susceptibilidad o resistencia de los mosquitos adultos

MÉTODO DE ENSAYO
SUSCEPTIBILIDAD O RESISTENCIA DE
LOS MOSQUITOS ADULTOS A LOS
INSECTICIDAS
MET-CNSP-003
Ed. Nº
Ej. N°
01
F.E.: 2003-05-12
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SUSCEPTIBILIDAD O RESISTENCIA DE LOS
MOSQUITOS ADULTOS A LOS INSECTICIDAS
ELABORADO POR:
CNSP Blga. Miriam Graciela Palomino Salcedo
REVISADO POR:
CNSP Blga. Rosario Balta León
CNSP Blgo. Pablo Edilberto Villaseca Castro
CNSP Blga. Magna Suárez Jara
CNSP Blga. Miriam Guevara Robles
CNSP Blgo. George Obregón Boltan
APROBADO POR:
INFORME N° 003-05-DEET-CNSP/INS
FECHA: 2005-09-16
EL PRESENTE DOCUMENTO SE DISTRIBUYE COMO COPIA NO CONTROLADA Y TIENE UNA VIGENCIA DE 2 AÑOS CONTADO A PARTIR DE LA
FECHA DE SU APROBACIÓN
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Y ACTUALIZA LAS EDICIONES VIGENTES DEL MISMO
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INDICE
CARÁTULA
Pág.
1
INDICE
2
1.
OBJETIVO
3
2.
CAMPO DE APLICACION
3
3.
REFERENCIAS
3
4.
DEFINICIONES
3
5.
RESPONSABILIDADES
4
6.
FUNDAMENTO DEL METODO
4
7.
DESARROLLO DEL METODO DE ENSAYO
4
7.1.
TIPO DE MUESTRA
8
7.2.
PREPARACIÓN DE MUESTRAS
8
7.3.
CONDICIONES PREVIAS
4
7.4.
ASPECTOS DE BIOSEGURIDAD
5
7.5.
EQUIPOS Y MATERIALES
5
7.6.
EJECUCIÓN DEL MÉTODO
6
8.
EXPRESIÓN DE RESULTADOS
8
9.
INFORME DE RESULTADOS
8
10.
CONFIABILIDAD DEL MÉTODO
9
11.
REGISTROS
9
12.
ANEXOS
10
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1.
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OBJETIVO
Evaluar el grado de susceptibilidad o resistencia de poblaciones de
mosquitos adultos a insecticidas de uso en salud pública y detectar la
aparición de una variedad resistente en un determinado período de tiempo.
2.
CAMPO DE APLICACIÓN
El presente método de ensayo es aplicable a los ingredientes activos de los
insecticidas organofosforados, organoclorados, carbamatos y piretroides
de uso en salud pública.
3.
REFERENCIAS
3.1.
OMS (1970). Resistencia a los Insecticidas y Lucha Contra los Vectores.
17° Informe del Comité de Expertos de la OMS en Insecticidas.
Organización Mundial de la Salud Serie de Informes Técnicos N° 443.
3.2.
OMS (1981). Instrucciones para determinar la susceptibilidad o resistencia
de los mosquitos adultos a los insecticidas carbamatos, organoclorados y
organofosforados. WHO/VBC/81.806.
3.3.
WHO (1981). Instructions for determining the susceptibility or resistance of
adult mosquitoes to organochlorine, organophosphate and carbamate
insecticides establishment of the base-line. WHO/VBC/81.805.
3.4.
OMS (1992). Resistencia de los vectores de enfermedades a los
plaguicidas. Serie de Informes Técnicos N° 818.
3.5.
Molina D. (1995). Estudio de la susceptibilidad a insecticidas
organofosforados y piretroides en cepas de Aedes aegypti (Linn.) de cinco
estados de Venezuela
3.6.
WHO (1998). Test procedures for insecticide resistance monitoring in
malaria vectors, bio efficacy and persistence of insecticides on treated
surfaces. WHO/CDC/CPC/Mal/98.12.
3.7.
