APUNTES DOCENTES PARA SEMINARIO Nº6 MÉTODOS DE ANÁLISIS EN GENÉTICA HUMANA Dr. Rafael Blanco C. METODOS EN GENÉTICA HUMANA ¿Cómo se puede demostrar en la especie humana que un carácter o rasgo es heredable es decir que constituye un fenotipo? Carácter es todo rasgo asignable a un ser vivo, incluido el ser vivo completo. Fenotipo es todo carácter genéticamente determinado. Entonces debemos analizar cómo se determina que un carácter cualquiera es un fenotipo. Principio fundamental es que la transmisión de este carácter debe comportarse de acuerdo a la transmisión de los genes en las generaciones. Transmisión Mendeliana, mitocondrial o de algún otro tipo de herencia particulada. La herencia no particulada que se refiere a propiedades continuas del ADN (masa, velocidad de copia, etc, no será vista en esta oportunidad). A continuación analizaremos algunos métodos que permiten discernir si un carácter presenta factores genéticos en su expresión, su modo de herencia o fenómenos de interacción génica. 1) 2) 3) 4) 5) 6) 7) 8) Método de contingencia familiar Método de mellizos Método de análisis genealógico Método de análisis segregacional Interacción génica Expresividad variable y penetrancia incompleta Genes letales Herencia mitocondrial 1. METODO DE CONTINGENCIA FAMILIAR Este método permite evaluar si un carácter posee una distribución de tipo familiar o agregación familiar; en otras palabras, si se presenta con mayor frecuencia en algunas familias que en la población general. Sin embargo, un carácter que presenta agregación familiar puede no ser por causas genéticas sino por factores predominantemente ambientales, ya que el grupo familiar está sometido a influencias ambientales similares (y distintas a las que actúan sobre otras familias), pudiendo ser éste el factor que cause la concentración familiar del carácter y no la herencia. Por lo tanto, para asegurarse que un rasgo de tipo familiar es realmente genético, hace falta comprobar que las proporciones de afectados en los diferentes grupos de parientes de los “probandos afectados”, sean mayores que la que se presenta en la población general del país. El estudio de esta “contingencia familiar” se efectúa a partir de una muestra de la población, que en condiciones ideales debería ser sensiblemente homogénea, excepto en lo que respecta al carácter investigado y a aquellos que se asocian con él. Es importante, en particular, asegurar su homogeneidad en cuanto a sexo, edad, orden de nacimiento, origen étnico, situación socioeconómica de los individuos, edad de los padres en el momento de su nacimiento y número de hermanos. De este grupo se seleccionan por azar individuos que se van clasificando como afectados por la condición en estudio (probandos afectados), o no afectados (probandos controles); de esta forma se obtienen dos subgrupos comparables. Una vez seleccionados los probandos, es preciso asegurarse que no haya diferencias significativas entre ellos, como no sea obviamente el rasgo en estudio y aquellos relacionados con él. En la práctica, resulta suficiente comparar edad, orden de nacimiento y tamaño de la hermandad de los probandos, pues si estas variables son semejantes en ambos subgrupos, es altamente probable que también lo sean las restantes condiciones. En seguida, se encuesta a los parientes de cada probando y se les clasifica como “afectados” o “no afectados”. Suele ocurrir que es imposible efectuar directamente esta encuesta a cada familiar afectado o sano, y en tales casos se adopta el criterio de clasificar en base a los datos que sobre ellos proporciona el probando mismo o sus familiares. Se considera demostrada la distribución familiar del carácter investigado si en cada uno (o la mayoría) de los principales grupos de parientes (progenitores, hermanos, tíos, abuelos y primos) la prevalencia de la condición es significativamente mayor para los parientes de los “probandos afectados” que para los parientes de los “probandos controles”. En la tabla a continuación se presenta un ejemplo idealizado de este método de contingencia familiar. Es importante establecer que el método de contingencia familiar sólo permite establecer si en la agregación familiar participan factores genéticos. Ejemplo para un carácter X % de Parientes Afectados Padres Hermanos Tíos Abuelos Probandos Afectados Probandos Sanos 9,56 9,61 5,81 1,47 2,27 3,38 2,31 0,57 La similitud genética se traduce en el coeficiente de proximidad genética al probando, el cual indica la proporción de genes que teóricamente tienen en común los distintos parientes con el probando. Esos coeficientes son : Parientes del Probando 1. Mellizos monocigotos 2. Padre, madre, hermano, hermana 3. Tío, tía, paterno o materno(a), abuelo, abuela, paterno o materno(a) 4. Primo, prima, paterno o materno(a) Coeficiente de proximidad genética 1 0,5 0,25 0,125 En resumen, el método de contingencia familiar permite concluir que la agregación familiar de un carácter se debe a la presencia de factores genéticos involucrados en su expresión. Sin embargo, no informa sobre el número de genes involucrados ni sobre el modo de herencia de la patología. 