UNIVERSIDAD VERACRUZANA

UNIVERSIDAD VERACRUZANA
FACULTAD BIOANALISIS
ZONAXALAPA
IMPORTANCIA DE LA CITOMORFOLOGIA
BÁSICA ANTE EL AVANCE TECNOLÓGICO DE
LA AUTOMATIZACIÓN HEMATOLÓGICA
(GEN-S COULTER)
TESINA
QUE PARA OBTENER EL TITULO DE:
LICENCIADO EN QUÍMICA CLÍNICA
PRESENTA:
HECTOR ALONSO AGUILAR ROUSTAND
ASESOR:
Dr. RODOLFO CRUZ MEJIA
XALAPA, VER; SEPTIEMBRE 2006
A&RAbECIM IENTOS.........
MADRE...
A l pilar mas fuerte, grande y bello, a la estrella que
no deja de brillar, irradiando amor a su poso, a la
persona de la cual he aprendido que la gente se
valora por sus virtudes y no por sus defectos. A
aquella persona le hace honor al dicho, que dice,
siembra amor y recibirás amor. A lo mas valioso
que me a dado Dios. A la que es imposible no
amarla. Para aquella persona que ni con todas
las palabras más hermosas del mundo, alcanzarían
para decirle todo lo que siento por ella. A la más
bella de mis virtudes.
GRACIAS....
.
PADRE
aquel hombre que mal o bien nunca a dejado
de ver por mi, A aquel con sus malos o buenos
ejemplos, me a enseñado lo duro que es la vida.
A aquel que me a demostrado que no necesita un
papel que lo avale para sacarme adelante, del
qm he comprendido que la inteligencia viene del
corazón y no del cerebro, además de buen patero
y mi héroe
GRACIAS.....
HERMANO
A aquel valiente que con su carácterfuerte y
su rebeldía me han enseñado, a no sucumbir
ante nadie, a defender mis ideales, ante todo.
Con quien jam ás competiría ni dejaría que
hubiera una rivalidad. Por quien yo me haría
a un lado por verlo llegar muy alto.
GRACIAS....
PAREJA
A aquella compañera siempre radiante, dispuesta
a darme su apoyo con una sonrisa en su rostro y
con el corazón en la mano. A la que abecés le toca
soportar mi lado feo. A la mujer con cuya fuerza
de voluntad es admirable, a quien la vida la a
convertido en criztalinidady amor, a mi motivación
extra, la que me endulza el camino a donde quiera
que voy.
GRACIAS....
MAESTRO....
A aquella persona llena de sabiduría y corazón,
quien no solo enseña su conocimiento si no te
extiende una amistad, quien deposito su confianza
en mi, a quien admiro y respeto como profesional
y persona. A aquella persona que a dejado huella en
mi y se que siempre estará ahí para aconsejarme,
a quien yo considero mas que un maestro.
GRACIAS....
ÍNDICE.
INTRODUCCIÓN..........................
JUSTIFICACIÓN..........................
OBJETIVO GENERAL.
OBJETIVOS PARTICULARES.
01
.
,. 02 .
CAPÍTULO I. LA HEMATOLOGÍA.
i. I.
Definición.................................................................................................... 03.
I. II. Órganos Hematopoyéticos.
I. III. Hematopoyesis................................................................................................ 04.
CAPÍTULO II. PIONEROS DE LA CITOMORFOLOGÍA.
II. I. Primeros morfólogos........................................................................................ 10.
II. II. Tinciones.................................................. .........................................................12.
CAPÍTULO III. LA BIOMETRIA HEMÁTICA.
III.
III.
III.
III.
í.
Definición.............. ^.......................................................................................13.
II. Parámetro eritrocitario.
III. Parámetro leucocitario............ .....................................................................17.
IV. Parámetro plaquetario.................................................................................. 19.
CAPÍTULO IV. LA AUTOMATIZACIÓN.
TV. I. Introducción.................................................................................................... 20.
IV. II. Principio Coulter.
IV. III. Diferenciación de eritrocitos, leucocitos y plaquetas................................. 22.
IV. rv. Histogramas.................................................................................................. 23.
IV. V. Tecnología VCS.................................................................................. ..........25.
IV. VI. Limitaciones....................................................................................................30.
CAPÍTULO V. DEMOSTRACION DE LAS LIMITACIONES DE LA
AUTOMATIZACIÓN CON RESPECTO A LA CITOMORFOLOGÍA
HEMATOLÓGICA.
V. I. Introducción..................................................................................................... 31.
V. II. Casos que pasan a observación microscópica.
V. in. Casos del parámetro Eritrocitario............................. ............ 32.
V. rv. Casos del parámetro leucocitario.................................................................. 53.
V. V. Casos del parámetro plaquetario..................................................................... 85.
CAPÍTULO VI. RESUMEN DE LA INVESTIGACIÓN DE
AUTOMATIZACIÓN Y OBSERVACIÓN MICROSCOPICA.
VI. I. Parámetro eritrocitario.................................................................................. 101.
VI. II. Parámetro leucocitario............................................. .................................... 103.
VI. III. Parámetro plaquetario..............•................................. ;.................................106.
CONCLUSIONES Y PROPUESTAS.....................................................................107.
CONCLUSIÓN Y PROPUESTA FINAL...............................................................109.
BIBLIOGRAFÍA.......................................................
no.
IN T R O D U C aÓ N .
La Biometría Hemática es un estudio básico y fundamental para el apoyo del
trabajo clínico del médico, para el Diagnóstico, Evolución y Ptonóstico de las
diferentes entidades nosológicas. Dicho estudio se efectúa en todos ios laboratorios
del mundo y debido a la elaboración compleja de dicho estudio, nace la necesidad de
crear nuevos aparatos automatizados pam que el estudio disminuya su tiempo de
elaboración y con esto lograr la especificidad adecuada, para cumplir con el apoyo ai
médico. Sin embargo ios mismos manuales de los aparatos modernos automatizados,
mencionan deficiencias en la exactitud de los diferentes parámetios por lo que sigue
siendo necesaria la Observación Microscópica.
Esta situación me obligó a enterarme de manera proñinda en el conocimiento
de la Citomorfologia Hematológica Básica y la Automatización para así poder lograr
un concepto más verídico respecto a estos temas de gran importancia y así poder
ubicarlos en el lugar científico que les corresponde y utilizarlos de una manera
adecuada, para cumplir con el objetivo primoñlial del laboratorio clínico, que es
lograr la mayor especificidad, para que el apoyo en el Diagnóstico, Evolución y
Pronóstico de las distintas entidades nosológicas sean una realidad.
1
JUSTIFICACIÓN.
A medida de los afios se ha perdido el uso adecuado de la citomorfología
hematológica básica, todo esto debido al avance monstruoso de la tecnología, ya que
esta gicilita al profesional su trabajo, claro esta, sin resolver de manera especifica el
diagnóstico, o en ocasiones mal. A pesar de que los manuales especifican que cuando
el aparato nos muestra alarmas es necesario la tinción adecuada para la observación
microscópica se siguen mandando los resultados tal y como salen de los equipos.
En muchos laboratorios de análisis clínicos, en el área de hematología solo se
entregan resultados obtenidos de, los aparatos automatizados sin realizar estudios al
microscopio, esto puede provocar un diagnóstico no tan específico o en ocasiones
equivocado.
También, cabe mencionar que en instituciones de salud se ocupan a p o to s
automatizados, que en instituciones educativas no se tienen.
Además, considero que no hay una en^flanza profiinda en cuanto ala
citomorfología hematológica básica que ahora es mas necesaria por el avance de la
automatización, ya que la citometria hemática, es uno de los estudios que tiene más
variables, se determinan mas de 20 parámetros y además la evolución biológica de la
misma sufre cambios importantes, encontrando diferencias en los siguientes
patámefios.
1. Edad
2. Sexo
3. Altura con respecto al nivel del mar.
OBJETIVO GENERAL
Demostrar que es necesaria la Citomorfología Hematológica en apoyo o
complemento a la automatización para obtener mayor especificad en los resultados.
OBJETIVOS PARTICULARES
Generar un trabajo que establezca criterios o algoritmos para definir los casos
donde se requiera de la Citomorfología Hematológica.
Establecer un protocolo ó algoritmos para decidir el uso adecuado de la
Citomorfología Hematológica.
2
CAPÍTULO I. LA HEMATOLOGÍA.
L I. Definición.
£n un sentido amplio, la hematología también comprende el estudio
inmunológico hemático, (en las infecciones, alergias y hemopatías debido a la
presencia de auto anticuetpos o inmunohem^Uología): el físicoquímico de los
productos del metabolismo, del agua y proteínas del plasma (dis y paraproteinemias o
ausencia de otras proteínas del plasma detectables con métodos inmunoquímicos) y de
las hormonas transportadas por la sangre, la citogenètica etc. Pero lo que le incumbe
más paiticulaimente, es el estudio de los corpúsculos de la sangre (hematíes,
leucocitos, trombocitos) y de sus progenitores radicados en los centros
hematopoyéticos. (26-9)
I. n órg an o s Hematopoyéticos.
Son aquellos órgmios que llevan acabo la hematopoyesis o creación de las
células de la sangre.
Médula Ósea.
La médula
es un tipo de tejido que se encuentra en el interior de los
grandes huesos, sobre todo de los centrales del cuerpo como cráneo, vértebras (hueso
irregular), costillas, esternón, cintura escapular y pelvis.
Puede ser de 2 tipos:
•
La médula ósea roja, que ocupa el tejido esponjoso de los huesos planos, como
el esternón, las vértebras, la pelvis y las costillas, es la que tiene la función
hematopoyética.
•
La médula ósea amarilla, es tejido adiposo y se localiza en los canales
medulares de los huesos largos.
La médula ósea es el lugar donde se produce la sangre (hematopoyesis),
porque contiene las células madre que originan los tres tipos de células sanguíneas
que son los leucocitos, hematíes y plaquetas.
La médula ósea puede trasplantarse, ya que puede extraerse de un hueso, de un
donante vivo, generalmente del esternón o de la cadera, mediante una punción y
aspiración y transfundirse al sistema circulatorio del receptor si existe compatibilidad
del sistema HLA. Las células madre transfundidas, anidarán en la médula ósea de los
huesos del receptor. Es lo que se llama teasplante de médula ósea. (22-30-31)
Bazo.
£1 bazo es una viscera abdominal de los vertebrados, de color rojo oscuro, que
desempeña diversas funciones relacionadas con la sangre y el sistema inmunitario.
3
En el humano, el bazo es el mayor de los órganos linfáticos, es intraperitoneal,
se sitúa habitualmente en el hipocondrio izquierdo de la cavidad abdominal, detrás del
estómago y debajo del diafiúgma. Se relaciona en la parte posterior entre la 9° y la
11° costilla izquierda. Reposa sobre la flexura cólica izquierda y hace contacto con el
estómago por el ligamento gastroesplénico así como con el rifión izquierdo por el
ligamento esplenorrenal, está iirigado por la arteria esplénica rama del tronco celiaco.
Su tamaño es variable, aumentando hasta la pubertad y tendiendo a disminuir
en la edad adulta. Suele medir 12 cm. de longitud y 7 cm. de anchura Bn su estructura
se distinguen dos componentes fundamentales: la pulpa blanca (de tejido linfoide) y la
pulpa roja (sistema de vasos por los que circula la sangre).
£1 bazo desempeña diversas funciones:
Hematopoyesis: durante la gestación el bazo es un importante productor de sangre
hasta el cuarto mes en el feto, desaparece esta fiinción, pero puede volver a
desempeñarla en caso de ser necesario.
Filtro: el bazo se encarga de la maduración de los glóbulos rojos y también de la
desteucción de los glóbulos rojos viejos o anormales.
Inm nnitaria: en el bazo se producen anticuerpos y tiene capacidad para destruir
bacterias mediante fagocitosis. (22-30*31 )
Ganglio Linfático.
Los ganglios linfáticos son unas estructuras nodulares que foiman parte del
sistema linfático, formando agrupaciones en forma de racimos localizados en las
axilas, ingles, cuello, mediastino y abdomen. Los ganglios linfáticos actúan como
filtros, al poseer una estructura interna de tejido conectivo fino, en forma de red,
relleno de linfocitos que recogen y destruyen bacterias y virus, por lo que los ganglios
linfáticos también forman parte del sistema inmune. Cuando el cuerpo está luchando
contea una infección, estos linfocitos se multiplican rápidamente y producen el
crecimiento característico de los ganglios linfáticos. (9-22)
I. m . Hematopoyesis.
La hematopoyesis es el proceso de formación de la sangre y más
específicamente de células sanguíneas que son todas ellas derivadas de stem cells. Las
células madre que se encuentran en la médula ósea (células madre hematopoyéticas)
son las responsables de formar todas las células y elementos formes que circulan por
la sangre. (18-28-30) '
Serie eritrocitaria.
ftteeritroblasto: Célula más primitiva de la serie, similar a los blastos. El citoplasma
se tiñe de azul claro que a medida que madura va tomando un tinte rojizo superpuesto
que le confiere un color añil oscuro, semejante al de los plasmocitos. Su tamaño es de
alrededor de 15 a 20 mieras de diámetro y el núcleo ocupa la mayor parte, su
cromatina es fina, reticular o en punteado, pueden verse nucléolos.
4
Eritroblasto basófilo: Es más pequeño que el anterior, y su núcleo ocupa,
pFoporcionalmente menos espacio. Su cromatina es más tosca y no se observan
nucléolos. Su citoplasma es intensamente basófilo, se observa frecuentemente un halo
perinuclear claro.
'
Eritroblasto policromático: Son más pequeños que los eritroblastos y con una
mayor reducción proporcional del núcleo. La cromatina n u cl^r es gruesa e
irregularmente condensada. En esta etapa el citoplasma va cambiando de azul intenso
a rosa grisáceo debido a la producción de la hemoglobina por lo que presenta la
policromasia característica.
Eritroblasto ortocromàtico: Su tamaño es ligeramente mayor que el del eriU*ocito
maduro. Su citoplasma es rojizo, con un ligero azul residual, su núcleo es pequeño,
con cromatina muy compacta o picnótica. En esta etapa será expulsado de la célula.
(37-38)
Reticulocito: Recién ha perdido el núcleo pero aun tiene un tinte azulado y es
ligeramente mayor de tamaño que el eritrocito maduro. Cuando se tifie con un
colorante supravital como el azul cresil, revelmi un retículo granulofilamentoso
(ribosomas y retículo endoplásmico).
Eritrocito: El eritrocito normal es un disco bicóncavo de 6 a 8 mieras de diámetro
por 2 de espesor. En el frotis teñido, se observan como corpúsculos circulares con
bordes neto y liso, ^esentan una palidez central, de aproximadamente un tercio de su
diámetro, dado que en esa zona son más delgados. (3-6-14-16-37-38)
Serie granulocitica.
Se les denomina granulocitos tanto a los precursores como a las formas
maduras de aquellos leucocitos derivados del mieloblastos y que en su proceso de
maduración producen gránulos meta cromáticos oscuros que aumentan en cmitidad, y
que mas tarde son remplazados por ^ánulos específicos, que difíeren en su afínidad
por los colorantes. Las células que muestran afinidad por el colorante azul (básico) se
denominan basófílos; las que se tiñen de rojo anaranjado (ácido) mediante la eosina,
acidófilos o eosinófílos. Las que no se tiñen intensamente con uno o con otro de estos
colortmtes son los neutrófílos. Los tres tipos de granulocitos experimentan las mismas
etapas de maduración.
Mieloblasto: Su diámebo es aproximadamente de IS a 20 mieras. Contiene una
moderada cantidad de citoplasma no granuloso de color azulado, que se tiñe
irregularmente y es más pálido en la periferia nuclear. El núcleo es redondo y se tiñe
predominantemente de rojo; la cromatina es delicada, bien definidas y uniformemente
teñida. Pueden observarse dos o más nucléolos.
Promielocito: El mieloblasto se convierte en promielocito, cuando forma gránulos
netamente visibles. Al inicio estos son oscuros y se tiñen predominantemente de a?ul
o morado. Estos son visibles cuando están situados por arriba o por debajo del núcleo,
que es más pálido y de tinte más rojizo. Los núcleos son redondos y relativamente
^ n d e s con fiecuencia se pueden ob^rvar nucléolos. El promielocito se convierte en
5
mielocito cuando los gránulos se diferencian de tal manera que pueden clasificarse
como basófilos, eosinofíios o neotrófilos. (2-32-39)
Neutrófilos.
Mielocito neutrófilo: El primer signo de diferenciación consiste en la aparición de un
pequedo conglomerado de gránulos rojizos adyacentes al núcleo, a medida que
madura van desapareciendo los gránulos oscuros y predominan los gránulos
neutrófilos. Es de menor tamaño que el promielocito con más citoplasma
relativamente. Los núcleos son ovales o achatados de un polo y excéntricos, su
cromatina es gruesa y no presentan nucléolos con un citoplasma ligeramente basófilo.
( 1- 2)
Metamielocitó neiitrófilo: Ligeramente más pequeños que los mielocitos, con un
núcleo hendido la cromatina es más precisa, citoplasma menos basófilo y presenta
gránulos azul rosado.
Neutrófilo en banda: A medida que maduran los metamielocitos, el núcleo se va
haciendo más cóncavo hasta ocupar más de la mitad del diámetro de un núcleo
redondo, el cual adopta forma de herradura. Los g i^ u lo s son pequeños distribuidos
uniformemente, de color rosado y azul, no presenta segmentación en el núcleo.
Neutrófilo segmentado: Éste se distingue del banda por los núcleos sepfientados en
lóbulos bien definidos, unidos por un filamento de cromatina. Su tamaño es
aproximadamente el doble al del eritrocito, el citoplasma presenta un tinte rosado
claro con abundantes gránulos pequeños regularmente distribuidos, con tintes de
rosado a azul oscuro. La mayoría de los neutrófilos tienen tres segmentos nucleares,
pero se pueden observar hasta cinco. La presencia de más de cinco lóbulos es anormal
(Pleocariocitos de Pittaluga). (1-2-21-32-39)
Eosinofilos: Se caracterizan por sus ^ n u lo s esféricos de grmi tamaño que tienen
afinidad por la cosina. Los eosinófilos Jóvenes tienen pocos gránulos de tintes rojizos,
que aparecen entre los gránulos oscuros, no específicos, de los promielocitos. A
medida que maduran van desapareciendo progresivamente los gránulos azul oscuro.
Debido a que la proporción de eosinófilos es baja, la separación rutinaria de los
eosinófilos en mielocito, metamielocito, en banda y segmentado, no tiene utilidad
clínica. Salvo en los casos excepcionales de Leucemia de eosinófilos ó Linfomas.
Los eosinófilos maduros tienen el mismo tamaño que el de los neutrófilos pero
con un núcleo bilobulado. Sus gránulos son esféricos grandes, de tamaño uniforme y
regulaimente dishribuidos, con un tinte rojo anaranjado. (2-35)
Basófilos: Estas células contienen núcleos redondos, en forma de haba, banda o
lobulado y también pasan por las mismas etapas de maduración que los neutrófilos.
Debido a su escaso número no se le da la importancia que tienen en los distintos
procesos patológicos, reconstrucción del campo de batalla de la defensa celular, en el
choque anafiláctico por la interacción de la histamina y la serotonina, que producen ai
degranularse estas células; sus gránulos son grandes y oscuros por lo que se pueden
observar por encima por debajo y a los lados del núcleo; están irreglamente
distribuidos por lo que varían en tamaño, forma y color. (16-21-29)
6
Señe linfocíticá
Liofoblastos: Sus características son similares a la de los demás blastos, es muy
difícil distinguir de los mieloblastos, en muchos casos, la identidad de la célula suele
admitirse por comparación con las células maduras que lo acompañan, su núcleo es
redondo y cromatina fina y se observan nucléolos; su citoplasma es basófilo y no
contiene gránulos.
