Manual de toma y envío de muestras

Investigación Aplicada, S.A. de C.V.
Laboratorio de Biología
MANUAL DE TOMA Y ENVIO DE
MUESTRAS.
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I.- SELECCION DE MUESTRAS
A) Animales vivos:
Deberán ser seleccionados los que sean representativos del problema observado. En el
caso de aves se recomienda enviar un mínimo de 5 aves adultas y 10 aves jóvenes por
cada clave o parvada. En el caso de cerdos u otras especies puede enviarse 1 ó 2
ejemplares. Los animales enviados para análisis bacteriológicos no deberán haber
recibido tratamientos con antibióticos, en caso contrario se deberá notificar al laboratorio.
Los animales de desecho son en general malos ejemplares para fines diagnósticos casi
siempre enmascaran y confunden el problema real. El envío de animales vivos al
laboratorio está justificado en los siguientes casos:
a) Para certificación de parvadas en las campañas zoosanitarias de la SAGARPA, en el
caso de requerirse muestras de órganos.
b) Cuando el laboratorio esté cercano y no sea factible la toma de muestras en la
explotación.
c) Cuando no se tenga una idea clara de la etiología y se requiera un estudio completo.
d) Cuando el aislamiento del agente etiológico sea delicado y laborioso, por ejemplo:
Pneumovirus, Haemophilus, etc.
En los casos de enfermedades altamente contagiosas y de difusión rápida (ejem. Influenza
aviar) se deberán enviar órganos para evitar la movilización de los animales, por el riesgo
que significa en estos casos.
B) Organos y tejidos:
Al tomar muestras para virología, bacteriología o histopatología se deberán tomar de
preferencia de órganos o tejidos que muestren lesiones representativas del problema
observado, y de acuerdo a los órganos y tejidos recomendados en este manual (consultar
sección de envío de muestras). Los órganos y tejidos tomados para análisis
bacteriológicos deberán tomarse de aves que no hayan recibido tratamiento con
antibióticos preferentemente (ver parte II. Toma de muestras).
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C) Animales muertos:
Siempre es aconsejable enviar animales muertos cuando en el problema que se presente
haya mortalidad. De preferencia estos animales no deberán tener más de 1 hora de
muertos.
II.- TOMA DE MUESTRAS
A) Muestras de órganos y tejidos para Bacteriología:
a) Se deberán tomar las muestras en condiciones asépticas, de ser posible en un lugar
cerrado, con mechero de alcohol, pinzas y tijeras flameadas. En caso de no reunir las
condiciones anteriores, lo más aproximado a lo descrito es aconsejable.
b) Las muestras deberán tomarse de animales de mortalidad reciente o bien, sacrificados
con el propósito de colectar muestras ya que mientras más tiempo transcurra, existirá
mayor riesgo de contaminación con gérmenes de la micro flora orgánica. En caso de tener
que tomar muestras de animales muertos de más de una hora, asegúrese de incluir
muestras de médula ósea.
c) Las muestras podrán tomarse en frascos o bolsas estériles diferentes para cada
órgano o tejido incluyendo trozos que muestren las lesiones características o bien
mediante la toma con hisopos estériles especialmente diseñados para enviarlos al
laboratorio en un medio de transporte (disponibles previa solicitud de nuestros clientes).
En caso de tomar trozos de órganos o tejidos, las muestras deberán conservarse en
refrigeración (evitar su congelación).
d) En el caso de no contar con un mechero, es fundamental utilizar por lo menos torundas
con alcohol con las que se pueda empapar las tijeras y pinzas de disección, precio a
cualquier corte, cuidando que el alcohol no toque las superficies de los tejidos.
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e) Cuando se requieran muestras para aislamiento de Haemophilus paragallinarum,
deberán enviarse las cabezas de aves afectadas envueltas en toallas de papel y dentro de
bolsas de plástico en forma individual.
B) Muestras de órganos y tejidos para Virología:
a) Se deberán tomar las muestras en condiciones de la mayor asepsia posible aunque los
factores de contaminación no son tan críticos como para las muestras de bacteriología.
b) Se tomarán órganos y tejidos tanto de animales muertos como recién sacrificados. Es
conveniente tratar de incluir muestras de animales en la fase aguda de la infección ya que
el aislamiento de algunos virus únicamente se puede realizar durante las fases iniciales de
la enfermedad (ejemplo EDS’76). Las muestras se tomarán en frascos o bolsas estériles
incluyendo órganos o tejidos distintos en frascos diferentes . Las muestras deberán
conservase en refrigeración o congelación o en caso de no contar con estos elementos en
una solución de glicerina al 50%.
c) Para el envío de vacunas se deberán tomar al menos 2 viales con sus diluentes
respectivos y conservados conforme a los requerimientos del laboratorio productor.
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C) Muestras de órganos y tejidos para Histopatología:
a) Se deberán tomar las muestras de animales muertos recientemente (1 hora máximo) o
bien sacrificados para este fin, ya que al transcurrir el tiempo se presentan cambios
autolíticos, que impiden la apreciación de las lesiones.
b) Las muestras deberán tomarse de preferencia de órganos y tejidos que muestren
lesiones.
c) Se deberán cortar trozos de aproximadamente 1 cm. cúbico para asegurar una
adecuada penetración de la solución fijadora.
d) Las muestras se deberán incluir en una solución fijadora adecuada (ver cuadro 1) de
preferencia una solución de formalina amortiguada (disponible previa solicitud de nuestros
clientes) empleando un recipiente de boca ancha y tapa que selle adecuadamente.