Enviromental Health Project (1999). Activity Report N° 60. Malaria in the
Peruvian Amazon: A review of the epidemiology, entomology and
insecticide resistance of vectors. Prepared for USAID Misssion to Peru
under EHP Activity N° 353-CC.
3.8.
WHO (2001). Supplies for monitoring insecticide resistance in disease
vectors. Procedures and conditions. WHO/CDS/CPE/PVC/2001.2
3.9.
INS (2002). Susceptibilidad de los vectores de Malaria a los insecticidas en
el Perú: Informe Técnico N° 5 Evaluación de la Susceptibilidad a los
Insecticidas a los Mosquitos adultos del género Anopheles de las Regiones
Maláricas del Perú. Lima-MINSA.
4.
DEFINICIONES
4.1.
ingrediente activo: El componente de una formulación, responsable de la
actividad biológica directa o indirecta contra plagas.
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4.2.
insecticida: Compuesto químico utilizado para matar insectos. Los
insecticidas son utilizados para controlar plagas en la agricultura e insectos
que afectan la salud humana y animal.
4.3.
resistencia: Respuesta atenuada de una población de especies animales
o vegetales, a un insecticida o a un agente enemigo, como consecuencia
de su aplicación.
4.4.
susceptible: Capaz de recibir modificación o impresión.
Siglas
CNSP: Centro Nacional de Salud Pública.
DEET: Dirección Ejecutiva de Enfermedades Transmisibles
i.a.: Ingrediente activo.
OMS: Organización Mundial de la Salud.
5.
RESPONSABILIDADES
5.1.
El Director Ejecutivo de la DEET revisa y firma los Informes de Resultados
producto del desarrollo del presente método de ensayo.
5.2.
El Coordinador de Enfermedades Metaxénicas es responsable de
supervisar y hacer cumplir todos los aspectos relacionados a la aplicación
del presente método de ensayo.
5.3.
El Coordinador del Laboratorio de Entomología es responsable de revisar,
verificar y supervisar la conformidad de los resultados de los análisis
desarrollados mediante la aplicación del presente método de ensayo.
5.4.
El analista del Laboratorio de Entomología del CNSP/INS es responsable
de la ejecución del ensayo de susceptibilidad por el método de
susceptibilidad o resistencia de los mosquitos adultos a los insecticidas,
asimismo, coordina todas las actividades inherentes a la evaluación, así
como el registro y emisión de resultados.
5.5.
El responsable de Entomología del Laboratorio de Referencia Regional,
participa en la prueba como analista y coordina las actividades de colecta
de mosquitos.
5.6.
El personal de campo participa en la colecta de mosquitos y acompañan en
la ejecución de la evaluación.
6.
FUNDAMENTO DEL MÉTODO
Los procedimientos biológicos permiten determinar la actividad de una
sustancia en función de sus efectos sobre los seres vivos. Los bioensayos
utilizando varios lotes de mosquitos expuestos durante diversos periodos a
la acción de papeles con impregnación normal de insecticidas y su
posterior conservación durante 24 horas, son utilizados para determinar la
mortalidad. Los grados de susceptibilidad son determinados mediante el
establecimiento de la relación directa entre exposición y mortalidad. A fin
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de fijar en toda su amplitud los márgenes de variación natural, conviene en
lo posible repetir la operación en varias localidades y en diferentes épocas
del año. Aunque no se pueda establecer con precisión el grado general de
susceptibilidad (por ejemplo, en una población virgen) a consecuencia de
haber hecho aplicaciones de insecticidas con cualquier finalidad, debe
determinarse inmediatamente el grado de susceptibilidad de la especie
vectora. El tiempo de exposición para los testigos es el más prolongado
tanto como se emplee con el papel impregnado con insecticida.
7.
DESARROLLO DEL MÉTODO DE ENSAYO
7.1.
Tipo de muestra
Muestras biológicas de cepas de mosquitos de Anopheles sp y Aedes sp.
7.2.
Preparación de muestras
7.2.1.
Los mosquitos Anopheles sp son capturados en refugio animal y con cebo
humano (por ser inminentemente antropofílico) y son mantenidos en vasos
de 1 L de capacidad cubiertos con tela organza a manera de tapa y
sujetado con ligas delgadas.
