SEMESTRE 2017-1 FORMATO PARA PROPONER CURSOS 1. Título del Curso Fundamental Introducción a la Biología Estructural 2. Tutores responsables en estricto orden alfabético A. Nombre completo Dra. Alejandra Hernández Santoyo Adscripción Instituto de Química, UNAM Teléfono 56224568 Horas impartidas 5 sesiones de 3 horas cada una Correo electrónico [email protected] B. Nombre completo Dra. Adela Rodríguez Romero /RESPONSABLE Adscripción Instituto de Química, UNAM Teléfono 56224568 Correo electrónico [email protected] Horas impartidas 6 sesiones de 3 horas cada una C. Nombre completo Adscripción Teléfono Dr. Alfredo Torres Larios Instituto de Fisiología Celular 56225640 Correo electrónico Horas impartidas D. Nombre completo Adscripción Teléfono Correo electrónico Horas impartidas [email protected] 7 sesiones de 3 horas cada una Dr. Héctor Viadiu Ilarraza Instituto de Química, UNAM 56246612 [email protected] 6 sesiones de 3 horas cada una 3. Profesores invitados F. Nombre completo Dr. Gustavo Fuentes Vives Adscripción Horas impartidas G. Nombre completo Adscripción Horas impartidas EMBL, Hamburgo, Alemania 2 sesiones de 3 horas cada una MC. Marco Igor Valencia Sánchez Instituto de Fisiología Celular, UNAM 2 sesiones de 3 horas cada una 4. Introducción/justificación del Curso El impacto que ha tenido el conocimiento detallado de las estructuras de proteínas y ácidos nucleicos en diversas disciplinas ha sido muy significativo en las últimas décadas y promete ser de gran relevancia en las que están por venir. El contar con diversas estructuras de una macromolécula, ya sea en forma individual o en complejo con otras macromoléculas o con ligandos específicos, es de gran valor, tanto en el diseño como en el desarrollo de compuestos con valor farmacológico. Este curso está enfocado a analizar los principios básicos de tres técnicas utilizadas ampliamente en la actualidad en biología estructural: dispersión de rayos X de ángulo pequeño (SAXS), cristalografía de rayos X y criomicroscopía electrónica. 5. Características para la impartición del Curso Indique el lugar, días y horario en donde se realizará el Curso Número de sesiones y duración en horas por sesión (mínimo 36 horas) Disponibilidad de impartirlo por videoconferencia Número total de alumnos que puede aceptar Número de alumnos del PDCB que puede aceptar Martes y jueves de 9:30 a 12:30 28 sesiones de 3 h c/u NO 15 8 6. Método de evaluación Por favor incluya en este apartado él % de la contribución relativa de: Exámenes (número) 1 (40%) Participación en clase 30% Presentación de un proyecto Trabajos 30% Otros Asistencia a clases obligatoria (>80%). 7. Temario del Curso Fundamental 1. Introducción general • • (A.T.L. 9 y 11 agosto) Estructura de macromoléculas biológicas Generalidades sobre visualización y análisis de macromoléculas 2. SAXS • • • (M.I.V.S. 16 y 18 agosto) Principios básicos y métodos de procesamiento Colección de datos y evaluación Cálculo de envolturas y modelado (G.F.V 23 y 25 agosto) 3. Principios de la cristalografía de proteínas • • • • Bases de la difracción de rayos X Espacio recíproco La esfera de Ewald Simetría y grupos espaciales 4. Cristalización • • • (A.R.R 30 de agosto) (A.R.R. 1, 6 de septiembre) (A.H.S. 8 y 13 de septiembre) Cristalización de proteínas. Diagramas de fase y métodos. Factores que afectan el crecimiento y la calidad de los cristales 5. Colecta de datos • • Estrategia de colecta Reducción de datos (A.R.R. 20 de septiembre) (A.T.L. 22 de septiembre) 6. Caracterización de los datos • • Escalamiento de datos (Likelihood-based) (A.T.L. 27 de septiembre) Detección de superposición de redes cristalinas (cristales gemelos) (A.H.S. 29 de septiembre.) 