AGENDA Curso Micro_A4

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CURSO TEÓRICO –
PRÁCTICO DE VALIDACIÓN
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DE MÉTODOS
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MICROBIOLOGICOS
Dra. Estefania Escartin [email protected]
Directora Técnica SPM Controler
Jordina Faurat
[email protected]
Responsable de la Unidad de Garantía de Calidad. Laboratorios de Sanidad Animal del DAAM
PROGRAMA
PROGRAMA PRIMER DÍA
09:00-09:30
09:00 09:30 Bienvenida
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09:30-10:30 Concepto de validación. Planificación y diseño experimental: métodos
microbiológicos de aguas (NMP+ FM), requisitos normativos (7/2006/CEE, RD
140/2003, ISO 17025) medios de cultivo (tradicionales y cromogénicos), cepas y
materiales de referencia (cualitativas y cuantitativas: crioviales, lentículas, bioball).
10:30-11:00 Pausa
11:00 14:30 Práctica: Explicación práctica del ensayo:
11:00-14:30
•Preparación del MRC: explicación mediante video con crioviales y lentículas.
• Explicación siembra muestra agua potable por NMP (Colilert y enterolert)
•Explicación siembra con muestra de agua de mar FM
•Desarrollo del ensayo en el laboratorio:
•Práctica de preparación e inoculación de la muestra y del MRC. Desarrollo del
método (NMP y filtración por membrana). Incubación.
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PROGRAMA
PROGRAMA SEGUNDO DÍA
09:0009:00 10:30 Expresión y evaluación de los resultados en análisis
microbiológicos.
10:30-11:00 Pausa
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11:00- 13:00 Validación de métodos cuantitativos (exactitud, precisión,
sensibilidad y especificidad)
13:00-14:00 Práctica de lectura de placas y confirmación bioquímica. De los
parámetros de lectura a las 24± 2 horas de los dos métodos.
PROGRAMA
PROGRAMA TERCER DÍA
09:00-10:30 Cálculo incertidumbres (concepto y estimación de incertidumbre,
expresión de resultados en el informe de análisis). Aseguramiento de la calidad de
los resultados (actividades de control, evaluación de resultados y gráficos de
control).
10:30-11:00 Pausa
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11:00-13:30 Práctica de recuento y confirmación bioquímica de parámetros de
lectura a las 48± 2 horas de los dos métodos. Acabar con la confirmación bioquímica
del día anterior.
13:30- 14:00 Exposición de resultados por grupos.
14:00 -14:30 Clausura y entrega de certificados
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CONCEPTOS GENERALES
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MICROBIOLOGÍA
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INTRODUCCIÓN
La realización de análisis de control microbiológico es una
herramienta que tiene una repercusión decisiva en el ámbito de la
salud pública, la tecnología alimentaria y el Medio Ambiente.
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Los laboratorios que realizan análisis de control microbiológico
deben utilizar métodos de ensayo que aseguren la fiabilidad de
los resultados.
Los métodos de ensayo utilizados:
ƒ Han
H de
d reunir
i los
l criterios
it i técnicos
té i
que aseguren su validez
lid
ƒ Han de poder ser reproducibles
ƒ Han de ser realizados con una serie de garantías que permitan
obtener resultados comparables con independencia del
laboratorio que los ejecute.
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CONCEPTO DE VALIDACIÓN
ƒ ISO 17025 punto 5.4.5.1
La validación es la confirmación mediante examen y la
aportación de evidencias objetivas que demuestren el
cumplimiento de ciertos requisitos para el uso específico previsto
ƒ ISO/TR 13843:2000
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Proceso que nos proporciona la evidencia de que un método es
capaz de servir al propósito para el que ha sido diseñado,
diseñado es
decir, en el caso de los métodos microbiológicos, para detectar o
cuantificar un determinado microorganismo o grupo de
microorganismos con unas adecuadas sensibilidad y
especificidad o precisión y exactitud.
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REQUISITOS NORMATIVOS
g
Existe la obligación
de validar métodos.
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ISO 17025 5.4.5.2. “El laboratorio debe validar los métodos no
normalizados, los métodos diseñados/desarrollados internamente,
los métodos normalizados utilizados fuera de su campo de
aplicación previsto, y las ampliaciones y modificaciones de métodos
normalizados, con el fin de comprobar que son apropiados para el
uso previsto.
previsto ”
ISO 17025 5.4.2 “El laboratorio debe confirmar que puede realizar
correctamente los métodos normalizados antes de efectuar los
ensayos.”
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REQUISITOS NORMATIVOS
ƒ
ƒ
G-ENAC-04 Rev.3 “Los laboratorios deben mantener los datos
sobre
de
b validación
lid ió de
d los
l sistemas
i t
d ensayo comerciales
i l (Kits)
(Kit )
que utilicen. Si no se dispone de datos sobre validación o si
estos no son plenamente aplicables, el laboratorio será
responsable de completar la validación del método”.
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Verificación periódica – Aseguramiento de la calidad de los
resultados de ensayo
Incluso cuando se haya realizado la validación, el laboratorio
tendrá que verificar periódicamente que se cumplan los
parámetros documentados (comprobar que siguen satisfaciendo
los requisitos establecidos). El aseguramiento de la calidad debe
ser tanto interno como externo (intercomparaciones)
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REQUISITOS NORMATIVOS
G-ENAC-04 Rev.3
La validación de los métodos de ensayo debe reflejar las condiciones reales de ensayo.
ensayo
NT 32 Rev.1 y Rev.2 – Actividades de Validación
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El laboratorio debe justificar la selección del número y tipo de matrices en función del
alcance de acreditación.
Las actividades de validación deben realizarse sobre muestras naturales o, en su defecto,
con muestras inoculadas, preferiblemente no esterilizadas para que exista microbiota
interferente.
Si se considera necesario investigar la influencia de la microbiota acompañante interferente a
concentraciones superiores o muy superiores al microrganismo diana, se deberá inocular la
muestra con diversas cepas de especies distintas a la diana a esas concentraciones.
Para demostrar que una versión modificada de un método cumple las mismas
especificaciones que el método original, deben realizarse comparaciones utilizando
replicados. El diseño experimental y el análisis de los resultados tienen que ser
estadísticamente válidos.
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SELECCIÓN DE MÉTODOS DE ENSAYO
ISO 17025:2005 Apartado 5.4.2 “El laboratorio debe utilizar
métodos de ensayo que satisfagan las necesidades del cliente y
sean apropiados para el uso previsto”
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debe tenerse en cuenta el ámbito de aplicación
Requisitos RD 140/2003 y Directiva 2006/7/CE
“ cuando el cliente no especifique
p
q el método a utilizar,, el laboratorio debe seleccionar
los métodos apropiados que hayan sido publicados en normas internacionales,
regionales o nacionales, por organizaciones técnicas reconocidas o en libros o
revistas científicas especializadas o especificados por el fabricante de equipos”
En caso de elegir un procedimiento de ensayo interno, se aconseja que se parta
de métodos de referencia que sean ampliamente aceptados, conocidos y
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aplicados en el sector
SELECCIÓN DE MÉTODOS DE ENSAYO
Requisitos RD/140/2003
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SELECCIÓN DE MÉTODOS DE ENSAYO
Requisitos RD/140/2003
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SELECCIÓN DE MÉTODOS DE ENSAYO
Requisitos RD/140/2003
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SELECCIÓN DE MÉTODOS DE ENSAYO
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Sin perjuicio de lo dispuesto en el Real Decreto 140/2003, de 7 de febrero,
por el que se establecen los criterios sanitarios de la calidad del agua de
consumo humano, y como alternativos al método descrito en la parte A de
su anexo IV, se podrán utilizar, asimismo, los métodos incluidos en el
anexo de esta orden, para el análisis microbiológico de los parámetros:
«bacterias coliformes» y «Escherichia coli».