Prplinfocito: Célula intermedia entre el linfoblasto y el linfocito maduro, su
cromafma es más fina que la del linfocito y méb espesa que la del linfoblasto. Se
puede llegar a observar nucléolos. El núcleo es relativamente más chico y su
citoplasma menos basófilo con respecto al linfoblasto.
Linfocito: Estos son de tamaño muy variable, los chicos son ligeramente más grandes
que los eritrocitos y los grandes son del tamaño de un monocito; existen también
linfocitos de tamaño mediano; lo normal es que predominen los pequeños.
Los linfocitos pequeños, son redondos con un núcleo relativamente grande,
que se tifien de manera intensa, su cromatina se observa en masas densas. Su
citoplasma es escaso tifiéndose de azul claro, a menudo se pueden observar en el
citoplasma algunos gránulos azurófílos inespecíficos.
En los linfocitos grandes, su núcleo es más pequeño relativamente y su
dishibución de la cromatina es menos gmesa, pero conglomerada. El núcleo puede ser
oval o mellado con un citoplasma abundante y puede contener algunos gránulos
azurófílos. (6-9-18-20)
Serie monocitica.
Monoblasto: De igual forma tiene características como los demás blastos, se puede
identificar con asociación de otros monocitos maduros que lo acompañan. Es una
célula de ^ n tamaño, de 15 a 20 mieras de diámetro, su contorno es irregular debido
a sus características amiboideas, su citoplasma es basófilo y pueden presenta
vacuolas. El núcleo puede mostrar alguna circunvolución o muesca, con cromatina
fina y se observan uno dos nucléolos irregulares.
Promonocito: Esta célula es difícil de distinpiir ya que su morfología es intermedia
entre un monoblasto y un monocito maduro propiamente dicho.
Monocito: Es la célula más grande en
sangre periférica, su tamaño es
aproximadamente de 15 a 20 mieras de diámetro, la forma es v a rille , muchos son
redondos u ovales, otros presentan sendópodos que indican un lento movimiento. Con
su citoplasma abundante de color azul pálido a gris, con aspecto de vidrio esmerilado.
Pueden tener gránulos ligeramente teñidos que a veces tienen vacuolas, su núcleo es
grande y levemente excéntrico, iiregular y con grandes muescas o en fornia de
herradura, por lo regular en forma de rifión, su cromatina se separa dejando espacios
visibles entre sus hebras, lo que hace la diferenciación con los linfocitos que tienen su
cromatina conglomerada. (9-16-18-33)
7
Serie plasmática.
Las células plasmáticas representan el 1% de las células nucleadas de la
médula ósea normal, pero no se deben enconfrar en sangre periférica de personas
sanas.
Plasmoblasto: Célula de gran tamaño con un núcleo redondo excéntpco y de color
rojo pálido, la cromatina es reticulada con uno o dos nucléolos voluminosos. Algo
muy característico de estas células es su citoplasma muy basófílo, sin gránulos y zona
yuxtanuclear (pálida) de un lado del núcleo.
Proplasmocito: Es una célula, en tr^siciones entre plasmoblasto y plasmocito;
dadas sus características intermedias no es fácil de distinguir.
Plasmocito: Su tamaño es variable entre 15 y 25 mieras ^roximadamente, de forma
redonda u ovalada, el citoplasma puede tener gránulos (cuetpos de Russel) y se tiñe
de azul fíierte con una zona clara perinuclear solo de un lado del núcleo, puede
presentar vacuolas; su núcleo es pequeño ovalado o redondo y excéntricos, su
cromatina es gruesa. Debido a sus características probablemente sea la célula más
fácil de reconocer. (9-25-30-31)
Serie m ^ c a rio c ític a .
Estas células son peculiares por que el núcleo pasa por distintas divisiones
mitóticas, sin segmentación correspondiente del citoplasma. Es así como se generan
células poliploides gigantes. Todos los núcleos de una célula presentan mitosis,
simultáneamente, forman 2,4 , 8,16 y hasta 32 núcleos, estos suelen quedar adheridos
unos con otros, o quedar supetpuestos quedando un aspecto lobulado. Por sü parte el
citoplasma presenta modifícaciones de maduración caracterizadas por la aparición de
gránulos y membranas, culminando con la diferenciación y liberación de plaquetas.
Megacarioblasto: Es una célula grande, de 20 a 30 mieras de diámetro, irregulares,
generalmente tienen un sólo núcleo ovalado o redondo, con cromatina laxa y varios
nucléolos. El citoplasma es azul, desprovisto de gránulos; puede tener sendópodos
con diversos tintes azulados.
Promegacariocito: Se l o ^ n distinguir por la presencia de gránulos azulados en el
citoplasma adyacente al núcleo. En esta fase el núcleo puede haberse dividido una o
más veces y tmnbién pudo haber aumentado de tamaño, fiecuentemente se observan
apéndices citoplásmicos azulados de bordes redondeados con aspectos esponjosos.
Megacariocito: Células grandes con citoplasma relativamente abundóte, de forma
redonda y múltiple núcleos. El retículo de la cromatina es filiforme y tosco, con
espacios bien marcados entre sus filamentos; su citoplasma contiene numerosos
gránulos pequeños distribuidos uniformemente, de color azul rojizo.
Metamegacariocito: Esta célula se caracteriza por la conglomeración del citoplasma
granuloso en masas separadas entre si por espacios relativamente pálidos que tienden
a conglomerarse en la periferia de la célula muchos de ellos ya tienen aspectos de
plaquetas. Ál madurar más se van a producir prolongaciones citoplásmicas de las que
8
se separan las plaquetas diferenciadas. Otra clasifícación de la maduración que se
efectúa en la acción de hematología del Hospital General de México es,
Megacarioblasto, Megacariocito Hialino, Megacariocito Granulosos, Resto de
Megacariocito.
Plaquetas: Estos son pequeños frum entos del citoplasma de los megacariocitos y
son las células de menor tamaño en la sangre periférica, ya que miden de 1 a 4
mieras. En el frotis se suelen hallar formas redondas, ovaladas, fusiformes y
discoides. El citoplasma es asail pálido y contiene un número variable de pequeños
gránulos, que tienden a aglomerarse en el centro (granulómero), que contosta con la
zona agrmiular (hialómeto). (21'16-37-38)
9
CAPÍTULO IL PIONEROS DE LA CITOMORFOLOGÍÁ
n. L Primeros Morfólogos
La patología científica de las enfermedades de la sangre, comenzó cuando
Malpighi descubrió en 1661 los capilares y glóbulos rojos de la sangre; y
Leeuwenhoek en 1673, con uno de los primeros microscopios, por él construido,
halló, los glóbulos rojos y los linfocitos de los ganglios linfáticos. En 1722 reunió en
un magnífico volumen sus observaciones. En él existe el primer dibujo de los
glóbulos rojos. (26)
R. Virchow, al fundar a mediados del siglo XIX, la patología celular,
descubrió la leucemia diferenciando con M. Schulte los pequeños linfocitos de los
grandes leucocitos y advirtiendo que no era igual la leucocitosis tóxica que la
leucemia. (13)
El interés creciente por el estudio del detalle celular, se dió a fines del siglo
XIX gracias a Paúl Ehrlich, con sus ingeniosos métodos de coloración de la sangre
que permitieron la primera clasificación de la extensa gama de células sanguíneas.
En 1880 introdujo los téiminos, acidófilo, neutrófilo y basófilo; ulteriormente,
el término eosinófilo sustituyó al termino acidófilo. Debido a las características del
núcleo dividió a las células sanguíneas, en linfocitos, mononucleares grandes de
núcleo dentado (con muesca) llamados monochos tiempo después, y células con
núcleo polimorfo con gránulos neutrofflicos, acidofílicos y bosofilicos. En 1891
describe un método para fijar los extendidos de sangre sobre vidrio y la manera de
teñirlos
En 1898 publicó un libro sobre anemias que era un resumen de sus estudios
acerca de la morfología normal y patológica, de las células sanguíneas y de la
interpretación a la leucopenia y leucocitosis. A el se debe el concepto de anemia
aplásica asociada a leucopenia, que describió en 1888.
Con las aportaciones de Ehrlich el impacto de la morfología sobre las ciencias
que estudimi la sangre fiie decisivo con esto se desarrolló la clínica hematológica,
apoyada con el diagnóstico morfológico y se pudieron plantear tratamientos dirigidos
a células enfermas. Tenía el concepto de que las células tommi sustancias del entorno
basado en sus observaciones de lo que ocurría al agregarles un colorante. Gracias a
esa ida se propuso encontrar medicamentos que penetrarmi a las células y tuvieran
efecto directamente, con lo que se convirtió no sólo en el padre de la Morfología si no
también de la Quimioterapia y a la postre de la Inmimológia gracias a los estudios de
células granulares y los linfocitos como mecanismos de defensa, así como del suero y
el plasma. Llya Metcnikoff (1845.1916) de origen ruso, describo la función
fagocítica de los leucocitos y compartió el Premio Nòbel con Ehrlich en 1908. (13)
Dos años después de la publicación de Ehrlich sobre Morfología. Otto Naegli
(1871-1948) describió al mieloblasto como el precursor de los granulocitos y al
linfobiasto como precursor de los linfocitos con lo que los clínicos, pudieron
diferenciar una enfermedad, la leucemia, con origen diverso.
10
Pronto se describieron detalles celulares indicadores de patologías; William
Henry Howell, del hospital Johns Hopkins, fue el primero en describir, en 1890, que
algunas partículas de los eritrocitos toman el mismo colorante que el núcleo, y Justin
Jolly (1870-1953) de Paris, describió los mismos cuerpos y concluyó que los
eritrocitos pierden el núcleo en una etapa de su evolución (cuerpos de Jowell-Jolly).
Por otra parte John Auer (1875-1948), de Rochester, también inmortalizó su nombre
cuando 1906 descubrió las inclusiones en el citoplasma de los mieloblastos, en un
enfermo admitido
el servicio de William Osler en el hospital Johns Hopkins. El
mismo año Wright demostraba que las plaquetas se originan en las células gigantes de
la médula ósea descritas desde 1869 por Bizzozero, y bautizadas como megacariocitos
por el propio W. H. Howell en 1890. Anatole Chaufifard (1855-1932) en Francia
describió los esferocitos en enfermos con ictericia congènita y Oskar Minkowzki
(1858-1931), ruso educado en Alemania confirmó y describió la fragilidad osmótica
de los eritrocitos. De aquí del nombre de la enfermedad de Minkowski-Chauffard.
(17)
A fines del siglo XIX y principios del siglo XX, la morfología y la citometria
de las células hematológicas se avía generalizado en Europa y aparecieron tratados
especializados sobre Hematología: George Harem (1841-1935), de Paris publico su
libro de 1,035 paginas en 1889 con varias imágenes en color. Fue el primero en usar
el termino plaqueta, acuñado por Bizzozero en 1882 y en contarlas, e hizo minuciosas
descripciones de la morfología normal y patológica de los eritrocitos. Pensaba que los
megacariocitos eran la fuente de los eritrocitos a través de las plaquetas, a las que
llamo hematoblastos. Clasificó a las anemias por el índice de coloración. Joseph
Ameth 1873-1955) de Munster, propuso otros métodos para contar las células, e hizo
descripciones detalladas sobre la lobulación de los núcleos de los granulositos, para
indicar el avance en la desviación a la derecha a partir de las formas jóvenes, a las que
dio mayor atención.
Otros de los libros trascendentales fiiel el del Austriaco Víctor Shilling (1883­
1960), profesor en Berlín, que popularizo la cuenta diferencial de los granulocitos e
introdujo el concepto de deviación a la izquierda Su tratado sobre el cuadro
hemático se tradujo al español en 1936.
'
Pronto la Morfología se difundió a Norteamérica, donde surgieron escuelas de
enseftaza en las que se destacaron Sir William Osler (1849-1919), George Minot
(1855-1950), George Wuipple (1878-1919), William Castle, Edwin Osgood (1899­
1969) y William Demeshek (1900-1969).
A esas escuelas acudieron varios mexicanos. Uno de los primeros morfólogos
de México fue Ignacio González Guzmán, que desarrollo su labor a partir de la
década de 1930 a i el Hospital General de México primero, y en el instituto nacional
de cardiología después. Junto con Ignacio Chávez fimdo la revista latinoamericana de
Hematología y Cardiología González Guzmán oriento su interés al estudio de la
morfología de los linfocitos y del núcleo. En el instituto de nutrición Dr. Subirán. La
Hematología clínica en México surge con la obra de Luís Sánchez Medal y Ernesto
Báez Villaseñor. Sánchez Medal marca el inicio de una clínica estrechamente
relacionada al laboratorio clínico.
11
En el hospital General de México, siguiendo la escuela del doctor González
Guzmán continua la investigación de citomorfologia hematológica el Dr. Luís
Sánchez Yllades y colaboradores, doctores, Virgmia Riego, Marcial García
González(+), José García Nieto (+) y Rodolfo Cruz Mejía Con ellos aparece la época
de oro de la morfología Mexicana (17)
II. 11. Tinciones.
Ehrlich fue el primero en utilizar colorantes simples de anilina y después con
colorantes ácidos básicos mezclados (colorantes neutros), logrando la coloración
triácida que es una mezcla de anaranjado G, fucsina àcida, y verde de metilo. (27)
El fundamento de Ehrlich para teñir las células, hemáticas era el conocimiento
de la estructura química del colorante, de la manera de que este pudiera interactuar
con los constituyentes celulares. Las anilinas fueron clasificadas como basófilas o
ácidofilas. Los radicales ácidos como la fucsina, saifanina y el café bismarck se
combinaron con los iones hidroxilo en el interior de las células y los colorantes
básicos como la eosina cenzalina y negrosina se combinaron con los iones hidrógeno.
(27)
En poco tiempo los descubrimientos de Ehrlich llamaron la atención y pronto
aparecieron variaciones sobre su idea y se desarrollan otros colorantes con mejores
características. Romanovsky (1861 1921), profesor de San Petersburgo, dio a conocer
su método en 1891, el cual mezclaba solución de azul de metilene vieja madura y por
lo tanto policromática, con eosina, disolviendo la muestra con alcohol metílico, éste
lograba teñir los núcleos celulares y los gránalos de las plaquetas.
Seguidos por los colorantes de Richard May (1863-1936) de Munich en 1902
(colorante de May-Gnmwald), Gustav Giemsa (1867-1948) de Hamburgo en 1905. El
colorante de Giemsa, remplaza a los policromáticos empíricos por compuestos de
Azur (tiónina y sus derivados motilados) con eosina y azul de metilene. Este colorante
tiñe mal los glóbulos rojos y los gránalos neutrofilos, sin embargo, los gránalos
azurófilos (rojos) resaltan muy bien. Al juntar el Giemsa con los colorantes de Jenner
y May Grunwald, se efectúa la tinción panóptica, que consiste en combinar un
colorante de Romanowsky con algún otro mejorando la coloración de los gránalos
citoplásmicos etc. Y finalmente el método del patólogo. James Homer Wright (1869­
1938), de Boston, en 1906. Después de más de un siglo estos dos últimos métodos son
los que se han empleado con mayor fi-ecuencia. (23)
12
CAPITULO m . LA BIOMETRIA HEMATICA.
III. I. Definición.
Es el estudio cuantitativo y cualitativo de los elementos fígvirados de la sangre,
comprende la numeración de los hematíes, leucocitos, y plaquetas y la clasificación
porcentual de los diferentes tipos Leucocitarios y para su estudio se divide en tres
parámetros;
a) Parámetro eritrocitario.
b) Parámetro leucocitario.
c) Parámetro plaquetario.
Este estudio se a venido realizando desde hace mas de un siglo, siendo un
actualmente un estudio básico en la investigación clínica debido a la importancia de
sus resultados ya que estos son de gran apoyo para el medico respecto al diagnostico
evolución y pronóstico de diferentes entidades patológicas. (28)
III. II. Parámetro Eritrocitario.
A) Hemoglobina.
La hemoglobina es proteína formada normalmente de dos cadenas alfa y dos
beta que albergan a su ves cuatro moléculas de fierro, cuando estas cadenas de
aminoácidos son cambiadas, nos proporcionas las llamadas hemoglobinopatias. Este
pigmento cumple con la función de oxigenar todo los tejidos.
La determinación de la Hemoglobina en el laboratorio se realiza de manera
experimental, esto quiere decir que no se calcula apartir de otros valores, si no que se
determina utilizando métodos colorimétricos o espectrofotometricos bien definidos.
En el mas conocidos de estos, todas las especies moleculares de la Hemoglobina (que
tiene diferoites espectros de absorción), se convierte en una solo especie molecular, la
cianometahemoglobina; la determinación se realiza haciendo lecturas en el
espectrofotómetro, gaieralmente a 540 nm. Los valora normales varían desde 12 a
18 y se mide en gramos/decilitro cabe mencionar que estos varían, con respecto a, la
altura a nivel del mar, sexo y edad, si el resultado cae por deb^o de estos rangos estos
pacientes tienen anemia y con los índices eritrocitarios se clasifican; cuando aumenta
se detecta hemoconcentracion o poliglobulia (6)
B) Hematócrito.
La población del volumen sanguíneo que ocupan los eritrocitos, puede
determinarse, mediante una centrifugación, capaz de amontonar a los hematíes en el
menor volumen posible. Este parámetro se expresa en forma de porcentaje. El
volumen de plasma que queda entre la masa globular empaquetada suele ser de 1 a
4%. Para medir el hematócrito, es preciso añadir una sustancia anticoagulante, para
que no se modifique el volumen de los eritrocitos. Los valores oscilan entre 42 a 52
mm3. (37)
C) Recuento eritrocitario.
De la muestra obtenida de sangre se debe asegurar que este bien mezclada,
después diluirla lo suficiente para poder contar cifras legibles, utilizando un líquido de
dilución isotónico (Hayen), que permita además, identificarlos adecuadamaite,
impidiendo la aglutinación, hemólisis y la destrucción de otros elementos que
13
pudieran interferir en el recuento que se realiza en la cámara de Neubauer, cuya
capacidad es conocida Valores de referencia de 4.7 a 6.1 millones al igual que la
Hemoglobina varían con respecto a la altura sobre el nivel del mar, sexo, edad. (16)
D) índices Eritrocitarios.
Estos dependiendo a los resultados no sirven para clasificar las anemias:
a) Microcitica hipocromica
b) Normocitica normocromica
c) Macrocitica normocromica.
d) Macrocitica hipocromica
Se calculan manualmente con las siguientes formulas.
Volumen Globular Medio.
Es el volumen promedio de los eritrocitos individuales, este estudio se reporta
en femtolitros o mieras cúbicas, los valores de referencia van de 80 a 94 fl. así.
VGM
Hematocrito (%) x 10_
# de eritrocitos/mm3
(Expresado a i millones)
Hemoglobina globular media.
Es el contenido en peso de la Hemoglobina por cada eritrocito individual
promedio este índice se expresa en picogramos o micro gammas los valores de
referencia son de 27 a 31 pg.
,
HGM
Hemoglobina (g/dP x 10
# de eritrocitos expresado en millón
Concentración media de hemoglobina globular.
Es la concentración promedio de Hb por cada 100/ml de eritrocitos, esto
significa la cantidad de Hb que tienen los eritrocitos en relación con su volumen y se
expresan en gramos de Hb por 100 mi de eritrocitos. Los valores de referencia van
desde 33.0 a 37.0 g/dl. (11)
CMHG
Hemoglobina (g/dll x 100_
Hematocrito %
E) Velocidad de sedimentación globular.
