UNIVERSIDAD VERACRUZANA FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA VALORES SÉRICOS DE UREA EN DONADORAS DE DOBLE PROPÓSITO SOMETIDAS A OVULACIÓN MÚLTIPLE TRABAJO RECEPCIONAL EN LA MODALIDAD DE: TESIS COMO REQUISITO PARCIAL PARA OBTENER EL TÍTULO DE MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA PRESENTA: GUADALUPE MIJANGOS DOMÍNGUEZ ASESORES: DR. FELIPE MONTIEL PALACIOS DRA. PATRICIA CERVANTES ACOSTA VERACRUZ, VER. JULIO 2015 ÍNDICE GENERAL ÍNDICE A CUADROS .............................................................................................. iii ÍNDICE A FIGURAS................................................................................................ iv AGRADECIMIENTOS .............................................................................................. v DEDICATORIAS ..................................................................................................... vi ACRÓNIMO ........................................................................................................... vii RESUMEN ............................................................................................................ viii INTRODUCCIÓN .................................................................................................... 9 ANTECEDENTES ................................................................................................. 11 IMPORTANCIA DE LA NUTRICIÓN ..................................................................... 11 DIETA PROTEÍNICA ............................................................................................. 11 UREA .................................................................................................................... 12 CICLO DE LA UREA ............................................................................................. 13 EFECTO DE UREA EN LA FERTILIDAD EN HEMBRAS BOVINAS .................... 14 JUSTIFICACIÓN ................................................................................................... 16 HIPÓTESIS ........................................................................................................... 17 OBJETIVOS .......................................................................................................... 17 OBJETIVOS GENERALES ................................................................................... 17 OBJETIVOS ESPECÍFICOS ................................................................................. 17 MATERIAL Y MÉTODOS ...................................................................................... 18 ANIMALES EXPERIMENTALES Y MANEJO ....................................................... 18 CARACTERISTICAS DEL ESTUDIO .................................................................... 19 CONDICIÓN CORPORAL .................................................................................... 19 OBTENCIÓN DE MUESTRAS .............................................................................. 20 DETERMINACIÓN DE UREA EN SANGRE ......................................................... 20 CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES ..................................................................... 22 ANÁLISIS ESTADÍSTICO ..................................................................................... 24 RESULTADOS ...................................................................................................... 25 DISCUSIÓN .......................................................................................................... 32 CONCLUSIONES ................................................................................................. 35 LITERATURA CITADA .......................................................................................... 36 ii ÍNDICE A CUADROS Cuadro 1. Datos generales de las hembras bovinas sometidas al estudio realizado en la Posta Zootecnia “Torreón del Molino”............................................................... 19 Cuadro 2. Reactivos y dosificación de la prueba de Urea 37 ..................................... 20 Cuadro 3. Calendario de superovulación PZTM (1er grupo) Abril, 2015 .................. 22 Cuadro 4. Calendario de superovulación PZTM (2° grupo) Abril, 2015 .................... 23 Cuadro 5. Interacción con base a la condición corporal (CC) y los embriones viables y no viables de la primera y segunda colecta embrionaria de donadoras del presente estudio. ............................................................................................................ 25 Cuadro 6. Valores sanguíneos de la primera y segunda toma de muestra de los bovinos donadores de embriones sometidas al presente estudio ......................... 28 iii ÍNDICE A FIGURAS Figura 1. Primera colecta embrionaria con relación a la condición corporal de las hembras bovinas. .................................................................................................. 