2. METODO DE MELLIZOS Este método, al igual que el anterior, nos permite evaluar si en la determinación de un raso participan factores genéticos. Consiste en comparar parejas de mellizos dicigóticos con parejas de mellizos monocigóticos, en cuanto a la presencia en ambos, del carácter a estudiar. Los mellizos monocigóticos se forman a consecuencia de la división en dos de un huevo fecundado, en etapas muy tempranas del desarrollo; son, por lo tanto, genéticamente idénticos. Los mellizos dicigóticos en cambio, son consecuencia de la fecundación de dos óvulos por dos espermios; por lo tanto, difieren genéticamente tal como lo harían dos hermanos cualesquiera. La ocurrencia de mellizos dicigóticos obedece a un fenómeno de ovulación múltiple en la madre; éste es un rasgo familiar que se expresa sólo en mujeres y cuya frecuencia difiere en los distintos grupos étnicos. Las diferencia en cuanto a parecido entre mellizos, entre parejas dicigóticas y monocigóticas obedecen a factores genéticos, ya que en ambos casos suponemos que el efecto del ambiente es igualmente homogéneo en los dos integrantes de la pareja de mellizos. Este método compara el parecido entre mellizos mono y dicigóticos para el carácter en estudio, y a partir de esta comparación infiere si participan o no factores genéticos en la determinación de un rasgo. El procedimiento consiste en buscar en la población individuos que posean la característica de interés, y que además tengan un hermano mellizo. El carácter a estudiar es necesario que sea un rasgo cualitativo. En seguida se procede a investigar si el hermano mellizo es también portador de la característica, y si es mellizo mono o dicigótico del individuo índice o propósito. Llamaremos concordantes a aquellas parejas de mellizos en que ambos presentan el carácter en estudio, y discordantes a aquellas parejas en que sólo uno de los mellizos lo presenta. La concordancia entre mellizos será mucho más alta en mellizos monocigóticos que dicigóticos si el rasgo que se analiza está determinado genéticamente; la concordancia será similar en ambos tipos de mellizos si los factores genéticos no son importantes. Para poder sacar conclusiones es indispensable determinar con certeza en cada pareja de mellizos, si se trata de monocigóticos o dicigóticos. Existen situaciones en que la determinación de cigosidad de los mellizos no presenta dificultades, como el caso en que ambos poseen distinto sexo, en que evidentemente son dicigóticos, o cuando se sabe con certeza que fueron monocoriónicos, es decir, tenían una sola placenta y, por consiguiente, son monocigóticos. Para la determinación de cigosidad de los mellizos, pueden ser útiles dos criterios : a. Membranas fetales : el feto se encuentra rodeado de dos membranas, la interna denominada de amnios y la externa o corión, adherida a la placenta. En la práctica, es frecuente que no exista una información fidedigna acerca del tipo de membranas fetales que tenían los mellizos al nacer, y cuando contamos con esta información, ésta puede no ser suficiente para distinguir entre mellizos mono y dicigóticos. En el caso de los mellizos dicigóticos, como ambos se desarrollan a partir de dos huevos fecundados diferentes, tienen dos placentas, dos corión y dos amnios; sin embargo, con frecuencia placenta y corión pueden simular ser únicos y no dobles, por una aparente fusión entre ellos (Figura 1). Figura 1 Monocigoto Monocigoto Monocigoto Dicigoto Bi-coriótico Bi-amniótico Mono-coriótico Bi-amniótico Mono-coriótico Mono-amniótico Bi-coriótico Bi-amniótico En el caso de mellizos monocigóticos, el tipo de membrana fetales dependerá del momento en que ocurrió la división de un huevo en dos. En un 25% de los casos, la separación ocurre entre cigoto y mórula, y en este caso, los mellizos aún siendo monocigóticos, tendrán dos placentas, dos corión y dos sacos amnióticos. La separación en dos, ocurre en la etapa de blastoquiste en cerca de un 75% de los casos, y cuando esto ocurre los mellizos son monocoriónicos y diamnióticos. La separación en dos también puede ocurrir más tarde, en la segunda semana de vida, con una frecuencia de 1% y en este caso tendremos una sola placenta, un corión y un amnios común para ambos mellizos. Si la separación ocurre aún más tarde, se pueden producir aberraciones del tipo de los siameses. Por estas razones, suele ser más confiable el diagnóstico de cigosidad basado en otros hechos como marcadores genéticos. Una vez hecho el diagnóstico de cigosidad de los mellizos, y analizados en cuanto a la concordancia y discordancia entre ambos tipo de mellizos. Supongamos, por ejemplo, que el 99% de los mellizos monocigóticos, hayan sido concordantes para el color de ojos(es decir ambos