Este es im estudio que sirve como dato o signo clínico, que es de gran
importancia por que si todos los demás parámetros están normales y este esta
acelerado el médico tiene la obligación de investigar. Esto quiere decir que pueden
estar alteradas las proteínas del plasma, el fibrinogeno y las inmunoglobulinas,
también por im cambio de la densidad del plasma o bien por aglutinación de los
eritrocitos. Este análisis consiste en colocar en un tubo de Wintrobe, la sangre con
anticoagulante aforar a cero, dejar reposar por una hora, y leer la sedimentación de lo
que œ el paquete celular. Valores de referencia Hombres de 0 a al 0 y Mujeres de 0 a
20 mm cúbicos, según Wintrobe. Existen otros métodos. (28)
14
F) Observación microscópica del extendido sanguíneo.
En la observación al microscopio, en lo que respecta al hematíe podemos
clasificar forma, tamaño, características tintoriales e inclusive las inclusiones,
conociendo las características normales del eritrocito para p o d a hacer comentarios en
caso de una anormalidad por una posible patología.
Anisocitisis, hipocromia y poiquilocitosis.
Lo que es un frótis o bien el extendido sanguíneo, es el comienzo del camino
para lograr una buena observación microscópica, tiene gran importancia ya que
proporciona valiosa información morfológica En un frotis podemos evaluar lo
siguiente.
a) Morfología celular, (eritrocitos, leucocitos y plaquetas).
b) Distribución y agrupación celular.
c) Concentración de hemoglobina
d) Si existe artificios en las células.
La técnica más usada es la del fi"otis longitudinal. Consiste en poner una gota
de sangre en extremo del portaobjetos, el cual esta en posición horizontal en la mesa
de trabajo. Con otro portaobjetos de modo que forme xm ángulo de aproximado de 45°
el frotis extensor se coloca sobre el otro, de modo que quede debíyo la sangre
arrastrándola hacia atrás. El portaobjetos extensor se mueve rápida y uniformemente,
en dirección opuesta mantenido el ángulo y el contacto entre ambos portaobjetos
formando el extendido, ^ ta técnica proporciona una parte gruesa y una delgada, que
sirve para checar bien la distribución de las células, después se procede a teñir para
poder pasar a observación. (16-38)
Existen varias técnicas de tinción pero las más usadas son la Wright y MayGreenwald-Giemsa.
La técnica de tinción de Wrigth le da un color rojo pálido o rosado a los
glóbulos rojos. La tinción May-Greenwald-Giemsa, tiñe los eritrocitos de color
rosado.
Morfología normal del eritrocito.
Forma. El eritrocito tiene forma de disco bicóncavo; es por eso que tiene una
porción pálida al centro cuando se observa al microscopio.
Tamaño. Este mide aproximadamente de 7 a 9 mieras dé diámetro por 2 a 3 de
espesor, con estas dimensiones el volumai medio es de alrededor de 84 a 103 mieras
cúbicas
•
Características tintoriales. El eritrocito adquiere un color rosa pálido o beige,
dependiendo de la tinción, y el centro del hematíe presenta una palidez que no debe
exceder a 1/3 del diámetro para que sea normocromico.
Inclusiones. Los hematíes no deben de tener inclusiones, la única inclusión
normal seria cuando observamos reticulocitos con la tinción supravital.
Como ya se sabe existen patologías que causan alteraciones de los eritrocitos
tanto de forma, tamaño y en las características tintoriales.
15
Anormalidades en la forma.
Crenocitos o acantocitos. Eritrocitos irregularmente especulados, con proyecciones
espinosas que varían en tamaño forma y posición, refleja anormalidades estructurales
en sus membranas. Se observan en acantocitosis hereditaria, en la cirrosis hepática,
alcoholismo, mala absorción intestinal.
Esferocitos. Son eritrocitos con im diámetro inferior de 6 mieras con forma esférica
perdiendo su pahdez central con un contenido denso de hemoglobina, con un tinte
más oscuro al normal. Se observan en la esferocitosis hereditaria
Esquizocitos. Células fi-agmentadas, con dos o tres extremidades puntiagudas, parecen
pequeños fi^agmentos. Se observan en las anemias hemolíticas microangjopaíicas,
coagulación intavascular diseminada, quemaduras, hemoglobinuria de las marchas,
prótesis valvulares cardiacas.
Queratocitos. Presentan una más especulas y conserva y conserva el volumen celular
normal, esta tiene forma de cuernos debido a que se rompe cerca una vacuola y la
produce esta forma Se observan en la coagulación intravascular prótesis valvulares.
Estomaíocitos. Se caracteriza por una palidez central que sugiere una forma de boca
lo que nos dice qué es esférica de un lado y cóncava en el otro. Se observan en la
estomatocitosis hereditaria, alcohoüsmo, y en cirrosis hepática
Eliptocitos. Son células elongadas, con forma elíptica y distribución homogénea de la
hemoglobina Se observan en eliptosis hereditarias.
Ovalcitos. Tienen forma oval los eritrocitos, de mayor tamaño con variaciones desde
una ligera forma elipsoides hasta forma extremas de lápiz, en estos, la hemoglobina
aparece condensada en los extremos de la célula Se observan en las anemias
megaloblasticas y en las talasemias.
Drepanocitos. Eritrocitos en forma de media luna que contienen hemoglobina S
polimerizada que le confiere formas extrañas, con extremos en punta. Se observan en
hamoglobinopatia S.
Dianocitos. Conocidos también como células en blanco de tiro, se caracterizan por
que la hemoglobina se dispone en anillos concéntricos, su característica es causada
por que tienen la membrana demasiado grande para su contenido de hemoglobina Se
observan en anemias hipocromicas, en talasemias en hemoglobinopatias S y C.
Dacriocitos. Son células elongadas de un lado con forma de lágrima Se observan en
mielofibrosis y en las talasemias.
Ánulocitos o Leptocitos. Estos contienen la hemoglobina en la periferia Se observan
en las talasemias y en la anemia ferropenica severa.
Poiquilocitos. Este término nos indica variación en la forma de los eritrocitos, sin que
predomine una forma en particular.
Anormalidades en el tamaño.
Macrocitos. Son eritrocitos de mayor tamaño al normal, más de 9 mieras de diámetro
y por lo tanto, su volumen es mayor a 103 mieras cúbicas. Se observa en anemias
megaloblasticas.
Microcitos. Estas células tienen menor tamaño al normal, con diámetro menor de 6
mieras y volumen menor a 84 mieras cúbicas. Se observan en las anemias
microciticas como en las talasemias y anemias ferropenicas.
Anisocitosis. Esto quiere decir presencia de eritrocitos de diversos tamaños sin que
predomine alguno. (3-16-37-38)
16
Anormalidades en la coloración.
Hipocromia La coloración en extendidos depende principalmente de la cantidad de
hemoglobina que existe en el interior de los eritrocitos, cuando esta cantidad
disminuye, aumenta la zona de palidez central a mas de 1/3 de diámetro, se dice que
hay hipocromia Se observa hipocromia generalmente asociada a microcitosis en la
deficiencia de hierro, y en las talasemias.
Basofilia difusa. Es el tinte basófilo de los eritrocitos en su ultima etapa de
maduración, que cuando se tiñe con colorantes supravitales, corresponden a
reticulocitos. (Poücromatofilia).
Anisocromia Este vocablo lo usamos para denotar la presencia de eritrocitos con
diferentes coloraciones, es decir, la presencia de eritrocitos normocromicos,
hipocromicos, y hasta basófilia difusa
Inclusiones.
Anillos de Cabot. Son filamentos anulares delgados, de color rojo violeta, que se
disponen en forma concéntrica ala membrana celular o adoptando la forma de ocho.
Se observan con frecuencia en anemias megaloblasticas y en el saturnismo.
Cuerpos de Howell-Jolly. Son pequdíos restos nucleares de aproximadamente 0.5
mieras de diámetro. Casi siempre es único. Se encuentran en pacientes
esplenectomizados, en anemias hemolíticas y megaloblasticas.
Cuerpos de Heinz-Herlich. Son pequeñas redondas o angulares, formadas por
hemoglobina desnaturalizada. (16-37-38)
G) RecuCTto de reticulocitos.
Los reticulocitos a diferencia de los eritrocitos, todavía poseen algunos
ribosomas distribuidos difusamente en su citoplasma Sin embargo la gran cantidad de
hemoglobina presente, que se tiñe con eosina impide visualizar la escasa basófilia
producida por los ribozomas. El colorante que se usa para poder a observarlos, es el
azul de cresil brillante, ño solo tiñen a los ribosomas si no los aglutinan para poder ser
más visibles, con el microscopio de luz.
Se hace un extendido de la mezcla de sangre con el azul de cresil brillante a
temperatura corporal y se lee al microscopio, se distingue como eritrocitos con pimtos
de color azul. Se cuentan 500 células y en estas, cuantos reticulocitos se observaron se
multiplica por dos para que sean 1000 células y sacar porcentaje. Cifras de referencia
de 0.5 a 1.5 %, de 25 000 a 75 000 x mm3.
Cabe maicionar que son un buai indicador de la magnitud de la eritropoyesis.
(16-37-38)
IIL 111. Parámetro Leucocitario.
A) Recuento de leucocitos. (Técnica manual)
Se hace una dilución 1:20 utilizando un solvente hipotónico que sea capaz de
destruir a los hematíes esto para evitar la interferencia en el recuento, este es el
liquido de Turek, que contiene violeta de Genciana para poder ser visibles y
contarlos en la cámara de Neubauer cuya capacidad es conocida. Cabe mencionar,
que se cuenta en los cuatro cuadrantes de los extremos de la cámara. El conteo se
reporta como numero de leucocitos por mm3 de sangre. Se utiliza una pipeta de
toma Los valores de referencia oscilan entre 5000 a 10,000 leu/mm3. (16)
17
Cuando se encuentra cifras por arriba de los valores normales se le denomina
leucocitosis y por deb^o de los valores leucopenia.
B) Recuento diferencial de leucocitos.
Método actual en la sección de Hematología en el Hospital General México.
Este análisis se realiza en un frotis teñido, se empieza a clasificar y contar las
células con respecto a su morfología. Podemos encontrar en sangre periférica
neutrofilos, línfocitos, monocitos, eosinofilos y basofilos, se pueden encontrar células
inmaduras o progenituras, esto es indicativo de un desequilibrio en la hematopoyesis
o procedimiento anormal.
Teniendo una referencia del conteo de leucocitos, anteriormente hecha, se
empieza a contar, mínimo 100 células en leucopenias de 3000x mm3 para abajo,
arriba de 3000 x mm3 se cuantifican 200 células mínimo y más de 20,000 x mm3 se
observan o cuentan 500 células todo esto para tener mayor especificidad en la lectura.
Se anotan cuantos neutrófilos, linfocitos, monocitos, eosinofilos y basofilos, estos
resultados se dan en por ciento.
El neutrófilo segmentado es una célula, cuyo núcleo esta separado en lóbulos
bien definidos, que permanecen unidos por un fino filamento de cromatina, su tamaño
es aproximadamente el doble al de un eritrocito, el citoplasma tiene un color rosado
claro con abundante gránulos pequeños distribuidos uniformemente, con tinte de
rosado a azul oscuro. Valores normales 60 a 70% y cifras absolutas 3000 a 7000 mm3.
El linfocito este es de tamaño muy variable hay pequeños que son un poco mas
grandes que los eritrocitos, y los grandes son del tamaño de los monocitos y hay de
tamaños intermedios. Los linfocitos pequeños son redondos y tienen un núcleo
relativamente grande que se tiñe de manera intensa, el citoplasma es escaso y se tiñe
de color azul pálido y se pualen observar algunos gránulos azurofilos. En lo linfocitos
grandes, el núcleo es relativamente más p eq u ^o y la distribución de la cromatina es
menos gruesa, citoplasma abundante y pueden tener algunos gránulos azurofilos.
Valores normales 20 a 30% y absolutos 1000 a 3000 por mm3.
Los eosinofilos, tienen aproximadamente el mismo tamaño que los neutrófilos
y generalmente presentan un núcleo bilobulado, sus gránulos son esféricos, grandes,
de tamaño uniforme y regularmente distribuidos, con un tinte rojo anaranjado y son
birrefiingentes. Valores normales de 1 a 3% y absolutas 100 a 300 por mm3.
Los basófilos tienen núcleos redondos, en forma de haba, banda o lóbulos. Los
gránulos de los basofilos son oscuros y grandes, por lo que se pueden observar por
encima, por debajo y a los lados del núcleo. Están irregularmente distribuidos y varían
en tamaño forma y color. Valores normales de 0 a 1% absolutas de 0 a 100 por mm3.
El monocito es la célula mas grande en sangre periférica, su forma es variable
unos son ovales o redondos, existen monocitos mieloides, histioides, el monocito
mieloide sufre cambios morfológicos, por estimulo de linfocinas para obtener función
fagocítica y convertirse en monocito reticular. El citoplasma es abundante, de color
azul gris pálido, puede tener gránulos pequdios levemente teñidos que con frecuencia
tienen vacuolas. El núcleo es grande ligeramente excéntrico, irregidar, en forma de
herradura, por lo regular reniforme. Lina característica distintiva es la presencia de
18
lóbulos superpuestos que dan al núcleo unos aspectos de circunvoluciones cerebrales.
Valores normales de 6% a 8% y absolutos de 300 a 800 por m\. (16-38)
III. IV. Parámetro Plaquetario.
Este estudio nos permite saber la cantidad de plaquetas a sí comò la
morfología que nos puede orientar hacia un problema genético u otra patología, o bien
cuantitativamente clasificarlas en trombocitopenias, cuando están disminuidas o
trombocitosis si se encuentra elevadas.
Las plaquetas son los elementos formes más pequeños de la sangre con un
diàmetro de alrededor de 2 a 4 mieras. Para contar su número por mm3 de sangre, se
hace una dilución con una sustancia que destruya a los eritrocitos para permitir su
cuenta en la cámara de Neubauer. (10)
Recuento de plaquetas.
En una pipeta de toma se aspira diluyente con sangre se agita en el agitador
electrónico, se pone en una cámara de humedad, por 10 minutos y se lee en cámara
Neubauer en la parte donde se cuentan los glóbulos rojos, los valores normales van de
200,000 a 400,000 por mi
La biometria hemática y todos sus parámetros son el comienzo de un buen
diagnóstico en las enfermedades hematológicas, es tan importante que se ha tenido
que recurrir al uso de la automatización, esto es crear aparatos que facilitan todos
estos análisis y que mejoren el tiempo a i la entrega de resultados.(lO-ll)
19
CAPITULO IV AUTOMATIZACION
IV. I. Introducción.
El exámen numérico de los leucocitos, eritrocitos y plaquetas en la sangre
penférica, ha sido fimdamental en la hematología Antiguamente el recuento de los
entrocitos no se realizaba como un procedimiento corriaite, debido a las limitaciones
técnicas, sin embargo, el reciente desarrollo de los contadores celulares electrónicos a
renovado el interés hacia él mismo, a pesar de que el margen de error sigue siendo
elevado.
En el transcurso de los años, se ha experimentado im aumento progresivo de
los análisis de rutina llevados acabo por los laboratorios clínicos. Los problemas
prácticos que ellos ocasionaban, han producido un gran auge a las técnicas
automáticas.
Estos equipos automatizados son bastante costosos; sin embargo, el gran
rendimiento tiende a mermar este costo total, además, los análisis así obtenidos
demuestran una disminución de los errores técnicos accidentales, aumentando la
calidad de los resultados. (5)
La mayor parte de los análisis realizados en los laboratorios hematológicos son
la concentración de hemoglobina, hematocrito, recuento de leucocitos y la valoración
cualitativa y cuantitativa del frotis ya teñido, y con menor frecuencia el recuento de
glóbulos rojos, reticulocitos, plaquetas y una serie de índices que se derivan de los
hematíes. De estas pruebas sólo la hemoglobina y el hematocrito pueden realizarse
mediante técnicas manuales de forma simple y rápida Por el contrario, los recuentos
celulares son lentos y pesados llevando todo ello a un grado de precisión bastante
bajo. Un estudio demostró que el recuento manual de hematíes mostraba un
coeficiente de variación de 8.2%, si el trabajo era mucho podía aumentar de un 15% a
un 20% lo mismo en recuento de plaquetas. (4-8)
Por estas razones se vió la necesidad de crear aparatos automatizados que
disminuyeran tanto el coeficiente de variación como el tiempo en los estudios que son
de gabinete en un laboratorio.
Es así, como surge la automatización, debido a la dificultad para clasificar a
las células morfológicamente.
.
IV. II. Principio Coidter.
En el año de 1956 W. Coulter inventó el primer contador automático de
células sanguíneas, este señor describió su método. El instrumento emplea un sistema
de medición no óptico, el cual provee un rango que excede las 6000 células
individuales por segundo con im intervalo de conteo de 15 segundos. (19)
En el sistema Coulter, una suspensión de células sanguíneas contenidas en un
determinado volumen de un medio electrolítico, fluye a través de un pequeño
orificio, se aplica una corriente eléctrica entre dos electrodos de platino situados a
ambos lados de la abertura. Figura 1 y 2.
20
Dado que cada célula se comporta como un elemento relativamente no
conductor hay un descenso pasajero de la conductancia que corresponde con el paso
de cada glóbulo por el orificio. Como resultado se produce una serie de pulsaciones
que pueden contarse electrónicamente.
La magnitud de cada pulsación es proporcional al volumen de electrolitos
desplazado.(10-24)^El promedio electrónico de la altura de estas pulsaciones se ha
empleado como medida directa del volumen corpuscular medio de los hematíes. (24)
Coulter Principle
"External electrode
Conductive diluent ~
Internal electrode '
Figura (1).
Los eritrocitos se cuentan en un medio isotónico que contiene, tanto glóbulos
rojos como blancos. Puesto que el número de eritrocitos excede al de los leucocitos,
con factor aproximado de 500 ó mas el error en el recuento de los hematíes debido ala
presencia de leucocitos es despreciable. Éste se hace progresivamente mayor cuando
el número de leucocitos es mayor 50000/mm3. El recuento leucocitario se hace
después de lisar a los hematíes con un agente tensioactivo.
El recuento de plaquetas puede efectuarse con el plasma sobrante una vez
separados los hematíes por sedimentación espontánea. (12)
PRINCIPIO DE IMPEDANCIA (P R IN a P IO COULTER)
Electrodos
Apertura
F ig u ra (2).
21
Coulter modelo S. es un aparato más perfeccionado, permite simultáneamente
medir, calcular, imprimir los resultados obtenidos de la concentración de
hemoglobina, hematocrito, recuento de eritrocitos y leucocitos, volumen corpuscular
medio, concentración de la hemoglobina corpuscular media. La hemoglobina se mide
colorimetricamente en forma de cianometahemoglobina.
Dicho aparato realiza directamente el recuento de leucocitos y de hematíes,
mide el volumen corpuscular medio y concentración de la hemoglobina. Los otros
resultados se deducen automáticamente.
Los recuentos de glóbulos rojos y blancos se realizan por triplicado,
comparándose el resultado, rechazándose automáticamente los datos de uno o de
todos los canales si dan grandes variaciones, haciéndose luego el promedio. Cave
advertir que el valor del hematocrito se deduce de la multiplicación electrónica del
recuento de hematíes y de la determinación del volumen corpuscular medio.
Este sistema es actualmente el método de referencia para el recuento de células
y es usado por todos los fabricantes de contadores celulares. (12)
IV. m . Diferenciación de Eritrocitos Leucocitos y Plaquetas.
Los sistemas Coulter poseen dos baños, uno de eritrocitos y otro de
leucocitos, en el baño de eritrocitos se encuentra una apertura de 50 mm y en el de los
leucocitos otra de 100 mm.
En cada apertura se realizan tres recuentos de cuatro segundos y se obtiene el
promedio en el caso del GEN-S, el cual posee tres aperturas de eritrocitos y tres de
leucocitos por lo que la lectura solo dura cuatro segundos y se obtiene el promedio de
las tres aperturas.