26 Figura 2. Segunda colecta embrionaria con relación a la condición corporal de las hembras bovinas. .................................................................................................. 27 Figura 3. Diferencia de los niveles séricos de urea en la primera y segunda colecta embrionaria de las hembras bovinas donadoras de doble propósito. ................... 29 Figura 4. Efecto racial en los niveles serológicos de urea en hembras bovinas de doble propósito Holstein Frisian/Cebu (H/C) y Suizo Americano/Cebu SA/C). ..... 30 Figura 5. Diferencia de producción de embriones en la primera y segunda colecta embrionaria en bovinos sometidas a ovulación múltiple. ...................................... 31 iv AGRADECIMIENTOS A LA UNIVERSIDAD VERACRUZANA Por disponer de gran personal de excelente calidad humana y profesional entre sus miembros. A LA FACULTAD DE VETERINARIA Por tener grandes médicos que te otorgan y te brindan la confianza, amistad y conocimientos que ellos han recaudado en todo el transcurso de su profesión. A MIS ASESORES Dr. Felipe Montiel Palacios, quien ha sido de gran importancia durante mi desempeño laboral, el cual me aconsejo y me enseño durante este tiempo. Por su amistad y consejos, gracias. Dra. Patricia Cervantes Acosta, por dejarme ser parte de este proyecto, por la confianza brindada y sus consejos, gracias. A MIS COMPAÑEROS MVZ. MC. Jadiel Cisneros MVZ. M.C. Gustavo Contreras. MVZ. MC. Isaac De Gasperin López MVZ. Marcos Gómez MVZ. Simón Andrés León Por apoyarme durante este proyecto, por su tiempo compartido y su amistad brindada. v DEDICATORIAS A DIOS Por darme el apoyo y la paciencia que necesitaba en los momentos más difíciles que pase en esta etapa y dar me fortaleza en mi vida. A MIS PADRES Sr. Gustavo Mijangos Pineda Sra. Guadalupe Domínguez Bernal A quienes les agradezco desde los más profundo de mi corazón por darme el apoyo que necesitaba, por decirme que cumpliera mis sueños y darme la educación y sus mejores cuidados, por apoyarme a seguir adelante y decirme que jamás me rindiera en los problemas que se presentan en la vida y que siempre hay ver el lado bueno de la vida. A MIS HERMANOS Mabel Mijangos Domínguez Gustavo Mijangos Domínguez Por apoyarme en mis decisiones y darme palabras de aliento, por preocuparse por mí y decirme siempre “animo pulguita que tú puedes”. A Mi ESPOSO E HIJO Israel de Jesús Escobar Lozano Quien me apoyo durante este proyecto y quien me daba palabras de aliento, también quien me hacía recordar que tengo que salir adelante por nuestro hermoso hijo Jossue y por nuestra mascota chuleta. vi ACRÓNIMO IA, Inseminación Artificial. C.C, Condición Corporal. H/C, Holstein/Cebú. SA/C, Suizo Americano/Cebú. TE, Transferencia de embriones. NNP, Nitrógeno No Proteico. PDR, Proteína Degradable en el Rumen. pH, Potencial de Hidrogeno. ATP, Adenosín Trifosfato. CPS-1, Fosfato Carbamil Sintetasa-1. AMP, Adenosín Mono Fosfato. PPI, Pirofosfato Inorgánico. NUS, Nitrógeno de Urea en Sangre. NUL, Nitrógeno de Urea en Leche. VPC, Volumen del Paquete Celular EDTA, Ácido Etilendiaminotetraacético. OM, Ovulación Múltiple. PC, Proteína Cruda. vii RESUMEN Mijangos Domínguez Guadalupe, año 2015. “Valores séricos de urea en donadoras de doble propósito sometidas a ovulación múltiple”. Tesis de licenciatura. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Veracruzana, Veracruz, ver, México. El objetivo de este estudio fue evaluar la condición corporal de las hembras bovinas donadoras de doble propósito y determinar los niveles de urea mediante pruebas serológicas, utilizando el método de “UREA 37°C”, todo esto al inicio de la ovulación múltiple. El estudio se realizó en un hato de ganado el cual pertenece a la Posta Zootécnica del Torreón del Molino ubicada en el municipio de Veracruz. Se evaluó la C.C de 12 donadoras en donde 1 era un animal emaciado y 5 un animal obeso, obteniendo en nuestros animales un promedio de 2.9 de C.C, las cuales tuvieron una alimentación basada en silo de maíz, pacas y concentrado. El protocolo contempla; la evaluación de las hembras bovinas antes de cada inseminación y antes de que inicie el tratamiento hormonal, en lo cual cabe mencionar que se tomó una muestra sanguínea de cada una, para poder evaluar los niveles de urea que contienen, donde el valor de referencia es de 16- 23 mg/dL. Se utilizaron los programas de Coeficiente de correlación de Spearman y la Chi cuadrada estos programas se encuentran en Statistica (versión 10). Los resultados muestran que la interacción de la C.C y embriones viables en las colectas embrionarias, se obtuvo en el primer lavado (P>0.05) donde no se encontró correlación y en el segundo lavado (P<0.05) donde si hubo correlación. La comparación de urea sanguínea en las dos colectas no hubo diferencia estadística (P>0.05), esto se debe al número de bovinos que se contaban en cada grupo, también no se encontró diferenciación entre la raza (H/C y SA/C) y la producción de urea (P>0.05). Se concluye que los niveles de urea no tienen relación con la producción de embriones ni la raza, aunque si pueda afectar la C.C en la producción en cada colecta. Palabras claves: Urea, donadoras, condición