mellizos tenían el mismo color de ojos) y que sólo el 28% de los mellizos dicigóticos fueran concordantes para este fenotipo; esto sugiere que el color de ojos está determinado fundamentalmente por el genotipo. La incidencia del sarampión, en cambio tiene una concordancia del 95% en mellizos monocigóticos y del 87% en mellizos dicigóticos, sugiriendo que el ambiente determina fundamentalmente el fenotipo. La probabilidad de que sean monocigóticos puede dilucidarse en mejor forma si se conoce el genotipo de los padres y de sus hermanos. El siguiente ejemplo ilustra cómo utilizar el método de marcadores genéticos usando los grupos sanguíneos de una familia. A/O MS/NS P1/P2 A/O MS/NS P1/P2 A/O MS/NS P2/P2 A2/O MS/MS P2/P2 MELLIZOS Dicigóticos Monocigóticos • Frecuencia relativa en la población 0,70 0,30 • Probabilidad que sean del mismo sexo 0,50 1,00 • Probabilidad que los mellizos nacidos de los padres antes mencionados sean iguales para : ABO 0,50 1,00 MNSS 0,50 1,00 P 0,25 1,00 • Producto de probabilidades = 0,022 0,30 • Probabilidades que sean MZ = 0,30 0,9314 La probabilidad (93%) no es suficientemente alta como para suponer que sean monocigotos, pues hay casi una probabilidad en 10 que no sean. Al utilizar un mayor número de marcadores genéticos es posible aumentar la probabilidad, acercándose a 100%. Una vez que hemos demostrado mediante alguno de estos métodos, que una característica en particular está determinada por factores genéticos, nos interesa poder definir de qué modo se transmite este rasgo de una generación a otra, es decir, cuál es su modo de herencia. Para abordar este problema se recurre al análisis de información que proviene de familias en que se presenta el fenotipo en cuestión, el análisis genealógico 3) ANALISIS DE GENEALOGÍAS El carácter en estudio se anota en genealogías lo más “extendidas” posibles y de su distribución familiar se descartan tipos de herencia Mendeliana, monogénica autosómica, ligada al X o al Y y la herencia mitocondrial. No se puede afirmar un tipo de herencia por estos estudios, a no ser que se descarten todas las posibilidades menos una. Repase los modos de herencia que se analizaron en el Seminario N 2 4. ANALISIS SEGREGACIONAL El análisis de genealogías generalmente no proporciona evidencias suficientes para tener certeza acerca del modelo de transmisión de un rasgo. Con el objeto de determinar el tipo de herencia con mayor precisión, se necesita hacer un estudio de análisis segregacional, para ello se necesita disponer de una colección de genealogías para un carácter dado para un fenotipo determinado. De las proporciones obtenidas entre afectados y no afectados y considerando todas las posibilidades de sesgo en la pesquisa, se puede calcular el ajuste de estas proporciones a uno de los modelos mendelianos conocidos. Sin embargo, el análisis segregacional también se puede utilizar en el caso de fenotipos complejos que no presenten un patrón de herencia mendeliana. Naturalmente en familias aisladas se pueden producir todas las proporciones posibles por azar. En este caso, es muy importante conocer el método de cómo se obtuvieron los datos de los sujetos afectados y sus familiares. Es fácil entender que si obtenemos todas las familias a partir de hijos afectados (o portadores de los rasgos), se nos van a escapar aquéllas familias en que no ha habido ninguno afectado por azar. Así, el resultado final sería una proporción de afectados mayor de lo esperado. Este es un ejemplo de sesgo en la pesquisa. También surgen complicaciones por existencia de penetración incompleta, limitación al sexo, fenocopias, participación de factores raciales, influencia de la edad o por problemas de definición de la entidad en estudio. Para demostrar una hipótesis genética en animales de experimentación, se analiza la progenie de cruzamientos dirigidos. Obviamente no es posible implementar este sistema en poblaciones humanas, y el genetista, en este último caso, debe abordar el problema indirectamente, utilizando modelos probabilísticos que se adecuen a los datos que haya obtenido mediante encuestas familiares. Se puede comparar la proporción observada de padres afectados y de progenie afectado de esos mismos padres, con la proporción esperada de acuerdo a alguna hipótesis genética. Este método es lo que se conoce como análisis segregacional. El principal problema de este tipo de análisis se origina debido a los métodos que se utilizan para pesquisar las familias y los individuos afectados. Por ejemplo, representa un problema el hecho de reunir en una sola “muestra” los datos de diferentes familias, lo cual se hace necesario porque ninguna familia “nuclear” aislada es lo suficientemente numerosa como para poder probar una hipótesis genética. Aunque se han elaborado diversos métodos estadísticos que permiten eliminar este tipo de sesgo de la muestra, debe recordarse que el análisis segregacional puede dificultarse por otros factores que son inherentes a los datos mismos, tales como familias con datos incompletos, diagnósticos poco precisos y heterogeneidad genética. El genetista debe considerar cuidadosamente todas estas posibilidades antes de reunir toda la información obtenida de diferentes familias, y de aplicar a esta “muestra” el análisis segregacional. 