Algunos recipientes plásticos empleados para comercializar antibióticos funcionan muy
bien.
e) Se deberá mantener una relación de 1 volumen de muestra por 9 volúmenes de la
solución fijadora.
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Cuadro 1
SOLUCIONES PARA FIJACION DE ORGANOS
SOLUCION DE FORMOL 10%
Formol (37-40%)
Agua limpia
100 ml
900 ml
SOLUCION DE FORMOL 10% BUFERADA
Fosfato de sodio monobásico
Fosfato de sodio dibásico anhidro
Formol (37-40%)
Agua limpia
4.0 g
6.0 g
100 ml
900 ml
SOLUCION BOUIN
Formaldehído comercial
Ácido pícrico (sol. salina acuosa)
Ácido acético glacial
250 ml
750 ml
50 ml
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D) Muestras para Citopatología:
El estudio citológico sirve para diagnosticar diversos procesos patológicos como son
neoplasias y alteraciones inflamatorias (bacteriana, viral, micótica, parasitaria).
a) Punción con aguja delgada.
Este es uno de los métodos más utilizados para el estudio citológico, el material que se
necesita es: Aguja del número 21 o 22, jeringa de 10 a 20 ml, portaobjetos y porta jeringa
CADECO o Franzen´s (no indispensable).
Los pasos para la punción con aguja delgada son: Palpar la lesión y desinfectar con
alcohol. Introducir la aguja, realizando presión negativa y movimientos suaves de abajo
hacia arriba con la jeringa, depositar una gota del material aspirado en el portaobjeto,
hacer el fotis y fijar. Se deben de puncionar 2 o 3 sitios de la lesión.
b) Frotis.
Los frotis más utilizados para diagnóstico citológico son: Vaginal, conjuntival, de cavidad
oral y de cavidad nasal.
Los materiales utilizados son los siguientes: Hisopos, portaobjetos, marcador y fijador.
El procedimiento para obtener las muestras de las mucosas es el siguiente: Frotar el
hisopo previamente humedecido con agua destilada o solución salina sobre las paredes
de la mucosa con el fin de obtener suficientes células y extender el material obtenido en el
hisopo frotando sobre la superficie del portaobjetos, quedando así una monocapa.
c) Raspado.
Este método se utiliza para obtener material de lesiones planas de piel. El procedimiento
consiste en cortar la mayor cantidad de pelo y desinfectar el área afectada, raspar con
hoja de bisturí el área de la lesión y desechar el material de este raspado; raspar
nuevamente, hacer los fotis y fijar.
Cuadro 2.
METODO
Frotis
Improntas
Punción con aguja delgada
Raspados
Lavados
Cepillados
Líquidos
APLICACIÓN
Mucosas (vaginal, oral, nasal)
Piezas quirúrgicas
Organos internos, neoplasias, nódulos cutáneos.
Lesiones planas de piel
Nasal, gástrico, bronquial
Bronquiales, gástricos
Orina, LCR, ascítico, pleural, articular
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E) Muestras para Serología:
a) Se deberán tomar de 12 a 15 muestras por clave de identificación en el caso de las
aves. En el caso de cerdos y bovinos se sugiere tomar al menos 5 muestras
representativas de animales en distintas etapas de producción o de distintas edades.
b) Las muestras de sangre pueden ser tomadas en frascos de vidrio de 5 a 30 ml y
deberán colectarse lo más asépticamente posible.
c) Una vez obtenida la cantidad deseada, se retira la aguja de la jeringa para depositar la
sangre en un recipiente y evitar la hemólisis. Dicho recipiente debe colocarse
horizontalmente hasta que la sangre coagule y se separe el suero; de esta forma las
muestras deberán ser enviadas el mismo día. Si las muestras van a ser enviadas por
mensajería y el traslado es por más de 24 horas, se sugiere transvasar los sueros en
recipientes limpios o en viales de 1 a 5 ml y desechar el coágulo. Enviar exclusivamente
el suero. Si los sueros no van a ser enviados el mismo día, se deberá refrigerarlos hasta
el momento del envío, y enviarlos en cajas térmicas con refrigerantes.
También pueden utilizarse popotes de plástico flexible y transparente, se deberá sellar
perfectamente de un extremo para poder vaciar la muestra de sangre sellando el extremo
libre, una vez el suero se ha separado del coágulo se deberá cortar el popote a la mitad
procurando que en una parte quede el coágulo y en la otra el suero sellando esta ultima
parte. Enviar exclusivamente el suero.
Asegúrese que el frasco o popote se encuentre perfectamente sellado. Los sueros deben
ser conservados en refrigeración.
NOTA :
No se deberá congelar ni refrigerar las muestras de sangre antes de que se separe el
suero de lo contrario será muy difícil o imposible obtener el suero de la muestra.
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Bovinos: Vena yugular o coccígea, jeringa
3-5ml, aguja larga 19 o 21.
Volumen de Suero Requerido
a) A continuación se proporciona una estimación del suero requerido para cada análisis.