corporal, embriones. viii INTRODUCCIÓN Los hatos bovinos son afectados por diversos factores que limitan su producción. Entre ellos se pueden mencionar: manejo inadecuado, factores genéticos, desbalances nutricionales, la acción de agentes infecciosos, carencia de registros de la unidad de producción e inadecuada gerencia para el manejo de la unidad productiva (Contreras et al., 1999). La reproducción constituye el evento primario y decisivo para alcanzar una mayor productividad de leche, un adecuado crecimiento del hato y una mejor estructura. Cuanto más fértil es una vaca en su período productivo con una máxima ideal de un parto al año, más elevada es su producción media de leche, y su permanencia en el hato (López et al., 2005). Los problemas de la alimentación pueden causar hipofertilidad, aproximadamente entre en un 48% de los bovinos, las hereditarias un 12% y el manejo inadecuado en un 11%: esto nos indica que de cada dos animales con trastornos reproductivos uno de ellos es por problemas nutricionales (López et al., 2005). El reparto de los nutrientes para las distintas funciones fisiológicas tiene distintas prioridades, las funciones de mantenimiento o lactación tienen prioridad sobre las funciones reproductivas, por lo tanto, pequeños desajustes nutricionales mostrarán antes sus consecuencias sobre la reproducción que sobre la producción de leche (Bach et al., 2002). La causa más frecuente del fallo reproductivo en una vaca es la mortalidad embrionaria temprana (cerca del 30% del total de las causas), y en la mayoría de las ocasiones es asociada por los veterinarios y productores a un error nutricional. Incluso las metritis, que tiene un claro componente infeccioso, pueden ser consecuencia de una nutrición inadecuada, por ejemplo, la falta de calcio o magnesio (que reduce la motilidad uterina), o un exceso de proteína que induzca un aumento de la concentración de amoniaco en sangre y deprime la actividad de los linfocitos, además puede ser causa de metritis (Bach et al., 2002). 9 Una buena alimentación de las hembras bovinas permite obtener un buen potencial genético que la vaca trae como herencia de sus padres y por otro lado que los animales desarrollen sus procesos reproductivos. Lo ideal es que cada año la vaca tenga una cría y como consecuencia una lactancia por año (Hazard, 2002). Actualmente esto depende en gran medida de los avances científicos que se obtengan en el campo de la biotecnología, así, en el área de la reproducción, el manejo de éstas a través de la inseminación artificial (IA) y de la trasferencia de embriones (TE), han significado hasta la fecha el mayor impacto que existen en los programas reproductivos y de mejoramiento genético (Vizuete, 2012 a). 10 ANTECEDENTES IMPORTANCIA DE LA NUTRICIÓN Las vacas lecheras tienen requerimientos en nutrimentos que varían según el peso, el animal, la edad, el estado fisiológico (gestante o vacía) y el nivel de producción (López y Álvarez, 2005). Por lo tanto, el factor más limitante es la energía, y esto se agrava en la medida que los forrajes que consumen tengan una baja digestibilidad, lo cual causa un estrés alimenticio y acarreara serias pérdidas de condición corporal afectando seriamente la productividad de las vacas lecheras (Hazard, 2000). DIETA PROTEÍNICA Las vacas lecheras requieren aminoácidos esenciales, que son los bloques de construcción de las proteínas, para satisfacer sus requerimientos para mantenimientos, reproducción, crecimiento y producción de leche, los aminoácidos esenciales deben provenir, ya sea de la proteína microbiana producida por los microbios del rumen a partir de la proteína dietaría no degradada en el rumen, o de fuentes suplementarias de aminoácidos no degradables en el rumen. La cantidad de aminoácidos requeridos por la vaca lactante depende del nivel de producción de leche a medida que la producción aumenta los requerimientos de aminoácidos también aumentan (Hopkins, 2001). Los rumiantes se distinguen del resto de los animales por la adaptación morfofisiológica de la parte anterior de su estómago. Esta peculiaridad les permite convertir alimentos fibrosos y proteínas de baja calidad, incluso el nitrógeno no proteico (NNP), en nutrientes de calidad (Dewhurst et al., 2000). Los microorganismos que existen en el rumen son los responsables de producir la proteína microbiana que le servirá a las vacas lecheras, para posteriormente ser utilizada en una serie de procesos productivos (Hazard, 2000). La proteína microbiana necesita fuentes de carbohidratos solubles y de proteína degradable en el rumen (PDR) soluble, principalmente amoniaco (Young, 2001). Cuando los microbios ruminales descomponen la fracción de PDR, se produce 11 el amoniaco. Los microbios utilizan el amoniaco, junto con una fuente de energía proveniente de los carbohidratos, para así formarse la proteína microbiana. La cantidad de proteína microbiana producida depende de la disponibilidad de carbohidratos fermentables, PDR, pH, aporte de aminoácidos, péptidos y otros factores (Hopkins, 2001). Cuando los