Luego los mosquitos son colocados en cajas de tecnopor en un lugar
donde la temperatura no sea superior a 30°C, hasta las primeras horas de
la mañana siguiente de haber sido capturados.
7.2.2.
Los mosquitos Aedes sp son obtenidos de huevos o larvas criadas en
laboratorio, con un suministro de alimento adecuado para asegurar la
uniformidad del tamaño.
7.3.
Condiciones previas
7.3.1.
Condiciones que deben reunir los mosquitos.
7.3.1.1.
Se emplean exclusivamente mosquitos hembras, de preferencia recién
alimentadas y con sangre en el estómago.
7.3.1.2.
En caso exista escasez de mosquitos, se emplea una mezcla de hembras
alimentadas y no alimentadas, siempre que se determine la proporción
entre unas y otras.
7.3.1.3.
Cuando no sea posible conseguir un número suficiente de mosquitos
adultos para la prueba, puede obtenerse la cantidad precisa recogiendo
mosquitos en estadíos inmaduros y mantenerlos en el laboratorio hasta su
emergencia a adulto.
7.3.1.4.
En ciertos casos puede trabajarse exclusivamente con hembras que no
hayan ingerido sangre, como las mantenidas en el laboratorio.
7.3.2.
Condiciones que debe reunir el ensayo.
7.3.2.1.
Conviene efectuar las pruebas en un local cerrado, no contaminado por
insecticidas ni expuesto a condiciones extremadas de temperatura,
humedad relativa, iluminación o ventilación.
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7.3.2.2.
Siempre que sea posible las pruebas comparativas se ejecutan en
condiciones idénticas de humedad relativa y temperatura.
7.3.2.3.
El transporte de los insectos a un laboratorio alejado produce con
frecuencia muertes por causas ajenas a la acción del insecticida, lo que se
pone de manifiesto por la alta mortalidad de los testigos.
7.3.2.4.
El kit de susceptibilidad y/o los insecticidas pueden ser ordenados
separadamente. Para los insecticidas la orden debe especificar el
insecticida y el número del conjunto de estuches para organoclorados,
organofosforafos, carbamatos y piretroides.
7.4.
Aspectos de bioseguridad
7.4.1.
Los analistas del laboratorio de Entomología deben estar especialmente
capacitados e instruidos de los peligros potenciales provenientes de los
productos a manipular y de las operaciones relacionadas a su trabajo y con
conocimiento de las medidas de bioseguridad correspondientes y
pertinentes.
7.4.2.
Para una debida protección es necesario que los analistas del laboratorio
de Entomología conozcan la toxicidad de los productos a manipular, las
propiedades físicas, así como las vías de entrada al cuerpo, los síntomas
de intoxicación y el tratamiento de primeros auxilios para atender cualquier
caso de intoxicación.
7.4.3.
Los analistas del laboratorio de Entomología no deben ingerir alimentos
durante la manipulación del insecticida, y al final de la jornada deben de
mudarse la ropa antes de consumir alimento alguno.
7.5.
Equipos y materiales
7.5.1.
Componentes del Kits de Susceptibilidad.
- Doce (12) tubos de plástico de 125 mm de longitud por 44 mm de
diámetro:
Cinco (5) tubos de exposición marcados con un punto rojo.
Dos (2) tubos control marcados con un punto verde.
Cinco (5) tubos de reposo marcados con un punto verde.
- Siete (7) correderas, cada uno con una tapa rosca a cada lado, y con un
orificio de carga de 20 mm.
- Paquetes de papeles impregnados con insecticidas
- Cuarenta (40) hojas de papel limpio (12 x 15 cm) para forrar
interiormente los tubos de reposo y observación.
- Catorce (14) resortes angulares (7 de plata y 7de cobre) para sujetar los
papeles aplicados a la pared interior de los tubos.
- Dos (2) tubos aspiradores de vidrio de 12 mm de diámetro interior, y un
(1) tubo flexible de 60 cm de longitud.
- Un (1) rollo de cinta adhesiva.