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SELECCIÓN DE MÉTODOS DE ENSAYO
Parte B.
Método de detección y recuento de bacterias coliformes y de Escherichia coli en
aguas de consumo por filtración de membrana utilizando agar cromogénico para
coliformes (ACC).
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En el estudio de equivalencia se empleó el medio Chromocult Coliform Agar,
fabricado por la casa comercial Merck.
Parte C.
C
Método de detección y recuento de bacterias coliformes y de Escherichia coli en aguas
de consumo por el NMP (número más probable) en medio líquido utilizando la
tecnología del sustrato definido® (DST).
En el estudio de equivalencia se empleó la placa Quanti-Tray® de 51 pocillos y el
sustrato definido Colilert 18®.
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SELECCIÓN DE MÉTODOS DE ENSAYO
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SELECCIÓN DE MÉTODOS DE ENSAYO
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PROCESO DE VALIDACIÓN
Planificación
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Diseño experimental
Desarrollo práctico
Evaluación de los
resultados
Informe de validación
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PLANIFICACIÓN DE LA VALIDACIÓN
ƒ
Definir las responsabilidades: Relación de las personas que llevaran a
cabo la validación y del responsable de su evaluación y aprobación.
aprobación
Éstos deberán tener una cualificación adecuada.
ƒ
Definir el método a validar; analito, técnica, matrices.... Ha de existir un
documento (PNT) que describa con el suficiente grado de detalle el
procedimiento a seguir para asegurar su correcta realización y su
repetibilidad
ƒ
Definir el procedimiento de validación a seguir y los registros que sean
necesarios. Todos los datos primarios han de poder ser auditables.
ƒ
Definir los objetivos y los requisitos que solicitamos al método,
identificar los parámetros de validación a estudiar y definir sus criterios
de aceptación.
ƒ
Identificar las cepas y materiales de referencia, que se utilizaran.
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DISEÑO EXPERIMENTAL
Una vez definidos los parámetros a estudiar es necesario detallar
como se llevará a cabo este estudio;
ƒ que muestras se utilizaran,
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ƒ como se prepararan las muestras contaminadas artificialmente,
ƒ que microorganismos que puedan interferir se estudiarán
ƒ cuantas muestras se utilizaran
ƒ cuantas repeticiones se realizaran
ƒ a partir de que dilución se sembrara muestra,........
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EVALUACIÓN DE LOS RESULTADOS
Una vez realizadas las pruebas y experimentos establecidos
(desarrollo practico) se realizaran los cálculos pertinentes para
determinar los parámetros de validación y se evaluaran los
resultados obtenidos.
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Se comprobará que los resultados cumplen los criterios de
aceptación establecidos previamente, en caso contrario cuando
los resultados difieren de lo esperado se estudiara la posibilidad
de realizar una modificación (del método o de los requisitos
establecidos) y se indicaran las razones que la justifican.
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INFORME DE VALIDACIÓN
Finalmente, una vez concluido todo el proceso de validación se emitirá un informe o
p
por las p
personas responsables.
certificado de validación firmado p
El contenido del informe de validación puede ser:
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ƒ
Declaración formal sobre la idoneidad del método para el uso que se pretende
hacer del mismo.
ƒ
Planificación: Responsabilidades, objetivos y requisitos del método.
ƒ
Resultados obtenidos y su evaluación.
ƒ
Fechas de inicio y final de la validación.
ƒ
Id tifi
Identificación
ió de
d los
l patrones
t
y/o
/ materiales
t i l de
d referencia
f
i utilizados
tili d
ƒ
Identificación de todos los registros relacionados con el proceso de validación,
todo el proceso ha de poder ser auditable, incluido el procedimiento de
validación utilizado.
Todos los registros relacionados con el proceso de validación deben incluir fechas,
personal, patrones y/o materiales de referencia y equipos utilizados de manera que
puedan ser reproducibles.
CEPAS Y MATERIALES DE REFERENCIA
ƒ
Cepas de referencia: Microorganismos definidos por lo menos al nivel del
genero y especie, catalogados y descritos según sus características y
preferiblemente de origen conocido.
conocido [ISO:11133-1:2000]
ƒ
Material de referencia: Material o sustancia uno o más de cuyas
propiedades tienen valores suficientemente homogéneos y claramente
establecidos como para poder ser utilizados en la calibración de un aparato,
la evaluación de un método de medida o la asignación de valores a
materiales. (Guía ISO 30:1992)
ƒ
Material de referencia certificado: Material de referencia, acompañado de
un certificado, en el cual uno o más valores de sus propiedades han sido
certificados mediante un procedimiento que establece su trazabilidad a una
realización exacta de la unidad en que se expresan los valores de dichas
propiedades. Cada valor certificado se acompaña de una incertidumbre y el
nivel de confianza correspondiente. (Guía ISO 30:1992).
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CEPAS Y MATERIALES DE REFERENCIA
Cepas de referencia: cultivo procedente de una colección nacional o
internacional reconocida. Garantizan identidad del microorganismo pero
no cantidad.
id d
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CECT: Colección Española de Cultivos Tipo.
ECCO: European Culture Collection Organization.
ATCC: American Type Culture Collection.
WDCM (World Data
Centre for
Microbiology)
Control de calidad de los medios de cultivo.
cultivo
Utilizadas para
Validar métodos
Evaluar la calidad de los resultados
CEPAS Y MATERIALES DE REFERENCIA
ƒ
Cepas de
referencia:
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CEPAS Y MATERIALES DE REFERENCIA
Material de referencia certificado: muestras que tienen un valor conocido y
certificado de un numero concreto de microorganismos de un determinado
tipo, obtenido mediante la aplicación de un determinado método.
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Validar métodos.
Utilizados para
Evaluar la calidad de los resultados
CEPAS Y MATERIALES DE REFERENCIA
ƒ
Material de
referencia:
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CEPAS Y MATERIALES DE REFERENCIA
ƒ
Material de
referencia
certificado
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CEPAS Y MATERIALES DE REFERENCIA
ƒ
Material de
referencia
certificado
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CEPAS DE REFERENCIA
G-ENAC-04 (rev.3)
Para demostrar la trazabilidad, el laboratorio debe utilizar cepas de referencia
de microorganismos obtenidos de una colección nacional o internacional
reconocida.