niveles de amoniaco ruminal son altos los microbios no tiene permitido utilizarlo (Hopkins, 2001). Altos niveles de proteína de alta degradabilidad ruminal pueden llevar a menor eficiencia reproductiva, ya que se verá seriamente afectada la nidación o directamente la vida del embrión, así como también los niveles circulantes de progesterona. Este es un problema particularmente serio en nuestro país, en donde los excesos de proteínas y la pobre calidad de las mismas, aportadas por los forrajes verdes, causan estragos en la esfera reproductiva, rara vez diagnosticados como tal (Vizuete, 2012). El exceso de amoniaco en el rumen atraviesa la pared ruminal hacia la sangre, por lo cual es trasportado al hígado donde es convertido en urea (Young, 2001). Lo que lleva a su vez a altos niveles de urea en sangre y fluidos uterinos, alterando el pH del útero, la viabilidad de los embriones y las concentraciones hormonales (Vizuete, 2012). UREA La urea es un compuesto orgánico relativamente simple producido por los mamíferos se encuentra en el hígado como producto final del catabolismo de las proteínas (Medway et al, 1969). La urea pasa por el torrente sanguíneo y de ahí a los riñones y se excreta en la orina (Lehninger et al., 2005). Su principal función es la de prevenir la intoxicación por amoniaco del organismo y actuar como acarreador del exceso de nitrógeno fuera del cuerpo mediante la orina (Ferguson, 1997). La urea es químicamente un compuesto nitrogenado no proteico, cristalino y sin color (Araque, 1995). Su uso se justifica cuando al animal se le proporciona solamente silo durante el día o cuando la ración del comedero es deficiente en proteína, pero contiene altas concentraciones de carbohidratos estructurales, los 12 cuales permiten una mayor actividad de bacterias ruminales para sintetizar proteínas unicelulares (Feuchrter, 2007). CICLO DE LA UREA La urea consta de una serie sucesiva de reacciones enzimáticas por medio de las cuales se sintetiza la molécula de urea a partir de bióxido de carbono y amoniaco. En el ciclo participan los aminoácidos ornitina, citrulina y arginina, pero el amoniaco y el bióxido de carbono no reaccionan como tales con ellos. Este proceso de ureogenesis se lleva a cabo mediante mecanismos cíclicos y con gasto de energía. Dicho proceso comprende la descomposición de la arginina (proveniente de la dieta o de la hidrolisis de las proteínas) por la enzima citosólica arginasa (presente solo en mamíferos), generando urea y ornitina. Esta última vuelve a usarse para formar otra vez arginina, perpetuando así el ciclo (Orksov, 1982; King, 2015). Etapas del ciclo. 1. Síntesis de citrulina. Se sintetiza el fosfato de carbomilo (intermediario) a partir del carbono y del nitrógeno por una reacción compleja que requiere dos moléculas de ATP y de la enzima mitocondrial fosfato carbamil sintetasa 1 (CPS-1). Por catalización de la ornitin carbamiltransferasa, el fosfato de carbamilo se condensa con un grupo amino terminal de la ornitina, la cual surge en el citosol yes trasportada a la matriz mitrocondrial, produciendo citrulina. La citrulina es trasportada al citosol, donde las reacciones restantes del ciclo se llevan a cabo (King, 2015). 2. Paso de citrulina a arginina. La citrulina reacciona con el ácido aspártico, fijando de este el segundo grupo NH2 de la molécula de urea y formando ácido argininosuccinico (intermediario), que se desdobla para producir arginina y ácido fumarico, transfiriendo el grupo amino del aspartao a la arginina. La reacción ocurre en dos etapas: *La citrulina, por catalización de la argininosuccinato sintetasa, se condensa con el aspartato en presencia de ATP y de Mg++ para formar argininosuccinato. La argininosuccinato sintetasa es citosólica y están presente en el hígado y riñón. La reacción requiere de AMP y de PPI (pirofosfato inorgánico) provenientes del ATP. 13 * El argininosuccinato, por acción de la argininosuccinasa o argininosuccinato liasa (citosólica), se rompe y forma arginina y fumarato. Esto también sucede en el tejido hepático y renal. El fumarato, generado por la acción de la argininosuccinasa, es reconvertido a aspartato mediante el ciclo de Krebs, en el que el fumarato por acción de la fumarasa se convierte en malato, y este por acción de la malato deshidrogenasa produce oxaloacetato, que es entonces transaminado a aspartato por la aspartato transaminasa para usarse en la formación del argininosuccinato (King, 20015). 