En el baño de los eritrocitos, el sistema identifica a éstos como aquellas
partículas que poseen im volumen igual o mayor que 36 fl, en este mismo baño se
realiza el recuento de las plaquetas las cuales tienen im volumen entre 2 y 20 fl. En los
contadores Coulter si existe un recuento pequeño de plaquetas, el tiempo de recuento
se extiende a cuatro segundos más, afín de tener un mayor valor estadístico. (15)
En el baño de los leucocitos posterior a la dilución con el diluyente isotónico,
se aplica agente lisante, el cual destruye la membrana citoplásmica del erifrocito y el
leucocito, permaneciendo los núcleos intactos.
Es así que las partículas 35 fl o más serán contadas como leucocitos. Los
núcleos de los eritroblastos, si existiesen serían contados, por lo que si el instrumento
señala sospecha de su presencia, se deben buscar en el frotis, y de tener un número
considerable, se debe corregir el recuento de leucocitos.
Posteriormente, en el recuento de leucocitos y utilizando la reacción química
del Usante con la hemoglobina libre en la mezcla, se mide un complejo químico
estable 525nm, el cual dependiendo del instrumento, puede ser realizado en el mismo
baño.(15-35)
22
Recuento de Plaquetas.
Si el recuento en el tiempo predefinido que es de cuatro segundos es muy
bajo, el analizador cuenta por otros cuatro segimdos más. Como comprobación y a fin
de detectar posibles acumulas plaquetarios, estos aparatos utilizan el método de los
cuadrados menores y ajustan la curva de distribución y se verifica que la curva sea
positiva, que la moda de los tamaños de las plaquetas este entre 3 y 15 fl y el ancho de
distribución plaquetária sea de menos de 20%, si alguno de estos criterios no se
cumple, informa una alarma. (35)
IV. IV. Histogramas.
El analizador mantiene una estadística de los volúmenes celulares y luego
realiza una distribución de cantidad relativa versus volumen de estas tres poblaciones,
dicha separación de volúmenes se hace con una resolución de 256 canales para cada
parámetro. (7)
HISTOGRAMA DE ERITROCITOS
Figura (3).
Este histograma muestra el tamaño original de los eritrocitos y de cualquier partícula
en la escala de tamaño de los glóbulos rojos.
Los histogramas de eritrocitos normales tienen dos poblaciones de células.
L- La población principal de eritrocitos comienza sobre 50 fl y termina sobre los 110
fl y tiene una distribución Gausiana.
2.- La población más pequeña llamada dedo, hace el pico aproximadamente entre los
130 y 185 fl a la derecha de la población principal. Estos dedos representan dobles y
triples aglutinaciones, artefactos en la apertura y células blancas estas células son
normalmente insignificmites en número. Figura 3.
23
El ADE (RDW).
Este es él índice de variabilidad en el tamaño de los eritrocitos. En una
población normal esta variabilidad es proyectada en una curva de distribución
estrecha sus rangos de referencia van desde 11.5 a 14.5 y se da en porcentaje.
Generalmente, a medida que la variación del tamaño del eritrocito aumente, es
más probable la asimetría visible de 1 curva de distribución. Así tam bi^, como el
ancho de la curva de distribución se amplié. (19)
fflSTOGRAMA DE LEUCOCITOS.
El histograma de leucocitos no proyecta el tamaño nativo de las células, ya que
este se lleva acabo después de la hemólisis de eritrocitos y el colapso del citoplasma
del leucocito. El volumen final de cada leucocito es relativo al tamaño y forma del
núcleo y de la estructura (gránalos) del citoplasma.
Los linfocitos con su pequeño núcleo y citoplasma no granular son medidos
como la población mas pequeña. Los granulocitos cuyos gránalos impiden el colapso
citoplásmico, son medidos como los más grandes.
WBC Histogram and Count
Granulocyte
50
K)0
WBC
LYM%
MON%
GRN%
LYM#
MON#
GRN#
9.8
32,0
20.0
48.0
3.1
2.0
4.7
200
f^TTtdíters
Figura (4).
Los histogramas de leucocitos normales muestran tres categorías de células.
1.- Linfocitos.
.
Son la población mayor, con distribución Gaussiana. Comienzan
aproximadamente a los 35 fl, y el pico es aproximadamente la mitad entre 35 t
90 fl y entonces comienza a despegarse.
Típicamente incluye solamente linfocitos maduros pero también puede incluir
linfocitos atípicos u otros pequeños tipos de células variadas.
2. - Células mononucleares.
Están posicionadas entre la población de linfocitos que terminan en los 90 fl y
la población de granulocitos que comienza en los 160 fl. Son una población
menor con una apariencia plana la cual puede ser erróneamente discernida
como un valle entre dos poblaciones mayores.
24
Típicamente incluir solamente monocitos pero también puede incluir células
anormales, tales como blastos, prolinfocitos, promonocitos, promielocitos, y
mielocitos.
3.- Granulocitos.
Población mayor que comienza en aproximadamente 160 fl y finaliza cerca de
los 450 fl. Cubre una escala más amplia que los linfocitos. Por lo tanto. La
población de granulositos parece estar mas dispersa.
El pico de uña población normal de granulocitos es menor al de una de
linfocitos normales, aun cuando el por ciento de granulocitos es mayor.
Este incluye eosinófilos, bandas y neutrofílos segmentados pero también
puede incluir poblaciones de células inmaduras tales como los metamielocitos.
Figura 4. (7)
fflSTOGRAMA DE PLAQUETAS.
Normal Platelet Histogram
Pit
616.
rilPV 9.3
PDW 16.2
2
10
28
femtoliters
Figura (5).
El histograma de plaquetas normales contiene dos curvas una suavizada y una
ajustada.
Curva suavizada (extendiéndose de 2 a 20 fl). Esta representa las partículas reales
contadas durante el ciclo de detección.
Curva ajustada. (Extendiéndose de 0 a 70) pero proyectada de 0 a 20 fl. Esta línea es
trazada de los datos almacenados dentro de una área particular entre 2 y 20.
El vpm representa el tamaño promedio de las plaquetas. Figura 5. (7)
IV. V. Tecnología VCS.
Las siglas, que se encuentran en ingles significan. Volumen, Conductividad y
Luz iScatter este tipo de tecnología es la que actualmente es usada por todas las
marcas de contadores existentes.
25
Es por éste tipo de tecnología que él equipo es capaz de diferencia cada tipo de
célula ya que mide volumen, núcleo en caso de los leucocitos así como la
granulocidad de los mismos de aquí es donde se fimdamenta la clasificación o el
llamado diferencial en los equipos automatizados que hoy en día sirve de mucho para
encaminar el diagnóstico. Figura 6. (24)
TECNOLOGIA VCS
2. CewdMtarliy. AN tM eouency cfaeH»n « nefc wmty
prabeMherslniannMionancalaiKlnuelear^.aMh(emil stiuctm. OPKCrTYit derived bf «IfflinSrie the eel
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wWte cel eiaractertstics let eccurete CtossifiH tion.
Figura (6).
Volumen Celular o Tamaño:
Esta se calcula con el principio Coulter de impedancia, como se sabe las
células circulan en medio electrolítico y pasa atreves de un orificio, el cual está
situado en medio de dos electrodos, dado que la células no son relativamente
conductoras, hay un descenso pasajero de la conductancia que corresponde con el
paso de cada glóbulo por el orificio, esto produce pulsaciones que se cuentan
electrónicamente. La magnitud de cada pulsación es proporcional al volumen de
electrolitos desplazado.(8-19) El promedio electrónico de la altura de estas
pulsaciones se ha empleado como m ^ id a directa del VCM de los hematíes. Figura 7.
VOLURIE^ eELULáíS 0 WIAÑO
i
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J ^■
li z ..........
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♦ EL PRINCIPIO COULTER ES EMPLEADO
PARA ESTABLECER EL TAMAÑO DE LA
CELULA
F igura (7).
26
Conductividad o Radio Frecuencia:
Con este método podemos evaluar las estructuras internas de cada célula en
especial el tamaño del núcleo es una especie de ultrasonido que se le hace a las células
para ver su interior. Figura (11). (34)
MEDICION DE CARACTERISTICAS
INTERNAS
RADIO FRECUENCIA (RF)
La RF analiza las estructuras
internas usando mediciones
semejantes a un ultrasonido
Figura (8).
Luz Scatter (Medición De La Granulocidad):
MALS, (Multi Angle Light Scatter) estas son sus siglas en ingles. Por medio
de im haz de luz láser que pasa a través de le célula, permite medir las granulaciones
usando ángulos de dispersión, es así como diferencia a los leucocitos. Figura 9. (34)
MEDICION DE LA GRANULARIDAD
Multi-angle Light Scatter (MALS)
MALS mide la granularídad usando
ángulos de dispersión de 10 a 70
Laser
F igura (9).
27
Figura (10).
El equipo GENES, muestra en la pantalla de la computadora un citograma en
tercera dimensión que permite ver el acomodo de las células. Con respecto a la
absorbancia en el eje de las X y el volumen en el eje de las Y. Figura 11. (34)
ANALISIS TRIDIMENSIONAL
F igura (11).
28
ABSORVANCIA Y VOLUMEN.
ABSORBANCE
FIGURA (12). V
En este citograma se muestra la colocación normal de cada célula con respecto a su
absorbancia y su volumen. Figura 12
UBICACION DE LAS CELULAS ANORMALES
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
0.
Mono-Blastos
Mielo-Blastos
Granulocitos
inmaduros
Banda de Neutrofilos
Unfo-Blastos
Variantes de
Linfocitos
Over-Lysed
Lymphocytes
Eritrocitos nucleados
y Piaquetas
Piaquetas Gigantes
Hematozoarios
malarie etc.
Figura (13).
En este citograma se observan las posiciones de las células anormales o mejor dicho
inmaduras en caso de existir, además de que el equipo te manda alarmas. La
variabilidad en las formas de colonias es evidente a simple vista en estos casos. Figura
13. (34)
29
EQUIPOS CON TECNOLOGIA
ves
STKS
GEN-S
IV. VI. Limitaciones.
En este aparato aparecen errores en la medición del volumen corpuscular
medio y como consecuencia en el valor del hematócrito, cuando el recuento de
leucocitos es muy elevado. Frecuentemente este recuento es falsamente bajo, cuando
hay una linfocitosis acentuada, como en una leucemia linfocítica crónica, debido a la
fragilidad de los leucocitos leucémicos. (8)
30
CAPÍTULO V. DEMOSTRACIÓN DE LAS LBVUTAaONES DE LA
AUTOMATIZACIÓN RESPECTO A LA CITOMORFOLOGÍA
HEMATOLÓGICA BÁSICA.
V. L Introducción.
En el Hospital Genera! de México en la sección de Hematología del
laboratorio central, se ha establecido por el Dr. Cniz un programa convencional para
la observación microscópica y así poder ampliar las posibilidades diagnosticas,
mejorando la especificidad de los resultados en los tres parámehx>s, eritrocitario,
leucocitario y plaquetario. Este programa lo consideramos limitado debido a que no
hay químicos adiestrados en la Citomorfología Hematológica Básica y por lo tanto,
no se soporta la carga de trabajo en una Institución de concentración como lo es el
Hospital General de México.
V.
n. Casos Que Pasan a Observación Microscópica.
Parámetro eritrocitario.
1.
2.
3.
4.
Cuando los datos de la automatización nos indiquen poliglobuiia.
En anemias graves por de bajo de 8 gr. de hemoglobina.
Macrocitósis evidentes.
Alarma de presencia de eritroblastos.
Parám etro leucocitario.
1. Pancitopenias de consulta extema, ya que en ciertas patologías sabemos que
se presenta.
2. Neutrofilias de la sección de cirugía. Es necesaria la imagen de Schilling y de
Ameth.
3. Basófilias en general; debido a que el aumento de estas células y de su
degranulación, pueden provocar la muerte.
4. Cuadros leucemioide; esto quiere decir de 30,000 leucocitos x mna3, para
arriba sin llegar a clasificarse como algún tipo de leucemia.
5. Leucopenias ^ v e s por debajo de 2,000 leucocitos x mm3.
6. Por orientación de citograma o histograma alterado.
Parámetro plaquetario.
1. Trombocitopenia por debajo de 90 mil plaquetas x mm3.
2. Trombocitosis por arriba de 800 mil x mm3.
3. Cuando el equipo indique plaquetas gigíuites o aglutinación de las mismas.
31
V. E[L Casos Del Parámetro Eritrocitarío.
Intervalos De Referencia En Adultos.
Hombres.
M njer^.
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4.20
5.40
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12.0
16.0
KCY
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3^ . 0
47.0
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80-0
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90.0
100.0
■CM
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27.0
31.0
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33.0
37.0
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11.50 14.50
11.5
14.5
3
0
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pg
g /< iL
%
C aso# 1
Antomatización.
El equipo automatizado marca, una anemia normocitica normocromia que coincide
con el histograma, con el ADE elevado y el citograma difuso, sin proporcionar la
cuenta diferencial, las alarmas reportan anemia.
32
Observación microscópica.
Se observa frecuentes eritrocitos crenados, escasos en blanco de tiro, hipocromia
ligera, muy escasos esquizocitos y se corrobora la macrocitosis discreta. La
automatización no detecto los eritrocitos crenados ni la hipocromia.
Caso # 2.
Automatización.
Es un paciente masculino, de 78 años, con diagnóstico presuntivo de síndrome
anémico. El equipo indica una anemia macrocitica hipocromica, por que el VCM esta
aumentado, lo que coincide con el histograma desviado hacia la derecha y con ADE
aumentado, además de leucocitosis y trombocitopenia. En las alarmas marca,
eritrocitos micro>fragmentados y anemia.
Observación M icn^ópica.
«
m ■«
n»
O,
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Si
9»
En esta fotografía se corrobora la macrocitósis, la anisocitósis marcada y la
hipocromía indicada por el equipo automatizado, sin mencionar la presencia de
eritroblastos que filé en un 16% y policromasia mediana, observada evidentemente.
34
Caso #3.
Automatización.
El equipo nos indica una macrocit6sis evidente y ADE elevado, la macrocit6sis
coincide con el histograma desviado a la derecha. Las alarmas indican únicamente
macrocit6sis.
Observación Microscó ica.
35
En esta fotografía
automatización.
se observa los macrocitos, por lo que se le da crédito a la
Caso # 4.
Antomatización.
"'t ai:
Es un paciente de 76 años, con hipertensión arterial. Los datos de la automatización
nos indican leucocitosis ligera y anemia macrocitica, con cuentas e índices
incongruentes, el histograma coincide con la raacrocitósis. Las alarmas no dicen nada
respecto a los eritrocitos.
36
Se encontró franca aglutinación, de los eritrocitos, en los pocos hematíes aislados no
se observan macrocitos pero si ligera hipocromía, en estos casos el único dato al que
se le da crédito es a la hemoglobina, ya que los demás datos eritrocitarios son
incongruentes. Es necesario realizar el recuento de eritrocitos manualmente, un
microhematocrito y calcular con esto los índices eritrocitarios ya que por la
aglutinación de los eritrocitos, resultan aberrantes los datos de la automatización. Al
realizar los cálculos nos dio, VCM 87 fl, HCM 27 pg YCMHC 31.7 gr/dl.
CASOS#.
Automatización.
Este caso es de un paciente de 27 años con insuficiencia renal crónica. En los
resultados de la automatización, muestra una tendencia a la poliglobulia además de
una ligera macrocitosis que coincide con el histograma. La alarma del equipo
menciona eritrocitos nucleados, que se comprueba en el citograma con una imagen
celular alargada en la parte inferior.
37
Observación microscópica.
En la fotografía a) se observan linfocitos desprovistos de citoplasma y no eritroblastos
como marca el equipo, además vemos hipocromfa que no es marcada por el mismo.
En la fotografía b) se observa un linfocito desprovisto de citoplasma y otte con poco
citoplasma. Inferimos que el equipo confunde los linfocitos pequeños desprovistos de
citoplasma con eritroblastos.
38
CASO #6.
Automatización.
Este es un caso de un paciente de 29 afio s con Colecistitis Crónica. Los datos del
equipo nos indican, Anemia grave normocitica hipocromica, que coincide con el
histograma, ADE y una linfopenia mediana, sus alarmas dicen únicamente anemia.
Observación microscó ica.
•
39
En la fotografla se observan frecuentes eliptocitos, sin corroborar la hipocromía que
es orientada por la CMHC.
CASO # 7.
Automatización.
Este caso es de un paciente con un diagnóstico presuntivo de Anemia en estudio. El
aparato marca, eritropenia, una anemia grave microcitica hipocromica, que coincide
con el histograma desviado a la izquierda. Las alarmas nos indican, Anemia,
anisocitosis, hipocromía y microcitosis.
40
En la observación microscópica encongamos la presencia de eritroblastos en 12 % y
escasos eritrocitos crenados, que no fueron mencionados por la automatización y
pudimos comprobar lo que menciona las alarmas.
CASO # 8.
Automatización.
510-01
iOUl
510-01 C Va<XÍ(0AOO6SK)ft«ENTACÍ(M®5éífiS«fiJ7¡
510-14 Q RETlCUUOCtTOB
521-20 t_J C élulas L E.
510-09 O tuvett. tgM A Tozaw ip (su g tá m iM V
41
Paciente de 60 aftos con Insuficiencia Renal Crónica La automatización nos indica
una anemia normocitica normocromica, con un ADE elevado, no, nos proporciona la
cuenta diferencial. Las alarmas mencionan anisoscitosis.
42
En la fotografia, se observa frecuentes hematíes en blanco de tiro e hipocromía
evidente que la automatización no marca, anisocitósis ligera que si es marcada por el
equipo.
CASO # 9.
Automatización.
43
El casó es de un paciente con Insufíciencta Renal Crónica de 63 años de edad. El
resultado de la automatización, nos dice que hay una anemia grave normocitica
hipocromica y una anisocitosis ligera que coincide con el histograma. Las alarmas
únicamente nos dice anemia.
Observación microscópica.
En esta fotografía notamos ima anisochósis, hipocromía exü'ema, por la frecuencia de
anuiocitos y la automatización nos da una CMHC ligeramente baja y un ADE elevado
medianamente.
CASO # 10.
Automatización.
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44
Paciente de 61 años con colecistitis crónica. La automatización nos indica una anemia
macrocitica nonnocromica, con gran anisocitósis, que coincide con el histograma,
además de una leucocitosis mediana. Las alarmas nos dicen anemia, anisocitósis y
macrocitosis.
Observación microscópica.
• • •
o
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Se corrobora la anisocitósis y no la macrocitosis, pero si se observan frecuentes
esferocitos.
45
CASO # 11.
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Paciente de 25 años con Lupus Eritematoso Sistèmico. E1 equipo nos indica que hay
una anemia microcitica hipocromica, anisocitósis mediana lo que coincide con el
histograma ligeramente desviado a la izquierda. Además no, nos da la cuenta
diferencial. Las alarmas nos dicen hipocromía.
Observación microscópica.
En este caso únicamente la maquina no det«:ta los cuerpos de Howell Jolly que son
significativos de disfiinción esplénica.
46
Caso # 12.
Automatización.
En este caso el equipo automatizado da la hemoglobina dentro de los límites nonnales
por que es mujer, volumen corpuscular medio alto, que coincide con el histograma
desviado a la derecha
47
En estas fotografias
automatizado.
se corrobora
la macrocitósis
y se le da crédito
al equipo
Caso # 13.
Automatización.
48
Estas imágenes son de un caso de un paciente con IRC de 36 años, el resultado del
equipo automatizado nos indica una anemia hipocromica, que coincide con el
histograma de eritrocitos, las alarmas del equipo menciona, anemia e hipocromía.
Observación microscópica.
Se observan frecuentes eritrocitos crenados escasos eliptocitos y no se observa la
hipocromía que es reportada en el ^u ip o , que debería ser una hipocromía marcada
con respecto a los índices eritrocitarios que da el mismo
C aso# 14.
Automatización.