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... se reconstruirían y someterán a los controles de pureza y ensayos
bioquímicos que sean necesarios. Serán subcultivadas una sola vez para
obtener las cepas de reserva, de las que se obtendrán las cepas de trabajo
…las cepas de reserva deben conservarse utilizando una técnica que
mantenga
t
l características
las
t í ti
d
deseadas
d .... (ultracongeladas
( lt
l d o liofilizadas).
li fili d ) Si
las cepas de reserva se han descongelado, no deben volver a congelarse y
reutilizarse
Las cepas de trabajo no deben ser subcultivadas para sustituir las cepas de
reserva. Se conservaran en refrigeración
CEPAS DE REFERENCIA
CEPA DE REFERENCIA
“cultivo de microorganismo obtenido de una colección nacional o internacional reconocida”
Control de pureza y ensayos bioquímicos
Reconstitución (subcultivada una sola vez)
CEPA DE RESERVA
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NO tienen determinada ninguna carga de
microorganismos: se considera un carga inicial de 108
CEPA DE RESERVA
CEPA DE RESERVA
“cultivos de referencia mantenidos por un laboratorio”
Descongelación/Reconstitución
(subcultivada una sola vez)
CEPA DE TRABAJO
CEPA DE TRABAJO
Especificar tiempo y condiciones de almacenamiento
Control de pureza y ensayos bioquímicos
CEPA DE TRABAJO
CEPA DE TRABAJO
“subcultivos de microorganismos derivados de las cepas de reserva para ser utilizados en las operaciones del día a día”
Especificar tiempo y condiciones de almacenamiento
Es obligatorio su uso para el control de calidad de medios de cultivo
Se pueden usar para la: Validación de métodos y la evaluación de la calidad de los ensayos
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CEPAS DE REFERENCIA
Anexo B de la norma ISO 11133-1: Conservación y mantenimiento de cepas
Conservación
CEPA DE REFERENCIA
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Liofilización
(asegurar su viabilidad y evitar que cambien)
CEPA DE RESERVA
CULTIVO DE RESERVA
Controles
Liofilización,
Congelación –24ºC, 2-3 años
Congelación a –70ºC , 5 años
Nitrógeno
g
líquido
q
A temperatura adecuada
(de 18ºC a 25ºC o de 2ºC a 8ºC),
1 mes
Control de pureza
Ensayos bioquímicos
Control de pureza
Ensayos bioquímicos
Control de pureza
CULTIVO DE TRABAJO
ESTANDARIZACIÓN DE SUSPENSIONES BACTERIANAS
Para el control de calidad de los medios de cultivo, y para la validación de
métodos ((muestras contaminadas artificialmente)) es necesario disponer
p
de
cepas estandarizadas de microorganismos.
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La manera mas fácil de estandarizar una suspensión de microorganismos es
por determinación de la turbidez en un espectrofotómetro o por comparación
con la escala Mc Farland.
Siempre que se prepare la
Si
l suspensión
ió de
d un mismo
i
microorganismo
i
i
en un
mismo medio y a la misma turbidez medida a una longitud de onda
aproximada, se obtendrá aproximadamente el mismo número de
microorganismos.
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ESTANDARIZACIÓN DE SUSPENSIONES BACTERIANAS
Encontrar la relación entre la transmitancia y el número del recuento de
microorganismos.
microorganismos
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PREPARACIÓN DE UNA SUSPENSIÓN ESTANDARIZADA
ƒ Sembrar el microorganismo en un tubo de agar de triptona-soja inclinado y
incubar entre 30-35 ºC durante 24 horas.
ƒ Realizaremos 10 suspensiones de Staphylococcus aureus en agua de
peptona 0.1%.
ƒ La ajustamos al 70% de transmisión en un espectrofotómetro regulado a una
longitud de onda de 580nm. Si la lectura es superior al 70%, recoger más
crecimiento y si es inferior, diluir la suspensión con agua de peptona. La
suspensión así preparada contiene aproximadamente 108 ufc/mL.
ƒ Diluimos hasta obtener la dilución 10-6 y realizamos el recuento de viables
(por duplicado) de cada suspensión.
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EXPRESIÓN Y
EVALUACIÓN DE LOS
RESULTADOS DE
RESULTADOS
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EXPRESIÓN DE RESULTADOS
ISO 7218:2008
MÉTODOS DE DETECCIÓN Y RECUENTO
Recuento en placa
Recuento en medio líquido
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Método de cálculo
Método general
Método posterior a
la identificación
Método NMP
Nº de microorganismos N por (mililitro o gramo)
ƒ 2 dos cifras significativas
ƒ Criterio
C it i de
d redondeo:
d d
Si la ultima cifra es < 5 redondear a la baja
Si es > 5 redondear a la alta
NMP de microorganismos por
gramo o mililitro
Preferiblemente se expresará como: a x 10b ufc/g o ml
a = numero entre 1,0 y 9,9
b= potencia de 10 adecuada
EXPRESIÓN DE RESULTADOS
Métodos de investigación
g
Detección
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Presencia o ausencia en volumen de muestra ensayada
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CÁLCULO DE RESULTADOS
ISO 81992:2008
Condiciones generales:
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ƒ número total de colonias entre 10 y 200 por filtro
ƒ número de colonias típicas entre 10 y 100 por filtro
ƒ Número de colonias sospechosas inoculadas pera su identificación o
confirmación de cada filtro: 5
CÁLCULO DE RESULTADOS
ISO 81992:2008, apdo. 8.4.2. Cálculo de resultados. Caso general
Una de las p
placas debe contener un mínimo de 10 colonias ((totales,, típicas
p
oq
que cumplan
p
los criterios
de identificación, según proceda)
Cs =
ula
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Z
× Vs
Vtot
Cs es el número estimado de ufc en el volumen de referencia de la muestras Vs
Z es la suma de todas las colonias contadas sobre las placas o membranas derivadas de
las diluciones d1
d1, d2
d2, …, di o derivadas de volúmenes independientes de la porción de
ensayo (muestra o dilución)
Vs es el volumen de referencia seleccionado para expresar la concentración de
microorganismos de la muestra
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CÁLCULO DE RESULTADOS
Vtot
es el volumen total calculado de la muestra de origen inoculado en las
p
membranas contadas. Es la suma de los volúmenes separados
de la p
porción de
ensayo (muestra o dilución) o bien, se calcula a partir de la ecuación:
ula
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Vtot = (n1·V1·d1) + (n2·V2·d2) + ... + (ni·Vi·di)
donde
n1, n2, ... , ni
es el número de placas contadas para las diluciones d1, d2, …, di
V1, V2, …,, Vi
es el volumen de ensayo
y utilizado en las diluciones d1, d2, …,, di
d1, d2, …, di es la dilución utilizada para el volumen de ensayo V1, V2, …, Vi (d=1
para la muestra inicial, d=0.1 para la dilución 1/10, etc …)
41
CÁLCULO DE RESULTADOS
Ejercicio 1: Filtramos 100 y 10 ml de muestra por duplicado y obtenemos
los siguientes resultados:
•
•
100 ml: 66 y 80 ufc/placa
10 ml: 4 y 7 ufc/placa
ula
ientífica
Calcular y expresar los resultados de la muestra ensayada.
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ula
ientífica
CÁLCULO DE RESULTADOS
ISO 81992:2008. Método de cálculo: después de la identificación
Se identifica un número determinado n de colonias sospechosas (mínimo 5)
Tras la confirmación, se calcula para cada una de las placas la proporción de colonias
presuntivas que cumplen los criterios de confirmación
x=
x
ula
ientífica
k
×z
n
es el número estimado de colonias confirmadas por placa
k
es ell número
ú
d
de colonias
l i que cumplen
l llos criterios
it i d
de confirmación
fi
ió entre
t llas colonias
l i
sembradas n
n
es el número de colonias positivas presuntivas sembradas para confirmar
z
es el número total de colonias positivas presuntivas contadas en la placa.