3. Paso de arginina a urea y ornitina. La arginina es hidrolizada por la arginasa (presente en hígado, riñón y otros tejidos) para producir urea y ornitina. Esta última puede ser llevada a la matriz mitocondrial para utilizarse en el siguiente ciclo. La etapa de la ornitina a citrulina solo ocurre en el hígado, mientras que la de citrulina a arginina también ocurre en el riñón (King, 2015) Nitrógeno de Urea en sangre (NUS) La urea es una pequeña molécula neutra que puede rápidamente difundirse dentro de la mayoría de los tejidos. A la urea encontrada en la sangre se le conoce como nitrógeno de urea en sangre (NUS) (Olther et al., 1983). El Nitrógeno de Urea en sangre (NUS) es afectado por varios factores, incluyendo el nivel de proteína cruda en la dieta (Olther et al., 1983). EFECTO DE UREA EN LA FERTILIDAD EN HEMBRAS BOVINAS La proteína es un ingrediente caro del alimento de vacas lecheras, por lo que el sobrealimentar con proteína puede resultar costoso a los productores (RajalaSchultz et al., 2001). Reportes de los años 70 y 80 relacionan en forma directa los efectos de la concentración de proteína en la dieta sobre la concentración de nitrógeno amoniacal en rumen y nitrógeno ureico en sangre. Los cambios tecnológicos han permitido que estos metabolitos se monitoreen con mayor facilidad y se ha logrado asociar el nitrógeno ureico en la sangre con la concentración de nitrógeno ureico presente en la leche. Por tal motivo, el monitoreo de los niveles de 14 nitrógeno ureico en leche (NUL), se perfila como posible indicador del consumo y de la degradación de la proteína de la dieta. La medición del NUL es actualmente una herramienta de amplio uso en los hatos especializados en producción de leche, debido a que la urea es un metabolito que está afectado por factores de tipo nutricional como el porcentaje de proteína, cantidad de carbohidratos solubles y la relación proteína: energía (Pardo et al., 2008). Trabajos realizados en New york y Pennsylvania han demostrado que altos niveles de nitrógeno ureico (NUS) pueden reducir las tasas de concepción debido al balance negativo de energía, incremento en la acidez del útero y cambios en la relación de los minerales que tapizan el útero. Varios trabajos científicos relacionan los niveles de proteína cruda de la dieta con los niveles de NUS y las tasas de concepción (Arias et al., 1999). Con respecto a esto manifiesta que, varios estudios han puesto en evidencia el efecto de los excesos de proteína sobre la reducción de la fertilidad. Un exceso del 50% sobre los requerimientos de proteína degradable en rumen, se le atribuye un descenso en la fertilidad (Dawuda et al., 2002). Otros autor señala que, una dieta rica en proteína no tiene impacto sobre el retorno de la ciclicidad en el postparto, sin embargo la concentración de prostaglandina (P4) es baja debido al mayor metabolismo hormonal causado por la mayor producción lechera (Sartori, 2006). 15 JUSTIFICACIÓN En los últimos años la producción de embriones en la ganadería bovina ha repuntado. Cada vez más los ganaderos están adoptando esta técnica de reproducción asistida para la mejora genética de sus hatos, y de esta manera tener animales con mejores parámetros fisiológicos que nos ayuden a mejorar los resultados productivos. Con base a lo anterior, se plantea determinar los niveles de urea sérica que se relacionen con un número elevado de parámetros productivos y reproductivos. La aplicación de esta técnica es de un elevado costo, comparado con otras biotecnologías reproductivas, por lo cual se debe optimizar los recursos y tratar de asegurar una respuesta satisfactoria de los ejemplares tratados, por lo que se debe obtener una óptima respuesta de embriones producidos. 16 HIPÓTESIS El incremento en valores séricos de urea en donadoras de doble propósito afectará la respuesta a la ovulación múltiple. OBJETIVOS OBJETIVOS GENERALES Determinar el efecto de los niveles de urea sérica en donadoras de doble propósito sobre la respuesta a la ovulación múltiple. OBJETIVOS ESPECÍFICOS Evaluar la condición corporal de las donadoras de doble propósito. Determinar mediante pruebas serológicas los niveles de urea en sangre de donadoras de doble propósito sometidas al inicio de la ovulación múltiple. Analizar el efecto racial de las donadoras de doble propósito sobre las concentraciones de urea sanguínea. Comparar los niveles de urea sanguínea con relación a la respuesta en la producción de embriones de las donadoras de doble propósito. 17 MATERIAL Y MÉTODOS LUGAR DE REALIZACIÓN DEL ESTUDIO El estudio se realizó en un hato de ganado de producción de doble propósito, el cual pertenece a la Posta Zootécnica del Torreón del Molino, localizado sobre el paralelo 19° 10′ de Latitud Norte y el Meridiano 96° 10′ de Longitud Oeste, a una altura sobre el nivel del mar de 15 metros, de acuerdo a la clasificación de Koppen es del tipo Aw1, la temperatura media anual es de 25.2°C siendo los meses más calurosos de Mayo a Agosto. ANIMALES EXPERIMENTALES Y MANEJO En el estudio se trabajó con 12 hembras bovinas con una edad promedio de 9 ± 2.2 años, un peso promedio de 529.6 ± 85.3kg, condición corporal promedio de 2.9 ± 0.19 y número de partos de 2.8 ± 1.5, Las vacas fueron manejadas bajo estabulación con una alimentación de 500kg de silo de maíz (Zea mays), 5 pacas de 35kg de pangola (Digitaria decumbens) y 24 kg de concentrado marca Apileche al 20%. 