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- Cuatro (4) m de gasa.
- Dos (2) rollos de papel toalla.
- 4 copias de formulario Anexo A.2.
7.5.2.
Papeles impregnados con insecticidas
Los papeles impregnados con insecticidas son preparados en la University
Sains Malaysia (USM), Penang, Malaysia (centro autorizado por OMS). En
forma de rutina los papeles son preparados solamente con las
concentraciones discriminatorias (Anexo B).
Los papeles impregnados con las concentraciones discriminatorias son
aprovisionados en cajas de plástico; cada caja contiene 8 papeles.
7.6.
Ejecución del método
7.6.1.
Dentro de cada uno de los tubos sostenedores se inserta un pedazo de
papel blanco limpio enrollado en forma cilíndrica para cubrir las paredes, se
sujeta con un aro de acero. Se fija las unidades de correderas a los tubos
(Anexo C).
7.6.2.
Se colecta hasta 100 mosquitos hembras (Anopheles sp o Aedes sp) con
un aspirador previsto. El daño a los mosquitos por mal manejo durante la
recolección puede causar mortalidades engañosas. Los mosquitos son
recolectados en lotes de no más de 10 y cuidadosamente transferidos a los
tubos de reposo por el hueco que hay a cada lado hasta que haya de 20 a
25 por tubo. Cualquier variación de estas cantidades puede disminuir la
veracidad de los resultados.
7.6.3.
Puede ser necesario un periodo de prueba para asegurar que los
especimenes dañados no se incluyan en la prueba. Con este propósito los
tubos de mantenimiento se colocan parados con la redecilla para arriba
durante 1 hora. Al final de este periodo se extraen los insectos dañados.
7.6.4.
El analista coge los papeles impregnados con ingrediente activo de
insecticida (organofosforado, organoclorado, carbamato y piretroide) con
guantes y pinzas de punta fina.
7.6.5.
Se coloca una hoja de papel impregnado enrollado dentro de cada cilindro
o tubos de exposición (kits de susceptibilidad para mosquitos adultos) para
cubrir las paredes y se sujeta en esa forma con un aro de cobre.
7.6.6.
Mejorar la redacción. Después que un papel impregnado ha sido extraído
del paquete, éste debe ser sellado cuidadosamente con la cinta adhesiva.
Para el almacenamiento los paquetes son mantenidos en un sitio fresco
pero no en refrigeración.
7.6.7.
Se introducen los mosquitos en el tubo de exposición sujetando éste a la
parte libre de la corredera que se jala hacia fuera hasta el punto en que la
abertura esté totalmente libre de tal manera que no obstruya la boca del
tubo; los mosquitos son soplados suavemente hacia dentro del tubo de
exposición. Se cierra la corredera, se quita el tubo de mantenimiento
colocándolo aparte.
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7.6.8.
Los tubos de exposición son acomodados parados con la rejilla hacia arriba
durante el periodo requerido y bajo condiciones de iluminación difusa y
moderada y humedad adecuada.
7.6.9.
Al final del periodo de exposición requerido, se transfieren los mosquitos al
tubo de mantenimiento por el procedimiento inverso. Cuando algunos
mosquitos han sido derribados durante el periodo de exposición se
sostienen en forma horizontal desalojando los insectos de la corredera
antes de sacar los otros, mediante una suave adherencia al dedo del
operador.
7.6.10.
Se conecta el tubo de espera, se abre la corredera soplando los mosquitos
dentro del otro tubo; se cierra la corredera y se quita el tubo de exposición.
Luego se coloca el tubo de espera parado sobre la corredera, colocando
sobre la rejilla un algodón mojado con agua. Las cajas de cartón, tazas,
etc. pueden utilizarse en vez de los tubos de mantenimiento siempre y
cuando esto sea constante.
7.6.11.
Se mantienen los tubos por 24 horas en un lugar apartado y a la sombra
donde la temperatura no exceda los 30°C (25°C± 2°C) y entre 70%Hr a
80%Hr. Siempre que sea posible las temperaturas máximas y mínimas del
lugar donde están los tubos son registradas. Si es necesario los tubos son
protegidos de las hormigas colocando los tubos en una plataforma puesta
en un recipiente con agua. Si las condiciones son muy cálidas y secas, se
puede preparar una cámara de humedad al colgar toallas húmedas en un
recipiente controlando las temperaturas máximas y mínimas dentro.