49
La automatización nos indica que hay una anemia grave nonnocitica normocromica,
con el histograma normal, ADE elevado. Las alarmas indican anemia y anisocitósis.
En la fotografía se observan escasos eliptocitos y escasos eritrocitos en blanco de tiro,
se corrobora la anemia grave por los espacios tan grandes entre los eritrocitos.
CASO #15.
Automatización.
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Este caso es de un paciente 56 años con diagnostico presuntivo STDB. E1 equipo
automatizado indica aumento de eritrocitos y del hematocrito, siendo muy baja la
hemoglobina con respecto a estos datos. Los índices eritrocitarios indican que no hay
anemia, pero si presencia de microcitosis e hipocromía que coinciden con el
histograma. Las alarmas son, anisocitósis, eritrocitosis e hipocromía.
Observación microscópica.
En esta fotografai, se corrobora la existencia de eritrocitosis con deficiencia de hierro
por lo que se le da crédito a la automatización.
CASO #16.
Automatización.
51
El equipo automatizado indica anemia microcitica hipocromica, que coincide con el
histograma desviado a la izquierda y con un ADE aumentado. Las alarmas nos dicen,
anemia, anisocitósis hipocromía, microcitosis y eritrocitos nucleados.
Observación microscópica.
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Se observa la microcitosis evidente y no se observa la anisocitósis marcada respecto
al resultado del ADE que dió el equipo. Se ratifica la presencia de eritroblastos.
52
V. IV. Casos Del Parám etro Leucocitario.
Intervalos De Referencia.
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XJ r ._____________
Valores de Referencia de la Imagen de A m eth: Un segmento nuclear 5, Dos seg
nuc 35, Tres seg. nuc. 41, Cuatro seg. nuc. 17 y Cinco o más seg. nuc. 2. (5-35-41-17­
2).
CASO # 1.
Automatización.
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R C T fC U tO C tT O S
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C £ iA it > s L e
t O -t t t f i I I f W V y i t T ii M B l t n T C « O A » t o ,t ii a i i
Paciente 68 años de edad con un diagnóstico presuntivo de colédocolitiasis. El equipo
no da la cuenta diferencial en el método primario y secundario, únicamente la
cantidad de leucocitos, nos marca en sus alarmas interferencia de leucocitos, con un
citograma difuso sin la localización de las zonas celulares.
53
Observación microscópica.
Se realiza la diferencial que nos da. Neu 83% 19.6 abs, Lin 5.5% 1.3 abs, Mon
10.0% 2.3 abs, Eos 1 .5 % 0 .3 ^ sy B as0 .0 % 0 .0 a b s. C onunSchillingdeM iel 1.5%
0.3, Meta 0.0% 0.0 abs. Banda 13.5% 3.1 abs y Segmentados 69.5% 16.4 abs,
corroborándose la leucocitosis a expensas de neutrofília, con alteraciones
degenerativas por la presencia de vacuolización y granulación patológica, alteraciones
regenerativas, debido a la presencia de mielocitos. Que no marca el equipo.
54
CASO# 2
Automatización.
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Paciente de 81 años con un diagnòstico presuntivo de LAPE, colocación de parche
Graham. Los a lo re s del equipo nos indican una anemia normocitica normocromica,
diferencial aparentemente bien. Las alarmas dicen interferencia de leucocitos.
Se efectúa la imagen Ameth 0-11-48-36-5 observándose una desviación a la derecha
y la presencia de escasos pleucariocitos de Pittaluga (polisegmentación de más de 5
segmentos).
55
En las fo to ^ fía s se observa la polisegmentación y el pleucariocito de Pittaluga que
no detecta el equipo automatizado.
CASO # 3.
Automatización.
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Paciente con diagnóstico de cáncer de próstata. El equipo muestra una anemia
normocitica hipocromica, un diferencial equilibrado (dentro de las ciñas nonnaies)
que coinciden con el histograma y el citograma, plaquetopénia. Las alarmas marcan
neutrófílos inmaduros, anisocitósis, eritrocitos nucleados y trombocitopenia.
56
En las fotografías se observan eritroblastos que si marca el equipo pero no la
presencia de monocitos vacuolados, ni la presencia de células plasmáticas. que son
indicativas de proceso viral, necrosis o alteración de las proteínas.
CASO # 4.
Automatización.
57
Paciente de 62 años de edad, con Ca. Hepatitis Metástasis. El equipo nos muestra una
anemia normocitica nonnocromica, un cuadro leucemioide, se considera así, cuando
el número de leucocitos es mayor a 30,000 x mm3, esta es a expensas de neutrofília y
monocitosis ligera, lo que coincide con el cito^’ama, el histograma no es congruente.
Las alarmas que da el equipo dicen, neutrófilos inmaduros 1 y 2 y neutrofília.
En las fotografías se observan vacuolización en sacabocado de algunos monocitos, se
corrobora la neutrofília, la monocitosis y la presencia de neutrófilos inmaduros que
marca el equipo. Recordemos que las vacuolas en sacabocado son sospecha de
malignidad, según el Dr. Cruz ya que se han encontrado en los distintos casos
oncológicos, aunque las células leucémicas con vacuolas en sacabocado fueron
mencionadas por Naegli en los procesos leucémicos.
C A SO # 5.
Automatización.
58
Paciente de 34 años de edad con diagnóstico de leucemia. El equipo marca una
leucocitosis extrema, a expensas de linfocitosis y monocitosis, lo que se demuestra
con el chograma además, se observan células desplazadas hacia arriba que es
signifícativo de inmadures. Las alarmas del equipo dicen, blastos de Ünfocitos,
monocitos, linfocitos variantes, linfocitosis y monocitósis
Al realizar la diferencial obtuvimos: Linfoblastos 93.5% 98.0 abs, Neu 3% 3.4 abs,
Lin 3.5% 3.6 abs. Mon 0.0% 0.0 abs. Eos 0.0% 0.0 abs. Bas 0.0% 0.0 abs. Se observó,
linfoblastos pequeños, algunos grandes y algunas sombras de Gumprech lo que
corrobora el proceso leucótico del sistema linfático. Biometria hemática que
corresponde a una leucemia linfoblástica L l, por el predominio de linfoblastos
pequeños. Se infiere que el equipo confunde linfoblastos grandes con monoblastos.
59
CASO #6.
Automatización.
Es el caso de un paciente de 36 años con un diagnóstico de artritis reumatoide. En el
diferencial se observa eosinopenia, lo que coincide con en el citograma, también se
observa un histograma normal. Las alarmas dicen blastos de linfocitos.
Se cuantificaron 200 células encontrando las siguientes cifras porcentuales y
absolutas, Neu 73% 3.1 abs, Un 18% 1.4 abs, Mon 8% 0.6 abs, Eos 0% 0.0 abs y
Bas 1% 0.05 abs. Se observaron monocitos con citoplasma vacuolado, escasos
linfocitos con vacuolas en su núcleo, lo que infiere que el aparato confunde las
vacuolas de los linfocitos con los nucléolos.
60
CASO#7.
Automatización.
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Paciente de 49 aftos de edad, con un diagnóstico presuntivo de probable linfoma. El
equipo marca una leucocitosis extrema, a expensas principalmente de monocitosis y
linfocitosis y de menor grado la leucocitosis neutrofila. La linfocitosis y la
monocitosis se corroboran en el citograma y no se observan células en la zona de los
neutrófilos. el histograma nos da una curva que rebasa el taInafto normal de los
61
leucocitos. Lás alarmas indican, monocitosis, blastos de linfocitos, monocitos y
neutrófilos, neutrófilos inmaduros 1 y 2 (mielocitos y metamielocitos) y neutrofilia.
Al realizar el diferencial se encontró lo siguiente: Linfoblastos 81% 153.4 abs,
Linfocitos 18% 34.0 abs, Monocitos 0.0% 0.0 abs y Neutrófilos 1% 1.8 abs. Se
observó predominio de linfoblastos grandes por lo que se considero como L2. Se
infiere que la automatización esta confundiendo, los linfoblastos grandes con los
monoblastos a demás de que no hay neutrófilos inmaduros comò marca el equipo.
CASO # 8.
Automatización.
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62
Paciente de 64 años. El equipo nos muestra una anemia microcitica hipocromica,
leucocitosis a expensas de neutrofília y linfocitosis, así como monocitosis ligera, lo
que concuerda con el histograma y el citograma. En las alarmas no dice nada respecto
a los leucocitos.
Al realizar la diferencial encontramos Eosinofilia y Basofilia, ya que existe un 4%
equivalente 516 basófilos x mm3 y un 4.5% de eosinófilos equivalentes a 576 x mm3.
Que no marcó el equipo.
CASO#9.
Automatización.
64
Este caso es de un paciente de 56 años de edad la orden no tiene el diagnóstico
presuntivo. El equipo automatizado nos dice anemia macrocitica hipocromica, no da
la diferencial solo marca la leucocitosis con un citograma difuso con poblaciones
celulares fuera de su zona, y el histograma muestra la presencia de algunas células
grandes.
Observación microscópica.
Se realizó la diferencial si ningún problema, clasificando 200 células y sacando el
porcentaje que fue el siguiente. Neu 75% 10.5 abs, Lin 19% 2.6 abs, Mon 6% 0.8,
Eos 0% 0.0 abs y Bas 0% 0.0 íd)s. Con una imagen Shilling de; Mielocitos 6% 0.8
abs, Metamielos 3% 0.4 abs. Bandas 6% 0.8 y N. Seg 60% 8.4 abs. Además de
monocitos vacuolados. Lo que se demuestra en las fotografías.
CASO # 10.
Automatización.
65
Paciente de 70 años de edad con un diagnóstico de cirrosis hepática. El equipo nos
indica la presencia de eosinofilia marcada, neutropenia discreta lo que se corrobora
con el histograma y citograma En las alarmas nos marca eosinofilia.
Observación microscópica.
Se observó la presencia de mielocitos (dato de alteración regenerativa) y vacuolas en
los eosinófilos (dato de alteración degenerativa) que no detecta la automatización.
CASO # 11.
Automatización.
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66
Paciente de 54 años de edad con insuficiencia renal crónica. El equipo muestra una
anemia normocitica normocromica y leucocitosis ligera con una discreta neutrofilia,
el citograma muestra una zona de linfocitos dividida con un histograma normal. Las
alarmas no dicen nada referente a leucocitos.
Observación microscópica.
67
En las fotografias se observó 3% de células plasmáticas equivalentes a 0.32 en cifras
abs y escasos plasmoblastos, que el equipo automatizado no detectó.
CASO # 12
Automatización.
El caso es de un paciente de 16 años con un síndrome febril en estudio. El equipo nos
indica una leucocitosis mediana, a expensas de linfocitosis y neutrofília, que coincide
con el citograma y el histograma. Las alarmas del equipo solo indican linfocitosis.
Observacién microscópica.
Al realizar la diferencial se encontró, una linfocitosis de 32.5 % (5,375 x mm3 cifras
absolutas) y no de 41.2 % (6,380 x mm3 cifras absolutas) como la da él equipo. Los
demás resultados son Neu 55% 8.5 abs, Mon 5.0 % 0.77 abs. Eos 0.5% 0.07 abs, Bas
0.5% 0.07 abs y Ban 6.5% 1.0 abs, se pasó a microscopía por el hecho de que varios
autores mencionan que las linfocitosis de 7000 x mm3 hacia arriba, se consideran
leucemia linfocitica crónica. Este caso no rebasó los 7,000 linfocitos pero sin embargo
se observaron algunas sombras de Gumprech, lo que hace pensar en una Leucemia
linfocitica crónica, por lo que se aconseja estudios complementarios, para ratificar o
rectificar el Diagnóstico.
CASO # 13.
Automatización.
M
Paciente de 63 años de edad con un diagnóstico de colelitiasis. La automatización nos
indica una anemia macrocitica, una leucocitosis extrema a expensas de linfocitosis,
neutrofilia y basofilia respectivamente, lo que coincide con el citograma, llama la
atención la zona de basófilos que desplaza hacia abajo a los linfocitos. El histograma
muestra células de mayor tamaño lo que es indicativo de inmadures. Las alannas
dicen, basofilia, leucocitosis, neutrófilos inmaduros l y 2 y basofilia.
Se realizó diferencial encontrándose, Neu 0.5% 0.9 abs, Lin 8.5% 15 .7 abs, Mon 0%
0.0 abs, Eos 1% 1.8 abs y Bas 0% 0.0 abs. Con un 90.5% 167.3 abs de linfoblastos,
frecuentes sombras de Gumprech y predominio de linfoblastos grandes, lo que es
indicativo de una Leucemia Linfoblástica L2, se le da crédito al equipo en cuanto a las
alannas menos en la basofilia y neutrofilia ya que no se encontró ninguna de estas
células.
70
CASO # 14.
Automatización.
Paciente con diagnóstico presuntivo de Diabetes Mellitus de 77 aftos de edad. El
equipo automatizado nos muestra una leucocitosis marcada a expensas de neutrofilia
evidente, monocitosis, eosinofilia y linfopenia ligera, lo que coincide con el citograma
y en el histograma se observan elementos más chicos por lo que marca interferencia
de leucocitos. Las alarmas son, interferencia de Leucocitos, Neutrófi]os inmaduros l
y 2, eosinofilia y aglutinación de plaquetas.
Observación microscó ica.
71
Se observó presencia de bandas con una imagen de Shillín de, Mielocitos 1% 0.2 abs,
Metamielos 1% 0.2 abs, Bandas 28% 6.49 abs y Segmentados de 56 % 12.99 abs. Con
un Amett 43-45-22-0-0, con una desviación a la izquierda lo que fortalece la imagen
de Schilling, datos que no menciona la automatización. Se corroboró la eosinofilia.
Este caso. presenta alteraciones regenerativas (presencia de mielocitos y
metamielocitos) y degenerativas (vacuolización de Neutrófilos y Monocitos).
CASO # 15.
Automatización.
Paciente de 26 afios de edad con un diagnóstico presuntivo de control. El equipo nos
indica una leucocitosis extrema (cuadro leucemioide), a expensas de Iinfocitosis,
monocitosis, neutropenia y basófilia lo que coincide con el citograma, el histograma
indica células grandes, además de una trombocitopenia grave. Las alarmas son,
blastos de linfocitos, leucocitosis, basofila, Iinfocitosis, monocitosis y
trombocitopenia.
72
Al realizar la diferencia! enconti-amos; Linfoblastos 90% 60.9 abs, Neutrófilos 1%
0.67 abs, Linfocitos 8% 5.4 abs, Monocitos 1% 0.67 abs, Basófilos 0% 0.0 abs y
Eosinófilos 0% 0.0 abs. En la fotografía se observan frecuentes sombras de Gumprech
y presencia de linfoblastos pequeños por lo que se clasifica leucemia linfoblástica L1
Plaquetas por campo marcada disminución.
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CASO #16.
Automatización.
73
Paciente de 51 aftos con diagnóstico de síndrome ictérido en estudio. El equipo
automatizado nos marca una anemia macrocitica nonnocromica, leucocitosis ligera,
con una citograma difuso, histograma aplanado y sin la cuenta diferencial de los
leucocitos, únicamente indicando la cuenta en general de glóbulos blancos.
74
Se comprueba la leucocitosis y obtenemos los siguientes datos, Neu 83% 12.8 abs,
Un 7% 1.0, Mon 8% 1.2 abs, Eos 2% 0.3 abs y Bas 0% 0.0 abs, con una imagen de
Shilling de, Mielocitos 2% 0.3 abs, Metamielocitos 0% 0.0 abs y Ban 1% 0.1 abs.
Además se observó polisegmentación que se corrobora con un Amett de 0-18-46-32-4
desviado a la derecha. Este es un caso paradójico por la presencia de mielocitos y
polisegmentación neutrófila.
CASO # 17.
Automatización.
75
Paciente masculino de 54 años de edad con un diagnóstico de Diabetes mellitus. La
automatización indica una ligera anemia normocitica normocromica con una
leucocitosis extrema a expensas de nuetrofília principalmente, linfocitosis,
monocitosis y basofilia, la nuetrofília se comprueba en el citograma además de
presentar un desplazamiento hacia arriba indicativo de células inmaduras, y presencia
de basofília sombra blanca. El histograma se muestra aplanado. Las alarmas del
equipo dicen, blastos de neutrofílos, leucocitosis, neutrofílos inmaduros 1 y 2,
basofília, monocitosis, nuetrofília y eosinofília.
Se efectuó el recuento diferencial a 500 células encontrándose los siguientes valores,
Mieloblastos 6, Linfocitos 27 abs- 4.22, Monocitos 11 abs-1.72, Neutrófilos 444 abs69.5, Eosinofílos 6 abs-0.9 y Basófílos 6 abs-0.9, la imagen de Schilling da Mielocitos
Neu 60 abs-9.39, Metamielocitos Neu 4 abs-0.62, Banda Neu 58 abs-9.0, Mielocito
Eos 2 abs-0.31, Metamielocito Eos 1 abs-0.15, y Neutrófilos Seg 322 abs-50.4. Por lo
que se clasificó como síndrome mieloproliferativo por presencia de mieloblastos y
toda la serie granulocítica (Leucemia Mieloide Crónica). Ratifícar o rectificar
diagnóstico con estudios genéticos.
76
CASO # 18.
Aatomatízación.
El equipo nos marca una anemia macrocitica normocromica con una leucocitosis
extrema a expensas de linfocitosis y monocitosis, nuetrofília ligera además de
discreta disminución de las plaquetas. En el citograma se corrobora la linfocitosis y
monocitosis con un histograma indicando células de mayor tamaño. Las alarmas
indican, anemia, blastos de linfocitos, leucocitosis, linfocitos variantes, macrocitosis,
neutrófilos inmaduros 1, basofilia y linfocitosis.
Observación microscópica.
77
Se corrobora la anemia, al realizarse la diferencial se encontró lo siguiente,
Línfoblastos 88.5% 110.8 abs, Neu 4.0% 5.0 abs, Lín 7.0% 8.7 abs, Mon 0% 0.0 abs,
Eos 0.5% 0.62 abs, Bas 0.0% 0.0 abs y Ban 2% 2.5 abs, Seg 2% 2.5 abs. El
diferencial no concuerda con el citograma ya que no hay monocitosis. La mayoría de
las células son linfoblastos pequefios con presencia de frecuentes sombras de
Gumprech, por lo que se clasifica como leucemia linfoblástica L l.
Paciente de 8 afios de edad aun sin ningún diagnóstico, este caso fue enviado al
Hospital General de México por el Hospitalito Gustavo Guerrero. El equipo
78
automatizado nos indica una anemia macrocitica. normocromica, con una ligera
leucocitosis a expensas de monocitosis y nuetrofilia además de una plaquetopenia
grave. En el citograma se observa que están las zonas intrincadas de los neutrofílos y
los monocitos. El histograma muestra una curva ligeramente aplanada con células
grandes las alarmas dicen anemia, blastos de monocitos y neutrófílos,
trombocitopenia, y neutrófílos inmaduros 1 y 2, monocitosis.
Observación microscópica.
79
Se a)iTobora la anemia y la plaquetopenia, con un conteo diferencial de, Linfoblastos
95.5 % 20.0 abs, Neutrófílos 1.5% 0.2 abs, Linfocitos 3% 0.6 abs, Monocito 0% 0.0
abs, Eosinófilos 0% 0.0 abs y Basófilos 0% 0.0 abs. Observando en la población de
linfoblastos frecuentes células con citoplasma muy basófílo recordando la morfología
de leis células plasmáticas, por lo que se considero blastos plíismocitoides.
CASO # 20.
Aatomatízación.
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Paciente de 50 años de edad con un diagnóstico presuntivo de sindrome febril en
estudio. El equipo nos indica una leucocitosis extrema a expensas principalmente de
nuetrofília, monocitosis y linfocitosis con una anemia macrocitica normocromica y
plaquetas discretamente bajas.