18 Cuadro 1. Datos generales de las hembras bovinas sometidas al estudio realizado en la Posta Zootecnia “Torreón del Molino”. Número de Edad (años) Peso (kg) registro Condición Partos corporal (CC) E79 12 487 3 6 F35 11 510 2.5 4 F75 11 587 2.5 4 G11 10 700 3 4 H17 10 528 4 1 H37 9 640 4 3 H41 9 500 3 2 H45 9 508 4 3 I39 9 574 2.5 1 I47 8 378 2 3 J03 8 487 2.5 2 N03 3 457 2.5 1 Al principio se trabajó con 8 animales experimentales, posteriormente se anexaron las ultimas 4, las cuales fueron: E79, H41, I47 y la N03. CARACTERISTICAS DEL ESTUDIO El estudio se realizó en los meses de Febrero al mes de Junio de 2015, bajo condiciones del trópico húmedo de la zona centro del estado de Veracruz. CONDICIÓN CORPORAL Al inicio y al final del proyecto se evaluó la condición corporal de las hembras bovinas, utilizando la escala del 1 al 5, siendo 1 un animal emaciado y 5 un animal gordo. (Edmonson et al, 1989). 19 OBTENCIÓN DE MUESTRAS Las muestras sanguíneas de las 12 vacas de este trabajo se obtuvieron de manera individual, por medio de la punción de la vena coccígea media, se obtuvieron aproximadamente de 2 a 5 ml de sangre, recolectando dos muestras por cada animal. Se utilizaron dos tubos al vacío (BD Vacutainer®), uno con anticoagulante EDTA 7.2 mg/4ml y el otro sin anticoagulante, cada tubo fue rotulado y mantenido a 4°C para su traslado al laboratorio. El suero se obtuvo a partir de la muestra de sangre sin anticoagulante, separando el coagulo mediante centrifugación (2500 rpm/10’). La sangre completa se utilizó para la determinación del volumen del paquete celular (VPC) expresado en %. El muestreo fue en intervalos de 30 días. Los análisis se llevaron a cabo dentro de las primeras 24 horas después de la toma de la muestra. Las muestras se procesaron en el laboratorio de Alteraciones Funcionales de la Unidad de Diagnóstico “Augusto Mancisidor”, de la Posta Zootécnica Torreón del Molino, FMVZ, UV. DETERMINACIÓN DE UREA EN SANGRE La determinación de las concentraciones de urea en sangre se realizó empleando el método de Urea 37 “o-Ftalaldehído 37°C. Colorimétrico” (SPINREACT©). El fundamento de la reacción se describe a continuación: Urea + o-Ftalaldehído H+ Isoindolina. Cuadro 2. Reactivos y dosificación de la prueba de Urea 37. Reactivos R1 o-Ftalaldehído 4,8 mmol/L R2 Solución borato 87 mmol/L Ácido sulfúrico 3 mmol/L UREA CAL Patrón primario acuoso de urea 50 mg/dL Los valores de referencia de urea en suero sanguíneo en la especie bovina es de 16 – 23 mg/dL. 20 El análisis fue por espectrofotometría a 510 nm (Spectronic® Genesis 5). Para conocer el estado general de salud de los animales experimentales, se obtuvo el Volumen del Paquete Celular (VPC) en sangre completa con EDTA mediante el analizador automático de hematología (MINDRAY BC-2800©). 21 CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES Cuadro 3. Calendario de superovulación PZTM (1er grupo) Abril, 2015 Día de tratamiento Hora Fármacos y dosis 0 6:00am Poner dispositivo intravag. 2,5mg Benzoato Estradiol 50 a 100 mg Progesterona 4 5 6 6:00am 2.5ml Folltropin 6:00pm 2.5ml Folltropin 6:00am 2.0ml Folltropin 6:00pm 2.0ml Folltropin 6:00am 1:5ml Folltropin 5.0ml de Lutalyse 6:00pm 1.5ml Folltropin 5.0ml Lutalyse 7 6:00am 1.0ml Folltropin 2.0ml Folligón Retirar Dispositivo Intravag. 6:00pm 1.0ml Folltropin 2.0ml Folligón 8 9 15 6:00am 5.0ml Fertagyl 6:00pm inseminación artificial 6:00am inseminación artificial Colecta de embriones. 22 Cuadro 4. Calendario de superovulación PZTM (2° grupo) Abril, 2015 Día de tratamiento Hora Poner Dispositivo intravag. 2.5mg Benzoato Estradiol 0 6:00am 50 a 100mg Progesterona 2.5ml Folltropin 2.5ml Folltropin 4 5 6 6:00am 2.0ml Folltropin 6:00pm 2.0ml Folltropin 6:00am 1.5ml Folltropin 6:00pm 5.0ml Lutalyse 6:00am 1.5ml Folltropin 5.0ml Lutalyse 6:00pm 1.0ml Folltropin 2.0ml Folligón 7 6:00am Retirar Dispositivo Intravag. 1.0ml Folltropin 2.0ml Folligón 6:00pm 5.0ml Fertagyl Inseminación Artificial 8 9 15 6:00am Inseminación Artificial 6:00pm Poner Dispositivo Intravag. 6:00am 2.5mg Benzoato Estradiol Colecta de embriones 23 ANÁLISIS ESTADÍSTICO En el presente estudio se compararon los niveles de urea sanguínea del primer y segundo lavado uterino mediante la prueba estadística T de Student. Para determinar una posible correlación entre los niveles de urea sanguínea y la cantidad de embriones que fueron colectados en los dos lavados, se realizó la prueba estadística de Coeficiente de correlación de Spearman; el análisis de la correlación de la CC con el número de embriones viables, obtenidos durante los dos lavados se realizó la prueba estadística de coeficiente de correlación Spearman. Estas pruebas se encuentran incluidas en el paquete estadístico Statistica versión 10 (http://www.statsoft.com/Products/STATISTICA-Features/Version-10). 