7.6.12.
La mortalidad se cuenta después de las 24 horas. Se extraen los
mosquitos muertos, quitando la corredera con cuidado y separando los
tubos.
7.6.13.
Los insectos afectados que no puedan caminar deben contarse como
muertos, si hay dificultad en contar los mosquitos vivos se sacude
fuertemente el tubo para aturdirlos o anestesiarlos.
7.6.14.
Se realizan 4 a 5 réplicas de 20 a 25 mosquitos por tubo con cada dosis
diagnóstico y 1 a 2 controles con los papeles impregnados en el aceite.
7.6.15.
Si la mortalidad en los testigos excede de 20% a pesar de ser
insatisfactoria, los resultados son registrados y se realiza una investigación
de las causas de tal mortalidad, tomando las precauciones necesarias para
prevenirlas. Una posible causa es que los mosquitos fueron colectados de
sitios fumigados. En tal caso es necesario colectar los ejemplares de
lugares no rociados o probar con mosquitos provenientes de pupas o
larvas de esos lugares.
7.6.16.
Cada papel impregnado puede ser utilizado hasta 20 veces (OMS, 1981) o
hasta tres semanas después de ser extraído del paquete, si se han tomado
todas las precauciones posibles para evitar la evaporación de la solución
insecticida. Con este fin los papeles son dejados en los tubos con las
aberturas bien tapadas y colocadas en el estuche de prueba el cual a su
vez se mantiene en un lugar fresco. Ningún papel es utilizado después de
tres semanas de haber sido sacado del paquete. Sin embargo, la OMS
(WHO, 1998) sugiere también que para los papeles impregnados con
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piretroides no se usen más de 5 veces (en relación con los datos
disponibles que demuestren eficacia sobre esta gama).
7.6.17.
Cuando se realizan pruebas con papeles impregnados con insecticidas
piretroides, los tubos de exposición permanecen en posición horizontal,
debido a que estos insecticidas tienen un efecto knock-down (derribados) y
los mosquitos pueden ser derribados rápidamente sin permanecer el
tiempo establecido para cada insecticida y especie de mosquito en
contacto con el mismo.
8.
EXPRESIÓN DE RESULTADOS
8.1.
Los resultados de los ensayos de susceptibilidad por el método de
susceptibilidad o resistencia de los mosquitos adultos a los insecticidas se
expresan como el porcentaje de mortalidad de los mosquitos expuestos a
60 minutos, a 24 horas de recuperación.
8.2.
La interpretación de resultados se realiza considerando los rangos
sugeridos por la OMS:
-
De 98 a 100% de mortalidad indica susceptibilidad.
-
De 80 a 97% mortalidad sugiere la posibilidad de resistencia que
necesita ser confirmada.
-
<80% de mortalidad sugiere resistencia.
Cuando la mortalidad es <95% en ensayos que son conducidos por debajo
de las condiciones óptimas con un tamaño de muestra >100 mosquitos
entonces la resistencia puede ser fuertemente sospechosa.
9.
INFORME DE RESULTADOS
Los resultados de las evaluaciones descritas en el presente documento son
reportados en los formularios autorizados por el CNSP.
10.
CONFIABILIDAD DEL MÉTODO
10.1.
Si la mortalidad en los tubos control está entre 5% y 20%, los porcentajes
de mortalidad son corregidos por la Fórmula de Abbott:
Mortalidad media= % Mortalidad mosquitos expuestos – % Mortalidad mosquitos control X 100
100 – % Mortalidad mosquitos control
10.2.
Si la mortalidad en los tubos excede al 20%, los resultados son registrados
pero no corregidos. La precisión de la interpretación de los resultados
depende de la confiabilidad de los datos obtenidos. Utilizando el máximo
número de ejemplares por tubo (25) disminuye el efecto de las diferentes
respuestas de los individuos.