No se deben redondear los resultados confirmados x.
En la fórmula del método general remplazar Z por X =∑ x.
CÁLCULO DE RESULTADOS
Ejercicio 2 : Filtramos 100 y 10 ml de muestra por duplicado y obtenemos los
siguientes resultados:
100 ml: 66 y 80 ufc/placa
10 ml: 4 y 7 ufc/placa
ula
ientífica
De las 66 colonias, se confirman 5, de las cuales 4 cumplieron los criterios.
De las 80 colonias, se confirman 5, de las cuales 3 cumplieron los criterios.
De las 7 colonias, se confirman 5, de las cuales 4 cumplieron los criterios.
De las 4 colonias
colonias, se confirman 4
4, de las cuales 4 cumplieron los criterios
criterios.
Calcular y expresar los resultados de la muestra ensayada.
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CÁLCULO DE RESULTADOS
ISO 81992:2008. Método de cálculo: casos especiales
Todas las placas contienen menos de 10 colonias
ula
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Para recuentos inferiores a 10 colonias la precisión disminuye
ISO/TR 13843: Límite de determinación: concentración media más baja de
partículas ,“x” ,por porción analítica para la que la incertidumbre estándar relativa
(RSD) esperada sea igual a un valor especificado.
Para una distribución de Poisson, x se calcula mediante la siguiente ecuación:
x=
1
(w)2
donde W = RSD
Se considera un límite de precisión relativa aceptable cuando la RSD=0.5
El límite inferior de determinación corresponde a 4 colonias (x = 4, cuando w=0.5)
CÁLCULO DE RESULTADOS
ISO 81992:2008. Método de cálculo: casos especiales
ula
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A) Si todas las placas contienen menos de 10 colonias, pero el número total de
colonias en todas las placas disponibles es mayor o igual a 4, el resultado se
calcula como en el caso general.
N número estimado de microorganismos por V filtrado.
B) Si el resultado total está entre 1 y 3, la precisión es tan baja que se informa del
resultado
lt d como detectado
d t t d en ell volumen
l
analizado.
li d
Hay microorganismos presentes, pero a un nivel inferior a (4 x d ) por V filtrado.
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CÁLCULO DE RESULTADOS
ISO 81992:2008. Método de cálculo: casos especiales
p
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Ninguna placa contenga colonias
< 1/Vtot ufc por volumen de muestra o “cero” en el volumen de muestra
analizado.
Más de 100 colonias típicas
> 100/di ufc por volumen de muestra analizado, siendo di la mayor de las
diluciones realizadas.
CÁLCULO DE RESULTADOS
Ejemplo 3: Si hemos filtrado 100 ml de la muestra inicial y contamos 2
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Ejemplo 4: Si hemos filtrado 100 ml de la muestra inicial y contamos >100 colonias
típica y menos de 200 en total
¿Como se expresaran los resultados del ensayo?
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CONCEPTOS
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ESTADÍSTICOS BÁSICOS
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VARIABLES ESTADISTICAS
Los resultados de los experimentos analíticos son variables aleatorias.
Cualitativas
Variables
aleatorias
Cuantitativas
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Continuas; puede tomar cualquier
valor dentro de un intervalo
Discretas; solo puede tomar valores
enteros
Los resultados de los recuentos microbiológicos son variables
aleatorias discreta, es decir, números enteros.
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DISTRIBUCIONES DE PROBABILIDAD
Distribución binomial; se cumple cuando la concentración de
g
y elevada
microorganismos
es muy
Variables discretas
Distribución binomial negativa; se describe como una distribución de
agrupamiento o sobredispersión. La distribución de los
microorganismos en la naturaleza se ajusta a este tipo de
distribución.
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Distribución de Poisson; se describe como una distribución espacial
totalmente aleatoria de los elementos que la forman, no existe
ningún tipo de interferencia entre ellos. Este modelo se cumple
cuando se consigue una homogeneización perfecta.
Distribución normal; se conoce la varianza de la población
Variables continuas
Distribución t de Student; cuando se estima la varianza de la población.
Cuando el número de valores es superior a 30 esta distribución se
aproxima a la normal.
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TRANSFORMACIÓN DE LOS RESULTADOS
La estimación del valor medio y de la varianza de la población a partir de
la media aritmética y la desviación estándar respectivamente,
respectivamente es propio de
variables aleatorias continuas que siguen una distribución normal.
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El objetivo de la utilización de la estadística en la validación de métodos es
poder hacer comparaciones de los datos obtenidos, para poder evaluar si
las diferencias entre los resultados obtenidos y los resultados de
referencia son significativas o si se pueden justificar sólo por variaciones
aleatorias. Para ello se utilizaran las pruebas de significación o test de
hipótesis, los cuales requieren para su aplicación que dichos datos sigan
una distribución normal.
26
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TRANSFORMACIÓN DE LOS RESULTADOS
Para poder utilizar toda la teoría relacionada con la ley normal es
necesario realizar las siguientes transformaciones de los resultados
de los recuentos (X).
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log x cuando no existan resultados nulos
log (x+1) cuando existan resultados nulos
Una vez aplicados los cálculos estadísticos es necesario volver a
transformar el resultado final para llegar a las conclusiones, y que
éstas se expresen en el mismo tipo de variable que los datos
iniciales.
VALIDACIÓN MÉTODOS
ula
CUANTITATIVOS
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COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
MÉTODOS CUANTITATIVOS
NT-32 Rev.2
Métodos normalizados (métodos de referencia). Tipo I
ula
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Métodos alternativos (métodos que han sido validados). Tipo II
(disponer de evidencias de su validación)
Métodos basados en métodos de referencia. Tipo III
ISO17025 “el laboratorio debe confirmar que puede aplicar
correctamente los métodos normalizados antes de utilizarlos
para los ensayos”
55
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
MÉTODOS CUANTITATIVOS
Métodos
Mét d Tipo
Ti I,
I Tipo
Ti II y Tipo
Ti III
ula
ientífica
Se han de determinar las características de funcionamiento del
método en el propio laboratorio y verificar que cumplan los
criterios establecidos.