Se deberá enviar una cantidad proporcional a las pruebas que solicite según la
información contenida en el siguiente cuadro.
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Cuadro 3.
PRUEBA SOLICITADA
VOLUMEN DE SUERO
REQUERIDO
(MUESTRA/ANÁLISIS)
Inhibición de la hemoaglutinación (HI)
0.3ml
Aglutinación Rápida en Placa (ARP)
0.2ml
Microvirus Suero Neutralización (MNT)
0.2ml
Virus Suero Neutralización (VSN)
3.0 ml
Precipitación en Gel de Agar (AGP)
0.2ml
Inmunoensayo Enzimático (ELISA)
0.2ml
Identificación de las Muestras.
En ocasiones la identificación de cada una de sus muestras es demasiado extensa, para
garantizarle la prontitud de la entraba de resultados le sugerimos lo siguiente :
a) Identifíquelas con números consecutivos (1, 2, 3…….Etc.).
b) Lleve un control interno, le recomendamos el siguiente formato, el cual es único y
exclusivamente para uso del cliente (ver Pág. 23).
c) Separar por edades o etapas de producción cuando se requiera graficar por
seroperfiles.
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Ejemplo :
Cuadro 4.
Tubo No.
Identificación
1
5352 L-34
2
3404- N
Etapa de
Producción
Granja
Varias
Lact. 3
San José I
Varias
Reemplazo
Santa Cruz
Edad
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F) Huevo fértil:
a) Se deberán tomar las piezas de huevo con una bolsa o guantes estériles (1 por bolsa)
teniendo cuidado de no rozarlos con la piel al tomarlos. Se deberán enviar 10 piezas por
parvada.
b) Las piezas en su bolsa estéril deberán colocarse entre 2 conos limpios para protegerlos
durante el transporte.
G) Raspado de piel:
a) Para hongos: se deberán tomar un raspado con una hoja de bisturí o un porta objetos
sobre la piel afectada. El raspado deberá ser profundo y de la periferia de la lesión
(haciendo sangrar la piel) y deberá incluir pelo con su raíz. Las muestras se pueden
colocar en frascos estériles o tubos de ensayo.
b) Para ácaros: se deberá colocar una película de glicerina sobre la zona afectada.
Posteriormente se realizará el raspado de la piel profundamente y se arrancará pelo desde
su raíz, las muestras se deberán colocar entre 2 porta objetos o en frascos limpios
H) Muestras de heces:
a) Para Cerdos: Deberán ser colectadas al momento de ser eliminadas por el animal o
directamente del recto, empleando un guante de palpación. Se requieren por lo menos 10
gr de muestra por animal.
b) Para Aves: Para determinación de oocistos de coccidia, tomar entre 10 y 15 muestras
de heces frescas de la cama, que incluyen aquéllos con contenido cecal. No tomar
exclusivamente aquélla en mal estado, pues pueden dar lugar a un diagnostico erróneo.
I) Muestras de orina:
Deberá colectarse en frascos estériles eliminando los primeros chorros. Se requiere 50 ml
por animal.
J) Muestras de raspado con hisopo :
a) Para huevo o instalaciones de incubación el material se envía a nuestros clientes en
forma de hisopos de plástico embestidos en una solución buffer en tubos de vidrio. El
hisopo se extrae con tijeras previamente desinfectadas en alcohol, se exprime la cabeza
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contra las paredes del tubo, se raspa rigurosamente 1 plg2 o 102 cm., o el espacio de la
cámara de aire de 1 huevo, se coloca la cabeza en el tubo cortando el plástico con las
tijeras y cerrando con firmeza el tubo.
b) Para instalaciones de granja se entregan los mismos hisopos más un cuadro de
alambre estéril de 2.52 cm. dicho cuadro conforma la superficie de muestreo y deberá
desinfectarse con alcohol antes de iniciar cada muestreo.
K) Toma de muestras para PCR:
Se pueden tomar hisopos a partir de tráqueas de aves vivas y de sacos aéreos de embrión
picado no nacido. Los hisopos se deben humedecer con medio para aislamiento de
micoplasmas o con BHI con antibióticos para facilitar la adhesión de los microorganismos
(estos medios pueden ser solicitados a la recepcionista en el laboratorio a la recepcionista).
Las tráqueas se deben frotar con movimientos rotatorios del hisopo y estos se colocarán en
un tubo que contenga de 1.5 a 2 ml del medio con el que se haya tomado la muestra. En la
toma de muestra se podrá hacer un pool para cada tres hisopos.
El envío de los embriones que pican el cascarón y no nacen será seleccionando 9 embriones
por identificación, si están vivos sacrificarlos con refrigeración (8 horas a 4°C), y colocarlos
en conos de cartón perfectamente identificados dentro de una bolsa de plástico por
identificación.
Las muestras se deberán enviar en condiciones de refrigeración (4°C) dentro de las primeras
24 horas posteriores a la toma de la misma. En el caso de regiones distantes al laboratorio el
tiempo de transporte por mensajería puede ser de 48 a 72 hrs., por lo que se deberán enviar
con suficientes refrigerantes para mantener una temperatura entre 4° y 8° C. Otra alternativa
es enviar las aves o los embriones al laboratorio para que se realice la toma de la muestra.