5) INTERACCIÓN GÉNICA Epistásis es el término utilizado cuando un gen enmascara la expresión de otro. Si el gen A enmascara el efecto del B se dice que A es epistático respecto de B. Bateson describió una relación fenotípica diferente en el color de las flores (púrpuras o blancas) de la arvejilla de olor, que no podía explicarse por las leyes de Mendel. Esta relación era 9:7 en vez de 9:3:3:1 que se espera en un cruce dihibrido entre heterozigotas. Lo que ocurre es que cuando los dos genes (C y P), en cualquiera de ellos homocigotas para el recesivo (cc o pp) resultan epistáticos (o sean que ocultan) el otro. Para que existan flores púrpuras deben estar presentes los alelos C y P. Cuando dos pares de genes, cada uno con dos alelos, por ejemplo, A y a y B y b, segregan independientemente en un organismo diploide, las consecuencias genéticas son, como hemos visto, fácilmente predecibles. Las interacciones entre alelos del mismo locus son la Dominancia (segregación 3:1 en la F2) y la Codominancia (segregación 1:2:1 en la F2). Los dos alelos de cada uno de los siete loci que controlaban los siete caracteres analizados por Mendel muestran entre si relaciones de Dominancia (A>a). Bateson y Punnett, descubrieron que los genes no eran elementos separados que producían efectos individuales distintos, sino que podían interactuar entre sí y dar fenotipos completamente nuevos. Por ejemplo, aunque pudiese caracterizarse el alelo A por el fenotipo A y el alelo B por el fenotipo B, un organismo que presentase ambos alelos A y B al mismo tiempo podía presentar el fenotipo C. Existen muchos caracteres que están gobernados por más de un locus, el carácter coloración de la flor en muchas especies vegetales está controlado al menos por dos loci distintos. El carácter coloración del pelaje en muchas especies animales está determinado por tres loci diferentes, incluso en algunos casos influyen hasta cuatro loci distintos. Por tanto, las interacciones entre alelos de distintos loci que influyen sobre el mismo carácter pueden ser bastante complejas. El que se produzcan tales interacciones significa que el fenotipo que observamos no se halla presente en los mismos genes sino que surge de un proceso. Si bien un gen fabrica una sola proteína, por lo general esa proteína interactúa con otras, en realidad la mayoría de las características del fenotipo son el resultado de la interacción de muchos genes distintos. Por ejemplo, en el guisante, existen un par de genes (A,a y B,b) cuyos alelos recesivos determinan, en homocigosis el color blanco de la flor. El cruce entre dos flores blancas homocigotas para alelos diferentes produce una F1 púrpura y una F2 con una segregación 9 púrpura: 7 blanco, según el siguiente esquema : DOBLE RECESIVA 9:7 (GENES COMPLEMENTARIOS) Para que se manifieste un determinado carácter es necesaria la presencia simultánea de ambos alelos dominantes, el A y el B. EPIPTASIS SIMPLE RECESIVA 9:3:4 El alelo recesivo de uno de los dos loci (por ejemplo el alelo a) suprime la acción de los alelos B y b del otro locus. Es el caso de la herencia del color del pelaje en los perros de la raza labrador. Existen perros labradores de color negro, marrón y oro. El alelo B produce color negro, el alelo b color marrón. El alelo A permite la aparición de color y el alelo a impide la aparición de color. 7) GENES LETALES El primer científico que encontró anomalías en la segregación debidas a genes letales fue Cuenot (1904). Existe un gen que afecta al color del pelo del ratón volviéndolo amarillo. El cruce entre dos ratones amarillos produce descendientes amarillos y oscuros en proporción 2 : 1, lo cuál indica que el amarillo es dominante. El cruce de un ratón amarillo por otro oscuro produce una F1 con una segregación 1 amarillo : 1 oscuro, a partes iguales, lo cual indica que los ratones amarillos son, invariablemente, heterocigotos. Otro ejemplo de este tipo de genes es el causante de la incontinencia pigmenti en la especie humana. Esta enfermedad solo se encuentra en mujeres, probablemente porque resulte mortal para los embriones masculinos. Los individuos afectados presentan manchas en la piel, como remolinos, convulsiones, escoliosis y, a veces, trastornos mentales y emocionales. INCONTINENCIA PIGMENTI INCONTINENCIA PIGMENTI (síndrome de Bloch-Sulzberger) La incontinencia pigmenti es una enfermedad que se transmite con carácter dominante ligado al cromosoma X, y que se manifiesta en el nacimiento o poco después. Aunque afecta primariamente a la piel, existen diferentes trastornos asociados, incluyendo defectos