Recuperación (exactitud- veracidad)
Reproducibilidad (precisión)
56
28
ula
ientífica
PRECISIÓN
Precisión proximidad entre resultados de mediciones
independientes del mismo mesurando. (ISO 5725)
ula
ientífica
57
PRECISIÓN Y EXACTITUD
Veracidad g
grado de concordancia entre el p
promedio de
una serie de mediciones y el valor del mesurando. (ISO
5725)
ula
ientífica
SESGO
% RECUPERACIÓN
58
29
ula
ientífica
EXACTITUD
Exactitud: Grado de concordancia entre el resultado
de
d una medición
di ió y ell valor
l de
d referencia
f
i aceptado.
t d
PRECISIÓN
ula
ientífica
+
VERICIDAD
59
EXACTITUD
ula
ientífica
60
30
ula
ientífica
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
MÉTODOS CUANTITATIVOS
Tipo y nº de
matrices
ti
Nivel de
contaminación
ula
ientífica
Muestras
naturales
contaminadas
Muestras
naturales
contaminadas
artificialmente
Intervalo de
trabajo
61
CLASIFICACIÓN DE MATRICES
i)
ii)
iii)
iv)
v)
Aguas
A
tratadas
t t d (consumo,
(
piscina,
i i
…))
Aguas no tratadas (río, pozo, …)
Aguas de mar
Aguas residuales o reutilizadas
…
ula
ientífica
62
31
ula
ientífica
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
MÉTODOS CUANTITATIVOS
El intervalo de trabajo de un método es el intervalo de concentración
e
e se u
a e
act tud y p
ec s ó adecuadas a
en e
el que puede obte
obtenerse
una
exactitud
precisión
al
objetivo del método.
ula
ientífica
NT 32 rev.1: En los métodos microbiológicos se tiene que tener en
cuenta que independientemente del nivel de contaminación de la
muestra, mediante diluciones seriadas siempre se realiza un recuento
en placa dentro de un intervalo de medida establecido (por ejemplo de
10 a 200 ufc/placa
f / l
o de
d 10 a 100 ufc/placa,
f / l
según
ú ISO 81992:2008).
81992 2008)
El estudio se considera adecuado realizarlo en el intervalo de medida
en el que se lleva a cabo el recuento en placa.
63
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
EXACTITUD
Exactitud: Grado de concordancia entre el resultado de una medición y el
valor de referencia aceptado. (ISO3534-1)
ula
ientífica
El valor de referencia se puede obtener a partir de:
ƒ Materiales microbiológicos de referencia certificados
ƒ Muestras de referencia (muestras procedentes de ejercicios
interlaboratorio con un valor asignado para los microorganismos
analizados).
ƒ Muestras analizadas con métodos de referencia.
referencia
ƒ Cepas de referencia procedentes de colecciones de cultivo tipo, con las
que se pueden preparar muestras contaminadas artificialmente
Es necesario disponer de un número mínimo de valores de referencia que
asegure la exactitud en todo el rango de medida.
64
32
ula
ientífica
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
EXACTITUD
Método de cálculo: puede expresarse matemáticamente a partir de la
recuperación.
ula
ientífica
ƒ
Recuperación = Valor de ensayo / Valor de referencia
ƒ
Recuperación
p
= 10 (X-Xref)
((siendo X valores en unidades logarítmicas)
g
)
65
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
EXACTITUD
ƒ Inocular una muestra natural que no contenga el microorganismo a
ensayar
ƒ Ensayar la muestra inoculada según el procedimiento de ensayo (óptimo
10 resultados)
ula
ientífica
ƒ Simultáneamente determinar la cantidad de inóculo mediante siembra en
PCA e incubación a 37ºC durante 24 horas (óptimo 10 replicados)
ƒ Transformar los resultados en logaritmo (log10 en ufc/g o ml)
ƒ Calcular el valor medio de cada conjunto de resultados
x = valor medio en logaritmo (log10 en ufc/g o ml) de los resultados obtenidos
con el método a controlar
xref = valor medio en logaritmo (log10 en ufc/g o ml) de los resultados
obtenidos con PCA
ƒ
Calcular el % de recuperación =100 x 10(x-xref)
33
ula
ientífica
Ejercicio 1: Inoculación de muestras
Para calcular y evaluar la recuperación del método de coliformes es
p
necesario inocular una muestra de leche,, a p
partir de una suspensión
de
E.coli (ATCC 25922).
ula
ientífica
El nivel de inoculación requerido es de 150 ufc/ml.
• ¿Como prepararíamos el inoculo?
•¿Como
¿Como obtendríamos el valor del inoculo?
•¿Cómo calcularíamos la recuperación?
• Si el fabricante establece una productividad superior al 80 %, ¿Qué valor
de recuperación podríamos esperar?
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
EXACTITUD
Preparación de inóculos
108 1ufc/ml
ml
1 ml
9 ml
1 ml
9 ml
103 ufc/ml
1 ml
9 ml
10-1
ula
ientífica
1 ml
9 ml
10-2
9 ml
10-3
10-4
Resultados placa
122 140
Resultado suspensión
10-5
100 µl
110
ufc/100 µl
1240 ufc/ml
34
ula
ientífica
Ejercicio 1: Inoculación de muestras
p
p
q
Si la suspensión
10-5 es del orden de 1240 ufc/ml. Suponemos
que la
suspensión 10-4 es del orden de 12400 ufc/ml .
ula
ientífica
• Para contaminar 10 ml de leche a un nivel de 150 ufc/ml necesitamos
1240
1
150
X = 1,20 ml de la suspensión
x
10-5
o
120 µl de la suspensión 10-4
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
EXACTITUD
Inoculación de muestras
120 µl
9 ml
120 µ
µl
104 ufc/ml
ula
ientífica
10 ml
120 µl
10 ml
PCA
Medio selectivo
35
ula
ientífica
Ejercicio 2: Estudio de la recuperación de un
método de recuento
Determinar la recuperación del procedimiento de ensayo PNT-E-24 analizando 10 veces
una muestra inoculada con una cepa de referencia.
referencia El valor del inoculo se determina a
partir de la siembra en PCA.
ula
ientífica
PCA
PNT-E-24
1
40
42
2
36
42
3
39
40
4
42
36
5
36
39
6
36
34
7
39
36
8
44
41
9
39
39
10
36
38
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
PRECISIÓN
Grado de concordancia entre ensayos independientes obtenidos
bajo unas condiciones establecidas.
establecidas (ISO 3534-1)
3534 1)
ula
ientífica
NOTA: La precisión depende sólo de la distribución de errores
aleatorios y no tienen ninguna relación con el valor verdadero
o el valor especificado.(ISO 5725-1, 3.12:94) (ISO 35341,3.14:83)
ƒ
Repetibilidad.
ƒ
Reproducibilidad.
ƒ
Precisión intermedia.
72
36
ula
ientífica
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
PRECISIÓN
ƒ Condiciones de repetibilidad: No se varia ningún factor, mismo
día, mismo instrumento, mismo analista.
ula
ientífica
ƒCondiciones de reproducibilidad: Se varían todos los factores,
diferente día, diferente analista, diferente laboratorio, etc.
ƒCondiciones de precisión intermedia (reproducibilidad
intralaboratorio): Dentro del mismo laboratorio se varia uno o
varios factores, por ejemplo distinto día, distinto analista.
73
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
PRECISIÓN
La precisión suele expresarse como imprecisión y calcularse como
desviación
d
i ió estándar
tá d
de
d los
l
resultados
lt d
de
d los
l
ensayos. Cuanto
C
t
mayores la desviación estándar menor es la precisión.
ula
ientífica
Sr (desviación estándar de repetibilidad)
SR( desviación estándar de reproducibilidad)
74
37
ula
ientífica
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
PRECISIÓN
Se realizará el estudio de precisión intermedia del laboratorio en el
intervalo de medida en el que se lleva a cabo el recuento en placa y
preferiblemente sobre muestras naturales o, en su defecto con
muestras inoculadas.
ula
ientífica
La reproducibilidad se expresará a partir de la desviación estándar de
reproducibilidad y ésta se determinará para clase de matriz y especie
de microorganismo (o grupo de microorganismo) objeto del ensayo.