En el caso de PRRS las muestras pueden ser plasma, suero y semen, que deberán ser
congeladas lo mas pronto posible después de que se obtienen, y enviadas al laboratorio con
refrigerantes.
Las heces fecales para prueba de PCR de Ileitis, se pueden congelar, o bien enviarlas con
refrigerantes.
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L) Muestras de materias primas, ingredientes, alimentos y camas:
a) Se deberán tomar de 500 a 1000 grs. en una bolsa estéril. El material de la bolsa
deberá ser de papel en el caso de solicitar análisis micológicos. Las muestras se deberán
tomar siguiendo las técnicas específicas para cada caso: tolva, camión, furgón, etc. según
se describe a continuación:
b) Alimento o materias primas ensacadas.
La muestra se obtiene introduciendo el calador diagonalmente en los sacos colocados en
posición horizontal, el número de sacos a hacer un muestreo depende del total. Si se trata
de lotes de 1 a 10 unidades debe tomarse una muestra de cada saco. Si el total de sacos
es de 11 a 100 muestras, 10 sacos. Cuando el número de sacos es superior a 100
obtenga la muestra a partir de la cantidad que equivalga a la raíz cuadrada del total de
sacos, por ejemplo si el embarque comprende 900 sacos la muestra representativa será
obtenida con 30 sacos.
Los caladores a utilizar dependen del tamaño de los sacos, existen en el mercado
caladores de diferente diámetro y material en algunos son específicos para determinados
productos. El peso de la muestra, cuando se trata de alimentos terminados, debe quedar
comprendida entre 500 a 1,000 g.
Para el caso de una premezcla vitamínica, de minerales o de aditivos diluidos, con 150 a
200 g de muestra es suficiente.
En el caso de vitaminas liposolubles 100 g son adecuados para su envió al laboratorio.
En otros casos las muestras representativas que deben remitirse para su análisis son de
10 a 50 g.
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c) Alimentos y materias primas a granel:
Obtenga una muestra representativa mediante un calador del tamaño adecuado para
llegar al fondo del vehículo. Se recomienda que se seleccione 11 zonas de muestreo de
acuerdo con el esquema siguiente:
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Si se trata de alimentos terminados con 1 Kg de muestra es suficiente ; en caso de pastas
o granos es necesario que la muestra primaria sea de 5.5 Kg, la cual se debe cuartear y
remitir al laboratorio por lo menos 500 g.
Cuando se trata de granos y se desea realizar la cuantificación de mico toxinas, la
cantidad mínima que se debe obtener de muestra es de 22 Kg debiéndose reducir por
cuarteo a 5.5 Kg aproximadamente y someter a molienda y nuevamente a cuarteo. Se
debe enviar al laboratorio 1 Kg de muestra molida.
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M) Muestras de antibióticos, vitaminas y premezclas:
a) Se deberán enviar 50 gr de muestra para antibióticos y/o vitaminas y 250 gr para
premezclas. Las muestras deberán tomarse en bolsas negras para protegerlas de la luz
solar y de preferencia sellarlas.
N) Muestras de agua:
a) Para tomar muestras de la llave se deberá dejar correr el agua durante 1 minuto,
flamear la boca de la llave por dentro y por fuera y dejar correr el agua otro minuto antes
de tomar la muestra. Las muestras deberán tomarse en un recipiente estéril no menor de
250 ml y conservarse en refrigeración, no más de 24 hrs.
b) Para tomar muestras de agua de cisternas o pozos se deberá colocar un alambre
alrededor de la boca de un frasco y empleando una cuerda limpia tan larga como se
calcule el fondo de la cisterna o pozo. En el caso de pozos se deberá emplear un alambre
de por lo menos 1.3 m de largo. El alambre se deberá flamear antes de introducirlo al pozo
o cisterna. Las muestras deberán tomarse en un recipiente estéril de no menos de 250 ml
y conservarse en refrigeración.
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c) Para tomar muestras de agua corriente se deberá colocar el recipiente contra corriente
hasta llenarlo. Las muestras deberán tomarse en un recipiente estéril de no menos de 250
ml y conservarse en refrigeración.
Ñ) Muestras de agua embotellada:
a) Se deberán tomar muestras de presentaciones comerciales con sello de garantía
intacto.
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III.- PREPARACION Y ENVIO DE MUESTRAS
A) Historia clínica:
Deberá incluirse especialmente para los análisis histopatológicos solicitados así como en
el caso de ingresar muestras para un caso clínico completo y de acuerdo al formato anexo
(F1).
B) Identificación:
Deberán especificarse claramente el tipo de muestras enviadas, los estudios solicitados,
así como los datos de la empresa a quien se factura y los datos de la persona a quien se
le enviará el resultado incluyendo No. de teléfono y fax (ver formato F1).
C) Preparación:
Las muestras deberán prepararse para su envío de la siguiente forma:
a) Muestras para bacteriología, serología, virología (a excepción de las muestras enviadas
en glicerina al 50%), agua y aves muertas, deberán enviarse en refrigeración en una caja
térmica con refrigerantes que ocupen al menos una cuarta parte del volumen de la caja. El
transporte al laboratorio no deberá ser de más de 48 hrs.
b) Los animales vivos deberán transportarse con una adecuada ventilación y protegidos
en lo posible de la luz solar directa. Si el viaje es prolongado es aconsejable proporcionar
una fuente de agua.
c) El resto de las muestras pueden enviarse en cajas a temperatura ambiente y
adecuadamente protegidas en el caso de tratarse de muestras frágiles.