81
Se efectuó el recuento diferencial y se encontró Monoblastos 81% abs- 148.9,
Neutrófilos 8.5% abs-16.4, Linfocitos 8.5% abs- 16.4, Eosinófilos 0% abs 0.0,
Basófilos 0% abs 0.0, Promielocitos 1% abs-l.8. Con un Schilling de, Mielocitos 0.0,
Metamielocitos 1.8, Bandas 0.0 y Neu Segmentados 14.6 en valores absolutos. Se
observó un predominio de células grandes bi y trinucleadas, con núcleo abundante,
lobulado, con presencia de nucleolos y vacuo las en sacabocado en núcleo y
citoplasma,
por lo que se clasificó como Leucemia Monoblastica
Tipo B
(diferenciada).
Caso # 21.
Automatización.
Este es un caso de un paciente de 46 años con un diagnóstico de Insuficiencia Renal
Crónica. El equipo indica una anemia microcitica hipocromica, con una cuenta
diferencial balanceada, el citograma muestra algunas células de gran tamaño al igual
que histograma. Las alannas del equipo automatizado dicen únicamente anemia.
82
Observación microscó ica.
Se corrobora la anemia, pero lo que llama la atención es la presencia de
poli segmentación de los neutrofilos, la presencia únicamente de 1% de linfoblastos.
CASO # 22.
Automatización.
83
Paciente con catarata y con edad de 63 años. El equipo indica leucopenia ligera a
expensas de neutropénia y linfopenia ligera, en cifíns absolutas, demostrando que es
mentira las cifras porcentuales, citograma e histograma que coinciden con los datos.
Las alarmas indican blastos de linfocitos y eritrocitos nucleados.
Observamos vacuolización de los monocitos, estas vacuolas con imagen en
sacabocado, que nos orienta a la posibilidad de un proceso oncológico según el Dr
Cruz Mejía. Hipótesis, pensamos que la vacuolización en los núcleos de las células
hace que él equipo se confunda con nucléolos.
84
V. V. Casos Del Parámetro Plaquearlo.
Intervalos De Referencia En Adultos.
PLQ
Bajo
130.0
Alto
400.0
10
VMP
7.40
10.40
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CASO # 1.
Automatización.
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Paciente de 74 años con un diagnóstico presuntivo de control. El equipo indica una
anemia normocitica hipocromica con una leucopenia generalizada aunque más
evidente la linfopenia con una plaquetopenia grave, con un predominio de plaquetas
pequeñas de acuerdo al histograma. Las alarmas del equipo marcan, blastos de
linfocitos, hipocromía, interferencia de leucocitos y trombocitopenia.
Observación microscópica.
Se encontraron algunos pequeños acumulos plaquetarios por lo que la cuenta en frotis
fue de 95 446 x mm3, este caso se consideró una mediana disminución. Que dista
mucho de una plaquetopenia grave.
Paciente de 49 aftos de edad. El equipo nos indica una Iinfocitosis discreta con un
parámetro eritrocitario equilibrado y plaquetopenia grave, el histograma da una curva
irregular. Las alarmas del equipo son, plaquetas gigantes, interferencia de leucocitos y
trombocitopenia.
Sl7
Frecuentes pequeños y escasos medianos acumulos de plaquetas por lo que la cuenta
en el frotis resulto dentro de las cifras normales = 218, OOOxmm3.
CASO#3.
Automatización.
88
Es un paciente 47 años con Insufíciencia Renal Crónica. El equipo automatizado
indica un anemia normocitica normocromica, leucocitosis ligera a expensas de
nuetrofília, linfocitosis y monocitosis, con una plaquetopenia mediana, un histograma
que coincide con el VMP normal. Las alarmas dicen aglutinación de plaquetas,
eritrocitos nucleados e interferencia de leucocitos.
Observación microscópica.
Frecuentes medianos y pequeños acumulos de plaquetas, cuenta en firotis 736,000 por
lo que se considera marcado aumento. Se observaron plaquetas con escaso
granulómero.
89
CASO # 4.
Automatización.
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Paciente masculino de 56 con un diagnóstico presuntivo de alcoholismo. El resultado
de la automatización indica una anemia microcitica hipocromica grave, con
leucopenia a expensas de neutropénia y linfopenia, plaquetopénia importante y un
VMP discretamente elevado lo que coincide con el histograma Las alarmas del
equipo indican, aglutinación de plaquetas, trombocitopenia, hipocromia e
interferencia de leucocitos
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Observación microscópica.
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Frecuentes medianos acumules y escasos pequeños, con una cuenta en frotis de
568,000 xmm3 por lo que se consideró ligero aumento. Se le da crédito al equipo en
cuanto a la alarma de aglutinación de plaquetas.
91
CASO #5.
Automatización.
Paciente de 48 afios con diagnóstico de catarata bilateral. El equipo nos marca una
anemia grave hipocromica microcitica, con una leucocitosis a expensas de nuetrofilia
y ligera monocitosis con una trombocitosis marcada con VMP normal lo que coincide
con el histograma. Las alarmas dicen, anemia hipocromia, microcitosis y eritrocitos
nucJeados.
Observación microscó ica.
92
Se observó una trombocitosis extrema con un conteo de 1, 656,000 xmm3, que es más
de el doble de la cifra que proporciona la automatización, por lo que se consideró
como marcado aumento. Se ratificó las demás alarmas.
CASO#6.
Automatización.
Q1
Paciente de 29 años de edad con un diagnóstico presuntivo de Síndrome Ictérido.
El equipo nos indica una anemia ligera nonnocitica normocromica, al realizarse el
recuento diferencial se encontró de manera normal, con unas plaquetas ligeramente
disminuidas y un VMP ligeramente elevado lo que coincide con el histograma.
Las alarmas mencionan, aglutinación de plaquetas, anisocitosis, eritrocitos dimorfos e
interferencia de leucocitos.
Observación microscópica.
Se observaron dos ffotis de la muestra y no se observó aglutinación de las plaquetas,
se encongaron homogéneamente distribuidas y escasas plaquetas grandes, con una
cuenta de 388,560 x mm3 por lo que se consideró este caso como plaquetas normales.
94
CASO # 7.
Automatización.
Paciente de 32 años de edad con un diagnóstico de colédocolitiasis. El equipo nos
marca una leucocitosis ligera. con una trombocitopenia marcada y un VMP normal lo
que coincide con el histograma. Las alarmas indican únicamente trombocitopenia.
Se observó escasos pequeños acumulos y algunas plaquetas con escaso granulómero,
la cuenta fue de 163 200 xmm3 por lo que se consideró como normales o discreta
disminución.
CASO # 8.
Aatomatización.
Paciente de 22 años de edad con un diagnóstico de Policitemia. Con un parámetro
eritrocitario que presenta poliglobulia evidente, ligera eosinopenia y una
trombocitopenia grave con un VMP ligeramente alto que coincide con el histograma.
Las alarmas del equipo indican, eritrocitosis, interferencia de leucocitos, plaquetas
gigantes y trombocitopenia.
QA
En las fotografías se corrobora la poliglobulia, con disminución de plaquetas y
escasas plaquetas gigantes, la cuenta en el frotis fiie de 56, 000 x mm3 lo que se
considera una disminución, pero duplica la cuenta realizada por la automatización.
CASO # 9.
Automatización.
97
Paciente de 66 años de edad. El parámetro eritrocitario muestra un incremento de los
índices y una poliglobulia ligera con una monocitosis y Iinfocitosis discreta, una
trombocitopenia extraordinaria y un VMP normal que coincide con el histograma.
Las alarmas únicamente dicen trombocitopenia.
Observación
microscópica.
98
En la fotografias se observan campos con escasas plaquetas, pero al recorrer toda la
laminilla se encuentran campos con grandes acumulos plaquetarios. La cuenta en
frotis fue de 1 662,630 xmm3 por lo que se considera extraordinario aumento.
CASO # 10.
Automatización.
99
Paciente de 16 años de edad con un diagnóstico presuntivo de infección de vías
urinarias. El equipo automatizado indica ligera hipocromía con una monocitosis
discreta, trombocitopenia marcada con un VMP normal que coincide con el
histograma. Las alarmas indican, aglutinación de plaquetas, eritrocitos micro y
fragmentados, eritrocitos nucleados, interferencia de leucocitos, monocitosis,
plaquetas gigantes y trombocitopenia.
Observación microscópica.
En las fotografías se observan campos sin plaquetas y otros con frecuentes pequeños
acumulos plaquetarios, la cuenta en fn>tis fue de 402,000 x mm3 por lo que se
considero plaquetas normales.
100
CAPÍTULO VI. RESUMEN DE LA INVESTIGACIÓN DE AUTOMATIZACIÓN Y OBSERVACION MICROSCOPICA.
ANEMIAS
#
VI. I. Parám etro Eritrocitario
AUTOMATIZACION
CASOS
C a s o # 5 . E R T 5 .3 8 -N , H B
5 3 .2 -A , H C M
POLIGLOBULIA
5 y 15
1 8 .1 -A , V C M
3 3 .6 -A , C M H C
3 4 ;0 -N
9 8 .8 -A , H C T
y A D E
1 2 .5 -N .
H S T a l a d e r e c h a . C o n a l a r m a d e e r it r o c it o s n u c l e a d o s .
C aso #
V C M
15 . E R T
7 .2 7 5 -A , H B
7 6 .2 -B , H C M
2 0 .3 7 -A .
H S T
a
i z q u ie r d a .
3 0 .7 1 -B
A la r m a s :
y A D E
a n is o c it ó s is ,
NORMOCITCA
NORMOCROMICA
8 y 14
8.
#
V C M
E R T
3 .5 6 5
8 5 .9 -N , H C M
-B ,
H B
1 1 .2 -B , H C T
3 1 .1 9 -N , C H C M
3 0 .6 4 -N ,
3 6 .2 8 N
y
A D E
1 9 . 5 0 - A . A l a r m a : a n is o c it ó s is .
C aso
#
V C M
88. 8- N
A .
14 . E R T
F re c u e n te s
c it o p la s m a ,
por
lo
c é lu la s
r o le a u x ,
que
se
con
a lg u n o s
in f ie r e
lo s
que
lin f o c it o s
la
d e s p r o v is t o s
m a q u in a
e r it r o b la s t o s .
N o
se
c o n fu n d e
puede
de
e sta s
v a lo r a r
la
m o r f o lo g ía e r it r o c it a r ia p o r la a g lu t in a c ió n .
C aso #
1 5 . S e o b s e r v ó la , p o lig lo b u lia , h ip o c r o m ía y
la a n is o c it ó s is .
C aso
#
8.
F re c u e n te s
e r it r o c it o s
en
e v id e n t e q u e n o m a r c a e l e q u ip o . L o
b la n c o
de
t ir o ,
e
h ip o c r o m ía
q u e s i d e t e c t a e s la a n is o c it ó s is
d is c r e t a .
1 .6 0 4 B , H B
, H C M
5.
E n e s te c a s o la a u t o m a t iz a c ió n s i d e m o s t r ó e s p e c if ic id a d .
e r it r o c it o s is e h i p o c r o m í a .
C aso
#
pequeñas
1 7 .8 2 -N , H C T -5 5 .4 3 -A ,
2 3 .4 1 -B , C H C -M
la
OBSERVACIÓN MICROSCÓPICA
C aso
4 .7 8 -B , H C T
2 9 .8 4 -N , C H C M - N
1 4 .2 5 -B ,
y A D E
2 1.6 5 -
H i s t o g r a m a n o r m a l. A l a r m a s : a n e m ia y a n is o c it ó s is .
C aso #
1 4 . E s c a s o s e r it r o c it o s e n b la n c o d e t ir o y e lip t o c it o s , q u e n o
m e n c io n a l a m a q u in a , s e c o r r o b o r a la a n e m ia g r a v e p o r lo s e s p a c io s
e n t r e lo s e r it r o c it o s .
6.
C aso #
E R T
8 6 .9 - N , H C M
NORMOCITICA
HIPOCROMICA
6, 9 y 13
2 .3 0 -B , H B
6 .2 -B , H C T
2 7 .0 -N , C H C M
3 1 .3 -B
2 0 .0 -B , V C M
y A D E
C a s o # 6 . F r e c u e n t e s e lip t o c it o s q u e la m a q u in a n o m a r c a a d e m á s d e
1 4 .7 -A .
H i s t o g r a m a n o r m a l , A l a r m a s : a n e m ia .
C aso # 9. E R T
8 5 .9 - N , H C M
2 .6 4 -B , H B
C aso
7 .4 -B , H C T
2 8 .1 -N , C H C M
3 2 .7 -B
2 7 .7 -B , V C M
y A D E
1 6 .2 -A .
H i s t o g r a m a n o r m a l . A l a r m a : a n e m ia .
C aso
#
V C M
13 .
E R T
2 .1 0 -B ,
8 9 .0 -N , H C M
1 6 .3 0 -A .
H B
2 4 .0 4 -B
H is t o g r a m a
5 .2 3 -B ,
C H C M
n o r m a l.
n o c o r r o b o r a r s e la p r e s e n c ia d e h ip o c r o m ía .
H C T
1 8 .7 6 -B ,
2 7 .8 8 -B
A la r m a s :
y
A D E
a n e m ia
#
9 . H ip o c r o m ía y
a n is o c it ó s is
g ra v e
y
no
d is c r e t a c o m o
la s
m a r c a e l e q u ip o .
C a s o # 1 3 . S e o b s e r v ó f r e c u e n t e s e r it r o c it o s c r e n a d o s y e lip t o c it o s q u e
no
m a rca
el
e q u ip o ,
no
se
o b se rv o
la
h ip o c r o m ía
m a rca d a
que
m e n c io n a la m a q u in a .
e
h ip o c r o m ía .
MICROCITICA
HIPOCROMICA
C aso # 7. E R T
7, 11 y 16
6 7 .8 -B , H C M
H is t o g r a m a
3 .0 1 -B , H B
5 .8 -B , H C T
1 9 .2 -B , C H C M
a
la
2 8 .3 -B
iz q u ie r d a .
y
2 0 .4 -B , V C M
C aso
A D E
e r it r o b la s t o s
en
un 12 %
C aso
E l
e q u ip o
A la r m a s :
2 0 .7 -A .
a n e m ia ,
a n is o c i t ó s i s , m i c r o c i t o s i s e h ip o c r o m ía .
C aso #
V C M
11. E R T
4 .2 1 9 -B , H B
7 5 .6 -B , H C M
1 8 .7 8 -A
H is t o g r a m a
a
la
3 2 .2 0 -B
i z q u ie r d a .
3 1 .9 4 -B ,
y
A D E
A la r m a s :
C a so # 16 . E R T 2 .7 5 -B , H B
H is t o g r a m a
a n is o c i t ó s i s ,
11.
F re c u e n te s
e r it r o c it o s
cre n a d o s
y
la
p r e s e n c ia
de
H o w e ll
4 .1 -B , H C T
1 5 .0 -B , C H C M
d e s v ia d o
e r it r o c it o s
a
la
2 7 .5 -B
no
d e te cto
lo s
cu e rp o s
C aso
#
e q u ip o .
16 . N o
Se
se o b se rv ó
c o rro b o ró
la
J o lly
la a n is o c it ó s is m a r c a d a q u e m e n c io n a e l
m ic r o c it o s is ,
h ip o c r o m ía
y
lo s
e r it r o c it o s
1 5 .0 -B , V C M
y A D E
i z q u ie r d a .
n u c le a d o s ,
de
q u e n o d e t e c t a la m a q u in a .
n u c le a d o s .
h ip o c r o m ía .
5 4 .5 -B , H C M
#
7.
ú n ic a m e n t e .
1 0 .2 8 -B , H C T
2 4 .3 8 -B , C H C M
#
2 2 .4 -A .
A la r m a s :
h ip o c r o m í a
y
m ic r o c it o s is .
101
C a s o # 2 . E R T 2 .2 9 -B , H B 6 .2 3 -B , H C T 2 2 .6 7 -B , V C M
MACROCmCA
HIPOCROMICA
MACROCITICA
NORMOCROMCA
9 8 .9 -A , H C M
2
i, 3, 4,10
y 12
H is t o g r a m a
2 7 .2 2 -N , C H C M
a
la
d e re c h a ,
2 7 .4 9 -B y A D E
Las
a la r m a s
so n ,
1 7 .3 1 .
Caso # 2. Presencia de eritroblastos en un 16 % y policromasia
mediana elevada, que no marca la maquina.
a n e m ia ,
e r it r o c it o s m i c r o y f r a g m e n t a d o s .______________________________
C aso
#
1. E R T
9 9 .7 -A , H C M
2 .0 5 -B , H B
7 .3 -B , H C T
3 5 .7 -A , C H C M
2 0 .5 -B , V C M
3 5 .8 -N y A D E 2 2 .4 -1 4 .3 -
N H is t o g r a m a a l a d e r e c h a . L a a l a r m a m e n c io n a a n e m ia .
C aso
V C M
#
3. E R T
4 .3 5 9 -B , H B
1 0 9 .4 -A , H C M
1 5 .1 1 -A .
H is t o g r a m a
1 6 .2 3 -N , H C T
3 7 .2 4 -A , C H C M
a
la
4 7 .7 2 -N ,
3 4 .0 2 -N y A D E
d e re c h a . L a
a la r m a
d ic e n
m a c r o c it ó s is .
C aso # 4. E R T
1 .1 8 -B , H B
1 3 .3 -B , H C T
1 1 .8 -B , V C M
1 0 0 . 0 - A , H C M ---------------- , C H C M ---------------- y A D E
1 4 .9 -A .
H is t o g r a m a a l a d e r e c h a . P a r á m e t r o e r it r o c it a r io s m u y
in c o n g r u e n t e s .
C a s o # 10 . E R T
1 3 9 .7 - A , H C M
1 .3 6 -B , H B
7 .5 -B , H C T
5 5 .1 -A , C H C M
1 9 .0 -B , V C M
3 9 .4 -A y A D E
2 0 .9 -A .
Caso # 1. La automatización no detecta, a los eritrocitos crenados,
esquizocitos y la hipocromía.
Caso # 3. Se observó la macrocitósis y la anisocitósis dándole crédito
al equipo automatizado.
Caso # 4. Aglutinación evidente de los hematíes y los que se
encuentran aislados se les observa ligera hipocromía, (no se observó
macrocitos lo que coincide con los cálculos manuales). Por lo tanto es
anemia normocitica normocromica y no macrocitica como la da el
equipo.
Caso # 10. Se corrobora la anisocitósis pero no la macrocitósis debido
a la presencia de esferocitos.
.
Caso # 12.Macrocitósis, se le da crédito al equipo.
H is t o g r a m a a l a d e r e c h a . A l a r m a s : a n e m ia , a n i s o c i t ó s i s y
m a c r o c it ó s is .
C aso #
V C M
12. E R T
1 1 5 .9 -A ,
3 .5 2 0 -B , H B
C H C M
1 3 .9 7 -B , H C T
3 4 .2 3 -N
y
A D E
4 0 .8 0 -B ,
1 2 .6 5 -N
H i s t o g r a m a a l a d e r e c h a . A l a r m a s : m a c r o c it ó s is . ___________
•
•
•
•
B = BAJO.
= NORMAL.
A = ALTA.