El laboratorio debe justificar la selección del número y tipo de matrices
en función del alcance de la acreditación. (Anexo B UNE-EN
ISO16140).
75
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
PRECISIÓN
Procedimiento
19036:2006)
para cada clase de matriz a validar: (ISO/TS
ula
ientífica
• 10 muestras contaminadas naturalmente o inoculadas
• Ensayar cada muestra por duplicado incluyendo entre ellas la
máxima variación posible dentro del laboratorio; distinta
submuestra,
b
t
di ti t analista,
distinto
li t distinto
di ti t lote
l t de
d medio,
di distinto
di ti t pH
H
metro, y/o los equipos utilizados según la forma de trabajo del
laboratorio.
76
38
ula
ientífica
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
PRECISIÓN
Muestra
ula
ientífica
Analista 1
(condición A)
Suspensión inicial
Analista 2
(condición B)
Contaminación artificial
(si es necesario)
Suspensión inicial
Análisis
Análisis
77
COMPROBACIÓN DE FUNCIONAMIENTO
PRECISIÓN
Cálculo de la desviación estándar de reproducibilidad:
ƒ
Transformar los resultados a (log10(ufg/g)) o (log10(ufg/ml))
ƒ
Calcular la desviación estándar según la siguiente fórmula:
SR =
ula
ientífica
2
1 n ( yiA − YiB )
∑
n i =1
2
ƒ ij el resultado transformado en (log10(ufg/g)) o (log10(ufg/ml))
ƒ i el índice de la muestra i=1 hasta 10
ƒ j el índice de las condiciones de reproducibilidad j= A o B
Por ejemplo; y1A resultado de la muestra 1 bajo las condiciones A
La desviación estándar se expresará en unidades de (log10(ufg/g)) o (log10(ufg/ml))
Evaluación del resultado: comparar el resultado obtenido con el criterio de
aceptación / rechazo establecido para el método según la legislación, norma, requisito
78
del cliente,…
39
ula
ientífica
Ejercicio 3: Determinación de la reproducibilidad
Se analizan 10 muestras de rutina por duplicado introduciendo la máxima
variación posible; distinta submuestra, distinto analista, distinto lote de medio,
distinto incubador,
incubador etc.
etc y se obtienen los siguientes resultados.
resultados
ula
ientífica
X1 (ufc/g)
X2(ufc/g)
M1
78
85
M2
68
M3
48
M4
65
M5
72
M6
58
M7
72
68
M8
65
72
M9
56
61
M10
68
74
59
52
62
69
64
Calcular la reproducibilidad de laboratorio y verificar que cumple con el criterio de
aceptación/rechazo (límite de reproducibilidad R=0.45 en unidades de log 10)
79
VALIDACIÓN DE MODIFICACIONES
Validación de una modificación al método
por comparación con el método de referencia
ula
ientífica
Objetivo; demostrar estadísticamente que el resultado obtenido con el
modificación no difieren significativamente del resultado del método de
referencia.
Dos opciones:
A) A partir de distintas muestras analizadas simultáneamente con el método de
referencia y con el método modificado.
B) A partir de ensayar una muestra repetidamente con el método de referencia
y simultáneamente con el método modificado
80
40
ula
ientífica
VALIDACIÓN DE MODIFICACIONES
Opción A) A partir de distintas muestras analizadas simultáneamente con el método de
referencia y con el método alternativo. Método de la diferencia media
ula
ientífica
ƒ Ensayar distintas muestras (mínimo 10 de cada tipo de matriz) simultáneamente con el
método de referencia y con el método alternativo.
ƒ Transformar los resultados de recuento a validar a logaritmo (log10(ufc/g o ml)
ƒ Calcular la diferencia para cada par de valores correspondientes.
ƒ Calcular el valor medio (d) y la desviación típica (Sd) del conjunto de diferencias.
ƒ Recuperación relativa= (10d)
ƒ Prueba de Hipótesis; Ho : d= 0
t cal
=
d
Sd
n
Si tcal < t n-1,α=0,05 no hay diferencias significativas
81
Ejercicio 4: Validación de una modificación
Se utiliza un método de rutina PNT-E-010 basado en norma al cual se han modificado las
condiciones de incubación; verificar que no hay diferencias significativas.
ula
ientífica
Opción A) A partir de distintas muestras analizadas simultáneamente con el método de
referencia y con el método modificado.
Ref.
muestra
M1
M2
M3
M4
M5
M6
M7
M8
M9
M10
PNT-E-10
5,20E+02
1,85E+02
6,50E+03
2,39E+03
2,43E+04
1,89E+05
3,80E+01
2,11E+03
1,50E+05
2,28E+03
Norma
4,50E+02
1,52E+02
7,00E+03
2,29E+03
2,50E+04
1,88E+05
2,90E+01
2,10E+03
1,38E+05
2,10E+03
82
41
ula
ientífica
VALIDACIÓN DE MODIFICACIONES
B)
A partir de ensayar una muestra repetidamente con el método de referencia y
simultáneamente con el método alternativo.
ƒ
Ensayar la muestra 10 veces con el método de referencia y simultáneamente 10 veces
con el método alternativo.
ƒ
Transformar los resultados de recuento obtenidos a logaritmo (log10(ufc/g) (log10(ufc/ml)
ƒ
Calcular el valor medio X y la desviación estándar S de los valores obtenidos con el
método a validar.
ƒ
Calcular el valor medio Xref y la desviación estándar Sref de los valores obtenidos con el
método de referencia.
referencia
ƒ
Prueba de Hipótesis de varianzas: Ho: S2=S2ref
ula
ientífica
Fcal =
S12
S 22
Si Fcal < Fν1=n1-1, ν2=n2-1 ,α=0,05 no hay diferencias significativas en las varianzas.
83
VALIDAR MODIFICACIONES
Prueba de Hipótesis Ho: X = X ref
Varianzas iguales
Varianzas distintas
x − x ref
tcal =
S
x − x ref
tcal =
1 1
 + 
 n1 n2 
 (n1 −1)× S + (n2 −1)× S
S= 

n1 + n2 − 2

2
ula
ientífica
2
ref




2
 S 2 S ref

+
n
n2
 1
(
ν
eff
=
S
n
2
1
S
2
n1
S
+
4
× (n 1 − 1 )
2
ref
n2
+




)2
S
n
2
2
4
ref
× (n 2 − 1 )
ν = n 2 + n1 − 2
Si tcal < t ν, α=0,05 no hay diferencias significativas
84
42
ula
ientífica
Ejercicio 5: Validación de una modificación al método
Se utiliza un método de rutina PNT-E-010 basado en norma al cual se han modificado las
condiciones de incubación; verificar que no hay diferencias significativas.
Opción B) A partir de ensayar una muestra repetidamente con el método sin modificar de referencia
y simultáneamente con el método modificado
ula
ientífica
Referencia
Muestra
Método
Normalizado
PNT-E-010
M1
182
187
M2
193
161
M3
147
152
M4
184
175
M5
203
172
M6
161
204
M7
197
201
M8
172
163
M9
198
170
M10
194
204
Verificar que no hay diferencias significativas y calcular la exactitud relativa del método
considerando como criterio de aceptación que la recuperación este comprendida dentro del
intervalo 90-100%.