dentales, trastornos convulsivos, retraso mental, anomalías oculares y neoplasias infantiles. Dado que suele ser letal en niños, se observa casi exclusivamente en niñas. La incontinentia pigmenti es una genodermatosis ligada al cromosoma X, que se transmite de forma dominante, afectando fundamentalmente a mujeres. Se trata de un síndrome de dysplasia multisistémica que además de la piel afecta con frecuencia a dientes (anodontia), ojos (estrabismo), o sistema nervioso central (espasmos, convulsiones, retraso mental). Se ha identificado al gen responsable, conocido como NEMO (NF-KAPPA-B ESSENTIAL MODULATOR), que es un factor de transcripción que regula la expresión de citocinas, quimiocinas y moléculas de adhesión, y protege frente a la apoptosis inducida por el factor de necrosis tumoral. La afectación cutánea se manifiesta en 4 estadios clinicopatológicos (no todos tienen que aparecer, y pueden superponerse o repetirse): Estadio 1, vesicular o inflamatorio: Suele aparecer en las 2 primeras semanas de vida, siendo excepcional después del primer año. Son lesiones eritemato-vesiculares generalmente lineales, afectando a tronco y extremidades. Ocasionalmente recidivan en los años siguientes, generalmente en relación con procesos febriles. Histológicamente se trata de una dermatitis espongiótica/vesicular con abundantes eosinófilos intraepidérmicos y dérmicos. Se ha detectado un aumento de expresión de eotaxina en la epidermis lo que explica la acumulación de eosinófilos en dichas áreas. Estadio 2, verrucoso: Entre la 2ª y 6ª semanas de vida. Histológicamente presenta una hiperplasia epidérmica con hiperqueratosis, células disqueratósicas y una cantidad variable de eosinófilos. Estadio 3: Hiperpigmentación, que histológicamente se corresponde con una incontinencia pigmentaria (que da nombre a la entidad), con numerosos melanófagos en dermis papilar. Estadio 4, atrófico: solo en la cuarta parte de pacientes. Histológicamente muestra una atrofia epidérmica y pérdida de glándulas sudoríparas. EL GEN QUE CAUSA LA INCONTINENCIA PIGMENTI La causa de la Incontinentia Pigmenti se ha hallado en un gen defectuoso en el cromosoma X llamado NEMO (NF-KAPPA-B ESSENTIAL MODULATOR) Xq28. El gen NEMO es de menor tamaño que la media, ocupando alrededor de 23000 pares de bases. X*X X*X X*Y XY XX XY aborto El gen NEMO produce una proteína que es esencial para las células y cuyo defecto produce IP. Los varones no pueden sobrevivir sin un gen NEMO funcional y por esto mueren en el útero. En las hembras, algunas células tienen el gen NEMO normal y funcional (procedente del cromosoma X normal), mientras que otras células tienen un gen NEMO defectuoso. Actualmente se piensa que los síntomas de la IP en hembras proceden de células con el gen NEMO defectuoso en sus tejidos. Ahora que se ha encontrado el gen, esta hipótesis podrá comprobarse. BENEFICIOS DE ENCONTRAR EL GEN NEMO Es un marcador biológico que produce un diagnóstico molecular. Se hace posible realizar un diagnóstico prenatal durante el embarazo para determinar si el feto tiene el gen que causa IP. La madre de un bebé con diagnóstico IP puede determinar si ella es portadora del gen y lo ha transmitido a su hija. Esto le proporcionaría información importante a la hora de plantearse nuevos embarazos. Proporciona la base para un estudio más exhaustivo de las mutaciones del gen para predeterminar el nivel de severidad. Puede realizarse el diagnóstico en un feto varón que haya sufrido un aborto espontáneo para determinar si la causa fue la IP. Una pareja puede optar por la fertilización "in vitro". Un análisis previo a la implantación determina si el embrión fertilizado tiene IP. Los padres tienen la opción de escoger embriones no afectados por la mutación genética. 6) PENETRANCIA INCOMPLETA Y EXPRESIVIDAD VARIABLE La penetrancia incompleta no debe nunca confundirse con expresividad variable. En patologías que presentan expresividad variable, el paciente siempre expresa algunos de los síntomas de la patología, los cuales pueden variar desde efectos muy moderados hasta casos severos. En patologías autosómicas dominantes con penetrancia incompleta, el paciente ya sea expresa el fenotipo o no lo hace. La penetrancia incompleta y la expresividad variable son fenómenos asociados sólo con herencia dominante, nunca con herencia recesiva. Penetrancia es la frecuencia con que un gen dominante o al estado recesivo homocigoto, expresa su fenotipo característico en una población. Ejemplo 1 En una población, 15 individuos portan el alelo dominante para la acondroplasia. Los 15 son enanos acondroplásicos Penetrancia = 100% Penetrancia completa Ejemplo 2 En una población hay 20 individuos que portan el alelo dominante para la neurofibromatósis 16 individuos muestran síntomas de la enfermedad Penetrancia = 80% Penetrancia incompleta Expresividad Variable Es la variabilidad de la expresión fenotípica de un genotipo determinado. Ejemplo : Neurofibromatósis Todas las imágenes que se observan muestran penetrancia de la enfermedad, pero claramente difieren en la expresividad de la misma. NEUROFIBROMATOSIS Las neurofibromatosis (NF) se definen como un conjunto de trastornos hereditarios autosómicos dominantes del sistema nervioso que causan el crecimiento de tumores no cancerosos a lo largo de los nervios. Las NF también pueden provocar anomalías en la piel y los huesos. En la neurofibromatosis tipo 1, un tercio de los pacientes son asintomáticos y se identifican durante exploraciones de rutina, un tercio presenta alteraciones cutáneas y el otro tercio tiene alteraciones neurológicas. En el tipo 1 existe una pérdida de las propiedades supresoras tumorales de la neurofibromina. ¿Con qué frecuencia se producen las NF? La NF1 es uno de los trastornos genéticos más comunes que existen, ya que afecta a uno de cada 4.000 bebés nacidos en los EE.UU. La NF2 es menos común y afecta a uno de cada 40.000 bebés. Ambas manifestaciones de NF ocurren en todos los grupos étnicos y raciales del mundo y afectan a ambos sexos por igual. ¿Cuáles son las causas de la NF? La NF1 y la NF2 son provocadas por dos genes anormales distintos. El gen de la NF1 se encuentra en el cromosoma 17 y el gen de la NF2 en el cromosoma 22. Estos genes anormales pueden ser heredados (cuando uno de los padres padece el trastorno) o bien pueden deberse a una nueva mutación (o cambio) en el gen normal. Por lo tanto, la NF1 o la NF2 pueden ocurrir en personas que no tienen antecedentes familiares de esta condición. Alrededor del 50 por ciento de los casos de NF1 y de NF2 se debe a nuevas mutaciones genéticas. La gravedad de la enfermedad varía enormemente, incluso entre los diferentes miembros afectados de una misma familia. Por esta razón, en algunos casos es difícil determinar los antecedentes familiares. ¿Cuáles son los síntomas de la NF? La neurofibromatosis tipo 1 se diagnostica en aquellas personas que presentan dos o más de los siguientes síntomas : Pecas o lunares que aparecen en las axilas o en la zona de la ingle, por lo general antes de los 7 años. Seis o más manchas de color marrón claro en la piel, conocidas como manchas “café con leche”. Por lo general, estas manchas se encuentran presentes al nacer o aparecen antes de los 2 años de edad. Estas manchas pueden aumentar de tamaño y cantidad y oscurecerse a medida que pasan los años. Dos o más tumores (bultos) benignos (no cancerosos) llamados neurofibromas debajo de la piel o a mayor profundidad. Los neurofibromas, que crecen sobre los nervios, se componen de células que rodean a los nervios y a otros tipos de células. Estos tumores por lo general se desarrollan entre los 10 y los 15 años de edad, aunque pueden hacerlo a cualquier edad. Las personas afectadas pueden tener distintas cantidades de neurofibromas, desde unos cuantos hasta cientos de ellos. Los tumores, cuyo tamaño varía, pueden causar dolor o no causarlo. También es posible tener un solo neurofibroma sin padecer NF. Los neurofibromas pueden experimentar degeneración maligna secundaria y convertirse en sarcomas. Más raramente presentan nódulos subcutáneos por crecimiento amorfo de las células de Schwann, dando lugar a estructuras irregularmente engrosadas y distorsionadas (neuromas plexiformes) o de los huesos subyacentes produciendo deformidades muy severas. La anemia falciforme es bastante frecuente en algunas regiones de Africa y Asia donde la malaria es endémica. La alta frecuencia en las regiones con malaria se debe a la heterosis: los heterocigotos para los alelos «normal» y falciforme tienen una eficacia biológica superior a la de los homocigotos para el alelo «normal» debido a que son muy resistentes a la infección de la malaria. Hemoglobina Normal Hemoglobina Anormal Las hemoglobinas son de las proteínas más comunes en el cuerpo. Los seres humanos adultos tienen alrededor de un kilogramo de hemoglobina (alrededor del 98%) como hemoglobina A, un tetrámero, que consta de dos cadenas polipeptídicas α y dos β; codificadas por diferentes loci. . La cadena β de la hemoglobina consta de 146 aminoácidos. La única diferencia entre individuos normales y pacientes con anemia falciforme es que la β normal tiene ácido glutámico en la posición seis, mientras que la β falciforme tiene valin en esta posición. El ácido glutámico (Glu) está codificado por cualquiera de los codones GAA y GAG, mientras que la valina (Val) está codificada por cualquiera de los cuatro codones, GUU, GUC, GUA o GUG. Por lo tanto, una mutación que cambia la segunda A en una U en el triplete que codifica para el ácido glutámico originará un triplete que codifique para la valina, siendo así responsable de la anemia falciforme. Esta diferencia aparentemente trivial tiene serias consecuencias sobre la salud: alrededor de 100.000 personas mueren cada año en el mundo debido a que son homocigotos para el alelo falciforme. La