7. El problema de la fase (A.R.R. septiembre 4 y 6 de octubre; A.T.L. 11 y 13 de octubre) • • • • Reemplazo molecular (A.R.R. septiembre 4 y 6 de octubre) Dispersión anómala Procedimientos para mejorar las fases Obtención del modelo inicial 8. Afinamiento de la estructura • • • (ATL 18 de octubre, AHS 20 octubre) Mínimos cuadrados Recocido simulado Flexibilidad molecular y parámetros de movilidad atómica 9. Validación y análisis de estructuras • • • • • • • • (A.H.S. 25 de octubre) Programa MolProbity, Gráfica de Ramachandran. B factor Accesibilidad al disolvente Contactos inter e intramoleculares Superficie electrostática Cavidades Hidrofobicidad Empaquetamiento 10. Fundamentos de criomicroscopía electrónica 3,8,10,15 y 17 de noviembre) • • • • • • (HVI 27 de octubre, Introducción a la determinación de estructura de proteínas por microscopía electrónica Uso del microscopio electrónico Análisis de Fourier y reconstrucción tridimensional Cristalografía de electrones Reconstrucción helicoidal y de virus icosahédricos Reconstrucción de partículas individuales y tomografía 11. Análisis y discusión de artículos noviembre) (ARR, ATL, AHS, HVI 22 y 24 de 8. Bibliografía 1) Principles of Protein X-Ray Crystallography. Drenth, J. Springer-Verlag 3ª edición (2007) 2) Crystallography Made Crystal Clear: A Guide for Users of Macromolecular Models. Gale Rodhes. Academic Press 3a edición (2006) 3) Protein crystallography. Blundell, T.L. and Johnson, L.N. Academic press (1976) 4) Fundamentals of Crystallography. Giacovazzo, C., Monaco, H. L., Artioli, G., Viterbo, D., Milanesio, M., Ferraris, G., Gilli, G., Gilli, P., Zanotti, G. and Catti, M. International Union of Crystallography (2011) 5) Practical protein crystallography. McRee, D.E., David R.R. 2ª edición Academic Press (1999) 6) Protein crystallization. Techniques, Strategies and tips. Bergfors, T.M. (Ed) International University Line (2001) 7) Crystallization of Nucleic Acids and Proteins: A Practical Approach. Ducruix, A. and Giege, R. (Eds). Oxford University Press; 2a edición (1999) 8) Proteins. Structures and molecular properties. Creighton, T.E. W.H. Freeman and company 2a edición 9) Introduction to protein structure. Branden, C. and Tooze, J. Garland publishing Inc (1999) 10) Three-Dimensional Electron Microscopy of Macromolecular Assemblies: Visualization of Biological Molecules in Their Native State. Frank, J. Oxford University Press; 2a edición (2006) 11) Structural Biology Using Electrons and X-rays: An Introduction for Biologists. Moody, M.F. Academic Press (2011) 12) Fink, H. P. (1989). Structure analysis by small‐angle X‐ray and neutron scattering. Von LA FEIGIN und DI SVERGUN. ISBN 0‐306‐42629‐3. New York/London: Plenum Press 1987. XIII, 335 S. US. Acta Polymerica, 40(3), 224224. 13) Mertens, H. D., & Svergun, D. I. (2010). Structural characterization of proteins and complexes using small-angle X-ray solution scattering. Journal of structural biology, 172(1), 128-141. 14) Putnam, C. D., Hammel, M., Hura, G. L., & Tainer, J. A. (2007). X-ray solution scattering (SAXS) combined with crystallography and computation: defining accurate macromolecular structures, conformations and assemblies in solution. Quarterly reviews of biophysics, 40(03), 191-285. NOTA: En cada tema se proporcionará bibliografía específica