85
ESTIMACIÓN DE LA
INCERTIDUMBRE
EN
ula
ENSAYOS
ientífica
MICROBIOLÓGICOS
86
43
ula
ientífica
INCERTIDUMBRE DE LOS RESULTADOS
El resultado del número de microorganismos presentes en la muestra tiene que poder
expresarse de manera general como:
ula
ientífica
Valor 1 ± Valor 2
Valor 1; es la mejor estimación que podemos proporcionar de la cantidad de
microorganismos presentes en la muestra.
Valor 2; es la incertidumbre del resultado final,
final relacionado con la dispersión de
resultados que se obtendrían al repetir el análisis un número determinado de veces.
Incertidumbre de medida: parámetro, asociado al resultado de una medida, que
caracteriza la dispersión de los valores que se podrían atribuir razonablemente al
mesurando ( ISO/TS 19036:2003).
87
INCERTIDUMBRE DE LOS RESULTADOS
Factores que afectan al resultado del análisis
Muestreo
Equipos, medios
de cultivo y
reactivos
Muestra para
el laboratorio
Matriz
ula
ientífica
Submuestreo
/ primera
dilución
Errores
aleatorios
Sesgo
Resultado
Analista
ISO/TS 19036:2003: Microbiology of food and animal feeding stuffs-Guidelines for the estimation
of measurement uncertainty for quantitative determinations
88
44
ula
ientífica
INCERTIDUMBRE DE LOS RESULTADOS
ISO/TS 19036:2006: Microbiology of food and animal feeding stuffs-Guidelines for the
estimation of measurement uncertainty for quantitative determinations
Incertidumbre expandida
ula
ientífica
U = K SR2 +
0.18861
∑C
K: Factor de cobertura=2 (nivel de confianza del 95%)
SR : Desviación
Des iación estándar de reprod
reproducibilidad
cibilidad
0.18861/∑C : es la componente de la varianza debida a la distribución de Poisson
∑C : es la suma de las colonias contadas en todas las placas.
89
INCERTIDUMBRE DE LOS RESULTADOS
La ecuación se puede simplificar para recuentos elevados:
Incertidumbre expandida
ula
ientífica
U = K × SR
El valor limite de la suma de la suma de colonias contadas viene dado por la
siguiente ecuación:
C lim =
1.75
SR2
Si ∑ C> C lim se puede usar la ecuación simplificada
90
45
ula
ientífica
INCERTIDUMBRE DE LOS RESULTADOS
Posibilidades de estimación de la desviación estándar de reproducibilidad (SR):
1ª opción: intralaboratorio
ula
ientífica
2ª opción: estudio interlaboratorio de validación del método
3ª opción:
p
ejercicio
j
interlaboratorio de aptitud
p
91
EXPRESIÓN DE LA INCERTIDUMBRE
EN EL INFORME DE ANALISIS
La desviación estándar de reproducibilidad se expresa en unidades de log10
ula
ientífica
Existen diferentes posibilidades de expresión de los resultados en el informe
de análisis :
ƒ y ± U (log)
ƒ y log [ y – U , y + U]
ƒ x ufc/ g o ufc/ml [ 10 y – U , 10 y + U]
ƒ x ufc/ g o ufc/ml [ -(1-10-u ) x100%, +(-1+10 u ) x 100%]
Siendo y el resultado en unidades de log 10
92
46
ula
ientífica
INCERTIDUMBRE DE LOS RESULTADOS
Report on the relationship between analytical results, measurement uncertainty, recovery
factors and the provisions of eu food and feed legislation, with particular reference to
community legislation concerning. 2004
http://europa.eu.int/comm/food/food/chemicalsafety/contaminants/report-sampling_analysis_2004_en.pdf
Recuento
(valor absoluto)
Recuento (log10)
10 000 000
7
1 000 000
6
100 000
5
10 000
ula
ientífica
Incertidumbre expandida
U (log10)
Rango aceptable de recuentos en
valor absoluto
± 0.5
3 162 000 a 31 620 000
± 0.5
316 200 a 3 162 000
± 0.5
31 620 a 316 200
4
± 0.5
3 162 a 31 620
1 000
3
± 0.5
316 a 3 162
100
2
± 0.5
32 a 316
10
1
± 0.5
3 a 32
Para métodos que requieren previa confirmación, se aceptan valores de ± 1 log 10
93
Ejercicio 6 : Estimación de la incertidumbre
Estimar la incertidumbre de los siguientes resultados e indicar como se expresaría el
resultado con la incertidumbre en el informe de ensayo. Incluir todas las posibilidades.
Ejemplo 1:
Ejemplo 2:
Ejemplo 3:
Dilución
Recuento
10-3
102
10-4
8
SR = 0.15 K=2
ula
ientífica
SR = 0.25 K=2
Dilución
Recuento
10-1
3 placas = 9 ,9, 9
10—22
4
Dilución
Recuento
10-1
9
10—2
2
SR = 0.11 K=2
94
47
ula
ientífica
ASEGURAMIENTO DE
LA CALIDAD DEula
LOS
RESULTADOS
ientífica
95
ASEGURAMIENTO DE LA CALIDAD DE LOS RESULTADOS
UNE
EN ISO/IEC 17025 “El
El laboratorio debe establecer un control de calidad para
UNE-EN
realizar el seguimiento de la validez de los ensayo”
ula
ientífica
G-ENAC-04 Rev.3
El laboratorio debe disponer de un programa de controles periódicos … uso de
muestras inoculadas, recuentos cruzados entre analistas, análisis duplicados, uso de
materiales de referencia...
Los laboratorios deben participar regularmente en ensayos de aptitud....para detectar
desviaciones y verificar la validez de todo el sistema de calidad.
96
48
ula
ientífica
ASEGURAMIENTO DE LA CALIDAD DE LOS RESULTADOS
NT 32 Rev.2
Las actividades de control de la calidad deben realizarse en la medida de lo posible con muestras
naturales tanto positivas (contaminadas naturalmente o inoculadas) como negativas.
CONTROL INTERNO
ula
ientífica
CONTROL EXTERNO
Control de las condiciones de trabajo
Control de la precisión
Control de la recuperación
Control del límite de detección
Participación en intercomparaciónes
Conjunto de
acciones de
evaluación de la
calidad
Siembra por duplicado de placas
Control de medios de cultivo
Control ambiental
Cualificación del personal
Calibración/verificación de equipos
97
ASEGURAMIENTO DE LA CALIDAD DE LOS RESULTADOS
NT 32 Rev.2
Todas las actividades de aseguramiento de la calidad deberán planificarse de forma que
se incluya
i l
una adecuada
d
d representación
t ió de
d la
l variedad
i d d de
d matrices
ti
con las
l que trabaja
t b j
el laboratorio.
ula
ientífica
PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD DE LOS RESULTADOS
La periodicidad de las actividades de control de calidad deberá establecerse considerando
diversos factores como pueden ser:
ƒ La robustez del método utilizado en función de los controles específicos incluidos
en el mismo.
ƒ La frecuencia con la que el laboratorio ejecuta dichos análisis
ƒ
Los resultados históricos de control de calidad y la evaluación de los mismos
ƒ
El conjunto de acciones de evaluación de la calidad utilizados en el laboratorio.