condición anémica de los pacientes falciformes se debe a las propiedades de la valina y el ácido glutámico. Las proteínas tienen configuraciones plegadas con algunos aminoácidos situados en el interior de la molécula y otros hacia el exterior. El ácido glutámico (exterior)es un aminoácido hidrófilo pero la valina es un aminoácido hidrófobo. Cuando en la 6ª posición de la cadena β está presente una valina , la solubilidad de la hemoglobina disminuye considerablemente, al menos bajo condiciones de baja presión de oxígeno. En los estrechos capilares sanguíneos la hemoglobina falciforme tiende a cristalizar y los glóbulos rojos de la sangre a romperse y se produce una severa anemia. Los individuos homocigotos para el alelo falciforme normalmente mueren antes de la edad adulta. Base incorrecta en el DNA En la cadena beta se sustituye el aminoácido glutámico por valina Hemoglobina anormal Glóbulos rojos (GR) adoptan forma de hoz a baja presión de 02 Rápida destrucción de los GR alterados Aglutinación de los GR alterando la circulación Anemia Falla local en circulación sanguínea Cansancio Acumulación de GR en el bazo Aumento de tamaño del bazo Dilatación del corazón Daño al riñón Daño al pulmón Daño al corazón Deficiencia renal Neumonía Fibrosis en el bazo 8) ENFERMEDADES MITOCONDRIALES El genoma mitocondrial es poliploide, es decir cada mitocondria contiene múltiples copias de ADNmt y cada célula desde cientos y hasta miles. Durante la mitosis, estas copias se distribuyen al azar en las células hijas. En un individuo normal todo el genoma mitocondrial es idéntico (homoplasmía). Cuando ocurre una mutación, se generan dos subpoblaciones de ADNmt que coexistirán en la misma célula (heteroplasmía). Se ha sostenido que éstas segregan al azar en las células hijas que contendrán por lo tanto proporciones variables de ADNmt mutante (segregación mitótica). Sin embargo, hay evidencia experimental reciente que apoya la existencia de un control nuclear de este proceso. La expresión fenotípica de la enfermedad ocurrirá cuando se alcance un número crítico de este ADNmt mutante en un tejido particular, capaz de afectar su funcionamiento (efecto umbral). Este umbral generalmente se alcanza cuando un 60-90% del ADNmt de una célula es mutante y refleja la incapacidad del ADNmt normal de compensar al alterado. La proporción requerida para afectar el funcionamiento es dependiente del tejido afectado, sin embargo otros factores como edad y sexo también contribuyen al proceso de la enfermedad. Estas características de heteroplasmía, segregación mitótica y efecto umbral explican la gran variabilidad fenotípica de las enfermedades mitocondriales que se originan en mutaciones puntuales, deleciones o rearreglos del ADNmt. Las enfermedades mitocondriales se caracterizan por presentar una gran heterogeneidad de síntomas clínicos. Esta heterogeneidad provoca que idénticas mutaciones pueden dar lugar a diferentes fenotipos, y a su vez diferentes mutaciones pueden dar lugar a un mismo fenotipo. Este hecho complica el diagnóstico clínico de estas enfermedades. La heterogeneidad de las enfermedades mitocondriales desde siempre se ha atribuido a los diferentes grados de heteroplasmia de una mutación en diferentes tejidos, y a la diferente demanda energética de cada uno de ellos. Clasificación de la enfermedades mitocondriales La clasificación más habitual que se suele hacer de las enfermedades mitocondriales es según un punto de vista genético. De esta manera se pueden clasificar las encefalomiopatías mitocondriales en dos grandes categorías, las enfermedades debidas a alteraciones del ADNmt y las enfermedades debidas a alteraciones del ADN nuclear. Enfermedades debidas a alteraciones primarias del ADNmt Podemos encontrar dos grandes grupos de enfermedades : las debidas a mutaciones puntuales y las debidas a reordenamientos del ADNmt. A continuación se describirán las principales características de algunas de las enfermedades que están dentro de estos dos grandes grupos A) ENFERMEDADES DEBIDAS A MUTACIONES PUNTUALES EN EL ADNmt. Síndrome de MERRF (epilepsia mioclónica con fibras rojo-rasgadas): se caracteriza por epilepsia mioclónica, miopatía mitocondrial y ataxia cerebelar. Otros síntomas menos comunes incluyen demencia, sordera, neuropatía periférica y múltiples lipomas. La mutación más frecuente de este síndrome es la A8344G en el gen del tRNALys, aunque otras mutaciones puntuales en el mismo gen se han asociado a este síndrome. La mutación A8344G siempre se presenta de forma heteroplástica. Estudios con híbridos transmitocondriales han demostrado que la mutación causa una aminoacilación defectiva del tRNA lisisna y una terminación prematura de la síntesis proteica. Síndrome de MELAS (Encefalomiopatía mitocondrial con acidosis láctica y episodios de accidentes cerebrovasculares: se presenta normalmente en niños o adolescentes que han tenido un desarrollo previo normal. La