6
Valores absolutos = X 10
102
VI. II. Parámetro Leucocitario.
AUTOMATIZACIÓN
# CASOS
C a so # 7. L E U
LEUCEMIAS
7,13,15,
17,18, 20,
1 8 9 .4 -Æ , N E U 3 6 .7 - A , L I N 6 9 .5 -A ,
OBSERVACIÓN MICROSCÒPICA
C aso #
7 . S e r e a l i z ó l a d if e r r a i c i a l e n v a l o r e s a b s o lu t o s . L i n f o b l a s t o s
M O N 8 3 . 1 - A , E O S 0 . 0 - B y B A S 0 . 0 - B c if r a s
1 5 3 . 4 , L i n f o c i t o s 3 4 . 0 , M o n o c it o s 0 . 0 y N e u t r ó f i l o s
a b s o lu t a s . C i t o g r a m a q u e c o i n c i d e c o n l a s c i f r a s e
f f f e d o m in io d e li n f o b l a s t o s g r a n d e s , p o r l o q u e s e c l a s i f i c a c o m o u n a
h is t o g r a m a s e ñ a la n d o c é l u l a s g r a n d e s . A L S .
le u c e m ia
N e u t r ó f i l o s in m a d u r o s 1 y 2 , m o n o c it ó s is , b la s t o s d e
li n f o b l a s t o s
l i n f o c i t o s , m o n o c it o s y n e u t r ó f il o s y n e u t r o f il ia .
n e u t r ó f il o s in m a d u r o s c o m o m a r c a e l e q u ip o .
C aso
M O N
#
13 . L E U
1 8 4 .9 -A , N E U
5 7 .7 -A , L I N
7 L 2 -A ,
1 . 3 - A , E O S 0 . 6 - A y B A S 5 4 . 3 - A . c it o g r a m a q u e
lin f o b lá s t ic a
g ra n d e s
L2.
con
La
a u t o m a t i z a c ió n
lo s
m o n o b la s t o s
1 .8 . S e e n c o n fró
e s t a c o n f u n d ie n d o , l o s
a
dem ás
de
que
no
hay
C a s o # 1 3 . S e r e a l i z ó l a d i f e r e n c i a l e n c o n t r á n d o s e e n v a l o r e s a b s o lu t o s ,
N e u 0 .9 2 , L in
1 5 . 7 , M o n 0 .0 , E o s
1 .8 4
B a s 00. C o n
G u m jH e c h
y
1 6 7 .3
de
d o s p o b la c io n e s
un
de
lin f o b la s t o s , f r e c u e n t e s
g ra n ta m a ñ o . A L S
lin f o b la s t o s , l o q u e e s in d ic a t iv o d e u n a L e u c e m ia L in f o b l á s t ic a L 2 , s e le
b a s ó f i l i a , l e u c o c i t o s i s , n e u t r ó f il o s
so m b ra s d e
y
c o i n c i d e c o n l o s d a t o s y e l h is t o g r a m a i n d i c a c é l u l a s d e
d a c r é d it o a l e q u ip o e n c u a n t o a l a s a l a r m a s m e n o s e n l a b a s ó f i l i a y
in m a d u r o s 1 y 2 y b a s ó f i l i a .
C a so # 1 5 . L E U 6 7 .7 -A , N E U
n e u t r o f i l i a y a q u e n o s e e n c o n t r ó n in g u n a d e e s t a s c é l u l a s .
1 .3 -B , L I N 5 8 .7 -A ,
M O N 7 . 3 - A , E O S 0 . 0 . E l c it o g r a m a c o i n c i d e c o n lo s
C a s o # 1 5 . A l r e a l i z a r l a c ü f e r e n c ia l e n c o n t r a m o s e n v a l o r e s a b s o lu t o s ;
d a to s . H is t o g r a m a in d ic a n d o c é lu la s g r a n d e s . A L S .
L in f o b la s t o s
6 0 .9 , N e u t r ó f ilo s
0 .6 7 , L in f o c it o s
B la s t o s d e lin f o c it o s , le u c o c it o s is , b a s ó f ilia ,
B a s ó f ilo s
y
Se
l i n f o c i t o s i s , m o n o c it ó s is y t r o m b o c it o p e n ia .
G u m { f f e c h y p r e s e n c ia d e l i n f o b l a s t o s p e q u e ñ o s p o r l o q u e s e c l a s i f i c a
0
E o s in ó f ilo s
C a s o # 17 . L E U 7 8 .3 1 -A , N E U 6 7 .7 1 -A , L IN 5 .1 7 -A ,
le u c e m ia lin f o b lá s t ic a L l .
M O N 2 .3 0 -A , E O S .7 7 -A
C aso
y B A S 2 . 3 7 - A . c it o g r a m a
#
17 .
Se
0.
e fe c tu ó
el
o b s«v a ro n
re cu e n to
5 .4 , M o n o t ít o s
fre c u e n te s
d if e r m ic ia l
0 .6 7 ,
so m b ra s
a
500
de
c é lu la s
q u e c o i n c i d e c o n l o s d a t o s e h is t o g r a m a a p la n a d o .
e n c o n t r á n d o s e l o s s ig u i e n t e s v a l o r e s , M i e l ó b l a s t o s 6 , L i n f o c i t o s 2 7 a b s -
A L S . B l a s t o s d e n e u t r ó f il o s , l e u c o c i t o s i s , n e u t r ó f il o s
4 . 2 2 , M o n o c it o s
i n m a d u r o s 1 y 2 , b a s ó f i l i a , m o n o c it ó s is , n u e t r o f i l i a y
a b s - 0 . 9 y B a s ó f i l o s 6 a b s - 0 . 9 , l a im a g e n d e S c h ü l i n g
e o s in o f ilia .
6 0 a b s - 9 . 3 9 , M e t a m ie l o c it o s N e u
C a so # 18 . L E U
M O N
1 2 5 .3 0 -A , N E U 9 .1 9 -A , L I N 9 8 .9 7 -A ,
1 6 . 6 9 - A , E O S Û . 0 3 - B y B A S 0 . 4 2 - A . c it o g r a m a
11
M ie lo c it o E o s 2
Seg
322
a b s -5 0 .4 .
m ie l o p r o l i f e r a t i v o
de
g r a n u lo c ít ic a
lin f o c it o s ,
le u c o c it o s is ,
m a c r o c it ó s is ,
n e u t r ó f il o s
D ic e n ,
a n e m ia , b la s t o s
lin f o c it o s
in m a d u r o s
1,
de
v a r ia n t e s ,
b a s ó f ilia
y
lin f o c it o s is .
C aso # 20 . L E U
A ,
M O N
1 8 2 .6 0 -A , N E U
EO S
0 .7 0 -A
1 3 2 .6 8 -A , L I N 2 0 .6 8 y
B A S
0 .1 7 -A .
Se
por
Por
lo
que
p r e s e n c ia
( L e u c e m ia
se
de
M ie lo id e
c la s if ic ó
m ie lo b la s t o s
C r ó n ic a ) .
C aso
#
18 .
N e u t r ó f ilo s
Bandas
Se
lo s
2 .5
co rro b o ra
s ig u i e n t e s
la
a n e m ia ,
v a lo r e s
5 .0 , L in f o c it o s
S e m e n ta d o s
8 .7 , M o n
2 .5 .
La
a i r e a liz a r s e
0 .0 , E o s
c it o g r a m a y a c]u e n o h a y m o n o c i t ó s i s . L a
li n f o b l a s t o s
de
lo s
m is m o s ,
m a r c a n d o c é lu la s g ra n d e s .
con
.
un
h is t o g r a m a
pequeños
con
,
d if e r e n c ia l
e ste
d e r iv a
5 8 a b s -9 .0 ,
co m o
y
s ín d r o m e
to d a
R a t if ic a r
a b s o lu t o s
i n f i e r e q u e e l c it o g r a m a c o i n c i d a c o n l o s d a t o s y a q u e
se
M ie lo c it o s N e u
o
la
s e r ie
r e c t if ic a r
d ia g n ó s t ic o c o n e s t u d io s g e n é t ic o s .
e n c o n tró
2 8 .3 7 -A ,
áa
4 a b s * 0 .6 2 , B m id a N e u
a b s - 0 . 3 1 , M e t a m ie lo c it o E o s 1 a b s - 0 . 1 5 , y N e u t r ó f ilo s
q u e c o i n c i d e c o n l o s d a t o s , e l h is t o g r a m a i n d i c a c é l u l a s
m a y o r ta m a ñ o . A L S .
a b s - 1 . 7 2 , N e u t r ó f ilo s 4 4 4 a b s -6 9 .5 , E o s in o f ilo s 6
p r e s e n c ia
la
c ü f e r e n c ia l
L in f o b la s t o s
0 .6 2 , B a s ó f ilo s
no
co n cu e rd a
se
1 1 0 .8 ,
0 .0
con
y
el
m a y o r ía d e la s c é lu la s s o n
de
fre c u e n te s
so m b ra s
de
G u m p r e c h , p o r lo q u e s e c la s if ic a c o m o le u c e m ia lin f o b lá s t ic a L l .
C a s o # 2 0 . S e e f e c t u ó e l r e c u e n t o d i f e r e n c i a l e n v a lc n e s a b s o lu t o s
e n c o n tró
M o n o b la s t o s
E o s in ó f ilo s
0 .0 ,
1 4 8 .9 ,
B a s ó f ilo s
0 .0 ,
N e u f r ó f ilo s
If r o m ie lo c it o s
1 6 .4 ,
1 .8 .
L in f o c it o s
U n
S c h ü lin g
y se
1 6 .4 ,
de,
M ie lo c it o s 0 .0 , M e t a m ie lo s l . S , B a n d a s , 0 .0 y N e u S e g m e n t a d o s 1 4 .6 .
S e o b s e r v ó u n p r e d o m in io d e
c é lu la s
g ra n d e s b i y
t r in u c le a d a s , c o n
103
n ú c le o
a b u n d a n te ,
lo b u la d o ,
p r e s e n c ia
de
n u c lé o lo s ,
por
lo
que
se
c la s if ic ó c o m o L e u c e m ia M o n o b la s t ic a T ip o A ,
C a s o # 4 . L E U 3 4 .8 -A , N E U 3 1 .7 -A , L I N
1 .8 -N , M O N
1 . 0 - A , E O S 0 . 1 - N y B A S 0 . 2 - A c i f i u s a b s o lu t a s .
CUADRO
LEUCEMIOIDE.
4y5
1,8, 9,11,
12,14, 16,
19,
#
4.
Se
o b se rv ó
v a c u o liz a c ió n
en
sacab o cad o
C i t o g r a m a q u e c o i n c i d e c o n l o s d a t o s , e h is t o g r a m a
n e u t r ó f il o s
v a c u o la s e n s a c a b o c a d o s o n s o s p e c h a d e m a lig n id a d .
n e u t r o f il ia .
de
a lg u n o s
m o n o c it o s , s e c o r r o b o r a l a n e u f r o f i l i a , l a m o n o c i t ó s i s y l a p r e s e n c ia d e
a p la n a d o . A L S . N e u t r ó f i l o s in m a d u r o s 1 y 2 y
C aso # 5. L E U
LEUCOCITOSIS.
C aso
in m a d u r o s
que
m a rca
el
e q u ip o .
R e co rd e m o s
que
la s
C a s o # 5 . A l r e a l i z a r l a d i f e r e n c i a l o b t u v im o s ; L i n f o b l a s t o s 9 8 . 0 , N e u
1 0 4 .9 0 * A , N E U 3 . 0 3 -N , L I N 8 5 . H - A ,
3 .14 , L iñ
3 .6 7 , M o n
0 .0 , E o s 0 .0
M O N 1 6 . 7 6 - A , E O S 0 .0 ‘ B y B A S 0 .0 1 * N c if r a s
o b se rv ó ,
li n f o b l a s t o s
p eq ueñ o s,
a b s o lu t a s . D a t o s q u e c o i n c i d e n c o n e l h is t o g r a m a y
G u m fn e ch .
B io m e t r ia
h e m á t ic a
y
B a s 0 ,0 e n c if r a s a ls o lu t a s . S e
g ra n d e s
que
y
a lg ia ia s
co rre sp o n d e
a
so m b ra s
una
de
le u c e m ia
c it o g r a m a . A L S . B l a s t o s d e l i n f o c i t o s y m o n o c it o s ,
lin f o b lá s t ic a L l , p o r e l p r e d o m in io d e lin f o b la s t o s p e q u e ñ o s . I n f e r im o s
l i n f o c i t o s i s , m o n o c it ó s is y l i n f o c i t o s v a r ia n t e s .
q u e e l e q u ip o c o n f u n d e l i n f o b l a s t o s g r a n d e s c o n m o n o b la s t o s .
C a s o # 1 . L E U 2 3 . 7 - A , s i n p r o p o r c io n a r l a c u e n t a
C a s o # l S e r e a l i z ó l a d i f e r e n c i a l s i n p r o b l e m a s , l l a m a n d o l a a t e n c ió n l a
d if e r e n c i a l . H I S . A n o r m a l , C I T . d i f u s o ( s i n u b i c a c i ó n
p r e s e n c ia d e m i e l o c i t o s e n 1 . 5 % e q u iv a l e n t e a 0 . 3 5 a b s . , b a n d a s 1 3 . 5 %
d e g r u p o s c e l u l a r e s ) . A L S . I n t e r f e r e n c ia d e l e u c o c it o s .
e q u iv a l e n t e
C a so # 8. L E U
i n m a d u r a s ) y d e g e n e r a t iv a s ( v a c u o l a s y g r a n u l a c i ó n p a t o l ó g ic a ) .
1 2 .8 -A , N E U 7 .5 -A , L I N 3 .9 -A , M O N
a
3 .19
ab s.
Con
a l t e r a c io n e s
r e g e n e r a t iv a s
( c é lu la s
1 . 0 - A , E O S 0 . 3 y B A S 0 . 1 c i f r a s a b s o lu t a s . E l
C a s o # 8 . A l r e a liz a r la d if e r e n c ia l e n c o n t r a m o s E o s in o f ilia y B a s o f il ia ,
h is t o g r a m a y e l c it o g r a m a c o i n c i d e n c o n l o s d a t o s .
y a q u e e x is t e u n 4 %
C aso # 9. L E U
e o s i n ó f i l o s e q u iv a l e n t e s a 5 7 6 x m m 3 . Q u e n o
1 4 . 0 - A , s i n p r o p o r c io n a r l a c u e n t a
d if e r e n c ia l, p a s a n d o la m u e s t r a p o r e l m é t o d o p r im a r io
y s e c u n d a r io a d e m á s d e u n c i t o g r a m a d i f u s o e
e q u iv a l e n t e 5 1 6
b a s ó f ilo s x m m 3 y u n 4 . 5 %
de
m a r c a e l e q u ip o .
C a s o # 9 . S e r e d i z ó e l d i f e r e n c i a l s i n i n g ú n p r o b le m a , c l a s i f i c a n d o 2 0 0
c é l u l a s y s e o b t u v ie r o n l o s s ig u i e n t e s d a t o s e n v a l o r e s a b s o lu t o s . N e u
h is t o g r a m a q u e m u e s t r a l a p r e s e n c ia d e c é l u l a s
1 0 . 5 , L i n 2 . 6 6 , M o n 0 . 8 4 E o s 0 y B a s 0 . 0 C o n u n a im a g e n S c h i l l i n g d e ;
g ra n d e s.
M ie lo c it o s 0 .8 4 , M e t a m ie lo s 0 .4 2 , B a n d a s 0 .8 4 y N . S e g . 8 .4 L o q u e s e
C aso # 1 1 . L E U
1 0 .8 , N E U 7 . 1 - A , L I N 2 .5 , M O N 1 .0 -
d e m u e s t r a e n la s fo to s .
A , E O S 0 . 2 y B A S 0 . 0 . E l c it o g r a m a m u e s t r a u n a z o n a
C a s o # 1 1 . E n l a s f o t o g r a f ía s s e o b s e r v ó 0 . 1 5
d e l i n f o c i t o s d i v i d i d a c o n u n h is t o g r a m a n o r m a l . A L S .
e s c a s o s p la s m o b l a s t o s , q u e c o r r e s p o n d e n
n o d ic e n n a d a r e f e r e n t e e n c u a n t o s l o s le u c o c it o s .
e q u ip o a u t o m a t i z a d o n o d e t e c t ó .
a
d e c é lu la s p la s m á t ic a s y
.4 5 6
x
m l3 , c o s a
que el
C a s o # 1 2 . L E U . 1 5 .5 2 -A , N E U 8 .0 3 -A , L I N 6 .3 8 -A ,
C aso #
M O N 0 .9 8 -A , E O S 0 .0 4 -B y B A S 0 .0 8 -B . e sto s d a to s
( 5 , 3 7 5 X m m 3 c if iu s a b s .) y n o d e 4 1 . 2 %
c o i n c i d e n c o n e l h is t o g r a m a y e l c it o g r a m a . A L S .
c o m o la d a é l e q u ip » . N e u 8 .5 , M o n 0 .8 5 , E o s 0 .0 7 , B a s 0 .0 7 y B a n 0 . 1
I n d ic a n lin f o c it o s is .
e ste
C a s o # 14 . L E U 2 3 .2 -A , N E U 2 0 .0 -A , L I N 0 .7 -B ,
lin f o c it o s is
1 2 . A l r e a l i z a r l a d i f e r e n c i a l , o b t u v im o s l i n f o c i t o s i s d e 3 2 . 5 %
caso
p asó
de
a
m ic r o s c o p ía
7000
x
mm 3
por que
h a c ia
( 6 ,3 8 0 x m m 3 c if r a s a b s .)
v a r io s
a r r ib a ,
a u t o r e s d ic e n
se
c o n s id e r a n
que
la s
le u c e m ia
M O N 1 . 4 - A , E O S 1 . 1 - A y B A S 0 .0 , d a t o s q u e
lin f o c ít ic a c r ó n ic a .
c o i n c i d e n c o n e l c it o g r a m a y u n h is t o g r a m a d o n d e s e
C aso #
o b s e r v a n e le m e n t o s m á s c h i c o s p o r l o q u e m a r c a
M e t a m ie lo s 0 . 2 3 , B a n d a s 6 .4 9 y S e g m e n t a d o s d e 1 2 . 9 9 . C o n u n A m e t h
1 4 . S e o b s e r v ó u n a Im a g e n d e S c h illin g
d e , M ie lo c it o s 0 .2 3 ,
in t e r f e r e n c ia d e l e u c o c it o s . A L S . I n t e r f e r e n c ia d e
4 3 - 4 5 - 2 2 - 0 - 0 , d e s v ia d o a l a
L e u c o c i t o s , N e u t r ó f i l o s in m a d u r o s 1 y 2 , y e o s i n o f i l i a .
S c h illin g ,
C a so # 16 . L E U
e o s i n o f i l i a . E s t e c a s o p r e s e n t a a l t e r a c io n e s r e g e n e r a t iv a s ( m i e l o c i t o s y
1 5 . 4 2 - A , n o n o s p r o p o r c io n a l a c u e n t a
d a to s
d i f e r e n c i a l . C o n u n c it o g r a m a d i f ü s o e h is t o g r a m a
m e t a m ie lo c i t o s )
a p la n a d o . A L S . E n b la n c o .
m o n o c it o s ) .
C a so # 19 . L E U
2 1 .0 4 -A , N E U L IN
2 .2 2 , M O N 4 ,3 2 -
que
y
no
iz q u ie r d a lo
m e n c io n a
d e g e n e r a t iv a s
la
q u e f o r t a le c e la
a u t o m a t i z a c ió n .
( v a c u o liz a c ió n
C a s o # 1 6 . S e r a t if ic a l a le u c o c it o s is c o n ,
de
Se
im a g e n d e
r a t if ic ó
N e u t r ó f ilo s
la
y
N e u 1 2 . 8 , L in 1 .0 8 , M o n 1 J2,
104
A ¡
EO S
0 .0 7 -B ,
o b se rv a n
la s
n e u t r o f il o s y
cu rv a
y
de
0 .0 0 . E n
i n t r in c a d a s
en
e l C it o g r a m a
el
caso
p la n a d a .
m o n o c it o s
y
A LS.
