a temperatura
ambiente.
Muestras corneales deben ser tomadas y sembradas por el
médico especialista según protocolo y enviadas lo antes posible,
manteniéndolas a temperatura ambiente o a 35 °C.
TRANSPORTE Y MANTENCIÓN DE
MUESTRAS MICROBIOLÓGICAS
URETRAL:
Material de envío: Tórula en medio de transporte Stuart o Amies.
Transporte: antes de 2 a 4 hs horas al laboratorio, protegida de
temperaturas inferiores a 15°C. En sospecha de gonorrea enviar de
inmediato o sembrar directamente en medio Thayer Martin solicitado
al laboratorio.
VAGINAL:
Material de envío: Tórula en medio de transporte Stuart o Amies.
Transporte: antes de 2 a 4 horas al laboratorio, protegido de
temperaturas inferiores a 15°C. Para Trichomonas en suero
fisiológico, enviar de inmediato o dejar a 35°C.
TRANSPORTE Y MANTENCIÓN DE
MUESTRAS MICROBIOLÓGICAS
PUS ABCESOS:
Material de envío: contenedor estéril o jeringa con aspirado
obtenido por punción con técnica aséptica, o en tubo con caldo
solicitado al laboratorio.
Transporte: lo antes posible, máximo hasta 2 hs mantenido a
temperatura ambiente.
TEJIDOS:
Material de envío: contenedor estéril con suero fisiológico o caldo
de cultivo para preservar humedad.
Transporte: enviar de inmediato, o mantener máximo hasta 4 hs a
temperatura ambiente.
LIQUIDOS ESTÉRILES: pleural, articular, sinovial,
humor vítreo, humor acuoso.
Material de envío: jeringa, tubo estéril o frasco de hemocultivo.
Transporte: enviar de inmediato, o mantener máximo hasta 4 hs a
temperatura ambiente.
TRANSPORTE Y MANTENCIÓN DE
MUESTRAS MICROBIOLÓGICAS
LCR:
Material de envío: Tubo estéril.
Transporte: de inmediato. Si no es posible, dejar a temperatura
ambiente.
LIQUIDO ASCÍTICO:
Material de envío: frasco de hemocultivo (10 ml).
Transporte: de inmediato al laboratorio o mantener hasta 4 hs a
temperatura ambiente, o, hasta 48 hs y más a 35ºC.
HERIDAS:
Material de envío: Tórula en medio de transporte Stuart o Amies.
Transporte: antes de 4 hs a temperatura ambiente.
TRANSPORTE Y MANTENCIÓN DE
MUESTRAS MICROBIOLÓGICAS
CULTIVOS DE ANAEROBIOS:
Material de envío: si es pus en jeringa sellada con aspirado, si es
tejido en medio de transporte para anaerobios o caldo Tioglicolato
solicitado al laboratorio.
Transporte: lo más pronto posible a temperatura ambiente.
HEMOCULTIVOS:
Material de envío: Frascos específicos con caldo para
hemocultivo.
Transporte: lo antes posible, mantenidos a temperatura ambiente
o en estufa a 35 °C.
Dilución de la muestra 1:10 en el caldo o medio para hemocultivo.
Generalmente se saca por duplicado.
CONSERVACION DE MUESTRAS
A TEMPERATURA AMBIENTE:
Muestras en medio de transporte (semisólidos).
LCR.
Sangre para Lisis – Centrifugación (en tubos específicos).
EN HELADERA (4°C):
Orinas (chorro medio, punción suprapúbica).
Catéteres (en solución fisiológica).
Coprocultivos en medio de transporte semisólido, si el lapso de conservación es
mayor de 6 hs.
Muestras para estudio de Micobacterias (esputos).
Muestras para estudios Virológicos.
EN ESTUFA (35°C):
Sangre.
Muestras en medio liquido de transporte.
Agar Chocolate (sembrado con LCR).
[De no ser posible esta forma de conservación, dejarlas a
temperatura ambiente]
MUESTRAS INACEPTABLES PARA
ESTUDIO MICROBIOLÓGICO
1) POR RENDIMIENTO CUESTIONABLE.
Lesiones de cavidad oral - Descarga colostomías – Vómito - Ulceras de
decúbito - Ulceras varicosas
2) POR NO SER PREDICTIVAS DE INFECCIÓN.
Cultivos de superficies cutáneas (Quemados , Pié Diabético, Muñones
amputación)
Cultivo de portadores, salvo en estudio de brotes.
Dispositivos de uso clínico (catéteres, sondas, suturas, prótesis, etc.)
3) POR INADECUADA RECOLECCIÓN .
Muestra sin medio de transporte, sin rotulación ó mal rotulada.
Tiempo de transporte prolongado.
Envase abierto o contaminado visiblemente, quebrado, no estéril o
inadecuado.
Muestra respiratoria contaminada con flora oro faríngea.
Muestras para cultivo anaerobio en tórula o transportada en medios aerobios.
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