24 RESULTADOS En este estudio, de las 12 donadoras de embriones que fueron sometidas a ovulación múltiple (OM), se obtuvieron 202 estructuras. Condición corporal Con base en los resultados se encontró que no hay evidencia estadística significativa para concluir que la producción de embriones depende de la condición corporal. Figura 1. (P>0.05). Cuadro 5. Interacción con base a la condición corporal (CC) y los embriones viables y no viables de la primera y segunda colecta embrionaria de donadoras del presente estudio. Número de CC identificación 1era colecta No 1era 2da colecta 2da viables colecta No viables colecta Viables Viables E79 3 0 0 12 0 F35 3.5 4 1 1 5 F75 3 6 5 18 9 G11 3 22 0 0 2 H17 4 10 2 1 2 H37 3 4 2 0 6 H41 2.5 0 0 0 11 H45 4 3 7 0 3 I39 4 2 2 10 2 I47 2.5 0 0 2 9 J03 2.5 5 2 6 16 N03 2.5 0 0 1 9 56 21 51 74 Total 25 Figura 1. Primera colecta embrionaria con relación a la condición corporal de las hembras bovinas. Para el primer lavado, no se encontró correlación significativa entre la condición corporal y la cantidad de embriones viables colectados (P>0.05). 26 Figura 2. Segunda colecta embrionaria con relación a la condición corporal de las hembras bovinas. Para el segundo lavado, se encontró una correlación negativa entre la condición corporal y el número de embriones viables colectados r=0.704, en la gráfica se observa que por cada punto que se incrementa la condición corporal, se obtiene 5.47 embriones menos (P<0.05). Lo que puede interpretarse como que a mayor condición corporal de la vaca, menos embriones producirán. 27 Valores de urea sanguínea. Cuadro 6. Valores sanguíneos de la primera y segunda toma de muestra de los bovinos donadores de embriones sometidas al presente estudio. Urea Urea Mg/dL Mg/dl Primera toma Segunda toma E79 28.7 15.8 F35 19.2 14.2 F75 19.3 15.8 G11 27 18.9 H17 30 25.2 H37 30 17.37 H41 23.5 14.21 H45 22 14.2 I39 26 41.05 I47 29.4 7.9 J03 11.4 22.1 N03 15.5 22.1 Vaca Valores de 16-23 mg/dL referencia Los niveles de urea en la primera toma de muestra sanguínea tuvo un promedio de 23.5 ± 1.77 y en la segunda toma hubo un promedio de 19.0 ± 2.39 28 Figura 3. Diferencia de los niveles séricos de urea en la primera y segunda colecta embrionaria de las hembras bovinas donadoras de doble propósito. De acuerdo con los resultados no se encontró diferencia estadística significativa en los niveles de urea entre la primera y segunda colecta embrionaria P= 0.1513 (P>0.05). Esto se debe a los valores sesgados que se tuvieron, ya que en el primer lavado solo se contaba con 8 donadoras. 29 Figura 4. Efecto racial en los niveles serológicos de urea en hembras bovinas de doble propósito Holstein Friesian/Cebú (H/C) y Suizo Americano/Cebú SA/C). Box & Whisker Plot: UREA 45 40 35 30 UREA 25 20 15 10 5 0 -5 H/C S/C RAZA Median 25%-75% Min-Max Con respecto a los resultados obtenidos en este cuadro no hay una diferencia estadística entre los niveles serológicos de urea, por lo que se concluye que la raza del ganado no ejerce ningun efecto en este parametro fisiológico (P>0.05). 30 .Figura 5. Diferencia de producción de embriones en la primera y segunda colecta embrionaria en bovinos sometidas a ovulación múltiple. El promedio de la producción embrionaria del primer grupo es de 1.75 ± 0.64 en el segundo grupo es de 6.16 ± 1.36. La raza H/C tiene un promedio de 4.50 ± 1.47 y la raza (SA/C) es de 3.41 ± 0.95. Se encontró diferencia estadística significativa en la cantidad de embriones colectados del primer y segundo grupo P=0.008616 31 DISCUSIÓN Condición corporal. Con respecto a los cambios de condición corporal (CC) no se mostró cambio alguno durante el desarrollo del estudio. Algunos autores describen que la CC es el reflejo del estado nutricional de los animales (Dunn y Moss, 1992; Jones y Lamb, 2008), que permite determinar su influencia en el potencial reproductivo, especialmente sobre la secreción de gonadotropinas, la concentración plasmática de progesterona, la función ovárica, la calidad del oocito y del embrión (Boland et al., 2000), así como también, sobre la involución uterina y la tasa de concepción (Roche, 2006). Con base a lo anterior, ha sido reportado que la condición corporal óptima y para obtener buenos resultados en una vaca de carne es de 2.5 a 3 en escala de 1-5 y en una lechera Holstein va de 2.5 a 3.5 ya que esto influye en la taza de ovulación, fecundación y viabilidad de los embriones (Vizuete, 2012; Fernández et al., 2002; Glauber, 2013). Ahuja et al. (2005), reportaron que la sincronización con dispositivo intravaginal, benzoato de estradiol, gonadotropina coriónica equina y GnRH puede inducir el estro y la ovulación de manera satisfactoria en bovinos con una CC mayor de 2.5 (escala de 1 a 5). Asimismo, evidenciaron que la tasa de preñez y estro dependen de la CC, esto es, vacas con una CC = 2 presentaron una tasa de preñez del 30%, en comparación con un 57% para vacas CC = 2.5 y CC = 3.0. Igualmente, en hembras bovinas Bos taurus x Bos indicus en México con pobre C.C (1.5 a 2.5 en escala de 1 a 5). Urea sanguínea en donadoras de doble propósito. Arias et al. (1999), relaciona que los niveles de proteína cruda en la dieta y los niveles séricos de urea, están relacionados con la tasa de concepción. (Dawuda et al. 2002), creó tres grupos nutricionales; grupo control, grupo 1 las cuales fueron alimentadas con un suplemento de urea a partir de 10 días antes de la inseminación 32 artificial (IA), y el grupo 2 que fueron alimentadas con suplemento durante la IA hasta la recolecta de embriones. Tanto en el grupo 1 y 2, sus dietas produjeron aumentos