D ic e n
n e u t r ó f il o s ,
se
de
lo s
l o s m o n o c it o s . E l h is t o g r a m a c o n
li g e r a m e n t e
b la s t o s
B A S
zonas
E o s 0 .3
y
B a s 0 .0
c o n u n a im a g e n d e
M e t a m ie lo c it o s 0 .0 y B a n
S c h illin g
d e , M ie lo c it o s 0 ,3 ,
0 . 1 . A d e m á s s e o b s e r v ó p o l is e g m e n t a c ió n
una
q u e s e c o r r o b o r a c o n u n A m e t h 0 - 1 8 - 4 6 - 3 2 - 4 d e s v ia d o a la d a e c h a . E s t e
a n e m ia ,
e s u n c a s o p a r a d ó j i c o p o r l a p r e s e n c ia d e M i e l o c i t o s y p o l is e g m e n t a c ió n
n e u f r ó f ilo s
in m a d u r o s 1 y 2 , m o n o c it o s is y t r o m b o c it o p e n ia .
n e u t r ó f il a .
C a s o # 1 9 . U n c o n t e o d if e r e n c ia l d e , L in f o b la s t o s 9 5 .5
%
e q u iv a l e n t e a
2 0 . 0 a b s . , N e u t r ó f ilo s 0 .2 , L in f o c it o s 0 .6 , M o n o c it o 0 .0 , E o s in ó f ilo s 0 .0
y B a s ó f ilo s 0 . O b s e r v a n d o e n la p o b la c ió n d e lin f o b la s t o s , f r e c u e n t e s
u lu la s
c o n c it o p la s m a m u y b a s ó f ilo r e c o r d a n d o la m o r f o lo g ía d e la s
c é l u l a s p l a s m á t ic a s , p o r l o q u e s e c o n s i d e r o b la s t o s p l a s m o c it o id e s .
22
LEUCOPENIA.
CIFRAS
NORMALES EN
CUANTO A EL
TOTAL DE
LEUCOCITOS.
2, 3, 6,10,
21.
C aso
#
2 2 . L E U 3 . 4 1 - B , N E U 2 . 2 6 - B , L I N 0 .6 5 -B ,
C aso
#
22.
O b s e r v a m o s v a c u o liz a c ió n
de
lo s
m o n o c it o s ,
con
una
M O N 0 .3 2 , E O S 0 . 1 6 y B A S 0 . 0 1 . C it o g r a m a e
im a g e n e n s a c a b o c a d o , q u e n o s o r ie n t a a l a p o s i b i l i d a d d e u n p r o c e s o
h is t o g r a m a q u e c o i n c i d e n c o n l o s d a t o s . A L S . D i c e n
o n c o l ó g i c o ( N a e g l i ) , q u e s e h a n o b s e r v a d o e n d is t in t o s c a s o s d e c á n c e r .
b la s t o s d e l i n f o c i t o s y e r it r o c it o s n u c l e a d o s .
I n f e r i m o s q u e e l e q u ip o c o n f im d e l a s v a c u o l a s c o n n u c l é o l o s .
C aso # 2. L E U
C a s o # 2 . S e e f e c t ú a l a im a g e n
d e A m e t í l 0 - 1 1 - 4 8 - 3 6 - 5 e n n e u t r ó f il o s y
0 . 8 0 , E O S 0 . 1 2 y B A S . 0 4 . C i í o ^ a m a e h is t o g r a m a
se
la
n o r m a l , A L S i n t e r f e r e n c ia d e le u c o c it o s .
p l e o c a r i o c it o s d e P ít t a l u g a ( m á s d e 5 s e g m e n t o s n u c l e a r e s )
C a s o # 3 . L E U 8 .6 , N E U 6 , 1 , L I N 2 . 0 , M O N 0 .4 , E O S
C a s o # 3 . S e o b s e r v a r o n e r it r o b la s t o s q u e s i m a r c a e l e q u ip o p e r o n o l a
8 .3 0 , N E U 6 .4 0 , L I N 0 .9 4 -, M O N
o b se rv a
una
d e s v ia c ió n
a
d e re ch a
y
la
p re sa d a
de
escaso s
0 . 1 y B A S 0 . 0 a b s o lu t o s , d a t o s q u e c o i n c i d e n c o n e l
p r ie n d a
c it o g r a m a e h is t o g r a m a . A L S . N e u t r ó f i l o s in m a d u r o s ,
p l a s m á t ic a s .
a n is o c i t ó s i s , e r it r o c it o s n u c l e a d o s y t r o m b o c it o p e n ia .
C a s o # 6 . S e o b s e r v a r o n m o n o c it o s c o n c i t o p l a s m a v a c u o l a d o , e s c a s o s
C a s o # 6 . L E U 5 .2 , N E U 3 .1 , L I N
1 .4 , M O N 0 .6 , E O S
0 . 0 - B y B A S 0 .0 . D a t o s q u e c o in c id e n c o n e l
lin f o c it o s
de
m o n o c it o s
con
v a c u o ia d o s
v a c u o la s e n s u
ni
n ú c le o , lo
la
que
p r e s e n c ia
in f ie r e
de
que
c é lu la s
e l a p a ra to
c o n f u n d e la s v a c u o la s n u c le a r e s c o n n u c lé o lo s .
h is t o g r a m a y e l c i t o g a m a . A L S . B l a s t o s d e l i n f o c i t o s .
C aso
C a s o # 1 0 . L E U 9 .6 , N E U 2 . 8 - B , L I N
r e g e n e r a t iv a ) , q u e n o m a c a e l e q u ip o y v a c u o l a s e n l o s e o s i n ó f i l o s ( d a t o
1 . 4 , M O N 0 .6 ,
#
10 .
Se
o b se rv ó
la
p r e s e n c ia
de
m ie lo c it o s
(d a to
de
a c c ió n
E O S 4 . 8 - A y B A S 0 . 0 - B . E l h is t o g r a m a y e l c it o g r a m a
d e a c c i ó n d e g e n e r a t iv a ) .
c o in c id e n c o n lo s d a t o s . A L S . M a r c a n e o s in o f ilia .
C a s o # 2 1 . S e c o r r o b o r a l a a n e m ia , p e r o l o q u e l l a m a l a a t e n c ió n e s l a
C aso # 2 1 . L E U
EO S
0 .1
y
B A S
6 .6 . N E U
0 .0 .
5 .2 , L I N
0 .9 -B , M O N
0 .3 ,
E l c it o g r a m a m u e s t r a a l g u n a s
p r e s e n c ia d e
p o lis e g m e n t a c ió n
de
a l g u n o s n e u t r ó f il o s y
la
p r e s e n c ia
ú n ic a m e n t e d e l 0 . 0 6 d e l i n f o b l a s t o s e n c i f r a s a b s o lu t a s
c é l u l a s d e g r a n t a m a ñ o a l i g u a l q u e h is t o g r a m a . A L S .
D i c e n ú n ic a m e n t e a n e m ia .
ALS = ALARMAS
B
=BAJO.
= NORMAL.
A
= ALTO.
3
Valores absolutos = X 10.
105
VI. n i . Parámetro Plaquetario
AUTOMATZACION
# CASOS
C A S O # 5 . P L T 7 3 2 - A , V M P 8 .4 , H S T q u e c o i n c i d e
TROMBOCITOSIS
5
C A SO
1 6 5 6 ,0 0 0 x m m 3 , p o r lo q u e s e c o n s id e r o c o m o m a r c a d o a u m e n t o ,
l a s p la q u e t a s .
y a q u e e s m á s d e l d o b le d e l a c u e n t a a u t o m a t iz a d a .
C A S O # 1 . P L T 2 .7 -B , V M P de 4 .8 2 -B y u n H S T q u e
#
C A SO
2. P L T
38, V M P
1 0 .2 , H S T
con una cu rv a
i r r e g u l a r in d ic a n d o p la q u e t a s d e m a y o r t a m a ñ o . A L S
y
10
C A SO
#
a lg u n a s
3.
P LT
8 0 -B ,
p la q u e t a s
VM P
g ra n d e s.
H S T
s e ñ a la n d o
a g l u t i n a c ió n
de
p la q u e t a s .
C A SO
#
P L T
4 7 -B ,
VM P
1 0 .9 -A ,
H S T
que
y t r o m b o c it o p e n ia .
#
una
m e d ia n a
d is m in u c ió n .
#
2 . F re c u e n te s
6.
c u e n t a e n f r o t is 7 3 6 , 0 0 0 x m m 3
1 1 3 -B ,
VM P
1 1 .1 -A ,
H ST
# 7. P L T
4 1 -B , V M P
8 .9 , H S T
q u e c o in c id e
8. P L T
d a to s.
2 1 -B , V M P
A L S
1 2 .1 -A , H S T
c o in c id e
g ig a n t e s
y
q u e s e c o n s id e r a m a r c a d o
#
4 . F r e c u e n t e s m e d ia n o s a c u m u l o s y e s c a s o s p e q u e ñ o s , c o n
u n a c u e n t a e n f r o t is d e 5 6 8 , 0 0 0 x m m 3 p o r l o q u e s e c o n s i d e r ó l i g e r o
C A SO
#
Se
le
da
c r é d it o
a l e q u ip o
en
cu a n to
a
6 . S e r e c o r r i ó d o s f r o t is d e l a m u e s t r a y
a g lu t in a c ió n
p la q u e t a s
p o r lo
a u m e n t o . S e o b s e r v a r o n p la q u e t a s c o n e s c a s o g r a n u l ó m e r o .
C A SO
P L T
c o n l o s d a t o s . A L S t r o m b o c it o p e n ia .
#
se
una
n o r m a le s 2 1 8 , 0 0 0 x m m 3 .
a g l u t i n a c i ó n d e p la q u e t a s .
lo s
de
p e q u e ñ o s y e s c a s o s m e d ia n o s a c u m u l o s d e
a u m e n to .
con
m ucho
p la q u e t a s p o r l o q u e l a c u e n t a e n e l f r o t is r e s u lt o d e n t r o d e l a s c i f r a s
li g e r a m e n t e a l a d e r e c h a , l o q u e c o i n c i d e c o n l o s d a t o s .
C A SO
d is t a
p la q u e t o p é n ia g r a v e .
A L S a g l u t i n a c i ó n d e p la q u e t a s .
C A SO
Que
C A S O # 3 . F r e c u e n t e s m e d ia n o s y p e q u e ñ o s a c u m u l o s d e p la q u e t a s ,
4.
c o i n c i d e c o n l o s d a t o s . A L S a g l u t i n a c i ó n d e p la q u e t a s
C A SO
# 1 . S e e n c o n t r a r o n a l g u n o s p e q u e ñ o s a c u m u l o s p la q u e t a r io s
c o n s id e r o
C A SO
8 .6 ,
A LS
C A SO
p o r l o q u e l a c u e n t a e n f r o t is f u e d e 9 5 , 4 4 6 x m m 3 , e s t e c a s o
p la q u e t a s g ig a n t e s y t r o m b o c it o p e n ia .
1, 2, 3, 4,
6, 7, 8, 9
5 . S e o b s e r v ó u n a t r o m b o c it o s is e x t r e m a c o n u n c o n t e o d e
c o n lo s d a t o s . A L S n o m e n c io n a n n a d a c o n e s p e c io a
c o i n c i d e c o n lo s d a t o s . A L S t r o m b o c it o p e n ia .
TROMBOCITOPENIA.
OBSERVACION MICROSCOPICA
#
de
la s
p la q u e t a s ,
se
e n c o n tra ro n
la
a la r m a
de
n o se o b se rv ó
h o m o g é n e a m e n te
d is t r ib u id a s y e s c a s a s p la q u e t a s g r a n d e s , c o n u n a c u e n t a d e 3 8 8 , 5 6 0
X m m 3 p o r lo q u e s e c o n s i d e r o e s t e c a s o c o m o p la q u e t a s n o r m a le s .
t r o m b o c it o p e n ia . C a s o d e u n a p o l i g l o b u l i a d e 7 . 5 2 .
C A SO
C A SO
p la q u e t a s c o n e s c a s o g r a n u l ó m e r o , l a c u e n t a f u é d e 1 6 3 2 0 0 x m m 3
# 9 . P L T 4 .9 -B , V M P 8 .9 7 , H I S
q u e c o in c id e
c o n l o s d a t o s . A L S t r o m b o c it o p e n ia .
C A SO
con
d a to s.
A L S
a g lu t in a c ió n
t r o m b o c it o p e n ia y p la q u e t a s g ig a n t e s .
7.
Se
o b se rv ó
e scaso s
pequeños
a c u m u lo s
y
a lg u n a s
p o r l o q u e s e c o n s i d e r o c o m o n o r m a l e s o d is c r e t a d i s m i n u c i ó n .
# 1 0 . P L T 4 . 3 - B , V M P 8 .3 , H S T q u e c o in c id e
lo s
#
de
p la q u e t a s ,
C A SO
#
8. E n
la s
f o t o g r a f ía s
se
co rro b o ra
la
p o lig lo b u lia ,
con
d i s m i n u c i ó n d e p la q u e t a s y e s c a s a s p la q u e t a s g ig a n t e s , l a c u e n t a e n
e l f r o t is f u e d e 5 6 , 0 0 0 x m m 3 l o q u e s e c o n s i d e r a u n a d i s m i n u c i ó n
n o m u y g r a v e , c o m o l a q u e m a r c a l a a u t o m a t i z a c ió n .
C A SO
#
9.
Se
o b se rv ó
cam p o s
con
escasas
p la q u e t a s
y
o tro s
c a m p o s c o n g r a n d e s a c u m u l o s p la q u e t a r io s . L a c u e n t a e n f r o t is f u e
ALS = ALARMAS
B
= BAJO
= NORMAL
A
= ALTO
3
Vis absolutos: x 10
d e 1 6 6 2 , 6 3 0 x m m 3 p o r l o q u e s e c o n s i d e r a e x t r a o r d in a r io a u m e n t o .
C A SO
# 1 0 . E n l a s f o t o g r a f ía s s e o b s e r v a n c a m p o s s i n p la q u e t a s y
o t r o s c o n f r e c u e n t e s p e q u e ñ o s a c u m u l o s p la q u e t a r io s , l a c u e n t a e n
f r o t is
fu e
n o r m a le s .
d e 4 0 2 ,0 0 0
x
mm3
p o r lo
que
s e c o n s id e r ó
p la q u e t a s
'
106
CONCLUSIONES Y PROPUESTAS.
Se ha mencionado que la Citomorfología Hematológica pasó de moda y que
ha sido sustituida por la automatización y técnicas modernas de identificación celular
por marcadores citoquímicos, antigénicos y genéticos. La morfología de las células
sanguíneas es una de las herramientas fimdamentales de la que se originaron
numerosas ramas como son: Laboratorio Clínico, Anatomía Patológica,
Quimioterapia, Genética, bimunológia. Patología Clínica y Medicina Transfusional,
entre otras, además de que ha sido una de las bases de la medicina moderna y no ha
perdido actualidad. La morfología es actual y peraianente, por que la estructura
corporal humana no sufiie variaciones i n m e d i ^ en la evolución, y si así fuera, la
morfología las descubriría La sangre, como parte del todo corporal, sigue siendo el
tejido más accesible y más fácilmente contemplable; su observación directa por el
microscopio seguirá siendo tan común y elemental, y al mismo tiempo tan valiosa,
como observar diariamente otras partes de nuestra estructura anatómica exterior. Se
sumaran otras técnicas sofisticadas, que solo comprobaran que son variaciones de la
misma ciencia: la identificación celular. La morfología de las células hemáticas no
desaparecerá pero s ^ i r á requiriendo de profesionistas capases para
reconocerla.
La descripción y análisis de los casos mencionados en este trabajo de
investigación, fortalece el título de la tesina y aunque el programa convencional
establecido por el I>r. Cruz en la sección de Hematología del laboratorio central es
acertado, se comprueba la necesidad de ampliar más el p ro ^ m a , adiestrando más
personal en la observación microscópica, para detectar alteraciones citomorfológicas
que podrían vislumbrar procesos patológicos, acortando el tiempo del diagnóstico y
del tratamiento.
Parám etro Eritrociterio.
Se comprobó que de manera cotidimia en un 10% de los estudios, la
automatización no detectó alteraciones morfológicas de importancia para el trabajo
clínico respecto al diagnóstico, pronóstico y tratamiento de diversas patologías, por lo
que se hace la siguiente propuesta.
Se propone pasar a Observación Microscópica no solo las anemias por de
bajo de 8 gr de hemoglobina, sino también en los casos con anemia de 2 gr de
hemoglobina por debajo de las ciñas de referencia, lo que incrementaría el porcentaje
de casos para la observación microscópica, de esta manera detectaríamos con más
anticipación otras patologías como son: las deficiencias enzimáticas y las
hemoglobinopatias.
Parám etro Leucocitarío.
Con los casos anteriores quedó comprobada la necesidad de la observación
microscópica, por que sin duda demostramos que se logró más especificidad ai
observm- alteraciones morfológicas que la automatización no detecta, de esta forma
apoyamos al trabajo clínico.
Se propone que en la observación microscópica de las neutrofilias, se realice
la imagen de Schilling y en algunos casos la imagen de Ameth, que junto con las
107
alteraciones regenerativas y degenerativas obtendríamos mayor especificidad en los
resultados. Así como en las monocitósis arriba de 1,200 x ml3 para la observación del
tipo de vacuolas en el citoplasma y en el núcleo ya que se ha comprobado la presencia
de las vacuolas en sacabocado en los casos con diagnósticos oncológicos. Poner más
atención en la cuenta de basófilos, aunque esta sea muy escasa, ya que estos son muy
importantes por la participación en la regeneración del campo de batalla celular.
Parámetro Plaquetarío.
Se pudo demostrar con los casos la importancia de tener conocimiento en
Citomorfologia Hematológica. Se observó en una buena cantidad de los casos de
Trombocitopenia qüe ésta no existía y si, la presencia de aglutinación de plaquetas,
esto ya es reconocido por algunos autores, estos mencionan que el EDTA provoca
aglutinación
de plaquetas, pero hay que irse con cuidado ya que puede
corresponderse a alteraciones de función en distintas patologías. Así también, hemos
comprobado que en las trombocitosis la cuenta de la automatización es menor a la
cuenta plaquetaria en fi'otis y esto hace que varié la impresión diagnostica.
La propuesta es establecer como trabajo cotidiano en la aglutinación de
plaquetas, la toma de otra muestra con un anticoagulante distinto al EDTA, para así
poder comprobar si la aglutinación es propia del paciente o bien causada por el
anticoagulante. Además de mejorar la observación microscópica en cuanto a
morfología plaquetária para poder'orientar sobre un caso de problema genético.
108
CONCLUSIÓN FINAL.
Con este trabajo de tesina, concluyo que es necesario no dejar como dato
histórico la observación microscópica, ya que considero que se ha incrementado la
necesidad del conocimiento de Citomorfología Hematológica, debido a que es
innegable el avance tecnológico en la automatización hematológica, apareciendo
varios sistemas hasta llegar al citómetro de flujo, pero como consecuencia de esto,
también aumenta considerablemente el costo por estudio, si bien, con un uso
adecuado de un simple estudio de rutina tan importante, como es la biometria
hemática y la observación microscópica, que siguen siendo necesarios en la cabecera
del enfermo, se podría encaminar a un diagnostico más específico o en algunas
ocasiones resolver muchos de los casos sin tener que aumentar los costos. Por lo que
considero importante y necesario que el Médico y el Químico que labora en una
sección de hematología tenga conocimientos profimdos en cuanto a morfología y así
no correr el riesgo de ser rebasados por la automatización, para que de esta manera
no se cometan errores que repercutan directamente en el paciente, en cuanto a su
salud o bien en cuanto a su economía.
PROPUESTAS FINAL.
El uso de la automatización es muy indispensable, principalmente en los
hospitales de concentración, claro esta, siempre supervisados con personal Médico y
Paramèdico debidamente instruidos para cumplir cabalmente con esta fimción. Se
propone hacer énfasis en el estudio de la Citomorfología Hematológica Básica, así
como también en automatización ¿de qué manera? creando cursos en las instituciones
de enseñanza, tanto de nivel técnico como profesional, en las carreras afines a la
medicina, con personal debidamente capacitado.
109
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