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REGISTROS
La información originada por la susceptibilidad o resistencia de los
mosquitos adultos a los insecticidas y toda información generada por esta
actividad, son registrados en los formularios anexos.
12.
ANEXOS
ANEXO A: Formularios
ANEXO
A.1: FOR-001 MET-CNSP-003 Método de ensayo de
susceptibilidad o resistencia de los mosquitos adultos a los
insecticidas.
ANEXO
A.2: FOR-002 MET-CNSP-003 Determinación
discriminato-rias en mosquitos adultos.
de
de
ANEXO B:
Concentraciones
discriminatorias
utilizados en el control de Malaria.
ANEXO C:
Ensayo de susceptibilidad para mosquitos adultos
dosis
insecticidas
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ANEXO A.1
FOR-001 METCNSP-003
FORMULARIO
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ENSAYO DE SUSCEPTIBILIDAD
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DE LOS MOSQUITOS ADULTOS A LOS
INSECTICIDAS)
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Nombre del evaluador:
Nombre y dirección de la Institución:
Información del Área
País
Departamento
Localidad
Distrito
Coordenadas geográficas: N/S
E/O
Breve descripción del área
Elevación
Cultivo principal (s)
Especifique los insecticidas usados en el área muestreada
Salud pública
Mosquitero tratado con insecticida:
por cuanto tiempo (años)
Aplicación residual en la vivienda:
por cuanto tiempo (años)
Larvicida:
por cuanto tiempo (años)
Agricultura:
por cuanto tiempo (años)
Información de la muestra
Especie evaluada
Miembro de complejo
Sexo:
Edad (días)
(si es relevante)
(cuando sea aplicable)
Estado fisiológico:
No alimentada con
Alimentada con
Semi-grávida
Grávida
Técnica muestreo:
Colecta de larvas
Progenie F1
Atrayente persona
Trampa con animal
Otros (especificar):
Colecta de larvas, tipo de criadero:
Charcos de agua:
Pozos:
Brazo del río
Canal de irrigación
Depósitos:
Otros:
Información del insecticida
Insecticida evaluado
Concentración
Papeles impregnados por:
Datos de impregnación:
Datos de expiración:
Fecha de apertura de la caja:
Numero de veces que se ha usado el papel:
Condiciones de almacenamiento:
Temperatura ambiente:
°C
Refrigerado a:
°C
Condiciones de la prueba
Fecha de la prueba:
Periodo de exposición (minutos)
Temperatura
De
Periodo de exposición
Periodo de recuperación
Humedad relativa
a
de
a
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ANEXO A.1 (continuación)
FOR-001 METCNSP-003
FORMULARIO
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DE LOS MOSQUITOS ADULTOS A LOS
INSECTICIDAS)
Réplica
1
Réplica
2
Réplica
3
Réplica
4
Pág. 2 de 2
Total
expuestos
Total control
N° expuestos
N° muertos al final del
periodo
Mortalidad observada (%)
Mortalidad corregida (%)
N° de caídos después de la
exposición por minutos
10
15
20
30
40
50
60
80
Especie identificada*
Mecanismo de resistencia**
* = solamente aplicable al DDT y piretroides
** = identificar si es miembro de un complejo
Interpretación:
Nombre del evaluador:
Fecha de lectura final:
Firma del evaluador
Fuente: WHO. Test procedures for insecticide resistence monitoring in malaria vectors, bio efficacy and persistence of
insecticides on treated surfaces. WHO/CDC/CPC/Mal/98.12.