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D) Envío:
Las muestras pueden enviarse de alguna de las siguientes formas:
a) Por medio de nuestros representantes de ventas o servicio técnico.
b) En forma personal ingresarlas al laboratorio.
c) Por medio del algún sistema de mensajería
E) Políticas de crédito:
Para poder gozar de la preferencia de contar con 30 días de crédito posteriores a la fecha
de la factura, se deberá haber solicitado el alta en nuestro departamento de Crédito y
Cobranzas y llenar los requisitos especificados por el mismo.
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ENVIO DE MUESTRAS
PRINCIPALES ENFERMEDADES DE LAS AVES, MUESTRAS Y PRUEBAS SUGERIDAS PARA EL LABORATORIO
Enfermedad
Necropsia
Aisl. Bact/ Micológico
Aislamiento viral
Serología
Anemia
Infecciosa
si
Médula ósea, hígado, bazo
bolsa de Fabricio y timo
Muestras de sangre
IF, ELISA
Artritis Viral
si
Tendones, vaina sinovial,
líquido sinovial de la articulación tibio tarsiana o
tibio femoral.
Muestras de sangre
Aspergilosis
si
Botulismo
Bronquitis
infecciosa
si
si
Candidiasis
si
Clamidiasis
si
Clostridiosis
Dermatitis
Gangrenosa
Coccidiosis
si
AGP, ELISA
MNT
Pulmones y órganos
afectados (sacos aéreos)
Pulmón, Tráquea, riñón,
bazo y tonsilas cecales.
Buche, molleja
y organos afectados
Sacos aereos, hígado, pulmón
si
Piel, músculo,
intestino, tejidos
necrosados
Piel
Deficiencia de
vitamina A
Deficiencia de
vitamina E
si
si
Intestinos afectados
Senos infraorbitarios,
cabeza,oido medio, ojo,
sacos aéreos (obtención
de muestras en forma especial por lo que se
recomienda enviar aves
vivas ó cabezas al laboratorio para la toma de
muestras)
Parasitología
Muestras de sangre
ELISA, HI. MNT, AGP
VSN
oviducto
Buche, molleja
órganos afectados.
hígado, pulmón
si
Coriza
infecciosa
Histopatología
Médula ósea, timo
bolsa de Fabricio, bazo
hígado, tonsilas cecales, IP
Tendones, vaina sinovial
proventrículo, molleja pancreas, intestino,
corazón y cerebro.
Pulmones y órganos
afectados.
Cerebro
Pulmón, tráquea, riñón
Muestras de sangre
HI
Raspado, Coproparasitoscópico
Senos Infraorbitarios.
Esófago, riñón, bolsa de
Fabricio, provent. (atrio)
Encéfalo (cerebelo),
musculo esquelético.
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ENVIO DE MUESTRAS
PRINCIPALES ENFERMEDADES DE LAS AVES, MUESTRAS Y PRUEBAS SUGERIDAS PARA EL LABORATORIO.
Enfermedad
Necropsia
Ais. Bact/ Micológico
Aislamiento viral
Encefalomielitis
aviar
si
Cerebro, hisopos
cloacales
Enfermedad de
Marek
si
Riñón, sangre (linfoncitos)
tumores.
Enfermedad de
Newcastle
Enfermedad respiratoria crónica
complicada
Enteritis
ulcerativa
Hepatitis con
cuerpos de
inclusión
Hepatitis
vibriónica
Histomoniasis
Infección de la
bolsa de Fabricio
Influenza aviar
si
Pulmón, tráquea, cerebro,
tonsilas cecales, bazo.
si
si
Pulmón, tráquea, bazo
hígado, sacos aereos,
saco vitelino.
Hígado, intestino, bazo
si
Hígado
Serología
Muestras de sangre
IF,AGP, VSN
Susceptibilidad
Muestras de sangre
AGP
Muestras de sangre
HI,AGP, ELISA; MNT
Muestras de sangre
ARP,HI, ELISA para
Mycoplasma sp.
Muestras de sangre
AGP; MNT
Hígado
si
si
Laringotraqueitis
si
Leucosis
Linfoide
si
Mycoplasmosis
si
Traquea, pulmón, hisopos
cloacal, hígado
Laringe, tráquea
Sangre completa ó plasma
tumores.
Sacos aéreos,traquea
pulmón,articulaciones
embrión picado no nacido
Otros
Intestino, hígado
bazo
Hígado, timo, bolsade Fabricio.
Hígado
Bolsa de Fabricio
si
Histopatología
Proventrículo, molleja
pancreas, miocardio,
encéfalo
Bolsa de Fabricio, timo
nervios perífericos, médula espinal, órganos afectados y encéfalo.
Tráquea, timo, bazo, placas
de Peyer, tonsilas, cerebro.
Pulmón, tráquea, sacos
aéreos.
Muestras de sangre
AGP,ELISA, MNT
Muestras de sangre
AGP; HI
Muestras de sangre
AGP,VSN, IF
Muestras de sangre
ELISA, VSN, Cofal
Muestras de sangre
PCR, ARP, ELISA,HI
Hígado
Bolsa de Fabricio
Raspado
IP en tejidos
Pulmón, encéfalo,
tráquea
Laringe, tráquea
pulmón, párpado.