98
49
ula
ientífica
PROGRAMA DE CONTROL DE LA CALIDAD
Método analítico
Investigación de salmonela
Tipo de control
Periodicidad
Criterios de aceptación/rechazo
Esterilidad: Blanco
En cada serie
No crecimiento
Trimestral
Crecimiento característico
Trimestral
No crecimiento
ula
ientífica
Control eficacia positivo Productividad
Control eficacia negativo –
Selectividad
Control del límite de detección
Trimestral
Mismo LD que en la validación
Participación ejercicio
interlaboratorio
Anual
No estar excluido
Esterilidad: Blanco
En cada serie
No crecimiento
Control eficacia positivo Productividad
Control eficacia negativo –
Selectividad
Recuento S.aureus
Trimestral
Pr > 90%
Trimestral
No crecimiento
Control de duplicados de placa
En cada serie
ISO 14461-2
Control de duplicados de muestra
En cada serie
r= 2,8 Sr
Control de la recuperación
Trimestral
R > 90 %
Participación ejercicio
interlaboratorio
Anual
-2<Z<2
99
ACTIVIDADES DE CONTROL DE LA CALIDAD
Control de la precisión (repetibilidad); muestras naturales contaminadas naturalmente
o naturales sin contaminar inoculadas con materiales de referencia
ula
ientífica
ƒ Ensayar por duplicado muestras de rutina en condiciones de repetibilidad
ƒ Transformar los resultados logaritmo (log10(ufc/g o ml)
ƒ Calcular la diferencia de logaritmos
Evaluación: verificar que la diferencia de logaritmos se encuentra dentro de los límites
establecidos como criterio de aceptación/rechazo.
Límite de repetibilidad (r)= 2.8 Sr diferencia absoluta entre dos resultados de ensayo
obtenidos en condiciones de repetibilidad que se espera que esté con una probabilidad
máxima del 95 %
Los resultados obtenidos pueden utilizarse en la validación del método (ej. verificación de
nuevas matrices).
100
50
ula
ientífica
Ejercicio 7: Control de la precisión.
Los resultados obtenidos al analizar por duplicado una muestra son:
Muestra A: 195 ufc/g y 160 ufc/g
ula
ientífica
ƒ Si disponemos de la información de R=0,10, ¿ cual es la conclusión?
ƒ ¿Que resultado indicaremos en el informe de ensayo?
101
ACTIVIDADES DE CONTROL DE LA CALIDAD
Control de la recuperación; muestras inoculadas con materiales de
referencia o cepas
p de referencia
ƒ Inocular una muestra natural que no contenga el microorganismo a ensayar
ula
ientífica
ƒ Ensayar la muestra inoculada según el procedimiento de ensayo
ƒ Simultáneamente determinar la cantidad de inóculo mediante siembra en PCA e
incubación a 37ºC durante 24 horas
ƒ Transformar los resultados en logaritmo (log10 en ufc/g o ml)
ƒ Calcular el valor medio de cada conjunto de resultados
x = valor medio en logaritmo (log10 en ufc/g o ml) de los resultados obtenidos con el
método a controlar
xref = valor medio en logaritmo (log10 en ufc/g o ml) de los resultados obtenidos con
PCA
ƒ
Calcular el % de recuperación =100 x 10(x-xref)
Evaluación: verificar que el % de recuperación se encuentra dentro de los 102
límites establecidos como criterio de aceptación/rechazo.
51
ula
ientífica
ACTIVIDADES DE CONTROL DE LA CALIDAD
Control del límite de detección; con muestras inoculadas con cepas de referencia
ula
ientífica
ƒ Inocular una muestra que no contenga el microorganismo diana, a una
concentración próxima al límite de detección
ƒ Ensayar la muestra inoculada según el procedimiento de ensayo (óptimo 10
replicados)
ƒ Simultáneamente determinar la cantidad de inóculo mediante siembra en PCA e
incubación a 37ºC durante 24 horas (óptimo 10 replicados)
Evaluación: verificar que se ha detectado la presencia del microorganismo en la
muestra, siempre y cuando la concentración inoculada esté por encima del límite de
detección
103
ACTIVIDADES DE CONTROL DE LA CALIDAD
Control de las condiciones de trabajo; proporciona información sobre la esterilidad
de los medios y materiales auxiliares utilizados y, en general, sobre la buena práctica
en la realización de los ensayos.
ensayos
Dos opciones:
ula
ientífica
ƒ Ensayar una muestra problema estéril (muestra blanco)
ƒ Ensayar una suspensión que no contenga muestra pero que haya seguido los
mismas etapas que las suspensiones de las muestras (control de esterilidad)
Evaluación: verificar que no exista crecimiento o, si procede, establecer criterios
para la desviación permitida (dependiendo del fin de la determinación puede
permitirse una contaminación reducida).
104
52
ula
ientífica
ACTIVIDADES DE CONTROL DE LA CALIDAD
Control ambiental; Controlar los niveles de biocontaminación del aire y de las
p
j
superficies
de trabajo
ula
ientífica
ƒ
Control ambiental: exposición de placas con medio de cultivo abiertas en
distintas áreas del laboratorio durante un tiempo determinado.
ƒ
Control de superficies: control con laminocultivos en distintas superficies del
laboratorio.
Evaluación: Establecer los recuentos máximos aceptables y las medidas a tomar en
caso de sobrepasar los límites.
105
ACTIVIDADES DE CONTROL DE LA CALIDAD
Control de los medios de cultivo;
En el laboratorio de microbiología, muchos análisis y procedimientos dependen de
que el medio de cultivo sea constante y proporcione resultados reproducibles.
ula
ientífica
Control del medio de cultivo para:
1. aceptabilidad de cada lote de medio
2. que el medio es “adecuado al objetivo”
3. que el medio puede dar resultados constantes
Evaluación: en función de las características del medio (líquido o sólido) y la
finalidad del método (cuantitativo, cualitativo o semicuantitativo) se establecerán
criterios de productividad y selectividad con criterios predeterminados de
aceptación/rechazo.
106
53
ula
ientífica
ACTIVIDADES DE CONTROL DE LA CALIDAD
Participación en intercomparaciones; permite una evaluación del sesgo.
ula
ientífica
Se recomienda participar en intercomparaciones de reconocido prestigio y
que permitan cubrir todo el rango de matrices con las que trabaja el
laboratorio.
Los resultados pueden ser utilizados para la validación del método.
Evaluación: No estar excluido por el organizador, generalmente el valor de
Z-score ha de estar incluido dentro del intervalo de (+2 y -2)
107
ACTIVIDADES DE CONTROL DE LA CALIDAD
Guía sobre la participación en intercomparaciones (G-ENAC-14 Rev.1)
Evaluación del proveedor: Aspectos técnicos a considerar
ƒ item suministrado (garantía de homogeneidad y estabilidad para el fin previsto)
ƒ condiciones de transporte
ƒ instrucciones para la realización del ensayo
ƒ metodología estadística utilizada
ƒ informe final
ula
ientífica
Evaluación de la participación en el ejercicio de intercomparación:
ƒCalidad del ítem (nivel de concentración, presencia de interferencias, límites de detección
declarados, datos del estudio de homogeneidad/estabilidad)
ƒContenido del informe (datos de los participantes, valor asignado, dispersión de los
resultados, incertidumbre, evaluación del rendimiento (Z-score o Número E), evaluación
realizada, gráficos, incidencias)
108
54
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