típica presentación incluye vómitos recurrentes, dolores de cabeza similares a la migraña y episodios de infartos cerebrales que causan ceguera cortical o hemiparesis. La mutación más común en el ADNmt es la A3243G en el tRNALeu (UUR), pero se han descrito una decen más de mutaciones asociadas s este síndrome. Estudios en cultivo de híbridos transmitocondriales con la mutación A3243G han demostrado disminución de los niveles de síntesis proteica mitocondrial así como actividades reducidas de las complejos I y IV de la cadena respiratoria. Al igual que la mutación A8344G en el síndrome de MERRF, el cambio A3243G también provoca una disminución de la aminoacilación del tRNALeu(URR). Síndrome de NARP (neuopatía, ataxia y retinitis pigmentosa), Síndrome de MILS (síndrome de Leigh de herencia materna): el síndrome de NARP principalmente afecta a personas jóvenes causando retinitis pigmentosa, demencia, ataques, debilidad proximal y neuropatía sensorial. Fue descrito en el año 1990 por Holt y colaboradores que lo asociaron a una mutación puntual en el gen ATPase 6, T8993G. El síndrome de MILS se presenta como una encefalomiopatía infantil muy severa con lesiones simétricas caracaterísticas en los ganglios basales y el tronco cerebral. El origen de este síndrome es la misma mutación que provoca el síndrome de NARP, pero con un porcentaje de mutación siempre superior al 90%. Síndrome de LHON o de Leber (neuropatía óptica hereditaria de Leber): se caracteriza por una pérdida de visión aguda o subaguda en personas jóvenes, más frecuentemente en varones, debido a una atrofia óptica bilateral. A este síndrome se han asociado muchas mutaciones puntuales del ADNmt en genes estructurales (principalmente genes que codifican subunidades del complejo I). De todas estas mutaciones, sólo tres parecen ser patogénicas, incluso cuando se presentan de forma aislada (son las llamadas mutaciones primarias). Estas son: G11778A en el gen ND4, G3460A en el gen ND1 y T14484C en el gen ND6. Cabe remarcar que las mutaciones puntuales en el ADNmt en genes que codifican proteínas, a menudo no siguen las reglas de la genética mitocondrial, por el hecho que sólo afectan a determinados individuos y tejidos aislados, normalmente el músculo esquelético. Así, pacientes con intolerancia al ejercicio, mialgia y algunas veces mioglobinuria recurrente, pueden tener defectos aislados del complejo I, complejo III o complejo IV, debido a mutaciones patogénicas en los genes que codifican sus subunidades. La falta de herencia materna y el hecho de que sólo el músculo esqulético está implicado, sugiere que estas mutaciones se han originado de nove en las células embrionarias biogénicas, después de la diferenciación de la línea germinal y que se han acumulado durante la replicación en el tejido afectado. Son las llamadas mutaciones somáticas. B) ENFERMEDADES DEBIDAS A REORDENAMIENTOS DEL ADNmt En este apartado se incluyen deleciones simples, deleciones múltiples, inserciones y duplicaciones. Las deleciones y las inserciones suelen ser espontáneas, aunque también se han publicado casos de herencia materna. Se presentan de forma heteroplástica y pueden aumentar la gravedad de la enfermedad con la edad. Algunos de los síndromes clínicos causados por alguno de estos reordenamientos están descritos a continuación: Síndrome de Pearson: es una enfermedad fatal habitualmente caracterizada por anemia sideroblástica y una disfunción exocrina del páncreas. Los pacientes afectados por esta enfermedad acostumbran a desarrollar problemas hepáticos, atrofia de las vellosidades intestinales, diabetes mellitas y disfunción tubular renal. Los pacientes presentan grandes deleciones única que en general son esporádicas, aunque se ha descrito algún caso de herencia materna. Síndrome de CPEO (Oftalmoplegia crónica externa progresiva): se caracteriza por oftalmoplegia y ptosi bilateral de los párpados. Se puede presentar con o sin debilidad de la musculatura proximal y es a menudo compatible con una esperanza de vida normal. Se debe a la presencia de deleciones simples en el ADNmt de músculo, pero también se han encontrado formas de este síndrome asociadas a mutaciones puntuales de herencia materna. Las deleciones pueden variar en tamaño y localización dentro de la secuencia del ADNmt. Síndrome de Kearns-Sayre: la edad de aparición de esta enfermedad es normalmente antes de los veinte años de edad. La presentación típica consiste en dificultad de los movimientos de los ojos, retinopatía pigmentaria, y bloqueo de la conducción cardiaca. A menudo estos síntomas clínicos están acompañados por tors como demencia, ataxia y disfunción endocrina (diabetes mellitas, hiperparatiroisismo corta estatura). El síndrome también se presenta con alteraciones en la analítica del laboratorio como acidosis láctica y niveles incrementados de proteínas en el líquido cefalorraquídeo. La biopsia muscular normalmente presenta RRF.