Hígado, bazo, médula
osea , bolsa de Fabricio
y organos afectados.
Tráquea,pulmón
Senos infraorbitarios.
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ENVIO DE MUESTRAS
PRINCIPALES ENFERMEDADES DE LAS AVES, MUESTRAS Y PRUEBAS SUGERIDAS PARA EL LABORATORIO.
Enfermedad
Necropsia
Paratifoidea
si
Pasteurelosis
Cólera Aviar
Raquitismo
si
Síndrome cabeza
hinchada
si
Aisl. Bact/ Micológico
Aislamiento viral
Serología
Hígado, saco vitelino
vesicula biliar,
intestino, ovario,
embrión picado no nacido
Tráquea,pulmón,hígado
bazo,barbillas,ojo
Tibia, femúr
Mucosa de senos infraorbitarios,laringe
Tráquea y pulmón
Raspados ó hísopos
cloacales, oviducto
Hisopos y secciones de
intertino delgado
Síndrome de baja si
de postura
Síndrome de mala si
Absorción
si
Toxicosis
(Micotoxinas,
desinfectantes
metales pesados
antibioticos)
Tuberculosis
Viruela
Aviar
si
si
si
Otros
Pulmón,hígado
si
Tifoidea Aviar
Histopatología
Hígado
Hígado,vesicula biliar
bazo,intestino
Muestra de sangre
ELISA
Muestra de sangre
ELISA,MNT
Muestra de sangre
ELISA, MNT, AGP
Muestra de sangre
ELISA; ARP
Mucosa de senos
intraorbitarios
tráquea,laringe
Oviducto (útero).
Proventiculo, intestino,
(duodeno y yeyuno) riñon
páncreas y corazón.
Organos Afectados
Higado,riñón, timo,
médula ósea, bolsa de
Fabricio, proventrículo,
molleja y corazón.
Organos afectados
Piel y tejidos afectados
(esófago, laringe,tráquea)
Muestra de sangre
AGP,VSN
Organos afectados, Z-N
Piel y tejidos
afectados
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CUADROS DE LAS PRICIPALES ENFERMEDADES DE BOVINOS
ENFERMEDAD
AGENTE
NECROPSIA
AISL. BACT/MICOLOGICO
DIAGNOSTICO
Actinobacilosis
Actinobacillus
lignieresi
Linfonodos y tejido blando afectado. Signos clínicos, Histopatología, Aislamiento
Actynomicosis
Actinomyces bovis
Linfonodos
Lengua azul
Orbivirus
Reoviridae
SI
Estomatitis pustular bovina
Parapoxvirus
(Poxviridae)
Pestivirus
(flavivirus)
Fusobacterium
necrophorum
Herpes virus-1
Bovino
Lyssavirus
(Rhabdoviridae)
Gammaherpes
virus
Clostridium
perfringens tipo
ByC
E. coli
SI
Diarrea viral bovina
Difteria de los Terneros
Rinotraqueitis infecciosa bovina
Rabia
Fiebre Catarral maligna
Clostridiasis (Enterotoxémia)
Colibacilosis y colisepticemia
Enfermedad de Johne
Eczema facial
Mycobacterium
paratuberculosis
Phytomyces
chartarum
SI
Tejido blando de cavidad oral y
laringe.
SI
Histopatología, Aislamiento
Historia clínica Aislamiento viral en embrión de
pollo (10 a 12 días de edad) Serología ( VN, AGID,
ELISA, CFT, MODIFICADO)
Historia de ordeñadores con nódulos, Lesiones,
Microscopía electrónica).
Signos clínicos. Aislamiento víral , Serología
(ELISA, VN, Histopatología.
Signos clínicos, Histopatología, Aislamiento
SI
Signos clínicos, Necropsia, Histopatología,
Aislamiento
Historia clínica, Signos clínicos, Histopatología,
SI
Signos clínicos, Histopatología,
SI
Intestinos
Necropsia, Histopatología
SI
Linfonodos regionales y contenido
de estomago y duondeno.
Aislamiento, Necropsia, Histopatología
SI
Intestino (yeyuno e ileon)
Historia clínica, Necropsia, Histopatología
SI
Cuenta de esporas en pastura
Historia clínica, Necropsia, Histopatología,
Aislamiento.
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CUADROS DE LAS PRICIPALES ENFERMEDADES DE BOVINOS
ENFERMEDAD
Rotavirus y Coronavirus
AGENTE
Rotavirus
(Reoviridae)
Coronavirus
(Coronaviridae)
NECROPSIA
SI
Salmonelosis
Salmonella sp.
SI
Coronavirus.