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SUSCEPTIBILIDAD O RESISTENCIA DE
LOS MOSQUITOS ADULTOS A LOS
INSECTICIDAS
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EL EQUIPO DE GESTIÓN DE LA CALIDAD DEL CENTRO NACIONAL DE SALUD PUBLICA PROCESA LAS PROPUESTAS DE MODIFICACIÓN Y ACTUALIZA LAS EDICIONES VIGENTES DEL
MISMO
ANEXO A.2
FOR-002 METCNSP-003
FORMULARIO
Edición Nº 01
DETERMINACIÓN DE DOSIS DISCRIMINATORIAS
EN MOSQUITOS ADULTOS
Pág. 1 de 2
Número de prueba:
Insecticida:
Concentración/dosis (%)
Especie de Anophelino probado:
Cepa:
Historia de la colonia:
Edad (días):
(origen, periodo de mantenimiento en el laboratorio)
Fecha de la prueba:
Día
Mes
Año
Rango de temperatura
Rango de humedad
Periodo de exposición
De
a
Periodo de exposición
De
a
Periodo de recuperación
De
a
Periodo de recuperación
De
a
Resultados de la prueba y otra información
Prueba
Fecha de uso del papel
impregnado
N° mosquitos expuestos
N° mosquitos caídos al final
del periodo de exposición
N° mosquitos muertos al final
del periodo
Mortalidad observada (%)
Mortalidad corregida (%)
NA = no aplicable
Prueba
Réplica 1
Prueba
Réplica 2
Prueba
Réplica 3
Prueba
Réplica 4
Total de
la prueba
NA
Total
control
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ANEXO A.2 (continuación)
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EN MOSQUITOS ADULTOS
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Fórmula de Abbotts*:
Mortalidad media= % Mortalidad mosquitos expuestos - % Mortalidad mosquitos control X 100
100 - % Mortalidad mosquitos control
*Aplicada cuando la mortalidad del control está entre 5-20%
Nombre del evaluador:
Fecha:
Firma del evaluador
Nombre y dirección de la institución:
Fax N°:
E-mail:
Tel N°:
Comentario:
Fuente: WHO. Test procedures for insecticide resistence monitoring in malaria vectors, bio efficacy and persistence of
insecticides on treated surfaces. WHO/CDC/CPC/Mal/98.12.
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MISMO
ANEXO B
CONCENTRACIONES DISCRIMINATORIAS DE INSECTICIDAS PARA
MOSQUITOS ADULTOS (una hora de exposición)
Concentración discriminatoria
Clase de
insecticidas
Insecticida
Anophelinos
DDT
Organoclorados
Organofosforados
Carbamatos
Piretroides
Dieldrin
Aedes aegypti
4%
4%
0,4% (a)
–
4%
–
(b)
Malathion
5%
0,8%
Fenitrothion
1%
–
Propoxur
0,1%
0,1%
Bendiocarb
0,1%
–
Permethrina
0,75%(1)
0,25%
Deltamethrina
0,1%(2)
–
Lambda Cyhalothrina
0,1%(2)
0,03%
Cyfluthrin
0,1%(2)
–
Cypermethrina
0,1%(2)
–
Alphacipermethrina
0,1%(2)
–
Etofenprox
0,5%(1)
–
Fuente:
(1)
WHO/CDS/CPC/MAL/98.12 Test procedures for Insecticide resistance monitoring in Malaria vectors,
bio-efficacy and persistence of insecticides on treated surfaces (1998).
(a) Mata susceptibles (SS) pero heterocigotos no resistentes (Rs).
(b) Mata heterocigotos (Rs) pero homocigotos no resistentes (RR).
(2)
INS (2002). Susceptibilidad de los vectores de Malaria a los insecticidas en el Perú: Informe Técnico
N° 5 Evaluación de la Susceptibilidad a los Insecticidas a los Mosquitos adultos del género
Anopheles de las Regiones Maláricas del Perú. Lima-MINSA.
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ANEXO C
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MISMO
Ensayo de susceptibilidad para mosquitos adultos
Foto: Blga. Miriam Graciela Palomino Salcedo
Kits de Susceptibilidad para mosquitos adultos (OMS)
Foto: Blga. Miriam Graciela Palomino Salcedo
Mosquitos Anofelinos capturados
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Ensayo de susceptibilidad para mosquitos adultos
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Tubo de reposo y exposición (Kit de OMS)
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Tiempo de exposición de mosquitos adultos (60 minutos)
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Tubos de reposo. Después de la exposición, se transfieren los mosquitos al tubo de reposo a un
mantenimiento óptimo de temperatura y humedad. La mortalidad es determinada después de 24
horas.
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