significativos de amoniaco en el plasma y de urea, 3 horas después de la alimentación en el grupo 1 se asoció con una reducción significativa en el rendimiento del embrión. La calidad del embrión también se redujo significativamente en las vacas del grupo 2. Esto quiere decir que no hay ningún efecto perjudicial sobre el rendimiento y la calidad de los embriones recolectados. Asimismo, Carrol et al. (1988), determinaron el impacto de concentración en la dieta de proteína cruda (PC) (13 vs 20%) y la estrategia de alimentación (ración total mezclada versus alimentación separada del forraje y concentrado), en el rendimiento reproductivo de 57 vacas lecheras. Las raciones estaban compuestas de 40% de forraje (50% de gramíneas y leguminosas, ensilaje de 50% de ensilaje de maíz) y 60% de concentrado (base seca). Las vacas alimentadas con una ración total mezclada tenían concentraciones inferiores de amoniaco en el rumen y de urea plasmática, en comparación con las vacas alimentadas por separado. Al alimentar grupos de estrategia no mostraron diferencias en el rendimiento reproductivo. Las vacas alimentadas con una ración al 20% de PC, tenían una mayor ingesta de ésta, mayor amoníaco ruminal, una mayor concentración de urea en el plasma y moco vaginal. No se encontró diferencias entre los grupos de alta y baja, en días para observar el primer estro (24 vs 27), días del primer servicio (55 vs 59), días en que se estimaron la ovulación (22 vs 17) en los grupos de alto vs bajo (PC), y había una interacción entre la ingesta de proteínas y número de lactancia. Las vacas gestionadas con un programa intensivo para la detección del celo y de salud reproductiva no mostraron diferencias en la eficiencia reproductiva cuando se alimentaban al 13 o 20% de raciones de proteína cruda. También comenta que un exceso del 50% sobre los requerimientos de proteína degradable en rumen, se atribuye a un descenso en la fertilidad, las altas concentraciones de urea se relacionan negativamente con indicadores de fertilidad e indican un posible efecto tóxico en el útero. Esto altera la viabilidad de los 33 espermatozoides y embriones, y en consecuencia, limita los niveles de fertilidad hasta en un 20% en vacas lecheras. Además, existe evidencia de Gorosito (2007) sobre la problemática reproductiva, quien establece que por excesos proteicos en dietas, se ha estudiado y observado que comúnmente en donadoras y receptoras, donde es muy frecuente encontrar niveles de urea en sangre 100% superiores a los normales, con consecuencias reproductivas imaginables. Elrod y Burler (1993), mencionan que una de las causas subyacentes de la reducción de la fertilidad está asociada con la alimentación y el exceso de proteína degradable en el rumen del ganado bovino. Al respecto, realizaron un experimento con vaquillas (n=80) las cuales fueron inseminadas al estro después de ser alimentadas con las dietas experimentales durante 4 semanas, las tasas de concepción de los primeros servicios fueron de 82 y 61% para los grupos normal y alto (P<0.05). En el plasma los niveles de urea fueron elevados (10.2 ± 0.17 vs 14.8 ± 0.19 mg/dL) durante todo el experimento (P<0.05). Se puede observar que el estado nutricional tanto de donadoras como receptoras tiene una influencia en la ovulación y fecundación, así como la viabilidad embrionaria. En el presente estudio no se elevaron los niveles de urea en los animales experimentales ya que solo se trató de mantener los niveles de urea en estado normal, para no afectar la producción de embriones. 34 CONCLUSIONES Para el presente estudio la condición corporal de las vacas donadoras de doble propósito no mostró efecto durante las dos colectas embrionarias, ni la cantidad de embriones viables durante la primera colecta. Sin embargo, en la segunda colecta se observó una correlación negativa en donde a mayor índice de condición corporal se obtuvieron menos embriones por vaca. Los niveles serológicos de urea en sangre para las dos colectas fueron iguales, sin mostrar diferencia por raza en los niveles de urea sanguínea. No hubo correlación en los niveles de urea sanguínea con respecto a la respuesta en la producción de embriones en las donadoras de doble propósito. 35 LITERATURA CITADA Ahuja C., Montiel F., Canseco R., Silva E. (2005). Pregnancy rate following GnRH + PGF2α treatment of low body condition, anestrous Bos taurus by Bos indicus crossbred cows during the summer months in a tropical environment. [Consulta 10 de Junio Del 2015]. http://www.researchgate.net/publication/7830822_Pregnancy_rate_following_G nRHPGF(2_alpha)_treatment_of_low_body_condition_anestrous_Bos_taurus_ by_Bos_indicus_crossbred_cows_during_the_summer_months_in_a_tropical_ environment. Ake L.R, Alfaro G.M, Lara N.A. (1993). Superovulatory response in cattle under tropical conditions: development and quality of the embryo in relation to percentage of gestation. [Consulta el 13 de Junio del 2015]. http://agris.fao.org/agris-search/search.do?recordID=MX19950101825 Araque C. (1995). 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