SI
SI
SI
Contenido abomasal del feto
Brucelosis
Clostridium
haemolyticum
Listeria
monocytogenes
Anaplasma
marginale
Campylobacter
fetus
Brucella abortus
SI
Clamidiasis
Chlamydia psitacci
SI
Leptospira
Interrogans
Aspergillus
fumigatus
SI
Leche, contenido abomasal del feto Serología, Aislamiento, Histopatología ( ZN
modificado)
Placenta y Feto
Aislamiento, Frotis de placenta serología ( CFT,
IFA, ELISA)
Orina y riñones
Histopatología, Campo oscuro, Serología ( MAT,
CFT, ELISA)
Feto y placenta
Aislamiento, Histopatología de los cotiledones y
fetos, (encéfalo, corazón e hígado)
Inmunofluorescencia e inmunohistoquímica,
descarga uterina
Disenteria invierno
Hemoglobinuria Bacilar
Listeriosis
Anaplasmosis
Campylobacteriosis
Leptospirosis
Aborto micotico
SI
AISL. BACT/MICOLOGICO
Intestino delgado y grueso,
linfonodos mesentericos, hígado y
vesícula biliar.
Aislamiento
Histopatología
Histopatología, Aislamiento viral, Serología(VN,
HAI) Hemoaglutinación pasiva
Historia clínica, Necropsia, Histopatología (Hígado)
Aislamiento de medula oblonga,
leche y descargas uterinas, Silo.
SI
SI
DIAGNOSTICO
Historia clínica, Necropsia, Histopatología, ELISA
por captura, Aislamiento viral.
Necropsia, Histopatología, Aislamiento
Historia Clínica, Frotís sanguíneo (GIEMSA)
Pruebas serológicas.
Necropsia, Histopatología, Aislamiento
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CUADROS DE LAS PRICIPALES ENFERMEDADES DE BOVINOS
ENFERMEDAD
Neosporosis
Tricominiasis
Leucosis bovina
Pielonefritis
AGENTE
Neospora
caninum
Trichomonas
foetus
Retroviridae
Corynebacterium
renale
Queratoconjuntivitis bovina
Moraxella bovis
Encefalopatía espongiforme bovina
Prion A
Polioencefalomalacia
Tiaminasas
Tetanos
Clostridium tetani
Meningoencefalitis tromboembolica Haemophilus
somnus
Pierna Negra
Clostridium
chavoei
Edema Maligno
Clostridium
septicum, C
sordelli, C novy
tipo A
NECROPSIA
SI (feto)
AISL. BACT/MICOLOGICO
Descarga uterina
SI
SI
Riñón
SI
SI
SI
SI
SI
Hisopo de la zona afectada
SI
Músculo esquelético y cardiaco
SI
Músculo esquelético
Encéfalo y pulmón
DIAGNOSTICO
Histopatología (encéfalo, corazón e hígado)
Inmunofluorescencia e Inmunohistoquímica, ELISA,
Aislamiento en cultivo celular
Examinación directa al microscopio de la descarga
uterina, cultivo
Historia clínica, signos clínicos, Histopatlogía,
Serología (AGID O ELISA)
Historia clínica, Signos clínicos, Histopatología,
Aislamiento.
Histotia clínica, signos clínicos, Aislamiento
Historia Clínica, Signos Clínicos, Histopatología
Signos clínicos; Histopatología (cerebro)
Historia Clínica, Signos Clínicos, Histopatología
Historia clínica, Signos clínicos,
Histopatología(cerebro) Aislamiento
Histopatología, Frotis de los músculos afectados
Historia clínica, Histopatología (musculo),
Aislamiento.
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CUADROS DE LAS PRICIPALES ENFERMEDADES DE BOVINOS
ENFERMEDAD
Neumonia enzootica (Complejo
Respiratorio Bovino)
AGENTE
Parainfluenza 3
Virus respiratorio
Sincitial bovino
(DVB), (IBR),
Mycoplasma bovis,
Pasteurella sp,
Haemophilus
somnus
NECROPSIA
SI
Fiebre de Embarque
Parainfluenza 3
Virus respiratorio
Sincitial bovino
Pasteurella sp,
Haemophilus
somnus.
Tuberculosis
Mycobacterium
bovis
Papilomavirus 1-6
Papoviridae
Papilomatosis bovina
AISL. BACT/MICOLOGICO
Pulmón
DIAGNOSTICO
Necropsia, Histopatología (pulmón) Aislamiento
SI
Pulmón
Aislamiento, Histopatología, Serología (IFA, HAI,
VN)
SI
Linfonodos y pulmón
Historia clínica, signos clínicos, Necropsia,
Histopatlogía, Aislamiento.
Signos Clínicos, Histopatología (piel)
SI
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ENVIO DE MUESTRAS
PRINCIPALES ENFERMEDADES DE LOS CERDOS Y MUESTRAS SUGERIDAS PARA EL LABORATORIO
Enfermedad
Necropsia
Abortos
Actinomicosis
Artritis
Si
Si
Si
Aujeszky
Si
Brucelosis
Aisl. Bact / Micologico
A criterio
Hisopos zona afectada
Hisopos articulación
afectada
Feto, placenta, testiculos.
Clostridiosis
(Enteritis necrótica)
Coccidiosis
Si
Si
Colibacilosis
Si
Campilobacteriosis
Si
Ileitis necrótica
Desintería
Si
porcina
Deficiencia de
Si
vitamina E y selenio
Enfermedad del
Si
Edema
Enfermedad de Glasser Si
Haemophillus parasuis
Enteropatía proliferativa Si
(ileitis)
Aislamiento viral
Serología
A criterio
A criterio
Encefalo, Tonsilas
orales, hígado, riñon
MNT, ELISA,IP
ARP, Mercapto
etanol, Rosa de
bengala
COOMBS
Intestinos afectados
Histopatología
Parasitología
Feto y/o hígados
Biopsia zona afectada
Articulación afectada
líquido articular (cipatología)
Encéfalo, pulmón, tonsilas
orales.
Testículos, corazón
(válvulas)
Intestinos afectados
Intestinos afectados
Hígado, bazo y pulmón
Análisis corpoparasitoscópico(H.f)
Intestinos afectados
Encéfalo (enf. Del edema)
Ileon
Ileon
(Campo obscuro)
Cont. Colón y heces de recto
(Campo obscuro-frotis directo)
Ciego y colón
Intestino delgado
Pleura, epicardio, peritonéo,
articulaciones, encéfalo.
PCR
Hígado,músculo cardíatico,músculo esquelético
Encéfalo, médula espinal,
estómago.
Pulmón, corazón, encéfalo,
articulaciones.
Ileon, colon, tinción
argéntica
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ENVIO DE MUESTRAS
PRINCIPALES ENFERMEDADES DE LOS CERDOS Y MUESTRAS SUGERIDAS PARA EL LABORATORIO
Enfermedad
Erisipela
Necropsia
Aisl. Bact / Micológico
Si
Hígado, bazo, pulmón
corazón,
exudado articular
Fiebre Porcina
Clásica
Si
Bazo, tonsilas orales,
ganglios linfáticos,
Encéfalo.
Gastroenteritis
Transmisible
Leptospirosis
Si
Intestino delgado.
Micotoxicosis
Si
Neumonía
bacteriana
pasteurelosis
Neumonía
Enzootica
(Micoplasmosis)
Neumonía
Parasitaria
Neoplasias
Si
Si
Pulmones
Si
Ojo Azul
Si
Biposias de tumor,
órgano o tejido afectados
Encéfalo, ojo.
Orina (campo obscuro)
ríñón e hígado, fetos
Si
Aislamiento viral
Serología
IP, IF, ELISA
Ma
Histopatología
Bazo, riñón, hígado
tonsilas orales, piel
ganglíos linfaticos,
exudado articular
válvulas cardíacas
Encéfalo, bazo, tonsilas
riñón, ganglíos linfáticos.
Parasitología
Intestino delgado
(yeyuno)
Riñón e hígado, fetos.
Hígado, riñón
Tráquea, pulmón,
ganglios linfáticos
mediastínicos
Tráquea, pulmón,
ganglios linfáticos
mediastínicos
ELISA, PCR,
IP en tejidos.
Encéfalo, tonsilas orales
IH, IP
pulmón y sangre completa
(con anticoagulante)
Bronquios, pulmones
ganglios linfáticos
mediastínicos y bronquiales
Bronquios, pulmones
Heces, examen co
proparasitoscopico
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ENVIO DE MUESTRAS
PRINCIPALES ENFERMEDADES DE LOS CERDOS Y MUESTRAS SUGERIDAS PARA EL LABORATORIO
Enfermedad
Pleuroneumonia
(actinobacilosis)
Necropsia
Si
Parvovirus porcino
PRRS
Rinitis
Atrófica
Rinitis Necrótica
Si
Si
Si
Rotavirus
Si
Salmonelosis
Si
Si
Aisl. Bact/Micológico
Tráquea, pulmón.
Aislamiento viral
Serología
ARP
(Pleurotest)
coaglutinación
Fetos abortados,placenta
Suero sanguíneo
IH
ELISA
Cornetes nasales, traquea
pulmón.
Cornetes nasales.
Yeyuno
Hígado, vesícula biliar,
colon, ciego, valvula ileocecal
ganglios linfáticos m.
Histopatología
Bronquios, pulmones,
ganglios linfáticos
mediastínicos y
bronquiales
Fetos abortados
Pulmón, Encefalo
Maxilar superior
con cornetes nasales
Maxilar superior
con cornetes nasales
Yeyuno
Hígado, colon, ciego,
ganglios linfáticos
mesentéricos, válvula
ileocecal
Abreviaturas.
AGP - Precipitación en agar gel (Inmunodifusión)
ARP - Aglutinación rápida en placa
Cofal - Fijación de complemento
ELISA - Inmunoensayo enzimático
IF
- Inmunofluorescencia
IH
- Inhibición de la hemoaglutinación
IP
- Inmunoperoxidasa
Ma
- Microaglutinación
MHT - Micro virus suero neutralización
VSN - Virus suero neutralización
Laboratorio de Biología
IA: FO/BG-RM/0040/00
REGISTRO DE INGRESO DE MUESTRAS AL LABORATORIO
No. de Caso :
Fecha:
Cliente :
Tel :
Facturar a :
Muestra:
Cantidad:
Especie:
Edad:
Función Zootécnica:
Sexo:
Raza:
Granja
Sección
No. de Parvada:
Caseta
Lote:
Identificación Particular:
Conducto:
Solicitante:
ANÁLISIS SOLICITADOS.
Departamento
Bacteriologia
Muestra
Cantidad
Estudio Solicitado
P.E y Cerdos
Cultivos de Células
Histopatología
Virologia y Serologia
Historia Clínica :
Observaciones:
Nota : Las muestras recibidas después de las 17:00 p.m. serán trabajadas al día siguiente.
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